JP2007075058A - 新規なカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体、及びそれを含有してなる抗酸化組成物 - Google Patents

Abstract

【課題】
本発明は、カチオン性の金属ポルフィリン錯体に十分な血中濃度を長時間にわたって維持させ、さらに生成するＨ_２Ｏ_２の消去活性を付加させて、従来使用されてきた抗酸化剤の生体利用能を著しく向上させた新規な複合体、及びそれを用いた抗酸化剤を提供する。
【解決手段】
本発明は、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、カチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体、それを含有してなる抗酸化組成物、及びそれを含有してなる医薬組成物に関する。
【選択図】 なし

Description

本発明は、新規で、かつ抗酸化組成物の有効成分として有用なカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体に関する。より詳細には、本発明は、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、カチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体、それを含有してなる抗酸化組成物、及びそれを含有してなる医薬組成物に関する。

好気性生物は酸素を取り込み、代謝系に利用して高エネルギーを得ている。この作用は細胞のミトコンドリアにより行われているが、ミトコンドリアが消費する酸素の０．４〜４％はエネルギーの産生に利用されるのではなく、活性酸素種になると言われている。この酸素の一部は、スーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）や、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）、ペルオキシ亜硝酸イオン（ＯＮＯＯ⁻）、そしてヒドロキシラジカル（・ＯＨ）などの非常に反応性の高い活性酸素種（ＲＯＳ）に変化する。これらのＲＯＳは、生体防御や細胞内シグナル伝達などに利用されており、生体内において重要な役割を担っているが、その一方では、高い反応性によりＤＮＡや脂質等の生体分子を酸化変性させ、様々な細胞障害を誘発させる原因となることが知られている。このように生体内における活性酸素種（ＲＯＳ）は、生体機能における「両刃の刃」となっており、通常は、役割を終えたＲＯＳは、生体に存在するＲＯＳを消去する抗酸化物質により速やかに還元消去される。しかしながら、過剰に生成したＲＯＳが生体恒常性を損なうとき、ＲＯＳは臓器レベルの障害を誘発し、動脈硬化・腎不全などの重篤な疾患を惹起する。

生命活動の維持に必要不可欠である酸素は、大気中で安定に存在しうる基底状態にある三重項酸素^３Ｏ_２である。生体は、酸素代謝の過程で^３Ｏ_２より反応性に富み、生体の酸化変性を惹起する酸素種を生成する。これを活性酸素種（ＲＯＳ）と呼び、このＲＯＳは生体内でさまざまな酸化還元反応に関与している。これらの活性酸素種（ＲＯＳ）のなかのスーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）、及びヒドロキシラジカル（・ＯＨ）の生成の概要を反応式で示せば、次のようになる。
Ｏ_２ → Ｏ_２・⁻ → Ｈ_２Ｏ_２ → ＨＯ・ → Ｈ_２Ｏ
スーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）は、通常の酸素分子に１個の電子が取り込まれた分子であり、ラジカルとアニオンの両方の性質を有している。生体内では、虚血や炎症などの様々な刺激により通常の酸素分子から生成される。この分子は、各種の活性酸素種（ＲＯＳ）の中で最初に生成される分子であり、結合解離エネルギーが低く、比較的不安定な分子である。しかし、この分子は反応性が比較的低く、細胞膜透過性も低いため、この分子自体が脂質などの生体物質を直接酸化することはほとんど無いとされており、この分子自体による生体毒性はないものとされている。
スーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）は、生体内で生成された一酸化窒素（ＮＯ）と反応してペルオキシ亜硝酸イオン（ＯＮＯＯ⁻）を生成するほかに、スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）により過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）に変換される。また、スーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）は、生成した過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）と共に次式、
Ｏ_２・⁻ ＋ Ｈ_２Ｏ_２ → ＨＯ・ ＋ ＯＨ⁻ ＋ Ｏ_２
で表されるハーバー・ワイス反応によりヒドロキシラジカル（・ＯＨ）を生成する。

過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）は、スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）によりスーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）から生成される活性酸素種（ＲＯＳ）の１種であり、細胞増殖作用や情報伝達シグナルとしての機能を有し、様々な生理作用に関与している物質である。過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）は、細胞膜透過性が高く、活性酸素種（ＲＯＳ）のなかでは比較的安定な物質で、それ自体の酸化力はそれほど大きくない。しかし、鉄や銅などの遷移金属イオンと反応して、極めて毒性の高いヒドロキシラジカル（・ＯＨ）を生成する。この反応は、次式、
Ｍ^ｎ＋ ＋ Ｈ_２Ｏ_２ → ＨＯ・ ＋ ＯＨ⁻ ＋ Ｍ^{（ｎ＋１）＋}
（式中、Ｍ^ｎ＋はＦｅ^２＋又はＣｕ^＋を示し、Ｍ^{（ｎ＋１）＋}はＦｅ^３＋又はＣｕ^２＋をそれぞれ示す。）
で表されるフェントン反応として知られているものである。また、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）は、前記したハーバー・ワイス反応によりヒドロキシラジカル（・ＯＨ）を生成する。

ヒドロキシラジカル（・ＯＨ）は、活性酸素種（ＲＯＳ）のなかで最も反応性の高い物質であり、活性酸素種（ＲＯＳ）による細胞障害の主要な分子種であるとされている。水素引き抜き反応、付加反応、電子移動などの各種の化学反応を、１０^８〜１０^１０Ｍ^−１ｓ^−１で行い、生体物質と無差別的に反応することが知られている。反応性が無差別的であることからも、ヒドロキシラジカル（・ＯＨ）を特異的に消去する抗酸化物質は存在していない。ヒドロキシラジカル（・ＯＨ）の大部分は前記したフェントン反応により過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）から生成されるとされている。

このように活性酸素種（ＲＯＳ）のなかでも過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）は生理活性物質として有用な物質であり、これを消去することはできないが、反面極めて毒性の高いヒドロキシラジカル（・ＯＨ）を生成する物質でもある。したがって、活性酸素種（ＲＯＳ）による生理活性を維持し、その細胞障害作用を低下させるためには、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）からのヒドロキシラジカル（・ＯＨ）の生成を抑制して、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を速やかに水に還元することが重要となる。生体内において、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を水に還元する経路としては、グルタチオンペルオキシダーゼ（ＧＰｘ）と還元型グルタチオン（ＧＳＨ）による還元と、カタラーゼ（Catalase）による還元が知られている。
カタラーゼ（Catalase）は、あらゆる生物に存在している酵素であり、Ｏ_２・⁻の不均化反応になどにより生成した過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）を水と酸素に分解する酵素である。
ヘムカタラーゼは鉄プロトポルフィリンを活性中心に持つヘムタンパクである。ヘムカタラーゼの分子量は２４ｋＤａであり、４つのサブユニットを有し、その活性発現には四量体であることが必須となる。また、分子形は鞍のようになっており、基本的には球体がくびれた形となっている。また、ペルオキシソームに局在してその触媒能を発揮している。

また、各種ＲＯＳの生成開始物質であり、かつ大量に生成されるスーパーオキシド（Ｏ_２・⁻）を消去するために、スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）の活性を亢進することも必要であると考えられてきた。
このために、ＳＯＤやカタラーゼの活性を亢進させて活性酸素種（ＲＯＳ）による細胞障害を低減させる方法が多数試みられてきている。例えば、アマニンの極性溶媒による抽出物を含有して成るカタラーゼ産生促進剤（特許文献１及び２参照）、ナス科、スイカズラ科、ショウガ科、又はアオイ科の植物のエッセンスからなるカタラーゼ活性化剤（特許文献３参照）、メハジキ、カンゾウ、エゾウコギ、ジオウおよびロクジョウの中から一種または二種以上選ばれる抽出物を含有するスーパーオキシドディスムターゼ（ＳＯＤ）やカタラーゼなどの活性酸素消去酵素の活性促進剤（特許文献４参照）、黒霊芝、霊芝（赤芝）、紫芝、マゴジャクシなどのマンネンタケ属に属するキノコおよびトリュフの中から一種または二種以上選ばれる抽出物を含有するスーパーオキシドディスムターゼ（ＳＯＤ）やカタラーゼなどの活性酸素消去酵素の活性促進剤（特許文献５参照）、ヨウサイ、ゴソウキンリュウ（五爪金竜）、コウショ（紅薯）などのＩｐｏｍｏｅａ属に属する植物からの抽出物からなるラジカル消去剤及びカタラーゼ合成促進剤（特許文献６参照）などが報告されている。
また、本発明者らは、Ｏ_２・⁻消去活性（ＳＯＤ活性）を有する人工ＳＯＤモデル化合物の開発を進めてきた。特に、低分子であり置換基による多様な機能性の発現が行えるＯ_２・⁻消去酵素ＳＯＤモデル化合物のカチオン性の金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔａｌ−Ｐｏｒｐｈｙｒｉｎ）に注目し、優れたＳＯＤ活性と抗酸化効果を報告してきた（特許文献７参照）。

特開２００１−１１４６３６号公報 特開２００１−１２２７３３号公報 特開２００１−１３９４２０号公報 特開２００２−２９９９２号公報 特開２００２−１７３４４１号公報 特開２００４−２５０３４４号公報 特開２０００−２４７９７８号公報

本発明者らは、優れたＳＯＤ活性と抗酸化効果を有するカチオン性の金属ポルフィリン錯体を開発してきたが、これを用いてインビボ（ｉｎ ｖｉｖｏ）での評価実験を行った結果、二つの問題点が明らかとなった。一つは、Ｈ_２Ｏ_２に由来する生体毒である。これは、カチオン性の金属ポルフィリン錯体によるＯ_２・⁻の不均化反応の際に生成するＨ_２Ｏ_２自身、又は生成したＨ_２Ｏ_２より派生するＲＯＳ、特に生体毒性が強いと言われるヒドロキシラジカル（・ＯＨ）による生体毒が原因であると考えられる。また、もう一つの問題は、低分子に由来する短い血中滞留時間である。低分子であるカチオン性の金属ポルフィリン錯体を用いた場合には、長時間に渡り血中でのＯ_２・⁻分子種の消去効果を維持することは困難であった。
本発明は、カチオン性の金属ポルフィリン錯体に十分な血中濃度を長時間にわたって維持させ、さらに生成するＨ_２Ｏ_２の消去活性を付加させて、従来使用されてきた抗酸化剤の生体利用能を著しく向上させた新規な複合体、及びそれを用いた抗酸化剤を提供することを目的としている。

本発明者らは、優れたＳＯＤ活性と抗酸化効果を有する活性酸素種（ＲＯＳ）による細胞障害を低減させるを開発してきたが、これをさらに発展させて、当該カチオン性金属ポルフィリン錯体によるＯ_２・⁻の不均化反応の際に生成するＨ_２Ｏ_２自身を同時に消去することができ、かつ低分子である当該カチオン性金属ポルフィリン錯体の生体中での長時間に渡る血中濃度を維持できるようにすることを検討してきた。生成したＨ_２Ｏ_２を消去するためには、グルタチオンペルオキシダーゼ（ＧＰｘ）と還元型グルタチオン（ＧＳＨ）による還元や、カタラーゼ（Catalase）による還元が知られている。また、新たな人工触媒を開発することも考えられた。しかし、Ｈ_２Ｏ_２を消去する酵素や触媒と、優れたＳＯＤ活性と抗酸化効果を有するカチオン性金属ポルフィリン錯体を単に組み合わせて使用するだけでは、両者の作用点が物理的に離れてしまうことも考えられるし、また両者の活性を同時に維持してゆくことも困難であり、活性酸素種（ＲＯＳ）による細胞障害を低減させるという目的を十分に達成することはできないと考えられた。
そこで、本発明者らは、カチオン性金属ポルフィリン錯体とＨ_２Ｏ_２を消去する酵素や触媒との複合体について検討した。その結果、当該カチオン性金属ポルフィリン錯体とカタラーゼとは、強度に凝集して複合体を形成することがわかった。しかし、この複合体は溶解性が悪く実用的なものではなかった。そこで、本発明者らは、さらに検討してきたところ、カタラーゼを親水性ポリマーで修飾して、この修飾カタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体との複合体の形成を試みたところ分散安定性に富むカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体との複合体の形成を確認することができ、本発明に至った。

即ち、本発明は、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、次の一般式（１）

（式中、Ｍは錯体を形成するための金属原子を示し、Ａｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４はそれぞれ独立して置換基を有してもよい炭素環式又は複素環式芳香族基を示し、Ａｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の少なくとも１個はカチオン性の基を有する芳香族基である。）
で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体に関する。
また、本発明は、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、前記の一般式（１）で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有してなる抗酸化組成物に関する。
さらに、本発明は、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、前記の一般式（１）で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有してなる医薬組成物、より詳細には、親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、前記の一般式（１）で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体、及び製薬上許容される担体を含有してなる医薬組成物に関する。

本発明のカチオン性金属ポルフィリン錯体は、ポルフィン骨格に４個の芳香族基を有するものであり、かつ、４個の芳香族基のうちの少なくとも１個にカチオン性の基を有していることを特徴とするものである。
４個の芳香族基は、それぞれ独立して、炭素環式のものであっても複素環式のものであってもよく、単環式のものでも多環式のものでも縮合環式のものであってもよい。芳香族基としては、炭素環式のものとしては例えば、炭素数６〜３６、好ましくは６〜２０の単環式、多環式、又は縮合環式の炭素環式芳香族基が挙げられ、例えば、ベンゼン環、ナフタレン環などから誘導される基が挙げられる。複素環式のものとしては、１個又は２個以上の窒素原子、酸素原子又は硫黄原子を有する５〜１０員の単環式、多環式、又は縮合環式の複素環から誘導される基であり、例えば、ピリジン環、ピリミジン環、アゾール環などから誘導される基である。好ましい芳香族基としては、フェニル基や４−ピリジル基などが挙げられる。

芳香族基が有するカチオン性の基としては、炭素数１〜１０、好ましくは１〜５程度の直鎖状又は分岐状のアルキル基などによりカチオン化されたアンモニウム基やスルホニウム基などが挙げられるが、第四級アンモニウム基が好ましい。これらのカチオン性の基は芳香族基に直接結合していてもよいが、炭素数１〜１０、好ましくは１〜５程度の直鎖状又は分岐状のアルキレン基を介して結合していてもよい。また、本発明のカチオン性の基は芳香族基の置換基として有していてもよいが、芳香族基の異種原子、好ましくは窒素原子が炭素数１〜１０、好ましくは１〜５程度の直鎖状又は分岐状のアルキル基などによりカチオン化されたものであってもよい。このような芳香族基としては、Ｎ−アルキルピリジニウム基などが挙げられる。
カチオン性の基を有する芳香族基としては、例えば、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリエチルアミノフェニル基などの４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基、Ｎ−メチル−４−ピリジル基、Ｎ−エチル−４−ピリジル基などのＮ−低級アルキル−４−ピリジル基などが挙げられる。また、これらのカチオン性の基を有する芳香族基が、フェニル基やナフチル基などの炭素環式芳香族基に直接又はアルキレン基やアミド基やエステル基などを介して結合した基となっていてもよい。

これらの芳香族基は、ＳＯＤ活性に悪影響を与えない置換基をさらに有していてもよい。芳香族基におけるこのような置換基としては、炭素数１〜１０、好ましくは１〜６の直鎖又は分枝状の低級アルキル基、アミノ基、前記した低級アルキル基で置換されているアミノ基、前記した低級アルキル基からなる低級アルコキシ基などが挙げられる。

本発明の前記した一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の少なくとも１個はカチオン性の基を有する芳香族基であるが、好ましくはこれらの芳香族基のうちの２個以上がカチオン性の基を有するものである。
本発明の前記した一般式（１）で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体のポルフィリン環部分のものとしては、Ａｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の全てが、Ｎ−メチル−４−ピリジル基などのＮ−低級アルキル−４−ピリジル基、又は、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基などの４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基である化合物、Ａｒ_１、Ａｒ_２、及び、Ａｒ_３がＮ−メチル−４−ピリジル基などのＮ−低級アルキル−４−ピリジル基、又は、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基などの４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基であり、Ａｒ_４がフェニル基である化合物、Ａｒ_１、及び、Ａｒ_２がＮ−メチル−４−ピリジル基などのＮ−低級アルキル−４−ピリジル基、又は、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基などの４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基であり、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４がフェニル基である化合物、Ａｒ_１、及び、Ａｒ_３がＮ−メチル−４−ピリジル基などのＮ−低級アルキル−４−ピリジル基、又は、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基などの４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基であり、Ａｒ_２及びＡｒ_４がフェニル基である化合物などが挙げられる。

本発明の前記一般式（１）における中心金属Ｍとしては、ＳＯＤ活性を示すものであれば特に制限はないが、好ましい金属としては遷移金属が挙げられ、なかでもマンガン原子、ニッケル原子、鉄原子、銅原子、コバルト原子、又は亜鉛原子などが挙げられるが、ＳＯＤ活性の点からはマンガン原子が特に好ましい。
本発明の前記した一般式（１）で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体は、公知の方法に従って製造することができる。例えば、ピロールと芳香族アルデヒドとを反応させてポリフィリン環部分を製造し、これをハロゲン化低級アルキルや低級アルキルトシレートなどのアルキル化剤でカチオン化し、次いで金属又は金属化合物、例えば金属ハロゲン化物などを用いて金属錯体とする方法により製造することができる。
本発明のカチオン性金属ポルフィリン錯体の、より詳細な製造方法については、前記した特許文献７（特開２０００−２４７９７８号公報）を参照されたい。特許文献７（特開２０００−２４７９７８号公報）の記載を参照して、全て本明細書に取り込む。

本発明の好ましいカチオン性金属ポルフィリン錯体としては；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ４Ｐｙ_４Ｐ、又はＭｅｔ−ＴＭＰｙ_４Ｐと略記する（式中、Ｍｅｔは金属元素を示す。以下同じ。））；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ３Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ２Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−エチル−４−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｅ４Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−エチル−３−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｅ３Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−エチル−２−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｅ２Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノエチル−４−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＥ４Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノエチル−３−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＥ３Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノエチル−２−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＥ２Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノプロピル−４−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＰ４Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノプロピル−３−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＰ３Ｐｙ_４Ｐと略記する）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−アミノプロピル−２−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ＡＰ２Ｐｙ_４Ｐと略記する）；

一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ４Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐ、又はＭｅｔ−ＴＭＰｙ_２ＤＰＰと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ３Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ２Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ４Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ３Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ２Ｐｙ_２Ｐ_２Ｐと略記する。）

一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ４Ｐｙ_３ＰＰ、又はＭｅｔ−ＴＭＰｙ_３ＭＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ３Ｐｙ_３ＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ２Ｐｙ_３ＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ４ＰｙＰ_３Ｐと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ３ＰｙＰ_３Ｐと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ２ＰｙＰ_３Ｐと略記する。）；

一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ４Ｐｙ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素ｓ原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ３Ｐｙ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｃｉｓ−Ｍ２Ｐｙ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ４Ｐｙ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ３Ｐｙ_２Ｐと略記する。）
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_２、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−ｔｒａｎｓ−Ｍ２Ｐｙ_２Ｐと略記する。）

一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ４ＰｙＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−３−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ３ＰｙＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１がＮ−メチル−２−ピリジル基であり、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及びＡｒ_４が水素原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体（Ｍｅｔ−Ｍ２ＰｙＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、２−（Ｎ−メチル−４−ピリジル−カルボニルアミノ）−フェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、２−（Ｎ−メチル−３−ピリジル−カルボニルアミノ）−フェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体；
などが挙げられる。

また、さらに具体的には、
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であるマンガン錯体（以下、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基である鉄錯体（以下、ＦｅＴＭＰｙ_４Ｐと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基である銅錯体。（以下、ＣｕＴＭＰｙ_４Ｐと略記する。）：
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基であるマンガン錯体（以下、ＭｎＴＭＡＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基である鉄錯体（以下、ＦｅＴＭＡＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４が、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基である銅錯体。（以下、ＣｕＴＭＡＰと略記する。）：
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基であるマンガン錯体（以下、ＭｎＴＭＰｙ_３ＭＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基である鉄錯体（以下、ＦｅＴＭＰｙ_３ＭＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、Ａｒ_２、及びＡｒ_３が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_４がフェニル基である銅錯体（以下、ＣｕＴＭＰｙ_３ＭＰＰと略記する。）：
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基であるマンガン錯体（以下、ＭｎＴＭＰｙ_２ＤＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基である鉄錯体（以下、ＦｅＴＭＰｙ_２ＤＰＰと略記する。）；
一般式（１）のＡｒ_１、及びＡｒ_２が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基であり、Ａｒ_３、及びＡｒ_４がフェニル基である銅錯体（以下、ＣｕＴＭＰｙ_２ＤＰＰと略記する。）；
などが挙げられる。
さらに好ましいカチオン性金属ポルフィリン錯体としては、次式

で表されるＮ−アルキル化ピリジル基を有するマンガン錯体が挙げられる。より具体的には、前記したＮ−メチル−４−ピリジル基を有するＭｎＴＭＰｙ_４Ｐが挙げられる。

本発明のカタラーゼとしては、生体内又は細胞内においてＨ_２Ｏ_２を水に還元する能力を有するものであれば特に制限はなく、ヒトなどの動物由来のものであってもよいし、細菌などの微生物由来のものであって、また組替え体であってもよい。好ましいカタラーゼとしては、ヒト由来のカタラーゼが挙げられる。ヒト由来のカタラーゼは天然のものであっても、遺伝子組替え技術により宿主細胞から産生されたものであってもよい。ヒト由来のカタラーゼは、鉄プロトポルフィンを活性中心に持つヘムタンパク質で、その分子量は約２２万〜２４万であり、４個のサブユニットからなり、１サブユニット当たり１分子のヘムを含有している。そのｐＫａは約５．６〜５．８であり、生理条件下では負に帯電している。

本発明におけるカタラーゼに結合する親水性ポリマーとしては、親水性であって、本発明のカチオン性金属ポルフィリン錯体と複合体を形成できる能力、例えばカチオン性金属ポルフィリン錯体のカチオン性基に電気的な親和性を有する負に帯電又は電子過剰な部分を有するポリマーであればよい。このようなポリマーとしては、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコールなどのポリアルキレングリコール、親水性のポリアクリル酸エステル、多糖類やオリゴ糖などが挙げられる。また、このようなポリマーに負の電荷を与えるためにスクシニル化やマレイル化を行ってもよい。好ましい親水性ポリマーとしては、ポリエチレングリコールが挙げられる。ポリエチレングリコールとしては、医薬品添加剤として使用されるグレードのものが好ましく、分子量としては３００〜５００００、好ましくは１０００〜２００００、より好ましくは１０００〜８０００のものが挙げられる。好ましいポリエチレングリコールの例としては、ＰＥＧ１５００、ＰＥＧ２０００、ＰＥＧ４０００，ＰＥＧ６０００などが挙げられる。

親水性ポリマーとカタラーゼを結合させる方法としては特に制限はないが、カタラーゼ中のアミノ基（リジンのアミノ基のアミノ基など）をジカルボン酸のような２官能性の化合物でアミド化などの方法により結合した後、ポリエチレングリコールを他の官能基、例えばカルボキシル基とエステル化などにより結合させてもよい。また、末端にカルボキシル基を有するポリエチレングリコールを活性エステル化法などにより直接カタラーゼのアミノ基と結合させてもよい。好ましい結合方法のひとつとして、次式

で示されるメトキシポリエチレングリコール−Ｎ−サクシンイミジル（ｍＰＥＧ−ＳＰＡ）によるカップリング法が挙げられる。
このような親水性ポリマーで修飾されるカタラーゼのアミノ基の割合としては、特に制限はないが、モル修飾率（（修飾されたアミノ基のモル）／（カタラーゼ中の修飾可能な全アミノ基のモル）の百分率）が高くなればカタラーゼの活性が低下してくるし、修飾率は低いと親水性を十分に確保することが困難となるので、これらの点を考慮して使用目的に応じて適宜調整することができる。
本発明者らによる予備実験においては、カタラーゼのアミノ基をアセチル基で修飾したカタラーゼ（Ac Catalase 1、及びAc Catalase 2）の場合の修飾率とカタラーゼの活性との関係は、次の表１のようになっているわかっている。

この表１の結果からもわかるように、カタラーゼは５０％の修飾率においても約８１％の活性が維持されており、アミノ基の修飾に対しては比較的安定な酵素である。
本発明の親水性ポリマーが結合したカタラーゼとしては、前記した親水性ポリマーによりカタラーゼのアミノ基の約５〜９０モル％、好ましくは約５〜６０モル％、より好ましくは５〜５０モル％が修飾されたものが挙げられる。
なお、カタラーゼのアミノ基の修飾率は、カタラーゼの残存する遊離のアミノ基をＴＮＢＳ（2,4,6-Trinitrobenzene sulfonic acid）による定量法（ＴＮＢＳ法）により測定することにより決定することができる。

このようにして調製された本発明の「親水性ポリマーが結合したカタラーゼ」は、必要により各種の方法により精製することができる。精製法としては、高速液体クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィーなどの公知の各種の方法を採用することができる。好ましい精製方法としては、親水性ビニルポリマー、架橋デキストラン（Sephadex, Sephacryl)、架橋ポリアクリルアミド（Bio-GelP）、架橋アガロース（Sepharose)、多孔性セルロースなどを担体としたゲルろ過クロマトグラフィーが挙げられる。

本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を製造する方法としては、溶媒中で親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、前記した一般式（１）で表される本発明のカチオン性金属ポルフィリン錯体とを混合して攪拌することにより製造することができる。
この方法を、カチオン性金属ポルフィリン錯体として前記したＮ−メチル−４−ピリジル基を有するＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを例とし、親水性ポリマーとしてポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を例として、模式的に図１に示す。図１において丸く表示されているのがカタラーゼを示しており、その丸く表示されているところから黒太線で表示されているものがポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を示している。この図１に示されているように、低分子のカチオン性金属ポルフィリン錯体（図１では十字型で示されている。）が、巨大タンパク質のカタラーゼ又はＰＥＧの近辺に吸着されたように結合して複合体を形成する。そして、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、図１に示されているように複合体の周囲に親水性の親水性ポリマーの鎖が突出している。このために、本発明の複合体は親水性を保持することができ、血液などの水溶性の媒質中での分散性や安定性に優れている。

本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を製造する方法における溶媒としては、水が好ましいがこれに限定されるものではなく、含水アルコールなどの有機溶媒との混合溶媒などを使用することもできる。溶媒としては水が好ましいが、ＰＢＳ（リン酸バッファー）や塩酸トリスバッファーなどの緩衝溶液として使用する方が好ましい。ｐＨは４〜８、好ましくは５〜８の範囲が挙げられる。反応温度としては、室温以下が好ましく、より好ましくは０℃〜１５℃、又は０℃〜１０℃程度が挙げられる。反応時間は特に制限はないが、通常は５時間〜４０時間、又は１０時間〜３０時間の範囲で適宜選択することができる。
反応は光を遮断して行うのが好ましく、通常は遮光下で行うのが好ましい。
また、反応終了後は、透析などにより精製することができる。また、ゲルろ過クロマトグラフィー（ＧＦＣ）などにより、カタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体とが解離していないことを確認することができる。

カタラーゼに対するカチオン性金属ポルフィリン錯体の量も１モル以上であれば特に制限は無く、カタラーゼの有する結合サイト全てに結合させることができる。図１に模式的に示されているように、カタラーゼ１個に対して２個以上のカチオン性金属ポルフィリン錯体が結合するも可能であることから、本発明者らは、カタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体との結合サイトについて、カチオン性金属ポルフィリン錯体として前記したＮ−メチル−４−ピリジル基を有するＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを例として予備実験を行った。その結果、未修飾のカタラーゼは２個のＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとの結合サイトを有していることが判明した。さらに、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）で修飾したカタラーゼ（ＰＥＧ−Ｃａｔ）について同様な結合実験を行った。
即ち、精製した分子量５，０００のＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとを混合して攪拌した。反応終了後、ゲルろ過クロマトグラフィー（ＧＦＣ）により精製を行い、各分画を回収してＵＶ／ｖｉｓスペクトルを観察した。その結果を図２に示す。図２の縦軸は吸光度を示し、横軸は波長（ｎｍ）を示す。図２の上段の実線は高分子量の画分を示し、中段の破線はより低分子量の画分を示し、下段の点線は低分子量の画分を示す。この結果、高分子量の画分からはアミノ酸の芳香族環由来の２８０ｎｍの吸収と、カタラーゼの活性中心ヘム鉄由来の４０５ｎｍの吸収、及びＭｎＴＭＰｙ_４Ｐのソーレー帯由来の４６２ｎｍの極大吸収が観測された。また、低分子量の画分からはＭｎＴＭＰｙ_４Ｐのソーレー帯由来の４６２ｎｍの極大吸収のみが観測された（図２参照）。このことから、高分子量の画分にはＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐが結合している複合体であることが示さた。即ち、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の生成が確認された。また、各ＵＶ／ｖｉｓスペクトルの吸光度より濃度を算出し、カタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体におけるカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体との大まかな結合比を算出した。その結果、ＰＥＧ−カタラーゼ：ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ＝約１：２であることがわかった。

また、別途、未修飾カタラーゼ及びＰＥＧ修飾カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとの、それぞれの結合定数と結合サイト数を、スッキャチャード（Scatchard）プロットと結合曲線を用いて解析した。具体的には、スッキャチャード（Scatchard）プロットのｒ値の漸近から一分子あたりの結合サイトを、そして直線近似の傾きＫから結合定数を求めた。
その結果、未修飾カタラーゼの結合サイトが一分子あたり２個程度であり、結合定数が約５×１０^５Ｍ^−１であることがわかった。また、ＰＥＧ修飾カタラーゼの結合サイトが一分子あたり１〜２個程度であり、結合定数が約５×１０^５Ｍ^−１であることがわかった。この実験において、未修飾カタラーゼとＰＥＧ修飾カタラーゼのいずれについても、非結合薬物濃度の上昇とともに、結合薬物濃度が収束する様子が見られた（データは示していない。）。
以上のことから、未修飾カタラーゼの結合サイトが２個であるのに対し、ＰＥＧ修飾カタラーゼでは１〜２個であった。これは、ＰＥＧ修飾に伴い結合サイトの一部が消失したためであると考えられる。さらに、ＰＥＧ修飾カタラーゼの結合定数が、未修飾カタラーゼと同程度であったことは、ＰＥＧなどの親水性ポリマーによる修飾が、カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの相互作用に大きな影響を与えないためと考えられる。即ち、本発明の方法によるカタラーゼの修飾は、カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとの複合体の形成の際の相互作用には大きな影響を与えることなく、形成された複合体の親水性を増加させることがわかった。
また、ＰＥＧの修飾率を上昇させていくに従い、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐが結合しにくい状況が生じてくる。これは、ＰＥＧ相互による排除効果と結合サイトの消失に由来するものと考えられる。これらのことから、ＰＥＧなどによるカタラーゼの修飾は、カタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体との複合体の形成応力に影響を与えない程度の低い修飾率（例えば、１０ｍｏｌ％程度）が好ましいと考えられた。

以上のように、親水性ポリマーで修飾されたカタラーゼを用いた本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、未修飾のカタラーゼと同様な複合体を形成することができ、かつ親水性であり水溶媒中において極めて優れた分散性と安定性を有していることが確認された。
そこで、このようにして形成された本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体が、目的するＳＯＤ活性と同時に、Ｈ_２Ｏ_２を水に還元する能力を有しているかどうかを検討した。この実験では、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の例示として、分子量５，０００のＰＥＧで修飾したＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとからなる複合体（以下、ＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐという。）を使用した。
ＳＯＤ活性の測定は、Ｏ_２・⁻消去を測定する方法により間接法と直接法に分類される。間接測定法としては、チトクロームＣ（Cytochrome c）法や化学発光法、そしてＥＳＲ法などがある。チトクロームＣ（Cytochrome c）法は、キサンチン−キサンチンオキシダーゼ系をＯ_２・⁻の発生源とし、生成したＯ_２・⁻をから電子を奪うチトクロームＣ（Cytochrome c）の作用との競争反応を測定する方法である。チトクロームＣ（Cytochrome c）は、酸化型チトクロームＣ（Cytochrome c）（極大吸収：５４０ｎｍ）と還元型チトクロームＣ（Cytochrome c）（極大吸収：５５０ｎｍ）が有る。Ｏ_２・⁻の存在により酸化型チトクロームＣ（Cytochrome c）（極大吸収：５４０ｎｍ）が作用して、５５０ｎｍに極大吸収を有する還元型チトクロームＣ（Cytochrome c）へ還元される。この系内に測定対象物を添加すると、Ｏ_２・⁻の消費について競争が起こり、その結果、酸化型チトクロームＣ（Cytochrome c）（極大吸収：５４０ｎｍ）による還元は阻害されることになり、その阻害率を求める方法である。
ＳＯＤ活性の直接測定法としては、ストップトフロー法やパルスラジオリシス法などがあり、いずれも高感度である。ストップトフロー法は、Ｏ_２・⁻が存在しているセル内へ被検物質を混合することにより、セル内のＯ_２・⁻の減少をＯ_２・⁻の吸収波長である２４５ｎｍの減衰として直接観測する方法である。本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの濃度が０μＭ、０．１μＭ、０．２５μＭ、０．５μＭ、１．０μＭ、１．５μＭ、２．０μＭ、２．５μＭ、及び３．０μＭのサンプルをそれぞれ調製し、ＳＯＤ活性を測定した結果を図３に示す。図３の縦軸は速度定数（／秒）を示し、横軸は濃度（μＭ）を示す。この結果、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４ＰのＳＯＤ活性の速度定数（ｋ_ＳＯＤ）は、９．１５×１０^６Ｍ^−１ｓ^−１であることがわかった。

カタラーゼ活性の測定法は、ＵＶを用いたＡｅｂｉの方法（Hugo Aebi, (1984) Methods in enzymology, Vol. 105, 121-126）に準じて行った。この方法は、調製したサンプルをセル内に注入した後、セルにＨ_２Ｏ_２を注入し、Ｈ_２Ｏ_２の減少をＨ_２Ｏ_２の吸収波長である２４０ｎｍの減衰として直接観測するものである。本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの濃度が０ｎＭ、２．５ｎＭ、５．０ｎＭ、７．５ｎＭ、１０ｎＭ、２５ｎＭ、５０ｎＭ、及び１００ｎＭのサンプルをそれぞれ調製し、カタラーゼ活性を測定した結果を図４に示す。図４の縦軸は速度定数（／秒）を示し、横軸は濃度（ｎＭ）を示す。この結果、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐのカタラーゼ活性の速度定数（ｋ_{Ｃａｔａｌａｓｅ}）は、１．４６×１０^７Ｍ^−１ｓ^−１であることがわかった。

また、同じ方法により、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体単体のＳＯＤ活性の速度定数（ｋ_ＳＯＤ）、及び未修飾のカタラーゼ単体のカタラーゼ活性の速度定数（ｋ_{Ｃａｔａｌａｓｅ}）を測定した。その結果、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体単体のＳＯＤ活性の速度定数（ｋ_ＳＯＤ）は、９．４８×１０^６Ｍ^−１ｓ^−１であり、未修飾のカタラーゼ単体のカタラーゼ活性の速度定数（ｋ_{Ｃａｔａｌａｓｅ}）は、１４．６×１０^６Ｍ^−１ｓ^−１であった。なお、これらの値は、３６．５℃で測定したものである。これらの結果をまとめて次の表２に示す。

これらの結果により、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、それぞれの触媒活性が極めてよく維持されていることが明らかとなった。即ち、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、元のカチオン性金属ポルフィリン錯体のＳＯＤ活性を９６．４％維持しており、また元の未修飾のカタラーゼ活性を９７．２％も維持していることが明らかになった。また、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体のそれぞれの反応速度定数は、各々の基質（Ｏ_２・⁻、及びＨ_２Ｏ_２）の自己不均化速度定数を上回っており、速度論的に有意な活性を有することも明らかとなった。さらに、当該複合体におけるＳＯＤ活性とカタラーゼ活性の比、ｋ_ＳＯＤ：ｋ_{Ｃａｔａｌａｓｅ}は、約１：１．５であり、Ｈ_２Ｏ_２の消去速度が優勢となることが示された。このことは、速やかなるＨ_２Ｏ_２の消去を達成できることを意味し、生体内におけるＨ_２Ｏ_２の毒性を有意に減少することができることを意味している。
これらのことは、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、修飾され、かつ複合体化されたにもかかわらず、それぞれの活性サイトを活性なまま維持することができていることを意味していると考えられ、しかも水溶液中における分散性及び安定性に優れた実用的な抗酸化剤であることが示された。本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、優れたＳＯＤ活性とカタラーゼ活性とを同時に有しており、生体内における毒性の高い活性酸素種であるＯ_２・⁻及びＨ_２Ｏ_２を速やかに水に還元することができ、この点においても、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体が、優れた実用的な抗酸化剤であることが示された。

さらに、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の生体を用いたときの活性を検討するために、まずインビトロ（in vitro）での抗酸化作用の評価を行った。
そこで、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を用いて、伊藤らの方法（Ito, Y., et al., Hepatology., (1992); Jul; 16 (1):247-54.）に準じて、細胞培地にヒポキサンチン−キサンチンオキシダーゼ（ＨＸ−ＸＯ）を添加してＯ_２・⁻を発生させ、これによる細胞死の抑制を評価した。
本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の例示として、分子量５，０００のＰＥＧで修飾したＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとからなる複合体（以下、ＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐという。）を使用し、細胞としてヒト肝癌由来細胞ＨｅｐＧ２を用い、アラマーブルーで染色した後の吸光度により細胞生存率を算出した。結果を図５に示す。図５の縦軸は生存率（％）を示し、横軸は試料の濃度（Ｌｏｇ Ｍ）を示す。図５中の黒丸印（●）はＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体を単体で用いた場合を示し、黒三角印（▲）は、ＰＥＧ修飾カタラーゼを単体で用いた場合を示し、黒四角印（■）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを用いた場合をそれぞれ示す。
この結果、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、単体のＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ及びＰＥＧ修飾カタラーゼのいずれの生存率も上回っていた。また、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体及びか単体では濃度依存的に生存率の向上が見られたが、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体の単体では濃度依存的な生存率上昇が見られなく、むしろ生存率が減少する傾向にあった。

Ｏ_２・⁻をＨ_２Ｏ_２に還元する能力だけを有するカチオン性金属ポルフィリン錯体では、その濃度に関係無く生存率が低く、Ｈ_２Ｏ_２をＨ_２Ｏに還元するカタラーゼ系の能力を有する系が濃度依存的に生存率を上昇させていた。このことは、生体内における細胞障害の主要因が、Ｏ_２・⁻ではなく、Ｈ_２Ｏ_２によるものであることが示され、Ｏ_２・⁻の自己不均化により生成したＨ_２Ｏ_２が、細胞毒の要因となっていると考えられる。Ｈ_２Ｏ_２より生成するヒドロキシラジカル（・ＯＨ）が細胞に重篤な影響を与えていると考えられ、特に、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを単独で投与した場合には、Ｏ_２・⁻からＨ_２Ｏ_２への還元が促進されたために生存率が減少したと考えられる。同時に、この結果はＯ_２・⁻の還元により生じたＨ_２Ｏ_２の消去の必要性を明らかにしている。
そして、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体のほうが、ＰＥＧ修飾カタラーゼよりも、生存率を上回っていたということは、カタラーゼ活性単独ではなく、ＳＯＤ活性とカタラーゼ活性を同時に有している本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体が、生体内で生じたＨ_２Ｏ_２だけでなく、同時に速やかなるＯ_２・⁻とＨ_２Ｏ_２の還元消去を達成したためと考えられる。このＯ_２・⁻の積極消去は、Ｈ_２Ｏ_２を大量生成するが、同時にＯ_２・⁻から派生する他の活性酸素種（ＲＯＳ）の生成を抑制すると考えられる。このことから、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、Ｈ_２Ｏ_２の消去活性を有することにより、初めてＯ_２・⁻の積極的な消去が生体内で極めて有効な手段となり得ることを示すものであり、Ｈ_２Ｏ_２の還元消去能を獲得したことにより、細胞を有意に保護したと考えられる。

本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、親水性ポリマーで修飾されており、水溶液中における分散性及び安定性に優れていたが、これを生体内において確認するために、生体内における血中滞留性についてさらに検討した。このために、ラットへ本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を投与し、一定時間毎に血液を回収し、血液中の本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の存在量を金属の原子吸光法により測定することにより評価した。具体的には、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の例示として、分子量５，０００のＰＥＧで修飾したＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとからなる複合体（以下、ＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐという。）を用いて、２μＭのＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを、体重１ｋｇ当たり１ｍＬの量をラットに投与し、投与後、１５分、３０分、１時間、３時間、６時間、及び２４時間後に尾静脈より採血を行い、マンガンの濃度を原子吸光法により測定した。同様に、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体を単独で、またＰＥＧ修飾カタラーゼを単独で、それぞれ投与した結果を測定した。結果を次の表３に示す。

また、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体及びＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの血中濃度の変化を視覚化するため、投与後１５分後の吸光度を１００％とした経時的変化をグラフにして図６に示す。図６の縦軸は血中残存率（％）を示し、横軸は投与後１５分後からの経過時間（時間）を示す。図６の黒三角印（▲）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの場合を示し、黒菱形印（◆）はＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体単独の場合を示す。
この結果、低分子のＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体は急激に血中濃度が減少するのに対し、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の減少は、極めて緩慢であることが明らかとなった。これより、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、長時間の血中滞留性が達成されたことが示された。これは、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体のＳＯＤ活性を有するＭｎＴＭＰｙ_４Ｐが生体内でも結合していたことも示している。
ＰＥＧ修飾カタラーゼのようなＰＥＧ修飾タンパク質は、ＰＥＧが構成する親水性の水バリアにより抗原抗体反応、タンパク質分解酵素、腎排泄経路を回避できるため、血中での安定性に富み、長時間の血中滞留性が達成されたことが示された。同様に親水性ポリマーによる修飾が行われている本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体も、長時間にわたり血中に存在したと考えられる。一方、カチオン性金属ポルフィリン錯体は、強い正電荷を持つため、負に帯電している血管内皮細胞と非選択的に強く結合する。さらに、低分子量であるため、腎の糸球体ろ過により尿中へと速やかに排泄されてしまう。このため、血中滞留が短かったと考えられる。
これらのことから、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、血中においてもカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体が強く結合した状態を維持しており、しかも親水性ポリマーによる修飾により、ＰＥＧ修飾カタラーゼと同等又はそれ以上の長時間にわたる血中濃度の維持も可能であることが確認された。

次に、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体による生体内における抗酸化能発現と疾患軽減について検討した。具体的には、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の例示として、分子量５，０００のＰＥＧで修飾したＰＥＧ−カタラーゼとＭｎＴＭＰｙ_４Ｐとからなる複合体（以下、ＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐという。）を用いて、虚血再灌流によるラットの肝臓の虚血再灌流障害（肝ＩＲ／Ｉ）を本発明の抗酸化剤を投与することで、その生体内還元能と疾患軽減を評価した。
イアンらは虚血再灌流障害について、再灌流後の非常に初期に生成されるＯ_２・⁻が虚血再灌流障害の原因であると述べている（Ian N. Hines, Brian J. Day, et al., Am. J. Physiol Gastrointest Liver Physiol, 284: G536-G545, 2003.）。また、再灌流後の６時間を急性期、再灌流から６〜２４時間後を亜急性期と分類しており、急性期には、クッファー細胞の活性化に伴う活性酸素種（ＲＯＳ）の生成が主であり、発生した活性酸素種（ＲＯＳ）がＴＮＦ−α等を誘導し、虚血再灌流障害を仲介すると報告している。そして、亜急性期には、虚血再灌流障害は白血球に依存する報告している。虚血時間に伴うＲＯＳ障害因子の変化が見受けられることからも、虚血再灌流障害の原因を単純なＯ_２・⁻発生系には集約できず、各種のＲＯＳ等のクロストークによる複雑な機構が作用しているものと考えられている。
まず、ラットに２μＭのＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ、２μＭのＰＥＧ修飾カタラーゼ、及び０．５ｍｇ／ｍＬのＭｎＴＭＰｙ_４Ｐのそれぞれを０．５ｍＬ門脈より投与した。投与後、肝臓の７０％部位を虚血状態とし、７５分後に再度それぞれの薬剤を０．５ｍ投与し後、再灌流を行った。再灌流後、６時間後、及び２４時間後に頸静脈より採血し、血中の肝障害マーカー（ＧＯＴ、ＧＰＴ、ＬＤＨ）を測定した。また、再灌流６時間後に、スピンプローブとしてニトロキシドラジカルであるCarbamoyl-PROXYLを用いたＥＳＲの測定を行って、生体内のラジカルの状態を測定した。

生体内（in vivo）の３００ＭＨｚのＥＳＲ測定の結果をグラフにして図７に示す。図７の縦軸はシグナル強度ｋ（ｍｍ／分）を示し、横軸は左側から開腹処置だけをした場合（sham）、虚血再灌流を行ったが薬剤を投与しなかったコントロールの場合（ＩＲ（−））、虚血再灌流を行って薬剤を投与した場合（ＩＲ（＋））をそれぞれ示す。各々の場合のシグナル強度は、平均値±標準偏差（ｎ＝５）で示されており、図７中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。
この結果、虚血再灌流（ＩＲ）を行うことで、生体の還元能が著しく低下してくることが確認された（図７のＩＲ（−）参照）。これは、虚血再灌流に伴って大量に発生したＲＯＳにより、生体由来の抗酸化物質が消費されたことによるものと考えられる。それに対して、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを投与することで、無投与と比較して有意に生体の還元能が上昇したことが示された（図７のＩＲ（＋）参照）。さらに、この結果、通常の状態と同程度までに回復していることも明らかにされた。これは、投与した本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐが生体内でその抗酸化機能を有意に発揮して、虚血再灌流による生体由来の抗酸化物質の消費を抑制することができたためであると考えられる。
また、ＥＳＲでの減衰速度定数（ｋ）と細胞内ＳＯＤ様活性（ＳＳＡ）との関係が比例関係にあることから、この両者の相関をグラフ化した。結果を図８に示す。図８の縦軸は細胞内ＳＯＤ様活性（ＳＳＡ）を示し、横軸はＥＳＲでの減衰速度定数（ｋ）（ｍｍ／分）を示す。この結果、両者の相関が弱いが認められ（Ｒ^２＝０．５２２１）、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体が生体由来の抗酸化物質の消費を抑制したことが示された。

また、再灌流の２４時間後に頸静脈より採血した血中の肝障害マーカー（ＧＯＴ、及びＧＰＴ）を測定した結果を図９にグラフで示す。図９の（Ａ）はＧＯＴの結果を示し、（Ｂ）はＧＰＴの結果を示す。それぞれの縦軸は血中濃度（ＩＵ／Ｌ）を示し、横軸は左側から、薬剤無投与群の場合（ＩＲ（−））、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ投与群の場合（ＩＲ（＋）^１）、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体投与群の場合（ＩＲ（＋）^２）、及びＰＥＧ修飾カタラーゼ投与群の場合（ＩＲ（＋）^３）をそれぞれ示す。各々の場合の血中濃度（ＩＵ／Ｌ）は、平均値±標準偏差（ｎ＝４）で示されており、図９中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。
この結果、虚血再灌流を行うことで、有意にＧＯＴ、及びＧＰＴの血中濃度が高値となった。これに対して、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を投与することで、無投与群（ＩＲ（−））と比較して２４時間後の時点でのＧＯＴ及びＧＰＴの血中濃度は有意な差があった。しかし、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体の単独投与では、ＧＯＴ及びＧＰＴの血中濃度を下げることはできなかったが、ＰＥＧ修飾カタラーゼの単独投与では、ＧＰＴの血中濃度だけは低下させることができた。これは、ＰＥＧ修飾カタラーゼはＧＰＴに関しては作用を示すものと考えられる。一方、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、ＧＯＴ及びＧＰＴに対して、これを有意に減じることができることが確認された。

さらに、再灌流の６時間後ｒ〜２４時間後の変化について解析を行った結果を図１０に示す。図１０の（Ａ）はＧＯＴの結果を示し、（Ｂ）はＧＰＴの結果を示す。それぞれの縦軸は血中濃度（ＩＵ／Ｌ）を示し、横軸は左側から、６時間後の場合、２４時間後の場合をそれぞれ示す。各時間における白抜き（左側）は薬剤無投与群の場合を示し、黒塗り（右側）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ投与群の場合をそれぞれ示す。各々の場合の血中濃度（ＩＵ／Ｌ）は、平均値±標準偏差（ｎ＝４）で示されており、図１０中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。
この結果、再灌流の６時間後ｒ〜２４時間後にかけて、無投与群（白抜き）では、ＧＯＴ及びＧＰＴのいずれもが上昇していた。これに対して、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体投与群では、無投与と比較して２４時間後の時点でのＧＯＴ及びＧＰＴで有意な差があった。さらに、再灌流の６時間後〜２４時間後において、無投与群と比較してＧＯＴ及びＧＰＴの上昇が有意に抑制されていた。これより、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体が、肝障害を抑制していることが明らかとなった。特に、再灌流の２４時間後において有効であったことは、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の血中滞留の長時間化により長期に渡った抗酸化効果の維持によるものと考えられる。これは、前記してきた本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体の血中滞留延長と強く合致している。

このように、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、修飾され、かつ複合体化されたにもかかわらず、それぞれの活性サイトを活性なまま維持することができており、生体外だけでなく生体内においても優れたＳＯＤ活性とカタラーゼ活性とを同時に有しており、生体内における毒性の高い活性酸素種であるＯ_２・⁻及びＨ_２Ｏ_２を速やかに水に還元することができ、優れた実用的な抗酸化剤との作用有している。さらに、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、親水性ポリマーで修飾されており、水溶液中における優れた分散性及び安定性を有し、血中においてもカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体が強く結合した状態を維持ままであり、ＰＥＧ修飾カタラーゼと同等又はそれ以上の長時間にわたる血中濃度を維持することもでき、長時間にわたる抗酸化作用を示すことができる。
このために、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を、抗酸化組成物の有効成分として使用することができる。本発明の抗酸化組成物は、有効成分として本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有し、必要に応じて抗酸化作用を阻害することなく、かつ生体に対して有害でない各種の担体とを含有することができる。例えば、水、好ましくはリン酸バッファー、ホウ酸バッファー、塩酸トリスバッファーなどの緩衝水溶液を担体とした本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有する抗酸化組成物とすることができる。
本発明の抗酸化組成物は、疾患の予防や治療を目的とした医薬組成物として使用されるだけでなく、ストレスなどの解消のための健康志向型の保健組成物として、また化粧品組成物として使用することもできる。

また、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、抗酸化作用を有し、活性酸素種（ＲＯＳ）の関与する各種疾患、例えば、脳虚血、心筋虚血、アルツハイマー症、パーキンソン症、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、口腔内炎症、糖尿病、胃潰瘍、肝疾患、大腸炎、皮膚疾患、リウマチ、動脈硬化症などの予防や治療のために使用されるだけでなく、活性酸素種（ＲＯＳ）の関与による制ガン剤や老化防止剤などとしても使用される。
本発明の医薬組成物としては、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体、及び製薬上許容される担体とからなる医薬組成物である。
ここで製薬上許容される担体としては、賦形剤、希釈剤、増量剤、崩壊剤、安定剤、保存剤、緩衝剤、乳化剤、芳香剤、着色剤、甘味剤、粘稠剤、矯味剤、溶解補助剤あるいはその他の医薬品用の添加剤等が挙げられる。そのような担体の一つ以上を用いることにより、錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、注射剤、液剤、カプセル剤、トロー剤、エリキシル剤、懸濁剤、乳剤あるいはシロップ剤等の形態の医薬組成物を調製することができる。これらの医薬組成物は、経口あるいは非経口的に投与することができるが、非経口投与が好ましい。好ましい非経口投与としては、静脈内投与、筋肉内投与、経粘膜投与などが挙げられる。非経口投与のためのその他の形態としては、一つまたはそれ以上の活性物質を含み、常法により処方される外用液剤、腸溶内投与のための坐剤およびペッサリーなどが含まれる。
投与量は、患者の年齢、性別、体重及び症状、治療効果、投与方法、処理時間、あるいは当該医薬組成物に含有される活性成分の種類などにより異なるが、通常成人一人当たり、一回につき１０μｇ〜１０００ｍｇ、又は１０μｇ〜５００ｍｇの範囲で投与することが好ましい。しかしながら、投与量は種々の条件により変動するため、上記投与量より少ない量で十分な場合もあり、また上記の範囲を越える投与量が必要な場合もある。
例えば、注射剤は、処置を必要とするヒト患者に対し、１回の投与において１ｋｇ体重あたり、１μg〜１０ｍｇ、好ましくは１０μｇ〜１０ｍｇの割合で、１日あたり１回〜数回投与することができる。投与の形態としては、静脈内注射、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射あるいは腹腔内注射のような医療上適当な投与形態が例示できる。好ましくは静脈内注射である。また、注射剤は、場合により、非水性の希釈剤（例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブ油のような植物油、エタノールのようなアルコール類など）、懸濁剤あるいは乳濁剤として調製することもできる。そのような注射剤の無菌化は、バクテリア保留フィルターを通す濾過滅菌、殺菌剤の配合または照射により行うことができる。注射剤は、用時調製の形態として製造することができる。即ち、凍結乾燥法などによって無菌の固体組成物とし、使用前に無菌の注射用蒸留水または他の溶媒に溶解して使用することができる。

本発明は、生体外だけでなく生体内においても優れたＳＯＤ活性とカタラーゼ活性とを同時に有しており、生体内における毒性の高い活性酸素種であるＯ_２・⁻及びＨ_２Ｏ_２を速やかに水に還元することができ、優れた実用的な抗酸化剤との作用を有し、しかも、親水性ポリマーで修飾されており、水溶液中における優れた分散性及び安定性を有し、血中においてもカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体が強く結合した状態を維持ままであり、ＰＥＧ修飾カタラーゼと同等又はそれ以上の長時間にわたる血中濃度を維持することもでき、長時間にわたる抗酸化作用を示すことができるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を提供するものである。
本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、修飾され、かつ複合体化されたにもかかわらず、それぞれの活性サイトを活性なまま維持することができていることができるという極めてユニークな性質を有するものである。
さらに、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、親水性ポリマーが結合した、親水性ポリマーで修飾されたカタラーゼと、カチオン性金属ポルフィリン錯体とを溶媒中で混合して、攪拌するだけで容易に製造することができるにもかかわらず、血中においてもカタラーゼとカチオン性金属ポルフィリン錯体が強く結合した状態を維持しており、しかも親水性ポリマーによる修飾により、水溶液中での分散性や安定性にも優れている。

以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。

カチオン性金属ポルフィリン錯体の製造
特許文献７（特開２０００−２４７９７８号公報）に記載の方法に準じて以下のとおり製造した。

（１）ポリフリン環の合成
三つロフラスコにあらかじめＮａ_２Ｓ０_４で脱水しておいたプロピオン酸３００ｍｌを入れ、窒素下、１１０℃でベンズアルデヒド７．５ｍｌ（０．０７０７もｌ）、ピリジン−４−アルデヒド１２．５ｍｌ（０．１１６５ｍｏｌ）を入れ、撹拌、遮光した。
次いで、ピロール１２．５ｍｌ（０．１８６３ｍｏｌ）をゆっくり滴下した。２時間反応させた後、溶媒を留去した。アンモニア水で中和し、また溶媒を留去した。１００℃で減圧乾燥を行った。メタノールで洗浄濾過し、残査を減圧乾燥した。フラッシュカラム（固定相：シリカゲル、展開溶媒：塩化メチレン１００％→メタノール５％／塩化メチレン９５％）でポルフィリン（ＴＰＰ、ＭＰｙＴＰＰ、ＤＰｙＤＰＰ、ＴＰｙＭＰＰ、ＴＰｙＰ）を分離精製した。収率は約２％だった。

（２）ポルフィリンのメチル化（メソ位のピリジル基のＮ原子の四級化）
三つ口フラスコにエタノール１０％（３ｍｌ）／クロロホルム９０％（２７ｍｌ）の溶媒を入れ、各ポルフィリン（ＭＰｙＴＰＰの場合０．０７７ｇ（１．３×１０^−４Ｍｏｌ）、ＤＰｙＤＰＰの場合０．２３５ｇ（３．８×１０^−４ｍｏｌ）、ＴＰｙＭＰＰの場合０．２５１ｇ（３．９×１０^−４ｍｏｌ））を加えた。
メチル化するＮ原子の数の約４倍モル量のｐ−トルエンスルホン酸メチル（ＭＰｙＴＰＰに対しては０．１２０ｍｌ（６．４×１０^−４ｍｏｌ）、ＤＰｙＤＰＰに対しては０．５７ｍｌ（３．１×１０^−３ｍｏｌ）、ＴＰｙＭＰＰに対しては０．８８ｍｌ（４．７×１０^−３ｍｏｌ））を加え、３５℃、窒素下で遮光して終夜反応させた。溶媒を留去後、減圧乾燥を行いＭＭＰｙＴＰＰ（ＭＰｙＴＰＰをメチル化したもの）、ＤＰｙＤＰＰ（ＤＰｙＰＰＰ をメチル化したもの）、ＴＭＰｙＭＰＰ（ＴＰｙＭＰＰをメチル化したもの）を得た。
ＴＭＰｙＭＰＰはこの後徴量のメタノールに溶かしてジエチルエーテル中で再沈させ、濾過後残渣を回収した。ＤＭＰｙＰＰＰの方は非常に難溶なので、この過程は行わなかった。十分に減圧乾燥を行った。またＭＭＰｙＴＰＰは水に不溶であったので、ここでは使用することができなかった。各メチル化の確認はＮＭＲで行った。収率は約４５％だった。

^１Ｈ−ＮＭＲ［２７０ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ_６］： δ
ＤＭＰｙＤＰＰ ９．４８（８Ｈ、２，６−ピリジル）
９．２０（８Ｈ、ピロール−β）
９．００（８Ｈ、３，５−ピリジル）
４．７３（１２Ｈ、Ｎ−メチル）
−３．１０（２Ｈ、内部ピロール）
ＴＭＰｙＭＰＰ ９．７１−７．３０（４６Ｈ）
４．９６（９Ｈ、Ｎ−メチル）
−２．７４（２Ｈ、内部ピロール）
ＴＭＰｙＰ ９．４４−７．０７（４０Ｈ）
４．７１（６Ｈ、Ｎ−メチル）
−２．９０（２Ｈ、内部ピロール）

（３）ポルフィリンへの金属（Ｆｅ）導入
三つロフラスコにコハク酸緩衝液（ｐＨ４．Ｏ５）を１５０ｍｌ入れ、８０℃、窒素下で、各ポルフィリン（ＤＭＰｙＤＰＰの場合は０．２５７ｇ（２．７×１０^−４ｍｏｌ）、ＴＭＰｙＭＰＰの場合は０．２０７ｇ（１．８×１０^−４ｍｏｌ））を加え、塩化鉄（ＦｅＣｌ_３）４水和物をポルフィリンの約１０倍モル量（ＤＭＰｙＤＰＰに対して０．４２５ｇ（２．１×１０^−３ｍｏｌ）、ＴＭＰｙＭＰＰに対して０．３８２ｇ（１．９×１０^−３ｍｏｌ））入れ、１時間ごとにＵＶ−Ｖｉｓスペクトルを測定し、ピークのシフト、吸光度から金属導入が確認できるまで反応させた。溶媒を留去後、カラム（固定相：イオン交換樹脂ＨＰ２０、展開溶媒：水→水１０％／メタノール９０％）で遊離した鉄を分離し、溶媒を留去後減圧乾燥を行いＦｅＤＭＰｙＤＰＰ、ＦｅＴＭＰｙＭＰＰを得た。収率は約７０％だった。

ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの製造
５００ｍｌの三口フラスコにプロピオン酸２５０ｍＬを取り、ジムロート冷却器を付け窒素雰囲気下で１００℃に加熱、撹拌した。温度が一定になった後、４−ピリジンカルボアルデヒドを加えた。そこへあらかじめ蒸留しておいたピロールを少量づつ滴下して加えた。滴下終了後、バス温度１１０℃で、１時間還流させ、環化縮合反応を行った。
反応終了後、室温まで放冷後、溶媒を減圧で留去した。残渣にアンモニア水を少しずつ加えて中和した。中和後、浴槽式超音波処理によりフラスコ内のタール状のものを剥がし回収し、吸引ろ過した。ＴＨＦにて不純物を溶解させ、吸引ろ過し、残渣を回収し、紫色粉末状のポルフィリンを得た。
３００ｍｌの三口フラスコに得られたポルフィリン０．２ｇを入れ、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）８０ｍｌに溶解させ、１００℃に加熱撹拌した。ｐ−トルエンスルホン酸メチル１０ｍｌを加え、１２０℃、窒素雰囲気下で８〜２０時間反応させた。
ＵＶ−Ｖｉｓ測定によりメチル化の反応を追跡した。反応終了後、反応混合物を室温まで放冷させ、減圧で濃縮した。次いで、残渣に水／ジクロロメタンを加えて、水相を分離した。分離した水相にヘキサフルオロリン酸アンモニウム（ＮＨ_４ＰＦ_６）の過剰量を少量ずつ加え１時間撹拌した後、約２時間程度冷やし静置して、ポルフィリン錯体を水に難溶にして沈殿させた。沈殿物をろ過して回収し、乾燥した。
得られた沈殿物を少量のアセトンに溶解して、テトラエチルアンモニウムクロリド（ＴＥＡＣ）のアセトン飽和溶液を少量ずつ加え、１時間撹拌後、約２時間程度冷やし静置し、ポルフィリンを沈殿させた。沈殿物をろ過して、乾燥した。得られた沈殿物をメタノールで処理して、紫色粉末状のメチル化ポルフィリンを得た。
得られたメチル化したポルフィリン０．２ｇをメタノールに溶解し、窒素雰囲気下８０℃に加熱した。これに、酢酸マンガン（ＩＩ）４水和物を０．２４ｇ加え（ポルフィリンに対し２０〜４０倍量）反応させた。ＵＶスペクトルで経時変化を追跡し、ソーレー帯のシフト、吸光度の変化が観られなくなった段階で反応を停止した。反応終了後、反応混合物を室温まで放冷した後、溶媒を減圧で留去し、次いで反応溶液と同量の水に溶解させ、ヘキサフルオロリン酸アンモニウム（ＮＨ_４ＰＦ_６）の過剰量を少量ずつ加え１時間撹拌した後、約２時間程度冷やし静置した。沈殿をろ過して、乾燥した。
得られた沈殿物を少量のアセトンに溶解し、これにテトラエチルアンモニウムクロリド（ＴＥＡＣ）のアセトン飽和溶液を少量ずつ加え、ポルフィリン錯体を沈殿させた。沈殿をろ過し、乾燥した。得られた沈殿物をメタノールで処理して紫色粉末状の目的のマンガンポルフィリン錯体を得た。

ＰＥＧ修飾−カタラーゼの製造
カタラーゼ溶液（４３，０００単位）を５０ｍＭをｐＨ９．１ホウ酸緩衝溶液中に希釈溶解した。翌日、上清を回収し０．２２μフィルターでろ過した。次いで、ＵＶ／ｖｉｓ分光光度計を用いて（ε＝３．２４×１０^５ 波長４０５ｎｍ）、１０^−５Ｍのカタラーゼホウ酸緩衝溶液を調製した。調製後、分子量５，０００のＰＥＧを用いた分子量約５０００のＰＥＧの活性エステルｍＰＥＧ−ＳＰＡ（Methoxypolyethylene glycolyl N-succinimidyl propionate）（日本油脂製）（２ｍｇ／ｍｌ）を添加し、４℃で遮光下で終夜攪拌して反応させた。
反応終了後、反応混合物をゲルろ過クロマトグラフィー（担体：親水性ビニルポリマー（ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ ＨＷ−５５Ｆ（ＴＯＳＯＨ社製））、溶出液：５０ｍＭリン酸緩衝溶液（ｐＨ７．４））で精製した。溶出された画分を、ＵＶ／ｖｉｓ分光光度計を使用して、カタラーゼのアミノ酸残基芳香族環の吸収波長（２８０ｎｍ）とヘム鉄極大吸収波長（４０５ｎｍ）を指標にして分離した。目的のＰＥＧ修飾−カタラーゼを含有する画分であることを、ゲルろ過クロマトグラフィーにより、分子量の増大、及び、未反応ｍＰＥＧ−ＳＰＡの除去を確認した。
検出：示差屈折率、移動相：０．１Ｍ ＮａＮＯ_３、カラム：Shodex OHpak SB-804 HQ
得られた目的の画分を４℃で遮光下で保存した。

ＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの製造
実施例２で得られたＰＥＧ修飾−カタラーゼのＰＢＳ溶液（１０^−５〜１０^−６Ｍ）５ｍＬを調製した。次いで、この溶液に、実施例２で得られたマンガンポルフィリン錯体（ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ）の水溶液（０．５ｍｇ／ｍＬ）１ｍＬを添加した。添加後、速やかに攪拌し、４℃で遮光下で２４時間攪拌した。
反応終了後、反応混合物をゲルろ過クロマトグラフィー（担体：親水性ビニルポリマー（ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ ＨＷ−５５Ｆ（ＴＯＳＯＨ社製））、溶出液：リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．４））で精製した。溶出された画分を、ＵＶ／ｖｉｓ分光光度計を使用して、カタラーゼのアミノ酸残基芳香族環の吸収波長（２８０ｎｍ）とヘム鉄極大吸収波長（４０５ｎｍ）、及びマンガンポルフィリン錯体（ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ）の極大吸収波長（４６２ｎｍ）を指標にして分離した。上記三つの極大吸収を有するフラクションを回収した。同時に、ＵＶ／ｖｉｓスペクトルよりＰＥＧ修飾−カタラーゼとマンガンポルフィリン錯体（ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ）とが結合した複合体の形成を確認した。また、ヘム鉄極大吸収波長（４０５ｎｍ）とマンガンポルフィリン錯体（ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ）の極大吸収波長（４６２ｎｍ）の吸光度比より、生成物の複合体組成比を決定した。
なお、各画分の吸光度を図２に示す。
精製したカタラーゼ−マンガンポルフィリン錯体（ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ）複合体を含有する画分を、４℃で遮光下で保存した。

Ｏ_２・⁻の消去活性（ＳＯＤ活性）の評価
実施例４で製造したＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの５０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝溶液（ｐＨ８．１）を調製した。具体的には、ＵＶ／ｖｉｓ分光光度計を用いて４６２ｎｍの吸収波長よりＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ換算濃度で、０、０．１、０．２５、０．５、１．０、１．５、２．０、２．５、及び３．０μＭのサンプルをそれぞれ調製した。
Ｏ_２・⁻の発生源として、ＫＯ_２のＤＭＳＯ飽和溶液を用いた。Ａｐｐｌｉｅｄ Ｐｈｏｔｏｐｈｙｓｉｃｓ ＳＸ−１８ＭＶストップトフロー装置を用いてサンプルを溶解したＨＥＰＥＳ緩衝溶液（ｐＨ＝８．１）とＫＯ_２のＤＭＳＯ飽和溶液の二液の混合を行い、３６℃におけるＯ_２・⁻の吸光度減衰を２４５ｎｍで追跡した。吸光度減衰を基に偽一次反応として解析を行い、反応速度定数を得た。
この結果をグラフ化して図３に示す。

Ｈ_２Ｏ_２の消去活性（カタラーゼ活性）の評価
実施例４で製造したＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの５０ｍＭのリン酸緩衝溶液（ｐＨ７．４）を調製した。具体的には、ＵＶ／ｖｉｓ分光光度計を用いてカタラーゼの４０５ｎｍ吸収波長より、０、２．５、５．０、７．５、１０、２５、５０、及び１００ｎＭのサンプルをそれぞれ調製した。次いで、約３０ｍＭのＨ_２Ｏ_２を調製した。具体的には、３０％Ｈ_２Ｏ_２の０．４ｍＬをリン酸緩衝溶液で１００ｍＬに希釈し、約３０ｍＭとした。各溶液調製後、サンプル溶液２ｍＬをセル中で３７℃で１０分間インキュベートした。インキュベート後、Ｈ_２Ｏ_２溶液を１ｍＬ添加し、速やかにＨ_２Ｏ_２の吸収波長２４０ｎｍの吸光度減少を追跡した。
この結果をグラフ化して図４に示す。

細胞系での抗酸化作用の評価
ヒト肝癌由来細胞ＨｅｐＧ２を、抗生物質、ＮａＨＮＯ_３、１０％ＦＢＳ含有Ｅａｇｌｅ ＭＥＭ中で培養（３７℃、５％ＣＯ_２）した。
培養後、ＨｅｐＧ２の細胞懸濁液を調製し、９６ウエルのプレートに１×１０^４細胞／ウエルで播種し、終夜インキュベートした。インキュベート後、あらかじめ調製した１×１０^−４〜５×１０^−２μＭの実施例４で製造したＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４ＰのＰＢＳ溶液を添加した。次いで、Ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ（０．５ｍＭ）とＸａｎｔｈｉｎｅ ｏｘｉｄａｓｅ（１００ｍＵ／ｍＬ）のＰＢＳ溶液を添加し、Ｏ_２・⁻に暴露し細胞障害を構築した。ここで、４時間インキュベートした。インキュベート後、培地を除去し、ＰＢＳで洗浄を一回ずつ行い、再度培地を注入した。次いで、アラマーブルーを添加し６時間インキュベートした。インキュベート後、吸光度により細胞生存率を算出した。
同様な実験を、ＰＥＧ修飾カタラーゼ、及びＭｎＴＭＰｙ_４Ｐについてそれぞれ行った。 これらの結果をグラフ化して図５に示す。

血中滞留時間の評価
２μＭの実施例４で製造したＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ、２μＭのＰＥＧ修飾カタラーゼ、及び０．５ｍｇ／ｍＬのＭｎＴＭＰｙ_４ＰのＰＢＳ溶液を調製した。
ラットは、約６月齢の体重５００−６００ｇのものを使用した。ラットへの作業時には、ジエチルエーテルの吸引により適時麻酔をかけた。また、特に断りのない限り、採血には２７Ｇの針を用い、ヘパリンで抗凝固処理した。まず始めに、対照として、尾静脈より０．５〜１ｍＬ程度の採血を行った。ついで、各薬物を１ｍＬ／ｋｇ体重（ｋｇｗ）投与した。そして、投与から１５分、３０分、１時間、３時間、６時間、２４時間後に尾静脈より０．５〜１ｍＬ程度の採血を行った。血液サンプルは、エッペンドルフチューブ内に取り、４℃で、３０００ｒｐｍ、１０分間で遠心分離を行った。得られた血清は、セラムチューブ内に分取し、凍結保存した。
次いで、凍結した血清を３７℃恒温槽にて溶解した。溶解後、血清を２００μＬサンプル管に分取し、さらに０．１ＭのＨＮＯ_３を等量添加して、原子吸光測定装置にセットし、測定を行った。標準溶液として、０．１ＭのＨＮＯ_３を用いて、１００μｇ／ＬのＭｎ溶液を用いた。
結果を、図６に示す。

ラットの肝虚血再灌流障害モデルによる抗酸化作用の評価
２μＭの実施例４で製造したＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ、２μＭのＰＥＧ修飾カタラーゼ、０．５ｍｇ／ｍＬのＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを調製した。溶媒はすべてＰＢＳを用いた。
ラットは、約６週齢の体重約２００ｇのものを使用した。術開始前に、ネンブタールを腹腔内注射し、麻酔をかけた（１ｍＬ／ｋｇｗ）。ラットが昏睡状態になったところで開腹し、調製した薬剤０．５ｍＬを門脈より投与した。投与後、門脈、肝動脈、胆管をクランプし、肝臓の７０％部位を虚血状態とした。７５分間虚血を行った後、再開腹し、門脈より再度薬剤を０．５ｍＬ投与した。投与後、クランプを外して再灌流を行った。再灌流から６時間後、２４時間後に頸静脈より採血を行った。また、再灌流から６時間後にＥＳＲの測定を行った。
ＥＳＲの測定は、３００ＭＨｚのＥＳＲ装置を用いて、ネンブタールで麻酔をしたラットの尾静脈に、Ｃａｒｂａｍｏｙｌ−ＰＲＯＸＹＬ（２７０ｍＭ、ｐＨ ７．４、１μＬ／ｇｗ）を投与した。投与後、生体計測用セルにラットを固定し、肝臓がレゾネーターの中心に位置するようにＥＳＲ装置に挿入した。投与１分後から測定を開始し、２０秒おきに１０分間断続的にＥＳＲスペクトルを測定した。
評価は、Ｃａｒｂａｍｏｙｌ−ＰＲＯＸＹＬの三本スペクトルの第一シグナル強度を計測し、これの減衰速度を観測することで行った。
ＥＳＲの測定結果を図７及び８に示す。
また、再灌流から６時間後は頸静脈から、再灌流から２４時間後は大動脈から血液をヘパリン採血し、遠心（４℃， ３０００ｒｐｍ， １０ｍｉｎ）により血清分離後、血液中肝障害マーカー（ＧＯＴ、及びＧＰＴ）を測定した。
結果を図９及び１０に示す。

本発明は、細胞毒性を有する活性酸素種（ＲＯＳ）の消去作用を有する新規なカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を提供するものであり、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体は、抗酸化作用を有し、医薬品や保健薬などの抗酸化組成物の有効成分として、活性酸素種（ＲＯＳ）が関与する各種の疾患の治療や予防だけでなく、老化防止などにも有用であり、産業上の利用性可能性を有している。

図１は、本発明のカチオン性金属ポルフィリン錯体として前記したＮ−メチル−４−ピリジル基を有するＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを例とし、また親水性ポリマーとしてポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を例として、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を製造する反応式を模式的に示したものである。 図２は、本発明のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体のゲルろ過クロマトグラフィー（ＧＦＣ）による各画分のＵＶ／ｖｉｓスペクトルの結果を示すチャートである。図２の縦軸は吸光度を示し、横軸は波長（ｎｍ）を示す。図２の上段の実線は高分子量の画分を示し、中段の破線はより低分子量の画分を示し、下段の点線は低分子量の画分を示す。 図３は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４ＰのＳＯＤ活性をストップトフロー法で測定したときの結果示すグラフである。図３の縦軸は速度定数（／秒）を示し、横軸は濃度（μＭ）を示す。 図４は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐのカタラーゼ活性をＨ_２Ｏ_２のＵＶ吸光法で測定したときの結果示すグラフである。図４の縦軸は速度定数（／秒）を示し、横軸は濃度（ｎＭ）を示す。 図５は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの抗酸化活性をヒト肝癌由来細胞ＨｅｐＧ２を用いた生体外試験で試験した結果を示すグラフである。図５の縦軸は生存率（％）を示し、横軸は試料の濃度（Ｌｏｇ Ｍ）を示す。図５中の黒丸印（●）はＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体を単体で用いた場合を示し、黒三角印（▲）は、ＰＥＧ修飾カタラーゼを単体で用いた場合を示し、黒四角印（■）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを用いた場合をそれぞれ示す。 図６は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ及びＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体の単体をそれぞれラットに投与したときの、それぞれの血中濃度の変化を、投与後１５分後の吸光度を１００％とした経時的変化をグラフにして示したものである。図６の縦軸は血中残存率（％）を示し、横軸は投与後１５分後からの経過時間（時間）を示す。図６の黒三角印（▲）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの場合を示し、黒菱形印（◆）はＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体単独の場合を示す。 図７は、ラットの虚血再灌流障害における本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐの有効性を、生体内（in vivo）の３００ＭＨｚのＥＳＲ測定により行った結果をグラフで示したものである。図７の縦軸はシグナル強度ｋ（ｍｍ／分）を示し、横軸は左側から開腹処置だけをした場合（sham）、虚血再灌流を行ったが薬剤を投与しなかったコントロールの場合（ＩＲ（−））、虚血再灌流を行って薬剤を投与した場合（ＩＲ（＋））をそれぞれ示す。各々の場合のシグナル強度は、平均値±標準偏差（ｎ＝５）で示されており、図６中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。 図８は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを用いて、ラットの虚血再灌流障害を３００ＭＨｚのＥＳＲ測定により行ったときの、ＥＳＲでの減衰速度定数（ｋ）と細胞内ＳＯＤ様活性（ＳＳＡ）との相関をグラフ化して示したものである。図８の縦軸は細胞内ＳＯＤ様活性（ＳＳＡ）を示し、横軸はＥＳＲでの減衰速度定数（ｋ）（ｍｍ／分）を示す。両者の相関は、Ｒ^２＝０．５２２１であった。 図９は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを用いて、ラットの虚血再灌流障害に対する作用を評価するために、再灌流から２４時間後に採血した血中のＧＯＴ及びＧＰＴの濃度を測定した結果を示すグラフである。図９の（Ａ）はＧＯＴの結果を示し、（Ｂ）はＧＰＴの結果を示す。それぞれの縦軸は血中濃度（ＩＵ／Ｌ）を示し、横軸は左側から、薬剤無投与群の場合（ＩＲ（−））、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ投与群の場合（ＩＲ（＋）^１）、ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ錯体投与群の場合（ＩＲ（＋）^２）、及びＰＥＧ修飾カタラーゼ投与群の場合（ＩＲ（＋）^３）をそれぞれ示す。各々の場合の血中濃度（ＩＵ／Ｌ）は、平均値±標準偏差（ｎ＝４）で示されており、図９中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。 図１０は、本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐを用いて、ラットの虚血再灌流障害に対する作用を評価するために、再灌流から６時間後及び２４時間後に採血した血中のＧＯＴ及びＧＰＴの濃度を測定した結果を示すグラフである。図１０の（Ａ）はＧＯＴの結果を示し、（Ｂ）はＧＰＴの結果を示す。それぞれの縦軸は血中濃度（ＩＵ／Ｌ）を示し、横軸は左側から、６時間後の場合、２４時間後の場合をそれぞれ示す。各時間における白抜き（左側）は薬剤無投与群の場合を示し、黒塗り（右側）は本発明のＰＥＧ−Ｃａｔ−ＭｎＴＭＰｙ_４Ｐ投与群の場合をそれぞれ示す。各々の場合の血中濃度（ＩＵ／Ｌ）は、平均値±標準偏差（ｎ＝４）で示されており、図１０中の＊印は、ｐ＜０．０５で有意差があったことを示している。

Claims (10)

1. 親水性ポリマーが結合したカタラーゼと、次の一般式（１）
   

   

   （式中、Ｍは錯体を形成するための金属原子を示し、Ａｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４はそれぞれ独立して置換基を有してもよい炭素環式又は複素環式芳香族基を示し、Ａｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の少なくとも１個はカチオン性の基を有する芳香族基である。）
   で表されるカチオン性金属ポルフィリン錯体となるカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
2. カチオン性金属ポルフィリン錯体の一般式（１）におけるＭが、鉄原子、銅原子又はマンガン原子であるカチオン性金属ポルフィリン錯体である請求項１に記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
3. カチオン性金属ポルフィリン錯体の一般式（１）におけるＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の少なくともひとつが、Ｎ−低級アルキル−４−ピリジル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体である請求項１又は２に記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
4. Ｎ−低級アルキル−４−ピリジル基が、Ｎ−メチル−４−ピリジル基である請求項３に記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
5. カチオン性金属ポルフィリン錯体の一般式（１）におけるＡｒ_１、Ａｒ_２、Ａｒ_３、及び、Ａｒ_４の少なくともひとつが、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基であるカチオン性金属ポルフィリン錯体である請求項１又は２に記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
6. ４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ低級アルキルアミノフェニル基が、４−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアミノフェニル基である請求項５に記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
7. 親水性ポリマーが、ポリエチレングリコールである請求項１〜６のいずれかに記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
8. カタラーゼが、ヒト由来のカタラーゼである請求項１〜７のいずれかに記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体。
9. 請求項１〜８のいずれかに記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有してなる抗酸化組成物。
10. 請求項１〜８のいずれかに記載のカタラーゼ金属ポルフィリン錯体複合体を含有してなる医薬組成物。
    
    

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