JP2007054072A - 分泌型結腸上皮間質性−1ポリペプチド、これをコードする核酸、およびその使用 - Google Patents
分泌型結腸上皮間質性−1ポリペプチド、これをコードする核酸、およびその使用 Download PDFInfo
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Abstract
【解決手段】新規な分泌型結腸上皮間質性−1(Secs−1)ポリペプチドをコードし、単離された核酸分子であって、DNAインサートを含む特定のヌクレオチド配列及びその相補体、またそれに中程度または高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。Secs−1ポリペプチドの発現は、間質細胞の造血幹細胞維持能力と相関し、関連疾患の診断と治療への利用可能性がある。
【選択図】なし
Description
本発明は、新規な分泌型結腸上皮間質性−1(Secreted Epith
elial Colon Stromal−1(Secs−1))ポリペプチド
およびこれをコードする核酸分子に関する。本発明はまた、Secs−1ポリペ
プチドを産生するための、選択的結合因子、ベクター、宿主細胞および方法に関
する。本発明はさらに、Secs−1ポリペプチドと関連する疾患、障害、およ
び状態の、診断、処置、改善、および/または予防のための薬学的組成物および
方法に関する。
核酸分子の同定、クローニング、発現、および操作における技術進歩ならびに
ヒトゲノムの解読は、新規治療薬の発見を大いに加速した。現在、高速核酸配列
決定技術は、前例のない速度で配列情報を作製し得、そしてコンピュータ分析と
結合されて、ゲノムの一部および全体への重複配列の組み立てならびにポリペプ
チドコード領域の同定を可能にする。既知アミノ酸配列のデータベース編集物に
対する推定アミノ酸配列の比較は、以前に同定された配列および/または構造の
目印に対する相同性の程度を決定することを可能にする。核酸分子のポリペプチ
ドコード領域のクローニングおよび発現は、構造分析および機能分析のためのポ
リペプチド産物を提供する。核酸分子およびコードされるポリペプチドの操作は
、治療剤として使用される生成物に対して有利な特性を与え得る。
ゲノムに基づく新規治療剤の開発に対する可能性は、未だ大部分理解されていな
い。潜在的に有利なポリペプチド治療剤をコードする多くの遺伝子またはこれら
がコードするポリペプチド(これらは、治療分子に対して「標的」としてはたら
き得る)は、未だ同定されていない。
これらをコードする核酸分子を同定することが、本発明の目的である。
本発明は、新規Secs−1の核酸分子およびコードされるポリペプチドに関
する。
(a)配列番号1または配列番号4のいずれかに示されるヌクレオチド配列;
(b)ATCC受託番号PTA−1753またはPTA−1755中のDNA
インサートのヌクレオチド配列;
(c)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドをコー
ドするヌクレオチド配列;
(d)(a)〜(c)のいずれかの相補体に、中程度または高度にストリンジ
ェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列;および
(e)(a)〜(c)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子を提供
する。
(a)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドに少な
くとも約70%同一であるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のい
ずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(b)配列番号1もしくは配列番号4のいずれかに示されるヌクレオチド配列
、ATCC受託番号PTA−1753もしくはPTA−1755中のDNAイン
サートのヌクレオチド配列、または(a)の、対立遺伝子改変体またはスプライ
ス改変体をコードするヌクレオチド配列;
(c)少なくとも約25アミノ酸残基のポリペプチドフラグメントをコードす
る、配列番号1もしくは配列番号4のいずれかのヌクレオチド配列、ATCC受
託番号PTA−1753もしくはPTA−1755中のDNAインサート、(a
)、または(b)の領域であって、ここで、このポリペプチドフラグメントは、
配列番号2もしくは配列番号5のいずれかに示されるコードされたポリペプチド
の活性を有するか、または抗原性である、ヌクレオチド配列の領域;
(d)少なくとも約16ヌクレオチドのフラグメントを含む、配列番号1もし
くは配列番号4のいずれかのヌクレオチド配列、ATCC受託番号PTA−17
53もしくはPTA−1755中のDNAインサート、または(a)〜(c)の
いずれかの領域;
(e)中程度または高度にストリンジェントな条件下で、(a)〜(d)のい
ずれかの相補体にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列;ならびに
(f)(a)〜(d)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子を提供
する。
(a)少なくとも1つの保存的アミノ酸置換を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のい
ずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(b)少なくとも1つのアミノ酸挿入を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここ
で、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいずれか
に示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(c)少なくとも1つのアミノ酸欠失を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここ
で、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいずれか
に示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(d)C末端短縮および/またはN末端短縮を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のい
ずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(e)アミノ酸置換、アミノ酸挿入、アミノ酸欠失、C末端短縮、およびN末
端短縮からなる群より選択される少なくとも1つの改変を有する配列番号2また
は配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
であって、ここで、このコードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(f)少なくとも約16ヌクレオチドのフラグメントを含む(a)〜(e)の
いずれかのヌクレオチド配列;
(g)中程度または高度にストリンジェントな条件下で、(a)〜(f)のい
ずれかの相補体にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列;ならびに
(h)(a)〜(e)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子を提供
する。
(a)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列;およ
び
(b)ATCC受託番号PTA−1753またはPTA−1755中のDNA
インサートによってコードされるアミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチドを提供
する。
(a)配列番号3または配列番号6のいずれかに示されるアミノ酸配列であっ
て、必要に応じてアミノ末端メチオニンをさらに含む、アミノ酸配列;
(b)配列番号2または配列番号5のいずれかのオルソログに対するアミノ酸
配列;
(c)配列番号2または配列番号5のいずれかのアミノ酸配列に少なくとも約
70%同一であるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペプチドは、配列番
号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、アミ
ノ酸配列;
(d)少なくとも約25アミノ酸残基を含む配列番号2または配列番号5のい
ずれかに示されるアミノ酸配列のフラグメントであって、ここで、このフラグメ
ントは、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性
を有するか、または抗原性である、フラグメント;ならびに
(e)配列番号2もしくは配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列、A
TCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNAインサート
によってコードされるアミノ酸配列、もしくは(a)〜(c)のいずれかの、対
立遺伝子改変体またはスプライス改変体のアミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチドを提供
する。
(a)少なくとも1つの保存的アミノ酸置換を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペプチドは
、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有す
る、アミノ酸配列;
(b)少なくとも1つのアミノ酸挿入を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペプチドは、配列
番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ア
ミノ酸配列;
(c)少なくとも1つのアミノ酸欠失を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペプチドは、配列
番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ア
ミノ酸配列;
(d)C末端短縮および/またはN末端短縮を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペプチドは
、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有す
る、アミノ酸配列;ならびに
(e)アミノ酸置換、アミノ酸挿入、アミノ酸欠失、C末端短縮、およびN末
端短縮からなる群より選択される少なくとも1つの改変を有する配列番号2また
は配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、このポリペ
プチドは、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活
性を有する、アミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチドを提供
する。
クター、本明細書中に示されるような組換え核酸分子を含む組換え宿主細胞、お
よびSecs−1ポリペプチドを産生する方法を提供し、この方法は、この宿主
細胞を培養する工程、必要に応じてそのように産生されたポリペプチドを単離す
る工程を包含する。
ヒト動物もまた、本発明に含まれる。Secs−1核酸分子は、Secs−1ポ
リペプチドの発現およびSecs−1ポリペプチドの増加したレベル(これは、
増加した循環レベルを含み得る)を可能にする様式で、動物中に導入される。あ
るいは、Secs−1核酸分子は、内因性Secs−1ポリペプチドの発現を妨
害する様式で動物に導入される(すなわち、Secs−1ポリペプチド遺伝子ノ
ックアウトを保有するトランスジェニック動物を作製する)。トランスジェニッ
ク非ヒト動物は、好ましくは哺乳動物であり、より好ましくはげっ歯類(例えば
、ラットまたはマウス)である。
えば、抗体およびペプチド)が、さらに提供される。このような抗体およびペプ
チドは、アゴニスト性であってもアンタゴニスト性であってもよい。
以上の薬学的に受容可能な処方剤を含む薬学的組成物もまた、本発明によって含
まれる。薬学的組成物は、治療有効量の本発明のヌクレオチドまたはポリペプチ
ドを提供するために使用される。本発明はまた、このポリペプチド、核酸分子、
および選択的結合因子を使用する方法に関する。
び障害(本明細書中に列挙されるものを含む)を処置、予防、改善、および/ま
たは検出するために使用され得る。
に、試験分子をアッセイする方法を提供する。この方法は、Secs−1ポリペ
プチドを試験分子と接触させて、この試験分子のこのポリペプチドに対する結合
の程度を決定する工程を包含する。この方法はさらに、このような試験分子が、
Secs−1ポリペプチドのアゴニストまたはアンタゴニストであるか否かを決
定する工程を包含する。本発明はさらに、Secs−1ポリペプチドの発現また
はSecs−1ポリペプチドの活性に対する分子の影響を試験する方法を提供す
る。
チドのレベルを調節する(すなわち、増加または減少させる)方法もまた、本発
明によって含まれる。1つの方法は、Secs−1ポリペプチドをコードする核
酸分子を動物に投与する工程を包含する。別の方法において、Secs−1ポリ
ペプチドの発現を調節または調整するエレメントを含む核酸分子が、投与され得
る。これらの方法の例としては、本明細書中にさらに記載されるように、遺伝子
治療、細胞治療、およびアンチセンス治療が挙げられる。
「Secs−1ポリペプチドレセプター」)を同定するために使用され得る。種
々の形態の「発現クローニング」は、タンパク質リガンドに対するレセプターを
クローン化するために広範囲に使用されている。例えば、Simonsenおよ
びLodish、1994、Trends Pharmacol.Sci.15
:437−41ならびにTartagliaら、1995、Cell 83:1
263−71を参照のこと。Secs−1ポリペプチドレセプターの単離は、S
ecs−1ポリペプチドシグナル伝達経路の新規アゴニストおよびアンタゴニス
トの同定または開発に有用である。このようなアゴニストおよびアンタゴニスト
としては、可溶性Secs−1ポリペプチドレセプター、抗Secs−1ポリペ
プチドレセプター−選択的結合因子(例えば、抗体またはその誘導体)、低分子
、およびアンチセンスオリゴヌクレオチドが挙げられ、これらのうちのいずれも
が、1つ以上の疾患または障害(本明細書中に開示されるものを含む)の処置に
使用され得る。
(項目1) 単離された核酸分子であって、以下:
(a)配列番号1または配列番号4のいずれかに示されるヌクレオチド配列;
(b)ATCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNA
インサートのヌクレオチド配列;
(c)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドをコー
ドするヌクレオチド配列;
(d)(a)〜(c)のいずれかの相補体に、中程度または高度にストリンジ
ェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列;および
(e)(a)〜(c)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
(項目2) 単離された核酸分子であって、以下:
(a)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドに少な
くとも約70%同一であるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいず
れかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(b)配列番号1もしくは配列番号4のいずれかに示されるヌクレオチド配列
、ATCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNAインサ
ートのヌクレオチド配列、または(a)の、対立遺伝子改変体またはスプライス
改変体をコードするヌクレオチド配列;
(c)少なくとも約25アミノ酸残基のポリペプチドフラグメントをコードす
る、配列番号1もしくは配列番号4のいずれかのヌクレオチド配列、ATCC受
託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNAインサート、(a)
、または(b)の領域であって、ここで、該ポリペプチドフラグメントは、配列
番号2もしくは配列番号5のいずれかに示されるコードされたポリペプチドの活
性を有するか、または抗原性である、ヌクレオチド配列の領域;
(d)少なくとも約16ヌクレオチドのフラグメントを含む、配列番号1もし
くは配列番号4のいずれかのヌクレオチド配列、ATCC受託番号PTA−17
53およびPTA−1755中のDNAインサート、または(a)〜(c)いず
れかの領域;
(e)中程度または高度にストリンジェントな条件下で、(a)〜(d)のい
ずれかの相補体にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列;ならびに
(f)(a)〜(d)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
(項目3) 単離された核酸分子であって、以下;
(a)少なくとも1つの保存的アミノ酸置換を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいず
れかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(b)少なくとも1つのアミノ酸挿入を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここ
で、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいずれかに
示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(c)少なくとも1つのアミノ酸欠失を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって、ここ
で、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいずれかに
示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(d)C末端短縮および/またはN末端短縮を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列であって
、ここで、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号5のいず
れかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(e)アミノ酸置換、アミノ酸挿入、アミノ酸欠失、C末端短縮、およびN末
端短縮からなる群より選択される少なくとも1つの改変を有する配列番号2また
は配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
であって、ここで、該コードされたポリペプチドは、配列番号2または配列番号
5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、ヌクレオチド配列;
(f)少なくとも約16ヌクレオチドのフラグメントを含む(a)〜(e)の
いずれかのヌクレオチド配列;
(g)中程度または高度にストリンジェントな条件下で、(a)〜(f)のい
ずれかの相補体にハイブリダイズする、ヌクレオチド配列;ならびに
(h)(a)〜(e)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
(項目4) 項目1、項目2または項目3のいずれかに記載の核酸
分子を含む、ベクター。
(項目5) 項目4に記載のベクターを含む、宿主細胞。
(項目6) 真核生物細胞である、項目5に記載の宿主細胞。
(項目7) 原核生物細胞である、項目5に記載の宿主細胞。
(項目8) Secs−1ポリペプチドを産生するプロセスであって、該ポリペ
プチドを発現するために適切な条件下で項目5に記載の宿主細胞を培養する工程、
および必要に応じて、該培養物から該ポリペプチドを単離する工程を
包含する、プロセス。
(項目9) 項目8に記載のプロセスによって産生される、ポリペプチド。
(項目10) 項目8に記載のプロセスであって、ここで、前記核酸分子が、前
記Secs−1ポリペプチドをコードするDNAに作動可能に連結された、ネイ
ティブなSecs−1ポリペプチドに対するプロモーターDNA以外のプロモー
ターDNAを含む、プロセス。
(項目11) 項目2に記載の単離された核酸分子であって、ここで、同一性パ
ーセントは、GAP、BLASTN、FASTA、BLASTA、BLASTX、
BestFit、およびSmith−Watermanアルゴリズムからなる群
より選択されるコンピュータープログラムを用いて決定される、単離された核酸
分子。
(項目12) 化合物がSecs−1ポリペプチド活性またはSecs−1ポリ
ペプチド産生を阻害するか否かを決定するためのプロセスであって、項目5、項
目6、または項目7のいずれかに記載の細胞を該化合物に曝露する工程、および
該細胞におけるSecs−1ポリペプチド活性またはSecs−1ポリペプチド
産生を測定する工程を包含する、プロセス。
(項目13) 単離されたポリペプチドであって、以下:
(a)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列;およ
び
(b)ATCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNA
インサートによってコードされるアミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチド。
(項目14) 単離されたポリペプチドであって、以下:
(a)配列番号3または配列番号6のいずれかに示されるアミノ酸配列であっ
て、必要に応じてアミノ末端メチオニンをさらに含む、アミノ酸配列;
(b)配列番号2または配列番号5のいずれかのオルソログに対するアミノ酸
配列;
(c)配列番号2または配列番号5のいずれかのアミノ酸配列に少なくとも約
70%同一であるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプチドは、配列番号
2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、アミノ
酸配列;
(d)少なくとも約25アミノ酸残基を含む配列番号2または配列番号5のい
ずれかに示されるアミノ酸配列のフラグメントであって、ここで、該フラグメン
トは、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を
有するか、または抗原性である、フラグメント;ならびに
(e)配列番号2もしくは配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列、A
TCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNAインサート
によってコードされるアミノ酸配列、または(a)〜(c)のいずれかの、対立
遺伝子改変体またはスプライス改変体のアミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチド。
(項目15) 単離されたポリペプチドであって、以下:
(a)少なくとも1つの保存的アミノ酸置換を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプチドは、
配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する
、アミノ酸配列;
(b)少なくとも1つのアミノ酸挿入を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプチドは、配列番
号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、アミ
ノ酸配列;
(c)少なくとも1つのアミノ酸欠失を有する配列番号2または配列番号5の
いずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプチドは、配列番
号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、アミ
ノ酸配列;
(d)C末端短縮および/またはN末端短縮を有する配列番号2または配列番
号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプチドは、
配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する
、アミノ酸配列;ならびに
(e)アミノ酸置換、アミノ酸挿入、アミノ酸欠失、C末端短縮、およびN末
端短縮からなる群より選択される少なくとも1つの改変を有する配列番号2また
は配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配列であって、ここで、該ポリペプ
チドは、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性
を有する、アミノ酸配列、
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチド。
(項目16) 項目1、項目2、または項目3のいずれかに記載の核酸分子によ
ってコードされる単離されたポリペプチドであって、ここで、該ポリペプチドは、
配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの活性を有する、
単離されたポリペプチド。
(項目17) 項目14に記載の単離されたポリペプチドであって、ここで、同
一性パーセントは、GAP、BLASTP、FASTA、BLASTA、BLA
STX、BestFit、およびSmith−Watermanアルゴリズムか
らなる群より選択されるコンピュータープログラムを用いて決定される、単離さ
れたポリペプチド。
(項目18) 項目13、項目14、または項目15のいずれかに記載のポリペ
プチドに特異的に結合する、選択的結合因子またはそのフラグメント。
(項目19) 配列番号2もしくは配列番号5のいずれかに示されるアミノ酸配
列を含むポリペプチド、またはそのフラグメントに特異的に結合する、項目18
に記載の選択的結合因子またはそのフラグメント。
(項目20) 抗体またはそのフラグメントである、項目18に記載の選択的結
合因子。
(項目21) ヒト化抗体である、項目18に記載の選択的結合因子。
(項目22) ヒト抗体またはそのフラグメントである、項目18に記載の選択
的結合因子。
(項目23) ポリクローナル抗体またはそのフラグメントである、項目18に
記載の選択的結合因子。
(項目24) モノクローナル抗体またはそのフラグメントである、項目18に
記載の選択的結合因子。
(項目25) キメラ抗体またはそのフラグメントである、項目18に記載の選
択的結合因子。
(項目26) CDR接続抗体またはそのフラグメントである、項目18に記載
の選択的結合因子。
(項目27) 抗イディオタイプ抗体またはそのフラグメントである、項目18
に記載の選択的結合因子。
(項目28) 可変領域フラグメントである、項目18記載の選択的結合因子。
(項目29) FabフラグメントまたはFab’フラグメントである、項目2
8に記載の可変領域フラグメント。
(項目30) 配列番号2または配列番号5のいずれかのアミノ酸配列を有する
ポリペプチドに特異性を有する少なくとも1つの相補性決定領域を含む、選択的
結合因子またはそのフラグメント。
(項目31) 検出可能標識に結合される、項目18に記載の選択的結合因子。
(項目32) Secs−1ポリペプチドの生物学的活性を拮抗する、項目18
に記載の選択的結合因子。
(項目33) Secs−1ポリペプチド関連の疾患、状態、または障害を、処
置、予防、または改善するための方法であって、項目18に記載の選択的結合因
子の有効量を患者に投与する工程を包含する、方法。
(項目34) 配列番号2または配列番号5のいずれかのアミノ酸配列を含むポ
リペプチドで動物を免疫することによって産生される、選択的結合因子。
(項目35) 項目1、項目2、または項目3のいずれかに記載のポリペプチド
に結合し得る選択的結合因子を産生する、ハイブリドーマ。
(項目36) 項目18に記載の抗Secs−1抗体またはフラグメントを用い
て、Secs−1ポリペプチドの量を検出または定量する方法。
(項目37) 項目13、項目14、または項目15のいずれかに記載のポリペ
プチド、および薬学的に受容可能な処方剤を含む、組成物。
(項目38) 前記薬学的に受容可能な処方剤が、キャリア、アジュバント、溶
解剤、安定剤、または抗酸化剤である、項目37に記載の組成物。
(項目39) 前記ポリペプチドが、配列番号3または配列番号6のいずれかに
示されるアミノ酸配列を含む、項目37に記載の組成物。
(項目40) 項目13、項目14、または項目15のいずれかに記載のポリペ
プチドの誘導体を含む、ポリペプチド。
(項目41) 水溶性ポリマーを用いて共有結合的に改変された、項目40に記
載のポリペプチド。
(項目42) 項目41に記載のポリペプチドであって、ここで、前記水溶性ポ
リマーが、ポリエチレングリコール、モノメトキシポリエチレングリコール、デ
キストラン、セルロース、ポリ−(N−ビニルピロリドン)ポリエチレングリコ
ール、プロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド/エチレン
オキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール、およびポリビニルアルコ
ールからなる群より選択される、ポリペプチド。
(項目43) 項目1、項目2、または項目3のいずれかに記載の核酸分子およ
び薬学的に受容可能な処方剤を含む、組成物。
(項目44) 前記核酸分子が、ウイルスベクター中に含まれる、項目43に記
載の組成物。
(項目45) 項目1、項目2、または項目3のいずれかに記載の核酸分子を含
む、ウイルスベクター。
(項目46) 異種アミノ酸配列に融合された、項目13、項目14、または項
目15のいずれかに記載のポリペプチドを含む、融合ポリペプチド。
(項目47) 前記異種アミノ酸配列が、IgG定常ドメインまたはそのフラグ
メントである、項目46に記載の融合ポリペプチド。
(項目48) 医学的状態を処置、予防、または改善するための方法であって、
項目13、項目14、もしくは項目15のいずれかに記載のポリペプチド、また
は項目1、項目2、もしくは項目3のいずれかに記載の核酸によってコードされ
るポリペプチドを患者に投与する工程を包含する、方法。
(項目49) 処置、予防または改善される前記医学的状態が、造血障害、骨粗
しょう症、大理石骨病、骨形成不全症、ページエット病、歯周病、高カルシウム
血症、急性糸球体腎炎、慢性糸球体腎炎、癌、糖尿病、肥満、または悪液質であ
る、項目48に記載の方法。
(項目50) 被験体において病的状態または病的状態に対する感受性を診断す
る方法であって、以下:
(a)サンプル中の、項目13、項目14、もしくは項目15のいずれかに記
載のポリペプチド、または項目1、項目2、もしくは項目3のいずれかに記載の
核酸分子によってコードされるポリペプチドの、発現の存在または発現量を決定
する工程;および
(b)該ポリペプチドの発現の存在または発現量に基づいて、病的状態または
病的状態に対する感受性を診断する工程、
を包含する、方法。
(項目51) デバイスであって、以下:
(a)移植に適した膜;および
(b)該膜内にカプセル化された細胞であって、該細胞は、項目13、項目1
4、もしくは項目15のいずれかに記載のタンパク質を分泌する、細胞;
を備え、
該膜は、該タンパク質に対して透過性であり、そして該細胞に有害な物質に対
して不透過性である、デバイス。
(項目52) Secs−1ポリペプチドに結合する化合物を同定する方法であ
って、以下:
(a)項目13、項目14、もしくは項目15のいずれかに記載のポリペプチ
ドを、化合物と接触させる工程;および
(b)該化合物に対する該Secs−1ポリペプチドの結合の程度を決定する
工程、
を包含する、方法。
(項目53) 前記化合物に結合した場合に、前記ポリペプチドの活性を決定す
る工程をさらに包含する、項目52に記載の方法。
(項目54) 動物においてポリペプチドのレベルを調節する方法であって、項
目1、項目2、または項目3のいずれかに記載の核酸分子を該動物に投与する工
程を包含する、方法。
(項目55) 項目1、項目2、または項目3のいずれかに記載の核酸分子を含
む、トランスジェニック非ヒト哺乳動物。
(項目56) 化合物がSecs−1ポリペプチド活性またはSecs−1ポリ
ペプチド産生を阻害するか否かを決定するためのプロセスであって、項目55に
記載のトランスジェニック哺乳動物を該化合物に曝露する工程、および該哺乳動
物におけるSecs−1ポリペプチド活性またはSecs−1ポリペプチド産生
を測定する工程を包含する、プロセス。
およびこれらをコードする核酸分子を同定することが、可能である。
本明細書中で使用される節の表題は、体系的な目的のみのためであり、そして
、そこに記載される内容を限定するようには解釈されるべきではない。本願にお
いて列挙される全ての参考文献は、明確に本明細書中に参考として援用される。
用語「Secs−1遺伝子」または「Secs−1核酸分子」あるいは「Se
cs−1ポリヌクレオチド」とは、配列番号1または配列番号4のいずれかに示
されるようなヌクレオチド配列、配列番号2または配列番号5のいずれかに示さ
れるようなポリペプチドをコードするヌクレオチド配列、ATCC受託番号PT
A−1753またはPTA−1755におけるDNA挿入物のヌクレオチド配列
、または本明細書中で定義されるような核酸分子を含むか、あるいはこれらから
なる核酸分子をいう。
体の集団の染色体の所定の遺伝子座を占める遺伝子の、天然に存在する可能ない
くつかの代替的形態のうちの1つをいう。
配列番号5のいずれかに示されるようなSecs−1ポリペプチドのアミノ酸配
列のRNA転写物中のイントロン配列の選択的プロセシングによって生成される
、核酸分子(通常はRNA)をいう。
場合に、天然で一緒に見出されるタンパク質、脂質、炭水化物、または他の物質
のうち少なくとも約50パーセントから分離された本発明の核酸分子、(2)「
単離された核酸分子」が天然で連結しているポリヌクレオチドの全てまたは一部
に連結していない本発明の核酸分子、(3)天然では連結しないポリヌクレオチ
ドに作動可能に連結した本発明の核酸分子、あるいは(4)より大きなポリヌク
レオチド配列の一部として、天然には存在しない本発明の核酸分子をいう。好ま
しくは、本発明の単離された核酸分子は、天然に結合される少なくとも1つの混
入核酸分子を実質的に含まない。好ましくは、本発明の単離された核酸分子は、
その天然の環境において見出される任意の他の夾雑核酸分子または他の夾雑物(
これらは、ポリペプチド産生における使用、または治療的使用、診断的使用、予
防的使用、または研究的使用を妨げる)を実質的に含まない。
。この用語は、DNAおよびRNAの公知の塩基アナログのいずれかから形成さ
れる分子を含み、例えば、以下であるがこれらに限定されない:4−アセチルシ
トシン、8−ヒドロキシ−N6−メチルアデノシン、アジリジニル−シトシン、
プソイドイソシトシン(pseudoisocytosine)、5−(カルボ
キシヒドロキシルメチル)ウラシル、5−フルオロウラシル、5−ブロモウラシ
ル、5−カルボキシメチルアミノメチル−2−チオウラシル、5−カルボキシメ
チルアミノメチルウラシル、ジヒドロウラシル、イノシン、N6−イソ−ペンテ
ニルアデニン、1−メチルアデニン、1−メチルプソイドウラシル、1−メチル
グアニン、1−メチルイノシン、2,2−ジメチル−グアニン、2−メチルアデ
ニン、2−メチルグアニン、3−メチルシトシン、5−メチルシトシン、N6−
メチルアデニン、7−メチルグアニン、5−メチルアミノメチルウラシル、5−
メトキシアミノ−メチル−2−チオウラシル、β−D−マンノシルキューオシン
(β−D−mannosylqueosine)、5'−メトキシカルボニル−
メチルウラシル、5−メトキシウラシル、2−メチルチオ−N6−イソペンテニ
ルアデニン、ウラシル−5−オキシ酢酸メチルエステル、ウラシル−5−オキシ
酢酸、オキシブトキソシン(oxybutoxosine)、プソイドウラシル
、キューオシン、2−チオシトシン、5−メチル−2−チオウラシル、2−チオ
ウラシル、4−チオウラシル、5−メチルウラシル、N−ウラシル−5−オキシ
酢酸メチルエステル、ウラシル−5−オキシ酢酸、プソイドウラシル、キューオ
シン、2−チオシトシン、および2,6−ジアミノプリン。
の分子(例えば、核酸、プラスミド、またはウイルス)をいうために使用される
。 用語「発現ベクター」は、宿主細胞の形質転換使用に適切であり、そして挿
入された異種核酸配列の発現を、指示および/または制御する核酸配列を含むベ
クターをいう。発現としては、転写、翻訳、およびRNAスプライシング(イン
トロンが存在する場合)のようなプロセスが挙げられるがこれらに限定されない
。
、使用され、ここで、このように記載される隣接配列は、その通常の機能を行う
ように構成または構築される。従って、コード配列に作動可能に連結した隣接配
列は、このコード配列の複製、転写および/または翻訳に影響を及ぼし得る。例
えば、コード配列は、プロモーターがコード配列の転写を指示し得る場合に、こ
のプロモーターに作動可能に連結される。隣接配列は、これが正確に機能する限
り、コード配列と隣接する必要はない。従って、例えば、介在する非翻訳性であ
るが転写される配列が、プロモーター配列とコード配列との間に存在し得、そし
てこのプロモーター配列は、なおこのコード配列に「作動可能に連結」されてい
るとみなされ得る。
次いで目的の選択された遺伝子を発現し得る細胞をいうために使用される。この
用語は、選択された遺伝子が存在する限り、子孫が形態学または遺伝子構造にお
いて本来の親と同一であろうとなかろうと、親細胞の子孫を含む。
れかのアミノ酸配列を含むポリペプチド、および関連ポリペプチドをいう。関連
ポリペプチドとしては、Secs−1ポリペプチドフラグメント、Secs−1
ポリペプチドオルソログ、Secs−1ポリペプチド改変体、およびSecs−
1ポリペプチド誘導体が挙げられ、これは、配列番号2または配列番号5のいず
れかに記載されるポリペプチドの少なくとも1つの活性を有する。Secs−1
ポリペプチドは、本明細書中で定義されるような成熟ポリペプチドであり得、そ
してこれらが調製される方法に依存して、アミノ末端メチオニン残基を有しても
有さなくてもよい。
番号5のいずれかに示されるようなポリペプチドの、アミノ末端(リーダー配列
を有するかもしくは有さない)での短縮および/またはカルボキシル末端での短
縮を含むポリペプチドをいう。用語「Secs−1ポリペプチドフラグメント」
はまた、Secs−1ポリペプチドオルソログ、Secs−1ポリペプチド誘導
体、もしくはSecs−1ポリペプチド改変体の、アミノ末端での短縮および/
もしくはカルボキシル末端での短縮をいうか、またはSecs−1ポリペプチド
対立遺伝子改変体もしくはSecs−1ポリペプチドスプライス改変体によって
コードされるポリペプチドのアミノ末端での短縮および/またはカルボキシル末
端での短縮をいう。Secs−1ポリペプチドフラグメントは、選択的RNAス
プライシング、またはインビボプロテアーゼ活性から生じ得る。Secs−1ポ
リペプチドの膜結合形態もまた、本発明によって意図される。好ましい実施形態
において、短縮および/または欠失は、約10アミノ酸、または約20アミノ酸
、または約30アミノ酸、または約40アミノ酸、または約50アミノ酸、また
は約60アミノ酸、または約70アミノ酸を含む。このように生成されるポリペ
プチドフラグメントは、約25個連続したアミノ酸、または約50アミノ酸、ま
たは約75アミノ酸、または約100アミノ酸、または約150アミノ酸または
約200アミノ酸を含む。このようなSecs−1ポリペプチドフラグメントは
、必要に応じて、アミノ末端メチオニン残基を含み得る。このようなフラグメン
トは、例えば、Secs−1ポリペプチドに対する抗体を作製するために使用さ
れ得ることが理解される。
号5のいずれかに示されるようなSecs−1ポリペプチドのアミノ酸配列に対
応する、別の種由来のポリペプチドをいう。例えば、マウスおよびヒトのSec
s−1ポリペプチドは、互いにオルソログであるとみなされる。
のいずれか(リーダー配列を有するかまたは有さない)に示されるSecs−1
ポリペプチドのアミノ酸配列と比較して、1つ以上のアミノ酸配列の置換、欠失
(例えば、内部欠失および/もしくはSecs−1ポリペプチドフラグメント)
、ならびに/または付加(例えば、内部付加および/もしくはSecs−1融合
ポリペプチド)を有するアミノ酸配列を含むSecs−1ポリペプチドをいう。
改変体は、天然に存在(例えば、Secs−1ポリペプチド対立遺伝子改変体、
Secs−1ポリペプチドオルソログ、およびSecs−1ポリペプチドスプラ
イス改変体)し得るか、あるいは、人工的に構築され得る。このようなSecs
−1ポリペプチド改変体は、配列番号1または配列番号4のいずれかに示される
ようなDNA配列からそれに応じて変化するDNA配列を有する、対応する核酸
分子から調製され得る。好ましい実施形態において、この改変体は、1〜3、ま
たは1〜5、または1〜10、または1〜15、または1〜20、または1〜2
5、または1〜30、または1〜40、または1〜50、または50より多くの
アミノ酸の置換、挿入、付加、および/あるいは欠失を有し、ここで、この置換
は、保存的、または非保存的、あるいはそのいずれかの組み合わせであり得る。
いずれかに示されるようなポリペプチド、本明細書中で定義されるような、Se
cs−1ポリペプチドフラグメント、Secs−1ポリペプチドオルソログ、ま
たはSecs−1ポリペプチド改変体をいい、これらは、化学的に改変されてい
る。用語「Secs−1ポリペプチド誘導体」はまた、本明細書中で定義される
ような、Secs−1ポリペプチド対立遺伝子改変体またはSecs−1ポリペ
プチドスプライス改変体によってコードされるポリペプチドをいい、これらは、
化学的に改変されている。
−1ポリペプチドをいう。成熟Secs−1ポリペプチドはまた、他の改変(例
えば、アミノ末端(リーダー配列を有するかまたは有さない)および/またはカ
ルボキシ末端のタンパク質分解性プロセシング、より大きな前駆体からのより小
さなポリペプチドの切断、N結合型および/またはO結合型グリコシル化など)
を含み得る。例示的な成熟Secs−1ポリペプチドは、配列番号3および配列
番号6のアミノ酸配列によって示される。
ずれかに示されるようなポリペプチド、本明細書中で定義されるような、Sec
s−1ポリペプチドフラグメント、Secs−1ポリペプチドオルソログ、Se
cs−1ポリペプチド改変体、またはSecs−1誘導体のアミノ末端またはカ
ルボキシ末端での、1つ以上のアミノ酸の融合(例えば、異種ペプチドまたはポ
リペプチド)をいう。用語「Secs−1融合ポリペプチド」はまた、本明細書
中で定義されるような、Secs−1ポリペプチド対立遺伝子改変体またはSe
cs−1ポリペプチドスプライス改変体によってコードされるポリペプチドのア
ミノ末端またはカルボキシ末端での、1つ以上のアミノ酸の融合をいう。
列番号5のいずれかのアミノ酸配列を含むSecs−1ポリペプチドの少なくと
も1つの活性特徴を有するSecs−1ポリペプチドをいう。さらに、Secs
−1ポリペプチドは、免疫原として活性であり得る;すなわち、Secs−1ポ
リペプチドは、抗体が惹起され得る少なくとも1つのエピトープを含む。
に、天然で一緒に見出されるポリヌクレオチド、脂質、炭水化物、または他の物
質の少なくとも約50%から分離されている本発明のポリペプチド、(2)「単
離されたポリペプチド」が天然で連結するポリペプチドの全てまたは一部に(共
有結合的または非共有結合的相互作用によって)連結しない、本発明のポリペプ
チド、(3)天然には連結しないポリペプチドに(共有結合的または非共有結合
的相互作用によって)作動可能に連結される、本発明のポリペプチド、あるいは
(4)天然には存在しない本発明のポリペプチドをいう。好ましくは、その天然
の環境において見出される少なくとも1つの混入ポリペプチドまたは他の混入物
を実質的に含まない。好ましくは、この単離されたポリペプチドは、その天然の
環境において見出される任意の他の夾雑ポリペプチドまたは他の夾雑物(これは
、その治療的使用、診断的使用、予防的使用、または研究的使用を妨げる)を実
質的に含まない。
る、2つ以上のポリペプチド分子または2つ以上の核酸分子の配列間の関係をい
う。当該分野において、「同一性」はまた、場合に応じて、2つ以上のヌクレオ
チド配列または2つ以上のアミノ酸配列間の一致によって決定されるように、核
酸分子またはポリペプチド間の配列関連性の程度を意味する。「同一性」は、2
つ以上の配列のうちのより小さなものと、特定の数理的モデルまたはコンピュー
タプログラム(すなわち、「アルゴリズム」)によって位置づけられたギャップ
アラインメント(存在する場合)との間の、同一の一致のパーセントを評価する
。
は、同一の一致および保存的置換の一致の両方を含む関係の測定をいう。2つの
ポリペプチド配列が、例えば10/20個同一のアミノ酸を有し、そして残りが
全て非保存的置換である場合、同一性パーセントおよび類似性パーセントは、ど
ちらも50%である。同じ例において、保存的置換が存在する位置がさらに5つ
存在する場合、同一性パーセントは50%のままであるが、類似性パーセントは
75%(15/20)である。従って、保存的置換が存在する場合、2つのポリ
ペプチド間の類似性の程度は、これらの2つのポリペプチド間のパーセント同一
性よりも高い。
、宿主細胞などのような生物学的物質と関連して使用される場合、天然において
見出され、そしてヒトによって操作されていない物質をいう。同様に、「天然に
存在しない」または「ネイティブではない」は、本明細書中で使用される場合、
天然で見出されないか、またはヒトによって構造的に改変もしくは合成されてい
る物質をいう。
s−1ポリペプチドの1つ以上の生物学的活性の観察可能なレベルを支持するた
めに使用されるSecs−1ポリペプチドまたはSecs−1核酸分子の量をい
う。
」は、本明細書中で使用される場合、薬学的組成物としてのSecs−1ポリペ
プチド、Secs−1核酸分子、またはSecs−1選択的結合因子の送達の達
成または増強に適切な1つ以上の処方材料をいう。
てさらに動物において使用されて、その抗原のエピトープに結合し得る抗体を産
生し得る分子または分子の一部をいう。抗原は、1つ以上のエピトープを有し得
る。
子をいう。本明細書中で使用される場合、用語「特異的」および「特異性」とは
、選択的結合因子が、ヒトSecs−1ポリペプチドに結合し、かつヒト非Se
cs−1ポリペプチドに結合しない能力をいう。しかし、選択的結合因子がまた
、配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるようなポリペプチドのオル
ソログ(すなわち、その種間のバージョン(例えば、マウスポリペプチドおよび
ラットポリペプチド))に結合し得ることが、理解される。
伝子の伝達をいうために使用される。「形質導入」はまた、レトロウイルスによ
る真核生物細胞配列の獲得および伝達をいう。
の取り込みをいうために使用され、そして細胞は、外因性DNAが細胞膜内に導
入された場合には「トランスフェクト」されている。多数のトランスフェクショ
ン技術は、当該分野で周知であり、そして本明細書中に開示される。例えば、G
rahamら,1973 Virology 52:456;Sambrook
ら,Molecular Cloning,A Laboratory Man
ual(Cold Spring Harbor Laboratories,
1989);Davisら,Basic Methods in Molecu
lar Biology(Elsevier,1986);およびChuら,1
981、Gene 13:197を参照のこと。このような技術を使用して、1
つ以上の外因性DNA部分を適切な宿主細胞に導入し得る。
ける変化をいい、そして細胞は、新しいDNAを含有するように改変された場合
に形質転換されている。例えば、細胞は、それがそのネイティブな状態から遺伝
的に改変される場合に形質転換される。トランスフェクションまたは形質導入に
続いて、形質転換DNAは、物理的に細胞の染色体に組み込むことにより細胞の
DNAと組換わり得るか、複製されることなしにエピソームエレメントとして一
過的に保持され得るか、またはプラスミドとして独立的に複製し得る。DNAが
細胞分裂と共に複製される場合に、細胞は、安定に形質転換されたとみなされる
。
関連した核酸分子が、配列番号1または配列番号4のいずれかの核酸分子の対
立遺伝子改変体またはスプライス改変体を含むこと、および上記のヌクレオチド
配列のいずれかに相補的である配列を含むことが理解される。関連した核酸分子
はまた、配列番号2または配列番号5のいずれかにおけるポリペプチドと比較し
て1以上のアミノ酸残基の置換、改変、付加および/または欠失を含むかまたは
本質的にこれからなるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む。この
ような関連したSecs−1ポリペプチドは、例えば、1以上のN−連結もしく
はO−連結グリコシル化部位の付加および/もしくは欠失、または1以上のシス
テイン残基の付加および/もしくは欠失を含み得る。
−1ポリペプチドの少なくとも約25個連続したアミノ酸、または少なくとも約
30個のアミノ酸、または約40個のアミノ酸、または約50個のアミノ酸、ま
たは約60個のアミノ酸、または約70個のアミノ酸、または70個より多くの
アミノ酸残基のポリペプチドをコードする、Secs−1核酸分子のフラグメン
トを包含する。
の中程度または高度にストリンジェントな条件下で、配列番号1もしくは配列番
号4のいずれかのSecs−1核酸分子またはポリペプチドをコードする分子の
十分に相補的な配列とハイブリダイズするヌクレオチド配列を含む分子を包含し
、このポリペプチドは、配列番号2もしくは配列番号5、または本明細書中に定
義したとおりの核酸フラグメント、または本明細書中に定義したとおりのポリペ
プチドをコードする核酸フラグメントのいずれかに示されるアミノ酸配列を含む
。ハイブリダイゼーションプローブは、本明細書中に提供されるSecs−1配
列を用いてcDNAライブラリー、ゲノムDNAライブラリーまたは合成DNA
ライブラリーを関連した配列についてスクリーニングするために調製され得る。
Secs−1ポリペプチドのDNA配列および/またはアミノ酸配列のうちの、
既知配列に対して顕著な同一性を示す領域は、本明細書中に記載されるとおりの
配列アラインメントアルゴリズムを用いて容易に決定され、そしてこれらの領域
を用いて、スクリーニングのためのプローブを設計し得る。
A鎖のハイブリダイゼーションを許容し、かつ顕著に不一致のDNAのハイブリ
ダイゼーションを排除するように設計された条件をいう。ハイブリダイゼーショ
ンのストリンジェンシーは、温度、イオン強度および変性剤(例えば、ホルムア
ミド)の濃度によって主に決定される。ハイブリダイゼーションおよび洗浄につ
いての「高度にストリンジェントな条件」の例は、65〜68℃での0.015
M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウムまたは42℃での0.0
15M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウムおよび50%ホルム
アミドである。Sambrook,FritschおよびManiatis,M
olecular Cloning:A Laboratory Manual
(第2版,Cold Spring Harbor Laboratory,1
989);Andersonら,Nucleic Acid Hybridis
ation:A Practical Approach 第4章(IRL P
ress Limited)を参照のこと。
より高いホルムアミドまたは他の変性剤)もまた用いられ得るが、ハイブリダイ
ゼーションの速度が影響される。他の薬剤は、非特異的および/またはバックグ
ラウンドのハイブリダイゼーションを減少させる目的のために、ハイブリダイゼ
ーションおよび洗浄の緩衝液中に含まれ得る。例は、0.1%ウシ血清アルブミ
ン、0.1%ポリビニルピロリドン、0.1%ピロリン酸ナトリウム、0.1%
ドデシル硫酸ナトリウム、NaDodSO4、(SDS)、ficoll、デン
ハルト溶液、超音波処理サケ精子DNA(または別の非相補的DNA)および硫
酸デキストランであるが、他の適切な薬剤もまた用いられ得る。これらの添加剤
の濃度および種類は、ハイブリダイゼーション条件のストリンジェンシーに実質
的に影響を与えることなく変更され得る。ハイブリダイゼーション実験は通常、
pH6.8〜7.4で実施される;しかし、代表的なイオン強度の条件では、ハ
イブリダイゼーションの速度は、pHからほぼ独立する。Andersonら,
Nucleic Acid Hybridisation:A Practic
al Approach第4章(IRL Press Limited)を参照
のこと。
基対の不一致程度が挙げられる。ハイブリダイゼーション条件は、これらの変動
要因を適応させ、そして異なる配列関連性のDNAがハイブリッドを形成するの
を可能にするために当業者によって調整され得る。完全に一致したDNA二重鎖
の融解温度は、以下の方程式によって評価され得る:
Tm(℃)=81.5+16.6(log[Na+])+0.41(G+C%
)−600/N−0.72(%ホルムアミド)
ここで、Nは、形成される二重鎖の長さであり、[Na+]は、ハイブリダイゼ
ーション溶液または洗浄溶液中のナトリウムイオンのモル濃度であり、G+C%
は、ハイブリッド中での(グアニン+シトシン)塩基の百分率である。不完全に
一致したハイブリッドについては、融解温度は、1%の不一致毎に約1℃下げら
れる。
条件」下で生じ得るよりも高い程度の塩基対不一致を有するDNA二重鎖が形成
され得る条件をいう。代表的な「中程度にストリンジェントな条件」の例は、5
0〜65℃での0.015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウ
ムまたは37〜50℃での0.015M塩化ナトリウム、0.0015Mクエン
酸ナトリウムおよび20%ホルムアミドである。例示として、0.015Mナト
リウムイオン中での50℃という「中程度にストリンジェントな条件」は、約2
1%の不一致を可能にする。
の間に絶対的な区別が存在しないことが当業者によって認識される。例えば、0
.015Mナトリウムイオン(ホルムアミドなし)では、完全に一致した長さの
DNAの融解温度は、約71℃である。65℃で(同じイオン強度で)の洗浄を
用いると、約6%の不一致が可能になる。より関連性の遠い配列を捕獲するため
に、当業者は、単純に、温度を低くし得るかまたはイオン強度を高くし得る。
での融解温度の良好な評価は、以下によって与えられる:
Tm=A−T塩基対あたり2℃ + G−C塩基対あたり4℃
*6×塩クエン酸ナトリウム(SSC)中でのナトリウムイオン濃度は、1Mで
ある。Suggsら,Developmental Biology Usin
g Purified Genes 683(BrownおよびFox編,19
81)を参照のこと。
SSC、0.1% SDS中でのそのオリゴヌクレオチドのTmよりも0℃〜5
℃低い温度においてである。
ずれかに示されるとおりのヌクレオチド配列に対して少なくとも約70パーセン
ト同一であるヌクレオチド配列を含むかもしくはこれからなるか、または配列番
号2もしくは配列番号5のいずれかに示すとおりのポリペプチドに対して少なく
とも約70パーセント同一であるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を
含むかもしくは本質的にこれからなる。好ましい実施形態では、ヌクレオチド配
列は、配列番号1もしくは配列番号4のいずれかに示されるとおりのヌクレオチ
ド配列に対して約75パーセント、もしくは約80パーセント、もしくは約85
パーセント、もしくは約90パーセント、もしくは約95、96、97、98、
もしくは99パーセント同一であるか、またはヌクレオチド配列は、配列番号2
もしくは配列番号5のいずれかに示されるとおりのポリペプチド配列に対して約
75パーセント、もしくは約80パーセント、もしくは約85パーセント、もし
くは約90パーセント、もしくは約95、96、97、98、もしくは99パー
セント同一であるポリペプチドをコードする。関連した核酸分子は、配列番号2
または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドの少なくとも1つの活性を
保有するポリペプチドをコードする。
配列と比較して、アミノ酸配列の保存的改変および/または非保存的改変をもた
らし得る。
およびコードするヌクレオチドに対する、対応する改変)は、Secs−1ポリ
ペプチドの機能的特徴および化学的特徴と類似の機能的特徴および化学的特徴を
有するポリペプチドを生じる。対照的に、Secs−1ポリペプチドの機能的特
徴および/または化学的特徴における実質的な改変は、以下を維持することに対
するその影響が顕著に異なる、配列番号2または配列番号5のいずれかのアミノ
酸配列における置換を選択することによって達成され得る:(a)例えば、シー
トコンホメーションもしくはヘリックスコンホメーションのような、置換領域に
おける分子骨格の構造、(b)標的部位での分子の電荷もしくは疎水性、または
(c)側鎖のかさ。
荷にもほとんど影響がないかまたは全く影響がないような、非ネイティブ残基に
よるネイティブなアミノ酸残基の置換を含み得る。さらに、ポリペプチド中の任
意のネイティブな残基はまた、「アラニンスキャニング変異誘発」について以前
に記載されたように、アラニンで置換され得る。
的なペプチド合成によって代表的に組み込まれる、天然には存在しないアミノ酸
残基を含む。これらとしては、ペプチド模倣物、およびアミノ酸部分の他の逆転
形態または反転形態が挙げられる。
得る:
1)疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
2)中性親水性:Cys、Ser、Thr;
3)酸性:Asp、Glu;
4)塩基性:Asn、Gln、His、Lys、Arg;
5)鎖の配向に影響を与える残基:Gly、Pro;および
6)芳香族:Trp、Tyr、Phe。
ラス由来のメンバーに対する交換を包含し得る。このような置換された残基は、
非ヒトSecs−1ポリペプチドと相同なヒトSecs−1ポリペプチドの領域
またはこの分子の非相同領域に導入され得る。
アミノ酸は、その疎水性特性および電荷特性に基づいて、ヒドロパシー指数を割
り当てられている。ヒドロパシー指数は、以下である:イソロイシン(+4.5
);バリン(+4.2);ロイシン(+3.8);フェニルアラニン(+2.8
);システイン/シスチン(+2.5);メチオニン(+1.9);アラニン(
+1.8);グリシン(−0.4);スレオニン(−0.7);セリン(−0.
8);トリプトファン(−0.9);チロシン(−1.3);プロリン(−1.
6);ヒスチジン(−3.2);グルタミン酸(−3.5);グルタミン(−3
.5);アスパラギン酸(−3.5);アスパラギン(−3.5);リジン(−
3.9);およびアルギニン(−4.5)。
アミノ酸指数の重要性は、当該分野において一般的に理解されている(Kyte
ら、1982,J.Mol.Biol.157:105−31)。特定のアミノ
酸が、類似のヒドロパシー指数またはスコアを有する他のアミノ酸に代えて置換
され得、そして依然として類似の生物学的活性を維持し得ることが、公知である
。ヒドロパシー指数に基づいて変化を起こす際に、ヒドロパシー指数が±2以内
であるアミノ酸の置換が好ましく、±1以内であるものが特に好ましく、そして
±0.5以内であるものが、なおより特に好ましい。
よって作製された生物学的機能的に等価なタンパク質またはペプチドが、この場
合においてと同様に、免疫学的実施形態における使用に関して考慮される場合)
こともまた、当該分野において理解されている。タンパク質の最も大きな局所的
平均親水性は、その隣接するアミノ酸の親水性によって支配される場合に、その
免疫原性および抗原性、すなわち、そのタンパク質の生物学的特性に相関する。
+3.0);リジン(+3.0);アスパラギン酸(+3.0±1);グルタミ
ン酸(+3.0±1);セリン(+0.3);アスパラギン(+0.2);グル
タミン(+0.2);グリシン(0);スレオニン(−0.4);プロリン(−
0.5±1);アラニン(−0.5);ヒスチジン(−0.5);システイン(
−1.0);メチオニン(−1.3);バリン(−1.5);ロイシン(−1.
8);イソロイシン(−1.8);チロシン(−2.3);フェニルアラニン(
−2.5);およびトリプトファン(−3.4)。類似の親水性の値に基づいて
変化を行う際に、親水性値が±2以内であるアミノ酸の置換が好ましく、±l以
内であるものが特に好ましく、そして±0.5以内であるものが、なおより特に
好ましい。一次アミノ酸配列から、エピトープをまた、親水性に基づいて同定し
得る。これらの領域はまた、「エピトープコア領域」と呼ばれる。
のような置換が所望される時点で決定され得る。例えば、アミノ酸置換を使用し
て、Secs−1ポリペプチドの重要な残基を同定し得るか、または本明細書中
に記載されるSecs−1ポリペプチドの親和性を増加もしくは減少させ得る。
例示的なアミノ酸置換は、表Iに記載される。
当業者は、配列番号2または配列番号5のいずれかに示される通りのポリペプ
チドの適切な改変体を、周知の技術を使用して、決定し得る。生物学的活性を破
壊することなく変化され得る分子の適切な領域を同定するために、当業者は、活
性のために重要であるとは考えられない領域を標的化し得る。例えば、同じ種由
来かまたは他の種由来の、類似の活性を有する類似のポリペプチドが既知である
場合には、当業者は、Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列を、このような
類似のポリペプチドと比較し得る。このような比較を用いて、類似のポリペプチ
ド間で保存される分子の残基および部分を同定し得る。このような類似のポリペ
プチドに対して保存されていない、Secs−1分子の領域における変化が、S
ecs−1ポリペプチドの生物学的活性および/または構造にさほど不利に影響
を与えるようではないことが、理解される。当業者にはまた、比較的保存された
領域においてさえ、化学的に類似のアミノ酸を、活性を維持しながら天然に存在
する残基に代わって置換し得ることが公知である(保存的アミノ酸残基置換)。
従って、生物学的活性または構造のために重要であり得る領域でさえ、生物学的
活性を破壊することなく、またはポリペプチド構造に不利に影響を与えることな
く、保存的アミノ酸置換に供され得る。
における残基を同定する、構造−機能研究を再調査し得る。このような比較の観
点において、類似のポリペプチドにおける活性または構造のために重要なアミノ
酸残基に対応するSecs−1ポリペプチドにおける、アミノ酸残基の重要性を
予測し得る。当業者は、Secs−1ポリペプチドのこのような予測された重要
なアミノ酸残基に代わる化学的に類似のアミノ酸置換を、選択し得る。
するアミノ酸配列を分析し得る。このような情報の観点において、当業者は、S
ecs−1ポリペプチドのアミノ酸残基のアライメントを、その三次元構造に関
して予測し得る。当業者は、そのタンパク質の表面上に存在すると予測されるア
ミノ酸残基に対する急激な変化を起こさないように、選択し得る。なぜなら、こ
のような残基は、他の分子との重要な相互作用に関与し得るからである。さらに
、当業者は、単一のアミノ酸置換を各アミノ酸残基に含む、試験改変体を生成し
得る。これらの改変体は、当業者に公知の活性アッセイを使用して、スクリーニ
ングされ得る。このような改変体は、適切な改変体に関する情報を集めるために
使用され得る。例えば、特定のアミノ酸残基に対する変化が、破壊された活性、
望ましくなく減少した活性、または適切でない活性を生じたことを発見した場合
には、このような変化を有する改変体は、回避される。換言すれば、このような
慣用的な実験から集めた情報に基づいて、当業者は、さらなる置換が、単独でか
または他の変異と組み合わせてかのいずれかで回避されるべきであるアミノ酸を
、容易に決定し得る。
6,Curr.Opin.Biotechnol.7:422−27;Chou
ら、1974,Biochemistry 13:222−45;Chouら、
1974,Biochemistry 113:211−22;Chouら、1
978,Adv.Enzymol.Relat.Areas Mol.Biol
.47:45−48;Chouら、1978,Ann.Rev.Biochem
.47:251−276;およびChouら、1979,Biophys.J.
26:367−84を参照のこと。さらに、コンピュータプログラムが、二次構
造の推定を補助するために、現在利用可能である。二次構造を推定する1つの方
法は、相同性モデリングに基づく。例えば、30%より大きな配列同一性または
40%より大きな類似性を有する、2つのポリペプチドまたはタンパク質は、し
ばしば、類似の構造トポロジーを有する。タンパク質構造データベース(PDB
)の近年の成長は、二次構造(ポリペプチドまたはタンパク質の構造における可
能な折り畳みの数を含む)の増強された予測性を提供してきた。Holmら、1
999,Nucleic Acids Res.27:244−47を参照のこ
と。所定のポリペプチドまたはタンパク質において制限された数の折り畳みが存
在すること、および一旦、臨界数の構造が解明されると、構造推定は劇的により
正確となることが、示唆されてきた(Brennerら、1997,Curr.
Opin.Struct.Biol.7:369−76)。
ing)」(Jones,1997,Curr.Opin.Struct.Bi
ol.7:377−87;Sipplら、1996,Structure 4:
15−19)、「プロフィール分析」(Bowieら、1991,Scienc
e,253:164−70;Gribskovら、1990,Methods
Enzymol.183:146−59;Gribskovら、1987,Pr
oc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.84:4355−58)、およ
び「進化学的連鎖」(Holmら、前出、およびBrennerら、前出を参照
のこと)が挙げられる。
よび/または型が、配列番号2または配列番号5のいずれかに記載のアミノ酸配
列と比較して変化している、グリコシル化改変体が挙げられる。1つの実施形態
において、Secs−1ポリペプチド改変体は、配列番号2または配列番号5の
いずれかに記載のアミノ酸配列より多いかまたはより少ない数のN結合型グリコ
シル化部位を含む。N結合型グリコシル化部位は、配列Asn−X−Serまた
はAsn−X−Thrによって特徴付けられ、ここで、Xと印されるアミノ酸残
基は、プロリン以外の任意のアミノ酸残基であり得る。この配列を作製するため
のアミノ酸残基の置換は、N結合型糖鎖の付加のための潜在的な新たな部位を提
供する。あるいは、この配列を排除する置換は、存在するN結合型糖鎖を除去す
る。1つ以上のN連結グリコシル化部位(代表的に、天然に存在するグリコシル
化部位)が排除され、そして1つ以上の新たなN結合部位が作製される、N結合
型糖鎖の再配列もまた、提供される。さらなる好ましいSecs−1改変体とし
ては、1つ以上のシステイン残基が、配列番号2または配列番号5のいずれかに
記載のアミノ酸配列と比較して欠失しているか、または別のアミノ酸(例えば、
セリン)で置換されている、システイン改変体が挙げられる。システイン改変体
は、Secs−1ポリペプチドが、例えば不溶性の封入体の単離の後に、生物学
的に活性な立体構造へとリフォールディングされなければならない場合に、有用
である。システイン改変体は、一般に、ネイティブタンパク質より少ないシステ
イン残基を有し、そして代表的には偶数のシステイン残基を有し、対合していな
いシステインから生じる相互作用を最小にする。
を有しかつポリペプチドが配列番号2または配列番号5のいずれかに記載のポリ
ペプチドの活性を有する、配列番号2または配列番号5のいずれかに記載のポリ
ペプチドをコードするヌクレオチド配列を含むかもしくはこの配列からなるか、
あるいは少なくとも1つのアミノ酸欠失を有しかつポリペプチドが配列番号2ま
たは配列番号5のいずれかに記載のポリペプチドの活性を有する、配列番号2ま
たは配列番号5のいずれかに記載のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列
を含むかもしくはこの配列からなる。関連する核酸分子はまた、ポリペプチドが
カルボキシル末端および/またはアミノ末端の短縮を有しかつさらにこのポリペ
プチドが、配列番号2または配列番号5のいずれかに記載のポリペプチドの活性
を有する、配列番号2または配列番号5のいずれかに記載のポリペプチドをコー
ドするヌクレオチド配列を、含むかまたはこの配列からなる。関連する核酸分子
はまた、アミノ酸置換、アミノ酸挿入、アミノ酸欠失、カルボキシル末端短縮、
およびアミノ末端短縮からなる群より選択される少なくとも1つの改変を含み、
そしてここで、ポリペプチドが配列番号2または配列番号5のいずれかに記載の
ポリペプチドの活性を有する、配列番号2または配列番号5のいずれかに記載の
ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を、含むかまたはこの配列からなる
。
プチドあるいは他のSecs−1ポリペプチドは、同種ポリペプチドに融合して
ホモダイマーを形成し得るか、あるいは異種ポリペプチドに融合してヘテロダイ
マーを形成し得る。異種のペプチドおよびポリペプチドとしては、以下が挙げら
れるが、それらに限定されない:Secs−1融合ポリペプチドの検出および/
または単離を可能にするエピトープ;膜貫通レセプタータンパク質またはその部
分(例えば、細胞外ドメインまたは膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン);膜
貫通レセプタータンパク質に結合する、リガンドまたはその部分;触媒的に活性
である、酵素またはその部分;オリゴマー化を促進するポリペプチドまたはペプ
チド(例えば、ロイシンジッパードメイン);安定性を増加させるポリペプチド
またはペプチド(例えば、免疫グロブリン定常領域);ならびに配列番号2また
は配列番号5のいずれかに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドあるいは別の
Secs−1ポリペプチドとは異なる治療活性を有する、ポリペプチド。
ポリペプチド、あるいは他のSecs−1ポリペプチドの、アミノ末端またはカ
ルボキシル末端のいずれかにおいて、なされ得る。融合は、リンカーもアダプタ
ー分子も用いずに直接であっても、リンカーもしくはアダプター分子を介してで
あってもよい。リンカーまたはアダプター分子は、1つ以上のアミノ酸残基であ
り得、代表的に、約20〜約50アミノ酸残基である。DNA制限エンドヌクレ
アーゼまたはプロテアーゼに対する切断部位を有するリンカーまたはアダプター
分子がまた、設計されて、融合した部分の分離を可能にし得る。一旦構築される
と、融合ポリペプチドは、本明細書中に記載の方法に従って誘導体化され得るこ
とが、理解される。
のアミノ酸配列を含むポリペプチド、あるいは他のSecs−1ポリペプチドは
、ヒトIgGのFc領域の1つ以上のドメインに融合する。抗体は、以下の機能
的に独立した2つの部分を含む;抗原を結合する「Fab」として公知の可変ド
メイン、ならびに相補的活性化および食作用細胞による攻撃のようなエフェクタ
ー機能に関与する、「Fc」として公知の定常ドメイン。Fcは、長い血清半減
期を有し、一方でFabは、短寿命である。Caponら、1989,Natu
re 337:525−31。治療タンパク質と一緒に構築される場合には、F
cドメインは、より長い半減期を提供し得るか、またはFcレセプター結合、プ
ロテインA結合、補体結合、および恐らく、胎盤移入のような機能を組み込み得
る。同書。表IIは、当該分野において公知の特定のFc融合物の使用を要約す
る。
一例において、ヒトIgGのヒンジ領域、CH2領域、およびCH3領域は、
当業者に公知の方法を使用して、Secs−1ポリペプチドのアミノ末端または
カルボキシル末端のいずれかにおいて、融合し得る。別の例において、ヒトIg
Gのヒンジ領域、CH2領域、およびCH3領域は、Secs−1ポリペプチド
フラグメント(例えば、Secs−1ポリペプチドの推定細胞外部分)のアミノ
末端またはカルボキシル末端のいずれかにおいて、融合し得る。
ムの使用によって、精製され得る。Fc領域に融合したペプチドおよびタンパク
質は、融合していない対応物より実質的に長いインビボでの半減期を示すことが
見出された。また、Fc領域への融合は、融合ポリペプチドの二量化/多量体化
を可能にする。Fc領域は、天然に存在するFc領域であり得るか、または治療
品質、循環時間、もしくは減少した凝集のような特定の品質を改善するよう変更
され得る
関連する核酸分子およびポリペプチドの同一性および類似性は、公知の方法に
よって容易に計算される。このような方法としては、Computationa
l Molecular Biology(A.M.Lesk編、Oxford
University Press 1988);Biocomputing
:Informatics and Genome Projects(D.W
.Smith編、Academic Press 1993);Compute
r Analysis of Sequence Data(Part 1,A
.M.GriffinおよびH.G.Griffin編、Humana Pre
ss 1994);G.von Heinle,Sequence Analy
sis in Molecular Biology(Academic Pr
ess 1987);Sequence Analysis Primer(M
.GribskovおよびJ.Devereux編、M.Stockton P
ress 1991);ならびにCarilloら、1988,SIAM J.
Applied Math.,48:1073に記載されるものが挙げられるが
、これらに限定されない。
列間での最大の適合を与えるために、設計される。同一性および類似性を決定す
るための方法は、公共に利用可能なコンピュータプログラムにおいて記載されて
いる。2つの配列間の同一性および類似性を決定するための、好ましいコンピュ
ータプログラム方法としては、GCGプログラムパッケージ(GAP(Deve
reuxら、1984,Nucleic Acids Res.12:387;
Genetics Computer Group,University o
f Wisconsin,Madison,WI)、BLASTP、BLAST
N、およびFASTA(Altschulら、1990,J.Mol.Biol
.215:403−10)を含む)が挙げられるが、これらに限定されない。B
LASTXプログラムは、National Center for Biot
echnology Information(NCBI)および他の供給源(
Altschulら、BLAST Manual(NCB NLM NIH,B
ethesda,MD);Altschulら、1990、前出)から公共に利
用可能である。周知のSmith Watermanアルゴリズムもまた、同一
性を決定するために使用され得る。
ら2つの配列の短い領域のみの適合を生じ得、そしてこの小さな整列領域は、2
つの全長配列間に有意な関連がない場合でさえも、非常に高い配列同一性を有し
得る。従って、好ましい実施形態において、選択された整列方法(GAPプログ
ラム)は、特許請求されるポリペプチドの少なくとも50の連続するアミノ酸に
わたる整列を生じる。
er Group,University of Wisconsin,Mad
ison,WI)を使用して、配列同一性の百分率が決定されるべき2つのポリ
ペプチドが、それらのそれぞれのアミノ酸の最適な適合(アルゴリズムによって
決定される「適合したスパン」)のために、整列される。ギャップオープニング
ペナルティー(gap opening penalty)(これは、平均対角
の3倍として計算される:「平均対角」とは、使用される比較行列(compa
rison matrix)の対角の平均である;「対角」とは、特定の比較行
列によって各完全なアミノ酸適合に対して割り当てられたスコアまたは数である
)およびギャップエクステンションペナルティー(gap extension
penalty)(これは通常、キャップオープニングペナルティーの0.1
倍である)、ならびにPAM 250またはBLOSUM 62のような比較行
列が、このアルゴリズムと組み合わせて使用される。標準的な比較行列もまた、
このアルゴリズムによって使用される(Dayhoffら、5 Atlas o
f Protein Sequence and Structure(補遺3
1978)(PAM250比較行列);Henikoffら、1992,Pr
oc.Natl.Acad.Sci USA 89:10915−19(BLO
SUM 62比較行列)を参照のこと)。
Algorithm:Needleman and Wunsch,1970
,J.Mol.Biol.48:443−53;
Comparison matrix:BLOSUM 62(Henikof
fら、前出);
Gap Penalty:12
Gap Length Penalty:4
Threshold of Similarity:0
このGAPプログラムは、上記パラメータを用いて有用である。上記パラメータ
は、GAPアルゴリズムを用いるポリペプチド比較(末端ギャップに対してはペ
ナルティーがないこととともに)のためのデフォルトパラメータである。
Algorithm:Needleman and Wunsch,前出;
Comparison matrix:matches=+10,misma
tch=0
Gap Penalty:50
Gap Length Penalty:3
このGAPプログラムはまた、上記パラメータを用いて有用である。上記パラメ
ータは、核酸分子比較のためのデフォルトパラメータである。
rsion 9,September,1997に記載されるものを含む、他の
例示的なalgorithm、gap opening penalty、ga
p extension penalty、comparison matri
x、およびthreshold of similarityが使用され得る。
なされるべき特定の選択は、当業者に明らかであり、そしてなされるべき特定の
比較(例えば、DNA対DNA、タンパク質対タンパク質、タンパク質対DNA
);ならびにさらに、その比較が所定の対の配列間(この場合には、GAPまた
はBestFitが一般的に好ましい)であるか、1つの配列と大きなデータベ
ースの配列との間(この場合には、FASTAまたはBLASTAが好ましい)
であるかに依存する。
Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核
酸分子は、種々の様式(化学合成、cDNAもしくはゲノムのライブラリーのス
クリーニング、発現ライブラリースクリーニング、および/またはcDNAのP
CR増幅が挙げられるが、これらに限定されない)で容易に得られ得る。
ら、Molecular Cloning:A Laboratory Man
ual(Cold Spring Harbor Laboratory Pr
ess,1989)および/またはCurrent Protocols in
Molecular Biology(Ausubelら編、Green P
ublishers Inc.およびWiley and Sons 1994
)に記載されている方法である。本発明は、本明細書中に記載されるような核酸
分子、およびこのような分子を得るための方法を提供する。
同定された場合には、この遺伝子の全てまたは一部を、同じ種由来のオーソログ
または関連する遺伝子を同定するためのプローブとして使用し得る。このプロー
ブまたはプライマーを使用して、Secs−1ポリペプチドを発現すると考えら
れる種々の組織供給源由来のcDNAをスクリーニングし得る。さらに、配列番
号1または配列番号4のいずれかに記載されるような配列を有する核酸分子の部
分または全てを使用して、ゲノムライブラリーをスクリーニングし、Secs−
1ポリペプチドのアミノ酸配列をコードする遺伝子を同定および単離し得る。代
表的に、中程度または高いストリンジェンシーの条件が、スクリーニングのため
に使用されて、このスクリーニングから得られる誤った陽性の数を最小にする。
されたタンパク質の特性に基づいて陽性クローンの検出を使用する発現クローニ
ングによって、同定され得る。代表的に、核酸ライブラリーは、抗体または他の
結合パートナー(例えば、レセプターまたはリガンド)を、宿主細胞表面におい
て発現および提示されたクローンタンパク質に結合させることによって、スクリ
ーニングされる。抗体または結合パートナーは、所望のクローンを発現する細胞
を同定するために、検出可能な標識で改変される。
リヌクレオチドを産生し得、そしてコードされたポリペプチドを発現させ得る。
例えば、Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列をコードする核酸配列を適切
なベクターに挿入することによって、当業者は、多量の所望されるヌクレオチド
配列を容易に生成し得る。次いで、これらの配列を使用して、検出プローブまた
は増幅プライマーを生成し得る。あるいは、Secs−1ポリペプチドのアミノ
酸配列をコードするポリヌクレオチドを、発現ベクターに挿入し得る。発現ベク
ターを適切な宿主に導入することによって、コードされたSecs−1ポリペプ
チドが、多量に生成され得る。
ある。この方法において、cDNAは、酵素逆転写酵素を使用して、ポリ(A)
+RNAまたは全RNAから調製される。次いで、2つのプライマー(代表的に
は、Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列をコードするcDNAの2つの別
個の領域に対して相補的である)が、Taqポリメラーゼのようなポリメラーゼ
とともにこのcDNAに添加され、そしてこのポリメラーゼが、これら2つのプ
ライマー間のcDNA領域を増幅する。
の手段は、Engelsら、1989,Angew.Chem.Intl.第2
8版:716−34によって記載されるような、当業者に周知の方法を使用する
、化学合成である。これらの方法としては、とりわけ、核酸合成のためのホスホ
トリエステル、ホスホルアミダイト、およびH−ホスホネート方法が挙げられる
。このような化学合成のために好ましい方法は、標準的なホスホルアミダイト化
学を使用する、ポリマーにより支持される合成である。代表的に、Secs−1
ポリペプチドのアミノ酸配列をコードするDNAは、数百ヌクレオチド長である
。約100ヌクレオチドより長い核酸は、これらの方法を使用して、いくつかの
フラグメントとして合成され得る。次いで、これらのフラグメントが一緒に連結
されて、Secs−1遺伝子の全長ヌクレオチド配列を形成し得る。通常、この
ポリペプチドのアミノ末端をコードするDNAフラグメントは、ATG(これは
、メチオニン残基をコードする)を有する。このメチオニンは、宿主細胞におい
て産生されるポリペプチドがその細胞から分泌されるよう設計されているか否か
に依存して、Secs−1ポリペプチドの成熟形態で存在してもそうでなくても
よい。当業者に公知の他の方法が、同様に使用され得る。
1ポリペプチドの最適な発現のために変更されたコドンを含む。特定のコドン変
更は、発現のために選択される宿主細胞およびSecs−1ポリペプチドに依存
する。このような「コドン最適化」は、種々の方法によって(例えば、所定の宿
主細胞において高度に発現される遺伝子において使用されるのに好ましいコドン
を選択することによって)実施され得る。高度に発現された細菌遺伝子のコドン
優先度(codon preference)についての「Eco_high.
Cod」のようなコドン頻度表を組み込むコンピュータアルゴリズムが使用され
得、そしてUniversity of Wisconsin Package
Version 9.0(Genetics Computer Group
,Madison,WI)によって提供される。他の有用なコドン頻度表として
は、「Celegans_high.cod」、「Celegans_low.
cod」、「Drosophila_high.cod」、「Human_hi
gh.cod」、「Maize_high.cod」、および「Yeast_h
igh.cod.」が挙げられる。
分子を調製することが所望され得る。改変体をコードする核酸分子は、プライマ
ーが所望の点変異を有する部位特異的変異誘発、PCR増幅、または他の適切な
方法を使用して生成され得る(変異誘発技術の説明に関しては、Sambroo
kら、前出、およびAusubelら、前出を参照のこと)。Engelsら、
前出によって記載される方法を使用する化学合成もまた、このような改変体を調
製するために使用され得る。当業者に公知の他の方法が、同様に使用され得る。
Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列をコードする核酸分子を、標準的な
連結技術を使用して適切な発現ベクターに挿入する。ベクターは、代表的に、使
用される特定の宿主細胞において機能的であるように選択される(すなわち、ベ
クターは、遺伝子の増幅および/または遺伝子の発現が生じ得るように、宿主細
胞機構と適合性である)。Secs−1ポリペプチドのアミノ酸配列をコードす
る核酸分子は、原核生物宿主細胞、酵母宿主細胞、昆虫(バキュロウイルス系)
宿主細胞および/または真核生物宿主細胞において増幅/発現され得る。宿主細
胞の選択は、Secs−1ポリペプチドが翻訳後修飾(例えば、グリコシル化お
よび/またはホスホリル化)されるか否かに一部依存する。その場合、酵母宿主
細胞、昆虫宿主細胞、または哺乳動物宿主細胞が好ましい。発現ベクターの総説
については、Meth.Enz.,第185巻(D.V.Goeddel編,A
cademic Press 1990)を参照のこと。
めの配列ならびに外来性ヌクレオチド配列のクローニングおよび発現のための配
列を含む。このような配列(集合的に、「隣接配列」という)は、特定の実施形
態において、代表的に、以下のヌクレオチド配列の1つ以上を含む:プロモータ
ー、1つ以上のエンハンサー配列、複製起点、転写終結配列、ドナーおよびアク
セプタースプライス部位を含む完全なイントロン配列、ポリペプチド分泌のため
のリーダー配列をコードする配列、リボソーム結合部位、ポリアデニル化配列、
発現されるポリペプチドをコードする核酸を挿入するためのポリリンカー領域、
ならびに選択可能マーカーエレメント。これらの配列のそれぞれが、以下に議論
される。
リペプチドコード配列の5’末端または3’末端に配置されるオリゴヌクレオチ
ド分子)を含み得;このオリゴヌクレオチド配列は、ポリHis(例えば、ヘキ
サHis)、または別の「タグ」(例えば、FLAG、HA(赤血球凝集素イン
フルエンザウイルス)またはmyc(これに対して、市販の抗体が存在する)を
コードする。このタグは、代表的には、ポリペプチドの発現の際にポリペプチド
に融合され、宿主細胞からの、Secs−1ポリペプチドのアフィニティー精製
のための手段として役立ち得る。アフィニティー精製は、例えば、アフィニティ
ーマトリクスとして、タグに対する抗体を使用するカラムクロマトグラフィーに
よって達成され得る。必要に応じて、タグは、引き続いて、切断のために特定の
ペプチダーゼを使用するような、種々の手段によって、精製されたSecs−1
ポリペプチドから除去され得る。
り得るか、異種(すなわち、宿主細胞種または株以外の種由来)であり得るか、
ハイブリッド(すなわち、1つより多くの供給源由来の隣接配列の組み合わせ)
であり得るか、または合成であり得るか、あるいは隣接配列は、Secs−1ポ
リペプチド発現を調節するために通常機能するネイティブな配列であり得る。従
って、隣接配列の供給源は、任意の原核生物または真核生物、任意の脊椎生物ま
たは無脊椎生物、または任意の植物であり得るが、但し、隣接配列は、この宿主
細胞の機構において機能的であり、そしてこの宿主細胞の機構によって活性化さ
れ得る。
くつかの方法によって得られ得る。代表的には、Secs−1遺伝子の隣接配列
以外の、本発明で有用な隣接配列は、マッピングおよび/または制限エンドヌク
レアーゼ消化によって以前に同定されており、従って、適切な制限エンドヌクレ
アーゼを使用して、適切な組織供給源から単離され得る。いくつかの場合におい
て、隣接配列の全長ヌクレオチド配列は公知であり得る。ここで、隣接配列は、
核酸合成またはクローニングのために本明細書中で記載される方法を使用して合
成され得る。
、ならびに/あるいは適切なオリゴヌクレオチドおよび/または同種もしくは別
の種由来の隣接配列フラグメントを用いてゲノムライブラリーをスクリーニング
することによって得られ得る。隣接配列が公知ではない場合、隣接配列を含むD
NAのフラグメントは、例えば、コード配列または別の遺伝子さえも含み得る大
きなDNA片から単離され得る。単離は、適切なDNAフラグメントを生成する
ための制限エンドヌクレアーゼ消化、続くアガロースゲル精製を使用する単離、
Qiagen(登録商標)カラムクロマトグラフィー(Chatsworth、
CA)、または当業者に公知の他の方法によって達成され得る。この目的を達成
するための適切な酵素の選択は、当業者に容易に明らかである。
は、宿主細胞におけるベクターの増幅を補助する。特定のコピー数までのベクタ
ーの増幅は、いくつかの場合において、Secs−1ポリペプチドの最適な発現
のために重要であり得る。選択されたベクターが複製起点部位を含まない場合、
複製起点は、既知の配列に基づいて化学的に合成され得、そしてベクターに連結
され得る。例えば、プラスミドpBR322(New England Bio
labs,Beverly,MA)からの複製起点は、大部分のグラム陰性細菌
に適切であり、そして種々の起源(例えば、SV40、ポリオーマ、アデノウイ
ルス、水疱性口内炎ウイルス(VSV)、またはHPVもしくはBPVのような
パピローマウイルス)は、哺乳動物細胞におけるベクターのクローニングのため
に有用である。一般的に、複製起点の成分は、哺乳動物発現ベクターには必要な
い(例えば、SV40起源は、それが初期プロモーターを含むという理由のみに
よって、しばしば使用されている)。
そして転写を終結させるのに役立つ。通常、原核生物細胞における転写終結配列
は、G−Cリッチフラグメントと、それに続くポリT配列である。この配列はラ
イブラリーから容易にクローン化されるか、またはさらにベクターの一部として
の市販されているが、これはまた、本明細書中に記載された核酸合成のための方
法を使用して容易に合成され得る。
の生存および増殖に必要なタンパク質をコードする。代表的な選択マーカー遺伝
子は、(a)原核生物宿主細胞に対して、抗生物質または他の毒素(例えば、ア
ンピシリン、テトラサイクリン、またはカナマイシン)に対する耐性を与えるか
;(b)細胞の栄養要求性の欠損を補うか;あるいは、(c)複合培地から入手
可能でない重要な栄養素を供給する、タンパク質をコードする。好ましい選択マ
ーカーは、カナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、およびテトラサ
イクリン耐性遺伝子である。ネオマイシン耐性遺伝子もまた、原核生物宿主細胞
および真核生物宿主細胞における選択のために使用され得る。
、増殖に重要なタンパク質の産生のために大いに要求されている遺伝子が、組換
え細胞の継続世代の染色体内でタンデムに反復されているプロセスである。哺乳
動物細胞に対する適切な選択マーカーの例としては、ジヒドロ葉酸レダクターゼ
(DHFR)およびチミジンキナーゼが挙げられる。哺乳動物細胞の形質転換体
は、選択圧下に置かれ、ここで、形質転換体のみが固有に、ベクターに存在する
選択遺伝子によって生存するように適応される。培地中の選択因子の濃度を連続
的に変化させ、それによって選択遺伝子とSecs−1ポリペプチドをコードす
るDNAとの両方の増幅を導く条件下で、形質転換された細胞を培養することに
よって、選択圧を加える。結果として、増加した量のSecs−1ポリペプチド
が、増幅されたDNAから合成される。
ine−Dalgarno配列(原核性物)またはKozak配列(真核生物)
によって特徴付けられる。このエレメントは、代表的に、発現されるSecs−
1ポリペプチドのプロモーターに対して3’側およびコード配列に対して5’側
に配置される。Shine−Dalgarno配列は、可変であるが、代表的に
は、ポリプリン(すなわち、高いA−G含有量を有する)である。多くのShi
ne−Dalgarno配列は、同定されており、これらのそれぞれが、本明細
書中に記載の方法を使用して、容易に合成され得、原核生物ベクターにおいて使
用され得る。
チドを指向させるために使用され得る。代表的には、シグナル配列をコードする
ヌクレオチド配列は、Secs−1核酸分子のコード領域に位置するか、または
直接Secs−1ポリペプチドコード領域の5’側に位置する。多くのシグナル
配列が同定されており、選択された宿主細胞において機能的である任意のシグナ
ル配列が、Secs−1核酸分子と組み合わせて使用され得る。従って、シグナ
ル配列は、Secs−1核酸分子に対して同種(天然に存在する)または異種で
あり得る。さらに、シグナル配列は、本明細書中に記載される方法を使用して化
学的に合成され得る。大半の場合、シグナルペプチドの存在による宿主細胞から
のSecs−1ポリペプチドの分泌は、分泌されたSecs−1ポリペプチドか
らのシグナルペプチドの除去を生じる。シグナル配列は、ベクターの成分であり
得るか、またはベクターに挿入されたSecs−1核酸分子の一部であり得る。
ポリペプチドシグナル配列をコードするヌクレオチド配列、または、Secs−
1ポリペプチドコード領域に結合された異種シグナル配列をコードするヌクレオ
チド配列のいずれかの使用は本発明の範囲内である。選択された異種シグナル配
列は、宿主細胞によって認識され、プロセスされる(すなわち、シグナルペプチ
ダーゼによって切断される)ものであるべきである。ネイティブなSecs−1
ポリペプチドシグナル配列を認識せず、そしてプロセスもしない原核生物宿主細
胞について、シグナル配列は、例えば、アルカリホスファターゼ、ペニシリナー
ゼ、または熱安定エンテロトキシンIIリーダーの群から選択される原核生物シ
グナル配列によって置換される。酵母分泌のために、ネイティブなSecs−1
ポリペプチドシグナル配列は、酵母インベルターゼ、α因子、または酸ホスファ
ターゼリーダーによって置換され得る。哺乳動物細胞発現において、ネイティブ
なシグナル配列で十分であるが、他の哺乳動物シグナル配列が適切であり得る。
の場合において、グリコシル化または収量を改善するために種々のプレ配列(p
resequence)が操作され得る。例えば、特定のシグナルペプチドのペ
プチダーゼ切断部位を変更し得るかまたはプロ配列(pro−sequence
)を加え得、これはまた、グリコシル化に影響し得る。最終タンパク質産物は、
1位に(成熟タンパク質の最初のアミノ酸と相対的に)、発現に付随する1つ以
上のさらなるアミノ酸を有し得、これは、完全には除去されない可能性がある。
例えば、最終のタンパク質産物は、アミノ末端に結合される、ペプチダーゼ切断
部位において見出される1つまたは2つのアミノ酸残基を有し得る。あるいは、
いくつかの酵素切断部位の使用は、酵素が成熟ポリペプチド内のこのような領域
で切断する場合に所望のSecs−1ポリペプチドのわずかに短縮された(tr
uncate)形態を生じ得る。
の存在によって増加する;これは、ポリペプチドが真核生物宿主細胞(特に、哺
乳動物宿主細胞)において産生される場合に特に当てはまる。使用されるイント
ロンは、特に使用される遺伝子が全長ゲノム配列またはそのフラグメントである
場合にSecs−1遺伝子内に天然に存在するものであり得る。イントロンが遺
伝子内に天然に存在しない場合(大部分のcDNAについて)、イントロンは、
別の供給源から得られ得る。隣接配列およびSecs−1遺伝子に対してイント
ロンの位置は、イントロンが有効に転写されなければならないので、一般的に重
要である。従って、Secs−1 cDNA分子が転写される場合、イントロン
の好ましい位置は、転写開始部位に対して3’側であり、かつポリ−A転写終止
配列に対して5’側である。好ましくは、イントロン(単数または複数)は、コ
ード配列を妨害しないように、cDNAの1つの側または他の側(すなわち、5
’側または3’側)に配置される。任意の供給源(ウイルス、原核生物および真
核生物(植物または動物)を含む)由来のイントロンを使用して本発明を実行し
得るが、但し、このイントロンは、挿入される宿主細胞に適合性である。合成イ
ントロンもまたここに含まれる。必要に応じて、1つより多くのイントロンがベ
クター内で使用され得る。
によって認識され、Secs−1ポリペプチドをコードする分子に作動可能に連
結されたプロモーターを含む。プロモーターは、構造遺伝子の転写を制御する構
造遺伝子(一般的に、約100〜1000bp)の開始コドンに対して上流(す
なわち、5’側)に配置される非転写配列である。プロモーターは、従来、2つ
のクラス(誘導プロモーターおよび構成プロモーター)のうちの1つにグループ
化されている。誘導プロモーターは、培養条件におけるいくらかの変化(例えば
、栄養素の存在または非存在、あるいは温度の変化)に応答して、それらの制御
下でDNAからの転写の増加したレベルを開始する。他方、構成プロモーターは
、連続的な遺伝子産物の産生を開始する;すなわち、遺伝子発現に対してほとん
ど制御しないかまたは全く制御しない。多数のプロモーター(種々の潜在的な宿
主細胞によって認識される)が周知である。適切なプロモーターは、供給源のD
NAからプロモーターを制限酵素消化によって取り出し、そして所望のプロモー
ター配列をベクターに挿入することによって、Secs−1ポリペプチドをコー
ドするDNAに作動可能に連結される。ネイティブなSecs−1プロモーター
配列は、Secs−1核酸分子の増幅および/または発現を指示するために使用
され得る。しかし、ネイティブなプロモーターと比較してより多い転写および発
現タンパク質のより高い産生を可能とし、そして使用のために選択された宿主細
胞系と適合性である場合には異種プロモーターが好ましい。
びラクトースプロモーター系;アルカリホスファターゼ;トリプトファン(tr
p)プロモーター系;およびハイブリッドプロモーター(例えば、tacプロモ
ーター)が挙げられる。他の公知の細菌プロモーターもまた適切である。これら
の配列は公開されており、これらの配列により、当業者は、任意の有用な制限部
位を供給するのに必要とされるリンカーまたはアダプターを使用して、所望のD
NA配列にそれらの配列を連結し得る。
。酵母エンハンサーは、酵母プロモーターと共に有利に使用される。哺乳動物宿
主細胞での使用に適切なプロモーターは周知であり、限定しないが、ポリオーマ
ウイルス、鶏痘ウイルス、アデノウイルス(例えば、Adenovirus2)
、ウシパピローマウイルス、鳥類肉腫ウイルス、サイトメガロウイルス、レトロ
ウイルス、B型肝炎ウイルスおよび最も好ましいシミアンウイルス40(SV4
0)のようなウイルスのゲノムから得られるプロモーターが挙げられる。他の適
切な哺乳動物プロモーターとしては、異種哺乳動物プロモーター(例えば、熱シ
ョックプロモーターおよびアクチンプロモーター)が挙げられる。
としては、限定しないが、以下が挙げられる:SV40初期プロモータ領域(B
ernoistおよびChambon,1981,Nature 290:30
4−10);CMVプロモーター;ラウス肉腫ウイルスの3’側の長末端反復に
含まれるプロモーター(Yamamotoら,1980,Cell 22 :7
87−97);ヘルペスチミジンキナーゼプロモーター(Wagnerら,19
81,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.78:1444−
45);メタロチオネイン遺伝子の調節配列(Brinsterら,1982,
Nature 296:39−42);β−ラクタマーゼプロモーターのような
原核生物発現ベクター(Villa−Kamaroffら,1978,Proc
.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,75:3727−31);また
はtacプロモーター(DeBoerら,1983,Proc.Natl.Ac
ad.Sci.U.S.A.,80:21−25)。組織特異性を示し、そして
トランスジェニック動物において利用されている、以下の動物転写制御領域もま
た関心が高い:膵臓腺房細胞において活性なエラスターゼI遺伝子制御領域(S
wiftら,1984,Cell 38:639−46;Ornitzら,19
86,Cold Spring Harbor Symp.Quant.Bio
l.50:399−409(1986);MacDonald,1987,He
patology 7:425−515);膵臓β細胞において活性なインシュ
リン遺伝子制御領域(Hanahan,1985,Nature 315:11
5−22);リンパ系細胞において活性な免疫グロブリン遺伝子制御領域(Gr
osschedlら,1984,Cell 38:647−58;Adames
ら,1985,Nature 318:533−38;Alexanderら,
1987,Mol.Cell.Biol.,7:1436−44);精巣細胞、
乳房細胞、リンパ系細胞、および肥満細胞において活性なマウス哺乳動物腫瘍ウ
イルス制御領域(Lederら,1986,Cell 45:485−95);
肝臓において活性なアルブミン遺伝子制御領域(Pinkertら,1987,
Genes and Devel.1:268−76);肝臓において活性なα
−フェトタンパク質遺伝子制御領域(Krumlaufら,1985,Mol.
Cell.Biol.,5:1639−48;Hammerら,1987,Sc
ience 235:53−58);肝臓において活性なα1−抗トリプシン遺
伝子制御領域(Kelseyら,1987,Genes and Devel.
1:161−71);骨髄性細胞において活性なβ−グロビン遺伝子制御領域(
Mogramら,1985,Nature 315:338−40;Kolli
asら,1986,Cell 46:89−94);脳の稀突起神経膠細胞にお
いて活性なミエリン塩基性タンパク質遺伝子制御領域(Readheadら,1
987,Cell 48:703−12);骨格筋において活性なミオシン軽鎖
−2遺伝子制御領域(Sani,1985,Nature 314:283−8
6);ならびに視床下部において活性なゴナドトロピン放出ホルモン遺伝子制御
領域(Masonら,1986,Science 234:1372−78)。
ペプチドをコードするDNAの転写を増加するように、ベクターに挿入され得る
。エンハンサーは、転写を増加させるためにプロモーターに作用する、通常約1
0〜300bpの長さのDNAのシス作用性エレメントである。エンハンサーは
、比較的方向および位置に非依存性である。これらは、転写ユニットに対して5
’側および3’側に見出された。哺乳動物遺伝子から入手可能ないくつかのエン
ハンサー配列が公知である(例えば、グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α
−フェトタンパク質およびインシュリン)。しかし、代表的には、ウイルス由来
のエンハンサーが、使用される。SV40エンハンサー、サイトメガロウイルス
初期プロモーターエンハンサー、ポリオーマエンハンサー、およびアデノウイル
スエンハンサーは、真核生物プロモーターの活性化のための例示的な増強エレメ
ントである。エンハンサーは、Secs−1核酸分子に対して5’位または3’
位でベクターにスプライシングされ得るが、代表的には、プロモーターから5’
側に配置される。
得る。このようなベクターは、全ての所望な隣接配列を含んでも良いし、含まな
くても良い。本明細書中に記載される隣接配列の1つ以上が予めベクター内に存
在しない場合、これらは、個々に得られ得、ベクターに連結され得る。隣接配列
のそれぞれを得るために使用される方法は、当業者に周知である。
および哺乳動物宿主細胞と適合性のベクターである。このようなベクターとして
は、特に、pCRII、pCR3、およびpcDNA3.1(Invitrog
en、San Diego、CA)、pBSII(Stratagene、La
Jolla、CA)、pET15(Novagen、Madison、WI)
、pGEX(Pharmacia Biotech、Piscataway、N
J)、pEGFP−N2(Clontech、Palo Alto、CA)、p
ETL(BlueBacII、Invitrogen)、pDSR−α(PCT
公開番号WO 90/14363)ならびにpFastBacDual(Gib
co−BRL、Grand Island、NY)が挙げられる。
たは改変ウイルスが挙げられるが、これらのベクター系は、選択された宿主細胞
と適合性でなければならないことが理解される。このようなベクターとしては、
限定しないが、Bluescript(登録商標)プラスミド誘導体(高コピー
数ColEl−ベースのファージミド、Stratagene Cloning
Systems,La Jolla CA)のようなプラスミド、Taq増幅
PCR産物をクローニングするために設計されたPCRクローニングプラスミド
(例えば、TOPOTM TA Cloning(登録商標)Kit、PCR2
.1(登録商標)プラスミド誘導体、Invitrogen、Carlsbad
、CA)、ならびにバキュロウイルス発現系のような哺乳動物ベクター、酵母ベ
クターまたはウイルスベクター(pBacPAKプラスミド誘導体、Clont
ech、Palo Alto、CA)が挙げられる。
がベクターの適切な部位に挿入された後に、完全なベクターが増幅および/また
はポリペプチド発現に適切な宿主細胞に挿入され得る。Secs−1ポリペプチ
ドについての発現ベクターの選択された宿主細胞への形質転換は、トランスフェ
クション、感染、塩化カルシウム、エレクトロポレーション、マイクロインジェ
クション、リポフェクション、DEAE−デキストラン法、または他の公知の技
術のような方法を含む周知の方法によって達成され得る。選択される方法は、使
用される宿主細胞の型にいくぶん関連する。これらの方法および他の適切な方法
は、当業者に周知であり、例えば、Sambrookら、上記に記載される。
細胞(例えば、酵母細胞、昆虫細胞、または脊椎動物細胞)であり得る。宿主細
胞は、適切な条件下で培養される場合にSecs−1ポリペプチドを合成し、こ
れは、続いて、培養培地から(宿主細胞がそのポリペプチドを培地に分泌する場
合)収集され得るか、または直接そのポリペプチドを産生する宿主細胞から収集
される(そのポリペプチドが分泌されない場合)。適切な宿主細胞の選択は、所
望の発現レベル、活性に望ましいかまたは必要なポリペプチド修飾(例えば、グ
リコシル化またはリン酸化)、および生物学的に活性な分子へと折り畳まれる容
易さなどの種々の因子に依存する。
an Type Culture Collection(ATCC),Man
assas,VAから入手可能である。例としては、限定しないが、チャイニー
ズハムスター卵巣細胞(CHO)、CHO DHFR(−)細胞(Urlaub
ら,1980,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.97:4
216−20)、ヒト胚性腎臓(HEK)293または293T細胞、あるいは
3T3細胞のような哺乳動物細胞が挙げられる。適切な哺乳動物宿主細胞の選択
ならびに形質転換、培養、増幅、スクリーニング、産物生成、および精製のため
の方法が当該分野において公知である。他の適切な哺乳動物細胞株は、サルCO
S−1およびCOS−7細胞株、およびCV−1細胞株である。さらなる例示的
な哺乳動物宿主細胞としては、霊長動物細胞株およびげっ歯類細胞株(形質転換
細胞株を含む)が挙げられる。正常な二倍体細胞、初代組織のインビトロ培養物
から誘導される細胞株、ならびに初代外植片もまた適切である。候補細胞は、選
択遺伝子を遺伝子型的に欠失し得るか、または優性に作用する選択遺伝子を含み
得る。他の適切な哺乳動物細胞株としては、限定しないが、マウス神経芽細胞腫
N2A細胞、HeLa、マウスL−929細胞、Swissから誘導された3T
3株、Balb−cまたはNIHマウス、BHKまたはHaKハムスター細胞株
が挙げられる。これらの細胞株のそれぞれは、タンパク質発現に関する分野の当
業者にとって公知であり入手可能である。
E.coli(例えば、HB101、DH5α、DH10、およびMC1061
)の種々の菌株は、生物工学の分野において宿主細胞として周知である。B.s
ubtilis、Pseudomonas spp.、他のBacillus
spp.、Streptomyces spp.などの種々の菌株もまた、本方
法において使用され得る。
ための宿主細胞として利用可能である。好ましい酵母細胞としては、例えば、S
accharomyces cerivisaeおよびPichia past
orisが挙げられる。
る。このような系は、例えば、Kittsら,1993,Biotechniq
ues,14:810−17;Lucklow,1993,Curr.Opin
.Biotechnol.4:564−72;およびLucklowら,199
3,J.Virol.,67:4566−79に記載される。好ましい昆虫細胞
は、Sf−9およびHi5(Invitrogen)である。
ク動物がまた使用され得る。例えば、トランスジェニック乳汁産生動物(例えば
、雌ウシまたはヤギ)を使用し、本発明のグルコシル化ポリペプチドを動物の乳
汁中に得ることができる。Secs−1ポリペプチドを産生するために、植物も
また使用し得るが、一般的に、植物において生じるグリコシル化は、哺乳動物細
胞において産生されるものとは異なり、ヒト治療の用途に適切ではないグリコシ
ル化産物を生じ得る。
Secs−1ポリペプチド発現ベクターを含む宿主細胞は、当業者に周知の標
準的な培地を使用して培養され得る。この培地は通常、細胞の増殖および生存に
必要な全ての栄養素を含む。E.coli細胞を培養するための適切な培地とし
ては、例えば、Luria Broth(LB)および/またはTerrifi
c Broth(TB)が挙げられる。真核生物細胞を培養するための適切な培
地としては、Roswell Park Memorial Institut
e medium 1640(RPMI 1640)、Minimal Ess
ential Medium(MEM)および/またはDulbecco’s
Modified Eagle Medium(DMEM)が挙げられ、これら
の全ては、培養される特定の細胞株に必要とされるように血清および/または増
殖因子を補充され得る。昆虫培養物についての適切な培地は、必要に応じて、イ
ーストレート(yeatolate)、ラクトアルブミン加水分解産物、および
/または胎仔ウシ血清を補充したグレース培地である。
増殖に有用な抗生物質または他の化合物が、培地に補充物質として添加される。
使用される化合物は、宿主細胞が形質転換されるプラスミドに存在する選択マー
カーエレメントによって指示される。例えば、選択マーカーエレメントがカナマ
イシン耐性である場合、培養倍地に加えられる化合物は、カナマイシンである。
選択的増殖のための他の化合物としては、アンピシリン、テトラサイクリン、お
よびネオマイシンが挙げられる。
いて公知の標準的な方法を使用して評価され得る。このような方法としては、限
定しないが、ウェスタンブロット分析、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳
動、非変性ゲル電気泳動、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)分離、免疫
沈降、および/またはDNA結合ゲルシフトアッセイのような活性アッセイが挙
げられる。
ポリペプチドの大部分は、細胞培養培地中で見出され得る。しかし、Secs−
1ポリペプチドが宿主細胞から分泌されない場合、細胞質および/または核(真
核宿主細胞について)に、あるいは、細胞質ゾル(グラム陰性細菌宿主細胞につ
いて)に存在する。
または細胞質ゾル(細菌宿主細胞について)に位置するSecs−1ポリペプチ
ドについて、細胞内物質(グラム陰性細菌についての封入体を含む)は、当業者
に公知の任意の標準的な技術を使用して宿主細胞から抽出され得る。例えば、宿
主細胞は、フレンチプレス、ホモジネート化、および/または超音波処理、続く
遠心分離によって、ペリプラズム/細胞質の内容物を放出するように溶解され得
る。
体は、しばしば、細胞内膜および/または細胞外膜に結合され得、従って、主に
、遠心分離後のペレット材料において見出される。次いで、ペレット材料は、極
端なpHで、あるいはジチオトレイトールのような還元剤の存在下アルカリ性の
pHで、またはトリスカルボキシエチルホスフィンの存在下酸性のpHで、界面
活性剤、グアニジン、グアニジン誘導体、尿素、または尿素誘導体のようなカオ
トロピック剤で処理されて、封入体を放出させ、分断させ、そして溶解させ得る
。次いで、溶解されたSecs−1ポリペプチドは、ゲル電気泳動、免疫沈降な
どを使用して分析され得る。Secs−1ポリペプチドを単離することが望まし
い場合、単離は、本明細書中およびMarstonら,1990,Meth.E
nz.,182:264−75に記載される方法のような標準的な方法を使用し
て達成され得る。
なくても良い。ポリペプチドをその三次構造に「再折り畳み」または変換し、そ
してジスルフィド結合を生成するための種々の方法を使用して、生物学的活性を
回複し得る。このような方法は、溶解されたポリペプチドを、一定のpH(通常
は、7より上)および特定の濃度のカオトロピック剤(chaotrope)の
存在に曝露する工程を包含する。カオトロピック剤の選択は、封入体溶解に使用
される選択肢に非常に類似するが、通常、カオトロピック剤は低い濃度で使用さ
れ、溶解に使用されるカオトロピック剤と必ずしも同一ではない。多くの場合、
再折り畳み/酸化溶液はまた、還元剤、または特定の比の還元剤およびその酸化
形態を含んで、特定の酸化還元電位を生成し、タンパク質のシステイン架橋の形
成を生じるジスルフィドシャフリングを可能にする。通常使用される酸化還元対
のいくつかとしては、システイン/シスタミン、グルタチオン(GSH)/ジチ
オビスGSH、塩化銅、ジチオトレイトール(DTT)/ジチアンDTT、およ
び2−2−メルカプトエタノール(bME)/ジチオ−b(ME)が挙げられる
。多くの場合において、共溶媒が、再折り畳みの効率を増加するのに使用され得
るかまたは必要とされ得、この目的のために使用されるより一般的な試薬として
は、グリセロール、種々の分子量のポリエチレングリコール、アルギニンなどが
挙げられる。
い場合、ポリペプチドは、主に、細胞ホモジネートの遠心分離後の上清中に見出
される。ポリペプチドは、さらに、本明細書中に記載されるような方法を使用し
て上清から単離され得る。
れ得る。ポリペプチドが、ヘキサヒスチジン(Secs−1ポリペプチド/ヘキ
サHis)のようなタグまたは他の小さなペプチド(例えば、FLAG(Eas
tman Kodak Co.,New Haven,CT)またはmyc(I
nvitrogen,Carlsbad,CA))をそのカルボキシル末端また
はアミノ末端のいずれかにおいて含むように合成された場合、カラムマトリクス
がタグに対して高い親和性を有するアフィニティーカラムに溶液を通すことによ
って一工程で精製され得る。
合する。従って、ニッケルのアフィニティーカラム(例えば、Qiagen(登
録商標)ニッケルカラム)は、Secs−1ポリペプチド/ポリHisの精製の
ために使用され得る。例えば、Current Protocols in M
olecular Biology § 10.11.8(Ausubelら編
,Green Publishers Inc.およびWiley and S
ons 1993)を参照のこと。
認識し得、そして結合し得るモノクローナル抗体の使用によって精製され得る。
免疫アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、モレ
キュラーシーブクロマトグラフィー、HPLC、電気泳動(ネイティブゲル電気
泳動を含む)、続くゲル溶出、および調製等電点電気泳動(「Isoprime
」machine/technique,Hoefer Scientific
,San Francisco,CA)が挙げられるが、これらに限定されない
。いくつかの場合において、2つ以上の精製技術を、増加した純度を達成するた
めに組み合わせ得る。
Am.Chem.Soc.85:2149;Houghtenら,1985,P
roc Natl Acad.Sci.USA 82:5132;ならびに、S
tewartおよびYoung,Solid Phase Peptide S
ynthesis(Pierce Chemical Co.1984)に記載
されるような当該分野で公知の技術を使用する、化学合成法(例えば、固相ペプ
チド合成)によって調製され得る。このようなポリペプチドは、アミノ末端にメ
チオニンを有するかまたは有さずに合成され得る。化学的に合成されたSecs
−1ポリペプチドは、これらの参考文献に記載される方法を使用して酸化されて
、ジスルフィド架橋を形成し得る。化学的に合成されたSecs−1ポリペプチ
ドは、組換え的に産生されるかまたは天然の供給源から精製された対応のSec
s−1ポリペプチドに匹敵する生物学的活性を有すると予想され、従って、組換
えまたは天然のSecs−1ポリペプチドと相互交換可能に使用され得る。
然に見出される供給源の組織および/または流体のような生物学的サンプルから
の精製による。このような精製は、本明細書中に記載されるようなタンパク質精
製のための方法を使用して行われ得る。精製の間、Secs−1ポリペプチドの
存在が、例えば、組換え的に産生されたSecs−1ポリペプチドまたはそのペ
プチドフラグメントに対して調製された抗体を使用してモニターされ得る。
おいて公知であり、この方法は、Secs−1ポリペプチドに対して特異性を有
するポリペプチドを産生するために使用され得る。例えば、Robertsら,
1997,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.94:122
97−303を参照のこと。これは、mRNAとそのコードされるペプチドとの
間の融合タンパク質の産生を記載する。Roberts,1999,Curr.
Opin.Chem.Biol.3:268−73もまた参照のこと。さらに、
米国特許第5,824,469号は、特定の生物学的機能を実行し得るオリゴヌ
クレオチドを得るための方法を記載する。この手順は、異種プールのオリゴヌク
レオチドを生成する工程を包含し、この異種プールのオリゴヌクレオチドはそれ
ぞれが、5’ランダム化配列、中央部の予備選択配列、および3’ランダム化配
列を有する。得られる異種プールは、所望の生物学的機能を示さない細胞の集団
に導入される。次いで、細胞の亜集団を、予め決定された生物学的機能を示すも
のについてスクリーニングする。その亜集団から、所望の生物学的機能を実行し
得るオリゴヌクレオチドが単離される。
3,323号;および同第5,817,483号は、ペプチドまたはポリペプチ
ドを産生するためのプロセスを記載する。これは、確率論的な遺伝子またはその
フラグメントを産生し、次いで、その確率論的な遺伝子によってコードされた1
以上のタンパク質を産生する宿主細胞にこれらの遺伝子を導入することによって
達成される。次いで、この宿主細胞は、所望の活性を有するペプチドまたはポリ
ペプチドを産生するクローンを同定するためにスクリーニングされる。
,Inc.によって出願されたPCT/US98/20094(WO99/15
650に記載される。これは、「Random Activation of
Gene Expression for Gene Discovery」(
RAGE−GD)として知られており、このプロセスは、インサイチュ組換え方
法によって、内因性遺伝子の発現または遺伝子の過剰発現の活性化を含む。例え
ば、内因性遺伝子の発現は、非相同性組換えまたは異常な組換えによって、遺伝
子の発現を活性化し得る標的細胞中に、調節配列を組み込むことによって、活性
化または増加される。この標的DNAは、まず、照射に供せられ、そして遺伝子
プロモーターが挿入される。このプロモーターは、遺伝子の前方に最終的に中断
点を配置し、遺伝子の転写を開始する。これは、所望のペプチドまたはポリペプ
チドの発現を引き起こす。
作製するために使用され得、これは、続いて、種々のアッセイ(例えば、生化学
的アッセイ、細胞アッセイおよび生物全体のアッセイ(例えば、植物、マウスな
ど))において、ハイスループット表現型スクリーニングのために使用され得る
ことが理解される。
本明細書中に記載される核酸分子およびポリペプチド分子は、組換えおよび他
の手段によって産生され得ることが、当業者によって理解される。
用語「選択的結合因子」は、1以上のSecs−1ポリペプチドに対して特異
性を有する分子をいう。適切な選択的結合因子としては、抗体およびその誘導体
、ポリペプチド、ならびに低分子が挙げられるが、これらに限定されない。適切
な選択的結合因子は、当該分野で公知の方法を使用して調製され得る。本発明の
例示的なSecs−1ポリペプチド選択的結合因子は、Secs−1ポリペプチ
ドの特定の部分を結合し得、これにより、ポリペプチドのSecs−1ポリペプ
チドレセプターへの結合を阻害する。
択的結合因子は、本発明の範囲内である。この抗体は、一重特異的なポリクロー
ナル抗体を含むポリクローナル抗体;モノクローナル抗体(MAb);組換え抗
体;キメラ抗体;ヒト化抗体(例えば、CDR移植化抗体);ヒト抗体;単鎖抗
体;および/または二重特異的抗体;ならびにそれらのフラグメント;改変体;
または誘導体であり得る。抗体フラグメントとしては、Secs−1ポリペプチ
ド上のエピトープに結合する抗体の部分を含む。このようなフラグメントの例と
しては、全長抗体の酵素的切断によって産生されたFabおよびF(ab’)フ
ラグメントが挙げられる。他の結合フラグメントとしては、組換えDNA技術(
例えば、抗体可変領域をコードする核酸配列を含む、組換えプラスミドの発現)
によって産生されたフラグメントが挙げられる。
cs−1ポリペプチドおよびアジュバンドの複数回の皮下注射または腹腔内注射
によって動物(例えば、ウサギまたはマウス)において産生される。Secs−
1ポリペプチドをキャリアタンパク質に結合させることは有用であり得る。この
キャリアタンパク質は、キーホールリンペットヘモシアニン、血清、アルブミン
、ウシサイログロブリン、またはダイズトリプシンインヒビターのように、免疫
される種において免疫原性である。また、ミョウバンのような凝集剤は、免疫応
答を増強させるために使用される。免疫後、この動物は採血され、そして血清を
、抗Secs−1抗体力価についてアッセイする。
細胞株による抗体分子の産生を提供する任意の方法を使用して産生される。モノ
クローナル抗体を調製するために適切な方法の例として、Kohlerら、19
75、Nature 256:495−97のハイブリドーマ法、およびヒトB
細胞ハイブリドーマ法(Kozbor、1984、J.Immunol.133
:3001;Brodeurら、Monoclonal Antibody P
roduction Techniques and Application
s 51−63(Marcel Dekker,Inc.,1987))が挙げ
られる。Secs−1ポリペプチドと反応性のモノクローナル抗体を産生するハ
イブリドーマ細胞株もまた、本発明によって提供される。
。1つの実施形態は、「キメラ」抗体であり、この抗体において重鎖(H)およ
び/または軽鎖(L)の一部が、特定の種に由来するかまたは特定の抗体のクラ
スもしくはサブクラスに属する抗体中の対応する配列と同一であるか、または相
同性であり、一方で、この鎖の残りの部分は、別の種に由来するか、または別の
抗体のクラスもしくはサブクラスに属する抗体における対応の配列と同一である
か、または相同性である。抗体のフラグメントが所望の生物学的活性を示す限り
、このような抗体のフラグメントも含まれる。米国特許第4,816,567号
;Morrisonら、1985、Proc.Natl.Acad.Sci.8
1:6851−55を参照のこと。
る。非ヒト抗体をヒト化するための方法は、当該分野で周知である。米国特許第
5,585,089号および同第5,693,762号を参照のこと。一般に、
ヒト化した抗体は、非ヒトである供給源からその抗体に導入される1以上のアミ
ノ酸残基を有する。ヒト化は、例えば、当該分野(Jonesら、1986、N
ature 321:522−25;Riechmannら、1998、Nat
ure 332:323−27;Verhoeyenら、1988、Scien
ce 239:1534−36)で記載される方法を使用して、げっ歯類の相補
性決定領域(CDR)の少なくとも一部をヒトの抗体の対応する領域の代わりに
置換することによって、実施され得る。
れる。内因性の免疫グロブリン産生の非存在下で、ヒト抗体のレパートリーを産
生し得る、トランスジェニック動物(例えば、マウス)を使用して、このような
抗体は、Secs−1ポリペプチド抗原(すなわち、少なくとも6個の連続する
アミノ酸を有する)を用いて免疫することによって産生され、必要に応じて、キ
ャリアに結合される。例えば、Jakobovitsら,1993,Proc.
Natl.Acad Sci.90:2551−55;Jakobovitsら
,1993,Nature 362:255−58;Bruggermannら
,1993,Year in Immuno.7:33を参照のこと。1つの方
法において、このようなトランスジェニック動物は、重鎖および軽鎖の免疫グロ
ブリン鎖をコードする内因性遺伝子座をその中で無能にし、そしてヒトの重鎖お
よび軽鎖のタンパク質をコードする遺伝子座をそのゲノムに挿入することによっ
て産生される。次いで、部分的に改変された動物(この動物は、完全には補完さ
れていない改変を有する)は、所望の免疫系の改変の全てを有する動物を得るた
めに交雑される。免疫原が投与される場合、これらのトランスジェニック動物が
、ヒト(例えば、マウスではない)アミノ酸配列(このアミノ酸配列は、これら
の抗原に対して免疫特異性である可変領域を含む)を有する抗体を産生する。P
CT出願番号PCT/US96/05928および同PCT/US93/069
26を参照のこと。さらなる方法は、米国特許第5,545,807号、PCT
出願番号PCT/US91/245および同PCT/GB89/01207、な
らびに欧州特許第546073B1号および同第546073A1号に記載され
る。ヒト抗体はまた、宿主細胞中での組換えDNAの発現または本明細書中に記
載されるようなハイブリドーマ細胞中での発現によって産生され得る。
から産生され得る(Hoogenboomら,1991,J.Mol.Biol
.227:381;Marksら,1991,J.Mol.Biol.222:
581)。これらのプロセスは、糸状バクテリオファージ表面上の抗体レパート
リーの提示を介した免疫選択、そして選択した抗原へのこれらの結合によるファ
ージの引き続く選択を模倣する。このような技術の1つは、PCT出願番号PC
T/US98/17364に記載されており、これには、このようなアプローチ
を使用する、MPLレセプターおよびmskレセプターに対して高い親和性の抗
体および機能的なアゴニスト抗体の単離が記載される。
よって産生される。抗体をコードする核酸は、宿主細胞中に導入され、そして本
明細書中に記載される材料および手順を使用して発現される。好ましい実施形態
において、この抗体は、哺乳動物宿主細胞(例えば、CHO細胞)中で産生され
る。モノクローナル(例えば、ヒト)抗体は、本明細書中に記載されるように、
宿主細胞中での組換えDNAの発現またはハイブリドーマ細胞中での発現によっ
て産生され得る。
のための任意の公知のアッセイ方法(例えば、競合結合アッセイ、直接的および
間接的なサンドイッチアッセイ、および免疫沈降アッセイ)において使用され得
る(Sola,Monoclonal Antibodies:A Manua
l of Techniques 147−158(CRC Press,In
c.,1987))。これらの抗体は、使用されるアッセイ方法に適切な親和性
でSecs−1ポリペプチドと結合する。
可能な部分で標識され得る。この検出可能な部分は、直接的または間接的のいず
れかで、検出可能なシグナルを産生し得る任意の部分であり得る。例えば、検出
可能な部分は、放射性同位体(例えば、3H、14C、32P、35S、125
I、99Tc、111In、または67Ga);蛍光化合物または化学発光化合
物(例えば、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、もしくはルシフ
ェリン);または酵素(例えば、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダー
ゼ、もしくは西洋ワサビペルオキシダーゼ)であり得る(Bayerら,199
0,Meth.Enz.184:138−63)。
、またはその免疫学的に反応性の部分)の能力に依存し、限定された量の抗Se
cs−1抗体との結合に関して、試験サンプル分析物(Secs−1ポリペプチ
ド)と競合する。試験サンプル中のSecs−1ポリペプチドの量は、抗体と結
合する標準物質の量と反比例する。結合する標準物質の量を決定するのを容易に
するために、これらの抗体は、代表的には競合前または競合後に不溶化され、そ
の結果これらの抗体と結合する標準物質および分析物は、結合しないままの標準
物質および分析物から都合よく分離され得る。
、検出および/または定量されるタンパク質の異なる免疫原性部分(すなわち、
エピトープ)に結合し得る。サンドイッチアッセイにおいて、この試験サンプル
分析物は、代表的には固体支持体上に固定される第1抗体によって結合され、そ
の後、第2抗体が、この分析物に結合し、このようにして不溶性の3部分複合体
を形成する。例えば、米国特許第4,376,110号を参照のこと。第2抗体
自体は、検出可能な部分で標識され得るか(直接的なサンドイッチアッセイ)、
または検出可能な部分で標識された抗免疫グロブリン抗体を使用して測定され得
る(間接的なサンドイッチアッセイ)。例えば、サンドイッチアッセイの1つの
型は、酵素結合イムノソルベントアッセイ(ELISA)(この場合、検出可能
な部分は、酵素である)である。
有用である。検出可能な部分で標識した抗体は、動物に、好ましくは、血流に投
与され得、宿主中における標識した抗体の存在および位置がアッセイされる。こ
の抗体は、核磁気共鳴、放射線学、または当該分野で公知の他の検出手段のいず
れかによって、動物中で検出可能である任意の部分で標識され得る。
の治療剤は、一般に、アゴニストまたはアンタゴニストであり、これらはそれぞ
れ、Secs−1ポリペプチドの少なくとも1つの生物学的活性を、増強または
減少させるかのいずれかである。1つの実施形態において、本発明のアンタゴニ
スト抗体は、Secs−1ポリペプチドに特異的に結合し得、そしてインビボま
たはインビトロでSecs−1ポリペプチドの機能活性を阻害または排除し得る
、抗体またはその結合フラグメントである。好ましい実施形態において、選択的
結合因子(例えば、アンタゴニスト抗体)は、Secs−1ポリペプチドの機能
活性を、少なくとも約50%、および好ましくは、少なくとも約80%阻害する
。別の実施形態において、選択的結合因子は、Secs−1ポリペプチド結合パ
ートナー(リガンドまたはレセプター)と相互作用し得、これにより、インビト
ロまたはインビボにおいてSecs−1ポリペプチド活性を阻害または排除する
、抗Secs−1ポリペプチドであり得る。アゴニストおよびアンタゴニスト抗
Secs−1ポリペプチド抗体を含む、選択的結合因子は、当該分野で周知であ
るスクリーニングアッセイによって同定される。
サンプル中でSecs−1ポリペプチドレベルを検出するために有用である他の
試薬を含むキットに関する。このような試薬として、検出可能な標識、ブロッキ
ング血清、ポジティブおよびネガティブコントロールサンプル、ならびに検出試
薬が挙げられ得る。
DNAマイクロアレイ技術は、本発明に従って利用され得ることが理解される
。DNAマイクロアレイは、固体支持体(例えば、ガラス)上に配置された核酸
の小型高密度アレイである。このアレイ内の各細胞またはエレメントは、相補的
核酸配列(例えば、mRNA)とハイブリダイゼーションするための標識として
作用する、単一の核酸種の多数のコピーを含む。DNAマイクロアレイ技術を使
用する発現プロファイリングにおいて、mRNAは、細胞サンプルまたは組織サ
ンプルからまず抽出され、次いで、蛍光標識されたcDNAに酵素学的に変換さ
れる。この材料は、マイクロアレイにハイブリダイズされ、そして未結合のcD
NAは、洗浄により除去される。次いで、このアレイ上に提示される個々の遺伝
子の発現は、各標的核酸分子に特異的に結合する、標識されたcDNAの量を定
量することによって可視化される。このようにして、数千の遺伝子の発現が、生
物学的材料の単一サンプルから、高スループットの並行様式で定量され得る。
連して広範な用途を有し、これらとしては、以下が挙げられるが、これに限定さ
れない:治療のための標的としての、Secs−1疾患関連遺伝子の同定および
確認;関連するSecs−1分子およびそのインヒビターの分子毒性学;臨床試
験のための集団の階層化および代理マーカーの産生;および高スループットスク
リーニングにおいて、選択化合物の同定を援助することによって、関連するSe
cs−1ポリペプチド低分子薬物の発見を増強すること。
Secs−1ポリペプチドの化学的に改変された誘導体は、本明細書中の開示
を考慮して、当業者によって調製され得る。Secs−1ポリペプチド誘導体は
、このポリペプチドに自然に結合した分子の型または位置のいずれかで、異なる
様式で改変される。誘導体は、1以上の自然に結合した化学的な基の欠失によっ
て形成される分子を含み得る。配列番号2もしくは配列番号5のいずれかのアミ
ノ酸配列を含むポリペプチド、または他のSecs−1ポリペプチドは、1以上
のポリマーの共有結合によって改変され得る。例えば、選択されるポリマーは、
代表的に水溶性であり、その結果、このポリマーが結合するタンパク質は、水環
境(例えば、生理学的な環境)下で沈殿しない。ポリマーの混合物が、適切なポ
リマーの範囲内に含まれる。好ましくは、最終生成物の調製物の治療的使用のた
めに、このポリマーは、薬学的に受容可能である。
り得る。このポリマーの各々は、代表的に、約2kDaと約100kDaとの間
の平均分子量を有する(この用語「約(およそ)」は、水溶性ポリマーの調製の
際に、幾つかの分子は上記の分子量より多く、幾つかの分子は上記の分子量より
少ない重量を有することを示す)。各ポリマーの平均分子量は、好ましくは、約
5kDaと約50kDaの間、より好ましくは、約12kDaと約40kDaと
の間、そして最も好ましくは、約20kDaと約35Daとの間である。
らに限定されない:N結合型またはO結合型の炭水化物、糖、ホスフェート、ポ
リエチレングリコール(PEG)(これは、モノ−(C1−C10)、アルコキ
シ−、またはアリールオキシ−ポリエチレングリコールを含む、タンパク質を誘
導体化するために使用されるPEGの形態を含む)、モノメトキシ−ポリエチレ
ングリコール、デキストラン(例えば、低分子量(例えば、約6kD)のデキス
トラン)、セルロース、または他の炭水化物ベースのポリマー、ポリ−(N−ビ
ニルピロリジン)ポリエチレングリコール、プロピレングリコールホモポリマー
、ポリプロピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチル化
ポリオール(例えば、グリセロール)、およびポリビニルアルコール。共有結合
したSecs−1ポリペプチドマルチマーを調製するために使用され得る、二官
能性架橋分子もまた、本発明に含まれる。
せるために使用される任意の適切な条件下で、実施され得る。ポリペプチドの化
学的誘導体を調製するための方法は、一般に、以下の工程を包含する:(a)配
列番号2もしくは配列番号5のいずれかのアミノ酸配列を含むポリペプチド、ま
たは他のSecs−1ポリペプチドが、1以上のポリマー分子に結合する条件下
で、活性化したポリマー分子(例えば、ポリマー分子の反応性エステル誘導体ま
たはアルデヒド誘導体)とポリペプチドとを反応させる工程、および(b)反応
生成物を得る工程。最適な反応条件は、既知のパラメータおよび所望の結果に基
づいて決定される。例えば、ポリマー分子のタンパク質に対する比が大きくなる
ほど、結合したポリマー分子の割合も大きくなる。1実施形態において、Sec
s−1ポリペプチド誘導体は、アミノ末端に単一ポリマー分子部分を有し得る。
例えば、米国特許第5,234,784号を参照のこと。
反応のいずれかを使用して特異的に実施され得る。このような反応は、例えば、
以下の参考文献に記載されている:Francisら,1992,Focus
on Growth Factors 3:4−10;欧州特許第015431
6号および同第0401384号;ならびに米国特許第4,179,337号。
例えば、ペグ化は、本明細書中に記載されるように、反応性ポリエチレングリコ
ール分子(または、類似の反応性水溶性ポリマー)とのアシル化反応またはアル
キル化反応を介して実施され得る。アシル化反応のために、選択されたポリマー
は、単一の反応性エステル基を有すべきである。還元アルキル化のために、選択
されたポリマーは、単一の反応性アルデヒド基を有すべきである。例えば、反応
性アルデヒドは、ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒド(これは水安定
性である)またはそのモノC1−C10アルコキシ誘導体もしくはアリールオキ
シ誘導体である(米国特許第5,252,714号を参照のこと)。
結され得る。次いで、このビオチン/Secs−1ポリペプチド分子は、アビジ
ンに結合されて、4価のアビジン/ビオチン/Secs−1ポリペプチド分子が
得られる。Secs−1ポリペプチドはまた、ジニトロフェノール(DNP)ま
たはトリニトロフェノール(TNP)に共有結合され得、そして得られる結合体
は、抗DNPまたは抗TNP−IgMと共に沈殿して、10価の十量体の結合体
を形成する。
調節され得る条件は、Secs−1ポリペプチドについて本明細書中に記載され
た条件を含む。しかし、本明細書中に開示されるSecs−1ポリペプチド誘導
体は、非誘導体化分子と比較した場合、さらなる活性、増大または減少した生物
学的活性、あるいは他の特性(例えば、増加または減少した半減期)を有し得る
。
マウス、ラット、または他のげっ歯類;ウサギ、ヤギ、ヒツジ、または他の家
畜のような非ヒト動物であって、ここで、ネイティブなSecs−1ポリペプチ
ドをコードする遺伝子が破壊(すなわち「ノックアウト」)され、その結果、S
ecs−1ポリペプチドの発現レベルが有意に減少しているかまたは完全に消失
している非ヒト動物が、さらに本発明の範囲内に含まれる。このような動物は、
米国特許第5,557,032号に記載されるような技術および方法を使用して
調製され得る。
たは他の家畜のような非ヒト動物であって、この動物のSecs−1遺伝子の天
然の形態または異種Secs−1遺伝子のいずれかが、この動物によって過剰発
現され、これによって、「トランスジェニック」動物を作製する、非ヒト動物を
さらに含む。このようなトランスジェニック動物は、米国特許第5,489,7
43号およびPCT公開番号WO94/28122号に記載されるような周知の
方法を使用して調製され得る。
上が(例えば、相同組換え方法を使用することによって)活性化されるか、また
は不活化されるかのいずれかによって、ネイティブSecs−1ポリペプチドの
1以上の発現のレベルが改変された、非ヒト動物をさらに含む。
のようなスクリーニングにおいて、動物での薬物候補物の影響が測定され得る。
例えば、薬物候補物は、Secs−1遺伝子の発現を減少または増加させ得る。
特定の実施形態において、産生されるSecs−1ポリペプチドの量は、動物を
薬物候補物に曝露した後に測定され得る。さらに、特定の実施形態において、動
物での薬物候補物の実際の影響を検出し得る。例えば、特定の遺伝子の過剰発現
は、疾患状態または病理学的状態を生じ得るか、またはこれらに関連し得る。こ
のような場合において、薬物候補物が遺伝子の発現を減少させる能力あるいは薬
物候補物が病理学的状態を防止または阻害する能力を試験し得る。他の例におい
て、ポリペプチドのフラグメントのような、特定の代謝産物の産生により、疾患
状態または病理学的状態を生じ得るか、またはこれらに関連し得る。このような
場合において、薬物候補物がこのような代謝産物の産生を減少させる能力あるい
は薬物候補物が病理学的状態を防止または阻害する能力を試験し得る。
いくつかの状態において、Secs−1ポリペプチドの活性のモジュレーター
である分子(すなわち、アゴニストまたはアンタゴニスト)を同定することが所
望され得る。Secs−1ポリペプチドを調節する天然または合成の分子は、本
明細書中に記載されるスクリーニングアッセイのような、1以上のスクリーニン
グアッセイを使用して同定され得る。このような分子は、エキソビボ様式または
インビボ様式のいずれかで、注射、または経口送達、移植デバイスなどによって
投与され得る。
増加または減少させる)ための能力について評価する分子をいう。最も一般的に
、試験分子は、Secs−1ポリペプチドと直接的に相互作用する。しかし、試
験分子はまた、例えば、Secs−1遺伝子発現に影響を与えることによって、
またはSecs−1ポリペプチド結合パートナー(例えば、レセプターまたはリ
ガンド)に結合することによって、Secs−1ポリペプチド活性を直接的に調
節し得ることも意図される。1実施形態において、試験分子は、少なくとも約1
0−6M、好ましくは、約10−8M、より好ましくは、約10−9M、そして
さらにより好ましくは約10−10Mの親和性定数(affinity con
stant)でSecs−1ポリペプチドと結合する。
発明によって包含される。特定の実施形態において、Secs−1ポリペプチド
は、試験分子とSecs−1ポリペプチドとの相互作用が可能な条件下で、試験
分子と共にインキュベートされ、そして相互作用の程度が測定される。試験分子
は、実質的に精製された形態または粗製の混合物中でスクリーニングされ得る。
ゴニストは、Secs−1ポリペプチドと相互作用して、その活性を調節する、
タンパク質、ペプチド、炭水化物、脂質、または低分子量の分子であり得る。S
ecs−1ポリペプチドの発現を調節する分子は、Secs−1ポリペプチドを
コードする核酸と相補的であるか、またはSecs−1ポリペプチドの発現を指
向もしくは制御する核酸配列に対して相補的であって、かつ発現のアンチセンス
調節因子として作用する核酸を含む。
、この分子は、Secs−1ポリペプチド活性を増加または減少させる能力につ
いてさらに評価され得る。試験分子とSecs−1ポリペプチドとの相互作用の
測定は、いくつかの形態で実施され得、これには、細胞ベースの結合アッセイ、
膜結合アッセイ、溶液相アッセイ、および免疫アッセイが挙げられる。一般に、
試験分子は、特定の期間、Secs−1ポリペプチドと共にインキュベートされ
、そしてSecs−1ポリペプチド活性が、生物学的活性を測定するために1以
上のアッセイによって決定される。
いて、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体を使用して直接的にアッセ
イされ得る。あるいは、本明細書中に記載されるようなエピトープタグを含むS
ecs−1ポリペプチドの改変形態は、溶液および免疫アッセイ中で使用され得
る。
ガンド)との相互作用を介して、生物学的活性を示す場合において、種々のイン
ビトロアッセイが、対応する結合パートナー(例えば、選択的結合因子、レセプ
ター、またはリガンド)へのSecs−1ポリペプチドの結合を測定するために
使用され得る。これらのアッセイは、結合パートナーに対するSecs−1ポリ
ペプチドの結合の速度および/または結合程度を増加または減少させる能力につ
いて、試験分子をスクリーニングするために使用され得る。1つのアッセイにお
いて、Secs−1ポリペプチドは、マイクロタイタープレートのウェル中に固
定化される。次いで、放射標識したSecs−1ポリペプチド結合パートナー(
例えば、ヨウ素化したSecs−1ポリペプチド結合パートナー)および試験化
合物は、このウェルに、一時に一方を(いずれかの順序で)または同時に添加さ
れ得る。インキュベーション後に、このウェルを洗浄し、そしてシンチレーショ
ン計数器を使用して、放射能を計数して、結合パートナーがSecs−1ポリペ
プチドに結合した程度を決定し得る。代表的に、分子は、ある濃度範囲にわたっ
て試験され、そして試験アッセイの1以上の要素を欠く一連のコントロールウェ
ルは、結果の評価において正確性に関して使用され得る。この方法の代わりは、
タンパク質の「位置」を逆にする工程(すなわち、マイクロタイタープレートウ
ェルにSecs−1ポリペプチド結合パートナーを固定化し、試験分子および放
射標識したSecs−1ポリペプチドをインキュベートし、そしてSecs−1
ポリペプチド結合の程度を決定する工程)を包含する。例えば、Current
Protocols in Molecular Biology、第18章
(Ausubelら編、Green Publishers Inc.およびW
iley and Sons 1995)を参照のこと。
トナーは、ビオチンへと結合体化され得、次いで、ビオチン化されたタンパク質
の存在が、酵素(例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)またはアルカ
リホスファターゼ(AP))に結合したストレプトアビジンを使用して検出され
得、これらは、比色定量的に検出され得るか、またはストレプトアビジンの蛍光
タグ化によって検出され得る。Secs−1ポリペプチドに対する抗体またはS
ecs−1ポリペプチド結合パートナーに対する抗体(これらは、ビオチンに結
合されている)もまた、APまたはHRPに連結した酵素連結ストレプトアビジ
ンとの複合体のインキュベーションに続いて、検出の目的のために使用され得る
。
また、アガロースビーズ、アクリルビーズ、または他の型のこのような不活性な
固相基材への付着によって固定化され得る。基材−タンパク質複合体は、相補タ
ンパク質および試験化合物を含む溶液内に配置され得る。インキュベーション後
、これらのビーズは、遠心分離によって沈澱され得、そしてSecs−1ポリペ
プチドとその結合パートナーとの間の結合の量が、本明細書中に記載の方法を使
用して評価され得る。あるいは、基材−タンパク質複合体はカラム内に固定化さ
れ得、試験分子および相補タンパク質はカラムを通過し得る。Secs−1ポリ
ペプチドトとその結合パートナーとの間の複合体の形成が、次いで、本明細書中
に記載の技術(例えば、放射標識または抗体結合)のいずれかを使用して評価さ
れ得る。
ートナーとの間の複合体の形成を増加または減少させる試験分子を同定するため
に有用な別のインビトロアッセイは、表面プラズモン共鳴検出器システム(例え
ば、BIAcoreアッセイシステム(Pharmacia,Piscataw
ay,NJ))である。BIAcoreシステムは、製造業者によって特定され
るように利用される。このアッセイは、本質的に、Secs−1ポリペプチドま
たはSecs−1ポリペプチド結合パートナーのいずれかの、デキストランでコ
ートされたセンサーチップ(これは、検出器に存在する)への共有結合を含む。
次いで、この試験化合物および他の相補タンパク質が、同時にかまたは連続的に
かのいずれかで、センサーチップを含むチャンバーに注入され得る。結合する相
補タンパク質の量は、センサーチップのデキストランコート側面に物理的に関係
する分子の質量の変化に基づいて評価され得、この分子の質量の変化は、検出器
システムによって測定される。
ペプチドとSecs−1ポリペプチド結合パートナーとの間の複合体の形成を増
加または減少させるそれらの能力について評価することが所望され得る。これら
の場合において、本明細書中に記載のアッセイは、第一の試験化合物と同時にか
、またはそれに続いてのいずれかで、このようなさらなる試験化合物を添加する
ことによって容易に改変され得る。このアッセイにおける残りの工程は、本明細
書中に記載される通りである。
1ポリペプチドとSecs−1ポリペプチド結合パートナーとの間の複合体の形
成に対する効果について、多数の化合物をスクリーニングするために、有利に使
用され得る。これらのアッセイは、ファージディスプレイ、合成ペプチド、およ
び化学合成ライブラリーにおいて生成された化合物をスクリーニングするために
、自動化され得る。
の複合体の形成を増加または減少される化合物はまた、Secs−1ポリペプチ
ドまたはSecs−1ポリペプチド結合パートナーのいずれかを発現する細胞お
よび細胞株を使用して、細胞培養物においてスクリーニングされ得る。細胞およ
び細胞株は、任意の哺乳動物から得られ得るが、好ましくは、ヒト、または他の
霊長類、イヌまたはげっ歯類の供給源由来である。Secs−1ポリペプチドの
、Secs−1ポリペプチド結合パートナーを発現する細胞への、その表面での
結合は、試験分子の存在または非存在下で評価され、そして結合の程度が、例え
ば、Secs−1ポリペプチド結合パートナーに対するビオチン化抗体を使用す
るフローサイトメトリーによって決定され得る。細胞培養アッセイは、本明細書
中に記載されるタンパク質結合アッセイにおいて、陽性であるとスコア付けされ
る化合物をさらに評価するために有利に使用され得る。
。例えば、薬物候補は、Secs−1遺伝子の発現を減少または増加させ得る。
特定の実施形態において、生成されるSecs−1ポリペプチドまたはSecs
−1ポリペプチドフラグメントの量は、細胞培養物の薬物候補への曝露の後に測
定され得る。特定の実施形態において、細胞培養物に対する薬物候補の実質的な
影響を検出し得る。例えば、特定の遺伝子の過剰発現は、細胞培養物に対する特
定の影響を有し得る。このような場合に、遺伝子の発現を増加または減少させる
薬物候補の能力、または細胞培養物に対する特定の影響を予防または阻害するそ
の能力を試験し得る。他の例において、特定の代謝産物(例えば、ポリペプチド
のフラグメントなど)の生成が、疾患または病的状態を生じ得るか、またはそれ
らと関連し得る。このような場合、細胞培養物におけるこのような代謝産物の生
成を減少させる薬物候補の能力を試験し得る。
tatタンパク質配列(HIV由来)が、タンパク質を細胞内に内部移行させ
るために、使用され得る。例えば、Falwellら、1994、Proc.N
atl.Acad.Sci.U.S.A.91:664−68を参照のこと。例
えば、HIV tatタンパク質の11アミノ酸の配列(Y−G−R−K−K−
R−R−Q−R−R−R;配列番号12)(「タンパク質形質導入ドメイン」、
またはTAT PDTを称される)は、細胞の細胞質膜および核膜を横切る送達
を媒介するとして記載されている。Schwarzeら,1999,Scien
ce 285:1569−72;およびNagaharaら,1998,Nat
.Med.4:1449−52を参照のこと。これらの手順において、FITC
構築物(FITC標識G−G−G−G−Y−G−R−K−K−R−R−Q−R−
R−R;配列番号13)(これは、腹腔内投与に続いて組織を貫通する)が調製
され、そしてこのような構築物の細胞への結合が、蛍光活性化細胞分離(FAC
S)分析によって検出される。tat−β−gal融合タンパク質で処置された
細胞は、β−gal活性を示す。注射に続いて、このような構築物の発現が、多
くの組織(肝臓、腎臓、肺、心臓および脳組織を含む)において検出され得る。
このような構築物は、細胞に入るためにある程度の変性を受け、そしてそれ自体
、細胞内への移入に続いて、再折り畳みを必要とし得ると考えられる。
るために使用され得ることが理解される。例えば、tatタンパク質配列を使用
して、Secs−1アンタゴニスト(例えば、抗Secs−1選択的結合因子、
低分子、可溶性レセプター、またはアンチセンスオリゴヌクレオチド)は、Se
cs−1分子の活性を阻害するために、細胞内投与され得る。本明細書中で使用
される場合、用語「Secs−1分子」は、本明細書中に記載されるような、S
ecs−1核酸分子およびSecs−1ポリペプチドの両方をいう。所望ならば
、Secs−1タンパク質自体もまた、これらの手順を使用して、細胞に内部投
与され得る。Straus,1999,Science 285:1466−6
7もまた参照のこと。
本発明の特定の実施形態に従って、Secs−1ポリペプチドと関連する特定
の細胞型の供給源を決定し得ることが有用であり得る。例えば、適切な治療を選
択する際の補助として疾患または病的状態の起源を決定することが有用であり得
る。特定の実施形態において、Secs−1ポリペプチドをコードする核酸は、
プローブとして使用されて、このようなプローブを用いて細胞の核酸をスクリー
ニングすることによって、本明細書中に記載の細胞を同定し得る。他の実施形態
において、抗Secs−1ポリペプチド抗体を使用して、細胞におけるSecs
−1ポリペプチドの存在について試験し得、従って、このような細胞が本明細書
中に記載される型の細胞か否かを決定し得る。
治療組成物は、本発明の範囲内である。このようなSecs−1ポリペプチド
薬学的組成物は、治療有効量のSecs−1ポリペプチドまたはSecs−1核
酸分子を、投与の様式と適合するように選択される薬学的にまたは生理学的に受
容可能な処方薬剤と混合して含み得る。薬学的組成物は、治療有効量の1以上の
Secs−1ポリペプチド選択的結合因子を、投与の様式と適合するように選択
される薬学的にまたは生理学的に受容可能な処方薬剤と混合して含み得る。
ピエントに対して非毒性である。
、無菌性、安定性、解離または放出の速度、吸着、または組成物の浸透を改変、
維持または保存するための処方物材料を含み得る。適切な処方物材料としては、
以下が挙げられるが、これらに限定されない:アミノ酸(例えば、グリシン、グ
ルタミン、アスパラギン、アルギニン、またはリジン)、抗菌剤、抗酸化剤(例
えば、アスコルビン酸、亜硫酸ナトリウム、または亜硫酸水素ナトリウム(so
dium hydrogen−sulfite))、緩衝液(例えば、ホウ酸塩
、重炭酸塩、Tris−HCl、クエン酸塩、リン酸塩、または他の有機酸)、
バルキング剤(例えば、マンニトールまたはグリシン)、キレート剤(エチレン
ジアミン四酢酸(EDTA))、錯化剤(例えば、カフェイン、ポリビニルピロ
リドン、β−シクロデキストリン、またはヒドロキシプロピル−β−シクロデキ
ストリン)、フィラー、単糖類、二糖類、および他の炭水化物(例えば、グルコ
ース、マンノースまたはデキストリン)、タンパク質(例えば、血清アルブミン
、ゼラチン、または免疫グロブリン)、着色剤、香味剤および希釈剤、乳化剤、
親水性ポリマー(例えば、ポリビニルピロリドン)、低分子量ポリペプチド、塩
形成対イオン(例えば、ナトリウム)、保存剤(例えば、塩化ベンザルコニウム
、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベ
ン、プロピルパラベン、クロルヘキシジン、ソルビン酸、または過酸化水素)、
溶媒(例えば、グリセリン、プロピレングリコール、またはポリエチレングリコ
ール)、糖アルコール(例えば、マンニトールまたはソルビトール)、懸濁剤、
界面活性剤または湿潤剤(例えば、プルオニック(pluronic);PEG
;ソルビタンエステル;ポリソルビテート(例えば、polysorbate
20またはpolysorbate 80);トリトン;トロメタミン;レシチ
ン;コレステロールまたはチロキサポール(tyloxapal))、安定性増
強剤(例えば、スクロースまたはソルビトール)、張度増強剤(例えば、ハロゲ
ン化アルカリ金属(好ましくは塩化ナトリウムまたは塩化カリウム)、またはマ
ンニトール、ソルビトール)、送達ビヒクル、希釈剤、賦形剤および/または薬
学的なアジュバント。Remington’s Pharmaceutical
Sciences(第18版,A.R.Gennaro,編,Mack Pu
blishing Company 1990を参照のこと。
形式、および所望の投薬量に依存して決定される。例えば、Remington
’s Pharmaceutical Sciences,前出を参照のこと。
このような組成物は、Secs−1分子の、物理的な状態、安定性、インビボ放
出の速度、およびインビボクリアランスの速度に影響し得る。
非水性のいずれかであり得る。例えば、注射のための適切なビヒクルまたはキャ
リアは、水、生理学的な生理食塩水溶液、または人工脳脊髄液であり得、おそら
く非経口投与のための組成物において一般的な他の材料で補充されている。中性
の緩衝化生理食塩水または血清アルブミンと混合された生理食塩水は、さらなる
例示的なビヒクルである。他の例示的な薬学的組成物は、約pH7.0〜8.5
のTris緩衝液または約pH4.0〜5.5の酢酸塩緩衝液を含み、これはさ
らに、ソルビトールまたは適切な置換物を含み得る。本発明の1つの実施形態に
おいて、Secs−1ポリペプチド組成物は、所望の程度の純度を有する選択さ
れた組成物を、任意の処方薬剤(Remington’s Pharmaceu
tical Sciences,前出)と混合することによって、凍結乾燥ケー
クまたは水溶液の形態で、保存のために調製され得る。さらに、Secs−1ポ
リペプチド産物は、スクロースのような適切な賦形剤を使用して凍結乾燥物とし
て処方され得る。
れ得る。あるいは、これらの組成物は、吸入または消化管を介する送達(例えば
、経口的に)のために、選択され得る。このような薬学的に受容可能な組成物の
調製は、当該分野の技術範囲内にある。
理学的pHまたは僅かに低いpH(典型的に、約5〜約8のpH範囲内)にこの
組成物を維持するために使用される。
学的に受容可能なビヒクルに所望のSecs−1分子を含む、発熱物質を含まな
い非経口的に受容可能な水溶液の形態であり得る。非経口注射のために特に適切
なビヒクルは、滅菌蒸留水であり、ここで、Secs−1分子が、滅菌の等張溶
液として処方され、適切に保存される。なお別の調製物は、所望の分子と、薬剤
(例えば、注射可能なミクロスフィア、生体腐食性(bio−erodible
)粒子、ポリマー化合物(ポリ乳酸またはポリグリコール酸)、ビーズまたはリ
ポソーム)との処方物を含み得、これは、次いで蓄積注射を介して送達され得る
産物の制御されたまたは持続された放出を提供する。ヒアルロン酸がまた、使用
され得、そしてこれは、循環において、維持された持続時間を促進する効果を有
し得る。所望の分子の導入のための他の適切な手段は、移植可能な薬物送達デバ
イスを含む。
ば、Secs−1ポリペプチドは、吸入のための乾燥粉末として処方され得る。
Secs−1ポリペプチドまたは核酸分子の吸入溶液はまた、エアロゾル送達の
ための噴霧体と共に処方され得る。なお別の実施形態において、溶液が噴霧され
得る。肺投与が、PCT公開番号WO94/20069にさらに記載され、これ
は化学的に改変されたタンパク質の肺送達を記載する。
施形態において、この様式で投与されるSecs−1ポリペプチドが、固体投薬
形態(例えば、錠剤またはカプセル)の調合において慣用的に使用されるキャリ
アを伴うか、または伴わず処方され得る。例えば、カプセルは、バイオアベイラ
ビリティーが最大化され、そして前全身分解が最小化される場合、胃腸管内の点
で処方物の活性部分を放出するように設計され得る。さらなる薬剤が、Secs
−1ポリペプチドの吸収を容易にするために含まれ得る。希釈剤、香味剤、低融
点ワックス、植物油、潤滑剤、懸濁剤、錠剤崩壊剤、および結合剤もまた、使用
され得る。
量のSecs−1ポリペプチドを含み得る。錠剤を滅菌水または別の適切なビヒ
クルに溶解することによって、溶液が、単位用量形態で調製され得る。適切な賦
形剤としては以下が挙げられるが、これらに限定されない:不活性な希釈剤(例
えば、炭酸カルシウム、炭酸ナトリウムまたは重炭酸ナトリウム、ラクトース、
あるいはリン酸カルシウム);または結合剤(例えば、デンプン、ゼラチンまた
はアカシア);あるいは潤滑剤(例えば、ステアリン酸マグネシウム、ステアリ
ン酸またはタルク)。
これらとしては、持続または制御送達処方物中にSecs−1ポリペプチドを含
む処方物が挙げられる。種々の他の持続または制御送達手段(例えば、リポソー
ムキャリア、生体腐食性微粒子あるいは多孔性ビーズおよび蓄積注射)を処方す
るための技術もまた、当業者に公知である。例えば、PCT/US93/008
29(これは、薬学的組成物の送達のための多孔性ポリマー性微粒子の制御放出
を記載する)を参照のこと。
ム、またはマイクロカプセル)の半透過性ポリマーマトリックスが挙げられる。
徐放性マトリックスとしては、ポリエステル、ヒドロゲル、ポリラクチド(米国
特許第3,773,919号および欧州特許第058481号)、L−グルタミ
ン酸とγエチル−L−グルタメートとのコポリマー(Sidmanら,1983
,Biopolymers 22:547−56)、ポリ(2−ヒドロキシエチ
ル−メタクリレート)(Langerら,1981,J.Biomed.Mat
er.Res.15:167−277およびLanger,1982,Chem
.Tech.12:98−105)、エチレンビニルアセテート(Langer
ら,前出)またはポリ−D(−)−3−ヒドロキシ酪酸(欧州特許第13398
8号)が挙げられる。徐放性組成物はまた、リポソームを含み得、これは、当該
分野で公知のいくつかの方法のいずれかによって調製され得る。例えば、Epp
steinら,1985,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 8
2:3688−92;および欧州特許第036676号、同第088046号、
および同第143949号を参照のこと。
でなければならない。これは、滅菌濾過膜を介する濾過によって達成され得る。
組成物が凍結乾燥される場合、この方法を使用する滅菌は、凍結乾燥および再構
成の前に、またはその後のいずれかで実施され得る。非経口投与のための組成物
は、凍結乾燥された形態または溶液で保存され得る。さらに、非経口組成物は、
一般に、滅菌アクセスポートを有する容器(例えば、静脈内溶液バッグまたは皮
下注射針によって貫通可能なストッパーを有するバイアル)内に配置される。
、ゲル、エマルジョン、固体、または脱水粉末または凍結乾燥粉末として保存さ
れ得る。このような処方物は、すぐに使用できる形態または投与の前に再構成を
必要とする形態(凍結乾燥された形態)のいずれかで保存され得る。
トに関する。このキットは、各々、乾燥タンパク質を有する第一の容器および水
性処方物を有する第二の容器の両方を含み得る。また、本発明の範囲内には、単
一および多チャンバーの予め充填されたシリンジ(例えば、液体シリンジおよび
分散シリンジ(lyosyringe))を含むキットが含まれる。
容および目的に依存する。当業者は、処置のための適切な投薬レベルが、従って
、送達される分子、Secs−1分子が使用されるための指標、投与の経路、お
よび患者のサイズ(体重、体表面、または器官の大きさ)および状態(年齢およ
び一般的な健康)に、部分的に依存して変化することを理解する。従って、臨床
医は、最適な治療効果を得るために、投薬量を力価決定し(titer)、投与
経路を改変し得る。代表的な投薬量は、上記の因子に依存して、約0.1μg/
kg〜約100mg/kg以上までの範囲であり得る。他の実施形態において、
投薬量は、0.1μg/kg〜約100mg/kgまで;または1μg/kg〜
約100mg/kgまで;または5μg/kg〜約100mg/kgまでの範囲
であり得る。
メーターに依存する。典型的に、臨床医は、所望の効果を達成する投薬量に達す
るまで組成物を投与する。従って、組成物は、長期的に単一用量として、2以上
の用量(これは、同量の所望の分子を含んでも、含まなくてもよい)として、あ
るいは移植デバイスまたはカテーテルを介する連続的な注入として、投与され得
る。適切な投薬量のさらなる改良は、当業者によって慣用的になされ、そして当
業者によって慣用的に実施される業務の範囲内である。適切な投薬量は、適切な
用量−応答データの使用を介して確認され得る。
経路;静脈内、腹腔内、脳内(実質内の)、脳室内、筋肉内、眼内、動脈内、門
脈内、または病巣内の経路による注入を介する経路;徐放性システムによる経路
;または移植デバイスによる経路。所望される場合、これらの組成物は、ボーラ
ス注射によって投与され得るか、または注入によって連続的に投与され得るか、
または移植デバイスによって投与され得る。
セル化された膜、スポンジ、または他の適切な材料の移植を介して局所的に投与
され得る。移植デバイスが使用される場合、このデバイスは、任意の適切な組織
または器官に移植され得、そして所望の分子の送達は、拡散、時限放出ボーラス
または連続的な投与を介し得る。
ドの薬学的組成物を使用することが所望され得る。このような例において、患者
から取り出された細胞、組織、または器官が、Secs−1ポリペプチド薬学的
組成物に曝露され、その後にそれらの細胞、組織または器官は患者に移植によっ
て戻される。
法を使用して、Secs−1ポリペプチドを発現し、そして分泌するように遺伝
的に操作された特定の細胞を移植することによって送達され得る。このような細
胞は、動物またはヒト細胞であり得、そして自己、異種、または外因性の細胞で
あり得る。必要に応じて、細胞は、不死化され得る。免疫学的応答の機会を減少
するために、細胞はカプセル化され、周囲の組織の浸潤を回避し得る。カプセル
化材料は、典型的に、生体適合性の半浸透性ポリマー性包囲物または膜であり、
これらは、タンパク質産物の放出を可能にするが、患者の免疫系または周囲の組
織からの他の有害な因子による細胞の破壊を防止する。
、リンパ球、赤血球、軟骨細胞、ニューロンなど)を1つ以上のSecs−1ポ
リペプチドで処理することが、望ましくあり得る。このことは、細胞膜に対して
透過性の形態である場合には、単離された細胞をこのポリペプチドに直接曝露す
ることによって達成され得る。
治療または細胞治療による治療ポリペプチドの産生および送達との両方のための
、細胞および方法(例えば、相同組換えおよび/または他の組換え産生方法)に
関する。相同組換えおよび他の組換えの方法を使用して、通常は転写に対してサ
イレントなSecs−1遺伝子(すなわち、過少発現される遺伝子)を含む細胞
を改変し得、これによって、治療有効量のSecs−1ポリペプチドを発現する
細胞を産生し得る。
異を誘導するか、または修正するために開発された技術である。Kucherl
apati,1989,Prog.in Nucl.Acid Res.& M
ol.Biol.36:301。基本的な技術が、特定の変異を哺乳動物ゲノム
の特定の領域に導入するため(Thomasら、1986,Cell 44:4
19−28;ThomasおよびCapecchi,1987,Cell 51
:503−12;Doetschmanら、1988,Proc.Natl.A
cad.Sci.U.S.A.85:8583−87)、または欠損遺伝子にお
ける特定の変異を修正するため(Doetschmanら、1987,Natu
re 330:576−78)の方法として、開発された。例示的な相同組換え
技術は、米国特許第5,272,071号;欧州特許第9193051号および
同第505500号;PCT/US90/07642、ならびにPCT公開番号
WO 91/09955)に記載されている。
Aに付着させることによって、目的の遺伝子の特定の領域に指向され得る。この
標的DNAは、ゲノムDNAの領域に相補的(相同)であるヌクレオチド配列で
ある。ゲノムの特定の領域に対して相補的な標的DNAの小さな断片は、DNA
複製プロセスの間に、親鎖と接触される。これは、細胞に挿入されてハイブリダ
イズしたDNAの一般的な特性であり、そして従って、共有される相同領域を介
して、内因性DNAの他の断片と組み換わる。この相補鎖が、変異または異なる
配列またはさらなるヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドに付着される場合に
は、これはまた、この組換えの結果として新たに合成された鎖に組み込まれる。
プルーフリーディング機能の結果として、DNAの新たな配列がテンプレートと
して働くことが可能である。従って、移入されたDNAは、ゲノムに組み込まれ
る。
NAの領域(例えば、隣接配列)が、標的DNAのこれらの断片に付着する。例
えば、プロモーター/エンハンサーエレメント、サプレッサ、または外因性転写
調節エレメントが、意図される宿主細胞のゲノムにおいて、所望のSecs−1
ポリペプチドをコードするDNAの転写に影響を与えるのに十分に近位であり、
かつそのような配向で挿入される。制御エレメントは、この宿主細胞ゲノムに存
在するDNAの部分を制御する。従って、所望のSecs−1ポリペプチドの発
現は、Secs−1遺伝子自体をコードするDNAのトランスフェクションによ
ってではなく、むしろ、Secs−1遺伝子の転写のための認識可能なシグナル
を有する内因性遺伝子配列を提供するDNA調節セグメントと結合した標的DN
A(目的の内因性遺伝子と相同の領域を含む)の使用によって、達成され得る。
因性細胞遺伝子)の発現は、予め選択された部位における細胞ゲノムへの相同組
換えを介して、少なくとも調節配列、エキソン、およびスプライスドナー部位を
含むDNAの導入によって、変化される。これらの構成成分は、新たな転写ユニ
ットの産生を実際に生じるような様式で、染色体(ゲノム)DNAに導入される
(ここで、DNA構築物に存在する調節配列、エキソン、およびスプライスドナ
ー部位は、内因性遺伝子に作動可能に連結する)。染色体DNAへのこれらの構
成成分の導入の結果として、所望の内因性遺伝子の発現が変化される。
まの細胞においてサイレントな(発現されていない)遺伝子の活性化(または発
現させる)、ならびに得られたままの細胞において生理学的に有意なレベルでは
発現されない遺伝子の発現の増加を包含する。この実施形態はさらに、調節また
は誘導のパターンを変化させる工程を包含し、その結果、これは、得られたまま
の細胞において生じる調節または誘導のパターンとは異なり、そして得られたま
まの細胞において発現される遺伝子の発現を減少(排除を含む)させる。
加するかまたはこれを引き起こすために相同定組換えが使用され得る1つの方法
は、最初に、相同性組換えを使用して、部位特異的組換え系由来の組換え配列(
例えば、Cre/loxP、FLP/FRT)(Sauer,1994,Cur
r.Opin.Biotechnol.,5:521−27;Sauer,19
93,Methods Enzymol.,225:890−900)を、細胞
の内在性ゲノムSecs−1ポリペプチドコード領域の上流(すなわち、5’)
に配置する工程を包含する。ゲノムSecs−1ポリペプチドコード領域のすぐ
上流に配置された部位に対して相同性の組換え部位を含むプラスミドは、適切な
リコンビナーゼ酵素と共に、改変された細胞株に導入される。このリコンビナー
ゼによって、プラスミドは、このプラスミドの組換え部位を介して、この細胞株
のゲノム内のSecs−1ポリペプチドコード領域のすぐ上流に位置する組換え
部位に組込まれ得る(BaubonisおよびSauer、1993,Nucl
eic Acids Res.21:2025−29;O’Garmanら、1
991,Science 251:1351−55)。転写を増加させることが
知られている任意の隣接配列(例えば、エンハンサー/プロモーター、イントロ
ン、翻訳エンハンサー)は、このプラスミド中に適切に配置される場合、細胞の
内在性Secs−1遺伝子からの新たな(de novo)または増加したSe
cs−1ポリペプチド産生する新たなまたは改変された転写単位を作製するよう
な様式で一体化する。
領域のすぐ上流に配置された細胞株を使用するさらなる方法は、細胞株のゲノム
の他の位置に第2の組換え部位を導入するために相同性組換えを使用することで
ある。適切な組換え酵素は、次いで、二組換え部位細胞株に導入され、組換え現
象(欠失、転化、および転座)を生じ(Sauer,1994,Curr.Op
in.Biotechnol.,5:521−27;Sauer,1993,M
ethods Enxymol.,225:890−900)、これは、細胞の
内在性Secs−1遺伝子からの新規なまたは増加したSecs−1ポリペプチ
ド産生を生じる新しいかまたは改変された転写ユニットを作製する。
加するため、または引き起こすためのさらなるアプローチは、細胞の内在性Se
cs−1遺伝子からの新たなまたは増加したSecs−1ポリペプチドの産生を
生じる様式で、遺伝子(例えば、転写因子)の発現を増加するかまたは引き起こ
し、そして/または遺伝子(例えば、転写リプレッサ)の発現を減少する工程を
包含する。この方法は、天然に存在しないポリペプチド(例えば、転写因子ドメ
インに融合した部位特異的DNA結合ドメインを含むポリペプチド)を、細胞の
内在性Secs−1遺伝子からの新たなまたは増加したSecs−1ポリペプチ
ドの産生が起こるように、細胞に導入する工程を包含する。
築物に関する。特定の実施形態において、例示的なDNA構築物は、以下を含む
:(a)1つ以上の標的配列、(b)制御配列、(c)エキソン、および(d)
不対スプライスドナー部位。DNA構築物中の標的配列は、エレメント(a)〜
(d)の細胞中の標的遺伝子への組込みを指向し、その結果、これらのエレメン
ト(b)〜(d)は、内在性標的遺伝子の配列に作動可能に連結される。別の実
施形態において、DNA構築物は、以下を含む:(a)1つ以上の標的配列、(
b)制御配列、(c)エキソン、(d)スプライスドナー部位、(e)イントロ
ン、および(f)スプライスアクセプター部位。ここで、標的配列は、エレメン
ト(a)〜(f)の組込みを指向し、その結果、これらのエレメント(b)〜(
f)は、内在性遺伝子に作動可能に連結される。標的配列は、相同性組換えが生
じる細胞染色体DNAの予め選択された部位に対して相同性である。この構築物
において、エキソンは、一般的に、制御配列の3’であり、そしてスプライスド
ナー部位は、このエキソンの3’である。
チドの核酸配列)が公知である場合、遺伝子の選択された領域に対して相補的な
DNAの部分は、合成されるか、またはそうでなければ、例えば、目的の領域に
結合している特定の認識部位におけるネイティブのDNAの適切な制限によって
得られ得る。この部分は、細胞に挿入された際に、標的配列として働き、そして
そのゲノム内の相同性領域にハイブリダイズする。このハイブリダイゼーション
が、DNA複製の間に生じる場合、このDNAの部分、およびそれに結合した任
意のさらなる配列は、Okazakiフラグメントとして作用し、そしてDNA
の新たに合成された娘鎖に組み込まれる。従って、本発明は、Secs−1ポリ
ペプチドをコードするヌクレオチドを含み、このヌクレオチドは、標的配列とし
て使用され得る。
生する細胞の移植)もまた企図される。この実施形態は、生物学的に活性な形態
のSecs−1ポリペプチドを合成および分泌し得る細胞を移植する工程を包含
する。このようなSecs−1ポリペプチド産生細胞は、Secs−1ポリペプ
チドの天然産物である細胞であり得るか、または組換え細胞であって、そのSe
cs−1ポリペプチドを産生する能力が、所望のポリペプチドをコードする遺伝
子またはSecs−1ポリペプチドの発現を増大する遺伝子で形質転換すること
によって増大された、組換え細胞であり得る。このような改変は、遺伝子を送達
し、その発現および分泌を促進するために適切なベクターによって達成され得る
。Secs−1ポリペプチドを投与されている患者における強力な免疫学的反応
を最小化するために、異種のポリペプチドの投与と共に生じる場合、Secs−
1ポリペプチドを産生する天然の細胞が、ヒト起源であり、そしてヒトSecs
−1ポリペプチドを産生することが好ましい。同様に、Secs−1ポリペプチ
ドを産生する組換え細胞が、ヒトSecs−1ポリペプチドをコードする遺伝子
を含む発現ベクターで形質転換されることが好ましい。
は非ヒト動物細胞は、生体適合性の半透性ポリマー封入物または膜(これは、S
ecs−1ポリペプチドの放出を可能にするが、患者の免疫系または周辺組織か
らの他の有害な因子による細胞の崩壊を防止する)の形態で患者に移植され得る
。あるいは、Secs−1ポリペプチドをエキソビボで産生するように形質転換
された患者自身の細胞が、このようなカプセル化なしで、患者に直接移植され得
る。
セル化された細胞の調製およびそれらの患者への移植は、慣用的に達成され得る
。例えば、Baetgeら(PCT公開WO95/05452およびPCT/U
S94/09299)は、生物学的に活性な分子の効果的な送達のために遺伝子
操作された細胞を含む膜カプセルを記載する。このカプセルは、生体適合性であ
り、そして容易に取り出し可能である。このカプセルは、哺乳動物宿主に移植さ
れた際に、インビボでダウンレギュレーションに供されないプロモーターに作動
可能に連結された生物学的に活性な分子をコードするDNA配列を含む組換えD
NA分子でトランスフェクトされた細胞をカプセル化する。このデバイスは、生
きた細胞由来の分子のレシピエント内の特定の部位への送達を提供する。さらに
、米国特許第4,892,538号;同第5,011,472号;および同第5
,106,627号を参照のこと。生きた細胞をカプセル化するためのシステム
は、PCT公開WO91/10425(Aebischerら)に記載される。
PCT公開WO91//10470(Aebischerら);Winnら、1
991,Exper.Neurol.113:322−29;Aebische
rら、1991,Exper.Neurol.111:269−75;およびT
rescoら、1992,ASAIO 38:17−23もまた参照のこと。
た想定される。遺伝子治療技術の一例は、構成的または誘発性プロモーターに作
動可能に連結され得るSecs−1ポリペプチドをコードするSecs−1遺伝
子(ゲノムDNA、cDNAおよび/または合成DNAのいずれか)を使用して
、「遺伝子治療DNA構築物」を形成することである。このプロモーターは、内
在性Secs−1遺伝子に対してホモ接合性またはヘテロ接合性であるが、ただ
し、これは、構築物が挿入される細胞または組織型において活性である。遺伝子
治療DNA構築物の他の成分は、必要に応じて、部位特異的組込みのために設計
されるDNA分子(例えば、相同性組換えのために有用な内在性配列)、組織特
異的プロモーター、エンハンサーまたはサイレンサー、親細胞を越える選択的優
性を提供し得るDNA分子、形質転換された細胞を同定するための標識として有
用なDNA分子、ネガティブ選択系、細胞特異的結合因子(例えば、細胞標的化
について)。細胞特異的内部移行因子、ベクターからの発現を増大する転写因子
、およびベクターの産生を可能にする因子を含む。
ターを使用して細胞に導入され得る(エキソビボまたはインビボノいずれか)。
遺伝子治療DNA構築物を導入するための1つの方法は、本明細書中に記載され
るようなウイルスベクターの使用による。特定のベクター(例えば、レトロウイ
ルスベクター)は、DNA構築物を細胞の染色体DNAに送達し、そしてこの遺
伝子は、染色体DNAに組み込まれ得る。他のベクターは、エピソームとして機
能し、そして遺伝子治療DNA構築物は、細胞質に残る。
−1遺伝子の制御された発現のために含められ得る。このようなエレメントは、
適切なエフェクターに応答して刺激される。このようにして、治療的ポリペプチ
ドは、所望の場合に発現され得る。1つの従来の制御手段は、低分子結合ドメイ
ンおよび生物学的プロセスを開始し得るドメインを含むキメラタンパク質(例え
ば、DNA結合タンパク質または転写活性タンパク質)を二量化する低分子二量
化剤またはラパログ(rapalog)の使用を包含する(PCT公開WO96
/41865、WO97/31898およびWO97/31899を参照のこと
)。タンパク質の二量化は、導入遺伝子の転写を開始するために使用され得る。
クラスターとして細胞の内側に貯蔵する方法を使用する。目的の遺伝子は、内在
性小網における凝集タンパク質の保持を生じる、条件的凝集ドメインを含む融合
タンパク質として発現される。貯蔵されたタンパク質は安定であり、そして細胞
の内側で不活性である。しかし、このタンパク質は、条件的凝集ドメインを除去
する薬物(例えば、低分子リガンド)を投与することによって放出され得、それ
により、凝集体またはクラスターを破壊し、その結果、このタンパク質が細胞か
ら分泌され得る。Aridorら、2000,Science 287:816
−17およびRiveraら、2000,Science 287:826−3
0を参照のこと。
系が挙げられるが、これらに限定されない。ミフェプリストン(RU486)が
、プロゲステロンアンタゴニストとして使用される。プロゲステロンアンタゴニ
ストに対する、改変されたプロゲステロンレセプターリガンド結合ドメインの結
合は、2つの転写因子の二量体の形成し、次いで、これらの転写因子が、核に入
ってDNAに結合することによって、転写を活性化する。このリガンド結合ドメ
インは、そのレセプターがその天然のリガンドに結合する能力を排除するよう改
変される。改変されたステロイドホルモンレセプター系は、米国特許第5,36
4,791号ならびにPCT公開番号WO96/40911およびWO97/1
0337に、さらに記載されている。
使用し、これは、エクジソンレセプター(細胞質レセプター)に結合し、そして
このレセプターを活性化する。次いで、このレセプターは、核に転移して、特定
のDNA応答エレメント(エクジソン応答性遺伝子由来のプロモーター)を結合
する。エクジソンレセプターは、転写を開始するための、トランス活性化ドメイ
ン、DNA結合ドメインおよびリガンド結合ドメインを含む。エクジソン系は、
米国特許第5,514,578号ならびにPCT公開番号WO97/38117
、WO96/37609、およびWO93/03162にさらに記載されている
。
ターを使用する。この系は、転写を活性化させるポリペプチドに連結された、変
異tetリプレッサータンパク質DNA結合ドメイン(逆テトラサイクリン調節
トランスアクチベータータンパク質(すなわち、これは、テトラサイクリンの存
在下で、tetオペレーターに結合する)を生じる変異tet R−4アミノ酸
変化)を含む。このような系は、米国特許第5,464,758号、同第5,6
50,298号、および同第5,654,168号に記載されている。
ries Inc.に対する米国特許第5,741,679号および同第5,8
34,186号に記載されている。
ecs−1核酸分子の局所的注射を介してかまたは他の適切なウイルス送達ベク
ターもしくは非ウイルス送達ベクターによって、細胞に導入することにより達成
され得る。Hefti,1994,Neurobiology,25:1418
−35。例えば、Secs−1ポリペプチドをコードする核酸分子は、標的化さ
れた細胞への送達のために、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターに含まれ得
る(例えば、Johnson,PCT公開番号WO95/34670;およびP
CT出願番号PCT/US95/07178を参照のこと)。組換えAAVゲノ
ムは、代表的に、機能的プロモーターおよびポリアデニル化配列に作動可能に連
結されたSecs−1ポリペプチドをコードするDNA配列に隣接する、AAV
逆方向末端反復を含む。
イルスベクター、単純ヘルペスウイルスベクター、レンチウイルスベクター、肝
炎ウイルスベクター、パルボウイルスベクター、パポバウイルスベクター、ポッ
クスウイルスベクター、アルファウイルスベクター、コロナウイルスベクター、
ラブドウイルスベクター、パラミクソウイルスベクター、およびパピローマウイ
ルスベクターが挙げられるが、これらに限定されない。米国特許第5,672,
344号は、組換え神経栄養性HSV−1ベクターを含む、インビボウイルス媒
介遺伝子移入系を記載する。米国特許第5,399,346号は、治療タンパク
質をコードするDNAセグメントを挿入するようインビトロで処理されたヒト細
胞の送達による、患者に治療タンパク質を提供するためのプロセスの例を、提供
する。遺伝子治療技術の実施のさらなる方法および材料は、米国特許第5,63
1,236号(アデノウイルスベクターを含む);米国特許第5,672,51
0号(レトロウイルスベクターを含む);および米国特許第5,635,399
号(サイトカインを発現するレトロウイルスベクターを含む)に記載されている
。
入)、レセプター媒介移入(リガンド−DNA複合体)、エレクトロポレーショ
ン、リン酸カルシウム沈降、および微粒子ボンバードメント(例えば、遺伝子銃
)が挙げられるが、これらに限定されない。遺伝子治療の材料および方法として
はまた、誘導性プロモーター、組織特異的エンハンサー−プロモーター、部位特
異的組み込みのために設計されたDNA配列、親細胞より優れた選択的利点を提
供し得るDNA配列、形質転換された細胞を同定するための標識、ネガティブ選
択系および発現制御系(安全性の尺度)、細胞特異的結合因子(細胞標的化のた
め)、細胞特異的インターナリゼーション因子、およびベクターによる発現を増
強するための転写因子、ならびにベクター作製の方法が挙げられ得る。遺伝子治
療技術の実施のための、このようなさらなる方法および材料は、米国特許第4,
970,154号(エレクトロポレーション技術を含む)、米国特許第5,67
9,559号(遺伝子送達のためのリポタンパク質含有系を記載する)、米国特
許第5,676,954号(リポソームキャリアを含む)、米国特許第5,59
3,875号(リン酸カルシウムトランスフェクションのための方法を記載する
)、米国特許第4,945,050号(生物学的に活性な粒子が、細胞において
、この粒子がこの細胞の表面を貫通しそしてこの細胞の内側に取り込まれる速度
で推進されるプロセス、を記載する)、およびPCT公開番号WO96/409
58(核リガンドを含む)に記載されている。
つ以上のさらなるポリペプチドの送達をさらに含み得ることがまた意図される。
このような細胞は、患者に別々に導入され得るか、またはこれらの細胞は、単一
の移植可能なデバイス(例えば、上記のカプセル化膜)内に含まれ得るか、また
は細胞は、ウイルスベクターによって別々に改変され得る。
させるための手段は、1つ以上のエンハンサーエレメントをSecs−1ポリペ
プチドプロモーターに挿入することであり、ここで、このエンハンサーエレメン
トは、Secs−1遺伝子の転写活性を増加させるよう作用し得る。使用される
エンハンサーエレメントは、遺伝子を活性化することが所望される組織に基づい
て選択される;この組織においてプロモーター活性化を与えることが公知である
エンハンサーエレメントが、選択される。例えば、Secs−1ポリペプチドを
コードする遺伝子がT細胞において「オンにされる」場合には、lckプロモー
ターエンハンサーエレメントが使用され得る。ここで、付加される転写エレメン
トの機能性部分は、標準的なクローニング技術を使用して、Secs−1ポリペ
プチドプロモーターを含むDNAのフラグメントに挿入され得る(そして必要に
応じて、ベクターおよび/または5’および/または3’隣接配列に挿入され得
る)。次いで、この構築物(「相同組換え構築物」として公知)が、エキソビボ
でかまたはインビボでのいずれかで、所望の細胞に導入され得る。
よって、Secs−1ポリペプチド発現を減少させるために、使用され得る。こ
のような改変は、代表的に、相同組換え法を介して達成される。例えば、不活化
について選択されたSecs−1遺伝子のプロモーターの全てまたは一部を含む
DNA分子は、転写を調節するプロモーター片を除去および/または置換するよ
うに、操作され得る。例えば、プロモーターの転写アクチベーターのTATAボ
ックスおよび/または結合部位が、標準的な分子生物学の技術を使用して、欠失
され得る;このような欠失は、プロモーター活性を阻害し得、これによって、対
応するSecs−1遺伝子の転写を抑制する。プロモーターにおけるTATAボ
ックスまたは転写アクチベーター結合部位の欠失は、(調節されるSecs−1
遺伝子と同じ種かまたは関連する種由来の)Secs−1ポリペプチドプロモー
ターの全てまたは関連する部分を含むDNA構築物を生成することによって達成
され得、ここで、1つ以上のTATAボックスおよび/または転写アクチベータ
ー結合部位のヌクレオチドが、1つ以上のヌクレオチドの置換、欠失および/ま
たは挿入を介して変異される。その結果、TATAボックスおよび/またはアク
チベーター結合部位は、活性が減少されているか、または完全に不活性にされて
いる。この構築物はまた、代表的に、その改変されたプロモーターセグメントに
隣接するネイティブな(内因性の)5’および3’DNA配列に対応する、少な
くとも約500塩基のDNAを含む。この構築物は、直接的にかまたは本明細書
中に記載されるようなウイルスベクターを介して、適切な細胞に(エキソビボで
かまたはインビボでかのいずれかで)導入され得る。代表的に、細胞のゲノムD
NAへのこの構築物の組み込みは、相同組換えを介し、ここで、このプロモータ
ー構築物における5’および3’DNA配列は、ハイブリダイゼーションを介す
るその内因性染色体DNAへの改変されたプロモーター領域の組み込みを補助す
るよう作用し得る。
Secs−1核酸分子、ポリペプチド、ならびにそれらのアゴニストおよびア
ンタゴニストは、本明細書中に引用される疾患、障害または状態を含む、多くの
疾患、障害または状態を処置、診断、改善または予防するために使用され得る。
s−1ポリペプチド活性を調節し、そしてSecs−1ポリペプチドの成熟形態
の少なくとも1つの活性を増加または減少する、アゴニスト分子およびアンタゴ
ニスト分子が挙げられる。アゴニストまたはアンタゴニストは、Secs−1ポ
リペプチドと相互作用し、それによってそのSecs−1の活性を調節する、補
因子(例えば、タンパク質、ペプチド、糖質、脂質または低分子量分子)であり
得る。潜在的なポリペプチドアゴニストまたはアンタゴニストとしては、Sec
s−1ポリペプチドの可溶性形態または膜結合形態のいずれかと反応する抗体が
挙げられ、これらの形態は、Secs−1タンパク質の細胞外ドメインの全てま
たは一部を含む。Secs−1ポリペプチド発現を調節する分子としては、代表
的に、発現のアンチセンス調節因子として作用し得る、Secs−1ポリペプチ
ドをコードする核酸が挙げられる。
れるように、胃腸管において主に発現される。この発現パターンに基づいて、S
ecs−1ポリペプチドは、胃腸の発達および機能において役割を果たし得る。
従って、Secs−1核酸分子、ポリペプチド、ならびにそれらのアゴニストお
よびアンタゴニスト(抗Secs−1選択的結合因子を含むが、これに限定され
ない)は、胃腸管を含む疾患の診断および/または処置において有用であり得る
。このような疾患の例としては、胃腸の潰瘍、逆流性食道炎、小児脂肪便症、糖
尿病、虚血再灌流障害、クローン病、炎症性腸疾患、ならびに細菌およびウイル
ス誘導性の感染および大腸炎が挙げられるが、これらに限定されない。さらに、
Secs−1核酸分子、ポリペプチド、ならびにそれらのアゴニストおよびアン
タゴニストは、化学療法または放射線誘導性の胃腸の損傷の処置において有用で
あり得る。胃腸の発達および機能に関連する他の疾患は、本発明の範囲によって
含まれる。
、ポリペプチド、それらのアゴニストおよびアンタゴニスト(抗Secs−1選
択的結合因子を含むが、これに限定されない)はまた、消化または代謝に関与す
る疾患の診断および/または処置のために有用であり得る。このような疾患の例
としては、肥満、胃腸の逆流、憩室炎、憩室症、腸炎、およびえん下困難が挙げ
られるが、これらに限定されない。他のこのような代謝障害は、本発明の範囲に
よって含まれる。
ので、Secs−1核酸分子、ポリペプチド、それらのアゴニストおよびアンタ
ゴニスト(抗Secs−1選択的結合因子を含むが、これに限定されない)はま
た、口腔に関連する疾患の診断および/または処置のために有用であり得る。こ
のような疾患の例としては、歯周病、口腔癌、および化学療法または放射線誘導
性の粘膜炎(mucositis)が挙げられるが、これらに限定されない。口
腔に関連する他の疾患が、本発明の範囲によって含まれる。
、Secs−1ポリペプチドが転移性疾患において役割を果たし得ることを示唆
する。従って、Secs−1核酸分子、ポリペプチド、それらのアゴニストおよ
びアンタゴニスト(抗Secs−1選択的結合因子を含むが、これに限定されな
い)は、癌の診断および/または処置において役割を果たし得る。このような疾
患の例としては、結腸、胃、咽喉、食道、乳房、前立腺、子宮、精巣、または肺
の癌が挙げられるが、これらに限定されない。他の癌および転移性疾患は、本発
明の範囲によって含まれる。
て検出された。従って、Secs−1核酸分子、ポリペプチド、それらのアゴニ
ストおよびアンタゴニスト(抗Secs−1選択的結合因子を含むが、これに限
定されない)は、妊孕性障害の診断および/または処置において役割を果たし得
る。このような疾患の例としては、男性不妊、妊孕性強化、子宮内膜症、類線維
腫(fibroid)、または月経が挙げられるが、これらに限定されない。妊
孕性に関連する他の障害は、本発明の範囲によって含まれる。
モデルにおいて検出された。従って、Secs−1核酸分子、ポリペプチド、そ
れらのアゴニストおよびアンタゴニスト(抗Secs−1選択的結合因子を含む
が、これに限定されない)は、乾癬および創傷治癒の診断および/または処置に
おいて役割を果たし得る。皮膚に関連する他の障害は、本発明の範囲によって含
まれる。
れる状態に適切であるように、1以上のサイトカイン、増殖因子、抗生物質、抗
炎症剤、および/または化学療法剤と組み合わせて(同時にまたは連続的に)使
用され得る。
れる他の疾患は、本発明の範囲内に包含される。所望でないレベルには、Sec
s−1ポリペプチドの過剰なレベルおよびSecs−1ポリペプチドの正常下の
レベルが含まれる。
本発明の核酸分子(それ自体は生物学的に活性なポリペプチドをコードしない
核酸分子を含む)を使用して、Secs−1遺伝子および関連する遺伝子の染色
体上の位置をマッピングし得る。マッピングは、当該分野で公知の技術(例えば
、PCR増幅およびインサイチュハイブリダイゼーション)により行われ得る。
ない核酸分子を含む)は、哺乳動物組織または体液サンプル中のSecs−1核
酸分子の存在について、定性的または定量的のいずれかで試験するための、診断
アッセイにおけるハイブリダイゼーションプローブとして有用であり得る。
が所望される場合に使用され得る。このような阻害は、発現制御配列(三重らせ
ん形成)またはSecs−1 mRNAに相補的でありかつこれらにハイブリダ
イズする核酸分子によりもたらされ得る。例えば、アンチセンスDNA分子また
はRNA分子(これらは、Secs−1遺伝子の少なくとも一部に相補的である
配列を有する)が、細胞中に導入され得る。アンチセンスプローブは、本明細書
中に開示されるSecs−1遺伝子の配列を使用して、利用可能な技術により設
計され得る。代表的には、このようなアンチセンス分子の各々は、選択された各
Secs−1遺伝子の開始部位(5’末端)に相補的である。このアンチセンス
分子が、次いで、対応するSecs−1 mRNAにハイブリダイズする場合、
このmRNAの翻訳は、妨げられるかまたは減少される。アンチセンスインヒビ
ターは、細胞または生物におけるSecs−1ポリペプチドの減少または非存在
に関連する情報を提供する。
ミナントネガティブインヒビターを作製し得る。この状況において、各選択され
たSecs−1ポリペプチドの変異体ポリペプチドをコードするDNAが調製さ
れ得、そして本明細書中に記載されるウイルス方法または非ウイルス方法のいず
れかを使用して患者の細胞中に導入され得る。このような変異体の各々は、代表
的に、その生物学的役割において内因性ポリペプチドと競合するように設計され
る。
ても、免疫原として使用され得、すなわち、これらのポリペプチドは、抗体が惹
起され得る、少なくとも1つのエピトープを含有する。Secs−1ポリペプチ
ドに結合する選択的結合因子(本明細書中に記載されるような)は、インビボお
よびインビトロでの診断目的のために使用され得、これらの目的としては、体液
サンプルまたは細胞サンプル中のSecs−1ポリペプチドの存在を検出するた
めの標識された形態での使用を含むが、これに限定されない。これらの抗体もま
た、本明細書中に列挙される疾患および障害を含む、多数の疾患および障害を、
予防、処置または診断するために使用され得る。これらの抗体は、Secs−1
ポリペプチドの少なくとも1つの活性特徴を減少またはブロックするようにSe
cs−1ポリペプチドに結合し得るか、またはポリペプチドに結合してSecs
−1ポリペプチドの少なくとも1つの活性特徴を増加し得る(Secs−1ポリ
ペプチドの薬物動態を増加させることによるものを含む)。
して、Secs−1ポリペプチドレセプターをクローニングするために使用され
得る。放射性標識(125ヨウ素)したSecs−1ポリペプチドまたはアフィ
ニティ/活性−タグ化Secs−1ポリペプチド(例えば、Fc融合体またはア
ルカリホスファターゼ融合体)を結合アッセイにおいて使用して、Secs−1
ポリペプチドレセプターを発現する細胞型、細胞株または組織を同定し得る。こ
のような細胞または組織から単離されたRNAを、cDNAに変換し、哺乳動物
発現ベクターにクローニングし、そして哺乳動物細胞(例えば、COSまたは2
93細胞)にトランスフェクトして発現ライブラリーを作製し得る。次いで、放
射性標識化またはタグ化Secs−1ポリペプチドを、アフィニティリガンドと
して使用して、Secs−1ポリペプチドレセプターを表面に発現する、このラ
イブラリー中の細胞のサブセットを同定および単離し得る。次いで、DNAを、
これらの細胞から単離しそして哺乳動物細胞にトランスフェクトして、二次発現
ライブラリー(ここで、Secs−1ポリペプチドレセプターを発現する細胞の
画分は、元のライブラリーよりも何倍も高い)を作製し得る。この富化プロセス
は、Secs−1ポリペプチドレセプターを含む単一の組換えクローンが単離さ
れるまで、繰り返し反復され得る。Secs−1ポリペプチドレセプターの単離
は、Secs−1ポリペプチドシグナル伝達経路の新規なアゴニストおよびアン
タゴニストを同定または開発するために有用である。このようなアゴニストおよ
びアンタゴニストとしては、可溶性のSecs−1ポリペプチドレセプター、抗
Secs−1ポリペプチドレセプター抗体、低分子またはアンチセンスオリゴヌ
クレオチドが挙げられ、これらは、本明細書中に記載される1つ以上の疾患また
は障害を、処置、予防、または診断するために使用され得る。
ORT1(Gibco−BRL)およびp7T73D(Pharmacia)に
サブクローニングされ、そして登録番号PTA−1753およびPTA−175
5を有する、cDNAの寄託を、アメリカン タイプ カルチャー コレクショ
ン(バージニア 20110−2209、マナサス、ユニバーシティ ブールバ
ード 10801)にて2000年4月25日に行った。
式でも限定するとは解釈されるべきではない。
ポリペプチド遺伝子のクローニング)
概して、Sambrookら(前出)に記載されるような材料および方法を使
用して、ヒトSecs−1ポリペプチドおよびマウスSecs−1ポリペプチド
をコードする遺伝子をクローン化および分析した。
腫細胞株から得た馴化培地由来の新規ペプチドを同定した。このペプチドを同定
する際に利用したアプローチは、このペプチドが天然に分泌する産物であること
を示唆する。同定されたペプチドのアミノ酸配列を決定し、そしてGenBan
kデータベースと占有(proprietary)データベース(Amgen
dbEST)との両方に存在するEST配列と配列同一性を共有することを見出
した。具体的には、この新規分泌ペプチドのアミノ酸配列は、GenBankデ
ータベース(GenBank登録番号AA283751)に存在するヒトEST
配列に対応するアミノ酸配列と相同性を共有することが見出された。このEST
配列に対応するcDNAクローンを、Integrated Molecula
r Analysis of Genomes and their Expr
ession(I.M.A.G.E.)Consortiumから得た(I.M
.A.G.E.Consortiumクローン番号713624)。このcDN
Aクローンのヌクレオチド配列を決定し、そしてヒトSecs−1遺伝子に対す
る完全コード配列を含むことを見出した。
子が、81アミノ酸のタンパク質をコードし、そしてそのアミノ末端で24アミ
ノ酸長の潜在的なシグナルペプチドを有する243bpのオープンリーディング
フレームを含むことを示した(図2;推定シグナルペプチドを下線により示す)
。図2は、ヒトSecs−1核酸配列のヌクレオチド配列およびヒトSecs−
1ポリペプチドの推定アミノ酸配列を示す。ヒトSecs−1ポリペプチドは、
51位(Asp)においてグリコシル化されることが見出された。
DNAライブラリーからの占有データベースにおいて同定した。マウスSecs
−1ポリペプチドcDNA配列を、以下のように単離した。総RNAを、AC−
6間質細胞株または結腸陰窩組織のいずれかから、TRIzol(登録商標)法
(Gibco−BRL,Rockville,MD)を使用して調製し、Dyn
abeads mRNAキット(Dynal,Lake Success,NY
)を使用して、総RNAからmRNAを単離し、そしてSuperScript
TMシステム(Gibco−BRL)およびNotIオリゴd(T)プライマー
(Gibco−BRL)を使用して、単離されたmRNAから、cDNAを合成
した。cDNA合成に続いて、SalIアダプター(Gibco−BRL)をこ
のcDNAに連結し、このcDNAをNotIで消化し、次いで消化したcDN
Aをアガロースゲルでサイズ選択した。約1.0kb以上のサイズのインサート
を単離し、そしてpSPORT(Gibco−BRL)ベクターに連結した。連
結産物を、DH10Bコンピテント細胞に形質転換し、次いで、選択されたクロ
ーンのヌクレオチド配列を分析した。
遺伝子が、78アミノ酸のタンパク質をコードし、そしてそのアミノ末端で24
アミノ酸長の潜在的なシグナルペプチドを有する234bpのオープンリーディ
ングフレームを含むことを示した(図1;推定シグナルペプチドを下線により示
す)。図1は、マウスSecs−1核酸配列のヌクレオチド配列およびマウスS
ecs−1ポリペプチドの推定アミノ酸配列を示す。
を同定することに加えて、ヒトSecs−1核酸配列およびマウスSecs−1
核酸配列は、以前に報告されたラットEST配列(Henniganら、199
4、Oncogene 9:3591−600)と配列相同性を共有することが
見出された。しかし、Henniganらは、ラットSecs−1核酸配列の一
部のみを開示し、そしてラットSecs−1オルソログについてのオープンリー
ディングフレームを開示しなかった。図3は、全長ラットSecs−1ポリペプ
チド、マウスSecs−1ポリペプチド、およびヒトSecs−1ポリペプチド
のアミノ酸配列アライメントを示す。ヒトとマウスとの両方のSecs−1ポリ
ペプチドに関する推定アミノ酸配列を使用するSwissProtデータベース
のFASTA検索は、有意な相同性を共有する他の配列を何も同定しなかった。
配列を示す。ヒトSecs−1ポリペプチドに対するゲノム配列を、公共に利用
可能なBACクローン(GenBank登録番号AC022389)の分析によ
って決定した。このエキソンの位置およびこのエキソンからの推定アミノ酸配列
を示す(図4A、4D、および4F)。
多数のヒト組織のノーザンブロット(占有か、またはBioSource,H
ayward,CAもしくはClontec,Palo Alto,CAから入
手したかのいずれか)を、32P−dCTP標識した542bpのヒトSecs
−1 PCRフラグメントでプローブした。ヒトSecs−1 PCRプローブ
を、25ngのJurkat細胞cDNA、ヒトSecs−1遺伝子に対応する
アンプリマー(5’−C−C−C−A−A−C−T−C−A−A−C−A−A−
A−C−C−T−G−A−A−A−3’;配列番号14および5’−G−G−G
−A−C−C−A−C−T−G−G−A−T−G−C−T−G−3’;配列番号
15)(各々最終濃度0.2μMで)、2.5単位のTaqポリメラーゼ、20
0μM dNTP、50μCi 32P−dCTP、および1×Tapポリメラ
ーゼ緩衝液を使用して、25μlの総反応容量で調製した。反応を、94℃2分
間で1サイクル;94℃20秒間、57.8℃30秒間、および72℃1分間で
40サイクル;ならびに72℃5分間で1サイクルで実施した。
TX)中42℃で1時間、予備ハイブリダイズし、次いで、約8×104cpm
/μlの標識プローブを含む新鮮なハイブリダイゼーション緩衝液中42℃で一
晩ハイブリダイズした。ハイブリダイゼーションに続いて、このフィルタを、2
×SSPEおよび0.5%SDS中50℃で30分間2回洗浄し、次いで、0.
1×SSPEおよび0.5%SDS中室温で15分間2回洗浄した。次いで、ブ
ロットを、燐光画像機(phosphoimager)を使用して分析した。
腸および前立腺組織において発現されたことを示した。正常結腸におけるSec
s−1 mRNAの発現は、結腸腫瘍における発現より4倍高いことが見出され
、そして正常前立腺組織におけるSecs−1 mRNAの発現は、前立腺腫瘍
における発現より高いことが見出された。
って位置決定した。正常胚組織および成体マウス組織のパネルを、4%パラホル
ムアルデヒドに固定し、パラフィン中に埋包し、そして5μmに切断した。切断
した組織を、0.2M HCl中で透過性にし、Proteinase Kで消
化し、そしてトリエタノールアミンおよび無水酢酸を用いてアセチル化した。切
片を、300mM NaCl、20mM Tris−HCl(pH8.0)、5
mM EDTA、1×デンハルト溶液、0.2% SDS、10mM DTT、
0.25mg/ml tRNA、25μg/mlポリA、25μg/mlポリC
および50%ホルムアミド中60℃で1時間予備ハイブリダイズし、次いで10
%デキストラン、およびマウスSecs−1遺伝子に相補的な2×104cpm
/μlの33P標識した291bpアンチセンスリボプローブを含む同じ緩衝液
中60℃で一晩ハイブリダイズした。
ンビトロ転写によって得た。マウスSecs−1 cDNA配列を、RT−PC
Rによって、MSC2.2.2細胞由来の100μgの総RNA、マウスSec
s−1遺伝子に対応するアンプリマー(5’−A−C−T−C−C−G−G−C
−T−C−C−T−T−C−A−C−T−A−T−G−A−3’;配列番号16
および5’−A−T−G−T−G−G−G−C−A−T−C−A−T−C−A−
A−C−G−C−T−T−T−A−3’;配列番号17)(各々0.2μMの最
終濃度で)、5単位のTaqポリメラーゼ、200μM dNTP、および1×
Taqポリメラーゼ緩衝液を、50μlの総反応容量で使用して、生成した。反
応を、94℃2分間で1サイクル;94℃20秒間および57℃30秒間で40
サイクル;ならびに72℃5分間で1サイクルで実施した。増幅に続いて、PC
R産物をアガロースゲルで分離し、このゲルから切り出し、QIAQuick
Gel Extractionキット(Qiagen,Valencia,CA
)を使用して精製し、そしてpGEM−T(Promega,Madison,
WI)ベクターに連結した。連結産物をDH5−αコンピテント細胞に形質導入
し、そして6つのクローンを、制限酵素消化による分析および配列決定のために
選択した。
で処理してハイブリダイズしていないプローブを消化し、次いで0.1×SSC
中55℃で30分間洗浄した。次いで、切片をNTB−2エマルジョン(Kod
ak,Rochester,NY)に浸漬し、4℃で3週間露光し、現像し、そ
してヘマトキシリンおよびエオシンで対比染色した。組織形態およびハイブリダ
イゼーションシグナルを、暗視野および標準の照射によって、脳(1つの矢状部
分および2つの冠状部分)、胃腸管(食道、胃、十二指腸、空腸、回腸、近位結
腸、および遠位結腸)、下垂体、肝臓、肺、心臓、脾臓、胸腺、リンパ節、腎臓
、副腎、膀胱、膵臓、唾液腺、雄性および雌性の生殖器官(雌性における卵巣、
卵管、および子宮;ならびに雄性における精巣、精巣上体、前立腺、精嚢、およ
び精管)、BATおよびWAT(皮下、腎周)、骨(大腿)、皮膚、乳房、なら
びに骨格筋に対して同時に分析した。
た。胚組織と成体組織との両方において、最も強いシグナルは、胃腸系の上皮細
胞において検出された。成体組織において、強い標識は、頬、腹側の舌、食道、
および大腸の上皮細胞において特に見出された。中程度のシグナルは、遠位回腸
において観察され、そして胃または小腸の近位部分においては発現が検出されな
かった。中程度のレベルの発現は、胚の腸の上皮細胞において検出されたが、強
いシグナルは、発生中の唾液腺において観察された。
管の発生中の精子細胞、子宮のいくらかの部分、および乳頭の上皮細胞において
検出された。中程度のレベルの発現は、皮膚および鼻腔の上皮細胞において検出
された。低レベルの発現もまた、リンパ節、脾臓、胸腺、ならびに前肢の上腕骨
および尺骨において見出された。
かのヒト腫瘍モデルまたは宿主または異種移植片における発現を、インサイチュ
ハイブリダイゼーションによって分析した。マウス創傷治癒モデルおよび乾癬(
薄片状の皮膚)モデルにおける、ヒトSecs−1 mRNAおよびマウスSe
cs−1 mRNAの、いくつかの時点における発現もまた、インサイチュハイ
ブリダイゼーションによって分析した。Secs−1ポリペプチドを、最初にヒ
ト間質細胞および結腸直腸癌腫細胞株由来の馴化培地のプロテオーム解析によっ
て、同定した。先のインサイチュハイブリダイゼーション実験において、口腔粘
膜および胃腸管の上皮層における不連続な標識が観察された。予備研究はまた、
Secs−1遺伝子が結腸腫瘍および前立腺腫瘍においてダウンレギュレートさ
れることを示した。
s−1プローブ配列を含む構築物を、NcoIを用いて直鎖化し、そしてアンチ
センス33P標識RNAプローブを、Sp6 RNAポリメラーゼを使用して、
各構築物から合成した。インサイチュハイブリダイゼーションを、標準的なプロ
トコルを使用して、組織サンプルの5μmの切片(これは浸漬により固定され、
そしてパラフィンに埋没している)を含むスライド上で実施した。組織サンプル
を、55℃で一晩ハイブリダイズし、次いでSSC中で数回洗浄した(0.1×
SSC中55℃で30分間の高ストリンジェンシーの洗浄)。洗浄に続いて、ス
ライドをエマルジョンに3週間曝露し、次いで現像し、そしてヘマトキシリンお
よびエオシンで対比染色した。
の、ヒト類表皮癌腫(A431)異種移植片(図5)、またはヒト前立腺癌腫(
PC−3)およびヒト結腸癌腫(HT−29)の細胞株(図6)における、ヒト
Secs−1 mRNAおよびマウスSecs−1 mRNAの発現を示す。イ
ンサイチュハイブリダイゼーションをまた、ヒト結腸癌腫(HCT−116)細
胞株を使用して実施した。わずかなSecs−1シグナルが、PC−3前立腺腫
瘍(図6、最上列、中央パネルを参照のこと)またはHCT−116結腸腫瘍細
胞株において検出された。中程度のSecs−1 mRNA発現が、HT−29
結腸腫瘍細胞株の小さな集団において観察された(図6、第3列、中央パネルを
参照のこと)。しかし、最も強いSecs−1 mRNA発現は、A431ヒト
類表皮腫瘍異種移植片において検出された(図5、最上列、右側パネルを参照の
こと)。この強いシグナルは、腫瘍塊全体で散乱して見られたが、腫瘍塊の表面
ではなく深部において、より集中しているようであった。わずかなSecs−1
発現が、壊死の領域において見出された。
皮細胞において、強いSecs−1 mRNA発現のパッチを示し(図5、下列
、右側パネル;図6、第2列、中央パネル;図6、最下列、中央パネルを参照の
こと)、増殖中の細胞を示唆する。しかし、選択された異種移植片における増殖
中の細胞に対するBrDu染色は、上皮におけるSecs−1 mRNA発現と
の対応を示さなかった(図6、右側パネル)。同様に、HT−29異種移植片に
おけるBrDu染色は、Secs−1 mRNAを発現する腫瘍性細胞のパッチ
との対応を示さなかった。
A発現事象を考慮して、さらなるインサイチュハイブリダイゼーションを実施し
て、非腫瘍マウス創傷治癒モデルにおける上皮細胞Secs−1 mRNA発現
の一時的な変化を、皮膚穿刺生検に続く3つの時点で、試験した。図7は、この
分析の結果を示す。損傷後3日目および4日目に、強いSecs−1 mRNA
発現が、皮膚潰瘍の縁の増殖中の皮膚表皮において検出され(図7、第1列およ
び第2列)、そしてサンプリングした表皮の大部分を含むように、この損傷から
拡張した。最初の穿刺生検が表皮を除去したので、表皮細胞および従ってシグナ
ルは、これらの初期の時点においては、潰瘍の下において観察されなかった。し
かし、8日目までに、創傷の下の表皮が再生され、そして強いSmacs2 m
RNA発現が検出され、このときシグナルは、損傷の縁へと、そしてそこを超え
て拡張した。
膚のマウス)において試験した。創傷治癒モデルの試験において得られた結果と
は異なり、乾癬モデルは、慢性の、いくらかより組織崩壊する、過剰増殖性の表
皮の存在を示すことがわかった。このモデルにおけるインサイチュハイブリダイ
ゼーションは、正常コントロールにおける検出不可能なレベル(図7、第4列)
と比較して、皮膚上皮細胞において、同じ強いSecs−1 mRNA発現を示
した(図7、最下列)。
(A.細菌におけるSecs−1ポリペプチドの発現)
ヒトSecs−1細菌発現ベクターを調製するために、ヒトSecs−1 c
DNA配列を、最初に、ヒトSecs−1遺伝子に対応する0.4pm/mlの
アンプリマー(5’−A−A−A−T−A−A−C−A−T−A−T−G−A−
A−A−C−G−T−C−G−T−C−C−A−G−C−T−A−A−A−G−
C−C−T−G−G−T−C−A−G−G−C−3’;配列番号18および5’
−G−G−T−G−A−T−G−G−T−G−A−T−G−G−T−G−C−A
−C−C−T−G−T−G−G−G−A−G−T−G−C−C−C−C−3’;
配列番号19)、ならびに2つのReady−To−Go PCRビーズ(Am
ersham Pharmacia Biotech,Piscataway,
NJ)を含む反応混合物(50μlの総反応容量)中での1μgのヒトSecs
−1 cDNAクローンのPCR増幅によって調製した。反応を、94℃2分間
で1サイクル;94℃45秒間、55℃45秒間、および72℃45秒間で30
サイクルで実施した。この反応において生成したPCR産物を、2%アガロース
ゲルでゲル精製した。
で、ヒトSecs−1遺伝子に対応する0.4pm/μlのアンプリマー(5’
−A−A−A−T−A−A−C−A−T−A−T−G−A−A−A−C−G−T
−C−G−T−C−C−A−G−C−T−A−A−A−G−C−C−T−G−G
−T−C−A−G−G−C−3’;配列番号18および5’−G−T−G−G−
T−A−G−T−G−G−T−A−G−T−G−G−T−A−G−T−A−A−
C−T−A−T−C−C−T−A−G−G−T−A−T−T−T−3’;配列番
号20)ならびに2つのReady−To−Go PCRビーズを含む反応混合
物(50μlの総反応容量)中で再増幅した。反応を、94℃2分間で1サイク
ル;94℃45秒間、55℃45秒間、および72℃45秒間で30サイクルで
実施した。再増幅反応において使用したアンプリマー(amplier)を、適
切な制限部位をヒトSecs−1 cDNA配列に組み込むように設計した。
モーターおよびカナマイシン耐性遺伝子を含む)、および第2の増幅反応からの
PCR産物を、Bam HIおよびNde Iを用いて消化した。次いで、この
PCR産物を、ゲル精製して、そしてpAMG21中に連結した。この連結産物
を、エレクトロボレーションにより、GM121(ATCC番号202174)
コンピテント細胞に形質転換し、そしてカナマイシン耐性について形質転換体を
選択した。次いで、選択されたコロニーから単離されたプラスミドDNAを、配
列分析に供した。
2XYT培地(30℃)中でインキュベートした。遺伝子の発現を、N−(3−
オキソヘキサノイル)−dl−ホモセリンラクトンの最終濃度(100ng/m
l)までの添加によって誘導し、続いて、4時間、30℃でインキュベートした
。この培養物を遠心分離し、そして細菌ペレットを再懸濁および溶解し、次いで
SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動により宿主細胞タンパク質を分析する
ことによって、ヒトSecs−1ポリペプチドの発現を評価した。
PCRを用いて、Secs−1ポリペプチドをコードするテンプレートDNA
配列を増幅する。このPCRには、この配列の5’および3’末端に対応するプ
ライマーを用いる。増幅したDNA産物を改変して、発現ベクター内への挿入を
可能にするために制限酵素部位を含むようにし得る。PCR産物をゲル精製し、
そして標準的組み換えDNA方法論を用いて発現ベクター中に挿入する。エプス
タイン−バーウイルス複製起点を含む代表的な発現ベクターであるpCEP4(
Invitrogen,Carlsbad,CA)を、293−EBNA−1細
胞におけるSecs−1ポリペプチドの発現のために用い得る。増幅およびゲル
精製したPCR産物を、pCEP4ベクターに連結し、そしてリポフェクション
によって293−EBNA細胞中に導入する。トランスフェクトした細胞を、1
00μg/mLのハイグロマイシン中で選択し、そして得られた薬物耐性培養物
をコンフルエンスになるまで増殖させる。次いで、この細胞を無血清培地中で7
2時間培養する。馴化培地を取り出し、Secs−1ポリペプチド発現をSDS
−PAGEによって分析する。
ecs−1ポリペプチドを、ペプチドタグに対する抗体を用いてウエスタンブロ
ット分析によって検出可能である、エピトープタグ(例えば、IgG定常ドメイ
ンまたはFLAGエピトープ)を有する融合タンパク質として生成する。
得るか、またはSecs−1融合タンパク質を、エピトープタグに対するアフィ
ニティークロマトグラフィーによって精製し、そして本明細書に記載のようなN
末端アミノ酸配列分析に供する。
リポフェクションまたはリン酸カルシウムプロトコールのいずれかを用いて、
293 EBNA細胞またはCHO細胞中に、Secs−1ポリペプチド発現構
築物を導入する。
ロマイシン選択293 EBNAクローンのプールから大量の馴化培地を生成す
る。この細胞を500cm Nunc Triple Flasks中で、80
%コンフルエンスになるまで培養し、その後、培地を回収する1週間前に無血清
培地に切り換える。馴化培地を回収し、そして精製まで−20℃に凍結する。
る。この培地を解凍し、次いで0.2μmフィルターに通す。プロテインGカラ
ムをPBSでpH7.0に平衡化し、次いで濾過した培地をロードした。このカ
ラムをA280の吸収がベースラインに達するまでPBSで洗浄する。0.1M
Glycine−HClを用いてpH2.7で、Secs−1ポリペプチドを
カラムから溶出し、直ちに1M Tris−HClを用いてpH8.5で中和す
る。Secs−1ポリペプチドを含有する画分をプールし、PBS中で透析し、
そして−70℃で貯蔵した。
いて、アフィニティークロマトグラフィー精製したタンパク質を、50mM T
ris−HCl、100mM NaCl、2mM CaCl2中でpH8.0で
透析する。制限プロテアーゼ第Xa因子を、透析したタンパク質に1/100(
w/w)で添加し、そしてこのサンプルを室温で一晩消化する。
Secs−1ポリペプチドに対する抗体を、HudsonおよびBay、Pr
actical Immunology(第二版、Blackwell Sci
entific Pubilication)に記載される手順を使用して生成
した。具体的に、ウサギを、化学的に合成したSecs−1ペプチド(C−W−
V−V−P−G−A−L−P−Q−I;配列番号21)を用いて、免疫した。免
疫前に、このSecs−1ペプチド配列を、製造業者により提示されたプロトコ
ールに従って、Maleimide Conjugation Buffer(
Pierce Chemical、Rockford、IL)を使用して、K−
L−Hに連結した。ウサギに、Secs−1ペプチドを注射し、次いで、十分な
血清力価レベル(酵素結合イムノソルベント検定法(ELISA)により決定さ
れる)を有するこれらの動物を、ポリクローナル抗体の産生のために選択した。
発現)
Secs−1ポリペプチドの生物学的活性を評価するため、肝臓特異的Apo
Eプロモーターの制御下でSecs−1ポリペプチド/Fc融合タンパク質をコ
ードする構築物を調製する。この構築物の送達により、Secs−1ポリペプチ
ドの機能に関する情報を与える病理的変化を生じることが期待される。同様に、
βアクチンプロモーターの制御下で全長Secs−1ポリペプチドを含む構築物
を調製する。この構築物の送達により、遍在性発現を生じることが期待される。
ドをコードするテンプレートDNA配列を増幅する。このPCRには、所望の配
列の5’および3’末端に対応するプライマーを用いる。そしてこの配列は、発
現ベクター内への増幅産物の挿入を可能にするために制限酵素部位を組み込む。
増幅後、PCR産物をゲル精製し、適切な制限酵素で消化し、そして標準的組み
換えDNA技術を用いて発現ベクター中に連結する。例えば、増幅したSecs
−1ポリペプチド配列を、Grahamら、1997、Nature Gene
tics,17:272〜74およびRayら,1991 Genes Dev
.5:2265〜73に記載のように、ヒトβアクチンプロモーターの制御下で
発現ベクター中にクローニングし得る。
クトロポレーションによって形質転換し、そして形質転換体を、薬物耐性で選択
する。選択したコロニー由来のプラスミドDNAを単離して、DNA配列決定に
供し、適切なインサートの存在および変異が存在しないことを確認する。Sec
s−1ポリペプチド発現ベクターを、2回のCsCl密度勾配遠心分離を通じて
精製し、適切な制限酵素で切断し、そして、Secs−1ポリペプチド導入遺伝
子を含有する直線フラグメントを、ゲル電気泳動によって精製する。精製したフ
ラグメントを、5mM Tris(pH7.4)および0.2mM EDTA中
で、2mg/mLの濃度で、再懸濁する。
O97/23614)のように注射する。胚を、CO2インキュベーター中で一
晩培養し、そして15〜20の2細胞胚を偽妊娠CD1雌性マウスの卵管に移す
。マイクロインジェクションした胚の着床から得た子孫を、以下のように、ゲノ
ムDNAサンプル中に取り込まれた導入遺伝子のPCR増幅でスクリーニングす
る。耳切片を20mLの耳緩衝液(20mM Tris,pH8.0,10mM
EDTA、0.5% SDS、および500mg/mL プロテイナーゼK)
中で、55℃で一晩消化する。次いで、このサンプルを200mLのTEで希釈
し、そして2mLの耳サンプルを、適切なプライマーを用いるPCR反応中で用
いる。
び病理分析のため、屠殺する。脾臓の一部を取り出し、そしてTotal RN
A Extraction Kit(Qiagen)を用いて、脾臓から、総細
胞RNAを単離し、そして導入遺伝子発現を、RT−PCRによって決定する。
脾臓から回収したRNAを、以下のように、SuperScriptTMPre
amplification System(Gibco−BRL)を用いてc
DNAに変換する。適切なプライマー(発現ベクター中のSecs−1ポリペプ
チド導入遺伝子の3’側に位置する)を用いて、導入遺伝子転写物からcDNA
合成をプライムする。トランスジェニック創始動物およびコントロール由来の1
0mgの総脾臓RNAを、1mMのプライマーとともに、10分間70℃でイン
キュベートし、そして氷上に置く。次いで、反応物に、10mM Tris−H
Cl、pH8.3、50mM KCl、2.5mM MgCl2、10mMの各
dNTP、0.1mM DTT、および200UのSuperScriptII
逆転写酵素を補充する。42℃で50分間のインキュベーション後、72℃で1
5分間加熱することによって反応を停止し、2UのRNase Hを用いて20
分間37℃で消化する。次いで、サンプルをSecs−1ポリペプチドに特異的
なプライマーを用いるPCRによって増幅する。
生物学的活性)
安楽死の前に、トランスジェニック動物を計量し、イソフルオロラン(iso
fluorane)によって麻酔し、そして心臓穿刺によって採血する。サンプ
ルを、血液学および血清化学分析に供する。X線撮影を、最終的な放血後に行う
。肉眼での解剖の際に、主な内臓器官を、重量分析に供する。
、生殖器官、皮膚および乳腺、骨、脳、心臓、肺、胸腺、気管、食道、甲状腺、
副腎、膀胱、リンパ節および骨格筋)を取出し、そして10%緩衝化Zn−ホル
マリン中で組織学的検査のために固定する。固定後、組織をパラフィンブロック
中で処理し、そして3mmの切片を得る。全ての切片を、ヘマトキシリンおよび
エオシンで染色し、次いで組織学的分析に供する。
およびパイアー斑を、以下の通りにB細胞特異的抗体およびT細胞特異的抗体を
用いた免疫組織学的分析に供する。ホルマリンで固定したパラフィン包埋切片を
脱パラフィン処理し、そして脱イオン水中で水和する。切片を3%過酸化水素で
クエンチし、Protein Block(Lipshaw,Pittsbur
gh,PA)でブロックし、そしてラットモノクローナル抗マウスB220およ
びCD3(Harlan,Indianapolis,IN)中でインキュベー
トする。抗体結合を、色素原(chromagen)としてDAB(BioTe
k,Santa Barbara,CA)を用いて、ビオチン化ウサギ抗ラット
免疫グロブリンおよびペルオキシダーゼ結合体化ストレプトアビジン(BioG
enex,San Ramon,CA)によって検出する。切片を、ヘマトキシ
リンで対比染色する。
び胸腺のMLNおよび切片を取出す。シリンジの平らな末端を用いて100mm
ナイロン性細胞ストレーナー(Becton Dickinson,Frank
lin Lakes,NJ)の底に対してこの組織を穏やかに粉砕することによ
って単細胞懸濁物を調製する。細胞を2回洗浄し、計数し、次いで各組織由来の
約1×106細胞を、20μL容量において0.5μg CD16/32(Fc
γIII/II)Fcブロックで10分間インキュベートする。次いで、サンプ
ルを、FITCまたはPEに結合体化した、CD90.2に対するモノクローナ
ル抗体(Thy−1.2)、CD45Rに対するモノクローナル抗体(B220
)、CD11bに対するモノクローナル抗体(Mac−1)、Gr−1に対する
モノクローナル抗体、CD4に対するモノクローナル抗体またはCD8に対する
モノクローナル抗体(PharMingen,San Diego,CA)の0
.5μg抗体を用いて、100μL容量のPBS(Ca+およびMg+を欠く)
、0.1%ウシ血清アルブミンおよび0.01%アジ化ナトリウム中で2〜8℃
で30分間染色する。抗体結合後、細胞を洗浄し、次いでFACScan(Be
cton Dickinson)でのフローサイトメトリーによって分析する。
実施例6において調製されるSecs−1ポリペプチド/Fc融合構築物を使
用して、増殖因子のFGFファミリーのメンバーへのSecs−1ポリペプチド
の直接的な結合を分析する。
細胞を維持する能力と相関することを示した。間質細胞の造血幹細胞を維持する
能力が、Secs−1ポリペプチドの発現に単に相関しているというのではなく
起因する場合、非支持性間質細胞株中でのSecs−1ポリペプチドの発現が、
この細胞株を支持性細胞株に変換する。同様に、ST2細胞中でのSecs−1
の発現が、デキサメタゾンおよびビタミンD3の非存在下において、これらの細
胞に破骨細胞形成(osteoclastogenesis)を支持させる場合
、この結果は、デキサメタゾンおよびビタミンD3によるSecs−1ポリペプ
チドの発現の強力な誘導が、単に無害のバイスタンダー(bystander)
効果であるだけでなく、この破骨細胞支持表現型の出現に原因として関与するこ
とを示唆する。
に思い浮かぶことが理解される。それゆえ、添付の特許請求の範囲が、本願発明
の範囲内に入る全てのこのような均等な改変物を包含することが意図される。
Claims (1)
- 単離された核酸分子であって、以下:
(a)配列番号1または配列番号4のいずれかに示されるヌクレオチド配列;
(b)ATCC受託番号PTA−1753およびPTA−1755中のDNAインサートのヌクレオチド配列;
(c)配列番号2または配列番号5のいずれかに示されるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列;
(d)(a)〜(c)のいずれかの相補体に、中程度または高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列;および
(e)(a)〜(c)のいずれかに相補的なヌクレオチド配列、
からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む、単離された核酸分子。
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