JP2006288257A - Reagent for stabilizing microorganism, and utilization thereof - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、微生物を安定した状態で保存することができる微生物の安定化試薬、微生物の安定化方法、試料の前処理液、試料の前処理方法、試料の前処理用キット、及び微生物の検出方法に関する。 The present invention relates to a microorganism stabilizing reagent capable of storing microorganisms in a stable state, a microorganism stabilizing method, a sample pretreatment liquid, a sample pretreatment method, a sample pretreatment kit, and a microorganism detection. Regarding the method.
微生物の保存方法としては、凍結乾燥保存や、滅菌蒸留水又は糖液等に懸濁して5℃以下の低温条件下で保存する方法が知られている。例えば、特許文献1は増殖培養した菌体を蒸留水又は保存安定剤を溶解した溶液中に懸濁し、該懸濁液を低温で保存する方法を提案している。
また、特許文献2は、糖、糖アルコール、リン酸塩、マグネシウム塩、塩化ナトリウム、アンモニウム塩、アミノ酸及びポリエチレングルコールからなる群から選ばれた少なくとも1種の物質を溶解させた溶液中に微生物を懸濁し、該懸濁液を低温で保存する方法を提案している。
Known methods for preserving microorganisms include freeze-dried storage, and methods of suspending in sterilized distilled water or sugar solution and storing under low temperature conditions of 5 ° C. or lower. For example, Patent Document 1 proposes a method of suspending cells grown and cultured in a solution in which distilled water or a storage stabilizer is dissolved, and storing the suspension at a low temperature.
Patent Document 2 discloses a microorganism in a solution in which at least one substance selected from the group consisting of sugar, sugar alcohol, phosphate, magnesium salt, sodium chloride, ammonium salt, amino acid and polyethylene glycol is dissolved. And a method of storing the suspension at a low temperature is proposed.
しかしながら、いずれも微生物を低温で保存する必要があり、10℃を超える温度では微生物の保存安定化効果が低下する(例えば、特許文献1の段落0016等参照。)。したがって、これらの保存液を、微生物を含む検体を酵素等で処理する際の溶液として使用した場合、低温では酵素活性が著しく低下するため、処理に時間を要し、また酵素活性を保つ為に室温〜37℃程度に保つと微生物に影響が生じるといった問題があった。
本発明は、非常に簡単な組成で微生物の保存安定化ができ、且つ室温でも保存安定効果を発揮する微生物の安定化試薬、及び該試薬を用いた微生物の安定化方法を提供することを目的とする。また、本発明は、微生物を安定な状態で、簡便且つ迅速に試料を前処理し得る試料の前処理液、該前処理液を用いた試料の前処理方法、及び前処理用キットを提供する。さらに、本発明は、微生物を安定な状態で、簡便且つ迅速に微生物を検出することができる微生物の検出方法を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide a microorganism stabilizing reagent that can preserve and stabilize microorganisms with a very simple composition and that exhibits a storage stability effect even at room temperature, and a microorganism stabilizing method using the reagent. And The present invention also provides a sample pretreatment liquid that can pretreat a sample easily and quickly in a stable state of microorganisms, a sample pretreatment method using the pretreatment liquid, and a pretreatment kit. . Furthermore, an object of the present invention is to provide a microorganism detection method capable of detecting microorganisms simply and quickly in a stable state.
前記課題を解決するために、本発明の微生物の安定化試薬は、トリスと塩化ナトリウムとを含有する緩衝液であって、塩化ナトリウム濃度が0.6%を超え1.2%未満、トリス濃度が10mM以上50mM未満、pHが7.0以上8.0未満であることを特徴とする。なお、本発明において記載する濃度%とは、特記しない限り質量/質量%である。また、本発明において、トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタンをトリスと称する。 In order to solve the above-mentioned problems, the microorganism stabilizing reagent of the present invention is a buffer solution containing Tris and sodium chloride, wherein the sodium chloride concentration is more than 0.6% and less than 1.2%. Is 10 mM or more and less than 50 mM, and pH is 7.0 or more and less than 8.0. The concentration% described in the present invention is mass / mass% unless otherwise specified. In the present invention, tris (hydroxymethyl) aminomethane is referred to as tris.
前記トリス濃度が15mM以上30mM以下であることが好ましい。
また、前記塩化ナトリウム濃度が、0.8%以上1.1%以下であることが好適である。
前記微生物が、ウイルス、リケッチャ、細菌又は真菌であることが好適である。
The Tris concentration is preferably 15 mM or more and 30 mM or less.
The sodium chloride concentration is preferably 0.8% or more and 1.1% or less.
It is preferable that the microorganism is a virus, rickettsia, bacterium or fungus.
本発明の微生物の安定化方法は、微生物を、前記本発明の安定化試薬に懸濁することを特徴とする。 The microorganism stabilization method of the present invention is characterized in that the microorganism is suspended in the stabilization reagent of the present invention.
本発明の試料の前処理液は、試料中に存在する微生物を検出する際の試料の前処理液であって、該前処理液が、蛋白質分解酵素を有効成分として含有する、前記本発明の安定化試薬からなることを特徴とする。 The sample pretreatment liquid of the present invention is a sample pretreatment liquid for detecting microorganisms present in the sample, and the pretreatment liquid contains a proteolytic enzyme as an active ingredient. It consists of a stabilizing reagent.
前記蛋白質分解酵素が、セミアルカリプロテアーゼ及びシステインプロテアーゼからなる群から選択される少なくとも1種であることが好ましい。
前記システインプロテアーゼが、ブロメライン、パパイン、キモパパイン及びフィシンからなる群から選択される少なくとも1種であることが好適である。
前記試料が全血、血漿、血清、尿、髄液、精液、唾液、母乳、汗、粘液、体液、糞便、病変部組織及びその抽出液、膿、喀痰、鼻汁、鼻腔洗浄液、鼻腔ぬぐい液、咽頭ぬぐい液、又は微生物培養系試料であることが好適である。
The proteolytic enzyme is preferably at least one selected from the group consisting of semi-alkaline protease and cysteine protease.
It is preferable that the cysteine protease is at least one selected from the group consisting of bromelain, papain, chymopapain and ficin.
The sample is whole blood, plasma, serum, urine, spinal fluid, semen, saliva, breast milk, sweat, mucus, body fluid, feces, lesion tissue and its extract, pus, sputum, nasal discharge, nasal wash, nasal rinse, It is preferably a throat swab or a microorganism culture sample.
本発明の試料の前処理方法は、前記本発明の前処理液を用いることを特徴とする。 The sample pretreatment method of the present invention is characterized by using the pretreatment liquid of the present invention.
本発明の微生物の検出方法の第1の態様は、前記本発明の安定化試薬を用いることを特徴とする。 A first aspect of the microorganism detection method of the present invention is characterized by using the stabilizing reagent of the present invention.
本発明の微生物の検出方法の第2の態様は、試料を前記本発明の安定化試薬に懸濁し、微生物を検出することを特徴とする。 A second aspect of the microorganism detection method of the present invention is characterized in that a sample is suspended in the stabilizing reagent of the present invention and the microorganism is detected.
本発明の微生物の検出方法の第3の態様は、試料を前記本発明の前処理液で前処理した後、微生物を検出することを特徴とする。 A third aspect of the microorganism detection method of the present invention is characterized in that the microorganism is detected after the sample is pretreated with the pretreatment liquid of the present invention.
本発明の微生物の検出方法において、前記試料が、全血、血漿、血清、尿、髄液、精液、唾液、母乳、汗、粘液、体液、糞便、病変部組織及びその抽出液、膿、喀痰、鼻汁、鼻腔洗浄液、鼻腔ぬぐい液、咽頭ぬぐい液、又は微生物培養系試料であることが好ましい。 In the method for detecting a microorganism of the present invention, the sample is whole blood, plasma, serum, urine, spinal fluid, semen, saliva, breast milk, sweat, mucus, body fluid, stool, lesion tissue and its extract, pus, sputum Nasal discharge, nasal wash, nasal rinse, throat swab, or microbial culture sample.
本発明の試料の前処理用キットは、前記本発明の安定化試薬、及び試料の前処理剤を含むことを特徴とする。前記前処理剤が、蛋白質分解酵素であることが好ましい。
前記蛋白質分解酵素が、セミアルカリプロテアーゼ及びシステインプロテアーゼからなる群から選択される少なくとも1種であることが好適である。
前記システインプロテアーゼが、ブロメライン、パパイン、キモパパイン及びフィシンからなる群から選択される少なくとも1種であることが好ましい。
The sample pretreatment kit of the present invention comprises the stabilizing reagent of the present invention and a sample pretreatment agent. The pretreatment agent is preferably a proteolytic enzyme.
It is preferable that the proteolytic enzyme is at least one selected from the group consisting of semi-alkaline protease and cysteine protease.
The cysteine protease is preferably at least one selected from the group consisting of bromelain, papain, chymopapain and ficin.
本発明の微生物の安定化試薬及び安定化方法によれば、非常に簡単な組成で微生物の安定化ができ、微生物を増殖させることなく、一定の菌数に抑えることができ、更に室温でも保存安定化効果を発揮するため、酵素反応への影響が極めて少なく、微生物の検出、特に微生物を検出するための試料の前処理に極めて有効である。また、本発明の微生物の安定化試薬は、複数の一般細菌における共通の安定化試薬として使用することができる。さらに、本発明の微生物の安定化試薬は、喀痰等の試料を輸送、検査等の目的で一時的な保管に有効である。 According to the microorganism stabilization reagent and stabilization method of the present invention, microorganisms can be stabilized with a very simple composition, and the number of microorganisms can be suppressed to a constant without growing, and further stored at room temperature. Since the stabilizing effect is exhibited, the influence on the enzyme reaction is extremely small, and it is extremely effective for the detection of microorganisms, particularly for the pretreatment of a sample for detecting microorganisms. In addition, the microorganism stabilization reagent of the present invention can be used as a common stabilization reagent for a plurality of general bacteria. Furthermore, the microorganism stabilizing reagent of the present invention is effective for temporary storage of samples such as sputum for transportation and inspection purposes.
本発明の試料の前処理液、前処理方法及び前処理用キットによれば、酵素活性を保ちつつ、微生物に影響を与えずに安定な状態で、簡便且つ迅速に試料を前処理することができる。本発明の微生物の検出方法によれば、微生物への影響が極めて少なく、微生物を安定な状態で、簡便且つ迅速に微生物を検出することができる。 According to the sample pretreatment liquid, the pretreatment method and the pretreatment kit of the present invention, the sample can be pretreated easily and quickly in a stable state without affecting microorganisms while maintaining the enzyme activity. it can. According to the microorganism detection method of the present invention, microorganisms can be easily and rapidly detected in a stable state with little influence on microorganisms.
以下に本発明の実施の形態を説明するが、これらは例示的に示されるもので、本発明の技術思想から逸脱しない限り種々の変形が可能なことはいうまでもない。 Embodiments of the present invention will be described below, but these are exemplarily shown, and it goes without saying that various modifications are possible without departing from the technical idea of the present invention.
本発明の微生物の安定化試薬は、トリスと塩化ナトリウムとを含有する緩衝液である。
安定化試薬中の塩化ナトリウムの濃度は、0.6%を超え1.2%未満であり、0.8%以上1.1%以下が好ましく、より好ましくは9%付近である。
安定化試薬中のトリス濃度は、10mM以上50mM未満であり、15mM以上30mM以下が好ましい。緩衝液のpHは7.0以上8.0未満である。pHを滴定するための酸は特に限定されないが、塩酸が好ましい。
The microorganism stabilizing reagent of the present invention is a buffer containing Tris and sodium chloride.
The concentration of sodium chloride in the stabilizing reagent is more than 0.6% and less than 1.2%, preferably 0.8% or more and 1.1% or less, more preferably about 9%.
The Tris concentration in the stabilizing reagent is 10 mM or more and less than 50 mM, preferably 15 mM or more and 30 mM or less. The pH of the buffer solution is 7.0 or more and less than 8.0. The acid for titrating the pH is not particularly limited, but hydrochloric acid is preferred.
本発明の安定化試薬は、公知の微生物の保存安定化剤、例えば、グルコース、トレファロース、スクロース等の糖を含んでいても良い。 The stabilizing reagent of the present invention may contain a known microorganism storage stabilizer, for example, a sugar such as glucose, trephalose, sucrose and the like.
微生物を本発明の安定化試薬に懸濁することにより微生物を安定化させることがでる。試料を前記安定化試薬に懸濁した後、微生物を検出することにより、試料中に存在する微生物を安定な状態で検出することができる。微生物の検出方法は特に限定されず、公知の方法を広く使用することができる。微生物の検出においては、微生物を直接検出してもよく、生体関連物質を検出することにより微生物を検出してもよい。 The microorganism can be stabilized by suspending the microorganism in the stabilizing reagent of the present invention. By suspending the sample in the stabilizing reagent and then detecting the microorganisms, the microorganisms present in the sample can be detected in a stable state. The detection method of microorganisms is not specifically limited, A well-known method can be used widely. In the detection of microorganisms, the microorganisms may be detected directly, or the microorganisms may be detected by detecting a biological substance.
本発明において、微生物としては、特に限定されないが、例えば、ヘルペスウイルス(HSV、CMV、ZVZ、EBV、HHVなど)、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)、ヒト成人T細胞白血病ウイルス(HTLV)、肝炎ウイルス(HBV、HCV、HDV、HGV)、その他カゼ症候群、消化器疾患、中枢神経系疾患、呼吸器系疾患、出血熱等の様々な疾患の病因ウイルス等のウイルス、リケッチャ、黄色ブドウ球菌、連鎖球菌、大腸菌群、緑膿菌、レジオネラ属、モラクセラ属、インフルエンザ細菌、クレブシエラ属、クラミジア、マイコプラズマ等の細菌、真菌等が挙げられる。 In the present invention, the microorganism is not particularly limited. For example, herpes virus (HSV, CMV, ZVZ, EBV, HHV, etc.), influenza virus, human immunodeficiency virus (HIV), human adult T cell leukemia virus (HTLV) , Viruses such as hepatitis viruses (HBV, HCV, HDV, HGV), other diseases such as Kaze syndrome, gastrointestinal diseases, central nervous system diseases, respiratory diseases, hemorrhagic fever, etc., rickettsia, Staphylococcus aureus And bacteria such as streptococci, coliforms, Pseudomonas aeruginosa, Legionella, Moraxella, influenza bacteria, Klebsiella, Chlamydia, mycoplasma, and the like.
本発明において、生体関連物質とは、核酸(DNA、RNA)、タンパク質、ペプチド等が挙げられる。生細胞からのDNA又はRNAの調製は、公知の方法、例えばDNAの抽出については、Blinらの方法(Blin et al., Nucleic Acids Res. 3: 2303 (1976))等により、また、RNAの抽出については、Favaloroらの方法(Favaloro et al.,Methods Enzymol.65: 718 (1980))等により行うことができる。また、rRNAにおいては、水酸化ナトリウム水溶液などで細胞を溶解した後、塩酸などで中和すればよい。また、それらの検出方法としては、PCR(Polymerase chain reaction)、ハイブリダイゼーション、PALSAR反応(例えば、特許第3267576号等参照。)、DNAチップ、プロテインチップ、抗原抗体反応等を用いて行うことができる。 In the present invention, examples of the biological substance include nucleic acids (DNA, RNA), proteins, peptides and the like. Preparation of DNA or RNA from living cells can be performed by a known method, for example, the method of Blin et al. (Blin et al., Nucleic Acids Res. 3: 2303 (1976)) for DNA extraction, Extraction can be performed by the method of Favaloro et al. (Favaloro et al., Methods Enzymol. 65: 718 (1980)) and the like. For rRNA, cells may be lysed with an aqueous sodium hydroxide solution and then neutralized with hydrochloric acid or the like. As detection methods thereof, PCR (Polymerase chain reaction), hybridization, PALSAR reaction (see, for example, Japanese Patent No. 3267576), DNA chip, protein chip, antigen-antibody reaction, etc. can be used. .
本発明において、試料とは特に限定されないが、生体試料または生体由来試料が好適であり、具体的には、全血、血漿、血清、尿、髄液、精液、唾液、母乳、汗、粘液等の体液や糞便、病変部組織及びその抽出液、膿、喀痰、鼻汁、鼻腔洗浄液、鼻腔ぬぐい液、咽頭ぬぐい液及びウイルスをはじめとする微生物培養系試料等が挙げられる。 In the present invention, the sample is not particularly limited, but a biological sample or a biological sample is preferable, and specifically, whole blood, plasma, serum, urine, spinal fluid, semen, saliva, breast milk, sweat, mucus, etc. Body fluids and feces, lesioned tissue and extracts thereof, pus, sputum, nasal discharge, nasal wash, nasal rinse, throat swab, and microbial culture samples such as viruses.
本発明の安定化試薬は、試料中に存在する微生物の検出方法において、試料を処理する際の溶解液としても好適に用いられる。特に、試料を蛋白質分解酵素で前処理する際の溶解液として非常に有効である。
本発明の試料の前処理液は、試料中に存在する微生物を検出する際の試料の前処理液であり、前記安定化試薬に蛋白質分解酵素を有効成分として含有せしめたものである。前記蛋白質分解酵素としては特に限定されず、試料及び処理方法に応じて適宜選択すればよい。これら蛋白質分解酵素は1種、又は2種以上組み合わせて使用することができる。
The stabilizing reagent of the present invention is also suitably used as a lysing solution when processing a sample in the method for detecting microorganisms present in the sample. In particular, it is very effective as a solution for pretreatment of a sample with a proteolytic enzyme.
The sample pretreatment solution of the present invention is a sample pretreatment solution for detecting microorganisms present in the sample, and is a solution in which a proteolytic enzyme is contained as an active ingredient in the stabilizing reagent. The proteolytic enzyme is not particularly limited and may be appropriately selected depending on the sample and the treatment method. These proteolytic enzymes can be used alone or in combination of two or more.
例えば、喀痰を試料として用いた均質化処理の場合、セミアルカリプロテアーゼ(例えば、スプタザイム(極東製薬工業(株)製)等)及びシステインプロテアーゼからなる群から選択される少なくとも1種を用いることが好ましい。
前記システインプロテアーゼとしては、特に限定されないが植物由来のシステインプロテアーゼが好ましく、ブロメライン、パパイン、キモパパイン及びフィシンからなる群から選択される1種又は2種以上がより好ましく、ブロメラインが特に好ましい。これらシステインプロテアーゼは市販のものでもよく、公知の方法で得たものを用いてもよい。
前記ブロメラインとしては、Bromeliaceaeに属する植物由来のシステインプロテアーゼが用いられるが、パイナップル(Ananas comosus M.)由来のものがより好ましい。
For example, in the case of homogenization treatment using sputum as a sample, it is preferable to use at least one selected from the group consisting of a semi-alkaline protease (for example, sputazyme (manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd.)) and cysteine protease. .
The cysteine protease is not particularly limited, but is preferably a plant-derived cysteine protease, more preferably one or more selected from the group consisting of bromelain, papain, chymopapain and ficin, and bromelain is particularly preferable. These cysteine proteases may be commercially available or those obtained by known methods.
As the bromelain, a plant-derived cysteine protease belonging to Bromeliaceae is used, but one derived from pineapple (Ananas comosus M.) is more preferable.
本発明において、被検試料を前記前処理液により前処理した後、微生物を培養し又は培養せずに、被検試料中に存在する微生物を検出することができる。 In the present invention, after pretreatment of a test sample with the pretreatment liquid, microorganisms present in the test sample can be detected without culturing or culturing the microorganism.
以下に実施例をあげて本発明をさらに具体的に説明するが、これらの実施例は例示的に示されるもので限定的に解釈されるべきでないことはいうまでもない。 The present invention will be described more specifically with reference to the following examples. However, it is needless to say that these examples are shown by way of illustration and should not be construed in a limited manner.
(実験例1)
0.9%(150mM)塩化ナトリウムを含む10mMトリス塩酸緩衝液(pH7.0、7.5又は8.0)を調製し、懸濁液とした。この懸濁液にヘモフィラス・インフルエンザ細菌(Haemophilus influenzae)を103CFU/mLとなるように加え、室温(26℃)において0時間と二時間で該細菌懸濁液中の生菌数を測定した。尚、生菌数の測定方法は、前記細菌懸濁液を、チョコレート寒天培地EX(日水製薬(株)製)各プレートに100μLずつ3枚播き、37℃で18時間培養した後、プレート3枚についてコロニー数を測定し、3枚の平均値を生菌数とした。
また、対照として、0.9%塩化ナトリウム水溶液を懸濁液として用いて同様に生菌数を測定した。結果を表1に示す。
(Experimental example 1)
A 10 mM Tris-HCl buffer solution (pH 7.0, 7.5, or 8.0) containing 0.9% (150 mM) sodium chloride was prepared as a suspension. Haemophilus influenzae was added to this suspension at 10 3 CFU / mL, and the number of viable cells in the bacterial suspension was measured at room temperature (26 ° C.) at 0 and 2 hours. . In addition, the method for measuring the number of viable cells is as follows. Three bacterial suspensions of the above-mentioned bacterial suspension are plated on each plate of chocolate agar EX (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) and cultured at 37 ° C. for 18 hours. The number of colonies was measured for each sheet, and the average value of the three sheets was defined as the number of viable bacteria.
As a control, the number of viable bacteria was similarly measured using a 0.9% sodium chloride aqueous solution as a suspension. The results are shown in Table 1.
表1に示した如く、塩化ナトリウムを含有するトリス緩衝液のpHを7.0以上8.0未満にすることで、生菌数の減少が抑えられることが明らかとなった。 As shown in Table 1, it was clarified that the decrease in the number of viable bacteria can be suppressed by setting the pH of the Tris buffer containing sodium chloride to 7.0 or more and less than 8.0.
(実験例2)
0.9%塩化ナトリウムを含む、表2に示す各濃度のトリス塩酸緩衝液(pH7.0)を調製し、懸濁液とした。この懸濁液にヘモフィラス・インフルエンザ細菌(Haemophilus influenzae)を103CFU/mLとなるように加え、室温(26℃)において0時間と二時間で生菌数を比較した。生菌数の測定方法は実験例1と同様である。また、対照として、0.9%塩化ナトリウム水溶液を懸濁液として用いて同様に生菌数を測定した。結果を表2に示す。
(Experimental example 2)
Tris-HCl buffer solutions (pH 7.0) having various concentrations shown in Table 2 containing 0.9% sodium chloride were prepared and used as suspensions. Haemophilus influenzae was added to this suspension so as to be 10 3 CFU / mL, and the viable cell counts were compared at 0 hours and 2 hours at room temperature (26 ° C.). The method for measuring the number of viable bacteria is the same as in Experimental Example 1. As a control, the number of viable bacteria was similarly measured using a 0.9% sodium chloride aqueous solution as a suspension. The results are shown in Table 2.
表2に示した如く、塩化ナトリウムを含有するトリス緩衝液のトリス濃度を10mM以上50mM未満にすることにより、生菌数の減少が抑えられ、特に15〜25mM付近にすることにより、大幅に生菌数の減少が抑えられることが明らかとなった。 As shown in Table 2, by reducing the Tris concentration of the Tris buffer containing sodium chloride to 10 mM or more and less than 50 mM, the decrease in the number of viable bacteria can be suppressed. It became clear that the decrease in the number of bacteria was suppressed.
(実験例3)
表3に示す各濃度の塩化ナトリウム溶液を含む、25mMトリス塩酸緩衝液(pH7.0)を調製し、懸濁液とした。この懸濁液にヘモフィラス・インフルエンザ細菌(Haemophilus influenzae)を103CFU/mLとなるように加え、室温(26℃)において0時間と二時間で生菌数を比較した。生菌数の測定方法は実験例1と同様である。結果を表3に示す。
(Experimental example 3)
A 25 mM Tris-HCl buffer (pH 7.0) containing sodium chloride solutions having respective concentrations shown in Table 3 was prepared and used as a suspension. Haemophilus influenzae was added to this suspension so that it might become 10 < 3 > CFU / mL, and the viable cell count was compared in 0 hour and 2 hours at room temperature (26 degreeC). The method for measuring the number of viable bacteria is the same as in Experimental Example 1. The results are shown in Table 3.
表3に示した如く、0.6%を超え1.2未満の塩化ナトリウムを含む、トリス緩衝液を用いることにより生菌数の減少が抑えられ、特に塩化ナトリウム濃度を0.9%付近にすることにより、大幅に生菌数の減少が抑えられることが明らかとなった。 As shown in Table 3, the use of Tris buffer solution containing sodium chloride exceeding 0.6% and less than 1.2 can suppress the decrease in the number of viable bacteria. By doing so, it was clarified that the decrease in the number of viable bacteria was significantly suppressed.
(実施例1及び比較例1)
0.9%塩化ナトリウム及び0.1mM EDTAを含む25mMトリス塩酸緩衝液(pH7.0)を調製し、懸濁液とした。この懸濁液にヘモフィラス・インフルエンザ (Haemophilus influenzae)、ストレプトコッカス・ニューモニア(Streptococcus pneumoniae)、シュードモナス・アエルギノサ(Pseudomonas aeruginosa)、スタフィロコッカス・アウレウス(Staphylococcus aureus)、レジオネラ・ニューモフィラ(Legionella pneumophila)クレブシエラ・ニューモニア(Klebsiella pneumoniae)を103CFU/mLとなるように加え、室温(26℃)において0時間と二時間で生菌数を比較した。生菌数の測定方法は実験例1と同様である。
また、対照(比較例1)として、0.9%塩化ナトリウム水溶液を懸濁液として用いて同様に生菌数を測定した。結果を表4に示す。
(Example 1 and Comparative Example 1)
A 25 mM Tris-HCl buffer (pH 7.0) containing 0.9% sodium chloride and 0.1 mM EDTA was prepared and used as a suspension. In this suspension, Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Legionella pneumonia Lella pneumonia (Klebsiella pneumoniae) was added to 10 3 CFU / mL, and the viable cell counts were compared at room temperature (26 ° C.) at 0 hour and 2 hours. The method for measuring the number of viable bacteria is the same as in Experimental Example 1.
Further, as a control (Comparative Example 1), a viable cell count was similarly measured using a 0.9% aqueous sodium chloride solution as a suspension. The results are shown in Table 4.
表4に示した如く、本発明によれば、種々の細菌に対して、従来の生理食塩水に比べ、大幅に生菌数の減少が抑えられることが明らかとなった。 As shown in Table 4, according to the present invention, it was clarified that the decrease in the number of viable bacteria can be significantly suppressed against various bacteria as compared with conventional physiological saline.
(実施例2)
0.25%(2000U/mL)ブロメラインF(Bromelain F,天野エンザイム社製)を、溶解液[25mMトリス緩衝液(pH7.0)、0.9%塩化ナトリウム、0.1mM エチレンジアミン四酢酸ナトリウム(EDTA)]に溶解し前処理液とした。この前処理液を、膿性痰(P2及びP3、Miller & Jonesの分類)に対して20倍量加えて、室温(26℃)で反応させた。その際、10分おきにボルテックスで懸濁し、溶解時間を測定した。尚、喀痰の溶解時間は、喀痰がほぼ完全に溶液化の状態になるまでに要した反応時間とした。その結果を表5に示す。
(Example 2)
0.25% (2000 U / mL) Bromelain F (Bromelain F, Amano Enzyme) was dissolved in a solution [25 mM Tris buffer (pH 7.0), 0.9% sodium chloride, 0.1 mM sodium ethylenediaminetetraacetate ( EDTA)] to prepare a pretreatment solution. This pretreatment solution was added in a 20-fold amount to purulent sputum (P2 and P3, Miller & Jones classification) and allowed to react at room temperature (26 ° C.). At that time, the suspension was vortexed every 10 minutes and the dissolution time was measured. The soot dissolution time was the reaction time required for the soot to be almost completely in solution. The results are shown in Table 5.
(実施例3)
実施例2と同様に調製した前処理液にヘモフィラス・インフルエンザ(Haemophilus influenzae)、ストレプトコッカス・ニューモニア(Streptococcus pneumoniae)、シュードモナス・アエルギノサ(Pseudomonas aeruginosa)、スタフィロコッカス・アウレウス(Staphylococcus aureus)、レジオネラ・ニューモフィラ(Legionella pneumophila)、又はクレブシエラ・ニューモニア(Klebsiella pneumoniae)を103CFU/mLとなるように加え、室温(26℃)において0時間と二時間で生菌数を比較した。生菌数の測定方法は実験例1と同様である。結果を表6に示す。
(Example 3)
In the pretreatment solution prepared in the same manner as in Example 2, Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Staphylococcus aureus, (Legionella pneumophila) or Klebsiella pneumoniae was added at 10 3 CFU / mL, and the viable cell counts were compared at room temperature (26 ° C.) at 0 and 2 hours. The method for measuring the number of viable bacteria is the same as in Experimental Example 1. The results are shown in Table 6.
表5及び6に示した如く、本発明の前処理液を用いることで、ブロメラインFの喀痰溶解における活性を損なうことなく、かつ、種々の細菌に対して、大幅に生菌数の減少が抑えられることが明らかとなった。 As shown in Tables 5 and 6, by using the pretreatment liquid of the present invention, the decrease in the number of viable bacteria is greatly suppressed against various bacteria without impairing the activity of bromelain F in sputum lysis. It became clear that
(実施例4)
スプタザイム(極東製薬工業(株)製、セミアルカリプロテアーゼ)を、溶解液[25mMトリス緩衝液(pH7.0)、0.9%塩化ナトリウム、0.1mM エチレンジアミン四酢酸ナトリウム(EDTA)]に溶解し前処理液とした。この前処理液を、膿性痰(P3、Miller & Jonesの分類)に対して20倍量加えて、室温(26℃)で反応させた。その際、10分おきにボルテックスで懸濁し、溶解時間を測定した。尚、喀痰の溶解時間は、喀痰がほぼ完全に溶液化の状態になるまでに要した反応時間とした。その結果を表7に示す。
Example 4
Sputazyme (manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd., semi-alkaline protease) is dissolved in a solution [25 mM Tris buffer (pH 7.0), 0.9% sodium chloride, 0.1 mM sodium ethylenediaminetetraacetate (EDTA)]. A pretreatment liquid was used. This pretreatment solution was added in a 20-fold amount to purulent sputum (P3, Miller & Jones classification) and allowed to react at room temperature (26 ° C.). At that time, the suspension was vortexed every 10 minutes and the dissolution time was measured. The soot dissolution time was the reaction time required for the soot to be almost completely in solution. The results are shown in Table 7.
(比較例2)
スプタザイム(極東製薬工業(株)製、セミアルカリプロテアーゼ)をキットの溶解試薬であるリン酸バッファーに溶解し、前処理液とした。この前処理液を用いた以外は、実施例4と同様に実験を行った。結果を表7に示す。
(Comparative Example 2)
Sputazyme (manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd., semi-alkaline protease) was dissolved in a phosphate buffer which is a dissolution reagent of the kit to prepare a pretreatment solution. The experiment was performed in the same manner as in Example 4 except that this pretreatment liquid was used. The results are shown in Table 7.
表7に示した如く、セミアルカリプロテアーゼに本発明の安定化試薬を用いても、喀痰に対する溶解効果は、同等以上であることが明らかとなった。 As shown in Table 7, it was revealed that even if the stabilizing reagent of the present invention was used for semi-alkaline protease, the dissolution effect on sputum was equal or better.
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