JP2005502882A - Diagnosis of infectious spongiform encephalopathy - Google Patents

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Abstract

【目的】被験者から取得した体液のサンプル中にあるポリペプチドを観察するため質量分析を使用して、感染性海綿状脳症(TSE)を診断する。ポリペプチドは、TSE感染被験者及び非感染被験者の体液では相違して含まれており、3500から30000の範囲の分子量を有する。Objective: To diagnose infectious spongiform encephalopathy (TSE) using mass spectrometry to observe a polypeptide in a sample of body fluid obtained from a subject. Polypeptides are contained differently in the body fluids of TSE infected and non-infected subjects and have a molecular weight in the range of 3500-30000.

Description

【技術分野】
【0001】
本発明は、感染性海綿状脳症(TSE)の診断法に関する。
【背景技術】
【0002】
感染性海綿状脳症(TSEs)は、中枢神経系の神経変性病である。それらは、伝染し、遺伝し、または、散発的に発病する可能性があり、そして動物でも観察され、例えば牛における牛海綿状脳症(BSE)または羊におけるスクレピーであり、人間におけるクロイツフェルト・ヤコブ病(CJD)、ゲルストマン・シュトロイスラー・シャインカー症候群、致死性家族性不眠症、またはクールと同様である。それらは、長い潜伏期間を有しており、運動失調、痴呆、精神障害、及び死へと導く。神経病的変化は、脳組織の空胞変性、アストログリオーシス(astrogliosis)、及びアミロイド斑形成を含んでいる。これらの病気は、生前に発症することを診断することは困難である。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0003】
CJD患者の脳脊髄液(CSF)は、2次元ポリアクリルアミドゲル電気泳動[Harrington,M.G.New England Journal of Medicine 315,279(1986),Hsick,G.,Kenney,K.,Gibbs,C.J.,Lee,K.H.&Harrington,M.B.New England Journal of Medicine 335,924(1996).]によって、2つの付加したポリペプチド(14−3−3ポリペプチドとして知られている)を示す。それらの14−3−3ポリペプチドの作用は、TSEでははっきりしないままである。それらは、CJD診断の進歩のために生前検査で使用することができるが、特異性が低い。
【0004】
PCT明細書WO98/23962及び98/32710と、Schmerr,M.J.,the Beckmann Coulter Pace Setter Newsletter 3(2),1−4(June 1999)とに記載されているように、(CJDに関連のある)プリオンタンパク質の異常形成に対してモノクローナル抗体を利用することができ、また酵素免疫測定法において使用することができるが、これらの方法はまだ十分に発展していない。
【0005】
PCT/EP 01/02894は、タンパク質(H−FABPまたはB−FABP)と結合している心臓または脳脂肪酸の濃度が体液のサンプルで決定されるTSEsに対する診断分析と関係する。
【0006】
US−A−6225047には、差異マップを生成するためにリテンテイトクロマトグラフィーの使用が記載されており、特に、2つのサンプル間で相違する分析物を同定する方法が記載されている。そこに記載されている1つの特殊な方法は、レーザー脱離質量分析法である。
【0007】
WO01/25791には、前立腺ガン診断を支援するための方法が記載されており、これはポリペプチドマーカーのテスト量を決めるものであり、このポリペプチドマーカーは、前立腺ガン患者と前立腺ガン患者でない被験者とのサンプル内に相違するものが存在する。マーカーは質量分析法、好ましくはレーザー脱離質量分析法を使って決められる。
【0008】
体液に対する新しい非侵襲性TSEマーカー(特に、血液中のCJD及びBSEマーカー)の発達とマーカーを決定する新しい方法により、臨床医学者が早期診断を確立するのを手助けすることであろう。この問題は、今、本発明によって解決される。
【課題を解決するための手段】
【0009】
本発明は、感染性海綿状脳症(TSE)の診断方法、またはTSEを患っている疑いのある被験者においてその可能性の診断方法を提供する。その診断方法は、被験者から取り出した体液のサンプルを質量分析し、それによりサンプル中のポリペプチドのテスト量を決定することからなっている。そのポリペプチドはTSE感染被験者とTSE非感染被験者との体液とで相違して含まれており、3500から30000の範囲の分子量を有しており、テスト量はTSEの診断と整合性をとるか否かで決定される。
【0010】
本発明は、また、TSE感染被験者とTSE非感染被験者との体液において相違して含まれているポリペプチドであって、3500から30000の範囲の分子量を有しており、診断、前兆、治療的応用のために、質量分析によって決定可能なポリペプチドの使用を提供する。
【0011】
本発明は、さらに、TSEの診断で使用するためのキットを提供する。このキットは、体液のサンプルを受け取り、質量分析で配置するためのプローブからなり、それによりサンプル中のポリペプチドのテスト量を決定する。そのポリペプチドはTSE感染した被験者とTSE非感染の被験者との体液において相違して含まれており、3500から30000の範囲の分子量を有している。
【発明を実施するための最良の形態】
【0012】
本発明は、感染性海綿状脳症(TSE)の診断方法、またはTSEを患っている疑いのある被験者においてその可能性の診断方法を提供する。被験者から取り出した体液のサンプルを質量分析にかけて、TSE感染被験者と非感染被験者の体液に相違して含まれるポリペプチドマーカーのサンプルにおける存在または非存在を決定する。ポリペプチドマーカーは、3500から30000まで、好ましくは3900から18000までの範囲の分子量を有しており、マーカーの存在または非存在がTSEであるかの指針となる。
【0013】
この方法は、TSEのすべての型に適用することができ、それを患っている、もしくは患いの疑いのあるあらゆる人間または動物に適用することができる。この方法は、人間の患者におけるCJD、特に新しい変異CJDや、牛等の反芻動物おけるBSEや、羊におけるスクレピーのように他の動物におけるBSEに似た症状の診断に特に適用することができる。
【0014】
ポリペプチドという用語は、例えば、炭水化物、リン酸塩、硫酸塩の非ペプチド残基の付加、または他の翻訳後の修飾による修飾されたペプチドだけでなく、タンパク質とタンパク質フラグメントを含む。
【0015】
サンプルは、ポリペプチドとプローブの吸収性材料との間の結合ができる条件下でプローブに吸収される。吸収性材料は、金属イオンと錯化する金属キレート基から構成されるのが好ましく、好ましい金属は銅である。ポリペプチドの検出の前に、プローブと非結合の、または弱い結合の材料は洗浄溶液で取り除かれ、それにより、サンプル中のポリペプチドが豊富になる。サンプルは、ポリペプチドと結合することができる固定化金属親和性捕獲(IMAC)表面を有するプローブに吸収されるのが好ましい。サンプルは、また、ポリペプチドを結合することができる条件下で、疎水性、強アニオン性、または弱カチオン性交換表面を有するプローブに吸収される。プローブは、いくつかの吸着穴を有する細長い片からなり、分光器に入れられ、それからその中で移動して、イオン化手段(例えば、レーザー)によって、各片は順に打たれ、分光器により読み出される。ポリペプチドは、表面増幅レーザー脱離/イオン化(SELDI)及び飛行時間型質量分析法(TOF−MS)によって決定されるのが好ましい。
【0016】
原理的には、どのような体液でも診断のためのサンプルを提供することに使用することができるが、好ましくは、体液は脳脊髄液(CSF)、血漿、血清、血液、尿、または涙である。
【0017】
本発明の1つの実施形態において、TSEは、クロイツフェルト・ヤコブ病(CJD)である。この場合、ポリペプチドは約4780、約6700、約8600、または約13375の分子量を有しているのが好ましく、そのようなポリペプチドの1つまたはそれより多い存在がCJDであることを示す。二者択一的に、約3970、約3990、約4294、約4478、約10075、約11730、約14043、または約17839の分子量をそれぞれ有する1つまたはそれより多いポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの1つまたはそれより多い欠如がCJDであることを示す。さらに、二者択一的に、約7700の分子量を有するポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの存在がCJDであることを示す。もう1つの例に関しては、CJDは次に示す1つまたはそれより多くのピーク:約3295、約4315、約4436、約6200、約8936、約9107、約9145、約9185、約9454、及び約13550Daの減少により示される。また、さらなる例については、CJDは次に示す1つまたはそれより多くのピーク:約7574、約7930、約7975、及び8020の増加により示される。本発明は、CDJの診断を行う目的のために、そのあらゆる組み合わせにおいて、上記の分子量の値のうちいずれか1つまたはそれより多くで計測をすることを採用することに真価を認められる。
【0018】
本発明の別の実施形態においては、TSEは牛海綿状脳症(BSE)である。この場合、ポリペプチドは約10220の分子量を有しているのが好ましく、このポリペプチドの存在がBSEであることを示す。
【0019】
本発明のさらなる実施形態において、TSEはスクレピーである。
ポリペプチドまたはポリペプチド群の分子量の計測は、質量分析で達成される。ここでの全ての分子量は、Daで計測される。上記で引用された分子量は1%よりもよい精度、好ましくは約0.1%の範囲内の精度で計測することができる。この明細書では、分子量に関して「約」という用語は、上記又は下記で引用された値について、約1%の変動の範囲内、好ましくは約0.1%の範囲内を意味する。
【0020】
本発明は、また、診断、前兆、治療への適用に対して、TSE感染被験者と非感染被験者の体液に相違して含まれるポリペプチドの使用に関し、そのポリペプチドは、3500から30000の範囲の分子量を有し、質量分析により決定することができる。これは、上記で言及したポリペプチドに対して認識したり、結合したり、またはある親和性を有したりする材料の合成、及び/または使用を伴う。そのような材料の例は、抗体及び抗体チップである。ここで使用される用語「抗体」は、ポリクローナル抗血清、モノクローナル抗体、Fab等の抗体のフラグメント、及び遺伝子改変抗体を含む。抗体は、キメラでもよいし、単一種でもよい。上記で言及されている「前兆的」適用は、例えば、体液のサンプルにおいて上記で言及したポリペプチドの量を計測することによって、TSEの起こりそうな経過の決定をすることを含む。上記で言及されている「治療的」適用は、例えば、上記で言及したポリペプチドに対して認識したり、結合したり、または親和性を有したりする材料を合成したり、治療においてそのような材料を使用することを含む。その材料は、この場合、例えば、抗体と薬剤を組み合わせることで修飾され、それにより目標となる動物の特異的領域へ薬剤を標的にする。
【0021】
本発明の方法手順はどのようなTSEの診断にも適用することができる。体液サンプルは、感染及び非感染の被験者から調達されたものである。サンプル中のポリペプチドの相違的保持のため、結合していない、または弱い結合をしている材料を除去するために洗浄液を選択的に使って、そのサンプルは様々な吸収性媒体で処理された表面を有するプローブへ適用することができる。もし、適しているなら、エネルギー吸収材料も適用することができる。そのとき、プローブは質量分析へ入れられ、様々な質量分析の設定を使って様々なサンプル/吸収の組み合わせに対して、読み取りが行われる。与えられた1組の条件下での感染と非感染とのサンプルの比較は、感染と非感染とのサンプルで異なって現れる1つまたはそれより多くのポリペプチドを明らかにする。これらのポリペプチドの存在または非存在は、被験者が感染しているか否かを決定する同様の条件(吸収剤、分析装置の設定等)下での被験者の流体サンプルのテストで使用される。
【0022】
ここでのポリペプチドの「存在または非存在」への言及は、感染と非感染とのサンプルにおいて検出されるポリペプチドの量にかなり相違があることを単に意味していることを理解すべきである。このように、テストサンプル中のポリペプチドの「存在」は、ポリペプチドが実際に存在するが、比較テストサンプル中よりかなり少ない量であるという可能性を含む。本発明によれば、診断はポリペプチドの存在または非存在に基づいてなされ、これは比較テストサンプルを参照してかなり少ないまたはかなり多い量においてポリペプチドの存在を含む。
【0023】
以下の例で本発明を証明する。
【実施例1】
【0024】
本研究の目的は、クロイツフェルト・ヤコブ病が発症した患者の体液(脳脊髄液、血漿、及びその他)中の特異的ポリペプチドを検出することである。サンプルは、表面増幅レーザー脱離イオン化(SELDI)質量分析(MS)技術により分析される。この技術は、リテンテイトクロマトグラフィーの異なる型を使用することによるタンパク質の微小規模の親和捕獲と、それから飛行時間型質量分析法による分析とを包含している。相違するマップは、Ciphergen バイオシステム PBS II 質量分析(フリーモント、CA,USA)を使って分析される与えられたサンプルの典型的なタンパク質プロファイリングのそれぞれに対応して生成される。CJD患者からの脳脊髄液(CSF)サンプルのグループで発生するスペクトルを痴呆患者のグループで発生するサンプルスペクトルと比較すると、相違して現れたピークは識別される。
【0025】
SELDI分析は、金属親和性を有する特異的ポリペプチドを検出するために未精製のヒトCSFサンプルの2μlを使用して行う。固定化銅親和性アレイ(IMAC−Cu++)は、サンプルからタンパク質の特異的サブセットのために選択する銅に対して親和性を有するタンパク質を捕獲するためにこのアプローチで使用される。捕獲されたタンパク質は、PBSII タンパク質チップアレイリーダ(Ciphergen バイオシステム、フリーモント、CA、USA)を使用して直接検出される。
【0026】
次の手順は、クロマトグラフィックTED−Cu(II)吸着アレイを使用してタンパク質チップアレイのプロセッシングや分析のために使用される。TEDは、シリコンオキシドでコーティングされたステンレス鋼基板上にコーティングされた(トリス(カルボニルメチル)エチレンジアミン−Cu)吸着剤である。
・表面は、最初に各スポットに対して100mMの硫酸銅10μlでロードされ、保湿槽で15分間保温される。
・その後、過剰な非結合銅を取り除くため、チップを約10秒間脱イオン水で2回すすぐことにより洗う。
・サンプルをロードする前、I−MAC3アレイは、5分間PBS NaCl 0.5Mの5μlで一度平衡になる。
・平衡バッファを取り除いた後、同じバッファ3μlを、CSF2μlを適用する前に、加える。チップは保湿槽で20分間保温される。
・サンプルはその後取り除かれ、その表面を平衡バッファ(5分おきに)3回洗う。
・最後に2回水でそそぐ。
・その表面は、空気乾燥をした後、50%アセトニトリルと0.5%トリフルオロアセチル酸中で合成された不飽和シナピン酸(SPA、Ciphergen バイオシステム)の0.5μlを加える。
・レーザー脱離/イオン化飛行時間型質量分析法で各スポットの保持されたタンパク質の分析の前に、チップを再び空気乾燥する。
・いったん、データ収集を自動化するために適切な検知感度とレーザーエネルギーを確立して、タンパク質チップアレイを装置の中へ入れ、分析する。
・得られたスペクトルは、デルディメンション4100PC上で起動するバイオマークウィザードソフトウェア(Ciphergen バイオシステム、フリーモント、CA、USA)で分析される。それは、マルチプルスペクトルに交差して一致するピークセットを生じる。
【0027】
図1から図4は、上述したように調製したIMAC3タンパク質チップアレイを使用して、CJD診断患者からのCSFと標準のCSFとの間で行われる比較研究の結果を示す。この研究では、我々は、CJDの影響を受けた患者からのCSFにおいて、4つのピークが大きく相違する増加をすることが分かった。これらの分子量はそれぞれ、約4780、6700、8600、及び13375である(質量精度は約0.1%である)。図1は、0から100,000Daまでの2つのスペクトルビューであって、それぞれ標準サンプルとCJDサンプルとを示している。図2は、4780Daのタンパク質のピークを示している。図3は、6700と8600Daのタンパク質のピークを示している。図4は、13375Daのタンパク質のピークを示している。これらのデータは、約4780、6700、8600、及び13375DaのピークはCSFサンプルにおけるCJDを診断するために使用することができるということを証明している。
【実施例2】
【0028】
BSE感染牛(BSE+)と非感染牛(BSE−)からの血漿サンプルを使用して、実施例1を繰り返す。この結果は、図5及び図6で示される。図5は、0から50,000Daまでのサンプルの種類ごとのスペクトルビューを示す。我々は、図6で説明したように、約10220Daのタンパク質は、BSE+血漿サンプルにおいてかなり増加していることを観察した。このことは、約10220Daのピークは血漿サンプルにおけるBSEを診断するために使用することができるということを証明している。
【実施例3】
【0029】
CJD感染患者(CJD+)と非感染患者(CJD−、またCTS=スイス輸血センターとして言及される)からの血漿サンプルを使用して、実施例2を繰り返す。この結果は、図7及び8に示される。図7は、0から50,000Daまでのサンプルの種類ごとのスペクトルビューを示す。我々は、図8A及び図8Bで説明したように、約3970、約3990、約4294、約4478、約10075、約11730、約14043、または約17839のポリペプチドは、CJD+血漿サンプルにおいてかなり減少していることを観察した。我々は、また、図8Bで説明するように、約7770DaのピークはCJD+血漿サンプルにおいて増加していることを観察した。このことは、約3970、約3990、約4294、約4478、約10075、約11730、約14043、約17839、または約7770Daのピークは血漿サンプルにおいてCJDを診断するために使用することができるということを証明している。
【実施例4】
【0030】
実施例3を繰り返すが、データを分析するソフトウェアのより最新のバージョンを使用する。この結果は図9Aから9Eに示しており、上記の実施例でのそれらの同定に加えて、タンパク質のレベルでいくつかの新しいバリエーションを示している。
【0031】
図9Aにおいて、矢印は約3295Daのピークを示しており、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
図9Bにおいて、番号が付された矢印は、以下を示す。
【0032】
1−約3976Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での3970Daのピークに対応する)。
2−約3992Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での3990Daのピークに対応する)。
【0033】
3−約4300Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での4294Daのピークに対応する)。
4−約4315Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
【0034】
5−約4436Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
6−約4484Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での4478Daのピークに対応する)。
【0035】
図9Cにおいて、矢印は約6200Daのピークを示しており、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
図9Dにおいて、番号が付された矢印は、以下を示す。
【0036】
10−約7574Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて増加している。
11−約7773Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて増加している(実施例3での7770Daのピークに対応する)。
【0037】
12−約7930Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて増加している。
13−約7975Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて増加している。
【0038】
14−約8020Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて増加している。
15−約8936Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
【0039】
16−約9107Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
17−約9145Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
【0040】
18−約9185Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
19−約9454Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
【0041】
図9Eにおいて、番号が付された矢印は、以下を示す。
20−約10068Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での10075Daのピークに対応する)。
【0042】
21−約13550Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している。
22−約17809Daのピークであって、そのピークはCJDサンプルにおいて減少している(実施例3での17839Daのピークに対応する)。
【0043】
この実施例は、上記のピークのうちいずれか1つ、またはどのような組み合わせでもそれらのうちの2つ以上のピークはCJDを診断するのに使用できることを証明している。
上記で引用した各公開公報は、この明細書中で依存される範囲で参照されることにより、この明細書中に組み込まれている。
【図面の簡単な説明】
【0044】
【図1】図1は、レーザー脱離/イオン化質量分析を使った標準のサンプルとCJD感染のサンプルとからのCSFのスペクトル図である。
【図2】図2は、CJD感染CSFサンプルにおける約4780Daでのタンパク質ピークを強調している対応図である。
【図3】図3は、CJD感染CSFサンプルにおける約6700と8600Daでのタンパク質ピークを強調している対応図である。
【図4】図4は、CJD感染CSFサンプルにおける約13375Daでのタンパク質ピークを強調している対応図である。
【図5】図5は、レーザー脱離/イオン化質量分析を使った標準のサンプルとBSE感染サンプルとからの血漿のスペクトル図である。
【図6】図6は、図5に対応し、BSE感染血漿サンプルにおける約10220Daでのタンパク質ピークを強調している図である。
【図7】図7は、レーザー脱離/イオン化質量分析を使ったCJD感染患者(CJD+)と非CJD感染患者(CJD−)とからの血漿のスペクトル図である。
【図8A】図8Aは、図7に対応し、CJD+とCJD−の血漿サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークを強調している図である。
【図8B】図8Bは、図7に対応し、CJD+とCJD−の血漿サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークを強調している図である。
【図9A】図9Aは、感染及び非感染サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークをさらに強調しているCJD感染患者からの血漿(血漿CJD)と非感染患者からの血漿(血漿CTS)のスペクトル図である。
【図9B】図9Bは、感染及び非感染サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークをさらに強調しているCJD感染患者からの血漿(血漿CJD)と非感染患者からの血漿(血漿CTS)のスペクトル図である。
【図9C】図9Cは、感染及び非感染サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークをさらに強調しているCJD感染患者からの血漿(血漿CJD)と非感染患者からの血漿(血漿CTS)のスペクトル図である。
【図9D】図9Dは、感染及び非感染サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークをさらに強調しているCJD感染患者からの血漿(血漿CJD)と非感染患者からの血漿(血漿CTS)のスペクトル図である。
【図9E】図9Eは、感染及び非感染サンプルにおいて相違して表されたポリペプチドピークをさらに強調しているCJD感染患者からの血漿(血漿CJD)と非感染患者からの血漿(血漿CTS)のスペクトル図である。
【Technical field】
[0001]
The present invention relates to a method for diagnosing infectious spongiform encephalopathy (TSE).
[Background]
[0002]
Infectious spongiform encephalopathy (TSEs) is a neurodegenerative disease of the central nervous system. They can be transmitted, inherited or sporadic, and are also observed in animals, such as bovine spongiform encephalopathy (BSE) in cattle or scrapie in sheep, Creutzfeldt-Jakob in humans Similar to illness (CJD), Gerstmann-Stroisler-Scheinker syndrome, fatal familial insomnia, or cool. They have a long incubation period and lead to ataxia, dementia, mental disorders, and death. Neuropathic changes include vacuolar degeneration of brain tissue, astrogliosis, and amyloid plaque formation. It is difficult to diagnose that these diseases develop before birth.
DISCLOSURE OF THE INVENTION
[Problems to be solved by the invention]
[0003]
CJD patient cerebrospinal fluid (CSF) was analyzed by two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis [Harrington, M .; G. New England Journal of Medicine 315, 279 (1986), Hsick, G. et al. Kenney, K .; , Gibbs, C.I. J. et al. Lee, K .; H. & Harrington, M .; B. New England Journal of Medicine 335, 924 (1996). ] Shows two added polypeptides (known as 14-3-3 polypeptides). The effect of those 14-3-3 polypeptides remains unclear in TSE. They can be used in prenatal testing due to advances in CJD diagnosis, but are less specific.
[0004]
PCT specifications WO 98/23962 and 98/32710; Schmerr, M .; J. et al. , The Beckmann Coulter Pace Setter Newsletter 3 (2), 1-4 (June 1999), the use of monoclonal antibodies against prion protein aberrant formation (related to CJD) Can be used in enzyme immunoassays, but these methods have not yet been fully developed.
[0005]
PCT / EP 01/02894 relates to diagnostic analysis for TSEs in which the concentration of cardiac or brain fatty acids bound to a protein (H-FABP or B-FABP) is determined in a sample of body fluid.
[0006]
US-A-6225047 describes the use of retentate chromatography to generate a difference map, and in particular describes a method for identifying analytes that differ between two samples. One special method described therein is laser desorption mass spectrometry.
[0007]
WO 01/25791 describes a method for assisting in the diagnosis of prostate cancer, which determines the test amount of a polypeptide marker, which is a subject of prostate cancer patients and non-prostate cancer patients. There are differences in the samples. The marker is determined using mass spectrometry, preferably laser desorption mass spectrometry.
[0008]
New methods for determining the development and markers of new non-invasive TSE markers for body fluids (especially CJD and BSE markers in blood) will help clinicians establish early diagnosis. This problem is now solved by the present invention.
[Means for Solving the Problems]
[0009]
The present invention provides a method for diagnosing infectious spongiform encephalopathy (TSE), or a method for diagnosing that possibility in a subject suspected of having TSE. The diagnostic method consists of mass analyzing a sample of bodily fluid removed from the subject, thereby determining the test amount of the polypeptide in the sample. The polypeptide is contained differently in the body fluids of TSE infected and non-TSE infected subjects, has a molecular weight in the range of 3500 to 30000, and is the test amount consistent with the diagnosis of TSE? Determined by no.
[0010]
The present invention is also a polypeptide that is differentially contained in the body fluids of TSE-infected subjects and non-TSE-infected subjects, and has a molecular weight in the range of 3500 to 30000, and is diagnostic, predictive, therapeutic For applications, the use of polypeptides that can be determined by mass spectrometry is provided.
[0011]
The present invention further provides kits for use in the diagnosis of TSE. The kit consists of a probe for receiving a sample of body fluid and placing it by mass spectrometry, thereby determining the test amount of the polypeptide in the sample. The polypeptide is contained differently in body fluids between TSE-infected subjects and non-TSE-infected subjects and has a molecular weight in the range of 3500 to 30000.
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
[0012]
The present invention provides a method for diagnosing infectious spongiform encephalopathy (TSE), or a method for diagnosing that possibility in a subject suspected of having TSE. A sample of body fluid removed from the subject is subjected to mass spectrometry to determine the presence or absence of a polypeptide marker contained differently in the body fluid of the TSE infected subject and the uninfected subject. The polypeptide marker has a molecular weight in the range of 3500 to 30000, preferably 3900 to 18000, which guides whether the presence or absence of the marker is TSE.
[0013]
This method can be applied to all types of TSE and can be applied to any human or animal suffering from or suspected of suffering. This method is particularly applicable to the diagnosis of symptoms similar to BSE in other animals, such as CJD in human patients, especially new mutant CJD, BSE in ruminants such as cattle, and scrapie in sheep.
[0014]
The term polypeptide includes proteins and protein fragments as well as peptides modified by, for example, the addition of non-peptide residues of carbohydrates, phosphates, sulfates, or other post-translational modifications.
[0015]
The sample is absorbed by the probe under conditions that allow binding between the polypeptide and the absorbent material of the probe. The absorbent material is preferably composed of metal chelate groups that complex with metal ions, and the preferred metal is copper. Prior to detection of the polypeptide, material that is unbound or weakly bound to the probe is removed with a wash solution, thereby enriching the polypeptide in the sample. The sample is preferably absorbed by a probe having an immobilized metal affinity capture (IMAC) surface that can bind to the polypeptide. The sample is also absorbed by a probe having a hydrophobic, strong anionic, or weakly cationic exchange surface under conditions that allow the polypeptide to bind. The probe consists of an elongated piece with several suction holes, placed in the spectrometer, then moved in it, each piece is struck in turn by the ionization means (eg laser) and read out by the spectrometer . The polypeptide is preferably determined by surface amplified laser desorption / ionization (SELDI) and time-of-flight mass spectrometry (TOF-MS).
[0016]
In principle, any body fluid can be used to provide a sample for diagnosis, but preferably the body fluid is cerebrospinal fluid (CSF), plasma, serum, blood, urine, or tears. is there.
[0017]
In one embodiment of the invention, the TSE is Creutzfeldt-Jakob disease (CJD). In this case, the polypeptide preferably has a molecular weight of about 4780, about 6700, about 8600, or about 13375, indicating that one or more of such polypeptides is CJD. Alternatively, one or more polypeptides each having a molecular weight of about 3970, about 3990, about 4294, about 4478, about 10075, about 11730, about 14043, or about 17839 are determined, and so on One or more deficiencies of a particular polypeptide is shown to be CJD. Further alternatively, a polypeptide having a molecular weight of about 7700 is determined, indicating that the presence of such a polypeptide is CJD. For another example, CJD has one or more of the following peaks: about 3295, about 4315, about 4436, about 6200, about 8936, about 9107, about 9145, about 9185, about 9454, and about Indicated by a decrease of 13550 Da. For further examples, CJD is also indicated by an increase in one or more of the following peaks: about 7574, about 7930, about 7975, and 8020. The present invention finds its true value in adopting measurement at any one or more of the above molecular weight values in any combination thereof for the purpose of diagnosing CDJ.
[0018]
In another embodiment of the invention, the TSE is bovine spongiform encephalopathy (BSE). In this case, the polypeptide preferably has a molecular weight of about 10220, indicating that the presence of the polypeptide is BSE.
[0019]
In a further embodiment of the invention, the TSE is scrapie.
Measurement of the molecular weight of a polypeptide or group of polypeptides is accomplished by mass spectrometry. All molecular weights here are measured by Da. The molecular weight quoted above can be measured with an accuracy better than 1%, preferably within the range of about 0.1%. As used herein, the term “about” in terms of molecular weight means within a range of about 1% variation, preferably within a range of about 0.1%, for the values quoted above or below.
[0020]
The present invention also relates to the use of a polypeptide that is differentially contained in the body fluids of TSE infected and non-infected subjects for diagnostic, predictive and therapeutic applications, the polypeptide having a range of 3500 to 30000. It has a molecular weight and can be determined by mass spectrometry. This involves the synthesis and / or use of materials that recognize, bind to or have some affinity for the polypeptides referred to above. Examples of such materials are antibodies and antibody chips. The term “antibody” as used herein includes polyclonal antisera, monoclonal antibodies, fragments of antibodies such as Fab, and genetically modified antibodies. The antibody may be a chimera or a single species. The “predictive” application referred to above includes determining the likely course of TSE, for example by measuring the amount of the polypeptide referred to above in a sample of body fluid. The “therapeutic” applications referred to above include, for example, the synthesis of materials that recognize, bind to, or have an affinity for the polypeptides referred to above, and do so in therapy. The use of new materials. The material is then modified, for example, by combining an antibody and a drug, thereby targeting the drug to a specific region of the target animal.
[0021]
The method procedure of the present invention can be applied to any TSE diagnosis. Body fluid samples are procured from infected and non-infected subjects. Due to the differential retention of the polypeptide in the sample, the sample was treated with various absorbent media, selectively using wash solution to remove unbound or weakly bound material. It can be applied to a probe having a surface. If appropriate, energy absorbing materials can also be applied. The probe is then entered into mass spectrometry and readings are taken for various sample / absorption combinations using various mass spectrometry settings. Comparison of infected and non-infected samples under a given set of conditions reveals one or more polypeptides that appear differently in infected and non-infected samples. The presence or absence of these polypeptides is used in testing a subject's fluid sample under similar conditions (absorbent, analyzer settings, etc.) that determine whether the subject is infected.
[0022]
It should be understood that reference herein to “present or not” of a polypeptide simply means that there is a considerable difference in the amount of polypeptide detected in a sample of infected and non-infected. is there. Thus, the “presence” of a polypeptide in a test sample includes the possibility that the polypeptide is actually present, but in a significantly lower amount than in the comparative test sample. According to the present invention, a diagnosis is made based on the presence or absence of a polypeptide, which includes the presence of the polypeptide in a significantly smaller or significantly larger amount with reference to a comparative test sample.
[0023]
The following example demonstrates the invention.
[Example 1]
[0024]
The purpose of this study is to detect specific polypeptides in body fluids (cerebrospinal fluid, plasma, and others) of patients with Creutzfeldt-Jakob disease. Samples are analyzed by surface amplified laser desorption ionization (SELDI) mass spectrometry (MS) techniques. This technique involves microscale affinity capture of proteins by using different forms of retentate chromatography and then analysis by time-of-flight mass spectrometry. A different map is generated corresponding to each of the typical protein profilings of a given sample analyzed using Ciphergen Biosystems PBS II mass spectrometry (Fremont, CA, USA). When the spectrum generated in a group of cerebrospinal fluid (CSF) samples from a CJD patient is compared with the sample spectrum generated in a group of demented patients, the peaks that appeared differently are identified.
[0025]
SELDI analysis is performed using 2 μl of an unpurified human CSF sample to detect specific polypeptides with metal affinity. An immobilized copper affinity array (IMAC-Cu ++ ) is used in this approach to capture proteins that have an affinity for copper to select for a specific subset of proteins from a sample. Captured proteins are detected directly using a PBSII protein chip array reader (Ciphergen Biosystems, Fremont, CA, USA).
[0026]
The following procedure is used for processing and analysis of protein chip arrays using chromatographic TED-Cu (II) adsorption arrays. TED is an adsorbent (tris (carbonylmethyl) ethylenediamine-Cu) coated on a stainless steel substrate coated with silicon oxide.
The surface is first loaded with 10 μl of 100 mM copper sulfate for each spot and incubated for 15 minutes in a moisturizer.
-The tip is then rinsed by rinsing twice with deionized water for about 10 seconds to remove excess unbound copper.
Before loading the sample, the I-MAC3 array is equilibrated once with 5 μl of PBS NaCl 0.5M for 5 minutes.
After removing the equilibration buffer, add 3 μl of the same buffer before applying 2 μl of CSF. The chip is kept warm in a moisturizing tank for 20 minutes.
The sample is then removed and the surface is washed 3 times with equilibration buffer (every 5 minutes).
・ Pour with water twice at the end.
The surface is air-dried and then 0.5 μl of unsaturated sinapinic acid (SPA, Ciphergen Biosystem) synthesized in 50% acetonitrile and 0.5% trifluoroacetyl acid is added.
• Air dry the chip again before analysis of retained protein in each spot with laser desorption / ionization time-of-flight mass spectrometry.
• Once the appropriate detection sensitivity and laser energy are established to automate data collection, the protein chip array is placed into the instrument and analyzed.
The resulting spectrum is analyzed with Biomark Wizard software (Ciphergen Biosystems, Fremont, CA, USA) running on a Dell Dimension 4100 PC. It produces a peak set that crosses and matches multiple spectra.
[0027]
FIGS. 1-4 show the results of a comparative study conducted between CSF from CJD diagnosed patients and standard CSF using the IMAC3 protein chip array prepared as described above. In this study, we found that the four peaks had a significantly different increase in CSF from patients affected by CJD. Their molecular weights are about 4780, 6700, 8600, and 13375, respectively (mass accuracy is about 0.1%). FIG. 1 shows two spectral views from 0 to 100,000 Da, showing a standard sample and a CJD sample, respectively. FIG. 2 shows the protein peak at 4780 Da. FIG. 3 shows the protein peaks at 6700 and 8600 Da. FIG. 4 shows the protein peak at 13375 Da. These data demonstrate that the peaks at about 4780, 6700, 8600, and 13375 Da can be used to diagnose CJD in CSF samples.
[Example 2]
[0028]
Example 1 is repeated using plasma samples from BSE infected cattle (BSE +) and non-infected cattle (BSE-). The result is shown in FIGS. FIG. 5 shows a spectral view for each type of sample from 0 to 50,000 Da. We observed that the protein of about 10220 Da was significantly increased in the BSE + plasma sample as illustrated in FIG. This demonstrates that the peak at about 10220 Da can be used to diagnose BSE in plasma samples.
[Example 3]
[0029]
Example 2 is repeated using plasma samples from CJD infected patients (CJD +) and non-infected patients (CJD-, also referred to as CTS = Swiss Transfusion Center). This result is shown in FIGS. FIG. 7 shows a spectral view for each type of sample from 0 to 50,000 Da. We have found that about 3970, about 3990, about 4294, about 4478, about 10075, about 11730, about 14043, or about 17839 polypeptides are significantly reduced in CJD + plasma samples as described in FIGS. 8A and 8B. Observed that. We also observed that the peak at about 7770 Da increased in the CJD + plasma sample, as illustrated in FIG. 8B. This means that peaks of about 3970, about 3990, about 4294, about 4478, about 10075, about 11730, about 14043, about 17839, or about 7770 Da can be used to diagnose CJD in plasma samples. Prove that.
[Example 4]
[0030]
Example 3 is repeated, but using a more recent version of the software that analyzes the data. The results are shown in FIGS. 9A through 9E, showing some new variations at the protein level in addition to their identification in the above examples.
[0031]
In FIG. 9A, the arrow indicates a peak at about 3295 Da, which peak decreases in the CJD sample.
In FIG. 9B, numbered arrows indicate the following.
[0032]
1—a peak at about 3976 Da, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 3970 Da peak in Example 3).
2—A peak at about 3992 Da, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 3990 Da peak in Example 3).
[0033]
3—A peak at about 4300 Da, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 4294 Da peak in Example 3).
4—A peak at about 4315 Da, which decreases in the CJD sample.
[0034]
5—A peak at about 4436 Da, which is reduced in the CJD sample.
6—A peak at about 4484 Da, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 4478 Da peak in Example 3).
[0035]
In FIG. 9C, the arrow indicates a peak at about 6200 Da, which peak decreases in the CJD sample.
In FIG. 9D, numbered arrows indicate the following.
[0036]
10—about 7574 Da peak, increasing in the CJD sample.
11—A peak at about 7773 Da, which is increased in the CJD sample (corresponding to the 7770 Da peak in Example 3).
[0037]
12—a peak at about 7930 Da, which is increased in the CJD sample.
13—A peak at about 7975 Da, which is increased in the CJD sample.
[0038]
14—A peak at about 8020 Da, which increases in the CJD sample.
15—about 8936 Da peak, which is reduced in the CJD sample.
[0039]
16—A peak at about 9107 Da, which is reduced in the CJD sample.
17—A peak at about 9145 Da, which is reduced in the CJD sample.
[0040]
18—A peak at about 9185 Da, which is reduced in the CJD sample.
19—A peak at about 9454 Da, which is reduced in the CJD sample.
[0041]
In FIG. 9E, numbered arrows indicate the following.
20—about 10068 Da peak, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 10075 Da peak in Example 3).
[0042]
21—about 13550 Da peak, which is reduced in the CJD sample.
22—about 17809 Da peak, which is reduced in the CJD sample (corresponding to the 17839 Da peak in Example 3).
[0043]
This example demonstrates that any one of the above peaks, or any combination of two or more of them can be used to diagnose CJD.
Each of the publications cited above is incorporated herein by reference to the extent dependent on this specification.
[Brief description of the drawings]
[0044]
FIG. 1 is a spectral diagram of CSF from a standard sample and a sample of CJD infection using laser desorption / ionization mass spectrometry.
FIG. 2 is a correspondence diagram highlighting the protein peak at about 4780 Da in CJD infected CSF samples.
FIG. 3 is a correspondence diagram highlighting protein peaks at approximately 6700 and 8600 Da in CJD-infected CSF samples.
FIG. 4 is a correspondence diagram highlighting the protein peak at about 13375 Da in CJD infected CSF samples.
FIG. 5 is a spectral diagram of plasma from a standard sample and a BSE infected sample using laser desorption / ionization mass spectrometry.
FIG. 6 corresponds to FIG. 5 and highlights the protein peak at approximately 10220 Da in the BSE-infected plasma sample.
FIG. 7 is a spectral diagram of plasma from CJD infected patients (CJD +) and non-CJD infected patients (CJD−) using laser desorption / ionization mass spectrometry.
FIG. 8A is a diagram corresponding to FIG. 7 and highlighting polypeptide peaks that are expressed differently in CJD + and CJD− plasma samples.
FIG. 8B is a diagram corresponding to FIG. 7 and highlighting polypeptide peaks that are differentially represented in plasma samples of CJD + and CJD−.
FIG. 9A shows plasma from CJD-infected patients (plasma CJD) and plasma from non-infected patients (plasma CTS) further highlighting the differentially expressed polypeptide peaks in infected and non-infected samples. FIG.
FIG. 9B shows plasma from CJD-infected patients (plasma CJD) and plasma from non-infected patients (plasma CTS) further highlighting the differentially expressed polypeptide peaks in infected and non-infected samples. FIG.
FIG. 9C shows plasma from CJD-infected patients (plasma CJD) and plasma from non-infected patients (plasma CTS) further highlighting the differentially expressed polypeptide peaks in infected and uninfected samples. FIG.
FIG. 9D shows plasma from CJD-infected patients (plasma CJD) and plasma from non-infected patients (plasma CTS) further highlighting the differentially expressed polypeptide peaks in infected and uninfected samples. FIG.
FIG. 9E shows plasma from CJD-infected patients (plasma CJD) and plasma from non-infected patients (plasma CTS) further highlighting the differentially expressed polypeptide peaks in infected and uninfected samples. FIG.

Claims (23)

感染性海綿状脳症(TSE)または該TSEを患っている疑いのある被験者においてその可能性の診断方法は、
前記被験者から取り出した体液のサンプルを質量分析にかけて、それにより該サンプルにおけるポリペプチドのテスト量を決定し、
前記テスト量が前記TSEの診断に対応するか否かを判断することを備え、
前記ポリペプチドは、TSE感染被験者と非感染被験者の前記体液で相違して含まれており、3500から30000までの範囲で分子量を有する。
Infectious spongiform encephalopathy (TSE) or a method of diagnosing that possibility in a subject suspected of suffering from the TSE is:
Subjecting a sample of body fluid removed from the subject to mass spectrometry, thereby determining a test amount of the polypeptide in the sample;
Determining whether the test quantity corresponds to a diagnosis of the TSE;
The polypeptide is contained differently in the body fluids of TSE-infected subjects and non-infected subjects and has a molecular weight in the range of 3500 to 30000.
前記ポリペプチドは、TSE感染被験者の体液に存在し、非TSE感染被験者の体液には存在せず、これにより体液サンプル中の前記ポリペプチドの存在がTSEであることを示す請求項1に記載の方法。2. The polypeptide of claim 1, wherein the polypeptide is present in the body fluid of a TSE infected subject and not in the body fluid of a non-TSE infected subject, thereby indicating that the presence of the polypeptide in a body fluid sample is TSE. Method. 前記ポリペプチドは、TSE感染被験者の体液に存在せず、非TSE感染被験者の体液には存在し、これにより体液サンプル中の前記ポリペプチドの非存在がTSEであることを示す請求項1に記載の方法。2. The polypeptide is not present in the body fluid of a TSE-infected subject but is present in the body fluid of a non-TSE-infected subject, thereby indicating that the absence of the polypeptide in the body fluid sample is TSE. the method of. 前記質量分析は、レーザー脱離/イオン化質量分析である請求項1から3のうちいずれか1項に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the mass spectrometry is laser desorption / ionization mass spectrometry. 前記サンプルは、固定化金属親和性捕獲(IMAC)、該ポリペプチドと結合する疎水性、強アニオン性、または弱カチオン性交換表面を有するプロープで吸収される請求項1から4のうちいずれか1項に記載の方法。5. The sample of claim 1, wherein the sample is absorbed with a probe having immobilized metal affinity capture (IMAC), a hydrophobic, strong anionic, or weakly cationic exchange surface that binds to the polypeptide. The method according to item. 前記ポリペプチドは、表面増幅レーザー脱離/イオン化(SELDI)及び飛行時間型質量分析法(TOF−MS)によって決定される請求項1から5のうちいずれか1項に記載の方法。6. The method of any one of claims 1-5, wherein the polypeptide is determined by surface amplified laser desorption / ionization (SELDI) and time-of-flight mass spectrometry (TOF-MS). 前記体液は、脳脊髄液、血漿、血清、血液、または涙である請求項1から6のうちいずれか1項に記載の方法。The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the body fluid is cerebrospinal fluid, plasma, serum, blood, or tears. 複数の前記ポリペプチドは前記サンプル内で決定される請求項1から7のうちいずれか1項に記載の方法。8. The method of any one of claims 1 to 7, wherein a plurality of the polypeptides are determined within the sample. 前記TSEは、クロイツフェルト・ヤコブ病(CJD)である請求項1から8のうちいずれか1項に記載の方法。The method according to any one of claims 1 to 8, wherein the TSE is Creutzfeldt-Jakob disease (CJD). 約4780、約6700、約8600、または約13375の分子量を有する1またはそれより多くのそれぞれのポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの1つまたはそれより多い存在がCJDであることを示す請求項9に記載の方法。One or more respective polypeptides having a molecular weight of about 4780, about 6700, about 8600, or about 13375 are determined, indicating that the presence of one or more of such polypeptides is CJD The method of claim 9. 約3970、約3990、約4294、約4478、約10075、約11730、約14043、または約17839の分子量をそれぞれ有する1つまたはそれより多いポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの1つまたはそれより多い不存在がCJDを示す請求項9、または10に記載の方法。One or more polypeptides each having a molecular weight of about 3970, about 3990, about 4294, about 4478, about 10075, about 11730, about 14043, or about 17839 are determined, and one or more of such polypeptides 11. A method according to claim 9 or 10, wherein a greater absence indicates CJD. 約7700の分子量を有するポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの存在がCJDであることを示す請求項9から11のうちいずれか1項に記載の方法。12. A method according to any one of claims 9 to 11 wherein a polypeptide having a molecular weight of about 7700 is determined and the presence of such a polypeptide is CJD. 約3295、約4315、約4436、約6200、約8936、約9107、約9145、約9185、約9454、または約13550Daの分子量を有するポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの1つ以上の不存在または減少量がCJDであることを示す請求項9から12のうちいずれか1項に記載の方法。A polypeptide having a molecular weight of about 3295, about 4315, about 4436, about 6200, about 8936, about 9107, about 9145, about 9185, about 9454, or about 13550 Da is determined, and one or more of such polypeptides 13. A method according to any one of claims 9 to 12, wherein the absence or reduction amount indicates CJD. 約7574、約7930、約7975、または約8020Daの分子量を有するポリペプチドが決定され、そのようなポリペプチドの1つ以上の存在または増加量がCJDであることを示す請求項9から13のうちいずれか1項に記載の方法。The polypeptide of claim 9 to 13, wherein a polypeptide having a molecular weight of about 7574, about 7930, about 7975, or about 8020 Da is determined and indicates that the presence or increase of one or more of such polypeptides is CJD The method according to any one of the above. 前記TSEは牛海綿状脳症(BSE)である請求項1から8のうちいずれか1項に記載の方法。The method according to any one of claims 1 to 8, wherein the TSE is bovine spongiform encephalopathy (BSE). 前記ポリペプチドは約10220の分子量を有し、該ポリペプチドの存在がBSEであることを示す請求項15に記載の方法。16. The method of claim 15, wherein the polypeptide has a molecular weight of about 10220, wherein the presence of the polypeptide is BSE. 前記TSEはスクレピーである請求項1から8のうちいずれか1項に記載の方法。9. A method according to any one of claims 1 to 8, wherein the TSE is scrapie. 診断、前兆、治療への適用に対して、TSE感染被験者と非感染被験者の体液で相違して含まれるポリペプチドの使用であって、
前記ポリペプチドは、3500から30000までの範囲で分子量を有し、質量分析により決定することができる。
Use of a polypeptide that is differentially contained in the body fluids of a TSE-infected subject and a non-infected subject for diagnostic, predictive, therapeutic applications,
The polypeptide has a molecular weight in the range of 3500 to 30000 and can be determined by mass spectrometry.
診断、前兆、治療への適用に対しての材料の使用であって、
該材料は、TSE感染被験者と非感染被験者の体液で相違して含まれるポリペプチドを認識したり、該ポリペプチドと結合したり、または該ポリペプチドと親和性を有したりし、
前ポリペプチドは、3500から30000までの範囲で分子量を有し、質量分析により決定することができる。
The use of materials for diagnostic, predictive, therapeutic applications,
The material recognizes a polypeptide contained differently in the body fluid of a TSE-infected subject and a non-infected subject, binds to the polypeptide, or has an affinity for the polypeptide,
The prepolypeptide has a molecular weight in the range of 3500 to 30000 and can be determined by mass spectrometry.
前記材料は、抗体または抗体チップである請求項19に記載の使用。The use according to claim 19, wherein the material is an antibody or an antibody chip. TSEの診断で使用するためのキットであって、体液のサンプルを受け取って、質量分析で配置するためのプローブからなり、
それにより該サンプルでのポリペプチドのテスト量を決定し、
該ポリペプチドはTSE感染被験者とTSE非感染の被験者との体液で相違して含まれており、
該ポリペプチドは、3500から30000までの範囲で分子量を有する。
A kit for use in diagnosis of TSE comprising a probe for receiving a sample of body fluid and placing it in mass spectrometry;
Thereby determining the test amount of polypeptide in the sample,
The polypeptide is contained differently in body fluids between TSE-infected subjects and non-TSE-infected subjects,
The polypeptide has a molecular weight in the range of 3500 to 30000.
前記プローブは前記ポリペプチドの吸収のための吸着剤を含む請求項21に記載のキット。The kit of claim 21, wherein the probe comprises an adsorbent for absorption of the polypeptide. さらに、前記プローブから非結合または弱い結合の前記材料を取り除くための洗浄溶液を備える請求項22に記載のキット。23. The kit of claim 22, further comprising a wash solution for removing unbound or weakly bound material from the probe.
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