JP2005333984A - L-amino acid-producing bacterium and method for producing l-amino acid - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、エシェリヒア・コリを用いたＬ−アミノ酸の製造法、特にＬ−トリプトファン、Ｌ−リジン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン、L−プロリンの製造法に関する。Ｌ−トリプトファン、Ｌ−リジン、は動物飼料用の添加物、健康食品の成分、アミノ酸輸液等として、Ｌ−フェニルアラニンは、飼料用アミノ酸、アスパルテームの前駆体として、L−チロシンはアドレナリンの合成原料として、Ｌ−グルタミン酸は、調味料原料として、アミノ酸輸液及び総合アミノ酸製剤等の成分等として、Ｌ−ヒスチジンは肝機能促進薬、ヒスタミンの前駆体として、L−システインは、食品添加物、医薬品、化粧品として、L−プロリンは輸液用アミノ酸混合物として、産業上有用なＬ−アミノ酸である。 The present invention relates to a method for producing an L-amino acid using Escherichia coli, in particular, L-tryptophan, L-lysine, L-phenylalanine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-cysteine, and L-proline. It relates to the manufacturing method. L-tryptophan, L-lysine is an animal feed additive, health food ingredient, amino acid infusion, etc., L-phenylalanine is a feed amino acid, aspartame precursor, L-tyrosine is an adrenaline synthesis raw material L-glutamic acid is used as a seasoning ingredient, amino acid infusions and synthetic amino acid preparations, etc., L-histidine is a liver function promoter, histamine precursor, L-cysteine is a food additive, pharmaceutical, cosmetic As an amino acid mixture for infusion, L-proline is an industrially useful L-amino acid.
エシェリヒア属細菌は、Ｌ−アミノ酸の発酵生産に用いられている（非特許文献１参照）。発酵生産に用いるＬ−アミノ酸生産菌の育種は、主に、組換えＤＮＡ技術を用いて目的L−アミノ酸の生合成酵素の活性が増強するように改変したり、人工変異を導入してL−アミノ酸生産能を付与したりすることにより行われている。人工変異の導入はＮ−メチル−Ｎ'−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン等の変異剤処理などによって行われてきたが、目的とする遺伝子以外にも変異が導入されやすく、生育に重要な遺伝子に変異が導入され、栄養要求性が付与された菌株が出現しやすくなることがあった。また、組換えＤＮＡ技術により、Ｌ−アミノ酸生合成系の目的酵素をコードする遺伝子を増強、あるいは欠失する場合には、一部の代謝系のみが強化又は弱化されて生合成系全体としてアンバランスを生じ、目的物質とは無関係のＬ−アミノ酸等の栄養物質が不足することがあった。このような場合、菌株が要求する栄養素や不足する栄養素を補った培地で発酵生産を行う必要があるが、母液から目的Ｌ−アミノ酸を採取する工程でこれらが不純物として混入するという問題があった。 Escherichia bacteria are used for the fermentation production of L-amino acids (see Non-Patent Document 1). Breeding of L-amino acid-producing bacteria used for fermentation production is mainly modified by using recombinant DNA technology so that the activity of the target L-amino acid biosynthetic enzyme is enhanced, or by introducing artificial mutations into L- It is carried out by imparting amino acid-producing ability. Artificial mutations have been introduced by treatment with mutagens such as N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine, but other than the target gene, mutations are easily introduced and are important genes for growth. In some cases, mutations are introduced, and strains imparted with auxotrophy are likely to appear. In addition, when a gene encoding a target enzyme of the L-amino acid biosynthesis system is enhanced or deleted by recombinant DNA technology, only a part of the metabolic system is strengthened or weakened and the entire biosynthesis system is unenhanced. There was a case where nutrients such as L-amino acids, which are balanced and unrelated to the target substance, are deficient. In such a case, it is necessary to carry out fermentation production in a medium supplemented with nutrients required by the strain or insufficient nutrients, but there is a problem that these are mixed as impurities in the step of collecting the target L-amino acid from the mother liquor. .
L−アミノ酸生産菌育種に使用するエシェリヒア属細菌の代表的なものにエシェリヒア・コリK12株がある。例えば、エシェリヒア・コリK12株を親株として育種されたＬ−アミノ酸生産株として、代謝活性を変化させた人工変異株や組換えDNA技術によりＬ−アミノ酸生合成酵素の活性が増強するように改変された菌株が知られている（特許文献１又は２参照）。
A typical Escherichia bacterium used for breeding L-amino acid-producing bacteria is Escherichia coli K12. For example, an L-amino acid producing strain bred with Escherichia coli K12 as a parent strain has been modified to enhance the activity of L-amino acid biosynthetic enzymes by artificial mutants with altered metabolic activity or recombinant DNA technology. Strains are known (see
K12株はＬ−バリン感受性を示し、L−バリンが培地中に存在すると生育が阻害される。すなわち、L−バリンを含む培地で培養した場合は、L−バリンを含まない培地で培養した場合と比べて、生育しないか、又は生育が遅くなる。一方、L−バリン無添加で培養すると、L−イソロイシン、L−ロイシンなどの分岐鎖L−アミノ酸が不足し、生育が悪くなる。よって生育をカバーするために、培地中にL−バリンと同種の分岐鎖L−アミノ酸であるL−イソロイシン、L−ロイシンを添加して培養する必要が生じる。しかしながら、L−イソロイシン、L−ロイシンを添加することは、これら以外のＬ−アミノ酸を生産する場合においては好ましくなかった。 The K12 strain exhibits L-valine sensitivity, and growth is inhibited when L-valine is present in the medium. That is, when cultured in a medium containing L-valine, it does not grow or grows slower than when cultured in a medium not containing L-valine. On the other hand, when L-valine is not added, the branched chain L-amino acids such as L-isoleucine and L-leucine are deficient and the growth is poor. Therefore, in order to cover the growth, it is necessary to add L-isoleucine and L-leucine, which are branched L-amino acids of the same kind as L-valine, to the medium and culture. However, the addition of L-isoleucine and L-leucine was not preferable in producing L-amino acids other than these.
エシェリヒア・コリでは、分岐鎖L−アミノ酸の生合成の最初の酵素である、アセトヒドロキシ酸シンターゼ（AHAS）として、AHASI,AHASII,AHASIIIの3種のアイソザイムが存在するが、K12株では、そのうち一つであるAHASIIのラージサブユニットをコードするilvG遺伝子にフレームシフト変異が導入されており、正常なilvG遺伝子が発現していない（非特許文献２参照）。 In Escherichia coli, there are three isozymes of AHASI, AHASII, and AHASIII as acetohydroxy acid synthase (AHAS), which is the first enzyme in the biosynthesis of branched-chain L-amino acids. A frameshift mutation has been introduced into the ilvG gene encoding the large subunit of AHASII, and the normal ilvG gene is not expressed (see Non-patent Document 2).
L−バリン耐性を付与する変異導入により正常なilvG遺伝子の発現が回復した株が得られることが知られている（非特許文献３参照）。また、フレームシフト変異を有しないilvG遺伝子を含むilvGMEDAオペロンが増幅されたK12株を用いたL−イソロイシン又はL−ロイシンの製造法が知られていた(特許文献３又は４参照)。また、L−バリン耐性が付与されたK12株を用いたL−ロイシンの製造法が知られていた（特許文献５参照）。 It is known that a strain in which expression of normal ilvG gene is restored can be obtained by introducing a mutation that imparts L-valine resistance (see Non-Patent Document 3). In addition, a method for producing L-isoleucine or L-leucine using the K12 strain in which the ilvGMEDA operon containing the ilvG gene having no frameshift mutation is amplified has been known (see Patent Document 3 or 4). Moreover, the manufacturing method of L-leucine using K12 strain | stump | stock provided with L-valine resistance was known (refer patent document 5).
しかし、これまでに、L−イソロイシン又はL−ロイシンのような分岐鎖L−アミノ酸以外のＬ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン、L−プロリンの生産において、K12株由来のL−アミノ酸生産菌に、Ｌ−バリン耐性を付与したり、ilvG遺伝子のフレームシフト変異を回復するような改変を行った菌は使用されていなかった。
本発明は、K12株を改変してL−トリプトファンなどのＬ−アミノ酸を効率よく生産することのできる菌株を提供すること、及び該菌株を用いてL−トリプトファンなどのＬ−アミノ酸を効率よく生産する方法を提供することを課題とする。 The present invention provides a strain capable of efficiently producing an L-amino acid such as L-tryptophan by modifying the K12 strain, and efficiently producing an L-amino acid such as L-tryptophan using the strain. It is an object of the present invention to provide a method for performing the above.
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、K12株の派生株であるSV164/pGH5株において、分岐鎖L−アミノ酸を添加することによりL−トリプトファン生産能が向上することを見出した。さらに、SV164/pGH5株において、Ｌ−バリン耐性を指標としてilvG遺伝子のフレームシフト変異を回復させることにより、分岐鎖以外のＬ−アミノ酸、特にＬ−トリプトファンを効率よく製造できることを見いだし、本発明を完成するに至った。 As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors have improved the ability to produce L-tryptophan in the SV164 / pGH5 strain, which is a derivative of the K12 strain, by adding a branched-chain L-amino acid. I found out. Furthermore, in the SV164 / pGH5 strain, it was found that by recovering the frameshift mutation of the ilvG gene using L-valine resistance as an index, L-amino acids other than branched chains, particularly L-tryptophan can be efficiently produced. It came to be completed.
すなわち、本発明は以下の通りである。
（１） エシェリヒア・コリＫ１２株又はその派生株を改変して得られるエシェリヒア・コリの菌株であって、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン、L−プロリンからなる群より選ばれる１又は２以上のＬ−アミノ酸の生産能を有し、かつL−バリン耐性を有するように改変された菌株。
（２） Ｌ−バリン耐性が20mg/LのＬ−バリンを含有する培地における生育能である、（１）の菌株。
（３） アセトヒドロキシ酸シンターゼの活性がＫ１２株より上昇するように改変されることによってＬ−バリン耐性が付与された、（１）又は（２）の菌株。
（４） 活性を有するアセトヒドロキシ酸シンターゼIIを産生するように改変された、（３）の菌株。
（５） 配列番号３または５の塩基配列を有する遺伝子を保持することにより、活性を有するアセトヒドロキシ酸シンターゼIIを産生する、（４）の菌株。
（６） （１）〜（５）のいずれかの菌株を培地で培養して、Ｌ−トリプトファン、Ｌ
−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン又はL−プロリンを該培地中又は菌体内に生成蓄積させ、該培地又は菌体より前記Ｌ−アミノ酸を回収することを特徴とする、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン又はL−プロリンの製造法。
That is, the present invention is as follows.
(1) A strain of Escherichia coli obtained by modifying Escherichia coli K12 strain or a derivative thereof, wherein L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L- A strain that has the ability to produce one or more L-amino acids selected from the group consisting of histidine, L-cysteine, and L-proline, and has been modified to have L-valine resistance.
(2) The strain according to (1), wherein the L-valine resistance is a growth ability in a medium containing 20 mg / L of L-valine.
(3) The strain of (1) or (2), to which L-valine resistance has been imparted by modification so that the activity of acetohydroxy acid synthase is higher than that of the K12 strain.
(4) The strain according to (3), which has been modified to produce acetohydroxy acid synthase II having activity.
(5) The strain according to (4), which produces an active acetohydroxyacid synthase II by retaining a gene having the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 or 5.
(6) The strain of any one of (1) to (5) is cultured in a medium, and L-tryptophan, L
-Phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-cysteine or L-proline is produced and accumulated in the medium or in the microbial body, and the L-amino acid is produced from the medium or the microbial body. A method for producing L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-cysteine, or L-proline, which is recovered.
本発明の菌株は分岐鎖L−アミノ酸が不足する条件下での生育が向上している。したがって、本発明の菌株を用いることにより、分岐鎖L−アミノ酸を培地に添加しない条件下でも、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン、L−プロリンなどのL−アミノ酸を効率よく生産することができる。 The strain of the present invention has improved growth under conditions where the branched chain L-amino acid is deficient. Therefore, by using the strain of the present invention, L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-amino acids such as L-cysteine and L-proline can be efficiently produced.
以下、本発明を詳細に説明する。
＜１＞本発明の微生物
本発明の微生物は、エシェリヒア・コリＫ１２株又はその派生株を改変して得られるエシェリヒア・コリの菌株であって、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−ヒスチジン、L−システイン、L−プロリンからなる群より選ばれる１又は２以上のＬ−アミノ酸の生産能を有し、かつ、Ｌ−バリン耐性を有するように改変された菌株である。これらのＬ−アミノ酸生産能を有すればいずれでもよいが、芳香族アミノ酸（Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−チロシン）がより好ましい。
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
<1> Microorganism of the Present Invention The microorganism of the present invention is an Escherichia coli strain obtained by modifying Escherichia coli K12 strain or a derivative thereof, and includes L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L -Modified to have the ability to produce one or more L-amino acids selected from the group consisting of tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-cysteine, and L-proline, and to have L-valine resistance Strain. Any of these L-amino acid producing ability may be used, but aromatic amino acids (L-tryptophan, L-phenylalanine, L-tyrosine) are more preferable.
エシェリヒア・コリK12株は、1922年にスタンフォード大学で分離されたものであり、λファージの溶原菌であるとともに、F因子を持ち、接合等遺伝的組み換え体の作成が可能である汎用性の高い菌株である。またエシェリヒア・コリＫ１２株のゲノム配列は既に決定されており、遺伝子情報も自由に利用出来る。(Science 277 (5331), 1453-1474 (1997) )エシェリヒア・コリＫ１２株や、これの誘導株を入手するには、例えばアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ATCC）より分譲を受けることができる（住所 12301 Parklawn Drive,Rockville Maryland 20852,United States of America ）。 Escherichia coli K12 strain was isolated at Stanford University in 1922. It is a lysogen of λ phage, has F factor, and can make genetic recombinants such as conjugation. It is a high strain. The genome sequence of Escherichia coli K12 strain has already been determined, and genetic information can be freely used. (Science 277 (5331), 1453-1474 (1997)) In order to obtain Escherichia coli K12 strain and its derivatives, for example, it can be sold by American Type Culture Collection (ATCC) ( Address 12301 Parklawn Drive, Rockville Maryland 20852, United States of America).
K12株の派生株としては、K12株由来のilvG遺伝子、すなわち後述のフレームシフト変異を有するilvG遺伝子を保持している株であれば特に制限されないが、例えば、エシェリヒア・コリ MG1655株（ATCC No.47076）、W3110株（ATCC No.27325）、SV164株（日本国特許第3032013号参照）等が挙げられる。 The derivative of the K12 strain is not particularly limited as long as it holds the ilvG gene derived from the K12 strain, that is, a strain having an ilvG gene having a frameshift mutation described later. For example, Escherichia coli MG1655 strain (ATCC No. 47076), W3110 strain (ATCC No. 27325), SV164 strain (see Japanese Patent No. 3032013), and the like.
本発明のエシェリヒア・コリ菌株を得るためには、まず、上記のようなK12株又はその派生株を、L−バリン耐性を有するように改変する。L−バリン耐性とは、高濃度のL−バリンを含有する培地で生育することができる性質を意味する。ここで、高濃度とは、例えば、20mg/L以上、好ましくは100mg/Lの濃度が挙げられる。 In order to obtain the Escherichia coli strain of the present invention, first, the K12 strain as described above or a derivative thereof is modified so as to have L-valine resistance. L-valine resistance means a property capable of growing in a medium containing a high concentration of L-valine. Here, the high concentration includes, for example, a concentration of 20 mg / L or more, preferably 100 mg / L.
改変は、例えば、エシェリヒア・コリK12株又はその派生株を変異処理し、得られた変異株の中から高濃度のL−バリンを含有する培地で生育できる株を選択することによって行うことができる。変異株を取得するための変異処理としては、特に制限はないが、例えば、紫外線照射またはN−メチル−N'−ニトロ−N−ニトロソグアニジン（NTG）もしくは亜硝酸等の通常変異処理に用いられている変異剤による処理等が挙げられる。 The modification can be performed, for example, by mutating Escherichia coli K12 strain or a derivative thereof, and selecting a strain that can grow on a medium containing a high concentration of L-valine from the obtained mutant strains. . There is no particular limitation on the mutation treatment for obtaining the mutant strain, but it is used for normal mutation treatment such as ultraviolet irradiation or N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) or nitrous acid. Treatment with a mutating agent.
例えば、固体培地を用いてL−バリン耐性株を取得する場合は、液体培地で対数増殖期又は定常期になるまで培養した変異株の培養液を培地又は食塩水などで希釈し、得られた
菌体懸濁液をL−バリンを含有する固体培地に塗布して培養する。培養は、通常、至適生育温度付近、例えば37℃で１〜３日間行う。そして、出現するコロニーをL−バリン耐性株として選択する。培地に加えるL−バリンの量としては、例えば20mg/L以上、好ましくは100mg/L程度が挙げられる。
For example, when an L-valine resistant strain is obtained using a solid medium, a culture solution of a mutant strain cultured in a liquid medium until reaching a logarithmic growth phase or a stationary phase is diluted with a medium or saline, etc. The cell suspension is applied to a solid medium containing L-valine and cultured. The culture is usually carried out at around the optimum growth temperature, for example, 37 ° C. for 1 to 3 days. Then, the appearing colony is selected as an L-valine resistant strain. The amount of L-valine added to the medium is, for example, 20 mg / L or more, preferably about 100 mg / L.
L−バリンを含有する培地としては、最小培地が挙げられる。L−バリンを含有する最小培地としては、例えば、以下の組成を有する培地が挙げられる。グルコース４g/L、リン酸一水素二ナトリウム12.8g/L、リン酸二水素カリウム3g/L、塩化ナトリウム1g/L、塩化アンモニウム１ g/L、硫酸マグネシウム5mM、塩化カルシウム0.1mM、チアミン1mg/Lに、L−バリンを20mg/L含んだ培地が挙げられる。 Examples of the medium containing L-valine include a minimum medium. Examples of the minimal medium containing L-valine include a medium having the following composition. Glucose 4g / L, Disodium monohydrogen phosphate 12.8g / L, Potassium dihydrogen phosphate 3g / L, Sodium chloride 1g / L, Ammonium chloride 1g / L, Magnesium sulfate 5mM, Calcium chloride 0.1mM, Thiamine 1mg / L Examples of L include a medium containing 20 mg / L of L-valine.
尚、この最小培地は、必要に応じて生育に必須な栄養素を含んでいてもよい。例えば、L−トリプトファン生産菌においてＬ−バリン耐性を付与する場合、L−トリプトファン生産菌はL−トリプトファンと生合成系が共通であるL−フェニルアラニン生合成系、L−チロシン生合成系酵素が弱化されているものが多く、L−フェニルアラニン、L−チロシン要求性であるため、培地には増殖に必要な程度のL−フェニルアラニン、L−チロシンを含有させることが好ましい。 In addition, this minimum culture medium may contain the nutrient essential for growth as needed. For example, when L-valine resistance is imparted in L-tryptophan-producing bacteria, L-tryptophan-producing bacteria are weakened in L-phenylalanine biosynthetic system and L-tyrosine biosynthetic system enzyme, which have a common biosynthetic system with L-tryptophan. Since many of them are L-phenylalanine and L-tyrosine-requiring, it is preferable that the medium contains L-phenylalanine and L-tyrosine to the extent necessary for growth.
さらに、L−バリン耐性は、遺伝子組み換えによって付与することもできる。例えば、K12株又はその派生株を、L−バリン生合成系に関与する酵素、すなわちアセトヒドロキシ酸シンターゼの活性がK12株より上昇するように改変することによって、L−バリン耐性を付与することができる。なお、アセトヒドロキシ酸シンターゼの活性は、Westerferd,W.W
(1945) J.Biol.Chem,161,495-502に記載の方法によって測定することができる。
Furthermore, L-valine resistance can also be conferred by genetic recombination. For example, it is possible to confer L-valine resistance by modifying the K12 strain or a derivative thereof so that the activity of an enzyme involved in the L-valine biosynthesis system, that is, acetohydroxy acid synthase is higher than that of the K12 strain. it can. The activity of acetohydroxy acid synthase is Westerferd, WW
(1945) It can be measured by the method described in J. Biol. Chem, 161, 495-502.
エシェリヒア・コリにはアセトヒドロキシ酸シンターゼとして3種のアイソザイム（AHASI,AHASII,AHASIII）が知られている。そのうちのAHASIIは、ラージサブユニットとスモールサブユニットからなる酵素であり、前者がilvG遺伝子、後者がilvM遺伝子にコードされている。 In Escherichia coli, three isozymes (AHASI, AHASII, AHASIII) are known as acetohydroxy acid synthase. Among them, AHASII is an enzyme composed of a large subunit and a small subunit. The former is encoded by the ilvG gene and the latter is encoded by the ilvM gene.
エシェリヒア・コリK12株の派生株であるMG1655株のilvG遺伝子を配列番号1 （GenBank
Accession No. AAC77488）に示す。このように、K12株又はその派生株のilvG遺伝子では、他の種類のエシェリヒア・コリ株（O株やB株）由来のilvG遺伝子（例えば、配列番号３の塩基配列を有する遺伝子；以下、正常型ilvG遺伝子と呼ぶ）の９８３−９８４位の塩基GTが欠失しているため、フレームシフト変異を起こして982〜4塩基のTGAが終始コドンになっている。このため、正常型ilvG遺伝子が発現せず、AHASII活性が欠失している。
The ilvG gene of MG1655 strain, which is a derivative of Escherichia coli K12 strain, is represented by SEQ ID NO: 1 (GenBank
Accession No. AAC77488). Thus, in the ilvG gene of the K12 strain or a derivative thereof, the ilvG gene derived from another type of Escherichia coli strain (O strain or B strain) (for example, the gene having the base sequence of SEQ ID NO: 3; hereinafter normal) Since the base GT at 983-984 positions of the type ilvG gene) is deleted, a frameshift mutation occurs and TGA of 982 to 4 bases is the termination codon. For this reason, the normal ilvG gene is not expressed and AHASII activity is deleted.
したがって、K12株由来のエシェリヒア・コリにおいてAHAS活性を上昇させるためには、活性を有するAHASIIを産生するように菌株を改変することが好ましい。そのためには、フレームシフト変異を有さないilvG遺伝子（例えば配列番号3の塩基配列を有する遺伝子）を保持するように菌株を改変することが好ましい。具体的には、配列番号１のilvG遺伝子の982〜4塩基のTGAが終始コドンとして機能しなくなる配列を有する遺伝子を導入し、フレームシフト変異を元に戻すことが好ましい。例えば、正常型ilvG遺伝子の配列（配列番号３）でK12株由来のilvGの遺伝子配列を置換することにより達成される。特に好ましくは、配列番号１の982番目のTと983番目のGとの間にGT残基を挿入することによって、達成される。 Therefore, in order to increase AHAS activity in Escherichia coli derived from the K12 strain, it is preferable to modify the strain so as to produce AHASII having activity. For that purpose, it is preferable to modify the strain so as to retain the ilvG gene having no frameshift mutation (for example, the gene having the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3). Specifically, it is preferable to introduce a gene having a sequence in which the TGA of 982 to 4 bases of the ilvG gene of SEQ ID NO: 1 does not function as a termination codon, and to reverse the frameshift mutation. For example, this can be achieved by replacing the gene sequence of ilvG derived from the K12 strain with the sequence of the normal ilvG gene (SEQ ID NO: 3). Particularly preferably, this is achieved by inserting a GT residue between the 982nd T and the 983rd G of SEQ ID NO: 1.
上記変異を導入する為には、遺伝子操作による部位特異的組換えにより、フレームシフト変異が導入されている領域を元に戻す変異を導入することによって達成出来る。
またP1形質導入等により、配列番号１のilvG遺伝子の982〜984番目の塩基を正常型ilvG遺伝子の982-986番目の塩基に置き換えることによって達成出来る。またK12株のilvG遺伝
子全長を正常型ilvG遺伝子全長と置き換えてもよい。
In order to introduce the mutation, it can be achieved by introducing a mutation that restores the region into which the frameshift mutation has been introduced by site-specific recombination by genetic manipulation.
Further, this can be achieved by replacing the 982 to 984th bases of the ilvG gene of SEQ ID NO: 1 with the 982 to 986th bases of the normal type ilvG gene by P1 transduction or the like. Further, the full length of the ilvG gene of the K12 strain may be replaced with the normal length of the normal ilvG gene.
フレームシフト変異を有さないilvG遺伝子を保持するためには、ilvG遺伝子の982〜4塩基の前を一塩基あるいは四塩基欠失させて、終始コドン上流でフレームシフトを起こし、982〜４塩基が終始コドンとして機能しなくなる変異を導入することによっても達成出来る。具体的には、配列番号１のilvG遺伝子の979のＣを欠失させることによっても達成出来る。このようなilvG遺伝子として、配列番号５の塩基配列を有する遺伝子を例示することができる。 In order to retain the ilvG gene without a frameshift mutation, one or four bases in front of 982 to 4 bases of the ilvG gene are deleted to cause a frameshift upstream of the start codon, and 982 to 4 bases It can also be achieved by introducing a mutation that does not function as a stop codon. Specifically, it can also be achieved by deleting 979 C of the ilvG gene of SEQ ID NO: 1. As such an ilvG gene, a gene having the base sequence of SEQ ID NO: 5 can be exemplified.
また、K12株において活性を有するAHASIIを産生させるための改変は、遺伝子組換え技術を利用して、正常型ilvG遺伝子（配列番号３）を導入し、正常型ilvG遺伝子の細胞内のコピー数を高めることによっても行うことができる。 Moreover, the modification for producing AHASII having activity in the K12 strain is carried out by introducing a normal ilvG gene (SEQ ID NO: 3) using gene recombination technology, and calculating the number of intracellular copies of the normal ilvG gene. It can also be done by raising it.
この場合、効率よくAHASIIの活性を上昇させるためには、AHASIIのスモールサブユニットをコードするilvM遺伝子（例えば、GenBank Accession No. X04890の2374-2637）も導入することが好ましい。この場合、正常型ilvG遺伝子およびilvM遺伝子は別々に導入してもよいが、正常型ilvGM遺伝子（例えば、GenBank Accession No. X04890の731-2637）として同時に導入してもよい。また、正常型ilvG遺伝子を含むilvGMEDAオペロン（例えば、GenBank Accession No. X04890）として導入してもよい。 In this case, in order to efficiently increase the activity of AHASII, it is preferable to introduce an ilvM gene (eg, 2374-637 of GenBank Accession No. X04890) encoding the small subunit of AHASII. In this case, the normal ilvG gene and the ilvM gene may be introduced separately, but may be introduced simultaneously as a normal ilvGM gene (for example, 731-2637 of GenBank Accession No. X04890). Further, it may be introduced as an ilvGMEDA operon containing a normal ilvG gene (for example, GenBank Accession No. X04890).
なお、正常型ilvG遺伝子の細胞内のコピー数を高めるために導入する遺伝子は、ilvM遺伝子産物と複合体を形成してAHAS活性を示すことのできるタンパク質をコードする遺伝子をコードする限りにおいて、前記正常型ilvG遺伝子（配列番号３）とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする遺伝子であってもよい。また、「ストリンジェントな条件」とは、一例を示せば、相同性が高いDNA同士、例えば７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましく９０％以上、特に好ましくは９５％以上の相同性を有するDNA同士がハイブリダイズし、それより相同性が低いDNA同士がハイブリダイズしない条件、あるいは、通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である。例えば、６０℃、１×ＳＳＣ，０．１％ＳＤＳ、好ましくは、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度で、１回より好ましくは２〜３回洗浄する条件が挙げられる。 As long as the gene introduced to increase the intracellular copy number of the normal ilvG gene encodes a gene that encodes a protein that forms a complex with the ilvM gene product and can exhibit AHAS activity, It may be a gene that hybridizes with a normal ilvG gene (SEQ ID NO: 3) under stringent conditions. In addition, “stringent conditions” means, for example, high homology between DNAs having high homology, for example, 70% or more, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, particularly preferably 95% or more. This is a condition in which DNAs that hybridize are hybridized and DNAs having lower homology are not hybridized with each other, or washing conditions for normal Southern hybridization. For example, conditions of washing once at a salt concentration corresponding to 60 ° C., 1 × SSC, 0.1% SDS, preferably 0.1 × SSC, 0.1% SDS, more preferably 2 to 3 times. It is done.
正常型ilvG遺伝子（またはilvGM、ilvGMEDA遺伝子）を導入するためには、例えば、配列番号3あるいは配列番号５の塩基配列を含むＤＮＡ断片を、K-12株で機能するベクター、好ましくはマルチコピー型のベクターと連結して組換えDNAを作製し、これをK-１２株に導入して形質転換すればよい。K-12株の細胞内において機能することのできるベクターとしては、宿主微生物の細胞内において自律複製可能なベクターを挙げることができる。 In order to introduce a normal type ilvG gene (or ilvGM, ilvGMEDA gene), for example, a DNA fragment containing the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 or SEQ ID NO: 5 is a vector that functions in the K-12 strain, preferably a multicopy type. The recombinant DNA may be prepared by ligating with the vector of No. 1 and introduced into the K-12 strain for transformation. Examples of the vector that can function in the cells of the K-12 strain include vectors that can replicate autonomously in the cells of the host microorganism.
エシェリヒア・コリK-12株の細胞内において自律複製可能なベクターとしては、pUC19、pUC18、pHSG299, pHSG399, pHSG398, pACYC184,（pHSG、pACYCは宝バイオ社より入手可）, RSF1010, pBR322, pMW219（pMWはニッポンジーン社より入手可）等が挙げられる。 Examples of vectors that can autonomously replicate in cells of Escherichia coli K-12 strain include pUC19, pUC18, pHSG299, pHSG399, pHSG398, pACYC184 (pHSG and pACYC are available from Takara Bio Inc.), RSF1010, pBR322, pMW219 ( pMW is available from Nippon Gene Co., Ltd.).
上記のように調製した組換えDNAを微生物に導入するには、これまでに報告されている形質転換法に従って行えばよい。例えば、受容菌細胞を塩化カルシウムで処理してＤＮＡの透過性を増す方法（Mandel,M.and Higa,A.,J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)）があり、バチルス・ズブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してＤＮＡを導入する方法（ Duncan,C.H.,Wilson,G.A.and Young,F.E., Gene, 1, 153 (1977)）がある。 In order to introduce the recombinant DNA prepared as described above into a microorganism, it may be carried out according to the transformation methods reported so far. For example, there is a method (Mandel, M. and Higa, A., J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)) that treats recipient cells with calcium chloride to increase the permeability of DNA, and Bacillus subtilis. There is a method (Duncan, CH, Wilson, GA and Young, FE, Gene, 1, 153 (1977)) for preparing a competent cell from a cell in a growth stage and introducing DNA.
さらに、正常型ilvG遺伝子の発現量を高めることは、正常型ilvG遺伝子をエシェリヒア・コリK12株の染色体DNA上に多コピー存在させることによっても達成できる。微生物の染
色体DNA上に正常型ilvG遺伝子を多コピーで導入するには、染色体DNA上に多コピー存在する配列を標的に利用して相同組換えにより行う。染色体DNA上に多コピー存在する配列としては、レペティティブDNA、転移因子の端部に存在するインバーテッド・リピートが利用できる。あるいは、特開平2-109985号公報に開示されているように、正常型ilvG遺伝子をトランスポゾンに搭載してこれを転移させて染色体DNA上に多コピー導入することも可能である。
Furthermore, increasing the expression level of the normal type ilvG gene can also be achieved by making the normal type ilvG gene exist in multiple copies on the chromosomal DNA of the Escherichia coli K12 strain. In order to introduce the normal ilvG gene in multiple copies onto the chromosomal DNA of a microorganism, homologous recombination is performed using a sequence present on the chromosomal DNA as a target. As a sequence present in multiple copies on chromosomal DNA, repetitive DNA and inverted repeats present at the end of a transposable element can be used. Alternatively, as disclosed in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-109985, it is also possible to mount a normal ilvG gene on a transposon, transfer it, and introduce multiple copies onto the chromosomal DNA.
正常型ilvG遺伝子を導入する際には、強力なプロモーターの下流に該遺伝子を連結して導入してもよい。例えば、lacプロモーター、trpプロモーター、trcプロモーター等が強力なプロモーターとして知られている。また、完全長のilvG遺伝子のプロモーター領域に塩基置換等を導入し、より強力なものに改変することも可能である。これらのプロモーター置換または改変により正常型ilvG遺伝子の発現が強化される。発現調節配列の置換は、例えば温度感受性プラスミドを用いて行うことができる。例えば温度感受性プラスミドとしては、エシェリヒア・コリの複製起点を有するpMAN997（WO99/03988）を使用することが出来る。また、発現調節領域はRed-recombinaseを用いる方法によっても置換することが可能である。（Datsenko, K.A., PNAS, 97(12), 6640-6645, 2000). 発現制御領域の置換は、コピー数の上昇と組み合わせてもよい。また、発現を向上させるために、リボソーム結合部位（RBS）と開始コドンとの間のスペーサ、特に開始コドンのすぐ上流の配列における数個のヌクレオチドの置換を行ってもよい。ilvG遺伝子のプロモーターを含む発現制御領域は、プロモーター検索ベクターを用いたり、Genetyx等の遺伝子解析ソフトを用いて同定できる。 When a normal ilvG gene is introduced, the gene may be ligated downstream of a strong promoter. For example, lac promoter, trp promoter, trc promoter and the like are known as strong promoters. It is also possible to introduce a base substitution into the promoter region of the full-length ilvG gene and modify it to be more powerful. These promoter substitutions or modifications enhance the expression of the normal ilvG gene. The substitution of the expression regulatory sequence can be performed using, for example, a temperature sensitive plasmid. For example, pMAN997 (WO99 / 03988) having an origin of replication of Escherichia coli can be used as a temperature sensitive plasmid. The expression regulatory region can also be replaced by a method using Red-recombinase. (Datsenko, K.A., PNAS, 97 (12), 6640-6645, 2000). Replacement of the expression control region may be combined with an increase in copy number. In order to improve expression, substitution of several nucleotides in the spacer between the ribosome binding site (RBS) and the start codon, particularly in the sequence immediately upstream of the start codon, may be performed. The expression control region containing the promoter of the ilvG gene can be identified using a promoter search vector or gene analysis software such as Genetyx.
なお、本発明の菌株は、Ｌ−バリン耐性が付与されることによって、分岐鎖L−アミノ酸が不足する条件下での生育が対照株（K12株由来の親株）より向上したものであることが好ましい。ここで、分岐鎖L−アミノ酸とは、L−イソロイシン、L−ロイシン、L−バリンを意味する。また、分岐鎖L−アミノ酸が不足する条件とは、例えば、培地中の分岐鎖L−アミノ酸の濃度が、1g/L以下 、好ましくは100mg/L以下、より好ましくは50mg/L 以下、特に好ましくは０である条件を意味する。分岐鎖Ｌ−アミノ酸が不足する条件での生育が向上した変異株及び対照株（K12株由来の親株）の分岐鎖Ｌ−アミノ酸が不足する条件での生育の評価は、液体培地及び固体培地のいずれでも行うことができる。 It should be noted that the strain of the present invention is improved in growth under conditions where the branched-chain L-amino acid is deficient by imparting L-valine resistance to the control strain (parent strain derived from the K12 strain). preferable. Here, the branched chain L-amino acid means L-isoleucine, L-leucine, or L-valine. Further, the condition that the branched chain L-amino acid is deficient is, for example, that the concentration of the branched chain L-amino acid in the medium is 1 g / L or less, preferably 100 mg / L or less, more preferably 50 mg / L or less, particularly preferably. Means a condition of zero. The growth of the mutant strain and the control strain (parent strain derived from the K12 strain) with improved growth under conditions where the branched chain L-amino acid is deficient is evaluated for growth under conditions where the branched chain L-amino acid is insufficient. Either can be done.
例えば、固体培地を用いる場合は、液体培地で対数増殖期又は定常期になるまで培養した変異株及び対照株の培養液を培地又は食塩水などで希釈し、得られた菌体懸濁液を分岐鎖Ｌ−アミノ酸が不足した固体培地に塗布し、同じ条件で変異株及び対照株を培養する。培養は、通常、至適生育温度付近、例えば37℃で１〜３日間行う。そして、出現するコロニーの大きさが対照株よりも大きければ、変異株は、対照株よりも生育が良好であると評価される。固体培地に加える分岐鎖Ｌ−アミノ酸の量としては、例えば50mg/L以下、好ましくは10mg/L以下、より好ましくは０である。 For example, when a solid medium is used, the culture solution of the mutant strain and the control strain cultured in a liquid medium until the logarithmic growth phase or the stationary phase is diluted with a medium or saline, and the obtained cell suspension It is applied to a solid medium lacking branched chain L-amino acids, and the mutant and control strains are cultured under the same conditions. The culture is usually carried out at around the optimum growth temperature, for example, 37 ° C. for 1 to 3 days. If the size of the appearing colony is larger than that of the control strain, the mutant strain is evaluated as growing better than the control strain. The amount of branched-chain L-amino acid added to the solid medium is, for example, 50 mg / L or less, preferably 10 mg / L or less, more preferably 0.
また、液体培地を用いる場合は、上記と同様に培養、希釈した変異株及び対照株の菌体懸濁液を分岐鎖Ｌ−アミノ酸が不足した液体培地に接種し、至適生育温度付近、例えば37℃で数時間〜１日程度、好ましくは６時間程度培養する。培地に加える分岐鎖Ｌ−アミノ酸の量としては、例えば５０mg/L以下、より好ましくは１０ｍｇ以下、好ましくは０である。そして、対照株よりも変異株の方が、少なくとも対数増殖期又は定常期のいずれかにおいて培地の光学密度（ＯＤ）又は濁度が高ければ、生育が良好であると評価される。具体的には、対数増殖期により早く到達するか、ＯＤの最大値がより高ければ、生育はより良好である。前記対数増殖期とは、生育曲線において、細胞数が対数的に増加していく時期をいう。また、定常期とは、対数増殖期が過ぎ、分裂、増殖が停止し、細胞数の増加がみられなくなる時期をいう。 When a liquid medium is used, the cell suspension of the mutant and control strains cultured and diluted in the same manner as described above is inoculated into a liquid medium lacking branched chain L-amino acids, and near the optimum growth temperature, for example, Incubate at 37 ° C. for several hours to about 1 day, preferably about 6 hours. The amount of the branched chain L-amino acid added to the medium is, for example, 50 mg / L or less, more preferably 10 mg or less, and preferably 0. The mutant strain is evaluated to have better growth than the control strain if the optical density (OD) or turbidity of the medium is higher at least in either the logarithmic growth phase or the stationary phase. Specifically, the growth is better if the logarithmic growth phase is reached earlier or the maximum value of OD is higher. The logarithmic growth phase refers to a time when the number of cells increases logarithmically in the growth curve. The stationary phase refers to a time when the logarithmic growth phase has passed, the division and proliferation have stopped, and the increase in the number of cells is not observed.
本発明の菌株は、上述したようなL−バリン耐性を有する菌株において、Ｌ−アミノ酸生産能を付与することにより得ることができる。ただし、L−バリン耐性を付与するための改変と、Ｌ−アミノ酸生産能の付与はどちらを先に行ってもよい。 The strain of the present invention can be obtained by imparting L-amino acid-producing ability in a strain having L-valine resistance as described above. However, either modification for imparting L-valine resistance or imparting L-amino acid-producing ability may be performed first.
本発明において、Ｌ−アミノ酸生産能とは、本発明の微生物を培地中で培養したときに、培地中または菌体内にＬ−アミノ酸を生成し、蓄積する能力をいう。Ｌ−アミノ酸の生産能を有する微生物としては、本来的にＬ−アミノ酸の生産能を有するものであってもよいが、上記のような微生物を、変異法や組換えDNA技術を利用して、Ｌ−アミノ酸の生産能を有するように改変したものであってもよい。なお、本発明の微生物は、前記の正常型ilvG遺伝子の発現が増強されることによってＬ−アミノ酸生産能が付与されたものであってもよい。 In the present invention, the L-amino acid-producing ability refers to the ability to produce and accumulate L-amino acids in the medium or in the cells when the microorganism of the present invention is cultured in the medium. The microorganism having L-amino acid-producing ability may be inherently L-amino acid-producing ability, but the above-described microorganism can be obtained by using a mutation method or recombinant DNA technology. It may be modified so as to have L-amino acid production ability. The microorganism of the present invention may have L-amino acid producing ability imparted by enhancing the expression of the normal ilvG gene.
Ｌ−アミノ酸の種類は、分岐鎖L−アミノ酸以外のＬ−アミノ酸であれば特に制限されないが、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−リジン、Ｌ−チロシン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−ヒスチジン、L−プロリン、L−システイン等のL−アミノ酸が好ましい。本発明の微生物は２種類以上のL−アミノ酸の生産能を有するものであってもよい。 The type of L-amino acid is not particularly limited as long as it is an L-amino acid other than a branched-chain L-amino acid, but L-tryptophan, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-proline, L -L-amino acids such as cysteine are preferred. The microorganism of the present invention may be capable of producing two or more types of L-amino acids.
Ｌ−アミノ酸生産能を付与するには、栄養要求性変異株、アナログ耐性株又は代謝制御変異株の取得や、Ｌ−アミノ酸の生合成系酵素の発現が増強された組換え株の創製等、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等の育種に採用されてきた方法を適用することができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年５月30日初版発行、第７７〜１００頁参照）。ここで、Ｌ−アミノ酸生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独でもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、発現が増強されるＬ−アミノ酸生合成系酵素も、単独であっても、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の増強が組み合わされてもよい。 In order to confer L-amino acid-producing ability, acquisition of an auxotrophic mutant, analog resistant strain or metabolically controlled mutant, creation of a recombinant strain with enhanced expression of L-amino acid biosynthetic enzyme, etc. Conventionally, methods that have been adopted for breeding coryneform bacteria or bacteria belonging to the genus Escherichia can be applied (see Amino Acid Fermentation, Japan Society Publishing Center, May 30, 1986, first edition, pages 77 to 100). ). Here, in the breeding of L-amino acid-producing bacteria, properties such as auxotrophy, analog resistance, and metabolic control mutation may be used singly or in combination of two or more. In addition, L-amino acid biosynthesis enzymes whose expression is enhanced may be used alone or in combination of two or more. Furthermore, imparting properties such as auxotrophy, analog resistance, and metabolic regulation mutation may be combined with enhancement of biosynthetic enzymes.
Ｌ−アミノ酸生産能を有する栄養要求性変異株、Ｌ−アミノ酸のアナログ耐性株、又は代謝制御変異株を取得するには、親株又は野生株を通常の変異処理、すなわちＸ線や紫外線の照射、またはＮ−メチル−Ｎ'−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン等の変異剤処理などによって処理し、得られた変異株の中から、栄養要求性、アナログ耐性、又は代謝制御変異を示し、かつＬ−アミノ酸生産能を有するものを選択することによって得ることができる。またＬ−アミノ酸生産菌は、Ｌ−アミノ酸生合成系酵素遺伝子の発現を増強することによっても行うことができる。 In order to obtain an auxotrophic mutant having L-amino acid-producing ability, an analog-resistant strain of L-amino acid, or a metabolically controlled mutant, the parent strain or the wild strain is subjected to normal mutation treatment, that is, irradiation with X-rays or ultraviolet rays, In addition, among the mutants obtained by treatment with a mutagen such as N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine, the mutant exhibits auxotrophy, analog resistance, or metabolic control mutation, and L- It can be obtained by selecting one having amino acid-producing ability. An L-amino acid-producing bacterium can also be obtained by enhancing the expression of an L-amino acid biosynthesis enzyme gene.
以下、各種Ｌ−アミノ酸生産能を付与する方法及び各種Ｌ−アミノ酸生産菌について述べる。ただし、Ｌ−アミノ酸生産能を付与する方法及びＬ−アミノ酸生産菌は、以下のものに制限されない。 Hereinafter, a method for imparting various L-amino acid-producing ability and various L-amino acid-producing bacteria will be described. However, the method for imparting L-amino acid-producing ability and L-amino acid-producing bacteria are not limited to the following.
Ｌ−トリプトファン生産能を有する細菌として好ましいものは、アントラニル酸合成酵素活性、ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ活性もしくはトリプトファンシンターゼ活性のうち、１又は２以上の活性が増強された細菌である。アントラニル酸合成酵素及びホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼは、それぞれＬ−トリプトファン及びＬ−セリンによるフィードバック阻害を受けるため、脱感作型の変異酵素を保持させることにより、酵素活性を強化することができる。具体的には、例えば、アントラニル酸合成酵素遺伝子（trpE）、及び／又はホスホグリセレートデヒドロゲナーゼ遺伝子（serA）を、フィードバック阻害を受けないように変異させ、得られた変異型遺伝子をエシェリヒア属性菌に導入することによって、脱感作型酵素を保持する細菌を取得することができる。このような細菌としてより具体的には、脱感作型アントラニル酸合成酵素を保持するエシェリヒア・コリSV164に、脱感作型ホスホグリセレートデヒドロゲナーゼをコードする変異型serAを持つ
プラスミドpGH5（国際公開第94/08031号パンフレット参照）を導入することによって得られる形質転換株が挙げられる。
A bacterium having L-tryptophan-producing ability is preferably a bacterium with enhanced activity of one or more of anthranilate synthase activity, phosphoglycerate dehydrogenase activity or tryptophan synthase activity. Since anthranilate synthase and phosphoglycerate dehydrogenase are subjected to feedback inhibition by L-tryptophan and L-serine, respectively, the enzyme activity can be enhanced by retaining a desensitized mutant enzyme. Specifically, for example, the anthranilate synthase gene (trpE) and / or the phosphoglycerate dehydrogenase gene (serA) is mutated so as not to be subjected to feedback inhibition, and the obtained mutant gene is transformed into an Escherichia attribute bacterium. By introducing, a bacterium retaining a desensitizing enzyme can be obtained. More specifically, such a bacterium is a plasmid pGH5 having a mutant serA encoding a desensitized phosphoglycerate dehydrogenase in Escherichia coli SV164 holding a desensitized anthranilate synthase (International Publication No. No. 94/08031 pamphlet) can be mentioned.
また、トリプトファンオペロンを含む組換えＤＮＡが導入された細菌も、好適なＬ−トリプトファン生産菌である。具体的には、脱感作型アントラニル酸合成酵素をコードする遺伝子を含むトリプトファンオペロンが導入されたエシェリヒア・コリが挙げられる（特開昭57-71397号公報、特開昭62-244382号公報、米国特許第4,371,614明細書）。また、トリプトファンオペロンのうち、トリプトファンシンターゼをコードする遺伝子（trpBA）の発現を強化することによっても、Ｌ−トリプトファン生産能を向上又は付与することができる。トリプトファンシンターゼは、α及びβサブユニットからなり、それぞれtrpA、trpBによってコードされている。 A bacterium into which a recombinant DNA containing a tryptophan operon has been introduced is also a suitable L-tryptophan-producing bacterium. Specific examples include Escherichia coli into which a tryptophan operon containing a gene encoding a desensitized anthranilate synthase has been introduced (JP 57-71397, JP 62-244382, U.S. Pat. No. 4,371,614). Moreover, L-tryptophan production ability can also be improved or imparted by enhancing expression of a gene (trpBA) encoding tryptophan synthase among tryptophan operons. Tryptophan synthase consists of α and β subunits and is encoded by trpA and trpB, respectively.
さらに、Ｌ−トリプトファン生産菌として、Ｌ−フェニルアラニン及びＬ−チロシン要求性の形質を有する菌株エシェリヒア・コリAGX17(pGX44)〔NRRL B-12263〕株、及びトリプトファンオペロンを含むプラスミドpGX50を保持するAGX6(pGX50)aroP〔NRRL B-12264〕株（いずれも米国特許第 4,371,614号明細書参照）が挙げられる。 Furthermore, as an L-tryptophan-producing bacterium, a strain Escherichia coli AGX17 (pGX44) [NRRL B-12263] strain having an L-phenylalanine and L-tyrosine auxotrophic trait, and an AGX6 (carrying a plasmid pGX50 containing a tryptophan operon) pGX50) aroP [NRRL B-12264] strain (see U.S. Pat. No. 4,371,614).
エシェリヒア・コリK12株由来のL−フェニルアラニン生産菌としては、tyrA,tyrRが欠損したAJ12739 (tyrA::Tn10, tyrR) (VKPM B-8197)や、フェニルアラニン排出遺伝子であるyddG、yedA増幅株（国際公開第03/044192号パンフレット）が挙げられる。 Examples of L-phenylalanine-producing bacteria derived from Escherichia coli K12 include AJ12739 (tyrA :: Tn10, tyrR) (VKPM B-8197) lacking tyrA and tyrR, and yddG and yedA amplified strains (international) Publication No. 03/044192 pamphlet).
エシェリヒア・コリK12株由来の芳香族アミノ酸生産菌としては、ＰＥＰ（フォスフォエノールピルビン酸）の生産能力が向上した微生物（EP0877090A）や、芳香族アミノ酸に共通する生合成系に関与する酵素の活性を向上させた微生物を挙げることが出来る。芳香族アミノ酸に共通する遺伝子としては、 aroF、aroG、 aroH、 aroB、aroD、aroE、aroK、 aroL、 aroA、aroC が挙げられる。 Aromatic amino acid-producing bacteria derived from Escherichia coli K12 include microorganisms with improved PEP (phosphoenolpyruvate) production capacity (EP0877090A) and the activities of enzymes involved in biosynthetic systems common to aromatic amino acids Can be mentioned microorganisms that have been improved. Examples of genes common to aromatic amino acids include aroF, aroG, aroH, aroB, aroD, aroE, aroK, aroL, aroA, aroC.
Ｌ−リジン生産能を有するＬ−リジンアナログ耐性株又は代謝制御変異株として具体的には、エシェリヒア・コリAJ11442株（FERM BP-1543、NRRL B-12185；特開昭56-18596号公報及び米国特許第4346170号明細書参照）、エシェリヒア・コリ VL611株（特開2000−189180号公報）等が挙げられる。また、エシェリヒア・コリのＬ−リジン生産菌として、WC196株（国際公開第96/17930号パンフレット参照）を用いることも出来る。WC196株は、エシェリヒア・コリK-12由来のW3110株にＡＥＣ(Ｓ−（２−アミノエチル）−システイン)耐性を付与することによって育種されたものである。同株は、エシェリヒア・コリAJ13069株と命名され、平成６年１２月６日付で工業技術院生命工学工業技術研究所（現 独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター、〒305-8566 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に受託番号FERM P-14690として寄託され、平成７年９月29日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5252が付与されている。 Specific examples of L-lysine analog-resistant strains or metabolic control mutants having L-lysine-producing ability include Escherichia coli AJ11442 strain (FERM BP-1543, NRRL B-12185; JP 56-18596 A and US Patent No. 4346170), Escherichia coli VL611 strain (Japanese Patent Laid-Open No. 2000-189180), and the like. In addition, WC196 strain (see International Publication No. 96/17930 pamphlet) can also be used as an L-lysine producing bacterium of Escherichia coli. The WC196 strain was bred by imparting AEC (S- (2-aminoethyl) -cysteine) resistance to the W3110 strain derived from Escherichia coli K-12. This strain was named Escherichia coli AJ13069, and on December 6, 1994, the National Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (now the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center, 305-8566 Japan) No. 1 in Higashi 1-chome, 1-chome, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture, Japan, as deposit number FERM P-14690, transferred to an international deposit based on the Budapest Treaty on September 29, 1995, with deposit number FERM BP-5252 Has been granted.
Ｌ−ヒスチジン生産能を有するエシェリヒア属細菌としては、Ｌ−ヒスチジン生合成に関与する遺伝情報を担うDNAを組み込んだベクターを導入したエシェリヒア・コリFERM-P5038,5048株 (特開昭56-005099)や、アミノ酸排出遺伝子Rhtを導入した菌株（欧州特許公開公報1016710）、スルファグアニジン、D,L-1,2,4-triazole-3-alanine ,ストレプトマイシン耐性が付与されたエシェリヒア・コリ80株（VKPM B-7270 ロシア特許公報2119536号）等が挙げられる。 As an Escherichia bacterium having L-histidine-producing ability, Escherichia coli FERM-P5038,5048 strain into which a vector incorporating a DNA carrying genetic information involved in L-histidine biosynthesis has been introduced (Japanese Patent Laid-Open No. 56-005099) And a strain introduced with the amino acid excretion gene Rht (European Patent Publication No. 1016710), sulfaguanidine, D, L-1,2,4-triazole-3-alanine, and Escherichia coli 80 strain with resistance to streptomycin ( VKPM B-7270 Russian Patent Publication No. 2119536).
エシェリヒア・コリK12株由来のL−システイン生産菌として、シスタチオニン−β−リアーゼ活性が低下した細菌（特開2003-169668号公報）や、Ｌ−システインによるフィードバック阻害が低減されたセリンアセチルトランスフェラーゼを保持するエシェリヒア属
細菌（特開平11-155571号公報）が知られている。
Bacteria with reduced cystathionine-β-lyase activity (Japanese Patent Laid-Open No. 2003-169668) and serine acetyltransferase with reduced feedback inhibition by L-cysteine as L-cysteine producing bacteria derived from Escherichia coli K12 An Escherichia bacterium (Japanese Patent Laid-Open No. 11-155571) is known.
エシェリヒア・コリK12株由来のL−プロリン生産菌として、3,4-デヒドロキシプロリン、アザチジン−２−カルボキシレート耐性株である702株（VKPMB-8011）や、702のilvA欠損株である702ilvA株（VKPMB-8012株）が知られている（特開2002−300874号公報）。 As L-proline-producing bacteria derived from Escherichia coli K12 strain, 702 strain (VKPMB-8011) which is resistant to 3,4-dehydroxyproline and azatidine-2-carboxylate, and 702ilvA strain which is 702 ilvA-deficient strain (VKPMB-8012 strain) is known (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-300874).
L-グルタミン酸生産能を有するエシェリヒア・コリは、例えば、Ｌ−グルタミン酸生合成に関与する酵素をコードする遺伝子の発現が増強するように改変することによって得ることができる。Ｌ−グルタミン酸生合成に関与する酵素としては、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、グルタミンシンテターゼ、グルタミン酸シンターゼ、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸ヒドラターゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、ピルビン酸カルボキシラーゼ、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ、ピルビン酸キナーゼ、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ、エノラーゼ、ホスホグリセルムターゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、フルトースビスリン酸アルドラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコースリン酸イソメラーゼなどが挙げられる。 Escherichia coli having L-glutamic acid-producing ability can be obtained, for example, by modifying so that expression of a gene encoding an enzyme involved in L-glutamic acid biosynthesis is enhanced. Examples of enzymes involved in L-glutamate biosynthesis include glutamate dehydrogenase, glutamine synthetase, glutamate synthase, isocitrate dehydrogenase, aconite hydratase, citrate synthase, phosphoenolpyruvate carboxylase, pyruvate carboxylase, pyruvate dehydrogenase, and pyruvin. Acid kinase, phosphoenolpyruvate synthase, enolase, phosphoglycermutase, phosphoglycerate kinase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, triose phosphate isomerase, furtose bisphosphate aldolase, phosphofructokinase, glucose phosphate isomerase Etc.
Ｌ−グルタミン酸生産能を付与するための改変は、Ｌ−グルタミン酸の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性を低下または欠損させることにより行ってもよい。Ｌ−グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ−グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、イソクエン酸リアーゼ、α‐ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ、リン酸アセチルトランスフェラーゼ、酢酸キナーゼ、アセトヒドロキシ酸シンターゼ、アセト乳酸シンターゼ、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、グルタミン酸デカルボキシラーゼ、１−ピロリンデヒドロゲナーゼなどが挙げられるが、この中でも特にα−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下した株が望ましい。また、α-ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が弱化したエシェリヒア・コリとしては、特開平5-244970号公報及び特開平7−203980号公報などに記載されている。 The modification for imparting L-glutamic acid-producing ability may be performed by reducing or eliminating the activity of an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce other compounds. Enzymes that catalyze reactions that branch off from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce compounds other than L-glutamic acid include isocitrate lyase, α-ketoglutarate dehydrogenase, phosphate acetyltransferase, acetate kinase, acetohydroxyacid synthase And acetolactate synthase, formate acetyltransferase, lactate dehydrogenase, glutamate decarboxylase, 1-pyrroline dehydrogenase, and the like. Among these, strains with reduced α-ketoglutarate dehydrogenase activity are particularly desirable. Further, Escherichia coli having weakened α-ketoglutarate dehydrogenase activity is described in JP-A-5-244970 and JP-A-7-203980.
＜２＞Ｌ−アミノ酸の製造法
本発明のＬ−アミノ酸の製造法は、本発明のエシェリヒア・コリを培地で培養して、Ｌ−アミノ酸を該培地中又は菌体内に生成蓄積させ、該培地又は菌体よりＬ−アミノ酸を回収することを特徴とする製造法である。本発明の菌株は分岐鎖L−アミノ酸が不足する条件下での生育が向上しているため、分岐鎖L−アミノ酸を添加しない条件下でも、効率よくL−アミノ酸の製造を行うことができる。
<2> Method for Producing L-Amino Acid The method for producing L-amino acid according to the present invention comprises culturing Escherichia coli according to the present invention in a medium, and producing and accumulating L-amino acid in the medium or in the microbial cells. Or it is a manufacturing method characterized by collect | recovering L-amino acids from a microbial cell. Since the strain of the present invention has improved growth under conditions where the branched-chain L-amino acid is insufficient, L-amino acids can be efficiently produced even under conditions where no branched-chain L-amino acid is added.
使用する培地は、微生物を用いたＬ−アミノ酸の発酵生産において従来より用いられてきた培地を用いることができる。すなわち、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機成分を含有する通常の培地を用いることができる。ここで、炭素源としては、グルコース、シュクロース、ラクトース、ガラクトース、フラクトースやでんぷんの加水分解物などの糖類、グリセロールやソルビトールなどのアルコール類、フマール酸、クエン酸、コハク酸等の有機酸類を用いることができる。窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガス、アンモニア水等を用いることができる。有機微量栄養源としては、ビタミンＢ１、Ｌ−ホモセリンなどの要求物質または酵母エキス等を適量含有させることが望ましい。これらの他に、必要に応じて、リン酸カリウム、硫酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等が少量添加される。なお、本発明で用いる培地は、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じてその他の有機微量成分を含む培地であれば、天然培地、合成培地のいずれでもよい。 As the medium to be used, a medium conventionally used in the fermentation production of L-amino acids using microorganisms can be used. That is, a normal medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and other organic components as required can be used. Here, as the carbon source, saccharides such as glucose, sucrose, lactose, galactose, fructose and starch hydrolysate, alcohols such as glycerol and sorbitol, organic acids such as fumaric acid, citric acid and succinic acid are used. be able to. As the nitrogen source, inorganic ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium chloride and ammonium phosphate, organic nitrogen such as soybean hydrolysate, ammonia gas, aqueous ammonia and the like can be used. As an organic trace nutrient source, it is desirable to contain an appropriate amount of a required substance such as vitamin B1, L-homoserine or a yeast extract. In addition to these, a small amount of potassium phosphate, magnesium sulfate, iron ion, manganese ion or the like is added as necessary. The medium used in the present invention may be a natural medium or a synthetic medium as long as it contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and other organic trace components as required.
培養は好気的条件下で１〜７日間実施するのがよく、培養温度は２４℃〜３７℃、培養中のｐＨは５〜９がよい。尚、ｐＨ調整には無機あるいは有機の酸性あるいはアルカリ性物質、更にアンモニアガス等を使用することができる。発酵液からのＬ−アミノ酸の回収は通常イオン交換樹脂法、沈殿法その他の公知の方法を組み合わせることにより実施できる。なお、菌体内にＬ−アミノ酸が蓄積する場合には、例えば菌体を超音波などにより破砕し、遠心分離によって菌体を除去して得られる上清からイオン交換樹脂法などによって、Ｌ−アミノ酸を回収することができる。 The culture is preferably carried out under aerobic conditions for 1 to 7 days, the culture temperature is 24 ° C. to 37 ° C., and the pH during the culture is preferably 5 to 9. In addition, an inorganic or organic acidic or alkaline substance, ammonia gas or the like can be used for pH adjustment. The L-amino acid can be recovered from the fermentation broth by combining an ion exchange resin method, a precipitation method and other known methods. In addition, when L-amino acid accumulates in the microbial cell, for example, the microbial cell is crushed by ultrasonic waves, and the microbial cell is removed by centrifugation. Can be recovered.
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されない。 Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited to these.
[参考例１]
L−トリプトファン生産菌SV164/pGH5株において、分岐鎖L−アミノ酸のL−トリプトファン蓄積に対する影響を調べた。
この株は、K12株の派生株であるSV164に、脱感作型ホスホグリセレートデヒドロゲナーゼをコードする変異型serAを持つプラスミドpGH5（国際公開第94/08031号パンフレット参照）を導入したトリプトファン生産株である。なお、SV164株は、K12株由来のYMC9株（ATCC33927）において、アントラニラートシンターゼをコードするTrpEの対立遺伝子に変異が導入された株である（特許第3032013号公報）。
[Reference Example 1]
In the L-tryptophan-producing bacterium SV164 / pGH5 strain, the influence of branched-chain L-amino acids on L-tryptophan accumulation was examined.
This strain is a tryptophan producing strain in which the plasmid pGH5 (see pamphlet of International Publication No. 94/08031) having a mutant serA encoding a desensitized phosphoglycerate dehydrogenase is introduced into SV164, a derivative of K12 strain. is there. The SV164 strain is a strain in which a mutation was introduced into the allele of TrpE encoding anthranilate synthase in the YMC9 strain (ATCC33927) derived from the K12 strain (Japanese Patent No. 3032013).
L−トリプトファン生産培地生産培地（40g/L グルコース、1.5g/L KH2PO4、0.5g/L NaCl、15g/L (NH4) 2SO4、0.3g/L MgSO4・7H2O、14.7mg/L CaCl2・2H2O、75mg/L FeSO4・7H2O、0.15mg/L Na2MoO4・7H2O、0.7mg/L CoCl2・7H2O、1.6mg/L MnCl2・7H2O、2.5mg/L H3BO3、0.25mg/L CuSO4・7H2O、0.3mg/L ZnSO4・7H2O、1g/L Na3Citrate、125mg/L L−フェニルアラニン、125mg/L L−Tyr、5mg/L thiamine・HCl、1g/L yeast extract、2g/L Corn
steep solid、30g/L CaCO3、20mg/L テトラサイクリン、pH7.1(NH4OH)）にL−イソロイシン及びL−ロイシンを所定量添加して、SV164/pGH5株を４０時間培養した。残糖量、L−トリプトファン蓄積量、及び消費等に対するL−トリプトファンの収率を表１に示す。
L-tryptophan production medium Production medium (40 g / L glucose, 1.5 g / L KH 2 PO 4 , 0.5 g / L NaCl, 15 g / L (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.3 g / L MgSO 4 .7H 2 O, 14.7mg / L CaCl 2 · 2H 2 O, 75mg / L FeSO 4 · 7H 2 O, 0.15mg /
A predetermined amount of L-isoleucine and L-leucine was added to steep solid, 30 g / L CaCO 3 , 20 mg / L tetracycline, pH 7.1 (NH 4 OH)), and the SV164 / pGH5 strain was cultured for 40 hours. Table 1 shows the yield of L-tryptophan relative to the amount of residual sugar, the amount of L-tryptophan accumulated, and consumption.
その結果、SV164/pGH5株では、L−イソロイシン、L−ロイシンの添加量が少ないと生育、糖消費及びL−トリプトファン生産量が低下することがわかった。 As a result, in the SV164 / pGH5 strain, it was found that growth, sugar consumption, and L-tryptophan production amount decreased when the amount of L-isoleucine or L-leucine added was small.
実施例１．L−バリン耐性株の取得と評価
（１−１）L−バリン耐性株の取得
P1形質導入によって、L−バリン耐性を導入した。L−バリン耐性の供与菌としては、MI162（Lawther et al., J. Bacteriol., 149, 294- (1982)）及びTDH7（EP-0593792-B1、VKPM B-5318）を用いた。MI162株のバリン耐性に関与する変異点はilvG遺伝子に導入されており、ilvG603として同定されている。MI162株の変異点は配列番号３に示すとおりであり、フレームシフト変異が復帰している。また、TDH7の変異は、配列番号１に示すK12株の979番目のＣが欠失しており、フレームシフト変異が復帰している。受容菌としては、上記のSV164/pGH5株を用いた。
Example 1. Acquisition and evaluation of L-valine resistant strain (1-1) Acquisition of L-valine resistant strain
L-valine resistance was introduced by P1 transduction. MI162 (Lawther et al., J. Bacteriol., 149, 294- (1982)) and TDH7 (EP-0593792-B1, VKPM B-5318) were used as L-valine resistant donor bacteria. The mutation point involved in valine resistance of MI162 strain has been introduced into the ilvG gene and has been identified as ilvG603. The mutation point of the MI162 strain is as shown in SEQ ID NO: 3, and the frameshift mutation is restored. Moreover, as for the mutation of TDH7, the 979th C of the K12 strain shown in SEQ ID NO: 1 is deleted, and the frameshift mutation is restored. The above SV164 / pGH5 strain was used as a recipient bacterium.
定法に従いP1形質導入実験を実施し、最小培地にL−バリンを含む培地（4g/Lグルコース、12.8g/L Na2HPO4・7H2O、3g/L KH2PO4、0.5g/L NaCl、1g/L NH4Cl、5mM MgSO4、0.1mM CaCl2、1mg/L チアミン、20mg/l L−フェニルアラニン、20mg/L L−チロシン、20mg/L L−メチオニン、3mg/L ピリドキシン、20mg/L L−バリン、20mg/L テトラサイクリン）に塗布して37℃、3日間培養して出現したコロニーをL−バリン耐性株として選択した。 P1 transduction experiment was carried out according to the usual method, and medium containing L-valine in the minimum medium (4 g / L glucose, 12.8 g / L Na 2 HPO 4 · 7H 2 O, 3 g / L KH 2 PO 4 , 0.5 g / L NaCl, 1 g / L NH 4 Cl, 5 mM MgSO 4 , 0.1 mM CaCl 2 , 1 mg / L thiamine, 20 mg / l L-phenylalanine, 20 mg / LL-tyrosine, 20 mg / LL-methionine, 3 mg / L pyridoxine, 20 mg / LL -Colonies that appeared after application to valine (20 mg / L tetracycline) and cultivation at 37 ° C for 3 days were selected as L-valine resistant strains.
MI162を供与菌として得られたL−バリン耐性株M6、M9株、TDH7を供与菌として得られたL−バリン耐性株T2株の３株について、以下の解析を実施した。 The following analysis was performed on three strains, L-valine resistant strains M6 and M9 obtained with MI162 as a donor bacterium, and L-valine resistant strain T2 obtained with TDH7 as a donor bacterium.
（１−２）L−バリン耐性株のL−トリプトファン蓄積に及ぼすL−イソロイシン、L−ロイシン添加の影響
得られたL−バリン耐性株と親株SV164/pGH5株について、L−トリプトファン生産能に対するL−イソロイシン、L−ロイシン添加の影響を検討した。LB培地（10g/Lポリペプトン、5g/L イーストエキストラクト、10g/L NaCl、20mg/Lテトラサイクリン、20g/L 寒天）プレートにて30℃、24時間培養した菌を4mlのLB培地を張り込んだ試験管に各株を植菌した後、30℃、24時間振とう培養した。これを、L−イソロイシン、L−ロイシン添加濃度を変化させた40mlの生産培地（40g/L グルコース、1.5g/L KH2PO4、0.5g/L NaCl、15g/L (NH4) 2SO4、0.3g/L MgSO4・7H2O、14.7mg/L CaCl2・2H2O、75mg/L FeSO4・7H2O、0.15mg/L
Na2MoO4・7H2O、0.7mg/L CoCl2・7H2O、1.6mg/L MnCl2・7H2O、2.5mg/L H3BO3、0.25mg/L CuSO4・7H2O、0.3mg/L ZnSO4・7H2O、1g/L Na3Citrate、30mg/L pyridoxine、50mg/L L−メチオニン、125mg/L L−フェニルアラニン、125mg/L L−Tyr、5mg/L thiamine・HCl、1g/L yeast extract、2g/L Corn steep solid、30g/L CaCO3、20mg/L テトラサイクリン、pH7.1(NH4OH)）を張り込んだ坂口フラスコ（500ml容）にシードし、30℃、40時間振とう培養した。培養後のL−トリプトファン蓄積を分析した結果を図１に示す。
(1-2) Effect of addition of L-isoleucine and L-leucine on L-tryptophan accumulation of L-valine resistant strains Regarding the obtained L-valine resistant strain and the parental strain SV164 / pGH5, L against L-tryptophan production ability -The effect of addition of isoleucine and L-leucine was examined. Bacteria cultured on LB medium (10 g / L polypeptone, 5 g / L yeast extract, 10 g / L NaCl, 20 mg / L tetracycline, 20 g / L agar) plate at 30 ° C. for 24 hours were loaded with 4 ml of LB medium Each strain was inoculated into a test tube, and then cultured with shaking at 30 ° C. for 24 hours. This was replaced with 40 ml of production medium (40 g / L glucose, 1.5 g / L KH 2 PO 4 , 0.5 g / L NaCl, 15 g / L (NH 4 ) 2 SO) with varying concentrations of L-isoleucine and L-leucine. 4, 0.3g / L MgSO 4 · 7H 2 O, 14.7mg /
Na 2 MoO 4・ 7H 2 O, 0.7 mg / L CoCl 2・ 7H 2 O, 1.6 mg / L MnCl 2・ 7H 2 O, 2.5 mg / LH 3 BO 3 , 0.25 mg / L CuSO 4・ 7H 2 O, 0.3mg / L ZnSO 4・ 7H 2 O, 1g / L Na 3 Citrate, 30mg / L pyridoxine, 50mg / LL-methionine, 125mg / LL-phenylalanine, 125mg / LL-Tyr, 5mg / L thiamine · HCl, 1g / L yeast extract, 2 g / L Corn steep solid, 30 g / L CaCO 3 , 20 mg / L tetracycline, pH 7.1 (NH 4 OH)) seeded in a Sakaguchi flask (500 ml), 30 ° C, 40 hours Cultured with shaking. The result of analyzing the L-tryptophan accumulation after culture is shown in FIG.
対照のSV164/pGH5株は、L−イソロイシン、L−ロイシン無添加条件では、低いL−トリプトファン蓄積を示したのに対して、L−バリン耐性株（M6、M9、T2）はいずれも、L−イソロイシン、L−ロイシン無添加条件でも、L−イソロイシン、L−ロイシン添加条件とほとんど変わらないL−トリプトファン蓄積を示した。 The control SV164 / pGH5 strain showed low L-tryptophan accumulation in the absence of L-isoleucine and L-leucine, whereas all L-valine resistant strains (M6, M9, T2) -Accumulation of L-tryptophan was almost the same as when L-isoleucine and L-leucine were added even under the condition where no isoleucine and L-leucine were added.
さらに、取得したL−バリン耐性株及び対照株の、分岐鎖L−アミノ酸無添加培地での生育を最小培地を用いて詳細に検討した。SV164/pGH5株あるいはT2株を、L−イソロイシン、L−ロイシン、L−バリンおよびL−トリプトファン以外のアミノ酸を各20mg/L添加した最小培地（4g/L glucose、12.8g/L Na2HPO4・7H2O、3g/L KH2PO4、0.5g/L NaCl、1g/L NH4Cl、5mM MgSO4、0.1mM CaCl2、1mg/L thiamine、20mg/L tetracycline）に植菌し、30℃で振とう培養して経時的にOD660を測定して菌の生育を追跡した（図２）。その結果、SV164/pGH5株はL−イソロイシン、L−ロイシン、L−バリン無添加培地では生育が遅延するのに対して、L−バリン耐性株T2株ではほとんど遅延せず、生育時の分岐鎖L−アミノ酸の不足が軽減されたことが示された。これにより、L−バリン耐性を付与することにより、分岐鎖L−アミノ酸を添加することなくL−トリプトファンを効率的に生産できることがわかった。 Furthermore, the growth of the obtained L-valine resistant strain and the control strain in a branched chain L-amino acid-free medium was examined in detail using a minimal medium. SV164 / pGH5 strain or T2 strain was added to a minimal medium (4 g / L glucose, 12.8 g / L Na 2 HPO 4) containing 20 mg / L of amino acids other than L-isoleucine, L-leucine, L-valine and L-tryptophan. 7H 2 O, 3 g / L KH 2 PO 4 , 0.5 g / L NaCl, 1 g / L NH 4 Cl, 5 mM MgSO 4 , 0.1 mM CaCl 2 , 1 mg / L thiamine, 20 mg / L tetracycline) The culture was shaken at 30 ° C., and OD660 was measured over time to follow the growth of the bacteria (FIG. 2). As a result, the growth of SV164 / pGH5 strain was delayed in L-isoleucine, L-leucine, and L-valine-free medium, whereas L-valine resistant strain T2 strain was hardly delayed, and the branched chain during growth It was shown that the L-amino acid deficiency was reduced. Thereby, it turned out that L-tryptophan can be efficiently produced by adding L-valine resistance, without adding a branched chain L-amino acid.
本発明の菌株を用いることのより、L−トリプトファンなどのL−アミノ酸を効率よく生産することができる。 By using the strain of the present invention, L-amino acids such as L-tryptophan can be efficiently produced.
Claims (6)
The strain according to any one of claims 1 to 5 is cultured in a medium, and L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L-glutamic acid, L-histidine, L-cysteine or L L-tryptophan, L-phenylalanine, L-lysine, L-tyrosine, L, characterized in that proline is produced and accumulated in the medium or cells and the L-amino acid is recovered from the medium or cells -Method for producing glutamic acid, L-histidine, L-cysteine or L-proline.
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2005
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