JP2005320353A - 高カルシウム血症クリーゼ治療剤 - Google Patents

Abstract

【課題】 高カルシウム血症クリーゼに対する治療剤の提供
【解決手段】 副甲状腺ホルモン関連ペプチド（PTHrP）とその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含む高カルシウム血症クリーゼ治療剤を提供する。特に、24時間以内に血清カルシウム値を１mg/dL以上低下させ、かつ低下した血清カルシウム値を維持する高カルシウム血症クリーゼ治療剤を提供する。
【選択図】 なし

Description

本発明は副甲状腺ホルモン関連ペプチド（Parathyroid hormone related protein（PTHrP））とその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含有する悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼ治療剤に関するものである。

悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症は、全悪性腫瘍患者の5〜20％にみられる重篤な合併症状であり、放置すれば確実に死に至るため、悪性腫瘍の末期的症状であると考えられている。高カルシウム血症のコントロールは患者の治療予後とQOL（Quality of Life）に大きく影響することから、臨床的に重要な役割を持つ。

悪性腫瘍患者における高カルシウム血症は、一般に、腫瘍産生性の体液性骨吸収因子によるHHM（Humoral hypercalcemia of malignancy）と、骨に転移又は浸潤した腫瘍の局所的な作用によるLOH（Local Osteolytic hypercalcemia）とに大別される。HHMでは骨吸収又は骨破壊の亢進によりカルシウムの流出が増加し、腎のカルシウム排泄能の低下とあいまって高カルシウム血症を生ずると考えられている（和田誠基及び永田直一，内科69, 644-648；非特許文献１）。

高カルシウム血症は、血清カルシウム値が12mg/dlを超えるとその症状が現れると考えられ、その症状として、初期に食思不振、悪心、嘔吐が悪性腫瘍患者において非特異的に認められる。高カルシウム血症が悪化すると、腎遠位尿細管の障害で水分の濃縮力が低下するために多尿となり、また、悪心、嘔吐により水分が十分に摂取されないため脱水を伴い、腎、皮膚、血管、肺、心、および胃における石灰化が起こる。高カルシウム血症がさらに悪化すると、全身倦怠、嗜眠、錯乱などの意識障害が現れ、ついには昏睡および心停止を起こす恐れがある（ハリソン内科書, 3427、内科学, 1081-1084, 朝倉書店；非特許文献２）。

悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症のうちHHMを起こす液性因子として、PTH（副甲状腺ホルモン；Parathyroid Hormone）様の物質である副甲状腺ホルモン関連ペプチド（Parathyroid Hormone related Peptide、以下「PTHrP」という）がMoseley, J. M.らにより見いだされた（Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1987)、84, 5048-5052；非特許文献３）。

その後、PTHrPをコードする遺伝子が単離され（Suva, L. J. et al., Science (1987) 237, 893；非特許文献４）、その解析から、ヒトPTHrPは遺伝子の選択的スプライシングに基づく139、141及び173個のアミノ酸からなる三種が存在すること、並びに血中では全構造を有するPTHrP（1-139）の限定分解に基づく様々なフラグメントが存在することが明らかになった（Baba, H. Clinical Calcium (1995) 5, 229-223；非特許文献５）。PTHrPは、N末端側第1位から第13位のアミノ酸13個のうち8個がPTHと同一である他、第14位から第34位アミノ酸部位においてもPTHと類似の立体構造を呈するものと推定され、少なくともN末端側においてはPTHと共通のPTH/PTHrP受容体に結合する（Jueppner, H. et al., Science (1991) 254, 1024-1026、Abou-Samra, A-B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1992) 89, 2732-2736；非特許文献６及び７）。

PTH/PTHrP受容体は主に骨と腎に存在し（滋野長平、Clinical Calcium (1995) 5, 355-359；非特許文献８）、PTHrPが受容体に結合することにより複数の細胞内シグナル伝達系が活性化されることが知られている。その一つは、アデニルシクラーゼであり、もう一つはフォスフォリパーゼCである。アデニルシクラーゼの活性化により、細胞内cAMP濃度が上昇しプロテインキナーゼAが活性化される。また、フォスフォリパーゼCはフォスファチジルイノシトール4, 5-ビスフォスフォネートを分解してイノシトール1, 4, 5-トリフォスフォネートとジアシルグリセロールを生じさせる。これらのシグナル伝達系にはG蛋白質が関与する（Coleman, D. T. et al., Biochemical mechanisms of parathyroid hormone action. In: "The parathyroids" (Bilezikian, J. P. et al.), Raven press, New York, (1994) page 239；非特許文献９）。PTHrPは、これらのシグナル伝達系を介して、HHMに観察される高カルシウム血症、低リン血症、腎リン再吸収能の低下、腎性cAMP排泄の増加などを引き起こす。

このように、PTHrPは悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症に密接に関連するのみならず、急激な血中カルシウムの上昇による全身倦怠、嗜眠、錯乱などの意識障害や昏睡にいたる高カルシウム血症クリーゼの原因になっている。悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼをきたした場合は、カルシトニン、ステロイド剤、ビスフォスフォネート、リン酸緩衝液、生理食塩水、フルセミドなどを用いて高カルシウム血症と一般状態の改善をはかる。しかしながら、これらの薬剤は連続使用により効果が低減すること、強い副作用が発現すること、又は薬効発現が遅いことなどから、より治療効果が高く副作用の少ない薬剤の使用が期待されている。

特に、高カルシウム血症クリーゼをきたす患者は、急激な血中カルシウムの上昇から死に至る危険性もあるため、一刻も早く血中カルシウム濃度を低下させる必要がある。しかし、現在までのところ、安全で且つ即効的な高カルシウム血症クリーゼの治療薬として満足のいく薬剤はまだ知られていない。

一方、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症治療の新しい試みとして、Kukreja, S. C.らは、ヒト肺ガン細胞又はヒト喉頭ガン細胞を移植して高カルシウム血症を生じた無胸腺マウスにPTHrPに対する中和抗血清を投与すると、血中カルシウム濃度及び尿cAMPレベルが減少したことを報告している（J. Clin. Invest. (1988) 82, 1798-1802；非特許文献１０）。佐藤幹二らは、PTHrP産生ヒト腫瘍を移植したヌードマウスにPTHrP（1-34）に対する抗体を投与すると、高カルシウム血症を低減させ、マウスの生存時間を大幅に延長させたことを報告している（J. bone & Mine. Res. (1993) 8, 849-860；非特許文献１１）。また、特開平4-228089号（特許文献１）には、ヒトPTHrP（1-34）に対するマウス／ヒトキメラ抗体が開示されている。

前記のごとく、ヒト型化抗体は悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼの緊急処置の目的のために有用であると予想されるが、PTHrPに対するヒト型化抗体は知られておらず、前記文献にはその示唆もなされていない。また、ヒト型化抗体の製造方法において任意の抗体に普遍的に適用し得る画一的な方法は存在せず、特定の抗原に対して十分な結合活性、中和活性を示すヒト型化抗体を作製するためには種々の工夫が必要である（例えば、Sato, K. et al., Cancer Res., 53, 851-856, 1993；非特許文献１２を参照のこと）。

特開平4-228089号 和田誠基及び永田直一，内科69, 644-648 ハリソン内科書, 3427、内科学, 1081-1084, 朝倉書店 Moseley, J. M.ら、Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1987)、84, 5048-5052 Suva, L. J. et al., Science (1987) 237, 893 Baba, H. Clinical Calcium (1995) 5, 229-223 Jueppner, H. et al., Science (1991) 254, 1024-1026 Abou-Samra, A-B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1992) 89, 2732-2736 滋野長平、Clinical Calcium (1995) 5, 355-359 Coleman, D. T. et al., Biochemical mechanisms of parathyroid hormone action. "The parathyroids" (Bilezikian, J. P. et al.), Raven press, New York, (1994) page 239 Kukreja, S. C.ら、J. Clin. Invest. (1988) 82, 1798-1802 佐藤幹二ら、J. bone & Mine. Res. (1993) 8, 849-860 Sato, K. et al., Cancer Res., 53, 851-856, 1993

本発明は、PTHrPとその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含む高カルシウム血症クリーゼに対する治療剤を提供することを目的とする。

本発明者らは、かかる治療剤を提供すべく鋭意研究を重ねた結果、副甲状腺ホルモン関連ペプチドとその受容体との結合を阻害する物質により、目的が達成されることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、副甲状腺ホルモン関連ペプチドとその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含む高カルシウム血症クリーゼ治療剤である。上記物質としては、副甲状腺ホルモン関連ペプチド受容体に対するアンタゴニスト、抗副甲状腺ホルモン関連ペプチド抗体等が挙げられる。あるいは、上記物質は、抗副甲状腺ホルモン関連ペプチド抗体断片及び/又はその修飾物でもよい。また、抗体(モノクローナル抗体を含む)としてはヒト型化又はキメラ化されたもの(例えばヒト型化抗体としてヒト型化＃23-57-137-1抗体)が挙げられる。

さらに本発明は、副甲状腺ホルモン関連ペプチドとその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含む、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼ治療剤に関する。

以下、本発明を詳細に説明する。
本発明は、副甲状腺ホルモン関連ペプチド（Parathyroid hormone related protein：PTHrP）とその受容体（PTHrP受容体）との結合を阻害する物質を有効成分として含む高カルシウム血症クリーゼ治療剤である。

「PTHrPとPTHrP受容体との結合を阻害する物質」とは、PTHrPに結合することによりPTHrPがPTHrP受容体と結合することを阻害する物質、あるいはPTHrP受容体に結合することによりPTHrPがPTHrP受容体と結合することを阻害する物質をいう。前者に該当する物質としては、例えば抗PTHrP抗体が挙げられ、後者に該当する物質としては、例えばPTHrP受容体に対するアンタゴニスト（PTHrPアンタゴニストともいう）が挙げられる。

PTHrPアンタゴニストとしては、ポリペプチドや低分子物質が挙げられる。例えば、PTHrPに対して拮抗的にPTHrP受容体に結合する物質（特開平7-165790号公報、Peptides（UNITED STATES）1995, 16（6）1031-1037、Biochemistry（UNITED STATES）Apr. 28 1992, 31（16）4026-4033、特表平5-509098号公報などに記載のポリペプチド）が挙げられる。なお、これらのポリペプチドは、ペプチド合成の常法手段によって化学合成することができる。

これらPTHrPアンタゴニストは、本来のPTHrPペプチドと競合してPTHrP受容体に結合するが、その後のシグナル伝達を阻害してカルシウム濃度の上昇を抑制する機能を有するものである。

また、上記例示のポリペプチドのうち、少なくとも１個のアミノ酸が欠失、置換、挿入等の変異が導入されたポリペプチドであって、同等のPTHrPアンタゴニスト活性を有するものも本発明のPTHrPアンタゴニストに含まれる。

本発明の高カルシウム血症クリーゼ治療剤としては、患者あたり、好ましくは0.1〜10000mg/body、さらに好ましくは0.5〜1000mg/body、さらに好ましくは1〜100 mg/bodyの薬剤を投与後、速やかにカルシウム濃度が低下し、さらに長時間にわたってカルシウム濃度が再上昇しないもの、あるいは顕著に効果が持続するものが好ましい。具体的には、薬剤投与後24時間以内、好ましくは6時間以内、さらに好ましくは4時間以内に、血清補正カルシウム値を1mg/dL以上低下させるもの、又は正常化（血清補正カルシウム値10.4mg/dL以下）させ若しくは2 mg/dL以上低下させるものを、本発明の治療剤として使用することができる。さらに薬剤投与後24時間以上、好ましくは3日間以上、さらに好ましくは5日間以上、さらに好ましくは7日間以上、最も好ましくは10日間以上にわたり、血清補正カルシウム値が再上昇しない状態を維持し得るもの、又は薬剤投与後前値より2 mg/dL以上低下した状態若しくは正常化した状態を維持し得るものが好ましい。

ここでいう血清補正カルシウム値は次式で算出される：
（ｉ）血清アルブミン値が4g/dL未満の場合
血清補正カルシウム値（mg/dL）＝実測血清カルシウム値（mg/dL）＋［4.0−血清アルブミン値（g/dL）］
（ii）血清アルブミン値が4g/dL以上の場合
血清補正カルシウム値（mg/dL）＝実測血清カルシウム値（mg/dL）

本発明では、「PTHrPとPTHrP受容体との結合を阻害する物質」として抗PTHrP抗体を例に説明する。

抗PTHrP抗体としては、例えばヒト型化抗体、ヒト抗体（WO96/33735号公報）又はキメラ抗体（特開平4-228089号公報）などの公知の抗体のほか、本発明における抗体（#23-57-137-1抗体）などが挙げられる。なお、抗体はポリクローナル抗体でもよいがモノクローナル抗体であることが好ましい。

１．抗PTHrP抗体
本発明で使用される抗PTHrP抗体は、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼ治療剤の治療効果を有するものであれば、その由来、種類（モノクローナル、ポリクローナル）および形状を問わない。

本発明で使用される抗PTHrP抗体は、公知の手段を用いてポリクローナルまたはモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗PTHrP抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体は、ハイブリドーマに産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものを含む。この抗体はPTHrPと結合することにより、PTHrPがPTH/PTHrP受容体に結合するのを阻害してPTHrPのシグナル伝達を遮断し、PTHrPの生物学的活性を阻害する抗体である。

このような抗体としては、ハイブリドーマクローン#23-57-137-1により産生される#23-57-137-1抗体が挙げられる。

なお、ハイブリドーマクローン＃23-57-137-1 は、mouse-mouse hybridoma ＃23-57-137-1 として、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（茨城県つくば市東1丁目1番地1）に、平成8年8月15日に、FERM BP-5631としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。

２．抗体産生ハイブリドーマ
モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、PTHrPを感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。

具体的には、モノクローナル抗体を作製するには次のようにすればよい。
まず、抗体取得の感作抗原として使用されるヒトPTHrPを、Suva, L. J. et al., Science（1987）237, 893に開示されたPTHrP遺伝子／アミノ酸配列を発現することによって得る。すなわち、PTHrPをコードする遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中または培養上清中から目的のPTHrPタンパク質を公知の方法で精製する。

次に、この精製PTHrPタンパク質を感作抗原として用いる。あるいは、PTHrPのN末端の34個のペプチド(配列番号75)について、化学合成により作製することもでき、これを感作抗原として使用することもできる。

感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましく、一般的にはげっ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター、あるいはウサギ、サル等が使用される。

感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内または皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をPBS（Phosphate-Buffered Saline）や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものを所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に4-21日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。

このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付されるが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。

前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、P3 （P3x63Ag8.653） （J. Immnol.（1979）123, 1548-1550）、 P3x63Ag8U.1 （Current Topics in Microbiology and Immunology（1978）81, 1-7）、 NS-1 （Kohler. G. and Milstein, C. Eur. J. Immunol.（1976）6, 511-519）、MPC-11 （Margulies. D. H. et al., Cell（1976）8, 405-415）、SP2/0 （Shulman, M. et al., Nature（1978）276, 269-270）、FO （de St. Groth, S. F. et al., J. Immunol. Methods（1980）35, 1-21）、S194 （Trowbridge, I. S. J. Exp. Med.（1978）148, 313-323）、R210 （Galfre, G. et al., Nature（1979）277, 131-133）等が好適に使用される。

前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ミルステインらの方法（Kohler. G. and Milstein, C.、Methods Enzymol.（1981）73, 3-46）等に準じて行うことができる。

より具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（PEG）、センダイウィルス（HVJ）等が使用され、更に所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。

免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を1-10倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なRPMI1640培養液、MEM培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（FCS）等の血清補液を併用することもできる。

細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め37℃程度に加温したPEG溶液（例えば平均分子量1000-6000程度）を通常30-60％（w/v）の濃度で添加し、混合することによって目的とする融合細胞（ハイブリドーマ）を形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。

このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばHAT培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記HAT培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングを行う。

また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球をin vitroでPTHrPに感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有するミエローマ細胞と融合させ、PTHrPへの結合活性を有する所望のヒト抗体を得ることもできる（特公平1-59878号公報参照）。さらに、ヒト抗体遺伝子の全てのレパートリーを有するトランスジェニック動物に抗原となるPTHrPを投与して抗PTHrP抗体産生細胞を取得し、これを不死化させた細胞からPTHrPに対するヒト抗体を取得してもよい（国際特許出願公開番号WO 94/25585 号公報、WO 93/12227 号公報、WO 92/03918 号公報、WO 94/02602 号公報参照）。

このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。

当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法にしたがい培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。

３．組換え型抗体
本発明では、モノクローナル抗体として、抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型のものを用いることができる（例えば、Vandamme, A. M. et al., Eur. J. Biochem.（1990）192, 767-775, 1990参照）。

具体的には、抗PTHrP抗体を産生するハイブリドーマから、抗PTHrP抗体の可変（V）領域をコードするmRNAを単離する。mRNAの単離は、公知の方法、例えば、グアニジン超遠心法（Chirgwin, J. M. et al., Biochemistry（1979）18, 5294-5299）、AGPC法（Chomczynski, P.et al., Anal. Biochem.（1987）162, 156-159）等により行って全RNAを調製し、mRNA Purification Kit （Pharmacia製）等を使用して目的のmRNAを調製する。また、QuickPrep mRNA Purification Kit （Pharmacia製）を用いることによりmRNAを直接調製することもできる。

得られたmRNAから逆転写酵素を用いて抗体V領域のcDNAを合成する。cDNAの合成は、AMV Reverse Transcriptase First-strand cDNA Synthesis Kit（生化学工業社製）等を用いて行う。また、cDNAの合成および増幅を行うには、5'-Ampli FINDER RACE Kit（Clontech製）およびPCRを用いた5'-RACE法（Frohman, M. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA（1988）85, 8998-9002、Belyavsky, A. et al., Nucleic Acids Res.（1989）17, 2919-2932）等を使用することができる。

得られたPCR産物から目的とするDNA断片を精製し、ベクターDNAと連結する。さらに、これより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。そして、目的とするDNAの塩基配列を公知の方法、例えば、ジデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法等により確認する。

目的とする抗PTHrP抗体のV領域をコードするDNAを得たのち、これを、所望の抗体定常領域（C領域）をコードするDNAを含有する発現ベクターへ組み込む。

本発明で使用される抗PTHrP抗体を製造するには、抗体遺伝子を発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより、宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させる。

抗体遺伝子の発現は、抗体重鎖（H鎖）または軽鎖（L鎖）をコードするDNAを別々に発現ベクターに組み込んで宿主細胞を同時形質転換させてもよいし、あるいはH鎖およびL鎖をコードするDNAを単一の発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換させてもよい（WO 94/11523 号公報参照）。

また、組換え型抗体の産生には上記宿主細胞だけではなく、トランスジェニック動物を使用することができる。例えば、抗体遺伝子を、乳汁中に固有に産生される蛋白質（ヤギβカゼインなど）をコードする遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含むDNA断片をヤギの胚へ注入し、この胚を雌のヤギへ導入する。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギまたはその子孫が産生する乳汁から所望の抗体を得る。また、トランスジェニックヤギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジェニックヤギに使用してもよい（Ebert, K.M. et al., Bio/Technology（1994）12, 699-702）。

４．改変抗体
本発明では、上記抗体のほかに、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト型化（Humanized）抗体を使用できる。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。

キメラ抗体は、前記のようにして得た抗体V領域をコードするDNAをヒト抗体C 領域をコードするDNAと連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。この既知の方法を用いて、本発明に有用なキメラ抗体を得ることができる。

ヒト型化抗体は、再構成（reshaped）ヒト抗体とも称され、これは、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（CDR; complementarity determining region）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植したものであり、その一般的な遺伝子組換え手法も知られている（欧州特許出願公開番号EP 125023号公報、WO 96/02576 号公報参照）。

具体的には、マウス抗体のCDRとヒト抗体のフレームワーク領域（framework region；FR）とを連結するように設計したDNA配列を、CDR及びFR両方の末端領域にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いてPCR法により合成する(WO98/13388号公報に記載の方法を参照）。

CDRを介して連結されるヒト抗体のフレームワーク領域は、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように、抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Sato, K.et al., Cancer Res.（1993）53, 851-856）。

キメラ抗体及びヒト型化抗体のＣ領域には、ヒト抗体のものが使用され、例えばＨ鎖では、Ｃγ１、Ｃγ２、Ｃγ３、Ｃγ４を、Ｌ鎖ではＣκ、Ｃλを使用することができる。また、抗体またはその産生の安定性を改善するために、ヒト抗体Ｃ領域を修飾してもよい。

キメラ抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒト抗体由来の定常領域とからなる。一方、ヒト型化抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域と、ヒト抗体由来のフレームワーク領域およびＣ領域とからなる。ヒト型化抗体はヒト体内における抗原性が低下されているため、本発明の治療剤の有効成分として有用である。

本発明に使用できるヒト型化抗体としてはヒト型化#23-57-137-1抗体が挙げられる。ヒト型化#23-57-137-1抗体は、マウス由来の#23-57-137-1抗体の相補性決定領域を、Ｌ鎖についてはヒト抗体HSU03868（GEN-BANK, Deftos Mら, Scand. J. Immunol., 39, 95-103, 1994）由来の３つのFR断片（FR1、FR2およびFR3）並びにヒト抗体S25755（NBRF-PDB）由来のFR断片（FR4）に連結したものであり、Ｈ鎖についてはヒト抗体S31679（NBRF-PDB、Cuisinier AMら, Eur. J. Immunol., 23, 110-118, 1993）のフレームワーク領域と連結し、抗原結合活性を有するようにフレームワーク領域のアミノ酸残基を一部置換したものである。

なお、ヒト型化#23-57-137-1抗体のＬ鎖またはＨ鎖をコードするDNAを含むプラスミドを有する大腸菌は、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（茨城県つくば市東1丁目1番地1）に、平成8年8月15日に、Ｈ鎖をコードするDNAを含むプラスミドを有する大腸菌であるEscherichia coli JM109（ hMBC1HcDNA/pUC19 ）についてはFERM BP-5629として、Ｌ鎖をコードするDNAを含むプラスミドを有する大腸菌であるEscherichia coli JM109（ hMBC1Lqλ/pUC19 ）についてはFERM BP-5630として、ブダペスト条約に基づきそれぞれ国際寄託されている。

５．抗体修飾物
本発明で使用される抗体は、PTHrPに結合し、PTHrPの活性を阻害するかぎり、抗体の断片又はその修飾物であってよい。例えば、抗体の断片としては、Fab、F（ab'）₂、Fv、またはＨ鎖若しくはＬ鎖のFvを適当なリンカーで連結させたシングルチェインFv（scFv）が挙げられる。具体的には、抗体を酵素、例えばパパイン、ペプシンで処理し抗体断片を生成させるか、または、これら抗体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現ベクターに導入した後、適当な宿主細胞で発現させる（例えば、Co, M.S. et al., J. Immunol.（1994）152, 2968-2976、Better, M. & Horwitz, A. H. Methods in Enzymology（1989）178, 476-496, Academic Press, Inc.、Plueckthun, A. & Skerra, A. Methods in Enzymology（1989）178, 476-496, Academic Press, Inc.、Lamoyi, E., Methods in Enzymology（1989）121, 652-663、Rousseaux, J. et al., Methods in Enzymology（1989）121, 663-669、Bird, R. E. et al., TIBTECH（1991）9, 132-137参照）。

scFvは、抗体のH鎖V領域とL鎖V領域とを連結することにより得られる。このscFvにおいて、H鎖V領域とL鎖V領域は、リンカー、好ましくはペプチドリンカーを介して連結される（Huston, J. S. et al.、Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.（1988）85, 5879-5883）。scFvにおけるH鎖V領域およびL鎖V領域は、本明細書に抗体として記載されたもののいずれの由来であってもよい。V領域を連結するペプチドリンカーとしては、例えばアミノ酸12-19残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。

scFvをコードするDNAは、前記抗体のH鎖またはH鎖V領域をコードするDNA、およびL鎖またはL鎖V領域をコードするDNAのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードするDNA部分を鋳型とし、その両端を規定するプライマー対を用いてPCR法により増幅し、次いで、さらにペプチドリンカー部分をコードするDNA、およびその両端が各々H鎖、L鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合せて増幅することにより得られる。

また、一旦scFvをコードするDNAが作製されると、それらを含有する発現ベクター、および該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従ってscFvを得ることができる。

これら抗体の断片は、前記と同様にしてその遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体の断片も包含される。

抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（PEG）等の各種分子と結合した抗PTHrP抗体を使用することもできる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体修飾物も包含される。このような抗体修飾物は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、抗体の修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。

６．組換え型抗体または改変抗体の発現および産生
前記のように構築した抗体遺伝子は、公知の方法により発現させ、取得することができる。哺乳類細胞の場合、常用される有用なプロモーター、発現させる抗体遺伝子、その3'側下流にポリAシグナルを機能的に結合させて発現させることができる。例えばプロモーター／エンハンサーとしては、ヒトサイトメガロウィルス前期プロモーター／エンハンサー（ human cytomegalovirus immediate early promoter/enhancer ）を挙げることができる。

また、その他に本発明で使用される抗体発現に使用できるプロモーター／エンハンサーとして、レトロウィルス、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、シミアンウィルス40（SV40）等のウィルスプロモーター／エンハンサー、あるいはヒトエロンゲーションファクター1α（HEF1α）などの哺乳類細胞由来のプロモーター／エンハンサー等が挙げられる。

SV40プロモーター／エンハンサーを使用する場合はMulliganらの方法（Nature（1979）277, 108）により、また、HEF1αプロモーター／エンハンサーを使用する場合はMizushimaらの方法（Nucleic Acids Res.（1990）18, 5322）により、容易に遺伝子発現を行うことができる。

大腸菌の場合、常用される有用なプロモーター、抗体分泌のためのシグナル配列及び発現させる抗体遺伝子を機能的に結合させて当該遺伝子を発現させることができる。プロモーターとしては、例えばlaczプロモーター、araBプロモーターを挙げることができる。laczプロモーターを使用する場合はWardらの方法（Nature（1098）341, 544-546 ; FASEB J.（1992）6, 2422-2427）により、あるいはaraBプロモーターを使用する場合はBetterらの方法（Science（1988）240, 1041-1043）により発現することができる。

抗体分泌のためのシグナル配列としては、大腸菌のペリプラズムに産生させる場合、pelBシグナル配列（Lei, S. P. et al J. Bacteriol.（1987）169, 4379 ）を使用すればよい。そして、ペリプラズムに産生された抗体を分離した後、抗体の構造を適切に組み直して（refold）使用する。

複製起源としては、SV40、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、ウシパピローマウィルス（BPV）等の由来のものを用いることができ、さらに、宿主細胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは、選択マーカーとしてアミノグリコシドトランスフェラーゼ（APH）遺伝子、チミジンキナーゼ（TK）遺伝子、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ecogpt）遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素（dhfr）遺伝子等を含むことができる。

本発明で使用される抗体の製造のために、任意の発現系、例えば真核細胞又は原核細胞系を使用することができる。真核細胞としては、例えば樹立された哺乳類細胞系、昆虫細胞系、真糸状菌細胞および酵母細胞などの動物細胞等が挙げられ、原核細胞としては、例えば大腸菌細胞等の細菌細胞が挙げられる。

好ましくは、本発明で使用される抗体は、哺乳類細胞、例えばCHO、COS、ミエローマ、BHK、Vero、HeLa細胞中で発現される。

次に、形質転換された宿主細胞をin vitroまたはin vivoで培養して目的とする抗体を産生させる。宿主細胞の培養は公知の方法に従い行う。例えば、培養液として、DMEM、MEM、RPMI1640、IMDMを使用することができ、牛胎児血清（FCS）等の血清補液を併用することもできる。

７．抗体の分離、精製
前記のように発現、産生された抗体は、細胞、宿主動物から分離し均一にまで精製することができる。本発明で使用される抗体の分離、精製はアフィニティーカラムを用いて行うことができる。例えば、プロテインAカラムを用いたカラムとして、Hyper D、POROS、Sepharose F.F.（Pharmacia製）等が挙げられる。その他、通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよく、何ら限定されるものではない。例えば、上記アフィニティーカラム以外のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析等を適宜選択、組み合わせることにより、抗体を分離、精製することができる（Antibodies A Laboratory Manual. Ed Harlow, David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988）。

８．抗体の活性の確認
本発明で使用される抗体の抗原結合活性（Antibodies A Laboratory Manual. Ed Harlow, David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988）、リガンドレセプター結合阻害活性（Harada, A. et al., International Immunology（1993）5, 681-690）の測定には公知の手段を使用することができる。

本発明で使用される抗PTHrP抗体の抗原結合活性を測定する方法として、ELISA（酵素結合免疫吸着検定法）、EIA（酵素免疫測定法）、RIA（放射免疫測定法）あるいは蛍光抗体法を用いることができる。例えば、酵素免疫測定法を用いる場合、PTHrP（1-34）をコーティングしたプレートに、抗PTHrP抗体を含む試料、例えば、抗PTHrP抗体産生細胞の培養上清や精製抗体を加える。アルカリフォスファターゼ等の酵素で標識した二次抗体を添加し、プレートをインキュベートし、洗浄した後、p-ニトロフェニル燐酸などの酵素基質を加えて吸光度を測定することで抗原結合活性を評価することができる。
本発明で使用される抗体の活性を確認するには、抗PTHrP抗体の中和活性を測定する。

９．投与方法および製剤
本発明の治療剤は、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療又は改善を目的として使用される。

有効投与量は、一回につき体重1kgあたり0.001mg から1000mgの範囲で選ばれる。あるいは、患者あたり0.01〜100000mg/body、好ましくは0.1〜10000mg/body、さらに好ましくは0.5〜1000mg/body、さらに好ましくは1〜100 mg/bodyの薬剤の投与量を選ぶことができる。しかしながら、本発明の抗PTHrP抗体を含有する治療剤はこれらの投与量に制限されるものではない。

また、投与時期としては、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼが生ずる前後を問わず投与してもよく、あるいは体重減少が予測される時に投与してもよい。

本発明の抗PTHrP抗体を有効成分として含有する治療剤は、常法にしたがって製剤化することができ（Remington's Pharmaceutical Science, latest edition, Mark Publishing Company, Easton,米国）、医薬的に許容される担体や添加物を共に含むものであってもよい。

このような担体および医薬添加物の例として、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリル酸ナトリウム、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、メチルセルロース、エチルセルロース、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、寒天、ポリエチレングリコール、ジグリセリン、グリセリン、プロピレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン（HSA）、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、医薬添加物として許容される界面活性剤等が挙げられる。

実際の添加物は、本発明治療剤の剤型に応じて上記の中から単独で又は適宜組み合わせて選ばれるが、もちろんこれらに限定するものではない。例えば、注射用製剤として使用する場合、精製された抗PTHrP抗体を溶剤、例えば生理食塩水、緩衝液、ブドウ糖溶液等に溶解し、これに吸着防止剤、例えばTween80、Tween 20、ゼラチン、ヒト血清アルブミン等を加えたものを使用することができる。あるいは、使用前に溶解再構成する剤形とするために凍結乾燥したものであってもよく、凍結乾燥のための賦形剤としては、例えば、マンニトール、ブドウ糖等の糖アルコールや糖類を使用することができる。

以下、参考例および実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例等にその技術的範囲が限定されるものではない。

〔実施例１〕 悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症モデル動物での薬効試験
ヒト腫瘍−ヌードマウス移植系の高カルシウム血症モデル動物を用いて、PTHrPに対するマウスモノクローナル抗体及びヒト型化モノクローナル抗体の高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果を検討した。

モデル動物としてヒト膵臓癌FA-6（東京女子医大、佐藤幹二教授より譲渡）あるいはヒト肺癌株LC-6-JCK（（財）実験動物中央研究所より購入）を移植したヌードマウスあるいはヌードラットを用いた。これらのヒト腫瘍株を移植されたヌードマウスまたはヌードラットは、腫瘍の増加に伴い激しい血中カルシウム濃度の上昇がみられ、これに伴い急激な体重減少、全身状態の悪化、ときとして死亡にいたり、いわゆる高カルシウム血症クリーゼと呼ばれるような症状を呈する。この症状をPTHrPに対するマウスモノクローナル抗体及びヒト型化モノクローナル抗体が改善することを、体重および血中イオン化カルシウム濃度を指標にして評価した。

ヒト腫瘍株の継代維持及びモデル動物の作製
ヒト膵臓癌株FA-6およびヒト肺癌LC-6の継代は、BALB/c-nu/nuヌードマウス（日本クレア）を用いてin vivoで行った。マウスでの薬効評価には、５週齢雄性ヌードマウス（BALB/cAJcl-nu日本クレア）を購入し、１週間の馴化の後、６週齢の動物を使用した。ラットでの薬効評価には５週齢雄性ヌードラット（F344/N Jcl-rnu日本クレア）を購入し、マウスと同様に１週間の馴化の後、６週齢の動物を使用した。

高カルシウム血症モデル動物の作製および群分けは、以下のようにして行った。すなわち、継代している腫瘍を摘出し、３ｍｍ角ブロックに細かく刻んだ腫瘍塊を動物の脇腹皮下に１匹あたり１個ずつ移植した。移植後、腫瘍体積が十分に大きくなり、血中イオン化カルシウム濃度が上昇したのを確認した後、腫瘍体積、血中イオン化カルシウム濃度および体重を指標として各指標が平均化するように群分けし、高カルシウム血症モデル動物とした。ラット、マウスとも抗体投与群、対照薬投与群及び溶媒（本実験では、リン酸バッファー生理食塩水（PBS））のみを投与した対照群の３群に群分けした。

血中イオン化カルシウム濃度の測定
抗体投与後、２時間、４時間、２４時間目（マウスを用いた薬効試験）または１時間、２時間、４時間、２４時間目（ラットを用いた薬効試験）に血中イオン化カルシウム濃度を測定し、各抗体の薬効評価を行った。血中イオン化カルシウム濃度は、眼窩（マウス）または尾静脈（ラット）よりヘマトクリット管で採血し、643自動Ca/pHアナライザー（CIBA-CORNING）を用いて測定した。また抗体投与前と投与２４時間後の体重も測定した。

腫瘍体積の測定
腫瘍体積は、腫瘍の長径（a mm）および短径（b mm）を測定し、ギャランの計算式ab²/2により腫瘍体積として算出した。

悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果の検討は、以下のようにして行った。
1) マウスモノクローナル抗体（＃２３−５７−１３７−１）の薬効試験
マウスモノクローナル抗体の薬効試験では、上記で作製、群分けしたモデルマウスに、リン酸バッファー生理食塩水（PBS）0.1mlに調整した抗体を100μg（100μg/0.1ml PBS/mouse）、尾静脈内に単回投与した。対照薬として、既に高カルシウム血症クリーゼの治療に用いられているカルシトニン製剤（製品名：カルシトラン：帝国臓器製薬(株)製）を、100U/kgの用量で尾静脈内に単回投与した。対照として、PBS 0.1 ml/mouseを尾静脈内に単回投与した（図１、図２）。

2) ヒト型化抗体（ｈＭＢＣ（ｑ））の薬効試験
１．高カルシウム血症モデルマウスでの薬効試験
ヒト型化抗体の薬効試験では、高カルシウム血症モデルマウスに抗体30μg/0.1ml PBS/mouseを尾静脈内に単回投与した。対照薬として、カルシトニン製剤（製品名：エルシトニン：旭化成工業(株)製）を、100U/kgの用量で尾静脈内に単回投与した。対照として、PBSを0.1 ml/mouseで尾静脈内に単回投与した（図３、図４）。

２．高カルシウム血症モデルラットでの薬効試験
ヒト型化抗体の薬効試験では、高カルシウム血症モデルラットに抗体0.5 mg/1ml PBS/kgを尾静脈内に単回投与した。対照薬として、カルシトニン製剤（製品名：エルシトニン：旭化成工業(株)製）を、1U/kgの用量で尾静脈内に単回投与した。対照として、PBSを1ml/kgで尾静脈内に単回投与した（図５、図６）。

その結果、マウスモノクローナル抗体及びヒト型化抗体は、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症モデルの血中イオン化カルシウム濃度を速やかに低下させた（図１、図３、図５）。カルシトニン製剤の効果は一時的であるのに対し、抗体の作用は即効的、かつ持続的であった。また抗体投与群では、カルシトニン製剤投与群には見られない24時間後の体重回復も認められた（図２、図４、図６）。このことから、PTHrPに対する中和活性を有するマウスモノクローナル抗体あるいはヒト型化抗体は、緊急の治療の要求される悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼの治療薬としての有用性が示された。

〔参考例１〕
抗PTHrP(1-34)マウスモノクローナル抗体産生ハイブリドーマの作製
ヒトPTHrP(1-34)に対するモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ＃23-57-154 および#23-57-137-1 は、以下の通り作製した（Sato, K. et al., J. Bone Miner. Res. 8, 849-860, 1993）。なお、ヒトPTHrP(1-34)のアミノ酸配列を配列番号75に示す。

免疫原として使用するために、PTHrP(1-34)（Peninsula 製）とキャリアータンパクであるサイログロブリンをカルボジイミド（Dojinn）を用いて結合した。サイログロブリンと結合したPTHrP(1-34)を透析し、タンパク濃度として２μg/mlとなるように調製した後、フロイントアジュバント（Difco）と１:１で混合し、エマルジョン作製後、16匹の雌性BALB/Cマウスの背部皮下又は腹腔内に動物あたり100μgを11回免疫した。初回免疫は、フロイント完全アジュバントを用い、二回目以降の追加免疫にはフロイント不完全アジュバントを使用した。

免疫したマウスの血清中の抗体価の測定は、以下の方法で行った。すなわち、マウス尾静脈より採血し、血清分離後ＲＩＡバッファーで希釈した抗血清と¹²⁵I標識PTHrP(1-34)を混合し、結合活性を測定した。抗体価の上昇したマウスの腹腔に、キャリアータンパクを結合していないPTHrP(1-34)を動物あたり50μgを最終免疫した。

最終免疫３日目にマウスを屠殺し、脾臓を摘出後、脾臓細胞とマウスミエローマ細胞株P3x63Ag8U.1 を50％ポリエチレングリコール4000を用いる常法にしたがって細胞融合した。細胞融合した細胞を２×10⁴／ウェルの細胞数で85枚の96穴プレートに蒔き込んだ。ハイブリドーマの選別はHAT培地を用いて行った。

ハイブリドーマのスクリーニングは、ＨＡＴ培地中で生育の認められた穴の培養上清を固相化RIA法にてPTHrP認識抗体の有無を測定し選択することにより行った。抗体との結合能の認められた穴からハイブリドーマを回収し、15％FCSを含むRPMI-1640 培地にOPI-supplement(Sigma) を添加した培地に懸濁し、限界希釈法にてハイブリドーマの単一化を実施した。PTHrP(1-34)との結合能の強いクローン＃23-57-154 および#23-57-137-1 を得た。

なお、ハイブリドーマクローン#23-57-137-1 は、mouse-mouse hybridoma #23-57-137-1 として、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（茨城県つくば市東1丁目1番地1）に、平成８年８月１５日に、FERM BP-5631としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。

〔参考例２〕ヒトPTHrP(1-34)に対するマウスモノクローナル抗体のＶ領域をコードするDNAのクローニング
ヒトPTHrP(1-34)に対するマウスモノクローナル抗体#23-57-137-1 の可変領域をコードするDNAを次の様にしてクローニングした。

(1) mRNAの調製
ハイブリドーマ#23-57-137-1 からのmRNAをQuick Prep mRNA Purification Kit(Pharmacia Biotech社) を用いて調製した。ハイブリドーマ#23-57-137-1 の細胞を抽出バッファー で完全にホモジナイズし、キット添付の処方に従い、oligo(dT)-Cellulose Spun Column にてmRNAを精製し、エタノール沈殿をおこなった。ｍＲＮＡ沈殿物を溶出バッファーに溶解した。

(2) マウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子のcDNAの作製および増幅
(i) #23-57-137-1 抗体Ｈ鎖Ｖ領域cDNAのクローニング
ヒトPTHrPに対するマウスモノクローナル抗体のＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子のクローニングは、5'-RACE法（Frohman, M. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85, 8998-9002, 1988; Belyavsky, A. et al., Nucleic Acids Res. 17, 2919-2932, 1989） により行った。5'-RACE法には5'-Ampli FINDER RACE kit (CLONETECH社) を用い、操作はキット添付の処方にしたがって行った。cDNA合成に使用するプライマーは、マウスＨ鎖定常領域（Ｃ領域）とハイブリダイズするMHC2プライマー（配列番号１）を用いた。前記のようにして調製したmRNA約２μgを鋳型としてMHC2プライマー10pmole を加え、逆転写酵素と52℃、30分間反応させることによりcDNAへの逆転写を行った。

６Ｎ NaOH でRNAを加水分解（65℃、30分間）した後、エタノール沈殿によりcDNAを精製した。T4RNAリガーゼで37℃で６時間、室温で16時間反応することにより、合成したcDNAの５'末端にAmpli FINDER Anchor(配列番号42) を連結した。これを鋳型としてPCRにより増幅するためのプライマーとしてAnchorプライマー（配列番号２）およびMHC-G1プライマー（配列番号３）（S.T.Jones, et al., Biotechnology, 9, 88, 1991） を使用した。

PCR溶液は、その50μl中に10mM Tris-HCl(pH8.3)、50mM KCl、0.25mM dNTPs(dATP, dGTP, dCTP, dTTP)、1.5 mM MgCl₂、2.5 ユニットのTaKaRa Taq（宝酒造）、10pmole のAnchorプライマー、並びにMHC-G1プライマー及びAmpli FINDER Anchor を連結したcDNAの反応混合物１μlを含有する。この溶液に50μlの鉱油を上層した。PCRはThermal Cycler Mode1 480J(Perkin Elmer) を用い、94℃にて45秒間、60℃にて45秒間、72℃にて２分間の温度サイクルで30回行った。

(ii) #23-57-137-1 抗体Ｌ鎖Ｖ領域のｃDNAのクローニング
ヒトPTHrPに対するマウスモノクローナル抗体のＬ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子のクローニングは、5'-RACE法（Frohman, M. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 8998-9002, 1988 ; Belyavsky, A. et al., Nucleic Acids Res. 17, 2919-2932, 1989）により行った。5'-RACE法には5'-Ampli Finder RACE Kit(Clonetech)を用い、操作は添付の処方に従った。cDNA合成に使用するプライマーは、oligo-dTプライマーを用いた。前記のように調製したmRNA約２μgを鋳型としてoligo-dTプライマーを加え、逆転写酵素と52℃、30分間反応させることによりcDNAへの逆転写を行った。６N NaOHでRNAを加水分解（65℃、30分間）した後、エタノール沈殿によりcDNAを精製した。合成したcDNAの5'末端に前記Ampli FINDER Anchor をT4RNAリガーゼで37℃で６時間、室温で16時間反応させることにより連結した。

マウスＬ鎖λ鎖定常領域の保存配列からPCRプライマーMLC（配列番号４）を設計し、394 DNA/RNA Synthesizer (ABI社)を用いて合成した。PCR溶液は、その100μl中に10 mM Tris-HCl（pH8.3）、50mM KCl、0.25mM dNTPs（dATP, dGTP，dCTP，dTTP）、1.5Mm MgCl₂、2.5 ユニットの AmpliTaq （PERKIN ELMER）、50pmole のAnchorプライマー（配列番号２）、並びにMLC（配列番号４）およびAmpli FINDER Anchorを連結したcDNAの反応混合物１μlを含有する。この溶液に50μlの鉱油を上層した。PCRはThermal Cycler Model480J（Perkin Elmer）を用い、94℃にて45秒間、60℃にて45秒間、72℃にて２分間の温度サイクルで３５回行った。

(3) PCR生成物の精製および断片化
前記のようにしてPCR法により増幅したDNA断片を、３％Nu Sieve GTGアガロース（FMC Bio. Products）を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。Ｈ鎖Ｖ領域として約550bp 長、Ｌ鎖Ｖ領域として約550bp 長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEAN II Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。精製したDNAをエタノールで沈殿させた後、10mM Tris-HCl (pH7.4) 、１mM EDTA 溶液20μlに溶解した。得られたDNA溶液１μlを制限酵素XmaI（New England Biolabs）により37℃で１時間消化し、次いで制限酵素EcoRI （宝酒造）により37℃で１時間消化した。この消化混合物をフェノール及びクロロホルムで抽出し、エタノール沈殿によりDNAを回収した。

こうして、5'-末端にEcoRI 認識配列を有し、3'-末端にXmaI認識配列を有するマウスＨ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含むDNA断片を得た。

上記のようにして調製したマウスＨ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含むEcoRI-XmaI DNA断片とEcoRI 及びXmaIで消化することにより調製したpUC19 ベクターをDNAライゲーションキットver.2 （宝酒造）を用い、添付の処方に従い16℃で１時間反応させ連結した。次に10μlの上記連結混合物を大腸菌JM109コンピテント細胞（ニッポンジーン）100μlに加え、この細胞を氷上で15分間、42℃にて１分間、さらに氷上で１分間静置した。次いで300μlのSOC培地（Molecular Cloning: A Labgoratory Manual, Sambrook,et al., Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)を加え37℃にて30分間インキュベートした後、100μg/ml又は50μg/mlのアンピシリン、0.1mM のIPTG、20μg/mlのX-galを含むLB寒天培地または2xYT寒天培地（Molecular Cloning: A Labgoratory Manual, Sambrook,et al., Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)上にこの大腸菌をまき、37℃にて一夜インキュベートして大腸菌形質転換体を得た。

この形質転換体を100μg/ml又は50μg/mlのアンピシリンを含有するLB培地または2×YT培地２ｍｌで37℃にて一夜培養し、菌体画分からプラスミド抽出機PI-100Σ（クラボウ）又はQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドDNAを調製し、塩基配列の決定を行った。

(4) マウス抗体Ｖ領域をコードする遺伝子の塩基配列決定
前記のプラスミド中のcDNAコード領域の塩基配列をDye Terminator Cycle Sequencing kit(Perkin-Elmer) を用い、DNA Sequencer 373A (ABI社Perkin-Elmer）により決定した。配列決定用プライマーとしてM13 Primer M4 （宝酒造）（配列番号５）及びM13 Primer RV （宝酒造）（配列番号６）を用い、両方向の塩基配列を確認することにより配列を決定した。

こうして得られたハイブリドーマ#23-57-137-1 に由来するマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含有するプラスミドをMBC1H04 、Ｌ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含有するプラスミドをMBC1L24 と命名した。プラスミドMBC1H04 およびMBC1L24 に含まれるマウス#23-57-137-1 抗体のＨ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子の塩基配列（対応するアミノ酸配列を含む）をそれぞれ配列番号57、65に示す。これらのアミノ酸配列を、Ｈ鎖Ｖ領域の断片については配列番号46、Ｌ鎖Ｖ領域の断片については配列番号45に示す。

なお、前記プラスミドMBC1H04 およびMBC1L24 を有する大腸菌はEscherichia coli JM109（MBC1H04 ）およびEscherichia coli JM109（MBC1L24 ）として、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（茨城県つくば市東1丁目1番地1）に、平成８年８月１５日に、Escherichia coli JM109 (MBC1H04)についてはFERM BP-5628、Escherichia coli JM109 (MBC1L24)についてはFERM BP-5627としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。

(5) ヒトPTHrPに対するマウスモノクローナル抗体#23-57-137-1 のCDRの決定
Ｈ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域の全般の構造は、互いに類似性を有しており、それぞれ４つのフレームワーク部分が３つの超可変領域、すなわち相補性決定領域(CDR)により連結されている。フレームワークのアミノ酸配列は、比較的よく保存されているが、一方、CDR領域のアミノ酸配列の変異性は極めて高い（Kabat, E. A. et al., 「Sequence of Proteins of Immunological Interest」US Dept. Health and Human Services, 1983)。

このような事実に基づき、ヒトPTHrPに対するマウスモノクローナル抗体の可変領域のアミノ酸配列をKabat らにより作成された抗体のアミノ酸配列のデータベースにあてはめて、相同性を調べることによりCDR領域を表１に示すごとく決定した。

なお、Ｌ鎖Ｖ領域のCDR１〜３のアミノ酸配列についてはそれぞれ配列番号59〜61に示し、Ｈ鎖Ｖ領域のCDR１〜３のアミノ酸配列についてはそれぞれ配列番号62〜64に示した。

〔参考例３〕キメラ抗体の構築
(1) キメラ抗体Ｈ鎖の構築
(i) Ｈ鎖Ｖ領域の構築
ヒトＨ鎖Ｃ領域Ｃγ１のゲノムDNAを含む発現ベクターに連結するために、クローニングしたマウスＨ鎖Ｖ領域をPCR法により修飾した。後方プライマーMBC1-S1（配列番号７）はＶ領域のリーダー配列の5'-側をコードするDNAにハイブリダイズし、且つKozak コンセンサス配列（Kozak, M. et al., J. Mol. Biol., 196, 947-950, 1987）及び制限酵素Hind IIIの認識配列を有するように設計した。前方プライマーMBC1-a（配列番号８）はＪ領域の3'-側をコードするDNA配列にハイブリダイズし、且つ、スプライスドナー配列及び制限酵素BamHIの認識配列を有するように設計した。PCRは、TaKaRa Ex Taq （宝酒造）を用い、50μlの反応混合液に鋳型DNAとして0.07μgのプラスミドMBC1H04 、プライマーとしてMBC1-aおよびMBC1-S1 をそれぞれ50pmole 、2.5UのTaKaRa Ex Taq 、0.25mMのｄＮＴＰ含む条件で添付緩衝液を使用して50μlの鉱油を上層し、94℃にて１分間、55℃にて１分間、72℃にて２分間の温度サイクルで30回行った。PCR法により増幅したDNA断片を３％Nu Sieve GTGアガロース（FMC Bio. Products)を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。

437bp 長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEAN II Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。精製したDNAをエタノール沈殿で回収した後、10mM Tris-HCl (pH7.4) 、１mM EDTA 溶液20μlに溶解した。得られたDNA溶液１μlを制限酵素BamHI、Hind III（宝酒造）により37℃１時間消化した。この消化混合物をフェノール及びクロロホルムで抽出し、エタノール沈殿によりDNAを回収した。

上記のようにして調製したマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含むHind III-BamHI DNA断片をHind IIIおよびBamHIで消化することにより調製したpUC19 ベクターにサブクローニングした。このプラスミドの塩基配列を確認するためプライマーM13 Primer M4 およびM13 Primer RV をプライマーとして、Dye Terminator Cycle Sequencing kit(Perkin-Elmer) を用い、DNA Sequencer 373A (Perkin-Elmer)により塩基配列を決定した。正しい塩基配列を有するハイブリドーマ#23-57-137-1 に由来するマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含有し、5'-側にHind III認識配列及びKozak 配列、3'-側にBamHI認識配列を持つプラスミドをMBC1H/pUC19 と命名した。

(ii) ｃDNAタイプのマウス−ヒトキメラＨ鎖の作製のためのＨ鎖Ｖ領域の構築
ヒトＨ鎖Ｃ領域Ｃγ１のcDNAと連結するために、上記のようにして構築したマウスＨ鎖Ｖ領域をPCR法により修飾した。Ｈ鎖Ｖ領域のための後方プライマーMBC1HVS2（配列番号９）はＶ領域のリーダー配列の最初をコードする配列の２番のアスパラギンをグリシンに変換し、且つKozak コンセンサス配列（Kozak, M. et al., J. Mol. Biol., 196, 947-950, 1987)並びにHind IIIおよびEcoRI 認識配列を有するように設計した。Ｈ鎖Ｖ領域のための前方プライマーMBC1HVR2（配列番号10）はＪ領域の3'-側をコードするDNA配列にハイブリダイズし、且つ、Ｃ領域の5'-側の配列をコードしＡpaＩおよびSmaI認識配列を有するように設計した。

PCRはTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を用い、50μlの反応混合液に鋳型DNAとして0.6μgのプラスミドMBC1H/pUC19 、プライマーとしてMBC1HVS2およびMBC1HVR2をそれぞれ50pmole 、TaKaRa Ex Taq を2.5U、0.25mMのdNTPを含む条件で添付の緩衝液を使用して50μlの鉱油を上層して94℃１分間、55℃１分間、72℃１分間の温度サイクルで30回行った。PCR法により増幅したDNA断片を１％Sea Kem GTG アガロース（FMC Bio.Products） を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。456bp 長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEAN II Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。精製したDNAをエタノール沈殿させた後、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液20μlに溶解した。

得られたDNA溶液１μlを制限酵素EcoRI およびSmaI（宝酒造）により37℃で１時間消化した。この消化混合物をフェノール及びクロロホルムで抽出し、エタノール沈殿によりDNAを回収した。上記のようにして調製したマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含むEcoRI-SmaI DNA断片をEcoRI およびSmaIで消化することにより調製したpUC19 ベクターにサブクローニングした。このプラスミドの塩基配列を確認するため、プライマーM13 Primer M4 及びM13 Primer RV をプライマーとして、Dye Terminator Cycle Sequencing kit(Perkin-Elmer) を用い、DNA Sequencer 373A(Perkin-Elmer) により塩基配列を決定した。正しい塩基配列を有するハイブリドーマ#23-57-137-1 に由来するマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含有し、5'-側にEcoRI およびHind III認識配列並びにKozak 配列、3'-側にApaIおよびSmaI認識配列を持つプラスミドをMBC1Hv/pUC19と命名した。

(iii) キメラ抗体Ｈ鎖の発現ベクターの構築
ヒト抗体Ｈ鎖Ｃ領域Ｃγ１を含むcDNAは、以下のようにして調製した。すなわち、ヒト型化PM1抗体Ｈ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｈ鎖Ｃ領域IgG1のゲノムDNA（N. Takahashi, et al., Cell 29, 671-679 1982）をコードする発現ベクターDHFR-ΔE-RVh-PM-1-f（WO92/19759参照）と、ヒト型化PM1抗体Ｌ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｌ鎖κ鎖Ｃ領域のゲノムDNAをコードする発現ベクターRV1-PM1a（WO92/19759参照）とを導入したCHO細胞よりmRNAを調製し、RT-PCR法でヒト型化ＰＭ１抗体Ｈ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｃ領域Ｃγ１を含むｃDNAをクローニングし、pUC19 のHind IIIとBamHI部位にサブクローニングした。塩基配列を確認した後、正しい配列を持つプラスミドをpRVh-PM1f-ｃDNAと命名した。

DHFR-ΔE-RVh-PM-1-f上のSV40プロモーターとDHFR遺伝子との間にあるHind III部位、およびEF-1αプロモーターとヒト型化PM1抗体Ｈ鎖Ｖ領域との間にあるEcoRI 部位を欠失した発現ベクターを作製し、ヒト型化PM1抗体Ｈ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｃ領域Ｃγ１を含むcDNAの発現ベクターの構築のために使用した。

pRVh-PM1f-cDNAをBamHIで消化した後、Klenowフラグメントで平滑化し、さらにHind IIIで消化し、Hind III-BamHI平滑化断片を調製した。このHind III-BamHI平滑化断片を、上記のHind III部位およびEcoRI 部位が欠失したDHFR-ΔE-RVh-PM1-f をHind IIIおよびSmaIで消化することにより調製した発現ベクターに連結し、ヒト型化ＰＭ１抗体Ｈ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｃ領域Ｃγ１をコードするcDNAを含む発現ベクターRVh-PM1f−cDNAを構築した。

ヒト型化ＰＭ１抗体Ｈ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｃ領域Ｃγ１をコードするｃDNAを含む発現ベクターRVh-PM1f−cDNAをApaIおよびBamHIで消化した後、Ｈ鎖Ｃ領域を含むDNA断片を回収し、ApaIおよびBamHIで消化することにより調製したMBC1Hv/pUC19に導入した。こうして作製したプラスミドをMBC1HcDNA ／pUC19 と命名した。このプラスミドはマウス抗体のＨ鎖Ｖ領域およびヒト抗体Ｃ領域Ｃγ１をコードするcDNAを含み、5'-末端にEcoRI およびHind III認識配列、3'-末端にBamHI認識配列を持つ。

プラスミドMBC1HcDNA/pUC19 をEcoRI およびBamHIで消化し、得られたキメラ抗体のＨ鎖をコードする塩基配列を含むDNA断片を、EcoRI およびBamHIで消化することにより調製した発現ベクターpCOS1に導入した。こうして得られたキメラ抗体の発現プラスミドをMBC1HcDNA/pCOS1と命名した。なお、発現ベクターpCOS1は、HEF-PMh-gγ1（WO92/19759参照）から、EcoRI およびSmaI消化により抗体遺伝子を削除し、EcoRI-NotI-BamHI アダプター（宝酒造）を連結することにより構築した。

さらにＣＨＯ細胞での発現に用いるためのプラスミドを作製するため、プラスミドMBC1HcDNA/pUC19 をEcoRI およびBamHIで消化し、得られたキメラ抗体Ｈ鎖配列を含むDNA断片を、EcoRI およびBamHIで消化することにより調製した発現プラスミドpCHO1に導入した。こうして得られたキメラ抗体の発現プラスミドをMBC1HcDNA/pCHO1 と命名した。なお、発現ベクターpCHO1は、DHFR-ΔE-RVh-PM1-f （WO92/19759参照）から、EcoRI およびSmaI消化により抗体遺伝子を削除し、EcoRI-NotI-BamHI Adaptor（宝酒造）を連結することにより構築した。

(2) ヒトＬ鎖定常領域の構築
(i) クローニングベクターの作製
ヒトＬ鎖定常領域を含むpUC19 ベクターを構築するために、Hind III部位欠失pUC19 ベクターを作製した。pUC19 ベクター２μgを20mM Tris-HCl（pH8.5 ）、10mM MgCl₂、１mM DTT、100 mM KCl、８Ｕの Hind III （宝酒造）を含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。消化混合液をフェノールおよびクロロホルムで抽出し、DNAをエタノール沈殿により回収した。

回収したDNAを50mM Tris-HCl （pH7.5）、10mM MgCl₂、１mM DTT、100mM NaCl、0.5mM dNTP、６ＵのKlenowフラグメント（GIBCO BRL）を含有する50μlの反応混合液中で室温にて20分間反応させ、末端を平滑化させた。反応混合液をフェノールおよびクロロホルムで抽出し、ベクターDNAをエタノール沈殿により回収した。

回収したベクターDNAを50mM Tris-HCl （pH7.6）、 10mM MgCl₂、１mM ATP、１mM DTT、５％(v/v) ポリエチレングリコール-8000 、0.5 ＵのT4 DNAリガーゼ（GIBCO BRL）を含有する反応混合液10μl中で16℃で２時間反応させ、自己連結させた。反応混合液５μlを大腸菌JM109 コンピテント細胞（ニッポンジーン）100μlに加え、氷上で30分間静置した後、42℃にて１分間、さらに氷上で１分間静置した。SOC培地500μlを加えて、37℃で１時間インキュベーションした後、X-gal とIPTGを表面に塗布した2×YT寒天培地（50μg/mlアンピシリン含有）（Molecular Cloning: A Labgoratory Manual, Sambrook,et al., Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989）にまき、37℃で一夜培養して形質転換体を得た。

形質転換体を、50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地20mlで37℃一夜培養し、菌体画分からPlasmid Mini Kit(QIAGEN)を用いて、添付の処方に従ってプラスミドDNAを精製した。精製したプラスミドをHind IIIで消化し、Hind III部位が欠失していることを確認したプラスミドをpUC19 ΔHind IIIと命名した。

(ii) ヒトＬ鎖λ鎖定常領域をコードする遺伝子の構築
ヒト抗体Ｌ鎖λ鎖Ｃ領域は、Mcg+ Ke+ Oz- 、Mcg- Ke- Oz- 、Mcg- Ke- Oz+ 、Mcg- Ke+ Oz- の少なくとも４種類のアイソタイプが知られている（P.Dariavach, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 9074-9078, 1987) 。#23-57-137-1 マウスＬ鎖λ鎖Ｃ領域と相同性を有するヒト抗体Ｌ鎖λ鎖Ｃ領域をEMBLデータベースで検索した結果、アイソタイプがMcg+ Ke+ Oz- （accession No.X57819)（P. Dariavach, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 9074-9078, 1987) のヒト抗体Ｌ鎖λ鎖が最も高い相同性を示し、#23-57-137-1 マウスＬ鎖λ鎖Ｃ領域との相同性はアミノ酸配列で64.4％、塩基配列で73.4％であった。

そこで、このヒト抗体Ｌ鎖λ鎖Ｃ領域をコードする遺伝子の構築をPCR法を用いて行った。各プライマーの合成は、394 DNA/RNA synthesizer(ABI 社) を用いて行った。HLAMB1（配列番号11）およびHLAMB3（配列番号13）はセンスDNA配列を有し、HLAMB2（配列番号１２）およびHLAMB4（配列番号１４）はアンチセンスDNA配列を有し、それぞれのプライマーの両端に20から23bpの相補的配列を有する。

外部プライマーHLAMBS（配列番号15）、HLAMBR（配列番号16）はHLAMB1、HLAMB4とそれぞれ相同な配列を有しており、またHLAMBSはEcoRI 、Hind III、BlnI認識配列を、HLAMBRはEcoRI 認識配列をそれぞれ含んでいる。第一PCRでHLAMB1-HLAMB2 とHLAMB3-HLAMB4 の反応を行った。反応後、それらを等量混合し、第二PCRでアセンブリを行った。さらに外部プライマーHLAMBSおよびHLAMBRを添加し、第三PCRにより全長DNAを増幅させた。

PCRはTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を使い、添付の処方に従って行った。第一PCRでは、５pmole のHLAMB1および 0.5pmole のHLAMB2と５ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）とを含有する100μlの反応混合液、あるいは0.5pmoleのHLAMB3および５pmole のHLAMB4と５ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）とを含有する100μlの反応混合液を用い、50μlの鉱油を上層して94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで５回行った。

第二PCR は、反応液を50μlずつ混合し、50μlの鉱油を上層して94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで３回行った。

第三PCRは、反応液に外部プライマーHLAMBSおよびHLAMBRを各50pmole ずつ添加し、94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで30回行った。

第三PCR産物のDNA断片を３％低融点アガロースゲル（NuSieve GTG Agarose, FMC) で電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101) を用い、添付の処方に従ってゲルから回収、精製した。

得られたDNA断片を50mM Tris-HCl(pH7.5)、10mM MgCl₂、１mM DTT、 100mM NaCl 、８ＵのEcoRI （宝酒造）を含有する20μlの反応混合液中で37℃にて１時間消化した。消化混合液をフェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿で回収した後、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液８μlに溶解した。

プラスミドpUC19 ΔHind III 0.8μgを同様にEcoRI で消化し、フェノールおよびクロロホルムで抽出、エタノール沈殿により回収した。消化したプラスミドpUC19 ΔHind IIIを50 mM Tris-HCl（pH9.0）、１mM MgCl₂、アルカリホスファターゼ(E.coli C75, 宝酒造)を含有する反応混合液50μl中で37℃、30分間反応させ脱リン酸処理（ＢＡＰ処理）した。反応液をフェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿により回収した後、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

上記のBAP処理したプラスミドpUC19 ΔHind III １μlと先のPCR産物４μlをDNA Ligation Kit Ver.2（宝酒造）を用いて連結し、大腸菌JM109 コンピテント細胞に形質転換した。得られた形質転換体を50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地２mlで一夜培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit (QIAGEN) を用いてプラスミドを精製した。

上記プラスミドについて、クローニングされたDNAの塩基配列の確認を行った。塩基配列の決定には373A DNA sequencer (ABI 社) を用い、プライマーにはM13 Primer M4 およびM13 Pricer RV （宝酒造）を用いた。その結果、クローニングされたDNAの内部に12bpの欠失があることが判明した。このDNAを含むプラスミドをＣλΔ／pUC19 と命名した。そこで、その部分を補うためのプライマーHCLMS （配列番号17）、 HCLMR（配列番号18）を新たに合成し、PCRで再度正しいDNAの構築を行った。

第一PCRで欠失DNAを含むプラスミドＣλΔ／pUC19 を鋳型とし、プライマーHLAMBSとHCLMR 、HCLMS とHLAMB4で反応を行った。PCR産物をそれぞれ精製し、第二PCRでアセンブリを行った。さらに外部プライマーHLAMBSおよびHLAMB4を添加し、第三PCRにより全長DNAを増幅させた。

第一PCRでは、鋳型としてＣλΔ／pUC19 0.1μg、プライマーHLAMBSおよびHCLMR 各50pmole 、あるいはHCLMS およびHLAMB4各50pmole 、５ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を含有する100μlの反応混合液を用い、50μlの鉱油を上層して94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで30回行った。

PCR産物HLAMBS-HCLMR(236bp) 、HCLMS-HLAMB4(147bp) をそれぞれ３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製した。第二PCRでは精製DNA断片各40ng、１ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を含有する20μlの反応混合液を用い、25μlの鉱油を上層して94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルを５回行った。

第三PCRでは、第二PCR反応液２μl、外部プライマーHLAMBS、HLAMB4各50pmole 、５ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を含有する100μlの反応混合液を用い、50μlの鉱油を上層した。PCRは、94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで30回行った。第三PCR産物である357bp のDNA断片を３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製した。

得られたDNA断片0.1μgをEcoRI で消化した後、ＢＡＰ処理したプラスミド pUC19ΔHind IIIにサブクローニングした。大腸菌ＪＭ１０９コンピテント細胞に形質転換し、50μg/mlアンピシリンを含有する２×ＹＴ培地２mlで一夜培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。

精製したプラスミドについて塩基配列をM13 Primer M4 、M13 Primer RV （宝酒造）を用い、373A DNA sequencer (ABI 社）にて決定した。欠失のない正しい塩基配列を有していることが確認されたプラスミドをＣλ／pUC19 とした。

(iii) ヒトＬ鎖κ鎖定常領域をコードする遺伝子の構築
プラスミドHEF-PM1k-gk （WO92/19759）からＬ鎖κ鎖Ｃ領域をコードするDNA断片をPCR法を用いてクローニングした。394 DNA/RNA synthesizer(ABI 社）を用いて合成した前方プライマーHKAPS （配列番号19）はEcoRI 、Hind III、BlnI認識配列を、後方プライマーHKAPA （配列番号20）はEcoRI 認識配列を有するように設計した。

鋳型となるプラスミドHEF-PM1k-gk 0.1μg、プライマーHKAPS 、HKAPA 各50pmole 、５ＵのTaKaRa Ex Taq （宝酒造）を含有する100μlの反応混合液を用い、50μlの鉱油を上層した。94℃にて１分間、60℃にて１分間、72℃にて１分間の反応を30サイクル行った。360bp のPCR産物を３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製した。

得られたDNA断片をEcoRI で消化した後、ＢＡＰ処理したプラスミドpUC19 ΔHind IIIにクローニングした。大腸菌ＪＭ１０９コンピテント細胞に形質転換し、50μg/mlアンピシリンを含有する２×ＹＴ培地２mlで一夜培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。

精製したプラスミドの塩基配列をM13 Primer M4 、M13 Primer RV （宝酒造）を用い、373A DNA sequencer(ABI社）にて決定した。正しい塩基配列を有していることが確認されたプラスミドをＣκ／pUC19 とした。

(3) キメラ抗体Ｌ鎖発現ベクターの構築
キメラ#23-57-137-1 抗体Ｌ鎖発現ベクターを構築した。プラスミドＣλ／pUC19 、Ｃκ／pUC19 のヒト抗体定常領域の直前にあるHind III、BlnI部位に、#23-57-137-1 Ｌ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を連結することによって、それぞれキメラ#23-57-137-1 抗体Ｌ鎖Ｖ領域およびＬ鎖λ鎖またはＬ鎖κ鎖定常領域をコードするpUC19 ベクターを作製した。EcoRI 消化によってキメラ抗体Ｌ鎖遺伝子を切り出し、ＨＥＦ発現ベクターへサブクローニングを行った。

すなわち、プラスミドMBC1L24 から#23-57-137-1 抗体Ｌ鎖Ｖ領域をPCR法を用いてクローニングした。各プライマーの合成は、394 DNA/RNA synthesizer(ABI 社）を用いて行った。後方プライマーMBCCHL1 （配列番号21）はHind III認識配列とKozak 配列（Kozak,M.et al.,J.Mol.Biol.196,947-950,1987) を、前方プライマーMBCCHL3 （配列番号22）はBglII 、EcoRI 認識配列を有するように設計した。

PCRは、10mM Tris-HCl(pH8.3)、50mM KCl、1.5mM MgCl₂、0.2mM ｄＮＴＰ、0.1μgのMBC1L24 、プライマーとしてMBCCHL1 およびMBCCHL3 を各50pmole 、１μlの AmpliTaq(PERKIN ELMER) を含有する100μlの反応混合液を用い、50μlの鉱油を上層して94℃にて45秒間、60℃にて45秒間、72℃にて２分間の温度サイクルで30回行った。

444bpのPCR産物を３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEAN II kit(BIO101)を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl (pH7.4) 、１mM EDTA 溶液20μlに溶解した。PCR産物１μlをそれぞれ10mM Tris-HCl （pH7.5）、10mM MgCl₂、１mM DTT、50mM NaCl 、８ＵのHind III（宝酒造）および８ＵのEcoRI （宝酒造）を含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。消化混合液をフェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿で回収し、10mM Tris-HCl （pH7.4）、１mM EDTA 溶液８μlに溶解した。

プラスミドpUC19 １μgを同様にHind IIIおよびEcoRI で消化し、フェノールおよびクロロホルムで抽出、エタノール沈殿により回収し、アルカリホスファターゼ(E.coli C75 ，宝酒造)でBAP処理した。反応液をフェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿で回収した後、10mM Tris-HCl (pH7.4) 、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

BAP処理したプラスミドpUC19 １μlと先のPCR産物４μlをDNA Ligation Kit Ver.2 （宝酒造）を用いて連結し、大腸菌JM109コンピテント細胞（ニッポンジーン）に前述と同様に形質転換した。これを50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT寒天培地にまき、３７℃で一夜培養した。得られた形質転換体を、50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地２mlで37℃で一夜培養した。菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。塩基配列を決定後、正しい塩基配列を有するプラスミドをCHL/pUC19 とした。

プラスミドＣλ／pUC19 、Ｃκ／pUC19 各１μgをそれぞれ20mM Tris-HCl(pH8.5)、10mM MgCl₂、１mM DTT、100mM KCl、８Ｕの Hind III（宝酒造）および ２ＵのBlnI（宝酒造）を含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。消化混合液をフェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿で回収した後、37℃で30分間ＢＡＰ処理を行った。反応液をフェノールおよびクロロホルムで抽出し、DNAをエタノール沈殿で回収し、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

#23-57-137-1 Ｌ鎖Ｖ領域を含むプラスミドCHL/pUC19 から８μgを同様にHind IIIおよびBlnIで消化した。得られた409bp のDNA断片を３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl（pH7.4）、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

このＬ鎖Ｖ領域DNA ４μlをＢＡＰ処理したプラスミドＣλ／pUC19 またはＣκ／pUC19 各１μlにサブクローニングし、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地３mlで一夜培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit (QIAGEN) を用いてプラスミドを精製した。これらをそれぞれプラスミドMBC1L(λ)/pUC19 、MBC1L(κ)/pUC19 とした。

プラスミドMBC1L(λ)/pUC19 およびMBC1L(κ)/pUC19 をそれぞれEcoRI で消化し、３％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、743bp のDNA断片をGENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

発現ベクターとしてプラスミドHEF-PM1k-gk 2.7μgをEcoRI で消化し、フェノールおよびクロロホルムで抽出、DNAをエタノール沈殿で回収した。回収したDNA断片をBAP処理した後、１％低融点アガロースゲルで電気泳動し、6561bpのDNA断片をGENECLEANII Kit(BIO101) を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl(pH7.4)、１mM EDTA 溶液10μlに溶解した。

BAP処理したHEFベクター２μlを上記プラスミドMBC1L(λ) またはMBC1L(κ) EcoRI 断片各３μlと連結し、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地２mlで培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit (QIAGEN) を用いてプラスミドを精製した。

精製したプラスミドを、20mM Tris-HCl (pH8.5) 、10mM MgCl₂、１mM DTT、100mM KCl 、８ＵのHind III（宝酒造）および２ＵのPvuI（宝酒造）を含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。断片が正しい方向に挿入されていれば5104/2195bp 、逆方向に挿入されていれば4378/2926bp の消化断片が生じることより、正しい方向に挿入されていたプラスミドをそれぞれMBC1L(λ)/neo 、MBC1L(κ)/neo とした。

(4) COS-7細胞のトランスフェクション
キメラ抗体の抗原結合活性および中和活性を評価するため、前記発現プラスミドをCOS-7細胞で一過性に発現させた。
すなわちキメラ抗体の一過性発現は、プラスミドMBC1HcDNA/pCOS1とMBC1L(λ)/neoまたはMBC1HcDNA/pCOS1とMBC1L(κ)/neoの組み合わせで、Gene Pulser装置(Bio Rad)を用いてエレクトロポレーションによりCOS-7細胞に同時形質導入した。PBS(-)中に1x10⁷細胞/mlの細胞濃度で懸濁されているCOS-7細胞0.8mlに、各プラスミドDNA 10μgを加え、1,500V,25μFの静電容量にてパルスを与えた。室温にて10分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を２％のUltra Low IgGウシ胎児血清(GIBCO)を含有するDMEM培地(GIBCO)に懸濁し、10cm培養皿を用いてCO₂インキュベーターにて培養した。72時間の培養の後、培養上清を集め、遠心分離により細胞破片を除去し、ELISAの試料に供した。また、COS-7細胞の培養上清からのキメラ抗体の精製は、AffiGel Protein A MAPSIIキット(BioRad)を用いてキット添付の処方に従って行った。

(5) ELISA
(i) 抗体濃度の測定
抗体濃度測定のためのELISAプレートを次のようにして調製した。ELISA用96穴プレート(Maxisorp, NUNC )の各穴を固相化バッファー(0.1M NaHCO₃、0.02% NaN₃)で1μg/mlの濃度に調製したヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO)100μlで固相化し、200μlの希釈バッファー(50mM Tris-HCl、1mM MgCl₂、0.1M NaCl、0.05% Tween20、0.02% NaN₃、１％牛血清アルブミン(BSA)、pH7.2）でブロッキングの後、キメラ抗体を発現させたCOS細胞の培養上清あるいは精製キメラ抗体を段階希釈して各穴に加えた。１時間室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄後、アルカリフォスファターゼ結合ヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO)100μlを加えた。１時間室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄の後、1mg/mlの基質溶液(Sigma104、ｐ−ニトロフェニルリン酸、SIGMA）を加え、次に405nmでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Bio Rad)で測定した。濃度測定のスタンダードとして、Hu IgG1λ Purified(The Binding Site)を用いた。

(ii) 抗原結合能の測定
抗原結合測定のためのElISAプレートでは、次のようにして調製した。ELISA用96穴プレートの各穴を固相化バッファーで１μg/mlの濃度に調製したヒトPTHrP(1-34)（ペプチド研究所）100μlで固相化した。200μlの希釈バッファーでブロッキングの後、キメラ抗体を発現させたCOS細胞の培養上清あるいは精製キメラ抗体を段階希釈して各穴に加えた。室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄後、アルカリフォスファターゼ結合ヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO)100μlを加えた。室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄の後、１mg/mlの基質溶液(Sigma104、ｐ−ニトロフェニルリン酸、SIGMA）を加え、次に405nmでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Bio Rad)で測定した。

その結果、キメラ抗体は、ヒトPTHrP(1-34)に対する結合能を有しており、クローニングしたマウス抗体Ｖ領域の正しい構造を有することが示された。また、キメラ抗体においてＬ鎖Ｃ領域がλ鎖あるいはκ鎖のいずれであっても抗体のPTHrP(1-34)に対する結合能は変化しないことから、ヒト型化抗体のＬ鎖Ｃ領域は、ヒト型化抗体Ｌ鎖λ鎖を用いて構築した。

(6) CHO安定産生細胞株の樹立
キメラ抗体の安定産生細胞株を樹立するため、前記発現プラスミドをCHO細胞(DXB11)に導入した。

すなわちキメラ抗体の安定産生細胞株樹立は、CHO細胞用発現プラスミドMBC1HcDNA／pCHO1とMBC1L(λ)／neoまたはMBC1HcDNA／pCHO1とMBC1L(κ)／neoの組み合わせで、Gene Pulser装置(Bio Rad)を用いてエレクトロポレーションによりCHO細胞に同時形質導入した。それぞれの発現ベクターを制限酵素PvuIで切断して直鎖DNAにし、フェノールおよびクロロホルム抽出後、エタノール沈殿でDNAを回収してエレクトロポレーションに用いた。PBS(-)中に1x10⁷細胞/mlの細胞濃度で懸濁されているCHO細胞0.8mlに、各プラスミドDNA 10μgを加え、1,500V,25μFの静電容量にてパルスを与えた。室温にて10分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を10％ウシ胎児血清(GIBCO)を添加したMEM-α培地(GIBCO)に懸濁し、３枚の96穴プレート(Falcon)を用いてCO₂インキュベーターにて培養した。培養開始翌日に、10％ウシ胎児血清(GIBCO)および500mg/mlのGENETICIN(G418Sulfate、GIBCO）添加、リボヌクレオシドおよびデオキリボヌクレオシド不含MEM-α培地(GIBCO)の選択培地を交換し、抗体遺伝子の導入された細胞を選択した。選択培地交換後、２週間前後に顕微鏡下で細胞を観察し、順調な細胞増殖が認められた後に、上記抗体濃度測定ELISAにて抗体産生量を測定し、抗体産生量の多い細胞を選別した。

樹立した抗体の安定産生細胞株の培養を拡大し、ローラーボトルにて２％のUltra Low IgGウシ胎児血清添加、リボヌクレオシドおよびデオキリボヌクレオシド不含ＭＥＭ培地を用いて、大量培養を行った。培養３ないし４日目に培養上清を回収し、0.2μmのフィルター（Millipore）により細胞破片を除去した。

CHO細胞の培養上清からのキメラ抗体の精製は、POROSプロテインAカラム(PerSeptive Biosystems)を用いて、ConSep LC100（Millipore）にて添付の処方に従って行い、中和活性の測定および高カルシウム血症モデル動物での薬効試験に供した。得られた精製キメラ抗体の濃度および抗原結合活性は、上記ELISA系にて測定した。

〔参考例４〕ヒト型化抗体の構築
(1) ヒト型化抗体Ｈ鎖の構築
(i) ヒト型化Ｈ鎖Ｖ領域の構築
ヒト型化#23-57-137-1抗体Ｈ鎖を、PCR法によるCDR-グラフティングにより作製した。ヒト抗体S31679(NBRF-PDB、Cuisinier A.M.ら、Eur. J. Immunol., 23, 110-118, 1993)由来のFRを有するヒト型化#23-57-137-1抗体Ｈ鎖（バージョン"ａ"）の作製のために６個のPCRプライマーを使用した。CDR-グラフティングプライマーMBC1HGP1（配列番号23）及びMBC1HGP3(配列番号24）はセンスDNA配列を有し、そしてCDRグラフティングプライマーMBC1HGP2(配列番号25)及びMBC1HGP4(配列番号26)はアンチセンスDNA配列を有し、そしてそれぞれプライマーの両端に15から21bpの相補的配列を有する。外部プライマーMBC1HVS1(配列番号27)及びMBC1HVR1(配列番号28)はCDRグラフティングプライマーMBC1HGP1及びMBC1HGP4とホモロジーを有する。

CDR-グラフティングプライマーMBC1HGP1、MBC1HGP2、MBC1HGP3およびMBC1HGP4は尿素変性ポリアクリルアミドゲルを用いて分離し（Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Sambrookら,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989）、ゲルからの抽出はcrush and soak法(Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Sambrookら,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)にて行った。

すなわち、それぞれ１nmoleのCDR-グラフティングプライマーを６％変性ポリアクリルアミドゲルで分離し、目的の大きさのDNA断片の同定をシリカゲル薄層板上で紫外線を照射して行い、crush and soak法にてゲルから回収し20μlの10mM Tris-HCl(pH7.4), 1mM EDTA溶液に溶解した。PCRは、TaKaRa Ex Taq（宝酒造）を用い、100μlの反応混合液に上記の様に調製したCDR-グラフティングプライマーMBC1HGP1、MBC1HGP2、MBC1HGP3およびMBC1HGP4をそれぞれ１μl、0.25mMのdNTP、2.5UのTaKaRa Ex Taqを含む条件で添付緩衝液を使用して94℃にて１分間、55℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで５回行い、さらに50pmoleの外部プライマーMBC1HVS1及びMBC1HVR1を加え、同じ温度サイクルを30回行った。PCR法により増幅したDNA断片を４％Nu Sieve GTGアガロース(FMC Bio.Products)を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。

421bp長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEANII Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。精製したDNAをエタノールで沈殿させた後、10mM Tris-HCl(pH7.4),1mM EDTA溶液20μlに溶解した。得られたPCR反応混合物をBamHIおよびHindIIIで消化することにより調製したpUC19にサブクローニングし、塩基配列を決定した。正しい配列を有するプラスミドをhMBCHv/pUC19と命名した。

（ii） ヒト型化Ｈ鎖cDNAのためのＨ鎖Ｖ領域の構築
ヒトＨ鎖Ｃ領域Ｃγ１のcDNAと連結するために、上記のようにして構築したヒト型化Ｈ鎖Ｖ領域をPCR法により修飾した。後方プライマーMBC1HVS2はＶ領域のリーダー配列の5'-側をコードする配列とハイブリダイズし、且つKozakコンセンサス配列(Kozak,M,ら、J.Mol.Biol.196,947-950,1987)、HindIIIおよびEcoRI認識配列を有するように設計した。Ｈ鎖Ｖ領域のための前方プライマーMBC1HVR2はＪ領域の3'-側をコードするDNA配列にハイブリダイズし、且つＣ領域の5'-側の配列をコードしApaIおよびSmaI認識配列を有するように設計した。

PCRはTaKaRa Ex Taq(宝酒造）を用い、鋳型DNAとして0.4μgのhMBCHv/pUC19を用い、プライマーとしてMBC1HVS2およびMBC1HVR2をそれぞれ50pmole、2.5ＵのTaKaRa Ex Taq、0.25mMのdNTPを含む条件で添付緩衝液を使用し、94℃にて１分間、55℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで30回行った。PCR法により増幅したDNA断片を３％ Nu Sieve GTGアガロース(FMC Bio.Products)を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。

456bp長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEANII Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。精製したDNAをエタノールで沈殿させた後、10mM Tris-HCl(pH7.4),1mM EDTA溶液20μlに溶解した。得られたPCR反応混合物をEcoRIおよびSmaIで消化することで調製したpUC19にサブクローニングし、塩基配列を決定した。こうして得られたハイブリドーマ#23-57-137-1に由来するマウスＨ鎖Ｖ領域をコードする遺伝子を含有し、5'-側にEcoRIおよびHindIII認識配列及びKozak配列、3'-側にApaIおよびSmaI認識配列を持つプラスミドをhMBC1Hv/pUC19と命名した。

（２）ヒト型化抗体Ｈ鎖の発現ベクターの構築
hPM1抗体Ｈ鎖 cDNAの配列を含むプラスミドRVh-PM1f-cDNAをApaIおよびBamHIにて消化し、Ｈ鎖Ｃ領域を含むDNA断片を回収し、ApaIおよびBamHIで消化することにより調製したhMBC1Hv/pUC19に導入した。こうして作製したプラスミドをhMBC1HcDNA/pUC19と命名した。このプラスミドはヒト型化#23-57-137-1抗体のＨ鎖Ｖ領域及びヒトＨ鎖Ｃ領域Ｃγ１を含み、5'-末端にEcoRIおよびHindIII認識配列、3'-末端にBamHI認識配列を持つ。プラスミドhMBC1HcDNA/pUC19に含まれるヒト型化Ｈ鎖バージョン"ａ"の塩基配列および対応するアミノ酸配列を配列番号58に示す。また、バージョンａのアミノ酸配列を配列番号56に示す。

hMBC1HcDNA/pUC19をEcoRIおよびBamHIで消化し、得られたＨ鎖配列を含むDNA断片をEcoRIおよびBamHIで消化することにより調製した発現プラスミドpCOS1に導入した。こうして得られたヒト型化抗体の発現プラスミドをhMBC1HcDNA/pCOS1と命名した。

さらにCHO細胞での発現に用いるためのプラスミドを作製するためhMBC1HcDNA/pUC19をEcoRIおよびBamHIで消化し、得られたＨ鎖配列を含むDNA断片をEcoRIおよびBamHIで消化することにより調製した発現プラスミドpCHO1に導入した。こうして得られたヒト型化抗体の発現プラスミドをhMBC1HcDNA/pCHO1と命名した。

（３）Ｌ鎖ハイブリッド可変領域の構築
(i) ＦＲ１，２／ＦＲ３，４ハイブリッド抗体の作製
ヒト型化抗体とマウス（キメラ）抗体のFR領域を組み換えたＬ鎖遺伝子を構築し、ヒト型化のための各領域の評価を行った。CDR2内にある制限酵素AflII切断部位を利用することによって、FR１及び２はヒト抗体由来、FR３及び４はマウス抗体由来とするハイブリッド抗体を作製した。

プラスミドMBC1L(λ)/neo及びhMBC1L(λ)/neo各10μgを10mM Tris-HCl(pH7.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, 50mM NaCl, 0.01%(w/v)BSA, AflII（宝酒造）10Ｕを含有する反応混合液100μl中で37℃にて１時間消化した。反応液を２％低融点アガロースゲルで電気泳動し、プラスミドMBC1L(λ)/neoから6282bpの断片(c1とする)および1022bpの断片(c2とする)、プラスミドhMBC1L(λ)/neoから6282bpの断片(h1とする)および1022bpの断片(h2とする)を、GENECLEANII Kit(BIO101)を用いてゲルから回収、精製した。

回収したｃ１、ｈ１断片各１μgについてＢＡＰ処理を行った。DNAをフェノールおよびクロロホルムで抽出、エタノール沈殿で回収した後、10mM Tris-HCl(pH7.4), 1mM EDTA溶液10μlに溶解した。

BAP処理したｃ１及びｈ１断片１μlをそれぞれｈ２、ｃ２断片４μlに連結し（４℃、一夜）、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/ml アンピシリンを含有する2×YT培地２mlで培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。

精製したプラスミドを、10mM Tris-HCl(pH7.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, ApaLI(宝酒造)２Ｕ、またはBamHI(宝酒造)8Ｕ, HindIII(宝酒造)8Ｕを含有する反応混合液20μl中で37℃、１時間消化した。ｃ１-ｈ２が正しく連結されていれば、ApaLIで5560/1246/498bp、BamHI/HindIIIで7134/269bpの消化断片が生じることにより、プラスミドの確認を行った。

これをヒトFR1,2／マウスFR3,4ハイブリッド抗体Ｌ鎖をコードする発現ベクターをh/mMBC1L(λ)/neoとした。一方、h1-c2のクローンが得られなかったので、pUCベクター上で組換えてからHEFベクターにクローニングした。その際、アミノ酸置換のないヒト型化抗体Ｌ鎖Ｖ領域を含むプラスミドhMBC1Laλ/pUC19、及びFR3内の91位(Kabatの規定によるアミノ酸番号87位）のチロシンをイソロイシンに置換したヒト型化抗体Ｌ鎖Ｖ領域を含むプラスミドhMBC1Ldλ/pUC19を鋳型として用いた。

プラスミドMBC1L(λ)/pUC19、hMBC1Laλ/pUC19及びhMBC1Ldλ/pUC19の各10μgを10mM Tris-HCl(pH7.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, 50mM NaCl, 0.01%(w/v)BSA, HindIII 16U, AflII 4Uを含有する反応混合液30μl中で37℃、１時間消化した。反応液を２％低融点アガロースゲルで電気泳動し、プラスミドMBC1L(λ)/pUC19から215bp(c2')、プラスミドhMBC1Laλ/pUC19およびhMBC1Ldλ/pUC19からそれぞれ3218bp(ha1',hd1')のDNA断片をGENECLEANII Kit(BIO101)を用いてゲルから回収、精製した。

ha1'、hd1'断片をそれぞれc2'断片に連結し、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地2mlで培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。これらをそれぞれプラスミドm/hMBC1Laλ/pUC19、m/hMBC1Ldλ/pUC19とした。

得られたプラスミドm/hMBC1Laλ/pUC19, m/hMBC1Ldλ/pUC19をEcoRIで消化した。それぞれ743bpのDNA断片を２％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、GENECLEANII Kit(BIO101)を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl(pH7.4), 1mM EDTA溶液20μlに溶解した。

各DNA断片４μlを前述のBAP処理したHEFベクター１μlに連結し、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/mlアンピシリンを含有する2×YT培地2mlで培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。

精製した各プラスミドを、20mM Tris-HCl(pH8.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, 100mM KCl, HindIII(宝酒造)8U, PvuI(宝酒造)2Uを含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。断片が正しい方向に挿入されていれば5104/2195bp、逆方向に挿入されていれば4378/2926bpの消化断片が生じることより、プラスミドの確認を行った。これらをそれぞれマウスFR1,2／ヒトFR3,4ハイブリッド抗体Ｌ鎖をコードする発現ベクターをm/hMBC1Laλ/neo、m/hMBC1Ldλ/neoとした。

(ii) ＦＲ１／ＦＲ２ハイブリッド抗体の作製
CDR1内にあるSnaBI切断部位を利用することによって、同様にFR1とFR2のハイブリッド抗体を作製した。

プラスミドMBC1L(λ)/neo及びh/mMBC1L(λ)/neoの各10μgを10mM Tris-HCl(pH7.9), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, 50mM NaCl, 0.01%(w/v)BSA, SnaBI(宝酒造)６Ｕを含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。次に20mM Tris-HCl(pH8.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, 100mM KCl, 0.01%(w/v)BSA, PvuI ６Ｕを含有する反応混合液50μl中で37℃にて１時間消化した。

反応液を1.5％低融点アガロースゲルで電気泳動した後、プラスミドMBC1L(λ)/neoから4955bp(m1)および2349bp(m2)、フ゜ラスミト゛h/mMBC1L(λ)/neoから4955bp(hm1)および2349bp(hm2)の各DNA断片をGENECLEANII Kit(BIO101)を用いてゲルから回収、精製し、10mM Tris-HCl(pH7.4), 1mM EDTA溶液40μlに溶解した。

m1、hm1断片1μlをそれぞれhm2、m2断片4μlに連結し、大腸菌JM109コンピテント細胞に形質転換した。50μg/mlアンヒ゜シリンを含有する2×YT培地2mlで培養し、菌体画分からQIAprep Spin Plasmid Kit(QIAGEN)を用いてプラスミドを精製した。

精製した各プラスミドを、10mM Tris-HCl(pH7.5), 10mM MgCl₂, 1mM DTT, ApaI(宝酒造)8U、またはApaLI(宝酒造)2Uを含有する反応混合液20μl中で37℃にて１時間消化した。

各断片が正しく連結されていれば、ApaIで7304bp、ApaLIで5560/1246/498bp(m1-hm2)、ApaIで6538/766bp、ApaLIで3535/2025/1246/498bp (hm1-m2)の消化断片が生じることにより、プラスミドの確認を行った。これらをそれぞれヒトFR1／マウスFR2,3,4ハイブリッド抗体Ｌ鎖をコードする発現ベクターをhmmMBC1L(λ)/neo、マウスFR1／ヒトFR2／マウスFR3,4ハイブリッド抗体Ｌ鎖をコードする発現ベクターをmhmMBC1L(λ)/neoとした。

（４）ヒト型化抗体Ｌ鎖の構築
ヒト型化#23-57-137-1抗体Ｌ鎖を、PCR法によるCDR-グラフティングにより作製した。ヒト抗体HSU03868(GEN-BANK、Deftos Mら,Scand. J. Immunol., 39, 95-103, 1994)由来のFR1、FR2およびFR3、並びにヒト抗体S25755(NBRF-PDB)由来のFR4を有するヒト型化#23-57-137-1抗体Ｌ鎖（バージョン"ａ"）の作製のために６個のPCRプライマーを使用した。

CDR-グラフティングプライマーMBC1LGP1(配列番号29)及びMBC1LGP3(配列番号30)はセンスDNA配列を有し、そしてCDRグラフティングプライマーMBC1LGP2(配列番号31)及びMBC1LGP4(配列番号32)はアンチセンスDNA配列を有し、そしてそれぞれプライマーの両端に15から21bpの相補的配列を有する。外部プライマーMBC1LVS1(配列番号33)及びMBC1LVR1(配列番号34)はCDRグラフティングプライマーMBC1LGP1及びMBC1LGP4とホモロジーを有する。

CDR-グラフティングプライマーMBC1LGP1、MBC1LGP2、MBC1LGP3およびMBC1LGP4は尿素変性ポリアクリルアミドゲルを用いて分離し(Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Sambrookら,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)、ゲルからの抽出はcrush and soak法(Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Sambrookら,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)にて行った。

すなわち、それぞれ1nmoleのCDR-グラフティングプライマーを６％変性ポリアクリルアミドゲルで分離し、目的の大きさのDNA断片の同定をシリカゲル薄層板上で紫外線を照射して行い、crush and soak法にてゲルから回収し20μlの10mM Tris-HCl(pH7.4), 1mM EDTA溶液に溶解した。

PCRは、TaKaRa Ex Taq（宝酒造）を用い、100μlの反応混合液に上記の様に調製したCDR-グラフティングプライマーMBC1LGP1、MBC1LGP2、MBC1LGP3およびMBC1LGP4をそれぞれ1μl、0.25mMのdNTP、2.5UのTaKaRa Ex Taqを含む条件で添付緩衝液を使用して94℃にて１分間、55℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで５回行い、この反応混合液に50pmoleの外部プライマーMBC1LVS1及びMBC1LVR1を加え、さらに同じ温度サイクルで30回反応させた。PCR法により増幅したDNA断片を３％Nu Sieve GTGアガロース(FMC Bio.Products)を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。

421bp長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEANII Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。得られたPCR反応混合物をBamHIおよびHindIIIで消化することにより調製したpUC19にサブクローニングし、塩基配列を決定した。こうして得られたプラスミドをhMBCL/pUC19と命名した。しかしながらCDR4の104位(Kabatの規定によるアミノ酸番号96位)のアミノ酸がアルギニンになっていたため、これをチロシンに修正するための修正プライマーMBC1LGP10R(配列番号35)を設計し、合成した。PCRはTaKaRa Taq(宝酒造)を用い、100μlの反応混合液に鋳型DNAとして0.6μgのプラスミドhMBCL/pUC19、プライマーとしてMBC1LVS1及びMBC1LGP10Rをそれぞれ50pmole、2.5UのTaKaRa Ex Taq(宝酒造)0.25mMのdNTPを含む条件で添付の緩衝液を使用して50μlの鉱油を上層して94℃にて１分間、55℃にて１分間、72℃にて１分間の温度サイクルで30回行った。PCR法により増幅したDNA断片を３％ Nu Sieve GTGアガロース(FMC Bio.Products)を用いたアガロースゲル電気泳動により分離した。

421bp長のDNA断片を含有するアガロース片を切取り、GENECLEANII Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。得られたPCR反応混合物をBamHIおよびHindIIIで消化することにより調製したpUC19にサブクローニングした。

M13 Primer M4プライマー及びM13 Primer RVプライマーを用いて塩基配列を決定した結果、正しい配列を得ることができたので、このプラスミドをHindIIIおよびBlnIで消化し、416bpの断片を１％アガロースゲル電気泳動により分離した。GENECLEANII Kit(BIO101)を用い、キット添付の処方に従いDNA断片を精製した。得られたPCR反応混合物をHindIIIおよびBlnIで消化することにより調製したプラスミドＣλ／pUC19に導入し、プラスミドhMBC1Laλ/pUC19と命名した。このプラスミドをEcoRI消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードする配列を含む配列をプラスミドpCOS1に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをhMBC1Laλ/pCOS1と命名した。ヒト型化Ｌ鎖バージョン"ａ"の塩基配列（対応するアミノ酸を含む）を配列番号66に示す。また、バージョンａのアミノ酸配列を配列番号47に示す。

バージョン"ｂ"をPCR法による変異導入を用いて作製した。バージョン"ｂ"では43位(Kabatの規定によるアミノ酸番号43位）のグリシンをプロリンに、49位(Kabatの規定によるアミノ酸番号49位）のリジンをアスパラギン酸に変更するように設計した。変異原プライマーMBC1LGP5R(配列番号36)とプライマーMBC1LVS1によりプラスミドhMBC1Laλ/pUC19を鋳型としてPCRを行い、得られたDNA断片をBamHIおよびHindIIIで消化し、pUC19のBamHI, HindIII部位にサブクローニングした。塩基配列決定後、制限酵素HindIIIおよびAflIIで消化し、HindIIIおよびAflIIで消化したhMBC1Laλ/pUC19と連結した。

こうして得られたプラスミドをhMBC1Lbλ/pUC19とし、このプラスミドをEcoRIで消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードするDNAを含む断片をプラスミドpCOS1に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをhMBC1Lbλ/pCOS1と命名した。

バージョン"ｃ"をPCR法による変異導入を用いて作製した。バージョン"ｃ"では84位(Kabatの規定によるアミノ酸番号80位）のセリンをプロリンに変更するように設計した。変異原プライマーMBC1LGP6S(配列番号37)とプライマーM13 Primer RVによりプラスミドhMBC1Laλ/pUC19を鋳型としてPCRを行い、得られたDNA断片をBamHIおよびHindIIIで消化し、BamHIおよびHindIIIで消化することにより調製したpUC19にサブクローニングした。

塩基配列決定後、制限酵素BstPIおよびAor51HIで消化し、BstPIおよびAor51HIで消化したhMBC1Laλ/pUC19と連結した。こうして得られたプラスミドをhMBC1Lcλ/pUC19とし、このプラスミドを制限酵素EcoRI消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードする配列を含む配列をプラスミドpCOS1のEcoRI部位に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをhMBC1Lcλ/pCOS1と命名した。

バージョン"ｄ" 、"ｅ" 及び"ｆ" をPCR法による変異導入を用いて作製した。各バージョンとも順に"ａ" 、"ｂ" 、"ｃ" バージョンの91位(Kabatの規定によるアミノ酸番号87位）のチロシンをイソロイシンに変更するように設計した。変異原プライマーMBC1LGP11R(配列番号38)とプライマーM-S1（配列番号４４）によりそれぞれhMBC1Laλ/pCOS1，hMBC1Lbλ/pCOS1，hMBC1Lcλ/pCOS1を鋳型としてPCRを行い、得られたDNA断片をBamHIおよびHindIIIで消化し、BamHIおよびHindIIIで消化することにより調製したpUC19にサブクローニングした。塩基配列決定後、HindIIIおよびBlnIで消化し、HindIIIおよびBlnIで消化することより調製したＣλ／pUC19と連結した。

こうして得られたプラスミドを順にhMBC1Ldλ/pUC19、hMBC1Leλ/pUC19、hMBC1Lfλ/pUC19とした。これらのプラスミドをEcoRI消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードする配列を含む配列をプラスミドpCOS1のEcoRI部位に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをそれぞれ順にhMBC1Ldλ/pCOS1、hMBC1Leλ/pCOS1、hMBC1Lfλ/pCOS1と命名した。

バージョン"ｇ" 及び"ｈ" をPCR法による変異導入を用いて作製した。各バージョンとも順に"ａ" 、"ｄ" バージョンの36位(Kabatの規定によるアミノ酸番号36位）のヒスチジンをチロシンに変更するように設計した。変異原プライマーMBC1LGP9R(配列番号39)およびM13 Primer RVをプライマーとして用いて、hMBC1Laλ/pUC19を鋳型としてPCRを行い、得られたPCR産物とM13 Primer M4をプライマーとして用いて、プラスミドhMBC1Laλ/pUC19を鋳型としてさらにPCRを行った。得られたDNA断片をHindIIIおよびBlnIで消化し、HindIIIおよびBlnIで消化することで調製したプラスミドＣλ／pUC19にサブクローニングした。このプラスミドを鋳型として、プライマーMBC1LGP13R(配列番号40)とMBC1LVS1をプライマーとしたPCRを行った。得られたPCR断片をApaIおよびHindIIで消化し、ApaIおよびHindIIIで消化したプラスミドhMBC1Laλ/pUC19およびhMBC1Ldλ/pUC19に導入した。塩基配列を決定し、正しい配列を含むプラスミドを順にhMBC1Lgλ/pUC19およびhMBC1Lhλ/pUC19とし、これらのプラスミドを制限酵素EcoRI消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードする配列を含む配列をプラスミドpCOS1のEcoRI部位に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをそれぞれ順にhMBC1Lgλ/pCOS1およびhMBC1Lhλ/pCOS1と命名した。

バージョン"ｉ" 、"ｊ" 、"ｋ" 、"ｌ" 、"ｍ" 、"ｎ" および"ｏ" をPCR法による変異導入を用いて作製した。変異原プライマーMBC1LGP14S(配列番号41)とフ゜ライマーVlRV(λ)(配列番号43)によりプラスミドhMBC1Laλ/pUC19を鋳型としてPCRを行い、得られたDNA断片をApaIおよびBlnIで消化し、ApaIおよびBlnIで消化することにより調製したプラスミドhMBC1Lgλ/pUC19にサブクローニングした。塩基配列決定を行い、それぞれのバージョンに対応した変異が導入されたクローンを選択した。こうして得られたプラスミドをhMBC1Lxλ/pUC19（ｘ＝ｉ，ｊ，ｋ，ｌ，ｍ，ｎ，ｏ）とし、このプラスミドをEcoRI消化し、ヒト型化Ｌ鎖をコードする配列を含む配列をプラスミドpCOS1のEcoRI部位に導入し、EF1αプロモーターの下流にヒト型化Ｌ鎖の開始コドンが位置するようにした。こうして得られたプラスミドをhMBC1Lxλ/pCOS1（ｘ＝ｉ，ｊ，ｋ，ｌ，ｍ，ｎ，ｏ）と命名した。バージョン"ｊ" 、"ｌ" 、"ｍ" および"ｏ" の塩基配列（対応するアミノ酸を含む）をそれぞれ配列番号67、68、69、70に示す。また、これらの各バージョンのアミノ酸配列をそれぞれ配列番号48、49、50、51に示す。

バージョン"ｐ" 、"ｑ" 、"ｒ" 、"ｓ" および"ｔ" は、バージョン"ｉ" 、" ｊ" 、"ｍ" 、"ｌ" または"ｏ" のアミノ酸配列の87位のチロシンをイソロイシンに置換したバージョンであり、FR3内にある制限酵素Aor51MI切断部位を利用して、バージョン"ｈ" を、各バージョン"ｉ" 、"ｊ" 、"ｍ" 、"ｌ" または"ｏ" とつなぎ換えることにより作製したものである。すなわち、発現プラスミドhMBC1Lxλ/pCOS1（ｘ＝ｉ，ｊ，ｍ，ｌ，ｏ）中、CDR3並びにFR3の一部及びFR4を含むAor51HI断片514bpを除き、ここに発現プラスミドhMBC1Lhλ/pCOS1中、CDR3並びにFR3の一部及びFR4を含むAor51HI断片514bpをつなぐことにより91位(Kabatの規定によるアミノ酸番号87位）のチロシンがイソロイシンとなるようにした。塩基配列決定を行い、各バージョン"ｉ" 、"ｊ" 、"ｍ" 、"ｌ" および"ｏ" の91位(Kabatの規定によるアミノ酸番号87位）のチロシンがイソロイシンに置換されたクローンを選択し、対応するバージョンをそれぞれ"ｐ" 、"ｑ" 、"ｓ" 、"ｒ" および"ｔ" とし、得られたプラスミドをhMBC1Lxλ/pCOS1（ｘ＝ｐ，ｑ，ｓ，ｒ，ｔ）と命名した。バージョン"ｑ" 、"ｒ" 、"ｓ" および"ｔ" の塩基配列（対応するアミノ酸を含む）をそれぞれ配列番号71、72、73、74に示す。また、これらの各バージョンのアミノ酸配列をそれぞれ配列番号52、53、54、55に示す。

プラスミドhMBC1Lqλ/pCOS1をHindIIIおよびEcoRIで消化し、HindIIIおよびEcoRIで消化したプラスミドpUC19にサブクローニングし、プラスミドhMBC1Lqλ/pUC19と命名した。

ヒト型化Ｌ鎖の各バージョンにおける置換アミノ酸の位置を表２に示す。

表中、Ｙはチロシン、Ｐはプロリン、Ｋはリジン、Ｖはバリン、Ｄはアスパラギン酸、Ｉはイソロイシンを示す。

なお、前記プラスミドhMBC1HcDNA/pUC19およびhMBC1Lqλ/pUC19を有する大腸菌はEscherichia coli JM109(hMBC1HcDNA/pUC19)および Escherichia coli JM109(hMBC1Lqλ/pUC19)として、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（茨城県つくば市東1丁目1番地1）に、平成８年８月15日に、Escherichia coli JM109 (hMBC1HcDNA/pUC19)についてはFERM BP-5629、Escherichia coli JM109 (hMBC1Lqλ/pUC19)についてはFERM BP-5630としてブダペスト条約に基づき国際寄託されている。

（５）COS-7細胞へのトランスフェクション
ハイブリッド抗体およびヒト型化#23-57-137-1抗体の抗原結合活性および中和活性を評価するため、前記発現プラスミドをCOS-7細胞で一過性に発現させた。すなわちＬ鎖ハイブリッド抗体の一過性発現では、プラスミドｈMBC1HcDNA/pCOS1とh/mMBC1L(λ)/neo、hMBC1HcDNA/pCOS1とm/hMBC1Laλ/neo、hMBC1HcDNA/pCOS1とm/hMBC1Ldλ/neo、hMBC1HcDNA/pCOS1とhmmMBC1L(λ)/neo、またはhMBC1HcDNA/pCOS1とmhmMBC1L(λ)/neoとの組み合わせを、Gene Pulser装置(Bio Rad)を用いてエレクトロポレーションによりCOS-7細胞に同時形質導入した。PBS(-)中に１×10⁷細胞／mlの細胞濃度で懸濁されているCOS-7細胞0.8mlに、各プラスミドDNA 10μgを加え、1,500V, 25μFの静電容量にてパルスを与えた。室温にて10分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を２％のUltra Low IgGウシ胎児血清(GIBCO)を含有するDMEM培養液(GIBCO)に懸濁し、10cm培養皿を用いてCO₂インキュベーターにて培養した。72時間の培養の後、培養上清を集め、遠心分離により細胞破片を除去し、ELISAの試料に供した。

ヒト型化#23-57-137-1抗体の一過性発現では、プラスミドhMBC1HcDNA/pCOS1とhMBC1Lxλ/pCOS1（ｘ＝ａ〜ｔ）のいずれかの組み合わせをGene Pulser装置(Bio Rad)を用いて、前記ハイブリッド抗体の場合と同様の方法によりCOS-7細胞にトランスフェクションし、得られた培養上清をELISAに供した。

また、COS-7細胞の培養上清からのハイブリッド抗体またはヒト型化抗体の精製は、AffiGel Protein A MAPSIIキット(BioRad)を用いて、キット添付の処方に従って行った。

（６）ＥＬＩＳＡ
(i) 抗体濃度の測定
抗体濃度測定のためのELISAプレートを次のようにして調製した。ELISA用96穴プレート(Maxisorp,NUNC)の各穴を固相化バッファー(0.1M NaHCO₃、0.02% NaN₃)で１μg/mlの濃度に調製したヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO)100μlで固相化し、200μlの希釈バッファー(50mM Tris-HCl、 1mM MgCl₂、 0.1M NaCl、 0.05% Tween20、0.02% NaN₃、１％ 牛血清アルブミン(BSA)、pH7.2)でブロッキングの後、ハイブリッド抗体またはヒト型化抗体を発現させたCOS-7細胞の培養上清あるいは精製ハイブリッド抗体またはヒト型化抗体を段階希釈して各穴に加えた。１時間室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄後、アルカリフォスファターゼ結合ヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO)100μlを加えた。１時間室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄の後、1mg/mlの基質溶液(Sigma104、ｐ−ニトロフェニルリン酸、SIGMA）を加え、次に405nmでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Bio Rad)で測定した。濃度測定のスタンダードとして、Hu IgG1λ Purified(The Binding Site)を用いた。

(ii) 抗原結合能の測定
抗原結合測定のためのELISAプレートを、次のようにして調製した。ELISA用96穴プレートの各穴を固相化バッファーで１μg/mlの濃度に調製したヒトPTHrP(1-34) 100μlで固相化した。200μlの希釈バッファーでブロッキングの後、ハイブリッド抗体またはヒト型化抗体を発現させたCOS-7細胞の培養上清あるいは精製ハイブリッド抗体またはヒト型化抗体を段階希釈して各穴に加えた。室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄後、アルカリフォスファターゼ結合ヤギ抗ヒトIgG抗体(TAGO) 100μlを加えた。室温にてインキュベートしPBS-Tween20で洗浄の後、１mg/mlの基質溶液(Sigma104、ｐ−ニトロフェニルリン酸、SIGMA)を加え、次に405nmでの吸光度をマイクロプレートリーダー(Bio Rad)で測定した。

（７） 活性確認
(i) ヒト型化Ｈ鎖の評価
ヒト型化Ｈ鎖バージョン"ａ"とキメラＬ鎖を組み合わせた抗体は、キメラ抗体とPTHrP結合能が同等であった。この結果は、Ｈ鎖Ｖ領域のヒト型化はバージョン"ａ"で十分なことを示す。以下、ヒト型化Ｈ鎖バージョン"ａ"をヒト型化抗体のＨ鎖として供した。

(ii) ハイブリッド抗体の活性
(ii-a) ＦＲ１，２／ＦＲ３，４ハイブリッド抗体
Ｌ鎖がh/mMBC1L(λ)の場合、活性は全く認められなかったが、m/hMBC1Laλあるいはm/hMBC1Ldλの場合はいずれもキメラ#23-57-137-1抗体と同等の結合活性を示した。これらの結果は、FR3,4はヒト型化抗体として問題ないが、FR1,2内に置換すべきアミノ酸残基が存在することを示唆する。

(ii-b) ＦＲ１／ＦＲ２ハイブリッド抗体
Ｌ鎖がmhmMBC1L(λ)の場合、活性は全く認められなかったが、hmmMBC1L(λ)の場合はキメラ#23-57-137-1抗体と同等の結合活性を示した。これらの結果は、FR1, 2のうちFR1はヒト型化抗体として問題ないが、FR2内に置換すべきアミノ酸残基が存在することを示唆する。

(iii) ヒト型化抗体の活性
Ｌ鎖としてバージョン"ａ" から"ｔ" の各々一つを用いたヒト型化抗体について、抗原結合活性を測定した。その結果、Ｌ鎖バージョン"ｊ" 、"ｌ" 、" ｍ" 、"ｏ" 、"ｑ" 、"ｒ" 、"ｓ" 、"ｔ" を有するヒト型化抗体はキメラ抗体と同等のＰＴＨｒＰ結合能を示した。

（８）ＣＨＯ安定産生細胞株の樹立
ヒト型化抗体の安定産生細胞株を樹立するため、前記発現プラスミドをCHO細胞(DXB11)に導入した。

すなわちヒト型化抗体の安定産生細胞株樹立は、CHO細胞用発現プラスミドhMBC1HcDNA/pCHO1とhMBC1Lmλ/pCOS1またはhMBC1HcDNA/pCHO1とhMBC1Lqλ/pCOS1あるいはhMBC1HcDNA/pCHO1とhMBC1Lrλ/pCOS1の組み合わせで、Gene Pulser装置(Bio Rad)を用いてエレクトロポレーションによりCHO細胞に同時形質導入した。それぞれの発現ベクターを制限酵素PvuIで切断して直鎖DNAにし、フェノールおよびクロロホルム抽出後、エタノール沈殿でDNAを回収し、エレクトロポレーションに用いた。PBS(-)中に1x10⁷細胞／mlの細胞濃度で懸濁されているCHO細胞0.8mlに、各プラスミドDNA 10μgを加え、1,500V, 25μFの静電容量にてパルスを与えた。室温にて10分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を10％ウシ胎児血清(GIBCO)添加、MEM-α培地(GIBCO)に懸濁し、96穴プレート(Falcon)を用いてCO₂インキュベーターにて培養した。培養開始翌日に、10％ウシ胎児血清(GIBCO)および500mg/mlのGENETICIN (G418 Sulfate、GIBCO）添加、リボヌクレオシドおよびデオキシリボヌクレオシド不含MEM-α培地(GIBCO)の選択培地に交換し、抗体遺伝子の導入された細胞を選択した。選択培地交換後、２週間前後に顕微鏡下で細胞を観察し、順調な細胞増殖が認められた後に、上記抗体濃度測定ELISAにて抗体産生量を測定し、抗体産生能の高い細胞を選別した。

樹立した抗体の安定産生細胞株の培養を拡大し、ローラーボトルにて２％のUltra Low IgGウシ胎児血清添加、リボヌクレオシドおよびデオキシリボヌクレオシド不含MEM-α培地を用いて、大量培養を行った。培養３ないし４日目に培養上清を回収し、0.2μmのフィルター（Millipore）により細胞破片を除去した。

CHO細胞の培養上清からのヒト型化抗体の精製は、POROSプロテインAカラム（PerSeptive Biosystems）を用いて、ConSep LC100（Millipore）にて添付の処方に従って行い、中和活性の測定および高カルシウム血症モデル動物での薬効試験に供した。得られた精製ヒト型化抗体の濃度および抗原結合活性は、上記ELISA系にて測定した。

〔参考例５〕中和活性の測定
マウス抗体、キメラ抗体およびヒト型化抗体の中和活性の測定は、ラット骨肉腫細胞株ROS17/2.8-5細胞を用いて行った。すなわち、ROS17/2.8-5細胞を、10%牛胎児血清(GIBCO)を含むHam'S F-12培地(GIBCO)中にて、CO₂インキュベーターで培養した。ROS17/2.8-5細胞を96穴プレートに10⁴細胞／100μl／穴で蒔込み１日間培養し、4mMのHydrocortisoneと10%牛胎児血清を含むHam'S F-12培地(GIBCO)に交換する。さらに３ないし４日間培養した後、260μlのHam'S F-12培地(GIBCO)にて洗浄し、１mMのイソブチル-1-メチル キサンチン(IBMX、SIGMA)および10％の牛胎児血清と10mMのHEPESを含む80μlのHam' s F-12を加え、30分間37℃でインキュベートした。

中和活性を測定するマウス抗体、キメラ抗体またはヒト型化抗体を、あらかじめ10μg/ml、3.3μg/ml、1.1μg/mlおよび0.37μg/mlの群、10μg/ml、2μg/ml、0.5μg/mlおよび0.01μg/mlの群、または10μg/ml、5μg/ml、1.25μg/ml、0.63μg/mlおよび0.31μg/mlの群に段階希釈し、4ng/mlに調製したPTHrP(1-34)と等量混合し、各抗体とPTHrP(1-34)の混合液80μlを各穴に添加した。各抗体の最終濃度は上記抗体濃度の４分の１になり、PTHrP(1-34)の濃度は１ng/mlになる。10分間室温にて処理した後、培養上清を捨て、PBSにて３回洗浄したした後、100μlの0.3％塩酸95％エタノールにて細胞内のcAMPを抽出する。水流アスピレーターにて塩酸エタノールを蒸発させ、cAMP EIA kit(CAYMAN CHEMICAL'S)付属のEIAバッファー120μlを添加しcAMPを抽出後、cAMP EIA kit(CAYMAN CHEMICAL'S)添付の処方に従ってcAMPを測定した。その結果、キメラ抗体と同等の抗原結合を有するＬ鎖バージョンのうち、91位のチロシンをイソロイシンに置換したバージョン"ｑ"、"ｒ"、"ｓ"、"ｔ"を有するヒト型化抗体がキメラ抗体に近い中和能を示し、その中でも、バージョン"ｑ"がもっとも強い中和能を示した。

本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願第平10-180143号の明細書及び／又は図面に記載される内容を包含する。

本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

本発明により、副甲状腺ホルモン関連ペプチドとその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含有する悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼ治療剤が提供される。

上記物質は、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症モデル動物での薬効試験において、血中カルシウム濃度を対照薬投与群または溶媒投与の対照群と比較して即効的、かつ持続的に作用することから、緊急処置を必要とする悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼの治療剤として有用である。

マウス抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（血中イオン化カルシウム濃度の推移）を示す図である。 マウス抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（体重変化）を示す図である。 ヒト型化抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（血中イオン化カルシウム濃度の推移）を示す図である。 ヒト型化抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（体重変化）を示す図である。 ヒト型化抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（血中イオン化カルシウム濃度の推移）を示す図である。 ヒト型化抗ＰＴＨｒＰ抗体の悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼに対する治療効果（体重変化）を示す図である。

配列番号１：合成DNA
配列番号２：合成DNA
配列番号３：合成DNA
配列番号４：合成DNA
配列番号５：合成DNA
配列番号６：合成DNA
配列番号７：合成DNA
配列番号８：合成DNA
配列番号９：合成DNA
配列番号10：合成DNA
配列番号11：合成DNA
配列番号12：合成DNA
配列番号13：合成DNA
配列番号14：合成DNA
配列番号15：合成DNA
配列番号16：合成DNA
配列番号17：合成DNA
配列番号18：合成DNA
配列番号19：合成DNA
配列番号20：合成DNA
配列番号21：合成DNA
配列番号22：合成DNA
配列番号23：合成DNA
配列番号24：合成DNA
配列番号25：合成DNA
配列番号26：合成DNA
配列番号27：合成DNA
配列番号28：合成DNA
配列番号29：合成DNA
配列番号30：合成DNA
配列番号31：合成DNA
配列番号32：合成DNA
配列番号33：合成DNA
配列番号34：合成DNA
配列番号35：合成DNA
配列番号36：合成DNA
配列番号37：合成DNA
配列番号38：合成DNA
配列番号39：合成DNA
配列番号40：合成DNA
配列番号41：合成DNA
配列番号42：合成DNA
配列番号43：合成DNA
配列番号44：合成DNA

Claims (10)

1. 副甲状腺ホルモン関連ペプチド（PTHrP）とその受容体との結合を阻害する物質を有効成分として含む高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
2. 物質が副甲状腺ホルモン関連ペプチド受容体に対するアンタゴニストである請求項１記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
3. 物質が抗副甲状腺ホルモン関連ペプチド抗体である請求項１記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
4. 物質が抗副甲状腺ホルモン関連ペプチド抗体断片及び／又はその修飾物である請求項１記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
5. 抗体がヒト型化又はキメラ化されたものである請求項３又は４記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
6. ヒト型化抗体がヒト型化#23-57-137-1抗体である請求項５記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
7. 抗体がモノクローナル抗体である請求項３又は４記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
8. 高カルシウム血症クリーゼが、悪性腫瘍に伴う高カルシウム血症クリーゼである請求項１〜７のいずれか1項に記載の治療剤。
9. 物質が24時間以内に血清カルシウム値を１mg/dL以上低下させ、かつ低下した血清カルシウム値を維持するものである請求項１〜８のいずれか１項に記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。
10. 投与後３日間にわたり低減した血清カルシウム値を維持するものである請求項９記載の高カルシウム血症クリーゼ治療剤。

Images