JP2005272383A - Agent for diagnosis of lox-1 - Google Patents

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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide an agent containing oxidized LDL receptor LOX-1 which is reported to deeply be participated in destabilization of arteriosclerosis plaque as a target molecule in order to develop nuclear medicinal imaging agent capable of evaluating destabilization of arteriosclerosis plaque. <P>SOLUTION: The agent for diagnosis of an anti-LOX-1 antibody labeled with a radioactive nuclide as an active ingredient. The anti-LOX-1 antibody labeled with the radioactive nuclide is preferably a compound represented by formula (I) (wherein Y is a residue of anti-LOX-1 antibody; M is a radioactive metal atom; T and A are each a coligand) and the anti-LOX-1 antibody is preferably a monoclonal antibody binding to a polypeptide represented by sequence No.1. The agent can be provided in a form of kit. <P>COPYRIGHT: (C)2006,JPO&NCIPI

Description

本発明は、酸化LDL受容体の1種であるLOX−1を標的分子とする放射性薬剤であって、酸化LDL受容体の血管集積の程度を測定するために有用な診断剤に関する。   The present invention relates to a diagnostic agent useful for measuring the degree of vascular accumulation of oxidized LDL receptor, which is a radiopharmaceutical that targets LOX-1, which is one of oxidized LDL receptors, as a target molecule.

あらゆる組織及び血中に存在する種々形態のコレステロール(遊離型、長鎖脂肪酸型、及びエステル型)は、主に肝臓での生合成に由来する。肝臓で生合成された遊離型コレステロールは、超低密度リポ蛋白(VLDL)に取り込まれ、血中でリポ蛋白リパーゼ(LPL)及び肝性トリグリセリドリパーゼ(HTGL)の作用により、中間密度リポ蛋白(IDL)を経た後、低密度リポ蛋白(LDL;Low-Density Lipoprotein)へと代謝される。LDLは、血管内皮細胞などの細胞による作用、種々の化学的・物理的な要因、あるいは熱などの種々の要因により酸化変性を受けると、酸化LDL(Oxidized LDL)と呼ばれる変性LDLになる。血流中には十分量の抗酸化物質があるため、もともと血流中には酸化LDLが生じにくくはあるが、例え生じた場合であっても、それらのほとんどは肝臓で代謝される。   The various forms of cholesterol (free, long chain fatty acid, and ester forms) present in all tissues and blood are primarily derived from biosynthesis in the liver. Free cholesterol biosynthesized in the liver is taken up by very low density lipoprotein (VLDL), and by the action of lipoprotein lipase (LPL) and hepatic triglyceride lipase (HTGL) in the blood, intermediate density lipoprotein (IDL) is obtained. ) And then metabolized to low density lipoprotein (LDL). When LDL is oxidatively modified by the action of cells such as vascular endothelial cells, various chemical and physical factors, or various factors such as heat, it becomes a modified LDL called oxidized LDL (Oxidized LDL). Since there is a sufficient amount of antioxidants in the bloodstream, oxidized LDL is naturally less likely to occur in the bloodstream, but even if it occurs, most of them are metabolized in the liver.

一方、血管内皮下及び血管壁でも、血管内皮細胞やマクロファージなどの細胞依存性化学変性や、Fe3+などの作用による細胞非依存性化学変性により酸化LDLが生ずるが、血流中での生成の場合と異なり、血管内皮下及び血管壁で生じた酸化LDLは、マクロファージの細胞内に蓄積されることとなる。酸化LDLはマクロファ−ジ上の酸化LDL受容体を介して取り込まれ、これを泡沫細胞化するとともに種々の催炎症性変化を惹起して粥状動脈硬化の主な原因となる。 On the other hand, oxidized LDL is also generated in the blood vessel subendothelium and blood vessel wall by cell-dependent chemical modification such as vascular endothelial cells and macrophages and cell-independent chemical modification by the action of Fe 3+, etc. Unlike the case, oxidized LDL generated in the subendothelium and blood vessel wall is accumulated in the cells of macrophages. Oxidized LDL is taken up through the oxidized LDL receptor on the macrophage and becomes a foam cell and induces various proinflammatory changes and is a major cause of atherosclerosis.

酸化LDL受容体の1つであるLOX−1(Lectin-like oxidized LDL receptor-1)が動脈硬化プラークで発現していることが明らかとなっており、マクロファージのプラークへの集積に関与していると思われる。酸化LDLはLOX−1を介して動脈硬化プラークの線維性皮膜の平滑筋細胞と細胞外基質を減少させ、プラークの脆弱化と破綻を誘導することが推測される。動脈硬化プラークの不安定化による破綻とそれに伴う血栓形成は、心筋梗塞や脳梗塞などの虚血性疾患の主要な原因とされている。   LOX-1 (Lectin-like oxidized LDL receptor-1), one of the oxidized LDL receptors, has been shown to be expressed in atherosclerotic plaques and is involved in the accumulation of macrophages in plaques I think that the. It is speculated that oxidized LDL decreases the smooth muscle cells and extracellular matrix of the fibrous capsule of atherosclerotic plaque via LOX-1 and induces plaque weakening and failure. Failure due to destabilization of arteriosclerotic plaque and associated thrombus formation are considered to be the main causes of ischemic diseases such as myocardial infarction and cerebral infarction.

そこで、酸化LDL受容体に対する抗体を用いて、炎症や動脈硬化などの種々の疾患を予防、治療するための薬剤や、酸化LDLにより発現変動する動脈硬化発症に関わる遺伝子を抑制する化合物、及びその化合物を含有する動脈硬化を予防、治療するための薬剤が報告されている(特許文献1、2)。   Therefore, using an antibody against oxidized LDL receptor, a drug for preventing and treating various diseases such as inflammation and arteriosclerosis, a compound that suppresses a gene related to the onset of arteriosclerosis that changes in expression due to oxidized LDL, and its Drugs for preventing and treating arteriosclerosis containing compounds have been reported (Patent Documents 1 and 2).

しかしながら、動脈硬化プラークの不安定性を診断することは、臨床上非常に重要であるが、その診断法は確立されていない。また、LOX−1による酸化LDLの定量が報告されている(特許文献3)が、動脈硬化プラークの性状を直接に診断するものではなく、臨床診断としての有用性は少ない。   However, diagnosing instability of arteriosclerotic plaque is very important clinically, but its diagnostic method has not been established. Further, although quantification of oxidized LDL by LOX-1 has been reported (Patent Document 3), it does not directly diagnose the properties of arteriosclerotic plaques, and has little usefulness as a clinical diagnosis.

特開2000−109435号公報JP 2000-109435 A 特開2003−274956号公報JP 2003-274958 A 特開2002−17353号公報JP 2002-17353 A

そこで本発明者らは、動脈硬化プラークの不安定性を評価できる核医学イメージング薬剤の開発を目的とし、その不安定化に深く関与することが報告されている酸化LDL受容体LOX−1を標的分子とする薬剤を提供することを目的とした。   Therefore, the present inventors aim to develop a nuclear medicine imaging drug that can evaluate the instability of atherosclerotic plaque, and target the oxidized LDL receptor LOX-1 which has been reported to be deeply involved in the destabilization. The purpose was to provide a drug.

この目的を達成するため、本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、抗LOX−1抗体を放射性核種で標識することにより、該化合物によって生体内のLOX−1を検出し得ることを見出し、本発明を完成するに至った。
かくして、本発明によれば、放射性核種で標識された抗LOX−1抗体を有効成分として含有するLOX−1診断用薬剤が提供される。
In order to achieve this object, the present inventors have conducted extensive research and found that by labeling an anti-LOX-1 antibody with a radionuclide, LOX-1 in vivo can be detected by the compound. The present invention has been completed.
Thus, according to the present invention, there is provided a LOX-1 diagnostic agent containing an anti-LOX-1 antibody labeled with a radionuclide as an active ingredient.

本発明のLOX−1診断用薬剤は、血管壁に存在するLOX−1を含むマクロファージや、動脈硬化プラークの不安定化に関与するLOX−1に集積するため、生体内に投与し、放射性核種の放射能を測定することにより、プラークの不安定性の診断や動脈硬化症の診断を行うことができる。   The LOX-1 diagnostic agent of the present invention accumulates in LOX-1 which is involved in destabilization of macrophages including LOX-1 present in the blood vessel wall and atherosclerotic plaque. By measuring the radioactivity, it is possible to diagnose plaque instability and arteriosclerosis.

以下、本発明のLOX−1診断用薬剤について更に詳しく説明する。
本発明のLOX−1診断用薬剤は、放射性核種で標識された抗LOX−1抗体(すなわちLOX−1に対する抗体)を有効成分として含む。抗LOX−1抗体としては、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体の何れも使用可能であるが、LOX−1への選択的な放射能送達という点から、モノクローナル抗体を使用することが好ましい。モノクローナル抗体としては、例えば、ウサギ、ウシ、ヒト、ラット、マウス等の哺乳動物に由来するLOX−1に対するモノクローナル抗体が使用できる。
また、本明細書において、「抗体」は抗体フラグメントも包含する。抗体フラグメントは、特定の金属キレートや放射性核種に対し結合親和性を示す。抗体フラグメントとしては、例えば、Fab、Fab´、F(ab´)、Fv、aAbなどが挙げられる。
Hereinafter, the LOX-1 diagnostic agent of the present invention will be described in more detail.
The LOX-1 diagnostic agent of the present invention contains an anti-LOX-1 antibody labeled with a radionuclide (ie, an antibody against LOX-1) as an active ingredient. As the anti-LOX-1 antibody, either a monoclonal antibody or a polyclonal antibody can be used, but it is preferable to use a monoclonal antibody from the viewpoint of selective radioactive delivery to LOX-1. As the monoclonal antibody, for example, a monoclonal antibody against LOX-1 derived from mammals such as rabbits, cows, humans, rats and mice can be used.
In the present specification, the “antibody” also includes an antibody fragment. Antibody fragments exhibit binding affinity for specific metal chelates and radionuclides. Examples of antibody fragments include Fab, Fab ′, F (ab ′) 2 , Fv, aAb, and the like.

LOX−1に対するモノクローナル抗体は、例えば、マウスをウサギLOX−1で免疫し、脾細胞を取り出し、これとマウスミエローマ細胞とを融合して得たハイブリドーマ細胞を培養することにより製造することができる。また、免疫する際に、LOX−1の代わりにLOX−1のエピトープを含むポリペプチド断片を用いてもよい。かかるポリペプチドは、合成品であっても、当該ポリペプチド断片に対応する遺伝子を発現させて分離生成されたものであってもよい。   A monoclonal antibody against LOX-1 can be produced, for example, by immunizing a mouse with rabbit LOX-1, removing spleen cells, and culturing hybridoma cells obtained by fusing them with mouse myeloma cells. In immunization, a polypeptide fragment containing an epitope of LOX-1 may be used instead of LOX-1. Such a polypeptide may be a synthetic product or may be a product that is separated and produced by expressing a gene corresponding to the polypeptide fragment.

このハイブリドーマの製造は、例えばKohlerとMilsteinの方法〔Nature 256:495(1975)〕等に従い、下記のように行うことができる。
(1) 抗体産生細胞の調製:免疫用マウスには、例えば、BALB/C系マウス、C57BL/6系マウス、C3H系マウス等を用いることができ、好ましくはBALB/C系マウスを用いる。免疫マウス1匹(8〜12週齢)に対してLOX−1または上記ポリペプチド断片50〜100μgの量を抗原として2〜3週間ごとに2〜3回接種して免疫を行う。マウスの飼育及び脾細胞の採取は常法に従って行うことができる。尚、免疫の際には、LOX−1や上記ポリペプチド断片に例えばフロイントアジュバント等を融合させ、得られた蛋白質を抗原として用いることもできる。
(2) ミエローマ細胞の調製:ミエローマ細胞としては、例えば、P3X63Ag8U.1、Sp2/0-Ag14(Sp2)、P3/NS1/1-Ag4-1(NS-1) 等が挙げられ、これら細胞の継代培養は常法に従って行うことができる。
(3) 細胞融合:脾細胞とミエローマ細胞とを1:1〜10:1の割合で混合し、分子量1000〜4000のポリエチレングリコール(以下PEGという)、ダルベッコ改変イーグル培地中、両細胞を30〜40℃の条件下で、1〜3分間インキュベートすることにより細胞融合を行うことができる。
The hybridoma can be produced, for example, according to the method of Kohler and Milstein [Nature 256: 495 (1975)] and the like.
(1) Preparation of antibody-producing cells: As immunization mice, for example, BALB / C mice, C57BL / 6 mice, C3H mice, etc. can be used, preferably BALB / C mice. Immunization is carried out by inoculating one immunized mouse (8-12 weeks old) 2-3 times every 2-3 weeks with LOX-1 or 50-100 μg of the above polypeptide fragment as an antigen. Breeding mice and collecting spleen cells can be performed according to conventional methods. In immunization, for example, Freund's adjuvant or the like can be fused to LOX-1 or the above polypeptide fragment, and the resulting protein can be used as an antigen.
(2) Preparation of myeloma cells: Examples of myeloma cells include P3X63Ag8U.1, Sp2 / 0-Ag14 (Sp2), P3 / NS1 / 1-Ag4-1 (NS-1), etc. Subculture can be performed according to a conventional method.
(3) Cell fusion: Spleen cells and myeloma cells are mixed at a ratio of 1: 1 to 10: 1, and 30 to 30% of both cells in polyethylene glycol (hereinafter referred to as PEG) having a molecular weight of 1000 to 4000 and Dulbecco's modified Eagle medium. Cell fusion can be performed by incubating at 40 ° C. for 1 to 3 minutes.

(4) ハイブリドーマの選択:融合細胞(ハイブリドーマ)の選択は、ヒポキサンチン(10-3〜10-5M)、アミノプテリン(10-6〜10-7M)、チミジン(10-5〜10-6M)、ペニシリン(100〜200単位/ml)、牛胎児血清(10〜20%)、ストレプトマイシン(100〜200μg/ml)、2−メルカプトエタノール(10-5〜10-6M)を含む基礎培地を用いて培養し、生育してくる細胞をハイブリドーマとして選択することができる。基礎培地としては、例えば、動物細胞の培養に一般に用いられるRPMI1640培地、イーグルMEM培地、イスコフ改変ダルベッコ培地等が用いられ、RPMI1640培地を用いるのが好ましい。
(5) ハイブリドーマの培養:ハイブリドーマのクローン化は、限界希釈法により、少なくとも2回繰り返して行う。ハイブリドーマを通常の動物細胞の培養と同様にして培養すれば、培地中に抗体が産生される。通常、5〜10×105個/mlのハイブリドーマ細胞を、例えば、牛胎児血清(10%)、ペニシリン(100単位/ml)、ストレプトマイシン(100μg/ml)、2−メルカプトエタノール(5×10-5M)を含むRPMI1640培地中で5%CO2存在下、37℃で、3〜4日間培養することによって培養液中に抗体が分泌、蓄積される。また、ハイブリドーマ細胞をBALB/C系マウスなどの腹腔内に移植して増殖することにより、腹水中に本発明の抗体を蓄積させることもできる。
(4) Hybridoma Selection: Selection of fused cells (hybridomas), hypoxanthine (10 -3 to 10 -5 M), aminopterin (10 -6 to 10 -7 M), thymidine (10-5 - 6 M), basic containing penicillin (100-200 units / ml), fetal bovine serum (10-20%), streptomycin (100-200 μg / ml), 2-mercaptoethanol (10 -5 -10 -6 M) Cells grown using a medium and growing can be selected as hybridomas. As the basal medium, for example, RPMI1640 medium, Eagle MEM medium, Iskov modified Dulbecco medium or the like generally used for animal cell culture is used, and RPMI1640 medium is preferably used.
(5) Hybridoma culture: Cloning of hybridomas is repeated at least twice by limiting dilution. When hybridomas are cultured in the same manner as normal animal cell culture, antibodies are produced in the medium. Usually, a 5 to 10 × 10 5 cells / ml of hybridoma cells, e.g., fetal bovine serum (10%), penicillin (100 units / ml), streptomycin (100 [mu] g / ml), 2-mercaptoethanol (5 × 10 - The antibody is secreted and accumulated in the culture medium by culturing in RPMI 1640 medium containing 5 M) in the presence of 5% CO 2 at 37 ° C. for 3-4 days. The antibody of the present invention can also be accumulated in ascites by transplanting the hybridoma cells into the abdominal cavity of a BALB / C mouse or the like to proliferate.

(6) モノクローナル抗体の精製:ハイブリドーマ細胞の培養液中又は腹水中に蓄積したモノクローナル抗体は以下のようにして採取され、精製される。即ち、従来から用いられている硫安分画法、PEG分画法、陰イオン交換クロマトグラフィー及びゲル濾過クロマトグラフィーを用いる方法である。また、プロテインAやプロテインG等のアフィニティークロマトグラフィーによる方法も利用できる。
(7) モノクローナル抗体の選別:モノクローナル抗体の選別には、酵素免疫測定法、ウエスタンブロッティング法等が用いられる。また、モノクローナル抗体のIgGアイソタイプの決定は、モノクローナル抗体の酵素免疫測定法又はオクタロニー法によって行うことができる。
(6) Purification of monoclonal antibody: Monoclonal antibodies accumulated in the culture medium or ascites of hybridoma cells are collected and purified as follows. That is, a method using an ammonium sulfate fractionation method, a PEG fractionation method, an anion exchange chromatography and a gel filtration chromatography which are conventionally used. A method using affinity chromatography such as protein A or protein G can also be used.
(7) Selection of monoclonal antibodies: For the selection of monoclonal antibodies, enzyme immunoassay, Western blotting and the like are used. In addition, the IgG isotype of a monoclonal antibody can be determined by an enzyme immunoassay method or an octalony method of the monoclonal antibody.

抗LOX−1抗体の標識に使用する放射性核種としては、特に限定されないが、例えば、放射性ヨウ素、放射性金属原子などが挙げられる。放射性金属原子としては、例えば、放射性インジウム、放射性テクネチウム、放射性レニウム、放射性ガリウムなどが挙げられる。具体的には、放射性ヨウ素としては123Iおよび131Iを、放射性インジウムとしては111Inを、放射性テクネチウムとしては99mTcを、放射性レニウムとしては186Reおよび188Reを、放射性ガリウムとしては67Gaおよび68Gaを例示することができる。
放射性ヨウ素を抗体に標識する方法としては、クロラミンT法、ヨードゲン法、NBS法などが挙げられ、いずれも抗体溶液に放射性のヨウ化ナトリウムを加えた後、酸化剤であるクロラミンT、ヨードゲン又はNBSを添加して標識する。放射性ヨウ素原子は、主に抗体のチロシン残基に付加(標識)される。通常90〜100%の標識率が得られるが、未反応のヨウ素やその他の不純物が問題になるときは、HPLCやディスポーザブルゲルカラム等を用いて精製を行う。
The radionuclide used for labeling the anti-LOX-1 antibody is not particularly limited, and examples thereof include radioactive iodine and a radioactive metal atom. Examples of the radioactive metal atom include radioactive indium, radioactive technetium, radioactive rhenium, and radioactive gallium. Specifically, 123 I and 131 I as radioactive iodine, 111 In as radioactive indium, 99m Tc as radioactive technetium, 186 Re and 188 Re as radioactive rhenium, 67 Ga and as radioactive gallium 68 Ga can be exemplified.
Examples of methods for labeling radioactive iodine on an antibody include the chloramine T method, the iodogen method, the NBS method, etc., all of which add radioactive sodium iodide to an antibody solution and then oxidize chloramine T, iodogen or NBS. Add and label. The radioactive iodine atom is added (labeled) mainly to the tyrosine residue of the antibody. Usually, a labeling rate of 90 to 100% is obtained, but when unreacted iodine and other impurities become a problem, purification is performed using HPLC, a disposable gel column or the like.

抗体の放射性インジウム標識は、あらかじめ抗体にジエチレントリアミン五酢酸(DTPA)のような二官能性キレート剤を結合させておき、未反応のDTPAを除いて精製し、放射性インジウムをキレートさせて標識する。反応混合液から未反応の遊離DTPAや抗体重合体をHPLCなどを用いて精製を行う。
放射性テクネチウムや放射性レニウムを抗体に標識する方法としては、前述した抗体に結合したDTPAのようなキレート剤に放射性テクネチウムや放射性レニウムをキレートさせる方法と、抗体を適当な還元剤で還元して抗体のジスルフィド(SS)結合を開裂させ、スルフヒドリル(SH)基を生成し、その生成したスルフヒドリル基を介して放射性テクネチウム又は放射性レニウムを抗体内に直接結合させる方法がある。還元剤としては、例えば、塩化第一スズ、ジチオスレイトール、アスコルビン酸などを例示することができる。
For the radioactive indium labeling of an antibody, a bifunctional chelating agent such as diethylenetriaminepentaacetic acid (DTPA) is bound to the antibody in advance, the unreacted DTPA is removed and purified, and radioactive indium is chelated and labeled. From the reaction mixture, unreacted free DTPA or antibody polymer is purified using HPLC or the like.
As a method of labeling the antibody with radioactive technetium or radioactive rhenium, a method of chelating radioactive technetium or radioactive rhenium with a chelating agent such as DTPA bound to the above-mentioned antibody, or reducing the antibody with an appropriate reducing agent, There is a method in which a disulfide (SS) bond is cleaved to generate a sulfhydryl (SH) group, and radioactive technetium or radioactive rhenium is directly bonded to the antibody via the generated sulfhydryl group. Examples of the reducing agent include stannous chloride, dithiothreitol, ascorbic acid and the like.

また、抗体に二官能性キレート剤である6−ヒドラジノピリジン−3−カルボキシル酸(HYNIC)を介して放射性金属原子をキレートさせてもよい。
HYNICを用いた場合、下記式(I)に示すように、HYNICのカルボキシル末端に抗体を結合し、ヒドラジノ末端に2つのコリガンドを用いて放射性金属原子を配位させる。
Alternatively, the antibody may be chelated with a radioactive metal atom via 6-hydrazinopyridine-3-carboxylic acid (HYNIC) which is a bifunctional chelating agent.
When HYNIC is used, as shown in the following formula (I), an antibody is bound to the carboxyl terminus of HYNIC, and a radioactive metal atom is coordinated to the hydrazino terminus using two coligands.

Figure 2005272383
Figure 2005272383

(上記式(I)中、Yは抗LOX−1抗体の残基、Mは放射性金属原子、TおよびAはコリガンドを示す。) (In the above formula (I), Y is a residue of the anti-LOX-1 antibody, M is a radioactive metal atom, and T and A are coligands.)

式(1)の化合物において、T及びAはコリガンドとして機能する。コリガンドは、一方(T)をトリシンとし、もう一方(A)をトリシン、ピリジン誘導体またはホスフィン誘導体の何れか1つとすることが好ましい。ピリジン誘導体としては、ニコチン酸、アセチルピリジン、3−ピリジンスルホン酸、3,5−ジカルボン酸ピリジンなどが挙げられ、ホスフィン誘導体としては、トリフェニルホスフィン−3−モノスルホン酸ナトリウムなどのトリフェニルホスフィンが挙げられる。   In the compound of formula (1), T and A function as a coligand. One of the coligands (T) is preferably tricine, and the other (A) is preferably any one of tricine, a pyridine derivative or a phosphine derivative. Examples of the pyridine derivative include nicotinic acid, acetylpyridine, 3-pyridinesulfonic acid, and 3,5-dicarboxylic acid pyridine. Examples of the phosphine derivative include triphenylphosphine such as sodium triphenylphosphine-3-monosulfonate. Can be mentioned.

式(1)の化合物は、例えば、以下の方法によって合成できる。まず、Boc−HYNIC−NHSを脱保護することによりHYNIC−NHSを合成する。そして、該HYNIC−NHSを抗LOX−1抗体溶液と反応させ、HYNIC−抗LOX−1抗体を得る。その後、トリシン(T)及びトリシン又はピリジン誘導体若しくはホスフィン誘導体(A)をコリガンドとして配位した放射性金属原子(M)を混和して標識させる。その後、HPLCなどを用いて精製を行う。   The compound of formula (1) can be synthesized, for example, by the following method. First, HYNIC-NHS is synthesized by deprotecting Boc-HYNIC-NHS. Then, the HYNIC-NHS is reacted with an anti-LOX-1 antibody solution to obtain a HYNIC-anti-LOX-1 antibody. Thereafter, the radioactive metal atom (M) coordinated with tricine (T) and tricine or pyridine derivative or phosphine derivative (A) as a coligand is mixed and labeled. Thereafter, purification is performed using HPLC or the like.

上記式(1)中、2つのコリガンド(A及びT)の何れもトリシンとした場合は、合成に加熱の必要がなく、タンパク質の変性を避けることができ、また、使用時に放射性金属と混合して使用できるキットを構成できるため好都合である。
かくして、本発明の好ましい実施形態によれば、下記の化学式(II)で示される抗LOX−1抗体と、トリシンを含有する試薬とを少なくとも備えてなる動脈硬化診断用キットが提供される。
In the above formula (1), when both of the two coligands (A and T) are tricine, there is no need for heating for synthesis, protein denaturation can be avoided, and mixing with a radioactive metal at the time of use. This is advantageous because it can be used as a kit.
Thus, according to a preferred embodiment of the present invention, there is provided an arteriosclerosis diagnostic kit comprising at least an anti-LOX-1 antibody represented by the following chemical formula (II) and a reagent containing tricine.

Figure 2005272383
Figure 2005272383

(上記式中、Yは抗LOX−1抗体の残基を示す。) (In the above formula, Y represents a residue of the anti-LOX-1 antibody.)

該キットは上記式(II)で示されるHYNIC−抗LOX−1抗体と、トリシンを含有する試薬とから構成される。該診断用キットを用いて、医師などは、診断直前にHYNIC−抗LOX−1抗体に放射性金属を標識させ、本発明のLOX−1診断用薬剤を作製することができる。その場合、LOX−1診断用薬剤の作製は、放射性金属を溶解した生理食塩水とトリシン含有試薬を混合させた後、上記HYNIC−抗LOX−1抗体を混和させ、室温で1時間程度反応させることにより行うことができる。   The kit comprises a HYNIC-anti-LOX-1 antibody represented by the above formula (II) and a reagent containing tricine. Using the diagnostic kit, a doctor or the like can label the radioactive metal on the HYNIC-anti-LOX-1 antibody immediately before the diagnosis to prepare the LOX-1 diagnostic agent of the present invention. In that case, the preparation of the LOX-1 diagnostic agent is performed by mixing the physiological saline in which the radioactive metal is dissolved and the tricine-containing reagent, and then mixing the HYNIC-anti-LOX-1 antibody and reacting at room temperature for about 1 hour. Can be done.

本発明のLOX−1診断用薬剤は、薬学的に許容可能な範囲内であれば、PH調整剤、界面活性剤、安定剤、その他各種添加剤を含有することができる。   The LOX-1 diagnostic agent of the present invention can contain a PH adjuster, a surfactant, a stabilizer, and other various additives as long as it is within a pharmaceutically acceptable range.

本発明のLOX−1診断用薬剤は、例えば、静脈投与又は患部周囲に経皮投与することにより、診断剤として使用することができる。本発明に係る化合物を診断剤として用いる場合、その投与後における検出方法としては、用いた放射性核種の性質に応じて種々の方法を用いることができる。例えば、放射性核種が放射性金属である場合は、SPECT又はPETといった画像診断法を用いることができる。
本発明のLOX−1診断用薬剤の投与量は、従来の診断剤と実質的に同様であり、例えば、99mTcで標識した化合物を用いた診断剤の投与量は、37MBq/kg〜1,850MBq/kg、好ましくは185MBq/kg〜740MBq/kg程度である。投与量は化合物の種類、使用する放射性核種の種類、患者の年齢、体重、症状、投与方法、他剤との併用等により適宜増減される。
The LOX-1 diagnostic agent of the present invention can be used as a diagnostic agent, for example, by intravenous administration or transdermal administration around the affected area. When the compound according to the present invention is used as a diagnostic agent, various methods can be used as a detection method after the administration depending on the properties of the radionuclide used. For example, when the radionuclide is a radiometal, an image diagnostic method such as SPECT or PET can be used.
The dosage of the LOX-1 diagnostic agent of the present invention is substantially the same as that of a conventional diagnostic agent. For example, the dosage of a diagnostic agent using a compound labeled with 99m Tc is 37 MBq / kg to 1,850 MBq. / kg, preferably about 185 MBq / kg to 740 MBq / kg. The dosage is appropriately increased or decreased depending on the type of compound, the type of radionuclide used, the age, weight, symptoms, administration method, combined use with other agents, etc.

以下、本発明の実施例及び比較例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記実施例になんら制限されるものではない。
なお、以下で用いる略号は下記のとおりである。
HPLC:高速液体クロマトグラフィー、
SDS-PAGE:ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミド電気泳動、
TLC:薄層クロマトグラフィー、
CAE:セルロースアセテート膜電気泳動、
HYNIC:6−ヒドラジノピリジン−3−カルボキシル酸、
anti-LOX-1:抗LOX-1抗体、
Tricine:トリシン、
PBS: リン酸緩衝溶液、
TFA:トリフルオロ酢酸、
DMF:ジメチルホルムアミド(dimethylformamide)
DCC:ジシクロヘキシルカルボジイミド(dicyclohexylcarbodiimide)。
EXAMPLES Hereinafter, although the Example and comparative example of this invention are shown and this invention is demonstrated concretely, this invention is not restrict | limited to the following Example at all.
In addition, the symbol used below is as follows.
HPLC: high performance liquid chromatography,
SDS-PAGE: Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide electrophoresis,
TLC: thin layer chromatography,
CAE: cellulose acetate membrane electrophoresis,
HYNIC: 6-hydrazinopyridine-3-carboxylic acid,
anti-LOX-1: anti-LOX-1 antibody,
Tricine: Tricine
PBS: phosphate buffer solution,
TFA: trifluoroacetic acid,
DMF: dimethylformamide
DCC: dicyclohexylcarbodiimide.

[ 99m Tc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine) 2 の合成
以下に示すように、上記式(I)においてMが99mTc 、A及びTが何れもトリシンである化合物、すなわち、 [99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2)を下記スキーム(Scheme)1〜3の工程1〜6に従って調製した。
Synthesis of [ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 As shown below, in the above formula (I), M is 99m Tc and A and T are all tricines, 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 ) was prepared according to steps 1-6 of Schemes 1-3 below.

Figure 2005272383
Figure 2005272383

合成において用いた試薬および機器は下記のとおりである。
99mTc-過テクネチウム酸(99mTc-pertechnetate (99mTcO4 -))は99Mo-99mTcジェネレータより溶出した生理食塩水溶液を用いた。
抗体の精製において、カラムクロマトグラフィー法としてアマシャムバイオサイエンス株式会社製XK16/70column(商品名)及びMobiTec社製モビコール(商品名)を、ゲルとして、アマシャムバイオサイエンス株式会社製Sephadex G-50 Fine(商品名)を用いた。
抗体の限外濾過には、Amicon社製Diaflow system, 8MC型(商品名)を用いた。抗体の分析においてサイズ排除HPLCは、東ソー株式会社製TSKgelSuperSW2000(商品名)(4.6 x 300mm)、TSKguardcolumn SuperSW(商品名)(4.6 x 35mm)を用い、0.15M 塩化ナトリウム(sodium chloride)を含有する0.1M リン酸緩衝液(phosphate buffer) (pH6.8)を移動相として流速0.2mL/minで行った (保持時間(retention time), IgG(150kDa):12min)。
The reagents and equipment used in the synthesis are as follows.
99m Tc-pertechnetate ( 99m Tc-pertechnetate ( 99m TcO 4 )) was a physiological saline solution eluted from a 99 Mo- 99m Tc generator.
For antibody purification, Amersham Biosciences's XK16 / 70 column (trade name) and MobiTec's Mobicol (trade name) are used as gels, and Amersham Biosciences' Sephadex G-50 Fine (product) Name).
For the ultrafiltration of the antibodies, Amicon Diaflow system, 8MC type (trade name) was used. For antibody analysis, size exclusion HPLC was performed using TSKgelSuperSW2000 (trade name) (4.6 x 300mm) and TSKguardcolumn SuperSW (trade name) (4.6 x 35mm) manufactured by Tosoh Corporation, and containing 0.15M sodium chloride. M phosphate buffer (pH 6.8) was used as a mobile phase at a flow rate of 0.2 mL / min (retention time, IgG (150 kDa): 12 min).

薄層クロマトグラフィー(TLC)はMerck社Art5553(商品名)を用い、アセトン又は生理食塩水を展開溶媒として分析した(アセトン,99mTcO4 -:Rf=1,99mTc(tricine)2:Rf=0/生理食塩水,IgG:Rf=0,99mTcO4 -:Rf=1,99mTc(tricine)2:Rf=1)。
セルロースアセテート膜電気泳動(CAE)は、富士写真フィルム社のSeparax-SP(商品名)を用い、0.1M 塩化ナトリウム(sodium chloride)を含有する0.1M リン酸二水素ナトリウム水溶液(sodium dihydrogenphosphate aq.)で90分間、0.8mA/cmで泳動した(anti-LOX-1:−極側へ1cm)。抗体のSDS-PAGEには、アトー株式会社製ラピダス・二連ミニスラブを用いた。
Thin layer chromatography (TLC) was analyzed using Merck Art5553 (trade name) and acetone or physiological saline as a developing solvent (acetone, 99m TcO 4 : Rf = 1, 99m Tc (tricine) 2 : Rf = 0 / saline, IgG: Rf = 0, 99m TcO 4 : Rf = 1, 99m Tc (tricine) 2 : Rf = 1).
Cellulose acetate membrane electrophoresis (CAE) uses Separax-SP (trade name) from Fuji Photo Film Co., Ltd., 0.1M sodium dihydrogenphosphate aqueous solution (sodium dihydrogenphosphate aq.) Containing 0.1M sodium chloride. For 90 minutes at 0.8 mA / cm (anti-LOX-1:-1 cm to the pole side). For the SDS-PAGE of the antibody, Rapidos duplex mini slab manufactured by Ato Co., Ltd. was used.

anti−LOX−1抗体の調製
ウサギの酸化LDL受容体のひとつであるLOX−1に対するモノクローナル抗体(anti-rabbit LOX-1 mouse monoclonal IgG)(anti-LOX-1,IgG)は、以下のようにして調製した。すなわち、ウサギLOX−1のN末端から数えて150〜171番目のアミノ酸配列に対応し配列(すなわち、配列番号1の配列EDWLWHGKNCYLFSSGSFNWES(各アルファベットはアミノ酸1文字コード))を有する合成ポリペプチドにフロイントアジュバントを融合させ、これを抗原としてBALB/C系マウスを免疫し、脾細胞を取り出した。これとマウスミエローマ細胞P3X63Ag8U.1とを融合して得たハイブリドーマ細胞をRPMI1640培地にて培養することによりanti-LOX-1,IgGを作製し、1.4mg/mL(PBS-)に精製した。anti-LOX-1,IgGを限外濾過法を用いて、0.15M 塩化ナトリウム(sodium chloride)を含有する0.15M ホウ酸緩衝液(borate buffer) (pH8.5)にバッファー交換を行い、5mg/mLの濃度に調製した。
Preparation of anti-LOX-1 antibody A monoclonal antibody against LOX-1, which is one of the oxidized LDL receptors of rabbits (anti-rabbit LOX-1 mouse monoclonal IgG) (anti-LOX-1, IgG), is as follows. Prepared. That is, Freund's adjuvant is added to a synthetic polypeptide having a sequence corresponding to the 150th to 171st amino acid sequence from the N-terminus of rabbit LOX-1 (that is, the sequence EDWLWHGKNCYLFSSGSFNWES (each alphabet is one letter code)). And BALB / C mice were immunized using this as an antigen, and splenocytes were taken out. Anti-LOX-1, IgG was prepared by culturing hybridoma cells obtained by fusing this with mouse myeloma cells P3X63Ag8U.1 in RPMI1640 medium, and purified to 1.4 mg / mL (PBS-). Using an ultrafiltration method, anti-LOX-1, IgG was buffer-exchanged to 0.15M borate buffer (pH 8.5) containing 0.15M sodium chloride, and 5mg / Prepared to a concentration of mL.

HYNIC-anti-LOX-1 (5)の合成(Scheme1及び2)
Boc-HYNIC-NHS(3)を、Abramsら(J.Nucl.Med., 31,2022-2028 (1990))の方法に従い合成した(Scheme1)。Boc-HYNIC-NHS(3)10mgにTFA400μL、アニソール(anisole)20μLを加え、15分間攪拌し、その後N2ガスにてTFAを除去した。さらに残渣をエーテルで充分洗浄後、HYNIC-NHS(4)を得た。乾燥DMFに10mg/mLになるように溶解したHYNIC-NHS(4)10μLを、anti-LOX-1溶液1mLに攪拌しながら滴下し、遮光下室温で2時間穏やかに攪拌後、10mM クエン酸緩衝液(citrate buffer) (pH5.2)で平衡化したSephadex G-50 Fine(商品名)のカラムクロマトグラフィー法により分離・精製を行った。サイズ排除HPLC及びSDS-PAGEによりIgGとして確認後(retention time:12min)、HYNIC-anti-LOX-1(5)は600μg/mLになるように調製した。
Synthesis of HYNIC-anti-LOX-1 (5) (Scheme 1 and 2)
Boc-HYNIC-NHS (3) was synthesized according to the method of Abrams et al. (J. Nucl. Med., 31,2022-2028 (1990)) (Scheme 1). 400 μL of TFA and 20 μL of anisole were added to 10 mg of Boc-HYNIC-NHS (3), and the mixture was stirred for 15 minutes, and then TFA was removed with N 2 gas. Further, the residue was thoroughly washed with ether to obtain HYNIC-NHS (4). 10 μL of HYNIC-NHS (4) dissolved in dry DMF to 10 mg / mL was added dropwise to 1 mL of anti-LOX-1 solution while stirring, and after gently stirring at room temperature for 2 hours in the dark, 10 mM citrate buffer Separation and purification were carried out by column chromatography using Sephadex G-50 Fine (trade name) equilibrated with a citrate buffer (pH 5.2). After confirmation as IgG by size exclusion HPLC and SDS-PAGE (retention time: 12 min), HYNIC-anti-LOX-1 (5) was prepared to be 600 μg / mL.

[ 99m Tc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine) 2 (6)の合成(Scheme3)
10mM クエン酸緩衝液(citrate buffer) (pH5.2)に溶解したHYNIC-anti-LOX-1(5)溶液500μL(300μg/500μL)に、Larsenら(Bioconjugate Chem., 6,635-638 (1995))の方法2)に従い作製した99mTc(tricine)2 500μLを混和した。室温で1時間インキュベート後、0.15M 塩化ナトリウム(sodium chloride)を含有する0.1M リン酸緩衝液(phosphate buffer) (pH7.4)で平衡化させたSephadex G-50 Fine(商品名)を用いたスピンカラム法により精製し、[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2 (6)を得た。放射化学的純度はサイズ排除HPLC(retention time:12min)、生理食塩水を展開溶媒とするTLC(Rf=0)、CAE(−極へ1cm)により分析した。放射化学的収率30%、放射化学的純度90%以上で得られた。
Synthesis of [ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 (6) (Scheme 3)
In 500 μL (300 μg / 500 μL) of HYNIC-anti-LOX-1 (5) solution dissolved in 10 mM citrate buffer (pH 5.2), Larsen et al. (Bioconjugate Chem., 6,635-638 (1995)) 99m Tc (tricine) 2 500 μL prepared according to the method 2) of (1) was mixed. After incubation for 1 hour at room temperature, Sephadex G-50 Fine (trade name) equilibrated with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.15 M sodium chloride was used. Purification by a spin column method yielded [ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 (6). Radiochemical purity was analyzed by size exclusion HPLC (retention time: 12 min), TLC (Rf = 0) using physiological saline as a developing solvent, and CAE (1 cm to the negative electrode). The radiochemical yield was 30% and the radiochemical purity was 90% or more.

体内動態及び血中クリアランスの測定
大動脈に動脈硬化が発生することが知られているWHHLMIウサギ5羽、及びコントロールウサギとしてnormal NZWウサギ3羽に、実施例1で得られた[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2 1mL(2〜3mCi)を耳静脈内投与し、経時的(1,2,3,6,24時間後)に耳静脈より採血し、24時間後に大動脈及び各臓器を摘出し、それぞれの重量と放射能を測定した。結果を表1〜3及び図1〜3に示す。
Measurement of pharmacokinetics and blood clearance [ 99m Tc] (HYNIC) obtained in Example 1 in 5 WHHLMI rabbits known to cause arteriosclerosis in the aorta and 3 normal NZW rabbits as control rabbits -anti-LOX-1) (tricine) 2 1mL (2-3mCi) was administered into the ear vein, blood was collected from the ear vein over time (after 1,2,3,6,24 hours), and aorta after 24 hours And each organ was extracted and the weight and radioactivity of each were measured. The results are shown in Tables 1 to 3 and FIGS.

Figure 2005272383
Figure 2005272383

Figure 2005272383
Figure 2005272383

Figure 2005272383
Figure 2005272383

[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2のウサギ体内分布をWHHLMIウサギ(WHHLMI rabbit)とコントロールウサギ(Control rabbit)とで比較検討したところ、表1及び図1からわかるとおり、投与24時間後における大動脈への放射能集積はWHHLMIウサギがコントロールウサギに比べ有意に高かった。従って、[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2は動脈硬化を誘導するLOX−1に集積し、動脈硬化プラークの存在を診断するのに有効であることがわかった。
また、表2、3及び図2、3からわかるとおり、その他の臓器への放射能集積及び、血液からのクリアランスに有意差はなかった。
The distribution of [ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 in rabbits was compared between WHHLMI rabbits and control rabbits, as shown in Table 1 and FIG. Radioactivity accumulation in the aorta 24 hours after administration was significantly higher in WHHLMI rabbits than in control rabbits. Therefore, [ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) 2 accumulates in LOX-1 which induces arteriosclerosis, and is found to be effective for diagnosing the presence of arteriosclerotic plaque.
Further, as can be seen from Tables 2 and 3 and FIGS. 2 and 3, there was no significant difference in radioactivity accumulation in other organs and clearance from blood.

コントロールウサギ(3羽)とWHHLMI ウサギ(5羽)における[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2注射24時間後の大動脈断片(大動脈全体(total aorta)、大動脈弓 (arch aorta)、胸大動脈 (thoracic aorta)、腹大動脈 (abdominal aorta))の放射能を示す。なお、縦軸は投与量1gに対する%を示す。[ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) in control rabbits (3) and WHHLMI rabbits (5) 2 hours after injection, aortic fragments (total aorta, aorta, arch) aorta), thoracic aorta, abdominal aorta). In addition, a vertical axis | shaft shows% with respect to 1g of dosages. コントロールウサギ(3羽)における[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2静脈注射後の血液中の放射能含有量を示す。なお、縦軸は投与量1gに対する%を示し、横軸は時間を示す。[ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) in control rabbits (3) The radioactivity content in blood after 2 intravenous injections is shown. The vertical axis represents% relative to 1 g of the dose, and the horizontal axis represents time. WHHLMIウサギ(5羽)における[99mTc](HYNIC-anti-LOX-1)(tricine)2静脈注射後の血液中の放射能含有量を示す。なお、縦軸は投与量1gに対する%を示し、横軸は時間を示す。[ 99m Tc] (HYNIC-anti-LOX-1) (tricine) in WHHLMI rabbits (5) The radioactivity content in blood after 2 intravenous injections is shown. The vertical axis represents% relative to 1 g of the dose, and the horizontal axis represents time.

Claims (5)

放射性核種で標識された抗LOX−1抗体を有効成分として含有するLOX−1診断用薬剤。   A diagnostic agent for LOX-1 comprising an anti-LOX-1 antibody labeled with a radionuclide as an active ingredient. 放射性核種で標識された抗LOX−1抗体が、下記式(I)で示される化合物である請求項1に記載のLOX−1診断用薬剤。
Figure 2005272383
(上記式(I)中、Yは抗LOX−1抗体の残基、Mは放射性金属原子、TおよびAはコリガンドを示す。)
The agent for diagnosis of LOX-1 according to claim 1, wherein the anti-LOX-1 antibody labeled with a radionuclide is a compound represented by the following formula (I).
Figure 2005272383
(In the above formula (I), Y is a residue of the anti-LOX-1 antibody, M is a radioactive metal atom, and T and A are coligands.)
抗LOX−1抗体が配列番号1のポリペプチドに結合するモノクローナル抗体である請求項1または2に記載のLOX−1診断用薬剤。   The diagnostic agent for LOX-1 according to claim 1 or 2, wherein the anti-LOX-1 antibody is a monoclonal antibody that binds to the polypeptide of SEQ ID NO: 1. 下記の化学式(II)で示される抗LOX−1抗体と、トリシンを含有する試薬とを少なくとも備えてなる動脈硬化診断用キット。
Figure 2005272383
(上記式中、Yは抗LOX−1抗体の残基を示す。)
A kit for diagnosing arteriosclerosis comprising at least an anti-LOX-1 antibody represented by the following chemical formula (II) and a reagent containing tricine.
Figure 2005272383
(In the above formula, Y represents a residue of the anti-LOX-1 antibody.)
抗LOX−1抗体が配列番号1のポリペプチドに結合するモノクローナル抗体である請求項4に記載の動脈硬化診断用キット。


The kit for diagnosing arteriosclerosis according to claim 4, wherein the anti-LOX-1 antibody is a monoclonal antibody that binds to the polypeptide of SEQ ID NO: 1.


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