JP2004537957A - Anti-αvβ3 recombinant human antibody, nucleic acid encoding the same and method of using the same - Google Patents

Abstract

The present invention relates to nucleic acids encoding the monoclonal antibody (MAb) LM609. This antibody specifically recognizes integrin α _v β ₃ and inhibits its functional activity. The invention also relates to nucleic acids encoding non-mouse transplanted forms of LM609 and polypeptides comprising non-mouse transplanted forms of LM609. These grafted antibodies retain the binding specificity and inhibitory activity of the parent mouse antibody LM609. The invention further relates to optimized forms of the LM609-grafted antibody that exhibit increased binding affinity and specificity as compared to the non-mouse parent form of the LM609-grafted antibody.

Description

^１残基の番号付けは、Ｋａｂａｔら（前出）の命名方法に従う。
^２残基の番号付けは、Ｃｈｏｔｈｉａら（前出）の命名方法に従う。
^３残基の番号付けは、ＭａｃＣａｌｌｕｍら（前出）の命名方法に従う。
【００２１】
本明細書において用いる場合、ヌクレオチドまたはアミノ酸の配列に対する参照において用いられた場合の用語「実質的に」または「実質的に同じ」とは、このヌクレオチドまたはアミノ酸の配列が、参照配列に比較した場合、かなりの程度、量または範囲の配列同一性を示すことを意味することが意図される。このようなかなりの程度、量または範囲の配列同一性は、さらに、重大でかつ意味があり、従って決定的に認識可能であるかまたは既知である特徴を示すと考えられる。従って、ＬＭ６０９の重鎖または軽鎖、Ｖｉｔａｘｉｎ、またはそのフラグメントを含むＬＭ６０９移植抗体（ｇｒａｆｔｅｄ ａｎｔｉｂｏｄｙ）と実質的に同じヌクレオチド配列であるヌクレオチド配列は、ＬＭ６０９、Ｖｉｔａｘｉｎ、またはＬＭ６０９移植抗体のアミノ酸配列をコードするか、またはそのアミノ酸配列であることが決定的に既知であるか認識可能である特徴を示す配列をいう。そのマイナー改変は、その改変がＬＭ６０９、Ｖｉｔａｘｉｎ、またはＬＭ６０９移植抗体の配列として認識可能である限り、含まれる。同様に、Ｖｉｔａｘｉｎの重鎖または軽鎖、ＬＭ６０９移植抗体、またはその機能的フラグメントと実質的に同じアミノ酸配列であるアミノ酸配列は、Ｖｉｔａｘｉｎ、またはＬＭ６０９移植抗体、およびそのマイナー改変のアミノ酸配列を示すことが決定的に既知であるかまたは認識可能である特徴を示す配列をいう。
【００２２】
ヌクレオチドまたはアミノ酸配列が、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体と実質的に同じであるか否かを決定する場合、その機能が維持されているか否かとともに、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体に対する変化の数を考慮する。例えば、３アミノ酸ＣＤＲにおける単一アミノ酸変化、または１６アミノ酸のＣＤＲにおけるいくつかの変化は、α_ｖβ_３結合機能が維持されている場合、実質的に同じであると考えられる。従って、ヌクレオチドまたはアミノ酸配列は、その配列がＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体およびそのマイナーな改変のヌクレオチドまたはアミノ酸を示すことが決定的に既知であるかまたは認識され得る特徴を示す場合、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体の機能が維持されている限り、実質的に同じである。
【００２３】
本明細書において用いる場合、用語「フラグメント」とは、ＬＭ６０９、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸に対する参照において用いる場合、ＬＭ６０９、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸の一部と実質的に同じ配列を有する核酸を意味することが意図される。この核酸フラグメントは、ＬＭ６０９、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸または（ＬＭ６０９、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸に対して相補的である）ヌクレオチド配列に対して選択的にハイブリダイズするように、長さおよび配列が十分である。従って、フラグメントは、配列決定およびポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）のためのプライマー、ならびに核酸ブロッティングまたは溶液ハイブリダイゼーションのためのプローブを含むことが意図される。この用語の意味はまた、ＬＭ６０９ポリペプチドを直接コードしないヌクレオチド配列の領域（例えば、イントロン）、およびＬＭ６０９コード遺伝子の非翻訳領域の配列を含むことが意図される。
【００２４】
本明細書において用いる場合、用語「機能的なフラグメント」とは、Ｖｉｔａｘｉｎに対する参照、ＬＭ６０９移植抗体に対する参照、またはその重鎖もしくは軽鎖のポリペプチドに対する参照において用いられる場合、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体の一部をいうことを意図する。これには、α_ｖβ_３結合活性、α_ｖβ_３結合特異性および／またはインテグリンα_ｖβ_３阻害性活性をある程度または全て維持したままの重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドを含む。このような機能的フラグメントは、例えば、抗体の機能的フラグメント（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ）_２、Ｆｖ、単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ））を含み得る。他の機能的フラグメントとしては、以下が挙げられ得る：例えば、重鎖または軽鎖のポリペプチド、可変領域ポリペプチドまたはＣＤＲポリペプチドまたはそれらの部分（このような機能的フラグメントが、結合活性、特異性、または阻害活性を保持する限り）。この用語はまた、例えば、天然に存在するアミノ酸の改変形態を含むポリペプチド、（例えば、Ｄ型、立体異性体、天然に存在しないアミノ酸、アミノ酸アナログおよび模倣物）（このようなポリペプチドが上記に規定されたような機能的活性を保持する限り）を含むことが意図される。
【００２５】
本明細書において用いる場合、用語「増強された（ｅｎｈａｎｃｅｄ）」とは、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、またはその機能的フラグメントに対する参照において用いられる場合、この抗体の機能的特性が、参照抗体に比較して変更または増強され、それによりこの抗体が所望の特性または活性を示すことを意味することを意図する。増強された活性を示す抗体は、参照抗体に比較して、例えば、より高い親和性もしくはより低い親和性の結合、または会合率もしくは分離率の増大もしくは低下を示し得る。増強された活性を示す抗体はまた、特定の生物体において、半減期の延長のような安定性の増大を示し得る。例えば、抗体活性が増強され、タンパク質分解に対する感受性を減少させることにより安定性を増大させ得る。より高い親和性結合または安定性の増大のような活性の増強が所望される場合、変異を、フレームワークまたはＣＤＲアミノ酸残基に導入し得る。そして、ＬＭ６０９移植親抗体のような参照抗体と比べた、α_ｖβ_３に対するより高い親和性結合、または増大した安定性について、この得られた抗体の改変体をスクリーニングし得る。活性の増強を示す抗体はまた、所望の場合、より低い親和性結合（これは、会合率の低下または分離率の増大を含む）を示し得る。より低い親和性結合を示す増強された抗体は、例えば、固形腫瘍を浸透するために、有用である。より高い親和性抗体（腫瘍の末梢領域に結合するが、高い親和性に起因して、腫瘍の内部領域には浸透し得ない）に比較して、より低い親和性抗体は、腫瘍の内部領域に浸透するのに有利である。
【００２６】
本発明は、Ｖｉｔａｘｉｎの重鎖ポリペプチドまたはその機能的フラグメントをコードする核酸を提供する。Ｖｉｔａｘｉｎの軽鎖ポリペプチドまたはその機能的フラグメントをコードする核酸もまた提供される。この核酸は、図１Ａおよび図１Ｂ（それぞれ、配列番号１および３）に示される配列またはそのフラグメントと実質的に同じ重鎖または軽鎖の可変領域ヌクレオチド配列から構成される。
【００２７】
Ｖｉｔａｘｉｎ（その機能的フラグメントを含む）は、ＬＭ６０９と実質的に同じ、結合活性、結合特異性、および阻害活性を示す非マウス抗体である。このＶｉｔａｘｉｎ Ｆｖフラグメントは、ヒト重鎖および軽鎖の可変領域ポリペプチド内のＣＤＲをＬＭ６０９由来のＣＤＲで機能的に置換することにより、作製された。ＣＤＲの機能的置換は、当業者に公知の組換え方法により実施された。このような方法は、通常、ＣＤＲ移植（ＣＤＲ ｇｒａｆｔｉｎｇ）と呼ばれ、そして米国特許第５，２２５，５３９号の主題である。このような方法はまた、「Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｏｆ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｐｈｙｌａｃｔｉｃ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｍａｎ」、Ｃｌａｒｋ，Ｍ．（編）、Ｎｏｔｔｉｎｇｈａｍ，Ｅｎｇｌａｎｄ：Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｔｉｔｌｅｓ（１９９３）の記載に見出され得る。
【００２８】
簡略には、その重鎖ＣＤＲおよび軽鎖ＣＤＲのそれぞれと、実質的に同じヌクレオチドを有し、そして実質的に同じアミノ酸配列をコードするＬＭ６０９核酸フラグメントを合成し、そしてそれぞれのヒト鎖をコードする核酸のそれぞれ中に置換した。この新しく誘導されたＶｉｔａｘｉｎ抗体の機能性を維持するため、非ＣＤＲフレームワーク領域内で改変を実施した。ＣＤＲ移植した重鎖および軽鎖の可変領域の集団を発生させることによって、これらの個々の変化を作成し（この集団において、ＣＤＲの外側の全ての可能性のある変化が示された）、次いで、結合活性について集団をスクリーニングすることにより、適切な抗体を選択することによって作製した。このスクリーニングによって、本明細書に記載のＶｉｔａｘｉｎ抗体の選択を行った。
【００２９】
Ｖｉｔａｘｉｎの重鎖および軽鎖可変領域のヌクレオチド配列を、それぞれ、図１Ａおよび１Ｂに示す。これらの配列は、Ｖｉｔａｘｉｎの重鎖および軽鎖の可変領域ポリペプチドをコードする配列に実質的に対応する。これらのＶｉｔａｘｉｎ核酸は、Ｖｉｔａｘｉｎコード配列のセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を含むことが意図される。一本鎖および二本鎖核酸も、例えば、この遺伝子のイントロン、５’非翻訳領域、３’非翻訳領域、ならびに調節配列のような核酸の非コード部分と同様に、含まれる。
【００３０】
図１Ａに示すように、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖可変領域ポリペプチドは、約３５１ヌクレオチド長の核酸によりコードされる。この核酸は、可変領域のアミノ末端Ｇｌｎ１残基で開始し、Ｓｅｒ１１７までである。このＶｉｔａｘｉｎ重鎖可変領域をコードする核酸を、ヒトＩｇＧ１定常領域に移植し、１４３１ヌクレオチドのコード領域（これは、総アミノ酸４７７の重鎖ポリペプチドをコードする）を作製する。図１Ｂに示すのは、Ｖｉｔａｘｉｎ軽鎖可変領域ポリペプチドである。このポリペプチドは、可変領域のアミノ末端Ｇｌｎ１残基で開始し、Ｌｙｓ１０７までである、約３２１ヌクレオチド長の核酸によりコードされる。このＶｉｔａｘｉｎ軽鎖可変領域核酸は、ヒトκ構築領域に移植し、６４２ヌクレオチドのコード領域（総アミノ酸２１４の軽鎖ポリペプチドをコードする）を生じる。
【００３１】
これらのヌクレオチド配列のわずかな改変は、重鎖および軽鎖Ｖｉｔａｘｉｎコード核酸およびそれらの機能的フラグメントとして含まれることが意図される。このようなわずかな改変としては、例えば、遺伝コードの縮重に起因して、そのコードされるアミノ酸配列を変化させない改変、ならびにそのコードされるアミノ酸配列の保存的置換のみを生じる改変が挙げられる。コードされるアミノ酸の保存的置換としては、例えば、以下のグループ内に属するアミノ酸が挙げられる：（１）非極性アミノ酸（Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、ＬｅｕおよびＩｌｅ）；（２）極性中性アミノ酸（Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、ＡｓｎおよびＧｌｎ）；（３）極性酸性アミノ酸（ＡｓｐおよびＧｌｕ）；（４）極性塩基性アミノ酸（Ｌｙｓ、ＡｒｇおよびＨｉｓ）；ならびに（５）芳香族アミノ酸（Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、ＴｙｒおよびＨｉｓ）。他のわずかな改変は、その核酸またはコードされるポリペプチドが、本明細書中に記載されるようなそれらのいくつかまたは全ての機能を保持する限り、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖および軽鎖ポリペプチドをコードする核酸に含まれる。
【００３２】
従って、本発明はまた、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖またはその機能的フラグメントをコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図１Ａ（配列番号２）に示されるアミノ酸配列と実質的に同じＶｉｔａｘｉｎの重鎖可変領域アミノ酸配列またはそのフラグメントをコードする。同様に、本発明はまた、Ｖｉｔａｘｉｎ軽鎖またはその機能的フラグメントをコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図１Ｂ（配列番号４）に示されるアミノ酸配列と実質的に同じＶｉｔａｘｉｎの軽鎖可変領域アミノ酸配列またはそのフラグメントをコードする。
【００３３】
アミノ酸の保存的置換に加えて、アミノ酸の機能的置換を可能にする、Ｖｉｔａｘｉｎコードヌクレオチド配列のわずかな改変もまた、この用語の定義内に含まれることが意図される。このＶｉｔａｘｉｎヌクレオチド配列によってコードされる機能的に等価なアミノ酸の置換は、慣用的であり、当業者に公知の方法によって達成され得る。手短に言うと、機能的に等価なアミノ酸の置換は、変化されることが望まれるアミノ酸を同定し、その変化をそのコード核酸に組み込み、次いで、組換え発現されそして改変されたＶｉｔａｘｉｎポリペプチドの機能を決定することによって、作製され得る。複数の同時の変化を作製およびスクリーニングするための迅速な方法は、当該分野で周知であり、そして全ての可能なまたは全ての所望される変化を含むコード核酸のライブラリーを生成するために使用され得、次いで、機能を保持するＶｉｔａｘｉｎポリペプチドについて、そのライブラリーを発現およびスクリーニングし得る。このような方法としては、例えば、コドン塩基の変異誘発、ランダムオリゴヌクレオチド合成、および部分縮重オリゴヌクレオチド合成が挙げられる。
【００３４】
コドン塩基の変異誘発は、米国特許第５，２６４，５６３号および同第５，５２３，３８８号の主題であり、そして上記の手順に有利である。なぜなら、これは、オリゴヌクレオチド内の任意のおよび全ての特定のコドン位置で、本質的に任意のおよび全ての所望される頻度のコードされるアミノ酸残基の生成を可能にするからである。このような所望の頻度は、例えば、２０個の全てのアミノ酸またはその特定のサブセットの真にランダムな組み込み、ならびに他の組み込まれたアミノ酸残基と比較して、より高いまたはより低い頻度の偏りを有する残基を組み込むための、所定の偏りの１以上の特定のアミノ酸の組み込みを含む。ランダムオリゴヌクレオチド合成および部分縮重オリゴヌクレオチド合成は、機能的に等価なアミノ酸変化を生成およびスクリーニングするために同様に使用され得る。しかし、遺伝コードの縮重に起因して、このような方法は、所望のアミノ酸位置で重複性を組み込む。ランダムオリゴヌクレオチド合成は、コドン内の各ヌクレオチド位置での４つ全てのヌクレオチドのカップリングであり、一方、部分縮重オリゴヌクレオチド合成は、最初の２つのヌクレオチド位置での４つ全てのヌクレオチド配列の等しい部分と、例えば、第３の位置での２つのヌクレオチドの等しい部分とのカップリングである。両方のこれらの後者の合成方法は、例えば、Ｃｗｉｒｌａら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：６３７８−６３８２、（１９９０）およびＤｅｖｌｉｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：４０４−４０６、（１９９０）に記載されて見い出され得る。
【００３５】
変化されるべきアミノ酸の同定は、抗体の構造および機能に関して利用可能な現在の情報、ならびにＣＤＲ移植手順の方法を含む利用可能な現在の情報を使用して、当業者によって達成され得る。例えば、ＣＤＲは、Ｋａｂａｔら、前出、Ｃｈｏｔｈｉａら、前出および／またはＭａｃＣａｌｌｕｍら、前出に特定される任意または全ての基準によってドナー抗体内で同定され得、そしてこれらのＣＤＲ配列の外側にある任意または全ての非同一アミノ酸残基が、機能的に等価なアミノ酸に変更され得る。当該分野で公知の上記の方法を使用して、任意または全ての非同一アミノ酸が、単独で、または異なる位置のアミノ酸と組み合わせて変化され、所望の位置の各々で所望の数のアミノ酸置換を組み込み得る。次いで、この所望の置換されたアミノ酸を含むＶｉｔａｘｉｎポリペプチドを産生し、そして非置換Ｖｉｔａｘｉｎポリペプチドと比較した、機能の保持または増強についてスクリーニングする。この置換されたＶｉｔａｘｉｎポリペプチドの産生は、例えば、当業者に公知の方法を使用する組換え発現によって達成され得る。非置換Ｖｉｔａｘｉｎと比較して機能の保持または増強を示すＶｉｔａｘｉｎポリペプチドは、１以上のアミノ酸の機能的置換を生じるコードヌクレオチド配列のわずかな改変を含むと考えられる。
【００３６】
アミノ酸の機能的置換は、ヒトフレームワーク配列を有する移植抗体を産生する場合に有利である。なぜなら、これは、どのアミノ酸残基がドナーから結合機能を首尾よく転移するために置換に考慮すべきかを評価および同定するために必要とされる、構造情報または煩わしい手順を必要とせずに、等価なアミノ酸残基の迅速な同定を可能にするからである。さらに、これは、置換のために同定されたアミノ酸を変更および試験するための、実際の段階的手順を排除する。本質的に、上記の機能的置換アプローチを使用して、ドナーとヒトフレームワークとの間の全ての非同一アミノ酸残基を同定し、そして非同一な位置の各々で、任意または全ての他の可能なアミノ酸残基で置換し、全ての可能なまたは全ての所望される順列および組み合わせを含む置換ポリペプチドの集団を生成し得る。次いで、この置換ポリペプチドの集団を、機能を保持する置換ポリペプチドについてスクリーニングし得る。上記のコドン塩基の変異誘発手順を使用して、置換アミノ酸残基のライブラリーの生成および機能的に置換された残基のスクリーニングが、移植治療抗体の迅速な産生および抗体親和性の迅速な変更に使用されている。このような手順は、例えば、それぞれ、Ｒｏｓｏｋら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２２６１１−２２６１８（１９９６）およびＧｌａｓｅｒら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：３９０３−３９１３（１９９２）に例示される。
【００３７】
フレームワーク残基に加えて、１以上のＣＤＲにおけるアミノ酸を機能的に置換して、増強された活性を有する改変されたＬＭ６０９移植抗体の同定を可能にし得る。フレームワーク残基についての上記の方法を使用して、アミノ酸置換を、ＬＭ６０９移植抗体における１以上のＣＤＲに、同様に導入し得る。この改変されたＬＭ６０９移植抗体を結合活性について試験して、α_Ｖβ_３結合活性が維持されているか否かを決定し得る。この改変されたＬＭ６０９移植抗体をさらに試験して、活性が増強されたか否かを決定し得る。従って、１以上のＣＤＲにおけるアミノ酸残基の機能的置換は、増強された活性のような所望の特性を有する、増強されたＬＭ６０９移植抗体の同定を可能にする。
【００３８】
改変されたＬＭ６０９移植抗体を生成し、そして増強された活性を有する抗体を選択するために、いくつかのアプローチが、ＣＤＲ内の変異させる残基数ならびにＬＭ６０９移植抗体内の改変するＣＤＲの数の選択において使用され得る。ＣＤＲの変異誘発についての選択基準の選択は、その増強される抗体の必要性および所望される適用に依存する。例えば、単一のＣＤＲ内の１つまたは少数のアミノ酸位置が、その位置で選択されたアミノ酸を含むように改変され得る。あるいは、標的化されたアミノ酸位置が、その位置で全ての可能なアミノ酸を含むように改変され得る。次いで、改変された抗体のこの得られた集団を、増強された活性についてスクリーニングし得る。
【００３９】
ＣＤＲ内の全てのアミノ酸位置が、全ての可能なアミノ酸を含むように変異されているか、または複数のＣＤＲ内のアミノ酸位置が、改変体アミノ酸残基を含むように改変されている、改変されたＬＭ６０９移植抗体集団の構築もまたなされ得る。このようにして、２〜１０^７を超える範囲の固有のメンバーの集団が、構築され得る。集団がより大きいほど、その集団内により多数の異なる抗体が存在するので、増強されたＬＭ６０９移植抗体の選択はより効率的である。しかし、改変されたＬＭ６０９移植抗体の小さい集団は、増強されたＬＭ６０９移植抗体の選択のために、作製され得そして首尾よく使用され得る。改変されたＬＭ６０９移植抗体の集団のサイズは、特定の適用の必要性に依存し、そして当業者によって決定され得る。
【００４０】
改変されたＬＭ６０９移植抗体の生成は、ＬＭ６０９移植抗体の１以上のＣＤＲへのアミノ酸置換の導入によって達成され得る。例えば、単一アミノ酸置換が、ＣＤＲ中の所定のアミノ酸を、任意または全てのアミノ酸に変化させることによって、そのＣＤＲに系統的に導入され得る。アミノ酸置換もまた、そのＣＤＲの１以上においてまたはそのＣＤＲの全てにおいて全てのアミノ酸位置に導入され得て、改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体の集団が作製される。単一アミノ酸置換を有する、改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体のこの集団はスクリーニングされて、α_Ｖβ_３結合活性を維持する改変体が同定され得る。α_Ｖβ_３結合活性を有する改変体はさらに特徴付けされて、増強された活性を有する改変体が同定され得る。単一アミノ酸置換を導入し、そしてα_Ｖβ_３に対する高い親和性結合を有する増強されたＬＭ６０９移植抗体についてスクリーニングされるＬＭ６０９移植抗体改変体の集団を作製する、このような系統的なアプローチは、実施例ＶＩに記載される。
【００４１】
改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体の集団を作製することに加えて、特定のＣＤＲまたはＣＤＲにおける特定のアミノ酸は、１以上のアミノ酸置換を導入するように選択され得る。例えば、配列相同性または構造モデルを用いて、アミノ酸置換を導入する特定のアミノ酸位置が同定され得る。この例では、１または数個の改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体しか作製せず、そしてα_Ｖβ_３に対する結合活性についてスクリーニングしていない。当業者は、増強された活性を有する増強されたＬＭ６０９移植抗体をスクリーニングおよび同定するために、改変ＬＭ６０９移植抗体改変体の大きな集団を作製することが所望されるのか、または制限された数の改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体を作製することが所望されるかがわかるかまたはこれを決定し得る。
【００４２】
ＣＤＲに単一アミノ酸置換を有する改変されたＬＭ６０９移植抗体の集団を作製し、そして増強された活性についてスクリーニングすることによって増強されたＬＭ６０９移植抗体を同定することに加えて、増強されたＬＭ６０９移植抗体改変体は、各々が独立して増強された活性をもたらすことが公知の２以上の変異を単一の抗体において組み合わせることによっても作製され得る。２より多くの変異が存在する場合、活性をさらに増強する変異の組み合わせの効率的な同定方法は、全ての可能な組み合わせおよび交換（ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎ）を構築し、次いでこれらについて増強された活性を選択することである。例えば、１以上のＣＤＲにおける２つの単一の変異は組み合わされて、２つのＣＤＲ変異を有する新たな改変されたＬＭ６０９移植抗体を作製し得、そしてα_Ｖβ_３結合活性が単一変異体のα_Ｖβ_３結合活性を超えて上昇したか否かをスクリーニングして決定し得る。同様に、３つの変異は組合され得、そして得られる改変ＬＭ６０９移植抗体は、増強された結合活性についてスクリーニングされ得る。ＣＤＲ変異を組み合わせるこのようなアプローチを用いて、改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体の新たな集団は、増強された活性をもたらす単一ＣＤＲ変異の全ての組み合わせを新たな改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体に組み込み、そしてスクリーニングして最適に増強されたＬＭ６０９移植抗体を得ることによって作製され得る。
【００４３】
増強されたＬＭ６０９移植抗体を同定する反復的段階的なアプローチは、多数の改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体を作製しそしてスクリーニングする必要性を伴わずに最適な結合活性を有する抗体の同定を可能にする点で有利である。例えば、単一変異体が同定され、そして新たな集団のＬＭ６０９移植抗体改変体へと組み合わされた、実施例ＶＩおよびＶＩＩに記載されるアプローチを用いて、より高い親和性を有する増強されたＬＭ６０９移植抗体が、２５９２個の独特の改変体を作製することによって同定された。対照的に、単一の８アミノ酸残基ＣＤＲの完全なランダム化は、１０^１０個を超える独特の改変体を必要とする。それゆえ、このような反復的アプローチは、比較的少数の独特の改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体を作製し、スクリーニングし、そして高親和性結合を示す増強されたＬＭ６０９移植抗体改変体を同定することによって、高親和性結合のような増強された活性を有する増強されたＬＭ６０９移植抗体の同定を可能にする。
【００４４】
増強されたＬＭ６０９改変体を同定する反復的段階的なアプローチはまた、さらなる工程を用いて行われ得る。単一アミノ酸変異の全ての組み合わせを作製する代わりに、単一アミノ酸変異が、二重変異体の全ての組み合わせを作製するように対にして組み合わされ、そして活性についてスクリーニングされ得る。増強された活性を有する二重変異体は、任意のまたは全ての単一変異体と組み合わされて、増強された結合活性についてスクリーニングされる三重変異体が作製され得る。改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体を作製する反復的回の各々は、さらなる単一変異を組み込み得、そして得られる改変されたＬＭ６０９移植抗体は、増強された活性についてスクリーニングされ得る。従って、ＬＭ６０９移植抗体改変体の段階的作製を用いて、最適化されたＬＭ６０９移植抗体を同定し得る。さらに、このような反復的アプローチはまた、ある範囲の異なる、増強された結合活性を示す、多数の増強された抗体の同定を可能にする。
【００４５】
最適化されたＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９様移植抗体またはα_Ｖβ_３特異的移植抗体とも呼ばれ得、そして認識され得る。なぜなら、この抗体またはその機能的フラグメントは、ＬＭ６０９の機能的特徴を保持するからである。例えば、増強されたＬＭ６０９移植抗体改変体（これは、単一アミノ酸置換を有し、そして増強された活性を有する）が同定され得、そして特定のアミノ酸置換と相関付けされ得る。これらのアミノ酸置換を組み合わせて、活性について試験される、新たな改変されたＬＭ６０９移植抗体を作製し得る。有利なＣＤＲアミノ酸置換のこのような組み合わせは、複数のＣＤＲが少なくとも１つのアミノ酸置換を有するかまたは単一のＣＤＲが複数のアミノ酸置換を有する、最適化されたＬＭ６０９移植抗体をもたらし得、ここで、改変されたＬＭ６０９移植抗体は増強された活性を有する。
【００４６】
増強されたＬＭ６０９移植抗体（特に、ＣＤＲにおけるアミノ酸残基の機能的置換によって最適化されたＬＭ６０９移植抗体）は、上昇した親和性のような、所望の増強された特性を有する。例えば、上昇した親和性を有する、最適化されたＬＭ６０９移植抗体は、アミノ酸の機能的置換を導入するために用いられた親の抗体よりも高い親和性を有する。より高い親和性は、類似の構造を有する参照抗体に対して決定される。例えば、最適化ＬＭ６０９移植抗体が、２つの重鎖および２つの軽鎖を含むインタクトな抗体である場合、より高い親和性が、インタクトな親のＬＭ６０９移植抗体に対して決定される。同様に、最適化されたＬＭ６０９移植抗体がＦａｂである場合、より高い親和性が、親のＬＭ６０９移植抗体のＦａｂに対して決定される。
【００４７】
複数の最適化工程を通して高親和性ＬＭ６０９移植抗体を得ることを進める必要はないとはいえ、一般に、親和性における上昇は、ＣＤＲ内およびＣＤＲ間の改変の数と、ならびに最適化工程の数と相関し得る。それゆえ、ＬＭ６０９移植抗体は、種々の範囲を示す。例えば、増強された親和性を有するＬＭ６０９移植抗体は、参照抗体よりも約２倍まで高い親和性、またはより高い親和性（一般に、約２〜５倍を超えて高い親和性（例えば、約４〜５倍を超えて高い親和性かまたは５〜１０倍を超えて高い親和性））を有する。特に、増強された親和性を有するＬＭ６０９移植抗体は、参照抗体よりも約１０〜５０倍を超えて高い親和性、約５０倍を超えて高い親和性または約１００倍を超えて高い親和性を有する。
【００４８】
上記のように、ＣＤＲアミノ酸残基の機能的置換を用いて、親のＬＭ６０９移植抗体よりも高い親和性を示すＬＭ６０９移植抗体を同定し得る。上記または下記で考察した、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体をコードするヌクレオチド配列に対して、重要でない改変を導入するための方法が同様に使用されて、改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体のライブラリーを作製し得る。このような方法としては、コドン塩基の変異誘発、ランダムオリゴヌクレオチド合成および部分的縮重オリゴヌクレオチド合成のような方法が挙げられる。例えば、コドン塩基の変異誘発を用いて、単一アミノ酸置換を有する改変されたＬＭ０９移植抗体改変体ライブラリーなどを作製している（実施例ＶＩを参照のこと）。
【００４９】
改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体のライブラリーを作製した後に、この改変体は、発現され得、そしてα_Ｖβ_３に対する結合活性についてスクリーニングされ得る。抗体−抗原相互作用を決定することに関する、当業者に周知の方法が、α_Ｖβ_３に対する結合活性を示す、改変されたＬＭ６０９移植抗体についてスクリーニングするために使用される（ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、前出）。例えば、ＥＬＩＳＡ法を用いて、改変されたＬＭ６０９移植抗体改変体のライブラリーがスクリーングされて、α_Ｖβ_３結合活性を維持する改変体が同定されている（実施例ＶＩを参照のこと）。α_Ｖβ_３結合活性を保持する、改変されたＬＭ６０９移植抗体のみが、さらなる特徴付けのために考慮される。
【００５０】
α_Ｖβ_３結合活性を有する、改変されたＬＭ６０９移植抗体は、さらに特徴付けされて、どの改変ＬＭ６０９移植抗体が増強された活性を有するかが決定され得る。増強された活性を評価するために用いられるアッセイの型は、所望される特定の特徴に依存する。例えば、改変された結合活性が所望される場合、結合親和性の決定を可能にする結合アッセイが用いられる。このようなアッセイとしては、実施例ＶＩに記載されるように、結合アッセイ、競合結合アッセイおよび表面プラスモン共鳴が挙げられる。
【００５１】
ＬＭ６０９移植抗体のＣＤＲへの単一アミノ酸置換の導入を用いて、改変されたＬＭ６０９移植抗体のライブラリーが作製され得、そしてα_Ｖβ_３に対する結合活性についてスクリーニングされ得る。次いで、α_Ｖβ_３に対する結合活性を示す、改変されたＬＭ６０９移植抗体は、さらに特徴付けられて、増強された活性（例えば、より高い結合親和性）を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体が同定され得る。例えば、このようなアプローチを用いて、単一アミノ酸置換を有する多数の増強されたＬＭ６０９移植抗体が、図１ａ（配列番号２）に示される重鎖可変領域および図７（配列番号３２）に示される軽鎖可変領域を用いて作製され、そして親のＬＭ６０９移植抗体に対して２〜１３倍改善された親和性を示すＬＭ６０９移植抗体が同定された（実施例ＶＩを参照のこと）。
【００５２】
１つのアミノ酸置換を有する増大したＬＭ６０９移植抗体の同定後、アミノ酸変異を、さらに活性を増強するために組み合わせ得る。ＣＤＲへ１つのアミノ酸置換を導入するための上記で議論した方法を同様に適用して、アミノ酸置換を組み合わせ得る。例えば、α_ｖβ_３結合親和性の増加をもたらすアミノ酸変異の組み合わせライブラリーを、変性オリゴヌクレオチドおよび実施例ＶＩＩに記載されるような２部位ハイブリダイゼーション変異誘発を使用して作製した。複数のＣＤＲアミノ酸置換を含む増大したＬＭ６０９移植抗体を、図１ａに示される重鎖可変領域（配列番号２）および図７に示される軽鎖可変領域（配列番号３２）を使用して作製し、そして親ＬＭ６０９移植抗体よりも２０倍から９０倍を超えて高い親和性を有するＬＭ６０９移植抗体を同定した。
【００５３】
ＣＤＲアミノ酸置換を組み合わせて、増大したかまたは最適化されたＬＭ６０９移植抗体を作製することに加えて、ＣＤＲアミノ酸置換をまた、ＬＭ６０９移植抗体に所望の性質を与えるフレームワーク変異と組み合わせ得る。従って、ＣＤＲまたは活性を増大するフレームワーク領域における変異を組み合わせて、ＬＭ６０９移植抗体をさらに最適化し得る。
【００５４】
本発明はさらに、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖および軽鎖をコードする核酸のフラグメントを提供し、ここで、このようなフラグメントは、実質的に、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖または軽鎖のポリペプチドの可変領域と同じヌクレオチドまたはアミノ酸配列からなる。Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖ポリペプチドの可変領域は、本質的に、図１Ａのヌクレオチド１〜３５１およびアミノ酸残基Ｇｌｎ１〜Ｓｅｒ１１７（それぞれ、配列番号１および２）からなる。Ｖｉｔａｘｉｎ軽鎖ポリペプチドの可変領域は、本質的に、図１Ｂのヌクレオチド１〜３２１およびアミノ酸残基Ｇｌｕ１〜Ｌｙｓ１０７（それぞれ、配列番号３および４）からなる。このような可変領域をコードする核酸の末端は、意図された目的および機能が同じままである限りは重大ではない。
【００５５】
可変領域の核酸フラグメントに対して付加的なフラグメントが、同様に提供される。このようなフラグメントは、例えば、実質的に、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖または軽鎖ポリペプチドのＣＤＲと同じヌクレオチド配列からなる核酸を含む。Ｖｉｔａｘｉｎ ＣＤＲに対応する配列は、例えば、Ｋａｂａｔら、前出、および／またはＣｈｏｔｈｉａら、前出、ならびにＭａｃＣａｌｌｕｍら、前出によって規定されるような領域を含む。上記の定義の各々についてのＶｉｔａｘｉｎ ＣＤＲフラグメントは、以下の表２に示されるヌクレオチドに対応する。このヌクレオチド配列の番号付けは、図１Ａおよび１Ｂに示される一次配列（配列番号１および３）に由来し、そして表１に以前に示された定義に従う。
【００５６】
（表２：Ｖｉｔａｘｉｎ ＣＤＲヌクレオチド残基）
【００５７】
【表２】

同様に、上記の定義の各々についてのＶｉｔａｘｉｎ ＣＤＲフラグメントは、以下の表３に示されるアミノ酸残基に対応する。このアミノ酸残基の番号は、図１Ａおよび１Ｂに示される一次配列（配列番号２および４）に由来し、そして表１に以前に示された定義に従う。
【００５８】
（表３：Ｖｉｔａｘｉｎ ＣＤＲアミノ酸残基）
【００５９】
【表３】

従って、本発明はまた、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖または軽鎖ポリペプチドのＣＤＲと実質的に同じアミノ酸配列をコードする核酸フラグメントを提供する。
【００６０】
Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖および軽鎖ポリペプチドをコードする核酸ならびにそのフラグメントは、種々の診断および治療目的に有用である。例えば、Ｖｉｔａｘｉｎ核酸を使用して、インテグリンα_ｖβ_３に対する結合特異性および阻害活性を有するＶｉｔａｘｉｎ抗体およびその機能的フラグメントを産生し得る。この抗体およびその機能的フラグメントは、α_ｖβ_３媒介性疾患の診断または治療的処置のために使用され得る。Ｖｉｔａｘｉｎおよびその機能的フラグメントを使用して、例えば、α_ｖβ_３媒介性疾患の進行に必要なα_ｖβ_３の結合活性または他の機能的活性を阻害し得る。α_ｖβ_３媒介性疾患の進行に必要な他の機能的活性としては、例えば、α_ｖβ_３の活性化、α_ｖβ_３媒介性シグナル伝達およびアポトーシスのα_ｖβ_３媒介性妨害が挙げられる。しかし都合良く、Ｖｉｔａｘｉｎは、非マウスのフレームワークアミノ酸配列を含み、そしてそれ自体は、宿主の免疫応答の産生に関して、抗原性がより低い。本発明のＶｉｔａｘｉｎ核酸をまた使用して、コードされた重鎖および軽鎖ポリペプチドの機能的等価物をモデリングし得る。
【００６１】
従って、本発明は、Ｖｉｔａｘｉｎ重鎖およびＶｉｔａｘｉｎ軽鎖のポリペプチドまたはその機能的フラグメントを提供する。このＶｉｔａｘｉｎ重鎖ポリペプチドは、図１Ａに示されるアミノ酸配列（配列番号２）またはその機能的フラグメントと実質的に同じアミノ酸配列を示し、一方、Ｖｉｔａｘｉｎ軽鎖ポリペプチドは、図１Ｂに示されるアミノ酸配列（配列番号４）またはその機能的フラグメントと実質的に同じアミノ酸配列を示す。また、Ｖｉｔａｘｉｎ抗体またはその機能的フラグメントが提供される。この抗体は、上記の重鎖および軽鎖ポリペプチド、またはその機能的フラグメントから作製され、そしてα_ｖβ_３に対する選択的な結合親和性を示す。
【００６２】
本発明は、ＬＭ６０９移植抗体についての重鎖ポリペプチドをコードする核酸を提供する。また、ＬＭ６０９移植抗体についての軽鎖ポリペプチドをコードする核酸が提供される。この核酸は、図１Ａに示されるヌクレオチド配列（配列番号１）と実質的に同じ重鎖可変領域のヌクレオチド配列、および図７に示されるヌクレオチド配列（配列番号３１）と実質的に同じ軽鎖可変領域のヌクレオチド配列、またはそれらのフラグメントからなる。
【００６３】
ＬＭ６０９移植抗体（その機能的フラグメントを含む）は、非マウス抗体であり、この非マウス抗体は、ＬＭ６０９と実質的に同じ結合活性、結合特異性および阻害活性を示す。本明細書中で記載されるＬＭ６０９移植抗体のＦｖフラグメントは、ヒト重鎖および軽鎖可変領域のポリペプチド内のＫａｂａｔらによって規定されるＣＤＲ（今後、「Ｋａｂａｔ ＣＤＲ」という）を、ＬＭ６０９に由来するＫａｂａｔ ＣＤＲで機能的に置換することによって産生される。Ｋａｂａｔ ＣＤＲの機能的置換は、以前に記載されたＣＤＲ移植によって行われ、そしてこれは、米国特許第５，２２５，５３９号、前出の主題である。Ｋａｂａｔ ＣＤＲの外のアミノ酸残基の置換をさらに行い、このようなアミノ酸置換がその特定の位置でドナーアミノ酸に対応しない限り、有利な結合性質を維持するか、または増大し得る。このような置換は、Ｋａｂａｔ ＣＤＲの外の抗体にいかなるマウス配列の特徴をも付与することなく、結合性質の調節を可能にする。このような抗体の産生は、ＬＭ６０９移植抗体を参照して本明細書中に記載されるが、このようなＫａｂａｔ ＣＤＲの外の非ドナーアミノ酸の置換は、本質的に任意の移植抗体の産生に利用され得る。ＬＭ６０９移植抗体の産生は、以下の実施例Ｖにさらに記載される。
【００６４】
ＬＭ６０９移植抗体の重鎖および軽鎖可変領域のヌクレオチド配列は、それぞれ、図１Ａおよび７に示される。これらの配列は、実質的に、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖および軽鎖可変領域のポリペプチドをコードする配列に対応する。これらの核酸は、ＬＭ６０９移植抗体をコードする配列のセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を含むことが意図される。一本鎖および二本鎖の核酸、ならびに例えばイントロン、５’および３’非翻訳領域、ならびに遺伝子の調節配列のような核酸の非コード部分が同様に含まれる。
【００６５】
ＬＭ６０９移植抗体についてのヌクレオチドおよびアミノ酸残基の境界は、以前に記載されたＶｉｔａｘｉｎについての境界と等しい。例えば、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖可変領域のポリペプチドは、約３５１ヌクレオチド長の核酸によってコードされ、この核酸は、可変領域のアミノ末端Ｇｌｎ１残基で開始し、Ｓｅｒ１１７にわたる（図１Ａ、それぞれ、配列番号１および２）。ＬＭ６０９移植抗体の軽鎖可変領域のポリペプチドは、約３２１ヌクレオチド長の核酸によってコードされ、この核酸は、可変領域のアミノ末端Ｇｌｕ１残基で開始し、Ｌｙｓ１０７にわたる（図７、それぞれ、配列番号３１および３２）。Ｖｉｔａｘｉｎのように、これらのヌクレオチド配列のわずかな改変は、重鎖および軽鎖の可変領域をコードする核酸ならびにその機能的フラグメントとして含まれるように意図される。
【００６６】
従って、本発明はまた、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖をコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図１Ａに示されるアミノ酸配列（配列番号２）と実質的に同じ重鎖可変領域のアミノ酸配列またはそのフラグメントをコードする。同様に、本発明はまた、ＬＭ６０９移植抗体の軽鎖をコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図７に示されるアミノ酸配列（配列番号３２）と実質的に同じ軽鎖の可変領域のアミノ酸配列またはそのフラグメントをコードする。
【００６７】
アミノ酸の保存的置換に加えて、アミノ酸の機能的置換を可能にするヌクレオチド配列をコードするＬＭ６０９移植抗体の少しの改変もまた、この用語の定義に含まれることが意図される。変化されるアミノ酸の同定は、当業者によって、抗体の構造および機能に関して現在利用可能な情報、ならびにＣＤＲ移植手順についての方法を含む利用可能な現在の情報を使用して、達成され得る。ＬＭ６０９移植抗体ヌクレオチド配列によりコードされる、機能的に等価なアミノ酸の置換は、慣用的であり、そして当業者に公知の方法によって達成され得る。以前に記載されたように、このような方法としては、例えば、コドンに基づく変異誘発、ランダムオリゴヌクレオチド合成および部分的な変性オリゴヌクレオチド合成が挙げられ、そして移植抗体を生成する場合に有用である。なぜなら、これらは、構造的情報の必要なしに、等価なアミノ酸残基の迅速な同定を可能にするからである。
【００６８】
本発明は、ＬＭ６０９移植抗体の、核酸をコードする重鎖および軽鎖のフラグメントをさらに提供し、ここで、このようなフラグメントは、実質的に、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドの可変領域と同じヌクレオチド配列またはアミノ酸配列からなる。Ｖｉｔａｘｉｎの場合と同様に、このような可変領域をコードする核酸の末端は、意図される目的および機能が同じままである限り、重要ではない。
【００６９】
可変領域核酸フラグメントに追加のフラグメントが同様に提供され、そして例えば、ＣＤＲまたはＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドと同じヌクレオチド配列から実質的になる核酸が挙げられる。Ｖｉｔａｘｉｎの場合と同様に、ＬＭ６０９移植抗体ＣＤＲに対応する配列としては、例えば、Ｋａｂａｔら、前出、Ｃｈｏｔｈｉａら、前出により定義される領域、ならびにＭａｃＣａｌｌｕｍら、前出により定義される領域が挙げられる。ＬＭ６０９移植抗体ＣＤＲ領域は、Ｖｉｔａｘｉｎに関して以前に記載された領域と類似する。さらに、このような領域は周知であり、そして当業者によって、ＬＭ６０９配列および本明細書中に提供される教示を考慮して、決定され得る。従って、本発明はまた、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドのＣＤＲと実質的に同じアミノ酸配列をコードする核酸フラグメントを提供する。
【００７０】
Ｖｉｔａｘｉｎの場合と同様に、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチド、ならびにこれらのフラグメントをコードする核酸は、種々の診断目的および治療目的のために、有用である。例えば、核酸をコードする、ＬＭ６０９移植抗体を使用して、インテグリンα_ｖβ_３に対する結合特異性および阻害活性を有する、組換え抗体およびその機能的フラグメントを生成し得る。この抗体およびその機能的フラグメントは、α_ｖβ_３により媒介される疾患の診断または治療的処置のために使用され得る。このような疾患および抗α_ｖβ_３抗体の使用の方法は、Ｖｉｔａｘｉｎに関する参考文献に以前に記載されており、そして本明細書中に記載のＬＭ６０９移植抗体と等しく適用可能である。
【００７１】
従って、本発明は、ＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドおよびＶｉｔａｘｉｎ軽鎖ポリペプチドまたはその機能的フラグメントを提供する。ＬＭ６０９移植抗体の重鎖ポリペプチドは、図１Ａに示すアミノ酸配列（配列番号２）またはその機能的フラグメントと実質的に同じアミノ酸配列を示し、一方で、ＬＭ６０９移植抗体の軽鎖ポリペプチドは、図７に示すアミノ酸配列（配列番号３２）と実質的に同じアミノ酸配列を示す。また、ＬＭ６０９移植抗体またはその機能的フラグメントが提供される。この抗体は、上記重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチド、またはその機能的フラグメントから生成され、そしてα_ｖβ_３に対する選択的な結合親和性を示す。
【００７２】
本発明は、α_ｖβ_３に対する選択的な結合親和性を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する。この増強されたＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９を移植された重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９を移植された軽鎖可変領域ポリペプチドの１つ以上のＣＤＲにおける、少なくとも１つのアミノ酸置換を含み、ここで、この増強されたＬＭ６０９移植抗体の、α_ｖβ_３結合親和性は、維持されるかまたは増強される。
【００７３】
増強されたＬＭ６０９移植抗体を同定するために、改変されたＬＭ６０９移植抗体のライブラリーを、上記および実施例ＶＩに記載されるように生成した。最初に、ＬＭ６０９ ＣＤＲを同定し、そして選択して、単一のアミノ酸置換を導入した。Ｋａｂａｔら、前出の番号付けシステムを利用して、変異誘発のために選択したＣＤＲ残基は、以下であった：
【００７４】
【化１】

変異誘発のために選択されたＣＤＲ残基をコードするヌクレオチド配列は、以下であった：
【００７５】
【化２】

単一のアミノ酸置換を、ＬＭ６０９を移植した抗体のＣＤＲに導入して、改変されたＬＭ６０９移植抗体の集団を生成し得る。例えば、１つ以上のＣＤＲにおける全てのアミノ酸を、いずれかまたは全てのアミノ酸に変異させて、改変されたＬＭ６０９移植抗体の集団を生成し得、そしてこの集団を、α_ｖβ_３結合活性についてスクリーニングし得る。この集団は、ＣＤＲのアミノ酸を変異させることによって生成されるが、集団はまた、フレームワーク領域の残基またはＣＤＲとフレームワークとの両方において変化がなされる場合に、構築され得る。可変領域におけるこのような変異は、別個に、組み合わせて、または段階的に、なされ得る。従って、本発明はまた、アミノ酸置換がＣＤＲまたはフレームワーク領域においてである、増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する。
【００７６】
本発明は、さらに、増強された結合親和性を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する。増強された結合親和性を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体としては、単一のアミノ酸置換を有する以下のＣＤＲのうちの少なくとも１つを含む抗体が挙げられる：
【００７７】
【化３】

単一のアミノ酸置換を有するＣＤＲをコードするヌクレオチド配列は、以下であった：
【００７８】
【化４】

単一のアミノ酸置換を有するＣＤＲ、および親のＬＭ６０９移植抗体より高い親和性結合を有する、増強されたＬＭ６０９移植抗体もまた同定され得、ここで、対応するアミノ酸変異が組み合わせられて、新たな改変されたＬＭ６０９移植抗体を生じる。同定は、α_ｖβ_３結合活性についてスクリーニングすることにより、実施される。いくつかの組合せにおいて、ＬＭ６０９移植抗体は、２つ以上のアミノ酸置換を有する少なくとも１つのＣＤＲを含む。本発明は、複数のアミノ酸置換を含む、以下のＣＤＲのうちの少なくとも１つを含む、増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する：
【００７９】
【化５】

からなる群から選択される、Ｖ_Ｈ ＣＤＲ３。
【００８０】
複数のアミノ酸置換を有するＣＤＲＳをコードするヌクレオチド配列は、以下であった：
【００８１】
【化６】

本発明はまた、α_Ｖβ_３に対して選択的結合親和性を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供し、ここで、この増強されたＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９移植重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９移植軽鎖可変領域ポリペプチドの２つ以上のＣＤＲにおいて少なくとも一つのアミノ酸置換を含む。
【００８２】
ＬＭ６０９移植重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９移植軽鎖可変領域ポリペプチドの２つ以上のＣＤＲにおいて少なくとも一つのアミノ酸置換を含む増強されたＬＭ６０９移植抗体は、以下からなる群から選択されるＣＤＲの組み合わせを含むＬＭ６０９移植抗体を含み得る：Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５２；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５１；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５２；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号５９、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；ならびにＶ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０。
【００８３】
単一のアミノ酸置換を有する２つ以上のＣＤＲを含む増強されたＬＭ６０９移植抗体に加えて、本発明はまた、ＣＤＲの少なくとも一つが２つ以上のアミノ酸置換を有する増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する。
【００８４】
２つ以上のアミノ酸置換を有する少なくとも一つのＣＤＲを含む増強されたＬＭ６０９移植抗体は、以下からなる群から選択されるＣＤＲの組み合わせを含むＬＭ６０９移植抗体を含み得る：Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６４；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６５；ならびにＶ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６６。
【００８５】
本発明はさらに、α_Ｖβ_３に対して選択的結合親和性を示す、高親和性ＬＭ６０９移植抗体を提供する。高親和性ＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９移植重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９移植軽鎖可変領域ポリペプチドの１つ以上のＣＤＲにおいて少なくとも一つのアミノ酸置換を含み、ここで、高親和性ＬＭ６０９移植抗体のα_Ｖβ_３結合親和性が増強される。
【００８６】
高親和性抗体は、以下からなる群から選択されるＣＤＲの組み合わせを含む高親和性抗体を含み得る：Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５２；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５１；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５２；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号５９、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号５０；Ｖ_ＬＣＤＲ１配列番号５７、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号：４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６４；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６３；Ｖ_ＬＣＤＲ３配列番号６１およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６５；ならびにＶ_ＬＣＤＲ３配列番号６１、Ｖ_ＨＣＤＲ２配列番号４４およびＶ_ＨＣＤＲ３配列番号６６。
【００８７】
上記のように、増強されたＬＭ６０９抗体は、さらに、一つ以上のＣＤＲまたはフレームワーク残基にさらなる変異を導入することによって改変され得る。本明細書中で記載のように、増強されたＬＭ６０９移植抗体クローン６Ｈ６（表１０）は、さらに、一つ以上のＣＤＲに変異を導入することによって改変された（実施例ＶＩＩＩを参照のこと）。これらの６Ｈ６改変体は、α_Ｖβ_３に対して高い親和性結合を有することが見出され、タンパク質分解に対して耐性があった。
【００８８】
本発明はさらに、以下
【００８９】
【化７】

を含む増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する。本発明はまた、配列番号１０３、配列番号１０５、および配列番号１０９からなる群から選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子を提供する。
【００９０】
本発明はまた、以下を含む増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する：
【００９１】
【化８】

本発明はまた、以下を含む核酸分子を提供する：Ｖ_ＨＣＤＲ１をコードする配列番号３３として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ２をコードする配列番号１０１として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ３をコードする配列番号１０５として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ１をコードする配列番号１０７として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ２をコードする配列番号１１１として参照されるヌクレオチド配列；およびＶ_ＬＣＤＲ３をコードする配列番号８９として参照されるヌクレオチド配列。
【００９２】
本発明はさらに、以下を含む増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する：
【００９３】
【化９】

本発明はさらに、以下を含む核酸分子を提供する：Ｖ_ＨＣＤＲ１をコードする配列番号３３として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ２をコードする配列番号１０１として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ３をコードする配列番号１０５として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ１をコードする配列番号１０９として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ２をコードする配列番号１１１として参照されるヌクレオチド配列；およびＶ_ＬＣＤＲ３をコードする配列番号８９として参照されるヌクレオチド配列。
【００９４】
本発明はさらに、以下を含む増強されたＬＭ６０９移植抗体を提供する：
【００９５】
【化１０】

本発明はさらに、以下を含む核酸分子を提供する：Ｖ_ＨＣＤＲ１をコードする配列番号３３として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ２をコードする配列番号１０３として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＨＣＤＲ３をコードする配列番号１０５として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ１をコードする配列番号１０９として参照されるヌクレオチド配列；Ｖ_ＬＣＤＲ２をコードする配列番号１１１として参照されるヌクレオチド配列；およびＶ_ＬＣＤＲ３をコードする配列番号８９として参照されるヌクレオチド配列。
【００９６】
本発明はさらに、α_Ｖβ_３に対して選択的結合親和性を示す、増強されたＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸を提供する。この核酸によってコードされる増強されたＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９移植重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９移植軽鎖可変領域ポリペプチドの１つ以上のＣＤＲにおいて少なくとも一つのアミノ酸置換を含み、ここで、この増強されたＬＭ６０９移植抗体のα_Ｖβ_３結合親和性が維持されるかまたは増強される。
【００９７】
本発明はさらに、α_Ｖβ_３に対して選択的結合親和性を示す、高親和性ＬＭ６０９移植抗体をコードする核酸を提供する。この核酸によってコードされる高親和性ＬＭ６０９移植抗体は、ＬＭ６０９移植重鎖可変領域ポリペプチドまたはＬＭ６０９移植軽鎖可変領域ポリペプチドの１つ以上のＣＤＲにおいて少なくとも一つのアミノ酸置換を含み、ここで、この高親和性ＬＭ６０９移植抗体のα_Ｖβ_３結合親和性が増強される。
【００９８】
本発明は、モノクローナル抗体ＬＭ６０９の重鎖ポリペプチドをコードする核酸またはその画分フラグメントを提供する。また、モノクローナル抗体ＬＭ６０９の軽鎖ポリペプチドをコードする核酸またはその画分フラグメントが提供される。この核酸は、図２Ａおよび２Ｂ（配列番号５および７、それぞれ）に示される配列またはそのフラグメントと実質的に同じ重鎖可変領域ヌクレオチド配列または軽鎖可変領域ヌクレオチド配列からなる。
【００９９】
上記のように、モノクローナル抗体ＬＭ６０９は、インテグリンα_Ｖβ_３に対する結合活性を有することが当該分野で示されている。特異性は原則的に、基本的に任意の標的に対して生成され得るが、ＬＭ６０９は、インテグリンファミリーのうち単一のメンバーに対して実質的な特異性および阻害性活性を示すインテグリン阻害性抗体である。この場合、ＬＭ６０９は、β_３ファミリーのα_Ｖβ_３インテグリンに対して実質的な特異性および阻害性活性を示す。モノクローナル抗体ＬＭ６０９のアミノ酸配列またはヌクレオチド配列は、以前に一度も単離および特徴付けされていない。
【０１００】
ＬＭ６０９をコードする核酸の単離および特徴付けを、当業者に公知の技術によって実施し、この技術については、実施例において以下にさらに記載する。簡単には、ハイブリドーマＬＭ６０９由来のｃＤＮＡを、ＬＭ６０９をコードする核酸を単離するための供給源として産生し、そして使用した。単離を、第１に、重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドの各々のＮ末端アミノ酸配列を決定する工程、次いで、このｃＤＮＡ由来の抗体をコードする配列をＰＣＲによって増幅する工程によって実施した。５’プライマーを、新規に決定されたＮ末端アミノ酸配列に対応するように逆転写させ、一方で、３’プライマーは、抗体定常領域配列と実質的に類似する配列に対応した。この産物の増幅およびクローニングの結果として、ＬＭ６０９の重鎖および軽鎖をコードする核酸の単離物を得た。
【０１０１】
ＬＭ６０９の重鎖可変領域配列および軽鎖可変領域配列のヌクレオチド配列を、図２Ａおよび２Ｂにそれぞれ示す。これらの配列は、ＬＭ６０９の可変領域の重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドをコードする配列と実質的に対応している。Ｖｉｔａｘｉｎ核酸に関して、これらのＬＭ６０９核酸は、ＬＭ６０９をコードする配列のセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を含むことが意図される。単鎖核酸および二本鎖核酸もまた、同様に、例えば、イントロン、５’−非翻訳領域、３’非翻訳領域および遺伝子の調節配列のような核酸の非コード部分を含む。
【０１０２】
図２Ａに示されるように、ＬＭ６０９重鎖可変領域ポリペプチドは、約３５１のヌクレオチド長の核酸によってコードされ、この核酸は、可変領域のアミノ末端Ｇｌｕ１残基で開始し、Ａｌａ１１７までで終わる。マウスのＬＭ６０９抗体重鎖は、ＩｇＧ２ａ定常領域を有する。図２Ｂにおいて、約３２１のヌクレオチド長の核酸によってコードされるＬＭ６０９軽鎖可変領域ポリペプチドを示し、この核酸は、可変領域のアミノ末端Ａｓｐ１残基で開始し、Ｌｙｓ１０７までで終わる。この機能的抗体において、ＬＭ６０９は、κ軽鎖定常領域を有する。
【０１０３】
Ｖｉｔａｘｉｎ核酸に関して、これらのＬＭ６０９ヌクレオチド配列の小さい改変が、重鎖および軽鎖ＬＭ６０９をコードする核酸として含まれることが意図される。核酸またはコードされたポリペプチドが、記載されるこれらの機能のいくらかまたは全てを保持する限り、このような小さい改変は、ＬＭ６０９の重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドをコードする核酸内に含まれる。
【０１０４】
従って、本発明はまた、ＬＭ６０９重鎖または機能的フラグメントをコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図２Ａに示されるのとモノクローナル抗体ＬＭ６０９の実質的に同一の可変領域アミノ酸配列（配列番号６）またはそのフラグメントをコードする。同様に、本発明はまた、ＬＭ６０９軽鎖または機能的フラグメントをコードする核酸を提供し、ここで、この核酸は、図２Ｂに示されるようなモノクローナル抗体ＬＭ６０９の実質的に同一の可変領域アミノ酸配列（配列番号８）またはそのフラグメントをコードする。
【０１０５】
本発明は、ＬＭ６０９の重鎖および軽鎖をコードする核酸のフラグメントをさらに提供し、ここで、このようなフラグメントは、実質的に、ＬＭ６０９の重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドの可変領域と同一のヌクレオチドまたはアミノ酸配列からなる。このＬＭ６０９の重鎖ポリペプチドの可変領域は、本質的に、図２Ａのヌクレオチド１〜３５１およびアミノ酸残基Ｇｌｕ１〜Ａｌａ１１７（それぞれ、配列番号５および６）からなる。このＬＭ６０９軽鎖ポリペプチドの可変領域は、本質的に、ヌクレオチド１〜３２１および図２Ｂのアミノ酸残基Ａｓｐ１〜Ｌｙｓ１０７（それぞれ、配列番号７および８）からなる。この意図される目的および機能が同じままである限り、核酸をコードするこのような可変領域の末端は重要でない。このような意図される目的および機能としては、例えば、組換えポリペプチドの産生のための使用、または重鎖および軽鎖可変領域配列のためのハイブリダイゼーションプローブとしての使用が挙げられる。
【０１０６】
この可変領域核酸フラグメントのさらなるフラグメントが同様に提供される。このようなフラグメントは、例えば、ＬＭ６０９重鎖ポリペプチドまたは軽鎖ポリペプチドのＣＤＲと実質的に同一のヌクレオチド配列からなる核酸を含む。ＬＭ６０９ＣＤＲに対応する配列は、例えば、Ｋａｂａｔら（前出）によって定義される可変領域内の領域および／またはＣｈｏｔｈｉａら（前出）によって定義される可変領域内の領域、ならびにＭａｃＣａｌｌｕｍら（前出）によって定義される領域を含む。このヌクレオチドに対応する上記定義の各々に関するＬＭ６０９ＣＤＲフラグメントを、以下の表４に記載する。ヌクレオチド配列の番号付けは、図２Ａおよび２Ｂに示される一次配列（配列番号５および７）に由来し、そして表１において先に記載される定義に従う。
【０１０７】
（表４：ＬＭ６０９ ＣＤＲヌクレオチド残基）
【０１０８】
【表４】

同様に、アミノ酸残基に対応する上の定義の各々に関するＬＭ６０９ ＣＤＲフラグメントが、以下の表５に示される。このアミノ酸残基の番号付けは、図２Ａおよび２Ｂに示される一次配列（配列番号６および８）に由来し、そして表１において記載される定義に従う。
【０１０９】
（表５：ＬＭ６０９ ＣＤＲアミノ酸残基）
【０１１０】
【表５】

ＬＭ６０９重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドならびにそのフラグメントをコードする核酸は、種々の診断目的および治療目的に有用である。例えば、ＬＭ６０９核酸を使用して、インテグリンα_ｖβ_３に対して結合特異性および阻害活性を有する、組換えＬＭ６０９抗体およびその機能的フラグメントを産生し得る。この抗体およびその機能的フラグメントを使用して、α_ｖβ_３媒介疾患の感受性または存在を診断するために、サンプル中のα_ｖβ_３の存在または非存在を決定し得る。あるいは、組換えＬＭ６０９抗体およびその機能的フラグメントは、α_ｖβ_３媒介疾患または病理学的状態の治療的処置に使用され得る。Ｖｉｔａｘｉｎに関して、組換えＬＭ６０９およびその機能的フラグメントを使用して、α_ｖβ_３媒介疾患または病理学的状態の進行に必要である、α_ｖβ_３の結合特性または他の機能的活性を阻害し得る。
【０１１１】
本発明のＬＭ６０９核酸を、コードされた重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドの機能的等価物のモデルとするためも使用し得る。このような機能的等価物としては、例えば、コードされたポリペプチドまたはその機能的フラグメントの合成アナログまたは模倣物が挙げられ得る。特定の例は、ＬＭ６０９といくらかの結合活性または阻害活性を保持するか、あるいは実質的に同一の結合活性または阻害活性を保持するＬＭ６０９ ＣＤＲのペプチド模倣物を含む。さらに、ＬＭ６０９をコードする核酸を使用して、抗体ＬＭ６０９、その重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドならびにそれらの機能的フラグメントの、改変形態または誘導体をコードする、核酸を操作および産生し得る。上記のように、このような改変形態または誘導体としては、例えば、非マウス抗体、それらの対応する重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドならびにそれらの機能的フラグメントが挙げられ、これらは、ＬＭ６０９と実質的に同一の結合活性および阻害活性を示す。
【０１１２】
本発明はまた、α_ｖβ_３媒介疾患を処置する方法を提供する。この方法は、α_ｖβ_３との結合を可能にする条件下で、有効量のＶｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、その増強抗体、またはその機能的フラグメントを投与する工程からなる。また、α_ｖβ_３の機能を阻害する方法が提供される。この方法は、α_ｖβ_３との結合を可能にする条件下で、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、またはその機能的フラグメントとα_ｖβ_３を接触させる工程からなる。
【０１１３】
上記のように、ＶｉｔａｘｉｎおよびＬＭ６０９移植抗体は、親のＣＤＲドナー抗体ＬＭ６０９が示すような本質的に全ての結合特性を示す、モノクローナル抗体である。これらの特性は、例えば、インテグリンα_ｖβ_３に対する有意な結合特異性および親和性を含む。以下の実施例は、これらの結合特性を実証し、そしてα_ｖβ_３に対するこのような抗体の結合が、α_ｖβ_３リガンド結合および機能を阻害することをさらに示す。従って、ＶｉｔａｘｉｎおよびＬＭ６０９移植抗体は、α_ｖβ_３機能の阻害に関連する、非常に種々の診断的目的および治療的目的に有用である。
【０１１４】
インテグリンα_ｖβ_３は、多数の細胞接着および移動に関連する事象において機能する。このように、このインテグリン、その機能、またはこのインテグリンを発現する細胞の機能不全または調節不全は、非常に多数の疾患状態および病理学的状態に関連している。従って、阻害α_ｖβ_３結合または機能を使用して、このようなα_ｖβ_３媒体病理学的状態の重篤度を処置または減少させ得る。以下に、α_ｖβ_３によって媒介される数種の病理学的状態の例を記載する。なぜなら、少なくともこのインテグリンの阻害により、この状態の重篤度が減少するからである。これらの例は、例示であることを意図し、そして全てのα_ｖβ_３媒介疾患を含有しない。例えば、α_ｖβ_３結合、機能の調節不全またはこのインテグリンを発現する細胞の調節不全を示す、以下に記載の状態に加えて多数の病理学的状態が存在し、そして、ここで、この病理学的状態は、結合α_ｖβ_３を阻害することによって減少され得るか、または減少されることが見出される。この診断基準を示すこのような病理学的状態は、本明細書中で使用される用語の定義内に含まれることが意図される。
【０１１５】
新脈管形成、または新生血管形成は、新しい血管が組織内に予め存在する脈管から形成するプロセスである。以下でさらに記載するように、このプロセスは、α_ｖβ_３を発現する内皮細胞により媒介され、そして少なくともこのインテグリンの阻害は、新しい脈管の増殖を阻害する。新しい血管形成または組織新生血管形成を必要とする種々の病理学的状態が存在し、そしてこのプロセスの阻害は、病理学的状態を阻害する。このように、増殖または維持のために新生血管形成を必要とする病理学的状態は、α_ｖβ_３媒介疾患であると考えられる。従って、これらの疾患の処置の範囲、または重篤度の減少は、新生血管形成の阻害の範囲に依存する。これらのα_Ｖβ_３媒介疾患としては、例えば、炎症性障害（例えば、免疫および非免疫炎症）、慢性関節リウマチ、乾癬、不適合または不適当な、脈管の浸潤と関連する障害（例えば、糖尿病網膜症）、血管新生緑内障およびアテローム硬化性斑ならびに癌障害における毛細管増殖が挙げられる。このような癌障害としては、例えば、固体腫瘍、腫瘍転移、血管線維腫、水晶体後線維増殖症、血管腫、カポージ肉腫および腫瘍増殖を支持する新生血管形成を必要とする他の癌が挙げられ得る。脈管形成と考えられるさらなる疾患としては、乾癬および慢性関節リウマチならびに網膜疾患（例えば、黄斑変性）が挙げられる。α_Ｖβ_３媒介疾患である、新しい血管を必要とする疾患以外の疾患としては、例えば、再狭窄および骨粗しょう症が挙げられる。
【０１１６】
α_Ｖβ_３媒介疾患の処置は、有効量の、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、その増強された抗体、またはその抗体の機能的フラグメントを投与することにより行われ、その結果α_Ｖβ_３に結合し、その機能を阻害し得る。投与は、当該分野で公知の種々の方法を使用して、行われ得る。方法の選択は、特異的なα_Ｖβ_３媒介疾患に依存し、そして例えば、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、またはその抗体の機能的フラグメントの、細胞、組織、器官、および生体への、インビボ、インサイチュおよびエキソビボでの投与が挙げられ得る。さらに、このような抗体または機能的フラグメントが、α_Ｖβ_３媒介疾患を示す個体またはその疾患を示す危険のある個体に投与され得る。α_Ｖβ_３媒介疾患の明確な臨床診断は、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、またはその抗体の機能的フラグメントの投与を保証する。予防的適用は、α_Ｖβ_３媒介疾患メカニズムが、明白な臨床疾患の開始に先行する疾患において保証される。従って、疾患の家族性病歴を有する個体および信頼できる予後の指示薬により危険のあることが予測される個体は、それらの開始前にα_Ｖβ_３媒介メカニズムを阻止するために予防的に処置され得る。
【０１１７】
Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、その増強された抗体、またはその抗体の機能的フラグメントを、α_Ｖβ_３媒介疾患の有効的な処置またはα_Ｖβ_３媒介疾患の重篤度の減少のための種々の、処方および薬学的に受容可能な媒質（ｍｅｄｉａ）において投与され得る。このような処方および薬学的に受容可能な媒質は、当業者に周知である。さらに、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、またはその抗体の機能的フラグメントは、α_Ｖβ_３媒介疾患の処置または重篤度の減少を増強または補い得る他の組成物を用いて投与され得る。例えば、腫瘍誘導新生血管形成を阻害するための、ＶｉｔａｘｉｎまたはＬＭ６０９移植抗体の同時投与および腫瘍増殖を直接阻害するための化学療法薬物は、１つの特定の場合であり、ここで、他の組成物の投与は、α_Ｖβ_３媒介疾患の処置を増強するかまたは補い得る。
【０１１８】
Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体または機能的フラグメントは、従来の方法により投与され、投与においてこれは、病理を見てα_Ｖβ_３インテグリン結合の阻害を引き起こすのに十分である。阻害は、当該分野で公知の種々の方法（例えば、病理の部位のα_Ｖβ_３含有細胞の有病率についてのインサイチュ免疫組織化学）により測定され得、そして阻害は、例えば、α_Ｖβ_３媒介疾患の徴候の重篤度において観察される減少を含み得る。
【０１１９】
投与のインビボでの様式としては、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体またはその抗体の機能的フラグメントの、腹腔内、静脈内、および皮下投与が挙げられ得る。抗体療法のための投与量は、公知であるか、または当業者により慣用的に決定され得る。例えば、このような投与量が、代表的に投与され、その結果、約０．０１μｇ／ｍｌ〜約１００μｇ／ｍｌ、好ましくは約１〜５μｇ／ｍｌおよびより好ましくは約５μｇ／ｍｌの血漿濃度を達成する。体重当たりの量の点で見ると、これらの投与量は、代表的に約０．１〜３００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは約０．２〜２００ｍｇ／ｋｇおよびより好ましくは約０．５〜２０ｍｇ／ｋｇに対応する。この必要性に依存して、投与量は、処置の経過に対して、単回または複数回投与され得る。一般に、投与量は、年齢、状態、性別および被験体のα_Ｖβ_３媒介病理の範囲により変更し、そして、有害な副作用を引き起こすほど高くなるべきではない。さらに、投与量はまた、処置を増強するかまたは副作用の潜在的な発生を減少させるかのいずれかの処置の過程の間、医師により調節され得る。このような手順は公知であり、そして当業者により慣用的に行われる。
【０１２０】
Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９移植抗体、その増強された抗体およびその抗体の機能的フラグメントの、特異性および阻害活性は、多くのα_Ｖβ_３媒介疾患の治療的処置を可能にする。このような疾患としては、例えば、腫瘍増殖、および乾癬のような新生血管形成を必要とする病理状態ならびにα_Ｖβ_３により直接媒介される疾患（例えば、再狭窄および骨粗しょう症）が挙げられる。従って、本発明は、方法ならびにこのような疾患の処置のための組成物を含む、ＶｉｔａｘｉｎおよびＬＭ６０９移植抗体を提供する。
【０１２１】
本発明の種々の実施形態の活性に実質的に影響しない改変もまた、本明細書中に提供される本発明の定義内に含まれることが理解される。従って、以下の実施形態は、本発明を例示するが、限定しないことが意図される。
【０１２２】
（実施例Ｉ）
（ＬＭ６０９をコードする核酸の単離および特徴付け）
この実施例は、ＬＭ６０９をコードする核酸のクローニングおよび配列決定を示す。
【０１２３】
ＬＭ６０９は、ヒトビトロネクチンレセプター（インテグリンα_Ｖβ_３）に対して指向される。α_Ｖβ_３を、黒色腫、神経膠芽細胞腫、および哺乳動物癌腫において高度に上方制御し、そしてインビトロおよびインビボの両方において、Ｍ２１黒色腫細胞の増殖における役割を果たす。α_Ｖβ_３はまた、新脈管形成、再狭窄および皮膚の創傷における肉芽組織の形成において役割を果たす。ＬＭ６０９は、ビトロネクチンへのＭ２１細胞の接着を阻害し、ならびにインビトロでのＭ２１細胞の増殖を妨害することを示した。従って、ＬＭ６０９の移植は、臨床的に有用な治療剤を生じ得る。
【０１２４】
ＬＭ６０９可変領域のｃＤＮＡの合成：ｃＤＮＡの合成について、全ＲＮＡをＣｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉおよびＳａｃｃｈｉ（ＣｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉおよびＳａｃｃｈｉ，Ａｎａｌｙｔ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６２：１５６（１９８７））により記載される方法の改変を使用して、１０^８ ＬＭ６０９ハイブリドーマ細胞から調製した。ＬＭ６０９可変（Ｖ）領域遺伝子を、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）によりクローン化し、そしてｃＤＮＡを、ＢＲＬ Ｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔキットを使用して合成した。簡単には、５ｍｇの全細胞性ＲＮＡ、６５０ｎｇオリゴｄＴおよびＨ_２Ｏを、総量５５ｍｌにした。このサンプルを、７０℃まで、１０分間加熱し、そして氷上で冷却した。反応緩衝液を添加し、そして混合物を、１０ｍＭ ＤＴＴおよび１ｍＭ ｄＮＴＰにし、そして３７℃で２分間加熱した。５ｍｌの（１０００ユニット）逆転写酵素を添加し、そして３７℃で１時間インキュベートし、ついで氷上で冷却した。
【０１２５】
全てのオリゴヌクレオチドを、ＡＢＩ ３９４ ＤＮＡ合成機でβシアノエチルホスホラミダイト化学により合成した。ＰＣＲ増幅および慣用的な部位特異的変異誘発のために使用されるオリゴヌクレオチドを、オリゴヌクレオチド精製カートリッジを使用して精製した（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，ＣＡ）。正方向ＰＣＲプライマーを、精製されたＬＭ６０９抗体から生成されるＮ末端タンパク質配列データから設計した。この正方向プライマーは、各抗体の可変鎖における最初の６つのアミノ酸をコードする配列（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ Ｓｔａｔｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙにおいて配列決定されたタンパク質）を含んだ。軽鎖正方向ＰＣＲプライマー（９９７）の配列は、
５’−ＧＣＣ ＣＡＡ ＣＣＡ ＧＣＣ ＡＴＧ ＧＣＣ ＧＡＴ ＡＴＴ ＧＴＧ ＣＴＡ ＡＣＴ ＣＡＧ−３’（配列番号１９）であり、これに対して軽鎖逆方向ＰＣＲプライマー（７３４）は、５’−ＡＣ ＡＧＴ ＴＧＧ ＴＧＣ ＡＧＣ ＡＴＣ ＡＧＣ−３’（配列番号２０）を使用した。この逆方向プライマーは、マウス軽鎖κアミノ酸残基１０９〜１１５に対応する。重鎖正方向ＰＣＲプライマー（９９８）の配列は、５’−ＡＣＣ ＣＣＴ ＧＴＧ ＧＣＡ ＡＡＡ ＧＣＣ ＧＡＡ ＧＴＧ ＣＡＧ ＣＴＧ ＧＴＧ ＧＡＧ−３’（配列２１）であった。重鎖逆方向ＰＣＲプライマー（７３３）は、５’−ＧＡ ＴＧＧ ＧＧＧ ＴＧＴ ＣＧＴ ＴＴＴ ＧＧＣ−３’（配列番号２２）であった。ＰＣＲプライマーはまた、免疫発現ベクター内にある特異的な配列と相同の領域を含む。
【０１２６】
Ｖ_Ｌ鎖およびＶ_Ｈ鎖を、以下を含む２つの別個の５０ｍｌ反応混合物中で増幅した：２ｍｌのｃＤＮＡ−ＲＮＡヘテロ２重鎖、６６．６ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．８、１．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．２ｍＭの各４つのｄＮＴＰ、１０ｍＭ ２−メルカプトエタノール、０．２５ユニットのＴａｑポリメラーゼ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）およびそれぞれ、５０ｐｍｏｌの、各プライマー９９７および７３４ならびに９９８および７３３。この混合物をミネラルオイルで覆い、９４℃で３０秒（変性）、５０℃で３０秒（アニール）、および７２℃で３０秒（合成）からなる各サイクルを用いてＰＣＲを２サイクル行った。この反応のあと、直ぐに９４℃で３０秒（変性）、５５℃で３０秒（アニール）、および７２℃で３０秒（合成）からなるＰＣＲを３０サイクル行い、引き続き７２℃で５分間の最終合成反応を行った。この反応産物をプールして、ＣＨＣｌ_３を用いて抽出し、そしてエタノール沈殿した。
【０１２７】
増幅産物を、２０ｍｌのＴＥ緩衝液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ（ｐＨ８．０））に再懸濁し、そして５％ポリアクリルアミドゲルにおいて電気泳動した。Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌの予期された分子量で移動するバンドを切り出し、ゲルスライスから化学的に溶出し、有機溶媒で抽出し、そしてエタノール沈殿した。
【０１２８】
増幅したＶ_ＨおよびＶ_Ｌの遺伝子の、Ｍ１３ファージ免疫発現ベクターへのクローニング：増幅したＶ領域遺伝子産物を、続いてハイブリダイゼーション変異誘発（Ｎｅａｒ，Ｒ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １２：８８（１９９２）；Ｙｅｌｔｏｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５５：１９９４−２００３（１９９５））によってファージ免疫発現ベクターにクローン化した。ハイブリダイゼーション変異誘発による増幅したＶ_ＨおよびＶ_Ｌの配列の導入は、効果的なＦａｂ発現のために必要なＭ１３ベクター中に含まれる調節エレメントとともにインフレームで抗体配列を位置付ける。この技術の１つの利点は、制限エンドヌクレアーゼ部位は、従来のＤＮＡライゲーション法を用いてなされるようなクローニングのためにＶ_ＨまたはＶ_Ｌの遺伝子配列へ組み込む必要がないことである。
【０１２９】
クローニングを実施するために、４００ｎｇの２本鎖の増幅産物の各々を、まずポリヌクレオチドキナーゼを用いてリン酸化した。リン酸化したＬＭ６０９ Ｖ_Ｌ産物の１００ｎｇを、２５０ｎｇのウリジン化したＢＳ１１ファージ免疫発現ベクターと混合し、９０℃に加熱することによって変性し、そして室温に緩やかに冷却することでアニールした。ＢＳ１１は、Ｍ１３ ＩＸ由来のＭ１３免疫発現ベクターであり、かつマウスＩｇＧ１のＣＨ_１およびマウスκ軽鎖定常ドメインをコードする（Ｈｕｓｅ，Ｗ．Ｄ．：Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ；Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ，Ｃ．Ａ．Ｋ．Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ編、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．，Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１０３−１２０頁（１９９１））。ＰＣＲ増幅プライマーに含まれるヌクレオチド配列は、一本鎖ＢＳ１１ベクター中に存在する相補的な配列にアニールする。このアニール混合物を、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼおよびｄＮＴＰを用いて二本鎖分子に完全に変換し、そしてＴ４リガーゼを用いて連結した。１ｍｌの変異誘発反応物を、Ｅ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ株にエレクトロポレーションし、ＸＬ−１ Ｅ．ｃｏｌｉのローン（ｌａｗｎ）上に滴下し、そしてプラークが形成されるまでインキュベートした。プラークリフトアッセイを、記載されるようにアルカリホスファターゼに結合体化したヤギ抗マウスκ鎖抗体を用いて実施した（Ｙｅｌｔｏｎら（前出）；Ｈｕｓｅ，Ｗ．Ｄ．（前出））。１５個のマウス軽鎖陽性のＭ１３ファージクローンを単離し、プールし、そしてＰＣＲ増幅ＬＭ６０９Ｖ_Ｈ産物とともにハイブリダイゼーション変異誘発のためのテンプレートとして機能するウリジン化ベクターを調製するために使用した。
【０１３０】
機能的なマウスＬＭ６０９Ｆａｂを発現するクローンを、精製ａ_ｖｂ_３に結合させることによってＥＬＩＳＡにより同定した。簡潔には、Ｉｍｍｕｌｏｎ ＩＩ ＥＬＩＳＡプレートを、１ｍｇ／ｍｌ（１００ｎｇ／ウェル）のａ_ｖｂ_３を用いて一晩コーティングし、そして非特異的部位を、２７℃で２時間ブロックした。可溶性Ｆａｂを、Ｆａｂを発現するＭ１３ファージクローンに感染させたＥ．ｃｏｌｉ ＭＫ３０−３株（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ Ｃｏ．）の培養物のペリプラズム画分を単離することによって調製した。ペリプラズム画分を、結合緩衝液（１００ｍＭ ＮａＣｌ、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．４）、２ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０２％ ＮａＮ_３、１ｍｇ／ｍｌ ＢＳＡ）と混合し、そして固定したａ_ｖｂ_３とともに２７℃で２時間インキュベートした。このプレートを、結合緩衝液で洗浄し、そして結合したＦａｂを、アルカリホスファターゼに結合体化したヤギ抗マウスκ鎖抗体を用いて検出した。４つのａ_ｖｂ_３反応性クローンを同定した：ｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２、２９、３１および６９。ＭｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２および２９は、ＥＬＩＳＡアッセイにおいて最も強力なシグナルを与えた。ＤＮＡ配列分析は、クローンｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２、３１および６９が、全て同一の軽鎖配列を有することを示し、そして以前に決定された精製ＬＭ６０９軽鎖ペプチドのＮ末端アミノ酸配列を確認した。４つ全てのクローンは、同一のＶ_ＨのＤＮＡ配列を有し、そしてまた、以前に決定された精製ＬＭ６０９重鎖ポリペプチドのＮ末端アミノ酸配列を確認した。
【０１３１】
各々のクローンの結合活性をさらに特徴付けるために、可溶性Ｆａｂ画分を、クローン１２および２９に感染させたＥ．ｃｏｌｉ ＭＫ３０３−３株の５０ｍｌの培養物から調製し、そしてＬＭ６０９ ＩｇＧを用いる競合ＥＬＩＳＡにおいてａ_ｖｂ_３への結合について評価した。このＥＬＩＳＡの結果を、図３に示す。クローンｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２が、混合なし（ニート）から１：８０までの範囲のペリプラズム力価において、ＬＭ６０９ ＩｇＧのａ_ｖｂ_３への結合を（１ｎｇ／ｍｌおよび５ｎｇ／ｍｌのＬＭ６０９ ＩｇＧ濃度で）濃度依存性様式で阻害することを見出した。クローンｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２を、プラーク精製し、そしてＶ領域重鎖ＤＮＡ配列およびＶ領域軽鎖ＤＮＡ配列の両方を再度決定した。最終的なクローン（ｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２−５）の全ＤＮＡ配列を、図２Ａおよび２Ｂに示す。
【０１３２】
（実施例ＩＩ）
（Ｖｉｔａｘｉｎの構築：ＣＤＲ移植ＬＭ６０９機能的フラグメント）
抗体を移植することの１つの目的は、非ヒトＣＤＲをヒト抗体フレームワークに置換する場合に、抗体特異性および親和性を保護することである。別の目的は、ヒト宿主との可能な抗原性を減少させるために外来アミノ酸配列の導入を最少にすることである。本実施例は、所望される抗原に対する最も高い親和性を示す全ての可能なメンバーを示す移植抗体のライブラリーを作製することによってこれらの目的の両方を達成するための手順を記載する。
【０１３３】
上記ライブラリーを、Ｅ．ｃｏｌｉにおいて構築した。ここで可能なＣＤＲおよびフレームワークの変化を、コドン塩基変異誘発（Ｋｒｉｓｔｅｎｓｓｏｎら：Ｖａｃｃｉｎｅｓ ９５．Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ．Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ（１９９５）；Ｒｏｓｏｋら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（２７１：２２６１１−２２６１３（１９９６）））を用いて組み込んだ。これらの手順を用いて、ライブラリーを構築し、そして機能的に活性なヒト化抗ａ_ｖｂ_３抑制抗体を同定した。
【０１３４】
ＬＭ６０９の１つの移植形態の構築について、マウスＬＭ６０９ Ｖ領域遺伝子配列に対する同一性の最も高い程度を示すヒトフレームワーク配列を、ＬＭ６０９ ＣＤＲを入手するために選択した。ヒト重鎖Ｖ領域Ｍ７２｀ＣＬ（ＨＨＣ３０Ｑ、ＨＣ サブグループ３、Ｋａｂａｔら（前出））は、ＬＭ６０９重鎖のフレームワーク１、２および３に対して８８％の同一性を有し、そしてヒト軽鎖Ｖ領域ＬＳ１｀ＣＬ（ＨＫＬ３１２、κサブグループ３、Ｋａｂａｔら（前出））は、ＬＭ６０９軽鎖のフレームワーク１、２および３に対して７９％の同一性を有した。Ｋａｂａｔら（前出）によって定義されるマウスＬＭ６０９ＣＤＲ配列をヒトフレームワーク上に移植した。埋もれていると予期される残基は、構造に影響し得、従って可能な変化を設計する場合に本来のマウス結合部位の結合特性を考慮した（Ｓｉｎｇｅｒら（前出）；Ｐａｄｌａｎ，Ｅ．Ａ．Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２８：４８９−４９８（１９９１））。このフレームワーク残基の分析は、特異性を保存するために重要であると考えられ、そして結合部位の親和性は、わずかな違いのみを示した。例えば、重鎖配列において、予期される埋もれている残基は、１００％の同一性を示した。特に注目すべきなのは、ヒト重鎖Ｖ領域Ｍ７２｀ＣＬにおけるＡｒｇ１６が、ヒト鎖中の比較的珍しい残基であるということである。しかし、この残基はまた、ＬＭ６０９ Ｖ_Ｈにおいて存在することが見出され、従って保持した。同様に、ＬＭ６０９におけるＡｒｇ１９は、マウス重鎖の中では、比較的まれな残基であるが、Ｍ７２｀ＣＬにおいて存在することが見出されており、従って保持した。軽鎖配列において２つの異なる埋もれている残基を、ＬＭ６０９フレームワーク領域とＬＳ１｀ＣＬフレームワーク領域との間で４９位と８７位において同定した。従って、これらの２つの位置を、ヒト代替物およびマウス代替物の両方とし、移植抗体ライブラリーに組み込んだ。
【０１３５】
全長移植Ｖ領域遺伝子を、長い重複オリゴヌクレオチドを用いてＰＣＲによって合成した。４９位および８７位において混合されたアミノ酸残基を含む軽鎖オリゴヌクレオチドを、Ｇｌａｓｅｒら（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：３９０３−３９１３（１９９２））において記載され、かつＶ_Ｌオリゴ３およびＶ_Ｌオリゴ４（それぞれ、配列番号１６および１７）として示されるオリゴヌクレオチドにおいて例示されるように合成した。全ての長いオリゴヌクレオチドを、ゲル精製した。
【０１３６】
移植ＬＭ６０９重鎖Ｖ領域および軽鎖Ｖ領域を、アニーリングＰＣＲプライマーの存在下でモル等量濃度で５つの重複オリゴヌクレオチドを混合することによって構築した。この重鎖オリゴヌクレオチドを、以下のヌクレオチド位置に位置付けた：Ｖ_Ｈオリゴヌクレオチド１（Ｖ_Ｈオリゴ１）（ヌクレオチド（ｎｔ）１−８４）（配列番号９）；Ｖ_Ｈオリゴ２（ｎｔ ７０−１５３）（配列番号１０）；Ｖ_Ｈオリゴ３（ｎｔ １３８−２２５）（配列番号１１）；Ｖ_Ｈオリゴ４（ｎｔ ２１１−２９１）（配列番号１２）；Ｖ_Ｈオリゴ５（ｎｔ ２７７−３５１）（配列番号１３）。同様に、Ｖｉｔａｘｉｎ軽鎖オリゴヌクレオチドを、以下のヌクレオチド位置に位置付けた：Ｖ_Ｌオリゴヌクレオチド１（Ｖ_Ｌオリゴ１）（ヌクレオチド（ｎｔ）１−８７）（配列番号１４）；Ｖ_Ｌオリゴ２（ｎｔ ７３−１４４）（配列番号１５）；Ｖ_Ｌオリゴ３（ｎｔ １３０−２１３）（配列番号１６）；Ｖ_Ｌオリゴ４（ｎｔ １９９−２７９）（配列番号１７）；Ｖ_Ｌオリゴ５（ｎｔ ２６５−３２１）（配列番号１８）。移植ＬＭ６０９重鎖可変領域および移植ＬＭ６０９軽鎖可変領域を構築するために使用されるオリゴヌクレオチドのヌクレオチド配列を、表６に示す。Ｖ_Ｌオリゴ３、およびＶ_Ｌオリゴ４におけるコドン４９位および８７位は、無作為化コドンを示す。アニーリングプライマーは、一本鎖ベクターへの増幅Ｖ領域産物の効果的なアニーリングのためのベクター配列に相補的な少なくとも１８個のヌクレオチド残基を含んだ。このアニール化混合物を、Ｔ４ＤＮＡポリメラーゼおよびｄＮＴＰを用いて二本鎖分子に完全に変換し、そしてＴ４リガーゼを用いて連結した。
【０１３７】
ライブラリーを作製するために、変異誘発反応物の一部（１μｌ）を、Ｅ．ｃｏｌｉ ＤＨ１０Ｂ株（ＢＲＬ）にエレクトロポレーションし、ＸＬ−１（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｉｎｃ．）のローン（ｌａｗｎ）上に滴下し、そしてプラークが形成されるまでインキュベートした。レプリカフィルターリフト（ｒｅｐｌｉｃａ ｆｉｌｔｅｒ ｌｉｆｔ）を調製し、そしてＶ_Ｈ遺伝子配列を含むプラークを、ＬＭ６０９重鎖ＣＤＲ２配列に相補的なジゴキシゲニン標識化オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションか、またはベクターＣＨ_１ドメインのカルボキシ末端に付加されたデカペプチド配列Ｔｙｒ Ｐｒｏ Ｔｙｒ Ａｓｐ Ｖａｌ Ｐｒｏ Ａｓｐ Ｔｙｒ Ａｌａ Ｓｅｒ（配列番号２８）に対して惹起された７Ｆ１１アルカリホスファターゼ結合体化モノクロナール抗体（Ｂｉｏｓｉｔｅ，Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）との反応性のいずれかによってスクリーニングした。２つとも陽性であった１５個のクローンをプールし、そして増幅した移植ＬＭ６０９Ｖ_Ｌ産物とともにハイブリダイゼーション変異誘発のためのウリジン化テンプレートを調製するために使用した。
【０１３８】
（表６：移植したＬＭ６０９の重鎖および軽鎖の可変領域を構築するために使用されるオリゴヌクレオチド）
【０１３９】
【表６】

変異誘発反応を、Ｖ_Ｌオリゴヌクレオチド１〜５（各々配列番号１４〜１８）を使用したことを除いて、Ｖ_Ｈオリゴヌクレオチドを用いて上記のように行った。この反応をＥ．ｃｏｌｉ株ＤＨ１０Ｂへエレクトロポレーションし、そして検出のためにアルカリホスファターゼに結合体化したヤギ抗ヒトκ鎖抗体またはヤギ抗ヒトＦａｂ抗体のどちらかを用い、アルカリフォスファターゼに結合体化したウサギ抗ヤギ二次試薬を使用して、濾過リフトをプロービングした。Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌ遺伝子配列の両方を共発現するポジティブクローンを選択し（全部で１６０）、そしてこれを使用して可溶性Ｆａｂフラグメントを調製するためにＥ．ｃｏｌｉ株ＭＫ３０−３に感染させた。
【０１４０】
この可溶性Ｆａｂフラグメントを、ＥＬＩＳＡアッセイにおいて、α_Ｖβ_３への結合についてスクリーニングした。α_Ｖβ_３に強力に結合することがＥＬＩＳＡから示された４つのクローンを同定し、そしてさらに特徴付けた。これらのクローンを、ｈｕＬＭ６０９Ｍ１３−３４、５４、５５および１４５と称した。４つ全てのクローンをプラーク精製し、そして各クローンからの３つの独立サブクローンを使用して、ＥＬＩＳＡによるさらなるα_Ｖβ_３への結合分析のためのＦａｂフラグメントを調製した。
【０１４１】
このさらなるＥＬＩＳＡにおいて、二連プレートをα_Ｖβ_３リガンドでコーティングし、そしてｈｕＬＭ６０９ペリプラズムサンプルと共にインキュベートした。１つのプレートでは、結合ｈｕＬＭ６０９Ｆａｂをアルカリフォスファターゼに結合体化したヤギ抗ヒトκ鎖抗体で検出し、そして他のプレートでは、結合ｈｕＬＭ６０９Ｆａｂを、デカペプチドタグを認識するモノクローナル抗体である７Ｆ１１−アルカリホスファターゼ結合体で検出した。サブクローン（ｈｕＬＭ６０９Ｍ１３−３４−１、２および３）ならびにｈｕＬＭ６０９Ｍ１３−１４５−１、２および３は全て二倍のポジティブシグナルを生じ、これは、Ｆａｂが機能的Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌポリペプチドを含むことを示した。これらの結果を、インテグリンα_Ｖβ_３を発現する細胞株であるＭ２１細胞に対するＥＬＩＳＡアッセイにおいて確認した。
【０１４２】
サブクローンｈｕＬＭ６０９Ｍ１３−３４−３およびｈｕＬＭ６０９Ｍ１３−１４５−３のＤＮＡ配列分析は、オリゴヌクレオチド合成に起因するエラーによるか、またはＰＣＲ増幅間に発生するエラーにより、ライブラリー中へ導入された変異を明らかにする。これらの変異を、部位特異的変異誘発によって、クローンｈｕＬＭ６０９ＭＢ−３４−３において補正した。軽鎖配列において、以下の補正がなされた：Ｈｉｓ３６からＴｒｙ３６へ、およびＬｙｓ１８からＡｒｇ１８へ。重鎖配列において、以下の補正がなされた：Ｇｌｕ１からＧｌｎ１へ、Ａｓｎ３からＧｌｎ３へ、およびＬｅｕ１１からＶａｌ１１へ。さらに、ＬＭ６０９の移植分子の構築の間、重鎖に由来する残基２８は、重要でないフレームワーク残基であると考えられ、そしてヒト残基（Ｔｈｒ２８）は、維持された。しかし、引き続いて、残基２８がＣＤＲの重要な部分であり得ることが決定された。従って、残基２８を、オリゴヌクレオチド（５’−ＧＣＴ ＡＣＴ ＧＡＡ ＧＧＣ ＧＡＡ ＴＣＣ ＡＧＡ Ｇ−３’（配列番号２９））を有する部位指向性変異誘発を使用して、対応するマウスのその位置（Ａｌａ２８）における残基に変換した。この変化がヒトフレームワークのその部位のスレオニンを超える利点を提供しないことを後から決定し、そしてこのスレオニンは、維持された。最終的な移植ＬＭ６０９クローンをｈｕ６０９Ｍ１３ １１３５−４と命名し、そして本明細書中でＶｉｔａｘｉｎと称する。クローンＶｉｔａｘｉｎのＤＮＡ配列を、図２Ａおよび図２Ｂに示す。
【０１４３】
（実施例ＩＩＩ）
（Ｖｉｔａｘｉｎの機能的特徴付け）
本実施例は、多くのインビトロ結合アッセイおよび細胞接着アッセイにおけるＶｉｔａｘｉｎの結合特異性、親和性および機能活性の特徴付けを示す。
【０１４４】
Ｖｉｔａｘｉｎのインテグリンα_Ｖβ_３に対する結合特異性を、α_Ｖβ_３への結合および他のα_Ｖ含有インテグリンまたはβ_３含有インテグリンに対するその交叉反応性を測定することにより初めに評価した。具体的には、α_ＩＩｂβ_３（血小板で発現される主要なインテグリン）およびα_Ｖβ_５（内皮細胞および結合組織細胞型に多く見られるインテグリン）への結合を測定することにより、結合特異性を評価した。
【０１４５】
簡単には、交叉反応性を決定するために、インテグリンをＥＬＩＳＡプレート上にコーティングし、そして一連の抗体希釈物を、α_Ｖβ_３および他のインテグリンに対するＶｉｔａｘｉｎ結合活性について測定した。インテグリンα_Ｖβ_３およびα_Ｖβ_５を、Ｃｈｅｒｅｓｈ（１９８７）（前出）ならびにＣｈｅｒｅｓｈおよびＳｐｉｒｏ（１９８７）（前出）により開示されるアフィニティークロマトグラフィーにより単離した。α_ＩＩｂβ_３をＣａｌＢｉｏｃｈｅｍから購入した。簡単には、ＬＭ６０９アフィニティーカラム（ＣｈｅｒｅｓｈおよびＳｐｉｒｏ（１９８７）（前出））を使用して、オクチルグルコシドヒト胎盤溶解物からα_Ｖβ_３を単離し、一方、抗α_Ｖアフィニティーカラムを使用して、α_Ｖβ_３が枯渇したカラムのフロースルーからα_Ｖβ_５を単離した。ヤギ抗ヒトＩｇＧアルカリホスファターゼ結合体を使用するＥＬＩＳＡにより、抗体結合活性を評価した。コントロールとして、精製ヒトＩｇＧ_１抗体を使用した。なぜなら、ＶｉｔａｘｉｎはヒトＩｇＧ_１のバックボーンを含むからである。
【０１４６】
このアッセイの結果を、図４Ａに示し、そしてこの結果は、Ｖｉｔａｘｉｎが高親和性でα_Ｖβ_３に特異的に結合することを明らかにする。１．０ｍｇ／ｍｌを超える抗体濃度における、他のα_Ｖ含有インテグリンまたはβ_３含有インテグリンへの検出可能な結合は存在しなかった。
【０１４７】
さらなる結合研究において、結合の親和性および特異性を、α_Ｖβ_３に対する親ＬＭ６０９抗体を用いる競合結合アッセイにおいて評価した。標識した抗体であるＬＭ６０９を用いて上記のように、競合結合を、ＥＬＩＳＡアッセイにおいて測定した。ＬＭ６０９の結合を、漸増濃度のＶｉｔａｘｉｎ競合物の存在下で決定した。代替的に、コントロール競合抗体は、再びヒトＩｇＧ_１であった。
【０１４８】
この競合の結果を図４Ｂに示し、そしてこの結果は、ＬＭ６０９の結合の特定的な阻害が、０．１μｇ／ｍｌを超えるＶｉｔａｘｉｎ濃度で観察され得ることを示す。ほとんど完全なる阻害は、１００μｇ／ｍｌを超えるＶｉｔａｘｉｎ濃度で観察される。競合阻害のこのレベルは、親モノクローナル抗体ＬＭ６０９およびＶｉｔａｘｉｎの移植バージョンが、本質的に同一の特異性を示すことを示す。
【０１４９】
フィブリノーゲンへのα_Ｖβ_３結合についてＶｉｔａｘｉｎの阻害活性を測定することにより、結合の親和性および特異性をも評価した。これらの研究にのために、Ｖｉｔａｘｉｎ／α_Ｖβ_３結合研究について上記されるように、ＥＬＩＳＡプレート上にα_Ｖβ_３をプレーティングした。漸増濃度のＶｉｔａｘｉｎまたはコントロール抗体の存在下で、結合ビオチン化フィブリノーゲンの量を測定することにより、Ｖｉｔａｘｉｎの阻害活性を決定した。簡単には、フィブリノーゲンをＣａｌＢｉｏｃｈｅｍから購入し、そして製造業者（Ｐｉｅｒｃｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）により記載されるように、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドビオチンでビオチン化した。ストレプトアビジンアルカリホスファターゼを使用して、結合フィブリノーゲンを検出した。
【０１５０】
このアッセイの結果を、図４Ｃに示し、そしてこれらの結果は、約０．１μｇ／ｍｌよりも高いＶｉｔａｘｉｎ濃度での特異的結合阻害を明らかにする。これらの結果は、Ｖｉｔａｘｉｎのへα_Ｖβ_３の特異的結合およびＬＭ６０９の競合阻害を示す上記の結果と組み合わせて、親マウスモノクローナル抗体ＬＭ６０９により示される結合の特徴および特異性の全てを、Ｖｉｔａｘｉｎが基本的に維持することを示す。インビトロ結合アッセイに基づくこれらの結論を実証するさらなる機能研究を、以下に記載する。
【０１５１】
さらなる機能研究を行い、Ｖｉｔａｘｉｎ結合の特異性をさらに評価した。これらの研究は、細胞接着アッセイにおけるインテグリンα_Ｖβ_３結合の阻害に関する。内皮細胞接着事象は、血管形成プロセスの重要な構成要素であり、そして、α_Ｖβ_３の阻害が、腫瘍の新脈管形成を減少させ、これにより腫瘍増殖の速度を減少させることが公知である。これらのアッセイにおけるＶｉｔａｘｉｎによるα_Ｖβ_３媒介性細胞付着の阻害は、この抗体をインサイチュまたはインビボで使用する場合を除いて、阻害活性を示す。
【０１５２】
簡単には、１０％ＦＢＳを含有するＲＰＭＩ中で増殖させたα_Ｖβ_３ポジティブＭ２１黒色腫細胞を、細胞結合アッセイに使用した。細胞をトリプシン処理により培養皿から遊離させ、そして４×１０^５細胞／ｍｌの濃度で接着緩衝液中に再懸濁した（以下を参照のこと）。Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９または精製ヒトＩｇＧ_１（コントロール抗体）を、２５０μｌの接着緩衝液（１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、２ｍＭ ＭｇＣｌ_２、２ｍＭ ＣａＣｌ_２、０．２ｍＭ ＭｎＣｌ_２および１％ＢＳＡ（Ｈｅｐｅｓ緩衝化生理食塩水中、ｐＨ７．４））中に所望の濃度まで希釈し、そしてフィブリノーゲンでプレコーティングした４８ウェルプレートのウェルに添加した。フィブリノーゲンを上記のように単離した。各ウェルを２００μｌの１０μｌ／ｍｌの濃度のフィブリノーゲンで、１時間３７℃にてコーティングした。アッセイのために、Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９またはアイソタイプ一致コントロール抗体を含有する等量の細胞（２５０μｌ）を各々のウェルに添加し、穏やかに振盪することにより混合し、そして２０分間３７℃にてインキュベートした。未結合細胞を、ＢＳＡ単独でコーティングしたコントロールウェルに細胞が残らなくなるまで、接着緩衝液で洗浄することにより除去した。クリスタルバイオレットで染色することにより、接着細胞を視覚化した。引き続き、クリスタルバイオレットを１００μｌの酢酸（１０％）で抽出し、そして５６０ｎｍにて可溶化した色素の吸光度を決定することにより定量した。
【０１５３】
このアッセイの結果を図５Ａに示し、そしてこれらの結果は、Ｖｉｔａｘｉｎおよび親抗体ＬＭ６０９の両方が、同じ濃度範囲にわたり、フィブリノーゲンへのＭ２１細胞接着を阻害することを明らかにする。最大接着の５０％に対するこの阻害濃度を、算出したところ約５０ｎｇ／ｍｌであった。Ｖｉｔａｘｉｎの特異性を、コントロールＩｇＧ_１抗体により観察される阻害の欠如により示した。
【０１５４】
上記の細胞接着の結果に加えて、Ｖｉｔａｘｉｎの阻害活性をまた、内皮細胞移動アッセイにおいて試験した。この点において、トランスウェル（ｔｒａｎｓｗｅｌｌ）細胞移動アッセイを使用し、内皮細胞の移動を阻害するＶｉｔａｘｉｎの能力を評価した（Ｃｈｏｉら、Ｊ．Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｓｕｒｇ．，１９：１２５−１３４（１９９４）およびＬｅａｖｅｓｌｙら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ，１２１：１６３−１７０（１９９３））。
【０１５５】
簡単には、対数期かつ低い継代数のヒト臍静脈内皮細胞を穏やかなトリプシン処理により収集し、洗浄し、そして１％ＢＳＡを含む３７℃のＨＢＳ（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１．８ｍＭ ＣａＣｌ_２、１．８ｍＭ ＭｇＣｌ_２、５ｍＭ ＫＣｌ、および５ｍＭグルコース、ｐＨ７．４）中に、２×１０^６細胞／ｍｌの濃度で再懸濁した。抗体（Ｖｉｔａｘｉｎ、ＬＭ６０９、およびＩｇＧ_１コントロール）を、ストック溶液に１０μｇ／ｍｌに希釈した。抗体を、１：１希釈（抗体の最終濃度＝５μｇ／ｍｌ；細胞の最終濃度＝１×１０^６細胞／ｍｌ）で、細胞に添加し、そして氷上で１０〜３０分間インキュベートした。次いで、細胞／抗体懸濁液（各コンパートメントについて２００μｌ）を、Ｔｒａｎｓｗｅｌｌ細胞培養チャンバー（Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏｓｔａｒ）の上部コンパートメントに添加し、その底部のコンパートメントは、０．５ｍｌの１０μｇ／ｍｌのビトロネクチン（ＨＢＳ中）のでコーティングされている。ビトロネクチンは、内皮細胞の化学誘引物質として作用する。チャンバーを、３７℃で４時間放置し、細胞の移動を生じさせる。
【０１５６】
細胞の移動の可視化を、綿布で上部コンパートメント内の残りの細胞を、まず除去することによって行った。目的の低いサイドに移動した細胞を、クリスタルバイオレットで３０分間染色し、続いて、酢酸に可溶化し、そして色素の吸光度を５５０ｎｍの波長で測定した。吸収の量は、上部チャンバーから底部チャンバーに移動した細胞の数に直接比例する。アッセイの結果を、図７Ｂに示す。Ｖｉｔａｘｉｎおよび親の抗体ＬＭ６０９の両方は、本質的に同じ阻害の結果を生じた。具体的には、ＶｉｔａｘｉｎおよびＬＭ６０９は、ＩｇＧ_１コントロールおよびインヒビターのないサンプルに比較して内皮細胞のビトロネクチン誘導性移動の約６０％を阻害した。
【０１５７】
（実施例ＩＶ 動物モデルにおけるα_Ｖβ_３のＶｉｔａｘｉｎ媒介性阻害）
この実施例は、２つの動物モデルにおけるＶｉｔａｘｉｎによる腫瘍増殖の阻害を記載する。腫瘍増殖を、少なくともα_Ｖβ_３媒介性新生血管形成をＶｉｔａｘｉｎで阻害することにより阻害した。
【０１５８】
第１のモデルは、ニワトリの絨毛尿膜（ＣＡＭ）における新脈管形成を測定する。このアッセイは、インビボ新脈管形成に関して十分に認識されるモデルである。なぜなら、全組織の新生血管形成が生じるからである。具体的には、このアッセイは、増殖因子浸透フィルターディスクに向ってか、またはＣＡＭ上で増殖した組織内で増殖するニワトリのＣＡＭ血管の増殖因子誘導性新脈管形成を測定する。新生血管形成の阻害は、新しい血管増殖の量および範囲に基づくか、またはＣＡＭ上の組織の増殖阻害に基づく。このアッセイは、他の者によって詳細に記載されて、そして新生血管形成ならびに腫瘍細胞の新生血管形成を測定するために使用された（Ａｕｓｐｒｕｎｋら、Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，７９：５９７−６１８（１９７５）；Ｏｓｓｏｎｓｋｉら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，４０：２３００−２３０９（１９８０）；Ｂｒｏｏｋｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６４：５６９−５７１（１９９４ａ）およびＢｒｏｏｋｓら、Ｃｅｌｌ，７９：１１５７−１１６４（１９９４ｂ））。
【０１５９】
簡単には、増殖因子誘導性新脈管形成について、フィルターディスクを、皮膚生検穿孔を使用する＃１ Ｗｈａｔｍａｎ Ｑｕａｌｉｔａｔｉｖｅ Ｃｉｒｃｌｅｓより購入する。ディスクを始めに、ＵＶ光に曝露することによって滅菌し、次いで、滅菌条件下（少なくとも１時間）で、異なる濃度のＴＮＦ−αまたはネガティブコントロールとしてのＨＢＳＳで飽和する。新脈管形成を、ＣＡＭ上に飽和フィルターディスクを配置することによって誘導する。
【０１６０】
新脈管形成の阻害を、胚を、種々の量のＶｉｔａｘｉｎおよびコントロール（抗体または精製ヒトＩｇＧ_１）を用いて処理することによって行う。処置を、ディスクの配置の約２４時間後、静脈内注入によって行なう。４８時間後、ＣＡＭを解剖し、そして新脈管形成を１〜４の尺度でスコア付けする。ＨＢＳＳ飽和フィルターディスクを、ネガティブコントロール（ＣＡＭを調節する際に組織損傷に応じて生じ得る新脈管形成を表す）として使用し、そしてこれらのＣＡＭについての値を、バックグラウンドとして引く。精製ヒトＩｇＧ_１を、注入についてのネガティブコントロールとして使用する。なぜなら、Ｖｉｔａｘｉｎは、ヒトＩｇＧ_１サブクラスのＶｉｔａｘｉｎであるからである。Ｖｉｔａｘｉｎは、用量依存性の様式でＴＮＦ−α誘導性新脈管形成を阻害することが見出された。最大の阻害は、３００μｇでの単回の用量のＶｉｔａｘｉｎで生じ、それは、ヒトＩｇＧ_１コントロールに比較して８０％よりも大きい阻害を生じた。
【０１６１】
増殖因子誘導性新生血管形成を使用する上記のＣＡＭアッセイに加えて、さらなる研究を、腫瘍誘導性新生血管形成を使用して行った。これらのアッセイにおいて、α_Ｖβ_３ネガティブ腫瘍フラグメントをＣＡＭに移植することによって新脈管形成を誘導した。α_Ｖβ_３ネガティブ腫瘍フラグメントは、腫瘍増殖の任意の阻害が、ＣＡＭ誘導性内皮細胞によるα_Ｖβ_３媒介性新生血管形成の阻害に起因し、そして腫瘍細胞上に提示されるα_Ｖβ_３によって媒介される接着事象に起因しないすることを保証する。
【０１６２】
腫瘍増殖の阻害を、３０μｌ中のＣＡＭ上に、ＦＧ（８×１０^６細胞、膵臓癌）およびＨＥｐ−３細胞（５×１０^５細胞、咽頭癌）の単一の細胞懸濁液を配置することによって評価した。１週間後、腫瘍を除去し、そして新しいＣＡＭ上に配置する時点に、約５０ｍｇのフラグメントに切断する。この第２回目の配置の２４時間後、胚を、ＶｉｔａｘｉｎまたはネガティブコントロールとしてヒトＩｇＧ_１と共に静脈内に注射する。腫瘍を、約７日間増殖させ、その後除去し、そして重量を測定した。
【０１６３】
腫瘍の新生血管形成へのＶｉｔａｘｉｎ処理の結果を、図６Ａに示す。このデータは、腫瘍の重量の平均変化として表され、そしてＶｉｔａｘｉｎは、α_Ｖβ_３ネガティブ腫瘍（例えば、Ｆｇ腫瘍フラグメントおよびＨＥｐ−３腫瘍フラグメント）の増殖を阻害し得ることを実証する。より具体的には、−５．３８のＶｉｔａｘｉｎ処理Ｆｇ腫瘍フラグメントについての平均重量の変化が存在するが、−１１．０の変化が、Ｖｉｔａｘｉｎ処理ＨＥｐ−３腫瘍について観察された。ＩｇＧ_１コントロールは、ＦＧ腫瘍フラグメントおよびＨＥｐ−３腫瘍フラグメントのそれぞれについて、２５．２９および２８．５の正の平均重量の変化を示した。これらの結果を、以下の単回静脈内注入より得た。
【０１６４】
第２の動物モデルにおいて、ウサギにおけるＶｘ２癌細胞の阻害を、腫瘍へのＶｉｔａｘｉｎの阻害効果の基準として使用した。Ｖｘ２癌は、ショープウイルス誘導性乳頭腫由来の移植可能な癌である。これは始めに１９４０年に記載され、以来、腫瘍の侵入、腫瘍−宿主相互作用および新脈管形成についての研究において、広く使用されている。Ｖｘ２癌は、本来、線維症性であり、高度に活動的であり、そして退形成型の癌の特性を示す。Ｖｘ２腫瘍の増殖は、ドナーのウサギでの連続した移植を通じて達成される。皮下の移植に続いて、始めの炎症反応の後に、宿主の修復機構が２日目〜４日目の間に起こることが報告された。この修復機構は、新しい結合組織の形成および新しい毛細管の産生によって特徴付けられる。新しく形成された毛細管は、４日目においては修復部位に限定されるが、８日目までには、これらは腫瘍の外側の領域に広がった。ウサギにおけるＶｉｔａｘｉｎのこれらの特徴および薬物速度論は、これらの実験における初めの用量および処理の計画を決定するために使用される。１、５、および１０ｍｇ／ｋｇで、投与された動物血清におけるＶｉｔａｘｉｎの排除半減期は、それぞれ３８．９、６０．３、および５２．１時間であることが見出された。
【０１６５】
上記の動物モデルにおけるＶｘ２腫瘍の増殖を、Ｖｘ２癌を皮下に移植されたウサギにおける原発性腫瘍増殖への初期の投与後のＶｉｔａｘｉｎの効果を研究するために使用した。簡単には、Ｖｘ２腫瘍（５０ｍｇ）を、皮膚と筋肉の間の切開を通じてウサギの内腿に移植した。原発性腫瘍の測定を、２５日目までの実験の間にわたって行った。移植の２８日目以後、動物を屠殺し、そして腫瘍を切除し、重量を測定した。２８日目までに、腫瘍は非常に異常な形状になり、その結果、測定が困難になり、それゆえ腫瘍容量を示さなかった。従って、測定は２５日目までのみ評価した。
【０１６６】
第１の研究において、ウサギを、腫瘍の移植後１日目から開始して２８日間、５ｍｇ／ｋｇおよび１ｍｇ／ｋｇのＶｉｔａｘｉｎで、４日毎に合計７回の用量で処理した。両方のグループにおいて、腫瘍増殖の阻害を観察した。第２の研究シリーズにおいて、腫瘍の移植後７日目から開始して上記のように、合計５回の用量でウサギを処理した。腫瘍増殖の阻害をまた観察した。
【０１６７】
ウサギへの反復投与処理として、移植された抗体を投与することは、Ｖｉｔａｘｉｎに対して中和効果を有し得る免疫応答を産生し得、従って潜在的に効果を備えることに注意すべきである。予備的なデータは、約２５〜５０％の動物がこのような応答を発達させることを示唆する。
【０１６８】
上記の各Ｖｉｔａｘｉｎ処理の結果を、図６Ｂおよび６Ｃに示す。１日目で処理を受けるウサギにおいて、腫瘍の増殖の阻害は、コントロールＰＢＳで処理されたコントロールと比較して１ｍｇ／ｋｇおよび５ｍｇ／ｋｇの用量のグループの両方で観察された。具体的には、平均腫瘍重量によって測定された場合に、約６７％および８０％の増殖阻害を、それぞれ観察した。より低い程度の阻害が、移植後７日目でＶｉｔａｘｉｎ処理を始めた動物において観察された。これらの結果を図６Ｃに示す。すべての場合において、腫瘍増殖の阻害は、０．２ｍｇ／ｋｇより低いＶｉｔａｘｉｎ濃度では観察されなかった。
【０１６９】
（実施例Ｖ）
（ＬＭ６０９移植機能抗体フラグメントの構築）
本実施例は、ＣＤＲのみがＬＭ６０９ドナー抗体からヒトアクセプターフレームワークに移されている、機能的ＬＭ６０９移植抗体フラグメントの構築を示す。
【０１７０】
機能抗体フラグメントを生成するためのＬＭ６０９のＣＤＲ移植は、以下に示される方法によって達成した。これらの手順は、本質的に任意のドナー抗体のＣＤＲ移植に関して適用可能であり、ここで、ドナー抗体由来のＣＤＲの外側のアミノ酸残基は、最終移植生成物に所望されない。
【０１７１】
簡単に言うと、ＬＭ６０９抗体のタンパク質配列を、実施例Ｉに記載されるように、重鎖および軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをクローニングし、そして配列決定することによって決定した。ＬＭ６０９ドナー抗体由来のＣＤＲを、同定し、そしてヒトアクセプターフレームワークの相同性ヒト可変領域に移植した。ＣＤＲ領域の同定は、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．，およびＭａｃＣａｌｌｕｍ ｅｔ ａｌ．によって発行された定義の組合せに基づいた。
【０１７２】
ＣＤＲ領域の境界を、上記の２つの刊行物によって累積的に規定し、そして、重鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３について、それぞれ、残基３０〜３５、４７〜６６および９７〜１０６、ならびに軽鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３について、それぞれ、残基２４〜３６、４６〜５６、および８９〜９７である。これらの境界内であるがＫａｂａｔ ｅｔ ａｌ．によって規定されるようなＣＤＲの外側である異なるドナー残基（ｎｏｎ−ｉｄｅｎｔｉｃａｌ ｄｏｎｏｒ ｒｅｓｉｄｕｅ）を、同定し、そしてアクセプターフレームワークへは置換しなかった。その代わりに、機能的非ドナー（ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｎｏｎ−ｄｏｎｅｒ）アミノ酸残基を同定し、そして、これらの異なる残基の特定のものに置換した。
【０１７３】
以下のように、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．によって規定されるようなＣＤＲの外側であるが上記で規定されるようなＣＤＲ内である唯一の異なる残基は、ＬＭ６０９軽鎖の４９位である。この位置における機能的非ドナーアミノ酸を同定するために、全ての非ドナーアミノ酸を４９位に含む１９個の抗体のライブラリーを構築し、次いで、αｖβ_３に対する結合活性についてスクリーニングした。
【０１７４】
ヒト免疫グロブリン配列を、Ｂｒｏｏｋｈａｖｅｎ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ−Ｋａｂａｔ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔデータベース（リリース５．０）から同定した。マウスＬＭ６０９可変領域遺伝子の配列に有意な同一性を示すヒトフレームワーク配列を、ＬＭ６０９ ＣＤＲを入手するために選択した。ヒト重鎖可変領域Ｍ７２’ＣＬは、ＬＭ６０９重鎖のフレームワーク１、２および３に対して８８％の同一性を有し、そして、ヒト軽鎖Ｖ領域ＬＳ１’ＣＬは、ＬＭ６０９軽鎖のフレームワーク１、２および３に対して７９％の同一性を有した。Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．によって規定されたＣＤＲの外側の異なる残基を除いて、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．およびＭａｃＣａｌｌｕｍ ｅｔ ａｌ．によって規定されたマウスＬＭ６０９ ＣＤＲ配列を、ヒトフレームワーク上に移植した。この移植スキームを用いることによって、最終的な移植生成物は、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．によって規定されたＣＤＲの外側のいずれのアミノ酸残基
（これは、対応する位置（以下の残基の外側：重鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３について、それぞれ、３１〜３５、５０〜６６および９９〜１０６、そして軽鎖可変領域のＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３について、それぞれ、２４〜３４、５０〜５６および８９〜９７）においてＬＭ６０９アミノ酸と同一である）も含まない。さらに、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．によって規定されたＣＤＲの外側のアミノ酸残基（これは、その位置においてＬＭ６０９アミノ酸に対して同一である）を含む中間体は、生成されなかった。ＣＤＲ移植手順を、以下に示す。
【０１７５】
全長ＣＤＲ移植可変領域遺伝子を、前に実施例ＩＩに記載されるように、長い重複するオリゴヌクレオチドを用いてＰＣＲによって合成した。重鎖可変領域オリゴヌクレオチドは、配列番号９〜１３として前に記載したものである。軽鎖可変領域オリゴヌクレオチドを、ＣＤＲ移植可変領域および位置４９に終止コドンを含むように合成した。軽鎖ＬＭ６０９移植可変領域のための５つのオリゴヌクレオチドを、配列番号２３〜２７に示し、ここで、このシリーズ中の２番目のオリゴヌクレオチドは、４９位に終止コドンを含む（配列番号２４）。ＬＭ６０９移植軽鎖可変領域を構築するために使用されるオリゴヌクレオチドのヌクレオチド配列を、表７に示す。
【０１７６】
（表７：ＬＭ６０９移植軽鎖可変領域を構築するために使用されるオリゴヌクレオチド）
【０１７７】
【表７】

全ての長いオリゴヌクレオチドは、ゲル精製した。ＬＭ６０９重鎖可変領域のＣＤＲ移植は、５つの重複するオリゴヌクレオチド（配列番号９〜１３）を、等モル濃度で、アニーリングＰＣＲプライマーの存在下で混合することによって構築した。このアニーリングＰＣＲプライマーは、一本鎖ベクターへの増幅されたＶ領域生成物の効率的なアニーリングのために、ベクター配列に相補的な少なくとも１８ヌクレオチド残基を含む。アニーリングされた混合物を、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼおよびｄＮＴＰを用いて二本鎖分子に完全に変換し、そしてＴ４リガーゼを用いて連結させた。変異誘発反応物（１μｌ）を、Ｅ．ｃｏｌｉ菌株ＤＨ１０Ｂ（ＢＲＬ）にエレクトロポレーションし、ＸＬ−１（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｉｎｃ．）のローン（ｌａｗｎ）上で滴定し、そしてプラークが形成されるまでインキュベートした。レプリカのフィルターリフトを調製し、そしてＶ_Ｈ遺伝子配列を含むプラークを、ＬＭ６０９重鎖ＣＤＲ２配列に相補的なジゴキシゲニン標識オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションによってか、またはベクターＣＨ_１ドメイン（Ｂｉｏｓｉｔｅ，Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）のカルボキシ末端に付加したデカペプチド配列（Ｔｙｒ Ｐｒｏ Ｔｙｒ Ａｓｐ Ｖａｌ Ｐｒｏ Ａｓｐ Ｔｙｒ Ａｌａ Ｓｅｒ（配列番号２８））に対して惹起された、７Ｆ１１アルカリホスファターゼ結合体化のモノクローナル抗体との反応性のいずれかによって、スクリーニングし得る。
【０１７８】
二重に陽性であった５０個のクローンをプールし、そして、配列番号２３〜２７に示されるような５つの重複するオリゴヌクレオチドを用いて同様な様式で構築された、増幅ＣＤＲ移植ＬＭ６０９ Ｖ_Ｌ生成物を用いた、ハイブリダイゼーション変異誘発のためのウリジン化テンプレートを調製するために使用した。変異誘発反応物は、Ｅ．ｃｏｌｉ菌株ＤＨ１０Ｂにエレクトロポレーションした。無作為に拾い上げたクローンを配列決定し、４９位における非ドナーライブラリーを構築するための、適切に構築されたテンプレートを同定した。このテンプレートは、ウリジン化テンプレートとして調製され、そしてオリゴヌクレオチド集団の後の配列を、部位指向型変異誘発に使用した。
【０１７９】
ＧＧＧＡＡＣＧＡＴＡ−１９ａａ−ＧＡＴＧＡＧＡＡＧＣ
上記プライマー（配列番号３０）における配列１９ａａは、このプライマーが、１９個の非ドナーアミノ酸の各々をコードする１９個の異なるコドン配列からなる配列集団を特定するという事実を示している。これらのアミノ酸は、ＬＭ６０９の４９位には見出されないアミノ酸であり、そしてＬｙｓ以外の全てのアミノ酸を含む。これらの変異誘発から生じるクローンを、拾い上げ、そしてこれらのクローンによって発現される抗体を調製した。次いで、これらのサンプルを、ＥＬＩＳＡアッセイにおいてαｖβ_３に対する結合についてスクリーニングした。４９位にＡｒｇまたはＭｅｔアミノ酸のいずれかを有するクローンを、機能的に同定した。ＬＭ６０９移植重鎖可変領域のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を、図１Ａ（それぞれ、配列番号１および２）に示す。ＬＭ６０９移植軽鎖可変領域のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を、図７（それぞれ、配列番号３１および３２）に示す。
【０１８０】
（実施例ＶＩ）
（増強された活性を有するＬＭ６０９移植抗体の作製）
本実施例は、親ＬＭ６０９移植抗体と比較して、α_ｖβ_３に対する増加した親和性を有する抗体改変体を得るための、ＬＭ６０９移植抗体のインビトロ成熟を示す。
【０１８１】
インビトロでのＬＭ６０９移植抗体の親和性を最適化するために、Ｍ１３ファージシステムを使用した。このシステムは、機能抗体フラグメント（Ｆａｂ）のライブラリーの、効率的な合成、発現およびスクリーニングを可能にする。Ｉｇ重鎖およびＩｇ軽鎖の６つのＣＤＲの各々の寄与を、評価した。ＣＤＲは、配列可変性および抗体構造モデルの組み合わせに基づいて広く規定された（Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５２：６６０９−６６１６（１９７７）；Ｃｈｏｔｈｉａ ｅｔ ａｌ．，前出；ＭａｃＣａｌｌｕｍ ｅｔ ａｌ．，前出）。従って、長さが長いこと（２０アミノ酸）に起因して２つのライブライリーに分離されるＨ２以外は、１つのライブラリーを各ＣＤＲについて構築した。変異ＣＤＲを含む可変領域フレームワークは、図１ａ（配列番号２）に示される重鎖可変領域および図７（配列番号３２）に示される軽鎖可変領域であった。
【０１８２】
ＣＤＲを、図１ａ（配列番号２）に示される重鎖可変領域および図７（配列番号３２）に示される軽鎖可変領域から選択した。簡単に言うと、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．（前出）の番号付けシステムを使用して、ＣＤＲの変異誘発について選択した残基（表９）は、以下であった：軽鎖ＣＤＲ１（Ｌ１）中のＧｌｎ^２４〜Ｔｙｒ^３６；軽鎖ＣＤＲ２（Ｌ２）中のＬｅｕ^４６〜Ｓｅｒ^５６；軽鎖ＣＤＲ３（Ｌ３）中のＧｌｎ^８９〜Ｔｈｒ^９７；重鎖ＣＤＲ１（Ｈ１）中のＧｌｙ^２６〜Ｓｅｒ^３５；重鎖ＣＤＲ２（Ｈ２）中のＴｒｐ^４７〜Ｇｌｙ^６５；および重鎖ＣＤＲ３（Ｈ３）中のＡｌａ^９３〜Ｔｙｒ^ｌ０２。ライブラリーを、各ＣＤＲについて作製し、オリゴヌクレオチドは、各クローンにおいて単一のＣＤＲ残基が変異されるように設計した。Ｈ２の伸長した長さに起因して、残基４７〜５５（Ｈ２ａ）および５６〜６５（Ｈ２ｂ）をそれぞれ変異する２つのライブラリーを、この領域をカバーするように構築した。
【０１８３】
軽鎖ＣＤＲ３変異体を作製するためのテンプレートは、９２位にＧｌｙを含んだ。しかし、その後、この軽鎖ＣＤＲ３の９２位が、Ｇｌｙであることが偶然に推察され、ゆえに、この位置にＧｌｙを伴なって構築されるヒト化ＬＭ６０９移植抗体がもたらされることが、決定された。本来のＬＭ６０９配列が９２位にＡｓｎを含むことが、後にわかった。ＬＭ６０９移植抗体のＣＤＲに変異を導入するための本明細書中に記載される方法を用いて、軽鎖ＣＤＲ３の９２位にＡｓｎを有するＬＭ６０９移植抗体が、α_ｖβ_３結合活性を有することが見出され（表９を参照のこと）、これによって、機能的ＬＭ６０９移植抗体としてのＡｓｎ^９２の検証が確認された。従って、９２位にＧｌｙを有する軽鎖ＣＤＲ３を含む抗体であっても、Ａｓｎを有する軽鎖ＣＤＲ３を含む抗体であっても、α_ｖβ_３の結合において活性である。
【０１８４】
単一の変異をコードするオリゴヌクレオチドを、以前に記載されたように（Ｇｌａｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，前出）、各ＣＤＲ位置でＮＮ（Ｇ／Ｔ）を導入することによって合成した。この抗体ライブラリーを、以前に記載されたハイブリダイゼーション変異誘発（いくつかの改変を伴う）によってＭ１３１ＸＬ６０４ベクターにおいて構築した（Ｒｏｓｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２２６１１−２２６１８（１９９６）；Ｈｕｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４９：３９１４−３９２０（１９９２）；Ｋｕｎｋｅｌ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：４８８−４９２（１９８５）；Ｋｕｎｋｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１５４：３６７−３８２（１９８７））。手短に言うと、このオリゴヌクレオチドを、ウリジニル化ＬＭ６０９移植抗体テンプレート（これから、対応するＣＤＲが除去される）に対して２０：１のモル比で、８５℃で５分間変性し、５５℃で１時間ランピング（ｒａｍｐｉｎｇ）し、５５℃で５分間保持し、次いで氷上で冷却することによってアニールした。この反応を、重合およびＤＨ１０Ｂへのエレクトロポレーションによって伸長し、そしてＸＬ−１ブルーのローン（ｌａｗｎ）上に滴定した。このライブラリーは改変体のプールからなり、各クローンはＣＤＲ位置の１つに単一アミノ酸変化を含む。コドン塩基の変異誘発を利用して、全てのＣＤＲの全ての位置を同時に変異させ、各ＣＤＲ残基における２０アミノ酸全ての引き続く発現を生じた（Ｇｌａｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，前出）。ＣＤＲライブラリーは、２８８（Ｌ３）〜４１６（Ｌ１）のサイズの範囲の独特のメンバーであり、そして合計２３３６の改変体を含んだ。
【０１８５】
初期ライブラリーの効率的なスクリーニングを可能にするために、高度に感受性のプラークリフトアッセイ（捕捉リフト（ｃａｐｔｕｒｅ ｌｉｆｔ）と呼ばれる）を使用する（Ｗａｔｋｉｎｓ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５６（１９９８））。手短に言うと、ＬＭ６０９移植抗体改変体を発現するファージ発現ライブラリーを、改変したプラークリフトアプローチによって最初にスクリーニングし、ここでファージ感染細菌ローンに適用する前にニトロセルロースをヤギ抗ヒトκ抗体で予めコーティングし、そしてウシ血清アルブミンでブロックした。ファージ発現ＬＭ６０９移植抗体改変体Ｆａｂｓの捕捉に続いて、濾液を、１．０μｇ／ｍｌビオチン標識α_ｖβ_３と共に４℃で３時間インキュベートし、４回洗浄し、２．３μｇ／ｍｌのＮｅｕｔｒＡｖｉｄｉｎ−アルカリホスファターゼ（Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．；Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）と共に２５℃で１５分間インキュベートし、そして４回洗浄した。全ての希釈および洗浄を、結合緩衝液中で行った。α_ｖβ_３に結合した改変体を、０．４ｍＭの２，２’−ジ−ｐ−ニトロフェニル−５，５’−ジフェニル−３，３’−（３，３’−ジメトキシ−４，４’−ジフェニレン）ジテトラゾリウムクロリドおよび０．３８ｍＭの５−ブロモ−４−クロロ−３−インドキシホスフェート モノ−（ｐ−トルイジニウム）塩（ＪＢＬ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｉｎｃ．；Ｓａｎ Ｌｕｉｓ Ｏｂｉｓｐｏ，ＣＡ）を含む０．１ＭのＴｒｉｓ，ｐＨ９．５中で濾液を１０〜１５分間インキュベートすることによって同定した
ビオチン標識したα_ｖβ_３を産生するために、α_ｖβ_３レセプターを、以前に記載されたようにアフィニティークロマトグラフィーによってヒト胎盤から精製した（ＳｍｉｔｈおよびＣｈｅｒｅｓｈ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３：１８７２６−１８７３１（１９８８））。α_ｖβ_３をビオチン標識するために、精製したレセプターを、０．１％ ＮＰ−４０（結合緩衝液）を含む５０ｍＭのＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１．０ｍＭのＣａＣｌ_２中に透析し、そして１００倍モル過剰のスルホスクシンイミドビオチンと共に４℃で３時間インキュベートした。この反応を、５０ｍＭのエタノールアミンの添加によって終結した。
【０１８６】
ＬＭ６０９移植抗体改変体を発現したファージを、ヤギ抗ヒトκ鎖抗体でコートしたニトロセルロースフィルター上に選択的に捕捉し、ビオチン標識α_ｖβ_３で精査し、そしてＮｅｕｔｒＡｖｉｄｉｎ−アルカリホスファターゼを用いて検出した。最初に、ビオチン標識α_ｖβ_３を、ＬＭ６０９移植抗体親分子のみを発現するファージを含むリフト上で滴定した。続いて、ビオチン標識α_ｖβ_３の濃度を減少させて、かろうじて認知可能なシグナルを得た。この様式において、より高い親和性改変体を発現するクローンのみが、改変体ライブラリーのスクリーニングの間に容易に同定された。各ライブラリーからの２５００以上のクローンの徹底的な捕捉リフトスクリーニングに続いて、より高い親和性の３００の改変体を同定した（表８を参照のこと）。改善された親和性を示す最大数のクローンを、全てのＣＤＲにおいて同定された改善された親和性を有する改変体を介して、Ｈ３（１８５）およびＬ３（５２）のＣＤＲにおいて同定した。
【０１８７】
α_ｖβ_３結合活性を有することが捕捉リフトによって同定されたＬＭ６０９移植抗体改変体を、α_ｖβ_３への結合親和性、他のインテグリンを超えるα_ｖβ_３についての特異性、ならびにα_ｖβ_３会合および解離速度を決定するために、さらに特徴付けた。これらのアッセイについて、ＬＭ６０９移植抗体改変体の精製Ｆａｂを使用した。手短に言うと、Ｆａｂを、以前に記載されたように発現し、そして音響振動によって細胞膜周辺腔から放出した（Ｗａｔｋｉｎｓ ｅｔ ａｌ．，前出，１９９７）。１リットルの培養物から収集した細胞を、０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含む５０ｍＭ Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０（１０ｍｌ）に溶解した。Ｆａｂを１ｍｌのプロテインＡカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に結合させ、これを２５０ｍＭのＮａＣｌを含む５０ｍＭのグリシン（ｐＨ ８）で平衡化し、同じ緩衝液で洗浄し、そして１００ｍＭのグリシン（ｐＨ ３）の１０ｍｌで溶出して、１／１０の容積の１Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐＨ ８）とした。精製Ｆａｂを、以前に記載したように定量化した（Ｗａｔｋｉｎｓ ｅｔ ａｌ．，前出，１９９７）。
【０１８８】
ＬＭ６０９移植抗体改変体を、α_ｖβ_３への結合、ならびにα_ｖβ_５およびα_ＩＩｂβ_３と比較したα_ｖβ_３の結合の特異性について試験した。固定化α_ｖβ_３ならびに関連するインテグリンα_ｖβ_５およびα_ＩＩｂβ_３についてのＦａｂのＥＬＩＳＡ滴定のために、Ｉｍｍｕｌｏｎ ＩＩマイクロタイタープレートを、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ ７．４）、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＣａＣｌ_２、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１ｍＭ ＭｎＣｌ_２中の１μｇ／ｍｌの精製レセプターでコートし、１回洗浄し、そして５０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ ７．４）、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ Ｃａｌ_２、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２中の３％ ＢＳＡにおいて、２５℃で１時間ブロックした。血小板から精製したヒトα_ＩＩｂβ_３を、Ｅｎｚｙｍｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｓｏｕｔｈ Ｂｅｎｄ，ＩＮ）から入手し、そしてα_ｖβ_５を、以前に記載したようにα_ｖβ_３を枯渇した胎盤抽出物から精製した（Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１１００８−１１０１３（１９９０））。使用の直前に、このプレートを２回洗浄し、次いでＦａｂの種々の希釈物を用いて２５℃で１時間インキュベートした。このプレートを５回洗浄し、２０００倍に希釈したヤギ抗ヒトκアルカリホスファターゼを用いて２５℃で１時間インキュベートし、５回洗浄し、そして以前に記載したように展開した（Ｗａｔｋｉｎｓ ｅｔ ａｌ．，前出，１９９７）。全ての希釈および洗浄を、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．４）、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＣａＣｌ_２、および１ｍＭ ＭｇＣｌ_２において行った。
【０１８９】
表８：ＬＭ６０９移植抗体ＣＤＲライブラリーの捕捉リフトスクリ−ニング
【０１９０】
【表８】

^１ＤＮＡ配列に基づく独特のクローンの数。３２のコドンを使用して、各位置における２０のアミノ酸全てを表した。
^２ファージ発現ライブラリーを、ＸＬ−１ ブルー／寒天ローン上に、１００ｍｍの皿当たり５００〜１００のプラークにてプレーティングした。
^３陽性を、第２の捕捉リフトアッセイにおける最初のスクリーニングにおいて同定され、再プレーティングされ、そして確認されたクローンとして規定した。
^４溶解性Ｆａｂを、ＥＬＩＳＡ型式において固定化α_ｖβ_３に対して滴定した。滴定プロフィールの変曲点の比較に基づいて、３倍増大した親和性を示すクローンを、さらなる特徴付けのために選択した。
^５捕捉リフトによって同定された１８５の陽性クローンのうち９８を、固定化α_ｖβ_３への結合についてさらに特徴付けた。
【０１９１】
図８は、固定化α_ｖβ_３についての抗体改変体およびＬＭ６０９移植抗体Ｆａｂの滴定を示す。ＬＭ６０９移植抗体を含む細菌細胞溶解物（黒丸）、改善された親和性を有し、一次ライブラリーから単離した改変体（Ｓ１０２、黒四角；Ｙ１００、白四角；およびＹ１０１、白三角）もしくはコンビナトリアルライブラリーから単離した改変体（黒三角）、または無関係のＦａｂ（白丸）を、固定化α_ｖβ_３について滴定した。
【０１９２】
固定化α_ｖβ_３について滴定した改変体から得られた結合プロフィールの変曲点の比較は、複数のクローンが３倍より高く改善された親和性を示すことを実証し、これは半定量的な様式における捕捉リフトの利用の有効性を確証する（図８、四角および白三角を、黒丸と比較のこと）。捕捉リフトスクリーニングおよび引き続く固定化α_ｖβ_３への結合の特徴づけに基づいて、重鎖ＣＤＲおよび軽鎖ＣＤＲの両方が、α_ｖβ_３のＬＭ６０９移植抗体改変体との相互作用に直接関連することを結論付けた。
【０１９３】
ＤＮＡを、３倍より高く増大した結合を示すクローンから単離し、そして配列決定して、高親和性を生じる変異を同定した。ＤＮＡ配列決定を、単離した一本鎖ＤＮＡで行った。重鎖および軽鎖の可変領域遺伝子を、蛍光ジデオキシヌクレオチド終結法（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ；Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，ＣＡ）によって配列決定した。１０３の改変体の配列分析に基づいて、１４部位で培養された２３の独特の変異を同定した（表９）。有益な変異の部位の大部分を、重鎖ＣＤＲにおいて見出し、４つはＨ３に位置し、そしてＨ２（２ａと２ｂを合わせて）およびＨ１に各３つが位置していた。７つの異なりかつ有益なアミノ酸置換を、Ｈ３、チロシン残基１０２内の単一部位で同定した。この部位の置換の多様な性質は、チロシン残基１０２が、ＬＭ６０９移植抗体のα_ｖβ_３への結合を立体的に妨害し得ることを示唆する。この支持では、残基１０２のチロシンの代わりに他の芳香族アミノ酸（フェニルアラニン、ヒスチジン、およびトリプトファン）を発現する改変体は、増大した結合についてのスクリーニングに続いて決して単離されなかった。
【０１９４】
選択改変体の親和性を、さらに、表面プラスモン共鳴（ＢＩＡｃｏｒｅ）を利用して精製されたＦａｂの固定化されたα_ｖβ_３との会合および分離速度を測定することによって特徴付けた。手短にいえば、表面プラスモン共鳴（ＢＩＡｃｏｒｅ；Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を、α_ｖβ_３とＬＭ６０９移植抗体改変体との間の相互作用についての動力学的定数を決定するために使用した。精製されたα_ｖβ_３レセプターを、１０ｍＭの酢酸ナトリウム（ｐＨ４）中の１５μｇ／ｍｌのα_ｖβ_３の３０μｌを注入することによって、（１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）−カルボジイミド塩酸塩）／Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド−活性化センサーチップに固定化した。会合速度定数（Ｋ_ｏｎ）を得るために、５つの異なるＦａｂ濃度（５０ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、１００ｍＭのＮａＣｌ、２ｍＭのＣａＣｌ_２および１ｍＭのＭｇＣｌ_２中の５〜４０μｇ／ｍｌの範囲）における結合速度を、流速１０μｌ／分にて決定した。分離速度定数（Ｋ_ｏｆｆ）は、流速の増加（４０μｌ／分）における分離相を分析することによって得られた５つの測定結果の平均であった。センサーグラム（ｓｅｎｓｏｒｇｒａｍ）を、ＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ２．１プログラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を用いて分析した。残渣のＦａｂを、１０ｍＭのＨＣｌ、２ｍＭのＣａＣｌ_２および１ｍＭのＭｇＣｌ_２を用いる各測定の後に除去した。
【０１９５】
表９は、改変体すべてが、ＬＭ６０９移植抗体親分子より低いＫｄを示し、捕捉リフト（ｃａｐｔｕｒｅ ｌｉｆｔ）およびＥＬＩＳＡの両方と一致することを示す。会合および分離速度の分析は、改変された改変体の大部分がより遅い分離速度を有する一方で、同様な会合速度を有することを明らかにした。例えば、ＬＭ６０９移植抗体は、会合速度１８．０×１０^４Ｍ^−１ｓ^−１を有する一方で、改変体は、１６．７〜３１．８×１０^４Ｍ^−１ｓ^−１の範囲であった。対照的に、すべてのクローンは、ＬＭ６０９移植抗体（４．９７×１０^−３ｓ^−１）より遅く分離し、分離速度は、１．６倍（３．０３×１０^−３ｓ^−１）〜１１．８倍（０．４２×１０^−３ｓ^−１）遅い範囲である。
【０１９６】
これらの結果は、単一のアミノ酸置換基をＬＭ６０９移植抗体ＣＤＲに導入することが、親ＬＭ６０９移植抗体よりも、α_ｖβ_３について高い親和性を有する改変されたＬＭ６０９移植抗体を同定することを可能にすることを実証する。
【０１９７】
【表９】

（実施例ＶＩＩ）
（高親和性ＬＭ６０９移植抗体の産生）
この実施例は、α_ｖβ_３へのより高い親和性結合を生じる、ＬＭ６０９移植抗体のＣＤＲにおける単一のアミノ酸の変異を組合わせ、高親和性ＬＭ６０９移植抗体を産生し得ることを示す。
【０１９８】
ＬＭ６０９移植抗体の有益な変異のすべてのランダムな組み合わせは、＞１０^５改変体を含むコンビナトリアルライブラリーを産生し、これは、有効なスクリーニング方法論を必要とする。したがって、＞１０倍増強された親和性を示すクローンが互いに迅速に区別され得るか否かを決定するために、３〜１３倍の増強された親和性を示す改変体を、低濃度のビオチン化α_ｖβ_３を利用する捕捉リフトによって評価した。広範囲の濃度のα_ｖβ_３を用いて繰り返し試みたにも関わらず、捕捉リフトシグナルにおける一貫した差異は、観測されなかった。このために、より小さいコンビナトリアルライブラリーを構築し、続いて、ＥＬＩＳＡによってスクリーニングした。
【０１９９】
４つの異なるコンビナトリアルライブラリーを、２つの部位ハイブリダイゼーション変異誘発を利用することによって達成され得る最適数の組み合わせを評価するために構築した（図９）。手短にいえば、コンビナトリアルライブラリーを、野生型および有益な重鎖変異（Ｈ２、Ｌｅｕ^６０→Ｐｒｏ；Ｈ３、Ｔｙｒ^９７→Ｈｉｓ；Ｈ３、Ａｌａ^１０１→Ｔｙｒ；Ｈ３、Ｔｙｒ^１０２→Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ａｓｐ、Ｇｌｕ、Ｍｅｔ、Ｇｌｙ、Ａｌａ）の両方をコードする変質性オリゴヌクレオチドを合成することによって構築した。上記のように、２つの部位ハイブリダイゼーション変異誘発を利用することによって、オリゴヌクレオチドを、４０：１のモル比にてＬＭ６０９移植抗体および３つの軽鎖変異（図９；Ｌ１、Ｈｉｓ^３２→Ｐｈｅ；Ｌ３、Ｇｌｙ^９２→Ａｓｎ；Ｌ３、Ｈｉｓ^９６→Ｌｅｕ）から調製されたウリジン化テンプレートにアニーリングした。結果として、総２５６改変体を、４つのコンビナトリアルライブラリーサブセットにおいて合成した。
【０２００】
図９は、有益な変異のコンビナトリアルライブラリーの構築を示す。ＬＭ６０９移植抗体および３つの最適な軽鎖改変体（Ｆ３２、Ｎ９２、およびＬ９６）からのウリジン化テンプレートを調製した。２つの部位ハイブリダイゼーションを、２つの変性オリゴヌクレオチドを用いて実行し、これを設計して４つの異なる重鎖残基において有益な変異を導入した。
【０２０１】
ＬＭ６０９移植抗体および３つの軽鎖改変体（表９；Ｆ３２、Ｎ９２およびＬ９６）のウリジン化テンプレート、野生型残基をコードする変性オリゴヌクレオチドおよび最も有益な重鎖変異（表９；ｐ６０、Ｈ９７、Ｙ１０１、Ｓ１０２、Ｔ１０２、Ｄ１０２、Ｅ１０２、Ｍ１０２、Ｇ１０２、およびＡ１０２）の以下の調製物を、軽鎖テンプレートにハイブリダイズして、４つのコンビナトリアルライブラリーを提供し、各々は、６４の独自の改変体を含有した。潜在的に、複数の変異の組み合わせは、親和性に対して有害な効果を有し得、従って、有益な組み合わせの同定を妨げ、わずかな部位における変異を生じ得る。この理由のために、ＬＭ６０９移植抗体親分子によって発現されたアミノ酸は、コンビナトリアルライブラリー中の各位置において含まれた。このアプローチを利用することによって、３つのＣＤＲ（Ｈ２およびＨ３と各々組み合わせたＬ１またはＬ３）の同時のコンビナトリアル変異誘発を達成した。配列分析に基づいて、２つの部位ハイブリダイゼーション変異誘発を、約５０％の効率で達成した。
【０２０２】
コンビナトリアルライブラリーをスクリーニングするために、可溶性Ｆａｂを、発現しかつランダムに選択されたクローンで感染された小スケール（＜１ｍｌ）の細菌培養物のペリプラズムから放出した。可変の発現レベルを観察したが、非精製の改変体の均一な量を、重鎖のカルボキシ末端上に存在するペプチドタグを通してマイクロタイタープレート上で捕捉した。手短にいえば、コンビナトリアルＬＭ６０９移植抗体ライブラリーを、小スケールの細菌培養物で産生された抗体改変体の相対的親和性の決定を可能にするＥＬＩＳＡによってスクリーニングした（Ｗａｔｋｉｎｓら、Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５３：３７−４５（１９９７））。Ｉｍｍｕｌｏｎ ＩＩマイクロタイタープレート（Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ；Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ，ＶＡ）を、１０μｇ／ｍｌの７Ｆ１１モノクローナル抗体でコーティングし、これにより、ＬＭ６０９移植抗体改変体重鎖のカルボキシ末端上のペプチドタグを認識する（Ｆｉｅｌｄら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．８：２１５９−２１６５（１９８８））。Ｅ．ｃｏｌｉ．溶解物からのＦａｂの捕捉の後、プレートを０．５〜１μｇ／ｍｌのビオチン化α_ｖβ_３と共に２５℃にて１時間インキュベートした。このプレートを７回洗浄し、０．５Ｕ／ｍｌのストレプトアビジン−アルカリホスファターゼ（１０００Ｕ／ｍｌ；Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ；Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）と共に２５℃にて１５分間インキュベートし、７回洗浄し、そして上記されるように（Ｗａｔｋｉｎｓら、前出、１９９７）展開した。すべての希釈および洗浄は、結合緩衝液中で行った。
【０２０３】
上記されるように（Ｗａｔｋｉｎｓら、前出、１９９７）、このＥＬＩＳＡスクリーニング方法は、ビオチン化α_ｖβ_３およびストレプトアビジン−アルカリホスファターゼと共のインキュベーションの後、改変体の相対親和性の迅速かつ直接の比較を可能にした。十分なＦａｂ多様性がサンプリングされたことを確実にするために、１０００のランダムに選択されたクローンを各コンビナトリアルライブラリーからスクリーニングした。増強されたＥＬＩＳＡシグナルを示す改変体を、固定化α_ｖβ_３に結合するためにさらに特徴付け（図８、黒三角）、そして変異を同定するために配列決定した（表１０）。
【０２０４】
４つのコンビナトリアルライブラリーのスクリーニングにより、最初のライブラリーのスクリーニングにおいて同定される個々の変異に対して有意に結合を改善する変異の１４個の独特な組み合わせを同定した。１次スクリーニングからの最も良いクローンは、１２．５倍の親和性の増加を有するが、コンビナトリアルライブラリーをスクリーニングすることから単離される１４個の独特な組み合わせは、親ＬＭ６０９移植抗体より大きい、１８〜９２倍の範囲の親和性を示した。Ｈ２変異およびＨ３変異からなるこれらの改変の大多数は、Ｌ１変異およびＬ３変異と組み合わせた。野生型軽鎖との重鎖変異の有益な組み合わせもまた同定されるが、他のコンビナトリアル改変体と同じ程度まで改善された親和性を生じなかった。改変体は、主に２〜４の変異を含み、１つのクローン（Ｃ２９）は、５つの変異を含んだ。各改変体における変異の総数と得られた親和性との間に直接の相関を観察しなかった。例えば、クローンＣ３７の結合は、親分子に対して９２倍増強され、そして３つの変異の組み合わせを通じて達成したが、クローンＣ２９は、５つの変異の組み合わせを通じて約５５倍大きい親和性を達成した。わずか２つの変異の組み合わせから得られる、５０倍より大きい増強された親和性を示す複数の改変体を、同定した（２Ｇ４、１７、およびＶ３５７Ｄ）。
【０２０５】
改善された親和性を有するコンビナトリアルクローンの全ては、１０倍より遅い解離速度を示し、おそらくスクリーニングにおける長いインキュべーション工程により導入される選択の偏りを反映した。さらに、Ｌ９６軽鎖の変異に基づくライブラリーから単離されるコンビナトリアル改変体の全てはまた、２〜４倍大きい会合速度を示した。以前、抗体レパートリーは、インビボの親和性成熟の間に、より高い会合速度を示す免疫グロブリンに移動することを示した（ＦｏｏｔｅおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ、Ｎａｔｕｒｅ ３５２：５３０−５３２（１９９１））。従って、改変体のＬ９６サブセットは、Ｂリンパ球増殖が、速度論的選択に供されるインビボの親和性変異プロセスをより厳密に模倣し得る。
【０２０６】
ＬＭ６０９移植抗体は、特異的にα_Ｖβ_３複合体に結合し、そして別々にα_Ｖ鎖またはβ_３鎖のいずれも認識しない。改変体をさらに特徴付けるために、クローンを、関連するインテグリン（α_ＩＩｂβ_３およびα_Ｖβ_５）との反応性についてスクリーニングした。試験される全ての改変体は、α_ＩＩｂβ_３およびα_Ｖβ_５の両方と反応せず、Ｆａｂおよびレセプターの相互作用を実質的に変更しない改善された結合と一致した。
【０２０７】
改変体の親和性の増加は、より大きい生物学的活性を生じるかどうかの決定に対する第１の工程として、親和性の範囲を示す改変体を、固定されたα_Ｖβ_３レセプターに対する天然のリガンド、フィブリノゲン、の結合を阻害する能力についてアッセイした。簡単には、ＬＭ６０９移植抗体改変体を、ビオチン化ヒトフィブリノゲンの結合（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ，Ｌａ Ｊｏｌｌａ，ＣＡ）を、０．５μｇ／ｍｌ ＮｅｕｔｒＡｖｉｄｉｎアルカリホスファターゼ（Ｓｍｉｔｈら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１２２６７−１２２７１（１９９０））を用いて検出したことを除いて、以前記載されるようにリガンド結合の阻害について試験した。
【０２０８】
【表１０】

これらの競合アッセイの結果を、図１０に示す。図１０Ａは、固定されたα_Ｖβ_３に対するフィブリノゲン結合の阻害を示す。固定されたα_Ｖβ_３を、０．１μｇ／ｍｌビオチン化フィブリノゲンおよび種々の濃度の、ＬＭ６０９移植抗体（白丸）、Ｓ１０２（黒丸）、Ｆ３２（白三角）、またはＣ５９（黒三角）と共に、３時間、３７℃でインキュベートした。結合してないリガンドおよびＦａｂを、洗浄により除去し、そして結合したフィブリノゲンを、ＮｅｕｔｒｏＡｖｉｄｉｎアルカリホスファターゼ結合体と共にインキュべーション後、定量した。図１０Ｂは、フィブリノゲン結合の阻害と、改変体の親和性との相関を示す。固定されたα_Ｖβ_３へのフィブリノゲンの結合を５０％まで阻害するのに必要とされる改変体の濃度（ＩＣ_５０）を、親和性（Ｋｄ）の関数としてプロットした。
【０２０９】
図１０Ａにおいて示されるように、より高い親和性の改変体は、レセプターのリガンド結合部位をブロックするのにより有効であった（ＬＭ６０９移植抗体（白丸）を任意の改変体と比較する）。０．３〜２７ｎｍの範囲の親和性（Ｋｄ）を示す１０個の改変体の引き続く分析は、親和性と、フィブリノゲンの結合を阻害する能力との間に優れた相関（ｒ^２＝０．９７６）を示した（図１０Ｂ）。さらに、改変体を、レセプターに対するビトロネクチンの結合の阻害について試験した。フィブリノゲンと類似して、改変体は、親分子より相互作用を阻害するのにより有効であった。従って、関連するインテグリンレセプターとの交差反応性研究と一致して、親和性を増加する変異体は、抗体がレセプターと相互作用する様式を実質的に変更するようではなかった。
【０２１０】
α_Ｖβ_３レセプターを発現するＭ２１ヒト黒色腫細胞のフィブリノゲンへの接着を阻害する改変体の能力を、試験した。ＬＭ６０９移植抗体改変体によるフィブリノゲンへの４×１０^４ Ｍ２１細胞の接着の阻害を、以前に記載されるように実施した（Ｌｅａｖｅｓｌｅｙら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１１７：１１０１−１１０７（１９９２））。精製されたフィブリノゲンおよびα_Ｖβ_３レセプターを用いたリガンドの競合研究と類似して、より高い親和性の改変体が、ＬＭ６０９移植抗体であるよりも細胞接着を阻害するのに一般的により有効であった（図１１）。図１１は、フィブリノゲンへのＭ２１ヒト黒色腫細胞接着の阻害を示す。細胞および種々の濃度の、ＬＭ６０９移植抗体Ｆａｂ（黒三角）、Ｓ１０２（白丸）、Ｇ１０２（黒丸）、またはＣ３７（白三角）を、１０μｇ／ｍｌフィブリノゲンを用いてコートされた９６ウェル細胞培養プレートに添加した。３７℃にて３５分間のインキュベーション後、結合されない細胞を、洗浄により除去し、接着細胞を、クリスタルバイオレット染色により定量した。
【０２１１】
インタクトなＬＭ６０９移植抗体Ｉｇは細胞接着を阻害するが、Ｆａｂを発現するファージは、１ｍｇ／ｍｌもの高濃度で、細胞接着に影響しなかった（図１１、黒三角）。コンビナトリアルライブラリーから単離され、かつＬＭ６０９移植抗体Ｆａｂより約９０倍高い親和性を示すクローンＣ３７は、細胞接着を完全に阻害した（図１１、白三角）。改変体Ｇ１０２は、中程度に高い親和性（２．２倍増強された）を有し、そして細胞接着を阻害したが、Ｃ３７ほど有効的ではなかった（図１１、黒丸）。驚くべきことに、ＬＭ６０９移植抗体より４．６倍高い親和性を有する、クローンＳ１０２（図１１、白丸）は、細胞接着を阻害するのに有効ではなく、クローンＧ１０２およびＳ１０２は、異なってα_Ｖβ_３レセプターと相互作用することを示唆した。
【０２１２】
これらの結果は、α_Ｖβ_３へのより高い結合親和性を示すＬＭ６０９移植抗体を生じる、単一のアミノ酸変異を組み合わせることによって、親ＬＭ６０９移植抗体より９０倍より高い結合親和性を有する高い親和性のＬＭ６０９移植抗体変異体の同定が可能となることを示す。
【０２１３】
（実施例ＶＩＩＩ）
（高い親和性の増強されたＬＭ６０９移植抗体の生成）
この実施例は、増大した安定性を有する高い親和性の増強されたＬＭ６０９移植抗体の生成を記載する。
【０２１４】
高い親和性のクローン６Ｈ６（実施例ＶＩＩにおける表１０を参照のこと）を、さらに特徴付け、そして、いくつかのタンパク質分解を示すことを見出した。従って、増大した安定性を有する改変体を同定するために、３２個のコドンの改変体を、６Ｈ６の重鎖ＣＤＲ３（配列番号９４）中の、位置Ａｓｎ^９６およびＨｉｓ^９７（Ｋａｂａｔら（前出）に従って番号付けした）の各々で、同時に導入し、そして改変体を、α_Ｖβ_３結合活性についてスクリーニングした。結合活性を保持するこれらの改変体を、配列決定し、次いで、タンパク質分解に対する感受性についてスクリーニングした。改変体６Ｈ６ＬＨを、α_Ｖβ_３結合活性およびタンパク質分解に対する耐性を示すとして同定した（表１１および１５を参照のこと）。高い親和性α_Ｖβ_３結合活性を有する６Ｈ６ＬＨ改変体は、Ａｓｎ^９６の代わりにＬｅｕを有したが、Ｈｉｓ^９７を保持した。
【０２１５】
６Ｈ６ＬＨ改変体は、α_Ｖβ_３への高い親和性結合を示したが、この親和性は、６Ｈ６改変体よりいくらか低かった（表１５を参照のこと）。従って、高い親和性結合を与えることが見出されたＣＤＲ変異体を、６Ｈ６ＬＨ改変体を組み合わせた。具体的に、６Ｈ６の軽鎖ＣＤＲ１中のＨｉｓ^３２を、クローンＦ３２（表９を参照のこと）におけるように、Ｐｈｅに変異させて、クローン２２３６／６Ｈ６ＬＨを作製した（表１３を参照のこと）。さらなる改変体において、６Ｈ６の重鎖ＣＤＲ２中のＬｅｕ^６１をまた、クローンＰ６０（表９を参照のこと）におけるように、Ｐｒｏに変異させて、クローン２２３６−３８／６Ｈ６ＬＨ（表１１を参照のこと）を作製した。
【０２１６】
表１１および１２には、それぞれ、６Ｈ６の増強された高い親和性改変体の重鎖ＣＤＲのアミノ酸配列およびヌクレオチド配列が示される。表１３および１４には、それぞれ、６Ｈ６の増強された高い親和性改変体の軽鎖ＣＤＲのアミノ酸配列およびヌクレオチド配列が示される。示されるＣＤＲは、Ｃｈｏｔｈｉａ（前出）による。６Ｈ６改変体とは異なるアミノ酸およびコドンを太字で示す。
【０２１７】
【表１１】

【０２１８】
【表１２】

【０２１９】
【表１３】

【０２２０】
【表１４】

α_Ｖβ_３結合の速度論を、本質的に実施例ＶＩに記載されるような表面プラズモン共鳴（ＢＩＡＣＯＲＥ）を使用して、各クローンについて、決定した。これらのクローンの結合速度論および親和性を、表１５に示す。
【０２２１】
【表１５】

表１５に示されるように、クローン６Ｈ６ＬＨ、２２３６／６Ｈ６ＬＨ、および２２３６−３８／６Ｈ６ＬＨは、６Ｈ６に類似する親和性を有した。これらの実験における６Ｈ６に対する親和性は、０．６２ｎＭであり、先の実験において観測された０．４ｎＭと比較した（実施例ＶＩＩの表１０を参照のこと）。この差は、観測されたｋ_ｏｎに起因し、これは、実験の変動内である。オン速度は、６Ｈ６、６Ｈ６ＬＨ、２２３６／６Ｈ６ＬＨ、および２２３６−３８／６Ｈ６ＬＨ間で非常に類似した。観測されたｋｄにおける小さな差は、ｋ_ｏｆｆにおける差に、主として起因するようであった。
【０２２２】
これらの結果は、α_Ｖβ_３に対する高い親和性および蛋白分解に対する耐性を示す、さらなる増強されたＬＭ６０９移植抗体を記述する。
【０２２３】
本出願を通して、種々の刊行物を参照してきた。これらの刊行物の開示は、それらの全体において、本発明が属する技術水準をより完全に記述するために、本出願において、本明細書中で参考として援用される。
【０２２４】
本発明を、開示された実施形態を参照して記載してきたが、当業者は、詳述された特定の実施形態が、本発明を例示するのみであることを容易に理解する。種々の改変が、本発明の意図から逸脱することなくなされ得ることが理解されるべきである。従って、本発明は、上記の特許請求の範囲によってのみ制限される。
【図面の簡単な説明】
【図１】
図１は、抗体Ｖｉｔａｘｉｎの可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す。図１Ａは、ビタシキン重鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す（Ｇｌｎ１−Ｓｅｒ１１７；それぞれ配列番号１および２）を示し、一方図１Ｂは、ビタシキン軽鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す（Ｇｌｎ１−Ｌｙｓ１０７；それぞれ配列番号３および４）。
【図２】
図２は、モノクローナル抗体ＬＭ６０９の可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す。図２Ａは、ＬＭ６０９重鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す（それぞれ配列番号５および６）を示す。可変領域は、アミノ酸Ｇｌｕ１〜Ａｌａ１１７に広がる。図２Ｂは、ＬＭ６０９軽鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す（それぞれ配列番号７および８）。軽鎖の可変領域は、アミノ酸Ａｓｐ１〜Ｌｙｓ１０７に広がる。
【図３】
図３は、ＬＭ６０９ ＩｇＧ結合の組換えＬＭ６０９Ｆａｂを有するインテグリンα_Ｖβ_３に対する競合阻害を示す。可溶性組換えマウスＬＭ６０９Ｆａｂフラグメントを、Ｍ１３バクテリオファージクローンであるｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２およびｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ ２９の周辺質画分から調製した。周辺質サンプルを連続希釈し、１ｎｇ／ｍｌ、５ｎｇ／ｍｌ、または５０ｎｇ／ｍｌのＬＭ６０９ ＩｇＧのいずれかと共に混合し、次いで精製されたα_Ｖβ_３でコーティングされた９６ウェルプレートにおいてインキュベートした。プレートを洗浄し、そしてアルカリホスファターゼと結合体化されたヤギ抗マウスＦｃ特異的抗体で検出されるＬＭ６０９ ＩｇＧと結合させた。クローンｍｕＬＭ６０９Ｍ１３ １２により産生されるＦａｂは、１ｎｇ／ｍｌ ＬＭ６０９ ＩｇＧ結合および５ｎｇ／ｍｌ ＬＭ６０９ ＩｇＧ結合の両方を、１：２７希釈よりも大きな全ての濃度のＦａｂにおいて阻害する。
【図４Ａ】
図４は、Ｖｉｔａｘｉｎ結合特異性の特徴付けを示す。図４Ａは、インテグリンα_ＩＩｂβ_３およびα_Ｖβ_５と比較される、インテグリンα_Ｖβ_３へのＶｉｔａｘｉｎの特異的結合を示す。
【図４Ｂ】
図４は、Ｖｉｔａｘｉｎ結合特異性の特徴付けを示す。図４Ｂは、Ｖｉｔａｘｉｎによるα_Ｖβ_３へのＬＭ６０９結合の競合阻害を示す。
【図４Ｃ】
図４は、Ｖｉｔａｘｉｎ結合特異性の特徴付けを示す。図４Ｃは、Ｖｉｔａｘｉｎによるα_Ｖβ_３へのフィブリノゲン結合の競合阻害を示す。
【図５Ａ】
図５は、Ｖｉｔａｘｉｎによるα_Ｖβ_３媒介性細胞接着（５Ａ）および細胞移動（５Ｂ）の競合を示す。
【図５Ｂ】
図５は、Ｖｉｔａｘｉｎによるα_Ｖβ_３媒介性細胞接着（５Ａ）および細胞移動（５Ｂ）の競合を示す。
【図６Ａ】
図６は、新生血管形成のＶｉｔａｘｉｎ媒介性阻害に起因する腫瘍増殖の減少を示す。図６ＡはＶｉｔａｘｉｎ処理後に、ニワトリ絨毛尿膜（ＣＡＭ）上で増殖するα_Ｖβ_３ネガティブＦｇおよびＨＥｐ−３ヒト腫瘍フラグメントの阻害を示す。
【図６Ｂ】
図６は、新生血管形成のＶｉｔａｘｉｎ媒介性阻害に起因する腫瘍増殖の減少を示す。図６Ｂは、移植後１日目に２つの異なるＶｉｔａｘｉｎ用量を投与されたウサギに皮下移植されたＶｘ２癌の増殖阻害を示す。
【図６Ｃ】
図６は、新生血管形成のＶｉｔａｘｉｎ媒介性阻害に起因する腫瘍増殖の減少を示す。図６Ｃは、４つの異なるＶｉｔａｘｉｎ用量を移植後７日目に最初に投与したことを除いて、図６Ｂの場合と同様に、Ｖｘ２腫瘍増殖阻害を示す。
【図７】
図７は、ＬＭ６０９移植抗体フラグメントの軽鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列を示す（Ｇｌｕ−Ｌｙｓ１０７；それぞれ配列番号３１および３２）。軽鎖可変領域の４９位は、少なくともＡｒｇまたはＭｅｔのいずれかであり得る。ＬＭ６０９移植抗体フラグメントの重鎖可変領域のヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列は、図１Ａに示される（それぞれ配列番号１および２）。
【図８】
図８は、固定化したα_ｖβ_３上のＬＭ６０９グラフト化抗体改変体およびＬＭ６０９グラフト化Ｆａｂの力価測定を示す。ＬＭ６０９グラフト化抗体（黒丸）、一次ライブラリーから単離した親和性が改善されたＬＭ６０９グラフト化抗体改変体（Ｓ１０２、黒四角；Ｙ１００、白四角；およびＹ１０１、白三角）、もしくはコンビナトリアルライブラリーから単離した親和性が改善されたＬＭ６０９グラフト化抗体改変体（黒三角）、または無関係のＦａｂ（白丸）を含有する細菌細胞溶解物を、固定化α_ｖβ_３上で力価測定した。
【図９】
図９は、複数のアミノ酸置換を含有する増強されたＬＭ６０９グラフト化抗体改変体のコンビナトリアルライブラリーの構築を示す。
【図１０】
図１０は、ＬＭ６０９グラフト化抗体改変体による、α_ｖβ_３に対するフィブリノーゲン結合の阻害を示す。図１０Ａは、固定化α_ｖβ_３に対するフィブリノーゲン結合の阻害を示す。図１０Ｂは、抗体改変体の親和性とフィブリノーゲン結合の阻害との相関を示す。
【図１１】
図１１は、ＬＭ６０９グラフト化抗体改変体によるフィブリノーゲンへのＭ２１ヒト黒色腫細胞接着の阻害を示す。１０μｇ／ｍｌのフィブリノーゲンをコーティングした基板への細胞結合をＬＭ６０９グラフト化Ｆａｂ（黒三角）または増強したＬＭ６０９グラフト化Ｆａｂ Ｓ１０２（白丸）、Ｇ１０２（黒丸）、もしくはＣ３７（白三角）の種々の濃度の存在下で評価した。[0001]
The present invention relates generally to integrin-mediated diseases, and more particularly to α _V β ₃ Nucleic acids encoding inhibitory monoclonal antibodies and α _V β ₃ CDR-grafted α for therapeutic treatment of mediated diseases _V β ₃ Relates to inhibitory antibodies.
[0002]
Integrins are a class of cell adhesion receptors that mediate both cell-cell and cell-extracellular matrix adhesion events. Integrins consist of heterodimeric polypeptides, where the α single chain polypeptide associates non-covalently with the β single chain. Currently, there are about 14 distinct α-chain polypeptides and at least about 8 different β-chain polypeptides that make up the integrin family of cell adhesion receptors. In general, different binding specificities and tissue distributions result from unique combinations of α and β chain polypeptides or integrin subunits. The family to which a particular integrin is associated is usually characterized by a β subunit. However, the ligand binding activity of integrins is mostly affected by the α subunit. For example, vitronectin binding integrin is α _V Includes integrin subunit.
[0003]
At present, vitronectin binding integrins have at least three different α _V It is known to consist of contained integrins. These α _V As the contained integrin, α _V β ₃ , Α _V β ₁ And α _V β ₅ All of which exhibit different ligand binding specificities. For example, in addition to vitronectin, α _V β ₃ Binds to a variety of extracellular matrix proteins, including fibronectin, fibrinogen, laminin, thrombospondin, von Willebrand factor, collagen, osteopontin and bone sialoprotein I. Integrin alpha _V β ₁ Binds fibronectin, osteopontin and vitronectin, whereas α _V β ₅ Is known to bind vitronectin and osteopontin.
[0004]
As a cell adhesion receptor, integrins are involved in various physiological processes, including, for example, cell adhesion, cell migration and cell proliferation. Different integrins play different roles in each of these biological processes, and inappropriate regulation of their function or activity can lead to various pathological conditions. For example, inappropriate endothelial cell proliferation during tumor neovascularization has been found to be mediated by cells expressing vitronectin-binding integrins. In this regard, vitronectin binding integrin α _V β ₃ Inhibition of this process also inhibits tumor neovascularization in this process. With this same criterion, α _V β ₃ Has also been shown to mediate abnormal cell proliferation associated with restenosis and granulation tissue development in skin wounds, for example. α _V β ₃ Additional diseases or pathological conditions mediated or affected by, for example, metastases, osteoporosis, age-related muscle degeneration and diabetic retinopathy, and inflammatory diseases (eg, rheumatoid arthritis and psoriasis) No. Thus, agents that can specifically inhibit vitronectin binding integrins are useful for therapeutic treatment of disease.
[0005]
Many integrins mediate their cell adhesion functions by recognizing the tripeptide sequence Arg-Gly-Asp (RGD) found in many extracellular matrix proteins. Various approaches have been attempted to design drugs that mimic this sequence that targets specific integrin-mediated pathologies. Such approaches include, for example, the use of RGD-containing peptides and peptide analogs that depend on the specificity conferred by sequences flanking the RGD core tripeptide sequence. Although there are some limited successes, most RGD-based inhibitors are, at best, selective for targeted integrins and, therefore, for other untargeted integrins. It has been shown to be somewhat cross-reactive. Thus, such cross-reactive inhibitors lack the specificity required for use as an effective therapeutic. This is the previously identified integrin α _V β ₃ This is especially true for inhibitors.
[0006]
Monoclonal antibodies, on the other hand, exhibit the specificity required to be used as an effective therapeutic. Antibodies also have the advantage that they can be routinely raised against essentially any desired antigen. Furthermore, with the development of combinatorial libraries, antibodies are now produced faster and more efficiently than by methods previously used within the art. The use of combinatorial methodologies also allows for the selection of the desired antibody, with the simultaneous isolation of the nucleic acid encoding the heavy chain and the nucleic acid encoding the light chain. Thus, further modifications can be made to the combination antibody without incorporating an additional cloning step.
[0007]
Despite the potential advantages associated with the use of monoclonal antibodies as therapeutics, these molecules still have drawbacks in that they are derived almost exclusively from non-human mammalian organisms. Therefore, their use as therapeutic agents is limited by the fact that they normally elicit a host immune response. Methods for replacing the antigen binding site or complementarity determining region (CDR) of a non-human antibody within a human framework are described. Such methods will vary depending on which amino acid residues are to be replaced as CDRs and which framework residues have to be changed to maintain binding specificity. In this regard, proper orientation of the β-sheet structure, precise packing of the heavy and light chain interfaces and proper conformation of the CDRs maintain antigen specificity and affinity within the implanted antibody It is understood that everything is important. However, all of these methods require knowledge of the nucleotide and amino acid sequences of non-human antibodies and the effectiveness of properly designed human frameworks.
[0008]
Accordingly, a need exists for the efficacy of nucleic acids encoding integrin inhibitory antibodies that can be used as compatible therapeutics in humans. α _V β ₃ For mediated diseases, the present invention fulfills this need and provides related advantages as well.
[0009]
(Summary of the Invention)
The present invention relates to α _V β ₃ Alternatively, there is provided an enhanced LM609-grafted antibody exhibiting selective binding affinity for a functional fragment thereof. The present invention also provides nucleic acid molecules encoding enhanced LM609 grafted antibodies. α _V β ₃ By contacting with the enhanced LM609 grafted antibody _V β ₃ Further provided is a method of inhibiting the function of
[0010]
(Detailed description of the invention)
The present invention relates to nucleic acids encoding the monoclonal antibody (MAb) LM609. This antibody is integrin alpha _v β ₃ Specifically recognizes and inhibits its functional activity. The invention also relates to nucleic acids encoding non-mouse transplanted forms of LM609 and polypeptides comprising non-mouse transplanted forms of LM609. These grafted antibodies retain the binding specificity and inhibitory activity of the parent mouse antibody LM609. The invention further relates to optimized forms of the LM609-grafted antibody that exhibit increased binding affinity and specificity as compared to the non-mouse parent form of the LM609-grafted antibody.
[0011]
In one embodiment, a hybridoma expressing LM609 was used as a source for generating and cloning cDNA encoding LM609. The cDNAs encoding the heavy and light chains were sequenced and their cDNA regions were replaced in the human antibody framework to generate a non-mouse form of the antibody. CDR replacement or grafting was performed by codon base mutagenesis to generate a combinatorial antibody Fab library consisting of members displaying alternative residues at specific positions. Screening of the library resulted in the isolation of Vitaxin. As a graft antibody containing human framework sequences, Vitaxin is unlikely to elicit a host immune response, and _v β ₃ It can be used advantageously for the treatment of mediated diseases.
[0012]
As used herein, the term "monoclonal antibody LM609" or "LM609" is described in Cheresh, D .; A. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 6471-6475 (1987) and Cheresh and Spiro J. et al. Biol. Chem. 262: 17703-17711 (1987). _v β ₃ Is intended to mean a mouse monoclonal antibody specific for. LM609 was generated on M21 cells. And LM609 is currently integrin α _v β ₃ Reacts with the M21 cell adhesion receptor known as LM609 is α _v β ₃ Inhibits the binding of M21 cells to ligands such as vitronectin, fibrinogen and von Willebrand factor (Cheresh and Spiro, supra) and α _v β ₃ Mediated pathology (eg, tumor-induced angiogenesis (Brooks et al., Cell 79: 1157-1164 (1994), development of granulated tissue in skin wounds (Clark et al., Am. J. Pathology, 148: 1407-1421) (1996) and smooth muscle cell migration as occurs during restenosis (Choi et al., J. Vascular Surg., 19: 125-134 (1994); Jones et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 93: 2482-). 2487 (1996)).
[0013]
As used herein, the term "Vitaxin" is intended to refer to a non-mouse antibody or a functional fragment thereof having substantially the same heavy and light chain CDR amino acid sequences as found in LM609. Is done. The term “Vitaxin” when used in reference to a heavy or light chain polypeptide is a CDR amino acid sequence of a heavy or light chain that is substantially the same as found in the heavy or light chain of LM609, respectively. It is intended to refer to a non-mouse heavy or light chain or a functional fragment thereof having the following: When used with reference to a functional fragment, not all LM609 CDRs need be indicated. Rather, it is intended that only those CDRs normally present in the antibody portion corresponding to the functional fragment be referred to as the LM609 CDR amino acid sequence in the Vitaxin functional fragment. Similarly, the use of the term “Vitaxin” in reference to an encoding nucleic acid encodes a non-mouse antibody or functional fragment having substantially the same nucleotide sequence as the heavy and light chain CDR nucleotide sequences and is found in LM609 It is intended to refer to nucleic acids that encode substantially the same CDR amino acid sequence as those.
[0014]
As used herein, the term “LM609-grafted antibody” has the heavy and light chain CDR amino acid sequences substantially the same as those found in LM609, and is described in Kabat et al., US Pat. S. Dept. of Health and Human Services, "Sequences of Proteins of Immunological Interest" (1983), and is intended to refer to a non-mouse antibody or a functional fragment thereof without substitution of the LM609 amino acid residue outside of the CDR. You. The terms "LM609 grafted antibody" or "LM609 grafted" when used in reference to heavy or light chain polypeptides refer to substantially the same light chain as found in the heavy or light chain of LM609, respectively. Or a non-mouse heavy or light chain or a functional fragment thereof, having the CDR amino acid sequence of the heavy chain and no substitution of the LM609 residue outside of the CDR as defined by Kabat et al. Is intended. When used with reference to a functional fragment, not all LM609 CDRs need be indicated. Rather, it is intended that only those CDRs normally present in the antibody portion corresponding to the functional fragment be referred to as the LM609 CDR amino acid sequence in the LM609 grafted functional fragment. Similarly, the term "LM609 grafted antibody" or "LM609 grafted" as used in reference to the encoding nucleic acid refers to a non-mouse in which there is no substitution of the LM609 amino acid outside of the CDR, as defined by Kabat et al. Encodes an antibody or functional fragment and has a nucleotide sequence substantially identical to the CDR nucleotide sequences of the heavy and light chains, and was found in LM609, as defined by Kabat et al., Supra. It is intended to refer to nucleic acids that encode substantially the same CDR amino acid sequence as those.
[0015]
The terms "grafted antibody" or "grafted" when used in reference to heavy or light chain polypeptides or functional fragments thereof, refer to substantially the same heavy or light chain CDRs of the donor antibody, respectively. And functional fragments thereof, and has no substitution of donor amino acid residues outside of the CDRs as defined by Kabat et al. (Supra). When used with reference to a functional fragment, not all donor CDRs need be indicated. Rather, it is intended that only those CDRs normally present in the antibody portion corresponding to the functional fragment be referred to as the donor CDR amino acid sequence in the functional fragment. Similarly, the terms “graft antibody” or “graft” as used in reference to the encoding nucleic acid refer to an antibody or function as defined by Kabat et al., Supra, in which there is no substitution of the donor amino acid outside of the CDRs. And has substantially the same nucleotide sequence as the CDR nucleotide sequences of the heavy and light chains, and, as defined by Kabat et al., Supra, those found in the donor antibody. It is intended to refer to nucleic acids that encode substantially the same CDR amino acid sequence.
[0016]
The meaning of the above terms is intended to include minor changes and modifications in the antibody, as long as the function remains intact. Functional fragments (eg, Fab, F (ab) ₂ , Fv, single chain Fv (scFv), etc.) are also included within the definitions of the terms LM609 and Vitaxin. Such functional fragments are well-known to those skilled in the art. Accordingly, the use of these terms in describing functional fragments of the LM609 or Vitaxin antibodies is intended to correspond to definitions well known to those skilled in the art. Such terms are described, for example, in Harlow and Lane, Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, New York (1989); Molec. Biology and Biotechnology: A Comprehensive Desk Reference (Myers, RA (eds.), New York: VCH Publisher, Inc.); Huston et al., Cell Bioscience, 1993; Enzymol. 178: 497-515 (1989) and Day, E.C. D. , Advanced Immunochemistry, 2nd edition, Wiley-Liss, Inc. , New York, NY (1990).
[0017]
Domains, functional fragments, regions, nucleotide sequences of other LM609, Vitaxin or LM609 grafted antibodies, as well as where the above terms used to describe LM609, Vitaxin and LM609 grafted antibody functional fragments are used And the use of terms referring to amino acid sequences and polypeptides or peptides is likewise intended to be within the meaning of each term as is known and used in the art. Such terms include, for example, "heavy chain polypeptide" or "heavy chain", "light chain polypeptide" or "light chain", "heavy chain variable region" (V _H ) And the “light chain variable region” (V _L ) As well as the term "progenitor complementarity determining region" (CDR).
[0018]
In the event that there is more than one definition for a term used and / or accepted in the art, the definition of the terms as used herein, unless otherwise explicitly contradicted, is set forth in this term. It is intended to include all such meanings. A particular example is the use of the term "CDR" to describe a non-contiguous antigen-binding region found within the variable regions of both heavy and light chain polypeptides. This particular region is described in Kabat et al., Supra, and Chothia et al. Mol. Biol. 196: 901-917 (1987) and MacCallum et al. Mol. Biol. 262: 732-745 (1996). Here, the definition includes overlaps or subsets of amino acid residues when compared to each other. Nonetheless, the application of any definition to refer to the CDRs of LM609, Vitaxin, LM609 grafted antibody or a variant thereof is within the scope of the terms defined and used herein. Is intended. The amino acid residues comprising the CDRs defined by each of the above-cited references are listed in Table 1 below for comparison.
[0019]
Table 1: Definition of CDR
[0020]
[Table 1]

¹ Residue numbering follows the nomenclature of Kabat et al., Supra.
² Residue numbering follows the nomenclature of Chothia et al., Supra.
³ Residue numbering follows the nomenclature of MacCallum et al., Supra.
[0021]
As used herein, the term `` substantially '' or `` substantially the same, '' when used in reference to a nucleotide or amino acid sequence, means that the nucleotide or amino acid sequence is compared to a reference sequence. Are intended to mean a significant degree, amount or range of sequence identity. Such a significant degree, amount or range of sequence identity is further believed to exhibit significant and meaningful characteristics and thus are either determinatively recognizable or known. Accordingly, a nucleotide sequence that is substantially the same nucleotide sequence as a LM609 grafted antibody comprising a heavy or light chain of LM609, Vitaxin, or a fragment thereof encodes the amino acid sequence of the LM609, Vitaxin, or LM609 grafted antibody. Or a sequence exhibiting characteristics that are definitively known or recognizable as its amino acid sequence. The minor modification is included as long as the modification is recognizable as a sequence of LM609, Vitaxin, or LM609-grafted antibody. Similarly, an amino acid sequence that is substantially the same amino acid sequence as a heavy or light chain of Vitaxin, an LM609 grafted antibody, or a functional fragment thereof, indicates an amino acid sequence of the Vitaxin, or LM609 grafted antibody, and minor modifications thereof. Refers to sequences that exhibit features that are critically known or recognizable.
[0022]
When determining whether a nucleotide or amino acid sequence is substantially the same as a Vitaxin or LM609 grafted antibody, consider the number of changes to the Vitaxin or LM609 grafted antibody, as well as whether its function is maintained. For example, a single amino acid change in a three amino acid CDR, or some changes in a 16 amino acid CDR, _v β ₃ If the binding function is maintained, it is considered substantially the same. Thus, if a nucleotide or amino acid sequence exhibits features that are decisively known or recognizable to exhibit the nucleotide or amino acid of the Vitaxin or LM609 grafted antibody and its minor modifications, the Vitaxin or LM609 grafted antibody Is substantially the same as long as the function is maintained.
[0023]
As used herein, the term "fragment" when used in reference to a nucleic acid encoding an LM609, Vitaxin or LM609 grafted antibody is substantially the same as a portion of the nucleic acid encoding the LM609, Vitaxin or LM609 grafted antibody. It is intended to mean a nucleic acid having a sequence. The nucleic acid fragment is adapted to selectively hybridize to a nucleic acid encoding an LM609, Vitaxin or LM609 grafted antibody or to a nucleotide sequence (complementary to the nucleic acid encoding the LM609, Vitaxin or LM609 grafted antibody). , Length and sequence are sufficient. Thus, fragments are intended to include primers for sequencing and polymerase chain reaction (PCR), and probes for nucleic acid blotting or solution hybridization. The meaning of the term is also intended to include regions of the nucleotide sequence that do not directly code for the LM609 polypeptide (eg, introns), and sequences of the untranslated region of the LM609 encoding gene.
[0024]
As used herein, the term "functional fragment" refers to a reference to Vitaxin, to a LM609 grafted antibody, or to a heavy or light chain polypeptide thereof, of a Vitaxin or LM609 grafted antibody. It is intended to mean part. This includes α _v β ₃ Binding activity, α _v β ₃ Binding specificity and / or integrin α _v β ₃ Heavy or light chain polypeptides that retain some or all of the inhibitory activity. Such functional fragments include, for example, functional fragments of antibodies (eg, Fab, F (ab) ₂ , Fv, single chain Fv (scFv)). Other functional fragments may include, for example, heavy or light chain polypeptides, variable region polypeptides or CDR polypeptides or portions thereof (such functional fragments may have avidity, specificity, etc.). Sex or inhibitory activity). The term also includes, for example, polypeptides that include modified forms of naturally occurring amino acids (eg, D-forms, stereoisomers, non-naturally occurring amino acids, amino acid analogs and mimetics) (such polypeptides are described above). As long as it retains the functional activity as defined in).
[0025]
As used herein, the term "enhanced" when used in reference to Vitaxin, an LM609 transplanted antibody, or a functional fragment thereof, indicates that the functional property of the antibody is greater than that of the reference antibody. Is intended to mean that the antibody exhibits the desired property or activity. An antibody exhibiting enhanced activity may exhibit, for example, higher or lower affinity binding, or increased or decreased association or separation rates, as compared to a reference antibody. Antibodies that exhibit enhanced activity may also exhibit increased stability, such as increased half-life, in certain organisms. For example, antibody activity may be enhanced and stability may be increased by reducing susceptibility to proteolysis. If enhanced activity is desired, such as higher affinity binding or increased stability, mutations can be introduced into the framework or CDR amino acid residues. And α compared to a reference antibody such as the LM609 transplanted parent antibody. _v β ₃ Variants of the resulting antibodies can be screened for higher affinity binding to, or for increased stability. Antibodies that exhibit enhanced activity may also exhibit lower affinity binding, if desired, including reduced association or increased separation. Enhanced antibodies that exhibit lower affinity binding are useful, for example, to penetrate solid tumors. Compared to higher affinity antibodies (which bind to peripheral regions of the tumor but cannot penetrate internal regions of the tumor due to the high affinity), lower affinity antibodies are associated with the internal regions of the tumor. It is advantageous for penetrating into.
[0026]
The present invention provides nucleic acids encoding Vitaxin heavy chain polypeptides or functional fragments thereof. Nucleic acids encoding Vitaxin light chain polypeptides or functional fragments thereof are also provided. This nucleic acid is composed of the heavy or light chain variable region nucleotide sequence substantially the same as the sequence shown in FIGS.
[0027]
Vitaxin (including functional fragments thereof) is a non-mouse antibody that exhibits substantially the same binding activity, binding specificity, and inhibitory activity as LM609. This Vitaxin Fv fragment was generated by functionally replacing CDRs in the human heavy and light chain variable region polypeptides with CDRs from LM609. Functional replacement of CDRs was performed by recombinant methods known to those skilled in the art. Such a method is commonly referred to as CDR grafting and is the subject of US Pat. No. 5,225,539. Such methods are also described in "Protein Engineering of Antibody Molecules for Prophylactic and Therapeutic Applications in Man", Clark, M .; (Eds.), Nottingham, England: Academic Titles (1993).
[0028]
Briefly, an LM609 nucleic acid fragment having substantially the same nucleotides and encoding substantially the same amino acid sequence as each of its heavy and light chain CDRs is synthesized and encodes each human chain Substituted in each of the nucleic acids. To maintain the functionality of this newly derived Vitaxin antibody, modifications were made within the non-CDR framework regions. These individual changes were made by generating a population of CDR-grafted heavy and light chain variable regions (in this population all possible changes outside the CDRs were shown), then , By screening the population for binding activity and selecting the appropriate antibody. This screening resulted in the selection of the Vitaxin antibody described herein.
[0029]
The nucleotide sequences of the heavy and light chain variable regions of Vitaxin are shown in FIGS. 1A and 1B, respectively. These sequences correspond substantially to the sequences encoding the heavy and light chain variable region polypeptides of Vitaxin. These Vitaxin nucleic acids are intended to include both the sense and antisense strands of the Vitaxin coding sequence. Single- and double-stranded nucleic acids are included, as well as non-coding portions of the nucleic acid such as, for example, introns, 5 'untranslated regions, 3' untranslated regions, and regulatory sequences of the gene.
[0030]
As shown in FIG. 1A, a Vitaxin heavy chain variable region polypeptide is encoded by a nucleic acid that is about 351 nucleotides in length. This nucleic acid starts at the amino-terminal Gln1 residue of the variable region and extends to Ser117. The nucleic acid encoding this Vitaxin heavy chain variable region is grafted into a human IgG1 constant region to create a coding region of 1431 nucleotides, which encodes a heavy chain polypeptide of 477 total amino acids. Shown in FIG. 1B is the Vitaxin light chain variable region polypeptide. This polypeptide is encoded by a nucleic acid approximately 321 nucleotides in length, starting at the amino-terminal Gln1 residue of the variable region and ending at Lys107. This Vitaxin light chain variable region nucleic acid is grafted into the human kappa construction region, resulting in a coding region of 642 nucleotides (encoding a light chain polypeptide of 214 total amino acids).
[0031]
Minor modifications of these nucleotide sequences are intended to be included as heavy and light chain Vitaxin encoding nucleic acids and functional fragments thereof. Such minor modifications include, for example, modifications that do not change the encoded amino acid sequence due to the degeneracy of the genetic code, and modifications that result only in conservative substitutions of the encoded amino acid sequence. . Conservative substitutions for encoded amino acids include, for example, amino acids belonging to the following groups: (1) non-polar amino acids (Gly, Ala, Val, Leu, and Ile); (2) polar neutral amino acids ( Cys, Met, Ser, Thr, Asn and Gln); (3) polar acidic amino acids (Asp and Glu); (4) polar basic amino acids (Lys, Arg and His); and (5) aromatic amino acids (Phe, Trp, Tyr and His). Other minor modifications encode Vitaxin heavy and light chain polypeptides, as long as the nucleic acid or encoded polypeptide retains some or all of their functions as described herein. Contained in the nucleic acid.
[0032]
Accordingly, the present invention also provides a nucleic acid encoding a Vitaxin heavy chain or a functional fragment thereof, wherein the nucleic acid comprises a Vitaxin heavy chain substantially identical to the amino acid sequence shown in FIG. 1A (SEQ ID NO: 2). Encodes the chain variable region amino acid sequence or a fragment thereof. Similarly, the present invention also provides a nucleic acid encoding a Vitaxin light chain or a functional fragment thereof, wherein the nucleic acid has substantially the same amino acid sequence as shown in FIG. 1B (SEQ ID NO: 4). Encodes the light chain variable region amino acid sequence or a fragment thereof.
[0033]
In addition to conservative amino acid substitutions, slight modifications of the Vitaxin-encoding nucleotide sequence that allow for functional substitution of amino acids are also intended to be included within the definition of this term. Substitution of the functionally equivalent amino acids encoded by the Vitaxin nucleotide sequence is conventional and can be accomplished by methods known to those skilled in the art. Briefly, substitution of a functionally equivalent amino acid identifies the amino acid desired to be changed, incorporates the change into the encoding nucleic acid, and then replaces the recombinantly expressed and modified Vitaxin polypeptide. It can be made by determining the function. Rapid methods for making and screening for multiple simultaneous changes are well known in the art and are used to generate libraries of encoding nucleic acids that contain all possible or all desired changes. The library can then be expressed and screened for Vitaxin polypeptides that retain function. Such methods include, for example, mutagenesis of codon bases, random oligonucleotide synthesis, and partially degenerate oligonucleotide synthesis.
[0034]
Mutagenesis of codon bases is the subject of U.S. Patent Nos. 5,264,563 and 5,523,388 and is advantageous in the above-described procedure. This is because it allows the generation of essentially any and all desired frequency of encoded amino acid residues at any and all specific codon positions in the oligonucleotide. Such a desired frequency may be, for example, a truly random incorporation of all 20 amino acids or a specific subset thereof, as well as a higher or less frequent bias as compared to other incorporated amino acid residues. And the incorporation of one or more specific amino acids in a predetermined bias to incorporate a residue having Random and partially degenerate oligonucleotide synthesis can also be used to generate and screen for functionally equivalent amino acid changes. However, due to the degeneracy of the genetic code, such methods incorporate redundancy at the desired amino acid positions. Random oligonucleotide synthesis is the coupling of all four nucleotides at each nucleotide position within a codon, while partially degenerate oligonucleotide synthesis is the coupling of all four nucleotide sequences at the first two nucleotide positions. Coupling of an equal part with, for example, an equal part of the two nucleotides at the third position. Both of these latter synthetic methods are described, for example, in Cwirla et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 6378-6382, (1990) and Devlin et al., Science 249: 404-406, (1990).
[0035]
Identification of the amino acid to be changed can be accomplished by one of skill in the art using the current information available regarding the structure and function of the antibody, as well as the methods available for CDR grafting procedures. For example, CDRs can be identified in donor antibodies by any or all of the criteria specified in Kabat et al., Supra, Chothia et al., Supra, and / or MacCallum et al., Supra, and outside of these CDR sequences. Certain any or all non-identical amino acid residues can be changed to functionally equivalent amino acids. Using the methods described above in the art, any or all non-identical amino acids are changed, alone or in combination with amino acids at different positions, incorporating the desired number of amino acid substitutions at each of the desired positions. obtain. A Vitaxin polypeptide containing the desired substituted amino acids is then produced and screened for retention or enhancement of function as compared to the unsubstituted Vitaxin polypeptide. Production of the substituted Vitaxin polypeptide can be achieved, for example, by recombinant expression using methods known to those of skill in the art. Vitaxin polypeptides that exhibit retention or enhancement of function as compared to unsubstituted Vitaxin are believed to include minor alterations in the coding nucleotide sequence that result in functional substitution of one or more amino acids.
[0036]
Functional substitution of amino acids is advantageous when producing transplanted antibodies having human framework sequences. Because this is equivalent without the need for structural information or cumbersome procedures needed to evaluate and identify which amino acid residues should be considered for substitutions to successfully transfer the binding function from the donor. This allows rapid identification of various amino acid residues. In addition, this eliminates the actual step-by-step procedure for altering and testing the identified amino acids for substitution. Essentially, using the functional substitution approach described above, all non-identical amino acid residues between the donor and the human framework are identified, and at each of the non-identical positions, any or all other Substitution with possible amino acid residues may generate a population of substituted polypeptides that include all possible or all desired permutations and combinations. This population of replacement polypeptides can then be screened for replacement polypeptides that retain function. Using the codon base mutagenesis procedure described above, generation of a library of substituted amino acid residues and screening for functionally substituted residues allows for rapid production of transplantation therapeutic antibodies and rapid alteration of antibody affinity. Used in Such procedures are described, for example, in Rosok et al. Biol. Chem. 271: 22611-22618 (1996) and Glaser et al. Immunol. 149: 3903-3913 (1992).
[0037]
In addition to framework residues, functional substitutions of amino acids in one or more CDRs may allow for the identification of modified LM609-grafted antibodies with enhanced activity. Using the methods described above for framework residues, amino acid substitutions can be introduced into one or more CDRs in the LM609 grafted antibody as well. The modified LM609 grafted antibody was tested for binding activity and _V β ₃ One can determine whether the binding activity is maintained. The modified LM609 grafted antibody can be further tested to determine if the activity has been enhanced. Thus, functional substitution of an amino acid residue in one or more CDRs allows for the identification of an enhanced LM609 grafted antibody having desired properties, such as enhanced activity.
[0038]
In order to generate modified LM609-grafted antibodies and to select antibodies with enhanced activity, several approaches involve the number of mutating residues in CDRs as well as the number of modifying CDRs in LM609-grafted antibodies. Can be used in selection. The choice of selection criteria for mutagenesis of the CDRs depends on the need for the antibody to be enhanced and the desired application. For example, one or a few amino acid positions within a single CDR can be modified to include the amino acid selected at that position. Alternatively, the targeted amino acid position can be modified to include all possible amino acids at that position. This resulting population of modified antibodies can then be screened for enhanced activity.
[0039]
A modified, wherein all amino acid positions in the CDRs have been mutated to include all possible amino acids, or amino acid positions in multiple CDRs have been modified to include a variant amino acid residue. Construction of the LM609 transplanted antibody population can also be done. Thus, 2 to 10 ⁷ A population of unique members ranging from more than one can be constructed. The selection of enhanced LM609-grafted antibodies is more efficient, as the larger the population, the more different antibodies are present within that population. However, a small population of modified LM609 grafted antibodies can be made and successfully used for selection of enhanced LM609 grafted antibodies. The size of the population of modified LM609-grafted antibodies will depend on the needs of a particular application and can be determined by one skilled in the art.
[0040]
Generation of a modified LM609 grafted antibody can be achieved by introducing amino acid substitutions in one or more CDRs of the LM609 grafted antibody. For example, a single amino acid substitution can be systematically introduced into a CDR by changing a given amino acid in the CDR to any or all amino acids. Amino acid substitutions can also be introduced at all amino acid positions in one or more of the CDRs or in all of the CDRs to create a population of modified LM609 grafted antibody variants. This population of modified LM609-grafted antibody variants with single amino acid substitutions was screened for α _V β ₃ Variants that maintain binding activity can be identified. α _V β ₃ Variants having binding activity can be further characterized to identify variants with enhanced activity. Introduces a single amino acid substitution and α _V β ₃ Such a systematic approach to generating a population of LM609-grafted antibody variants that is screened for enhanced LM609-grafted antibody with high affinity binding to is described in Example VI.
[0041]
In addition to creating a population of modified LM609-grafted antibody variants, particular CDRs or particular amino acids in CDRs can be selected to introduce one or more amino acid substitutions. For example, sequence homology or structural models can be used to identify a particular amino acid position at which to introduce an amino acid substitution. In this example, only one or several modified LM609-grafted antibody variants were made and α _V β ₃ Not screened for binding activity to One skilled in the art will appreciate that to screen and identify enhanced LM609 grafted antibody variants with enhanced activity, it is desirable to create a large population of modified LM609 grafted antibody variants, or a limited number of modified variants. It can be seen or determined that it would be desirable to generate a modified LM609 grafted antibody variant.
[0042]
Enhanced LM609 grafted antibodies, in addition to generating a population of modified LM609 grafted antibodies with single amino acid substitutions in the CDRs and identifying the enhanced LM609 grafted antibodies by screening for enhanced activity Variants can also be made by combining two or more mutations, each known to independently result in enhanced activity, in a single antibody. When more than two mutations are present, an efficient method of identifying combinations of mutations that further enhance activity builds all possible combinations and permutations, and then selects enhanced activity for these. That is. For example, two single mutations in one or more CDRs can be combined to create a new modified LM609 grafted antibody with two CDR mutations, and α _V β ₃ Binding activity is a single mutant α _V β ₃ It can be determined by screening whether the binding activity has been increased. Similarly, the three mutations can be combined and the resulting modified LM609-grafted antibodies can be screened for enhanced binding activity. Using such an approach that combines CDR mutations, a new population of modified LM609-grafted antibody variants is used to combine all combinations of single CDR mutations resulting in enhanced activity with new modified LM609-grafted antibody variants It can be made by incorporation into the body and screening to obtain optimally enhanced LM609 grafted antibodies.
[0043]
An iterative, step-by-step approach to identifying enhanced LM609 grafted antibodies allows the identification of antibodies with optimal binding activity without the need to generate and screen a large number of modified LM609 grafted antibody variants This is advantageous in that For example, enhanced LM609 with higher affinity using the approaches described in Examples VI and VII, where a single mutant was identified and combined into a new population of LM609-grafted antibody variants A transplant antibody was identified by making 2592 unique variants. In contrast, complete randomization of a single 8-amino acid residue CDR would result in 10 ¹⁰ Requires more than one unique variant. Thus, such an iterative approach creates, screens, and identifies enhanced LM609 grafted antibody variants that exhibit high affinity binding, with a relatively small number of unique modified LM609 grafted antibody variants. This allows for the identification of enhanced LM609-grafted antibodies with enhanced activity such as high affinity binding.
[0044]
An iterative step-by-step approach to identifying enhanced LM609 variants can also be performed with additional steps. Instead of creating all combinations of single amino acid mutations, single amino acid mutations can be combined in pairs to create all combinations of double mutants and screened for activity. Double mutants with enhanced activity can be combined with any or all single mutants to create triple mutants that are screened for enhanced binding activity. Each repetitive round that creates a modified LM609 grafted antibody variant can incorporate an additional single mutation, and the resulting modified LM609 grafted antibody can be screened for enhanced activity. Thus, optimized LM609 grafted antibodies can be identified using stepwise generation of LM609 grafted antibody variants. Moreover, such an iterative approach also allows the identification of a large number of enhanced antibodies that exhibit a range of different, enhanced binding activities.
[0045]
The optimized LM609-grafted antibody is an LM609-like grafted antibody or α _V β ₃ It may also be called a specific transplant antibody and be recognized. This is because the antibody or functional fragment thereof retains the functional characteristics of LM609. For example, an enhanced LM609 grafted antibody variant, which has a single amino acid substitution and has enhanced activity, can be identified and correlated with a particular amino acid substitution. These amino acid substitutions can be combined to create new, modified LM609-grafted antibodies that are tested for activity. Such a combination of advantageous CDR amino acid substitutions may result in an optimized LM609 grafted antibody, wherein multiple CDRs have at least one amino acid substitution or a single CDR has multiple amino acid substitutions, where The modified LM609 grafted antibody has enhanced activity.
[0046]
Enhanced LM609-grafted antibodies (especially LM609-grafted antibodies optimized by functional substitution of amino acid residues in CDRs) have desirable enhanced properties, such as increased affinity. For example, an optimized LM609-grafted antibody with increased affinity has a higher affinity than the parent antibody used to introduce a functional amino acid substitution. Higher affinity is determined for a reference antibody having a similar structure. For example, if the optimized LM609 grafted antibody is an intact antibody containing two heavy chains and two light chains, a higher affinity will be determined for the intact parent LM609 grafted antibody. Similarly, if the optimized LM609-grafted antibody is a Fab, higher affinity will be determined for the Fab of the parent LM609-grafted antibody.
[0047]
Although it is not necessary to proceed with obtaining high affinity LM609-grafted antibodies through multiple optimization steps, in general, the increase in affinity will depend on the number of intra- and inter-CDR modifications and the number of optimization steps. Can be correlated. Therefore, LM609-grafted antibodies show different ranges. For example, an LM609 grafted antibody with enhanced affinity can have up to about 2-fold higher affinity, or higher affinity (typically more than about 2-5 fold higher affinity (e.g., about 4親 和 5-fold higher affinity or 5-10-fold higher affinity)). In particular, LM609-grafted antibodies with enhanced affinity have about 10-50-fold higher affinity, about 50-fold higher affinity, or about 100-fold higher affinity than the reference antibody. Have.
[0048]
As described above, functional substitution of CDR amino acid residues can be used to identify LM609-grafted antibodies that exhibit higher affinity than the parent LM609-grafted antibody. Methods for introducing minor modifications to the nucleotide sequence encoding Vitaxin or LM609 grafted antibody discussed above or below are also used to generate libraries of modified LM609 grafted antibody variants. I can do it. Such methods include methods such as codon base mutagenesis, random oligonucleotide synthesis and partially degenerate oligonucleotide synthesis. For example, codon base mutagenesis has been used to create modified LM09-grafted antibody variant libraries with single amino acid substitutions and the like (see Example VI).
[0049]
After creating a library of modified LM609-grafted antibody variants, the variants can be expressed and _V β ₃ Can be screened for binding activity. A method well known to those skilled in the art for determining antibody-antigen interactions is α _V β ₃ Used to screen for modified LM609 grafted antibodies that show binding activity to (Harlow and Lane, supra). For example, a library of modified LM609-grafted antibody variants is screened using the ELISA method, _V β ₃ Variants that retain binding activity have been identified (see Example VI). α _V β ₃ Only modified LM609-grafted antibodies that retain avidity are considered for further characterization.
[0050]
α _V β ₃ The modified LM609 grafted antibody having binding activity can be further characterized to determine which modified LM609 grafted antibody has enhanced activity. The type of assay used to assess the enhanced activity will depend on the particular characteristics desired. For example, if an altered binding activity is desired, a binding assay that allows for the determination of binding affinity is used. Such assays include binding assays, competitive binding assays, and surface plasmon resonance, as described in Example VI.
[0051]
Using the introduction of single amino acid substitutions in the CDRs of the LM609-grafted antibody, a library of modified LM609-grafted antibodies can be created and α _V β ₃ Can be screened for binding activity. Then, α _V β ₃ Modified LM609 grafted antibodies that exhibit binding activity to LM609 can be further characterized to identify enhanced LM609 grafted antibodies that exhibit enhanced activity (eg, higher binding affinity). For example, using such an approach, a number of enhanced LM609-grafted antibodies with single amino acid substitutions were identified in the heavy chain variable region shown in FIG. 1a (SEQ ID NO: 2) and in FIG. LM609-grafted antibodies generated using the resulting light chain variable region and exhibiting a 2-13-fold improved affinity for the parent LM609-grafted antibody were identified (see Example VI).
[0052]
After identifying an increased LM609 grafted antibody with one amino acid substitution, amino acid mutations can be combined to further enhance activity. The methods discussed above for introducing a single amino acid substitution into a CDR can be similarly applied to combine amino acid substitutions. For example, α _v β ₃ A combinatorial library of amino acid mutations resulting in increased binding affinity was created using degenerate oligonucleotides and two-site hybridization mutagenesis as described in Example VII. An enhanced LM609 grafted antibody comprising multiple CDR amino acid substitutions was made using the heavy chain variable region shown in FIG. 1a (SEQ ID NO: 2) and the light chain variable region shown in FIG. 7 (SEQ ID NO: 32), Then, an LM609-grafted antibody having an affinity 20 to 90 times higher than that of the parent LM609-grafted antibody was identified.
[0053]
In addition to combining CDR amino acid substitutions to create an enhanced or optimized LM609 grafted antibody, CDR amino acid substitutions can also be combined with framework mutations that confer desired properties on the LM609 grafted antibody. Thus, mutations in CDRs or framework regions that increase activity can be combined to further optimize LM609-grafted antibodies.
[0054]
The present invention further provides fragments of nucleic acids encoding Vitaxin heavy and light chains, wherein such fragments comprise substantially the same nucleotides or variable regions as the variable region of a Vitaxin heavy or light chain polypeptide. Consists of an amino acid sequence. The variable region of the Vitaxin heavy chain polypeptide consists essentially of nucleotides 1-351 and amino acid residues Gln1-Ser117 of FIG. 1A (SEQ ID NOS: 1 and 2, respectively). The variable region of the Vitaxin light chain polypeptide consists essentially of nucleotides 1-321 and amino acid residues Glu1-Lys107 of FIG. 1B (SEQ ID NOs: 3 and 4, respectively). The termini of the nucleic acids encoding such variable regions are not critical so long as the intended purpose and function remains the same.
[0055]
Additional fragments to the variable region nucleic acid fragments are also provided. Such fragments include, for example, nucleic acids consisting essentially of the same nucleotide sequence as the CDR of a Vitaxin heavy or light chain polypeptide. Sequences corresponding to the Vitaxin CDR include, for example, regions as defined by Kabat et al., Supra, and / or Chothia et al., Supra, and MacCallum et al., Supra. The Vitaxin CDR fragments for each of the above definitions correspond to the nucleotides shown in Table 2 below. The numbering of this nucleotide sequence is derived from the primary sequence shown in FIGS. 1A and 1B (SEQ ID NOs: 1 and 3) and follows the definitions previously shown in Table 1.
[0056]
(Table 2: Vitaxin CDR nucleotide residues)
[0057]
[Table 2]

Similarly, the Vitaxin CDR fragments for each of the above definitions correspond to the amino acid residues shown in Table 3 below. The numbering of this amino acid residue is derived from the primary sequence shown in FIGS. 1A and 1B (SEQ ID NOs: 2 and 4) and follows the definitions previously shown in Table 1.
[0058]
(Table 3: Vitaxin CDR amino acid residues)
[0059]
[Table 3]

Thus, the present invention also provides nucleic acid fragments that encode substantially the same amino acid sequence as the CDRs of a Vitaxin heavy or light chain polypeptide.
[0060]
Nucleic acids encoding Vitaxin heavy and light chain polypeptides and fragments thereof are useful for various diagnostic and therapeutic purposes. For example, using Vitaxin nucleic acid, integrin α _v β ₃ Can produce Vitaxin antibodies and functional fragments thereof having binding specificity and inhibitory activity against E. coli. This antibody and its functional fragments have α _v β ₃ It can be used for diagnosis or therapeutic treatment of a mediated disease. Using Vitaxin and functional fragments thereof, for example, α _v β ₃ Α required for the progression of mediated diseases _v β ₃ Can inhibit binding activity or other functional activity. α _v β ₃ Other functional activities required for the progression of the mediated disease include, for example, α _v β ₃ Activation of α _v β ₃ Alpha of mediated signaling and apoptosis _v β ₃ Mediated interference. Advantageously, however, Vitaxin contains non-mouse framework amino acid sequences, and as such is less antigenic with respect to the production of a host immune response. The Vitaxin nucleic acids of the invention can also be used to model functional equivalents of the encoded heavy and light chain polypeptides.
[0061]
Accordingly, the present invention provides Vitaxin heavy and Vitaxin light chain polypeptides or functional fragments thereof. This Vitaxin heavy chain polypeptide shows substantially the same amino acid sequence as the amino acid sequence shown in FIG. 1A (SEQ ID NO: 2) or a functional fragment thereof, while the Vitaxin light chain polypeptide has the amino acid sequence shown in FIG. 1B. Shows substantially the same amino acid sequence as the sequence (SEQ ID NO: 4) or a functional fragment thereof. Also provided is a Vitaxin antibody or a functional fragment thereof. The antibody is made from the heavy and light chain polypeptides described above, or functional fragments thereof, and _v β ₃ Shows selective binding affinity for
[0062]
The invention provides a nucleic acid encoding a heavy chain polypeptide for an LM609 grafted antibody. Also provided is a nucleic acid encoding a light chain polypeptide for an LM609 grafted antibody. This nucleic acid has substantially the same nucleotide sequence of the heavy chain variable region as the nucleotide sequence shown in FIG. 1A (SEQ ID NO: 1), and substantially the same light chain variable region as the nucleotide sequence shown in FIG. 7 (SEQ ID NO: 31). The nucleotide sequence of the region, or fragments thereof.
[0063]
LM609-grafted antibodies (including functional fragments thereof) are non-mouse antibodies, which exhibit substantially the same binding activity, binding specificity and inhibitory activity as LM609. The Fv fragments of the LM609-grafted antibody described herein were derived from the CDRs defined by Kabat et al. (Hereinafter referred to as "Kabat CDRs") in the human heavy and light chain variable region polypeptides from LM609. It is produced by functionally substituting the Kabat CDRs. Functional replacement of the Kabat CDRs is performed by CDR grafting as described previously, and is the subject of US Pat. No. 5,225,539, supra. Additional substitutions of amino acid residues outside of the Kabat CDRs may be made to maintain or increase advantageous binding properties, as long as such amino acid substitutions do not correspond to a donor amino acid at that particular position. Such substitutions allow for the modulation of binding properties without conferring any mouse sequence characteristics to the antibody outside of the Kabat CDR. Although the production of such antibodies is described herein with reference to the LM609 grafted antibody, the substitution of non-donor amino acids outside of the Kabat CDR will essentially result in the production of any grafted antibody. Can be used. The production of LM609 grafted antibodies is further described in Example V below.
[0064]
The nucleotide sequences of the heavy and light chain variable regions of the LM609-grafted antibody are shown in FIGS. 1A and 7, respectively. These sequences substantially correspond to the sequences encoding the heavy and light chain variable region polypeptides of the LM609 grafted antibody. These nucleic acids are intended to include both the sense and antisense strands of the sequence encoding the LM609 grafted antibody. Single- and double-stranded nucleic acids, as well as non-coding portions of the nucleic acids, such as, for example, introns, 5 'and 3' untranslated regions, and regulatory sequences of genes are also included.
[0065]
The nucleotide and amino acid residue boundaries for the LM609 grafted antibody are equal to the boundaries for Vitaxin described previously. For example, the heavy chain variable region polypeptide of the LM609 grafted antibody is encoded by a nucleic acid approximately 351 nucleotides in length, starting at the amino-terminal Gln1 residue of the variable region and extending over Ser117 (FIG. 1A, each of the sequence Numbers 1 and 2). The light chain variable region polypeptide of the LM609 grafted antibody is encoded by a nucleic acid approximately 321 nucleotides in length, starting at the amino-terminal Glu1 residue of the variable region and spanning Lys107 (FIG. 7, SEQ ID NO: 31, respectively). And 32). Like Vitaxin, slight modifications of these nucleotide sequences are intended to be included as nucleic acids encoding the heavy and light chain variable regions and functional fragments thereof.
[0066]
Accordingly, the present invention also provides a nucleic acid encoding the heavy chain of an LM609 grafted antibody, wherein the nucleic acid has a heavy chain variable region substantially the same as the amino acid sequence shown in FIG. 1A (SEQ ID NO: 2). Encodes an amino acid sequence or a fragment thereof. Similarly, the invention also provides a nucleic acid encoding a light chain of an LM609 grafted antibody, wherein the nucleic acid has a light chain variable substantially the same as the amino acid sequence shown in FIG. 7 (SEQ ID NO: 32). Encodes the amino acid sequence of the region or a fragment thereof.
[0067]
In addition to conservative amino acid substitutions, any modification of the LM609-grafted antibody that encodes a nucleotide sequence that allows for functional substitution of the amino acids is also intended to be included in the definition of this term. Identification of altered amino acids can be accomplished by those of skill in the art using currently available information regarding antibody structure and function, as well as available information including methods for CDR grafting procedures. Substitution of functionally equivalent amino acids encoded by the LM609 grafted antibody nucleotide sequence is conventional and can be accomplished by methods known to those skilled in the art. As previously described, such methods include, for example, codon-based mutagenesis, random oligonucleotide synthesis and partially denatured oligonucleotide synthesis, and are useful when generating transplanted antibodies. . Because they allow for the rapid identification of equivalent amino acid residues without the need for structural information.
[0068]
The present invention further provides fragments of the heavy and light chains encoding the nucleic acids of the LM609 grafted antibody, wherein such fragments substantially comprise the heavy or light chain polypeptide of the LM609 grafted antibody. Consists of the same nucleotide or amino acid sequence as the variable region of the peptide. As with Vitaxin, the termini of the nucleic acid encoding such variable regions are not critical so long as the intended purpose and function remain the same.
[0069]
Additional fragments are also provided for the variable region nucleic acid fragments, and include, for example, nucleic acids consisting essentially of the same nucleotide sequence as the heavy or light chain polypeptide of the CDR or LM609 grafted antibody. As in the case of Vitaxin, sequences corresponding to the LM609-grafted antibody CDR include, for example, the region defined by Kabat et al., Supra, Chothia et al., Supra, and the region defined by MacCallum et al., Supra. Can be The LM609 grafted antibody CDR regions are similar to the regions previously described for Vitaxin. Moreover, such regions are well known and can be determined by one of skill in the art in light of the LM609 sequence and the teachings provided herein. Accordingly, the present invention also provides nucleic acid fragments encoding substantially the same amino acid sequence as the CDRs of the heavy or light chain polypeptide of the LM609 grafted antibody.
[0070]
As with Vitaxin, the nucleic acids encoding the heavy and light polypeptides of the LM609-grafted antibody, and fragments thereof, are useful for various diagnostic and therapeutic purposes. For example, using an LM609-grafted antibody encoding a nucleic acid, integrin α _v β ₃ Can produce recombinant antibodies and functional fragments thereof that have binding specificity and inhibitory activity against This antibody and its functional fragments have α _v β ₃ Can be used for the diagnosis or therapeutic treatment of diseases mediated by. Such diseases and anti-α _v β ₃ Methods for the use of antibodies have been previously described in references for Vitaxin and are equally applicable to the LM609 grafted antibodies described herein.
[0071]
Accordingly, the present invention provides LM609 grafted antibody heavy chain polypeptides and Vitaxin light chain polypeptides or functional fragments thereof. The heavy chain polypeptide of the LM609 grafted antibody exhibits substantially the same amino acid sequence as the amino acid sequence shown in FIG. 1A (SEQ ID NO: 2) or a functional fragment thereof, while the light chain polypeptide of the LM609 grafted antibody 7 shows an amino acid sequence substantially the same as the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 7 (SEQ ID NO: 32). Also provided is an LM609 grafted antibody or a functional fragment thereof. The antibody is produced from the heavy and light chain polypeptides, or a functional fragment thereof, and _v β ₃ Shows selective binding affinity for
[0072]
The present invention relates to α _v β ₃ Provided enhanced LM609-grafted antibodies that exhibit selective binding affinity for LM609. The enhanced LM609-grafted antibody comprises at least one amino acid substitution in one or more CDRs of the LM609-grafted heavy chain variable region polypeptide or the LM609-grafted light chain variable region polypeptide. Of the enhanced LM609-grafted antibody, α _v β ₃ The binding affinity is maintained or enhanced.
[0073]
To identify enhanced LM609 grafted antibodies, a library of modified LM609 grafted antibodies was generated as described above and in Example VI. First, the LM609 CDR was identified and selected to introduce a single amino acid substitution. Using the numbering system described by Kabat et al., The CDR residues selected for mutagenesis were:
[0074]
Embedded image

The nucleotide sequence encoding the CDR residues selected for mutagenesis was:
[0075]
Embedded image

A single amino acid substitution can be introduced into the CDRs of the LM609-grafted antibody to generate a population of modified LM609-grafted antibodies. For example, all amino acids in one or more CDRs can be mutated to any or all amino acids to generate a population of modified LM609-grafted antibodies, and the population can be converted to α _v β ₃ One can screen for binding activity. This population is generated by mutating the amino acids of the CDRs, but populations can also be constructed when changes are made in residues in the framework regions or in both the CDRs and the framework. Such mutations in the variable regions can be made separately, in combination, or in steps. Accordingly, the present invention also provides an enhanced LM609 grafted antibody, wherein the amino acid substitution is in a CDR or framework region.
[0076]
The present invention further provides enhanced LM609-grafted antibodies that exhibit enhanced binding affinity. Enhanced LM609-grafted antibodies that exhibit enhanced binding affinity include antibodies that include at least one of the following CDRs with a single amino acid substitution:
[0077]
Embedded image

The nucleotide sequence encoding the CDR with a single amino acid substitution was:
[0078]
Embedded image

CDRs with single amino acid substitutions and enhanced LM609 grafted antibodies with higher affinity binding than the parent LM609 grafted antibody can also be identified, where the corresponding amino acid mutations are combined to produce the new modification LM609-grafted antibody. Identification is α _v β ₃ It is performed by screening for binding activity. In some combinations, the LM609-grafted antibody comprises at least one CDR with two or more amino acid substitutions. The present invention provides an enhanced LM609 grafted antibody comprising at least one of the following CDRs comprising a plurality of amino acid substitutions:
[0079]
Embedded image

V selected from the group consisting of _H CDR3.
[0080]
The nucleotide sequence encoding a CDRS with multiple amino acid substitutions was:
[0081]
Embedded image

The present invention also provides α _V β ₃ Provided an enhanced LM609-grafted antibody, wherein the enhanced LM609-grafted antibody exhibits selective binding affinity for the LM609-grafted heavy chain variable region polypeptide or LM609-grafted light chain variable region polypeptide Comprises at least one amino acid substitution in two or more of the CDRs.
[0082]
An enhanced LM609-grafted antibody comprising at least one amino acid substitution in two or more CDRs of an LM609-grafted heavy chain variable region polypeptide or a LM609-grafted light chain variable region polypeptide is a combination of CDRs selected from the group consisting of: May comprise an LM609 grafted antibody comprising: _L CDR1 SEQ ID NO: 57 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 52; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 51; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 52; V _L CDR3 SEQ ID NO: 59, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; and V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50.
[0083]
In addition to an enhanced LM609 grafted antibody comprising two or more CDRs having a single amino acid substitution, the present invention also provides an enhanced LM609 grafted antibody wherein at least one of the CDRs has two or more amino acid substitutions I do.
[0084]
An enhanced LM609 grafted antibody comprising at least one CDR having two or more amino acid substitutions may comprise an LM609 grafted antibody comprising a combination of CDRs selected from the group consisting of: _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 64; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 65; and V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 66.
[0085]
The present invention further provides _V β ₃ A high affinity LM609-grafted antibody that exhibits selective binding affinity for The high affinity LM609 grafted antibody comprises at least one amino acid substitution in one or more CDRs of the LM609 grafted heavy chain variable region polypeptide or LM609 grafted light chain variable region polypeptide, wherein the high affinity LM609 grafted antibody α _V β ₃ The binding affinity is enhanced.
[0086]
High affinity antibodies may include high affinity antibodies comprising a combination of CDRs selected from the group consisting of: _L CDR1 SEQ ID NO: 57 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 52; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 51; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 52; V _L CDR3 SEQ ID NO: 59, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 50; V _L CDR1 SEQ ID NO: 57, V _H CDR2 SEQ ID NOs: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 64; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 63; V _L CDR3 SEQ ID NOs: 61 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 65; and V _L CDR3 SEQ ID NO: 61, V _H CDR2 SEQ ID NO: 44 and V _H CDR3 SEQ ID NO: 66.
[0087]
As described above, enhanced LM609 antibodies can be further modified by introducing additional mutations in one or more CDR or framework residues. As described herein, the enhanced LM609 grafted antibody clone 6H6 (Table 10) was further modified by introducing mutations in one or more CDRs (see Example VIII). . These 6H6 variants have α _V β ₃ Was found to have high affinity binding to and was resistant to proteolysis.
[0088]
The present invention further provides:
[0089]
Embedded image

An enhanced LM609 grafted antibody is provided. The present invention also provides a nucleic acid molecule comprising a nucleotide sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 105, and SEQ ID NO: 109.
[0090]
The present invention also provides an enhanced LM609 grafted antibody, comprising:
[0091]
Embedded image

The present invention also provides a nucleic acid molecule comprising: _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 33 encoding CDR1; V _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 101 encoding CDR2; V _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 105 encoding CDR3; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 107 encoding CDR1; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 111 encoding CDR2; and V _L Nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 89 encoding CDR3.
[0092]
The present invention further provides an enhanced LM609 grafted antibody comprising:
[0093]
Embedded image

The present invention further provides a nucleic acid molecule comprising: _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 33 encoding CDR1; V _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 101 encoding CDR2; V _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 105 encoding CDR3; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 109 encoding CDR1; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 111 encoding CDR2; and V _L Nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 89 encoding CDR3.
[0094]
The present invention further provides an enhanced LM609 grafted antibody comprising:
[0095]
Embedded image

The present invention further provides a nucleic acid molecule comprising: _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 33 encoding CDR1; V _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 103 encoding CDR2; _H A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 105 encoding CDR3; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 109 encoding CDR1; _L A nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 111 encoding CDR2; and V _L Nucleotide sequence referred to as SEQ ID NO: 89 encoding CDR3.
[0096]
The present invention further provides _V β ₃ Provided are nucleic acids encoding enhanced LM609-grafted antibodies that exhibit selective binding affinity for The enhanced LM609-grafted antibody encoded by the nucleic acid comprises at least one amino acid substitution in one or more CDRs of the LM609-grafted heavy chain variable region polypeptide or the LM609-grafted light chain variable region polypeptide. Enhanced α of LM609-grafted antibody _V β ₃ The binding affinity is maintained or enhanced.
[0097]
The present invention further provides _V β ₃ A nucleic acid encoding a high affinity LM609-grafted antibody that exhibits selective binding affinity for The high affinity LM609-grafted antibody encoded by the nucleic acid comprises at least one amino acid substitution in one or more CDRs of the LM609-grafted heavy chain variable region polypeptide or the LM609-grafted light chain variable region polypeptide. Α of high affinity LM609-grafted antibody _V β ₃ The binding affinity is enhanced.
[0098]
The present invention provides a nucleic acid encoding the heavy chain polypeptide of monoclonal antibody LM609 or a fragment thereof. Also provided is a nucleic acid encoding a light chain polypeptide of monoclonal antibody LM609 or a fragment thereof. The nucleic acid consists of a heavy or light chain variable region nucleotide sequence substantially identical to the sequence shown in FIGS. 2A and 2B (SEQ ID NOS: 5 and 7, respectively) or a fragment thereof.
[0099]
As described above, the monoclonal antibody LM609 has the integrin α _V β ₃ Has been shown in the art to have binding activity to Although specificity can in principle be generated against essentially any target, LM609 is an integrin inhibitory antibody that shows substantial specificity and inhibitory activity against a single member of the integrin family It is. In this case, LM609 ₃ Family Alpha _V β ₃ Shows substantial specificity and inhibitory activity on integrins. The amino acid or nucleotide sequence of monoclonal antibody LM609 has never been isolated and characterized before.
[0100]
Isolation and characterization of the nucleic acid encoding LM609 was performed by techniques known to those of skill in the art, which techniques are described further below in the Examples. Briefly, cDNA from hybridoma LM609 was produced and used as a source for isolating nucleic acids encoding LM609. Isolation was performed by first determining the N-terminal amino acid sequence of each of the heavy and light chain polypeptides, and then amplifying by PCR the sequence encoding the antibody from this cDNA. The 5 'primer was reverse transcribed to correspond to the newly determined N-terminal amino acid sequence, while the 3' primer corresponded to a sequence substantially similar to the antibody constant region sequence. Amplification and cloning of this product resulted in the isolation of nucleic acids encoding the LM609 heavy and light chains.
[0101]
The nucleotide sequences of the LM609 heavy and light chain variable region sequences are shown in FIGS. 2A and 2B, respectively. These sequences correspond substantially to the sequences encoding the heavy and light chain polypeptides of the variable region of LM609. With respect to Vitaxin nucleic acids, these LM609 nucleic acids are intended to include both the sense and antisense strands of the sequence encoding LM609. Single- and double-stranded nucleic acids also include non-coding portions of the nucleic acids, such as, for example, introns, 5'-untranslated regions, 3'-untranslated regions, and regulatory sequences of genes.
[0102]
As shown in FIG. 2A, the LM609 heavy chain variable region polypeptide is encoded by a nucleic acid approximately 351 nucleotides in length, which starts at the amino-terminal Glu1 residue of the variable region and ends up to Ala117. The murine LM609 antibody heavy chain has an IgG2a constant region. FIG. 2B shows the LM609 light chain variable region polypeptide encoded by a nucleic acid of about 321 nucleotides in length, starting at the amino-terminal Asp1 residue of the variable region and ending at Lys107. In this functional antibody, LM609 has a kappa light chain constant region.
[0103]
With respect to Vitaxin nucleic acids, it is contemplated that these small modifications of the LM609 nucleotide sequence are included as nucleic acids encoding heavy and light chain LM609. Such small modifications are included in the nucleic acids encoding the LM609 heavy and light chain polypeptides, so long as the nucleic acid or encoded polypeptide retains some or all of these described functions. .
[0104]
Accordingly, the present invention also provides a nucleic acid encoding a LM609 heavy chain or a functional fragment, wherein the nucleic acid comprises a variable region amino acid sequence (substantially identical to that of the monoclonal antibody LM609 as shown in FIG. 2A). SEQ ID NO: 6) or a fragment thereof. Similarly, the invention also provides a nucleic acid encoding an LM609 light chain or functional fragment, wherein the nucleic acid comprises a substantially identical variable region amino acid sequence of a monoclonal antibody LM609 as shown in FIG. 2B. (SEQ ID NO: 8) or a fragment thereof.
[0105]
The invention further provides fragments of the nucleic acids encoding the LM609 heavy and light chains, wherein such fragments substantially comprise the variable regions of the LM609 heavy or light chain polypeptides. Consist of identical nucleotide or amino acid sequences. The variable region of this LM609 heavy chain polypeptide consists essentially of nucleotides 1-351 and amino acid residues Glu1-Ala117 of FIG. 2A (SEQ ID NOS: 5 and 6, respectively). The variable region of this LM609 light chain polypeptide consists essentially of nucleotides 1-321 and amino acid residues Asp1-Lys107 of FIG. 2B (SEQ ID NOs: 7 and 8, respectively). The termini of such variable regions encoding nucleic acids are not critical, so long as the intended purpose and function remain the same. Such intended purposes and functions include, for example, use for the production of recombinant polypeptides, or as a hybridization probe for heavy and light chain variable region sequences.
[0106]
Additional fragments of this variable region nucleic acid fragment are provided as well. Such fragments include, for example, nucleic acids consisting of a nucleotide sequence substantially identical to the CDRs of the LM609 heavy or light chain polypeptide. The sequence corresponding to the LM609 CDR may be, for example, a region within the variable region defined by Kabat et al. (Supra) and / or a region within the variable region defined by Chothia et al. (Supra), and MacCallum et al. (Supra). Including the area defined by The LM609 CDR fragments for each of the above definitions corresponding to this nucleotide are set forth in Table 4 below. The numbering of the nucleotide sequences is derived from the primary sequence shown in FIGS. 2A and 2B (SEQ ID NOs: 5 and 7) and follows the definition described earlier in Table 1.
[0107]
(Table 4: LM609 CDR nucleotide residues)
[0108]
[Table 4]

Similarly, LM609 CDR fragments for each of the above definitions corresponding to amino acid residues are shown in Table 5 below. The numbering of the amino acid residues is derived from the primary sequence shown in FIGS. 2A and 2B (SEQ ID NOs: 6 and 8) and follows the definitions described in Table 1.
[0109]
(Table 5: LM609 CDR amino acid residues)
[0110]
[Table 5]

Nucleic acids encoding LM609 heavy and light chain polypeptides and fragments thereof are useful for various diagnostic and therapeutic purposes. For example, using LM609 nucleic acid, integrin α _v β ₃ Can produce recombinant LM609 antibodies and functional fragments thereof, which have binding specificity and inhibitory activity against LM609. Using this antibody and its functional fragments, α _v β ₃ To diagnose the susceptibility or presence of a mediated disease, α in the sample _v β ₃ May be determined. Alternatively, the recombinant LM609 antibody and its functional fragments are _v β ₃ It can be used for therapeutic treatment of a mediated disease or pathological condition. For Vitaxin, using recombinant LM609 and its functional fragments, _v β ₃ Α required for the development of a mediated disease or pathological condition _v β ₃ Can inhibit the binding properties or other functional activities of
[0111]
The LM609 nucleic acids of the invention can also be used to model the functional equivalents of the encoded heavy and light chain polypeptides. Such functional equivalents can include, for example, synthetic analogs or mimetics of the encoded polypeptide or a functional fragment thereof. Particular examples include peptidomimetics of the LM609 CDR that retain some binding or inhibitory activity with, or retain substantially the same binding or inhibitory activity as, LM609. In addition, nucleic acids encoding LM609 may be used to manipulate and produce nucleic acids encoding modified forms or derivatives of antibody LM609, its heavy and light chain polypeptides and functional fragments thereof. As described above, such modified forms or derivatives include, for example, non-mouse antibodies, their corresponding heavy and light chain polypeptides and functional fragments thereof, which are substantially identical to LM609. Exhibit the same binding and inhibitory activities.
[0112]
The present invention also provides α _v β ₃ Methods for treating a mediated disease are provided. This method uses α _v β ₃ Administering an effective amount of Vitaxin, an LM609 grafted antibody, an enhancing antibody thereof, or a functional fragment thereof under conditions that allow binding to the antibody. Also, α _v β ₃ Provided are methods of inhibiting the function of This method uses α _v β ₃ Vitaxin, LM609-grafted antibody, or a functional fragment thereof, and α under conditions that allow binding to _v β ₃ And contacting the same.
[0113]
As described above, Vitaxin and LM609 grafted antibodies are monoclonal antibodies that exhibit essentially all the binding characteristics as the parent CDR donor antibody LM609 shows. These properties are, for example, integrin α _v β ₃ Including significant binding specificity and affinity for The following examples demonstrate these binding properties and _v β ₃ Binding of such an antibody to _v β ₃ 2 further illustrates inhibiting ligand binding and function. Therefore, Vitaxin and LM609-grafted antibodies have αα _v β ₃ Useful for a wide variety of diagnostic and therapeutic purposes related to the inhibition of function.
[0114]
Integrin alpha _v β ₃ Functions in a number of cell adhesion and migration related events. Thus, dysfunction or dysregulation of the integrin, its function, or cells expressing the integrin, is associated with numerous disease and pathological conditions. Therefore, inhibition α _v β ₃ Using a combination or function such an α _v β ₃ The severity of the vehicle pathological condition may be treated or reduced. Below, α _v β ₃ Examples of several pathological conditions mediated by are described. Because at least inhibition of this integrin reduces the severity of the condition. These examples are intended to be illustrative and all α _v β ₃ Contains no vector-borne disease. For example, α _v β ₃ There are a number of pathological conditions in addition to those described below that indicate binding, dysregulation of function or dysregulation of cells expressing this integrin, and wherein the pathological condition is binding α _v β ₃ Can be or is found to be reduced by inhibiting. Such pathological conditions indicating this diagnostic criterion are intended to be included within the definition of terms used herein.
[0115]
Angiogenesis, or neovascularization, is the process by which new blood vessels form from preexisting vessels in tissue. As described further below, this process involves α _v β ₃ And at least inhibition of this integrin inhibits the growth of new vessels. There are various pathological conditions that require new or tissue neovascularization, and inhibition of this process inhibits the pathological condition. Thus, a pathological condition that requires neovascularization for growth or maintenance is α _v β ₃ It is thought to be a mediated disease. Thus, the extent of treatment or reduction in severity of these diseases will depend on the extent of inhibition of neovascularization. These α _V β ₃ Mediated diseases include, for example, inflammatory disorders (eg, immune and non-immune inflammation), rheumatoid arthritis, psoriasis, incompatible or inappropriate disorders associated with vascular infiltration (eg, diabetic retinopathy), angiogenesis Capillary proliferation in glaucoma and atherosclerotic plaques and cancer disorders. Such cancer disorders include, for example, solid tumors, tumor metastases, hemangiofibromas, post lens fibroplasia, hemangiomas, Kaposi's sarcoma, and other cancers that require neovascularization to support tumor growth. obtain. Additional diseases that may be considered angiogenesis include psoriasis and rheumatoid arthritis and retinal diseases (eg, macular degeneration). α _V β ₃ Diseases other than those requiring new blood vessels, which are mediated diseases, include, for example, restenosis and osteoporosis.
[0116]
α _V β ₃ Treatment of a mediated disease is effected by administering an effective amount of Vitaxin, an LM609 grafted antibody, an enhanced antibody thereof, or a functional fragment of the antibody, such that αα _V β ₃ And inhibit its function. Administration can be performed using various methods known in the art. The choice of method is specific α _V β ₃ Dependent on the mediating disease, and may include, for example, in vivo, in situ and ex vivo administration of Vitaxin, LM609-grafted antibody, or a functional fragment of the antibody, to cells, tissues, organs, and organisms. Furthermore, such an antibody or functional fragment _V β ₃ It can be administered to an individual exhibiting or at risk for exhibiting a mediated disease. α _V β ₃ An unambiguous clinical diagnosis of a mediated disease warrants administration of Vitaxin, LM609 transplanted antibody, or a functional fragment of the antibody. Prophylactic application is α _V β ₃ A mediated disease mechanism is warranted in diseases that precede the onset of overt clinical disease. Thus, individuals with a familial history of the disease and those who are predicted to be at risk from reliable prognostic indicators, will have αα before their onset _V β ₃ It can be treated prophylactically to block the mediating mechanism.
[0117]
Vitaxin, an LM609-grafted antibody, its enhanced antibody, or a functional fragment of the antibody, _V β ₃ Effective treatment of mediated diseases or α _V β ₃ It may be administered in a variety of formulations and pharmaceutically acceptable media for the reduction of the severity of the mediated disease. Such formulations and pharmaceutically acceptable media are well-known to those skilled in the art. In addition, Vitaxin, LM609-grafted antibody, or a functional fragment of the antibody, may have an α _V β ₃ It can be administered with other compositions that can enhance or supplement the treatment or reduction in severity of the mediated disease. For example, co-administration of Vitaxin or LM609 implanted antibodies to inhibit tumor-induced neovascularization and chemotherapeutic drugs to directly inhibit tumor growth are one particular case where other compositions Administration of α _V β ₃ It may enhance or supplement treatment of a mediated disease.
[0118]
Vitaxin, LM609-grafted antibody or functional fragment is administered by conventional methods, in which, upon administration, _V β ₃ Sufficient to cause inhibition of integrin binding. Inhibition can be achieved by various methods known in the art (eg, α _V β ₃ In situ immunohistochemistry for the prevalence of containing cells) and the inhibition is, for example, α _V β ₃ It may include a decrease observed in the severity of signs of a mediated disease.
[0119]
In vivo modes of administration can include intraperitoneal, intravenous, and subcutaneous administration of Vitaxin, an LM609 grafted antibody, or a functional fragment of the antibody. Dosages for antibody therapy are known or can be routinely determined by those skilled in the art. For example, such doses are typically administered, resulting in a plasma concentration of about 0.01 μg / ml to about 100 μg / ml, preferably about 1-5 μg / ml and more preferably about 5 μg / ml. To achieve. These dosages, in terms of amounts per body weight, are typically about 0.1-300 mg / kg, preferably about 0.2-200 mg / kg and more preferably about 0.5-20 mg / kg. Corresponding to Depending on the need, the dosage may be administered once or multiple times over the course of the treatment. Generally, the dosage will depend on the age, condition, sex and α of the subject. _V β ₃ It depends on the extent of the vector-borne pathology and should not be so high as to cause adverse side effects. In addition, dosages may also be adjusted by the physician during the course of the treatment, either to enhance treatment or reduce the potential occurrence of side effects. Such procedures are known and are routinely performed by those skilled in the art.
[0120]
The specificity and inhibitory activity of Vitaxin, the LM609-grafted antibody, its enhanced antibodies and functional fragments of the antibodies, are determined by many α _V β ₃ Enable therapeutic treatment of mediated diseases. Such diseases include, for example, tumor growth and pathological conditions requiring neovascularization, such as psoriasis, and α. _V β ₃ (Eg, restenosis and osteoporosis). Accordingly, the present invention provides Vitaxin and LM609 transplanted antibodies, including methods and compositions for the treatment of such diseases.
[0121]
It is understood that modifications that do not substantially affect the activity of the various embodiments of the present invention are also included within the definitions of the invention provided herein. Accordingly, the following embodiments are intended to illustrate, but not limit, the invention.
[0122]
(Example I)
(Isolation and characterization of nucleic acid encoding LM609)
This example illustrates the cloning and sequencing of a nucleic acid encoding LM609.
[0123]
LM609 is a human vitronectin receptor (integrin α _V β ₃ ). α _V β ₃ Is highly upregulated in melanomas, glioblastomas, and mammalian carcinomas, and plays a role in M21 melanoma cell growth both in vitro and in vivo. α _V β ₃ Also plays a role in the formation of granulation tissue in angiogenesis, restenosis and skin wounds. LM609 has been shown to inhibit M21 cell adhesion to vitronectin as well as prevent M21 cell growth in vitro. Thus, transplantation of LM609 may yield a clinically useful therapeutic agent.
[0124]
Synthesis of cDNA for LM609 variable region: For the synthesis of cDNA, total RNA was purified using the method described by Chomczynski and Sacchi (Chomczynski and Sacchi, Analyt. Biochem. 162: 156 (1987)). ⁸ Prepared from LM609 hybridoma cells. The LM609 variable (V) region gene was cloned by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and cDNA was synthesized using the BRL Superscript kit. Briefly, 5 mg of total cellular RNA, 650 ng oligo dT and H ₂ O was brought to a total volume of 55 ml. The sample was heated to 70 ° C. for 10 minutes and cooled on ice. Reaction buffer was added and the mixture was made up to 10 mM DTT and 1 mM dNTP and heated at 37 ° C. for 2 minutes. 5 ml (1000 units) reverse transcriptase was added and incubated at 37 ° C. for 1 hour, then chilled on ice.
[0125]
All oligonucleotides were synthesized by β-cyanoethyl phosphoramidite chemistry on an ABI 394 DNA synthesizer. Oligonucleotides used for PCR amplification and conventional site-directed mutagenesis were purified using an oligonucleotide purification cartridge (Applied Biosystems, Foster City, CA). Forward PCR primers were designed from N-terminal protein sequence data generated from purified LM609 antibody. The forward primer included a sequence encoding the first six amino acids in the variable chain of each antibody (a protein sequenced at San Diego State University). The sequence of the light chain forward PCR primer (997)
5′-GCC CAA CCA GCC ATG GCC GAT ATT GTG CTA ACT CAG-3 ′ (SEQ ID NO: 19), whereas the light chain reverse PCR primer (734) is 5′-AC AGT TGG TGC AGC ATC AGC-3 '(SEQ ID NO: 20) was used. This reverse primer corresponds to mouse light chain kappa amino acid residues 109-115. The sequence of the heavy chain forward PCR primer (998) was 5'-ACC CCT GTG GCA AAA GCC GAA GTG CAG CTG GTG GAG-3 '(sequence 21). The heavy chain reverse PCR primer (733) was 5′-GA TGG GGG TGT CGT TTT GGC-3 ′ (SEQ ID NO: 22). PCR primers also include regions homologous to specific sequences found in the immune expression vector.
[0126]
V _L Chain and V _H The strand was amplified in two separate 50 ml reaction mixtures containing: 2 ml of cDNA-RNA heteroduplex, 66.6 mM Tris-HCl pH 8.8, 1.5 mM MgCl. ₂ , 0.2 mM each of 4 dNTPs, 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.25 units of Taq polymerase (Boehringer-Mannheim, Indianapolis, IN) and 50 pmol of each primer 997 and 734 and 998 and 733, respectively. The mixture was covered with mineral oil, and two cycles of PCR were performed using each cycle consisting of 94 ° C. for 30 seconds (denaturation), 50 ° C. for 30 seconds (annealing), and 72 ° C. for 30 seconds (synthesis). Immediately after this reaction, 30 cycles of PCR consisting of 94 ° C. for 30 seconds (denaturation), 55 ° C. for 30 seconds (annealing), and 72 ° C. for 30 seconds (synthesis), followed by final synthesis at 72 ° C. for 5 minutes The reaction was performed. The reaction products are pooled and CHCl ₃ And extracted with ethanol.
[0127]
The amplification product was resuspended in 20 ml of TE buffer (10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA (pH 8.0)) and electrophoresed on a 5% polyacrylamide gel. V _H And V _L The band migrating at the expected molecular weight of, was excised, chemically eluted from the gel slice, extracted with an organic solvent, and ethanol precipitated.
[0128]
Amplified V _H And V _L Cloning into the M13 phage immunoexpression vector: The amplified V-region gene product was subsequently hybridized with mutagenesis (Near, R. Biotechniques 12:88 (1992); Yelton et al., J. Immunol. 155: 1994). -2003 (1995)). V amplified by hybridization mutagenesis _H And V _L Introduction of the sequence positions the antibody sequence in frame with the regulatory elements contained in the M13 vector required for efficient Fab expression. One advantage of this technique is that restriction endonuclease sites are used for cloning as is done using conventional DNA ligation techniques. _H Or V _L It is not necessary to integrate the gene sequence.
[0129]
To perform the cloning, 400 ng of each of the double-stranded amplification products was first phosphorylated using polynucleotide kinase. Phosphorylated LM609 V _L 100 ng of the product was mixed with 250 ng of uridine-modified BS11 phage immunoexpression vector, denatured by heating to 90 ° C., and annealed by gentle cooling to room temperature. BS11 is an M13 immunoexpression vector derived from M13 IX, and CH11 of mouse IgG1. ₁ And a mouse kappa light chain constant domain (Huse, WD: Antibody Engineering; A Practical Guide, edited by CAK Borrebaeck, WH Freeman and Co., Publishers, New York, 103- 120 (1991)). The nucleotide sequence contained in the PCR amplification primer anneals to the complementary sequence present in the single-stranded BS11 vector. This annealing mixture was completely converted to double-stranded molecules using T4 DNA polymerase and dNTPs and ligated using T4 ligase. One ml of the mutagenesis reaction was added to E. coli. E. coli DH10B was electroporated and XL-1E. E. coli was dropped on a lawn and incubated until plaques formed. Plaque lift assays were performed with goat anti-mouse kappa chain antibody conjugated to alkaline phosphatase as described (Yelton et al., Supra; Huse, WD (supra)). Fifteen mouse light chain positive M13 phage clones were isolated, pooled and PCR amplified LM609V _H It was used to prepare a uridinated vector that functions as a template for hybridization mutagenesis with the product.
[0130]
Clones expressing functional mouse LM609 Fab were purified a _v b ₃ And identified by ELISA. Briefly, Immulon II ELISA plates were prepared at 1 mg / ml (100 ng / well) a _v b ₃ , And non-specific sites were blocked at 27 ° C for 2 hours. Soluble Fab was infected with M13 phage clones expressing Fab. E. coli MK30-3 (Boehringer Mannheim Co.) was prepared by isolating the periplasmic fraction of the culture. The periplasmic fraction was washed with binding buffer (100 mM NaCl, 50 mM Tris (pH 7.4), 2 mM CaCl 2 ₂ , 1 mM MgCl ₂ , 1 mM MnCl ₂ , 0.02% NaN ₃ 1 mg / ml BSA) and fixed a _v b ₃ For 2 hours at 27 ° C. The plates were washed with binding buffer and the bound Fabs were detected using a goat anti-mouse kappa chain antibody conjugated to alkaline phosphatase. Four a _v b ₃ Reactive clones were identified: muLM609M13 12, 29, 31 and 69. MuLM609M13 12 and 29 gave the strongest signals in the ELISA assay. DNA sequence analysis showed that clones muLM609M13 12, 31, and 69 all had the same light chain sequence, and confirmed the N-terminal amino acid sequence of the previously determined purified LM609 light chain peptide. All four clones have the same V _H And also confirmed the N-terminal amino acid sequence of the previously determined purified LM609 heavy chain polypeptide.
[0131]
To further characterize the binding activity of each clone, soluble Fab fractions were used to infect E. coli infected clones 12 and 29. prepared from a 50 ml culture of E. coli strain MK303-3 and in a competitive ELISA using LM609 IgG a _v b ₃ Was evaluated for binding. The result of this ELISA is shown in FIG. Clone muLM609M1312 showed a LM609 IgG a periplasmic titer ranging from no mixing (neat) to 1:80. _v b ₃ Binding was found to be inhibited in a concentration-dependent manner (at LM609 IgG concentrations of 1 ng / ml and 5 ng / ml). Clone muLM609M1312 was plaque purified and both V-region heavy and V-region light chain DNA sequences were determined again. The complete DNA sequence of the final clone (muLM609M13 12-5) is shown in FIGS. 2A and 2B.
[0132]
(Example II)
(Construction of Vitaxin: CDR-grafted LM609 functional fragment)
One purpose of grafting antibodies is to protect antibody specificity and affinity when replacing non-human CDRs with a human antibody framework. Another object is to minimize the introduction of foreign amino acid sequences to reduce possible antigenicity with the human host. This example describes a procedure for achieving both of these goals by creating a library of transplanted antibodies that display all possible members that exhibit the highest affinity for the desired antigen.
[0133]
The library described above was E. coli. The possible CDR and framework changes here are described by codon base mutagenesis (Kristensson et al .: Vaccines 95. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY (1995); Rosok et al., J. Biol. Chem. 22611-22613 (1996))). Using these procedures, libraries are constructed and functionally active humanized anti-a _v b ₃ Inhibitory antibodies were identified.
[0134]
For the construction of one transplant form of LM609, a human framework sequence that exhibited the highest degree of identity to the mouse LM609 V region gene sequence was selected to obtain the LM609 CDR. The human heavy chain V region M72｀CL (HHC30Q, HC subgroup 3, Kabat et al., Supra) has 88% identity to LM609 heavy chain frameworks 1, 2, and 3, and The light chain V region LS1｀CL (HKL312, κ subgroup 3, Kabat et al., Supra) had 79% identity to frameworks 1, 2 and 3 of the LM609 light chain. The mouse LM609 CDR sequence defined by Kabat et al. (Supra) was grafted onto the human framework. Residues that are expected to be buried can affect structure, and thus take into account the binding properties of the native mouse binding site when designing possible changes (Singer et al., Supra; Padlan, EA). Mol. Immunol. 28: 489-498 (1991)). Analysis of this framework residue was considered important for preserving specificity, and the affinity of the binding sites showed only slight differences. For example, in the heavy chain sequence, the expected buried residue showed 100% identity. Of particular note is that Arg16 in the human heavy chain V region M72 @ CL is a relatively rare residue in the human chain. However, this residue also contains the LM609 V _H And was therefore retained. Similarly, Arg19 in LM609, although a relatively rare residue in the mouse heavy chain, was found to be present in M72｀CL and was therefore retained. Two different buried residues in the light chain sequence were identified at positions 49 and 87 between the LM609 and LS1｀CL framework regions. Therefore, these two positions were both human and mouse substitutes and were incorporated into the grafted antibody library.
[0135]
Full-length transplanted V region genes were synthesized by PCR using long overlapping oligonucleotides. Light chain oligonucleotides containing amino acid residues mixed at positions 49 and 87 were described in Glaser et al. (J. Immunol. 149: 3903-3913 (1992)) and _L Oligo 3 and V _L Synthesized as exemplified in the oligonucleotide shown as Oligo 4 (SEQ ID NOs: 16 and 17, respectively). All long oligonucleotides were gel purified.
[0136]
The grafted LM609 heavy and light chain V regions were constructed by mixing 5 overlapping oligonucleotides at molar equivalent concentrations in the presence of annealing PCR primers. This heavy chain oligonucleotide was located at the following nucleotide position: _H Oligonucleotide 1 (V _H Oligo 1) (nucleotide (nt) 1-84) (SEQ ID NO: 9); V _H Oligo 2 (nt 70-153) (SEQ ID NO: 10); V _H Oligo 3 (nt 138-225) (SEQ ID NO: 11); V _H Oligo 4 (nt 211-291) (SEQ ID NO: 12); V _H Oligo 5 (nt 277-351) (SEQ ID NO: 13). Similarly, the Vitaxin light chain oligonucleotide was located at the following nucleotide position: _L Oligonucleotide 1 (V _L Oligo 1) (nucleotide (nt) 1-87) (SEQ ID NO: 14); V _L Oligo 2 (nt 73-144) (SEQ ID NO: 15); V _L Oligo 3 (nt 130-213) (SEQ ID NO: 16); V _L Oligo 4 (nt 199-279) (SEQ ID NO: 17); V _L Oligo 5 (nt 265-321) (SEQ ID NO: 18). The nucleotide sequences of the oligonucleotides used to construct the grafted LM609 heavy chain variable region and the grafted LM609 light chain variable region are shown in Table 6. V _L Oligo 3 and V _L Codons 49 and 87 in oligo 4 indicate randomized codons. The annealing primer contained at least 18 nucleotide residues that were complementary to the vector sequence for effective annealing of the amplified V region product to a single-stranded vector. This annealed mixture was completely converted to double-stranded molecules using T4 DNA polymerase and dNTPs and ligated using T4 ligase.
[0137]
To make the library, a portion (1 μl) of the mutagenesis reaction was E. coli strain DH10B (BRL) was electroporated, dropped onto XL-1 (Stratagene, Inc.) lawn, and incubated until plaques were formed. A replica filter lift is prepared and V _H Plaques containing the gene sequence were hybridized to a digoxigenin-labeled oligonucleotide complementary to the LM609 heavy chain CDR2 sequence or to the vector CH ₁ A 7F11 alkaline phosphatase conjugated monoclonal antibody raised against the decapeptide sequence TyrProTyrAspValProAspTyrAla Ser (SEQ ID NO: 28) added to the carboxy terminus of the domain (Biosite, Inc., San Diego, USA). CA). The 15 clones that were both positive were pooled and the amplified transplanted LM609V was amplified. _L The product was used to prepare a uridine template for hybridization mutagenesis.
[0138]
Table 6: Oligonucleotides used to construct the variable regions of the heavy and light chains of the implanted LM609
[0139]
[Table 6]

The mutagenesis reaction is _L V except that oligonucleotides 1-5 (SEQ ID NOs: 14-18, respectively) were used. _H Performed as above using oligonucleotides. This reaction is described in E.I. Rabbit anti-goat conjugated to alkaline phosphatase using either a goat anti-human kappa chain antibody or a goat anti-human Fab antibody conjugated to alkaline phosphatase for detection and electroporation into E. coli strain DH10B. The following reagents were used to probe the filtration lift. V _H And V _L Positive clones were selected that co-express both of the gene sequences (160 in total) and used to prepare E. coli to prepare soluble Fab fragments. E. coli strain MK30-3.
[0140]
This soluble Fab fragment was converted to αα in an ELISA assay. _V β ₃ Was screened for binding. α _V β ₃ Four clones that were shown to bind strongly to ELISA were identified and further characterized. These clones were designated huLM609M13-34, 54, 55 and 145. All four clones were plaque purified and three independent subclones from each clone were used to generate additional α by ELISA. _V β ₃ Fab fragments were prepared for binding analysis.
[0141]
In this further ELISA, duplicate plates were _V β ₃ Coated with ligand and incubated with huLM609 periplasmic sample. In one plate, bound huLM609 Fab was detected with a goat anti-human kappa chain antibody conjugated to alkaline phosphatase, and in another plate, bound huLM609 Fab was conjugated to 7F11-alkaline phosphatase conjugate, a monoclonal antibody that recognizes the decapeptide tag. Detected in the body. The subclones (huLM609M13-34-1, 2 and 3) and huLM609M13-145-1, 2 and 3 all produced a double positive signal, indicating that the Fab had a functional V _H And V _L It has been shown to contain polypeptides. These results were compared with integrin α _V β ₃ Was confirmed in an ELISA assay against M21 cells, a cell line that expresses.
[0142]
DNA sequence analysis of subclones huLM609M13-34-3 and huLM609M13-145-3 reveals mutations introduced into the library due to errors due to oligonucleotide synthesis or due to errors occurring during PCR amplification. I do. These mutations were corrected in clone huLM609MB-34-3 by site-directed mutagenesis. The following corrections were made in the light chain sequence: His36 to Try36 and Lys18 to Arg18. The following corrections were made in the heavy chain sequence: Glu1 to Gln1, Asn3 to Gln3, and Leu11 to Val11. In addition, during the construction of the LM609 grafting molecule, residue 28 from the heavy chain was considered to be an insignificant framework residue and the human residue (Thr28) was retained. However, it was subsequently determined that residue 28 could be a significant part of the CDR. Therefore, residue 28 was linked to its position in the corresponding mouse (Ala28) using site-directed mutagenesis with the oligonucleotide (5′-GCT ACT GAA GGC GAA TCC AGA G-3 ′ (SEQ ID NO: 29)). ). It was later determined that this change did not provide an advantage over threonine at that site in the human framework, and this threonine was retained. The final transplanted LM609 clone was named hu609M13 1135-4 and is referred to herein as Vitaxin. The DNA sequence of clone Vitaxin is shown in FIGS. 2A and 2B.
[0143]
(Example III)
(Functional characterization of Vitaxin)
This example demonstrates the characterization of Vitaxin binding specificity, affinity and functional activity in a number of in vitro binding and cell adhesion assays.
[0144]
Vitaxin integrin α _V β ₃ Binding specificity for α _V β ₃ Binding to other α _V Contains integrin or β ₃ It was initially assessed by measuring its cross-reactivity to contained integrins. Specifically, α _IIb β ₃ (The major integrin expressed in platelets) and α _V β ₅ Binding specificity was assessed by measuring binding to (integrins commonly found in endothelial cells and connective tissue cell types).
[0145]
Briefly, integrin was coated on an ELISA plate to determine cross-reactivity, and a series of antibody dilutions were added to α _V β ₃ And Vitaxin binding activity to other integrins. Integrin alpha _V β ₃ And α _V β ₅ Was isolated by affinity chromatography disclosed by Cheresh (1987) (supra) and Cheresh and Spiro (1987) (supra). α _IIb β ₃ Was purchased from CalBiochem. Briefly, LM609 affinity columns (Cheresh and Spiro (1987) (supra)) were used to convert α-octylglucoside human placenta lysates into α _V β ₃ While anti-α _V Using an affinity column, α _V β ₃ From flow-through of depleted column _V β ₅ Was isolated. Antibody binding activity was assessed by ELISA using goat anti-human IgG alkaline phosphatase conjugate. As a control, purified human IgG ₁ Antibodies were used. Because Vitaxin is a human IgG ₁ Is included.
[0146]
The results of this assay are shown in FIG. 4A and show that Vitaxin has a high affinity and α _V β ₃ To specifically bind to Other α at antibody concentrations above 1.0 mg / ml _V Contains integrin or β ₃ There was no detectable binding to contained integrins.
[0147]
In further binding studies, the affinity and specificity of _V β ₃ Was evaluated in a competitive binding assay using the parent LM609 antibody against Competitive binding was measured in an ELISA assay as described above using the labeled antibody, LM609. LM609 binding was determined in the presence of increasing concentrations of Vitaxin competitor. Alternatively, the control competing antibody is again human IgG ₁ Met.
[0148]
The results of this competition are shown in FIG. 4B and show that specific inhibition of LM609 binding can be observed at Vitaxin concentrations above 0.1 μg / ml. Almost complete inhibition is observed at Vitaxin concentrations above 100 μg / ml. This level of competitive inhibition indicates that the transplanted versions of the parent monoclonal antibody LM609 and Vitaxin show essentially the same specificity.
[0149]
Α to fibrinogen _V β ₃ The binding affinity and specificity were also assessed by measuring the inhibitory activity of Vitaxin on binding. For these studies, Vitaxin / α _V β ₃ Α on the ELISA plate as described above for binding studies _V β ₃ Was plated. Vitaxin inhibitory activity was determined by measuring the amount of bound biotinylated fibrinogen in the presence of increasing concentrations of Vitaxin or control antibody. Briefly, fibrinogen was purchased from CalBiochem and biotinylated with N-hydroxysuccinimide biotin as described by the manufacturer (Pierce Life Science and Analytical Research). Bound fibrinogen was detected using streptavidin alkaline phosphatase.
[0150]
The results of this assay are shown in FIG. 4C and demonstrate the specific binding inhibition at Vitaxin concentrations higher than about 0.1 μg / ml. These results indicate that Vitaxin's α _V β ₃ Combined with the above results showing specific binding of LM609 and competitive inhibition of LM609, it demonstrates that Vitaxin essentially maintains all of the binding characteristics and specificity exhibited by the parental mouse monoclonal antibody LM609. Further functional studies demonstrating these conclusions based on in vitro binding assays are described below.
[0151]
Further functional studies were performed to further evaluate the specificity of Vitaxin binding. These studies demonstrate that integrin α in cell adhesion assays _V β ₃ Regarding inhibition of binding. Endothelial cell adhesion events are an important component of the angiogenic process and α _V β ₃ Is known to reduce tumor angiogenesis, thereby reducing the rate of tumor growth. Α by Vitaxin in these assays _V β ₃ Inhibition of mediated cell adhesion exhibits inhibitory activity except when the antibody is used in situ or in vivo.
[0152]
Briefly, α grown in RPMI containing 10% FBS _V β ₃ Positive M21 melanoma cells were used for cell binding assays. Cells are released from culture dishes by trypsinization and 4x10 ⁵ Resuspended in adhesion buffer at a concentration of cells / ml (see below). Vitaxin, LM609 or purified human IgG ₁ (Control antibody) was added to 250 μl of adhesion buffer (10 mM Hepes, 2 mM MgCl 2). ₂ , 2 mM CaCl ₂ 0.2 mM MnCl ₂ And 1% BSA (Hepes buffered saline, pH 7.4)) to the desired concentration and added to the wells of a 48-well plate pre-coated with fibrinogen. Fibrinogen was isolated as described above. Each well was coated with 200 μl of fibrinogen at a concentration of 10 μl / ml for 1 hour at 37 ° C. For the assay, an equal volume of cells (250 μl) containing Vitaxin, LM609 or an isotype matched control antibody was added to each well, mixed by gentle shaking, and incubated for 20 minutes at 37 ° C. Unbound cells were removed by washing with adhesion buffer until no cells remained in control wells coated with BSA alone. Adherent cells were visualized by staining with crystal violet. Subsequently, the crystal violet was extracted with 100 μl of acetic acid (10%) and quantified by determining the absorbance of the solubilized dye at 560 nm.
[0153]
The results of this assay are shown in FIG. 5A and demonstrate that both Vitaxin and the parent antibody LM609 inhibit M21 cell adhesion to fibrinogen over the same concentration range. This inhibitory concentration for 50% of the maximum adhesion was calculated to be about 50 ng / ml. The specificity of Vitaxin was determined using control IgG ₁ Indicated by the lack of inhibition observed with the antibody.
[0154]
In addition to the cell adhesion results described above, the inhibitory activity of Vitaxin was also tested in an endothelial cell migration assay. In this regard, the transwell cell migration assay was used to assess the ability of Vitaxin to inhibit endothelial cell migration (Choi et al., J. Vascular Surg., 19: 125-134 (1994) and Leavesly et al.). J. Cell Biol, 121: 163-170 (1993)).
[0155]
Briefly, human umbilical vein endothelial cells at log phase and low passage numbers are collected by mild trypsinization, washed, and HBS at 37 ° C with 1% BSA (20 mM HEPES, 150 mM NaCl, 1.8 mM CaCl 2). ₂ 1.8 mM MgCl ₂ 2 x 10 in 5 mM KCl, and 5 mM glucose, pH 7.4). ⁶ Resuspended at a concentration of cells / ml. Antibodies (Vitaxin, LM609, and IgG ₁ Control) was diluted to 10 μg / ml in stock solution. Antibodies were diluted 1: 1 (final concentration of antibody = 5 μg / ml; final concentration of cells = 1 × 10 ⁶ (Cells / ml), added to the cells and incubated on ice for 10-30 minutes. The cell / antibody suspension (200 μl for each compartment) is then added to the upper compartment of the Transwell cell culture chamber (Corning Costar), the bottom compartment containing 0.5 ml of 10 μg / ml vitronectin in HBS. So it is coated. Vitronectin acts as a chemoattractant for endothelial cells. The chamber is left at 37 ° C. for 4 hours to allow cell migration.
[0156]
Visualization of cell migration was performed by first removing the remaining cells in the upper compartment with a cotton cloth. Cells that migrated to the lower side of interest were stained with crystal violet for 30 minutes, subsequently solubilized in acetic acid, and the absorbance of the dye was measured at a wavelength of 550 nm. The amount of absorption is directly proportional to the number of cells that have migrated from the top chamber to the bottom chamber. The results of the assay are shown in FIG. 7B. Both Vitaxin and the parent antibody LM609 produced essentially the same inhibition results. Specifically, Vitaxin and LM609 are IgG ₁ Approximately 60% of vitronectin-induced migration of endothelial cells was inhibited as compared to control and samples without inhibitor.
[0157]
(Example IV α in animal model _V β ₃ Vitaxin-mediated inhibition of
This example describes the inhibition of tumor growth by Vitaxin in two animal models. Tumor growth at least α _V β ₃ Mediated neovascularization was inhibited by inhibition with Vitaxin.
[0158]
The first model measures angiogenesis in chicken chorioallantoic membrane (CAM). This assay is a well-recognized model for in vivo angiogenesis. This is because neovascularization of all tissues occurs. Specifically, this assay measures growth factor-induced angiogenesis of CAM vessels in chickens growing toward growth factor permeable filter discs or in tissue grown on CAMs. Inhibition of neovascularization is based on the amount and extent of new blood vessel growth or on the inhibition of tissue growth on the CAM. This assay has been described in detail by others and was used to measure neovascularization as well as neovascularization of tumor cells (Ausprunk et al., Am. J. Pathol., 79: 597-618 ( Ossonski et al., Cancer Res., 40: 2300-2309 (1980); Brooks et al., Science, 264: 569-571 (1994a) and Brooks et al., Cell, 79: 1157-1164 (1994b)).
[0159]
Briefly, for growth factor-induced angiogenesis, filter discs are purchased from # 1 Whatman Qualitative Circuits using skin biopsy perforation. The disks are first sterilized by exposure to UV light and then saturated under sterile conditions (at least 1 hour) with different concentrations of TNF-α or HBSS as a negative control. Angiogenesis is induced by placing a saturated filter disc on the CAM.
[0160]
Inhibition of angiogenesis was determined using embryos with different amounts of Vitaxin and control (antibody or purified human IgG). ₁ ). The procedure is performed by intravenous infusion approximately 24 hours after placement of the disc. After 48 hours, CAMs are dissected and angiogenesis is scored on a scale of 1-4. HBSS-saturated filter discs are used as negative controls (representing angiogenesis that can occur in response to tissue damage when adjusting CAM) and values for these CAMs are subtracted as background. Purified human IgG ₁ Is used as a negative control for injection. Because Vitaxin is a human IgG ₁ This is because it is a subclass Vitaxin. Vitaxin was found to inhibit TNF-α-induced angiogenesis in a dose-dependent manner. Maximal inhibition occurs with a single dose of Vitaxin at 300 μg, which is similar to human IgG ₁ This resulted in greater than 80% inhibition as compared to the control.
[0161]
In addition to the CAM assay described above using growth factor-induced neovascularization, further studies were performed using tumor-induced neovascularization. In these assays, α _V β ₃ Angiogenesis was induced by implanting the negative tumor fragment into the CAM. α _V β ₃ Negative tumor fragments show that any inhibition of tumor growth is caused by CAM-induced endothelial cells _V β ₃ Α due to inhibition of mediated neovascularization and presented on tumor cells _V β ₃ Not due to adhesion events mediated by
[0162]
Inhibition of tumor growth was determined on CAM in 30 μl by FG (8 × 10 ⁶ Cells, pancreatic cancer) and HEp-3 cells (5 × 10 ⁵ Cells, pharyngeal carcinoma) were evaluated by placing a single cell suspension. One week later, the tumor is removed and cut into approximately 50 mg fragments when placed on a fresh CAM. Twenty-four hours after this second placement, embryos were transferred to Vitaxin or human IgG as a negative control. ₁ Together with the intravenous injection. Tumors were allowed to grow for about 7 days, after which they were removed and weighed.
[0163]
The results of Vitaxin treatment on tumor neovascularization are shown in FIG. 6A. This data is expressed as the mean change in tumor weight, and Vitaxin _V β ₃ It demonstrates that it can inhibit the growth of negative tumors (eg, Fg tumor fragment and HEp-3 tumor fragment). More specifically, while there is a change in average weight for the Vitaxin-treated Fg tumor fragment at -5.38, a change of -11.0 was observed for Vitaxin-treated HEp-3 tumors. IgG ₁ The controls showed positive mean weight changes of 25.29 and 28.5 for the FG and HEp-3 tumor fragments, respectively. These results were obtained from the following single intravenous infusion.
[0164]
In a second animal model, inhibition of Vx2 cancer cells in rabbits was used as a measure of the inhibitory effect of Vitaxin on tumors. Vx2 cancer is a transplantable cancer derived from shopp virus-induced papilloma. It was first described in 1940 and has since been widely used in studies on tumor invasion, tumor-host interactions and angiogenesis. Vx2 cancers are fibrotic in nature, highly active, and exhibit the characteristics of anaplastic cancers. Vx2 tumor growth is achieved through continuous transplantation in donor rabbits. Following subcutaneous implantation, it was reported that after the initial inflammatory response, host repair mechanisms occurred between days 2 and 4. This repair mechanism is characterized by the formation of new connective tissue and the production of new capillaries. The newly formed capillaries were confined to the repair site by day 4, but by day 8 they had spread to the area outside the tumor. These characteristics and pharmacokinetics of Vitaxin in rabbits are used to determine the initial dose and treatment schedule in these experiments. At 1, 5, and 10 mg / kg, the elimination half-life of Vitaxin in the administered animal sera was found to be 38.9, 60.3, and 52.1 hours, respectively.
[0165]
Vx2 tumor growth in the above animal model was used to study the effect of Vitaxin after primary administration on primary tumor growth in rabbits implanted subcutaneously with Vx2 cancer. Briefly, Vx2 tumors (50 mg) were implanted into rabbit thighs through an incision between skin and muscle. Measurements of primary tumors were taken throughout the experiment up to day 25. After day 28 post-implant, animals were sacrificed and tumors were excised and weighed. By day 28, the tumor had a very abnormal shape, which made it difficult to measure and therefore did not show any tumor volume. Therefore, measurements were evaluated only up to day 25.
[0166]
In the first study, rabbits were treated with 5 mg / kg and 1 mg / kg Vitaxin for a total of seven doses every four days starting 28 days after tumor implantation. In both groups, inhibition of tumor growth was observed. In a second series of studies, rabbits were treated with a total of 5 doses, as described above, starting 7 days after tumor implantation. Inhibition of tumor growth was also observed.
[0167]
It should be noted that administering the implanted antibody as a multiple dose treatment to rabbits may produce an immune response that may have a neutralizing effect on Vitaxin and thus has a potential effect . Preliminary data suggests that about 25-50% of animals develop such a response.
[0168]
FIGS. 6B and 6C show the results of the respective Vitaxin processes. In rabbits receiving treatment on day 1, inhibition of tumor growth was observed in both the 1 mg / kg and 5 mg / kg dose groups compared to controls treated with control PBS. Specifically, about 67% and 80% growth inhibition, respectively, as measured by average tumor weight was observed. A lower degree of inhibition was observed in animals that began Vitaxin treatment 7 days after implantation. These results are shown in FIG. 6C. In all cases, no inhibition of tumor growth was observed at Vitaxin concentrations below 0.2 mg / kg.
[0169]
(Example V)
(Construction of LM609 transplantation function antibody fragment)
This example shows the construction of a functional LM609 grafted antibody fragment in which only the CDRs have been transferred from the LM609 donor antibody to the human acceptor framework.
[0170]
CDR grafting of LM609 to generate functional antibody fragments was achieved by the method set forth below. These procedures are applicable for CDR grafting of essentially any donor antibody, wherein amino acid residues outside the CDRs from the donor antibody are not desired in the final graft product.
[0171]
Briefly, the protein sequence of the LM609 antibody was determined by cloning the cDNAs encoding the variable regions of the heavy and light chains and sequencing as described in Example I. CDRs from the LM609 donor antibody were identified and grafted into the homologous human variable region of the human acceptor framework. Identification of CDR regions is described in Kabat et al. And MacCallum et al. Based on a combination of definitions issued by.
[0172]
The boundaries of the CDR regions are defined cumulatively by the two publications described above and for the heavy chain variable regions CDR1, CDR2 and CDR3, residues 30-35, 47-66 and 97-106, respectively, and Residues 24-36, 46-56, and 89-97 for the light chain variable region CDR1, CDR2 and CDR3, respectively. Within these boundaries, see Kabat et al. Different non-identical donor residues outside of the CDRs as defined by were identified and were not replaced by the acceptor framework. Instead, functional non-donor amino acid residues were identified and replaced with specific ones of these different residues.
[0173]
Kabat et al. The only different residue that is outside the CDR as defined by but within the CDR as defined above is position 49 of the LM609 light chain. To identify a functional non-donor amino acid at this position, a library of 19 antibodies containing all non-donor amino acids at position 49 was constructed, and then αvβ ₃ Were screened for binding activity.
[0174]
Human immunoglobulin sequences were identified from the Brookhaven Protein Data Bank-Kabat Sequences of Proteins of Immunological Interestest database (release 5.0). Human framework sequences that show significant identity to the sequence of the mouse LM609 variable region gene were selected to obtain the LM609 CDR. The human heavy chain variable region M72'CL has 88% identity to LM609 heavy chain frameworks 1, 2, and 3, and the human light chain V region LS1'CL has the LM609 light chain framework. It had 79% identity to works 1, 2 and 3. Kabat et al. Except for the different residues outside of the CDRs defined by Kabat et al. And MacCallum et al. The mouse LM609 CDR sequence as defined by was grafted onto the human framework. By using this transplantation scheme, the final transplantation product is Kabat et al. Any amino acid residue outside of the CDRs defined by
(This corresponds to the corresponding position (outside the following residues: 31-35, 50-66 and 99-106 for CDR1, CDR2 and CDR3 of the heavy chain variable region, respectively, and CDR1, CDR2 of the light chain variable region) And CDR3 are the same as LM609 amino acids in 24-34, 50-56 and 89-97), respectively). Further, Kabat et al. Did not produce an amino acid residue containing the amino acid residue outside of the CDR defined by LM609, which is identical at that position to the LM609 amino acid. The CDR transplantation procedure is shown below.
[0175]
The full-length CDR-grafted variable region gene was synthesized by PCR using long overlapping oligonucleotides, as described previously in Example II. The heavy chain variable region oligonucleotide is as previously described as SEQ ID NOs: 9-13. Light chain variable region oligonucleotides were synthesized to include a CDR-grafted variable region and a stop codon at position 49. Five oligonucleotides for the light chain LM609 grafted variable region are shown in SEQ ID NOs: 23-27, where the second oligonucleotide in this series contains a stop codon at position 49 (SEQ ID NO: 24). The nucleotide sequence of the oligonucleotide used to construct the LM609-grafted light chain variable region is shown in Table 7.
[0176]
Table 7: Oligonucleotides used to construct LM609-grafted light chain variable region
[0177]
[Table 7]

All long oligonucleotides were gel purified. CDR grafting of the LM609 heavy chain variable region was constructed by mixing five overlapping oligonucleotides (SEQ ID NOs: 9-13) at equimolar concentrations in the presence of annealing PCR primers. The annealing PCR primer contains at least 18 nucleotide residues complementary to the vector sequence for efficient annealing of the amplified V region product to a single-stranded vector. The annealed mixture was completely converted to double-stranded molecules using T4 DNA polymerase and dNTPs and ligated using T4 ligase. The mutagenesis reaction (1 μl) was added to E. coli. E. coli strain DH10B (BRL) was electroporated, titrated on XL-1 (Stratagene, Inc.) lawn, and incubated until plaques were formed. Prepare a replica filter lift, and _H Plaques containing the gene sequence were isolated by hybridization with a digoxigenin-labeled oligonucleotide complementary to the LM609 heavy chain CDR2 sequence, or by the vector CH ₁ 7F11 alkaline phosphatase conjugate raised against a decapeptide sequence (Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala Ser (SEQ ID NO: 28)) added to the carboxy terminus of the domain (Biosite, Inc., San Diego, CA). Can be screened for by any of the reactivity with the monoclonal antibody.
[0178]
The 50 clones that were doubly positive were pooled and amplified CDR-grafted LM609 V, constructed in a similar manner with five overlapping oligonucleotides as shown in SEQ ID NOs: 23-27. _L The product was used to prepare a uridine template for hybridization mutagenesis. The mutagenesis reaction is E. coli. E. coli strain DH10B was electroporated. Randomly picked clones were sequenced to identify a properly constructed template for constructing a non-donor library at position 49. This template was prepared as a uridinated template, and the subsequent sequence of the oligonucleotide population was used for site-directed mutagenesis.
[0179]
GGGAACGATA-19aa-GATGAGAAGC
Sequence 19aa in the primer (SEQ ID NO: 30) demonstrates the fact that this primer identifies a sequence population of 19 different codon sequences encoding each of the 19 non-donor amino acids. These amino acids are not found at position 49 of LM609 and include all amino acids except Lys. Clones resulting from these mutagenesis were picked and the antibodies expressed by these clones were prepared. These samples were then subjected to αvβ in an ELISA assay. ₃ Was screened for binding to Clones with either Arg or Met amino acids at position 49 were functionally identified. The nucleotide and amino acid sequences of the LM609-grafted heavy chain variable region are shown in FIG. 1A (SEQ ID NOS: 1 and 2, respectively). The nucleotide and amino acid sequences of the LM609-grafted light chain variable region are shown in FIG. 7 (SEQ ID NOs: 31 and 32, respectively).
[0180]
(Example VI)
(Preparation of LM609-grafted antibody having enhanced activity)
This example demonstrates that α-α _v β ₃ 4 shows the in vitro maturation of LM609-grafted antibodies to obtain antibody variants with increased affinity for LM609.
[0181]
To optimize the affinity of the LM609 grafted antibody in vitro, the M13 phage system was used. This system allows for efficient synthesis, expression and screening of a library of functional antibody fragments (Fabs). The contribution of each of the six CDRs of the Ig heavy and Ig light chains was evaluated. CDRs have been broadly defined based on a combination of sequence variability and antibody structural models (Kabat et al., J. Biol. Chem. 252: 6609-6616 (1977); Chothia et al., Supra; MacCallum et al.). al., supra). Thus, one library was constructed for each CDR, except for H2, which was separated into two libraries due to its long length (20 amino acids). The variable region framework containing the mutated CDR was the heavy chain variable region shown in FIG. 1a (SEQ ID NO: 2) and the light chain variable region shown in FIG. 7 (SEQ ID NO: 32).
[0182]
CDRs were selected from the heavy chain variable region shown in FIG. 1a (SEQ ID NO: 2) and the light chain variable region shown in FIG. 7 (SEQ ID NO: 32). Briefly, Kabat et al. Using the numbering system (supra), the residues selected for mutagenesis of the CDRs (Table 9) were: Gln in light chain CDR1 (L1). ²⁴ ~ Tyr ³⁶ Leu in light chain CDR2 (L2); ⁴⁶ ~ Ser ⁵⁶ Gln in light chain CDR3 (L3); ⁸⁹ ~ Thr ⁹⁷ Gly in heavy chain CDR1 (H1); ²⁶ ~ Ser ³⁵ Trp in heavy chain CDR2 (H2); ⁴⁷ ~ Gly ⁶⁵ And Ala in heavy chain CDR3 (H3) ⁹³ ~ Tyr ¹⁰² . A library was created for each CDR, and oligonucleotides were designed such that a single CDR residue was mutated in each clone. Two libraries mutating residues 47-55 (H2a) and 56-65 (H2b), respectively, due to the extended length of H2 were constructed to cover this region.
[0183]
The template for generating the light chain CDR3 mutant contained Gly at position 92. However, it was subsequently determined that position 92 of this light chain CDR3 was guessed to be Gly, thus providing a humanized LM609 grafted antibody constructed with Gly at this position. . It was later found that the original LM609 sequence contained Asn at position 92. Using the methods described herein to introduce mutations into the CDRs of the LM609 grafted antibody, the LM609 grafted antibody having Asn at position 92 of light chain CDR3 was identified as αα _v β ₃ It was found to have binding activity (see Table 9), which resulted in Asn as a functional LM609-grafted antibody. ⁹² Verification was confirmed. Therefore, regardless of whether the antibody contains the light chain CDR3 having Gly at position 92 or the antibody containing the light chain CDR3 having Asn, α _v β ₃ Active in binding
[0184]
Oligonucleotides encoding single mutations were synthesized by introducing NN (G / T) at each CDR position as previously described (Glaser et al., Supra). This antibody library was constructed in the M131XL604 vector by hybridization mutagenesis (with some modifications) as previously described (Rosok et al., J. Biol. Chem. 271: 22611-22618 (1996); Huse et al., J. Immunol. 149: 3914-3920 (1992); Kunkel, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 488-492 (1985); Kunkel et al., Methods Enzymol. 154: 367-. 382 (1987)). Briefly, the oligonucleotide was denatured at 85 ° C. for 5 minutes at a molar ratio of 20: 1 to the uridinylated LM609-grafted antibody template (from which the corresponding CDRs were removed), and 1 hour at 55 ° C. Time ramped, held at 55 ° C. for 5 minutes, then annealed by cooling on ice. The reaction was extended by polymerization and electroporation into DH10B and titrated on XL-1 blue lawn. This library consists of a pool of variants, each clone containing a single amino acid change at one of the CDR positions. Utilizing codon base mutagenesis, all positions in all CDRs were mutated simultaneously, resulting in subsequent expression of all 20 amino acids at each CDR residue (Glaser et al., Supra). The CDR library is a unique member ranging in size from 288 (L3) to 416 (L1) and contained a total of 2336 variants.
[0185]
A highly sensitive plaque lift assay, called a capture lift, is used to allow efficient screening of the initial library (Watkins et al., Anal. Biochem. 256 (1998)). . Briefly, phage expression libraries expressing LM609-grafted antibody variants were first screened by a modified plaque lift approach, where nitrocellulose was transformed with goat anti-human kappa antibody prior to application to phage-infected bacterial loans. Pre-coated and blocked with bovine serum albumin. Following capture of the phage-expressed LM609-grafted antibody variant Fabs, the filtrate was washed with 1.0 μg / ml biotin-labeled α _v β ₃ With NeutrAvidin-alkaline phosphatase (Pierce Chemical Co .; Rockford, Ill.) For 15 minutes at 2.3C and washed 4 times with 2.3 μg / ml NeutrAvidin-alkaline phosphatase (Pierce Chemical Co .; Rockford, IL). All dilutions and washes were performed in binding buffer. α _v β ₃ Was modified with 0.4 mM 2,2'-di-p-nitrophenyl-5,5'-diphenyl-3,3 '-(3,3'-dimethoxy-4,4'-diphenylene). 0.1 M Tris, containing ditetrazolium chloride and 0.38 mM 5-bromo-4-chloro-3-indoxyphosphate mono- (p-toluidinium) salt (JBL Scientific, Inc .; San Luis Obispo, CA). Identified by incubating the filtrate in pH 9.5 for 10-15 minutes
Biotin labeled α _v β ₃ To produce α _v β ₃ Receptors were purified from human placenta by affinity chromatography as previously described (Smith and Cheresh, J. Biol. Chem. 263: 18726-188731 (1988)). α _v β ₃ For biotin labeling, purified receptor was prepared using 50 mM HEPES, pH 7.4, 150 mM NaCl, 1.0 mM CaCl containing 0.1% NP-40 (binding buffer). ₂ Dialyzed in and incubated with a 100-fold molar excess of sulfosuccinimidobiotin at 4 ° C. for 3 hours. The reaction was terminated by the addition of 50 mM ethanolamine.
[0186]
Phage expressing the modified LM609-implanted antibody were selectively captured on a nitrocellulose filter coated with a goat anti-human κ chain antibody and biotin-labeled α _v β ₃ And detected using NeutrAvidin-alkaline phosphatase. First, biotin-labeled α _v β ₃ Was titrated on lifts containing phage expressing only the LM609-grafted antibody parent molecule. Subsequently, biotin-labeled α _v β ₃ Was reduced to obtain a barely perceptible signal. In this manner, only clones expressing higher affinity variants were easily identified during screening of variant libraries. Following exhaustive capture lift screening of more than 2500 clones from each library, 300 variants with higher affinity were identified (see Table 8). The largest number of clones exhibiting improved affinity were identified in the H3 (185) and L3 (52) CDRs via variants with improved affinity identified in all CDRs.
[0187]
α _v β ₃ LM609-grafted antibody variants identified by capture lift as having binding activity _v β ₃ Affinity for binding to α over other integrins _v β ₃ , As well as α _v β ₃ Further characterization to determine association and dissociation rates. For these assays, purified Fabs of LM609 grafted antibody variants were used. Briefly, Fab was expressed as previously described and released from the periplasmic space by acoustic vibration (Watkins et al., Supra, 1997). Cells harvested from one liter of culture were lysed in 50 mM Tris, pH 8.0 (10 ml) containing 0.05% Tween20. The Fab was bound to a 1 ml Protein A column (Pharmacia), which was equilibrated with 50 mM glycine (pH 8) containing 250 mM NaCl, washed with the same buffer, and washed with 10 ml of 100 mM glycine (pH 3). Eluted to 1/10 volume of 1 M Tris (pH 8). Purified Fab was quantified as previously described (Watkins et al., Supra, 1997).
[0188]
The LM609 transplanted antibody variant was expressed as α _v β ₃ And α _v β ₅ And α _IIb β ₃ Α compared to _v β ₃ Were tested for specificity of binding. Immobilized α _v β ₃ And related integrin alpha _v β ₅ And α _IIb β ₃ For ELISA titration of Fabs for Immulon II microtiter plates, 20 mM Tris (pH 7.4), 150 mM NaCl, 2 mM CaCl ₂ , 1 mM MgCl ₂ , 1 mM MnCl ₂ Coated with 1 μg / ml purified receptor, washed once, and 50 mM Tris (pH 7.4), 100 mM NaCl, 2 mM Cal. ₂ , 1 mM MgCl ₂ Blocked for 1 hour at 25 ° C. in 3% BSA in medium. Human α purified from platelets _IIb β ₃ From Enzyme Research Laboratories, Inc. (South Bend, IN) and α _v β ₅ To α as previously described _v β ₃ Was purified from a placenta extract depleted in E. coli (Smith et al., J. Biol. Chem. 265: 11008-11013 (1990)). Immediately before use, the plates were washed twice and then incubated with various dilutions of Fab for 1 hour at 25 ° C. The plates were washed 5 times, incubated with goat anti-human kappa alkaline phosphatase diluted 1: 2000 at 25 ° C for 1 hour, washed 5 times, and developed as previously described (Watkins et al., Supra, 1997). All dilutions and washes were performed with 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 100 mM NaCl, 2 mM CaCl2. ₂ , And 1 mM MgCl ₂ Performed in
[0189]
Table 8: Capture lift screening of LM609 grafted antibody CDR library
[0190]
[Table 8]

¹ Number of unique clones based on DNA sequence. All 20 amino acids at each position were represented using 32 codons.
² The phage expression library was plated at 500-100 plaques per 100 mm dish on XL-1 Blue / Agar Lawn.
³ Positives were defined as clones identified, replated, and confirmed in the first screen in a second capture lift assay.
⁴ The soluble Fab was immobilized α in an ELISA format. _v β ₃ Was titrated against. Based on a comparison of the inflection points of the titration profiles, clones showing a 3-fold increased affinity were selected for further characterization.
⁵ Of the 185 positive clones identified by the capture lift, 98 were immobilized α _v β ₃ The binding to was further characterized.
[0191]
FIG. 8 shows that immobilized α _v β ₃ 3 shows titrations of antibody variants and LM609-grafted antibody Fabs for. Bacterial cell lysate containing LM609-grafted antibody (closed circle), variant with improved affinity and isolated from primary library (S102, closed square; Y100, open square; and Y101, open triangle) or combinatorial The variants isolated from the library (closed triangles) or irrelevant Fabs (open circles) were immobilized on immobilized α _v β ₃ Was titrated.
[0192]
Immobilized α _v β ₃ Comparison of the inflection points of the binding profiles obtained from the variants titrated for, demonstrated that multiple clones showed improved affinity greater than 3 fold, indicating that the capture lift in a semi-quantitative manner Confirm the validity of the utilization (FIG. 8, compare squares and open triangles with solid circles). Capture lift screening and subsequent immobilization α _v β ₃ Based on binding characterization, both heavy and light chain CDRs _v β ₃ Was concluded to be directly related to the interaction with LM609-grafted antibody variants.
[0193]
DNA was isolated from clones showing increased binding more than 3-fold and sequenced to identify mutations that resulted in high affinity. DNA sequencing was performed on the isolated single-stranded DNA. The heavy and light chain variable region genes were sequenced by the fluorescent dideoxynucleotide termination method (Perkin-Elmer; Foster City, CA). Based on sequence analysis of 103 variants, 23 unique mutations cultured at 14 sites were identified (Table 9). Most of the sites of beneficial mutations were found in the heavy chain CDRs, four were located at H3, and three each at H2 (2a and 2b) and H1. Seven different and informative amino acid substitutions were identified at H3, a single site within tyrosine residue 102. The diverse nature of this site substitution is that tyrosine residue 102 is different from that of LM609-grafted antibody. _v β ₃ It suggests that binding to can be sterically hindered. In this support, variants expressing other aromatic amino acids (phenylalanine, histidine, and tryptophan) in place of tyrosine at residue 102 were never isolated following screening for increased binding.
[0194]
The affinity of the selected variant was further determined by the immobilized α of Fab purified using surface plasmon resonance (BIAcore). _v β ₃ By measuring the rate of association and dissociation. Briefly, surface plasmon resonance (BIAcore; Pharmacia) is defined as α _v β ₃ And used to determine the kinetic constants for the interaction between LM609-grafted antibody variants. Purified α _v β ₃ Receptors were tested for 15 μg / ml α in 10 mM sodium acetate, pH 4. _v β ₃ Was immobilized on a (1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) -carbodiimide hydrochloride) / N-hydroxysuccinimide-activated sensor chip. Association rate constant (K _on 5) Fab concentrations (50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 100 mM NaCl, 2 mM CaCl ₂ And 1 mM MgCl ₂ (Ranging from 5 to 40 μg / ml) at a flow rate of 10 μl / min. Separation rate constant (K _off ) Was the average of five measurements obtained by analyzing the separated phases at increasing flow rates (40 μl / min). Sensorgrams were analyzed using the BIAevaluation 2.1 program (Pharmacia). Residual Fab was diluted with 10 mM HCl, 2 mM CaCl ₂ And 1 mM MgCl ₂ Was removed after each measurement using.
[0195]
Table 9 shows that all variants show a lower Kd than the LM609 grafted antibody parent molecule, consistent with both capture lift and ELISA. Analysis of the association and dissociation rates revealed that most of the modified variants had a slower dissociation rate, while having similar association rates. For example, the LM609-grafted antibody has an association rate of 18.0 × 10 ⁴ M ^-1 s ^-1 While the variant has 16.7-31.8 × 10 ⁴ M ^-1 s ^-1 Was in the range. In contrast, all clones had LM609 grafted antibody (4.97 x 10 ^-3 s ^-1 ), And the separation speed is 1.6 times (3.03 × 10 3). ^-3 s ^-1 ) To 11.8 times (0.42 × 10 ^-3 s ^-1 ) Slow range.
[0196]
These results indicate that the introduction of a single amino acid substituent into the LM609 grafted antibody CDRs was more αα than the parent LM609 grafted antibody. _v β ₃ Demonstrate that it is possible to identify a modified LM609 grafted antibody with high affinity for
[0197]
[Table 9]

(Example VII)
(Production of high affinity LM609 transplanted antibody)
This embodiment uses α _v β ₃ Figure 9 shows that single amino acid mutations in the CDRs of the LM609-grafted antibody that result in higher affinity binding to can be combined to produce a high-affinity LM609-grafted antibody.
[0198]
All random combinations of beneficial mutations of the LM609 grafted antibody were> 10 ⁵ A combinatorial library containing the variants is produced, which requires an effective screening methodology. Therefore, to determine whether clones exhibiting> 10-fold enhanced affinity can be rapidly distinguished from each other, variants exhibiting a 3- to 13-fold enhanced affinity were converted to low concentrations of biotinylated α _v β ₃ Was assessed by the capture lift utilizing A wide range of concentrations α _v β ₃ No consistent differences in capture lift signals were observed despite repeated attempts with. For this, a smaller combinatorial library was constructed and subsequently screened by ELISA.
[0199]
Four different combinatorial libraries were constructed to evaluate the optimal number of combinations that could be achieved by utilizing two-site hybridization mutagenesis (FIG. 9). Briefly, combinatorial libraries were constructed using wild-type and beneficial heavy chain mutations (H2, Leu). ⁶⁰ → Pro; H3, Tyr ⁹⁷ → His; H3, Ala ¹⁰¹ → Tyr; H3, Tyr ¹⁰² → Ser, Thr, Asp, Glu, Met, Gly, Ala) were constructed by synthesizing degenerate oligonucleotides encoding both. As described above, by utilizing two-site hybridization mutagenesis, oligonucleotides were converted to LM609 grafted antibody and three light chain mutations (FIG. 9; L1, His, at a 40: 1 molar ratio). ³² → Phe; L3, Gly ⁹² → Asn; L3, His ⁹⁶ → Annealed to uridine template prepared from Leu). As a result, a total of 256 variants were synthesized in four combinatorial library subsets.
[0200]
FIG. 9 shows the construction of a combinatorial library of beneficial mutations. Uridine templates from the LM609 grafted antibody and the three optimal light chain variants (F32, N92, and L96) were prepared. Two-site hybridization was performed with two degenerate oligonucleotides, which were designed to introduce beneficial mutations at four different heavy chain residues.
[0201]
Uridine-templated LM609-grafted antibody and three light chain variants (Table 9; F32, N92 and L96), modified oligonucleotides encoding wild-type residues and the most beneficial heavy chain mutations (Table 9; p60, H97, Y101, S102, T102, D102, E102, M102, G102, and A102) are hybridized to the light chain template to provide four combinatorial libraries, each with 64 unique modifications Body included. Potentially, combinations of multiple mutations can have detrimental effects on affinity, thus hindering the identification of beneficial combinations and can result in mutations at a few sites. For this reason, the amino acids expressed by the LM609 grafted antibody parent molecule were included at each position in the combinatorial library. By utilizing this approach, simultaneous combinatorial mutagenesis of the three CDRs (L1 or L3 in combination with H2 and H3, respectively) was achieved. Based on sequence analysis, two-site hybridization mutagenesis was achieved with approximately 50% efficiency.
[0202]
To screen combinatorial libraries, soluble Fab was released from the periplasm of a small-scale (<1 ml) bacterial culture expressing and infected with a randomly selected clone. Although variable expression levels were observed, a uniform amount of the unpurified variant was captured on the microtiter plate through a peptide tag present on the carboxy terminus of the heavy chain. Briefly, combinatorial LM609-grafted antibody libraries were screened by ELISA allowing determination of the relative affinities of antibody variants produced in small-scale bacterial cultures (Watkins et al., Anal. Biochem. 253). : 37-45 (1997)). Immulon II microtiter plates (Dynatech Laboratories; Chantilly, VA) were coated with 10 μg / ml of the 7F11 monoclonal antibody, thereby recognizing the peptide tag on the carboxy terminus of the LM609 grafted antibody modified heavy chain (Field et al., Mol. Cell. Biol. 8: 2159-2165 (1988)). E. FIG. coli. After capture of the Fab from the lysate, the plates were treated with 0.5-1 μg / ml biotinylated α. _v β ₃ For 1 hour at 25 ° C. The plate is washed seven times, incubated with 0.5 U / ml streptavidin-alkaline phosphatase (1000 U / ml; Boehringer Mannheim; Indianapolis, IN) for 15 minutes at 25 ° C., washed seven times, and described above. (Watkins et al., Supra, 1997). All dilutions and washes were performed in binding buffer.
[0203]
As described above (Watkins et al., Supra, 1997), this ELISA screening method uses biotinylated α _v β ₃ After incubation with and streptavidin-alkaline phosphatase, it allowed a quick and direct comparison of the relative affinities of the variants. To ensure that sufficient Fab diversity was sampled, 1000 randomly selected clones were screened from each combinatorial library. A variant showing an enhanced ELISA signal was immobilized on immobilized α _v β ₃ Were further characterized (FIG. 8, solid triangles) and sequenced to identify mutations (Table 10).
[0204]
Screening of the four combinatorial libraries identified 14 unique combinations of mutations that significantly improved binding to the individual mutations identified in the initial library screen. The best clones from the primary screen have a 12.5-fold increase in affinity, but the 14 unique combinations isolated from screening the combinatorial library are 18% larger than the parent LM609 grafted antibody. It showed an affinity in the range of 倍 92-fold. The majority of these modifications consisting of H2 and H3 mutations were combined with L1 and L3 mutations. A beneficial combination of heavy chain mutations with the wild-type light chain was also identified, but did not result in improved affinity to the same extent as other combinatorial variants. The variants mainly contained 2 to 4 mutations, and one clone (C29) contained 5 mutations. No direct correlation was observed between the total number of mutations in each variant and the resulting affinity. For example, the binding of clone C37 was enhanced 92-fold relative to the parent molecule and was achieved through a combination of three mutations, while clone C29 achieved approximately 55-fold greater affinity through a combination of five mutations. Multiple variants with enhanced affinity greater than 50-fold, resulting from the combination of only two mutations, were identified (2G4, 17, and V357D).
[0205]
All of the combinatorial clones with improved affinity showed off-rates less than 10-fold, probably reflecting the selection bias introduced by the long incubation step in the screen. In addition, all of the combinatorial variants isolated from libraries based on mutations in the L96 light chain also showed 2-4 fold greater association rates. Previously, antibody repertoires have been shown to migrate to immunoglobulins that show higher association rates during affinity maturation in vivo (Foote and Milstein, Nature 352: 530-532 (1991)). Thus, the L96 subset of variants may more closely mimic the in vivo affinity mutation process in which B lymphocyte proliferation is subjected to kinetic selection.
[0206]
The LM609-grafted antibody specifically expresses α _V β ₃ Binds to the complex and separately _V Chain or β ₃ It does not recognize any of the chains. To further characterize the variants, clones were cloned with the relevant integrin (α _IIb β ₃ And α _V β ₅ ) Were screened for reactivity. All variants tested have α _IIb β ₃ And α _V β ₅ Did not react with both, consistent with improved binding that did not substantially alter Fab and receptor interactions.
[0207]
As a first step in determining whether increasing the affinity of a variant results in greater biological activity, variants exhibiting a range of affinities can be treated with immobilized α _V β ₃ The ability to inhibit the binding of the natural ligand, fibrinogen, to the receptor was assayed. Briefly, LM609-grafted antibody variants were coupled to biotinylated human fibrinogen binding (Calbiochem, La Jolla, Calif.) At 0.5 μg / ml NeutrAvidin alkaline phosphatase (Smith et al., J. Biol. Chem. 265: 12267-12271). (1990)) was tested for inhibition of ligand binding as previously described, except as detected using
[0208]
[Table 10]

The results of these competition assays are shown in FIG. FIG. 10A shows the fixed α _V β ₃ 5 shows inhibition of fibrinogen binding to Fixed α _V β ₃ Was incubated with 0.1 μg / ml biotinylated fibrinogen and various concentrations of LM609-grafted antibody (open circles), S102 (closed circles), F32 (open triangles), or C59 (closed triangles) for 3 hours at 37 ° C. . Unbound ligand and Fab were removed by washing and bound fibrinogen was quantified after incubation with NeutroAvidin alkaline phosphatase conjugate. FIG. 10B shows a correlation between inhibition of fibrinogen binding and affinity of the variant. Fixed α _V β ₃ Concentration of the variant required to inhibit fibrinogen binding to ₅₀ ) Were plotted as a function of affinity (Kd).
[0209]
As shown in FIG. 10A, the higher affinity variants were more effective at blocking the ligand binding site of the receptor (compare the LM609 grafted antibody (open circles) with any variants). Subsequent analysis of 10 variants exhibiting an affinity (Kd) in the range of 0.3-27 nm shows a good correlation between affinity and the ability to inhibit fibrinogen binding (r ² = 0.976) (Fig. 10B). In addition, variants were tested for inhibition of vitronectin binding to the receptor. Similar to fibrinogen, the variants were more effective at inhibiting the interaction than the parent molecule. Thus, consistent with cross-reactivity studies with related integrin receptors, variants that increase affinity did not appear to substantially alter the manner in which antibodies interact with the receptor.
[0210]
α _V β ₃ The ability of the variants to inhibit the adhesion of M21 human melanoma cells expressing the receptor to fibrinogen was tested. 4 × 10 to fibrinogen by LM609 grafted antibody variant ⁴ Inhibition of M21 cell adhesion was performed as previously described (Leavesley et al., J. Cell Biol. 117: 1101-1107 (1992)). Purified fibrinogen and α _V β ₃ Similar to ligand competition studies with receptors, higher affinity variants were generally more effective at inhibiting cell adhesion than were LM609 grafted antibodies (FIG. 11). FIG. 11 shows inhibition of M21 human melanoma cell adhesion to fibrinogen. Cells and various concentrations of LM609-grafted antibody Fab (closed triangles), S102 (open circles), G102 (closed circles), or C37 (open triangles) were added to a 96-well cell culture plate coated with 10 μg / ml fibrinogen. Was added. After 35 minutes incubation at 37 ° C., unbound cells were removed by washing and adherent cells were quantified by crystal violet staining.
[0211]
Intact LM609-grafted antibody Ig inhibited cell adhesion, but phage expressing Fab did not affect cell adhesion at concentrations as high as 1 mg / ml (FIG. 11, closed triangles). Clone C37, isolated from the combinatorial library and showing about 90-fold higher affinity than the LM609-grafted antibody Fab, completely inhibited cell adhesion (FIG. 11, open triangles). Variant G102 had moderately high affinity (2.2-fold enhanced) and inhibited cell adhesion, but was not as effective as C37 (FIG. 11, solid circles). Surprisingly, clone S102 (FIG. 11, open circles), which has a 4.6-fold higher affinity than the LM609-grafted antibody, is not effective at inhibiting cell adhesion, and clones G102 and S102 have different α _V β ₃ Suggested to interact with the receptor.
[0212]
These results indicate that α _V β ₃ Identification of high affinity LM609 grafted antibody variants with 90-fold higher binding affinity than parent LM609 grafted antibody by combining single amino acid mutations resulting in LM609 grafted antibody showing higher binding affinity to Is possible.
[0213]
(Example VIII)
(Generation of LM609 grafted antibody with enhanced high affinity)
This example describes the generation of a high affinity enhanced LM609 grafted antibody with increased stability.
[0214]
High affinity clone 6H6 (see Table 10 in Example VII) was further characterized and found to show some proteolysis. Thus, in order to identify variants with increased stability, the 32 codon variants were placed at position Asn in the heavy chain CDR3 of 6H6 (SEQ ID NO: 94). ⁹⁶ And His ⁹⁷ (Numbered according to Kabat et al., Supra) at the same time, and the variants _V β ₃ Screened for binding activity. Those variants that retained binding activity were sequenced and then screened for susceptibility to proteolysis. The modified 6H6LH was replaced with α _V β ₃ Identified as showing binding activity and resistance to proteolysis (see Tables 11 and 15). High affinity α _V β ₃ The 6H6LH variant having binding activity is Asn ⁹⁶ Had Leu instead of His ⁹⁷ Was held.
[0215]
The 6H6LH variant has α _V β ₃ Showed high affinity binding to, but this affinity was somewhat lower than the 6H6 variant (see Table 15). Therefore, CDR variants found to give high affinity binding were combined with 6H6LH variants. Specifically, His in the light chain CDR1 of 6H6 ³² Was mutated to Phe as in clone F32 (see Table 9) to create clone 2236 / 6H6LH (see Table 13). In a further variant, Leu in the heavy chain CDR2 of 6H6 ⁶¹ Was also mutated to Pro as in clone P60 (see Table 9) to create clone 2236-38 / 6H6LH (see Table 11).
[0216]
Tables 11 and 12 show the amino acid and nucleotide sequences of the heavy chain CDRs of the enhanced high affinity variant of 6H6, respectively. Tables 13 and 14 show the amino acid and nucleotide sequences of the light chain CDRs of the enhanced high affinity variant of 6H6, respectively. The CDRs shown are from Chothia (supra). Amino acids and codons that differ from the 6H6 variant are shown in bold.
[0219]
[Table 11]

[0218]
[Table 12]

[0219]
[Table 13]

[0220]
[Table 14]

α _V β ₃ The kinetics of binding was determined for each clone using surface plasmon resonance (BIACORE) essentially as described in Example VI. The binding kinetics and affinity of these clones are shown in Table 15.
[0221]
[Table 15]

As shown in Table 15, clones 6H6LH, 2236 / 6H6LH, and 2236-38 / 6H6LH had similar affinity to 6H6. The affinity for 6H6 in these experiments was 0.62 nM, compared to 0.4 nM observed in previous experiments (see Table 10 in Example VII). This difference is due to the observed k _on This is within experimental variability. On rates were very similar between 6H6, 6H6LH, 2236 / 6H6LH, and 2236-38 / 6H6LH. The small difference in the observed kd is k _off Seemed to be mainly due to the differences in
[0222]
These results indicate that α _V β ₃ A further enhanced LM609-grafted antibody is described that shows high affinity for and resistance to proteolysis.
[0223]
Throughout this application, various publications have been referenced. The disclosures of these publications are incorporated by reference herein in their entirety in order to more fully describe the state of the art to which this invention pertains.
[0224]
Although the invention has been described with reference to the disclosed embodiments, those skilled in the art will readily appreciate that the specific embodiments described are merely illustrative of the invention. It should be understood that various modifications can be made without departing from the spirit of the invention. Accordingly, the invention is limited only by the following claims.
[Brief description of the drawings]
FIG.
FIG. 1 shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the variable region of antibody Vitaxin. FIG. 1A shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the Vitashkin heavy chain variable region (Gln1-Ser117; SEQ ID NOS: 1 and 2, respectively), while FIG. 1B shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the Vitashkin light chain variable region. (Gln1-Lys107; SEQ ID NOS: 3 and 4, respectively).
FIG. 2
FIG. 2 shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the variable region of monoclonal antibody LM609. FIG. 2A shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the LM609 heavy chain variable region (SEQ ID NOS: 5 and 6, respectively). The variable region spans amino acids Glu1 to Ala117. FIG. 2B shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the LM609 light chain variable region (SEQ ID NOs: 7 and 8, respectively). The variable region of the light chain extends from amino acids Aspl to Lys107.
FIG. 3
FIG. 3 shows integrin α with recombinant LM609 Fab binding LM609 IgG. _V β ₃ FIG. Soluble recombinant mouse LM609 Fab fragments were prepared from periplasmic fractions of the M13 bacteriophage clones muLM609M1312 and muLM609M1329. Periplasmic samples were serially diluted and mixed with either 1 ng / ml, 5 ng / ml, or 50 ng / ml LM609 IgG, and then purified α _V β ₃ Incubated in 96-well plates coated with. Plates were washed and bound to LM609 IgG detected with a goat anti-mouse Fc specific antibody conjugated to alkaline phosphatase. Fab produced by clone muLM609M1312 inhibits both 1 ng / ml LM609 IgG binding and 5 ng / ml LM609 IgG binding at all concentrations of Fab greater than 1:27 dilution.
FIG. 4A
FIG. 4 shows the characterization of Vitaxin binding specificity. FIG. 4A shows integrin α _IIb β ₃ And α _V β ₅ Integrin alpha compared to _V β ₃ Figure 4 shows the specific binding of Vitaxin to A.
FIG. 4B
FIG. 4 shows the characterization of Vitaxin binding specificity. FIG. 4B shows α by Vitaxin. _V β ₃ 3 shows competitive inhibition of LM609 binding to LM609.
FIG. 4C
FIG. 4 shows the characterization of Vitaxin binding specificity. FIG. 4C shows α by Vitaxin. _V β ₃ FIG. 4 shows competitive inhibition of fibrinogen binding to E. coli.
FIG. 5A
FIG. 5 shows α by Vitaxin. _V β ₃ 9 shows competition for mediated cell adhesion (5A) and cell migration (5B).
FIG. 5B
FIG. 5 shows α by Vitaxin. _V β ₃ 9 shows competition for mediated cell adhesion (5A) and cell migration (5B).
FIG. 6A
FIG. 6 shows reduced tumor growth due to Vitaxin-mediated inhibition of neovascularization. FIG. 6A shows α growing on chicken chorioallantoic membrane (CAM) after Vitaxin treatment. _V β ₃ FIG. 9 shows inhibition of negative Fg and HEp-3 human tumor fragments.
FIG. 6B
FIG. 6 shows reduced tumor growth due to Vitaxin-mediated inhibition of neovascularization. FIG. 6B shows the growth inhibition of Vx2 cancer implanted subcutaneously in rabbits administered two different Vitaxin doses on day 1 after implantation.
FIG. 6C
FIG. 6 shows reduced tumor growth due to Vitaxin-mediated inhibition of neovascularization. FIG. 6C shows Vx2 tumor growth inhibition, as in FIG. 6B, except that four different Vitaxin doses were initially administered on day 7 post-implantation.
FIG. 7
FIG. 7 shows the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the light chain variable region of the LM609-grafted antibody fragment (Glu-Lys107; SEQ ID NOs: 31 and 32, respectively). Position 49 of the light chain variable region can be at least either Arg or Met. The nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the heavy chain variable region of the LM609-grafted antibody fragment is shown in FIG. 1A (SEQ ID NOS: 1 and 2, respectively).
FIG. 8
FIG. 8 shows the immobilized α _v β ₃ Shown above are titrations of the LM609 grafted antibody variant and the LM609 grafted Fab. LM609-grafted antibody (solid circle), modified affinity LM609-grafted antibody isolated from the primary library (S102, solid square; Y100, open square; and Y101, open triangle), or from a combinatorial library Bacterial cell lysates containing isolated affinity-modified LM609-grafted antibody variants (closed triangles) or irrelevant Fabs (open circles) were immobilized on immobilized α _v β ₃ The above was titrated.
FIG. 9
FIG. 9 shows the construction of a combinatorial library of enhanced LM609 grafted antibody variants containing multiple amino acid substitutions.
FIG. 10
FIG. 10 shows that the LM609 grafted antibody variant _v β ₃ 5 shows inhibition of fibrinogen binding to FIG. 10A shows the immobilized α _v β ₃ 5 shows inhibition of fibrinogen binding to FIG. 10B shows the correlation between the affinity of the antibody variant and the inhibition of fibrinogen binding.
FIG. 11
FIG. 11 shows inhibition of M21 human melanoma cell adhesion to fibrinogen by LM609 grafted antibody variants. Cell binding to a substrate coated with 10 μg / ml fibrinogen at various concentrations of LM609-grafted Fab (solid triangles) or LM609-grafted Fab S102 (open circles), G102 (solid circles), or C37 (open triangles). Evaluated in the presence.

Claims (33)

alpha _v a LM609 grafted antibody or functional fragment thereof which is enhanced exhibiting selective binding affinity to β _{3, V} H CDR2 as shown in SEQ ID NO: 104; _V H CDR3 as shown in SEQ ID NO: 106; and An enhanced LM609 grafted antibody comprising a CDR selected from the group consisting of _VL CDR1 set forth in SEQ ID NO: 110. Said functional _fragment, F _{V, Fab,} is selected from the group consisting of F _{(ab) 2} and scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 1. An enhanced LM609 grafted antibody substantially identical to the enhanced LM609 grafted antibody of claim 1. An enhanced LM609 grafted antibody or a functional fragment thereof exhibiting selective binding affinity for α _v β ₃ , wherein the V _H CDR1 represented by SEQ ID NO: 34; the V _H CDR2 represented by SEQ ID NO: 102; An enhanced LM609 grafted antibody comprising the _VH CDR3 represented by SEQ ID NO: 106; the _VL CDR1 represented by SEQ ID NO: 108; the _VL CDR2 represented by SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 represented by SEQ ID NO: 90. Said functional fragment _{F V, Fab, F (ab} ) selected from the group consisting of ₂ and scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 4. An enhanced LM609 grafted antibody substantially identical to the enhanced LM609 grafted antibody of claim 4. An enhanced LM609 grafted antibody or a functional fragment thereof exhibiting selective binding affinity for α _v β ₃ , wherein the V _H CDR1 represented by SEQ ID NO: 34; the V _H CDR2 represented by SEQ ID NO: 102; An enhanced LM609 grafted antibody comprising the _VH CDR3 represented by SEQ ID NO: 106; the _VL CDR1 represented by SEQ ID NO: 110; the _VL CDR2 represented by SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 represented by SEQ ID NO: 90. Said functional fragment _{F V, Fab, F (ab} ) selected from the group consisting of ₂ and scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 7. An enhanced LM609 grafted antibody substantially identical to the enhanced LM609 grafted antibody of claim 7. An enhanced LM609 grafted antibody or a functional fragment thereof exhibiting selective binding affinity for α _v β ₃ , wherein the V _H CDR1 represented by SEQ ID NO: 34; the V _H CDR2 represented by SEQ ID NO: 104; An enhanced LM609 grafted antibody comprising the _VH CDR3 represented by SEQ ID NO: 106; the _VL CDR1 represented by SEQ ID NO: 110; the _VL CDR2 represented by SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 represented by SEQ ID NO: 90. Said functional fragment _{F V, Fab, F (ab} ) 2 and is selected from the group consisting of scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 10. An enhanced LM609 implanted antibody substantially identical to the enhanced LM609 implanted antibody of claim 10. A nucleic acid molecule encoding the enhanced LM609 grafted antibody of claim 1. 14. The nucleic acid molecule of claim 13, wherein the nucleic acid molecule comprises a nucleotide sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 105, and SEQ ID NO: 109. A nucleic acid molecule encoding the enhanced LM609 grafted antibody of claim 4. A nucleic acid molecule of claim 15, the nucleic acid _molecules, the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 33 that encodes the V H _CDRl; nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 101 encoding the V H _CDR2; V H CDR3 A nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 107 encoding _VL CDR1; a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 111 encoding _VL CDR2; and a sequence encoding _VL CDR3 A nucleic acid molecule comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 89. A nucleic acid molecule encoding the enhanced LM609 grafted antibody of claim 7. A nucleic acid molecule of claim 17, the nucleic acid _molecules, the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 33 that encodes the V H _CDRl; nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 101 encoding the V H _CDR2; V H CDR3 A nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 109 encoding _VL CDR1; a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 111 encoding _VL CDR2; and a sequence encoding _VL CDR3 A nucleic acid molecule comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 89. A nucleic acid molecule encoding the enhanced LM609 grafted antibody of claim 10. A nucleic acid molecule of claim 19, the nucleic acid _molecules, the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 33 that encodes the V H _CDRl; nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 103 encoding the V H _CDR2; V H CDR3 A nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 109 encoding _VL CDR1; a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 111 encoding _VL CDR2; and a sequence encoding _VL CDR3 A nucleic acid molecule comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 89. A method of inhibiting the function of the alpha _v beta _3, the alpha _v beta _3, comprising contacting a LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 1, method. A method of inhibiting the function of the alpha _v beta _3, the alpha _v beta _3, comprising contacting a LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 4, method. A method of inhibiting the function of the alpha _v beta _3, the alpha _v beta _3, comprising contacting a LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 7, method. A method of inhibiting the function of the alpha _v beta _3, the alpha _v beta _3, comprising contacting a LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 10, methods. An antibody or functional fragment thereof, _V H CDR2 as shown in SEQ ID NO: 104; wherein CDR selected from the group consisting of _V L CDRl represented by and SEQ ID NO: 110; _V H CDR3 as shown in SEQ ID NO: 106 And antibodies exhibiting enhanced binding affinity for α _v β _{3 as} compared to LM609. It said functional _{fragment, F V, Fab, F (} ab) 2 and is selected from the group consisting of scFV, antibody of claim 25. An antibody or functional fragment thereof, _V H are represented by SEQ ID NO: 34 CDRl; _V H are represented by SEQ ID NO: 102 CDR2; _V H CDR3 as shown in SEQ ID NO: 106; _V L as shown in SEQ ID NO: 108 CDRl; An antibody comprising the _VL CDR2 set forth in SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 set forth in SEQ ID NO: 90 and exhibiting enhanced binding activity to α _v β _{3 as} compared to LM609. It said functional _fragment, F _{V, Fab,} is selected from the group consisting of F _{(ab) 2} and scFV, antibody of claim 27. An antibody or a functional fragment thereof, which is _VH CDR1 represented by SEQ ID NO: 34; _VH CDR2 represented by SEQ ID NO: 102; _VH CDR3 represented by SEQ ID NO: 106; _VL CDR1 represented by SEQ ID NO: 110; An antibody comprising the _VL CDR2 set forth in SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 set forth in SEQ ID NO: 90 and exhibiting enhanced binding activity to α _v β _{3 as} compared to LM609. Said functional _fragment, F _{V, Fab,} is selected from the group consisting of F _{(ab) 2} and scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 29. An antibody or a functional fragment thereof, which is _VH CDR1 represented by SEQ ID NO: 34; _VH CDR2 represented by SEQ ID NO: 104; _VH CDR3 represented by SEQ ID NO: 106; _VL CDR1 represented by SEQ ID NO: 110; An antibody comprising the _VL CDR2 set forth in SEQ ID NO: 112; and the _VL CDR3 set forth in SEQ ID NO: 90 and exhibiting enhanced binding activity to α _v β _{3 as} compared to LM609. Said functional _fragment, F _{V, Fab,} is selected from the group consisting of F _{(ab) 2} and scFV, LM609 grafted antibody is enhanced according to claim 30. A nucleic acid molecule having a nucleotide sequence selected from the group of nucleotide sequences consisting of SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 89, SEQ ID NO: 101, SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 105, SEQ ID NO: 107, SEQ ID NO: 109, and SEQ ID NO: 111.

Images