JP2004357544A - Method for measuring concentration of solution with live species and apparatus - Google Patents

Method for measuring concentration of solution with live species and apparatus Download PDF

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JP2004357544A JP2003158034A JP2003158034A JP2004357544A JP 2004357544 A JP2004357544 A JP 2004357544A JP 2003158034 A JP2003158034 A JP 2003158034A JP 2003158034 A JP2003158034 A JP 2003158034A JP 2004357544 A JP2004357544 A JP 2004357544A
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concentration
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test substance
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Yusuke Fujino
裕介 藤野
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Sony Corp
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  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for measuring the concentration of a solution with a live species, by which the concentration can highly selectively be measured with the live species such as yeast without needing a special experiment device, and to provide an apparatus therefor. <P>SOLUTION: This method for measuring the concentration of the solution with the live species comprises measuring the change in the growth of a cell or microbial cell transformant which changes its activity or proliferation degree in response to the concentration of a substance to be measured, thereby indirectly measuring the substance to be measured. For example, a yeast transformant which has a compensating factor for compensating one or more defected conditions by the expression of genes under an environment having the defected conditions among conditions essential for the living and proliferation is used to determine the concentration of the substance to be measured, while using the change in the proliferation degree of the yeast as a signal. In an example, a measuring apparatus using a combination of a Clark type oxygen electrode with an immobilized yeast membrane disposed on the cathode side of the oxygen electrode is used. <P>COPYRIGHT: (C)2005,JPO&NCIPI

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、生体種を用いた化学物質濃度の測定方法及び装置に関し、さらに詳しくは、被測定物の濃度により細胞活性・増殖度を変化させる細胞・菌体の形質転換体を用い、被測定物の濃度を該細胞・菌体の細胞活性・増殖度に変換して測定する、生体種を用いた溶液濃度の測定方法及びその装置に関するものである。
【0002】
【従来の技術】
環境試料等の測定において、菌体・細胞等の示す生体反応を用いるいわゆるバイオアセイ法は、機器分析等を用いる分析化学的な手法に比して、生体への影響を直接的・複合的に測定でき、生体物質の有する特異性を利用することで測定系の簡易化が図られる等の利点を有し、これには幾つかの実用例がある。例えば水質の栄養量の指標としてJIS K0400−21−10に規格化されたBOD法(生物化学的酸素要求量)は、特定バクテリアの有機物分解に伴い消費される酸素量を同定することで水質の評価を行う一種のバイオアセイ法である。
【0003】
菌体あるいは細胞を用いたこのようなバイオアセイ法では、更に生体の有する高い特異性を利用した測定法が知られている。このような細胞・菌体を用いた選択的なバイオアセイ法では、細胞内での特定の酵素の発現を指標とした測定が通常行われる。例えば非特許文献1には、Hepa1c1c7細胞を用い、ダイオキシン類と結合したアリルハイドロカーボンレセプタ(AhR)−アリルハイドロカーボンニュークリアトランスロケータ(Arnt)複合体が、レポータジーンとして細胞に導入された応答配列に異物応答配列(XRE)を有するLuciferase遺伝子の転写を活性化することで生じたLuciferase量からダイオキシン濃度を見積る手法について開示されている。
【0004】
また同様の手法を用い、出芽酵母サッカロミセスセレビジアを該酵母中で転写活性を有するプロモータの下流にヒトエストロゲンレセプタ遺伝子を配置した遺伝子及びエストロゲン応答配列の下流にレポータジーンとしてβ−galactosidase遺伝子を配置した遺伝子を用いて形質転換したもののβ−galactosidase発現量がエストラジオールの濃度依存的に変化することが示されている。
【0005】
これらのレポータジーンアセイ法は、その測定法として発現した酵素量を基質反応を用いて検出するため、生体種中のタンパクを溶出させるための遠心沈降、ディタージェント添加、凍結融解等の工程を必要とするのが常である。また通常基質反応の測定には発光法、蛍光法、吸光法等を用いることが多く、このため専用の測定器を必要とするのが常である。このためこのようなバイオアセイ法は設備を備えた場所を必要とし、例えばポータブルでの測定等を行うのは容易ではない。
【0006】
一方、このような問題点を解決する手法として、電極を用いた測定法が知られている。例えばBODの測定において固定化微生物膜と溶存酸素測定用電極を組み合わせるなどしてセンサチップ化した、JIS K3602に基く手法が知られている。また例えばJIS K0701に定められるような、生体種から酵素のみを抽出し、その特異的触媒反応を利用して構築される酵素グルコースオキシダーゼを利用したグルコース計測装置等が知られている。
【0007】
【非特許文献1】
Organohalogen Compounds Vol.40(1999), pp.27−30
【0008】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、従来技術の上記事情に鑑みなされたもので、その目的は、細胞等の生体種を用いて選択性の高い測定を、比較的簡易な装置および方法で行うことができる、生体種を用いた溶液濃度の測定方法及びその装置を提供することにある。
【0009】
【課題を解決するための手段】
すなわち、請求項1に係る発明は、細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する方法であって、前記細胞または菌体は、その生存,増殖に必須な条件の一以上を欠く欠損条件を有する環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該欠損条件を遺伝子発現により補償する補償因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0010】
請求項2に係る発明は、請求項1において、前記欠損条件が栄養要求性によりなされることを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0011】
請求項3に係る発明は、請求項1において、前記細胞または菌体が、リガンド応答性転写因子または該調節因子のリガンド結合領域を少なくとも一部含む部分、あるいはこれらの変異体、これらを用いた融合タンパクをコードする遺伝子および該転写因子の認識配列と転写開始に必要な塩基配列との下流に該補償因子をコードする遺伝子を接続してなる遺伝子により形質転換されてなるものであることを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0012】
請求項4に係る発明は、細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する方法であって、前記細胞または菌体は、特定の酵素の発現に対して毒性を呈して該細胞または菌体の生存、増殖を阻害する薬物を添加した薬物添加の環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該酵素を遺伝子発現により産生する酵素産生因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0013】
請求項5に係る発明は、請求項4において、前記細胞または菌体が、リガンド応答性転写因子または該調節因子のリガンド結合領域を少なくとも一部含む部分、あるいはこれらの変異体、これらを用いた融合タンパクをコードする遺伝子および該転写因子の認識配列と転写開始に必要な塩基配列との下流に前記酵素産生因子をコードする遺伝子を接続してなる遺伝子により形質転換されてなるものであることを特徴とする記載の生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0014】
請求項6に係る発明は、請求項1〜5のいずれかにおいて、前記細胞または菌体として酵母を用いることを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法である。
【0015】
請求項7に係る発明は、細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する装置であって、前記細胞または菌体は、その生存,増殖に必須な条件の一以上を欠く欠損条件を有する環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該欠損条件を遺伝子発現により補償する補償因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することよりなり、前記細胞または菌体は、その活性あるいは増殖度変化の計測を行うセンサー上に固定化され、該センサーの出力変化により被検物質の溶液中における濃度を測定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定装置である。
【0016】
請求項8に係る発明は、細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する装置であって、前記細胞または菌体は、特定の酵素の発現に対して毒性を呈して該細胞または菌体の生存、増殖を阻害する薬物を添加した薬物添加の環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該酵素を遺伝子発現により産生する酵素産生因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することよりなり、前記細胞または菌体は、その活性あるいは増殖度変化の計測を行うセンサー上に固定化され、該センサーの出力変化により被検物質の溶液中における濃度を測定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定装置である。
【0017】
請求項9に係る発明は、請求項7または請求項8において、前記細胞または菌体として酵母を用いることを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定装置である。
【0018】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の実施の形態について説明する。
本発明は、被測定物の濃度により細胞活性・増殖度を変化させる細胞・菌体の形質転換体を用い、その生育の変化を測定することで、間接的に被測定物の濃度を測定しようとするものである。
【0019】
本発明では、被測定物による転写活性化の機構は特定しないが、例えばDNA上のオペロン部位及びオペロン結合タンパクとリガンド応答性転写調節因子の融合タンパク、DNA上の異物応答配列及びアリルハイドロカーボンレセプタ、DNA上のエストロジェン応答配列およびエストロジェンレセプタなどにそれらの関連タンパクを組合わせた系、あるいは他にもアンドロゲン、グルココルチコイド等のステロイドホルモン、甲状腺ホルモン、脂溶性ビタミン、プロスタノイド等の核内ホルモンレセプター等を用いた系など、あらゆる測定対象物に応答して転写を正または負方向へ調整する機構を用いることが出来る。
【0020】
本発明において遺伝子発現により補償される環境条件としては特段の規定をするものではないが、アデニン等の核酸とその合成酵素、ヒスチジン、ウラシル、トリプトファン、ロイシン等の必須アミノ酸とその合成酵素、アンピシリン、カナマイシン等の抗生物質類とその分解酵素等が挙げられる。
【0021】
また、遺伝子発現により酵素を産生して毒性を呈する環境条件としては特段の規定をするものではないが、産生された酵素が添加薬物を毒性物質に変化させるものが挙げられ、例えば5−フルオロオロチン酸とウラシル合成酵素、α−アミノアジピン酸とリジン合成酵素など、あらゆる組合わせを用いることが出来る。
【0022】
用いる細胞・菌体としては形質転換体を作製することが出来ればいずれの生体種も用いることが可能であり、ヒト細胞、マウス細胞、酵母、線虫、大腸菌等が使用できるが、酵母のように形質転換体を安定して作製し培養することの出来るものが特に好適に用いられる。
【0023】
本発明において細胞活性・増殖度の測定を行う手法としては測定が可能であればいずれの手法も適用可能である。迅速かつ高い再現性を有する手法が望ましく、例えば濁度測定、酸素消費量測定、レポータジーン産生量測定(レポータジーンアセイ)等を用いることが出来るが、これに限るものではなく、重量変化測定、総タンパク量計測、カウント法、糖度変化測定、アミノ酸濃度変化測定、アルコール濃度測定等の手法を用いることが可能である。
【0024】
特に酸素消費量により測定を行う場合においては、該生体種を用いれば公知の溶存酸素測定法がいずれも使用でき、生物化学的酸素要求量の測定に用いられる測定法をいずれも好適に用いることが出来る。
【0025】
また本測定はセンサーを用いて行うこともできる。すなわち測定に用いられる細胞・菌体の活性または増殖度変化の測定を行うことの出来るセンサー上に該生物種を固定化して測定を行うことにより被測定物の濃度を同定することが可能である。この場合、所望の目的を達するものであれば公知のいずれのセンサーも適用することが可能であるが、溶存酸素濃度、過酸化水素濃度、二酸化炭素濃度、糖度、アルコール濃度、アミノ酸濃度、水晶振動子等を用いた微小重量測定などを好適に用いることができる。この場合においては該センサ表面に、測定に用いる細胞または菌体を固定化した固定化膜を形成することが望ましい。
【0026】
前記の細胞または菌体の固定化において用いられる担体としては、例えばニトロセルロース、ポリアクリロニトリル、光硬化性樹脂、ポリウレタン等を用いることができ、従来公知の技術を使用して固定化される。
【0027】
【実施例】
以下、本発明を実施例により更に具体的に説明するが、下記の実施例は本発明についての具体的認識を得る一助とみなすべきものであり、本発明の範囲は下記の実施例により何ら制限されるものではない。
【0028】
(実施例1)
出芽酵母サッカロミセスセレビジアの野生株に、酢酸リチウム法により下記(a)、(b)および(c)のプラスミドを導入した。具体的には、対数増殖期の酵母を遠心沈降し、上清を廃棄したのち酢酸リチウム−トリス緩衝溶液に懸濁し、変性サケ精子DNA及び下記(a)、(b)、(c)で示すDNAと混合し、ポリエチレングリコールを加えて42℃で処理した後にDifco社製Yeast Nitrogen baseを用い必須アミノ酸類の一部及び炭素源としてグルコースを添加し作製した、ヒスチジン、ロイシンおよびトリプトファンを含まない寒天培地に塗布し、形質転換された酵母株1を得た。
【0029】
またコントロールとして同様の手法を用いて作製された下記(a)、(b)および(d)により形質転換された酵母株2を得た。
【0030】
(a)AhR発現プラスミドの作製
AhRをコードするDNAは、例えば、J.Sambroook他著、モレキュラークローニング第2版等に準じて作製することが出来る。具体的には、まずヒトHepG2細胞を塩酸グアニジンを含む溶液中でホモジナイズし、フェノール、クロロホルムを加え遠心分離を行い上清画分を回収することでタンパク分を除去する。この後SDS−フェノール法により全RNAを抽出する。得られた全RNAを鋳型としてオリゴdTプライマと逆転写酵素を用いて一本鎖cDNAを合成する。
【0031】
更に得られた一本鎖cDNAを鋳型とし、次に示すオリゴヌクレオチドをプライマとしてPCRを行いAhRの二本鎖DNA断片を得た。これを公知のヒスチジンマーカー、およびセントロメアを有し,出芽酵母で利用可能なプラスミドであるpRS313のクローニングサイトにアルコールデヒドロゲナーゼの転写活性化領域およびターミネータを通常の遺伝子工学的手法に準じてつなぎ合わせて挿入した間に更に挿入することで、酵母中でAhRを発現するプラスミドを作製した。
【0032】
(b)Arnt発現プラスミドの作製
AhRと同様にしてArntの二本鎖DNA断片を得,これを公知の、ロイシンマーカー、およびセントロメアを有し、出芽酵母で利用可能なプラスミドであるpRS315のクローニングサイトにアルコールデヒドロゲナーゼの転写活性化領域およびターミネータを通常の遺伝子工学的手法に準じてつなぎ合わせて挿入した間に更に挿入することで、酵母中でArntを発現するプラスミドを作製した。
【0033】
(c)ウラシル発現プラスミドの作製
トリプトファンマーカー及びセントロメアを有し、出芽酵母で利用可能なプラスミドであるpRS314のクローニングサイトに、AhR−Arnt複合体の認識するヒト異物応答配列(XRE)および酵母中で機能可能なtkコアプロモータ配列を、更にこの下流にウラシルマーカー及びセントロメアを有し、出芽酵母で利用可能なプラスミドであるpRS316より切り出されたウラシル合成酵素をコーディングする領域を、いずれも通常の遺伝子工学的手法に準じて組み込み作製した。
【0034】
(d)ウラシル発現プラスミドのコントロールの作製
トリプトファンマーカー及びセントロメアを有し、出芽酵母で利用可能なプラスミドであるpRS314のクローニングサイトに、AhR−Arnt複合体の認識するヒト異物応答配列(XRE)および酵母中で機能可能なtkコアプロモータ配列のみを組み込み作製した。
【0035】
これらの細胞株を、マーカーであるヒスチジン,ロイシン,トリプトファンを欠損した液体培地で対数増殖期まで培養し、培地をヒスチジン、ロイシン、トリプトファン及びウラシルを欠損した液体培地に置換したのち、更に1時間培養し、これを同一の培地を用いて濁度(O.D.600nm)を0.2に調整した後、96穴プレートに100マイクロリットルずつ分注し、それぞれにAhRのリガンドであるベータナフトフラボンを各濃度で添加し、20時間、30℃に静置し培養を行った。
【0036】
この後プレートの各ウェルの吸光度(波長600nm)を測定し、酵母株1における濁度から酵母株2における濁度を減じたものを各ベータナフトフラボンに対する応答として記録した。この結果、図1に示すようにリガンド濃度に応じた濁度変化を観察することが出来た。
図1において、横軸はモル濃度で表した基質濃度(ベータナフトフラボン濃度)の対数であり、縦軸は吸光度(相対値)である。
【0037】
(実施例2)
実施例1で作製した酵母株1及び酵母株2を用いて、以下の測定を行った。
細胞株を、マーカーを欠損した液体培地で対数増殖期まで培養し、培地をヒスチジン、ロイシン、トリプトファンを欠損し、さらに5−フルオロオロチン酸を1mg/L含有した液体培地に置換したのち、更に1時間培養し、これを同一の培地を用いて濁度(O.D.600nm)を0.2に調整した後、96穴プレートに100マイクロリットルずつ分注し、それぞれにAhRのリガンドであるベータナフトフラボンを各濃度で添加し、20時間、30℃に静置し培養を行った。
【0038】
この後プレートの各ウェルの吸光度(波長600nm)を測定し、酵母株1における濁度から酵母株2における濁度を減じたものを各ベータナフトフラボンに対する応答として記録した。この結果、図2に示すように、リガンド濃度に応じた濁度変化を観察することが出来た。
図2において、横軸はモル濃度で表した基質濃度(ベータナフトフラボン濃度)の対数であり、縦軸は吸光度(相対値)である。
【0039】
(実施例3)
本実施例では、増殖度変化の計測を行うセンサー上に酵母を固定化し、このセンサーの出力変化によりベータナフトフラボンの溶液中における濃度を測定した例を示す。
図3は本実施例に用いられる測定装置である。この測定装置は市販のClark型酸素電極と、該酸素電極の陰極側に配置された酵母固定化膜との組合わせにより構成されている。図3において、符号1はセンサーで、これは上記酸素電極2と上記酵母固定膜3とからなる。符号4は試料溶液、符号5は攪拌子、符号6は測定器である。
【0040】
酵母固定膜は以下のように作製した。細胞株1を、マーカーを欠損した液体培地で対数増殖期まで培養し、培地をヒスチジン、ロイシン、トリプトファン及びウラシルを欠損した液体培地に置換したのち、更に1時間培養し、これを遠心し、沈殿およそ50マイクロリットルをポアサイズ0.4マイクロメートルのニトロセルロース膜に滴下し吸引ろ過を行い、同じニトロセルロール膜で挟み固定した。
【0041】
こののち酸素電極に電解液を注入し、酸素電極を電源に接続する。次いで測定部側に溶液(試料溶液)を注入した。注入する溶液は、pH7.5に調整し、滅菌を行った0.5M Tris緩衝液とヒスチジン、ロイシン、トリプトファン及びウラシルを欠損した液体培地を1:9の割合で混合したものである。
【0042】
記録装置の電流値が安定化した後、測定部側溶液にジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解したベータナフトフラボンを各濃度でDMSOの最終濃度が0.1%となるように添加し、6時間後の測定値の変化を記録した。これをDMSOのみを添加した場合と比較したところ、図4に示すように濃度に応じた応答値変化を観察することが出来た。
【0043】
【発明の効果】
以上詳述したように、本発明によれば、酵母等の生体種を用いて選択性の高い測定を、特段の実験設備を必要としないで行うことができる、生体種を用いた溶液濃度の測定方法及びその装置を提供するものであり、特に、多くの測定対象物を同一のシステムにおいて、比較的簡易な装置と操作による測定を可能とするものである。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の実施例1で得られた、試料液のベータナフトフラボン濃度(基質濃度)と濁度変化(吸光度変化)との関係を示すグラフである。
【図2】本発明の実施例2で得られた、試料液のベータナフトフラボン濃度(基質濃度)と濁度変化(吸光度変化)との関係を示すグラフである。
【図3】本発明の実施例3で使用した測定装置の説明図である。
【図4】本発明の実施例3で得られた、試料液のベータナフトフラボン濃度(基質濃度)と電流変化量との関係を示すグラフである。
【符号の説明】
1…センサー、2…酸素電極、3…酵母固定膜、4…試料溶液、5…攪拌子、6…測定器。
[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a method and an apparatus for measuring the concentration of a chemical substance using a biological species. The present invention relates to a method and an apparatus for measuring the concentration of a solution using a biological species, which converts the concentration of a substance into the cell activity / proliferation of the cell / bacteria for measurement.
[0002]
[Prior art]
In the measurement of environmental samples, the so-called bioassay method, which uses the biological reaction of cells and cells, measures the effects on living organisms directly and in a complex manner, compared to analytical chemistry methods that use instrumental analysis. There is an advantage that the measurement system can be simplified by utilizing the specificity of the biological substance, and there are several practical examples. For example, the BOD method (biochemical oxygen demand) standardized in JIS K0400-21-10 as an indicator of the nutrient amount of water quality is based on the identification of the amount of oxygen consumed in decomposing organic matter of a specific bacterium, thereby identifying the water quality. This is a kind of bioassay method for evaluation.
[0003]
In such a bioassay method using cells or cells, a measurement method utilizing the high specificity of a living body is known. In such a selective bioassay method using cells and cells, measurement is usually performed using the expression of a specific enzyme in a cell as an index. For example, Non-Patent Document 1 discloses a response element in which an allyl hydrocarbon receptor (AhR) -allyl hydrocarbon nuclear translocator (Arnt) complex bound to dioxins was introduced into cells as a reporter gene using Hepa1c1c7 cells. Discloses a method for estimating a dioxin concentration from the amount of Luciferase generated by activating the transcription of a Luciferase gene having a foreign substance response element (XRE).
[0004]
In addition, using a similar technique, the budding yeast Saccharomyces cerevisiae was arranged with a human estrogen receptor gene downstream of a promoter having transcription activity in the yeast and a β-galactosidase gene as a reporter gene downstream of an estrogen response element. It has been shown that the expression level of β-galactosidase in the transformant using the gene changes in an estradiol concentration-dependent manner.
[0005]
These reporter gene assays require the use of a substrate reaction to detect the amount of expressed enzyme as a measurement method, and require steps such as centrifugation to elute proteins in biological species, addition of detergent, and freeze-thawing. It is always the case. Usually, a luminescence method, a fluorescence method, an absorption method, or the like is often used for the measurement of the substrate reaction, and therefore, a dedicated measuring device is usually required. For this reason, such a bioassay method requires a place equipped with equipment, and it is not easy to perform, for example, portable measurement.
[0006]
On the other hand, as a method for solving such a problem, a measurement method using an electrode is known. For example, there is known a method based on JIS K3602 in which a sensor chip is formed by, for example, combining an immobilized microorganism membrane and an electrode for measuring dissolved oxygen in BOD measurement. Further, there is known a glucose measuring device using an enzyme glucose oxidase constructed by utilizing only a specific catalytic reaction by extracting only an enzyme from a biological species, as defined in JIS K0701, for example.
[0007]
[Non-patent document 1]
Organohalogen Compounds Vol. 40 (1999), p. 27-30
[0008]
[Problems to be solved by the invention]
The present invention has been made in view of the above circumstances of the prior art, and has as its object to perform highly selective measurement using a biological species such as a cell with a relatively simple apparatus and method. It is an object of the present invention to provide a method and an apparatus for measuring the concentration of a solution using the method.
[0009]
[Means for Solving the Problems]
That is, the invention according to claim 1 is a method for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species composed of cells or cells, wherein the cells or cells are indispensable for their survival and growth. A transformant which is placed in an environment having a deficiency condition that lacks one or more of the following conditions, and has a compensation factor for compensating the deficiency condition by gene expression in accordance with the amount of the test substance, wherein the cell or the bacterial cell is used. There is provided a method for measuring the concentration of a solution using a biological species, which comprises determining the concentration of a substance to be measured using a change in the cell activity or the degree of proliferation of the cells or the cells as an index.
[0010]
The invention according to claim 2 is the method according to claim 1, wherein the deficiency condition is determined by auxotrophy.
[0011]
The invention according to claim 3 uses the cell according to claim 1, wherein the cell or bacterial body contains at least a part of a ligand-binding transcription factor or a ligand-binding region of the regulator, or a mutant thereof. It is characterized by being transformed by a gene encoding a fusion protein and a gene obtained by connecting a gene encoding the compensation factor downstream of a recognition sequence of the transcription factor and a base sequence required for transcription initiation. This is a method for measuring the concentration of a solution using a living species to be used.
[0012]
The invention according to claim 4 is a method for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or cells, wherein the cells or cells are capable of expressing a specific enzyme. It is placed in a drug-added environment containing a drug that exhibits toxicity and inhibits the survival and growth of the cells or cells, and the cells or cells express the enzyme in accordance with the amount of the test substance. A transformant having an enzyme-producing factor produced by the method, wherein the concentration of the analyte is determined using the change in the cell activity or proliferation of the cells or cells as an index, and the solution concentration using a biological species. Is a measuring method.
[0013]
The invention according to claim 5 uses the cell according to claim 4, wherein the cell or bacterial body contains at least a part of a ligand-responsive transcription factor or a ligand binding region of the regulator, or a mutant thereof. A gene encoding the fusion protein and a gene obtained by connecting the gene encoding the enzyme-producing factor downstream of a recognition sequence of the transcription factor and a base sequence required for transcription initiation. It is a method for measuring the concentration of a solution using a biological species described as a feature.
[0014]
The invention according to claim 6 is the method for measuring a solution concentration using a biological species according to any one of claims 1 to 5, characterized in that yeast is used as the cells or cells.
[0015]
The invention according to claim 7 is an apparatus for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or cells, wherein the cells or cells are essential for survival and growth. A transformant which is placed in an environment having a deficiency condition lacking one or more of the above, and has a compensating factor for compensating the deficiency condition by gene expression in accordance with the abundance of the test substance, wherein the cells or cells are provided, Determining the concentration of the analyte using the change in the cell activity or proliferation of the cells or cells as an index, and immobilizing the cells or cells on a sensor for measuring the change in the activity or proliferation. And measuring the concentration of the test substance in the solution by a change in the output of the sensor.
[0016]
The invention according to claim 8 is an apparatus for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or cells, wherein the cells or cells are capable of expressing a specific enzyme. It is placed in a drug-added environment containing a drug that exhibits toxicity and inhibits the survival and growth of the cells or cells, and the cells or cells express the enzyme in accordance with the amount of the test substance. A transformant having an enzyme-producing factor produced by the method, comprising determining the concentration of the analyte using the change in the cell activity or proliferation of the cells or cells as an index, wherein the cells or cells are A solution concentration measuring apparatus using a biological species, which is immobilized on a sensor for measuring a change in activity or proliferation degree, and measures a concentration of a test substance in a solution by an output change of the sensor. .
[0017]
A ninth aspect of the present invention is the apparatus for measuring a solution concentration using a biological species according to the seventh or eighth aspect, wherein yeast is used as the cells or cells.
[0018]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
Hereinafter, embodiments of the present invention will be described.
The present invention uses a cell / bacterium transformant whose cell activity / proliferation degree changes depending on the concentration of a test substance, and indirectly measures the concentration of the test substance by measuring the change in growth. It is assumed that.
[0019]
In the present invention, the mechanism of transcriptional activation by the analyte is not specified. For example, an operon site on DNA and a fusion protein of an operon binding protein and a ligand-responsive transcriptional regulator, a foreign substance response element on DNA and an allyl hydrocarbon receptor , Estrogen responsive elements on DNA, estrogen receptors, etc., and their related proteins in combination or steroid hormones such as androgens, glucocorticoids, nuclear hormone receptors such as thyroid hormones, fat-soluble vitamins, prostanoids For example, a mechanism that adjusts the transcription in the positive or negative direction in response to any measurement target, such as a system using the above method, can be used.
[0020]
The environmental conditions compensated by gene expression in the present invention are not particularly specified, but nucleic acids such as adenine and its synthase, histidine, uracil, tryptophan, essential amino acids such as leucine and its synthase, ampicillin, Examples include antibiotics such as kanamycin and its degrading enzymes.
[0021]
Although there is no particular limitation on the environmental conditions under which an enzyme is produced by gene expression to exhibit toxicity, there is a condition in which the produced enzyme changes an added drug into a toxic substance, for example, 5-fluoroorotin. Any combination of acid and uracil synthase, α-aminoadipic acid and lysine synthase can be used.
[0022]
As the cells / cells to be used, any living species can be used as long as a transformant can be prepared, and human cells, mouse cells, yeast, nematodes, Escherichia coli, etc. can be used. Particularly, those capable of stably producing and culturing a transformant are particularly preferably used.
[0023]
In the present invention, as a method for measuring the cell activity / proliferation, any method is applicable as long as the measurement is possible. A method having rapid and high reproducibility is desirable. For example, turbidity measurement, oxygen consumption measurement, reporter gene production amount measurement (reporter gene assay) and the like can be used, but not limited thereto, weight change measurement, It is possible to use techniques such as total protein amount measurement, counting, sugar content change measurement, amino acid concentration change measurement, and alcohol concentration measurement.
[0024]
In particular, in the case of performing measurement by oxygen consumption, any known dissolved oxygen measurement method can be used by using the biological species, and any measurement method used for measurement of biochemical oxygen demand is preferably used. Can be done.
[0025]
This measurement can also be performed using a sensor. That is, it is possible to identify the concentration of the analyte by immobilizing the biological species on a sensor capable of measuring the change in the activity or proliferation of the cells or bacterial cells used for the measurement and performing the measurement. . In this case, any known sensor can be applied as long as it achieves the desired purpose, but the dissolved oxygen concentration, hydrogen peroxide concentration, carbon dioxide concentration, sugar content, alcohol concentration, amino acid concentration, A minute weight measurement using a probe or the like can be preferably used. In this case, it is desirable to form an immobilized membrane on which the cells or cells used for measurement are immobilized on the sensor surface.
[0026]
As the carrier used for the immobilization of the cells or the cells, for example, nitrocellulose, polyacrylonitrile, photocurable resin, polyurethane and the like can be used, and immobilization is performed using a conventionally known technique.
[0027]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the following examples should be regarded as helping to obtain a specific understanding of the present invention, and the scope of the present invention is not limited by the following examples. It is not done.
[0028]
(Example 1)
The following plasmids (a), (b) and (c) were introduced into a wild strain of Saccharomyces cerevisiae by the lithium acetate method. Specifically, the yeast in the logarithmic growth phase is spun down, the supernatant is discarded, and then suspended in a lithium acetate-Tris buffer solution. The denatured salmon sperm DNA and the following (a), (b), and (c) are shown. Agar free from histidine, leucine and tryptophan was prepared by mixing with DNA, adding polyethylene glycol, treating at 42 ° C., and adding a part of essential amino acids and glucose as a carbon source using Difco's Yeast Nitrogen base. The transformed yeast strain 1 was obtained by spreading on a medium.
[0029]
As a control, a yeast strain 2 transformed by the following (a), (b) and (d), which was prepared using the same method, was obtained.
[0030]
(A) Preparation of AhR Expression Plasmid AhR-encoding DNA is described, for example, in J. Am. It can be prepared according to Sambrook et al., Molecular Cloning, 2nd edition. Specifically, first, human HepG2 cells are homogenized in a solution containing guanidine hydrochloride, phenol and chloroform are added, centrifugation is performed, and the supernatant fraction is collected to remove the protein component. Thereafter, total RNA is extracted by the SDS-phenol method. Using the obtained total RNA as a template, a single-stranded cDNA is synthesized using oligo dT primer and reverse transcriptase.
[0031]
Furthermore, PCR was performed using the obtained single-stranded cDNA as a template and the following oligonucleotides as primers to obtain a double-stranded DNA fragment of AhR. This is inserted into the cloning site of pRS313, a plasmid having a known histidine marker and a centromere and usable in S. cerevisiae, by joining a transcription activation region of alcohol dehydrogenase and a terminator according to ordinary genetic engineering techniques. Further, a plasmid that expresses AhR in yeast was prepared by further insertion during this period.
[0032]
(B) Preparation of Arnt Expression Plasmid A double-stranded DNA fragment of Arnt was obtained in the same manner as in AhR, and this was cloned into a cloning site of pRS315, a plasmid having a known leucine marker and centromere and usable in budding yeast. Further, a transcription-activating region of alcohol dehydrogenase and a terminator were further inserted while being connected and inserted in accordance with ordinary genetic engineering techniques, thereby producing a plasmid expressing Arnt in yeast.
[0033]
(C) Preparation of uracil expression plasmid In the cloning site of pRS314, a plasmid having a tryptophan marker and a centromere and usable in budding yeast, a human foreign body response element (XRE) recognized by the AhR-Arnt complex and yeast A functional tk core promoter sequence and a region encoding a uracil synthase excised from pRS316, a plasmid having a uracil marker and a centromere downstream thereof and usable in Saccharomyces cerevisiae, can be obtained by conventional genetic engineering. It was built according to the standard method.
[0034]
(D) Preparation of control of uracil expression plasmid Human foreign body response element (XRE) recognized by AhR-Arnt complex and yeast in pRS314 which is a plasmid having tryptophan marker and centromere and usable in budding yeast. Only the tk core promoter sequence that was able to function therein was incorporated and produced.
[0035]
These cell lines are cultured in a liquid medium lacking the markers histidine, leucine, and tryptophan until the logarithmic growth phase, and the medium is replaced with a liquid medium lacking histidine, leucine, tryptophan, and uracil, and further cultured for 1 hour. After adjusting the turbidity (OD 600 nm) to 0.2 using the same medium, 100 μl of the mixture was dispensed into a 96-well plate, and beta-naphthoflavone, a ligand of AhR, was added to each plate. Was added at each concentration, and the mixture was allowed to stand at 30 ° C. for 20 hours and cultured.
[0036]
Thereafter, the absorbance (wavelength: 600 nm) of each well of the plate was measured, and the value obtained by subtracting the turbidity in yeast strain 2 from the turbidity in yeast strain 1 was recorded as the response to each beta naphthoflavone. As a result, as shown in FIG. 1, a change in turbidity according to the ligand concentration could be observed.
In FIG. 1, the horizontal axis represents the logarithm of the substrate concentration (beta naphthoflavone concentration) expressed in molar concentration, and the vertical axis represents the absorbance (relative value).
[0037]
(Example 2)
The following measurements were performed using the yeast strains 1 and 2 prepared in Example 1.
The cell line was cultured in a liquid medium lacking the marker until the logarithmic growth phase, and the medium was replaced with a liquid medium lacking histidine, leucine, and tryptophan, and further containing 1 mg / L of 5-fluoroorotic acid, and then further cultured for 1 hour. After culturing for an hour and adjusting the turbidity (OD 600 nm) to 0.2 using the same medium, 100 μl of the mixture was dispensed into a 96-well plate, and each of them was a beta, which is a ligand of AhR. Naphthoflavones were added at each concentration, and the cells were allowed to stand at 30 ° C. for 20 hours and cultured.
[0038]
Thereafter, the absorbance (wavelength: 600 nm) of each well of the plate was measured, and the value obtained by subtracting the turbidity in yeast strain 2 from the turbidity in yeast strain 1 was recorded as the response to each beta naphthoflavone. As a result, as shown in FIG. 2, a change in turbidity according to the ligand concentration could be observed.
In FIG. 2, the horizontal axis is the logarithm of the substrate concentration (beta-naphthoflavon concentration) expressed in molar concentration, and the vertical axis is the absorbance (relative value).
[0039]
(Example 3)
In the present embodiment, an example is shown in which yeast is immobilized on a sensor for measuring a change in the degree of proliferation, and the concentration of beta naphthoflavone in the solution is measured by a change in the output of the sensor.
FIG. 3 shows a measuring device used in this embodiment. This measuring device is composed of a combination of a commercially available Clark-type oxygen electrode and a yeast immobilized membrane disposed on the cathode side of the oxygen electrode. In FIG. 3, reference numeral 1 denotes a sensor, which comprises the oxygen electrode 2 and the yeast fixed membrane 3. Reference numeral 4 denotes a sample solution, reference numeral 5 denotes a stirrer, and reference numeral 6 denotes a measuring device.
[0040]
The yeast fixed membrane was prepared as follows. Cell line 1 was cultured in a liquid medium lacking the marker until the logarithmic growth phase, and the medium was replaced with a liquid medium lacking histidine, leucine, tryptophan and uracil, followed by further culturing for 1 hour, followed by centrifugation and precipitation. Approximately 50 microliters were dropped on a nitrocellulose membrane having a pore size of 0.4 micrometer, suction-filtered, and fixed with the same nitrocellulose membrane.
[0041]
Thereafter, an electrolyte is injected into the oxygen electrode, and the oxygen electrode is connected to a power source. Next, a solution (sample solution) was injected into the measuring section. The solution to be injected was prepared by mixing a sterilized 0.5 M Tris buffer adjusted to pH 7.5 with a liquid medium lacking histidine, leucine, tryptophan and uracil at a ratio of 1: 9.
[0042]
After the current value of the recording device was stabilized, beta naphthoflavone dissolved in dimethylsulfoxide (DMSO) was added to the solution on the measurement section side so that the final concentration of DMSO was 0.1% at each concentration, and after 6 hours. The change in the measured value was recorded. When this was compared with the case where only DMSO was added, a change in response value according to the concentration could be observed as shown in FIG.
[0043]
【The invention's effect】
As described in detail above, according to the present invention, highly selective measurement using a biological species such as yeast can be performed without requiring special experimental equipment. The present invention provides a measurement method and a device therefor, and particularly enables measurement of many measurement objects by using a relatively simple device and operation in the same system.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a graph showing the relationship between the beta naphthoflavone concentration (substrate concentration) and the turbidity change (absorbance change) of a sample solution obtained in Example 1 of the present invention.
FIG. 2 is a graph showing the relationship between the beta naphthoflavone concentration (substrate concentration) and the turbidity change (absorbance change) of a sample solution obtained in Example 2 of the present invention.
FIG. 3 is an explanatory diagram of a measuring device used in Embodiment 3 of the present invention.
FIG. 4 is a graph showing the relationship between the beta naphthoflavone concentration (substrate concentration) of the sample solution and the current change amount obtained in Example 3 of the present invention.
[Explanation of symbols]
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 ... Sensor, 2 ... Oxygen electrode, 3 ... Yeast fixed membrane, 4 ... Sample solution, 5 ... Stirrer, 6 ... Measuring device.

Claims (9)

細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する方法であって、
前記細胞または菌体は、その生存,増殖に必須な条件の一以上を欠く欠損条件を有する環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該欠損条件を遺伝子発現により補償する補償因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法。
A method of measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or bacterial cells,
The cells or cells are placed in an environment having a deficient condition that lacks one or more of the conditions essential for their survival and growth, and the cells or cells are subjected to the deficiency condition in accordance with the amount of the test substance. A transformant having a compensation factor that compensates by gene expression, wherein a solution using a biological species, wherein the concentration of the analyte is determined using a change in the cell activity or growth rate of the cells or cells as an index How to measure the concentration.
前記欠損条件が栄養要求性によりなされることを特徴とする請求項1に記載の生体種を用いた溶液濃度の測定方法。The method according to claim 1, wherein the deficiency condition is determined by auxotrophy. 前記細胞または菌体が、リガンド応答性転写因子または該調節因子のリガンド結合領域を少なくとも一部含む部分、あるいはこれらの変異体、これらを用いた融合タンパクをコードする遺伝子および該転写因子の認識配列と転写開始に必要な塩基配列との下流に該補償因子をコードする遺伝子を接続してなる遺伝子により形質転換されてなるものであることを特徴とする請求項1に記載の生体種を用いた溶液濃度の測定方法。The cell or the bacterial cell may be a portion containing at least a part of a ligand-binding region of a ligand-responsive transcription factor or the regulatory factor, or a mutant thereof, a gene encoding a fusion protein using the same, and a recognition sequence of the transcription factor. 2. The method according to claim 1, wherein the gene is transformed by a gene obtained by connecting a gene encoding the compensation factor downstream of a base sequence required for initiation of transcription. Method for measuring solution concentration. 細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する方法であって、
前記細胞または菌体は、特定の酵素の発現に対して毒性を呈して該細胞または菌体の生存、増殖を阻害する薬物を添加した薬物添加の環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該酵素を遺伝子発現により産生する酵素産生因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定方法。
A method of measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or bacterial cells,
The cells or cells are placed in a drug-added environment containing a drug that exhibits toxicity to the expression of a specific enzyme and inhibits the survival and growth of the cells or cells, and Is a transformant having an enzyme-producing factor that produces the enzyme by gene expression in accordance with the abundance of the test substance, and the concentration of the test substance is determined by using the change in the cell activity or proliferation of the cells or bacterial cells as an index. A method for measuring the concentration of a solution using a biological species, characterized in that:
前記細胞または菌体が、リガンド応答性転写因子または該調節因子のリガンド結合領域を少なくとも一部含む部分、あるいはこれらの変異体、これらを用いた融合タンパクをコードする遺伝子および該転写因子の認識配列と転写開始に必要な塩基配列との下流に前記酵素産生因子をコードする遺伝子を接続してなる遺伝子により形質転換されてなるものであることを特徴とする請求項4に記載の生体種を用いた溶液濃度の測定方法。The cell or the bacterial cell may be a portion containing at least a part of a ligand-binding region of a ligand-responsive transcription factor or the regulatory factor, or a mutant thereof, a gene encoding a fusion protein using the same, and a recognition sequence of the transcription factor. 5. The method according to claim 4, wherein the gene is transformed with a gene obtained by connecting the gene encoding the enzyme-producing factor downstream of a base sequence necessary for initiation of transcription. How to measure the concentration of the solution. 前記細胞または菌体として酵母を用いることを特徴とする請求項1〜5のいずれかに記載の生体種を用いた溶液濃度の測定方法。The method according to any one of claims 1 to 5, wherein yeast is used as the cells or cells. 細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する装置であって、
前記細胞または菌体は、その生存,増殖に必須な条件の一以上を欠く欠損条件を有する環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該欠損条件を遺伝子発現により補償する補償因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することよりなり、
前記細胞または菌体は、その活性あるいは増殖度変化の計測を行うセンサー上に固定化され、該センサーの出力変化により被検物質の溶液中における濃度を測定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定装置。
An apparatus for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or bacterial cells,
The cells or cells are placed in an environment having a deficient condition that lacks one or more of the conditions essential for their survival and growth, and the cells or cells are subjected to the deficiency condition in accordance with the amount of the test substance. A transformant having a compensating factor that compensates by gene expression, comprising determining the concentration of the test substance using a change in the cell activity or proliferation of the cells or cells as an index,
The cell or the cell is immobilized on a sensor for measuring a change in the activity or the degree of proliferation, and a biological species characterized by measuring the concentration of a test substance in a solution by a change in the output of the sensor. Measuring device for solution concentration.
細胞または菌体からなる生体種を用いて被検物質の溶液中における濃度を測定する装置であって、
前記細胞または菌体は、特定の酵素の発現に対して毒性を呈して該細胞または菌体の生存、増殖を阻害する薬物を添加した薬物添加の環境下に置かれ、かつ該細胞または菌体が被検物質の存在量に応じて該酵素を遺伝子発現により産生する酵素産生因子を有する形質転換体であり、前記細胞または菌体の細胞活性あるいは増殖度の変化を指標として被測定物の濃度を決定することよりなり、
前記細胞または菌体は、その活性あるいは増殖度変化の計測を行うセンサー上に固定化され、該センサーの出力変化により被検物質の溶液中における濃度を測定することを特徴とする生体種を用いた溶液濃度の測定装置。
An apparatus for measuring the concentration of a test substance in a solution using a biological species consisting of cells or bacterial cells,
The cells or cells are placed in a drug-added environment containing a drug that exhibits toxicity to the expression of a specific enzyme and inhibits the survival and growth of the cells or cells, and Is a transformant having an enzyme-producing factor that produces the enzyme by gene expression in accordance with the abundance of the test substance, and the concentration of the test substance is determined by using the change in the cell activity or proliferation of the cells or bacterial cells as an index. To determine
The cell or the cell is immobilized on a sensor for measuring a change in the activity or the degree of proliferation, and a biological species characterized by measuring the concentration of a test substance in a solution by a change in the output of the sensor. Measuring device for solution concentration.
前記細胞または菌体として酵母を用いることを特徴とする請求項7または請求項8に記載の生体種を用いた溶液濃度の測定装置。9. The apparatus according to claim 7, wherein yeast is used as the cells or cells.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2008092938A (en) * 2006-09-12 2008-04-24 National Institute Of Advanced Industrial & Technology Method for measuring activity of eukaryotic microorganism

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