JP2004350607A - Telomerase inhibitor - Google Patents

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Yasuhide Hirota
泰秀 廣田
Takehiko Seki
剛彦 関
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a telomerase inhibitor and to provide a method for inhibiting telomerase. <P>SOLUTION: There are provided a double-stranded polynucleotide and a polynucleotide exhibiting RNA interference effect on human telomerase reverse transcriptase gene, RNA and polynucleotide forming those, DNA in which the transcript exhibits the RNA interference effect, a vector containing the DNA, a telomerase reverse transcriptase gene inhibitor and a telomerase inhibitor each containing one or more substances thereof, a method for inhibiting a telomerase reverse enzyme comprising using one or more substances thereof and a method for inhibiting the telomerase; and a medicinal composition containing one or more substances thereof, a reagent kit composed of one or more substances thereof and a method for identifying the double-stranded RNA. <P>COPYRIGHT: (C)2005,JPO&NCIPI

Description

【0001】
【産業上の利用分野】
本発明はテロメレース阻害活性を示す二重鎖ポリヌクレオチドおよびポリヌクレオチド、並びにこれらを形成するRNAおよびポリヌクレオチドに関する。また、その転写物がテロメレース阻害活性を示すことを特徴とするDNAに関する。さらに、該DNAを含有するベクターに関する。また、テロメレース逆転写酵素の阻害剤およびテロメレース逆転写酵素の阻害方法に関する。さらに、テロメレース阻害剤およびテロメレース阻害方法に関する。また、該二重鎖ポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチド、該DNAおよび該ベクターのうちの少なくとも1つを含んでなる医薬組成物、癌疾患の防止剤および/または治療剤、並びに試薬キットに関する。さらに、該二重鎖ポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチド、該DNAおよび該ベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とする癌疾患の防止方法および/または治療方法に関する。また、テロメレース逆転写酵素を発現していない細胞を用いた、テロメレース阻害活性を有する二重鎖ポリヌクレオチドの同定方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
テロメレース(telomerase)は染色体のテロメア部分の伸張反応を行う酵素であり、細胞の不死化に関与することが知られている。テロメアは真核細胞の染色体DNAの末端部分に存在する単純な繰り返し配列であり、染色体の安定性維持に寄与している。細胞分裂においてDNAの複製を司る通常のDNAポリメラーゼではDNAの最末端まで完全に複製が行われないため、細胞分裂に伴いテロメアは短縮される。正常な体細胞では一定回数分裂後に増殖が停止し、細胞の老化あるいは細胞死が生じる。一方、無限増殖性を有する生殖細胞や不死化した癌細胞の大多数では、テロメレースの発現が認められている。細胞分裂に伴い短縮されたテロメアのテロメレースによる伸張が、細胞の無限増殖性獲得機序の1つであると考えられる。
【0003】
ヒトテロメレース(human telomerase)は、ヒトテロメレース逆転写酵素(human telomerase reverse transcriptase;以下、hTERTと略称する。)およびヒトテロメレースRNA(human telomerase RNA;以下、hTRと略称する。)を含む複合体である(非特許文献1)。
【0004】
テロメレースはテロメア伸張反応において、まずテロメアの相補的配列を有するhTRによりテロメア配列を認識して結合する。ついで、hTRを鋳型とし、触媒サブユニットであるhTERTによりテロメアの伸張を行う。実験的にhTRとhTERTのみでテロメレース活性が認められたことから、これら2つのサブユニットがテロメレース活性に必要十分な要素と考えられる。また、hTRは癌のみならず正常組織でも広く発現しているのに対し、hTERTは癌組織特異的に発現していることから、hTERTがテロメレース活性の決定因子であると考えられる。
【0005】
テロメレースが癌細胞の不死化に関与していることから、テロメレース阻害剤の開発が検討されている。例えば、hTRを標的としたアンチセンス法(非特許文献2および3)、hTERTのドミナントネガティブフォームを用いた方法(非特許文献4)、リボザイムを用いた方法(非特許文献5)、およびG−カドラプレックスDNAインターラクティブコンパウンドを用いた方法(非特許文献6)等によるテロメレースの阻害が報告されている。これらの方法は、何れも欠点があり、実用的な薬剤として開発されているものはほとんど無い。
【0006】
近年、RNAを利用して遺伝子の発現を抑制する方法として、RNA干渉(RNA interference)を利用する方法が開発された(非特許文献7および8)。哺乳動物においては、目的遺伝子のmRNAの部分配列からなる20bpないし25bpの短いRNA(いわゆるセンスRNA)と該RNAの塩基配列に相補的な塩基配列からなるRNA(アンチセンスRNA)とからなる短い二重鎖RNA(short interfering RNA;以下、siRNAと略称する。)が、該mRNAを効果的に分解し、該遺伝子の発現を阻害することが報告されている(非特許文献7)。siRNAと同様に、ヘアピン構造を有する短鎖二重鎖RNAであるショートヘアピンRNA(以下、shRNAと略称する。)がRNA干渉効果を有することが報告されている(非特許文献8)。shRNAは、センスRNAとアンチセンスRNAとが例えばポリヌクレオチド等により連結され、センスRNA由来部分とアンチセンスRNA由来部分が二重鎖を形成するため、ヘアピン様構造を呈する。RNA干渉は、アンチセンス法やリボザイム法等の他の遺伝子発現阻害法と比較して、低濃度および高確率で特異的に目的遺伝子の発現を阻害することができる有用な方法である。
【0007】
テロメレースについても、siRNAによる抑制が報告されている(非特許文献9)。しかし、該siRNAはテロメレースの抑制作用が弱く且つその効果は一過性であった。
【0008】
以下に、本明細書で引用した文献を列記する。
【非特許文献1】ケラー(Kelleher C.)ら、「トレンズ イン バイオケミカル サイエンシズ(TRENDS in Biochemical Sciences)」、2002年、第27巻、p.572−579。
【非特許文献2】フェン(Feng J.)ら、「サイエンス(Science)」、1995年、第269巻、p.1236−1241。
【非特許文献3】コンドウ(Kondo S.)ら、「オンコジーン(Oncogene)」、1998年、第16巻、p.3323−3330。
【非特許文献4】ハーン(Hahn W.C.)ら、「ネイチャー メディシン(Nature Medicine)」、1999年、第10巻、p.1129−1130。
【非特許文献5】ヨコヤマ(Yokoyama Y.)ら、「キャンサー リサーチ(Cancer Research)」、1998年、第58巻、p.5406−5410。
【非特許文献6】サン(Sun D.)ら、「ジャーナル オブ メディシナルケミストリー(Journal of Medicinal Chemistry)」、1997年、第40巻、p.2113−2116。
【非特許文献7】エルバシ(Elbashir S.M.)ら、「ネイチャー(Nature)」、2001年、第411巻、p.494−498。
【非特許文献8】パディソン(Paddison P.J.)ら、「ジーンズ アンド ディベロプメント(Genes and Development)」、2002年、第16巻、p.948−958。
【非特許文献9】コシオレク(Kosciolek B.A.)ら、「モレキュラー キャンサー セラピューティクス(Molecular Cancer Therapeutics)」、2003年、第2巻、第3号、p.209−216。
【非特許文献10】サムブルックら編、「モレキュラークローニング、ア ラボラトリーマニュアル」、第2版、コールドスプリングハーバーラボラトリー、1989年。
【非特許文献11】村松正實編、「ラボマニュアル遺伝子工学」、丸善株式会社、1988年。
【非特許文献12】エールリッヒ編、「PCRテクノロジー、DNA増幅の原理と応用」、ストックトンプレス、1989年。
【非特許文献13】ウルマー(Ulmer K.M.)、「サイエンス(Science)」、1983年、第219巻、p.666−671。
【非特許文献14】キム(Kim N.W.)ら、「サイエンス(Science)」、1994年、第266巻、第5193号、p.2011−2015。
【非特許文献15】ウェン(Wenz C.)ら、「ザ エンボ ジャーナル(The EMBO Journal)」、2001年、第20巻、第13号、p.3526−3534。
【非特許文献16】タテマツ(Tatematsu K.)ら、「オンコジーン(Oncogene)」、1996年、第13巻、第10号、p.2265−2274。
【非特許文献17】ナカムラ(Nakamura Y.)ら、「クリニカル ケミストリー(Clinical Chemistry)」、1999年、第45巻、第10号、p.1718−1724。
【非特許文献18】マエサワ(Maesawa C.)ら、「ヌクレイック アシッズ リサーチ(Nucleic Acids Research)、2003年、第31巻、第2号、p.E4−4。
【非特許文献19】「バイオテクニクス(Biotechniques)」、2002年、第32巻、第5号、p.1154−1156、1158、1160。
【0009】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、テロメレースに極めて特異的で且つ有用性のあるテロメレース阻害剤およびテロメレース阻害方法を提供することである。また本発明の目的は、該テロメレース阻害剤を含む医薬組成物、例えば癌疾患の防止剤および/または治療剤を提供することである。さらに、本発明の目的は、該テロメレース阻害剤を用いることを特徴とする癌疾患の防止方法および/または治療方法を提供することである。
【0010】
【課題解決のための手段】
本発明者らは、上記課題解決のため鋭意検討を重ね、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉を示すことによりテロメレースを阻害し得る二重鎖ポリヌクレオチドを見出して本発明を完成した。
【0011】
すなわち本発明は、
1.配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNA、
2.配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドA)であって、配列表の配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドA、
3.配列表の配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドB)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドB、
4.配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドC)であって、配列表の配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドC、
5.配列表の配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドD)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドD、
6.配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドE)であって、配列表の配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドE、
7.配列表の配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドF)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドF、
8.配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチド
9.下記の群から選ばれるいずれか1つの二重鎖ポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とする二重鎖ポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
(ii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
および
(iii)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
10.下記の群から選ばれるいずれか1つの二重鎖ポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、(ii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
および
(iii)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
11.下記の群から選ばれるいずれか1つのポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドG)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドG、
(ii)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドH)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドH、
(iii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドI)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドI、
(iv)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドJ)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドJ、
(v)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドK)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドK、
および
(vi)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドL)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドL、
12.下記の群から選ばれるいずれか1つのポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドM)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドM、
(ii)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドN)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドN、
(iii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドO)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドO、
(iv)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドP)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドP、
(v)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドQ)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドQ、
および
(vi)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドR)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドR、
13.配列表の配列番号7から12のいずれか1つに記載の塩基配列からなるDNA、
14.下記の群から選ばれるいずれか1つのDNAであって、その転写物がヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするDNA;
(i)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA1)であって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA1、
(ii)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA2)であって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA2、
(iii)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA3)であって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA3、
(iv)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA4)であって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA4、
(v)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA5)であって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA5、
および
(vi)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA6)であって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA6、
15.前記13.または14のDNAを含むベクター、
16.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害剤、
17.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース阻害剤、
18.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害方法、
19.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース阻害方法、
20.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを有効量含んでなる医薬組成物、
21.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを有効量含んでなる癌疾患の防止剤および/または治療剤、
22.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とする癌疾患の防止方法および/または治療方法、
23.前記9.または10.のいずれかの二重鎖ポリヌクレオチド、前記11.または12.のいずれかのポリヌクレオチド、前記13.または14.のいずれかのDNA、および前記15.のベクターのうちの少なくとも1つを含有することを特徴とする試薬キット、
24.テロメレース阻害作用を有する二重鎖ポリヌクレオチドの同定方法であって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子を発現していない細胞またはヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子およびヒトテロメレースRNA遺伝子を発現していない細胞を用い、該細胞にヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子発現ベクターおよびヒトテロメレースRNA遺伝子発現ベクターと共に被検物質である二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションし、ついで、テロメレース活性を測定し、二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションしなかったときと比較してテロメレース活性を低下させた二重鎖ポリヌクレオチドを選択することを特徴とする同定方法、
25.ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子を発現していない細胞またはヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子およびヒトテロメレースRNA遺伝子を発現していない細胞が、ヒト骨肉腫由来Saos−2細胞である前記24.の同定方法、
26.トランスフェクションがリポフェクション法である前記24.または25.の同定方法、
27.リポフェクション法が、カチオン性リポソームを用いたリポフェクション法である前記26.の同定方法、
からなる。
【0012】
【発明の実施の形態】
本発明においては、テロメレースの阻害に有用なポリヌクレオチドを提供する。本明細書中におけるポリヌクレオチドとは、3’,5’−リン酸ジエステル結合により2個を超えるヌクレオチドが連鎖している直鎖状ポリマーを意味し、リン酸ジエステル結合によって繋がっている2個ないし10数個程度のヌクレオチドからなる直鎖状核酸断片も含まれる。
【0013】
本発明に係るポリヌクレオチドの1つの態様は、hTERT mRNAの部分配列からなるRNAおよび該RNAの塩基配列に相補的な塩基配列からなるRNAである。本発明に係るRNAとしては、好ましくは配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNAが挙げられる。
【0014】
本発明に係るRNAにはそれぞれ、そのRNAの3’末端に、オーバーハング配列と呼ばれる1個ないし数個の塩基配列からなるヌクレオチドを結合させることが好ましい。オーバーハング配列は、その作用の1つとして、RNAをヌクレアーゼから保護する作用を有する。オーバーハング配列は、該RNAのRNA干渉効果を阻害しない限りにおいて特に制限されず、好ましくは1個ないし10個、より好ましくは1個ないし4個、さらに好ましくは2個のヌクレオチドからなるものをいずれも用いることができる。具体的には、デオキシチミジル酸からなる配列(例えばTT)、ウリジル酸からなる配列(例えばUU)、デオキシチミジル酸に続いて任意のヌクレオチドが結合した配列(例えばTN)といった配列を例示できる。合成を安価に行えることおよびヌクレアーゼ耐性がより強いことから、より好ましくは、2つのデオキシチミジル酸からなる配列をオーバーハング配列として使用する。オーバーハング配列は、本発明に係るRNAの3’末端のリボース3’水酸基部位に、ジエステル結合によって結合させる。
【0015】
本発明に係るRNAのそれぞれにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドからなるオーバーハング配列を結合させてなるポリヌクレオチドもまた、本発明の範囲に包含される。かかるポリヌクレオチドとしては例えば、配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドからなるオーバーハング配列、好ましくは2つのデオキシチミジル酸からなる配列を結合させてなるポリヌクレオチドが挙げられる。
【0016】
これらポリヌクレオチドの特徴の1つは、該ポリヌクレオチドと、該ポリヌクレオチドに含まれるRNAの相補的な塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとをハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することである。
【0017】
例えば、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと、配列表の配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとをハイブリダイゼーションさせて得た二重鎖ポリヌクレオチドは、テロメレースを、二重鎖ポリヌクレオチドの用量依存的に阻害した。すなわち、この二重鎖ポリヌクレオチドはhTERT遺伝子に対してRNA干渉効果を示し、該遺伝子の発現を阻害することによりテロメレースを阻害したと考えられる。本発明におけるテロメレースの阻害とは、テロメレース機能の部分的消失または完全な消失を意味する。
【0018】
同様に、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと、配列表の配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとをハイブリダイゼーションさせて得た二重鎖ポリヌクレオチドも、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を示し、テロメレースを阻害した。配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと、配列表の配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとをハイブリダイゼーションさせて得た二重鎖ポリヌクレオチドもまた、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を示し、テロメレースを阻害した。
【0019】
上記RNAおよびポリヌクレオチドは、例えば公知の化学合成法を用いて調製することができる。例えば、市販のRNA合成試薬(Proligo、Dharmacon Research、ChemGenes等)を用いてDNA/RNA合成機により調製可能である。
【0020】
テロメレースの阻害は、1つの態様として、本発明に係るRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと、該RNAに相補的な塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとからなる二重鎖ポリヌクレオチドにより達成可能である。該二重鎖ポリヌクレオチドは、これら2つのポリヌクレオチドをハイブリダイゼーションさせることにより得ることができる。ハイブリダイゼーションは、これら2つのポリヌクレオチドを慣用の方法でアニーリングすることにより実施可能である。アニーリングは、1例として、本明細書の実施例に記載した方法により行うことができる。
【0021】
本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチドは、例えば下記の群から選ばれる二重鎖ポリヌクレオチドである(図1参照。):(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドとからなる二重鎖ポリヌクレオチド;(ii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドとからなる二重鎖ポリヌクレオチド;および(iii)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドとからなる二重鎖ポリヌクレオチド。
【0022】
テロメレースの阻害はまた、1つの態様として、本発明に係るRNAを含みヘアピン構造を有する二重鎖を形成し得るポリヌクレオチドにより達成可能であると考える。本発明に係るRNA、該RNAに相補的な塩基配列からなるRNA、およびこれら2つのRNAを連結し且つループ構造を形成するポリヌクレオチドが結合してなるポリヌクレオチドであって、hTERT遺伝子に対してRNA干渉効果を有するポリヌクレオチドも、本発明の範囲に包含される。かかるポリヌクレオチドは、好ましくは本発明に係るRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と該RNAに相補的な塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドであることが望ましい。あるいは、本発明に係るRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と該RNAに相補的な塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドであってもよい。ループ構造を形成するポリヌクレオチドとは、2つのRNAの間に存在して両RNAを連結でき、それ自体がループ構造を形成するものを意味する。非特許文献8に記載された配列を参考にして設計するとよい。好ましくは4個ないし23個、より好ましくは4個ないし8個のヌクレオチドからなるものが望ましい。例えば、TTCAAGAGA(Ambion社またはOligoengine社)、AACGTT、TTAA、CAAGCTTC等の配列を挙げることができる。ヘアピン構造を有する二重鎖の形成は、センスRNA由来部分とアンチセンスRNA由来部分とを慣用の方法でアニーリングすることにより実施可能である。
【0023】
かかるポリヌクレオチドとしてより具体的には、下記の群から選ばれるポリヌクレオチドが例示できる:(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチド;(ii)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチド;(iii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチド;(iv)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチド;(v)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチド;および(vi)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチドであって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチド。
【0024】
本発明に係るRNA、ポリヌクレオチドおよび二重鎖ポリヌクレオチドは、上記のものに制限されず、その機能を損なわない程度の1塩基ないし数塩基程度の塩基の付加、欠失、置換等を有するもの、その他一般的な修飾を受けたものであってもよい。塩基の付加、欠失、置換等を導入する手段は自体公知であり、例えば成書に記載の方法(非特許文献10、11および12)に準じて、あるいはそれらの方法を改変して実施することができ、ウルマーの技術(非特許文献13)を利用することもできる。
【0025】
テロメレースの阻害は、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチドおよびポリヌクレオチドのうちの少なくとも1つを用いることにより達成できる。例えば、これらを細胞に導入することにより実施可能である。細胞への導入は、公知の手法により実施可能であるが、好ましくはリポフェクション法によりトランスフェクションすることが、導入効率、再現性および簡便性等の観点から望ましい。リポフェクションに用いるリポソームと呼ばれる脂質小胞としては、カチオン性のものが好ましい。カチオン性リポソームとしては、リポフェクトアミン、リポフェクトアミン2000(Lipofectamine2000)(Invitrogen)およびオリゴフェクトアミン(Invitrogen)等が例示できる。あるいは、トランスメッセンジャー(TransMessenger)(QIAGEN)、siRNAトランスフェクションキットjetSI(Ambion)、およびジーンサイレンサーsiRNAトランスフェクションリエージェント(GeneSilencer siRNA Transfection Reagent)(Gene Therapy Systems)等の市販の試薬を用いてトランスフェクションすることもできる。
【0026】
テロメレースの阻害はまた、本発明に係るポリヌクレオチドまたはRNAを細胞内でDNAから転写させることにより達成できる。すなわち、その転写物がテロメレースの阻害を示すDNAも本発明に含まれる。ここで、転写物とは、コード鎖に存在する本発明のDNAが、細胞内で転写されることにより生成するRNAを意味する。本DNAとしては、本発明に係るポリヌクレオチドまたはRNAをコードするDNAであればよく、転写開始点(いわゆる+1サイト)がプリン塩基(GまたはA)となるように設計する。本DNAとその相補鎖からなる二重鎖DNAとして用いてもよいし、本DNAの相補鎖のみを鋳型DNAとして用いることもできる。
【0027】
本発明に係るポリヌクレオチドまたはRNAの細胞内での転写は、本発明に係るDNAをベクターに挿入し、得られたベクターを慣用の方法(非特許文献10等)で細胞内にトランスフェクションすることにより達成できる。
【0028】
ベクターDNAは、導入する細胞の種類等により適宜選択される。ベクターDNAは、天然に存在するものを抽出したもののほか、増殖に必要な部分以外のDNAの部分が一部欠落しているものでもよい。例えば、染色体、エピソームおよびウイルス由来のベクター、例えば細菌プラスミド由来、バクテリオファージ由来、トランスポゾン由来、酵母エピソーム由来、挿入エレメント由来、酵母染色体エレメント由来、例えばバキュロウイルス、パポバウイルス、SV40、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、鶏痘ウイルス、仮性狂犬病ウイルスおよびレトロウイルス等のウイルス由来のベクター、並びにそれらを組み合わせたベクター、例えばプラスミドおよびバクテリオファージの遺伝学的エレメント由来のベクター、例えばコスミドおよびファージミド等が挙げられる。組換えベクターは、目的の遺伝子配列と複製そして制御に関する情報を担持した遺伝子配列、例えばプロモーター、リボソーム結合部位、ターミネーター、シグナル配列、エンハンサー等とを構成要素とし、これらを自体公知の方法により組み合わせて作製する。ベクターDNAに目的の遺伝子配列を組込む方法は、自体公知の方法を適用できる。例えば、適当な制限酵素を選択、処理してDNAを特定部位で切断し、次いで同様に処理したベクターとして用いるDNAと混合し、リガーゼによって再結合する方法が用いられる。あるいは、目的の遺伝子配列に適当なリンカーをライゲーションし、これを目的に適したベクターのマルチクローニングサイトへ挿入することによっても、所望の組換えベクターが得られる。
【0029】
本発明に係るポリヌクレオチドのコード鎖となるDNAとしてより具体的には、例えば下記の群から選ばれるDNAであって、その転写物がヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするDNAを例示できる:(i)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA;(ii)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA;(iii)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA;(iv)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA;(v)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA;および(vi)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNAであって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA。
【0030】
本発明に係るポリヌクレオチドのコード鎖となるDNAは、U6あるいはH1といったRNAポリメラーゼIIIによって転写を行うタイプのベクターに組み込んだ場合、転写を終結させるために転写される側の3’末端に5塩基ないし6塩基のpoly(T)を結合することが好ましい。さらに、ベクターによってはpoly(T)の後ろに、さらなる塩基配列、例えばGGAAといった塩基配列を結合して用いることが好ましい。
【0031】
本発明に係るポリヌクレオチドのコード鎖となるDNAを用いたテロメレースの阻害は、該DNAを細胞内に導入することにより達成できる。該DNAの細胞への導入については既報(非特許文献8)を参照し、例えばpSHAG−1ベクターシステムにより行なうことができる。あるいは、pSilencerシリーズ(Ambion社)、pSUPER(OligoEngine社)や、レトロウイルス用のpSUPER−Retro(OligoEngine社)等が使用可能であるがこれらに制限されることはない。
【0032】
本発明に係るRNAをコードするDNAとしては、例えば配列表の配列番号7から12のいずれか1に記載の塩基配列からなるDNAが好ましく例示できる。
【0033】
本発明に係るRNAをコードするDNAを用いたテロメレースの阻害は、該DNAを挿入したベクターと、該RNAの塩基配列に相補的な塩基配列からなるRNAをコードするDNAを挿入したベクターとを細胞内にトランスフェクションすることにより細胞内で転写される2本のRNAにより達成できると考える。あるいは、本発明に係るRNAをコードするDNAと該RNAの塩基配列に相補的な塩基配列からなるRNAをコードするDNAとを挿入したベクターを用いて同様の効果を得ることも可能である。
【0034】
このように上記DNAおよび該DNAを含むベクターも、テロメレースの阻害に使用可能であり、これらも本発明の範囲に包含される。
【0035】
本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチドおよびポリヌクレオチドは、RNA干渉によりhTERT mRNAを破壊することができるため、本発明においては上記二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害剤およびこれらのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害方法を提供可能である。
【0036】
本発明においてはまた、上記二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース阻害剤およびこれらのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース阻害方法を提供可能である。
【0037】
さらに、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターは、テロメレースを阻害することに基づく医薬、好ましくは抗腫瘍剤、さらに好ましくは、悪性腫瘍の治療のための医薬の有効成分として有用である。テロメレース阻害作用の確認は、例えばトラップ法(TRAP法:非特許文献14)、ダイレクトテロメレースアッセイ(Direct telomerase assay:非特許文献15)、ストレッチPCRアッセイ(Stretch PCR assay:非特許文献16)、ハイブリダイゼーションプロテクションアッセイ(Hybridization protection assay:非特許文献17)、TREアッセイ(非特許文献18)、ラピッドダイレクトテロメレースアッセイ(rapid direct telomerase assay:非特許文献19)等の方法により行うことができる。あるいは、パディソンらの方法(非特許文献8)や本明細書の実施例に具体的に記載した方法等に従って確認することも可能である。
【0038】
本発明に係る医薬は、本発明に係る上記二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターのうちの少なくとも1つを有効量含む医薬となしてもよいが、通常は、1種または2種以上の医薬用担体または賦形剤を用いて医薬組成物を製造することが好ましい。かかる担体としては、生理食塩水、緩衝化生理食塩水、デキストロース、水、グリセロール、およびそれらの混合物が挙げられるが、これらに限らない。
【0039】
本発明に係る医薬組成物は、テロメレースの作用に基づく疾患の防止剤および/または治療剤として使用することができる。また、当該疾患の防止方法および/または治療方法に使用することができる。テロメレースの作用に基づく疾患としては、例えば癌疾患が挙げられる。
【0040】
テロメレースが腫瘍の種類に関わらず、大多数の腫瘍において発現が確認されていることから、本発明に係る医薬組成物は多様な種類の癌細胞の増殖阻害に有効であると考えられる。したがって、本発明に係る医薬組成物を癌疾患に使用する場合には、対象となる腫瘍の種類は特に限定されず、固形腫瘍または非固形腫瘍のいずれにも適用可能である。固形腫瘍または非固形腫瘍の種類も特に限定されず、テロメレースを発現しているあらゆる種類の腫瘍において適用できる。例えば、胃癌、食道癌、大腸癌、小腸癌、十二指腸癌、肺癌、肝臓癌、胆嚢癌、膵臓癌、腎臓癌、膀胱癌、口腔癌、骨癌、皮膚癌、乳癌、子宮癌、前立腺癌、脳腫瘍、神経芽腫等の固形腫瘍、あるいは白血病や悪性リンパ腫等の非固形腫瘍等を挙げることができるが、本発明に係る医薬組成物の適用対象はこれら疾患に限定されない。
【0041】
一方、テロメレースは正常体細胞では生殖細胞を除いてほとんど発現していない。さらにsiRNAおよびshRNAはmRNAのみに作用するため、ゲノム遺伝子には全く影響を及ぼさないと考えられる。これらから、本発明に係る医薬および医薬組成物は副作用が少ないと考えられ、この観点からも有用である。
【0042】
必要な用量範囲は、特に限定されないが、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターの有効性、投与形態、疾病の種類、対象の性質(体重、年齢、病状および他の医薬の使用の有無等)、および担当医師の判断により適宜選択することが望ましい。具体的には、適当な用量は、例えば対象の体重1kgあたり0.1μg乃至100μgの範囲であることが好ましい。しかしながら、当該分野においてよく知られた最適化のための一般的な常套的実験を用いてこれらの用量の変更を行うことができる。上記投与量は1日1〜4回に分けて投与することができ、数日または数週間に1回の割合で間欠的に投与してもよい。
【0043】
処方は投与形態に適したものを選択すればよく、該処方は当業者によく知られたものを用いればよい。また、処方するときには、これらを単独で使用してもよく、あるいは治療に必要な他の化合物または医薬と共に使用してもよい。例えば、他のテロメレース阻害剤または抗腫瘍用医薬の有効成分等を配合してもよい。
【0044】
本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNA、ベクターおよび医薬組成物は、好ましくは遺伝子治療剤として用いることができる。この場合、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチドおよびDNAのうちの少なくとも1つを注射により直接投与する非ウイルス性のトランスフェクション法、あるいはウイルスベクターを利用したトランスフェクション方法のいずれも適用することができる。
【0045】
非ウイルス性のトランスフェクション法においては、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチドおよびDNAのうちの少なくとも1つを注射により直接投与する方法のほか、これらをリポソーム等のリン脂質小胞に封入し、そのリポソームを投与する方法が推奨される。リポソームとしては、カチオン性リポソームの使用がより好ましい。
【0046】
ウイルスベクターを使用するトランスフェクション法において、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAを組込んでトランスフェクションに使用するベクターとしては、好ましくはレトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ関連ウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター等のDNAウイルスベクター、あるいはRNAウイルスベクターが挙げられる。これらウイルスベクターを用いることにより効率良い投与が可能である。さらに、ウイルスベクターを用いるトランスフェクション法においても、該ベクターをリポソームに封入して、そのリポソームを投与する方法が推奨される。リポソームとしては、カチオン性リポソームの使用がより好ましい。
【0047】
投与形態は、全身投与または局所投与のいずれも選択することができる。この場合、疾患、症状等に応じた適当な投与形態を選択する。例えば、通常の静脈内投与、動脈内投与のほか、皮下、皮内、筋肉内等に投与することもできる。癌疾患に用いる場合は、腫瘍に直接投与することが好ましい。
【0048】
医薬形状は投与形態に応じて選択することができ、遺伝子治療剤として用いる場合は、一般的には、注射剤、点滴剤、あるいはリポソーム製剤として調製することが好ましい。そのほか、シクロデキストリン等の包接体、溶液剤、けん濁剤、脂肪乳剤、散剤、軟膏剤、クリーム剤、経皮吸収剤、経粘膜吸収剤丸剤、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、細粒剤、坐剤、吸入剤、点眼剤、点耳剤等の作製も可能である。しかし、本発明に係る医薬の形態はこれらに限定されない。
【0049】
製剤化にあたっては、その形態に応じて適切な製剤用添加物を用いることができ、常法に従って製剤化することができる。
【0050】
リポソーム化は、例えばリン脂質を有機溶媒(クロロホルム等)に溶解した溶液に、目的とする物質を溶媒に溶解した溶液を加えた後、溶媒を留去し、これにリン酸緩衝液を加え、振とう、超音波処理および遠心処理した後、上清をろ過処理して回収することにより行い得る。
【0051】
シクロデキストリン包接化は、例えば目的とする物質を溶媒に溶解した溶液に、シクロデキストリンを水等に加温溶解した溶液を加えた後、冷却して析出した沈殿をろ過し、滅菌乾燥することにより行い得る。このとき、使用されるシクロデキストリンは、当該物質の大きさに応じて、空隙直径の異なるシクロデキストリン(α、β、γ型)を適宜選択すればよい。
【0052】
注射用の溶液剤は、塩溶液、グルコース溶液、または塩水とグルコース溶液の混合物からなる担体を用いて調製可能である。
【0053】
けん濁剤は、水、シュークロース、ソルビトール、フラクトース等の糖類、ポリエチレングリコール等のグリコール類、油類を使用して製造できる。
【0054】
脂肪乳剤化は、例えば目的とする物質、油成分(大豆油、ゴマ油、オリーブ油等の植物油、MCT等)、乳化剤(リン脂質等)等を混合、加熱して溶液とした後に、必要量の水を加え、乳化機(ホモジナイザー、例えば高圧噴射型や超音波型等)を用いて、乳化・均質化処理して行い得る。また、これを凍結乾燥化することも可能である。なお、脂肪乳剤化するとき、乳化助剤を添加してもよく、乳化助剤としては、例えばグリセリンや糖類(例えばブドウ糖、ソルビトール、果糖等)が例示される。
【0055】
散剤、丸剤、カプセル剤、錠剤、顆粒剤、細粒剤、点滴剤、坐剤、吸入剤、点眼剤、点耳剤、軟膏剤、クリーム剤、経皮吸収剤、経粘膜吸収剤等についても、通常用いられる方法により調製可能である。
【0056】
本発明においてはさらに、テロメレースを阻害する二重鎖ポリヌクレオチドの同定方法を提供する。本発明に係る同定方法は、hTERT遺伝子は発現していないがhTR遺伝子(配列番号16)を発現している細胞、またはhTERT遺伝子およびhTR遺伝子の両方を発現していない細胞を用い、該細胞にhTERT遺伝子発現ベクターおよびhTR遺伝子発現ベクターと共に被検物質である二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションし、ついで、テロメレース活性を測定することを1つの特徴とする。hTERT遺伝子は発現していないがhTR遺伝子を発現している細胞としては、例えばヒト骨肉腫由来Saos−2細胞が挙げられるが、本発明に係る同定方法に使用できる細胞はこれに制限されることはない。hTERT遺伝子は発現していないがhTR遺伝子を発現している細胞を用いる場合、hTR遺伝子発現ベクターは導入しなくてもよいが、好ましくはhTR遺伝子発現ベクターも導入することが推奨される。hTR遺伝子発現ベクターに対するhTERT遺伝子発現ベクターの導入比は好ましくは1:0.01ないし1:10である。導入比は、用いる細胞によっても異なり、より適切な導入比を実験により決定して用いることができる。トランスフェクションは、慣用のトランスフェクション法(非特許文献10等)により実施できるが、好ましくはリポフェクションによる。リポフェクションは、リポフェクチン、リポフェクトアミン、セルフェクチン、DMRIE−Cまたはスーパーフェクト等の市販の試薬を用いることにより行うことができるが、好ましくはカチオン性リポソームを用いることが望ましい。カチオン性リポソームとしては、リポフェクトアミン、リポフェクトアミン2000およびオリゴフェクトアミン等が挙げられる。
【0057】
hTERT遺伝子は発現していないがhTR遺伝子を発現している細胞、またはhTERT遺伝子およびhTR遺伝子の両方を発現していない細胞に、hTERT遺伝子発現ベクターおよびhTR遺伝子発現ベクターと共に被検物質である二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションすることにより構築したかかる測定系は、hTERT遺伝子が導入された細胞のみがテロメレース活性を示し、さらにその細胞には二重鎖ポリヌクレオチドも導入されている可能性が極めて高いため、トランスフェクション効率の影響をあまり受けずに二重鎖ポリヌクレオチドの効果を評価することができる。hTR遺伝子およびhTERT遺伝子の発現用ベクターはそれぞれ、通常用いられる哺乳動物用遺伝子発現ベクターにhTERT cDNA(配列番号13)およびhTR cDNA(配列番号16)を挿入すること等により作製すればよい。
【0058】
被検物質である二重鎖ポリヌクレオチドは、hTERT遺伝子の塩基配列に基づいて、RNA干渉効果を有するRNAに特有の配列を含む領域を選択し、該領域の配列から設計し、公知のヌクレオチド合成方法により作製することができる。hTERT遺伝子の配列は配列表の配列番号13に記載された配列である。RNA干渉効果を有するRNAに特有の配列は既に広く知られている。例えば、AAまたはCAで始まる領域で、GC含量が30%から70%、好ましくは50%となる配列である。また、各塩基の偏りあるいはGまたはCが連続した配列が極力少ない配列が好ましい。
【0059】
本発明に係る同定方法において、二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションしなかったときと比較してテロメレース活性を低下させた二重鎖ポリヌクレオチドを選択することにより、所望の二重鎖ポリヌクレオチドを取得することができる。テロメレース活性の測定は、例えばトラップ法(非特許文献14)、ダイレクトテロメレースアッセイ(非特許文献15)、ストレッチPCRアッセイ(非特許文献16)、ハイブリダイゼーションプロテクションアッセイ(非特許文献17)、TREアッセイ(非特許文献18)、ラピッドダイレクトテロメレースアッセイ(非特許文献19)等の方法により実施できる。
【0060】
本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチド、DNAおよびベクターはいずれも、それ自体を単独で、試薬等として使用できる。例えば、テロメレースを阻害するための試薬として用いることができる。該試薬はテロメレースが関与する細胞増殖や細胞老化のメカニズム、およびテロメレースの作用に基づく疾患等に関する基礎的研究等に有用である。これらは試薬であるとき、緩衝液、塩、安定化剤、および/または防腐剤等の物質を含んでいてもよい。なお、製剤化にあたっては、各性質に応じた自体公知の製剤化手段を導入すればよい。また本発明は、これらのうちの1種またはそれ以上を充填した、1個またはそれ以上の容器を含んでなる試薬キットを提供する。これら試薬および試薬キットは、テロメレースの作用に基づく疾患の診断に使用できる。例えば、癌患者から癌細胞を採取し、該細胞を培養して二重鎖ポリヌクレオチドを含むキットで繰り返し処理したときに細胞死が観察されれば、テロメレース阻害剤が有効な患者と判定することができる。これらはまた、本発明に係る同定方法の陽性対照として使用することができる。
【0061】
【実施例】
以下に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の実施例に限定されない。
【0062】
【実施例1】
二重鎖ポリヌクレオチドは、hTERT遺伝子の塩基配列(配列番号13)に基づいて設計した。まず、該遺伝子の塩基配列においてAAまたはCAで始まる部分から、各塩基の偏りあるいはGまたはCが連続した配列が極力少ない配列を選ぶことにより、センスRNAの塩基配列を設計した。また、センスRNAの塩基配列に相補的な塩基配列からなるアンチセンスRNAを設計した。ついで、二重鎖ポリヌクレオチドのヌクレアーゼからの保護を目的とし、センスRNAとアンチセンスRNAのそれぞれの3’末端に、2つのデオキシチミジル酸からなるオーバーハング配列を結合したセンスポリヌクレオチドおよびアンチセンスポリヌクレオチドを設計した。設計したセンスポリヌクレオチドとアンチセンスポリヌクレオチドの双方を、RNA合成装置により合成した。
【0063】
センスポリヌクレオチドとアンチセンスポリヌクレオチドとをアニーリングして二重鎖ポリヌクレオチドを調製した。まず、それぞれ50μM(50pmol/μl)に希釈した後、各試料30μlずつと5×アニーリングバッファー(500mM 酢酸カリウム、150mM HEPES−KOH pH7.4、10mM 酢酸マグネシウム)15μlを混合した(総量75μl)。ついで、混合液を90℃で1分間加熱し、遠心処理後に37℃で60分間静置した。この操作により、ポリヌクレオチドは二本鎖を形成し、最終濃度は20μM(20pmol/μl)になった。
【0064】
作成した二重鎖ポリヌクレオチドの例を図1に示した。TERT02は、配列番号1および2に記載した各塩基配列からなる2つのRNAの各3’末端に2つのデオキシチミジル酸が結合したポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチドである。TERT07は、配列番号3および4に記載した各塩基配列からなる2つのRNAの各3’末端に2つのデオキシチミジル酸が結合したポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチドである。TERT08は、配列番号5および6に記載した各塩基配列からなる2つのRNAの各3’末端に2つのデオキシチミジル酸が結合したポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチドである。配列番号1、配列番号3および配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAはそれぞれ、hTERT cDNA配列(配列番号13)の第1042−1060番目、第1789−1807番目および第1812−1830番目の部分配列から設計されたRNAである。また配列番号2、配列番号4、および配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAはそれぞれ、配列番号1、配列番号3および配列番号5に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなるRNAである。
【0065】
【実施例2】
実施例1で作製した二重鎖ポリヌクレオチドから、テロメレース阻害作用を示す二重鎖ポリヌクレオチドを選択するために、hTERT遺伝子を発現しておらずhTR遺伝子のみを発現しているヒト骨肉腫由来Saos−2細胞を用い、hTERT遺伝子発現ベクターおよびhTR遺伝子発現ベクターと共に二重鎖ポリヌクレオチドとをトランスフェクションし、テロメレース活性を測定する測定系を構築した。この測定系を用いて、テロメレース阻害作用を示す二重鎖ポリヌクレオチドを選択した。
【0066】
まず、Saos−2細胞を2×10細胞/mlに調製し、24ウェルプレートに1ウェル当たり0.5mlずつ播種し、37℃で一晩(12時間程度)培養した。ついで、hTERT遺伝子発現ベクターおよびhTR遺伝子発現ベクターと共に二重鎖ポリヌクレオチドを、1ウェル当たり2.5μlのリポフェクトアミン2000(Invitrogen)と0.1mlの無血清培地中で混合し、細胞にトランスフェクションした。トランスフェクションの24時間後に細胞をトリプシン処理し、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で1回洗浄して回収した。陰性対象として、上記二重鎖ポリヌクレオチドの代わりに既知の遺伝子と相同性を持たないスクランブル二重鎖ポリヌクレオチド(配列番号14および15に記載の各塩基配列からなる2つのRNAのそれぞれの3’末端に2つのデオキシチミジル酸が結合したポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド)を用いて同様に細胞を処理した。
【0067】
回収した細胞中のテロメレース活性は、TRAPeze XL Kit(Oncor)を用い、キットの使用説明書に従って測定した。まず、キットに付属の1×CHAPS溶解バッファー120μlに細胞をけん濁し、氷上で20分間インキュベーション後に、4℃にて12,000rpmで20分間遠心処理し、上清を回収した。上清中の蛋白質濃度を定量後、1反応当り200ngになるように反応液中に加え、テロメレースによるオリゴDNAの伸張反応を30℃で30分間行った。その後、反応液中に含まれるプライマー対でPCR反応を行い、テロメレース反応産物を増幅し、内部標準との比を算出して、テロメレース活性の強度を測定した。検出はプライマーに標識されたフルオレセイン(テロメレース反応産物の指標。)およびスルホローダミン(内部標準の指標。)の各蛍光強度を分光蛍光光度計を用いて計測することにより行った。
【0068】
0.5μg/wellのhTERT遺伝子発現ベクター、0.54μg/wellのhTR遺伝子発現ベクター、および20pmol/wellまたは2pmol/wellの二重鎖ポリヌクレオチドを用いて上記検討を行ったところ、合成した二重鎖ポリヌクレオチドのうち、TERT02、TERT07およびTERT08がテロメレース阻害効果を示した(図2)。
【0069】
さらに、TERT02およびTERT08について、0.125μg/wellのhTERT遺伝子発現ベクター、0.75μg/wellのhTR遺伝子発現ベクターを用い、二重鎖ポリヌクレオチドの濃度を20pmol/wellから0.2pmol/wellの範囲で変化させて同様に検討したところ、いずれも二重鎖ポリヌクレオチドの濃度依存的にテロメレースを阻害することが明らかになった(図3)。
【0070】
一方、加熱してテロメレースの酵素活性を失活させた試料では二重鎖ポリヌクレオチドを添加しなくてもテロメレース活性が全く検出されなかったことから、ここで用いた測定系がテロメレース活性を適切に反映していることが確認できた(図2および図3)。
【0071】
【発明の効果】
本発明によれば、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対するRNA干渉効果によりテロメレースの阻害を達成できる。
【0072】
本発明はアンチセンス法やリボザイム法等の他の遺伝子発現阻害法と比較して、低濃度および高確率で特異的にヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現を阻害でき、その結果テロメレースを阻害することができる。また、本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチドおよびポリヌクレオチドは短鎖ポリヌクレオチドであるため、合成が容易であり、安価に合成できる。
【0073】
本発明によれば、テロメレースの作用に基づく疾患の防止および/または治療が可能である。テロメレースが癌の種類を問わずほとんどの癌細胞で発現しており、生殖細胞以外の正常体細胞ではほとんど発現していないことから、例えば本発明は多様な種類の癌疾患の防止および/または治療に有効であると考えられる。
【0074】
このように本発明は、テロメレースが関与する細胞増殖や細胞老化のメカニズムおよびテロメレースの作用に基づく疾患等に関する基礎的研究等に有用である。さらにテロメレースの作用に基づく疾患、例えば癌疾患の防止および/または治療に非常に有用である。
【0075】
【配列表フリーテキスト】
配列番号1:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたRNA。
配列番号2:配列番号1に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたRNA。
配列番号3:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたRNA。
配列番号4:配列番号3に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたRNA。
配列番号5:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたRNA。
配列番号6:配列番号5に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたRNA。
配列番号7:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたDNA。
配列番号8:配列番号7に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたDNA。
配列番号9:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたDNA。
配列番号10:配列番号9に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたDNA。
配列番号11:ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子(配列番号13)の配列に基づいて設計されたDNA。
配列番号12:配列番号11に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたDNA
配列番号14:全ての遺伝子に対して相同性のない塩基配列からなる設計されたRNA。
配列番号15:配列番号14に記載の塩基配列に相補的な塩基配列からなる設計されたRNA。
【0076】
【配列表】

Figure 2004350607
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【図面の簡単な説明】
【図1】本発明に係る二重鎖ポリヌクレオチドの配列を示す図である。
【図2】TERT02、TERT07およびTERT08の3種類の二重鎖ポリヌクレオチドがそれぞれ、hTERT遺伝子およびhTR遺伝子と共に該二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションしたSaos−2細胞において、テロメレースを阻害したことを示す図である。テロメレース活性は、テロメレース活性測定における内部標準であるスルホローダミンの蛍光強度(バックグランドを減算)に対する、テロメレースにより付加されたテロメア配列の指標であるフルオレセインの蛍光強度(バックグランドを減算)の比(△FL/△R)で示した。図中、DNA(−)およびRNA(−)はそれぞれ、hTERT遺伝子および二重鎖ポリヌクレオチドを無添加のときのテロメレース活性を示す。また、RNA(−)Heatは、二重鎖ポリヌクレオチドを添加せずに試料を加熱してテロメレースの酵素活性を失活させたときのテロメレース活性を示す。スクランブル(scramble)は既知の遺伝子と相同性を持たない二重鎖ポリヌクレオチドであり、陰性対象として用いた。
【図3】TERT02およびTERT08の2種類の二重鎖ポリヌクレオチドがそれぞれ、hTERT遺伝子およびhTR遺伝子と共に該二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションしたSaos−2細胞において、テロメレースを二重鎖ポリヌクレオチドの濃度依存的に阻害したことを示す図である。テロメレース活性は、テロメレース活性測定における内部標準であるスルホローダミンの蛍光強度(バックグランドを減算)に対する、テロメレースにより付加されたテロメア配列の指標であるフルオレセインの蛍光強度(バックグランドを減算)の比(△FL/△R)で示した。図中、RNA(−)は、hTERT遺伝子および二重鎖ポリヌクレオチドを無添加のときのテロメレース活性を示す。また、RNA(−)Heatは、二重鎖ポリヌクレオチドを添加せずに試料を加熱してテロメレースの酵素活性を失活させたときのテロメレース活性を示す。スクランブル(scramble)は既知の遺伝子と相同性を持たない二重鎖ポリヌクレオチドであり、陰性対象として用いた。[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to double-stranded polynucleotides and polynucleotides that exhibit telomerase inhibitory activity, and RNAs and polynucleotides that form them. Further, the present invention relates to DNA characterized in that the transcript exhibits telomerase inhibitory activity. Furthermore, the present invention relates to a vector containing the DNA. The present invention also relates to an inhibitor of telomerase reverse transcriptase and a method of inhibiting telomerase reverse transcriptase. Furthermore, it relates to a telomerase inhibitor and a telomerase inhibition method. The present invention also relates to a pharmaceutical composition comprising at least one of the double-stranded polynucleotide, the polynucleotide, the DNA, and the vector, a cancer disease preventive and / or therapeutic agent, and a reagent kit. Furthermore, the present invention relates to a method for preventing and / or treating cancer diseases, characterized by using at least one of the double-stranded polynucleotide, the polynucleotide, the DNA and the vector. The present invention also relates to a method for identifying a double-stranded polynucleotide having telomerase inhibitory activity using cells that do not express telomerase reverse transcriptase.
[0002]
[Prior art]
Telomerase is an enzyme that performs an elongation reaction of the telomeric portion of a chromosome, and is known to be involved in cell immortalization. Telomeres are simple repetitive sequences present at the end of chromosomal DNA in eukaryotic cells, and contribute to maintaining chromosome stability. A normal DNA polymerase that controls DNA replication in cell division does not completely replicate to the very end of DNA, and therefore telomere is shortened with cell division. In normal somatic cells, proliferation stops after a certain number of divisions, and cell senescence or cell death occurs. On the other hand, the expression of telomerase is recognized in the majority of germ cells having infinite proliferation and immortalized cancer cells. It is considered that the elongation of telomeres shortened with cell division by telomerase is one of the mechanisms for acquiring infinite proliferation of cells.
[0003]
Human telomerase is a complex comprising human telomerase reverse transcriptase (hereinafter abbreviated as hTERT) and human telomerase RNA (hereinafter abbreviated as hTR). (Non-Patent Document 1).
[0004]
Telomerase first recognizes and binds the telomere sequence by hTR having a complementary sequence of telomere in the telomere extension reaction. Next, the hTR is used as a template, and the telomere is extended by hTERT which is a catalytic subunit. Since telomerase activity was experimentally observed only with hTR and hTERT, these two subunits are considered necessary and sufficient elements for telomerase activity. Moreover, since hTR is widely expressed not only in cancer but also in normal tissues, whereas hTERT is expressed specifically in cancer tissues, it is considered that hTERT is a determinant of telomerase activity.
[0005]
Since telomerase is involved in the immortalization of cancer cells, development of telomerase inhibitors has been studied. For example, an antisense method targeting hTR (Non-Patent Documents 2 and 3), a method using a dominant negative form of hTERT (Non-Patent Document 4), a method using a ribozyme (Non-Patent Document 5), and G- It has been reported that telomerase is inhibited by a method using a Kadraplex DNA interactive compound (Non-patent Document 6). All of these methods have drawbacks and few have been developed as practical drugs.
[0006]
In recent years, as a method for suppressing gene expression using RNA, a method using RNA interference has been developed (Non-patent Documents 7 and 8). In mammals, a short RNA consisting of 20 bp to 25 bp short RNA (so-called sense RNA) consisting of a partial sequence of mRNA of a target gene and RNA (antisense RNA) consisting of a base sequence complementary to the base sequence of the RNA. It has been reported that heavy interfering RNA (short interfering RNA; hereinafter abbreviated as siRNA) effectively degrades the mRNA and inhibits the expression of the gene (Non-patent Document 7). Similar to siRNA, it has been reported that short hairpin RNA (hereinafter abbreviated as shRNA), which is a short double-stranded RNA having a hairpin structure, has an RNA interference effect (Non-patent Document 8). The shRNA has a hairpin-like structure because a sense RNA and an antisense RNA are linked by, for example, a polynucleotide, and the sense RNA-derived portion and the antisense RNA-derived portion form a double strand. RNA interference is a useful method that can specifically inhibit the expression of a target gene at a low concentration and with a high probability as compared with other gene expression inhibition methods such as an antisense method and a ribozyme method.
[0007]
For telomerase, suppression by siRNA has been reported (Non-patent Document 9). However, the siRNA had a weak inhibitory effect on telomerase and its effect was transient.
[0008]
The documents cited in this specification are listed below.
[Non-Patent Document 1] Kelleher C. et al., “TRENDS in Biochemical Sciences”, 2002, Vol. 27, p. 572-579.
[Non-Patent Document 2] Feng J. et al., "Science", 1995, Vol. 269, p. 1236-1241.
[Non-patent Document 3] Kondo S. et al., “Oncogene”, 1998, Vol. 16, p. 3323-3330.
[Non-Patent Document 4] Hahn WC et al., “Nature Medicine”, 1999, Vol. 10, p. 1129-1130.
[Non-Patent Document 5] Yokoyama Y. et al., “Cancer Research”, 1998, Vol. 58, p. 5406-5410.
[Non-Patent Document 6] Sun D. et al., “Journal of Medicinal Chemistry”, 1997, Vol. 40, p. 2113-2116.
[Non-Patent Document 7] Elbashir SM, et al., “Nature”, 2001, Vol. 411, p. 494-498.
[Non-patent Document 8] Paddison PJ et al., “Jeans and Development”, 2002, Vol. 16, p. 948-958.
[Non-patent Document 9] Kosciolek BA, et al., “Molecular Cancer Therapeutics”, 2003, Vol. 2, No. 3, p. 209-216.
[Non-Patent Document 10] Edited by Sambrook et al., “Molecular Cloning, Laboratory Manual”, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory, 1989.
[Non-patent document 11] Muramatsu, M., “Lab Manual Genetic Engineering”, Maruzen Co., Ltd., 1988.
[Non-Patent Document 12] Ehrlich, "PCR Technology, Principles and Applications of DNA Amplification", Stockton Press, 1989.
[Non-patent Document 13] Ulmer KM, "Science", 1983, Vol. 219, p. 666-671.
[Non-Patent Document 14] Kim N.W. et al., “Science”, 1994, Vol. 266, No. 5193, p. 2011-2015.
[Non-Patent Document 15] Wenz C. et al., "The EMBO Journal", 2001, Vol. 20, No. 13, p. 3526-3534.
[Non-Patent Document 16] Tatematsu K. et al., “Oncogene”, 1996, Vol. 13, No. 10, p. 2265-2274.
[Non-patent Document 17] Nakamura Y. et al., “Clinical Chemistry”, 1999, Vol. 45, No. 10, p. 1718-1724.
[Non-patent Document 18] Maesawa C. et al., “Nucleic Acids Research, 2003, Vol. 31, No. 2, p. E4-4.
[Non-patent Document 19] "Biotechnics", 2002, Vol. 32, No. 5, p. 1154-1156, 1158, 1160.
[0009]
[Problems to be solved by the invention]
An object of the present invention is to provide a telomerase inhibitor and a method of inhibiting telomerase that are very specific and useful for telomerase. Another object of the present invention is to provide a pharmaceutical composition containing the telomerase inhibitor, for example, an agent for preventing and / or treating cancer diseases. Furthermore, an object of the present invention is to provide a method for preventing and / or treating a cancer disease characterized by using the telomerase inhibitor.
[0010]
[Means for solving problems]
The present inventors have intensively studied to solve the above problems, and have found a double-stranded polynucleotide capable of inhibiting telomerase by exhibiting RNA interference with the human telomerase reverse transcriptase gene, and have completed the present invention.
[0011]
That is, the present invention
1. RNA comprising the base sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 6 in the sequence listing,
2. A polynucleotide (polynucleotide A) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridization with a polynucleotide comprising 1 to several nucleotides bound to the RNA having the base sequence described in 2 at the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide A having an RNA interference effect on
3. A polynucleotide (polynucleotide B) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and the sequence number in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA comprising the nucleotide sequence of 1 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide B characterized by having an RNA interference effect on
4). A polynucleotide (polynucleotide C) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA having the base sequence described in 4 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide C characterized by having an RNA interference effect on
5). A polynucleotide (polynucleotide D) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridization with a polynucleotide comprising 1 to several nucleotides bonded to the RNA having the base sequence described in 3 at the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide D characterized by having an RNA interference effect on
6). A polynucleotide (polynucleotide E) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA comprising the nucleotide sequence of claim 6 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide E characterized by having an RNA interference effect on
7). A polynucleotide (polynucleotide F) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA having the base sequence of 5 to a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene A polynucleotide F characterized by having an RNA interference effect on
8). A polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylates to the RNA having the base sequence described in any one of SEQ ID NOS: 1 to 6 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA
9. Any one double-stranded polynucleotide selected from the following group, wherein the double-stranded polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA;
(Ii) consisting of a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA comprising the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA and the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA;
and
(Iii) consisting of a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA and the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA;
10. Any one double-stranded polynucleotide selected from the group below;
(I) a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing and the 3 'end of the RNA and the RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA; (ii) an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing; A duplex consisting of a polynucleotide formed by binding two deoxythymidylic acids at the ends and a polynucleotide formed by binding two deoxythymidylic acids at the 3 ′ end of the RNA to the RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4. Strand polynucleotide,
and
(Iii) An RNA comprising a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and an RNA comprising a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6 and a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA. A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA;
11. Any one polynucleotide selected from the group below, wherein the polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure and a polynucleotide (polynucleotide G) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 2 The 3 ′ end of the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 of the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure, and further the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure And a polynucleotide G in which the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2 is bound,
(Ii) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and a polynucleotide (polynucleotide H) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 2 The 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure by binding the 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 of the Sequence Listing to the 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure A polynucleotide H bound to the 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2,
(Iii) a polynucleotide (polynucleotide I) obtained by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 The 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure is formed by binding the 3 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 of the Sequence Listing to the 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure. A polynucleotide I bound to the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4,
(Iv) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and a polynucleotide (polynucleotide J) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 4 The 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure are combined, and the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure. And polynucleotide J in which the 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 is bound,
(V) a polynucleotide (polynucleotide K) formed by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 And the 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure by binding the 3 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 of the sequence listing to the 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure. A polynucleotide K bound to the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6,
and
(Vi) an RNA composed of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and a polynucleotide (polynucleotide L) formed by binding an RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 The 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure is formed by binding the 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 of the Sequence Listing to the 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure. And a polynucleotide L bound to the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6,
12 Any one polynucleotide selected from the group below, wherein the polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 Nucleotide M), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to A polynucleotide M, wherein the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 are linked;
(Ii) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 (polynucleotide) Nucleotide 5), the 5 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing and the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, A polynucleotide N in which the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 are linked;
(Iii) A polynucleotide comprising a combination of RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 Nucleotide 3), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing is linked to the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to A polynucleotide O in which the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 are linked;
(Iv) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 Nucleotide P), wherein the 5 ′ end of the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and the 3 ′ end of the polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides are combined, and further 4 to A polynucleotide P in which the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 are linked;
(V) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 Nucleotide 3), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, A polynucleotide Q in which the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked;
and
(Vi) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 Nucleotide R), the 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to A polynucleotide R in which the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked;
13. DNA comprising the base sequence described in any one of SEQ ID NOs: 7 to 12 in the sequence listing;
14 Any one DNA selected from the following group, wherein the transcript has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) DNA (DNA1) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 of the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 8 The 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing and the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides are combined, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 1 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 are bound,
(Ii) DNA (DNA2) obtained by binding DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 2 in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 are bound,
(Iii) DNA (DNA3) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 10 And the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 of the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further comprising 4 to 23 nucleotides. DNA 3 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 are bound,
(Iv) DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 9 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 (DNA4) And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 4 in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 are bound,
(V) DNA (DNA5) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 12 The 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the sequence listing and the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides are combined, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 5 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12 are bound,
and
(Vi) DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12 (DNA6) And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further comprising 4 to 23 nucleotides. DNA 6 in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12 are bound,
15. 13. Or a vector containing 14 DNAs,
16. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A telomerase reverse transcriptase gene expression inhibitor comprising at least one of the vectors of:
17. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A telomerase inhibitor comprising at least one of the vectors of
18. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A method for inhibiting expression of a telomerase reverse transcriptase gene, comprising using at least one of the vectors of
19. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A method of inhibiting telomerase, comprising using at least one of the vectors of:
20. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A pharmaceutical composition comprising an effective amount of at least one of the vectors of
21. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A preventive and / or therapeutic agent for cancer diseases, comprising an effective amount of at least one of the vectors;
22. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A method for preventing and / or treating a cancer disease, characterized by using at least one of the vectors
23. 9 above. Or 10. 10. A double-stranded polynucleotide according to any of the above, Or 12. Any one of the polynucleotides of the above 13. Or 14. Any one of the above DNAs, and 15. A reagent kit comprising at least one of the vectors of
24. A method for identifying a double-stranded polynucleotide having a telomerase inhibitory action, wherein a cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene or a cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene and a human telomerase RNA gene is used, The cell is transfected with a double-stranded polynucleotide as a test substance together with a human telomerase reverse transcriptase gene expression vector and a human telomerase RNA gene expression vector, and then the telomerase activity is measured and the double-stranded polynucleotide is transfected. An identification method comprising selecting a double-stranded polynucleotide having reduced telomerase activity compared to when not
25. 24. The cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene or a cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene and a human telomerase RNA gene is a human osteosarcoma-derived Saos-2 cell. Identification method,
26. 24. The transfection is a lipofection method. Or 25. Identification method,
27. 26. The lipofection method is a lipofection method using cationic liposomes. Identification method,
Consists of.
[0012]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
In the present invention, a polynucleotide useful for inhibiting telomerase is provided. The polynucleotide in the present specification means a linear polymer in which more than 2 nucleotides are linked by a 3 ′, 5′-phosphodiester bond, and two or more linked by phosphodiester bonds. A linear nucleic acid fragment consisting of about 10 or more nucleotides is also included.
[0013]
One embodiment of the polynucleotide according to the present invention is RNA consisting of a partial sequence of hTERT mRNA and RNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence of the RNA. As RNA which concerns on this invention, Preferably RNA which consists of a base sequence as described in any one of sequence number 1 to 6 of a sequence table is mentioned.
[0014]
Each RNA according to the present invention preferably has a nucleotide consisting of one or several base sequences called an overhang sequence bound to the 3 ′ end of the RNA. The overhang sequence has an effect of protecting RNA from nucleases as one of its actions. The overhang sequence is not particularly limited as long as it does not inhibit the RNA interference effect of the RNA, preferably any one consisting of 1 to 10, more preferably 1 to 4, and even more preferably 2 nucleotides. Can also be used. Specifically, sequences such as a sequence composed of deoxythymidylic acid (for example, TT), a sequence composed of uridylic acid (for example, UU), and a sequence in which any nucleotide is bound following deoxythymidylic acid (for example, TN) can be exemplified. More preferably, a sequence consisting of two deoxythymidylic acids is used as an overhang sequence because it can be synthesized inexpensively and has a higher nuclease resistance. The overhang sequence is bound to the ribose 3 ′ hydroxyl site at the 3 ′ end of the RNA according to the present invention by a diester bond.
[0015]
A polynucleotide obtained by binding an overhang sequence consisting of one to several nucleotides to the 3 ′ end of each RNA according to the present invention is also included in the scope of the present invention. As such a polynucleotide, for example, an RNA comprising the base sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 6 in the sequence listing, an overhang sequence comprising 1 to several nucleotides at the 3 ′ end of the RNA, preferably Includes a polynucleotide obtained by binding a sequence composed of two deoxythymidylic acids.
[0016]
One of the characteristics of these polynucleotides is that one or several nucleotides are bound to the 3 ′ end of the RNA to RNA comprising the polynucleotide and a complementary base sequence of RNA contained in the polynucleotide. The double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing with the resulting polynucleotide has an RNA interference effect on the human telomerase reverse transcriptase gene.
[0017]
For example, a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and the base set forth in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA consisting of a sequence to a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA, Inhibited in a dose-dependent manner. That is, it is considered that this double-stranded polynucleotide exhibited an RNA interference effect on the hTERT gene and inhibited telomerase by inhibiting the expression of the gene. Inhibition of telomerase in the present invention means partial or complete loss of telomerase function.
[0018]
Similarly, a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and the sequence described in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing. A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA consisting of a base sequence to a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is also used for the human telomerase reverse transcriptase gene. Showed an RNA interference effect and inhibited telomerase. A polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA; and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 in the sequence list A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA obtained by hybridization with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is also RNA for human telomerase reverse transcriptase gene. Shows interference effect and inhibits telomerase.
[0019]
The RNA and polynucleotide can be prepared, for example, using a known chemical synthesis method. For example, it can be prepared by a DNA / RNA synthesizer using commercially available RNA synthesis reagents (Proligo, Dharmacon Research, ChemGenes, etc.).
[0020]
In one aspect, the inhibition of telomerase is an RNA comprising a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA according to the present invention at the 3 ′ end of the RNA, and a base sequence complementary to the RNA. And a double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA. The double-stranded polynucleotide can be obtained by hybridizing these two polynucleotides. Hybridization can be performed by annealing these two polynucleotides by a conventional method. Annealing can be performed by the method described in the Example of this specification as an example.
[0021]
The double-stranded polynucleotide according to the present invention is, for example, a double-stranded polynucleotide selected from the following group (see FIG. 1): (i) RNA consisting of the base sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing A polynucleotide formed by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA and an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and two deoxythymidylic acids bound to the 3 ′ end of the RNA A double-stranded polynucleotide comprising nucleotides; and (ii) a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylates to the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA and SEQ ID NO: A duplex comprising an RNA comprising the base sequence according to 4 and a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylates to the 3 ′ end of the RNA A polynucleotide; and (iii) a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the Sequence Listing and the 3 ′ end of the RNA, and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 A double-stranded polynucleotide comprising: a polynucleotide comprising two RNAs bonded with two deoxythymidylic acids at the 3 ′ end of the RNA.
[0022]
It is also considered that the inhibition of telomerase can be achieved in one aspect by a polynucleotide that can form a duplex containing the RNA of the present invention and having a hairpin structure. An RNA according to the present invention, an RNA having a base sequence complementary to the RNA, and a polynucleotide formed by linking these two RNAs and combining the polynucleotides forming a loop structure, Polynucleotides having RNA interference effects are also encompassed within the scope of the present invention. Such a polynucleotide preferably binds to the 3 ′ end of the RNA according to the present invention and the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure, and is complementary to the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure and the RNA. It is desirable that the polynucleotide be bound to the 5 ′ end of RNA consisting of a typical base sequence. Alternatively, the 5 ′ end of the RNA according to the present invention and the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure are combined, and the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure and the base sequence complementary to the RNA It may be a polynucleotide in which the 3 ′ end of the RNA is bound. A polynucleotide that forms a loop structure means a polynucleotide that exists between two RNAs and that can link both RNAs and that itself forms a loop structure. It is better to design with reference to the sequence described in Non-Patent Document 8. Preferably, it consists of 4 to 23 nucleotides, more preferably 4 to 8 nucleotides. For example, sequences such as TTCAAGAGA (Ambion or Oligoengine), AACGTT, TTAA, CAAGCTTC and the like can be mentioned. Formation of a duplex having a hairpin structure can be performed by annealing a sense RNA-derived portion and an antisense RNA-derived portion by a conventional method.
[0023]
More specific examples of such polynucleotides include polynucleotides selected from the following group: (i) RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, and a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides. A polynucleotide obtained by binding a nucleotide and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 and comprising the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing and 4 to 23 nucleotides A 5 'end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides and a 5' end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 Nucleotides; (ii) RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, consisting of 4 to 23 nucleotides A polynucleotide obtained by binding a polynucleotide having the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2 and RNA having the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing and 4-23 nucleotides. To the 3 ′ end of the polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and to the 3 ′ end of the RNA consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 (Iii) An RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the Sequence Listing, a polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 A polynucleotide comprising 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and 4 to 23 nucleotides. The 5 'end of the polynucleotide comprising rhotide was bound, and the 3' end of the polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides and the 5 'end of the RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 4 were bound. (Iv) a polynucleotide formed by binding an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4. A 5 'end of an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the Sequence Listing and a 3' end of a polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and further 4 to 23 nucleotides. The 5 ′ end of a polynucleotide comprising the nucleotides of 3 and the 3 ′ end of an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 were bound. (V) a polynucleotide formed by binding of RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6. A 3 'end of an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the Sequence Listing and a 5' end of a polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and further 4 to 23 nucleotides A polynucleotide in which the 3 ′ end of a polynucleotide comprising the nucleotides of the above and the 5 ′ end of an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked; and (vi) the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing RNA, a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and an RNA consisting of the base sequence described in SEQ ID NO: 6 bind A 5 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and a 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and four more Or a polynucleotide in which the 5 ′ end of a polynucleotide comprising 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked.
[0024]
The RNA, polynucleotide and double-stranded polynucleotide according to the present invention are not limited to those described above, and have one to several base additions, deletions, substitutions, etc. that do not impair their functions. , Other general modifications may be used. Means for introducing base addition, deletion, substitution, etc. are known per se, and are carried out, for example, according to the methods described in the literature (Non-patent Documents 10, 11 and 12) or by modifying those methods. It is possible to use Ulmer's technology (Non-patent Document 13).
[0025]
Inhibition of telomerase can be achieved by using at least one of the double-stranded polynucleotide and polynucleotide according to the present invention. For example, it can be carried out by introducing them into cells. The introduction into the cell can be performed by a known technique, but transfection by the lipofection method is preferable from the viewpoint of introduction efficiency, reproducibility, simplicity, and the like. The lipid vesicles called liposomes used for lipofection are preferably cationic. Examples of the cationic liposome include Lipofectamine, Lipofectamine 2000 (Invitrogen), and Oligofectamine (Invitrogen). Alternatively, commercially available reagents such as TransMessenger (QIAGEN), siRNA transfection kit jetSI (Ambion), and Gene Silencer siRNA Transfection Reagent (Gene Therapy Systems) are commercially available. You can also.
[0026]
Inhibition of telomerase can also be achieved by transcribing a polynucleotide or RNA according to the present invention from DNA in a cell. That is, a DNA whose transcript shows inhibition of telomerase is also included in the present invention. Here, the transcript means RNA produced by transcription of the DNA of the present invention present in the coding strand in a cell. The DNA may be any DNA that encodes the polynucleotide or RNA according to the present invention, and is designed so that the transcription start point (so-called +1 site) is a purine base (G or A). It may be used as a double-stranded DNA comprising the present DNA and its complementary strand, or only the complementary strand of the present DNA can be used as a template DNA.
[0027]
Intracellular transcription of the polynucleotide or RNA according to the present invention is performed by inserting the DNA according to the present invention into a vector and transfecting the obtained vector into the cell by a conventional method (Non-patent Document 10 etc.). Can be achieved.
[0028]
Vector DNA is appropriately selected depending on the type of cells to be introduced. The vector DNA may be one in which a part of the DNA other than the part necessary for growth is missing in addition to the one extracted from naturally occurring ones. For example, vectors derived from chromosomes, episomes and viruses such as bacterial plasmids, bacteriophages, transposons, yeast episomes, insertion elements, yeast chromosome elements, such as baculovirus, papovavirus, SV40, vaccinia virus, adenovirus, Examples include vectors derived from viruses such as fowlpox virus, pseudorabies virus and retrovirus, and vectors in combination thereof, such as vectors derived from plasmid and bacteriophage genetic elements, such as cosmids and phagemids. A recombinant vector is composed of a gene sequence carrying a target gene sequence and information on replication and control, such as a promoter, a ribosome binding site, a terminator, a signal sequence, an enhancer, etc., and these are combined by a method known per se. Make it. A method known per se can be applied as a method for incorporating a target gene sequence into vector DNA. For example, a method is used in which an appropriate restriction enzyme is selected and treated to cleave DNA at a specific site, and then mixed with DNA used as a similarly treated vector and religated by ligase. Alternatively, a desired recombinant vector can also be obtained by ligating a suitable linker to the gene sequence of interest and inserting it into a multicloning site of a vector suitable for the purpose.
[0029]
More specifically, the DNA that becomes the coding strand of the polynucleotide according to the present invention is, for example, DNA selected from the following group, and the transcript has an RNA interference effect on the human telomerase reverse transcriptase gene. (I) DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 8 DNA which is bound, 3 'end of DNA consisting of the base sequence described in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing and 5' end of DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 Or a DNA in which the 3 ′ end of DNA consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 are linked; (ii) Sequence Listing DNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 7, DNA comprising 4 to 23 nucleotides, and DNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 8, wherein The 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence described in 7 is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and the sequence DNA bound to the 3 ′ end of DNA consisting of the base sequence shown in No. 8; (iii) DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID No. 9 of the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and sequence DNA comprising a DNA comprising the base sequence described in No. 10 and having no 3 ′ ends and 4 DNAs comprising the base sequence shown in SEQ ID No. 9 in the sequence listing It binds to the 5 ′ end of DNA consisting of 23 nucleotides, and further binds to the 3 ′ end of DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and the 5 ′ end of DNA consisting of the base sequence described in SEQ ID NO: 10. (Iv) DNA consisting of a DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 9 in the sequence listing, a DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and a DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 are linked; (v) the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing A DNA comprising 4 to 23 nucleotides of DNA and a DNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 12, wherein the DNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing A DNA comprising a 3 'end and a 5' end of DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further comprising a 3 'end of DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 12. And (vi) DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12. A DNA obtained by binding DNA, the 5 ′ end of the DNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing and 4 to 23 nucleosides. Becomes' combines the terminal further four to 23 of DNA 5 consisting of the nucleotide 3 'of the DNA from de third DNA consisting terminus nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 12' terminus is bound DNA.
[0030]
When the DNA serving as the coding strand of the polynucleotide according to the present invention is incorporated into a vector of a type that is transcribed by RNA polymerase III, such as U6 or H1, 5 bases at the 3 ′ end on the side to be transcribed in order to terminate transcription It is preferable to bind poly (T) of 6 bases. Furthermore, depending on the vector, it is preferable to use a further base sequence, for example, a base sequence such as GGAA, after poly (T).
[0031]
Inhibition of telomerase using DNA that is the coding strand of the polynucleotide according to the present invention can be achieved by introducing the DNA into cells. About introduction | transduction of this DNA to the cell, it can carry out with a pSHAG-1 vector system with reference to a previous report (nonpatent literature 8), for example. Alternatively, pSilencer series (Ambion), pSUPER (OligoEngine), retrovirus pSUPER-Retro (OligoEngine), and the like can be used, but are not limited thereto.
[0032]
As a DNA encoding the RNA according to the present invention, for example, a DNA having the base sequence described in any one of SEQ ID NOs: 7 to 12 in the sequence listing can be preferably exemplified.
[0033]
Inhibition of telomerase using DNA encoding RNA according to the present invention is carried out by dividing a vector into which the DNA is inserted and a vector into which a DNA encoding an RNA having a base sequence complementary to the base sequence of the RNA is inserted. We believe that this can be achieved by two RNAs that are transcribed in the cell by transfection into the cell. Alternatively, a similar effect can be obtained by using a vector in which a DNA encoding the RNA according to the present invention and a DNA encoding an RNA comprising a base sequence complementary to the base sequence of the RNA are inserted.
[0034]
Thus, the above DNA and a vector containing the DNA can also be used for inhibition of telomerase, and these are also included in the scope of the present invention.
[0035]
Since the double-stranded polynucleotide and polynucleotide according to the present invention can destroy hTERT mRNA by RNA interference, in the present invention, at least one of the above-mentioned double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA and vector is used. It is possible to provide a telomerase reverse transcriptase gene expression inhibitor comprising using a telomerase reverse transcriptase gene expression inhibitor and at least one of them.
[0036]
In the present invention, a telomerase inhibitor comprising at least one of the above double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA and vector, and a telomerase inhibition method comprising using at least one of them Can be provided.
[0037]
Furthermore, the double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA and vector according to the present invention are medicaments based on inhibiting telomerase, preferably antitumor agents, more preferably active ingredients of medicaments for the treatment of malignant tumors. Useful as. Confirmation of the telomerase inhibitory action includes, for example, a trap method (TRAP method: Non-Patent Document 14), a direct telomerase assay (Direct Telomerase assay: Non-Patent Document 15), a stretch PCR assay (Stretch PCR assay: Non-Patent Document 16), and hybridization. It can be performed by a method such as a protection assay (Hybridization protection assay: Non-patent document 17), a TRE assay (Non-patent document 18), a rapid direct telomerase assay (Non-patent document 19), or the like. Alternatively, it can be confirmed according to the method of Paddyson et al. (Non-Patent Document 8) or the method specifically described in the examples of the present specification.
[0038]
The medicament according to the present invention may be a medicament containing an effective amount of at least one of the above-mentioned double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA and vector according to the present invention. It is preferable to produce a pharmaceutical composition using the above pharmaceutical carrier or excipient. Such carriers include, but are not limited to, saline, buffered saline, dextrose, water, glycerol, and mixtures thereof.
[0039]
The pharmaceutical composition according to the present invention can be used as an agent for preventing and / or treating a disease based on the action of telomerase. Moreover, it can use for the prevention method and / or treatment method of the said disease. Examples of diseases based on the action of telomerase include cancer diseases.
[0040]
Since the expression of telomerase is confirmed in the majority of tumors regardless of the type of tumor, the pharmaceutical composition according to the present invention is considered to be effective in inhibiting the growth of various types of cancer cells. Therefore, when the pharmaceutical composition according to the present invention is used for cancer diseases, the type of tumor to be treated is not particularly limited, and can be applied to either solid tumors or non-solid tumors. The type of solid tumor or non-solid tumor is not particularly limited, and can be applied to all types of tumors expressing telomerase. For example, stomach cancer, esophageal cancer, colon cancer, small intestine cancer, duodenal cancer, lung cancer, liver cancer, gallbladder cancer, pancreatic cancer, kidney cancer, bladder cancer, oral cancer, bone cancer, skin cancer, breast cancer, uterine cancer, prostate cancer, Examples include solid tumors such as brain tumors and neuroblastomas, and non-solid tumors such as leukemias and malignant lymphomas, but the application target of the pharmaceutical composition according to the present invention is not limited to these diseases.
[0041]
On the other hand, telomerase is hardly expressed in normal somatic cells except germ cells. Furthermore, since siRNA and shRNA act only on mRNA, it is considered that genomic genes are not affected at all. From these, it is considered that the medicament and the pharmaceutical composition according to the present invention have few side effects, and are also useful from this viewpoint.
[0042]
The required dose range is not particularly limited, but the effectiveness of the double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA and vector according to the present invention, dosage form, type of disease, nature of the subject (weight, age, medical condition and other) It is desirable to select as appropriate based on the use of medicine, etc.) and the judgment of the doctor in charge. Specifically, an appropriate dose is preferably in the range of, for example, 0.1 μg to 100 μg per kg of the subject's body weight. However, these dose modifications can be made using general routine experimentation for optimization well known in the art. The above dose can be divided into 1 to 4 times per day, and may be administered intermittently at a rate of once every several days or weeks.
[0043]
What is necessary is just to select a prescription suitable for a dosage form, and what is necessary is just to use this prescription well-known to those skilled in the art. Also, when formulated, these may be used alone or in combination with other compounds or medicaments required for treatment. For example, you may mix | blend the active ingredient of the other telomerase inhibitor or the medicine for antitumors.
[0044]
The double-stranded polynucleotide, polynucleotide, DNA, vector and pharmaceutical composition according to the present invention can be preferably used as a gene therapy agent. In this case, either a non-viral transfection method in which at least one of the double-stranded polynucleotide, polynucleotide and DNA according to the present invention is directly administered by injection or a transfection method using a viral vector is applied. can do.
[0045]
In the non-viral transfection method, in addition to a method in which at least one of the double-stranded polynucleotide, polynucleotide and DNA according to the present invention is directly administered by injection, these are applied to phospholipid vesicles such as liposomes. A method of encapsulating and administering the liposomes is recommended. As the liposome, it is more preferable to use a cationic liposome.
[0046]
In the transfection method using a viral vector, the vector to be used for transfection by incorporating the double-stranded polynucleotide, polynucleotide, or DNA according to the present invention is preferably a retroviral vector, an adenoviral vector, an adeno-associated virus. Examples include vectors, DNA virus vectors such as vaccinia virus vectors, and RNA virus vectors. Efficient administration is possible by using these viral vectors. Furthermore, also in the transfection method using a viral vector, a method of encapsulating the vector in a liposome and administering the liposome is recommended. As the liposome, it is more preferable to use a cationic liposome.
[0047]
The administration form can be selected from systemic administration or local administration. In this case, an appropriate dosage form is selected according to the disease, symptoms and the like. For example, in addition to normal intravenous administration and intraarterial administration, administration can also be performed subcutaneously, intradermally, intramuscularly, or the like. When used for cancer diseases, it is preferable to administer directly to the tumor.
[0048]
The pharmaceutical form can be selected according to the administration form, and when used as a gene therapy agent, it is generally preferable to prepare it as an injection, a drip infusion, or a liposome preparation. In addition, inclusions such as cyclodextrins, solutions, suspensions, fat emulsions, powders, ointments, creams, transdermal absorption agents, transmucosal absorption pills, tablets, capsules, granules, fine granules Preparation of suppositories, suppositories, inhalants, eye drops, ear drops and the like is also possible. However, the pharmaceutical form according to the present invention is not limited thereto.
[0049]
In formulation, an appropriate formulation additive can be used according to the form, and formulation can be made according to a conventional method.
[0050]
Liposomeization, for example, to a solution in which phospholipid is dissolved in an organic solvent (such as chloroform), after adding a solution in which the target substance is dissolved in the solvent, the solvent is distilled off, and a phosphate buffer is added thereto, After shaking, sonication and centrifugation, the supernatant can be filtered and collected.
[0051]
For cyclodextrin inclusion, for example, a solution in which cyclodextrin is heated and dissolved in water or the like is added to a solution in which the target substance is dissolved in a solvent, and then cooled and the deposited precipitate is filtered and sterilized and dried. Can be performed. At this time, the cyclodextrin used may be appropriately selected from cyclodextrins (α, β, γ types) having different pore diameters according to the size of the substance.
[0052]
Solutions for injection can be prepared using a carrier comprising a salt solution, a glucose solution, or a mixture of saline and glucose solution.
[0053]
The suspension can be produced using water, sugars such as sucrose, sorbitol and fructose, glycols such as polyethylene glycol, and oils.
[0054]
For fat emulsification, for example, the desired substance, oil components (vegetable oils such as soybean oil, sesame oil, olive oil, etc., MCT, etc.), emulsifiers (phospholipids, etc.), etc. are mixed and heated to form a solution, and then the required amount of water And emulsifying and homogenizing using an emulsifier (homogenizer, such as a high-pressure jet type or an ultrasonic type). It can also be lyophilized. When emulsifying fat, an emulsification aid may be added. Examples of the emulsification aid include glycerin and saccharides (eg, glucose, sorbitol, fructose, etc.).
[0055]
About powders, pills, capsules, tablets, granules, fine granules, drops, suppositories, inhalants, eye drops, ear drops, ointments, creams, transdermal absorption agents, transmucosal absorption agents, etc. Can also be prepared by commonly used methods.
[0056]
The present invention further provides a method for identifying a double-stranded polynucleotide that inhibits telomerase. The identification method according to the present invention uses a cell that does not express the hTERT gene but expresses the hTR gene (SEQ ID NO: 16), or a cell that does not express both the hTERT gene and the hTR gene. One feature is that a double-stranded polynucleotide as a test substance is transfected together with an hTERT gene expression vector and an hTR gene expression vector, and then telomerase activity is measured. Examples of cells that do not express the hTERT gene but express the hTR gene include human osteosarcoma-derived Saos-2 cells, but the cells that can be used in the identification method according to the present invention are limited to this. There is no. When cells that do not express the hTERT gene but express the hTR gene are used, the hTR gene expression vector need not be introduced, but preferably the hTR gene expression vector is also introduced. The introduction ratio of the hTERT gene expression vector to the hTR gene expression vector is preferably 1: 0.01 to 1:10. The introduction ratio varies depending on the cell to be used, and a more appropriate introduction ratio can be determined by experiment and used. Transfection can be performed by a conventional transfection method (Non-patent Document 10, etc.), but preferably by lipofection. Lipofection can be performed by using a commercially available reagent such as lipofectin, lipofectamine, cellfectin, DMRIE-C or superfect, but it is preferable to use cationic liposomes. Examples of the cationic liposome include lipofectamine, lipofectamine 2000, and oligofectamine.
[0057]
Duplicate test substance with hTERT gene expression vector and hTR gene expression vector in cells that do not express hTERT gene but express hTR gene, or cells that do not express both hTERT gene and hTR gene In such a measurement system constructed by transfection of a strand polynucleotide, only the cell into which the hTERT gene has been introduced exhibits telomerase activity, and it is very likely that the double-stranded polynucleotide has also been introduced into the cell. Therefore, the effect of the double-stranded polynucleotide can be evaluated without much influence of transfection efficiency. The hTR gene and hTERT gene expression vectors may be prepared by inserting hTERT cDNA (SEQ ID NO: 13) and hTR cDNA (SEQ ID NO: 16) into a commonly used mammalian gene expression vector, respectively.
[0058]
A double-stranded polynucleotide as a test substance is selected based on the nucleotide sequence of the hTERT gene, a region containing a sequence specific to RNA having an RNA interference effect, designed from the sequence of the region, and known nucleotide synthesis It can be produced by a method. The sequence of the hTERT gene is the sequence described in SEQ ID NO: 13 in the sequence listing. Sequences unique to RNA having RNA interference effects are already widely known. For example, in the region starting with AA or CA, the GC content is 30% to 70%, preferably 50%. Further, a sequence in which the bias of each base or the sequence in which G or C is continuous is as small as possible is preferable.
[0059]
In the identification method according to the present invention, a desired double-stranded polynucleotide is obtained by selecting a double-stranded polynucleotide having a reduced telomerase activity compared to when the double-stranded polynucleotide is not transfected. can do. The telomerase activity is measured, for example, by the trap method (Non-patent document 14), direct telomerase assay (Non-patent document 15), stretch PCR assay (Non-patent document 16), hybridization protection assay (Non-patent document 17), TRE assay ( Non-patent document 18), rapid direct telomerase assay (non-patent document 19) and the like.
[0060]
Any of the double-stranded polynucleotides, polynucleotides, DNAs, and vectors according to the present invention can be used alone as a reagent. For example, it can be used as a reagent for inhibiting telomerase. The reagent is useful for basic research on the mechanism of cell proliferation and aging involving telomerase, diseases based on the action of telomerase, and the like. When these are reagents, they may contain substances such as buffers, salts, stabilizers, and / or preservatives. In formulating, a known formulating means corresponding to each property may be introduced. The present invention also provides a reagent kit comprising one or more containers filled with one or more of these. These reagents and reagent kits can be used for diagnosis of diseases based on the action of telomerase. For example, if cell death is observed when cancer cells are collected from a cancer patient, cultured and repeatedly treated with a kit containing a double-stranded polynucleotide, the telomerase inhibitor is determined to be an effective patient. Can do. They can also be used as positive controls in the identification method according to the invention.
[0061]
【Example】
EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples, but the present invention is not limited to the following examples.
[0062]
[Example 1]
The double-stranded polynucleotide was designed based on the base sequence of the hTERT gene (SEQ ID NO: 13). First, the base sequence of the sense RNA was designed by selecting a sequence having as few biases as possible from the portion starting with AA or CA in the base sequence of the gene and having a sequence in which G or C is continuous. Moreover, antisense RNA which consists of a base sequence complementary to the base sequence of sense RNA was designed. Then, for the purpose of protecting the double-stranded polynucleotide from nuclease, a sense polynucleotide and an antisense polynucleotide in which an overhang sequence composed of two deoxythymidylates is bound to the 3 ′ ends of the sense RNA and the antisense RNA, respectively. Nucleotides were designed. Both the designed sense and antisense polynucleotides were synthesized by an RNA synthesizer.
[0063]
A double-stranded polynucleotide was prepared by annealing a sense polynucleotide and an antisense polynucleotide. First, each sample was diluted to 50 μM (50 pmol / μl), and then 30 μl of each sample was mixed with 15 μl of 5 × annealing buffer (500 mM potassium acetate, 150 mM HEPES-KOH pH 7.4, 10 mM magnesium acetate) (total amount 75 μl). Subsequently, the mixed solution was heated at 90 ° C. for 1 minute, and allowed to stand at 37 ° C. for 60 minutes after centrifugation. By this operation, the polynucleotide formed a double strand, and the final concentration was 20 μM (20 pmol / μl).
[0064]
An example of the prepared double-stranded polynucleotide is shown in FIG. TERT02 is a double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide in which two deoxythymidylic acids are bound to each 3 ′ end of two RNAs comprising the respective base sequences described in SEQ ID NOs: 1 and 2. TERT07 is a double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide in which two deoxythymidylic acids are bound to each 3 ′ end of two RNAs comprising the respective base sequences described in SEQ ID NOs: 3 and 4. TERT08 is a double-stranded polynucleotide consisting of a polynucleotide in which two deoxythymidylic acids are bound to each 3 ′ end of two RNAs consisting of the respective base sequences described in SEQ ID NOs: 5 and 6. RNAs comprising the nucleotide sequences set forth in SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 5 are the 1042-1060th, 1789-1807th and 1812-1830th portions of the hTERT cDNA sequence (SEQ ID NO: 13), respectively. RNA designed from sequence. The RNA consisting of the base sequences shown in SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 4 and SEQ ID NO: 6 is an RNA consisting of a base sequence complementary to the base sequences shown in SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 5, respectively. is there.
[0065]
[Example 2]
In order to select a double-stranded polynucleotide exhibiting a telomerase inhibitory action from the double-stranded polynucleotide prepared in Example 1, the human osteosarcoma-derived Saos expressing only the hTR gene but not the hTERT gene -2 cells were used to transfect a double-stranded polynucleotide together with an hTERT gene expression vector and an hTR gene expression vector, and a measurement system for measuring telomerase activity was constructed. Using this measurement system, a double-stranded polynucleotide exhibiting a telomerase inhibitory action was selected.
[0066]
First, Saos-2 cells were 2 × 10 5 The cell / ml was prepared, seeded at 0.5 ml per well in a 24-well plate, and cultured at 37 ° C. overnight (about 12 hours). The duplex polynucleotide along with hTERT gene expression vector and hTR gene expression vector was then mixed with 2.5 μl per well of Lipofectamine 2000 (Invitrogen) in 0.1 ml of serum-free medium to transfect the cells did. Cells were trypsinized 24 hours after transfection and collected by washing once with phosphate buffered saline (PBS). As a negative target, instead of the double-stranded polynucleotide, a scrambled double-stranded polynucleotide having no homology with a known gene (3 ′ of each of the two RNAs comprising the respective base sequences described in SEQ ID NOs: 14 and 15) The cells were treated in the same manner using a double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide having two deoxythymidylic acids bound to the ends.
[0067]
Telomerase activity in the collected cells was measured using TRAPze XL Kit (Oncor) according to the instruction manual of the kit. First, the cells were suspended in 120 μl of 1 × CHAPS lysis buffer attached to the kit, incubated on ice for 20 minutes, centrifuged at 12,000 rpm for 20 minutes at 4 ° C., and the supernatant was collected. After quantifying the protein concentration in the supernatant, it was added to the reaction solution at 200 ng per reaction, and an oligo DNA extension reaction by telomerase was carried out at 30 ° C. for 30 minutes. Then, PCR reaction was performed with the primer pair contained in the reaction solution, the telomerase reaction product was amplified, the ratio with the internal standard was calculated, and the intensity of telomerase activity was measured. Detection was carried out by measuring the fluorescence intensity of fluorescein (index of telomerase reaction product) labeled with the primer and sulforhodamine (index of internal standard) using a spectrofluorometer.
[0068]
The above study was performed using 0.5 μg / well hTERT gene expression vector, 0.54 μg / well hTR gene expression vector, and 20 pmol / well or 2 pmol / well double-stranded polynucleotide. Among the strand polynucleotides, TERT02, TERT07 and TERT08 showed a telomerase inhibitory effect (FIG. 2).
[0069]
Furthermore, for TERT02 and TERT08, a 0.125 μg / well hTERT gene expression vector and a 0.75 μg / well hTR gene expression vector were used, and the double-stranded polynucleotide concentration ranged from 20 pmol / well to 0.2 pmol / well. In the same manner, it was revealed that telomerase was inhibited depending on the double-stranded polynucleotide concentration (FIG. 3).
[0070]
On the other hand, in the sample in which the enzyme activity of telomerase was deactivated by heating, no telomerase activity was detected even without adding double-stranded polynucleotide. It was confirmed that this was reflected (FIGS. 2 and 3).
[0071]
【The invention's effect】
According to the present invention, inhibition of telomerase can be achieved by an RNA interference effect on human telomerase reverse transcriptase gene.
[0072]
The present invention can specifically inhibit the expression of the human telomerase reverse transcriptase gene at a low concentration and with a high probability as compared with other gene expression inhibition methods such as the antisense method and the ribozyme method, thereby inhibiting telomerase. Can do. Moreover, since the double-stranded polynucleotide and the polynucleotide according to the present invention are short-chain polynucleotides, they can be synthesized easily and inexpensively.
[0073]
According to the present invention, it is possible to prevent and / or treat diseases based on the action of telomerase. Since telomerase is expressed in most cancer cells regardless of the type of cancer and is hardly expressed in normal somatic cells other than germ cells, for example, the present invention prevents and / or treats various types of cancer diseases. It is considered effective.
[0074]
As described above, the present invention is useful for basic research on the mechanism of cell proliferation and senescence involving telomerase and diseases based on the action of telomerase. Furthermore, it is very useful for the prevention and / or treatment of diseases based on the action of telomerase, such as cancer diseases.
[0075]
[Sequence Listing Free Text]
SEQ ID NO: 1: RNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13).
SEQ ID NO: 2: Designed RNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 1.
SEQ ID NO: 3: RNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13)
SEQ ID NO: 4: Designed RNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 3.
SEQ ID NO: 5: RNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13)
SEQ ID NO: 6: Designed RNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 5.
SEQ ID NO: 7: DNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13).
SEQ ID NO: 8: designed DNA comprising a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 7
SEQ ID NO: 9: DNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13)
SEQ ID NO: 10: Designed DNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 9
SEQ ID NO: 11: DNA designed based on the sequence of human telomerase reverse transcriptase gene (SEQ ID NO: 13)
SEQ ID NO: 12: designed DNA comprising a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 11
SEQ ID NO: 14: Designed RNA consisting of a base sequence that is not homologous to all genes.
SEQ ID NO: 15: designed RNA comprising a base sequence complementary to the base sequence described in SEQ ID NO: 14
[0076]
[Sequence Listing]
Figure 2004350607
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[Brief description of the drawings]
FIG. 1 shows the sequence of a double-stranded polynucleotide according to the present invention.
FIG. 2 shows that three types of double-stranded polynucleotides, TERT02, TERT07 and TERT08, inhibited telomerase in Saos-2 cells transfected with the double-stranded polynucleotide together with hTERT gene and hTR gene, respectively. FIG. Telomerase activity is the ratio of the fluorescence intensity of fluorescein (subtracting the background), which is an index of the telomere sequence added by telomerase, to the fluorescence intensity of sulforhodamine, which is an internal standard in telomerase activity measurement (subtracting the background) (Δ FL / ΔR). In the figure, DNA (-) and RNA (-) indicate telomerase activity when no hTERT gene and double-stranded polynucleotide are added, respectively. RNA (-) Heat indicates telomerase activity when a sample is heated to inactivate the enzyme activity of telomerase without adding a double-stranded polynucleotide. A scramble is a double-stranded polynucleotide that has no homology with a known gene and was used as a negative target.
FIG. 3 shows the concentration of telomerase in double-stranded polynucleotides in Saos-2 cells in which two double-stranded polynucleotides, TERT02 and TERT08, were transfected with the double-stranded polynucleotide together with hTERT gene and hTR gene, respectively. It is a figure which shows having inhibited dependently. Telomerase activity is the ratio of the fluorescence intensity of fluorescein (subtracting the background), which is an index of the telomere sequence added by telomerase, to the fluorescence intensity of sulforhodamine, which is an internal standard in telomerase activity measurement (subtracting the background) (Δ FL / ΔR). In the figure, RNA (-) indicates telomerase activity when no hTERT gene and double-stranded polynucleotide are added. RNA (-) Heat indicates telomerase activity when a sample is heated to inactivate the enzyme activity of telomerase without adding a double-stranded polynucleotide. A scramble is a double-stranded polynucleotide that has no homology with a known gene and was used as a negative target.

Claims (27)

配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNA。RNA comprising the base sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 6 in the Sequence Listing. 配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドA)であって、配列表の配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドA。A polynucleotide (polynucleotide A) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridization with a polynucleotide comprising 1 to several nucleotides bound to the RNA having the base sequence described in 2 at the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide A, which has an RNA interference effect on 配列表の配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドB)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドB。A polynucleotide (polynucleotide B) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and the sequence number in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA comprising the nucleotide sequence of 1 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide B, which has an RNA interference effect on 配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドC)であって、配列表の配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドC。A polynucleotide (polynucleotide C) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA having the base sequence described in 4 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide C, which has an RNA interference effect on 配列表の配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドD)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドD。A polynucleotide (polynucleotide D) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridization with a polynucleotide comprising 1 to several nucleotides bonded to the RNA having the base sequence described in 3 at the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide D characterized by having an RNA interference effect on 配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドE)であって、配列表の配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドE。A polynucleotide (polynucleotide E) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA comprising the nucleotide sequence of claim 6 with a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide E, which has an RNA interference effect on 配列表の配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドF)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドとハイブリダイゼーションさせて得られる二重鎖ポリヌクレオチドがヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチドF。A polynucleotide (polynucleotide F) obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA, and comprising SEQ ID NO: in the sequence listing A double-stranded polynucleotide obtained by hybridizing an RNA having the base sequence of 5 to a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the 3 ′ end of the RNA is a human telomerase reverse transcriptase gene Polynucleotide F, which has an RNA interference effect on 配列表の配列番号1から6のいずれか1つに記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドA polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylates to the RNA having the nucleotide sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1 to 6 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA 下記の群から選ばれるいずれか1つの二重鎖ポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とする二重鎖ポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
(ii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
および
(iii)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に1個ないし数個のヌクレオチドを結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド。
Any one double-stranded polynucleotide selected from the following group, wherein the double-stranded polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA;
(Ii) consisting of a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA comprising the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA and the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide formed by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA;
And (iii) a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing at the 3 ′ end of the RNA and the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6. A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding one or several nucleotides to the RNA at the 3 ′ end of the RNA.
下記の群から選ばれるいずれか1つの二重鎖ポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
(ii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド、
および
(iii)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドと配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAにそのRNAの3’末端に2つのデオキシチミジル酸を結合させてなるポリヌクレオチドからなる二重鎖ポリヌクレオチド。
Any one double-stranded polynucleotide selected from the group below;
(I) a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the RNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing at the 3 'end of the RNA and the RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA;
(Ii) an RNA comprising a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and an RNA comprising a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 and a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA; A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA;
And (iii) an RNA comprising a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and a polynucleotide comprising a base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 and a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA. A double-stranded polynucleotide comprising a polynucleotide obtained by binding two deoxythymidylic acids to the 3 ′ end of the RNA;
下記の群から選ばれるいずれか1つのポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドG)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドG、
(ii)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドH)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドH、
(iii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドI)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドI、
(iv)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドJ)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドJ、
(v)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドK)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドK、
および
(vi)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、ループ構造を形成するポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドL)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とループ構造を形成するポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらにループ構造を形成するポリヌクレオチドの5’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドL。
Any one polynucleotide selected from the group below, wherein the polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure and a polynucleotide (polynucleotide G) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 2 The 3 ′ end of the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 of the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure, and further the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure And a polynucleotide G in which the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2 is bound,
(Ii) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and a polynucleotide (polynucleotide H) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 2 The 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure by binding the 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 of the Sequence Listing to the 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure A polynucleotide H bound to the 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 2,
(Iii) a polynucleotide (polynucleotide I) obtained by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 The 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure is formed by binding the 3 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 of the Sequence Listing to the 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure. A polynucleotide I bound to the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4,
(Iv) an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and a polynucleotide (polynucleotide J) formed by binding an RNA comprising the base sequence described in SEQ ID NO: 4 The 5 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure are combined, and the 5 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure. And polynucleotide J in which the 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 is bound,
(V) a polynucleotide (polynucleotide K) formed by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 And the 3 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure by binding the 3 ′ end of the RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 of the sequence listing to the 5 ′ end of the polynucleotide that forms the loop structure. A polynucleotide K bound to the 5 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6,
And (vi) a polynucleotide formed by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, a polynucleotide forming a loop structure, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 (polynucleotide L) The 5 ′ end of the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the polynucleotide forming the loop structure, and further 5 ′ of the polynucleotide forming the loop structure. A polynucleotide L in which an end and the 3 ′ end of RNA consisting of the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked.
下記の群から選ばれるいずれか1つのポリヌクレオチドであって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするポリヌクレオチド;
(i)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドM)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドM、
(ii)配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドN)であって、配列表の配列番号1に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号2に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドN、
(iii)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドO)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドO、
(iv)配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドP)であって、配列表の配列番号3に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号4に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドP、
(v)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドQ)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端とが結合したポリヌクレオチドQ、
および
(vi)配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドおよび配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAが結合してなるポリヌクレオチド(ポリヌクレオチドR)であって、配列表の配列番号5に記載の塩基配列からなるRNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるポリヌクレオチドの5’末端と配列番号6に記載の塩基配列からなるRNAの3’末端とが結合したポリヌクレオチドR。
Any one polynucleotide selected from the group below, wherein the polynucleotide has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 Nucleotide M), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to A polynucleotide M, wherein the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 are linked;
(Ii) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 (polynucleotide) Nucleotide 5), the 5 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing and the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, A polynucleotide N in which the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 2 are linked;
(Iii) A polynucleotide comprising a combination of RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and RNA comprising the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 4 Nucleotide 3), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing is linked to the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to A polynucleotide O in which the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 are linked;
(Iv) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 Nucleotide P), wherein the 5 ′ end of the RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and the 3 ′ end of the polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides are combined, and further 4 to A polynucleotide P in which the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 4 are linked;
(V) a polynucleotide formed by binding of RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, and RNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 Nucleotide 3), the 3 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and the 5 ′ end of a polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides, A polynucleotide Q in which the 3 ′ end of a polynucleotide consisting of 23 nucleotides and the 5 ′ end of an RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked;
And (vi) a polynucleotide formed by binding an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, a polynucleotide comprising 4 to 23 nucleotides, and an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 ( Polynucleotide R), the 5 ′ end of RNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and the 3 ′ end of polynucleotide consisting of 4 to 23 nucleotides are bound, and 4 more Or a polynucleotide R in which the 5 ′ end of a polynucleotide comprising 23 nucleotides and the 3 ′ end of an RNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 6 are linked.
配列表の配列番号7から12のいずれか1つに記載の塩基配列からなるDNA。DNA comprising the base sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 7 to 12 in the Sequence Listing. 下記の群から選ばれるいずれか1つのDNAであって、その転写物がヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子に対してRNA干渉効果を有することを特徴とするDNA;
(i)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA1)であって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA1、
(ii)配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA2)であって、配列表の配列番号7に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号8に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA2、
(iii)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA3)であって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA3、
(iv)配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA4)であって、配列表の配列番号9に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号10に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA4、
(v)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA5)であって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端とが結合したDNA5、
および
(vi)配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNA、4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAおよび配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAが結合してなるDNA(DNA6)であって、配列表の配列番号11に記載の塩基配列からなるDNAの5’末端と4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの3’末端とが結合し、さらに4個ないし23個のヌクレオチドからなるDNAの5’末端と配列番号12に記載の塩基配列からなるDNAの3’末端とが結合したDNA6。
Any one DNA selected from the following group, wherein the transcript has an RNA interference effect on a human telomerase reverse transcriptase gene;
(I) DNA (DNA1) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 of the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 8 The 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing and the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides are combined, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 1 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 are bound,
(Ii) DNA (DNA2) obtained by binding DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 7 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 7 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 2 in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 8 are bound,
(Iii) DNA (DNA3) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 10 And the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 of the Sequence Listing is linked to the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further comprising 4 to 23 nucleotides. DNA 3 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 are bound,
(Iv) DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 9 in the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides and DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 (DNA4) And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 9 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 4 in which the 5 ′ end of the DNA and the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 10 are bound,
(V) DNA (DNA5) obtained by binding DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the sequence listing, DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 12 The 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the sequence listing and the 5 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides are combined, and further from 4 to 23 nucleotides. DNA 5 in which the 3 ′ end of the DNA and the 5 ′ end of the DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12 are bound,
And (vi) DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing, DNA comprising 4 to 23 nucleotides, and DNA comprising the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12 (DNA6) And the 5 ′ end of the DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the Sequence Listing is linked to the 3 ′ end of the DNA consisting of 4 to 23 nucleotides, and further 4 to 23 nucleotides. DNA 6 in which the 5 ′ end of the DNA consisting of is bound to the 3 ′ end of the DNA consisting of the base sequence set forth in SEQ ID NO: 12.
請求項13または14に記載のDNAを含むベクター。A vector comprising the DNA according to claim 13 or 14. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害剤。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, And a telomerase reverse transcriptase gene expression inhibitor comprising at least one of the vectors according to claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを含んでなるテロメレース阻害剤。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, And a telomerase inhibitor comprising at least one of the vectors of claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース逆転写酵素遺伝子の発現阻害方法。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, And a method for inhibiting the expression of a telomerase reverse transcriptase gene, wherein at least one of the vectors according to claim 15 is used. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とするテロメレース阻害方法。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, A method for inhibiting telomerase, comprising using at least one of the vectors according to claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを有効量含んでなる医薬組成物。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, And a pharmaceutical composition comprising an effective amount of at least one of the vectors of claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを有効量含んでなる癌疾患の防止剤および/または治療剤。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, A preventive and / or therapeutic agent for cancer diseases, comprising an effective amount of at least one of the vectors according to claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを用いることを特徴とする癌疾患の防止方法および/または治療方法。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, A method for preventing and / or treating a cancer disease, comprising using at least one of the vectors according to claim 15. 請求項9または10のいずれか1項に記載の二重鎖ポリヌクレオチド、請求項11または12のいずれか1項に記載のポリヌクレオチド、請求項13または14のいずれか1項に記載のDNA、および請求項15に記載のベクターのうちの少なくとも1つを含有することを特徴とする試薬キット。The double-stranded polynucleotide according to any one of claims 9 or 10, the polynucleotide according to any one of claims 11 or 12, the DNA according to any one of claims 13 or 14, A reagent kit comprising at least one of the vectors according to claim 15. テロメレース阻害作用を有する二重鎖ポリヌクレオチドの同定方法であって、ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子を発現していない細胞またはヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子およびヒトテロメレースRNA遺伝子を発現していない細胞を用い、該細胞にヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子発現ベクターおよびヒトテロメレースRNA遺伝子発現ベクターと共に被検物質である二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションし、ついで、テロメレース活性を測定し、二重鎖ポリヌクレオチドをトランスフェクションしなかったときと比較してテロメレース活性を低下させた二重鎖ポリヌクレオチドを選択することを特徴とする同定方法。A method for identifying a double-stranded polynucleotide having a telomerase inhibitory action, wherein a cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene or a cell that does not express a human telomerase reverse transcriptase gene and a human telomerase RNA gene is used, The cell is transfected with a double-stranded polynucleotide as a test substance together with a human telomerase reverse transcriptase gene expression vector and a human telomerase RNA gene expression vector, and then the telomerase activity is measured and the double-stranded polynucleotide is transfected. An identification method comprising selecting a double-stranded polynucleotide having reduced telomerase activity as compared to when not. ヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子を発現していない細胞またはヒトテロメレース逆転写酵素遺伝子およびヒトテロメレースRNA遺伝子を発現していない細胞が、ヒト骨肉腫由来Saos−2細胞である請求項24に記載の同定方法。The identification method according to claim 24, wherein the cell not expressing the human telomerase reverse transcriptase gene or the cell not expressing the human telomerase reverse transcriptase gene and the human telomerase RNA gene is a human osteosarcoma-derived Saos-2 cell. . トランスフェクションがリポフェクション法である請求項24または25に記載の同定方法。The identification method according to claim 24 or 25, wherein the transfection is a lipofection method. リポフェクション法が、カチオン性リポソームを用いたリポフェクション法である請求項26に記載の同定方法。The identification method according to claim 26, wherein the lipofection method is a lipofection method using cationic liposomes.
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