JP2004144636A

JP2004144636A - Blood specimen carrier formation

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Publication number: JP2004144636A
Application number: JP2002310693A
Authority: JP
Inventors: Minoru Hirata; 平田　稔; Masanori Oka; 岡　昌則; Tomoyuki Iwabori; 岩堀　友志
Original assignee: SRL Inc
Current assignee: SRL Inc
Priority date: 2002-10-25
Filing date: 2002-10-25
Publication date: 2004-05-20
Anticipated expiration: 2022-10-25
Also published as: JP4339570B2

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a blood specimen carrier formation showing excellent blood cell-serum separability and having no possibility of the occurrence of a problem to a human body regardless of its using method, by forming the blood specimen carrier formation having a specific form not only by selecting a blood carrier sheet comprising a specific material but also by combining two or more kinds of blood carrier sheets. <P>SOLUTION: This blood specimen carrier formation is constituted of a blood dropping sheet and a blood cell/serum separation sheet arranged on a support sheet, and a reagent such as a blocking agent is impregnated into the blood cell/serum separation sheet, to thereby acquire an excellent property/effect. <P>COPYRIGHT: (C)2004,JPO

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、少量の血液を臨床検査などのための検体として使用するための血液検体キャリアーシート構成体に関する。本発明は、さらに、該血液検体キャリアーシート構成体から溶出した検体試料を使用して測定を行うことを特徴とする血液検体測定方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
血液を検体として使用して、そこに含まれる成分を分析検査測定することは、例えば臨床医学、法医学、環境汚染のチェックあるいはそれらに関連したその他の領域といった分野で広く行われている。最近では、生活習慣病のチェック、例えば糖尿病、コレステロール値、肝機能、腎機能、痛風などに関連した検査を行い、病気の事前の予防や生活習慣の改善に資する目的で、簡単且つプライバシーを保護しながら、定常的に検査を行うことが求められている。しかしながら、通常、血液成分の検査をする場合には、医師又は看護婦等により上腕の静脈から注射器で３〜１０　ｍｌ　の血液を採取し（普通には、５　ｍｌの血液を採取する）、こうして採血された血液を遠心分離機を用いて処理して、検査材料である血清や血漿を得ていることから、このような採血法では、個人が簡単に採血するというわけにもいかず、必ず医療機関で医師や看護婦等により行う必要がある。さらに、注射器で採血する方法では、患者などの負担が大きく、より少量の血液を得るだけで済ます方法の開発が求められている。したがって、個人の責任で、ほんの少量の血液を簡便に採取しうる方法並びにそうした血液検体を使用しての検査方法の確立が求められている。
【０００３】
また、上記のような注射器を使用した採血法では得られたサンプルは液体であるため取り扱いが面倒であるし、その輸送にも特別な配慮が要求され、さらに一旦得られた血液を遠心分離機などを備えた専門の機関で処理するということも必要であり、さらに当該処理も場合によっては採血後迅速に行う必要があるため、そのための設備を備えたところでないと扱えないという問題もある。また、非常に多数の血液検体を扱う場合（定常的に検査を実施するなら、非常に多数の検体を同時に処理する必要が生じることになる）、こうした作業は、大変なものとなる。
従来、一部の血液検査の部門では、採血器ランセットを用いて指先から少量の血液を採取し、濾紙（フィルターマトリックスシート）に血液を染み込ませ、その染み込んだ部分から血液を溶出するなどして測定を行う試みがなされている。こうした従来の濾紙血を使用する検査では、血球（主に赤血球）を含んだ全血をそのまま測定に使用している。これは、濾紙に血液を染み込ませる方法では、取り扱う血液量は極めて少量とならざるを得ない（採血器ランセットを用いてのパーソナルな採血法では、各個人の慣れにより解決されるという期待もあるが、通常、一度に１〜３滴程度、多くても５滴程度の血液を得るのがせいぜいである）し、かつ血液中に含まれている血球（主に赤血球）、血餅などの固形成分を、その測定の前に分離するなどということは到底できず、それをそのまま測定系に存在せしめざるを得ないからである。
【０００４】
血液中に溶けている可溶性成分を検知・測定して、臨床上の情報を得ることが広く行われている。ところが、検体として得られた全血中には赤血球、白血球などの血球成分が含まれ、それらはそうした臨床検査において妨害物質となることから、全血を測定対象試料として使用するような検査用以外は一般的には採血したなら速やかに赤血球などの血球成分と血清成分又は血漿成分に分離することが必要である。また、血液は保存中に溶血を起こし、ヘモグロビンなどの有色物質が血中可溶性成分の測定の際の深刻な妨害物質となる。
微量の血液を臨床検査などの検体として使用することを目的として、ランセットなどを使用し、採血された一滴あるいは二滴といった微量の血液を血球と血清に分離する働きを有する濾紙に染み込ませて、検体血液のキャリアー機能と血清・血球分離機能を利用することが知られている（特許文献１、２及び３）。
【０００５】
【特許文献１】
特開平５−２０９８７７号公報
【特許文献２】
特開平１０−１３２８００号公報
【特許文献３】
特開２００１−２２１７９４号公報
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
採血器ランセットなどの採血器具を用いて指先などから少量の血液を採取する（パーソナル採血法）といった個人の責任で、ほんの少量の血液を簡便に採取し、こうして採取された少量の血液を使用して、生活習慣病のチェックなど広範囲に血液を検体として使用して検査・測定を行う手法の開発が求められている。
１滴とか２滴といったような少量の血液検体を用いる場合、従来の濾紙血を使用する手法では、全血での測定となり、血球成分の影響により、大部分の場合その測定をなすことが不可能であった。血球成分の影響を受け易い対象を目的として、普通の濾紙を使用した場合、そこに付着あるいは吸着させた血液の量は微量であり、当該濾紙から溶出した後に血清成分と血球成分などに分離するなどといった処理を行うことは不可能である。
【０００７】
これを解決するため、血球成分と血清あるいは血漿成分とを分離する働きを有する濾紙（フィルターマトリックスメディウムあるいはフィルターマトリックスシート）を利用する試みが提案されているが、微量の血液を検体として使用する場合において、該血液検体のキャリアーとして血球−血清分離シート（血球−血清分離濾紙；血球−血清分離メディウム又は血球−血清分離担体）を使用しても、血液の染み込みが悪くて、扱う血液が微量にも拘らずその表面の上を血液が流れてしまったりして効率よく分離ができなかったり、血液が該シートの中を均一に流れず、シート片の中央よりも縁の方が、血液の展開速度が速く、Ｖ字状の展開を示す。したがって、血球と血清とに分離された後のシート上の血球領域と血清領域との形状が複雑な形状をなすこととなり、該血球−血清分離シートを切り取るなどしてサンプリングする場合、例えば血清部分だけを採ろうとする場合、該血清領域のシート部分を得ることが困難であり、さらに十分量の血清検体を得ることも困難となるという問題がある。さらに、血球部分から分離した血清部分の、分離距離が小さく、血清の分離回収が必ずしも満足のいくものでなく、その結果、該血清中の成分などに関する検査測定が不正確となったり、測定自体が不可能となったり、サンプリング操作が複雑になったり困難となるという問題がある。上記問題は、扱う採取血液量が極端に微量のものであることに必然的に起因するものであり、従来この点を解決する指針は一切見当たらない。
【０００８】
微量の血液を臨床検査などのための検体として使用する目的の一つは、採血自体を個人が自己により簡単に行い、そして病院などの専門の施設に赴いて医師・看護人などの専門家による採血を経ずして、日常的に行いうることを可能にすることである。しかし、こうした被検者各人が自ら採血して、検体キャリアーのシートに血液を付着せしめる場合、一般的には、傷口から滲出した少量の血液を、該キャリアーシート面に該傷口を当てて接触せしめて血液を該キャリアーシートに付着させ移行せしめることがなされる。もしキャリアーシートの血液適用部位に人体に悪影響を及ぼすかもしれないような薬剤などが存在すると、傷口をキャリアーシート面に接触せしめた場合、当該薬剤が人体側に移行する恐れがあるという問題もある。さらに、材質によっては吸水性のフィルターマトリックスシート（一般には単に「濾紙」とも呼称される）から、血清などの検体試料を抽出するなどのサンプリングを行うと、クズなどが遊離して測定試料中に混入し、測定・検査の妨害になったりして正確な測定、迅速な測定に障害となることから、こうした問題のないものが求められている。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決すべく鋭意研究の結果、特定の材質からなる血液キャリアー用シートを選択するばかりでなく、少なくとも二種の血液キャリアー用シートを組み合わせて、特定の形態の血液検体キャリアー構成体とすることにより、優れた血球−血清分離能を示すと共に、人体に対してもその使用法如何に拘らず問題の発生の恐れのないものであることを見出し、本発明を完成させた。
【００１０】
本発明は、
〔１〕　極微量の血液を検体として使用する目的で運搬する場合に使用される血液検体キャリアー構成体であって、
（Ａ）　　　該キャリアー構成体は、支持体シート及び血液キャリアー用シートを組み合わせて構成されるものであり、該血液キャリアー用シートは繊維状マトリックスから構成されているもので、
（Ｂ）　　　該血液キャリアー用シートは、
（１）　長方形の形状を有しており、該長方形のシートの面の一か所に血液を付着せしめると横方向に液体が移動し、血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離して、血球成分を主に含む血球成分領域と血清成分あるいは血漿成分を主に含む可溶性血液成分領域とを少なくともその一部が空間的に区別可能な形態で形成することのできるもので、且つ、
（２）　該血液キャリアー用シートには、界面活性剤、ブロッキング剤及び蛋白安定化剤から成る群から選ばれたものが含ませてあるものであり、
（Ｃ）　　　支持体シートの上に上記（Ｂ）　のシートの順で配置されているものであることを特徴とする血液検体キャリアー構成体；
【００１１】
〔２〕　　上記〔１〕（Ｂ）　（２）　の界面活性剤、ブロッキング剤又は蛋白安定化剤が、Ｔｗｅｅｎ　２０、ＮＰ４０、Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ１００　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ａ０３　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｂ０３　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｄ０５　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｅ０２　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｇ０４　、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｊ０２　、Ｎ１０１、Ｎ１０２及びＨ１００などの親水性化合物から成る群から選ばれたものであることを特徴とする上記〔１〕記載の血液検体キャリアー構成体；
〔３〕　　上記〔１〕（Ｂ）　のシートが、界面活性剤、ブロッキング剤又は蛋白安定化剤などを適度な濃度に希釈した水溶液でもって該繊維状マトリックスから構成されているシートを含浸せしめた後乾燥させて得られたものであることを特徴とする上記〔１〕又は〔２〕記載の血液検体キャリアー構成体；
〔４〕　　上記〔１〕（Ｂ）　のシートが、約４　〜１０　ｍｍ　×　　約　４０　〜１２０　ｍｍであることを特徴とする上記〔１〕〜〔３〕のいずれか一記載の血液検体キャリアー構成体；
〔５〕　　上記〔１〕（Ｂ）　のシートが、ヘマセップ　Ｌ　（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ，　　商品名、米国ポール・コーポレーション社）　などのキャリアー用シートであることを特徴とする上記〔１〕〜〔４〕のいずれか一記載の血液検体キャリアー構成体；
〔６〕　　該キャリアー構成体が、支持体シート及び少なくとも二種の血液キャリアー用シートを組み合わせて構成されるものであり、
（ａ）　　　該血液キャリアー用シートの一方は、上記〔１〕（Ｂ）　記載のものであり、
（ｂ）　　　該血液キャリアー用シートの他方は、
（ｉ）　　採血される血液を適用する部位を構成するもの（血液滴下シートとも称する）であって、付着せしめられた血液を一時的に保持可能であり、且つ適用された血液を上記（ａ）　のシートに移動せしめることが可能であり、上記（ａ）　の長方形のシートの平面の少なくとも一か所に接して配置せしめられているもので、且つ、
（ｉｉ）　該血液キャリアー用シートは、実質的に血液接触に関し人体に対して非毒性のものであり、
（ｃ）　　　支持体シートの上に上記（ａ）　のシート、その上記（ａ）　のシートの上に上記（ｂ）　のシートの順で少なくとも部分的に配置されているものである
ことを特徴とする上記〔１〕記載の血液検体キャリアー構成体；
〔７〕　　上記〔６〕（ｂ）　のシートが、約４　〜１０　ｍｍ　×　　約４　〜１０　ｍｍ　であることを特徴とする上記〔６〕記載の血液検体キャリアー構成体；
【００１２】
〔８〕　　上記〔６〕（ｂ）　のシートの非毒性とは、界面活性剤、ブロッキング剤及び蛋白安定化剤などから成る群から選ばれたものが含まれていないことを意味するものであることを特徴とする上記〔６〕又は〔７〕記載の血液検体キャリアー構成体；
〔９〕　　上記〔６〕（ｂ）　のシートが、　Ｆ１４７−１１　（商品名、Ｗｈａｔｍａｎ　社）　などのキャリアー用シートであることを特徴とする上記〔６〕〜〔８〕のいずれか一記載の血液検体キャリアー構成体；
〔１０〕　　上記〔６〕（ｂ）　のシートが、　２０　〜１００　μｌ　の量の血液を滴下するためのものであることを特徴とする上記〔６〕〜〔９〕のいずれか一記載の血液検体キャリアー構成体；
〔１１〕　　血液検体キャリアー構成体が、　２０　〜１００　μｌ　の量の血液を運ぶものであることを特徴とする上記〔１〕〜〔１０〕のいずれか一記載の血液検体キャリアー構成体；及び
〔１２〕　　添付の図１〜３のいずれか一を参照して本明細書で説明された構造又は機能を有するものであることを特徴とする上記〔１〕記載の血液検体キャリアー構成体を提供する。
【００１３】
本発明の好ましい態様では、当該分離せしめられた血清部分の血清分離シートを分離して、そこから血清試料が溶出せしめられ、及び／又は当該分離せしめられた血球部分の血清分離シートを分離して、そこから検査試料が溶出せしめられ、溶出された試料を用いて測定検査が実施される。
本発明の特に好ましい態様では、定量測定を行うことができる。
本発明のその他の目的、特徴、優秀性及びその有する観点は、以下の記載より当業者にとっては明白であろう。しかしながら、以下の記載及び具体的な実施例等の記載を含めた本件明細書の記載は本発明の好ましい態様を示すものであり、説明のためにのみ示されているものであることを理解されたい。本明細書に開示した本発明の意図及び範囲内で、種々の変化及び／又は改変（あるいは修飾）をなすことは、以下の記載及び本明細書のその他の部分からの知識により、当業者には容易に明らかであろう。本明細書で引用されている全ての特許文献及び参考文献は、説明の目的で引用されているもので、それらは本明細書の一部としてその内容はここに含めて解釈されるべきものである。
【００１４】
【発明の実施の形態】
本発明の血液検体キャリアーシート構成体は、典型的には全血をそこに適用されるものであって、採血した場所から所定の検査を行う場所まで検体を運搬・保持する目的で使用されるものである。対象血液検体は、通常極く少量を予定しており、例えば１滴から２滴といった血液量を扱って、実質的な血液成分についての検査・測定を達成することを目的としている。通常、１滴の血液量とは、場合によっても異なるが、通常、約３０〜４５μｌ　であり、典型的な場合、約４０μｌ　である。本発明では、血液を検体試料とする検査・測定において、採血器ランセットなどの採血器具を用いて指先などから少量の血液を採取し、こうして採取された少量の血液を血液検体キャリアーシート構成体に染み込ませ、その染み込んで且つ血球成分と血清あるいは血漿成分とに分離せしめられた領域のうち、血清成分あるいは血漿成分を保持する領域（１）　と血球成分などの固形成分保持領域（２）　とを分離せしめ、ついで該領域（２）　から分けられた当該領域（１）　を溶出処理に付し、及び／又は該領域（１）　から分けられた当該領域（２）　を溶出処理に付し、次いで得られた溶出物を検体試料として使用することを特徴とする血液検体測定方法を提供する。
【００１５】
新鮮な血液を放置すると、血液凝固が起こり、ついで血球並びにフィブリンは塊状に収縮し、透明な上清が遊離してくるが、この上清を血清という。したがって、血清とは、血液の液体成分で、普通全血からフィブリン塊と血球を除いたものをいうが、検査測定に好適に利用できる取扱の簡単な血液の液体成分であれば特に限定されない。血漿とは、生体を循環する血液の液性成分をいい、新鮮な全血から赤血球その他の有形成分を除いた部分に相当するものであり、通常採血後シュウ酸塩、クエン酸塩、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）塩、あるいはヘパリンなどの抗血液凝固剤を加えるか、あるいは低温に保って血液凝固の進行を阻止したのち、放置又は遠心操作により有形成分を分離して除いて得られるものをいうが、検査測定に好適に利用できる血液の液体成分であれば特に限定されない。
【００１６】
本発明に従って製造された血液検体キャリアーシート構成体の例について、図１〜３を参照しながら以下説明をする。
図１は、当該血液検体キャリアーシート構成体を上方から見た平面図を示すものであり、図２は該血液検体キャリアーシート構成体を一つの側面から見た図であり、図３は該血液検体キャリアーシート構成体の斜視俯瞰図を示す。図１〜３は説明のため部分的には誇張されており、そのサイズ自体並びに互いの相対的な大きさについては必ずしも実物を反映した物でないことは注意されるべきである。図中、１は、採血される血液を適用する部位、すなわち、血液をその部分に接触せしめてそこに浸透あるいは吸収させるシートである。該シートは、血液滴下シートであり、一般的には採血を行う人体の傷口などに直接接触するか、血液を介して間接的に人体の傷口などに接触する可能性がある。本発明の好ましい態様では、該シートはワットマン社より入手できる濾紙、Ｆ１４７−１１　（商品名）である。そのサイズは特に限定されるものではないが、１滴の血液を浸透あるいは吸収させる場合では、約５　ｍｍ（幅）　×約１０　ｍｍ　（長さ）　のサイズで、通常血液の展開方向が長さの方向となるように配置される。採血される血液を適用（滴下）する部位のシートは、血液が浸透あるいは吸収し易いが、所定の区分以外に当該血液が流れて出てしまうようなものでは都合が悪い。
【００１７】
図中、２は、図示された展開方向に血液が浸透移動してゆき、血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することのできるシート（血球・血清分離シート）である。本発明の好ましい態様では、該シートは以下説明してあるようにそれに限定されるものではないが、ヘマセップ　Ｌ　（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ）　（商品名：米国ポール　コーポレーション（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，　ＵＳＡ）　から入手可能）メディウムとして市販されているものである。そのサイズは特に限定されるものではないが、１滴の血液を浸透あるいは吸収させる場合では、約５　ｍｍ（幅）　×約１００　ｍｍ（長さ）　のサイズで、通常血液の展開方向が長さの方向となるように配置される。図２及び３を参照しても明らかなように、２のシートは支持体シート３（一般的には「台紙」とも呼称される）の上に両面粘着テープなどで固定され、部分的に１のシートの下にもぐり込むようになっている。１のシートの台紙３の上の部分は両面粘着テープなどでその台紙３に固定されている。好ましい態様では、シート１とシート２との重なりは、約２〜３　ｍｍ　程度である。別の観点では、本発明の血液検体キャリアーシート構成体は、血液滴下シート１と血球・血清分離シート２とが、その大部分の面で互いが重なっていないことが特徴のものであってもよい。該血液検体キャリアーシート構成体としては、例えば約３０〜９８％　、あるいは約５０〜９０％　の血液滴下シートの領域が、血球・血清分離シート面と重ならないものなどが挙げられる。
【００１８】
図を参照して明らかなごとく、本発明の代表的な血液検体キャリアーシート構成体は、台紙３、血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することのできるシート２及び血液滴下シート１から構成され、少なくともその一部において台紙３、血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することのできるシート２、そして血液滴下シート１の順序で積層された構造を有するものである。また、本発明の代表的な血液検体キャリアーシート構成体は、血液採取時に血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することのできるシート２に血液を適用するものでなく、一旦、血液滴下シート１上に適用されるという特徴を有している。一つの態様としては、血液滴下シート１と血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することのできるシート２との組み合わせのユニットは、台紙３上に複数個設けられていることもできる。
【００１９】
本明細書において、シートの面の一か所に血液を付着せしめると横方向に液体が移動し、血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離して、血球成分を主に含む血球成分領域と血清成分あるいは血漿成分を主に含む可溶性血液成分領域とを少なくともその一部が空間的に区別可能な形態で形成することのできるもの（例えば、添付図面の符号２で示されたシート）としては、いわゆるフィルターマトリックスから構成されるシート形態のものが挙げられる。こうしたフィルターマトリックスから構成されるシートは、繊維状のマトリックスから構成されるものであって、一般的には濾紙（フィルターペーパー）とも呼ばれる。本明細書では、全血をそれに適用すると血球成分と血清成分あるいは血漿成分に分離することから、「血球・血清分離シート」あるいは「血球・血清分離濾紙」と呼称することもある。
【００２０】
該「血球・血清分離シート」としては、血液を浸透せしめること及び／又は吸着できるとともに、その浸透せしめられた血液及び／又は吸着された血液をクロマトグラフィー原理による分離をなし、分離を受けた血液中の成分を分離された状態で保持することができるもの、あるいは血清とそれ以外の成分とに分離し、該血清成分を分離された状態で保持することができるもの、あるいは血漿とそれ以外の成分とに分離し、該血漿成分を分離された状態で保持することができるものが挙げられ、好ましくは、繊維構造のものが挙げられる。特にこうしたものとしては、天然の重合体、グラスファイバーの繊維あるいは合成高分子の繊維からなる構造体であるものが挙げられる。該重合体としては、セルロース系物質、例えば濾紙又は繊維含有紙、修飾された天然ポリマーあるいは合成ポリマーなどが含まれていてよい。該合成高分子繊維構造体は合成高分子樹脂からなるもので、好ましくは熔融吹き込みプロセスによって凝集ウェブを形成するのに使用され得るものが挙げられる。
【００２１】
こうした合成高分子樹脂（ポリマー）としては、ポリブチレンテレフタレート、ポリエチレンテレフタレート、ポリプロピレンテレフタレートなどのポリアルキレンテレフタレート類、ポリメチルペンテン、ポリプロピレン、ポリエチレン、弗化ポリビニリデンなどのポリアルキレン類、ポリヘキサメチレンアジパミド（ナイロン６６）、ナイロン６、ナイロン６１０　、ナイロン７、ナイロン１１、ナイロン１２などの各種のポリアミド類、ポリスルホン類、ポリカーボネート類等が挙げられる。好ましくはこうしたポリマーは、繊維シート（繊維マット）の形状の成形体（構造体）に加工されて用いられるのである。こうしたポリマー繊維からなるシートは、その表面をグラフト化し、血液に対して繊維シートが良好に濡れることにより所定の血液の浸透能及び／又は吸着能が得られるように改質されたものが好ましい。また該グラスファイバー繊維構造体は、当該分野で知られたものから選択して用いることができ、その繊維からなるシートも、同様に、その表面をグラフト化されていてよい。
【００２２】
該繊維構造のものとしては、特に好ましくは全血を血球などの成分と血漿成分とに、あるいは血餅と血清成分とにクロマトグラフィー原理で分離することのできる性状を持った繊維構造から構成されたものが挙げられる。こうしたものとしては、繊維構造の表面に出来る限り高い密度のヒドロキシル基を有するようグラフト化したもの、ヒドロキシル基とカルボキシル基が混在するようにグラフト化したもの、ヒドロキシル基とメチル基が混在するようにグラフト化したもの、あるいはアミン基を有するようにグラフト化したものなどが挙げられる。
望ましいプロセスでは、ヒドロキシル基を呈示するモノマーを使い、これらモノマーを水性環境下で重合化することによっても得られる。当該分野の当業者であれば、如何なるモノマーを選択するかとか、どのようにしてグラフト化を行うかの条件の選択はその目的に応じて容易に行うことが出来よう。
【００２３】
本発明で使用されるシート（あるいは繊維構造物、代表的には濾紙形態のもの）は、好適には例えば親水性でポリアミド材あるいはグラスファイバー材から成るものが挙げられる。該ポリアミドの代表的なものとしては、ナイロンが挙げられる。好ましいナイロンとしてはポリヘキサメチレンアジペート、ポリ−ε−カプロラクタム、ポリメチレンセバカミド、ポリ−７−　アミノヘプタノアミド、あるいはポリヘキサメチレンアゼレアミド等が挙げられ、特に好ましいものとしてはポリヘキサメチレンアジパミド（ナイロン６６）が挙げられる。更に特に好ましいのは無皮質の実質上アルコール不溶性の親水性ポリアミド材が挙げられる。これらのシート（繊維）はまた好適には約５：１　から約７：１　の範囲内のメチレンＣＨ_２：アミドＮＨＣＯの比をもつものであることもできる。
この好ましいタイプの材の性質は少なくとも一部は、表面上のポリアミドのアミン末端基およびカルボキシルの末端基の濃度から生ずる。この「表面」あるいは「材表面」としては、一つの構成材あるいは複数の構成材を用いることにより、目に見えるよう露出されているような外部表面、並びに繊維により構成されたシートの内部に存在する材の内部表面などが挙げられる。すなわち、表面は流体、特に液体によって接触されることができる材の部分である。
【００２４】
制御された表面性質をもつ親水性のポリアミド材やグラスファイバー材が好ましいものとして挙げられる。特には制御された表面性質をもつ親水性で微孔質の無皮質ポリアミド材あるいはグラスファイバー材が好ましいものとして挙げられる。該制御された表面性質をもつ親水性で実質上アルコール不溶性の材は、例えば上述のタイプのアルコール不溶性ポリマー樹脂、すなわちメチレンＣＨ_２：アミドＮＨＣＯの比が約５：１　から約７：１　の範囲にある樹脂などを、官能性極性基をもつ水溶性の表面変性用ポリマーと一緒に同時に紡糸あるいは延伸することによって形成することもできる。
該有用である制御された表面性をもつポリアミド材及びグラスファイバー材をつくるのに用いる表面変性ポリマーは、ヒドロキシル基、カルボキシル基、アミン基およびイミン基のような親核性の化学的官能基の実質的部分を含むものである。その結果、構造材はその表面の上に、ヒドロキシル基、カルボキシル基、アミン基あるいは相互に反応しない上記の基のいずれかの組合せといったような高濃度の官能基を含むこととなる。制御された表面性質をもつこれらのポリアミドは、制御された表面性質をもたないポリアミド樹脂、すなわち好ましいポリアミド樹脂から形成されるが、しかし表面変性ポリマーで以て被覆されていないそれら出発ポリアミドなどよりも高濃度のカルボキシル基あるいはアミン基をもつ。
【００２５】
特に有用であるのは、高濃度のカルボキシル成分を含むことによって生ずる制御された表面性質をもつ、前述のメチレンＣＨ_２：アミドＮＨＣＯの比をもつヘキサメチレンアジパミドから形成された、親水性で微孔質の実質上アルコール不溶性のポリアミド材である。表面カルボキシル成分を含ませることはそのナイロンを多量のカルボキシル基を含むコポリマーと一緒に同時に成形処理して製造できる。
また、特に有用であるその他の物質は、制御された表面性質をもち、そのナイロンを豊富な一級および二級アミン基を含むポリマーと一緒に同時に成形処理することによってアミン官能基で以って表面が変性されているものである。こうして得られるヒドロキシル基変性表面を含むポリヘキサメチレンアジパミドから形成される材も本発明において有用である。こうした材料は多量のヒドロキシル基を含むポリマーと一緒にナイロン樹脂を同時延伸することによってつくられる。
【００２６】
これらのポリマーなどから成る繊維マットは好適に血液（例えば、全血）と接触してその血液を含浸せしめるものであることが必要である。こうした目的のためには、該繊維マットの湿潤性を賦与することのできる表面張力の臨界値（湿潤性賦与表面張力臨界値）は、通常いずれも約４６ダイン／ｃｍ　以下であるから、これを６５ダイン／ｃｍ　以上、望ましくは９５ダイン／ｃｍ　以上、更に望ましくは　１１０ダイン／ｃｍ　以上に上げる必要がある。ここで湿潤性賦与表面張力臨界値とは特定の表面張力を有する液体の特定の量をその表面に滴下し、その表面が湿潤するか否かを測定することにより決めることが出来るものである。例えば、ある液体を材料の表面に１０滴ずつ滴下して、そのまま静置された場合、その滴下された場所で液体が吸収されるか、あるいは滴下された１０滴のうちの９滴までが明らかに吸収された場合を湿潤が生起したとされ、その反対にその滴下された場所で液体が吸収されることがないか、あるいは滴下された１０滴のうちの９滴までもが吸収されることがない場合を湿潤が生じないとされる。そして表面張力が２６ダイン／ｃｍ　の液体を滴下した場合には、速やかな湿潤が生起したが、表面張力が２９ダイン／ｃｍ　の液体を滴下した場合には、湿潤が生じないままであった場合に、その材料（マット）の湿潤性を賦与することのできる表面張力の臨界値（湿潤性賦与表面張力臨界値）は、２７．５ダイン／ｃｍ　とされることになる。この湿潤が生起するか湿潤が生じない場合の値は、勿論構成材料を構成する物質の表面物性や、液体と相互作用する面に存在する孔のサイズによっても異なることになる。
例えば全血を含浸せしめるためには、湿潤性賦与表面張力臨界値ができるだけ高いことが好ましい。湿潤性賦与表面張力臨界値が６５ダイン／ｃｍ　、より望ましくは１１０　ダイン／ｃｍ　を越えることが、本発明にとって望ましい製品のめやすでもある。該グラスファイバー材についても、上記ポリアミド材と同様に、上記で説明したような性状、物性を持つものは好適であり、同様な手法で得ることのできるものであってよい。
【００２７】
本発明において、血液（例えば、全血）を浸透及び／又は吸着できるとともに、その浸透及び／又は吸着された血液をクロマトグラフィー原理による分離をなし、分離を受けた血液中の成分を分離された状態で保持することができる繊維構造のものは、成形体、例えば繊維シート（あるいは繊維マット、代表的には濾紙）などの構造物に成形される。血液を浸透及び／又は吸着させた領域、例えば血液を浸透及び／又は吸着させる領域からその血液からの所要の成分の現れる場所、例えば血清あるいは血漿の現れる場所までの動きの方向は、重要なデザインを行うためのファクターであり、これを流れの方向と称することとする。
【００２８】
該繊維構造の材料はそれを一体形状化して、好ましい構造物にすることができる。例えば多層構造体は、二つの運動ベルトから成ることを特徴とする積層オーブン中に製品を通過させ、そしてそのオーブン中で圧力ロールを用いて材料を所定の密度とすることができる。この操作によりその層同志を結合させて単一の一体型のシートとし、次に、使用に望まれるサイズに裁断することができよう。望ましい条件を得るために行われるグラフト化は積層の前でも後でもかまわない。また熱盤の間で圧縮することによりレイアップを行い、積層シートを得ることもできる。さらに、加熱ダイを用いて特殊な形状としたり、隣接する領域の間の気孔サイズを変えてもよい。
熱成形によってあらかじめ成型された形として圧延シート状に成形することもできる。例えば、直径が３μｍ以下である繊維からなる多層繊維マットは常温成型することができ、それは用いるに十分可能なものである。
【００２９】
血液がクロマトグラフィー原理の分離を受ける場合、例えば全血から血清を分離して得る場合、全血中の各成分がそれぞれ全く別個になるよう分離が生起する必要はなく、所要の測定あるいは分析にあたり問題とならない範囲で分離が達成できれば十分である。ある場合には全血中の液体成分が殆ど血清成分として実質的に回収できるものであることが望ましい。同様に、例えば全血から血漿を分離して得る場合も、所要の測定あるいは分析にあたり問題とならない範囲で分離が達成できれば十分である。
【００３０】
本発明では血液検体を保持するのに使用される構造体は、指向性分離シートの性状を持つものが好ましく且つ便利に用いられる。特に好ましい指向性分離シート（あるいは指向性分離マットと呼ぶこともできる）は、全血を血球成分などの血餅と血清成分とに、あるいは血液の有形成分と血漿成分とに、クロマトグラフィー原理で分離することのできる性状を持ったものである。こうした指向性分離シートでは、その分離の生起する領域の中にバリヤー層を設けて血清成分又は血漿成分の移動は許容するが、血餅など血清成分から除いておきたい成分、あるいは赤血球などの血漿成分から除いておきたい成分の通過を実質的に防止することのできる層（防護層）を設けておくこともできる。防護層としては、多孔質であるもの、より好ましくは微孔質膜であるものが挙げられる。こうした微孔質膜の表面は親水性樹脂膜であるものが好ましい。また指向性分離シートには、血清又は血漿を保持するのに適した強い毛細管吸引力を有する構造を設けてあってよい。こうした構造としては、上記した微孔質膜であるものが挙げられる。こうした血液検体を保持するのに使用される構造物としては、例えば特開平５−３１２８０２号公報に開示されたようなものが挙げられる。また好ましくはヘマセップ　Ｌ　（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ）　（商品名：米国ポール　コーポレーション（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，　ＵＳＡ）　から入手可能）として市販されているものなどが挙げられる。
【００３１】
本発明で指向性とは血液試料を浸透及び／又は吸着させた部位から見て得られた血清成分又は血漿成分の保持されている部位が特定の方向に実質的に偏っており、クロマトグラフィー原理による分離が一定の方向性を持って達成されていることを意味する。従って指向性分離シートに血液試料を浸透及び／又は吸着させると、一定の方向に向かってクロマトグラフィー移動して分離が生起して、所要の部位で分離された血清成分又は血漿成分の保持が生起し、こうした性状を持つものであれば指向性があるとすることができる。
【００３２】
本発明では、該血球・血清分離シートは、親水性化合物を含有しているものである。該親水性化合物としては、親水性を付与することが知られたものから選択することができる。
本発明では、該血球・血清分離シートは、界面活性剤、ブロッキング剤などを含有しているものである。界面活性剤としては、血液成分の移動が展開方向に向かっての位置がシートの端部と中央部との間で可能な限り均等な進行速度を与えるものが好ましい。代表的な界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤が挙げられ、より好ましくは溶血性の少ないものが好ましい。該界面活性剤の具体例としては、ソルビタンと高級脂肪酸との部分エステルの遊離水酸基にポリオキシエチレン残基が付加したソルビタンエステル類（高級脂肪酸残基としては、ラウレート、パルミテート、ステアレート、オレエート、ステアレートとパルミテートの混合物などが挙げられ、ポリオキシエチレン残基としては、ソルビタン１モル当たり約８〜２５モルのオキシエチレン単位を含有するものなどである）、ポリオキシエチレンンアルキルアリールエーテル類（ポリオキシエチレン残基としては、アルキルアリール残基１モル当たり約５〜２０モルのオキシエチレン単位を含有するものが挙げられ、アルキルアリール残基としては、オクチルフェニル基などが挙げられる）などが挙げられる。特に好ましい界面活性剤としては、ポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート（Ｔｗｅｅｎ　２０（商品名））、ポリオキシエチレン（９）オクチルフェニルエーテル（ＮＰ−４０（商品名））、ポリオキシエチレン（１０）オクチルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ−１００（商品名））などが挙げられるが、これらに限定されるものではなく、当業者であれば本明細書に記載に従い、試験を行うなどして、適切なものを選択することが可能である。
【００３３】
該血球・血清分離シートは、第四級アンモニウム塩基とリン酸エステル残基とを有する有機化合物、例えば２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン（ＭＰＣ）　を単独あるいはその他のモノマーと重合させて得られたリン脂質ポリマーを含有するもの、該ＭＰＣ　あるいは該リン脂質ポリマーを蛋白質と組み合わせて、適度な分子量及び親水性・疎水性を調整されたものなどを含有しているものである。代表的な該血球・血清分離シートは、人工蛋白質、例えばリピジュア（商標名：　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ）ＢＬシリーズ（日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売）を含有しているものである。好ましくは、該血球・血清分離シートは、Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ａ０３，同　Ｂ０３，　同　Ｄ０５，　同　Ｅ０２，　同　Ｇ０４，　同　Ｊ０２などから選ばれたものを含有しているものである。さらに、該血球・血清分離シートは、アッセイ用試薬として販売されているブロッキング試薬、安定化試薬などから選ばれたものを含有しているものである。該ブロッキング試薬としては、例えば合成ポリマーからなるもので、安定化能あるいは非特異的吸着能に優れるものが挙げられる。代表的な該血球・血清分離シートは、例えば免疫学的測定用ブロッキング試薬Ｎ１０１又はＮ１０２（日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売）などを含有しているものである。該安定化試薬としては、例えば合成ポリマーからなるもので、蛋白質溶液の安定化効果を示すもの、蛋白質溶液の凍結、凍結乾燥に対して安定化効果を示すものなどが挙げられる。代表的な該血球・血清分離シートは、例えば免疫学的測定用ペルオキシダーゼ安定化試薬Ｈ１００（日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売）などを含有しているものである。
【００３４】
該血球・血清分離シートに　界面活性剤、ブロッキング剤などを含浸せしめるには、例えば精製水で適度に希釈した当該成分を含有する希釈液に、当該血球・血清分離シートを浸し、適当な温度の下、適当な時間乾燥処理を行えばよい。例えば希釈は市販の試薬を約５〜１００　倍程度に希釈して用いることができる。乾燥処理は、例えば常温、代表的には室温で、約１時間〜約２日間、例えば一晩でよい。場合によっては、血球・血清分離シートは当該希釈液に浸す前にメタノールなどのアルコールに浸して、水溶液の希釈液の浸透性を増進させておくこともできる。
【００３５】
本発明では、血液滴下シートは、血液吸収の速いもの、溶血を起こさないものあるいは起こし難いもの、血球・血清分離シートでの血清成分あるいは血漿成分の分離に好ましい作用を及ぼすもの、それ単独でも血液をある程度血球成分と血清成分あるいは血漿成分とに分離する能力を有するもの、部分的に接する部位を介して血球・血清分離シートへの所定成分を移行せしめる能力のあるものあるいは好ましくはその能力の高いもの、及び結果として回収される蛋白が原血漿に近いものから成る群から選ばれた性状あるいは特性をもつものから選択される。該血液滴下シートは、本血液検体キャリアーシート構成体のサイズが比較的小さいことに鑑み、その加工性の良いものから選択することもできる。当業者であれば、本明細書の記載を参考にして試験を行うことにより、選択すべきものを容易に決定できよう。本発明で使用するに適した血液滴下シートは、いわゆるフィルターマトリックスから構成されるシート形態のものが挙げられる。こうしたフィルターマトリックスから構成されるシートは、繊維状のマトリックスから構成されるものであって、一般的には濾紙（フィルターペーパー）とも呼ばれるものである。当該血液滴下シートは、Ｗｈａｔｍａｎ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｌｔｄ．，　Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ　Ｍｉｌｌ　Ｊａｍｅｓ　Ｗｈａｔｍａｎ　Ｗａｙ　Ｍａｉｄｓｔｏｎｅ　Ｋｅｎｔ，　Ｅｎｇｌａｎｄなどからも入手可能である。該血液滴下シートの具体例としては、例えばグレード　ＧＦ／ＡＶＡ，　Ｆ４８７−０９，　Ｆ４８７−１４，　Ｆ１４７−１１，　ＧＦ／Ｄ，　Ｆ１４５−０２，　ＧＦ／ＤＶＡ　（いずれもＷｈａｔｍａｎ　社製）　などが挙げられ、特に好ましい血液滴下シートとしては、例えば　Ｆ４８７−０９，　Ｆ４８７−１４，　Ｆ１４７−１１，　ＧＦ／ＡＶＡなどが挙げられ、とりわけＦ１４７−１１　は好適に用いることができる。
【００３６】
該血液滴下シートのサイズは、滴下される血液を十分に吸い取ることが可能な程度とするのがよいが、一方では血球・血清分離シートへ極力所定の血清成分あるいは血漿成分を移行せしめる必要があるので、自ずからそのサイズは決定できる。通常は１滴の血液量を当該シート外の部分に移行せしめずに（例えば、台紙などに漏れることがないような程度）、血球・血清分離シートへ浸透させて、該血球・血清分離シート上で血清成分あるいは血漿成分の領域を十分に与えることができればよい。したがって、実験などによりそのサイズは適宜決定できる。該血液滴下シートの形状はほぼ正方形、長方形、円形、楕円形など適宜選択することが可能であるが、加工性の観点からは、血球・血清分離シートとほぼ同程度の幅（血球・血清分離シートにおける血液の展開方向に対して直角の方向）でその長さは上記した機能を果たすに十分な長さ（例えば、約７　〜　１２　ｍｍ程度）　を有する方形のものが挙げられる。
該支持体シートとしては、いかなるものもそれに適していれば使用することができるが、通常紙が使用できる。該紙としては、洋紙、和紙、板紙のいずれからも選択でき、さらには化学繊維紙を用いることもできる。該紙の表面は、プラスチック、金属で被覆されているもの、それらで表面処理されているもの、印刷されたものであってもよい。その他、特開平１０−１３２８００　号公報及び特開２００１−２２１７９４号公報の記載を参照して血球・血清分離シート及び支持体シートをデザインしたり、その使用法を応用することができ、該文献の記載はそれを参照することによりその内容は本明細書に含まれる。
【００３７】
指血あるいは耳朶血を被検試料として用いる場合の血液採取法としては、より具体的には、被検者の指先あるいは耳朶を穿刺前によくマッサージあるいは暖めて充血させておき、消毒ガーゼで穿刺部位を拭いて乾燥させ、ディスポーザブル・ランセット、あるいは簡易メス刃で指先あるいは耳朶を穿刺して出血させる。この場合、創口はなるべく小さい（３ｍｍ以下程度）ことが好ましい。ランセットを使用して血液を得る方法が簡単で好ましく用いられる。普通穿刺部から十分に出血させた後血液検体キャリアー構成体の血液滴下シート部に吸い取らせる。場合によっては、最初の血滴を拭い去って後にこのシート部の繊維に吸着させることをしてもよい。通常血液検体キャリアー構成体のシートは検体を吸着させるまでは乾燥した状態に保持されている。また、適用される血液量としては、通常指先の場合で出血が直径　５〜６　ｍｍの玉状のものが好ましく、１滴で２０〜５０μＬ　程度（例えば、約２５〜４０μＬ　程度）　である。臨床検査の場合には、それに限定されるものではないが、例えば数滴、普通、１〜５滴の血液、より普通には１〜３滴あるいは１〜２滴（例えば、約２０μＬ　〜９０μＬ　、あるいは約２５〜５５μＬ）の血液である。各個人が自分で該ランセットなどを使用して採血する場合（パーソナル採血法）、各個人が手技に通じているか否かにより異なるけれども、通常は一回に１〜２滴の血液、多くても５滴程度までを得るのが限界であると考えられる。それ以上の出血を期待するのはあまり現実的でないと推察される。
【００３８】
出血させた血液を該血液検体キャリアー構成体のシートに吸い取らせると、しみ込んだ血液は、その下にある血球・血清分離シートに移行して、血液は横方向に展開して行き、血清分離が行われる。すなわち、血清成分が、血球　（主に赤血球からなる）　などの固形成分から分離され、それぞれ該血球・血清分離シートの血清成分担持部分と血球などの担持部分とをハサミで切るなどして分けることが可能となる。血清への分離処理は、　１〜１５分間程度、通常２〜５分間程度で完結することができる。通常、出血させた血液一滴毎に、各該血液検体キャリアー構成体の短冊一枚に吸い取らせることが好ましい。本発明の血液検体キャリアー構成体を使用すれば、血球・血清分離シートと血液滴下シートとが別構造体から構成されているので、サンプリング（成分抽出）　を容易にするため血清成分領域あるいは血漿成分領域を良好な形態（展開方向に対して血液がほぼ均等に浸透あるいは移動してカッティングなどが容易な形状及び／又は展開方向に対して長い区域となるなど）とするための処理（例えば、界面活性剤及び／又はブロッキング剤などの薬剤による処理など）を加えても、出血している傷に接触するのは、そうした処理を施していない血液滴下シートであるので、安全面での問題がないあるいは少ないという利点がある。そして一方では、優れたサンプリング性状を与えるなどの良好な取扱い性能を有する微量血液運搬具となり、また個人での取扱も可能で安全性もあり、多数の検体でも嵩張らないなどの利点も生かすことが出来る。
【００３９】
血清分離処理が完結した後、通常の処理では必要に応じ血液検体キャリアー構成体のシートを乾燥させてよい。分離処理された血液検体は、好適には自然乾燥（風乾）させることができる。充分自然乾燥させた後、血清を保持する血液検体キャリアー構成体（あるいは血清を保持する血球・血清分離シートだけでもよい）は、それを吸湿を避けて冷蔵庫（２〜８℃）に保管することができる。分離処理された血清部分を湿った状態に保ちたい場合には、血液検体キャリアー構成体全体を密封可能な袋等の容器内に収納後その袋の口を密封してもよい。
【００４０】
こうして保存及び／又は輸送された血清を保持する血液検体キャリアー構成体は、検査実施時には次のように取り扱うことができる。
血液検体キャリアー構成体のうちの血球・血清分離シート上の血清部分を該シートごとハサミで切り取る。特には検査に使用する所要部分を選択して切り取る。切取りは、ハサミを使用して行うこともできるし、シート上の血清部分を選択的に認識する機構を備えたコンピューター制御のカッターを使用して行うこともできる。通常、切取りの際には、血清あるいは血漿を担持する部分と、血球などを担持する部分とが別々となるようにし、できるだけ血清あるいは血漿を担持する部分が多く得られるようにすることが望ましい。その切り取られた血清部分のシートからそこに保持された被検成分を液相へ溶出し、こうして得られた検体を所要の測定・分析にかける。また検体として使用を希望する成分の位置する分離シート部分を任意に選択して切り取って用いることもできる。
本発明の血液検体キャリアー構成体を使用することで、血清領域あるいは血漿領域をより広くすることが可能であり、サンプリングが楽になり、安定したサンプリング処理、迅速なサンプリング処理ができ、得られる検査結果についても信頼性を高めることが可能となる。
【００４１】
該シートに保持された被検成分を、液相へ実質的にネイティブ　（ｎａｔｉｖｅ）　な溶出を行うことが可能である限り、この溶出を行うための溶出用溶液ないし溶出方法は特に制限されない。通常は緩衝液を用いて溶出処理できる。該緩衝液を調製するに用いる緩衝剤としては、生化学測定法を適用して測定対象アナライトを測定するにあたり、測定に障害をもたらさないものが好ましいが、当該分野でそれら測定・検査法において通常使用されるものあるいは容易に使用できるもののうちから選択して使用できる。例えば、緩衝剤としては、リン酸、Ｎ−（２−　ヒドロキシエチル）ピペラジン−Ｎ’−（２−　エタンスルホン酸）（ＨＥＰＥＳ）、ピペラジン−Ｎ，Ｎ’−ビス（２−　エタンスルホン酸）（ＰＩＰＥＳ）、３−（　シクロヘキシルアミノ）−１−プロパンスルホン酸（ＣＡＰＳ）、３−（Ｎ−　モルホリノ）プロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）、ホウ酸、クエン酸、バルビタール、イミダゾール、あるいはそれらの塩などが挙げられる。これらは単独でも、任意に組合わせるなどして配合しても用いることができる。
【００４２】
また適当な酸、例えば、塩酸、硫酸、硝酸、リン酸などの無機酸、酢酸、クエン酸、マレイン酸、フマール酸などの有機酸などやアルカリ、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウムなどのアルカリ水酸化物、トリエチルアミンなどの有機塩基などにより、ｐＨを適切な値に調節できるようにして、任意にそれらを組合わせたり、配合しても用いることができる。好ましくは水溶液が使用され、例えばリン酸塩緩衝液、ＴＥＳ　緩衝液、ＨＥＰＥＳ　緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、バルビタール緩衝液、イミダゾール−塩酸緩衝液などが挙げられるが、できる限りネイティブに溶出を行う点からは、リン酸緩衝液等の緩衝液（ｐＨ６．８〜８．２　、好ましくは　ｐＨ７．０〜８．０）を溶出用溶液として用いることが好ましい。
【００４３】
通常該シートに保持された被検成分は非常に少量あるいは極微量であることから、使用する溶出用溶液の量は、有効な溶出が達成可能であれば、可能な限り少ない量を使用できるが、被検成分を保持する該分離シートの容積がある程度あることから、あまり少量であると該溶出用溶液に該分離シートが浸らないという問題も生じるのでこの点を考慮したり、さらに測定装置の必要とする量など測定の都合からその下限値は決定できる。一方、あまり大量の溶出用溶液を用いると該分離シートに保持された被検成分は非常に少量であることから、測定可能濃度のものが得られないという問題をきたす。これは、別の観点からは、一方では一旦溶出した液中に存在する被検成分の濃度を調整すること自体かなり困難であることをも意味する。
【００４４】
溶出する時の温度及び溶出時間としては、有効な溶出が達成できれば特に限定されないが、溶出温度では、通常冷蔵温度から常温で実施でき、例えば　０℃〜４０℃、より普通には　１０　℃〜３０℃、より一般的には１５℃〜２６℃である。溶出時間としては、特に制限はなく、効率の点ではより短時間であることは好ましいが、通常５分間〜２４時間程度、好ましくは１０分間〜６時間程度、より好適には２０分間〜４時間程度で、代表的には３０分間〜２時間程度である。溶出は、静置して行っても、適度に溶出用溶液を撹拌あるいはそれに振動を与えながら行ってもよい。
溶出用溶液の量は、検体試料が希釈されて測定不能にならない範囲であれば特に制限はなく、例えば　６００μＬ　までの量、好適には　５５０μＬ　以内の量を使用してよい。
【００４５】
上記した溶出液中の各種測定が可能である限り、該測定の方法は特に制限されない。アナライトの測定には、例えば高速液体クロマトグラフィー、ネフェロメトリー、化学発光法、競合性蛋白結合分析法、ラジオレセプターアッセイ、螢光法、比色法、電気泳動法、超遠心法、沈殿法、原子吸光分析法、ガスクロマトグラフィー、免疫測定法などが挙げられる。
【００４６】
また特異的結合を利用した方法、例えば、相補的核酸配列、エフェクターとレセプター、酵素とインヒビター、受容体とリガンド、補体結合反応などの反応を利用した方法などを用いることもできる。
上記相補的核酸配列を利用した方法としては、ポリメラーゼ・チェイン・リアクション（ＰＣＲ）　法、リバース・トランスクリプターゼ・ポリメラーゼ・チェイン・リアクション（ＲＴ−ＰＣＲ）法、ＡＳＰＣＲ　（ａｌｌｅｌｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ＰＣＲ）　法、ｉｎ　ｓｉｔｕ　ハイブリダイゼーション、サザンブロット・ハイブリダイゼーションなどが挙げられる。その他遺伝子診断法も利用でき、例えば、ＲＦＬＰ　（ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎ　ｆｒａｇｍｅｎｔ　ｌｅｎｇｔｈ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ）　法などが挙げられる。
【００４７】
本発明の血清分離シートを用いて得られた被検サンプル、例えば、血清や血漿などは、各種測定にかけることができる。これら検査・測定としては、必要であれば、例えば田中久及び横山節男編集、医薬品の開発　１０巻、診断薬、廣川書店、平成２年３月１５日発行；株式会社エスアールエル、総合検査案内　１９９５、１９９５年４月作成、６０，０００▲１▼ＮＥにリストされた各種検査を挙げることができ、その内容及びそこで引用されている文献に記載された内容は本明細書において参照事項として本明細書の内容のうちに含められる。
【００４８】
【実施例】
以下に実施例を掲げ、本発明を具体的に説明するが、この実施例は単に本発明の説明のため、その具体的な態様の参考のために提供されているものである。これらの例示は本発明の特定の具体的な態様を説明するためのものであるが、本願で開示する発明の範囲を限定したり、あるいは制限することを表すものではない。本発明では、本明細書の思想に基づく様々な実施形態が可能であることは理解されるべきである。
全ての実施例は、他に詳細に記載するもの以外は、標準的な技術を用いて実施したもの、又は実施することのできるものであり、これは当業者にとり周知で慣用的なものである。
【００４９】
実施例１
（１）　微量の血液を吸収させ、乾燥させた後、運搬し、次いで抽出処理をすることから、使用するマトリックスシート（濾紙）から濾紙かすが多くでると、測定に悪影響を及ぼすと考えられるので、基礎的検討として、濾紙かすの出にくいものを選別するための試験を行った。各種濾紙を所定のサイズとし、生理食塩水　（０．９％ＮａＣｌ水溶液）　の中に入れ、断続的に撹拌を行い、３０分間処理をした後、抽出液から濾紙を取り除いた。抽出液の吸光度を測定した。測定は、６　ｍｍ　ｄｉｓｋ　の濾紙３　枚当たり１．５ｍｌ　の０．９％ＮａＣｌ水溶液で滲出処理後、２６０　ｎｍ　ＯＤ，　２８０　ｎｍ　ＯＤ及び６６０　ｎｍ　ＯＤ　を測定して比較した。２８０　ｎｍ　ＯＤ　は蛋白の定量に通常よく使用されるが、２８０　ｎｍ　ＯＤ　の値の大きいものは濾紙かすが多く出ていると判断される。Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）が良好なものであることを確認した。
【００５０】
（２）　次に、各種の濾紙に血液を滴下せしめ、得られた血球領域と血漿領域とを測定して、血球と血漿とへの分離性状につき調べた。極力、広い血漿領域を与え、その両者間の区域の識別が容易なものを優れた性状のものとする。また、溶血の有無についても調べた。結果を表１に示す。Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）が比較的クリアーな血漿領域区分を有し且つ長い血漿領域を与え、良好なものであることを確認した。
【００５１】
【表１】

【００５２】
（３）　上記（２）　で血液を濾紙に滴下して血球成分と血漿成分とに分離する性状を調べたもののうち、比較的良好な分離性状を示すものにつき、血漿領域から抽出処理を行って、溶血の発生について調査を行った。抽出はできるだけ血漿成分領域の濾紙部分を切取り、１．５　ｍｌの０．９％ＮａＣｌ水溶液で断続的に撹拌を行い、３０分間処理をして抽出した。濾紙を取り除いて得られた液につき測定を行った。４０６　ｎｍＯＤ　の測定値が大きいもの程ヘモグロビンに起因する吸収があると考えられ、溶血が起こっていると思われる。Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）が比較的溶血が少ないと判断された。
【００５３】
（４）　　　血球成分と血漿成分とに分離する機能を使用するシート（濾紙）としてＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を使用し、それに血液（全血）を滴下すると、血液がシート上を流れたり、分離されて生ずる血漿成分領域の形態が不揃いになる。血漿成分領域の長さをより良いものとする（血漿の分離をより良くする）目的で、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　単独のものと、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　とＨｅｍａｓｅｐ　Ｖ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）とを組み合わせて使用する場合とで比較を行った。血液滴下部位にほぼ円形に切り抜いたシート（濾紙）を置いて、血液をそこに滴下した時の展開の様子を調べた。血液滴下部位に置いた濾紙としては、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｖ　を使用した。血液は全血４０μｌ　を矢印の滴下位置にたらした。Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　のサイズは、５　×　５５　ｍｍ、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｖ　のサイズは、６　ｍｍ　ｄｉｓｃ　とした。観察結果の概念図を図４に示す。
さらに、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｖ　をＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　の端に載せて、血液（全血４０μｌ）を、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　の端若しくはＨｅｍａｓｅｐ　Ｖ　の上に滴下し、各領域の分離の長さを測定し、比較した。結果を表２に示す。二種の濾紙を組み合わせた場合の方が、５０％　程度血漿部分の領域が長くなっていることから、有効であると判断される。
【００５４】
【表２】

【００５５】
（５）　　　二種の濾紙を組み合わせた構造体のＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）の上に載せるサンプル滴下用の濾紙としてサンプルの吸収性が優れていることからＧＦ／Ｄ　（Ｗｈａｔｍａｎ　社）　を使用していたが、柔らかい濾紙でその加工性が劣ると思われる。すなわち、この柔らかい濾紙を　５×５　ｍｍの大きさに均一に細切りすることは難しいと思われる。そこでＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（５×５５　ｍｍ）　の一端に表３に挙げた濾紙片（５　ｍｍ　幅×長さ）　を載せ、その上に血液（４０μｌ）を滴下した。血液は、ＥＤＴＡ採血管に採血したものを使用した。展開した後長さを測定。血漿成分領域は、ＰＢＳ　１　ｍｌで抽出し、分光光度計で測定。結果を、表３に示す。サンプル滴下用の濾紙としてＦ１４７−１１　（Ｗｈａｔｍａｎ社）　が好適と判断された。
【００５６】
【表３】

【００５７】
（６）　　　血球成分と血漿成分とに分離する機能を使用するシート（濾紙）としてＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　（Ｐａｌｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）は優れた性状を示すと評価されたが、それに血液（全血）を滴下すると、血液がシート上を流れたり、分離されて生ずる血漿成分領域の形態が不揃いになる。そこでシート（濾紙）を各種の試薬で処理したものについて検討した。所定のサイズの濾紙をブロッキング剤として通常使用されている界面活性剤あるいはリン脂質系化合物を用いて処理したものについて、その適性を調査した。ブロッキング剤としては次のものを次の濃度で用いた。
１　　Ｔｗｅｅｎ　２０　　　　　　５％／ＰＢＳ
２　　ＮＰ４０　　　　　　　　　　　　　　　　５％／ＰＢＳ
３　　　　Ｔｒｉｔｏｎ　　　１００　　　　　　　　５％／ＰＢＳ
４　　　　Ｇｌｙｃｅｒｏｌ　　　　　　　５％／ＰＢＳ
５　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ａ０３　　　５％／ＰＢＳ
６　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｂ０３　　　５％／ＰＢＳ
７　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｄ０５　　　５％／ＰＢＳ
８　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｅ０２　　　５％／ＰＢＳ
９　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｇ０４　　　５％／ＰＢＳ
１０　　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　Ｊ０２　　　５％／ＰＢＳ
＊＊リピジュア（商標名：　Ｌｉｐｉｄｕｒｅ）は、　日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売されているブロッキング剤である。
〔前処理〕
ミリＱ水で各試薬を×５０希釈　（０．１％）　し、濾紙　（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ，　５×５５　ｍｍ）をこれら希釈液に浸した。濾紙をキムワイプの上で乾燥させ、さらに３７℃で乾燥を続けた。濾紙はその日のうちに検討に使用した。
〔血液展開処理〕
濾紙（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ）　の上に径６ｍｍ　の濾紙（ＧＦ／Ｄ）を乗せた。この上にＥＤＴＡ血を４０μｌ　垂らした。血球と血漿の分離を見た。対照として未処理の濾紙についても行った。サンプル血液は２種類について行った。
血球から分離した血漿部分の長さを測定した。次に血漿の分離した部分（血漿保持領域）　を切り取り、チューブに入れた。そこにＰＢＳ　２００　μｌ　を加え、３０ｍｉｎ　攪拌（攪拌機の目盛り２）、それから４℃に２時間放置後、蛋白濃度の測定（総蛋白、ワコー（和光純薬（株））を日立７０７０（（株）日立製作所）で行った。ヘモグロビン濃度も測定した。
【００５８】結果から判断して、血球と血漿の分離は良かった。ただ、アルミホイルの上に濾紙を直に置いたせいか、対照とした未処理のＨｅｍａｓｅｐ　Ｌ　の血漿分離部分の裏側に血球が存在した。そのために、対照のＨｂ濃度は高めになっている。分離する血漿の形状（濾紙上の形状）については、未処理の濾紙では中央が窪んだＹ字型になったが、前処理した濾紙ではそのようないびつな形にはならなかった。
総蛋白については、サンプルの血液が４０μｌ　であり、その半分が血漿とすると、血漿は２０μｌ　となる。ＰＢＳ　２００　μｌ　で抽出しているので、ＳＴＤ　は、×１０希釈して使用して、比較とした。ＳＴＤ　の７．２ｇ／ｄｌ　が平均的蛋白濃度であるならば、本測定で７．２ｇ／ｄｌ　を越えたＮｏ．　１１の対照の濾紙は、血漿が２０μｌ　以上回収された、ということになる。
濾紙を上記試薬で処理することで、血球から分離する血漿の長さは伸び、形状も改善された。免疫学的測定用ブロッキング試薬Ｎ１０１及びＮ１０２（日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売）、そして免疫学的測定用ペルオキシダーゼ安定化試薬Ｈ１００（日本油脂（株）製造、（株）第一器業販売）での処理も有利な結果を与える。
【００５９】（７）　　　濾紙から抽出される試料の改善をめざして、さらに濾紙の処理に使用するブロッキング剤の濃度について検討を行った。濾紙は、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　と　ＧＦ／Ｄ　の組み合わせで行い、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　をブロッキング剤等　（ＮＰ４０，　Ｔｒｉｔｏｎ　　　１００，　ＢＬ　Ｅ０２，　ＢＬ　Ｊ０２）　を使用し、その処理濃度を０．１％より×５倍の希釈の５濃度とした。組み合わせは、未処理　ＧＦ／Ｄ　＋　処理　Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌとした。サンプルは、ＥＤＴＡ全血とし、濾紙を並べ、その上へサンプルを滴下　（４０μｌ）した。濾紙による分離血漿の長さを測定し、ついで血漿部分を切り出し、細切しチューブに入れ、ＰＢＳ　２００　μｌ　を加え、攪拌１５分間（攪拌機の目盛り　２．５）を行って抽出した。抽出液につき、日立７０７０（（株）日立製作所）による総蛋白の測定、そして測定残液をＰＢＳ　で×５希釈し、分光光度計による測定をした。結果を表４に示す。
【００６０】
【表４】

【００６１】
（８）　　　濾紙による分離、抽出の再現性について調べた。濾紙のうち、Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ　をブロッキング剤で処理した。処理は、ミリＱ水、ＮＰ４０、Ｅ０２　（各　０．０５％）で行った。サンプル血液（ＥＤＴＡ，　全血）は３種使用し、４０μｌ　をキャリアー構成体の血液滴下部のシートに滴下した。血漿部分の長さを測定後、切り出し、抽出処理（２００　μｌ，　１５ｍｉｎ，　攪拌機目盛り２．５）した。抽出液を日立７０７０による総蛋白（ＴＰ）測定をし、残液を×５希釈して、分光光度計による測定にかけた。検討用濾紙は、５０　ｍｍ　の　Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌの一端にＧＦ／Ｄ（５×５　ｍｍ）　を乗せた。比較のために従来の濾紙（Ｈｅｍａｓｅｐ　Ｌ，　４×８０　ｍｍ　、サンプルは濾紙の中央に滴下）にもサンプルを滴下した。血漿部分は両端から切り取った。一つの条件について濾紙１０本使用した。１０回測定の再現性を比較した。
血球と血漿の境界は従来のものが最も良かった。これは展開に時間がかかり、凝固が進むためと考えられる。従来の濾紙は、濾紙への浸透に時間がかかり、濾紙の裏へ血液が回り込むことがあった。処理したものの中では、Ｅ０２　がはっきりしていた。ＮＰ４０、ミリＱでは、境界がぼやける例もあった。
なお、従来濾紙とは、特開２００１−２２１７９４号公報に記載のものに対応するものである。ワコーＴＰキット（和光純薬（株））を使用し、ＳＴＤ　は×１０希釈し、表示値はそのままで測定した（ｇ／ｄｌ）。
【００６２】
本発明の血液検体キャリアー構成体の血液滴下シートの血液を付着あるいは吸収させ、該構成体の血球・血清分離シートにおいて分離のための血液の展開を行うと、血球・血清分離シートの中を血液が均一に流れず、該血球・血清分離シートの中央よりも縁のほうが血液の展開速度が速く、Ｖ字状の展開を示し、さらに血球部分から分離した血清部分の、分離距離が小さく、血清の分離回収が必ずしも満足のいくものでないとの問題点が改善され、より当該シートの中を血液が均一に流れるようになり、血清の展開する距離がより大きくなるという改善を得られる。本発明の血液検体キャリアー構成体の血球・血清分離シートは、ブロッキング剤、例えばＬｉｐｉｄｕｒｅ　ＢＬ　（商品名、日本油脂（株））などのリン脂質系物質を含浸処理してあることから、血液は該シートの中を比較的均一に流れ、また血球から分離する血清の分離距離も格段に長くなり、血清の溶出、回収が容易となる。本発明の血液検体キャリアー構成体の血液滴下シートに血液滴下を行うことで、該血液滴下シートは未処理シートであるので、薬剤の処理による人体への影響という問題も避けることができる。
【００６３】
【発明の効果】
本発明によれば、微量の血液検体を安心して採血でき、その取扱も極めて簡便にできるようになる。また、本発明の血液検体キャリアー構成体は、それ自体で血球成分と血清成分あるいは血漿成分とに分離する働きを有する利点を活用しつつ、良好な分離性状を引き出して、検体試料として使用するに十分な分離を達成することができ、且つそのキャリアー構成体からの測定試料の採取も好適に行うことを可能にする。本発明の血液検体キャリアー構成体を使用すれば、個人が簡単に検査のための血液検体を採取して、検査機関に渡すことを可能にするし、大量の微量検体を扱うことを可能とする。
本発明は、前述の説明及び実施例に特に記載した以外も、実行できることは明らかである。上述の教示に鑑みて、本発明の多くの改変及び変形が可能であり、従ってそれらも本件添付の請求の範囲の範囲内のものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明に基づいた血液検体キャリアー構成体の平面図を示す。
【図２】本発明に基づいた血液検体キャリアー構成体の側面図を示す。
【図３】本発明に基づいた血液検体キャリアー構成体の俯瞰斜視図を示す。
【図４】血球・血清分離シートにおける適用血液の展開の様子を描いた図面である。
【符号の説明】
１−血液滴下シート、２−血球・血清分離シート、３−支持体シート[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a blood sample carrier sheet structure for using a small amount of blood as a sample for a clinical test or the like. The present invention further relates to a blood sample measurement method, wherein the measurement is performed using a sample sample eluted from the blood sample carrier sheet construct.
[0002]
[Prior art]
BACKGROUND ART Analytical measurement of components contained in blood using a specimen as a specimen is widely performed in fields such as clinical medicine, forensic medicine, environmental pollution checking, and other fields related thereto. Recently, we check lifestyle-related diseases, such as diabetes, cholesterol, liver function, kidney function, gout, etc., to protect them easily and protect their privacy for the purpose of contributing to prevent disease and improve lifestyle. However, it is required that the inspection be performed regularly. However, usually, when testing blood components, a doctor or nurse collects 3 to 10 ml of blood (usually 5 ml of blood) from the vein of the upper arm with a syringe, and thus obtains the blood. Since the collected blood is processed using a centrifuge to obtain serum or plasma, which is the test material, such a blood collection method does not make it easy for individuals to collect blood. It must be performed by a doctor or nurse at an institution. Further, in the method of collecting blood with a syringe, there is a heavy burden on a patient or the like, and there is a need to develop a method that requires only a smaller amount of blood. Therefore, there is a demand for establishing a method for easily collecting only a small amount of blood and a test method using such a blood sample at an individual's responsibility.
[0003]
In addition, in the blood sampling method using a syringe as described above, the obtained sample is a liquid, so it is troublesome to handle, and special care is required for its transport, and the blood once obtained is centrifuged. It is also necessary to perform processing at a specialized institution equipped with such a method, and furthermore, in some cases, it is necessary to perform the processing promptly after blood collection, so that there is a problem that it cannot be handled without equipment for that purpose. In addition, when a very large number of blood samples are handled (when a routine test is performed, it becomes necessary to process a very large number of samples at the same time), such a task becomes difficult.
Conventionally, some blood test departments use a blood sampler lancet to collect a small amount of blood from the fingertips, soak the blood into filter paper (filter matrix sheet), and elute the blood from the soaked part. Attempts have been made to make measurements. In such a conventional test using filter paper blood, whole blood containing blood cells (mainly red blood cells) is directly used for measurement. This means that the amount of blood to be handled must be extremely small by the method of infiltrating the blood into the filter paper. (In the case of a personal blood collection method using a blood collection device lancet, there is also an expectation that this will be solved by the familiarity of each individual. However, it is usually best to obtain about 1 to 3 drops, and at most about 5 drops of blood at a time), and the blood cells (mainly red blood cells) contained in the blood, solids such as blood clots, etc. This is because it is impossible to separate the components before the measurement, and the components must be present in the measurement system as they are.
[0004]
It is widely practiced to detect and measure soluble components dissolved in blood to obtain clinical information. However, whole blood obtained as a sample contains blood cell components such as red blood cells and white blood cells, which interfere with such clinical tests, and therefore are not used for tests that use whole blood as a sample to be measured. In general, it is necessary to separate blood cells such as red blood cells and serum or plasma components promptly after blood collection. In addition, blood causes hemolysis during storage, and colored substances such as hemoglobin become serious interfering substances when measuring soluble components in blood.
For the purpose of using a small amount of blood as a sample for clinical tests, etc., using a lancet, etc., impregnated into filter paper that has the function of separating a small amount of blood collected, such as one or two drops, into blood cells and serum, It is known to use the carrier function of sample blood and the function of separating serum and blood cells (Patent Documents 1, 2, and 3).
[0005]
[Patent Document 1]
JP-A-5-209877
[Patent Document 2]
JP-A-10-132800
[Patent Document 3]
JP 2001-221794 A
[0006]
[Problems to be solved by the invention]
It is the individual's responsibility to collect a small amount of blood from a fingertip or the like using a blood collection device such as a lancet (Personal Blood Collection Method), and to collect a small amount of blood simply and use the small amount of blood thus collected. Therefore, there is a demand for the development of a method for testing / measuring using blood as a specimen in a wide range, such as for checking lifestyle-related diseases.
When a small amount of blood sample such as one or two drops is used, the conventional method using filter paper blood measures whole blood, and in most cases, it is impossible to perform the measurement due to the influence of blood cell components. It was possible. When ordinary filter paper is used for the purpose of being easily affected by blood cell components, the amount of blood adhered or adsorbed on the filter paper is very small and is separated into serum components and blood cell components after elution from the filter paper. It is impossible to perform such a process.
[0007]
In order to solve this problem, an attempt to use a filter paper (filter matrix medium or filter matrix sheet) having a function of separating blood cell components from serum or plasma components has been proposed, but when a small amount of blood is used as a sample. In the above, even if a blood cell-serum separation sheet (blood cell-serum separation filter paper; blood cell-serum separation medium or blood cell-serum separation carrier) is used as a carrier of the blood sample, the penetration of blood is poor, and a very small amount of blood is handled. Nevertheless, blood may flow on the surface and separation cannot be performed efficiently, or blood may not flow evenly in the sheet, and the edge of the sheet may be more developed than the center of the sheet. The speed is fast and shows a V-shaped development. Therefore, the shape of the blood cell region and the serum region on the sheet after being separated into blood cells and serum has a complicated shape, and when the blood cell-serum separation sheet is sampled by cutting, for example, the serum portion However, it is difficult to obtain a sheet portion of the serum region, and it is also difficult to obtain a sufficient amount of serum sample. Furthermore, the separation distance of the serum portion separated from the blood cell portion is small, and the separation and recovery of serum is not always satisfactory. As a result, the test measurement of components in the serum becomes inaccurate or the measurement itself is not performed. However, there are problems that the sampling operation becomes impossible and the sampling operation becomes complicated or difficult. The above problem is necessarily caused by the extremely small amount of collected blood to be handled, and there is no guideline for solving this problem.
[0008]
One of the purposes of using a small amount of blood as a specimen for clinical tests, etc., is that individuals can easily perform blood sampling themselves, and then go to specialized facilities such as hospitals and use specialists such as doctors and nurses. It is possible to do what can be done on a daily basis without blood sampling. However, when each of the subjects collects blood and attaches the blood to the sample carrier sheet, a small amount of blood exuding from the wound is generally brought into contact with the carrier sheet surface by applying the wound to the carrier sheet surface. At least, blood is attached to the carrier sheet and transferred. If there is a drug that may adversely affect the human body at the blood application site of the carrier sheet, there is also a problem that if the wound is brought into contact with the carrier sheet surface, the drug may transfer to the human body side . Furthermore, depending on the material, when sampling such as extracting a sample such as serum from a water-absorbing filter matrix sheet (generally referred to simply as "filter paper"), debris or the like is liberated and is contained in the measurement sample. It is necessary to avoid such problems because they may interfere with accurate and rapid measurement due to contamination and hindrance to measurement and inspection.
[0009]
[Means for Solving the Problems]
As a result of intensive research to solve the above problems, not only a blood carrier sheet made of a specific material is selected, but also at least two types of blood carrier sheets are combined to form a blood sample carrier structure of a specific form. As a result, they have found that they have excellent blood cell-serum separation ability and that there is no danger of causing any problem on the human body irrespective of their use, and thus completed the present invention.
[0010]
The present invention
[1] A blood sample carrier construct used when transporting a very small amount of blood for use as a sample,
(A) The carrier structure is constituted by combining a support sheet and a blood carrier sheet, and the blood carrier sheet is constituted by a fibrous matrix;
(B) The blood carrier sheet is
(1) It has a rectangular shape, and when blood adheres to one portion of the surface of the rectangular sheet, the liquid moves in the lateral direction and separates into a blood cell component and a serum component or a plasma component. A blood cell component region mainly containing a component and a soluble blood component region mainly containing a serum component or a plasma component can be formed at least in part in a spatially distinguishable form, and
(2) The blood carrier sheet contains a sheet selected from the group consisting of a surfactant, a blocking agent, and a protein stabilizer.
(C) a blood sample carrier component, which is arranged on the support sheet in the order of (B);
[0011]
[2] The surfactant, blocking agent or protein stabilizer of the above [1] (B) (2) is used as Tween 20, NP40, Triton X100, Lipidure BL A03, Lipidure BL B03, Lipidure BL D05, Lipidure BLE02. , Lipidure BL G04, Lipidure BL J02, N101, N102, and H100, and the like.
[3] The sheet of [1] (B) was impregnated with a sheet composed of the fibrous matrix with an aqueous solution obtained by diluting a surfactant, a blocking agent, a protein stabilizer or the like to an appropriate concentration. The blood sample carrier construct according to the above [1] or [2], which is obtained by post-drying;
[4] The configuration of the blood sample carrier according to any one of [1] to [3], wherein the sheet of [1] (B) is about 4 to 10 mm × about 40 to 120 mm. body;
[5] The sheet of [1] to [4], wherein the sheet of [1] (B) is a carrier sheet such as Hemasep L (trade name, Paul Corporation, USA). A blood sample carrier construct according to any one of the above;
[6] the carrier component is configured by combining a support sheet and at least two types of blood carrier sheets;
(A) One of the blood carrier sheets is the one described in the above [1] (B),
(B) the other of the blood carrier sheet is
(I) a part (also referred to as a blood dripping sheet) that constitutes a part to which blood to be collected is applied, which can temporarily hold adhered blood, and removes the applied blood from the above (a) (A) being disposed in contact with at least one of the planes of the rectangular sheet of (a), and
(Ii) the blood carrier sheet is substantially non-toxic to the human body with respect to blood contact;
(C) The sheet (a) is disposed on the support sheet, and the sheet (b) is disposed at least partially on the sheet (a).
The blood sample carrier constituent according to the above [1], which is characterized by comprising:
[7] The blood sample carrier construct according to [6], wherein the sheet of [6] (b) is about 4 to 10 mm x about 4 to 10 mm;
[0012]
[8] The non-toxicity of the sheet [6] (b) means that the sheet does not contain any material selected from the group consisting of surfactants, blocking agents, protein stabilizers and the like. A blood sample carrier construct according to the above [6] or [7];
[9] The sheet according to any one of [6] to [8], wherein the sheet of [6] (b) is a carrier sheet such as F147-11 (trade name, Whatman). A blood sample carrier construct;
[10] The blood according to any one of [6] to [9], wherein the sheet of [6] (b) is for dropping blood in an amount of 20 to 100 μl. Sample carrier construct;
[11] The blood sample carrier composition according to any one of the above [1] to [10], wherein the blood sample carrier composition carries blood in an amount of 20 to 100 μl;
[12] The blood sample carrier construct according to [1], which has the structure or function described herein with reference to any one of the attached FIGS. I do.
[0013]
In a preferred embodiment of the present invention, the serum separation sheet of the separated serum portion is separated, a serum sample is eluted therefrom, and / or the serum separation sheet of the separated blood cell portion is separated. The test sample is eluted therefrom, and the measurement test is performed using the eluted sample.
In a particularly preferred embodiment of the present invention, quantitative measurements can be made.
Other objects, features, advantages and aspects of the present invention will be apparent to those skilled in the art from the following description. However, it should be understood that the description of the present specification, including the following description and the description of the specific examples and the like, shows preferred embodiments of the present invention and is given only for explanation. I want to. Various changes and / or alterations (or modifications) within the spirit and scope of the present invention disclosed herein will be apparent to those skilled in the art, based on the following description and knowledge from other portions of the present specification. Will be readily apparent. All patents and references cited herein are cited for explanatory purposes, which are to be construed as being incorporated herein by reference. is there.
[0014]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
The blood sample carrier sheet structure of the present invention is one to which whole blood is typically applied, and is used for transporting and holding a sample from a place where blood is collected to a place where a predetermined test is performed. Things. The target blood sample is usually planned to be a very small amount, and aims at achieving a test / measurement of a substantial blood component by handling a blood volume of, for example, one to two drops. Usually, the volume of blood per drop varies from case to case, but is usually about 30-45 μl, typically about 40 μl. In the present invention, in a test or measurement using blood as a sample sample, a small amount of blood is collected from a fingertip or the like using a blood collection device such as a blood collection device lancet, and the small amount of blood thus collected is used as a blood sample carrier sheet structure. A region (1) for retaining a serum component or a plasma component and a region (2) for retaining a solid component such as a blood cell component, of the region that has been impregnated and permeated and separated into a blood cell component and a serum or plasma component. The area (1) separated from the area (2) is subjected to elution treatment, and / or the area (2) separated from the area (1) is subjected to elution treatment. A method for measuring a blood sample is provided, wherein the obtained eluate is used as a sample sample.
[0015]
When fresh blood is allowed to stand, blood coagulation occurs, and then the blood cells and fibrin shrink in clumps, releasing a clear supernatant, which is called serum. Accordingly, the serum is a liquid component of blood, which is usually the whole blood excluding fibrin clots and blood cells, but is not particularly limited as long as it is a simple liquid component of blood that can be suitably used for test and measurement. Plasma refers to a liquid component of blood circulating in a living body and corresponds to a portion of fresh whole blood excluding erythrocytes and other formed components, and is usually oxalate, citrate, ethylenediamine after blood collection It is obtained by adding an anticoagulant such as tetraacetic acid (EDTA) salt or heparin, or by keeping the temperature low to prevent the progress of blood coagulation, and then separating or removing the formed components by standing or centrifuging. However, it is not particularly limited as long as it is a liquid component of blood that can be suitably used for test measurement.
[0016]
An example of a blood sample carrier sheet structure manufactured according to the present invention will be described below with reference to FIGS.
FIG. 1 is a plan view of the blood sample carrier sheet structure viewed from above, FIG. 2 is a diagram of the blood sample carrier sheet structure viewed from one side, and FIG. FIG. 2 shows a perspective overhead view of the sample carrier sheet structure. It should be noted that FIGS. 1 to 3 are partially exaggerated for the sake of explanation, and that the sizes themselves and their relative sizes do not necessarily reflect the real thing. In the figure, reference numeral 1 denotes a portion to which blood to be collected is applied, that is, a sheet that makes blood come into contact with the portion and penetrates or absorbs it. The sheet is a blood dropping sheet, and generally has a possibility of directly contacting a wound of a human body from which blood is collected, or indirectly contacting a wound of a human body via blood. In a preferred embodiment of the invention, the sheet is F147-11 (trade name), a filter paper available from Whatman. Although the size is not particularly limited, when one drop of blood is penetrated or absorbed, the size is about 5 mm (width) × about 10 mm (length), and the blood development direction is usually the length. Are arranged in such a direction. The sheet at the site where the blood to be collected is applied (dropped) is easily permeated or absorbed by blood, but is inconvenient if the blood flows out of other than a predetermined section.
[0017]
In the figure, reference numeral 2 denotes a sheet (blood cell / serum separation sheet) that allows blood to penetrate and move in the illustrated developing direction and separate into blood cell components and serum components or plasma components. In a preferred embodiment of the invention, the sheet is not limited thereto, as described below, but is not limited to Hemasep L (available from Pall Corporation, USA). It is commercially available as. Although the size is not particularly limited, in the case of permeating or absorbing one drop of blood, the size is about 5 mm (width) × about 100 mm (length), and the blood development direction is usually the length. Are arranged in such a direction. 2 and 3, the sheet No. 2 is fixed on a support sheet 3 (generally referred to as "backing paper") with a double-sided adhesive tape or the like, and a part of the sheet No. 1 is formed. Under the sheet. A portion of the sheet 1 on the mount 3 is fixed to the mount 3 with a double-sided adhesive tape or the like. In a preferred embodiment, the overlap between sheet 1 and sheet 2 is about 2-3 mm. In another aspect, the blood sample carrier sheet structure of the present invention is characterized in that the blood dropping sheet 1 and the blood cell / serum separation sheet 2 are characterized in that most of the surfaces do not overlap each other. Good. Examples of the blood sample carrier sheet structure include those in which the area of about 30 to 98%, or about 50 to 90% of the blood drop sheet does not overlap the blood cell / serum separation sheet surface.
[0018]
As is apparent from the drawings, a typical blood sample carrier sheet structure of the present invention includes a mount 3, a sheet 2 capable of separating blood cells and serum or plasma components, and a blood dripping sheet 1. At least a part thereof has a structure in which a mount 3, a sheet 2 that can be separated into a blood cell component and a serum component or a plasma component, and a blood dropping sheet 1 are stacked in this order. The representative blood sample carrier sheet structure of the present invention does not apply blood to the sheet 2 that can be separated into blood cell components and serum components or plasma components at the time of blood collection. It has the features applied above. In one embodiment, a plurality of units of the combination of the blood dropping sheet 1 and the sheet 2 that can be separated into a blood cell component and a serum component or a plasma component may be provided on the mount 3.
[0019]
In the present specification, when blood is attached to one portion of the surface of a sheet, the liquid moves in the lateral direction, is separated into a blood cell component and a serum component or a plasma component, and a blood cell component region mainly containing a blood cell component and a serum. As a material capable of forming at least a part of a soluble blood component region mainly containing a component or a plasma component in a form that can be spatially distinguished (for example, a sheet indicated by reference numeral 2 in the accompanying drawings), Examples of the sheet type include a so-called filter matrix. The sheet composed of such a filter matrix is composed of a fibrous matrix, and is generally called a filter paper (filter paper). In the present specification, when whole blood is applied thereto, it separates into a blood cell component and a serum component or a plasma component, and thus may be referred to as a “blood cell / serum separation sheet” or “blood cell / serum separation filter paper”.
[0020]
The "blood cell / serum separation sheet" is capable of infiltrating and / or adsorbing blood, separating the permeated blood and / or adsorbed blood by a chromatographic principle, and separating the separated blood. A component capable of retaining the components therein in a separated state, or a component capable of separating serum and other components and retaining the serum component in a separated state, or a component capable of retaining the serum component in a separated state, or a component capable of retaining plasma and other components A component capable of separating the plasma component into components and maintaining the separated plasma component, and preferably a fibrous structure. In particular, examples of such a material include those having a structure made of natural polymer, glass fiber fiber or synthetic polymer fiber. The polymer may include cellulosic materials such as filter paper or fiber-containing paper, modified natural or synthetic polymers, and the like. The synthetic polymer fiber structure is made of a synthetic polymer resin, and preferably includes those which can be used to form an aggregated web by a melt-blown process.
[0021]
Examples of such synthetic polymer resins (polymers) include polyalkylene terephthalates such as polybutylene terephthalate, polyethylene terephthalate, and polypropylene terephthalate; polyalkylenes such as polymethylpentene, polypropylene, polyethylene, and polyvinylidene fluoride; and polyhexamethylene adipate. Various polyamides such as mid (nylon 66), nylon 6, nylon 610, nylon 7, nylon 11, nylon 12, and the like, polysulfones, polycarbonates, and the like. Preferably, such a polymer is used after being processed into a formed body (structure) in the form of a fiber sheet (fiber mat). A sheet made of such a polymer fiber is preferably modified so that its surface is grafted and the fiber sheet is sufficiently wetted with blood to obtain a predetermined blood permeability and / or adsorption ability. Further, the glass fiber fiber structure can be used by selecting from those known in the art, and a sheet made of the fiber may have its surface similarly grafted.
[0022]
The fiber structure is particularly preferably composed of a fiber structure having properties capable of separating whole blood into components such as blood cells and plasma components, or blood clots and serum components by chromatography. One. These include those grafted to have as high a density of hydroxyl groups as possible on the surface of the fiber structure, those grafted so that hydroxyl groups and carboxyl groups coexist, and those in which hydroxyl groups and methyl groups coexist. A grafted product, a grafted product having an amine group, and the like can be given.
A desirable process is also obtained by using monomers that exhibit hydroxyl groups and polymerizing these monomers in an aqueous environment. One of ordinary skill in the art will readily be able to select what monomers to choose and how to perform the grafting depending on the purpose.
[0023]
The sheet (or fibrous structure, typically in the form of filter paper) used in the present invention is preferably, for example, a hydrophilic one made of a polyamide material or a glass fiber material. A typical example of the polyamide is nylon. Preferred nylons include polyhexamethylene adipate, poly-ε-caprolactam, polymethylene sebacamide, poly-7-aminoheptanoamide, and polyhexamethylene azelamide, and particularly preferred are polyhexamethylene adipamide. Pamide (nylon 66). More particularly preferred are non-cortical, substantially alcohol-insoluble hydrophilic polyamide materials. These sheets (fibers) also preferably have methylene CH in the range of about 5: 1 to about 7: 1. ₂ : Amide NHCO.
The properties of this preferred type of material result at least in part from the concentration of the amine and carboxyl end groups of the polyamide on the surface. As the "surface" or "material surface", by using one component or a plurality of components, there is an external surface which is visibly exposed and an interior surface of a sheet composed of fibers. And the inner surface of the material to be used. That is, a surface is a portion of a material that can be contacted by a fluid, especially a liquid.
[0024]
Preferred are hydrophilic polyamide materials and glass fiber materials with controlled surface properties. Particularly preferred are hydrophilic and microporous non-cortical polyamide materials or glass fiber materials having controlled surface properties. The hydrophilic, substantially alcohol-insoluble material having controlled surface properties is, for example, an alcohol-insoluble polymer resin of the type described above, ie methylene CH ₂ : Amide NHCO in the range of about 5: 1 to about 7: 1 can be formed by simultaneously spinning or drawing together with a water-soluble surface modifying polymer having a functional polar group. it can.
The surface modified polymers used to make the useful controlled surface polyamide and glass fiber materials include nucleophilic chemical functional groups such as hydroxyl, carboxyl, amine and imine groups. It contains a substantial part. As a result, the structural material will have a high concentration of functional groups on its surface, such as hydroxyl groups, carboxyl groups, amine groups, or a combination of any of the above groups that do not react with each other. These polyamides with controlled surface properties are more preferred than polyamide resins without controlled surface properties, i.e., those starting polyamides which are formed from the preferred polyamide resins, but are not coated with a surface modifying polymer. Also have a high concentration of carboxyl or amine groups.
[0025]
Particularly useful are the aforementioned methylene CHs with controlled surface properties caused by the inclusion of high concentrations of carboxyl components. ₂ : Amide NHCO is a hydrophilic, microporous, substantially alcohol-insoluble polyamide material formed from hexamethylene adipamide having the ratio NHCO. The inclusion of a surface carboxyl component can be produced by simultaneously molding the nylon with a copolymer containing a large amount of carboxyl groups.
Other materials that are also particularly useful are those with controlled surface properties, surface treatment with amine functional groups by simultaneously molding the nylon with a polymer containing abundant primary and secondary amine groups. Are denatured. Materials formed from polyhexamethylene adipamide containing hydroxyl-modified surfaces thus obtained are also useful in the present invention. Such materials are made by co-drawing a nylon resin with a polymer containing a large amount of hydroxyl groups.
[0026]
It is necessary that the fiber mat made of such a polymer or the like be suitably in contact with and impregnated with blood (for example, whole blood). For such a purpose, the critical value of the surface tension capable of imparting wettability of the fiber mat (critical value of surface tension imparting wettability) is usually about 46 dynes / cm or less. It must be increased to 65 dynes / cm 2 or more, preferably 95 dynes / cm 2 or more, and more preferably 110 dynes / cm 2 or more. Here, the wettability-imparting surface tension critical value can be determined by dropping a specific amount of a liquid having a specific surface tension onto the surface and measuring whether or not the surface is wet. For example, when a certain liquid is dropped on the surface of a material by 10 drops and left as it is, the liquid is absorbed at the place where the liquid is dropped, or up to 9 drops out of 10 drops are apparent. If it is absorbed, it is considered that wetting has occurred, and conversely, no liquid is absorbed at the place where it is dropped, or up to 9 out of 10 drops are absorbed. If no, no wetting occurs. When a liquid having a surface tension of 26 dynes / cm 2 was dropped, rapid wetting occurred. However, when a liquid having a surface tension of 29 dynes / cm 2 was dropped, no wetting occurred. In addition, the critical value of the surface tension capable of imparting wettability of the material (mat) (critical value of surface tension imparting wettability) is 27.5 dynes / cm 2. The value of the case where the wetting occurs or the case where the wetting does not occur, of course, depends on the surface physical properties of the substance constituting the constituent material and the size of the pores present on the surface interacting with the liquid.
For example, in order to impregnate whole blood, it is preferable that the critical value of surface tension for imparting wettability is as high as possible. It is also a desirable product guide for the present invention that the wettability imparting surface tension critical value exceed 65 dynes / cm 2, more desirably 110 dynes / cm 2. As for the glass fiber material, similarly to the above-mentioned polyamide material, those having the properties and physical properties as described above are suitable, and may be obtained by a similar method.
[0027]
In the present invention, blood (for example, whole blood) can be permeated and / or adsorbed, and the permeated and / or adsorbed blood is separated by the chromatographic principle, and the components in the separated blood are separated. The fiber structure that can be held in a state is formed into a structure such as a molded body, for example, a fiber sheet (or a fiber mat, typically, filter paper). The direction of movement from the area where the blood has penetrated and / or adsorbed, for example from the area where the blood has penetrated and / or adsorbed, to the place where the required components from the blood appear, for example where the serum or plasma appears, is an important design. And this is referred to as the direction of flow.
[0028]
The material of the fibrous structure allows it to be integrally shaped into a preferred structure. For example, a multilayer structure can be made to pass the product through a laminating oven characterized by two moving belts, and in the oven using a pressure roll to bring the material to a predetermined density. This operation would combine the layers into a single, unitary sheet, which could then be cut to the size desired for use. The grafting performed to obtain the desired conditions may be before or after lamination. Lay-up can also be performed by compressing between hot plates to obtain a laminated sheet. Further, a heating die may be used to form a special shape, or the pore size between adjacent regions may be changed.
It can also be formed into a rolled sheet as a preformed shape by thermoforming. For example, a multi-layer fiber mat consisting of fibers having a diameter of 3 μm or less can be molded at room temperature, which is sufficiently feasible to use.
[0029]
When blood undergoes separation based on the principle of chromatography, for example, when serum is obtained from whole blood, separation does not need to occur so that each component in whole blood is completely separate. It is sufficient if the separation can be achieved without causing any problem. In some cases, it is desirable that liquid components in whole blood can be substantially recovered as serum components. Similarly, for example, when plasma is obtained from whole blood by separation, it is sufficient that the separation can be achieved within a range that does not cause a problem in required measurement or analysis.
[0030]
In the present invention, the structure used to hold the blood sample preferably has the properties of a directional separation sheet, and is conveniently used. Particularly preferred directional separation sheets (or alternatively referred to as directional separation mats) are those which convert whole blood into blood clots, such as blood cell components, and serum components, or blood components and plasma components, into the chromatographic principle. It has properties that can be separated by. In such a directional separation sheet, a barrier layer is provided in an area where the separation occurs to allow the movement of serum components or plasma components, but components to be removed from serum components such as blood clots, or plasma components such as red blood cells. It is also possible to provide a layer (protective layer) capable of substantially preventing the passage of the components to be removed from the components. Examples of the protective layer include those which are porous, and more preferably those which are microporous membranes. The surface of such a microporous membrane is preferably a hydrophilic resin membrane. Further, the directional separation sheet may be provided with a structure having a strong capillary suction force suitable for holding serum or plasma. Such a structure includes the above-described microporous membrane. As a structure used for holding such a blood sample, for example, a structure disclosed in Japanese Patent Application Laid-Open No. 5-31802 can be mentioned. Also preferably, a commercially available product such as Hemasep L (trade name: available from Pall Corporation, USA) can be mentioned.
[0031]
In the present invention, the directivity means that a site where a serum component or a plasma component is retained, which is obtained from a site where a blood sample is permeated and / or adsorbed, is substantially biased in a specific direction, and the principle of chromatography is used. Is achieved with a certain direction. Therefore, when the blood sample is permeated and / or adsorbed on the directional separation sheet, the separation is caused by the chromatographic movement in a certain direction, and the retention of the separated serum or plasma components at the required site occurs. However, if it has such characteristics, it can be said that it has directivity.
[0032]
In the present invention, the blood cell / serum separation sheet contains a hydrophilic compound. The hydrophilic compound can be selected from those known to impart hydrophilicity.
In the present invention, the blood cell / serum separation sheet contains a surfactant, a blocking agent, and the like. As the surfactant, it is preferable that the position at which the movement of the blood component in the developing direction gives a traveling speed as uniform as possible between the end and the center of the sheet. Representative surfactants include nonionic surfactants, and more preferably those with low hemolysis. Specific examples of the surfactant include sorbitan esters in which a polyoxyethylene residue is added to a free hydroxyl group of a partial ester of sorbitan and a higher fatty acid (higher fatty acid residues include laurate, palmitate, stearate, oleate, A mixture of stearate and palmitate; and polyoxyethylene residues include those containing about 8 to 25 mol of oxyethylene units per mol of sorbitan), polyoxyethylene alkylaryl ethers ( Examples of the polyoxyethylene residue include those containing about 5 to 20 mol of oxyethylene units per 1 mol of an alkylaryl residue, and examples of the alkylaryl residue include an octylphenyl group. Can be Particularly preferred surfactants include polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (Tween 20 (trade name)), polyoxyethylene (9) octyl phenyl ether (NP-40 (trade name)), polyoxyethylene ( 10) Octyl phenyl ether (Triton X-100 (trade name)) and the like, but are not limited thereto, and those skilled in the art can conduct appropriate tests by conducting tests according to the description in this specification. It is possible to select a suitable one.
[0033]
The blood cell / serum separation sheet is a phospholipid obtained by polymerizing an organic compound having a quaternary ammonium base and a phosphate ester residue, for example, 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine (MPC) alone or with another monomer. Polymers, and those containing the MPC or the phospholipid polymer in combination with a protein and having an appropriate molecular weight and adjusted hydrophilicity / hydrophobicity. A typical blood cell / serum separation sheet contains an artificial protein, for example, Lipidure (trade name: Lipidure) BL series (manufactured by NOF CORPORATION, sold by Daiichi Kiki Co., Ltd.). Preferably, the blood cell / serum separation sheet contains a material selected from Lipidure BL A03, B03, D05, E02, G04, J02 and the like. Further, the blood cell / serum separation sheet contains one selected from a blocking reagent, a stabilizing reagent, and the like sold as an assay reagent. Examples of the blocking reagent include those made of a synthetic polymer and having excellent stabilizing ability or non-specific adsorption ability. A typical blood cell / serum separation sheet contains, for example, a blocking reagent N101 or N102 for immunological measurement (manufactured by NOF CORPORATION, sold by Daiichi Kiki Co., Ltd.). Examples of the stabilizing reagent include those comprising a synthetic polymer and exhibiting a stabilizing effect on a protein solution, and those exhibiting a stabilizing effect on freezing and freeze-drying of a protein solution. The representative blood cell / serum separation sheet contains, for example, a peroxidase stabilizing reagent H100 for immunological measurement (manufactured by NOF CORPORATION, sold by Daiichi Kiki Co., Ltd.).
[0034]
To impregnate the blood cell / serum separation sheet with a surfactant, a blocking agent, or the like, for example, immerse the blood cell / serum separation sheet in a diluent containing the component appropriately diluted with purified water, and adjust the temperature at an appropriate temperature. The drying treatment may be performed for an appropriate time. For example, a commercially available reagent can be diluted about 5 to 100 times for use. The drying treatment may be, for example, at room temperature, typically room temperature, for about 1 hour to about 2 days, for example, overnight. In some cases, the blood cell / serum separation sheet may be immersed in an alcohol such as methanol before being immersed in the diluent to enhance the permeability of the diluent of the aqueous solution.
[0035]
In the present invention, the blood dripping sheet is one having a fast blood absorption, one not causing or hardly causing hemolysis, one having a favorable effect on the separation of serum components or plasma components on a blood cell / serum separation sheet, and blood alone. Has the ability to separate the blood cell component and the serum component or the plasma component to some extent, has the ability to transfer a predetermined component to the blood cell / serum separation sheet through a part that is partially in contact with, or preferably has high ability And the resulting recovered protein is selected from those having properties or characteristics selected from the group consisting of those close to the original plasma. In view of the relatively small size of the blood sample carrier sheet construct, the blood dropping sheet can be selected from those having good workability. Those skilled in the art will be able to easily determine what to select by conducting tests with reference to the description in this specification. A blood dropping sheet suitable for use in the present invention includes a sheet form composed of a so-called filter matrix. The sheet composed of such a filter matrix is composed of a fibrous matrix, and is generally called filter paper (filter paper). The blood dropping sheet is provided by Whatman International Ltd. , Springfield Mill James Whatman Way Maidstone Kent, England, and the like. Specific examples of the blood dropping sheet include, for example, grades GF / AVA, F487-09, F487-14, F147-11, GF / D, F145-02, GF / DVA (all manufactured by Whatman). Particularly preferred blood dropping sheets include, for example, F487-09, F487-14, F147-11, GF / AVA, etc., and F147-11 is particularly preferably used.
[0036]
The size of the blood dropping sheet is preferably such that the blood to be dropped can be sufficiently absorbed, but it is necessary to transfer a predetermined serum component or plasma component to the blood cell / serum separation sheet as much as possible. Therefore, the size can be determined naturally. Usually, the blood volume of one drop is not transferred to a portion outside the sheet (for example, to such an extent that it does not leak to the mount, etc.), but penetrates the blood cell / serum separation sheet, and It is sufficient that the region of the serum component or the plasma component can be sufficiently provided. Therefore, the size can be appropriately determined by experiments and the like. The shape of the blood dropping sheet can be selected as appropriate, such as a substantially square, rectangular, circular, or elliptical shape. However, from the viewpoint of workability, the width is substantially the same as that of the blood cell / serum separation sheet (blood cell / serum separation). A rectangular shape having a length (in a direction perpendicular to the direction in which blood is spread on the sheet) sufficient to perform the above-described function (for example, about 7 to 12 mm) may be used.
As the support sheet, any sheet can be used as long as it is suitable for it, but usually paper can be used. The paper can be selected from any of Western paper, Japanese paper, and paperboard, and furthermore, chemical fiber paper can be used. The surface of the paper may be plastic, metal-coated, surface-treated with them, or printed. In addition, a blood cell / serum separation sheet and a support sheet can be designed with reference to the descriptions in JP-A-10-132800 and JP-A-2001-221794, and the usage thereof can be applied. The description is incorporated herein by reference thereto.
[0037]
As a blood sampling method when finger blood or earlobe blood is used as a test sample, more specifically, a fingertip or earlobe of the subject is thoroughly massaged or warmed before puncturing, and punctured with a disinfecting gauze. The site is wiped dry, and the fingertip or earlobe is punctured with a disposable lancet or simple scalpel blade to bleed. In this case, the wound is preferably as small as possible (about 3 mm or less). A method of obtaining blood using a lancet is simple and preferably used. After the blood is sufficiently bleeding from the puncture part, the blood sample carrier part of the blood sample carrier is sucked up. In some cases, the first blood droplets may be wiped off and then adsorbed on the fibers of the sheet portion. Normally, the sheet of the blood sample carrier component is kept dry until the sample is adsorbed. The amount of blood to be applied is usually a ball with a fingertip and a bleeding of 5 to 6 mm in diameter, preferably about 20 to 50 μL per drop (for example, about 25 to 40 μL). In the case of a clinical test, for example, but not limited to, a few drops, usually 1-5 drops of blood, more usually 1-3 drops or 1-2 drops (eg, about 20 μL-90 μL, Or about 25-55 μL) of blood. When each individual collects blood using the lancet or the like by himself (personal blood sampling method), it depends on whether each individual is familiar with the procedure or not, but usually one to two drops of blood at a time, at most It is considered that the limit is to obtain up to about 5 drops. It is assumed that expecting more bleeding is not very realistic.
[0038]
When the bleeding blood is sucked into the sheet of the blood sample carrier composition, the permeated blood moves to the blood cell / serum separation sheet below, and the blood spreads in the horizontal direction, and the serum separation is performed. Done. That is, the serum component is separated from solid components such as blood cells (mainly composed of red blood cells), and the serum component-carrying portion and the blood cell-carrying portion of the blood cell / serum separation sheet are separated by scissors or the like. Becomes possible. The separation treatment into serum can be completed in about 1 to 15 minutes, usually about 2 to 5 minutes. In general, it is preferable that a single strip of each blood sample carrier component be sucked for each drop of bleeding blood. When the blood sample carrier composition of the present invention is used, the blood cell / serum separation sheet and the blood dropping sheet are composed of different structures, so that the serum component area or the plasma component can be easily sampled (component extraction). A process (eg, an interface) in which the region is formed into a good shape (for example, blood is substantially uniformly penetrated or moved in the developing direction to form a shape that is easy to cut or the like and / or has a long area in the developing direction). Even if a treatment with an agent such as an activator and / or a blocking agent is added, the contact with the bleeding wound is a blood drop sheet that has not been treated, so there is no safety problem. Or there is an advantage that there is little. On the other hand, it becomes a micro blood carrier with good handling performance such as giving excellent sampling properties, and it can be handled by individuals, it is safe, and it can take advantage of such advantages as not being bulky even for many samples. I can do it.
[0039]
After the serum separation process is completed, the sheet of the blood sample carrier component may be dried as necessary in a normal process. The blood sample subjected to the separation treatment can be preferably naturally dried (air-dried). After fully air-drying, the blood sample carrier composition holding serum (or just the blood cell / serum separation sheet holding serum) should be stored in a refrigerator (2-8 ° C), avoiding moisture absorption. Can be. When it is desired to keep the separated serum portion in a wet state, the whole blood sample carrier component may be stored in a container such as a sealable bag, and then the mouth of the bag may be sealed.
[0040]
The blood sample carrier component holding the serum thus stored and / or transported can be handled as follows when performing the test.
The serum part of the blood cell / serum separation sheet of the blood sample carrier composition is cut out with scissors together with the sheet. In particular, a required part used for inspection is selected and cut out. The cutting can be performed using scissors or using a computer-controlled cutter equipped with a mechanism for selectively recognizing the serum portion on the sheet. Usually, at the time of cutting, it is desirable that the portion that carries serum or plasma and the portion that carries blood cells and the like be separated, so that the portion that carries serum or plasma is obtained as much as possible. The test component retained therein is eluted from the cut-out sheet of the serum portion into the liquid phase, and the sample thus obtained is subjected to required measurement and analysis. In addition, a separation sheet portion where a component desired to be used as a sample is located can be arbitrarily selected and cut and used.
By using the blood sample carrier composition of the present invention, it is possible to broaden the serum region or the plasma region, facilitate sampling, perform a stable sampling process, perform a quick sampling process, and obtain a test result. Can also increase the reliability.
[0041]
There is no particular limitation on the elution solution or elution method for performing the elution as long as the test component held on the sheet can be substantially natively eluted into the liquid phase. Usually, elution can be performed using a buffer solution. The buffer used to prepare the buffer is preferably one that does not hinder the measurement in measuring the analyte to be measured by applying a biochemical measurement method. It can be selected from those commonly used or those that can be easily used. For example, as a buffer, phosphoric acid, N- (2-hydroxyethyl) piperazine-N ′-(2-ethanesulfonic acid) (HEPES), piperazine-N, N′-bis (2-ethanesulfonic acid) ( PIPES), 3- (cyclohexylamino) -1-propanesulfonic acid (CAPS), 3- (N-morpholino) propanesulfonic acid (MOPS), boric acid, citric acid, barbital, imidazole, and salts thereof. Can be These can be used alone or in any combination.
[0042]
Suitable acids, for example, inorganic acids such as hydrochloric acid, sulfuric acid, nitric acid and phosphoric acid, organic acids such as acetic acid, citric acid, maleic acid and fumaric acid, and alkalis, for example, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium carbonate Potassium carbonate, sodium bicarbonate, alkali hydroxides such as potassium bicarbonate, organic bases such as triethylamine, etc., so that the pH can be adjusted to an appropriate value, and they can be optionally combined or blended. Can be used. An aqueous solution is preferably used, and examples thereof include a phosphate buffer, a TES buffer, a HEPES buffer, a borate buffer, a citrate buffer, a barbital buffer, and an imidazole-hydrochloride buffer. From the viewpoint of elution, it is preferable to use a buffer solution (pH 6.8 to 8.2, preferably pH 7.0 to 8.0) such as a phosphate buffer solution as the elution solution.
[0043]
Usually, since the amount of the test component held on the sheet is very small or very small, the amount of the elution solution to be used can be as small as possible if effective elution can be achieved. Since there is a certain amount of volume of the separation sheet holding the test component, if the amount is too small, there is a problem that the separation sheet will not be immersed in the elution solution. The lower limit can be determined from the convenience of measurement such as the required amount. On the other hand, if a too large amount of the elution solution is used, the amount of the test component retained on the separation sheet is very small, so that a measurable concentration cannot be obtained. From another viewpoint, this also means that it is quite difficult to adjust the concentration of the test component present in the liquid once eluted.
[0044]
The elution temperature and elution time are not particularly limited as long as effective elution can be achieved, but the elution temperature can be usually from refrigeration to normal temperature, for example, 0 ° C to 40 ° C, more usually 10 ° C to 30 ° C. ° C, more usually between 15 ° C and 26 ° C. The elution time is not particularly limited and is preferably shorter in terms of efficiency, but is usually about 5 minutes to 24 hours, preferably about 10 minutes to 6 hours, and more preferably about 20 minutes to 4 hours. About 30 minutes to 2 hours. The elution may be carried out while standing, or may be carried out while appropriately stirring or shaking the solution for elution.
The amount of the elution solution is not particularly limited as long as the sample sample is not diluted and cannot be measured. For example, an amount up to 600 μL, preferably 550 μL or less may be used.
[0045]
The method of the measurement is not particularly limited as long as various measurements in the above-mentioned eluate are possible. For the measurement of analytes, for example, high performance liquid chromatography, nephelometry, chemiluminescence, competitive protein binding analysis, radioreceptor assay, fluorescence, colorimetry, electrophoresis, ultracentrifugation, precipitation , Atomic absorption spectrometry, gas chromatography, immunoassay and the like.
[0046]
In addition, a method utilizing specific binding, for example, a method utilizing a reaction such as a complementary nucleic acid sequence, an effector and a receptor, an enzyme and an inhibitor, a receptor and a ligand, a complement binding reaction, and the like can also be used.
Examples of the method using the complementary nucleic acid sequence include a polymerase chain reaction (PCR) method, a reverse transcriptase polymerase polymerase chain reaction (RT-PCR) method, an ASPCR (allele-specific PCR) method, situ hybridization, Southern blot hybridization, and the like. Other genetic diagnosis methods can also be used, for example, RFLP (restriction fragment length polymorphism).
[0047]
A test sample, such as serum or plasma, obtained using the serum separation sheet of the present invention can be subjected to various measurements. These tests / measurements may be performed, if necessary, for example, edited by Hisashi Tanaka and Setsuo Yokoyama, Development of Pharmaceuticals, Vol. 10, Diagnostics, Hirokawa Shoten, published on March 15, 1990; Examples of various tests listed in 60,000-1 NE prepared in April 1995 can be cited, and the contents thereof and the contents described in the references cited therein are herein incorporated by reference. Is included in the contents of.
[0048]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to Examples. However, these Examples are merely provided for describing the present invention and for referencing specific embodiments thereof. These exemplifications are intended to illustrate certain specific embodiments of the present invention, but are not intended to limit or limit the scope of the invention disclosed herein. It is to be understood that the invention is capable of various embodiments based on the teachings herein.
All examples, unless otherwise described in detail, are or can be performed using standard techniques, which are well known and routine to those skilled in the art. .
[0049]
Example 1
(1) Since a small amount of blood is absorbed, dried, transported, and then subjected to an extraction treatment, a large amount of filter paper debris from the used matrix sheet (filter paper) may adversely affect the measurement. As a basic study, a test was conducted to select those from which filter paper residue was unlikely to appear. Various filter papers were sized, placed in a physiological saline solution (0.9% NaCl aqueous solution), intermittently stirred, treated for 30 minutes, and then removed from the extract. The absorbance of the extract was measured. The measurement was performed by leaching with 1.5 ml of 0.9% NaCl aqueous solution per three 6 mm disk filter papers, and measuring and comparing 260 nm OD, 280 nm OD and 660 nm OD. Although 280 nm OD is usually used for protein quantification, those with a large 280 nm OD value are judged to have more filter paper residue. It was confirmed that Hemasep L (Pall Corporation) was good.
[0050]
(2) Next, blood was dropped on various filter papers, and the obtained blood cell region and plasma region were measured to examine the property of separation into blood cells and plasma. As far as possible, a large plasma area is provided, and the area between the two areas is easily distinguished and has excellent properties. The presence or absence of hemolysis was also examined. Table 1 shows the results. It was confirmed that Hemasep L (Pall Corporation) had a relatively clear plasma region division and provided a long plasma region, which was favorable.
[0051]
[Table 1]

[0052]
(3) Among the results of examining the property of separating blood into blood cell components and plasma components by dropping blood on filter paper in the above (2), those showing relatively good separation properties were subjected to extraction processing from the plasma region. The occurrence of hemolysis was investigated. For extraction, the filter paper portion of the plasma component region was cut off as much as possible, and the mixture was intermittently stirred with 1.5 ml of 0.9% NaCl aqueous solution, and treated for 30 minutes to extract. The measurement was performed on the liquid obtained by removing the filter paper. It is considered that the larger the measured value of 406 nmOD is, the more the absorption due to hemoglobin is, and that hemolysis is occurring. Hemasep L (Pall Corporation) was determined to have relatively little hemolysis.
[0053]
(4) Hemasep L (Pall Corporation) is used as a sheet (filter paper) that uses a function of separating blood cell components and plasma components, and when blood (whole blood) is dropped on the sheet, blood flows or separates on the sheet. As a result, the morphology of the resulting plasma component region becomes uneven. For the purpose of improving the length of the plasma component region (to improve the separation of plasma), a comparison was made between the case where Hemasep L alone was used and the case where Hemasep L and Hemasep V (Pall Corporation) were used in combination. Was done. A sheet (filter paper) cut out in a substantially circular shape was placed at the blood drop site, and the state of development when blood was dropped there was examined. Hemasep V was used as the filter paper placed at the blood drop site. As blood, 40 μl of whole blood was dropped at the position indicated by the arrow. The size of Hemasep L was 5 × 55 mm, and the size of Hemasep V was 6 mm disc. FIG. 4 shows a conceptual diagram of the observation results.
Further, Hemasep V was placed on the end of Hemasep L, and blood (40 μl of whole blood) was dropped on the end of Hemasep L or on Hemasep V, and the separation length of each region was measured and compared. Table 2 shows the results. The combination of the two types of filter papers is judged to be more effective because the area of the plasma portion is about 50% longer.
[0054]
[Table 2]

[0055]
(5) GF / D (Whatman) is used as a filter for dropping a sample, which is placed on Hemasep L (Pall Corporation) having a structure in which two types of filter paper are combined, because the sample has excellent absorbency. However, it seems that the processability is poor with soft filter paper. That is, it seems difficult to uniformly cut the soft filter paper into a size of 5 × 5 mm. Therefore, a piece of filter paper (5 mm width × length) shown in Table 3 was placed on one end of Hemasep L (5 × 55 mm), and blood (40 μl) was dropped thereon. The blood used was collected from an EDTA blood collection tube. Measure the length after unfolding. The plasma component region was extracted with 1 ml of PBS and measured with a spectrophotometer. Table 3 shows the results. F147-11 (Whatman) was determined to be suitable as a filter paper for dropping samples.
[0056]
[Table 3]

[0057]
(6) Hemasep L (Pall Corporation) was evaluated as having excellent properties as a sheet (filter paper) using a function of separating blood cell components and plasma components, but when blood (whole blood) was dropped on it, Of the plasma component region generated by the flow of the particles on the sheet or the separation of the particles, the shape of the region becomes uneven. Then, the thing which processed the sheet (filter paper) with various reagents was examined. The suitability of a filter paper of a predetermined size treated with a surfactant or a phospholipid compound commonly used as a blocking agent was examined. The following were used as blocking agents at the following concentrations.
1 Tween 20 5% / PBS
2 NP40 5% / PBS
3 Triton 100 5% / PBS
4 Glycerol 5% / PBS
5 Lipidure BL A03 5% / PBS
6 Lipidure BL B03 5% / PBS
7 Lipidure BL D05 5% / PBS
8 Lipidure BL E02 5% / PBS
9 Lipidure BL G04 5% / PBS
10 Lipidure BL J02 5% / PBS
** Lipidure (trade name: Lipidure) is a blocking agent manufactured by NOF Corporation and sold by Daiichi Kiki Co., Ltd.
〔Preprocessing〕
Each reagent was diluted × 50 (0.1%) with Milli-Q water, and filter paper (Hemasep L, 5 × 55 mm) was immersed in these diluted solutions. The filter paper was dried over a Kimwipe and continued to dry at 37 ° C. The filter paper was used for the study that day.
(Blood expansion processing)
A filter paper (GF / D) having a diameter of 6 mm was placed on the filter paper (Hemasep L). On this, 40 μl of EDTA blood was dropped. We saw the separation of blood cells and plasma. As a control, untreated filter paper was used. Two types of sample blood were used.
The length of the plasma portion separated from the blood cells was measured. Next, the separated part of the plasma (plasma holding area) was cut out and placed in a tube. Then, 200 μl of PBS was added thereto, and the mixture was stirred for 30 minutes (scale 2 of a stirrer), and then left at 4 ° C. for 2 hours. Then, the protein concentration was measured (total protein, Wako (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)) by Hitachi 7070 (Co., Ltd.). Hemoglobin concentration was also measured.
Judging from the results, the separation of blood cells and plasma was good. However, because the filter paper was placed directly on the aluminum foil, blood cells were present on the back side of the plasma separation portion of untreated Hemasep L as a control. Therefore, the Hb concentration of the control is higher. Regarding the shape of the plasma to be separated (the shape on the filter paper), the untreated filter paper had a Y-shape with a concave center, but the pretreated filter paper did not have such a distorted shape.
For total protein, if the sample blood is 40 μl and half of it is plasma, the plasma will be 20 μl. Since extraction was performed with 200 μl of PBS, STD was used by diluting × 10 and used for comparison. If 7.2 g / dl of the STD is the average protein concentration, the No. of which exceeds 7.2 g / dl in this measurement. In the 11 control filter papers, 20 μl or more of plasma was collected.
By treating the filter paper with the above reagent, the length of the plasma separated from the blood cells was increased and the shape was improved. Blocking reagents N101 and N102 for immunological measurement (manufactured by NOF CORPORATION, sold by Daiichi Kiki Co., Ltd.) and peroxidase stabilizing reagent H100 for immunological measurement (manufactured by NOF CORPORATION, Co., Ltd.) The processing at Daiichi Kogyo sales also gives advantageous results.
(7) In order to improve the sample extracted from the filter paper, the concentration of the blocking agent used for the treatment of the filter paper was further examined. Filter paper is performed with a combination of Hemasep L and GF / D, and Hemasep L is diluted with a blocking agent or the like (NP40, Triton 100, BLE02, BLJ02), and the treatment concentration is diluted by 5 times from 0.1%. 5 concentrations. The combination was untreated GF / D + -treated Hemasep L. The sample was EDTA whole blood, a filter paper was arranged, and the sample was dropped on the filter paper (40 μl). The length of the plasma separated by filter paper was measured, and then the plasma portion was cut out, cut into small tubes, added with 200 μl of PBS, and extracted by stirring for 15 minutes (2.5 on the stirrer). For the extract, the total protein was measured by Hitachi 7070 (Hitachi, Ltd.), and the measurement residue was diluted × 5 with PBS and measured by a spectrophotometer. Table 4 shows the results.
[0060]
[Table 4]

[0061]
(8) The reproducibility of separation and extraction with filter paper was examined. Of the filter paper, Hemasep L was treated with a blocking agent. The treatment was performed with Milli-Q water, NP40 and E02 (0.05% each). Three types of sample blood (EDTA, whole blood) were used, and 40 μl of the sample blood was dropped on the sheet of the blood dropping portion of the carrier structure. After measuring the length of the plasma portion, it was cut out and extracted (200 μl, 15 min, stirrer scale 2.5). The extract was subjected to total protein (TP) measurement using Hitachi 7070, and the remaining solution was diluted × 5 and subjected to measurement using a spectrophotometer. For the filter paper for examination, GF / D (5 × 5 mm) was placed on one end of a 50 mm Hemasep L. For comparison, a sample was also dropped on a conventional filter paper (Hemasep L, 4 × 80 mm, the sample was dropped on the center of the filter paper). Plasma portions were cut from both ends. Ten filter papers were used for one condition. The reproducibility of the ten measurements was compared.
The border between blood cells and plasma was best with the conventional one. This is thought to be because the development takes time and solidification proceeds. With conventional filter paper, it takes time to penetrate the filter paper, and blood may flow to the back of the filter paper. E02 was clear among the treated ones. In the case of NP40 and Milli-Q, there were examples in which the border was blurred.
The conventional filter paper corresponds to that described in JP-A-2001-221794. Using a Wako TP kit (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), STD was diluted × 10, and the indicated value was measured as it was (g / dl).
[0062]
When the blood on the blood dropping sheet of the blood sample carrier composition of the present invention is attached or absorbed and the blood for separation is spread on the blood cell / serum separation sheet of the composition, the blood in the blood cell / serum separation sheet Does not flow uniformly, the blood develops faster at the edge of the blood cell / serum separation sheet than at the center, shows a V-shaped expansion, and the separation distance of the serum part separated from the blood cell part is small. The problem that the separation and recovery of blood is not always satisfactory is improved, and the blood can flow more evenly in the sheet, and the spread distance of the serum can be improved. The blood cell / serum separation sheet of the blood sample carrier composition of the present invention has been impregnated with a blocking agent, for example, a phospholipid-based substance such as Lipidure BL (trade name, Nippon Oil & Fats Co., Ltd.). The serum flows relatively uniformly in the sheet, and the separation distance of the serum separated from the blood cells is significantly increased, so that the serum can be easily eluted and collected. By performing blood dropping on the blood dropping sheet of the blood sample carrier composition of the present invention, since the blood dropping sheet is an untreated sheet, it is possible to avoid the problem of the treatment of the drug on the human body.
[0063]
【The invention's effect】
ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, a small amount of blood sample can be collected with confidence and its handling can be extremely simplified. In addition, the blood sample carrier composition of the present invention draws out good separation properties while utilizing the advantage of having a function of separating blood cell components and serum components or plasma components by itself, and is used as a sample sample. Sufficient separation can be achieved, and a measurement sample can be suitably collected from the carrier structure. The use of the blood sample carrier composition of the present invention enables an individual to easily collect a blood sample for a test and pass it to a laboratory, and to handle a large amount of a small amount of a sample. .
Obviously, the present invention can be practiced other than as specifically described in the foregoing description and examples. Many modifications and variations of the present invention are possible in light of the above teachings, and so are within the scope of the appended claims.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 shows a plan view of a blood sample carrier construction according to the present invention.
FIG. 2 shows a side view of a blood sample carrier construction according to the present invention.
FIG. 3 shows an overhead perspective view of a blood sample carrier composition according to the present invention.
FIG. 4 is a drawing illustrating a state of development of applied blood on a blood cell / serum separation sheet.
[Explanation of symbols]
1-blood drop sheet, 2-blood cell / serum separation sheet, 3-support sheet

Claims

A blood sample carrier structure used when transporting a very small amount of blood for use as a sample,
(A) The carrier structure is constituted by combining a support sheet and a blood carrier sheet, and the blood carrier sheet is constituted by a fibrous matrix;
(B) The blood carrier sheet is
(1) It has a rectangular shape, and when blood adheres to one portion of the surface of the rectangular sheet, the liquid moves in the lateral direction and separates into a blood cell component and a serum component or a plasma component. A blood cell component region mainly containing a component and a soluble blood component region mainly containing a serum component or a plasma component can be formed at least in part in a spatially distinguishable form, and
(2) The blood carrier sheet contains a material selected from the group consisting of hydrophilic compounds such as surfactants, blocking agents, and protein stabilizers;
(C) A blood sample carrier structure, which is arranged on a support sheet in the order of the sheet (B).

Claim 1 (B) A composition selected from the group consisting of surfactants, blocking agents and protein stabilizers of {2}, Tween 20, NP40, Triton X100, Lipidure BL A03, Lipidure BL B03, Lipidure BL D05. 2. The blood sample carrier structure according to claim 1, wherein the blood sample carrier structure is selected from the group consisting of hydrophilic compounds such as Lipidure BL E02, Lipid BL G04, Lipid BL J02, N101, N102 and H100.

The sheet according to claim 1 (B) is composed of said fibrous matrix in an aqueous solution obtained by diluting a material selected from the group consisting of hydrophilic compounds such as surfactants, blocking agents and protein stabilizers to an appropriate concentration. 3. The blood sample carrier structure according to claim 1, wherein the blood sample carrier is obtained by impregnating and drying the sheet.

The blood sample carrier structure according to any one of claims 1 to 3, wherein the sheet according to claim 1 (B) has a size of about 4 to 10 mm x about 40 to 120 mm.

The blood sample according to any one of claims 1 to 4, wherein the sheet according to claim 1 (B) is a carrier sheet such as Hemasep L (trade name, Paul Corporation, USA). Carrier construct.

The carrier structure is configured by combining a support sheet and at least two types of blood carrier sheets,
(A) One of the blood carrier sheets is the one described in claim 1 (B), and (b) the other of the blood carrier sheets is
(I) It constitutes a site to which blood to be collected is applied, and can temporarily hold the attached blood, and can move the applied blood to the sheet of (a) above. It is possible that it is disposed in contact with at least one of the planes of the rectangular sheet of (a), and
(Ii) the blood carrier sheet is substantially non-toxic to the human body with respect to blood contact;
(C) the sheet of (a) above on the support sheet, and the sheet of (b) above on the sheet of (a) at least partially arranged in this order. The blood sample carrier composition according to claim 1, wherein

The blood sample carrier structure according to claim 6, wherein the sheet according to claim 6 (b) has a size of about 4 to 10 mm x about 4 to 10 mm.

The non-toxicity of the sheet according to claim 6 (b) means that the sheet does not contain a substance selected from the group consisting of a surfactant, a blocking agent, a protein stabilizer and the like. The blood sample carrier composition according to claim 6 or 7, wherein

The blood sample carrier structure according to any one of claims 6 to 8, wherein the sheet according to claim 6 (b) is a carrier sheet such as {F147-11} (trade name, Whatman).

The blood sample carrier structure according to claim 1, wherein the blood sample carrier structure has a structure or a function described herein with reference to any one of Figs.