JP2004101361A - Method and method for detecting cryptosporidium - Google Patents

Method and method for detecting cryptosporidium Download PDF

Info

Publication number
JP2004101361A
JP2004101361A JP2002263318A JP2002263318A JP2004101361A JP 2004101361 A JP2004101361 A JP 2004101361A JP 2002263318 A JP2002263318 A JP 2002263318A JP 2002263318 A JP2002263318 A JP 2002263318A JP 2004101361 A JP2004101361 A JP 2004101361A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cryptosporidium
microorganisms
sample water
unit
image
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2002263318A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP3934514B2 (en
Inventor
Tadashi Matsunaga
松 永   是
Haruko Takeyama
竹 山 春 子
Satoshi Haraguchi
原 口   智
Masato Yoshino
吉 野 正 人
Kyotaro Iyasu
居 安 巨太郎
Masao Kaneko
金 子 政 雄
Minoru Fujisawa
藤 沢   実
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Toshiba Corp
Original Assignee
Toshiba Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Toshiba Corp filed Critical Toshiba Corp
Priority to JP2002263318A priority Critical patent/JP3934514B2/en
Publication of JP2004101361A publication Critical patent/JP2004101361A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3934514B2 publication Critical patent/JP3934514B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a highly accurate Cryptosporidium detecting method capable of highly efficiently processing large quantities and to provide an apparatus for implementing the method. <P>SOLUTION: In the detection method, microorganisms in sample water are isolated through the use of a hollow fiber membrane (11), condensed, further isolated through the use of a membrane filter (14), and condensed. An oocyst outer shell of Cryptosporidium among acquired microorganisms is damaged. By performing both fluorescent emission in-situ hybridization through the use of a probe complementary to nucleic acids contained in the Cryptosporidium and immuno-staining through the use of an antibody to matter related to the Cryptosporidium to perform double-staining, a differential interference image and a fluorescent emission image of the double-stained microorganisms are acquired and analyzed to recognize the Cryptosporidium. <P>COPYRIGHT: (C)2004,JPO

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、試料水中のクリプトスポリジウムを検出するクリプトスポリジウムの検出方法及びこの方法を実施する装置に関する。
【0002】
【従来の技術】
現在、耐塩素性病原性微生物の一種であるクリプトスポリジウムの検出に関しては、厚生労働省(旧厚生省)が策定した試験法により実施されている。これは10〜50Lの試料水からメンブレンフィルターを用いて微生物を分離、濃縮し、免疫磁気分離法や密度勾配遠心法により精製、蛍光標識抗体を用いて染色し、顕微鏡によって観察する方法であった。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】
しかし、上記の試験法は非常に手間が掛かり、各工程の処理に長時間を要し、かつ、各工程の全てを手作業で行っていたため、試験を行う人の熟練度に応じて検出精度などに対して個人差が大きかった。また、検鏡作業においても、その熟練度が大きく影響し、精度が低いものとなっていた。
【0004】
本発明は上記従来技術の課題を解決するためになされたもので、高効率かつ大量処理を可能にすると共に、高精度のクリプトスポリジウムの検出方法及びこの方法を実施する装置を提供することを目的とする。
【0005】
【課題を解決するための手段】
請求項1に係る発明は、
試料水中のクリプトスポリジウムを検出するクリプトスポリジウムの検出方法において、
中空糸膜を用いて試料水中の微生物を分離、濃縮し、メンブレンフィルターを用いてさらに分離、濃縮するステップと、
メンブレンフィルターによって分離、濃縮された微生物のうち、クリプトスポリジウムに対してそのオーシスト外殻に損傷を与えるステップと、
クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うとともに、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行って2重染色を行うステップと、
2重染色された微生物の微分干渉像及び蛍光発光像を得るステップと、
得られた微分干渉像及び蛍光発光像を解析してクリプトスポリジウムを認識するステップと、
を順次実行することを特徴とするクリプトスポリジウムの検出方法。
【0006】
請求項2に係る発明は、
試料水中のクリプトスポリジウムを検出するクリプトスポリジウム検出装置において、
中空糸膜を用いて試料水中の微生物を分離、濃縮し、メンブレンフィルターを用いてさらに分離、濃縮する微生物回収手段と、
微生物回収手段によって分離、濃縮された微生物のうち、クリプトスポリジウムに対してそのオーシスト外殻に損傷を与える前処理手段と、
クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うと共に、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行う染色手段と、
染色手段により染色された微生物の微分干渉像及び蛍光発光像を得て、これらの画像を解析してクリプトスポリジウムを認識する検出手段と、
を備えたことを特徴とするクリプトスポリジウムの検出装置。
【0007】
請求項3に係る発明は、請求項2に記載のクリプトスポリジウムの検出装置において、前処理手段は、熱処理、マイクロウェーブ処理及び電気的な処理の少なくとも1つの処理を行い、かつ、ホルマリン固定を行うことを特徴とする。
【0008】
請求項4に係る発明は、請求項2又は3に記載のクリプトスポリジウムの検出装置において、染色手段は、Cy3蛍光標識プローブを用いて蛍光発光in−situハイブリダイゼーションを行い、かつ、それとは異なる識別可能な標識物質を用いて免疫染色をすることを特徴とする。
【0009】
請求項5に係る発明は、請求項2乃至4のいずれか1項に記載のクリプトスポリジウムの検出装置において、検出手段は、試料中に2重染色発光が検出され、かつ、蛍光検出位置の微分干渉像が目的対象微生物形状と認識された場合、オペレータに報知する手段を備えたことを特徴とする。
【0010】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を図面に示す好適な実施形態に基づいて詳細に説明する。図1は本発明に係るクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム回収部の第1の実施形態の構成を示す系統図である。このクリプトスポリジウム回収部10Aは前段に孔径が1μm以下の中空糸膜分離ユニット11を備え、後段に孔径が1μm以下のメンブレンフィルターユニット14を備えている。このうち、中空糸膜分離ユニット11に対する試料水の導入経路に試料水導入用バルブV1が設けられ、その排水経路に試料水排出用バルブV2及び及び吸引ポンプ12が設けられている。
【0011】
また、中空糸膜分離ユニット11の逆洗水の導入経路に逆洗用ポンプ13及び逆洗水注入用バルブV3が設けられ、逆洗水の排出経路に逆洗水誘導用バルブV4が設けられている。この逆洗水誘導用バルブV4の出側の経路にメンブレンフィルターユニット14が接続され、このメンブレンフィルターユニット14の排水経路に排水用バルブV5が設けられている。さらに、メンブレンフィルターユニット14の誘出液注入経路に誘出液注入用ポンプ15及び誘出液注入用バルブV6が設けられ、このメンブレンフィルターユニット14の試料水排出経路に、試料水排出用バルブV7を介して、サンプル回収部16が設けられている。
【0012】
上記のように構成されたクリプトスポリジウム回収部の動作について以下に説明する。先ず、逆洗水注入用バルブV3及び逆洗水誘導用バルブV4を閉じた状態で、試料水導入用バルブV1及び試料水排出用バルブV2を開き、吸引ポンプ12を駆動する。これによって大量の試料水が中空糸膜分離ユニット11を通過して排水される。このように、前段の耐塩素性病原性微生物の分離媒体として中空糸膜分離ユニット11を用いると共に、この中空糸膜分離ユニット11を通過する試料水を吸引ポンプ12で吸引することにより、試料水の大量処理及び連続処理が可能となり、例えば、試料水の処理量を100L以上とすることで、回収対象微生物の回収量及び回収確率が向上する。この場合、処理量の上限は特に設けないが、中空糸膜の処理能力(仕様)により設定する。また、処理速度も中空糸膜の処理能力(仕様)に準ずるものとする。
【0013】
次に、試料水導入用バルブV1及び試料水排出用バルブV2を閉じ、逆洗水注入用バルブV3及び逆洗水誘導用バルブV4を開く。そして、メンブレンフィルターユニット14の接続経路に設けられた誘出液注入用バルブV6及び試料水排出用バルブV7を閉じたままで排水用バルブV5を開く。この状態で逆洗用ポンプ13を駆動することによって、逆洗水が中空糸膜分離ユニット11に供給され、耐塩素性病原性微生物を含む微生物が逆洗水と共にメンブレンフィルターユニット14に導かれ、ここで、耐塩素性病原性微生物を含む微生物が逆洗水から分離され、逆洗水は排水用バルブV5を通して排水される。ここで、中空糸膜の逆洗水は試料水に比べて非常に少ない量であり、かつ、1μm以下の不純物は中空糸膜分離ユニット11で除去されているため、メンブレンフィルターによる分離工程では、直接試料水を処理する場合に比べて負荷が非常に小さく抑えられ、膜性能を長く維持でき、また、膜の交換などの作業も低減される。耐塩素性病原性微生物としては、例えば、クリプトスポリジウム、ジアルジア、サイクロスポーラ、マイクロスポーラ類などが挙げられる。
【0014】
次に、逆洗水誘導用バルブV4及び排水用バルブV5を閉じ、誘出液注入用バルブV6を開いた状態で誘出液注入用ポンプ15を駆動して所定量の誘出液をメンブレンフィルターユニット14内に滞留させる。そして、所定の時間の経過後に試料水排出用バルブV7を開く。この後段の処理によって、回収対象のクリプトスポリジウムを含む濃縮試料水がサンプル回収部16に回収される。ここで、メンブレンフィルターユニット14の誘出液は中空糸膜分離ユニット11の逆洗水に比べて非常に少ない量で済む。
【0015】
上述したように中空糸膜分離ユニット11による前段処理と、メンブレンフィルターユニット14による後段処理とを組み合わせることによって、高効率かつ大量処理が可能なクリプトスポリジウム回収部を提供することができる。
【0016】
なお、上記実施形態では、誘出液をメンブレンフィルターユニット14内に所定時間滞留させたが、誘出液の注入時に試料水排出用バルブV7を開いたままにして誘出液の注入操作に応じて濃縮試料水を捕集することもできる。また、誘出液をメンブレンフィルターユニット14内に所定時間滞留させている状態でメンブレンフィルターユニット14に超音波を照射したり、電気的な振動を与えたりすることによって、メンブレンフィルターから耐塩素性病原性微生物をより短時間にて捕集することができる。必要であれば、上記の操作を複数回繰り返す。
【0017】
図2はクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム検出部の構成を示すブロック図である。ここに示したクリプトスポリジウム検出部100は、主に、クリプトスポリジウムに対してそのオーシスト外殻に損傷を与える前処理部101と、クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うとともに、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行って2重染色を行う反応部102と、スライドガラス等に検体を固定する固定化部103と、2重染色された微生物の微分干渉像及び蛍光発光像を得て、それらの像を解析してクリプトスポリジウムを認識する検出部104とで構成されている。
【0018】
ここで、前処理部101は、検体を検出し易い状態にする処理を行うプロセスであり、特にin−situハイブリダイゼーションに関わるものである。何らかの物理的手法もしくは化学的手法を用いて、クリプトスポリジウムのオーシスト外殻に損傷を与え、殻内へDNAプローブの導入ができる状態にする。
【0019】
次に、反応部102においては、in−situハイブリダイゼーション102a及び免疫抗体反応102bの2つの処理を実行する。このうち、in−situハイブリダイゼーション102aでは、クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的な塩基配列を有する、蛍光標識を施したDNAプローブを用いる。核酸配列としては、クリプトスポリジウム内に含まれる18S rRNAユニバーサルや、クリプトスポリジウムの特異的配列を含むDNAを利用する。蛍光標識物質に関しては、その種類を問わないが、免疫抗体に標識するものとは異なるものとする識別が可能なものとする。検体に前処理を行った後、Hybridization buffer中に蛍光標識プローブとともに検体を添加し、一定条件下でハイブリダイゼーションを行う。例えば、48℃/1時間の条件を設定する。免疫抗体反応102bでは、ハイブリダイゼーション用DNAプローブに標識した蛍光物質と異なる蛍光物質で標識した抗体を検体に添加して、一定時間静置することにより、免疫反応を起こさせる。蛍光標識物質に関しては、その種類は問わないが、DNAプローブに標識するものとは異なる蛍光物質を用いて標識する。なお、in−situハイブリダイゼーション102a及び免疫抗体反応102bはどちらを先に行っても良く、場合によっては同時に行っても良い。
【0020】
次に、固定化部103においては、上述したように2重染色されたクリプトスポリジウムを含む耐塩素性病原性微生物を、固定媒体としてのスライドガラスや、メンブレンフィルターに固定する。スライドガラスを用いる場合には、検体を含む溶液を滴下して固定化する。
【0021】
次に、検出部104は、蛍光観察及び微分干渉顕微鏡による観察を通しての画像取得104aと、蛍光画像処理及び形状認識画像処理104bを実行するものである。
【0022】
図3は検出部104において明視野像及び微分干渉像を取得する場合の装置の構成例である。これは制御手段41によって点灯制御される励起光源42、励起フィルタ、ハーフミラー及び蛍光フィルタからなる蛍光フィルタシステム43、微分干渉フィルタ44及びこれらを切り替えるためのフィルタ切り替え手段45を固定化プレート32から撮像手段46までの光路上に設ける。適用するフィルタを順次変更するか、あるいは、外すことにより、蛍光画像、明視野像、微分干渉像を取得することができる。ここで、取得した画像は画像記録手段47に保存され、得られた画像に対して画像解析手段48が画像処理を施すことにより、微生物31の存在点を抽出する。
【0023】
この場合、励起フィルタは、例えば、B励起及びG励起フィルターを備え、先ず、一方のフィルターで検体をスキャンする。次に、もう一方のフィルタで同様に検体をスキャンし、最後に、微分干渉フィルタにより微分干渉像を取得する。これにより3種の画像を画像解析手段48が解析し、2重に蛍光染色され、かつ、形状認識された部分がクリプトスポリジウムとして認識され、画像表示手段49に表示される。
【0024】
かくして、図1乃至図3を用いて説明した第1の実施形態によれば、高効率かつ大量処理を可能にすると共に、高精度にてクリプトスポリジウムを検出することができる。
【0025】
なお、上記の実施形態では、孔径が1μm以下の中空糸膜分離ユニット11を設けたが、中空糸膜の孔径を2μm以下とすることもできる。すなわち、クリプトスポリジウムは一般に3〜5μm径であると報告されている。このことから、安全率も考慮に入れて、中空糸膜の孔径は2μm以下が望ましいと考えられる。このように孔径をできるだけ大きなものを用いることによって、膜の透過性や長期運転性を確保でき、さらには、対象微生物に対して微小な不純物を除き、分離成分中の不純物の割合を低減することができる。
【0026】
図4は本発明に係るクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム回収部の第2の実施形態の構成を示す系統図である。図中、図1に示す第1の実施形態と同一の要素には同一の符号を付してその説明を省略する。この実施形態に係る微生物回収部10Bは、試料水を中空糸膜分離ユニット11に供給する試料水導入用バルブV1よりも上流の経路に、試料水導入用バルブV0及び殺菌処理ユニット20を設け、さらに、試料水導入用バルブV0と殺菌処理ユニット20との間の試料水導入経路に、分散剤注入用バルブV8を介して分散剤導入ユニット21を接続したものである。
【0027】
上記のように構成された第2の実施形態の動作について、特に、第1の実施形態と構成を異にする部分について説明する。試料水中には検出対象とする耐塩素性病原性微生物のみならず、大腸菌などの一般微生物や菌体も存在する。そこで、塩素、オゾン、UV(紫外線)のいずれか1つ又は複数を利用した殺菌処理ユニット20を中空糸膜分離ユニット11の前段工程に導入する。これにより、耐塩素性ではない一般の微生物は死滅、溶解し、分離媒体には捕捉されない。一方、耐塩素性微生物は塩素殺菌処理では死滅しない。また、オゾンやUV処理などでは、感染能の低下や不活化などを生じるが、芽胞を有する形状であるため、個体形状の変化はなく、分離媒体を通過することはない。これにより、不純物の含有率が低下し、分離選択性が向上し、かつ膜性能(寿命も含む)も維持できる。
【0028】
一方、クリプトスポリジウムは表面電荷を有しており、他の夾雑物と凝集塊を形成して試料水中に存在している可能性が高い。そこで、分散剤導入ユニット21を中空糸膜分離ユニット11の前段工程に導入し、被検水の採水開始と同時に分散剤注入用バルブV8を開き、試料水に注入界面活性剤などの分散剤を添加することにより、不純物とクリプトスポリジウムが形成している凝集塊を分散させる。また、分散剤導入ユニット21の後工程に、孔径10μm〜100μmの分離フィルターユニット(図示を省略)を導入し、前記分散剤効果により分散させた、上記サイズより大きい不純物及び微生物等を除去することもできる。分離フィルター媒体の種類は問わず、中空糸膜フィルター、メンブレンフィルター、セラミックフィルター、プランクトンネットなどが挙げられる。なお、工程としては、分散剤導入ユニット21及び分離フィルターユニットは殺菌処理ユニット20の前段に設置することが望ましい。
【0029】
かくして、第2の実施形態によれば、耐塩素性ではない一般の微生物を死滅、溶解させ、また、凝集塊を分散させてクリプトスポリジウムに近似した外形の微生物のみが回収されるため、第1の実施形態よりも高効率かつ大量処理を可能にすると共に、高精度にてクリプトスポリジウムを検出することができる。
【0030】
ところで、上記の各実施形態において、サンプルの固定媒体としてメンブレンフィルターを使用することについて説明したが、このメンブランフィルターの材質としては、親水性PTFEが望ましい。この場合には、回収した検体を前処理後、Hybridization buffer中に蛍光標識プローブとともに添加し、一定条件下でハイブリダイゼーションを行い、そのまま、蛍光標識抗体を添加し、免疫反応も行う。その後、メンブレンフィルター上に吸引固定する。この場合、反応は全て均一系にて行われるため、非均一系に比べ反応速度が速くなるという利点がある。
【0031】
また、上記の実施形態でin−situハイブリダイゼーションを行うにあたっては、前処理を行う必要がある。その一例としては熱処理又はマイクロウェーブ処理又は電気的処理を行い、かつ、ホルマリン固定を行う。これら各々の処理は、各々単独で行ってもよいし、組合せて行ってもよい。例えば、16%ホルマリン溶液中で検体であるクリプトスポリジウムを固定化し、500W/2分間マイクロウェーブ処理を行う。
【0032】
さらにまた、in−situハイブリダイゼーションに用いる蛍光標識プローブにおいて、G励起蛍光発光のCy3で蛍光標識をし、かつそれと異なる標識物質、例えばB励起のFITCで免疫抗体を標識する。Cy3は励起保持時間が長い特徴を持つ。in−situハイブリダイゼーションは、免疫抗体反応に比べてその反応量が少なく、同じ標識を行った場合には励起光が弱い。また、in−situハイブリダイゼーションにおいて、Cy3標識とFITC標識を比較すると、Cy3標識の方が退色し難く、長時間明るい蛍光が得られる。
【0033】
上述した各実施形態の変形例として、採水から染色までの一連の工程に関わる装置を1ユニットとして、このユニットを並列に運転させ、各ユニットに時間的な位相差をつけて運転させることも可能である。ユニット数及び時間的位相差は適宜に設定する。また、運転周期はユニットの処理能力や仕様によるものとする。例えば、3ユニットを並列させ、1周期120分のサイクルで中空糸膜による分離工程を40分として、夫々40分の位相差をつけて運転させる。これにより、120分毎ではなく、40分毎のサンプルと、測定結果を得ることが可能となる。
【0034】
また、他の変形例として、in−situハイブリダイゼーションおよび免疫抗体による2重染色処理を行い、固定化した検体について2種類の励起光で蛍光画像観察および微分干渉画像観察をした結果、検体中に2重染色発光が検出され、かつ、蛍光検出位置の微分干渉像が目的対象微生物形状と認識された場合、オペレータに何らかの形で報知することによって、検出に留まらず監視の機能を持たせることができる。
【0035】
【発明の効果】
以上の説明によって明らかなように、本発明によれば、最初に中空糸膜を用い、続いてメンブレンフィルターを用いてそれぞれ試料水中の微生物を分離、濃縮し、クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うとともに、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行って2重染色し、その微分干渉像及び蛍光発光像を解析してクリプトスポリジウムを認識するようにしたので、高効率かつ大量処理を可能にすると共に、高精度のクリプトスポリジウムの検出方法及び検出装置が提供される。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明に係るクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム回収部の第1の実施形態の構成を示す系統図。
【図2】本発明に係るクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム検出部の構成を示すブロック図。
【図3】図2に示す検出部において明視野像及び微分干渉像を取得する場合の装置の構成例。
【図4】本発明に係るクリプトスポリジウムの検出方法を実施する装置のうち、クリプトスポリジウム回収部の第2の実施形態の構成を示す系統図。
【符号の説明】
10A,10B 微生物回収部
11 中空糸膜分離ユニット
12 吸引ポンプ
13 逆洗用ポンプ
14 メンブレンフィルターユニット
15 誘出液注入用ポンプ
16 サンプル回収部
20 殺菌処理ユニット
21 分散剤導入ユニット
31 微生物
32 固定化プレート
41 制御手段
42 励起光源
43 蛍光フィルタシステム
44 微分干渉フィルタ
45 フィルタ切り替え手段
46 撮像手段
47 画像記録手段
48 画像解析手段
49 画像表示手段
100 クリプトスポリジウム検出部
101 前処理部
102 反応部
103 固定化部
104 検出部
[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for detecting Cryptosporidium for detecting Cryptosporidium in a sample water and an apparatus for performing the method.
[0002]
[Prior art]
At present, the detection of Cryptosporidium, a kind of chlorine-resistant pathogenic microorganism, is carried out by a test method formulated by the Ministry of Health, Labor and Welfare (former Ministry of Health and Welfare). This was a method of separating and concentrating microorganisms from 10 to 50 L of sample water using a membrane filter, purifying the microorganisms by immunomagnetic separation or density gradient centrifugation, staining with a fluorescently labeled antibody, and observing with a microscope. .
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
However, the above test method is very time-consuming, takes a long time to process each step, and performs all the steps manually, so the detection accuracy depends on the skill of the person performing the test. Individual differences were large with respect to such factors. Also, in the microscopy work, the skill is greatly affected and the accuracy is low.
[0004]
The present invention has been made in order to solve the above-mentioned problems of the prior art, and aims to provide a method for detecting Cryptosporidium with high accuracy while enabling high-efficiency and large-scale processing, and an apparatus for performing the method. And
[0005]
[Means for Solving the Problems]
The invention according to claim 1 is
In a method for detecting Cryptosporidium for detecting Cryptosporidium in a sample water,
Separating and concentrating microorganisms in the sample water using a hollow fiber membrane, further separating and concentrating using a membrane filter,
Damaging the oocyst shell of Cryptosporidium among microorganisms separated and concentrated by the membrane filter,
Performing fluorescence in-situ hybridization using a probe complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium, and performing immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium to perform double staining,
Obtaining a differential interference image and a fluorescence emission image of the double-stained microorganism;
Analyzing the obtained differential interference image and fluorescence emission image to recognize Cryptosporidium,
Are carried out sequentially. A method for detecting Cryptosporidium.
[0006]
The invention according to claim 2 is
In a Cryptosporidium detector for detecting Cryptosporidium in sample water,
Microorganism recovery means for separating and concentrating microorganisms in the sample water using a hollow fiber membrane, further separating and concentrating using a membrane filter,
Pretreatment means for damaging the oocyst shell of Cryptosporidium among microorganisms separated and concentrated by the microorganism collection means,
Performing fluorescence in-situ hybridization using a probe complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium, and staining means for performing immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium,
Obtaining a differential interference image and a fluorescence emission image of the microorganism stained by the staining means, analyzing these images and detecting means for recognizing Cryptosporidium,
An apparatus for detecting Cryptosporidium, comprising:
[0007]
According to a third aspect of the present invention, in the apparatus for detecting cryptosporidium according to the second aspect, the pretreatment means performs at least one of heat treatment, microwave treatment, and electric treatment, and performs formalin fixation. It is characterized by the following.
[0008]
According to a fourth aspect of the present invention, in the apparatus for detecting cryptosporidium according to the second or third aspect, the staining means performs fluorescence emission in-situ hybridization using a Cy3 fluorescently labeled probe and performs identification different from that. It is characterized by performing immunostaining using a possible labeling substance.
[0009]
According to a fifth aspect of the present invention, in the apparatus for detecting cryptosporidium according to any one of the second to fourth aspects, the detecting means detects double-stained luminescence in the sample and differentiates the fluorescence detection position. When the interference image is recognized as the target microorganism shape, a means for notifying an operator is provided.
[0010]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in detail based on preferred embodiments shown in the drawings. FIG. 1 is a system diagram showing a configuration of a first embodiment of a cryptosporidium recovery unit in an apparatus for performing a cryptosporidium detection method according to the present invention. The cryptosporidium recovery unit 10A includes a hollow fiber membrane separation unit 11 having a pore size of 1 μm or less at the front stage, and a membrane filter unit 14 having a pore size of 1 μm or less at the rear stage. Among them, a sample water introduction valve V1 is provided in a sample water introduction path to the hollow fiber membrane separation unit 11, and a sample water discharge valve V2 and a suction pump 12 are provided in a drain path thereof.
[0011]
Further, a backwash pump 13 and a backwash water injection valve V3 are provided in the backwash water introduction path of the hollow fiber membrane separation unit 11, and a backwash water guide valve V4 is provided in the backwash water discharge path. ing. A membrane filter unit 14 is connected to a path on the outlet side of the backwash water induction valve V4, and a drainage valve V5 is provided in a drainage path of the membrane filter unit 14. Further, a pump 15 for injecting liquid injection and a valve V6 for injecting liquid extract are provided in a liquid injecting path of the membrane filter unit 14, and a valve V7 for discharging sample water is provided in a sample water discharging path of the membrane filter unit 14. , A sample collection unit 16 is provided.
[0012]
The operation of the Cryptosporidium recovery unit configured as described above will be described below. First, with the backwash water injection valve V3 and the backwash water induction valve V4 closed, the sample water introduction valve V1 and the sample water discharge valve V2 are opened, and the suction pump 12 is driven. Thereby, a large amount of sample water passes through the hollow fiber membrane separation unit 11 and is drained. As described above, the hollow fiber membrane separation unit 11 is used as a separation medium for the chlorine-resistant pathogenic microorganisms in the first stage, and the sample water passing through the hollow fiber membrane separation unit 11 is sucked by the suction pump 12, whereby the sample water is separated. Large-volume processing and continuous processing can be performed. For example, by setting the processing amount of the sample water to 100 L or more, the recovery amount and recovery probability of the recovery target microorganisms are improved. In this case, the upper limit of the processing amount is not particularly set, but is set according to the processing capacity (specification) of the hollow fiber membrane. In addition, the processing speed shall conform to the processing capacity (specifications) of the hollow fiber membrane.
[0013]
Next, the sample water introduction valve V1 and the sample water discharge valve V2 are closed, and the backwash water injection valve V3 and the backwash water induction valve V4 are opened. Then, the drainage valve V5 is opened while the extraction liquid injection valve V6 and the sample water discharge valve V7 provided in the connection path of the membrane filter unit 14 are closed. By driving the backwashing pump 13 in this state, backwash water is supplied to the hollow fiber membrane separation unit 11, and microorganisms including chlorine-resistant pathogenic microorganisms are guided to the membrane filter unit 14 together with the backwash water, Here, microorganisms including chlorine-resistant pathogenic microorganisms are separated from the backwash water, and the backwash water is drained through a drain valve V5. Here, the amount of backwash water of the hollow fiber membrane is much smaller than that of the sample water, and impurities of 1 μm or less are removed by the hollow fiber membrane separation unit 11. Therefore, in the separation step using the membrane filter, The load is extremely reduced as compared with the case where the sample water is directly treated, the membrane performance can be maintained for a long time, and operations such as membrane replacement are reduced. Examples of the chlorine-resistant pathogenic microorganism include Cryptosporidium, Giardia, cyclospora, microspora, and the like.
[0014]
Next, the pump 15 for injecting liquid injection is driven with the valve V4 for backwash water induction and the valve V5 for draining water closed and the valve V6 for injecting liquid injection opened to remove a predetermined amount of the extracting liquid into the membrane filter. It stays in the unit 14. Then, after a predetermined time has elapsed, the sample water discharge valve V7 is opened. By the subsequent processing, the concentrated sample water containing Cryptosporidium to be collected is collected in the sample collection unit 16. Here, the amount of the extraction liquid of the membrane filter unit 14 is very small compared with the backwash water of the hollow fiber membrane separation unit 11.
[0015]
As described above, by combining the first-stage treatment by the hollow fiber membrane separation unit 11 and the second-stage treatment by the membrane filter unit 14, it is possible to provide a cryptosporidium recovery unit capable of performing high-efficiency and mass-treatment.
[0016]
In the above embodiment, the extraction liquid is retained in the membrane filter unit 14 for a predetermined time. However, when the extraction liquid is injected, the sample water discharge valve V7 is kept open to respond to the injection operation of the extraction liquid. To collect concentrated sample water. In addition, by irradiating the membrane filter unit 14 with ultrasonic waves or applying electric vibration while the extracted liquid is kept in the membrane filter unit 14 for a predetermined time, the chlorine-resistant pathogen is removed from the membrane filter. Sex microorganisms can be collected in a shorter time. If necessary, repeat the above operation multiple times.
[0017]
FIG. 2 is a block diagram illustrating a configuration of a cryptosporidium detection unit in an apparatus that performs the cryptosporidium detection method. The Cryptosporidium detection unit 100 shown here mainly uses a pretreatment unit 101 that damages the oocyst shell of Cryptosporidium and a probe that is complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium and emits fluorescence. A reaction section 102 for performing double staining by performing immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium while performing situ hybridization, an immobilization section 103 for immobilizing a sample on a slide glass or the like, A differential interference image and a fluorescence emission image of the microorganism that has been superstained are obtained, and the detection unit 104 is configured to analyze the images and recognize Cryptosporidium.
[0018]
Here, the pre-processing unit 101 is a process for performing a process for making a sample easily detectable, and particularly relates to in-situ hybridization. The oocyst outer shell of Cryptosporidium is damaged by any physical or chemical method so that a DNA probe can be introduced into the shell.
[0019]
Next, in the reaction unit 102, two processes of an in-situ hybridization 102a and an immune antibody reaction 102b are executed. Among them, in the in-situ hybridization 102a, a DNA probe having a nucleotide sequence complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium and having been subjected to fluorescent labeling is used. As the nucleic acid sequence, 18S rRNA universal contained in Cryptosporidium or DNA containing a specific sequence of Cryptosporidium is used. Regarding the fluorescent labeling substance, it does not matter what kind of fluorescent labeling substance is, but it should be distinguishable from the labeling substance on the immune antibody. After performing pretreatment on the sample, the sample is added together with the fluorescently labeled probe into the hybridization buffer, and hybridization is performed under certain conditions. For example, a condition of 48 ° C./1 hour is set. In the immune antibody reaction 102b, an antibody labeled with a fluorescent substance different from the fluorescent substance labeled on the DNA probe for hybridization is added to the specimen, and the specimen is allowed to stand for a certain time to cause an immune reaction. The type of the fluorescent labeling substance is not limited, but labeling is performed using a fluorescent substance different from the labeling substance for the DNA probe. Either the in-situ hybridization 102a or the immune antibody reaction 102b may be performed first, and may be performed simultaneously in some cases.
[0020]
Next, in the fixing section 103, the chlorine-resistant pathogenic microorganisms containing Cryptosporidium, which have been double-stained as described above, are fixed to a slide glass or a membrane filter as a fixing medium. When a slide glass is used, a solution containing a specimen is dropped and immobilized.
[0021]
Next, the detection unit 104 executes image acquisition 104a through fluorescence observation and observation with a differential interference microscope, and fluorescence image processing and shape recognition image processing 104b.
[0022]
FIG. 3 shows an example of the configuration of the apparatus when the detector 104 acquires a bright-field image and a differential interference image. This means that the excitation light source 42 whose lighting is controlled by the control means 41, a fluorescence filter system 43 including an excitation filter, a half mirror and a fluorescence filter, a differential interference filter 44, and a filter switching means 45 for switching these are imaged from the fixed plate 32. It is provided on the optical path up to the means 46. By sequentially changing or removing the filter to be applied, a fluorescence image, a bright field image, and a differential interference image can be obtained. Here, the obtained image is stored in the image recording unit 47, and the image analysis unit 48 performs image processing on the obtained image, thereby extracting the existence point of the microorganism 31.
[0023]
In this case, the excitation filter includes, for example, a B excitation filter and a G excitation filter, and first, one of the filters scans the specimen. Next, the sample is similarly scanned by the other filter, and finally, a differential interference image is obtained by the differential interference filter. As a result, the three types of images are analyzed by the image analysis means 48, and the double-stained fluorescently stained and shape-recognized portion is recognized as cryptosporidium and displayed on the image display means 49.
[0024]
Thus, according to the first embodiment described with reference to FIGS. 1 to 3, high-efficiency and mass-processing can be performed, and Cryptosporidium can be detected with high accuracy.
[0025]
In the above embodiment, the hollow fiber membrane separation unit 11 having a pore diameter of 1 μm or less is provided, but the pore diameter of the hollow fiber membrane may be 2 μm or less. That is, Cryptosporidium is generally reported to have a diameter of 3 to 5 μm. From this, it is considered that the pore diameter of the hollow fiber membrane is desirably 2 μm or less in consideration of the safety factor. In this way, by using a material having a pore size as large as possible, the permeability and long-term operability of the membrane can be ensured.Furthermore, it is possible to remove minute impurities from the target microorganism and reduce the proportion of impurities in the separated components. Can be.
[0026]
FIG. 4 is a system diagram showing the configuration of the second embodiment of the cryptosporidium recovery unit in the apparatus for performing the method for detecting cryptosporidium according to the present invention. In the figure, the same elements as those in the first embodiment shown in FIG. 1 are denoted by the same reference numerals, and description thereof will be omitted. The microorganism recovery unit 10B according to this embodiment is provided with a sample water introduction valve V0 and a sterilization processing unit 20 in a path upstream of the sample water introduction valve V1 that supplies the sample water to the hollow fiber membrane separation unit 11, Further, a dispersant introduction unit 21 is connected to a sample water introduction path between the sample water introduction valve V0 and the sterilization processing unit 20 via a dispersant injection valve V8.
[0027]
The operation of the second embodiment configured as described above will be described, particularly the parts that differ from the first embodiment in configuration. In the sample water, not only chlorine-resistant pathogenic microorganisms to be detected but also general microorganisms such as Escherichia coli and cells are present. Therefore, a sterilization treatment unit 20 using one or more of chlorine, ozone, and UV (ultraviolet) is introduced into a process preceding the hollow fiber membrane separation unit 11. Thereby, general microorganisms that are not chlorine-tolerant are killed and dissolved, and are not captured by the separation medium. On the other hand, chlorine-resistant microorganisms are not killed by the chlorine sterilization treatment. In addition, ozone or UV treatment causes a decrease in infectivity, inactivation, and the like. However, since the spores have a spore shape, there is no change in the individual shape, and they do not pass through the separation medium. As a result, the content of impurities is reduced, separation selectivity is improved, and membrane performance (including life) can be maintained.
[0028]
Cryptosporidium, on the other hand, has a surface charge and is likely to form aggregates with other contaminants and to be present in the sample water. Therefore, the dispersant introducing unit 21 is introduced into the preceding step of the hollow fiber membrane separation unit 11, and the dispersant injection valve V8 is opened at the same time as the sampling of the test water starts, so that the dispersant such as a surfactant injected into the sample water is added. Is added to disperse the aggregate formed by the impurities and Cryptosporidium. Further, in a post-process of the dispersant introducing unit 21, a separation filter unit (not shown) having a pore size of 10 μm to 100 μm is introduced to remove impurities and microorganisms larger than the above size dispersed by the dispersant effect. You can also. Regardless of the type of the separation filter medium, a hollow fiber membrane filter, a membrane filter, a ceramic filter, a plankton net and the like can be mentioned. In addition, as a process, it is desirable that the dispersant introduction unit 21 and the separation filter unit be installed in a stage preceding the sterilization treatment unit 20.
[0029]
Thus, according to the second embodiment, general microorganisms that are not chlorine-resistant are killed and dissolved, and aggregates are dispersed to collect only microorganisms having an outer shape similar to Cryptosporidium. In addition to enabling more efficient and larger-volume processing than the embodiment described above, Cryptosporidium can be detected with high accuracy.
[0030]
By the way, in each of the above embodiments, the use of the membrane filter as the sample fixing medium has been described. However, as the material of the membrane filter, hydrophilic PTFE is preferable. In this case, after the collected sample is pretreated, it is added to a hybridization buffer together with a fluorescently labeled probe, hybridization is performed under a certain condition, and a fluorescently labeled antibody is added as it is, and an immunoreaction is also performed. After that, it is fixed by suction on the membrane filter. In this case, since the reaction is all carried out in a homogeneous system, there is an advantage that the reaction rate is higher than in a heterogeneous system.
[0031]
In addition, in performing in-situ hybridization in the above embodiment, it is necessary to perform pretreatment. For example, heat treatment, microwave treatment, or electric treatment is performed, and formalin fixation is performed. Each of these processes may be performed independently, or may be performed in combination. For example, Cryptosporidium as a specimen is immobilized in a 16% formalin solution, and subjected to microwave treatment at 500 W / 2 minutes.
[0032]
Furthermore, in the fluorescent-labeled probe used for the in-situ hybridization, the fluorescent antibody is fluorescently labeled with Cy-excited fluorescent emission Cy3, and the immune antibody is labeled with a different labeling substance, for example, FITC excited with B-excitation. Cy3 is characterized by a long excitation holding time. In the in-situ hybridization, the reaction amount is smaller than that of the immune antibody reaction, and the excitation light is weak when the same labeling is performed. In addition, in the in-situ hybridization, when the Cy3 label is compared with the FITC label, the Cy3 label is less likely to fade, and bright fluorescence is obtained for a long time.
[0033]
As a modified example of each of the above-described embodiments, an apparatus relating to a series of processes from water sampling to dyeing may be regarded as one unit, and this unit may be operated in parallel, and each unit may be operated with a temporal phase difference. It is possible. The number of units and the temporal phase difference are set appropriately. The operation cycle depends on the processing capacity and specifications of the unit. For example, three units are arranged in parallel, and the separation process using the hollow fiber membrane is performed for 40 minutes in one cycle of 120 minutes, and each is operated with a phase difference of 40 minutes. This makes it possible to obtain samples every 40 minutes instead of every 120 minutes and measurement results.
[0034]
Further, as another modified example, in-situ hybridization and double staining treatment with an immune antibody were performed, and a fluorescence image observation and a differential interference image observation with two types of excitation light were performed on the fixed sample. If double-stained luminescence is detected and the differential interference image at the fluorescence detection position is recognized as the shape of the target microorganism, the operator may be notified in some form to provide a monitoring function as well as detection. it can.
[0035]
【The invention's effect】
As is clear from the above description, according to the present invention, the microorganisms in the sample water are each separated and concentrated by using the hollow fiber membrane first, and then using the membrane filter, and complementing the nucleic acid contained in Cryptosporidium. Fluorescence in-situ hybridization using a suitable probe, immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium, double staining, and analyzing the differential interference image and the fluorescence emission image Since Cryptosporidium is recognized, it is possible to provide a Cryptosporidium detection method and a detection apparatus with high accuracy and high throughput, and with high accuracy.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a system diagram showing a configuration of a first embodiment of a cryptosporidium recovery unit in an apparatus for performing a cryptosporidium detection method according to the present invention.
FIG. 2 is a block diagram showing a configuration of a cryptosporidium detection unit in an apparatus for performing the cryptosporidium detection method according to the present invention.
FIG. 3 is a configuration example of a device in a case where a bright field image and a differential interference image are acquired by a detection unit illustrated in FIG. 2;
FIG. 4 is a system diagram showing a configuration of a second embodiment of a cryptosporidium recovery unit in an apparatus for performing the cryptosporidium detection method according to the present invention.
[Explanation of symbols]
10A, 10B Microorganism recovery unit 11 Hollow fiber membrane separation unit 12 Suction pump 13 Backwash pump 14 Membrane filter unit 15 Pump for injecting liquid injection 16 Sample recovery unit 20 Sterilization treatment unit 21 Dispersant introduction unit 31 Microorganism 32 Immobilization plate 41 Control means 42 Excitation light source 43 Fluorescence filter system 44 Differential interference filter 45 Filter switching means 46 Imaging means 47 Image recording means 48 Image analysis means 49 Image display means 100 Cryptosporidium detection unit 101 Preprocessing unit 102 Reaction unit 103 Fixing unit 104 Detection unit

Claims (5)

試料水中のクリプトスポリジウムを検出するクリプトスポリジウムの検出方法において、
中空糸膜を用いて試料水中の微生物を分離、濃縮し、メンブレンフィルターを用いてさらに分離、濃縮するステップと、
前記メンブレンフィルターによって分離、濃縮された前記微生物のうち、クリプトスポリジウムに対してそのオーシスト外殻に損傷を与えるステップと、
クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うとともに、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行って2重染色を行うステップと、
2重染色された前記微生物の微分干渉像及び蛍光発光像を得るステップと、
得られた微分干渉像及び蛍光発光像を解析してクリプトスポリジウムを認識するステップと、
を順次実行することを特徴とするクリプトスポリジウムの検出方法。
In a method for detecting Cryptosporidium for detecting Cryptosporidium in a sample water,
Separating and concentrating microorganisms in the sample water using a hollow fiber membrane, further separating and concentrating using a membrane filter,
Damaging the oocyst shell of Cryptosporidium among the microorganisms separated and concentrated by the membrane filter,
Performing fluorescence in-situ hybridization using a probe complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium, and performing immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium to perform double staining,
Obtaining a differential interference image and a fluorescence emission image of the double-stained microorganism;
Analyzing the obtained differential interference image and fluorescence emission image to recognize Cryptosporidium,
Are carried out sequentially. A method for detecting Cryptosporidium.
試料水中のクリプトスポリジウムを検出するクリプトスポリジウム検出装置において、
中空糸膜を用いて試料水中の微生物を分離、濃縮し、メンブレンフィルターを用いてさらに分離、濃縮する微生物回収手段と、
前記微生物回収手段によって分離、濃縮された前記微生物のうち、クリプトスポリジウムに対してそのオーシスト外殻に損傷を与える前処理手段と、
クリプトスポリジウムに含まれる核酸と相補的なプローブを用いて蛍光発光in−situハイプリダイゼーションを行うと共に、クリプトスポリジウムに関連する物質に対する抗体を用いて免疫染色を行う染色手段と、
前記染色手段により染色された前記微生物の微分干渉像及び蛍光発光像を得て、これらの画像を解析してクリプトスポリジウムを認識する検出手段と、
を備えたことを特徴とするクリプトスポリジウムの検出装置。
In a Cryptosporidium detector for detecting Cryptosporidium in sample water,
Microorganism recovery means for separating and concentrating microorganisms in the sample water using a hollow fiber membrane, further separating and concentrating using a membrane filter,
Pretreatment means that damages the oocyst shell of Cryptosporidium among the microorganisms separated and concentrated by the microorganism collection means,
Performing fluorescence in-situ hybridization using a probe complementary to the nucleic acid contained in Cryptosporidium, and staining means for performing immunostaining using an antibody against a substance related to Cryptosporidium,
Obtaining a differential interference image and a fluorescence emission image of the microorganism stained by the staining means, a detection means for analyzing these images to recognize Cryptosporidium,
An apparatus for detecting Cryptosporidium, comprising:
前記前処理手段は、熱処理、マイクロウェーブ処理及び電気的な処理の少なくとも1つの処理を行い、かつ、ホルマリン固定を行うことを特徴とする請求項2に記載のクリプトスポリジウムの検出装置。The cryptosporidium detection apparatus according to claim 2, wherein the pretreatment means performs at least one of heat treatment, microwave treatment, and electrical treatment, and performs formalin fixation. 前記染色手段は、蛍光標識プローブを用いて蛍光発光in−situハイブリダイゼーションを行い、かつ、それとは異なる識別可能な標識物質を用いて免疫染色をすることを特徴とする請求項2又は3に記載のクリプトスポリジウムの検出装置。The said staining means performs fluorescence emission in-situ hybridization using a fluorescent labeling probe, and performs immunostaining using a different identifiable labeling substance. Cryptosporidium detection device. 前記検出手段は、試料中に2重染色発光が検出され、かつ、蛍光検出位置の微分干渉像が目的対象微生物形状と認識された場合、オペレータに報知する手段を備えたことを特徴とする請求項2乃至4のいずれか1項に記載のクリプトスポリジウムの検出装置。The detection means comprises means for notifying an operator when double-stained luminescence is detected in the sample and the differential interference image at the fluorescence detection position is recognized as the target microorganism shape. Item 5. The apparatus for detecting Cryptosporidium according to any one of Items 2 to 4.
JP2002263318A 2002-09-09 2002-09-09 Cryptosporidium detection method and detection apparatus Expired - Lifetime JP3934514B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2002263318A JP3934514B2 (en) 2002-09-09 2002-09-09 Cryptosporidium detection method and detection apparatus

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2002263318A JP3934514B2 (en) 2002-09-09 2002-09-09 Cryptosporidium detection method and detection apparatus

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2004101361A true JP2004101361A (en) 2004-04-02
JP3934514B2 JP3934514B2 (en) 2007-06-20

Family

ID=32263097

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2002263318A Expired - Lifetime JP3934514B2 (en) 2002-09-09 2002-09-09 Cryptosporidium detection method and detection apparatus

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3934514B2 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007232501A (en) * 2006-02-28 2007-09-13 Fuji Electric Systems Co Ltd Adjustment method and detection method of detection object in environmental sample
KR100806202B1 (en) 2007-02-15 2008-02-22 광주과학기술원 An apparatus for multiple fluorescence in situ hybridization analysis
JP2010054335A (en) * 2008-08-28 2010-03-11 Metawater Co Ltd Microbe measuring method
JP2010236861A (en) * 2009-03-30 2010-10-21 Metawater Co Ltd Apparatus and method for automatic measurement of water quality
CN102175632A (en) * 2010-12-31 2011-09-07 聚光科技(杭州)股份有限公司 Method and device for detecting bacteria

Citations (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH10314552A (en) * 1997-05-15 1998-12-02 Mitsubishi Rayon Co Ltd Hollow fiber membrane cartridge for capturing protozoan and method for capturing and collecting protozoan
JPH11193A (en) * 1997-06-13 1999-01-06 Kurita Water Ind Ltd Detection of protozoon in water, its oocyst and its cyst
JPH1156342A (en) * 1997-08-21 1999-03-02 Horiba Ltd Measurement of live bacteria and protozoans in purified water
JPH11243953A (en) * 1998-02-27 1999-09-14 Hitachi Chem Co Ltd Primer dna for detection of cryptosporidium parvum, and detection of cryptosporidium parvum using the same
JP2000042307A (en) * 1998-07-27 2000-02-15 Hitachi Ltd Water purification plant water treatment system
JP2000517171A (en) * 1996-07-29 2000-12-26 ポール・コーポレーション Method and apparatus for determining microbial contamination of liquids
JP2001515598A (en) * 1997-03-18 2001-09-18 イゲン インターナショナル,インコーポレイテッド Detection of waterborne parasites using electrochemiluminescence
JP2001252099A (en) * 2000-03-13 2001-09-18 Ebara Corp Method for readily assaying pathogenic protozoan cryptosporidium having growing activity
JP2002105099A (en) * 2000-09-28 2002-04-10 Mitsubishi Chemicals Corp SELF-ASSOCIATION TYPE AMYLOID beta PROTEIN
JP2002205063A (en) * 2001-01-10 2002-07-23 Nippon Steel Corp Method for inactivating protozoa
JP2003502073A (en) * 1999-06-18 2003-01-21 マクアリー リサーチ リミテッド Giardia Detection
JP2003506029A (en) * 1999-08-02 2003-02-18 ビーティーエフ ピーティワイ リミテッド Internal certification test method
JP2004101360A (en) * 2002-09-09 2004-04-02 Tadashi Matsunaga Method and apparatus for detecting microorganism

Patent Citations (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000517171A (en) * 1996-07-29 2000-12-26 ポール・コーポレーション Method and apparatus for determining microbial contamination of liquids
JP2001515598A (en) * 1997-03-18 2001-09-18 イゲン インターナショナル,インコーポレイテッド Detection of waterborne parasites using electrochemiluminescence
JPH10314552A (en) * 1997-05-15 1998-12-02 Mitsubishi Rayon Co Ltd Hollow fiber membrane cartridge for capturing protozoan and method for capturing and collecting protozoan
JPH11193A (en) * 1997-06-13 1999-01-06 Kurita Water Ind Ltd Detection of protozoon in water, its oocyst and its cyst
JPH1156342A (en) * 1997-08-21 1999-03-02 Horiba Ltd Measurement of live bacteria and protozoans in purified water
JPH11243953A (en) * 1998-02-27 1999-09-14 Hitachi Chem Co Ltd Primer dna for detection of cryptosporidium parvum, and detection of cryptosporidium parvum using the same
JP2000042307A (en) * 1998-07-27 2000-02-15 Hitachi Ltd Water purification plant water treatment system
JP2003502073A (en) * 1999-06-18 2003-01-21 マクアリー リサーチ リミテッド Giardia Detection
JP2003506029A (en) * 1999-08-02 2003-02-18 ビーティーエフ ピーティワイ リミテッド Internal certification test method
JP2001252099A (en) * 2000-03-13 2001-09-18 Ebara Corp Method for readily assaying pathogenic protozoan cryptosporidium having growing activity
JP2002105099A (en) * 2000-09-28 2002-04-10 Mitsubishi Chemicals Corp SELF-ASSOCIATION TYPE AMYLOID beta PROTEIN
JP2002205063A (en) * 2001-01-10 2002-07-23 Nippon Steel Corp Method for inactivating protozoa
JP2004101360A (en) * 2002-09-09 2004-04-02 Tadashi Matsunaga Method and apparatus for detecting microorganism

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007232501A (en) * 2006-02-28 2007-09-13 Fuji Electric Systems Co Ltd Adjustment method and detection method of detection object in environmental sample
KR100806202B1 (en) 2007-02-15 2008-02-22 광주과학기술원 An apparatus for multiple fluorescence in situ hybridization analysis
JP2010054335A (en) * 2008-08-28 2010-03-11 Metawater Co Ltd Microbe measuring method
JP2010236861A (en) * 2009-03-30 2010-10-21 Metawater Co Ltd Apparatus and method for automatic measurement of water quality
CN102175632A (en) * 2010-12-31 2011-09-07 聚光科技(杭州)股份有限公司 Method and device for detecting bacteria

Also Published As

Publication number Publication date
JP3934514B2 (en) 2007-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2011500025A (en) Microfluidic platform for detecting multiple types of targets
US20100279322A1 (en) Direct detection of intracellular fluorescently tagged cells in solution
KR20090085095A (en) Arrangement and method for the analysis of biological samples
WO2013149003A1 (en) Methods and systems useful for foodborne pathogen detection
EP2419707B1 (en) Up-concentration of organic microobjects for microscopic imaging
JPH04187077A (en) Apparatus for extraction and purification of nucleic acid
JP5586867B2 (en) Water quality automatic measuring apparatus and method
JP3934514B2 (en) Cryptosporidium detection method and detection apparatus
US11891594B2 (en) Methods and apparatus for separating live from dead organisms in a sample
JP2007033353A (en) Microorganism detecting system
US10415031B2 (en) Method, apparatus and kit for human identification using polymer filter means for separation of sperm cells from biological samples that include other cell types
JP4068419B2 (en) Microorganism detection method and apparatus
JP4488670B2 (en) Microbial recovery method and recovery device
JP2007014239A (en) Method and device for detecting microorganism
US20120085712A1 (en) Filter apparatus and method
US10627416B2 (en) Aptasensor for detecting female-specific trace of blood and detection apparatus using the same
WO2000077253A1 (en) Apparatus and method for gene examination
EP0665893B1 (en) A method and an apparatus for detecting cells
JP2009201462A (en) Method and apparatus for recovering microorganism
JP5768319B2 (en) Microorganism detection method
JP2009213402A (en) Method for concentrating microorganism
NL1016565C2 (en) Cell hybridization device.
WO2018179735A1 (en) Device for analyzing cellular productivity, apparatus for analyzing cellular productivity, method for analyzing cellular productivity, and system for analyzing cellular productivity
WO2021097205A1 (en) Methods and apparatus for detection of bacteria in a sample using dielectrophoresis
WO2022241243A1 (en) Techniques for detection and quantification of live and dead bacteria in a fluid sample

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20050223

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20070301

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20070306

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20070315

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 3934514

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100330

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110330

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120330

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130330

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130330

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140330

Year of fee payment: 7

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313115

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

EXPY Cancellation because of completion of term