【０００１】
【発明が属する技術分野】
本発明は、食品中に含有するキトサン含量の定量法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
健康食品として販売されているキトサン含有食品は、キトサン含有量の表示が必要となっている。
【０００３】
従来、一般にキチン・キトサンの定量法は、キトサンを含有する食品を硫酸や塩酸で直接的に加水分解し、生成するβ−Ｄ−グルコサミン量を測定するものである。そのために食品中の成分、特に澱粉と蛋白質が加水分解され、生じたグルコースとアミノ酸が後のグルコサミンの定量に影響を及ぼし正確な定量値が求めにくいものであった。
【０００４】
上記のような課題を解消する手段として、キチン及びキトサンを含む食品中の澱粉や蛋白を加水分解酵素により予め取り除いた後、残存するキチン及びキトサンを硫酸を用いて加水分解し、生成するグルコサミンを定量するものがあった（特開平５−２５２９９７）。この従来技術において、食品中から加水分解酵素により澱粉や蛋白を取り除く方法としては、プロスキー法を用いている。また、生成したグルコサミンを定量する方法としては、インドール塩酸法により比色定量しているものである。
【０００５】
すなわち、従来技術ではキトサンを含む食物繊維をプロスキー法で処理し、この食物繊維をセライトをひいたグラスフィルターで回収し恒量を出したのち、グラスフィルターの食物繊維全量をセライトごと、容器に移して硫酸分解を行う。そして、硫酸分解後、適当な濃度に希釈し、キトサン分解物をインドール塩酸法により比色定量し、キトサン含量を算出する方法である。
【０００６】
ここでプロスキー法とは、食品（試料）からの食物繊維の分離方法であり、また、インドール塩酸法とは、グルコサミン及びキトサン分解物を発色の度合いによりキトサンを定量する方法である。
【０００７】
従来の食品中のキトサン含量を定量する方法について説明すると、食品試料としては、３０メッシュパスのものを用い、液状または水分が多い試料の場合は、凍結乾燥を行った後、粉砕して定量分析に供する。また、粗脂肪が６％以上の食品試料の場合は、３０分間の静置脱水を３〜４回行って用いるものである。
【０００８】
従来法のプロスキー法では、まず第１に食品試料から食物繊維を分離する。
従来のプロスキー法による食物繊維の分離工程は、試料を正確に秤量して、リン酸緩衝液を加え懸濁した後、沸騰水浴中で時々攪拌しながら３０分間酵素処理を行う。酵素処理後、室温まで冷却し水酸化ナトリウムを加え、水酸化ナトリウムまたはリン酸で、ｐＨを調整する。
【０００９】
次いで耐熱性プロテアーゼにリン酸緩衝液を用いて濃度調整した酵素液を加え、攪拌しながら６０℃で３０分間酵素処理を行う。終了後、室温まで水冷しリン酸を加え、水酸化ナトリウムまたはリン酸で、ｐＨを調整する。続いてアミログルコシダーゼを加え、攪拌しながら６０℃で３０分間酵素処理を行う。終了後、加温したエタノールを加え室温で１時間放置する。放置後、酸洗浄したセライトを均一に敷き詰めたガラスフィルター（Ｐｒｏｓｉｔｙ−２：ｐｏｒｅ ｓｉｚｅ４０−９０μｍ）で吸引濾過する。濾過終了後、吸引しながらエタノールでトールビーカーに残っている食物繊維をフィルター上に回収する。この回収操作を２回繰り返した後、フィルター上の残渣をエタノールで２回、アセトンで２回洗浄し、一晩乾燥させ食物繊維残渣を得るものである。
【００１０】
第２に得られた食物繊維残渣を希硫酸により加水分解する。上記により得られた食物繊維残渣を遠沈管にとり、硫酸を加えガラス棒でよく攪拌した後、２時間室温で放置する。その後、脱イオン水をガラス棒に付着したキトサンを洗浄しながら加え、密閉または冷却管を付して６時間１００℃で加水分解を行う。分解後、分解熱が熱いうちに遠心分離を行い、セライトを沈殿させ、上清を回収する。遠沈管に残ったセライトに硫酸を加えよく攪拌し１００℃まで加熱した後、同様に遠心分離を行って上清を回収する。このセライト洗浄操作を更に１回繰り返した後、上清は脱イオン水でキトサン濃度として０．０２〜０．４ｍｇ／ｍｌになるように定容して、次の発色試験に供する。
【００１１】
第３にグルコサミンの発色はインドール塩酸法を用いる。まず、試験管に加水分解液をとり、試験１では亜硝酸ナトリウム、試験２では亜硝酸ナトリウムの代わりに脱イオン水を加え攪拌する。続いて、酢酸を加えよく攪拌し、室温で１０分間放置する。放置後、スルファミン酸アンモニウムを加え、時々攪拌しながら室温で３０分間放置する。この試料に塩酸を加えた後、インドール−エタノール溶液を加え混合し、沸騰水中で５分間反応させた後、エタノールを加え、室温に冷却した後、ただちに４９０ｎｍと５２０ｎｍの吸光度を測定する。検量線はグルコサミン塩酸塩水溶液を用い、上記のインドール塩酸法の操作から試験試料と同様に発色させ、ＯＤ値を算出する。
【００１２】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、従来のプロスキー法を用いた定量法によれば、キトサンの回収率が低くなり、バラツキが多くなるものであった。その原因としては次のようなことが推察される。
【００１３】
第１にプロスキー分解において、リン酸緩衝液中のリン酸がキトサンと結合するなどの原因により、食物繊維量が２〜３割増える。このことは正確な食物繊維量が得られないほか、結合したリン酸などが原因で比色定量を正解に行うことが出来ないことが考えられる。
【００１４】
第２にプロスキー分解後、セライトをひいたグラスフィルターでキトサンを含む食物繊維を回収し、乾燥して恒量を検出する操作があるが、この操作を行ったあと、グラスフィルターの食物繊維全量をセライトごと、硫酸分解する容器に移し、硫酸分解を行う。この際に食物繊維全量を容器に移すが、グラスフィルターなどに付着した食物繊維を完全に回収することが困難なため、最終的にキトサンの回収率が下がる。
【００１５】
第３に硫酸分解後、硫酸分解を行ったサンプル中のセライトを除去する際に遠心分離を行うが、その際に高温を保ったまま遠心分離を行わなければ、キトサン分解物の硫酸塩と思われる細かな結晶がセライトとともに沈殿し、結果としてキトサンの回収率が下がることがあり操作が複雑である。
【００１６】
第４に硫酸分解後の遠心によるセライト除去を行った上澄み液をメスフラスコに移し、メスアップしたサンプルを一部採取し、これを比色定量するものである。この際に硫酸分解したサンプルは、キトサン分解物の硫酸塩と思われる細かな結晶が沈殿し、メスアップしたサンプルから一部採取する時に、均一になるように良く攪拌しなければ、キトサンの回収率が低下する。
【００１７】
従来のプロスキー法を用いた定量法により、キトサンにリン酸が結合して食物繊維量が増加することを示すため、キトサンを含む食品「キトサン・小麦粉混合物」について食物繊維量を測定した結果、下記の表１に示すとおりであった。
【００１８】
【表１】
※１：小麦粉由来の繊維量計算値は、小麦粉１００％のサンプルより得られた食物繊維量より小麦粉の添加量に合わせて計算した値。
※２：キトサン由来食物繊維量計算値は、プロスキー法による総食物繊維量測定値から小麦粉由来食物繊維量計算値を差し引いた値。
【００１９】
上記の測定結果からみて、キトサン添加率と見かけ上のキトサン重量増加量には明らかに相関が見られる（図１参照）。この現象はプロスキー法で分解する際、リン酸緩衝液中のリン酸が結合するために生ずる現象であると思われる。このことからみても従来のプロスキー法ではキトサンを含む食品の食物繊維量を正確に測ることはできないという課題を有していた。
【００２０】
本発明は上記のようなプロスキー法及びインドール塩酸法を用いたキトサン含量の定量法による課題を解消すると共に、食品中のキトサン含有値の回収率が高くなると共に、バラツキが少ない新規な食品中のキトサン含量の定量法を提供するのが目的である。
【００２１】
【課題を解決するための手段】
本発明は上記のような課題を解決する手段として、次のような手段を講じたものである。
特許を受けようとする発明は、キトサンを含有する食品を、リン酸を含まないＴｒｉｓ−酢酸緩衝液を用いたプロスキー法でキトサンを含む食物繊維を回収する工程と、この食物繊維をセライトの引いていないグラスフィルターで回収することにより恒量を測定して食物繊維量を算出する工程と、グラスフィルターの食物繊維の一部を分取して６Ｎ塩酸を加え脱気下で加水分解を行う工程と、塩酸加水分解後、適当な濃度に希釈し、キトサン分解物をインドール塩酸法により比色定量してキトサン含量を定量する工程とからなる食品中のキトサン含量の定量法である。
【００２２】
本発明における食品中のキトサン含量の定量法は、上記の各工程により定量するものであり、ここでプロスキー法とは、食品（試料）からの食物繊維の分離方法であり、また、インドール塩酸法とは、酸による加水分解を行った試料中のグルコサミン及びキトサン分解物の存在量を発色の度合いによりキトサンを定量する方法である。
【００２３】
なお、比色定量法としては、インドール塩酸法の他にエルソン・モルガン法がある。キトサンを定量するにあたって酸分解を行い、キトサンを低分子化し比色定量可能なグルコサミン及びキトサンオリゴ糖にする必要があるが、酸分解の条件としては、キトサンが完全に分解された形のグルコサミンだけの状態にし、且つ出来るだけグルコサミンが分解されて減少しないような条件で酸分解を行うことが理想である。しかしながら、塩酸・硫酸のいずれで分解する場合であっても、グルコサミンの分解を出来る限り抑えることが一番重要である。その分解を抑えるために温和な条件下で酸分解を行うが、この場合、キトサンは完全に分解されずグルコサミン及びキトサンオリゴ糖の混合状態となる。
【００２４】
エルソン・モルガン法では単糖であるヘキソサミン類（グルコサミン）のみを定量する。このためキトサンがグルコサミンにまで完全に分解されていなければ、キトサン含量が低くなるということになる。しかし、他の夾雑物の影響をほとんど受けずヘキソサミン類（グルコサミン）だけを定量することが可能なので、キトサンの酸分解を厳密にコントロールすることができ、キトサンのグルコサミンへの分解率が分かれば、よりキトサンに対して特異性の高い定量法になる可能性がある。両比色定量法には長短があり、本発明の比色定量法としては、インドール塩酸法を用いるものである。インドール塩酸法は、グルコサミン及びキトサンオリゴ糖の両方を測定することができるため、本方法を用いた。
【００２５】
本発明においては、第１にリン酸を含まないＴｒｉｓ−酢酸緩衝液を用いたプロスキー法でキトサンを含む食物繊維を回収する工程を経るものである。そのために、リン酸塩のキトサンに対する特異的吸着が起こらず、キトサンを含む食物繊維量が正確に算出できると共に、回収したキトサンを含む食物繊維中の不純物がより少なくなる。また、キトサンを含む食物繊維をグラスフィルターで回収する際に、セライトを引かずに直接回収し、キトサンを含む食物繊維量を決定し、その一部を採取し塩酸で加水分解を行うので、キトサンを含む食物繊維の含有比率を正確に測定することができる。
【００２６】
これにより従来方法で問題となる食物繊維のグラスフィルターへの付着による、回収率の低下を防ぐことができる。更に、セライト濾過を行わないので、従来のプロスキー法のようにセライトの除去を行わなくて済み、操作が簡便であり、キトサン酸分解物の結晶の大量発生によって生じるサンプリングの誤差による回収率の低下が起こらないものとなる。
【００２７】
【発明の効果】
このように本発明の定量法では、恒量を測定したキトサンを含む食物繊維の一部を採取し、塩酸で加水分解することによって、従来の定量法の課題である食物繊維のグラスフィルターへの付着による、回収率の低下を防ぐことができる。また従来法のようにセライト濾過を行わないため、セライトの除去操作の必要がないので操作を簡便化することができる。そして、硫酸分解のときのような、キトサン酸分解物の発生による回収率の低下が起こらない。更に正確な食物繊維量が出るので、食物繊維中のキトサン含量を算出することも可能である。
【００２８】
【実施例】
以下、本発明の態様を試験例１及び試験例２により具体的に説明する。
【００２９】
【試験例１】
本発明方法によるキトサン含量の測定値と、従来方法によるキトサン含量の測定値とを比較するため、従来のプロスキー法により食物繊維に分解したものと、改良したプロスキー法により食物繊維に分解したものを下記の表２に示す。なお、キトサン含有食品試料として市販健康食品「カニパワー」（株式会社ニチロ製）を用いた。また、食品試料である市販健康食品に表示されているキトサン等の配合率は下記の表３に示すとおりである。
【００３０】
【表２】
【００３１】
【表３】
【００３２】
その後、上記の従来方法により分解した食物繊維をインドール塩酸法で硫酸分解したものと、同塩酸分解したもの、及び改良したプロスキー法により硫酸分解したもの、本発明方法により塩酸分解したものを下記の表４に示す。
【００３３】
【表４】
【００３４】
本発明方法は、Ｔｒｉｓ−酢酸緩衝液を用いた本発明法によりキトサンを含む食物繊維に分解した後、塩酸でキトサンを脱気下で加水分解し、生じたグルコサミン及びオリゴグルコサミン量をインドール塩酸法で比色定量しキトサン含量を算出した。
【００３５】
上記の結果から見て、硫酸分解法と比較して塩酸分解の方が回収率が高くなる傾向があった。また、従来プロスキー法と改良プロスキー法で分解した際の差はほとんどないが、前述したように従来プロスキー法ではリン酸のキトサンに対する特異的吸着等の現象が見られ食物繊維量が実際より多く測定されるなど、不純物が含まれている可能性がある。したがって、より不純物が少ない改良プロスキー法でキトサンを含む食物繊維に分解した後、操作が簡便で回収率が良くなる塩酸分解を行い、生じたグルコサミン及びキトサン分解物をインドール塩酸法で比色定量してキトサン含量を算出することにより、従来法と比較して正確な値が得られることが確認された。
【００３６】
なお、参考データとしてエルソン・モルガン法により比色定量したものを下記の表５に示す。
【００３７】
【表５】
【図面の簡単な説明】
【図１】従来のプロスキー法を用いた定量法により、キトサンを含む食品の食物繊維量を測定した結果からキトサン添加率とキトサン重量増加量の相関関係を示すグラフである。[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for determining the content of chitosan contained in food.
[0002]
[Prior art]
Chitosan-containing foods sold as health foods require labeling of the chitosan content.
[0003]
Conventionally, a method for quantitatively determining chitin / chitosan generally involves directly hydrolyzing a food containing chitosan with sulfuric acid or hydrochloric acid, and measuring the amount of β-D-glucosamine produced. For this reason, components in foods, particularly starch and protein, are hydrolyzed, and the resulting glucose and amino acids affect the subsequent determination of glucosamine, making it difficult to obtain accurate quantitative values.
[0004]
As a means for solving the above-mentioned problems, glucosamine produced by removing starch and proteins in foods containing chitin and chitosan in advance by a hydrolytic enzyme, and then hydrolyzing the remaining chitin and chitosan using sulfuric acid to produce glucosamine. Some were quantified (JP-A-5-252997). In this conventional technique, a prosky method is used as a method for removing starch and protein from food by using a hydrolase. As a method for quantifying the generated glucosamine, colorimetric quantification is performed by the indole hydrochloric acid method.
[0005]
That is, in the prior art, dietary fiber containing chitosan is treated by the Prosky method, the dietary fiber is collected by a glass filter with celite, and a constant weight is given.After that, the entire dietary fiber of the glass filter is transferred to a container together with the celite. To perform sulfuric acid decomposition. After the decomposition with sulfuric acid, the mixture is diluted to an appropriate concentration, and the chitosan decomposition product is colorimetrically determined by the indole hydrochloric acid method to calculate the chitosan content.
[0006]
Here, the Prosky method is a method for separating dietary fiber from a food (sample), and the indole hydrochloride method is a method for quantifying chitosan based on the degree of color development of glucosamine and chitosan decomposition products.
[0007]
A conventional method for quantifying the content of chitosan in food will be described. As a food sample, a 30-mesh pass is used. In the case of a liquid or a sample having a large amount of water, freeze-drying is performed, followed by grinding and quantitative analysis. To serve. In the case of a food sample having a crude fat content of 6% or more, the sample is subjected to standing dehydration for 30 minutes three to four times before use.
[0008]
In the conventional Prosky method, first, dietary fiber is separated from a food sample.
In the conventional process of separating dietary fiber by the Prosky method, a sample is accurately weighed, a phosphate buffer is added and suspended, and then enzymatic treatment is performed for 30 minutes while stirring occasionally in a boiling water bath. After the enzyme treatment, the mixture is cooled to room temperature, sodium hydroxide is added, and the pH is adjusted with sodium hydroxide or phosphoric acid.
[0009]
Next, an enzyme solution adjusted in concentration using a phosphate buffer is added to the heat-resistant protease, and the enzyme treatment is performed at 60 ° C. for 30 minutes with stirring. After completion, water-cooled to room temperature, phosphoric acid is added, and the pH is adjusted with sodium hydroxide or phosphoric acid. Subsequently, amyloglucosidase is added, and the enzyme treatment is performed at 60 ° C. for 30 minutes while stirring. After completion, add warmed ethanol and leave at room temperature for 1 hour. After standing, the solution is suction-filtered through a glass filter (Prosity-2: pore size 40-90 μm) in which acid-washed celite is uniformly spread. After the filtration, the dietary fiber remaining in the tall beaker is collected on the filter with ethanol while suctioning. After this collection operation is repeated twice, the residue on the filter is washed twice with ethanol and twice with acetone, and dried overnight to obtain a dietary fiber residue.
[0010]
Second, the obtained dietary fiber residue is hydrolyzed with dilute sulfuric acid. The dietary fiber residue obtained above is placed in a centrifuge tube, sulfuric acid is added, and the mixture is stirred well with a glass rod, and then left at room temperature for 2 hours. Thereafter, deionized water is added while washing the chitosan adhered to the glass rod, and the mixture is hydrolyzed at 100 ° C. for 6 hours in a sealed or attached cooling tube. After decomposition, centrifugation is performed while the heat of decomposition is hot to precipitate celite, and the supernatant is recovered. Sulfuric acid is added to the celite remaining in the centrifuge tube, and the mixture is stirred well and heated to 100 ° C., and then centrifuged similarly to collect the supernatant. After repeating this celite washing operation one more time, the supernatant is adjusted to a chitosan concentration of 0.02 to 0.4 mg / ml with deionized water and subjected to the next color development test.
[0011]
Third, glucosamine is formed using the indole hydrochloric acid method. First, a hydrolyzate is placed in a test tube, and deionized water is added and stirred in place of sodium nitrite in test 1 and sodium nitrite in test 2. Subsequently, acetic acid is added, the mixture is stirred well, and left at room temperature for 10 minutes. After standing, ammonium sulfamate is added, and left for 30 minutes at room temperature with occasional stirring. After hydrochloric acid is added to this sample, an indole-ethanol solution is added and mixed, and the mixture is reacted in boiling water for 5 minutes. After adding ethanol and cooling to room temperature, the absorbance at 490 nm and 520 nm is measured immediately. The calibration curve uses an aqueous solution of glucosamine hydrochloride, develops the color in the same manner as the test sample from the above-mentioned operation of the indole hydrochloric acid method, and calculates the OD value.
[0012]
[Problems to be solved by the invention]
However, according to the conventional quantitative method using the Prosky method, the recovery rate of chitosan is low, and the dispersion is large. The following are presumed as the causes.
[0013]
First, in the decomposition of Prosky, the amount of dietary fiber increases by 20 to 30% due to factors such as binding of phosphoric acid in the phosphate buffer to chitosan. This means that the accurate amount of dietary fiber cannot be obtained, and the colorimetry cannot be performed correctly due to the bound phosphoric acid.
[0014]
Secondly, after decomposition of Prosky, there is an operation to collect dietary fiber containing chitosan with a glass filter coated with celite, dry and detect the constant weight. After this operation, the total amount of dietary fiber in the glass filter is reduced. The whole celite is transferred to a vessel for sulfuric acid decomposition, and sulfuric acid decomposition is performed. At this time, the whole amount of dietary fiber is transferred to the container, but it is difficult to completely recover the dietary fiber attached to the glass filter or the like, and thus the chitosan recovery rate eventually decreases.
[0015]
Third, after the sulfuric acid decomposition, centrifugation is performed when removing the celite in the sample subjected to the sulfuric acid decomposition. If centrifugation is not performed while maintaining the high temperature at that time, it is considered to be a sulfate of the chitosan decomposition product The fine crystals precipitate with celite, and as a result, the recovery of chitosan may decrease, and the operation is complicated.
[0016]
Fourthly, the supernatant liquid from which celite has been removed by centrifugation after sulfuric acid decomposition is transferred to a volumetric flask, and a partly sampled sample is collected and colorimetrically determined. At this time, fine crystals, which are considered to be sulfates of the chitosan decomposition product, precipitate in the sample decomposed by sulfuric acid. The rate drops.
[0017]
By the conventional quantitative method using the Prosky method, to show that the amount of dietary fiber increases by binding of phosphoric acid to chitosan, as a result of measuring the amount of dietary fiber for the food containing chitosan `` Chitosan-flour mixture '', It was as shown in Table 1 below.
[0018]
[Table 1]
* 2: The calculated value of dietary fiber derived from chitosan is a value obtained by subtracting the calculated value of dietary fiber derived from flour from the measured value of total dietary fiber by the Prosky method.
[0019]
From the above measurement results, there is clearly a correlation between the chitosan addition rate and the apparent increase in chitosan weight (see FIG. 1). This phenomenon is considered to be caused by the binding of phosphate in the phosphate buffer when decomposed by the Prosky method. In view of this, the conventional Prosky method has a problem that the amount of dietary fiber in foods containing chitosan cannot be accurately measured.
[0020]
The present invention solves the problems of the above-described methods for determining the chitosan content using the Prosky method and the indole hydrochloride method, as well as increasing the recovery rate of the chitosan content value in the food and reducing the variation in the novel food. It is an object of the present invention to provide a method for quantifying the chitosan content of corn.
[0021]
[Means for Solving the Problems]
The present invention employs the following means as means for solving the above problems.
The invention to be patented includes a step of recovering chitosan-containing food fiber by a Prosky method using a Tris-acetate buffer solution containing no phosphoric acid, and a step of recovering the dietary fiber containing chitosan from celite. A step of calculating the amount of dietary fiber by measuring a constant weight by collecting with a glass filter which is not pulled, and a step of fractionating a part of the dietary fiber of the glass filter, adding 6N hydrochloric acid and performing hydrolysis under degassing. And a step of diluting the chitosan hydrolyzate to an appropriate concentration after hydrochloric acid hydrolysis, and colorimetrically determining the chitosan content by the indole hydrochloric acid method to determine the chitosan content.
[0022]
The method for determining the content of chitosan in foods according to the present invention is determined by the above-described steps. Here, the Prosky method is a method for separating dietary fiber from foods (samples). The method is a method of determining the amount of glucosamine and chitosan hydrolyzate in a sample that has been hydrolyzed with an acid to determine chitosan based on the degree of color development.
[0023]
The colorimetric method includes Elson-Morgan method in addition to the indole hydrochloric acid method. When quantifying chitosan, it is necessary to carry out acid decomposition to reduce the molecular weight of chitosan to glucosamine and chitosan oligosaccharide which can be colorimetrically determined. Ideally, acid decomposition is performed under such conditions that glucosamine is not decomposed and reduced as much as possible. However, regardless of whether it is decomposed with hydrochloric acid or sulfuric acid, it is most important to suppress the decomposition of glucosamine as much as possible. In order to suppress the decomposition, acid decomposition is performed under mild conditions, but in this case, chitosan is not completely decomposed and a mixed state of glucosamine and chitosan oligosaccharide is obtained.
[0024]
In the Elson-Morgan method, only hexosamines (glucosamines), which are monosaccharides, are quantified. For this reason, if chitosan is not completely decomposed to glucosamine, the chitosan content will be low. However, since only hexosamines (glucosamine) can be quantified without being affected by other contaminants, the acid decomposition of chitosan can be strictly controlled, and if the decomposition rate of chitosan to glucosamine is known, It may be a more specific method for chitosan. Both colorimetric methods have advantages and disadvantages, and the colorimetric method of the present invention uses the indole hydrochloric acid method. The indole hydrochloric acid method was used because both glucosamine and chitosan oligosaccharide can be measured.
[0025]
In the present invention, first, a step of collecting dietary fiber containing chitosan by a Prosky method using a Tris-acetate buffer solution containing no phosphoric acid is performed. Therefore, specific adsorption of phosphate to chitosan does not occur, the amount of dietary fiber containing chitosan can be accurately calculated, and impurities in the recovered dietary fiber containing chitosan are further reduced. In addition, when dietary fiber containing chitosan is collected with a glass filter, it is directly collected without pulling celite, the amount of dietary fiber containing chitosan is determined, a part thereof is collected and hydrolyzed with hydrochloric acid, so that chitosan Can be accurately measured.
[0026]
As a result, it is possible to prevent a decrease in the recovery rate due to the attachment of dietary fiber to the glass filter, which is a problem in the conventional method. Furthermore, since celite filtration is not performed, elimination of celite as in the conventional Prosky method is not necessary, the operation is simple, and the recovery rate due to sampling errors caused by the large generation of crystals of the chitosan acid decomposition product is reduced. No degradation will occur.
[0027]
【The invention's effect】
As described above, in the quantification method of the present invention, a part of dietary fiber containing chitosan whose constant weight is measured is collected and hydrolyzed with hydrochloric acid, thereby adhering dietary fiber to a glass filter, which is a problem of the conventional quantification method. , A reduction in the recovery rate can be prevented. Moreover, since celite filtration is not performed as in the conventional method, there is no need to perform an operation for removing celite, so that the operation can be simplified. Then, the recovery rate does not decrease due to the generation of chitosan acid decomposition product as in the case of sulfuric acid decomposition. Since a more accurate amount of dietary fiber is obtained, it is possible to calculate the chitosan content in the dietary fiber.
[0028]
【Example】
Hereinafter, embodiments of the present invention will be described specifically with reference to Test Examples 1 and 2.
[0029]
[Test Example 1]
In order to compare the measured value of the chitosan content according to the method of the present invention with the measured value of the chitosan content according to the conventional method, it was decomposed into dietary fiber by the conventional Prosky method and decomposed into dietary fiber by the improved Prosky method. The results are shown in Table 2 below. As a chitosan-containing food sample, a commercially available health food “Kanipower” (manufactured by Nichiro Co., Ltd.) was used. The compounding ratios of chitosan and the like, which are indicated on the commercially available health foods as food samples, are as shown in Table 3 below.
[0030]
[Table 2]
[Table 3]
Thereafter, dietary fiber decomposed by the above-mentioned conventional method was subjected to sulfuric acid decomposition by the indole hydrochloric acid method, and the following: Is shown in Table 4.
[0033]
[Table 4]
In the method of the present invention, after decomposing into dietary fiber containing chitosan by the method of the present invention using a Tris-acetate buffer, the chitosan is hydrolyzed under degassing with hydrochloric acid, and the amounts of glucosamine and oligoglucosamine produced are determined by the indole hydrochloric acid method. And the chitosan content was calculated.
[0035]
From the above results, there was a tendency that the recovery rate was higher in the case of decomposing with hydrochloric acid than in the case of decomposing with sulfuric acid. There is almost no difference between the conventional Prosky method and the modified Prosky method when decomposed, but as described above, the phenomenon such as specific adsorption of phosphoric acid to chitosan was observed in the conventional Prosky method, and the amount of dietary fiber actually increased. There may be impurities, such as more measurements. Therefore, after being decomposed into dietary fiber containing chitosan by the improved Prosky method with less impurities, hydrochloric acid decomposition is performed, which is convenient and the recovery rate is improved, and the resulting glucosamine and chitosan decomposition products are colorimetrically determined by the indole hydrochloric acid method. By calculating the chitosan content, it was confirmed that an accurate value was obtained as compared with the conventional method.
[0036]
Table 5 below shows data obtained by colorimetric quantification by the Elson-Morgan method as reference data.
[0037]
[Table 5]
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a graph showing the correlation between the chitosan addition rate and the weight increase of chitosan from the result of measuring the amount of dietary fiber in foods containing chitosan by a conventional quantitative method using the Prosky method.
