JP2004012170A - Method for immunological measurement and measuring kit - Google Patents

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JP2004012170A
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antibody
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human
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immunoreagent
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Keisuke Iwata
岩田 恵助
Daiken Kin
金 大憲
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SHIMA KENKYUSHO KK
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SHIMA KENKYUSHO KK
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for immunologically measuring for clinically examining with high reliability by performing a reduction in a false positive and an improvement in idiosyncrasy by excluding nonspecific reaction by an antibody or a cross antibody for a substance of a constituents of an immunity reagent and to provide a measuring kit. <P>SOLUTION: The immunologically measuring method having a step of reacting an immunity reagent carried with a specific component in a human originating specimen with an insoluble carrier of a specific antigen or antibody to the specific component, before the specimen according to the human is reacted with the immunity reagent, has a step of previously reacting the antibody to the constituents of the immunity reagent or the antigen to the cross antibody existing in the specimen according to the human with the block reagent carried to the insoluble antibody. The combination of the immunity reagent and the block reagent is thus provided. <P>COPYRIGHT: (C)2004,JPO

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、免疫学的測定および測定用キットに関する。より詳細には、ヒト検体中に存在する試薬原料等の物質に対する抗体あるいはその交叉抗体が試薬原料と抗原抗体反応を引き起こすことによる偽反応を抑制するための免疫学的測定方法および測定用キットに関する。
【0002】
【従来の技術】
抗原と抗体の結合反応を利用したin vitroアッセイである免疫学的測定方法は、微量成分を特異的に検出あるいは精度よく測定できることから、臨床検査に広く応用されている。それらには、標識の仕方等により、凝集法(血球、ラテックス等を担体に使用したもの)、放射免疫学的測定法(RIA)、酵素免疫学的測定法(EIA)、蛍光免疫学的測定法(FIA)、化学発光免疫学的測定法(CLIA)、ネフェロメトリーおよび免疫比濁法等がある。
【0003】
しかしながら、免疫学的測定法の臨床検査への応用においては、患者から採取した、血液、尿などの生物学的流体中に存在するリュウマチ因子(RF)や補体Clq、ミエローマ、HAMAなどによる非特異凝集反応が偽陽性を生じさせるという問題があった。
【0004】
そこで、RF等の影響による非特異反応を抑制するために、ジチオスレイトール、2−メルカプトエタノールによる検体の前処理または抗IgM抗体、各種動物のγ−グロブリンもしくはその変性物の添加のような検体の前処理、抗体のFab、F(ab’)等のフラグメントの使用、あるいはFc部位がブロックされている抗体を使用するなどの免疫学的測定法の改良が提案されている。
【0005】
例えば、Journal of Clinical Microbiology,Feb.1976,p.157−160には、ジチオスレイトールによる検体の前処理が記載されている。また、医学検査42巻9号1993年,p.1504−1508には、抗ヒトIgM抗体や抗ヒトIgG抗体の添加、非働化、加熱処理、2−メルカプトエタノール処理が記載されている。特公昭61−942号公報には、未感作の正常動物γ−グロブリンまたはその変性物を添加し、その存在下で検体中の抗原または抗体を免疫学的に測定する方法を開示している。
【0006】
抗体のフラグメントの使用については、Fc部位が非特異的反応に関与することから、特公昭63−38668号公報は、これを切断した免疫グロブリンのF(ab’)フラグメントを測定用抗体として使用する免疫検定を開示している。
【0007】
特に、ラテックスを使用した凝集法においては、尿素、ホルムアミド等の誘導体およびジ低級アルキルスルホキシド等を配合してRF等による非特異的反応を防止すること(特公昭60−4941号公報)、および免疫グロブリンのF(ab’)のフラグメント(断片)とFcフラグメントないしFacbフラグメントとpFc’フラグメントの混合物を感作したラテックス粒子を使用してRF等の干渉を避けること(特公昭63−63863号公報および特公昭63−41426号公報)が知られている。
【0008】
特開平7−27764号公報では、抗体のFc部位と特異的に結合する免疫グロブリンの抗原結合部位を少なくとも含むブロック試薬によってFc部位がブロックされている抗体を使用することにより、RF等の物質による非特異的反応を排除する方法を開示している。
【0009】
特開2000−292424号または特開2000−321279号公報では、血液検体を採血する場合の採血管由来の成分が検体中に溶け出すことによる干渉物質の除去や検体中に存在する例えばある種のタンパク質が、不溶性担体粒子表面に吸着しやすい性状を持つことがあるため、ラテックス免疫比濁法などの粒子凝集反応では非特異凝集反応をおこす場合があったので、これを検出する方法や、検体分中ミスの確認等の手段として、ダミー粒子を用いる方法を開示している。
【0010】
しかしながら、高感度法が要求される近年、従来から知られている方法では排除できない非特異的反応がまれに発生する問題があった。
【0011】
本発明者らは、上記のような問題を解決するため鋭意研究した結果、今までに知られていなかった試薬原料等の物質に対する抗体あるいはその交叉抗体がヒト検体中に存在し、その抗原抗体反応による偽反応を引き起こすことを突き止め、ヒト検体中に存在する該抗体を予めブロックすることにより、非特異的反応を排除する方法を知見し本発明に到達した。
【0012】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、ヒト検体中に存在し且つ免疫試薬の構成成分である物質に対する抗体あるいはその交叉抗体が試薬原料と抗原抗体反応を引き起こすことによる偽反応を抑制するための免疫学的測定用キットを提供することにある。
【0013】
本発明の他の目的は、上記の免疫学的測定用キットを使用する免疫学的測定法を提供することにある。
【0014】
本発明のさらに他の目的は、ヒト検体中に存在する試薬原料等の物質に対する抗体あるいはその交叉抗体との非特異的反応を排除することができる免疫学的測定法を提供することにある。
【0015】
本発明のさらに他の目的および利点は、以下の説明から明らかになろう。
【0016】
【課題を解決するための手段】
本発明によれば、本発明の上記目的および利点は、第1に、ヒト由来の検体中の特定成分を、それに対する特定の抗原または抗体が不溶性担体に担持されてなる免疫試薬と反応させることからなる免疫学的測定法において、ヒト由来の検体を免疫試薬と反応させる前に、該ヒト由来の検体中に存在し且つ該免疫試薬の構成成分に対する抗体あるいは交叉抗体に対する抗原が不溶性担体に担持されてなるブロック試薬と予め反応させることを特徴とする免疫学的測定法によって達成される。
【0017】
また、本発明によれば、本発明の上記目的および利点は、第2に、(1)ヒト由来の検体中の特定成分に対する特定の抗原または抗体が不溶性担体に担持されてなる免疫試薬および(2)該ヒト由来の検体中に存在し且つ該免疫試薬の構成成分に対する抗体あるいは交叉抗体に対する抗原が不溶性担体に担持されてなるブロック試薬との組合せからなる免疫学的測定用キットによって達成される。
【0018】
【発明の好ましい実施形態】
以下、本発明を詳述する。本発明の免疫学的測定法について先ず説明する。
【0019】
本発明において、免疫学的測定方法とは、免疫反応(抗原抗体反応)を利用した測定法であり、定性法および定量法の両方を含む。免疫学的測定法の例として、凝集法(ラックス、血球等の担体を用いた凝集法)、放射免疫学的測定法(RIA)、酵素免疫学的測定法(EIA)、蛍光イムノアッセイ、発光イムノアッセイ、凝集法に基づいた比濁法、比ろう法および粒度分布測定法等が挙げられる。
【0020】
本発明のヒト検体中に存在しそして免疫試薬の構成成分である物質に対する抗体あるいはその交叉抗体とは、免疫試薬の構成成分である例えば牛血清アルブミン、カゼイン等のタンパクに対する抗体である。
【0021】
牛血清アルブミン、カゼイン等のタンパクは、免疫試薬の安定化剤として使用されている。
【0022】
例えば、凝集法では、ラテックス粒子や血球などの不溶性担体に抗原または抗体を担持させて免疫試薬を調製するが、免疫試薬の安定化のために牛血清アルブミンまたはカゼインなどのタンパクを使用してポストコーティング処理がなされている。このポストコーティング処理した牛血清アルブミンやカゼインに対する抗体がヒト検体中に存在するとき、抗原抗体反応による凝集反応(非特異的凝集反応)が誘発される問題がある。本発明は、この問題を予めポストコーティングに使用したタンパクと同じ材料を不溶性担体に結合させたブロック試薬がヒト検体中の非特異の原因となる該抗体をブロックすることにより解決しようとするものである。
【0023】
ブロック試薬の使用例としては、主に汎用の自動分析装置や専用機を使用した免疫学的測定法に適用でき、検体に2種類以上の試薬が混合される反応過程において、抗原または抗体が担持されたラテックス試薬が分注される前の工程において、検体とブロック試薬とを予め混合することにより、ブロック試薬がヒト検体中の非特異の原因となる該抗体をブロックする。この工程の後に抗原または抗体が担持されたラテックス試薬が分注されることにより、ヒト検体中に存在する試薬原料等の物質に対する抗体あるいはその交叉抗体との非特異的凝集反応を抑制した測定法が実現できる。
【0024】
このブロック試薬の例としては、ポストコーティングに牛血清アルブミンが使用されている場合は、これと同一のものを不溶性担体に担持して調製される。
【0025】
ブロック試薬に使用する不溶性担体としては、一般に免疫学的凝集法に用いられているラテックス粒子を用いることができることは当然として、その前駆体であってもよく、あるいは、リポゾーム、金コロイド等も用いることができる。いずれの場合も、免疫学的測定試薬である抗原または抗体を担持したラテックス粒子よりも小さいことが望ましく、測定の対象となる免疫学的凝集反応および測定の妨げにならない範囲で適用される。例えば、不溶性担体がラテックス粒子の場合は、粒子径が0.5μm以下のものを用いることが好ましく、より好ましくは0.2μm以下である。さらに好ましくは0.1μm以下である。
【0026】
ラテックス凝集比濁法に適用させる場合は、緩衝液である第一試薬にブロック試薬を混合して製造しておくことが望ましく、あるいは使用する前に混合してもかまわない。免疫学的測定試薬がブロック試薬を含む第一試薬と抗原または抗体を担持させたラテックス試薬である第二試薬の2試薬系である場合、第一試薬に含まれるブロック試薬のラテックス濃度(重量基準)としては、含有量が多い方が効果的であり、0.0001〜5%が好ましく、より好ましくは0.005〜1%、さらに好ましくは0.03〜0.3%である。あまり多すぎると試薬吸光度ブランクが高くなるので好ましくはない。第一試薬の試薬吸光度ブランクとしては、1以下が好ましい。より好ましくは0.005〜0.5である。また、第一試薬中のブロック試薬の原料である不溶性担体と第二試薬のラテックスの重量比は、0.2〜50倍量が好ましく、より好ましくは1〜5倍量である。このブロック試薬の原料である不溶性担体がラテックス粒子の場合は、第二試薬のラテックス粒子数の1〜5,000倍が好ましく、より好ましくは20〜200倍である。
【0027】
本発明の免疫学的測定法においては、検体は特に制限されず、通常の免疫学的測定法で対象となる検体に適用できる。検体としては、ヒト由来のもの、特に、ヒトの血液(血清、血漿、全血)、尿、糞便等が挙げられる。特に、血液のように抗体の含量が高い検体の場合には有利である。
【0028】
本発明の免疫学的測定法における測定対象の物質は、特に制限されず、通常の免疫学的測定法で測定されるものが測定できる。例としては、CEA、AFP、CA19−9、ペプシノーゲンIおよびII、フェリチン等の腫瘍マーカー、プロテインC、プロテインS、ATIII、FDP、D−ダイマー等の凝固線溶系マーカー、HBs抗原、HCV抗体、梅毒抗体等の感染症マーカー、TSH、プロラクチン、インシュリン等のホルモン、ミオグロビン、ミオシン等の組織成分が挙げられる。
【0029】
本発明によれば、本発明の免疫学的測定法において用いられる、上記免疫学的試薬とブロック試薬の組合せからなる免疫学的キットが便利に提供される。これらの試薬はそれぞれ別個の容器に保存され、それらの組合せとして本発明の免疫学的キットが提供される。
【0030】
【実施例】
以下の実施例によって、さらに詳しく本発明の説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【0031】
調製例1
ブロック試薬(牛血清アルブミン抗体吸収試薬)の調製
1%牛血清アルブミン−グリシン緩衝液10mLに、0.055μmポリスチレンラテックス(固形分10%)1%懸濁グリシン緩衝液10mLを加えてミキサーでよく混合した後、37℃で90分間または56℃で60分間インキュベーションを行い牛血清アルブミンを担持させたブロック試薬を調製した。
【0032】
実施例1
(1)TP抗原感作ラテックス試薬(第二試薬)の調製
TPリコンビナント抗原溶液(60μg/mL)0.5mLに0.3μmポリスチレンラテックス(固形分10%)2%懸濁リン酸緩衝液0.5mLを加えてミキサーでよく混合した後、37℃で60分間インキュベーションした。これに1%BSA−リン酸緩衝液4mLを加え、37℃で90分間インキュベーションすることによりポストコーティングを行った。次に遠心分離(15,000rpmにて15分間遠心)を行い、沈殿を0.2%牛血清アルブミンを含むリン酸緩衝液に再分散して、TP抗原感作ラテックス試薬10mLを調製した(第二試薬)。
【0033】
(2)TP測定用緩衝液(第一試薬)の調製
1%牛血清アルブミン−グリシン緩衝液(0.01%Tween100を含有)にブロック試薬を加えて、牛血清アルブミンを担持させたラテックスが0.16%含有するように調製した。
【0034】
(3)TP抗体の測定
自動分析装置として、7170型(HITACHI)を使用した。第一試薬および第二試薬を装置にセットして、通常の方法により測定した。まず、検体10μLと第一試薬160μLが反応セルに分注され、37℃で4.5分間インキュベーションされた。その後、第二試薬が80μL分注されることにより、検体中存在した梅毒抗体と第二試薬中のTP抗原を担持させたラテックスが抗原抗体反応により凝集を起こし、この5分間を吸光度変化量を測定することにより、この結果から測定値が出力された。その結果を表1に示す。
【0035】
比較例1
第一試薬として、1%牛血清アルブミン−グリシン緩衝液(0.01%Tween100を含有)にブロック試薬を加えない他は最終的に同じ組成になるように調製したものを用いた以外は実施例1と同様に行った。結果を表1に示す。
【0036】
比較例2
第一試薬として、56℃で30分間インキュベーションさせた熱変性牛血清アルブミンを使用した他は、比較例1と同じ組成のものを用いた。その他は実施例1と同様に行った。結果を表1に示す。
【0037】
【表1】

Figure 2004012170
【0038】
検体No.1〜9はTP陰性検体であるが、No.7、8、9は検体中に牛血清アルブミン抗体を持った検体である。No.10〜13はTP陽性検体である。比較例1では、牛血清アルブミン抗体を持った検体No.7、8、9において、牛血清アルブミン抗体による非特異的凝集反応が認められる。また、比較例2では、非特異的凝集反応の影響は軽減されたが、検体No.8および9は非特異的凝集反応の影響を受けていると考えられる。一方、本発明の試薬による測定は牛血清アルブミン抗体による非特異的凝集反応は観察されなかった。
【0039】
実施例2
(1)TP抗原感作ラテックス試薬(第二試薬)の調製
実施例1と同様に調製した。
(2)TP測定用緩衝液(第一試薬)の調製
1%牛血清アルブミン−グリシン緩衝液(0.01%Tween100を含有)にブロック試薬を加えて、牛血清アルブミンを担持させたラテックスが0.025%、0.05%、0.10%、0.16%含有するように調製した。また、対照法(比較例3)はブロック試薬を含まない他は同様な組成である。
(3)TP抗体の測定
実施例1と同様に測定した。その結果を表2に示す。
【0040】
【表2】
Figure 2004012170
【0041】
検体No.2、3、4、5、8および9はTP陰性検体であるが、No.8および9は検体中に牛血清アルブミン抗体を持った検体である。No.10〜13はTP陽性検体である。対照方法(比較例3)は、牛血清アルブミン抗体を持った検体No.8および9において、牛血清アルブミン抗体による非特異的凝集反応が認められる。本発明の試薬による測定は第一試薬中のブロック試薬である牛血清アルブミンを担持させたラテックスが0.025%では、検体No.8は判定保留域に軽減でき、No.9は非特異的凝集反応を抑制することができた。同様に0.05%以上では、牛血清アルブミン抗体による非特異的凝集反応は観察されなかった。
【0042】
実施例3
(1)ペプシノーゲン II 抗体感作ラテックス試薬(第二試薬)の調製
抗ペプシノーゲンIIモノクロナール抗体(A)3mgをリン酸ナトリウム緩衝液9.5mLに溶解し、0.3μmのポリスチレンラテックス(固形分10重量%緩衝液)0.5mLを加え、37℃で2時間インキュベーションした後、これに2%BSA−リン酸緩衝液2mLを加え、37℃で90分間インキュベーションすることによりポストコーティングを行った。
次に遠心分離(15,000rpmにて15分間遠心)を行い、上清を捨て、沈殿を牛血清アルブミン溶液(0.1Mグリシン、0.05M塩化ナトリウム、0.05%アジ化ナトリウム、0.2%BSA)に懸濁させ、ペプシノーゲンII抗体感作ラテックス(A)を調製した。同様に、抗ペプシノーゲンII抗体(B)を用いて、ペプシノーゲンII抗体感作ラテックス(B)を調製した。(A)および(B)を混合して、ペプシノーゲンII抗体感作ラテックス試薬を調製した。
【0043】
(2)ペプシノーゲン II 測定用緩衝液(第一試薬)の調製
1%牛血清アルブミン−グリシン緩衝液にブロック試薬を加えて、牛血清アルブミンが担持させたラテックスが0.16%含有するように調製した。また、対照法(比較例4)はブロック試薬を含まない他は同様な組成である。
【0044】
(3)ペプシノーゲン II の測定
実施例1のTP抗体の測定と同様の操作で測定した。結果を表3に示す。表3中、RIAの欄の値は放射線免疫測定法による測定値である。
【0045】
【表3】
Figure 2004012170
【0046】
検体No.10は、血清検体中に牛血清アルブミン抗体を持った検体である。対照方法は、牛血清アルブミン抗体を持った検体No.10は非特異的凝集反応により、正に乖離している。一方、本発明の試薬による測定は牛血清アルブミン抗体による非特異的凝集反応は観察されなかった。
【0047】
【発明の効果】
本発明によれば、免疫試薬の構成成分である物質に対する抗体あるいはその交叉抗体による非特異的反応を排除できるため、偽陽性の削減および特異性の向上が達成され、信頼性のより高い臨床検査が可能になる。[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to an immunological measurement and a kit for measurement. More specifically, the present invention relates to an immunological measurement method and a measurement kit for suppressing a false reaction caused by an antibody against a substance such as a reagent material present in a human sample or a cross-antibody thereof causing an antigen-antibody reaction with the reagent material. .
[0002]
[Prior art]
An immunological measurement method, which is an in vitro assay utilizing a binding reaction between an antigen and an antibody, can be specifically detected or accurately measured for a trace component, and thus has been widely applied to clinical tests. They include an agglutination method (using blood cells, latex, etc. as a carrier), a radioimmunoassay (RIA), an enzyme immunoassay (EIA), and a fluorescence immunoassay depending on the method of labeling. Method (FIA), chemiluminescence immunoassay (CLIA), nephelometry and immunoturbidimetry.
[0003]
However, in the application of immunoassays to clinical tests, rheumatoid factor (RF), complement Clq, myeloma, HAMA, etc., which are present in biological fluids such as blood and urine collected from patients, do not contain such immunological assays. There was a problem that the specific agglutination reaction caused a false positive.
[0004]
Therefore, in order to suppress non-specific reactions due to the influence of RF or the like, a sample such as pretreatment of a sample with dithiothreitol or 2-mercaptoethanol or addition of an anti-IgM antibody, γ-globulin of various animals or a denatured product thereof is added. Improvement of immunoassay methods, such as pretreatment of E. coli, use of fragments such as Fab and F (ab ') 2 of an antibody, or use of an antibody in which an Fc site is blocked has been proposed.
[0005]
See, for example, Journal of Clinical Microbiology, Feb. 1976, p. 157-160 describes a pretreatment of a sample with dithiothreitol. Also, Medical Examination, Vol. 42, No. 9, 1993, p. Nos. 1504-1508 describe addition, inactivation, heat treatment, and 2-mercaptoethanol treatment of an anti-human IgM antibody or an anti-human IgG antibody. Japanese Patent Publication No. 61-942 discloses a method in which an unsensitized normal animal γ-globulin or a denatured product thereof is added and the antigen or antibody in the sample is immunologically measured in the presence thereof. .
[0006]
Regarding the use of antibody fragments, JP-B-63-38668 discloses the use of an F (ab ') 2 fragment of an immunoglobulin cleaved as an antibody for measurement because the Fc site is involved in non-specific reactions. Disclosed immunoassays.
[0007]
In particular, in the agglutination method using latex, non-specific reaction by RF or the like is prevented by blending derivatives such as urea and formamide and di-lower alkyl sulfoxide (Japanese Patent Publication No. 60-4941), and Avoid interference such as RF by using latex particles sensitized with a mixture of a fragment (fragment) of F (ab ') 2 of a globulin and an Fc fragment or a mixture of a Facb fragment and a pFc' fragment (Japanese Patent Publication No. 63-63863). And JP-B-63-41426).
[0008]
In JP-A-7-27764, the use of an antibody whose Fc site is blocked by a blocking reagent containing at least an antigen-binding site of an immunoglobulin that specifically binds to the Fc site of the antibody allows the use of substances such as RF. Methods for eliminating non-specific reactions are disclosed.
[0009]
In JP-A-2000-292424 or JP-A-2000-32279, in the case of collecting a blood sample, removal of an interfering substance due to a component derived from a blood collection tube dissolving into the sample, and a method of removing certain substances present in the sample, for example, Since proteins may be easily adsorbed on the surface of insoluble carrier particles, non-specific agglutination reactions may occur in particle agglutination reactions such as latex immunoturbidimetry. A method using a dummy particle is disclosed as a means for confirming a mistake during separation or the like.
[0010]
However, in recent years, a high sensitivity method has been required, and there has been a problem that a nonspecific reaction which cannot be eliminated by a conventionally known method rarely occurs.
[0011]
The present inventors have conducted intensive studies to solve the above-described problems, and as a result, an antibody against a substance such as a reagent material, which has not been known, or a cross antibody thereof is present in a human sample, and the antigen antibody The present inventors have found a method for eliminating a non-specific reaction by finding out that a false reaction is caused by the reaction, and preliminarily blocking the antibody present in a human sample, and have reached the present invention.
[0012]
[Problems to be solved by the invention]
An object of the present invention is to provide an immunological assay for suppressing a false reaction caused by an antibody or a cross antibody thereof to a substance which is present in a human sample and is a component of an immunoreagent, and causing an antigen-antibody reaction with the reagent material. To provide a kit.
[0013]
Another object of the present invention is to provide an immunoassay using the above-described immunoassay kit.
[0014]
It is still another object of the present invention to provide an immunological assay method capable of eliminating non-specific reaction of an antibody against a substance such as a reagent raw material or the like present in a human specimen with a cross antibody.
[0015]
Still other objects and advantages of the present invention will become apparent from the following description.
[0016]
[Means for Solving the Problems]
According to the present invention, the above objects and advantages of the present invention are, firstly, that a specific component in a human-derived specimen is reacted with an immunoreagent in which a specific antigen or antibody corresponding thereto is supported on an insoluble carrier. In the immunoassay comprising, before reacting a human-derived sample with an immunoreagent, an antibody present in the human-derived sample and presenting an antibody against a component of the immunoreagent or an antigen against a cross-antibody is carried on an insoluble carrier. This is achieved by an immunological assay characterized by reacting in advance with the resulting blocking reagent.
[0017]
According to the present invention, the above object and advantages of the present invention are, secondly, (1) an immunoreagent comprising a specific antigen or antibody against a specific component in a human-derived specimen supported on an insoluble carrier; 2) It is achieved by an immunoassay kit comprising a combination of a blocking reagent, which is present in the human-derived specimen and contains an antibody against a component of the immunoreagent or an antigen against a cross-antibody supported on an insoluble carrier. .
[0018]
Preferred Embodiment of the Invention
Hereinafter, the present invention will be described in detail. First, the immunoassay of the present invention will be described.
[0019]
In the present invention, the immunological measurement method is a measurement method utilizing an immune reaction (antigen-antibody reaction), and includes both a qualitative method and a quantitative method. Examples of the immunoassay include agglutination (agglutination using a carrier such as Lux and blood cells), radioimmunoassay (RIA), enzyme immunoassay (EIA), fluorescence immunoassay, and luminescence immunoassay. And a turbidimetric method based on an agglomeration method, a faze measuring method, a particle size distribution measuring method and the like.
[0020]
The antibody or the cross antibody thereof to the substance which is present in the human sample of the present invention and is a component of the immunoreagent is an antibody to a protein such as bovine serum albumin and casein which is a component of the immunoreagent.
[0021]
Proteins such as bovine serum albumin and casein have been used as stabilizers for immunological reagents.
[0022]
For example, in the agglutination method, an immunoreagent is prepared by carrying an antigen or an antibody on an insoluble carrier such as latex particles or blood cells.However, in order to stabilize the immunoreagent, post-immunization is performed using a protein such as bovine serum albumin or casein. The coating has been applied. When an antibody against bovine serum albumin or casein that has been subjected to the post-coating treatment is present in a human sample, there is a problem that an agglutination reaction (non-specific agglutination reaction) due to an antigen-antibody reaction is induced. The present invention is intended to solve this problem by blocking the antibody which causes non-specificity in a human sample by a blocking reagent in which the same material as the protein used in the post-coating is bound to an insoluble carrier. is there.
[0023]
Examples of use of block reagents are mainly applicable to immunoassays using general-purpose automatic analyzers and special-purpose machines. In the reaction process where two or more types of reagents are mixed with a sample, the antigen or antibody is carried. In a step before the used latex reagent is dispensed, the blocking reagent blocks the antibody that causes non-specificity in the human specimen by mixing the specimen and the blocking reagent in advance. After this step, a latex reagent carrying an antigen or an antibody is dispensed to suppress non-specific agglutination with an antibody against a substance such as a reagent material present in a human sample or its cross-antibody. Can be realized.
[0024]
As an example of this blocking reagent, when bovine serum albumin is used for post-coating, the same reagent is prepared by supporting the same on an insoluble carrier.
[0025]
As the insoluble carrier used for the blocking reagent, latex particles generally used for immunological agglutination can be used, of course, and the precursor thereof may be used, or liposomes, gold colloid, or the like may be used. be able to. In any case, the size of the latex particles is desirably smaller than that of the latex particles carrying the antigen or antibody which is the immunological measurement reagent, and is applied within a range that does not hinder the immunological agglutination reaction to be measured and the measurement. For example, when the insoluble carrier is latex particles, those having a particle size of 0.5 μm or less are preferably used, and more preferably 0.2 μm or less. More preferably, it is 0.1 μm or less.
[0026]
When applied to the latex agglutination turbidimetric method, it is desirable to mix the blocking reagent with the first reagent which is a buffer solution beforehand, or to mix them before use. When the immunological measurement reagent is a two-reagent system comprising a first reagent containing a blocking reagent and a second reagent which is a latex reagent carrying an antigen or an antibody, the latex concentration of the blocking reagent contained in the first reagent (weight basis) As), the higher the content, the more effective it is, preferably from 0.0001 to 5%, more preferably from 0.005 to 1%, even more preferably from 0.03 to 0.3%. If the amount is too large, the reagent absorbance blank becomes high, which is not preferable. The reagent absorbance blank of the first reagent is preferably 1 or less. More preferably, it is 0.005 to 0.5. The weight ratio of the insoluble carrier as the raw material of the blocking reagent in the first reagent to the latex of the second reagent is preferably 0.2 to 50 times, more preferably 1 to 5 times. When the insoluble carrier as a raw material of the blocking reagent is latex particles, the number is preferably 1 to 5,000 times, more preferably 20 to 200 times the number of latex particles of the second reagent.
[0027]
In the immunological assay of the present invention, the sample is not particularly limited, and the present invention can be applied to a target sample in a normal immunological assay. Samples include those of human origin, particularly human blood (serum, plasma, whole blood), urine, feces, and the like. In particular, it is advantageous for a specimen having a high antibody content such as blood.
[0028]
The substance to be measured in the immunoassay of the present invention is not particularly limited, and those measured by a usual immunoassay can be measured. Examples include tumor markers such as CEA, AFP, CA19-9, pepsinogen I and II, ferritin, coagulation / fibrinolysis markers such as protein C, protein S, ATIII, FDP, D-dimer, HBs antigen, HCV antibody, syphilis Examples include infectious disease markers such as antibodies, hormones such as TSH, prolactin and insulin, and tissue components such as myoglobin and myosin.
[0029]
According to the present invention, there is conveniently provided an immunological kit comprising a combination of the above immunological reagent and a blocking reagent, which is used in the immunological assay of the present invention. Each of these reagents is stored in a separate container, and the combination provides the immunological kit of the present invention.
[0030]
【Example】
The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to the following examples.
[0031]
Preparation Example 1
Preparation of blocking reagent (bovine serum albumin antibody absorption reagent) To 10 mL of 1% bovine serum albumin-glycine buffer, add 10 mL of 0.055 μm polystyrene latex (solid content 10%) 1% suspended glycine buffer, and mix well with a mixer. After that, incubation was performed at 37 ° C. for 90 minutes or at 56 ° C. for 60 minutes to prepare a blocking reagent carrying bovine serum albumin.
[0032]
Example 1
(1) Preparation of TP antigen-sensitized latex reagent (second reagent) 0.3 μm polystyrene latex (10% solid content) in 0.5 mL TP recombinant antigen solution (60 μg / mL) 2% suspension phosphate buffer After adding 5 mL and mixing well with a mixer, the mixture was incubated at 37 ° C. for 60 minutes. To this, 4 mL of 1% BSA-phosphate buffer was added, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 90 minutes to perform post-coating. Next, centrifugation (centrifugation at 15,000 rpm for 15 minutes) was performed, and the precipitate was redispersed in a phosphate buffer containing 0.2% bovine serum albumin to prepare 10 mL of a TP antigen-sensitized latex reagent (No. 1). Two reagents).
[0033]
(2) Preparation of buffer for TP measurement (first reagent) A blocking reagent was added to a 1% bovine serum albumin-glycine buffer (containing 0.01% Tween 100), and the latex carrying bovine serum albumin was reduced to 0%. .16%.
[0034]
(3) Measurement of TP antibody Model 7170 (HITACHI) was used as an automatic analyzer. The first reagent and the second reagent were set in the apparatus, and the measurement was performed by a usual method. First, 10 μL of the sample and 160 μL of the first reagent were dispensed into a reaction cell and incubated at 37 ° C. for 4.5 minutes. After that, the second reagent is dispensed in an amount of 80 μL, whereby the syphilis antibody present in the sample and the latex carrying the TP antigen in the second reagent undergo aggregation due to an antigen-antibody reaction. By measuring, a measured value was output from this result. Table 1 shows the results.
[0035]
Comparative Example 1
Example 1 except that a 1% bovine serum albumin-glycine buffer (containing 0.01% Tween 100) was used so that the blocking reagent was not added thereto, and the final reagent had the same composition as the first reagent. Performed similarly to 1. Table 1 shows the results.
[0036]
Comparative Example 2
The same reagent as in Comparative Example 1 was used except that heat-denatured bovine serum albumin incubated at 56 ° C. for 30 minutes was used as the first reagent. Others were performed similarly to Example 1. Table 1 shows the results.
[0037]
[Table 1]
Figure 2004012170
[0038]
Sample No. Nos. 1 to 9 are TP negative samples. Samples 7, 8, and 9 are samples having bovine serum albumin antibody in the sample. No. 10 to 13 are TP positive samples. In Comparative Example 1, Sample No. 1 having bovine serum albumin antibody was used. In 7, 8, and 9, nonspecific agglutination by bovine serum albumin antibody is observed. In Comparative Example 2, the influence of non-specific agglutination was reduced, but Sample No. 8 and 9 are thought to be affected by non-specific agglutination. On the other hand, in the measurement with the reagent of the present invention, non-specific agglutination by the bovine serum albumin antibody was not observed.
[0039]
Example 2
(1) Preparation of TP antigen-sensitized latex reagent (second reagent) Prepared in the same manner as in Example 1.
(2) Preparation of buffer for TP measurement (first reagent) A blocking reagent was added to a 1% bovine serum albumin-glycine buffer (containing 0.01% Tween 100), and the latex carrying bovine serum albumin was reduced to 0%. It was prepared to contain 0.025%, 0.05%, 0.10%, and 0.16%. The control method (Comparative Example 3) has the same composition except that no blocking reagent is contained.
(3) Measurement of TP antibody The measurement was performed in the same manner as in Example 1. Table 2 shows the results.
[0040]
[Table 2]
Figure 2004012170
[0041]
Sample No. Nos. 2, 3, 4, 5, 8 and 9 are TP negative samples, Samples 8 and 9 have bovine serum albumin antibodies in the sample. No. 10 to 13 are TP positive samples. In the control method (Comparative Example 3), the sample No. having the bovine serum albumin antibody was used. In Nos. 8 and 9, non-specific agglutination by bovine serum albumin antibody is observed. In the measurement using the reagent of the present invention, when the latex carrying bovine serum albumin as a blocking reagent in the first reagent was 0.025%, the sample No. No. 8 can be reduced to the judgment suspension area. No. 9 was able to suppress non-specific agglutination. Similarly, at 0.05% or more, nonspecific agglutination by bovine serum albumin antibody was not observed.
[0042]
Example 3
(1) Preparation of pepsinogen II antibody-sensitized latex reagent (second reagent ) 3 mg of anti-pepsinogen II monoclonal antibody (A) was dissolved in 9.5 mL of sodium phosphate buffer, and 0.3 μm of polystyrene latex was dissolved. After adding 0.5 mL (solid content 10% by weight buffer) and incubating at 37 ° C. for 2 hours, 2 mL of 2% BSA-phosphate buffer was added thereto, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 90 minutes to complete the post-coating. went.
Next, centrifugation (centrifugation at 15,000 rpm for 15 minutes) was performed, the supernatant was discarded, and the precipitate was washed with a bovine serum albumin solution (0.1 M glycine, 0.05 M sodium chloride, 0.05% sodium azide, 0.1% sodium azide). 2% BSA) to prepare a pepsinogen II antibody-sensitized latex (A). Similarly, a pepsinogen II antibody-sensitized latex (B) was prepared using the anti-pepsinogen II antibody (B). (A) and (B) were mixed to prepare a pepsinogen II antibody-sensitized latex reagent.
[0043]
(2) Preparation of buffer for pepsinogen II measurement (first reagent) A blocking reagent was added to a 1% bovine serum albumin-glycine buffer to prepare a 0.16% latex supported by bovine serum albumin. did. The control method (Comparative Example 4) had the same composition except that no blocking reagent was contained.
[0044]
(3) Measurement of pepsinogen II The measurement was performed in the same manner as in the measurement of the TP antibody in Example 1. Table 3 shows the results. In Table 3, the values in the column of RIA are values measured by a radioimmunoassay.
[0045]
[Table 3]
Figure 2004012170
[0046]
Sample No. Numeral 10 is a specimen having bovine serum albumin antibody in the serum specimen. As a control method, a sample No. having a bovine serum albumin antibody was used. 10 is positively dissociated by a non-specific agglutination reaction. On the other hand, in the measurement with the reagent of the present invention, non-specific agglutination by the bovine serum albumin antibody was not observed.
[0047]
【The invention's effect】
According to the present invention, a non-specific reaction due to an antibody or a cross-antibody to a substance that is a component of an immunoreagent can be eliminated, so that false positives are reduced and specificity is improved, and a more reliable clinical test is achieved. Becomes possible.

Claims (6)

ヒト由来の検体中の特定成分を、それに対する特定の抗原または抗体が不溶性担体に担持されてなる免疫試薬と反応させることからなる免疫学的測定法において、ヒト由来の検体を免疫試薬と反応させる前に、該ヒト由来の検体中に存在し且つ該免疫試薬の構成成分に対する抗体あるいは交叉抗体に対する抗原が不溶性担体に担持されてなるブロック試薬と予め反応させることを特徴とする免疫学的測定法。A human-derived specimen is reacted with an immunoreagent in an immunoassay comprising reacting a specific component in a human-derived specimen with an immunoreagent in which a specific antigen or antibody corresponding thereto is carried on an insoluble carrier. Prior to reacting with a blocking reagent which is present in said human-derived specimen and which comprises an antibody to a component of said immunoreagent or an antigen to cross-antibody carried on an insoluble carrier. . 上記免疫試薬の構成成分が免疫試薬の安定化のためのポストコーティングに用いられたタンパクである請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the component of the immunoreagent is a protein used for post-coating for stabilizing the immunoreagent. 上記タンパクが牛血清アルブミンまたはカゼインである請求項2に記載の方法。3. The method according to claim 2, wherein the protein is bovine serum albumin or casein. (1)ヒト由来の検体中の特定成分に対する特定の抗原または抗体が不溶性担体に担持されてなる免疫試薬および(2)該ヒト由来の検体中に存在し且つ該免疫試薬の構成成分に対する抗体あるいは交叉抗体に対する抗原が不溶性担体に担持されてなるブロック試薬との組合せからなる免疫学的測定用キット。(1) an immunoreagent in which a specific antigen or antibody against a specific component in a human-derived specimen is supported on an insoluble carrier; and (2) an antibody present in the human-derived specimen and directed to a component of the immunoreagent or An immunoassay kit comprising a combination with a blocking reagent in which an antigen for a cross antibody is carried on an insoluble carrier. 上記免疫試薬の構成成分が免疫試薬の安定化のためのポストコーティングに用いられたタンパクである請求項4に記載のキット。The kit according to claim 4, wherein the component of the immunoreagent is a protein used for post-coating for stabilizing the immunoreagent. 上記タンパクが牛血清アルブミンまたはカゼインである請求項4に記載のキット。The kit according to claim 4, wherein the protein is bovine serum albumin or casein.
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