JP2003219865A - Method for making spheroid, the resultant spheroid and spheroid-containing composition - Google Patents

Method for making spheroid, the resultant spheroid and spheroid-containing composition

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JP2003219865A
JP2003219865A JP2002020231A JP2002020231A JP2003219865A JP 2003219865 A JP2003219865 A JP 2003219865A JP 2002020231 A JP2002020231 A JP 2002020231A JP 2002020231 A JP2002020231 A JP 2002020231A JP 2003219865 A JP2003219865 A JP 2003219865A
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spheroid
cells
spheroids
carrier
cell
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Masakazu Kato
雅一 加藤
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Japan Tissue Engineering Co Ltd
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Japan Tissue Engineering Co Ltd
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide spheroids each of a specified size by using various kinds of cells without being limited to the kinds, and to produce such spheroids uniformly and easily in large quantities. <P>SOLUTION: The spheroids comprise carriers having cell adhesivity and cells. Such spheroids are produced by the step of mixing cells with a population of carriers having cell adhesion activity under the conditions of not integratedly coagulating the population of carriers and the step of culturing the mixture for a specified period of time. <P>COPYRIGHT: (C)2003,JPO

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、細胞培養操作によ
り得られるスフェロイド(細胞凝集塊)を作製するため
の作製方法と、スフェロイド、及びこのスフェロイドを
含有したスフェロイド含有組成物に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for producing spheroids (cell aggregates) obtained by a cell culture operation, a spheroid, and a spheroid-containing composition containing the spheroid.

【0002】[0002]

【従来の技術】二次元的な平面培養と異なり、培養時に
生体内環境に類似した三次元構造を構築するスフェロイ
ド(細胞凝集塊)が、肝細胞などの細胞の機能を長期間
の培養において維持するために利用されている。
2. Description of the Related Art Unlike two-dimensional flat culture, spheroids (cell aggregates) that construct a three-dimensional structure similar to the in-vivo environment during culture maintain the functions of cells such as hepatocytes in long-term culture. It is used to

【0003】従来のスフェロイドの作製方法としては、
アガロース、寒天等の細胞非接着性基質や、プロテオグ
リカン等の細胞半接着性基質をコートした培養容器、あ
るいは陽性荷電を付与した培養容器で細胞を培養するこ
とで、偶発的あるいは自発的に細胞を凝集させ、スフェ
ロイドを形成させる方法が知られている。この方法は、
癌細胞、胎児細胞、肝細胞などの凝集し易い細胞におけ
るスフェロイドの作製方法として知られている。
As a conventional method for producing spheroids,
By culturing the cells in a culture vessel coated with a non-cell-adhesive substrate such as agarose or agar, or a semi-adhesive substrate such as proteoglycan, or a culture vessel with a positive charge, the cells are accidentally or spontaneously cultured. A method of aggregating to form a spheroid is known. This method
It is known as a method for producing spheroids in cells that easily aggregate such as cancer cells, fetal cells, and hepatocytes.

【0004】また、細胞接着性を有さないゾル−ゲル転
移物質を含有する培養液に、細胞シート又はスフェロイ
ド前駆体を浮遊させた後、培養液をゾル状態からゲル状
態に転移させ、ゲル中で細胞シート又はスフェロイド前
駆体を培養することで、スフェロイドを作製する方法が
案出されている(特開平08−140673号:スフェ
ロイドの作製方法)。この方法では、スフェロイドの大
きさをコントロールできるという利点を有する。
In addition, after suspending a cell sheet or a spheroid precursor in a culture solution containing a sol-gel transition substance having no cell adhesiveness, the culture solution is transferred from a sol state to a gel state, A method for producing a spheroid by culturing a cell sheet or a spheroid precursor with the above method has been devised (Japanese Patent Laid-Open No. 08-140673: a method for producing a spheroid). This method has the advantage that the size of spheroids can be controlled.

【0005】一方、表面をポリヒドロキシエチルメタク
リレートなどの親水性ポリマーでコートした培養器に、
骨性細胞とリン酸カルシウム系化合物懸濁液とを播種す
ることによって、骨性細胞と、リン酸カルシウム系化合
物と、場合によって骨性細胞が産生した細胞外マトリク
スとを含むスフェロイドも提案されている(特開平10
−243996号)。
On the other hand, an incubator whose surface is coated with a hydrophilic polymer such as polyhydroxyethyl methacrylate,
A spheroid containing an osteocyte, a calcium phosphate compound, and an extracellular matrix produced by the osteocyte in some cases has also been proposed by seeding an osteocyte and a calcium phosphate-based compound suspension (Japanese Patent Laid-Open No. Hei 10 (1999) -242242). 10
-243996).

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、特定の
細胞培養容器を使用する方法では、癌細胞、胎児細胞、
肝細胞等の凝集しやすい細胞種に限定されるとともに、
スフェロイドの大きさ(細胞数)をコントロールするこ
とが困難であった。また、リン酸カルシウム系化合物を
使用する方法では、親水性ポリマーをコートすることに
よって、ディッシュ底面の細胞接着性を調節する必要が
ある。一方、細胞接着性を有さないゾル−ゲル転移物質
を含有する培養液を使用する方法では、その作製方法の
工程は、予め細胞シートやスフェロイド前駆体を作製す
るという手間が掛かり、必ずしも容易な作製方法とは言
えない。殊に、大量に作製するには相当な労力を要する
ため、二次的利用として軟膏剤や注射剤等の外用剤と混
合して利用することが困難であった。
However, in the method using a specific cell culture vessel, cancer cells, fetal cells,
Limited to cell types that tend to aggregate, such as hepatocytes,
It was difficult to control the size (cell number) of spheroids. Further, in the method using a calcium phosphate-based compound, it is necessary to control the cell adhesiveness on the bottom surface of the dish by coating with a hydrophilic polymer. On the other hand, in the method of using a culture solution containing a sol-gel transition substance having no cell adhesiveness, the step of the production method requires the labor of previously producing a cell sheet or a spheroid precursor, which is not always easy. Not a manufacturing method. In particular, since a large amount of preparation requires a considerable amount of labor, it has been difficult to use it as a secondary use by mixing it with an external preparation such as an ointment or an injection.

【0007】本発明は上記従来技術の問題点を鑑み、細
胞種に限定されることなく、種々の細胞種による所定の
大きさのスフェロイドを均一且つ容易に大量に作製する
ことが可能なスフェロイドの作製方法、及びこのような
スフェロイド、並びに外用剤として利用することのでき
る前記スフェロイドを含有したスフェロイド含有組成物
を提供することを技術課題とする。
In view of the above-mentioned problems of the prior art, the present invention provides a spheroid capable of uniformly and easily producing a large number of spheroids of a predetermined size by various cell types without being limited to the cell type. It is a technical object to provide a method for producing the spheroid, and a spheroid-containing composition containing the spheroid, which can be used as an external preparation.

【0008】[0008]

【課題を解決するための手段】請求項1に記載のスフェ
ロイドの作製方法は、細胞接着性を有する複数の担体で
構成される担体集団と、接着依存性の細胞とを、該担体
集団が細胞と共に一体的に凝集しない混合条件で混合す
る混合工程と、該混合物を所定期間だけ培養する培養工
程と、を含むことを特徴としている。請求項2に記載の
スフェロイドの作製方法は、前記担体が、コラーゲン線
維であることを特徴としている。請求項3に記載のスフ
ェロイドの作製方法は、前記方法において、前記担体
は、0.1〜0.3W/V%のコラーゲン溶液を不溶化
することにより得られることを特徴としている。請求項
4に記載のスフェロイドの作製方法は、前記方法におい
て、前記混合条件は、細胞が1×10〜1×10
/mlの細胞播種密度で前記担体と混合されることを特
徴としている。
The method for producing spheroids according to claim 1, wherein a carrier population composed of a plurality of carriers having cell adhesiveness and adhesion-dependent cells, wherein the carrier population is cells. In addition, it is characterized by including a mixing step of mixing under a mixing condition that does not aggregate together and a culture step of culturing the mixture for a predetermined period. The method for producing a spheroid according to claim 2 is characterized in that the carrier is a collagen fiber. The method for producing spheroids according to claim 3 is characterized in that, in the method, the carrier is obtained by insolubilizing a collagen solution of 0.1 to 0.3 W / V%. The method for producing a spheroid according to claim 4, wherein in the method, the mixing condition is that cells are mixed with the carrier at a cell seeding density of 1 × 10 3 to 1 × 10 5 cells / ml. There is.

【0009】請求項5に記載のスフェロイドは、前記い
ずれかのスフェロイドの作製方法によって作製されたも
のであることを特徴としている。請求項6に記載のスフ
ェロイドは、コラーゲン線維と、接着依存性細胞とを含
むことを特徴としている。請求項7に記載のスフェロイ
ドは、前記スフェロイドにおいて、前記スフェロイドの
径が50〜500μmの範囲にあることを特徴としてい
る。
The spheroid according to a fifth aspect is characterized by being produced by any one of the methods for producing a spheroid. The spheroid according to claim 6 is characterized in that it contains collagen fibers and adhesion-dependent cells. The spheroid described in claim 7 is characterized in that, in the spheroid, the diameter of the spheroid is in the range of 50 to 500 μm.

【0010】請求項8に記載のスフェロイド含有組成物
は、前記いずれかのスフェロイドと、前記スフェロイド
を保持可能な基材と、を含むことを特徴としている。請
求項9に記載のスフェロイド含有組成物は、前記基材
は、軟膏剤、注射剤、培養担体のいずれかであることを
特徴としている。
The spheroid-containing composition according to claim 8 is characterized by containing any one of the spheroids and a substrate capable of holding the spheroid. The spheroid-containing composition according to claim 9 is characterized in that the base material is any of an ointment, an injection and a culture carrier.

【0011】[0011]

【発明の実施の形態】本発明のスフェロイド(細胞凝集
塊)の製造方法は、細胞接着性を有する複数の担体で構
成される担体集団と、接着依存性の細胞とを、該担体集
団が細胞と共に一体的に凝集しない混合条件で混合する
混合工程と、該混合物を所定期間だけ培養する培養工程
と、を含むこと方法によって作製される。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The method for producing spheroids (cell aggregates) of the present invention comprises a carrier population composed of a plurality of carriers having cell adhesiveness and adhesion-dependent cells, wherein the carrier population is composed of cells. And a culturing step of culturing the mixture only for a predetermined period of time.

【0012】この方法によれば、細胞接着性を有する担
体集団と細胞とを特定の混合条件で混合するので、細胞
の凝集性に関係なく、様々な細胞種について均一なスフ
ェロイドを、別途スフェロイド前駆体を作製することな
く直接且つ容易に作製することができる。従って、スフ
ェロイドを簡便に大量に作製することができる。
[0012] According to this method, the carrier population having cell adhesiveness and the cells are mixed under specific mixing conditions, so that uniform spheroids can be separately prepared from various cell types regardless of the agglutinability of the cells. It can be made directly and easily without making a body. Therefore, spheroids can be easily produced in large quantities.

【0013】本発明の作製方法に使用する担体は、細胞
接着性を有するものであれば既知のいずれのものであっ
てもよく、コラーゲン、ポリロタキサン、ポリ乳酸(P
LA)、ポリ乳酸グリコール酸共重合体(PLGA)等
を挙げることができる。この中でもコラーゲン、特にコ
ラーゲン線維であることが好ましい。この場合、コラー
ゲン溶液を不溶化することで、コラーゲン線維を容易に
且つ大量に作製することができる。また本発明で使用可
能なコラーゲンは、分子上の特徴を備えているものであ
ればすべて適用可能であり、いずれの生物に由来する天
然由来のものであっても、人工的に作製したものであっ
てもよい。また、本発明における担体の形態は問わな
い。例えば、糸状(線状)、球状、棒状、粒状等の種々
の形状や、個々独立した分子で構成されたものや、個々
の分子が複数集合して形成されたもの(例えば、コラー
ゲン)が挙げられる。
The carrier used in the production method of the present invention may be any known carrier as long as it has cell adhesiveness, such as collagen, polyrotaxane and polylactic acid (P
LA), polylactic acid glycolic acid copolymer (PLGA), and the like. Among them, collagen, particularly collagen fiber is preferable. In this case, by insolubilizing the collagen solution, collagen fibers can be easily produced in large quantities. Further, the collagen that can be used in the present invention is all applicable as long as it has molecular characteristics, and even if it is naturally derived from any organism, it is artificially produced. It may be. Further, the form of the carrier in the present invention does not matter. For example, various shapes such as filamentous (linear), spherical, rod-like, and granular shapes, those composed of individual independent molecules, and those formed by aggregating a plurality of individual molecules (for example, collagen) are mentioned. To be

【0014】本発明の作製方法に使用する細胞には、接
着依存性細胞であればよく、軟骨細胞、線維芽細胞、上
皮細胞、肝細胞、神経細胞、膵島細胞などの種々の細胞
を単独又は混合して使用することが可能であり、殊に軟
骨細胞、線維芽細胞等の中外胚葉系の細胞であることが
好ましい。
The cells used in the production method of the present invention may be adhesion-dependent cells, and various cells such as chondrocytes, fibroblasts, epithelial cells, hepatocytes, nerve cells and pancreatic islet cells may be used alone or It is possible to use them in combination, and it is particularly preferable to use mesoendodermal cells such as chondrocytes and fibroblasts.

【0015】混合工程では、担体集団が細胞と共に一体
的に凝集しない混合条件で細胞と担体集団とが混合され
る。細胞と担体集団との混合は、通常、このような混合
に用いられる方法、例えば、所定の細胞数を含む細胞懸
濁液と担体を含む担体含有液等とを混合することによっ
て行われる。
In the mixing step, the cells and the carrier population are mixed under a mixing condition in which the carrier population does not aggregate together with the cells. The cells and the carrier population are usually mixed by a method used for such mixing, for example, by mixing a cell suspension containing a predetermined number of cells with a carrier-containing solution containing the carrier.

【0016】本発明では担体集団が細胞と共に一体的に
凝集しない混合条件で混合されるので、担体集団と細胞
とを混合したときに、担体集団が細胞と共に一体的に凝
集することを避けることができる。ここで「担体が一体
的に凝集」とは、複数の担体で構成された担体集団が、
細胞によって担体集団全体が1つの塊に凝集することを
言い、本発明では、このような凝集が起こらないことを
必要とする。これにより、本発明では、個々の担体を細
胞増殖の足場として細胞が増殖することによって、所定
の大きさに制御されたスフェロイドを容易に且つ大量に
得ることが可能となる。
In the present invention, the carrier population is mixed with the cells under a mixing condition that does not aggregate together, so that when the carrier population and the cells are mixed, it is possible to avoid that the carrier population aggregates together with the cells. it can. Here, "the carriers are aggregated together" means that a carrier group composed of a plurality of carriers is
It means that the whole carrier population is aggregated into one mass by the cells, and the present invention requires that such aggregation does not occur. As a result, in the present invention, it becomes possible to easily and in large quantity obtain spheroids controlled to have a predetermined size by allowing cells to proliferate by using each carrier as a scaffold for cell proliferation.

【0017】上述のような混合条件としては、担体集団
が細胞と共に一体的に凝集しないものであれば、混合温
度の調整や、攪拌しながら混合するなど、如何なる条件
とすることもできるが、担体の濃度や播種細胞数によっ
て調整することが好ましい。
As the above-mentioned mixing conditions, if the carrier population does not aggregate together with the cells, any conditions can be used, such as adjusting the mixing temperature or mixing with stirring. It is preferable to adjust the concentration depending on the number of cells and the number of seeded cells.

【0018】特に、上記混合条件として、細胞を所定の
細胞播種密度で担体集団と混合することが好ましい。細
胞播種密度は、細胞種により異なり、例えば、軟骨細胞
や線維芽細胞の場合には、1×10〜1×10個/
mlとすることができる。このとき、自発的にスフェロ
イドを形成し易い細胞種では播種量は少なく調整し、逆
にスフェロイドを形成しにくい細胞種では播種量を多く
する必要がある。このような細胞種及び細胞播種密度を
選択及び調整することによって、効率よく上記担体集団
が細胞と共に一体的に凝集しないようにすることができ
る。
In particular, as the above-mentioned mixing conditions, it is preferable to mix the cells with the carrier population at a predetermined cell seeding density. The cell seeding density depends on the cell type, and for example, in the case of chondrocytes or fibroblasts, 1 × 10 3 to 1 × 10 5 cells /
It can be ml. At this time, it is necessary to adjust the seeding amount to a small amount for cell types that readily form spheroids, and to increase the seeding amount for cell types that hardly form spheroids. By selecting and adjusting such cell types and cell seeding densities, the carrier population can be efficiently prevented from coagulating together with cells.

【0019】本発明のスフェロイド作製方法で使用され
る担体は、混合工程の前に担体調製工程を経て得られた
ものであることが好ましい。この担体調製工程で得られ
た担体は、均一な性質及び形態の担体であると共に、細
胞とのスフェロイド形成能も高いため、好ましく使用さ
れる。
The carrier used in the spheroid-producing method of the present invention is preferably one obtained through a carrier preparing step before the mixing step. The carrier obtained in this carrier preparation step is a carrier having uniform properties and morphology, and has a high ability to form spheroids with cells, and thus is preferably used.

【0020】担体調製工程では、単独でゲル化可能な基
礎構造物から、単独でゲル化することができない懸濁液
を調製し、この懸濁液を不溶化し、遠心分離することを
含む。遠心分離後の上清を除去することによって、目的
とする均一な担体を、複数の基礎構造物の集合塊からな
る沈澱物として容易に回収することができる。一般に、
懸濁液は、基礎構造物を含有する溶液を希釈して、ゲル
化が困難な程度の薄い濃度にすることによって調製でき
る。
The carrier preparation step involves preparing a suspension that cannot gel independently from the substructure that can gel alone, insolubilize the suspension, and centrifuge. By removing the supernatant after centrifugation, the target uniform carrier can be easily recovered as a precipitate consisting of an aggregate of a plurality of substructures. In general,
Suspensions can be prepared by diluting the solution containing the substructure to a dilute concentration that is difficult to gel.

【0021】担体がコラーゲン線維の場合、コラーゲン
溶液を不溶化して得られたものであることが好ましく、
0.1〜0.3W/V%の濃度のコラーゲン溶液を不溶
化したものであることが特に好ましい。担体の不溶化
は、中性化により行なわれる。このような条件下で不溶
化すると、コラーゲン分子は、複数集まってコラーゲン
線維を形成する。即ち、このコラーゲン線維は、複数の
コラーゲン分子が集まって形成されたものであり、この
ようなコラーゲン線維は、その後、遠心分離することに
よって容易に担体の集団として回収することができる。
コラーゲン線維の大きさは、細胞に対する接着性を損な
わない限り、いずれの大きさであってもい。なお、本発
明においては「コラーゲン分子」は3本のポリペプチド
鎖による螺旋構造を示し、「コラーゲン線維」とはコラ
ーゲン分子が多数集まったフィブリル(Fibril)、又は
フィブリルが多数集まったファイバ(Fiber)の状態を
示しており、これらはいずれも当業者が当該技術分野で
使用する意味と同じである。
When the carrier is collagen fiber, it is preferably obtained by insolubilizing a collagen solution,
It is particularly preferable that a collagen solution having a concentration of 0.1 to 0.3 W / V% is insolubilized. The carrier is insolubilized by neutralization. When insolubilized under such conditions, a plurality of collagen molecules aggregate to form collagen fibers. That is, this collagen fiber is formed by aggregating a plurality of collagen molecules, and such a collagen fiber can be easily recovered as a group of carriers by centrifugation thereafter.
The size of the collagen fiber may be any size as long as it does not impair the adhesiveness to cells. In the present invention, "collagen molecule" indicates a helical structure composed of three polypeptide chains, and "collagen fiber" means a fibril (Fibril) in which a large number of collagen molecules are gathered or a fiber (Fiber) in which a large number of fibrils are gathered. , Which have the same meanings as those skilled in the art use in the art.

【0022】担体調製工程及び混合工程において、担体
又は細胞の溶液等を調製するために使用される溶媒とし
ては、細胞培養分野において使用可能な如何なる溶媒も
使用することができるが、細胞培養用の培養液(培地)
を使用することが好ましい。この場合に使用可能な培地
には、この分野で既知の如何なる培地も使用することが
できる。
In the carrier preparation step and the mixing step, any solvent that can be used in the field of cell culture can be used as a solvent for preparing a carrier or a solution of cells. Culture liquid (medium)
Is preferably used. As the medium that can be used in this case, any medium known in the art can be used.

【0023】培養工程では、混合工程で混合された細胞
と担体とを所定期間だけ培養することを含む。ここで、
培養によってスフェロイドを構成する細胞数が増加する
ため、培養期間を調整することによって、スフェロイド
の大きさを調整することができる。なおスフェロイドの
大きさの調整は、培地組成や培地交換頻度などによって
も調整することができる。
The culturing step includes culturing the cells and the carrier mixed in the mixing step for a predetermined period. here,
Since the number of cells that make up spheroids increases due to culture, the size of spheroids can be adjusted by adjusting the culture period. The size of the spheroids can be adjusted also by the composition of the medium, the frequency of medium exchange, and the like.

【0024】培養期間は、細胞種や細胞増殖能等によっ
て異なるが、例えば、ヒト軟骨細胞の場合では約2週間
が好ましく、ヒト線維芽細胞の場合は約1〜2週間が好
ましい。また培養に使用される培地は、この分野で通常
使用される培地から、用いられる細胞種に応じて適宜選
択される。培養工程では、この分野において通常用いら
れる培養条件で細胞及び担体の混合物の培養が行なわれ
て、スフェロイドが形成される。
The culturing period varies depending on the cell type and cell growth ability, but is preferably about 2 weeks for human chondrocytes and about 1 to 2 weeks for human fibroblasts. The medium used for the culture is appropriately selected from those usually used in this field according to the cell type used. In the culturing step, the mixture of the cells and the carrier is cultivated under the culturing conditions usually used in this field to form spheroids.

【0025】このスフェロイド作製方法によって得られ
るスフェロイドは、個々のスフェロイドが大量に懸濁さ
れたスフェロイド懸濁液として得られる。このスフェロ
イド懸濁液では、細胞がスフェロイドとして存在してい
るので、細胞の運搬などの取り扱いが容易となる。また
他の配合成分と容易に配合することができるので、スフ
ェロイドが有する効果を種々の用途に容易に適用するこ
とができる。
The spheroids obtained by this spheroid production method are obtained as a spheroid suspension in which a large amount of individual spheroids are suspended. In this spheroid suspension, cells are present as spheroids, and therefore handling such as cell transportation is facilitated. Further, since it can be easily blended with other blending components, the effect of spheroids can be easily applied to various uses.

【0026】本発明のスフェロイド(細胞凝集塊)は、
上述のいずれかの作製方法によって作製されることを特
徴とする。このスフェロイドによれば、担体が細胞接着
性を有しているので、細胞の凝集性に関係なくほとんど
すべての接着依存性の細胞種を含むことができ、またサ
イズコントロールされた適度な大きさのスフェロイドを
提供することができる。また本発明の他のスフェロイド
は、コラーゲン線維と、接触依存性の細胞とを含むこと
を特徴とする。このスフェロイドによれば、コラーゲン
線維によって、細胞の凝集性に関係なく種々の細胞種に
よる均一な大きさのスフェロイドを容易に提供すること
ができる。
The spheroid (cell aggregate) of the present invention is
It is characterized by being manufactured by any one of the above manufacturing methods. According to this spheroid, since the carrier has cell adhesiveness, it can contain almost all adhesion-dependent cell types regardless of cell cohesiveness, and has a size-controlled moderate size. Spheroids can be provided. Another spheroid of the present invention is characterized in that it contains collagen fibers and contact-dependent cells. According to this spheroid, collagen fibers can easily provide spheroids of uniform size by various cell types regardless of the aggregating property of cells.

【0027】スフェロイドは、接着依存性の細胞が培養
初期に担体を足場として増殖する。このため、1つの細
胞に2つ以上の担体が接合し、且つ1つの担体に2つ以
上の細胞が接合した形態を有する。スフェロイドの形状
は不定形であるが、個々の細胞で構成された略球形の塊
状を形成していると考えることもできる。スフェロイド
の大きさは、細胞種及び培養期間によって異なるが、略
球形状であると考えたときに50〜500μm、好まし
くは50〜300μmの径を有する。この場合のスフェ
ロイドの径とは、スフェロイドを略球形としたときの球
径に相当する。この範囲内の大きさであれば、スフェロ
イドを構成する細胞、特にスフェロイドの内部に位置す
る細胞も充分な細胞活性を有することができる。
In the spheroid, adhesion-dependent cells proliferate using the carrier as a scaffold in the early stage of culture. Therefore, it has a form in which one cell is joined with two or more carriers, and one carrier is joined with two or more cells. The shape of the spheroid is indefinite, but it can be considered that the spheroid is formed into a substantially spherical mass composed of individual cells. Although the size of the spheroid varies depending on the cell type and the culture period, it has a diameter of 50 to 500 μm, preferably 50 to 300 μm when it is considered to have a substantially spherical shape. The diameter of the spheroid in this case corresponds to the spherical diameter when the spheroid has a substantially spherical shape. If the size is within this range, cells forming spheroids, particularly cells located inside the spheroids can also have sufficient cell activity.

【0028】本発明のスフェロイド含有組成物は、細胞
接着性を有する担体及び細胞から構成される上記スフェ
ロイドと、前記スフェロイドの細胞を保持可能な基材
と、を含むものである。このようなスフェロイド含有組
成物では、基材を組み合せることによってスフェロイド
の取り扱いが容易になると共に、細胞が生物活性を有し
たまま保持されているので、基材に応じた用途において
スフェロイドが有する効果を発揮することができる。
The spheroid-containing composition of the present invention comprises the above-mentioned spheroid composed of a cell-adhesive carrier and cells, and a substrate capable of holding the cells of the spheroid. In such a spheroid-containing composition, handling of the spheroids is facilitated by combining the base materials, and since the cells are retained while having biological activity, the effect that the spheroids have in the application depending on the base material. Can be demonstrated.

【0029】スフェロイドの細胞を保持可能な基材とし
ては、スフェロイドの細胞を保持することができれば如
何なるものであってもよいが、軟膏剤、注射剤等の外用
剤や、培養担体等として使用されるものが好ましく、流
動性のある物質であることが特に好ましい。流動性の物
質とすることにより、スフェロイドの形態を保持しなが
ら種々の用途に容易に適用することができる。
The base material capable of holding the spheroid cells may be any material as long as it can hold the spheroid cells, but it is used as an external preparation such as an ointment or an injection, or as a culture carrier. Those having a flowability are preferable, and those having a fluidity are particularly preferable. By using a fluid substance, it can be easily applied to various uses while maintaining the spheroid form.

【0030】ここで使用可能な軟膏剤には、コラーゲ
ン、フィブリン、ゼラチン、アガロース、アルギン酸等
の温度又は添加物質等により硬化するような物質が含ま
れる。注射剤には、生理食塩水、PBS等のような物質
が含まれる。このような外用剤とした場合には、塗布、
注入等を容易に行なうことができるので、スフェロイド
の取り扱いが容易になると共に、塗布又は注入後にスフ
ェロイドによる細胞治療も行なうことができる。また組
成物中でスフェロイドの形態が保持されているので、外
用剤中において長い間、スフェロイドとしての効果を維
持することもできる。
The ointment which can be used here includes substances such as collagen, fibrin, gelatin, agarose, alginic acid, etc. which are hardened by the temperature or the added substances. Injectables include substances such as saline, PBS and the like. When such an external preparation is used, application,
Since injection and the like can be easily performed, spheroids can be easily handled, and cell therapy with spheroids can be performed after application or injection. Further, since the spheroid form is retained in the composition, the effect as a spheroid can be maintained for a long time in the external preparation.

【0031】また培養担体としては三次元構造のものが
好ましく、殊にゲル化可能な培養担体にスフェロイドを
包埋することが好ましい。この場合の培養担体として
は、コラーゲン、フィブリン、ゼラチン、アガロース、
アルギン酸等が利用できる。この場合、細胞個体で包埋
したものに対し、スフェロイドの状態で細胞の培養を開
始することができるので、早期に培養を開始することが
でき、培養期間を短縮することができる。
The culture carrier preferably has a three-dimensional structure, and it is particularly preferable to embed the spheroids in a gelable culture carrier. In this case, the culture carrier includes collagen, fibrin, gelatin, agarose,
Alginic acid or the like can be used. In this case, since it is possible to start culturing cells in a spheroid state with respect to those embedded with individual cells, it is possible to start culturing at an early stage and shorten the culturing period.

【0032】スフェロイド含有組成物では、スフェロイ
ド及び基材の他に、スフェロイド含有組成物の用途に応
じた他の成分を含めてもよい。ここで用いられる他の成
分は、スフェロイドに含まれる細胞の細胞活性が損なわ
れない成分であれば、選択された用途において通常使用
される如何なる成分であってもよい。
The spheroid-containing composition may contain, in addition to the spheroid and the base material, other components depending on the use of the spheroid-containing composition. The other component used here may be any component that is usually used in the selected application, as long as it does not impair the cell activity of the cells contained in the spheroid.

【0033】スフェロイド含有組成物は、スフェロイド
が懸濁されたスフェロイド懸濁液としてのスフェロイド
と基材とを組み合せることにより製造することができ
る。ここで、スフェロイド懸濁液に含まれる個々のスフ
ェロイドが破壊されない程度に組み合わせることが必要
である。これにより、複数の細胞で構成されたスフェロ
イドが基材に内包されているスフェロイド含有組成物を
得ることができる。このとき、組成物中にスフェロイド
が均一に分散されていることが好ましいが、厳密に均一
に分散されていなくても、スフェロイドの形態が保持さ
れて組成物中に分散されていれば、本組成物の効果を得
ることができる。以下に実施例を挙げて本発明を説明す
るが、この実施例は一例であって、本発明を限定するも
のではない。
The spheroid-containing composition can be produced by combining the spheroid as a spheroid suspension in which the spheroid is suspended and the substrate. Here, it is necessary to combine the individual spheroids contained in the spheroid suspension to such an extent that they are not destroyed. This makes it possible to obtain a spheroid-containing composition in which a spheroid composed of a plurality of cells is included in a base material. At this time, it is preferable that the spheroids are uniformly dispersed in the composition, but even if the spheroids are not strictly uniformly dispersed, if the spheroids are retained and dispersed in the composition, the present composition The effect of the thing can be obtained. The present invention is described below with reference to examples, but these examples are merely examples and do not limit the present invention.

【0034】[0034]

【実施例】<実施例1:軟骨細胞スフェロイド>日本白
色家兎の膝、股、肩関節から肩軟骨を採取し、トリプシ
ンEDTA溶液及びコラゲナーゼ溶液で酵素処理を行
い、軟骨細胞を分離・回収した。得られた軟骨細胞を洗
浄後、10%FBS(ウシ胎児血清)含有DMEM(ダ
ルベッコ変法イーグル培地)を加え、細胞密度が1×1
個/mlとなるように細胞懸濁液を調製した。
[Examples] <Example 1: Chondrocyte spheroids> Shoulder cartilage was collected from the knee, hip, and shoulder joints of Japanese white rabbits, subjected to enzyme treatment with trypsin EDTA solution and collagenase solution, and chondrocytes were separated and collected. . After washing the obtained chondrocytes, 10% FBS (fetal bovine serum) -containing DMEM (Dulbecco's modified Eagle medium) was added to give a cell density of 1 × 1.
0 Cell suspensions were prepared so that the four / ml.

【0035】一方、酸性化した0.01NのHCl2.
3mlに3%アテロコラーゲンインプラント(高研社
製)0.1mlを加えて溶解することで希釈した後、D
MEM0.6mlを加えて0.1%コラーゲン溶液を調
整した。この濃度ではコラーゲン溶液はゲル化しない。
溶解後、このコラーゲン溶液のpHを1NのNaClで
調整し、中性化した。中性化により不溶化した後、この
コラーゲン溶液を1500rpmで5分間、遠心分離す
ることで、多数のコラーゲン線維を沈殿させ、上清を除
去することで多数のコラーゲン線維の集団を得た。
On the other hand, acidified 0.01N HCl2.
After diluting by adding 0.1 ml of 3% atelocollagen implant (manufactured by Koken Co., Ltd.) to 3 ml, D
A 0.1% collagen solution was prepared by adding 0.6 ml of MEM. The collagen solution does not gel at this concentration.
After dissolution, the pH of this collagen solution was adjusted with 1N NaCl to neutralize it. After insolubilization by neutralization, this collagen solution was centrifuged at 1500 rpm for 5 minutes to precipitate a large number of collagen fibers, and the supernatant was removed to obtain a large number of collagen fiber populations.

【0036】このコラーゲン線維の集団8mgに先程の
細胞懸濁液200μlを混合(包埋)し、培養容器底面
(4.3cm)に播種した。このときのコラーゲン線
維の濃度は0.8w/v%であり、細胞濃度は2×10
個/mlとなる。続いて、液体培地として50μg/
mlアスコルビン酸及び100μg/mlヒアルロン酸
を含むように調製した10v/v%FBS含有DMEM
を培養容器に注入し、37℃、5%COの条件下で2
週間培養を行った。なお、培地交換は適宜行った。2週
間の培養後に、多数のスフェロイドを含むスフェロイド
懸濁液が得られた。このスフェロイド懸濁液では、スフ
ェロイドごとが互いに付着し合っているため、培養容器
を軽く振蕩して、個々のスフェロイドに培地中で分離さ
せた。これにより、直径が約50μm〜150μmのス
フェロイドを得ることができた(図1参照)。
200 μl of the above cell suspension was mixed (embedded) with 8 mg of this population of collagen fibers and seeded on the bottom surface (4.3 cm 2 ) of the culture vessel. At this time, the collagen fiber concentration was 0.8 w / v%, and the cell concentration was 2 × 10 5.
3 pieces / ml. Then, as a liquid medium, 50 μg /
DMEM containing 10 v / v% FBS prepared to contain ml ascorbic acid and 100 μg / ml hyaluronic acid
It was poured into the culture vessel, 37 ° C., 2 under the conditions of 5% CO 2
Culture was performed for a week. The medium was replaced appropriately. After culturing for 2 weeks, a spheroid suspension containing a large number of spheroids was obtained. In this spheroid suspension, since the spheroids are attached to each other, the culture vessel was lightly shaken to separate individual spheroids in the medium. As a result, spheroids having a diameter of about 50 μm to 150 μm could be obtained (see FIG. 1).

【0037】<実施例2:線維芽細胞スフェロイド>マ
ウス線維芽細胞に10%FBS含有DMEMを加え、細
胞密度が1×10個/mlとなるように細胞懸濁液を
調製した。続いて、実施例1と同様に調整した多数のコ
ラーゲン線維に前記細胞懸濁液を混合(包埋)し、培養
容器底面に播種した。播種後は、実施例1と同様の液体
培地を培養容器に注入し、37℃、5%CO2の条件下
で1週間培養を行った。1週間の培養後に、多数のスフ
ェロイドを含むスフェロイド懸濁液が得られた。このス
フェロイド懸濁液では、個々のスフェロイドが互いに付
着し合っているため、培養容器を軽く振蕩して、個々の
スフェロイドに培地中で分離させた。これにより、直径
が約50μm〜150μmのスフェロイドを得ることが
できた。
<Example 2: Fibroblast Spheroids> DMEM containing 10% FBS was added to mouse fibroblasts to prepare a cell suspension having a cell density of 1 × 10 4 cells / ml. Subsequently, the cell suspension was mixed (embedded) with a large number of collagen fibers prepared in the same manner as in Example 1 and seeded on the bottom surface of the culture vessel. After the seeding, the same liquid medium as in Example 1 was injected into the culture container, and the culture was performed for 1 week under the conditions of 37 ° C. and 5% CO 2. After culturing for 1 week, a spheroid suspension containing a large number of spheroids was obtained. In this spheroid suspension, since the individual spheroids are attached to each other, the culture vessel was gently shaken to separate the individual spheroids in the medium. As a result, spheroids having a diameter of about 50 μm to 150 μm could be obtained.

【0038】[0038]

【発明の効果】以上説明したように、本発明のスフェロ
イドの作製方法によれば、細胞種に限定されることな
く、種々の細胞種による所定の大きさのスフェロイドを
均一かつ容易に大量に作製することができる。また、本
発明のスフェロイドでは、細胞種に限定されることな
く、種々の細胞種による所望の大きさのスフェロイドを
提供することができる。更に本発明のスフェロイド含有
組成物によれば、上記のようなスフェロイドを外用剤な
どの種々の用途に容易に適用することができる。
As described above, according to the method for producing spheroids of the present invention, spheroids of a predetermined size can be uniformly and easily produced in large quantities by various cell types without being limited to the cell types. can do. Moreover, the spheroid of the present invention is not limited to cell types, and can provide spheroids of various sizes with various cell types. Furthermore, according to the spheroid-containing composition of the present invention, the spheroids described above can be easily applied to various applications such as external preparations.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 本発明の実施例に係るスフェロイドの拡大図
である。
FIG. 1 is an enlarged view of a spheroid according to an embodiment of the present invention.

Claims (9)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 スフェロイドの作製方法において、 細胞接着性を有する複数の担体で構成される担体集団
と、接着依存性の細胞とを、該担体集団が細胞と共に一
体的に凝集しない混合条件で混合する混合工程と、 該混合物を所定期間だけ培養する培養工程と、を含むス
フェロイドの作製方法。
1. A method for producing spheroids, wherein a carrier population composed of a plurality of carriers having cell adhesiveness and adhesion-dependent cells are mixed under mixing conditions so that the carrier population does not aggregate together with the cells. And a culture step of culturing the mixture for a predetermined period of time.
【請求項2】 前記担体が、コラーゲン線維であること
を特徴とする請求項1に記載のスフェロイドの作製方
法。
2. The method for producing a spheroid according to claim 1, wherein the carrier is collagen fiber.
【請求項3】 前記担体は、0.1〜0.3W/V%の
コラーゲン溶液を不溶化することにより得られることを
特徴とする請求項2に記載のスフェロイドの作製方法。
3. The method for producing a spheroid according to claim 2, wherein the carrier is obtained by insolubilizing a 0.1 to 0.3 W / V% collagen solution.
【請求項4】 前記混合条件は、細胞が1×10〜1
×10個/mlの細胞播種密度で前記担体集団と混合
されることを特徴とする請求項1乃至請求項3のいずれ
かに記載のスフェロイドの作製方法。
4. The mixing condition is that the cells are 1 × 10 3 -1.
The method for producing spheroids according to any one of claims 1 to 3, wherein the carrier population is mixed at a cell seeding density of × 10 5 cells / ml.
【請求項5】 請求項1乃至4のいずれかの作製方法で
作製されるスフェロイド。
5. A spheroid produced by the production method according to claim 1.
【請求項6】 コラーゲン線維と、接着依存性細胞とを
含むスフェロイド。
6. A spheroid containing collagen fibers and adhesion-dependent cells.
【請求項7】 前記スフェロイドの径が50〜500μ
mの範囲にあることを特徴とする請求項5又は6に記載
のスフェロイド。
7. The spheroid has a diameter of 50 to 500 μm.
The spheroid according to claim 5 or 6, which is in the range of m.
【請求項8】 請求項5乃至7のいずれかに記載のスフ
ェロイドと、 前記スフェロイドを保持可能な基材と、 を含むスフェロイド含有組成物。
8. A spheroid-containing composition comprising the spheroid according to claim 5, and a substrate capable of holding the spheroid.
【請求項9】 前記基材は、軟膏剤、注射剤、培養担体
のいずれかであることを特徴とする請求項8に記載のス
フェロイド含有組成物。
9. The spheroid-containing composition according to claim 8, wherein the base material is any one of an ointment, an injection and a culture carrier.
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005278449A (en) * 2004-03-29 2005-10-13 Olympus Corp Method for conveying cell and method for culturing the same
JP2015511487A (en) * 2012-03-13 2015-04-20 インスティテュート オブ ジェネティックス アンド ディベロップメンタル バイオロジー,チャイニーズ アカデミー オブ サイエンシズ Reprogramming of cells by 3D culture
WO2015167003A1 (en) * 2014-04-30 2015-11-05 学校法人近畿大学 Collagen or atelocollagen hydrolysate, production method for said hydrolysate, and use for said hydrolysate
WO2018186185A1 (en) * 2017-04-06 2018-10-11 日機装株式会社 Cell cultivation method, cell support composite production method, cultivated cells, and cell support composite
CN109593704A (en) * 2019-01-31 2019-04-09 北京华龛生物科技有限公司 A kind of method of three-dimensional microcarrier cell absorption culture

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2138571B1 (en) * 2008-06-26 2017-04-12 SpheroTec GmbH Process for the preparation of multicellular spheroids

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH03147782A (en) * 1989-10-31 1991-06-24 Bio Material Kenkyusho:Kk Method for transplanting cell
JP3170693B2 (en) * 1992-07-09 2001-05-28 株式会社高研 Collagen carrier for cell culture and method for producing the same
JPH0947284A (en) * 1995-08-07 1997-02-18 Sumitomo Pharmaceut Co Ltd Cultivation of animal cell
JP2000517188A (en) * 1996-08-30 2000-12-26 ライフ テクノロジーズ,インコーポレイテッド Serum-free mammalian cell culture medium and uses thereof
DK0981601T3 (en) * 1997-01-31 2007-01-15 Schering Corp Methods for culturing cells and propagating viruses

Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005278449A (en) * 2004-03-29 2005-10-13 Olympus Corp Method for conveying cell and method for culturing the same
JP4523311B2 (en) * 2004-03-29 2010-08-11 オリンパス株式会社 Cell transfer method and culture method
JP2015511487A (en) * 2012-03-13 2015-04-20 インスティテュート オブ ジェネティックス アンド ディベロップメンタル バイオロジー,チャイニーズ アカデミー オブ サイエンシズ Reprogramming of cells by 3D culture
US9650602B2 (en) 2012-03-13 2017-05-16 Institute Of Genetics And Developmental Biology, Chinese Academy Of Sciences Reprogramming cells by three-dimensional cultivation
WO2015167003A1 (en) * 2014-04-30 2015-11-05 学校法人近畿大学 Collagen or atelocollagen hydrolysate, production method for said hydrolysate, and use for said hydrolysate
JPWO2015167003A1 (en) * 2014-04-30 2017-04-20 学校法人近畿大学 Collagen or atelocollagen degradation product, method for producing the degradation product, and use of the degradation product
WO2018186185A1 (en) * 2017-04-06 2018-10-11 日機装株式会社 Cell cultivation method, cell support composite production method, cultivated cells, and cell support composite
JPWO2018186185A1 (en) * 2017-04-06 2019-12-19 日機装株式会社 Cell culturing method, method for producing cell support complex, cultured cell and cell support complex
JP6995112B2 (en) 2017-04-06 2022-02-04 日機装株式会社 Method for culturing cells and method for producing a cell-supporting complex
CN109593704A (en) * 2019-01-31 2019-04-09 北京华龛生物科技有限公司 A kind of method of three-dimensional microcarrier cell absorption culture

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