JP2003116559A - New maxizyme - Google Patents

New maxizyme

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JP2003116559A
JP2003116559A JP2001313561A JP2001313561A JP2003116559A JP 2003116559 A JP2003116559 A JP 2003116559A JP 2001313561 A JP2001313561 A JP 2001313561A JP 2001313561 A JP2001313561 A JP 2001313561A JP 2003116559 A JP2003116559 A JP 2003116559A
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a new maxizyme that has higher specificity and cleavage activity than those in prior arts to the fused gene specifically expressing in malignant tumor cells, for example, acute promyelocytic leukemia, a method of screening such maxizymes and a method of using the maxizyme as an therapeutic agent for malignant tumors. SOLUTION: The attention is paid to acute promyelocytic leukemia as a malignant tumor, the candidate maxizyme for the PML/RARα fused gene that specifically expresses in such leukemic cells, in other words, the sequence around the Mg+ binding pocket is varied so that it may have a similar stability similar to the inactive form and a variety of candidate maxizymes are designed so that the fused position of the PML/RARα may come closely to the branching position of the sensor arm sequence. Further, the cleavage activity is examined in the cell-free system to prepare the maxizyme having the specific cleavage activity.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、悪性腫瘍細胞、特
に急性前骨髄球性白血病細胞において特異的に発現する
融合遺伝子に対して特異的切断活性を有するマキシザイ
ム及びかかるマキシザイムのスクリーニング方法、並び
にかかるマキシザイムの利用に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a maxizyme having a specific cleavage activity for a fusion gene specifically expressed in malignant tumor cells, particularly acute promyelocytic leukemia cells, a screening method for such maxizyme, and Regarding the use of maxizyme.

【0002】[0002]

【従来の技術】急性前骨髄球性白血病(APL)は急性
骨髄性白血病(AML)の一亜種で、我国でAMLの約
15%、日本全体で約500人/年の割合で発症すると
推測されている。APLはAMLの中でFAB分類上M
3とされ、細胞形態的に多数の粗大顆粒と異形成の強い
核を有し、束状のアウエル小体(Faggot)を認めること
が多いが、一部の症例では顆粒が繊細で変異型が認めら
れている。ペルオキシダーゼ、アセテートエステラーゼ
強陽性、CD33(+)、CD13(+)、HLA−D
R(−)であり、骨髄系細胞分化過程において前骨髄球
レベルで分化の停止した腫瘍と考えられている。細胞遺
伝学的にはt(15;17)(q22;q11)が80
%以上の症例において認められ、逆にこの転座はAPL
以外では認められていない。
2. Description of the Related Art Acute promyelocytic leukemia (APL) is a subtype of acute myelogenous leukemia (AML), which is estimated to occur in about 15% of AML in Japan and about 500 people / year in Japan as a whole. Has been done. APL is M on FAB classification in AML
It has a large number of coarse granules and a strong dysplastic nucleus in the cell morphology, and often has bundled Auer bodies (Faggot), but in some cases, the granules are delicate and mutated. It recognized. Peroxidase, acetate esterase strong positive, CD33 (+), CD13 (+), HLA-D
R (-), which is considered to be a tumor whose differentiation is stopped at the level of promyelocytic cells in the process of differentiation of myeloid cells. Cytogenetically t (15; 17) (q22; q11) is 80
In more than 100% of cases, this translocation was conversely APL
It is not accepted except.

【0003】APLに特徴的なt(15;17)は15
番染色体上のPML遺伝子と17番染色体上のRAR
(レチノイン酸受容体)α遺伝子間の転座である。転座
切断部位は主に、RARα遺伝子イントロン2とPML
遺伝子イントロン3ないし6である。いずれの場合も、
der(15)上でPML/RARαキメラ遺伝子が生
じ、キメラ蛋白110kD(ロングフォーム)ないし9
0kD(ショートフォーム)が産生される。このキメラ
蛋白は、DNA結合ドメインとダイマー形成部を有し、
しかもレチノイン酸結合部を持っている蛋白で、PML
やRXRとヘテロダイマーを形成し、おそらくPMLや
RXRが有する一連の核内転写因子機能を阻止し、骨随
系細胞の分化をブロックし、細胞増殖のみを促進させる
(ドミナントネガティブ作用)。またPML−RARα
はホモダイマーを形成し独自の転写因子として働く可能
性もあり、ドミナント変異としての性格も有すると考え
られている。
The characteristic t (15; 17) of APL is 15
PML gene on chromosome 17 and RAR on chromosome 17
(Retinoic acid receptor) Translocation between α genes. Translocation cleavage sites are mainly RARα gene intron 2 and PML
Gene intron 3 to 6. In either case,
A PML / RARα chimeric gene was generated on der (15) and the chimeric protein 110 kD (long form) to 9
0 kD (short form) is produced. This chimeric protein has a DNA-binding domain and a dimer-forming region,
Moreover, PML is a protein that has a retinoic acid binding site.
It forms a heterodimer with RXR and possibly blocks a series of nuclear transcription factor functions of PML and RXR, blocks differentiation of osteoprogenitor cells, and promotes only cell proliferation (dominant negative action). Also PML-RARα
May form a homodimer and act as an original transcription factor, and is considered to have a character as a dominant mutation.

【0004】PML/RARα遺伝子産生トランスジェ
ニックマウスを使った最近の研究により、このキメラ蛋
白質がAPLの白血病誘発において重要な役割を担うこ
とが明らかにされている(Proc. Natl. Acad. Sci. USA
94, 5302-5307, 1997、Blood 89, 376-387, 1997、Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA 94, 2551-2556, 1998)。上
記APL患者にとって非常に効果的な薬品として、白血
病細胞の分化誘導に対して効能を有するオールトランス
型レチノイン酸(オールトランスRA)が知られている
(Blood 72, 567-572, 1988)。しかし、オールトラン
スRAだけで治療した患者の寛解は通常短期間しか持続
しない。また、かかる患者にはしばしばRA耐性疾患に
かかることがあり、その結果細胞分化誘導治療の障害に
なるという深刻な問題がある(Blood 82, 1941-1953, 1
993)。したがって、APL細胞によるRA耐性を克服
する治療法は未だ確立されていない。
Recent studies using PML / RARα gene-producing transgenic mice have revealed that this chimeric protein plays an important role in the induction of leukemia by APL (Proc. Natl. Acad. Sci. USA).
94, 5302-5307, 1997, Blood 89, 376-387, 1997, Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA 94, 2551-2556, 1998). As a very effective drug for the above APL patients, all-trans retinoic acid (all-trans RA) having an effect on differentiation induction of leukemia cells is known (Blood 72, 567-572, 1988). However, remissions in patients treated with all-trans RA alone usually last for only a short period. In addition, such patients often suffer from RA resistant disease, resulting in a serious problem of impeding cell differentiation induction treatment (Blood 82, 1941-1953, 1
993). Therefore, a cure for overcoming RA resistance by APL cells has not yet been established.

【0005】一方、位置指定ハンマーヘッドリボザイム
を用いた腫瘍形成PML/RARαmRNAのターゲッ
ティングは、APLのRA耐性を克服するアプローチの
1つとして期待されている。ハンマーヘッドリボザイム
は、オリゴヌクレオチドの特定部位NUX(N=いかな
るリボヌクレオチドでも可、X=A、C又はU)でPM
L/RARαを切断することができる(Biochemistry 3
4, 3649-3654, 1995)が、この特定部位は上記融合遺伝
子の切断点により得られるRARα蛋白質側に存在して
いるため、PML/RARαに対するハンマーヘッドリ
ボザイムは、野生型RARα mRNAも、APL特異
的PML/RARα mRNAも切断することが知られ
ており(Cancer Res. 54, 6365-6369, 1994)、ハンマ
ーヘッドリボザイムで腫瘍形成PML/RARα mR
NAだけを特異的に切断する活性を有するハンマーヘッ
ドリボザイムをデザインすることは難しいと考えられて
いる。アロステリックとしてトランス活性化された新規
リボザイムであるマキシザイムは、特定のRNA配列を
認識するセンサーアームを有し、切断に必要なMg 2+
合部位におけるMg2+イオンを捕捉するMg2+結合ポケ
ットを介して、認識した特定のRNA配列から離れた部
位でターゲットRNAを切断する(Mol. Cell 2, 617-6
27, 1998)。以上のように、マキシザイムは理論的には
どのような配列も切断することができ、また副作用が少
なく、標的遺伝子だけを特異的に破壊しうることから、
現在ハンマーヘッドリボザイムよりもPML/RARα
mRNAなどの種々の配列に対するマキシザイムが研
究・開発されている。
On the other hand, position-specified hammerhead ribozyme
Targeting tumorigenic PML / RARα mRNA using
Ting is an approach to overcome RA resistance of APL.
Expected as one. Hammerhead ribozyme
Is a specific site NUX (N = Ika
Ribonucleotides, X = A, C or U) PM
L / RARα can be cleaved (Biochemistry 3
4, 3649-3654, 1995), but this specific site is
Existing on the RARα protein side obtained by the cutting point of the offspring
Therefore, the hammerhead reliance on PML / RARα
Bozyme also has APL specificity for wild-type RARα mRNA.
Is known to also cleave specific PML / RARα mRNA
Teker (Cancer Res. 54, 6365-6369, 1994), Hammer
Tumor formation with head ribozyme PML / RARα mR
A hammer head with the ability to specifically cleave only NA
Designing doribozymes is considered difficult
There is. Novel trans-activated as allosteric
A ribozyme, maxizyme, has a specific RNA sequence
It has a sensor arm that recognizes Mg, which is necessary for cutting. 2+Conclusion
Mg in joint area2+Mg that traps ions2+Combined poke
Via the network, away from the specific RNA sequence recognized
Cleaves target RNA at position (Mol. Cell 2, 617-6
27, 1998). As mentioned above, maxizyme theoretically
Any sequence can be cleaved with few side effects
, Because it can specifically destroy only the target gene,
Currently PML / RARα rather than hammerhead ribozyme
 Maxizymes for various sequences such as mRNA are studied.
Researched and developed.

【0006】マキシザイムをデザインする際、いくつか
のパラメーター、例えば、融合遺伝子のヌクレオチドの
NUX部位の選択に関しては、切断部位の配列の長さ及
びエフェクター部位から切断部位までの距離などのパラ
メーターが挙げられる(Biomacromolecules 1, 108-11
7, 2000)。PML/RARαに対するマキシザイムに
ついてはすでに報告されており(Biomacromolecules 1,
108-117, 2000)、その切断部位はキメラ遺伝子のPM
L部分上に位置し、PML/RARα融合部位から活性
型における左右センサーアーム配列の分岐点までの距離
が4塩基ある。このことは、このマキシザイムがセルフ
リーシステムにおいてPML/RARαのエフェクター
存在下でPML部分を切断するということを示している
(Biomacromolecules 1, 108-117, 2000)。上記のよう
にマキシザイムは、あらゆる配列を特異的に切断するよ
うにデザインすることができ、それに関連する正常な転
写に対してダメージを与えることなく、特異的に切断で
きるという優れた点を有する。したがって、特異性の高
い多くの遺伝子発現を、マキシザイムを使用することに
よって制御できるはずである。
[0006] In designing maxizymes, several parameters, such as the length of the sequence of the cleavage site and the distance from the effector site to the cleavage site, may be mentioned regarding the selection of the NUX site of the nucleotide of the fusion gene. (Biomacromolecules 1, 108-11
7, 2000). The maxizyme against PML / RARα has already been reported (Biomacromolecules 1,
108-117, 2000), whose cleavage site is PM of the chimeric gene.
It is located on the L portion and has a distance of 4 bases from the PML / RARα fusion site to the branch point of the left and right sensor arm sequences in the active form. This indicates that this maxizyme cleaves the PML part in the presence of the PML / RARα effector in the cell-free system (Biomacromolecules 1, 108-117, 2000). As described above, maxizyme can be designed to specifically cleave any sequence, and has the advantage that it can be specifically cleaved without damaging the normal transcription associated therewith. Therefore, many highly specific gene expressions could be controlled by using maxizymes.

【0007】BCR/ABL、PML/RARα及びA
ML1/ETO(Biochem. Biophys. Res. Commun. 21
5, 431-437, 1995、Br. J. Cancer 79, 1325-1331, 199
9、Blood 92, 1758-1767, 1998、Oncogene 17, 1759-17
68, 1998)などの染色体転座由来のキメラ遺伝子は白血
病細胞に発現し、白血病を誘発するという特徴を有す
る。したがって、白血病を誘発するキメラ遺伝子に対す
るマキシザイムは、上記染色体転座由来のキメラ遺伝子
に対するマキシザイムと同様に、リボザイムの確実なタ
ーゲットとして白血病細胞を認識すると考えられる。現
在、マキシザイムとしては強い切断活性とターゲット遺
伝子に対する高選択性を有するものが期待されている。
BCR/ABLに対するマキシザイムの最近の報告で
は、マキシザイムがインビトロ、インビボ両方で作用す
るということが報告されている(Nature 460, 473-474,
2000)。従って、マキシザイムの作用は、異常なmR
NAを特異的に認識するセンサーアームによってアロス
テリック的にコントロールすることができ、これはマキ
シザイムが異常なキメラ遺伝子をターゲットとして破壊
する強力な武器であり、将来のAPL患者の治療するた
めの遺伝子治療に有用であることを示唆している。
BCR / ABL, PML / RARα and A
ML1 / ETO (Biochem. Biophys. Res. Commun. 21
5, 431-437, 1995, Br. J. Cancer 79, 1325-1331, 199.
9, Blood 92, 1758-1767, 1998, Oncogene 17, 1759-17
68, 1998) and other chimeric genes derived from chromosomal translocations are expressed in leukemia cells and are characterized by inducing leukemia. Therefore, it is considered that the maxizyme against the chimeric gene that induces leukemia recognizes leukemia cells as a reliable target of the ribozyme, like the maxizyme against the chimeric gene derived from the chromosomal translocation. Currently, maxizymes are expected to have strong cleavage activity and high selectivity for target genes.
Recent reports of maxizymes against BCR / ABL have reported that maxizymes act both in vitro and in vivo (Nature 460, 473-474,
2000). Therefore, the action of maxizyme is
It can be controlled allosterically by a sensor arm that specifically recognizes NA, which is a powerful weapon that maxizyme targets and destroys an abnormal chimeric gene, and is suitable for gene therapy to treat future APL patients. Suggests that it is useful.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】急性前骨髄球性白血病
細胞が発現しているPML/RARα融合遺伝子には、
ロングフォーム(long form)とショートフォーム(sho
rt form)の2つのアイソフォームが存在し、これらは
PML領域での切断点の違いによるものであることが知
られている(Cell 66, 663-674, 1991)。2つのアイソ
フォームのうち、ロングフォームのPML/RARα融
合遺伝子に対するマキシザイムについてはすでに報告さ
れている(Biomacromolecules 1, 108-117, 2000)が、
かかるマキシザイムは、その認識部位の中心(活性型に
おける左右センサーアーム配列の分岐点)がPML/R
ARα融合遺伝子の融合部位から4塩基離れており、特
異性・切断活性において十分なものではなかった。本発
明の課題は、急性前骨髄球性白血病等の悪性腫瘍細胞に
おいて特異的に発現する融合遺伝子に対して、従来のも
のより特異性や切断活性が高いマキシザイムや、かかる
マキシザイムのスクリーニング方法や、悪性腫瘍治療薬
等のかかるマキシザイムの利用方法を提供することにあ
る。
[Problems to be Solved by the Invention] The PML / RARα fusion gene expressed in acute promyelocytic leukemia cells contains:
Long form and short form
It is known that there are two isoforms of rt form) and these are due to the difference in the breakpoints in the PML region (Cell 66, 663-674, 1991). Of the two isoforms, the maxizyme for the long-form PML / RARα fusion gene has already been reported (Biomacromolecules 1, 108-117, 2000).
In such maxizyme, the center of its recognition site (branch point of the left and right sensor arm sequences in the active form) is PML / R.
It was 4 bases away from the fusion site of the ARα fusion gene and was not sufficient in specificity / cleavage activity. The subject of the present invention is a fusion gene specifically expressed in malignant tumor cells such as acute promyelocytic leukemia, a maxizyme having higher specificity and cleavage activity than conventional ones, and a screening method for such a maxizyme, It is intended to provide a method for using such maxizyme such as a therapeutic agent for malignant tumor.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題
を解決するために、悪性腫瘍として急性前骨髄球性白血
病に着目し、かかる白血病細胞において特異的に発現す
るPML/RARα融合遺伝子に対する種々のマキシザ
イムを、マキシザイムのセンサーアーム(sensor arm)
によって認識されるPML/RARα融合遺伝子のエフ
ェクター(sequence of interest)との相互作用によっ
て触媒作用が活性化されるヘテロダイマーRNAモチー
フをもとにデザインし(図1参照)、それらのセルフリ
ー系における切断活性を調べてみたところ、ほとんどの
マキシザイムはエフェクターが存在しなくてもPML/
RARα RNAを非特異的に切断することがわかっ
た。このことから、特異的切断活性が不活性型における
安定性に依存しているのではないかと考え、Mg2+結合
ポケット周囲の配列を変化させ、不活性型と同様な安定
性を有するように、PML/RARαの融合部位をセン
サーアーム配列の分岐点近くに位置するように種々の候
補マキシザイムをデザインし、セルフリー系における切
断活性を調べたところ、特異的切断活性を有するマキシ
ザイムを見い出した。また、かかる特異的切断活性を有
するマキシザイム等を含む候補マキシザイムの構造解析
から、特異的切断活性に必要な基本構造を決定し、かか
る基本構造を数塩基変異させたマキシザイム、すなわ
ち、前記融合遺伝子のmRNAの融合部分を認識するセ
ンサーアーム、活性型におけるMg2+結合ポケットを形
成するMg2+結合ポケット、前記融合遺伝子のmRNA
の切断部位を含む配列の相補塩基配列からなる切断部位
アーム(cleavage site arm)等の配列を変異させたマ
キシザイムが、同様に特異的切断活性を有することを見
い出し、PML/RARアルファ融合遺伝子をもつ急性
前骨髄急性白血病に対する特異的治療薬として有用であ
ること確認しを、本発明を完成するに至った。
[Means for Solving the Problems] In order to solve the above problems, the present inventors have focused on acute promyelocytic leukemia as a malignant tumor, and specifically express the PML / RARα fusion gene in such leukemia cells. Various maxizymes against the maxizyme sensor arm
Designed on the basis of heterodimeric RNA motifs whose catalytic activity is activated by interaction with the sequence of interest of the PML / RARα fusion gene recognized by (see FIG. 1), their cell-free system When the cleavage activity was examined, most maxizymes showed PML / even in the absence of effectors.
It was found to cleave RARα RNA nonspecifically. Based on this, we speculate that the specific cleavage activity may depend on the stability in the inactive form, and we changed the sequence around the Mg 2+ binding pocket to make it have the same stability as the inactive form. , Designed various candidate maxizymes so that the fusion site of PML / RARα was located near the branch point of the sensor arm sequence and examined the cleavage activity in the cell-free system. As a result, the maxizyme having a specific cleavage activity was found. Further, from the structural analysis of a candidate maxizyme including maxizyme having such a specific cleavage activity, the basic structure required for specific cleavage activity is determined, and the basic structure is mutated by a few bases maxizyme, that is, the fusion gene. A sensor arm that recognizes a fusion portion of mRNA, a Mg 2+ binding pocket that forms an Mg 2+ binding pocket in an active form, and an mRNA of the fusion gene
It was found that a maxizyme having a mutated sequence such as a cleavage site arm composed of a nucleotide sequence complementary to the sequence containing the cleavage site has a PML / RARalpha fusion gene. The present invention has been completed by confirming that it is useful as a specific therapeutic agent for acute promyeloacute leukemia.

【0010】すなわち本発明は、悪性腫瘍細胞において
特異的に発現する融合遺伝子のmRNA中に存在し、ヒ
トの他のmRNA中の塩基配列と相同性を有さない塩基
配列中のNUX(N=A、C、G又はU、X=A、C又
はU)を切断部位として認識する切断部位アーム配列
と、活性型におけるMg2+結合ポケットを形成するMg
2+結合ポケット周囲配列と、前記融合遺伝子のmRNA
の融合部分を認識するセンサーアーム配列とを備えたヘ
テロダイマーからなり、活性型における左右センサーア
ーム配列の分岐点が前記融合遺伝子のmRNAの融合部
位の近傍に位置する種々の候補マキシザイムを作製し、
その特異性及び切断活性を測定・評価することを特徴と
する悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝子のmRNAに対して
特異的切断活性を有するマキシザイムのスクリーニング
方法(請求項1)や、悪性腫瘍細胞が、白血病細胞であ
ることを特徴とする請求項1記載の悪性腫瘍細胞特異的
融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有する
マキシザイムのスクリーニング方法(請求項2)や、白
血病細胞が、急性前骨髄球性白血病細胞であることを特
徴とする請求項2記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝子
のmRNAに対して特異的切断活性を有するマキシザイ
ムのスクリーニング方法(請求項3)や、急性前骨髄球
性白血病細胞において特異的に発現する融合遺伝子が、
PML/RARα融合遺伝子であることを特徴とする請
求項3記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝子のmRNA
に対して特異的切断活性を有するマキシザイムのスクリ
ーニング方法(請求項4)や、候補マキシザイムが、活
性型における左右センサーアーム配列の分岐点が前記融
合遺伝子のmRNAの融合部位から2塩基以内に位置す
ることを特徴とする請求項1〜4のいずれか記載の悪性
腫瘍細胞特異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切
断活性を有するマキシザイムのスクリーニング方法(請
求項5)や、候補マキシザイムが、配列CUGANGA
(N=A、C、G又はU)と配列GAAAを含むMg2+
結合ポケット周囲配列を有することを特徴とする請求項
1〜5のいずれか記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝子
のmRNAに対して特異的切断活性を有するマキシザイ
ムのスクリーニング方法(請求項6)や、候補マキシザ
イムが、不活性型において安定な構造を有することを特
徴とする請求項1〜6のいずれか記載の悪性腫瘍細胞特
異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有
するマキシザイムのスクリーニング方法(請求項7)
や、請求項1〜7のいずれか記載の悪性腫瘍細胞特異的
融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有する
マキシザイムのスクリーニング方法により得られるマキ
シザイム(請求項8)や、以下の(a)又は(b)と、(c)
又は(d)とのヘテロダイマーからなることを特徴とする
マキシザイム(a) 配列番号1に示される塩基配列から
なるRNA(b) 配列番号1に示される塩基配列におい
て、1若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加さ
れた塩基配列からなり、かつ(c)又は(d)とのヘテロダ
イマーが酵素活性を有するRNA(c) 配列番号2に示
される塩基配列からなるRNA(d) 配列番号2に示さ
れる塩基配列において、1若しくは数個の塩基が欠失、
置換若しくは付加された塩基配列からなり、かつ(a)又
は(b)とのヘテロダイマーが酵素活性を有するRNA
(請求項9)や、以下の(a)又は(b)と、(c)又は(d)
とからなることを特徴とするマキシザイム(a) 配列番
号3に示される塩基配列からなるRNA(b) 配列番号
3に示される塩基配列において、1若しくは数個の塩基
が欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなり、か
つ(c)又は(d)とのヘテロダイマーが酵素活性を有する
RNA(c)配列番号4に示される塩基配列からなるRN
A(d) 配列番号4に示される塩基配列において、1若
しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基
配列からなり、かつ(a)又は(b)とのヘテロダイマーが
酵素活性を有するRNA(請求項10)に関する。
That is, the present invention relates to malignant tumor cells
It is present in the mRNA of the fusion gene that is specifically expressed and
Bases that have no homology to the base sequences in other mRNAs
NUX in the sequence (N = A, C, G or U, X = A, C or
Is a cleavage site arm sequence that recognizes U) as a cleavage site
And Mg in active form2+Mg forming a binding pocket
2+Sequence around binding pocket and mRNA of the fusion gene
With a sensor arm array that recognizes the fused portion of
It consists of a terror dimer, and the left and right sensor
The branch point of the genome sequence is the fusion part of the mRNA of the fusion gene.
Various candidate maxizymes located near the position,
Characterized by measuring and evaluating its specificity and cleavage activity
Against the malignant tumor cell-specific fusion gene mRNA
Screening of maxizyme with specific cleavage activity
The method (claim 1) or the malignant tumor cell is a leukemia cell.
Malignant tumor cell-specific according to claim 1, characterized in that
Has specific cleavage activity for mRNA of fusion gene
Maxizyme screening method (Claim 2) or white
Characterizing that the blood diseased cells are acute promyelocytic leukemia cells
The malignant tumor cell-specific fusion gene according to claim 2,
Having a specific cleaving activity for mRNA of Escherichia coli
Screening method (Claim 3) and acute promyelocytic cells
Fusion gene that is specifically expressed in sex leukemia cells
A contract characterized by being a PML / RARα fusion gene
MRNA of fusion gene specific to malignant tumor cell according to claim 3
Of maxizyme having specific cleavage activity against
The training method (claim 4) and candidate maxizymes are
The branch point of the left and right sensor arm arrays in the
Located within 2 bases of fusion site of mRNA of combined gene
Malignant according to any one of claims 1 to 4, characterized in that
Specific cut-off for mRNA of tumor cell-specific fusion gene
Screening method for maxizyme having activity
Requirement 5) or the candidate maxizyme has the sequence CUGANGA
(N = A, C, G or U) and Mg containing the sequence GAAA2+
A binding pocket perimeter array is provided.
The malignant tumor cell-specific fusion gene according to any one of 1 to 5
Having a specific cleaving activity for mRNA of Escherichia coli
Screening method (Claim 6) and candidate maxiza
Is characterized by having a stable structure in the inactive form.
The malignant tumor cell characteristic according to any one of claims 1 to 6
It has a specific cleavage activity for mRNA of heterologous fusion gene.
Method for screening maxizyme (claim 7)
Or malignant tumor cell-specific according to any one of claims 1 to 7.
Has specific cleavage activity for mRNA of fusion gene
Maki obtained by screening method of maxizyme
Cyzyme (claim 8) or the following (a) or (b) and (c)
Or consisting of a heterodimer with (d)
Maxizyme (a) From the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1
RNA (b) having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1
, One or several bases are deleted, substituted or added.
Heterologous with (c) or (d)
RNA (c) having the enzymatic activity of the imer is shown in SEQ ID NO: 2.
RNA (d) consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2
1 or several bases are deleted in the nucleotide sequence
Consisting of a substituted or added base sequence, and (a) or
Is an RNA whose heterodimer with (b) has enzymatic activity
(Claim 9) and the following (a) or (b) and (c) or (d)
The maxizyme (a) sequence number characterized by consisting of
RNA (b) SEQ ID NO: consisting of the nucleotide sequence shown in No. 3
1 or several bases in the base sequence shown in 3
Consists of a deleted, substituted or added nucleotide sequence,
Heterodimer with (c) or (d) has enzymatic activity
RNA (c) RN consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 4
A (d) In the base sequence shown in SEQ ID NO: 4,
Or, bases with some bases deleted, substituted or added
And a heterodimer with (a) or (b)
It relates to RNA having enzymatic activity (claim 10).

【0011】また本発明は、請求項8〜10のいずれか
記載のマキシザイムに、ポリA及び/又はキャップ構造
を付加することを特徴とする安定化マキシザイム(請求
項11)や、請求項8〜10のいずれか記載のマキシザ
イムを発現することができるベクター(請求項12)
や、請求項8〜10のいずれか記載のマキシザイム、請
求項11記載の安定化マキシザイム、又は請求項12記
載のベクターが導入された悪性腫瘍細胞(請求項13)
や、請求項8〜10のいずれか記載のマキシザイム、請
求項11記載の安定化マキシザイム、又は請求項12記
載のベクターを用いることを特徴とする悪性腫瘍細胞に
おいて発現する融合遺伝子のmRNAの特異的切断方法
(請求項14)や、請求項8〜10のいずれか記載のマ
キシザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又
は請求項12記載のベクターを悪性腫瘍患者の悪性腫瘍
細胞に導入することを特徴とする悪性腫瘍の治療方法
(請求項15)や、請求項8〜10のいずれか記載のマ
キシザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又
は請求項12記載のベクターを有効成分として含有する
ことを特徴とする悪性腫瘍治療薬(請求項16)に関す
る。
The present invention also provides a stabilized maxizyme (claim 11) characterized in that polyA and / or a cap structure is added to the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, and claims 8 to 10. A vector capable of expressing the maxizyme according to any one of 10 (claim 12).
Or a malignant tumor cell introduced with the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12 (claim 13).
Or using the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12, specificity of mRNA of a fusion gene expressed in malignant tumor cells Cleavage method (claim 14), introduction of the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12 into malignant tumor cells of a malignant tumor patient. A method for treating a characteristic malignant tumor (claim 15), the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12 as an active ingredient. And a therapeutic agent for malignant tumor (claim 16).

【0012】[0012]

【発明の実施の形態】本発明の悪性腫瘍細胞特異的融合
遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有するマキ
シザイムのスクリーニング方法としては、急性前骨髄球
性白血病細胞、慢性骨髄性白血病細胞、急性骨髄性白血
病細胞、小児急性リンパ性白血病細胞等の白血病細胞
や、悪性リンパ腫瘍細胞、急性リンパ芽球性白血病など
の悪性腫瘍細胞において特異的に発現する融合遺伝子の
mRNA(標的mRNA)中に存在し、ヒトの他のmR
NA中の塩基配列と相同性を有さない塩基配列中のNU
X(N=A、C、G又はU、X=A、C又はU)を切断
部位として認識する切断部位アーム配列と、活性型にお
けるMg2+結合ポケットを形成するMg2+結合ポケット
周囲配列と、前記標的mRNAの融合部分を認識するセ
ンサーアーム配列とを備えたヘテロダイマーからなり、
活性型における左右センサーアーム配列の分岐点が前記
標的mRNAの融合部位の近傍に位置する種々の候補マ
キシザイムを作製し、インビトロ(セルフリー系)又は
インビボにおいて、候補マキシザイムの特異性及び切断
活性を測定・評価する方法であれば特に制限されるもの
ではなく、スクリーニングにより得られる特異的切断活
性を有するマキシザイムを用いると、悪性腫瘍細胞にお
いて特異的に発現する融合遺伝子をmRNAの段階で切
断し、その機能を破壊することができる。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION A method for screening a maxizyme having a specific cleavage activity for mRNA of a malignant tumor cell-specific fusion gene of the present invention includes acute promyelocytic leukemia cells, chronic myelogenous leukemia cells, acute Present in mRNA (target mRNA) of fusion gene specifically expressed in leukemia cells such as myeloid leukemia cells and childhood acute lymphocytic leukemia cells, and malignant tumor cells such as malignant lymphoma cells and acute lymphoblastic leukemia And other MR of human
NU in the base sequence having no homology with the base sequence in NA
A cleavage site arm sequence that recognizes X (N = A, C, G or U, X = A, C or U) as a cleavage site, and a sequence around the Mg 2+ binding pocket that forms the Mg 2+ binding pocket in the active form. And a heterodimer having a sensor arm sequence that recognizes a fusion portion of the target mRNA,
Various candidate maxizymes in which the branch points of the left and right sensor arm sequences in the active form are located near the fusion site of the target mRNA were prepared, and the specificity and cleavage activity of the candidate maxizyme were measured in vitro (cell-free system) or in vivo. It is not particularly limited as long as it is a method for evaluation, and when a maxizyme having a specific cleavage activity obtained by screening is used, the fusion gene specifically expressed in malignant tumor cells is cleaved at the mRNA stage, and The function can be destroyed.

【0013】上記悪性腫瘍細胞において特異的に発現す
る融合遺伝子としては、遺伝子の転座により悪性腫瘍細
胞において特異的に発現するものであれば特に限定され
るものでなく、PML/RARα(急性前骨髄球性白血
病)、BCR/ABL(慢性骨髄性白血病)、AML1
/ETO(MTG8)(急性骨髄性白血病)、AML1
/Evi1(急性骨髄性白血病)、CBFβ/MYH1
1(急性骨髄性白血病)、DEK/CAN(急性骨髄性
白血病)、Fus/ERG(急性骨髄性白血病)、PD
GFRβ/TEL(慢性骨髄単球性白血病)、TEL/
AML1(小児急性リンパ性白血病)、MLL/AF4
(急性リンパ性白血病)、MLL/AF9(急性リンパ
性白血病、MLL/ENL(急性リンパ性白血病)、I
GH/BCL2(悪性リンパ腫)、IGH/PAX5
(悪性リンパ腫)IgH/C−MYC(悪性リンパ
腫)、IgH/PRAD1(悪性リンパ腫)、ALK/
NPM(悪性リンパ腫)等の融合遺伝子を具体的に例示
することができる。
The fusion gene specifically expressed in the above malignant tumor cells is not particularly limited as long as it is specifically expressed in the malignant tumor cells by translocation of the gene, and PML / RARα (pre-acute) Myeloid leukemia), BCR / ABL (chronic myelogenous leukemia), AML1
/ ETO (MTG8) (acute myeloid leukemia), AML1
/ Evi1 (acute myeloid leukemia), CBFβ / MYH1
1 (acute myeloid leukemia), DEK / CAN (acute myeloid leukemia), Fus / ERG (acute myeloid leukemia), PD
GFRβ / TEL (chronic myelomonocytic leukemia), TEL /
AML1 (pediatric acute lymphocytic leukemia), MLL / AF4
(Acute lymphocytic leukemia), MLL / AF9 (acute lymphocytic leukemia, MLL / ENL (acute lymphocytic leukemia), I
GH / BCL2 (malignant lymphoma), IGH / PAX5
(Malignant lymphoma) IgH / C-MYC (malignant lymphoma), IgH / PRAD1 (malignant lymphoma), ALK /
A fusion gene such as NPM (malignant lymphoma) can be specifically exemplified.

【0014】候補マキシザイムにおける上記切断部位ア
ーム配列は、標的mRNA中に存在するNUXを含む塩
基配列と相補的配列からなり、上記NUXを含む塩基配
列がヒトの他のmRNA中の塩基配列と実質的に相同性
をもたないことから、標的mRNAの塩基配列中のNU
Xを切断部位として認識し、センサーアーム配列と協働
して、標的mRNAを特異選択的に切断することを可能
とする。例えば、融合遺伝子がPML/RARαアイソ
フォームの場合、PML/RARα融合部位から71塩
基下流に位置する、RARαのヌクレオチド配列におけ
る476〜478番目のAUCの3つの塩基を含む16
のヌクレオチド配列はヒトのどの配列にも相同しないこ
とから、切断部位として好適に選択することができる。
The cleavage site arm sequence in the candidate maxizyme consists of a sequence complementary to the nucleotide sequence containing NUX present in the target mRNA, and the nucleotide sequence containing NUX is substantially the same as the nucleotide sequence in other human mRNA. NU in the base sequence of the target mRNA because it has no homology to
It recognizes X as a cleavage site and, in cooperation with the sensor arm sequence, allows the target mRNA to be specifically and selectively cleaved. For example, when the fusion gene is the PML / RARα isoform, it contains three bases of AUC at positions 476 to 478 in the nucleotide sequence of RARα, which is located 71 bases downstream from the PML / RARα fusion site.
Since the nucleotide sequence of is not homologous to any human sequence, it can be suitably selected as the cleavage site.

【0015】候補マキシザイムにおける上記Mg2+結合
ポケット周囲配列は、図1(上)に示されるように、上
記切断部位アーム配列と前記標的mRNAの融合部分を
認識するセンサーアーム配列とが、標的mRNAにハイ
ブリダイズした活性型(active form)におけるMg2+
結合ポケットを形成する配列で、例えば、融合遺伝子が
PML/RARαアイソフォームの場合などにおいて
は、Mg2+結合ポケット周囲配列を配列CUGANGA
(N=A、C、G又はU)と配列GAAAを保存配列と
して含み、他の部分を変異させた構成とすることが、特
異的切断活性を有するマキシザイムを効率よくスクリー
ニングする上で好ましい。
As shown in FIG. 1 (top), the sequence surrounding the Mg 2+ binding pocket in the candidate maxizyme is such that the cleavage site arm sequence and the sensor arm sequence recognizing the fusion part of the target mRNA are the target mRNA. 2+ in active form hybridized to
A sequence forming a binding pocket, for example, when the fusion gene is a PML / RARα isoform, the sequence surrounding the Mg 2+ binding pocket is the sequence CUGANGA.
(N = A, C, G or U) and the sequence GAAA as a conserved sequence, and a configuration in which the other portion is mutated is preferable in order to efficiently screen a maxizyme having a specific cleavage activity.

【0016】候補マキシザイムにおける上記センサーア
ーム配列は、前記標的mRNAの融合部分を認識するこ
とができるように、該融合部分と相補的な配列からな
り、活性型における左右センサーアーム配列の分岐点が
前記標的mRNAの融合部位の近傍、好ましくは融合部
位から2塩基以内に位置するように構成されている。活
性型における左右センサーアーム配列の分岐点を標的m
RNAの融合部位の近傍、特に融合部位から2塩基以内
に位置するように構成することにより、形成される前記
活性型におけるMg2+結合ポケットが高切断活性構造と
なり、標的mRNAの特異的切断活性に優れたマキシザ
イムを作製しうる可能性が高くなる。
The sensor arm sequence in the candidate maxizyme is composed of a sequence complementary to the fusion part of the target mRNA so that the fusion part of the target mRNA can be recognized. It is configured to be located near the fusion site of the target mRNA, preferably within 2 bases from the fusion site. Targets the branch point of the left and right sensor arm sequences in the active form
The Mg 2+ binding pocket in the active form formed has a highly cleaving active structure by being located near the fusion site of RNA, particularly within 2 bases from the fusion site, and has a specific cleaving activity of the target mRNA. The possibility that an excellent maxizyme can be produced increases.

【0017】また、候補マキシザイムとして、不活性型
(inactive form)において安定な構造を有するマキシ
ザイムを用いることが好ましい。不活性型マキシザイム
は、Mg2+結合ポケットが形成されたヘテロダイマーで
構成される上記活性型マキシザイムと異なり、図1
(下)に示されるように、前記切断部位アーム配列のみ
が標的mRNAにハイブリダイズし、Mg2+結合ポケッ
トが形成されていないヘテロダイマーで構成されてい
る。そして、不活性型において安定な構造とは、Mg 2+
結合ポケットに相当する配列間に形成される相補塩基対
が多い構造をいい、例えば、融合遺伝子がPML/RA
Rαアイソフォームの場合などにおいては、不活性型に
おいて8〜9の相補塩基対を有する候補マキシザイム
が、標的mRNAの特異的切断活性に優れたものとなる
可能性が大きくなる。
Further, as a candidate maxizyme, inactive type
Maxi with stable structure in (inactive form)
It is preferable to use Zym. Inactive maxizyme
Is Mg2+A heterodimer with a binding pocket
Unlike the active maxizyme, which is composed,
As shown in (below), only the cleavage site arm sequence
Hybridizes to the target mRNA,2+Combined pocket
Consists of an unformed heterodimer
It And, the stable structure in the inactive type means Mg 2+
Complementary base pairs formed between sequences corresponding to binding pockets
Is a structure in which the fusion gene is PML / RA.
In case of Rα isoform
Candidate maxizyme having 8 to 9 complementary base pairs
Results in excellent target mRNA specific cleavage activity
The possibility increases.

【0018】標的mRNAに対して特異的切断活性を有
するマキシザイムのスクリーニングは、種々の濃度の候
補マキシザイムを用いて、インビトロ及び/又はインビ
ボで行われるが、その簡便さからしてセルフリー系で行
うことが好ましい。上記候補マキシザイムの特異性は、
上記切断部位NUXを有する非融合遺伝子のmRNA
(正常mRNA)を切断することなく、標的mRNAを
選択的に切断するかどうかにより評価され、候補マキシ
ザイムの切断活性はマキシザイムの使用濃度により評価
することができる。かかるスクリーニング方法によって
得られる標的mRNAに対して特異的切断活性を有する
本発明のマキシザイムは、急性前骨髄球性白血病、慢性
骨髄性白血病、急性骨髄性白血病、小児急性リンパ性白
血病等の白血病や、悪性リンパ種などの悪性腫瘍に対す
る治療に有用である。以下に悪性腫瘍細胞として急性前
骨髄球性白血病細胞を例に挙げ、急性前骨髄球性白血病
細胞において特異的に発現するPML/RARα融合遺
伝子を特異的に認識し、高い切断活性を有するマキシザ
イムについて説明する。
Screening of maxizyme having a specific cleavage activity for a target mRNA is carried out in vitro and / or in vivo using various concentrations of candidate maxizymes, but due to its convenience, it is carried out in a cell-free system. It is preferable. The specificity of the above candidate maxizyme is
MRNA of non-fusion gene having the above cleavage site NUX
It is evaluated by whether or not the target mRNA is selectively cleaved without cleaving (normal mRNA), and the cleavage activity of the candidate maxizyme can be evaluated by the concentration of the maxizyme used. The maxizyme of the present invention having a specific cleavage activity against the target mRNA obtained by such a screening method is a leukemia such as acute promyelocytic leukemia, chronic myelogenous leukemia, acute myelogenous leukemia, and childhood acute lymphocytic leukemia, It is useful for treating malignant tumors such as malignant lymphoma. The following is an example of a maxizyme having a high cleavage activity that specifically recognizes a PML / RARα fusion gene that is specifically expressed in acute promyelocytic leukemia cells by taking acute promyelocytic leukemia cells as an example of malignant tumor cells. explain.

【0019】本発明において、急性前骨髄球性白血病細
胞において特異的に発現するPML/RARα融合遺伝
子を認識し、高い切断活性を有するマキシザイムとして
は、例えば、ロングフォーム(long form)PML/R
ARα融合遺伝子の場合、次の(a)又は(b)と、(c)又
は(d)とのヘテロダイマーからなるマキシザイムを挙げ
ることができる。(a)は配列番号1に示される塩基配列
からなるRNA(MzPRT50L)で、(b)は配列番
号1に示される塩基配列において、1若しくは数個の塩
基が欠失、置換若しくは付加された塩基配列からなり、
かつ(c)又は(d)とのヘテロダイマーが酵素活性(RN
A切断活性)を有するRNAで、(c)は配列番号2に示
される塩基配列からなるRNA(MzPRT50R)
で、(d)は配列番号2に示される塩基配列において、1
若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩
基配列からなり、かつ上記(a)又は(b)とのヘテロダイ
マーが酵素活性を有するRNAである。かかる(a)又は
(b)と、(c)又は(d)とのヘテロダイマーからなるマキ
シザイムとしては、図16に示されるMzPRT50
や、図18に示されるMzPRT50+Gを具体的に挙
げることができる。
In the present invention, the maxizyme which recognizes the PML / RARα fusion gene specifically expressed in acute promyelocytic leukemia cells and has a high cleavage activity is, for example, long form PML / R.
In the case of the ARα fusion gene, a maxizyme comprising a heterodimer of the following (a) or (b) and (c) or (d) can be mentioned. (a) is RNA (MzPRT50L) consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1, and (b) is a base in which one or several bases have been deleted, substituted or added in the base sequence shown in SEQ ID NO: 1. Consists of an array,
And the heterodimer with (c) or (d) is enzymatically active (RN
RNA having an A-cleaving activity), (c) is an RNA having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2 (MzPRT50R)
And (d) is 1 in the base sequence shown in SEQ ID NO: 2.
Alternatively, the heterodimer of (a) or (b) described above is an RNA having a nucleotide sequence in which several bases have been deleted, substituted or added, and which has enzymatic activity. Such (a) or
A maxizyme comprising a heterodimer of (b) and (c) or (d) includes MzPRT50 shown in FIG.
Alternatively, MzPRT50 + G shown in FIG. 18 can be specifically mentioned.

【0020】他方、ショートフォーム(short form)P
ML/RARα融合遺伝子の場合、次の(a)又は(b)
と、(c)又は(d)とのヘテロダイマーからなるマキシザ
イムを挙げることができる。(a)は配列番号3に示され
る塩基配列からなるRNA(MzPRK55L)で、
(b)は配列番号3に示される塩基配列において、1若し
くは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配
列からなり、かつ(c)又は(d)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNAで、(c)は配列番号4に示される
塩基配列からなるRNA(MzPRK55R)で、(d)
は配列番号4に示される塩基配列において、1若しくは
数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配列か
らなり、かつ上記(a)又は(b)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNAである。かかる(a)又は(b)と、
(c)又は(d)とのヘテロダイマーからなるマキシザイム
としては、図17に示されるMzPRK55や、図19
に示されるMzPRK55+Gを具体的に挙げることが
できる。
On the other hand, a short form P
In the case of the ML / RARα fusion gene, the following (a) or (b)
And a maxizyme comprising a heterodimer of (c) or (d). (a) is RNA (MzPRK55L) consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3,
(b) consists of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 with one or several bases deleted, substituted or added, and the heterodimer with (c) or (d) shows enzymatic activity. (C) is RNA (MzPRK55R) consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 4, which is (d)
Is an RNA having a base sequence in which one or several bases are deleted, substituted or added in the base sequence shown in SEQ ID NO: 4, and the heterodimer with (a) or (b) above has an enzymatic activity. Is. With such (a) or (b),
As the maxizyme comprising a heterodimer with (c) or (d), MzPRK55 shown in FIG.
Specific examples thereof include MzPRK55 + G.

【0021】本発明の安定化マキシザイムとしては、上
記MzPRT50やMzPRK55等の前記スクリーニ
ング方法により得られる本発明のマキシザイムに、ポリ
A及び/又はキャップ構造が付加され、リボヌクレアー
ゼ等による分解から保護され、安定性の高い構造を有す
るものであれば特に制限されるものではなく、上記キャ
ップ構造としては、マキシザイムの5'末端ヌクレオシ
ドにリン酸基を介して5'→5'結合した7−メチルグア
ノシン5'−リン酸[(7MeG)−5'−ppp−末端
ヌクレオシド]を付加したCap0構造や、Cap0構
造にさらに1番目の末端ヌクレオチドの2'位のOHを
メチル化させたCap1構造や、Cap1構造にさらに
2番目のヌクレオチドの2'位のOHをメチル化させる
Cap2構造を例示することができ、安定化マキシザイ
ムとしてこれらキャップ構造と3'側にポリA構造を共
に付加した構造を有するマキシザイムをより好適に挙げ
ることができる。
As the stabilized maxizyme of the present invention, polyA and / or a cap structure is added to the maxizyme of the present invention obtained by the screening method such as MzPRT50 or MzPRK55 described above, which is protected from degradation by ribonuclease and the like. The cap structure is not particularly limited as long as it has a structure with high property, and the cap structure includes 7-methylguanosine 5 ′ which is 5 ′ → 5 ′ linked to the 5′-terminal nucleoside of maxizyme via a phosphate group. -Phosphate [(7MeG) -5'-ppp-terminal nucleoside] is added to the Cap0 structure, the Cap0 structure is further methylated with OH at the 2'position of the first terminal nucleotide, or the Cap1 structure Furthermore, it illustrates the Cap2 structure that methylates the OH at the 2'position of the second nucleotide. As the stabilized maxizyme, a maxizyme having a structure in which both the cap structure and the poly A structure are added to the 3'side can be more preferably mentioned.

【0022】本発明のRNAベクターとしては、本発明
のマキシザイムを悪性腫瘍細胞等の細胞内において発現
することができるベクターであれば特に制限されるもの
ではなく、プラスミド、ウイルス、レトロトランスポゾ
ン及びコスミドを含む種々のベクターを用いることがで
きる。また、これらベクターの種類に応じて、マキシザ
イムのヘテロダイマーを構成するRNA配列をそのま
ま、あるいは該RNA配列の逆転写物であるDNA配列
を1又は2以上ベクターに組み込むことができる。マキ
シザイム発現用のプラスミドベクターとしては、pol II
Iプロモーター(例えば、アデノウイルス由来のtRNA
又はVA−1)、CMVプロモーター、SV40後期プ
ロモーター、又はSV40初期プロモーターのような真
核プロモーターを有するものを挙げることができ、ウイ
ルスベクターとしては、アデノウイルスベクター、アデ
ノ随伴ウイルス1型又はアデノ随伴ウイルス2型ベクタ
ー、レトロウイルスベクターなどを具体的に挙げること
ができる。これらベクターの作製については公知の方法
(例えば、Gene Therapy:Application of MolecularBio
logy,Elsevier Science Publishing Co.,Inc.,ニュ
ーヨーク,1991参照)を用いることができ、例えば、組
換えレトロウイルスベクターを用いて、悪性腫瘍細胞等
をトランスフェクトすることにより、本発明のマキシザ
イムをコードする遺伝子をヒト細胞の染色体中へ導入
し、効率よくマキシザイムを発現させることができる。
The RNA vector of the present invention is not particularly limited as long as it is a vector capable of expressing the maxizyme of the present invention in cells such as malignant tumor cells, and includes plasmids, viruses, retrotransposons and cosmids. Various vectors can be used, including. In addition, depending on the type of the vector, the RNA sequence that constitutes the heterodimer of maxizyme can be incorporated into the vector as it is, or one or more DNA sequences that are reverse transcripts of the RNA sequence. As a plasmid vector for maxizyme expression, pol II
I promoter (eg, tRNA derived from adenovirus
Or VA-1), CMV promoter, SV40 late promoter, or SV40 early promoter, or the like, and adenovirus vector, adeno-associated virus type 1 or adeno-associated virus. Specific examples include a type 2 vector and a retrovirus vector. Known methods for the production of these vectors (for example, Gene Therapy: Application of Molecular Bio
logy, Elsevier Science Publishing Co., Inc., New York, 1991), for example, by transfecting a malignant tumor cell or the like with a recombinant retroviral vector to encode the maxizyme of the present invention. The gene can be introduced into the chromosome of human cells to efficiently express maxizyme.

【0023】本発明はまた、本発明のマキシザイム、安
定化マキシザイム、マキシザイム発現ベクターが導入さ
れた悪性腫瘍細胞や、本発明のマキシザイム、安定化マ
キシザイム、マキシザイム発現ベクターを用いる標的m
RNAの特異的切断方法や、本発明のマキシザイム、安
定化マキシザイム、マキシザイム発現ベクターを悪性腫
瘍患者の悪性腫瘍細胞に導入することを特徴とする悪性
腫瘍の治療方法に関する。本発明のマキシザイム、安定
化マキシザイム、マキシザイム発現ベクターを悪性腫瘍
細胞に導入する方法としては、リン酸カルシウム沈降を
用いるトランスホーメーション法、マイクロインジェク
ション法、エレクトロポレーション法、リポフェクショ
ン法等を挙げることができる。悪性腫瘍細胞に本発明の
マキシザイム、安定化マキシザイム、マキシザイム発現
ベクターを導入すると、標的mRNAが特異的に切断さ
れることから、本発明のマキシザイム等は悪性腫瘍患者
における遺伝子治療や養子免疫療法に有用である。
The present invention also provides a malignant tumor cell into which the maxizyme, the stabilized maxizyme or the maxizyme expression vector of the present invention has been introduced, or the target m that uses the maxizyme, the stabilized maxizyme or the maxizyme expression vector of the present invention.
The present invention relates to a method for specifically cleaving RNA, and a method for treating a malignant tumor, which comprises introducing the maxizyme, the stabilized maxizyme, or the maxizyme expression vector of the present invention into malignant tumor cells of a malignant tumor patient. Examples of the method for introducing the maxizyme, the stabilized maxizyme, or the maxizyme expression vector of the present invention into malignant tumor cells include a transformation method using calcium phosphate precipitation, a microinjection method, an electroporation method, a lipofection method and the like. When the maxizyme, the stabilized maxizyme, or the maxizyme expression vector of the present invention is introduced into a malignant tumor cell, the target mRNA is specifically cleaved, so that the maxizyme of the present invention is useful for gene therapy or adoptive immunotherapy in patients with malignant tumor. Is.

【0024】本発明の悪性腫瘍治療薬としては、本発明
のマキシザイム、安定化マキシザイム、マキシザイム発
現ベクターを有効成分とし、必要に応じて薬学的に又は
生理的に許容しうる担体、賦形剤又は希釈剤を含有する
ものであれば特に制限されるものではなく、急性前骨髄
球性白血病、慢性骨髄性白血病、急性骨髄性白血病、小
児急性リンパ性白血病等の白血病や、悪性リンパ種など
の悪性腫瘍の発症に関与する融合遺伝子を切断すること
から、上記悪性腫瘍に対する特異的な治療法に好適に使
用することができる。本発明の悪性腫瘍治療薬は、経
口、静脈内、腹腔内、鼻腔内、皮内、皮下、筋肉内等種
々の形態で投与することができる。また、投与すべき有
効量は、悪性腫瘍治療薬の種類・組成、投与方法、患者
の年齢や体重等を考慮して適宜決定することができ、こ
れらを1日当たり1〜数回投与することが好ましい。ま
た、静脈等の注射により投与する場合には、本発明の悪
性腫瘍治療薬を水に溶解させて調製されるが、必要に応
じて生理食塩水あるいはブドウ糖溶液等に溶解させても
よく、また緩衝剤や保存剤を添加してもよい。またこれ
らの製剤は、治療上価値のある他の成分を含有していて
もよい。
The therapeutic agent for malignant tumor of the present invention comprises the maxizyme, the stabilized maxizyme or the maxizyme expression vector of the present invention as an active ingredient, and if necessary, a pharmaceutically or physiologically acceptable carrier, excipient or There is no particular limitation as long as it contains a diluent, and leukemias such as acute promyelocytic leukemia, chronic myelogenous leukemia, acute myelogenous leukemia, childhood acute lymphocytic leukemia, and malignant lymphomas and other malignant lymphomas. Since the fusion gene involved in tumor development is cleaved, it can be preferably used for a specific therapeutic method for the above malignant tumor. The therapeutic agent for malignant tumor of the present invention can be administered in various forms such as oral, intravenous, intraperitoneal, intranasal, intradermal, subcutaneous and intramuscular. The effective dose to be administered can be appropriately determined in consideration of the type / composition of a therapeutic agent for malignant tumor, administration method, age and weight of patient, etc., and these can be administered once to several times a day. preferable. When administered by injection such as a vein, the therapeutic agent for malignant tumor of the present invention is prepared by dissolving it in water, but it may be dissolved in physiological saline or glucose solution, etc., if necessary. A buffering agent or a preservative may be added. These formulations may also contain other therapeutically valuable ingredients.

【0025】[0025]

【実施例】以下に、実施例を挙げてこの発明を更に具体
的に説明するが、この発明の範囲はこれらの例示に限定
されるものではない。 実施例1(マキシザイムのデザインと作製) 最近の研究により、PML/RARα融合蛋白質による
転写抑制のメカニズムが、APLの分子病因論と、オー
ルトランスレチノイン酸(RA)によるAPLでの異な
る反応により明らかにされている(Nature 391, 811-81
4, 1998、Nature 391, 815-818, 1998)。さらに、PM
L/RARαの変異は、APL患者でのRA耐性の発達
による1つのメカニズムではないかと考えられている
(Blood 92, 374-382, 1998)。したがって、PML/
RARαのターゲッティングは、RA耐性の場合を含む
APL患者の治療において役立つと考えられる。上記P
ML/RARαはPML領域における切断点の違いか
ら、今までに2つのアイソフォームが明らかとなってい
る。そこで、PML/RARαの2つのアイソフォーム
に対して、2つのRNA分子(MzLとMzR)による
ヘテロダイマーとして構成されているいくつかのマキシ
ザイムをデザインした。かかるマキシザイムは、図1に
示されるエフェクター(sequence of interest)がセン
サーアームによって認識されることから(Mol. Cell 2,
617-627, 1998)、かかるエフェクターとの相互作用に
よって活性化されるヘテロ二量体RNAモチーフに基づ
きデザインした。
The present invention will be described in more detail below with reference to examples, but the scope of the present invention is not limited to these examples. Example 1 (Design and production of maxizyme) Recent studies have revealed the mechanism of transcriptional repression by PML / RARα fusion protein due to the molecular etiology of APL and different reactions in APL by all-trans retinoic acid (RA). (Nature 391, 811-81
4, 1998, Nature 391, 815-818, 1998). Furthermore, PM
Mutation of L / RARα is suspected to be one of the mechanisms responsible for the development of RA resistance in APL patients (Blood 92, 374-382, 1998). Therefore, PML /
Targeting RARα may be useful in the treatment of APL patients, including the case of RA resistance. Above P
Two isoforms of ML / RARα have been clarified so far from the difference in the breakpoints in the PML region. Therefore, we designed several maxizymes that are constructed as heterodimers of two RNA molecules (MzL and MzR) for the two isoforms of PML / RARα. Such a maxizyme has the effect that the sequencer of interest shown in FIG. 1 is recognized by the sensor arm (Mol. Cell 2,
617-627, 1998), and designed based on a heterodimeric RNA motif that is activated by interaction with such effectors.

【0026】上記デザインしたマキシザイムの全ての2
次構造はmFold version 3.1(http://bioinfo.math.rp
i.edu/~mfold/rna/form1.cgi)によって予測した(J. M
ol. Biol. 288, 911-940, 1999)。RARαのヌクレオ
チド配列における476〜478番目のAUCは、PM
L/RARα融合点から71塩基下流に位置し、この3
つの塩基を含む16のヌクレオチド配列は、前記のよう
に、ヒトのどの配列にも相同性を有しないことから切断
部位として選択し(Nature 330, 444-450, 1987)、図
1中のP及びQで示した非保存塩基を適切な塩基に置換
し、不活性型マキシザイムを安定化させた。なお、図1
中の枠で囲んだヌクレオチドは切断活性に必要な保存配
列を示し、また、Y及びZは標的mRNA配列に対して
相補的であることを意味している。
All of the maxizymes designed above
The following structure is mFold version 3.1 (http: //bioinfo.math.rp
i.edu/~mfold/rna/form1.cgi) (J. M
ol. Biol. 288, 911-940, 1999). 476 to 478th AUC in the nucleotide sequence of RARα is PM
It is located 71 bases downstream from the L / RARα fusion point.
As described above, the 16 nucleotide sequence containing one base was selected as a cleavage site because it has no homology to any human sequence (Nature 330, 444-450, 1987), and P and P in FIG. The non-conserved base indicated by Q was replaced with an appropriate base to stabilize the inactive maxizyme. Note that FIG.
The inner boxed nucleotides represent the conserved sequences required for cleavage activity, and Y and Z are meant to be complementary to the target mRNA sequence.

【0027】上記デザインしたマキシザイムの切断活性
及び特異性をセルフリー系により調べた。セルフリー系
での切断反応は、10μlのリアクションバッファー
[50mMのTris−HCl(pH7.5)、1mM
のEDTA、10mMのMgCl2、5ng/μlの基
質(センサーアームが認識することができるエフェクタ
ー部位を有するPML/RARα RNA、センサーア
ームが認識することができるエフェクター部位を有しな
いPML/RARα RNA、又はRARα RNA)、
及びマキシザイム(基質/マキシザイム=1/1、1/
2、1/4、1/8、又は1/16)を含む溶液]中で
37℃にて行った。その後、8μlのストップバッファ
ー(US Biochemical Co, Cleveland, OH社製)を加える
ことにより反応を停止させ、6%ポリアクリルアミド/
7M尿素ゲルで分析した。この結果、ほとんどのマキシ
ザイムはエフェクターが存在しないPML/RARα
RNAも切断しているのが確認できた。このことは、切
断活性の特異性が不活性型マキシザイムの安定性に依存
していることを示唆している。
Cleavage activity and specificity of the maxizyme designed above was examined by a cell-free system. Cleavage reaction in the cell-free system was carried out using 10 μl of reaction buffer [50 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM
EDTA, 10 mM MgCl 2 , 5 ng / μl substrate (PML / RARα RNA having an effector site recognizable by the sensor arm, PML / RARα RNA having no effector site recognizable by the sensor arm, or RARα RNA),
And maxizyme (substrate / maxizyme = 1/1, 1 /
Solution containing 2, 1/4, 1/8, or 1/16)] at 37 ° C. Then, the reaction was stopped by adding 8 μl of stop buffer (US Biochemical Co, Cleveland, OH) to obtain 6% polyacrylamide /
Analyzed on 7M urea gel. As a result, most maxizymes have PML / RARα without effectors.
It was confirmed that RNA was also cleaved. This suggests that the specificity of the cleavage activity depends on the stability of the inactive maxizyme.

【0028】図1の活性型の構造は、エフェクター“se
quence of interest”分子によって安定化し、エフェク
ター“sequence of interest“を有しない場合、MzL
及びMzRはMg2+結合ポケットを形成することができ
ないので不活性型をとる。また、PML/RARαに対
してデザインされたマキシザイムにおける切断活性は、
PML/RARαの融合部位から活性型におけるセンサ
ーアームの分岐点が離れるにつれ減少することがわかっ
た。以上のことから、Mg2+結合ポケット周囲の配列を
変化させ、不活性型において安定性を有し、かつPML
/RARαの融合部位がセンサーアームの分岐点の近く
に位置するように再度マキシザイムをデザインした(表
1及び図2〜15)。
The active structure of FIG. 1 has the effector "se".
quence of interest ”molecule, MzL when it has no effector“ sequence of interest ”
And MzR are inactive because they are unable to form Mg 2+ binding pockets. In addition, the cleavage activity of the maxizyme designed against PML / RARα is
It was found that the distance from the PML / RARα fusion site to the branch point of the sensor arm in the active form decreased. From the above, the arrangement around the Mg 2+ binding pocket is changed, the stability is maintained in the inactive type, and the PML
The maxizyme was redesigned so that the / RARα fusion site was located near the branch point of the sensor arm (Table 1 and Figures 2-15).

【0029】[0029]

【表1】 [Table 1]

【0030】デザインした14のマキシザイムは、文献
(Biochem. Biophys. Res. Commun.215, 431-437, 199
5)記載のインビトロ転写により作製した。マキシザイ
ム又はエフェクターの鋳型cDNAは、それらの3′末
端にバクテリオファージT7RNAポリメラーゼプロモ
ータ領域を含んでいる。各マキシザイムcDNAに、バ
クテリオファージT7RNAポリメラーゼプロモータに
相補的なDNAオリゴマーを同量混合し、各2mMのA
TP、GTP、CTP、及びUTP(Boehringer Mannh
eim, Indianapolis, IN社製)と、T7RNAポリメラ
ーゼ(New England Biolabs, Beverly, MI社製)とを含
む200μlの緩衝液で37℃,4時間インキュベーシ
ョンした。その後、RQ1 RNase-free DNAse(Promega, M
adison,WI社製)で37℃で15分間インキュベーショ
ンし、次いでDEPCで処理した水に再度懸濁した。基
質RARα RNAも、各0.5mMのATP、GTP
及びUTPと、0.1mMのCTPと、3.7MBq
[α−32P]CTPとを含む緩衝液中で、ヌクレオチド
位置464−737(EMBL/Genbank:X0
6538)(Nature 330, 444-450, 1987)等のRAR
αセグメントのcDNAを有するTAクローニングベク
ター(Invitrogen, Carlsbad, CA社製)をインビトロ転
写することにより作製した。
The 14 designed maxizymes are described in the literature (Biochem. Biophys. Res. Commun. 215, 431-437, 199).
5) Prepared by in vitro transcription as described. The maxizyme or effector template cDNA contains a bacteriophage T7 RNA polymerase promoter region at their 3'ends. Each maxizyme cDNA was mixed with an equal amount of a DNA oligomer complementary to the bacteriophage T7 RNA polymerase promoter, and 2 mM of A each was added.
TP, GTP, CTP, and UTP (Boehringer Mannh
eim, Indianapolis, IN) and T7 RNA polymerase (New England Biolabs, Beverly, MI) 200 μl of a buffer solution was incubated at 37 ° C. for 4 hours. Then, RQ1 RNase-free DNAse (Promega, M
adison, WI) at 37 ° C. for 15 minutes, and then resuspended in DEPC-treated water. Substrate RARα RNA is also 0.5 mM each of ATP and GTP
And UTP, 0.1 mM CTP, 3.7 MBq
Nucleotide positions 464-737 (EMBL / Genbank: X0 in a buffer containing [α- 32 P] CTP.
6538) (Nature 330, 444-450, 1987) and other RARs
It was prepared by in vitro transcription of a TA cloning vector (Invitrogen, Carlsbad, CA) having an α segment cDNA.

【0031】実施例2(各マキシザイムの切断活性及び
特異性) 次に、実施例1により新たにデザインした14のマキシ
ザイム(図2〜15)の切断活性及び特異性を実施例1
記載の方法と同様にセルフリー系で調べてみた。その結
果を表1に示す。この結果から、MzPRT50(図1
6)及びMzPRK55(図17)の構造が切断活性、
特異性共に高いことが確認できた。これらのマキシザイ
ムは、認識部位(活性型センサーアームの分岐点)がP
ML/RARα融合遺伝子の融合部位から2塩基と非常
に近く、不活性型における相補塩基対数がそれぞれ8
(MzPRT50)又は9(MzPRK55)であるこ
とから、高い特異的切断活性を有すると考えられた。こ
のMzPRT50やMzPRK55における活性型Mg
2+結合ポケット周囲RNA配列を基本構造とし、MzP
RT50+R(図18)やMzPRK55+R(図1
9)等かかる基本構造に数塩基配列を加えたり、変えた
りした類似構造のマキシザイムは、特異的切断活性を有
することもわかった。なお、各マキシザイムにおける活
性型Mg2+結合ポケットの1塩基は、Sheldon et alの
記載の方法により欠失させた(Nucleic Acids Res. 17,
5679-5685, 1989)。また、センサーアームや切断部位
アームを短くしたマキシザイム、あるいは延長したマキ
シザイムも同様に特異的切断活性を有することも確認で
きた。
Example 2 (Cleavage activity and specificity of each maxizyme) Next, the cleavage activity and specificity of 14 maxizymes newly designed in Example 1 (FIGS. 2 to 15) were examined in Example 1
The cell-free system was examined in the same manner as described. The results are shown in Table 1. From this result, MzPRT50 (Fig. 1
6) and the structure of MzPRK55 (FIG. 17) show cleavage activity,
It was confirmed that both the specificity was high. In these maxizymes, the recognition site (branch point of active sensor arm) is P
Very close to 2 bases from the fusion site of the ML / RARα fusion gene, and the number of complementary base pairs in the inactive form is 8 each.
Since it was (MzPRT50) or 9 (MzPRK55), it was considered to have a high specific cleavage activity. Active Mg in MzPRT50 and MzPRK55
The basic structure is the RNA sequence around the 2+ binding pocket, and MzP
RT50 + R (Fig. 18) and MzPRK55 + R (Fig. 1
It was also found that a maxizyme having a similar structure obtained by adding or changing several nucleotide sequences to such a basic structure such as 9) has specific cleavage activity. One base of the active Mg 2+ binding pocket in each maxizyme was deleted by the method described by Sheldon et al (Nucleic Acids Res. 17,
5679-5685, 1989). It was also confirmed that a maxizyme having a shortened sensor arm or a cleavage site arm, or an extended maxizyme also has a specific cleavage activity.

【0032】実施例3(エフェクターによる効果) 次に、実施例1と同様に、マキシザイムとして各種濃度
のMzPRT50を、各種基質[センサーアームに認識
されるmRNAが非存在(No)、PML/RARα、
又はRARα単独]に作用させ、特異的切断反応の効果
を調べてみた。結果を図20に示す。なお、図20中の
基質とマキシザイムの割合(Sub/Mz ratio)は、一定濃
度の基質に対するマキシザイムの濃度の割合を示す。こ
の結果、マキシザイムMzPRT50は、標的mRNA
におけるRARα RNAを特異的に切断するが、正常
型RARα単独及びエフェクターが存在しないPML/
RARαにおいては切断活性を有しないことがわかっ
た。MzPRK55についてもMzPRT50と同様
に、PML/RARαエフェクターが存在するときにの
みRARα RNAを特異的に切断していた。
Example 3 (Effect by Effector) Next, as in Example 1, various concentrations of MzPRT50 were used as maxizyme, various substrates [no mRNA recognized by the sensor arm (No), PML / RARα,
Or RARα alone] and examined the effect of the specific cleavage reaction. The results are shown in Fig. 20. The ratio (Sub / Mz ratio) between the substrate and the maxizyme in FIG. 20 indicates the ratio of the maxizyme concentration to the constant concentration of the substrate. As a result, maxizyme MzPRT50
Which specifically cleaves RARα RNA in, but lacks normal RARα alone and effectors
It was found that RARα has no cleavage activity. Similar to MzPRT50, MzPRK55 specifically cleaved RARα RNA only when the PML / RARα effector was present.

【0033】[0033]

【発明の効果】本発明のマキシザイムは、悪性腫瘍細胞
において特異的に発現する融合遺伝子のmRNAを選択
的に認識して切断することができることから、従来のマ
キシザイムに比べて特異性・切断活性において優れてい
る。したがって、本発明のマキシザイム、安定化マキシ
ザイム、マキシザイム発現ベクター等は、急性前骨髄球
性白血病、慢性骨髄性白血病、急性骨髄性白血病、小児
急性リンパ性白血病等の白血病や、悪性リンパ種などの
悪性腫瘍に対する治療薬として有用である。
EFFECTS OF THE INVENTION Since the maxizyme of the present invention can selectively recognize and cleave mRNA of the fusion gene specifically expressed in malignant tumor cells, it has a specificity / cleaving activity higher than that of conventional maxizymes. Are better. Therefore, the maxizyme, the stabilized maxizyme, the maxizyme expression vector, etc. of the present invention are leukemias such as acute promyelocytic leukemia, chronic myelogenous leukemia, acute myelogenous leukemia, childhood acute lymphocytic leukemia, and malignant lymphomas. It is useful as a therapeutic drug for tumors.

【0034】[0034]

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> KEIO UNIVERSITY <120> Novel maxizymes <130> 000000199 <140> <141> <160> 48 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT50L <400> 1 cuuguacuga agacgugccu ccccggcgcc 30 <210> 2 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT50R <400> 2 gggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 3 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55L <400> 3 cuuguacuga agacguuucc ccugggugau 30 <210> 4 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55R <400> 4 uggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 5 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:effector <400> 5 nnnnnnnnnn nnnnnnnnnn nnnnnnnn 28 <210> 6 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzL <400> 6 nnnnnncuga ngannnnnnn nnnnnnnnnn 30 <210> 7 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzR <400> 7 nnnnnnnnnn nnnnnnngaa annnnnnnn 29 <210> 8 <211> 16 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:RNA including cleavage site <400> 8 nnnnnnnnuh nnnnnn 16 <210> 9 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 9 cgccggggag gcagccauug agacccag 28 <210> 10 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT1L <400> 10 cuuguacuga ugagagcugc cuccccggcg 30 <210> 11 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT1R <400> 11 cugggucuca auggaucgaa augcggggu 29 <210> 12 <211> 16 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 12 accccgcauc uacaag 16 <210> 13 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT2L <400> 13 uguccucuga ugagagcugc cuccccggcg 30 <210> 14 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT2R <400> 14 cugggucuca auggaucgaa acagacaaa 29 <210> 15 <211> 16 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 15 uuugucuguc aggaca 16 <210> 16 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 16 cacccagggg aaagccauug agacccag 28 <210> 17 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1L <400> 17 cuuguacuga ugagagcuuu ccccugggug 30 <210> 18 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1R <400> 18 cugggucuca auggaucgaa augcggggu 29 <210> 19 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK2L <400> 19 uguccucuga ugagagcuuu ccccugggug 30 <210> 20 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK2R <400> 20 cugggucuca auggaucgaa acagacaaa 29 <210> 21 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 21 caucacccag gggaaagcca uugagacc 28 <210> 22 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-22L <400> 22 cuuguacuga agagaguccc cugggugaug 30 <210> 23 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-22R <400> 23 ggucucaaug gcuuuucgaa augcggggu 29 <210> 24 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 24 gcaucaccca ggggaaagcc auugagac 28 <210> 25 <211> 31 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-33L <400> 25 cuuguacuga ugaggagccc cugggugaug c 31 <210> 26 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-33R <400> 26 gucucaaugg cuuuaucgaa augcggggu 29 <210> 27 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 27 aucacccagg ggaaagccau ugagaccc 28 <210> 28 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-54L <400> 28 cuuguacuga agacgauucc ccugggugau 30 <210> 29 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK1-54R <400> 29 gggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 30 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK60L <400> 30 cuuguacuga agaaaucccc ugggugaugc 30 <210> 31 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK60R <400> 31 gucucaaugg cuuucuugaa augcggggu 29 <210> 32 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK61L <400> 32 cuuguacuga agaaagcccc ugggugaugc 30 <210> 33 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK61R <400> 33 gucucaaugg cuuucuugaa augcggggu 29 <210> 34 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 34 ggcgccgggg aggcagccau ugagaccc 28 <210> 35 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 35 ggggaggcag ccauugagac ccagagca 28 <210> 36 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT51L <400> 36 cuuguacuga ugagaauggc ugccucccc 29 <210> 37 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT51R <400> 37 ugcucugggu cucaucgaaa ugcggggu 28 <210> 38 <211> 31 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT52L <400> 38 cuuguacuga ggaagccgcc uccccggcgc c 31 <210> 39 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT52R <400> 39 gggucucaau ggcuuccuga aaugcggggu 30 <210> 40 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 40 uggcgccggg gaggcagcca uugagacc 28 <210> 41 <211> 32 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT53L <400> 41 cuuguacuga ggacagcccc uccccggcgc ca 32 <210> 42 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT53R <400> 42 ggucucaaug gcuguccuga aaugcggggu 30 <210> 43 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT50S.F.L <400> 43 nnnnnncuga agacgugccu ccccggcgcc 30 <210> 44 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRT50S.F.R <400> 44 gggucucaau ggcuucgaaa nnnnnnnn 28 <210> 45 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55S.F.L <400> 45 nnnnnncuga agacguuucc ccugggugau 30 <210> 46 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55S.F.R <400> 46 gggucucaau ggcuucgaaa nnnnnnnn 28 <210> 47 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55+GS.F.L <400> 47 nnnnnncuga agacguuucc ccugggugau 30 <210> 48 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:MzPRK55+GS.F.R <400> 48 gggucucaau ggcuucggaa annnnnnnn
29
[Sequence Listing] SEQUENCE LISTING <110> KEIO UNIVERSITY <120> Novel maxizymes <130> 000000199 <140><141><160> 48 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT50L <400> 1 cuuguacuga agacgugccu ccccggcgcc 30 <210> 2 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT50R <400> 2 gggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 3 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55L <400> 3 cuuguacuga agacguuucc ccugggugau 30 <210 > 4 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55R <400> 4 uggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 5 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: effector <400> 5 nnnnnnnnnn nnnnnnnnnn nnnnnnnn 28 <210> 6 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzL <400> 6 nnnnnncuga ngannnnnnn nnnnnnnnnn 30 <210> 7 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzR <400> 7 nnnnnnnnnn nnnnnnngaa annnnnnnnn 29 <210> 8 <211> 16 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: RNA including cleavage site <400> 8 nnnnnnnnuh nnnnnn 16 <210> 9 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 9 cgccggggag gcagccauug agacccag 28 <210> 10 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT1L <400> 10 cuuguacuga ugagagcugc cuccccggcg 30 <210> 11 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT1R <400> 11 cugggucuca auggaucgaa augcggggu 29 <210> 12 <211> 16 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 12 accccgcauc uacaag 16 <210> 13 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT2L <400> 13 uguccucuga ugagagcugc cuccccggcg 30 <210> 14 <211 > 29 <212> R NA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT2R <400> 14 cugggucuca auggaucgaa acagacaaa 29 <210> 15 <211> 16 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 15 uuugucuguc aggaca 16 <210> 16 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 16 cacccagggg aaagccauug agacccag 28 <210> 17 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1L <400> 17 cuuguacuga ugagagcuuu ccccugggug 30 <210> 18 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1R <400> 18 cugggucuca auggaucgaa augcggggu 29 <210> 19 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK2L <400> 19 uguccucuga ugagagcuuu ccccugggug 30 <210> 20 <211> 29 <212> RNA <213>> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK2R <400> 20 cugggucuca auggaucgaa acagacaaa 29 <210> 21 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 21 caucacccag gggaaagcca uugagacc 28 <210> 22 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-22L <400> 22 cuuguacuga agagaguccc cugggugaug 30 <210> 23 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-22R <400> 23 ggucucaaug gcuuuucgaa augcggggu 29 <210> 24 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 24 gcaucaccca ggggaaagcc auugagac 28 <210> 25 <211> 31 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-33L <400> 25 cuuguacuga ugaggagccc cugggugaug c 31 <210> 26 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-33R <400> 26 gucucaaugg cuuuaucgaa augcggggu 29 <210> 27 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400 > 27 aucacccagg ggaaagccau ugagaccc 28 <210> 28 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-54L <400> 28 cuuguacuga agacgauucc ccugggugau 30 <210> 29 <211> 28 <212> RNA <213> Ar tificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK1-54R <400> 29 gggucucaau ggcuucgaaa ugcggggu 28 <210> 30 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK60L <400> 30 cuuguacuga agaaaucccc ugggugaugc 30 <210> 31 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK60R <400> 31 gucucaaugg cuuucuugaa augcggggu 29 <210 > 32 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK61L <400> 32 cuuguacuga agaaagcccc ugggugaugc 30 <210> 33 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK61R <400> 33 gucucaaugg cuuucuugaa augcggggu 29 <210> 34 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 34 ggcgccgggg aggcagccau ugagaccc 28 <210> 35 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 35 ggggaggcag ccauugagac ccagagca 28 <210> 36 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Ar tificial Sequence: MzPRT51L <400> 36 cuuguacuga ugagaauggc ugccucccc 29 <210> 37 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT51R <400> 37 ugcucugggu cucaucgaaa ugcggggu 28 <210> 38 <211> 31 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT52L <400> 38 cuuguacuga ggaagccgcc uccccggcgc c 31 <210> 39 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT52R <400> 39 gggucucaau ggcuuccuga aaugcggggu 30 <210> 40 <211> 28 <212> RNA <213> Homo sapiens <400> 40 uggcgccggg gaggcagcca uugagacc 28 <210> 41 <211> 32 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT53L <400> 41 cuuguacuga ggacagcccc uccccggcgc ca 32 <210> 42 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT53R <400> 42 ggucucaaug gcuguccuga aaugcggggu 30 <210> 43 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT50S.FL <400> 43 nnnnnncuga agacgugccu ccccggcgcc 30 <210> 44 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRT50S.FR <400> 44 gggucucaau ggcuucgaaa nnnnnnnn 28 <210> 45 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55S.FL <400> 45 nnnnnncuga agacguuucc ccugggugau 30 <210> 46 <211> 28 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55S.FR <400> 46 gggucucaau ggcuucgaaa nnnnnnnn 28 <210> 47 <211> 30 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55 + GS.FL <400> 47 nnnnnncuga agacguuucc ccugggugau 30 <210> 48 <211> 29 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220><223> Description of Artificial Sequence: MzPRK55 + GS.FR <400> 48 gggucucaau ggcuucggagaa nnnnnnnn
29

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】デザインしたマキシザイムの基本構造を示す図
である。
FIG. 1 is a diagram showing the basic structure of a designed maxizyme.

【図2】マキシザイムMzPRT1の基本構造を示す図
である。
FIG. 2 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT1.

【図3】マキシザイムMzPRT2の基本構造を示す図
である。
FIG. 3 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT2.

【図4】マキシザイムMzPRK1の基本構造を示す図
である。
FIG. 4 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK1.

【図5】マキシザイムMzPRK2の基本構造を示す図
である。
FIG. 5 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK2.

【図6】マキシザイムMzPRK1−22の基本構造を
示す図である。
FIG. 6 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK1-22.

【図7】マキシザイムMzPRK1−33の基本構造を
示す図である。
FIG. 7 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK1-33.

【図8】マキシザイムMzPRK1−54の基本構造を
示す図である。
FIG. 8 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK1-54.

【図9】マキシザイムMzPRK55の基本構造を示す
図である。
FIG. 9 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK55.

【図10】マキシザイムMzPRK60の基本構造を示
す図である。
FIG. 10 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK60.

【図11】マキシザイムMzPRK61の基本構造を示
す図である。
FIG. 11 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRK61.

【図12】マキシザイムMzPRT50の基本構造を示
す図である。
FIG. 12 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT50.

【図13】マキシザイムMzPRT51の基本構造を示
す図である。
FIG. 13 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT51.

【図14】マキシザイムMzPRT52の基本構造を示
す図である。
FIG. 14 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT52.

【図15】マキシザイムMzPRT53の基本構造を示
す図である。
FIG. 15 is a diagram showing a basic structure of maxizyme MzPRT53.

【図16】マキシザイムMzPRT50のスタンダード
フォームの基本構造を示す図である。
FIG. 16 is a diagram showing a basic structure of a standard form of maxizyme MzPRT50.

【図17】マキシザイムMzPRK55のスタンダード
フォームの基本構造を示す図である。
FIG. 17 is a view showing a basic structure of a standard form of maxizyme MzPRK55.

【図18】マキシザイムMzPRT50+Gのスタンダ
ードフォームの基本構造を示す図である。
FIG. 18 is a diagram showing a basic structure of a standard form of maxizyme MzPRT50 + G.

【図19】マキシザイムMzPRK55+Gのスタンダ
ードフォームの基本構造を示す図である。
FIG. 19 is a diagram showing a basic structure of a standard form of maxizyme MzPRK55 + G.

【図20】本発明のMzPRT50を用いた場合の、エ
フェクターの存在下又は非存在下での切断活性の結果を
示す図である。
FIG. 20 is a diagram showing the results of cleavage activity in the presence or absence of effectors when using MzPRT50 of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61P 35/02 C12N 9/00 4C086 C12N 5/10 C12Q 1/25 4C087 9/00 C12N 15/00 ZNAA C12Q 1/25 5/00 B (72)発明者 池田 康夫 東京都新宿区信濃町35慶應義塾大学医学部 内 (72)発明者 松下 弘道 Memorial Sloan Kett ering Cancer Cente r,#5A210 East 68th St. New York,NY10021 USA Fターム(参考) 4B024 AA01 BA07 CA04 CA05 CA12 DA02 EA03 EA04 FA02 GA11 HA17 4B050 CC01 CC03 DD11 LL01 4B063 QA01 QQ21 QR35 QR55 QS02 QS31 4B065 AA94X AB01 BA02 CA27 CA44 4C084 AA13 ZB26 ZB27 4C086 AA01 AA02 AA03 EA16 MA01 MA04 NA14 ZB26 ZB27 4C087 AA01 BC83 CA12 ZB26 ZB27─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 7 Identification code FI theme code (reference) A61P 35/02 C12N 9/00 4C086 C12N 5/10 C12Q 1/25 4C087 9/00 C12N 15/00 ZNAA C12Q 1/25 5/00 B (72) Inventor Yasuo Ikeda 35 Shinano-cho, Shinjuku-ku, Tokyo, Keio University School of Medicine (72) Inventor Hiromichi Matsushita Memorial Sloan Ketting Center Center, # 5A210 East 68th St. New York NY10021 USA F-term (reference) 4B024 AA01 BA07 CA04 CA05 CA12 DA02 EA03 EA04 FA02 GA11 HA17 4B050 CC01 CC03 DD11 LL01 4B063 QA01 QQ21 QR35 QR55 QS02 QS31 4B065 AA94X AB01 BA02 CA27 CA44 4C084 AA13 ZB26 ZB27 4C086 AA01 AA02 AA03 EA16 MA01 MA04 NA14 ZB26 ZB27 4C087 AA 01 BC83 CA12 ZB26 ZB27

Claims (16)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 悪性腫瘍細胞において特異的に発現する
融合遺伝子のmRNA中に存在し、ヒトの他のmRNA
中の塩基配列と相同性を有さない塩基配列中のNUX
(N=A、C、G又はU、X=A、C又はU)を切断部
位として認識する切断部位アーム配列と、活性型におけ
るMg2+結合ポケットを形成するMg2+結合ポケット周
囲配列と、前記融合遺伝子のmRNAの融合部分を認識
するセンサーアーム配列とを備えたヘテロダイマーから
なり、活性型における左右センサーアーム配列の分岐点
が前記融合遺伝子のmRNAの融合部位の近傍に位置す
る種々の候補マキシザイムを作製し、その特異性及び切
断活性を測定・評価することを特徴とする悪性腫瘍細胞
特異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を
有するマキシザイムのスクリーニング方法。
1. Another human mRNA which is present in the mRNA of the fusion gene specifically expressed in malignant tumor cells
In the nucleotide sequence having no homology with the nucleotide sequence in
A cleavage site arm sequence that recognizes (N = A, C, G or U, X = A, C or U) as a cleavage site, and a sequence surrounding the Mg 2+ binding pocket that forms the Mg 2+ binding pocket in the active form. , A heterodimer having a sensor arm sequence that recognizes the fusion portion of the mRNA of the fusion gene, and the branch points of the left and right sensor arm sequences in the active form are located near the fusion site of the mRNA of the fusion gene. A method for screening a maxizyme having a specific cleaving activity for mRNA of a malignant tumor cell-specific fusion gene, which comprises producing a candidate maxizyme and measuring / evaluating its specificity and cleaving activity.
【請求項2】 悪性腫瘍細胞が、白血病細胞であること
を特徴とする請求項1記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺
伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有するマキシ
ザイムのスクリーニング方法。
2. The method for screening a maxizyme having a specific cleavage activity for mRNA of a fusion gene specific for a malignant tumor cell according to claim 1, wherein the malignant tumor cell is a leukemia cell.
【請求項3】 白血病細胞が、急性前骨髄球性白血病細
胞であることを特徴とする請求項2記載の悪性腫瘍細胞
特異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を
有するマキシザイムのスクリーニング方法。
3. A method for screening a maxizyme having a specific cleavage activity for mRNA of a malignant tumor cell-specific fusion gene according to claim 2, wherein the leukemia cell is an acute promyelocytic leukemia cell. .
【請求項4】 急性前骨髄球性白血病細胞において特異
的に発現する融合遺伝子が、PML/RARα融合遺伝
子であることを特徴とする請求項3記載の悪性腫瘍細胞
特異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を
有するマキシザイムのスクリーニング方法。
4. The malignant tumor cell-specific fusion gene mRNA according to claim 3, wherein the fusion gene specifically expressed in acute promyelocytic leukemia cells is a PML / RARα fusion gene. Method for screening maxizyme having specific cleavage activity with specificity.
【請求項5】 候補マキシザイムが、活性型における左
右センサーアーム配列の分岐点が前記融合遺伝子のmR
NAの融合部位から2塩基以内に位置することを特徴と
する請求項1〜4のいずれか記載の悪性腫瘍細胞特異的
融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活性を有する
マキシザイムのスクリーニング方法。
5. The candidate maxizyme has an active form in which the bifurcation point of the left and right sensor arm sequences is mR of the fusion gene.
The method for screening a maxizyme having specific cleavage activity for mRNA of a malignant tumor cell-specific fusion gene according to any one of claims 1 to 4, which is located within 2 bases from the fusion site of NA.
【請求項6】 候補マキシザイムが、配列CUGANG
A(N=A、C、G又はU)と配列GAAAを含むMg
2+結合ポケット周囲配列を有することを特徴とする請求
項1〜5のいずれか記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝
子のmRNAに対して特異的切断活性を有するマキシザ
イムのスクリーニング方法。
6. The candidate maxizyme has the sequence CUGANG.
Mg containing A (N = A, C, G or U) and the sequence GAAA
A screening method for a maxizyme having a specific cleavage activity for mRNA of a malignant tumor cell-specific fusion gene according to any one of claims 1 to 5, which has a sequence around a 2+ binding pocket.
【請求項7】 候補マキシザイムが、不活性型において
安定な構造を有することを特徴とする請求項1〜6のい
ずれか記載の悪性腫瘍細胞特異的融合遺伝子のmRNA
に対して特異的切断活性を有するマキシザイムのスクリ
ーニング方法。
7. The malignant tumor cell-specific fusion gene mRNA according to claim 1, wherein the candidate maxizyme has a stable structure in an inactive form.
Method for screening maxizyme having specific cleavage activity against
【請求項8】 請求項1〜7のいずれか記載の悪性腫瘍
細胞特異的融合遺伝子のmRNAに対して特異的切断活
性を有するマキシザイムのスクリーニング方法により得
られるマキシザイム。
8. A maxizyme obtained by the method for screening a maxizyme having a specific cleavage activity for mRNA of the malignant tumor cell-specific fusion gene according to any one of claims 1 to 7.
【請求項9】 以下の(a)又は(b)と、(c)又は(d)と
のヘテロダイマーからなることを特徴とするマキシザイ
ム。 (a) 配列番号1に示される塩基配列からなるRNA (b) 配列番号1に示される塩基配列において、1若し
くは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配
列からなり、かつ(c)又は(d)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNA (c) 配列番号2に示される塩基配列からなるRNA (d) 配列番号2に示される塩基配列において、1若し
くは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配
列からなり、かつ(a)又は(b)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNA
9. A maxizyme comprising a heterodimer of the following (a) or (b) and (c) or (d). (a) RNA consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 (b) In the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, consisting of a nucleotide sequence in which one or several bases have been deleted, substituted or added, and (c ) Or (d) the heterodimer has enzymatic activity RNA (c) consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 (d) The base sequence shown in SEQ ID NO: 2 lacks one or several bases RNA consisting of a deleted, substituted or added nucleotide sequence, and the heterodimer with (a) or (b) has enzymatic activity
【請求項10】 以下の(a)又は(b)と、(c)又は(d)
とからなることを特徴とするマキシザイム。 (a) 配列番号3に示される塩基配列からなるRNA (b) 配列番号3に示される塩基配列において、1若し
くは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配
列からなり、かつ(c)又は(d)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNA (c) 配列番号4に示される塩基配列からなるRNA (d) 配列番号4に示される塩基配列において、1若し
くは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加された塩基配
列からなり、かつ(a)又は(b)とのヘテロダイマーが酵
素活性を有するRNA
10. The following (a) or (b) and (c) or (d)
A maxizyme characterized by comprising and. (a) RNA consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3 (b) In the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3, consisting of a nucleotide sequence in which one or several bases have been deleted, substituted or added, and (c ) Or (d) a heterodimer having an enzymatic activity RNA (c) consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 (d) The base sequence shown in SEQ ID NO: 4 lacks one or several bases RNA consisting of a deleted, substituted or added nucleotide sequence, and the heterodimer with (a) or (b) has enzymatic activity
【請求項11】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイムに、ポリA及び/又はキャップ構造を付加する
ことを特徴とする安定化マキシザイム。
11. A stabilized maxizyme which is characterized in that polyA and / or a cap structure is added to the maxizyme according to any one of claims 8 to 10.
【請求項12】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイムを発現することができるベクター。
12. A vector capable of expressing the maxizyme according to claim 8.
【請求項13】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又は
請求項12記載のベクターが導入された悪性腫瘍細胞。
13. A malignant tumor cell introduced with the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12.
【請求項14】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又は
請求項12記載のベクターを用いることを特徴とする悪
性腫瘍細胞において発現する融合遺伝子のmRNAの特
異的切断方法。
14. A fusion gene mRNA expressed in a malignant tumor cell, which comprises using the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11, or the vector according to claim 12. Specific cleavage method.
【請求項15】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又は
請求項12記載のベクターを悪性腫瘍患者の悪性腫瘍細
胞に導入することを特徴とする悪性腫瘍の治療方法。
15. A malignant tumor characterized by introducing the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11 or the vector according to claim 12 into malignant tumor cells of a malignant tumor patient. How to treat a tumor.
【請求項16】 請求項8〜10のいずれか記載のマキ
シザイム、請求項11記載の安定化マキシザイム、又は
請求項12記載のベクターを有効成分として含有するこ
とを特徴とする悪性腫瘍治療薬。
16. A therapeutic agent for malignant tumor, comprising the maxizyme according to any one of claims 8 to 10, the stabilized maxizyme according to claim 11 or the vector according to claim 12 as an active ingredient.
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