JP2003043044A - Immunoassay method for antibody by antibody capturing method - Google Patents

Immunoassay method for antibody by antibody capturing method

Info

Publication number
JP2003043044A
JP2003043044A JP2001229713A JP2001229713A JP2003043044A JP 2003043044 A JP2003043044 A JP 2003043044A JP 2001229713 A JP2001229713 A JP 2001229713A JP 2001229713 A JP2001229713 A JP 2001229713A JP 2003043044 A JP2003043044 A JP 2003043044A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
antibody
antigen
tag
sample
measuring
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2001229713A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP4619580B2 (en
Inventor
Hideharu Shimizu
英晴 清水
Kunio Kamata
公仁夫 鎌田
Toshinori Sato
俊則 佐藤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Denka Seiken Co Ltd
Original Assignee
Denka Seiken Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Denka Seiken Co Ltd filed Critical Denka Seiken Co Ltd
Priority to JP2001229713A priority Critical patent/JP4619580B2/en
Publication of JP2003043044A publication Critical patent/JP2003043044A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4619580B2 publication Critical patent/JP4619580B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide an immunoassay method for antibody by an antibody capturing method wherein an antigen to which a tag is bonded and the antibody with reference to a labeled tag are used and to provide an antibody measuring reagent. SOLUTION: In the immunoassay method for antibody with reference to the antigen in a specimen by the antibody capturing method, at least the antigen to which the tag is bonded and the labeled antibody with reference to the tag are used. In the antibody measuring reagent in the specimen, at least the antigen to which the tag is bonded and the antibody with reference to the labeled tag are contained.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明はタグを結合した抗原
と標識したタグに対する抗体を使用する、抗体捕捉法に
よる抗体の免疫学的測定方法および抗体測定試薬に関す
る。抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法および抗
体測定試薬は感染症の診断に使用することができる。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for immunologically measuring an antibody by an antibody capturing method and an antibody measuring reagent, which uses an antigen bound to a tag and an antibody against the labeled tag. The immunological measurement method of an antibody by the antibody capture method and the antibody measurement reagent can be used for diagnosing an infectious disease.

【0002】[0002]

【従来の技術】免疫学的測定方法は、感染症の診断等に
有用な手法の一つである。感染症の診断方法として、血
清等の検体中に存在する病原体に対する抗体を測定する
のが重要な手段の一つとなっている。抗体には5つのサ
ブクラスが存在し、感染症診断の場合、IgG、IgM、IgA
を測定する場合が多い。免疫学的測定方法を用いて検体
中のIgGを測定する際には、抗原をプレート上に固相
し、そこに検体を添加し、抗原にIgGを添加した後に、
ヒトIgGを認識し、かつ酵素で標識されている二次抗体
を用いて結合したIgGを検出する、いわゆる抗原固相法
を用いるのが一般的である。一方、IgGと比較して含量
が少ないIgMを測定する際に抗原固相法を用いると、固
相された抗原への結合を巡ってIgGとIgMが競合すること
になり、感度が低下するという問題が生ずる。感染症に
おいて、急性感染症と慢性感染症で血中のIgMとIgGの量
が異なることから、IgMとIgGをクラス別に測定する必要
があるが、このように抗原固相法ではIgMを高感度で測
定できないという問題があった。また、抗原固相法で
は、リューマチ因子等を誤って検出してしまう場合があ
り、特異性の低下にもつながる可能性がある。
2. Description of the Related Art An immunological measurement method is one of the useful methods for diagnosing infectious diseases and the like. As an diagnostic method for infectious diseases, measuring an antibody against a pathogen present in a sample such as serum is one of important means. There are 5 subclasses of antibody, and IgG, IgM, IgA for the diagnosis of infectious diseases.
Is often measured. When measuring IgG in a sample using an immunological measurement method, the antigen is solid-phased on a plate, the sample is added thereto, and after adding IgG to the antigen,
It is general to use a so-called antigen solid phase method, which recognizes human IgG and detects bound IgG using a secondary antibody labeled with an enzyme. On the other hand, if the solid phase antigen method is used to measure IgM, which has a lower content compared to IgG, IgG and IgM compete for binding to the solid-phased antigen, resulting in decreased sensitivity. A problem arises. Regarding infectious diseases, the amount of IgM and IgG in blood is different between acute and chronic infectious diseases, so it is necessary to measure IgM and IgG by class. There was a problem that it could not be measured in. Further, in the antigen solid phase method, a rheumatoid factor or the like may be erroneously detected, which may lead to a decrease in specificity.

【0003】また、プレート上に抗原を直接固相する代
わりに、該抗原に対する抗体をプレートに固相し、抗原
を添加後、検体を添加し、さらにヒトIgMを認識し、か
つ酵素で標識されている二次抗体を用いて結合したIgM
を検出する方法も一般的に行われている。しかし、この
方法においてもIgMを測定する際のIgGとIgMの抗原への
結合を巡っての競合による感度低下の問題、リューマチ
因子に起因する誤検出の問題は回避できず、さらに抗原
ごとに異なる抗体をプレートに固相しなければならず、
コスト高を招くという問題もあった。
Further, instead of directly immobilizing the antigen on the plate, an antibody against the antigen is immobilized on the plate, the antigen is added, and then a sample is added, which further recognizes human IgM and is labeled with an enzyme. IgM bound using a secondary antibody
The method of detecting is also commonly used. However, even in this method, the problem of reduced sensitivity due to competition over the binding of IgG and IgM to the antigen when measuring IgM, the problem of false detection due to the rheumatoid factor cannot be avoided, and furthermore, it differs for each antigen. The antibody must be immobilized on the plate,
There was also the problem of high costs.

【0004】これらの問題を解決するため、あらかじめ
検体をIgG吸収剤で処理するという操作を加えることも
あるが、完全な効果を得ることは難しい。そこで、抗体
捕捉法によるELISA(enzyme-linked immunosorbent assa
y)が実施されている。
[0004] In order to solve these problems, an operation of treating the sample with an IgG absorbent may be added in advance, but it is difficult to obtain a complete effect. Therefore, ELISA (enzyme-linked immunosorbent assa)
y) is being implemented.

【0005】抗体捕捉法ELISAでIgM抗体を測定する場
合、まず、抗ヒトIgM抗体を固相したプレートを用意
し、検体を添加する。検体中のIgMは固相した抗ヒトIgM
抗体に結合し捕捉される。次に、抗原を添加すると、捕
捉されたIgMのうち該抗原を特異的に認識するIgMが抗原
と結合する。最後に、この抗原に結合し、かつ酵素で標
識されている二次抗体を用いて捕捉されたIgMを検出す
る。この方法により、IgGとの競合反応やリューマチ因
子等による非特異反応を避けることができる。酵素の代
わりに放射性同位元素(RI)等の他の種類の標識物質を
用いる方法も実施されているが、基本的な原理は同じで
ある。
Antibody-measuring method When measuring IgM antibody by ELISA, first, a plate on which anti-human IgM antibody is solid-phased is prepared and a sample is added. IgM in the specimen is solid human anti-human IgM
It binds to the antibody and is captured. Next, when an antigen is added, IgM that specifically recognizes the antigen among the captured IgM binds to the antigen. Finally, the captured IgM is detected using a secondary antibody that binds to this antigen and is labeled with an enzyme. By this method, competitive reaction with IgG and nonspecific reaction due to rheumatoid factor and the like can be avoided. Although other types of labeling substances such as radioisotopes (RI) are used instead of enzymes, the basic principle is the same.

【0006】最近の遺伝子組換え技術の進歩の結果、免
疫学的測定方法に用いる抗原を遺伝子組換え法により作
製する場合が多くなってきた。病原体を培養し、そこか
ら抗原を精製する方法では、作業者に感染の危険性があ
ったり、コストが高いという問題点があった。抗原をコ
ードする遺伝子を病原体より抽出し、発現ベクター遺伝
子に組み込み、大腸菌や各種動物細胞等に導入し、その
体内で発現させることにより、これらの問題を解決でき
る。さらに抗原の一部分のみを発現させたり、反応性を
増すため他の抗原との融合蛋白質として発現させたり、
アフィニティー精製等に利用するためにGST(Glutathio
ne S-Transferase)等の蛋白質との融合蛋白質として
発現させるなど、様々な方法が実施されている。
As a result of recent advances in gene recombination techniques, the number of cases in which antigens used in immunological measurement methods are produced by gene recombination methods has increased. The method of culturing a pathogen and purifying the antigen from the pathogen has the problems that the worker is at risk of infection and the cost is high. These problems can be solved by extracting a gene encoding an antigen from a pathogen, incorporating it into an expression vector gene, introducing it into Escherichia coli or various animal cells, and expressing it in the body. Furthermore, expressing only a part of the antigen, or expressing it as a fusion protein with other antigens to increase reactivity,
GST (Glutathiol) for use in affinity purification, etc.
neS-Transferase) and various other methods such as expression as a fusion protein with a protein.

【0007】これらの融合蛋白質の免疫学的測定への利
用も試みられている。特開平8-62217号公報には、前述
の抗原に対する抗体をプレートに固相する代わりに、あ
らかじめ抗原とGST等のキャリア蛋白質との融合蛋白質
を作製しておき、プレートに該キャリア蛋白質に対する
抗体を固相しておく、免疫学的測定法が記載されてい
る。キャリア蛋白質に対する抗体とキャリア蛋白質の結
合により、融合蛋白質がプレート上に捕捉され、ここに
検体および標識二次抗体を添加することにより、抗原に
対する抗体を測定することができる。この方法により、
抗原ごとに異なる抗体を作製することなく、免疫学的測
定を実施することが可能になる。しかし、該方法は抗体
捕捉法ではないため、IgMを測定する際のIgGとIgMの抗
原への結合を巡っての競合による感度低下の問題、リュ
ーマチ因子に起因する誤検出の問題の解決には至ってい
ない。
Utilization of these fusion proteins for immunological assay has also been attempted. JP-A-8-62217 discloses that instead of immobilizing an antibody against the aforementioned antigen on a plate, a fusion protein of the antigen and a carrier protein such as GST is prepared in advance, and an antibody against the carrier protein is prepared on the plate. An immunological assay, which is solid phased, is described. The fusion protein is captured on the plate by the binding of the antibody against the carrier protein and the carrier protein, and the antibody against the antigen can be measured by adding the sample and the labeled secondary antibody thereto. By this method,
It becomes possible to carry out immunological measurement without producing different antibodies for each antigen. However, since this method is not an antibody capture method, it is necessary to solve the problem of sensitivity decrease due to competition over binding of IgG and IgM to the antigen when measuring IgM, and the problem of false detection due to rheumatoid factor. I haven't arrived.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】検体中の抗体検出のた
めの抗体捕捉法ELISAおよびそれに類似した方法によりI
gGとの競合反応やリューマチ因子等による非特異反応の
回避が可能になったが、これらの方法には未だいくつか
の改良すべき課題が存在する。
[Problems to be Solved by the Invention] Antibody capture method for detecting antibodies in a sample ELISA and a method similar thereto
Although it became possible to avoid competitive reactions with gG and non-specific reactions due to rheumatoid factors, etc., these methods still have some problems to be improved.

【0009】第一は標識用の抗体を作出する際の問題で
ある。検体中の抗体と標識抗体は抗原に結合するが、標
識抗体は検体中の抗体と抗原中の結合部位をできるだけ
競合しないものにする必要がある。そうでないと感度が
大幅に低下してしまうからである。しかし抗原内のエピ
トープ部分が限定されている場合には、その様な抗体を
選定してくるのが困難な場合がある。
First, there is a problem in producing an antibody for labeling. The antibody in the sample and the labeled antibody bind to the antigen, but the labeled antibody must be such that the binding site in the antibody with the antigen in the sample does not compete as much as possible. Otherwise, the sensitivity will drop significantly. However, when the epitope part in the antigen is limited, it may be difficult to select such an antibody.

【0010】第二は抗体標識の際の失活の問題である。
酵素や蛍光物質を標識するにあたっては、抗体中のアミ
ノ酸側鎖の反応基を通じて両者を結合させているが、こ
れにより抗体の抗原への結合能に変化が生じ、中には結
合力が著しく低下する場合もある。
The second is the problem of inactivation during antibody labeling.
When labeling an enzyme or fluorescent substance, the two are bound through the reactive group of the amino acid side chain in the antibody, but this causes a change in the ability of the antibody to bind to the antigen, and in some cases the binding power is significantly reduced. In some cases.

【0011】第三に抗体捕捉法ELISAは、抗体固相法ELI
SAよりもステップ数が1段階多く、所要時間が多くかか
るという点である。特に、救急医療等、感染の有無を一
刻も早く知る必要がある場合には問題である。また、医
療機関の依頼を受けて医療検査を行っている検査センタ
ーにとってはコスト増をもたらす結果となっている。従
って、以上の課題を解決できる方法の開発が望まれてい
た。
Thirdly, the antibody capture method ELISA is an antibody solid phase method ELI.
The number of steps is one more than that of SA, and the required time is longer. In particular, this is a problem when it is necessary to know the presence or absence of infection as soon as possible, such as in emergency medical care. In addition, this results in an increase in cost for an inspection center that conducts medical tests at the request of medical institutions. Therefore, it has been desired to develop a method capable of solving the above problems.

【0012】[0012]

【課題を解決するための手段】本発明者らは鋭意研究し
た結果、タグまたはキャリアー(以後、タグと称する)
となる蛋白質等の物質を結合させた抗原および該タグに
対する標識抗体を用いて、抗体捕捉法による検体中の抗
体免疫学的測定方法を実施し、上記第一から第三の課題
を克服できることを見出し、本発明を完成させた。特
に、抗原と標識抗体を免疫学的測定用プレートのウェル
内に添加する前に混合することが好ましい。
Means for Solving the Problems As a result of intensive studies by the present inventors, a tag or a carrier (hereinafter referred to as a tag)
It is possible to overcome the above-mentioned first to third problems by carrying out an antibody immunological assay method in a sample by an antibody capture method using an antigen bound with a substance such as a protein and a labeled antibody against the tag. Heading, completed the present invention. In particular, it is preferable to mix the antigen and the labeled antibody before adding them into the wells of the immunoassay plate.

【0013】本発明は、検体中の抗体を捕捉する免疫学
的測定用プレート、例えば抗IgM抗体固相プレートに検
体を添加した後に、タグを結合させた抗原を添加し、次
いで該タグに対する標識抗体を混合して添加する工程、
好ましくは、検体中の抗体を捕捉する免疫学的測定用プ
レート、例えば抗IgM抗体固相プレートに検体を添加し
た後に、タグを結合させた抗原と該タグに対する標識抗
体を混合して添加する工程を有することを特徴とする、
抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法およびこの方
法を用いた検体中のIgM測定試薬を提供するものであ
る。
According to the present invention, a sample is added to an immunological assay plate for capturing an antibody in the sample, for example, an anti-IgM antibody solid phase plate, an antigen having a tag bound thereto is added, and then the tag is labeled. Mixing and adding antibodies,
Preferably, the step of adding the sample to an immunological assay plate that captures the antibody in the sample, for example, an anti-IgM antibody solid phase plate, and then mixing and adding the tag-bound antigen and the labeled antibody to the tag Characterized by having,
It is intended to provide a method for immunologically measuring an antibody by an antibody capture method and a reagent for measuring IgM in a sample using this method.

【0014】すなわち、本発明は以下のとおりである。 (1) 少なくともタグを結合した抗原およびタグに対
する標識した抗体を使用することを特徴とする抗体捕捉
法による検体中の該抗原に対する抗体の免疫学的測定方
法。 (2) さらに、タグが結合した抗原に対する検体中の
抗体に結合する物質を固相化したプレートを使用するこ
とを特徴とする、(1)記載の抗体捕捉法による検体中
の該抗原に対する抗体の免疫学的測定方法。 (3) (a) 抗体に結合する物質を固相化したプレー
トに、検体を添加する工程、(b) 該プレートにタグが
結合した抗原を添加する工程、および(c)該プレートに
該タグに対する標識した抗体を添加する工程を含む
(1)または(2)記載の抗体捕捉法による検体中の該
抗原に対する抗体の免疫学的測定方法。 (4) 免疫学的測定方法がELISAである、(1)〜
(3)のいずれか記載の免疫学的測定方法。 (5) タグを結合した抗原と標識したタグに対する抗
体をあらかじめ混合した後に使用することを特徴とする
(1)〜(4)のいずれか記載の抗体捕捉法による抗体
の免疫化学的測定方法。
That is, the present invention is as follows. (1) A method for immunologically measuring an antibody against an antigen in a sample by an antibody capture method, which comprises using an antigen bound to at least a tag and a labeled antibody against the tag. (2) An antibody against the antigen in the sample by the antibody capturing method according to (1), which further comprises a plate on which a substance that binds to the antibody in the sample against the antigen bound with the tag is immobilized. Immunological measurement method. (3) (a) adding a sample to a plate on which a substance that binds to an antibody is immobilized, (b) adding an antigen having a tag bound to the plate, and (c) adding the tag to the plate A method for immunologically measuring an antibody against the antigen in a sample by the antibody capturing method according to (1) or (2), which comprises the step of adding a labeled antibody against the antigen. (4) The immunological measurement method is ELISA, (1) to
The immunological measurement method according to any one of (3). (5) The method for immunochemically measuring an antibody by the antibody capture method according to any one of (1) to (4), wherein the antigen bound with the tag and the antibody against the labeled tag are mixed in advance and then used.

【0015】(6) タグを結合した抗原が、遺伝子組
換え法により作製される、タグと抗原との融合蛋白質で
あることを特徴とする、(1)〜(5)のいずれか記載
の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法。 (7) タグがHis6、GST(Glutathione S-Transferas
e)、MBP(Maltose Binding Protein)、ガラクトース
結合蛋白質、チオレドキシンからなる群から選ばれる蛋
白質からなることを特徴とする、(1)〜(6)のいず
れか記載の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法。 (8) 抗原がエプスタインーバールウイルス(EBV)
抗原であることを特徴とする、(1)〜(7)のいずれ
か記載の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法。 (9) 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト免疫グロ
ブリン抗体であることを特徴とする、(1)〜(8)の
いずれか記載の抗体捕捉法による検体中の該抗原に対す
る抗体の免疫学的測定方法。 (10) 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒトIgM抗
体であることを特徴とする、(9)記載の検体中の抗体
捕捉法による抗体の免疫学的測定方法。
(6) The antibody according to any one of (1) to (5), wherein the antigen bound with the tag is a fusion protein of the tag and the antigen, which is produced by a gene recombination method. Immunological measurement method of antibody by capture method. (7) Tag is His 6 , GST (Glutathione S-Transferas
e), MBP (Maltose Binding Protein), a galactose binding protein, and a protein selected from the group consisting of thioredoxin, characterized in that the immunology of the antibody by the antibody capture method according to any one of (1) to (6) Measurement method. (8) The antigen is Epstein-Barr virus (EBV)
An immunological assay method for an antibody by the antibody capture method according to any one of (1) to (7), which is an antigen. (9) Immunization of an antibody against the antigen in a sample by the antibody capture method according to any one of (1) to (8), wherein the substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human immunoglobulin antibody Measurement method. (10) The method for immunologically measuring an antibody by the antibody capture method in a sample according to (9), wherein the substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human IgM antibody.

【0016】(11) 少なくともタグを結合した抗原
と標識したタグに対する抗体を含む、抗体捕捉法により
検体中の抗体を測定するための試薬。 (12) さらに、タグが結合した抗原に対する検体中
の抗体に結合する物質を固相化したプレートを含む、
(11)記載の抗体測定試薬。 (13) タグを結合した抗原が、遺伝子組換え法によ
り作製される、タグと抗原との融合蛋白質であることを
特徴とする、(11)または(12)記載の抗体測定試
薬。 (14) タグがHis6、GST(Glutathione S-Transfer
ase)、MBP(Maltose Binding Protein)、ガラクトー
ス結合蛋白質、チオレドキシンからなる群から選ばれる
蛋白質からなることを特徴とする、(11)〜(13)
のいずれか記載の抗体測定試薬。 (15) 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト免疫グ
ロブリン抗体であることを特徴とする、(11)〜(1
4)のいずれか記載の抗体測定試薬。
(11) A reagent for measuring an antibody in a sample by an antibody capturing method, which comprises at least an antigen bound to a tag and an antibody against the labeled tag. (12) Further, it includes a plate on which a substance that binds to an antibody in a sample for the antigen bound to the tag is immobilized.
The antibody measurement reagent according to (11). (13) The antibody measuring reagent according to (11) or (12), wherein the antigen bound with the tag is a fusion protein of the tag and the antigen, which is produced by a gene recombination method. (14) Tag is His 6 , GST (Glutathione S-Transfer
ase), MBP (Maltose Binding Protein), a galactose binding protein, and a protein selected from the group consisting of thioredoxin, (11) to (13)
5. The antibody measuring reagent according to any one of 1. (15) The substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human immunoglobulin antibody, (11) to (1)
The antibody measurement reagent according to any one of 4).

【0017】(16) 検体中の抗体に結合する物質が
抗ヒトIgM抗体であることを特徴とする、(15)記載
の抗体測定試薬。 (17) 抗原がエプスタインーバールウイルス(EB
V)抗原であることを特徴とする、(11)〜(16)
のいずれか記載の抗体測定試薬。 以下、本発明を詳細に説明する。
(16) The antibody measuring reagent according to (15), wherein the substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human IgM antibody. (17) The antigen is Epstein-Barr virus (EB
V) is an antigen, (11) to (16)
5. The antibody measuring reagent according to any one of 1. Hereinafter, the present invention will be described in detail.

【0018】[0018]

【発明の実施の形態】本発明の抗体捕捉法による抗体の
免疫学的測定は、タグを結合した抗原、タグに対する標
識した抗体および測定しようとする抗体を捕捉する物質
を結合させた担体を用いて行うことができ、該タグを結
合した抗原、タグに対する標識した抗体および測定しよ
うとする抗体を捕捉する物質を結合させた担体は、以下
のようにして作製することができる。ここで、「抗体捕
捉法」とは、測定しようとする抗体に結合する物質を結
合させた担体を用いて、測定しようとする抗体を捕捉し
て、該抗体を測定する方法をいう。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Immunological measurement of antibodies by the antibody capture method of the present invention uses a tag-bound antigen, a labeled antibody to the tag, and a carrier to which a substance that captures the antibody to be measured is bound. The antigen bound with the tag, the labeled antibody against the tag, and the carrier bound with the substance that captures the antibody to be measured can be prepared as follows. Here, the “antibody capture method” refers to a method of capturing an antibody to be measured using a carrier to which a substance that binds to the antibody to be measured is bound, and measuring the antibody.

【0019】1.タグを結合した抗原の作製 本発明において、「タグ」とは、測定しようとする検体
中の抗体が特異的に結合する抗原に結合させた物質であ
って、標識二次抗体が特異的に結合する物質をいう。
1. Preparation of antigen bound with tag In the present invention, a "tag" is a substance bound to an antigen to which an antibody in a sample to be measured specifically binds, and a labeled secondary antibody specifically binds to the antigen. Refers to a substance that does.

【0020】タグはそれ自体が抗原性を有し、標識二次
抗体と抗原抗体反応により結合し得る物質であれば使用
することができるが、本発明にはHis6(ヒスチジン6量
体)、GST(Glutathione S-Transferase)、MBP(Malto
se Binding Protein)、ガラクトース結合蛋白質、チオ
レドキシン等遺伝子組換えにより抗原蛋白質との融合蛋
白質を作成できる蛋白質、ペプチドを好適に用いること
ができる。
The tag can be used as long as it has a property of being antigenic and can bind to the labeled secondary antibody by an antigen-antibody reaction. In the present invention, His 6 (histidine hexamer), GST (Glutathione S-Transferase), MBP (Malto
se binding protein), galactose binding protein, thioredoxin, and other proteins and peptides capable of producing a fusion protein with an antigen protein by gene recombination can be preferably used.

【0021】タグを結合した抗原は、タグとなる物質と
検体中の測定しようとする抗体が特異的に結合する抗原
とを化学的または酵素的に結合することにより作製する
ことができ、また、タグが蛋白質である場合にはタグ蛋
白質をコードする遺伝子と抗原をコードする遺伝子の融
合遺伝子を発現させ融合蛋白質として作製する方法を用
いることができる。
The tag-bound antigen can be prepared by chemically or enzymatically binding a substance serving as a tag and an antigen specifically bound by an antibody to be measured in a sample. When the tag is a protein, a method of producing a fusion protein by expressing a fusion gene of a gene encoding the tag protein and a gene encoding an antigen can be used.

【0022】タグ蛋白質をコードする遺伝子と抗原をコ
ードする遺伝子の融合は、通常の遺伝子組換えの手法に
より行うことができる。この際、適当な制限酵素の認識
切断配列を導入して行うことができる。タグ蛋白質をコ
ードする遺伝子は、抗原をコードする遺伝子のC末端側
に付加されても、N末端側に付加されてもよい。この
際、タグ蛋白質をコードする遺伝子と抗原をコードする
遺伝子の間にストップコドンが現れないようにする。タ
グ蛋白質をコードする遺伝子と抗原をコードする遺伝子
の間の距離は限定されず、両者の間にリンカーが含まれ
ていてもよい。タグ蛋白質と抗原が翻訳されるために
は、両遺伝子のオープンリーディングフレームを合わせ
るようにする。また両遺伝子の間に、特定のアミノ酸が
リンカー部位に含まれるような塩基配列を有していても
よい。
The fusion of the gene encoding the tag protein and the gene encoding the antigen can be carried out by an ordinary gene recombination technique. At this time, it can be performed by introducing an appropriate restriction enzyme recognition and cleavage sequence. The gene encoding the tag protein may be added to the C-terminal side or the N-terminal side of the antigen-encoding gene. At this time, the stop codon should not appear between the gene encoding the tag protein and the gene encoding the antigen. The distance between the gene encoding the tag protein and the gene encoding the antigen is not limited, and a linker may be included between the two. In order for the tag protein and the antigen to be translated, the open reading frames of both genes should be aligned. Further, between both genes, it may have a base sequence such that a specific amino acid is contained in the linker site.

【0023】2.測定しようとする抗体が特異的に結合
する抗原の調製 本発明の抗体の免疫学的測定は、特定の抗原に対する抗
体を測定することを目的にしており、本発明に用いる抗
原は、測定しようとする抗体が特異的に結合する抗原で
ある。該抗原としては、特定のものに限られず、例えば
自己免疫疾患で出現する自己に対する抗体が認識する抗
原、癌特異的抗体が認識する抗原、感染症における病原
体の抗原が挙げられる。特に、感染症診断のための病原
体または病原体の構成成分が抗原として用いられる。例
えば、病原体が細菌の場合、細菌のタンパク質、細菌表
面の糖鎖抗原、細菌膜由来の脂質抗原等の細菌性抗原が
用いられ、病原体がウイルスの場合、ウイルス粒子を構
成する構造タンパク質と非構造タンパク質等が抗原とし
て用いられ、前者にはキャプシドタンパク質やエンベロ
ープ中のウイルスタンパク質など、後者には核内抗原な
どのウイルスの複製と増殖に必要な機能を持つタンパク
質がある。病原体の例としては、エプスタイン-バール
ウイルス(EBV),パルボウイルス、ムンプスウイル
ス、インフルエンザウイルス等のウイルス、クラミジ
ア、及び梅毒等の細菌があげられる。例えば、EBVの場
合、抗原としてEBウイルスキャプシド抗原(VCA)、EB
ウイルス特異的核内抗原(EBNA)、EBウイルス関連早期
抗原(EA)、EBウイルス関連膜抗原(MA)、EBウイルス
潜伏感染膜タンパク質(LMP)等が用いられる。中でもE
BVのVCA蛋白は本発明に好適に用いることができる。
2. Preparation of an antigen to which the antibody to be measured specifically binds The immunological measurement of the antibody of the present invention is intended to measure an antibody against a specific antigen, and the antigen used in the present invention is to be measured. Is an antigen to which the antibody specifically binds. The antigen is not limited to a particular one, and includes, for example, an antigen recognized by an antibody against self that appears in an autoimmune disease, an antigen recognized by a cancer-specific antibody, and an antigen of a pathogen in an infectious disease. In particular, pathogens or constituents of pathogens for the diagnosis of infectious diseases are used as antigens. For example, when the pathogen is bacteria, bacterial proteins such as bacterial proteins, sugar chain antigens on the surface of the bacteria, and lipid antigens derived from bacterial membranes are used.When the pathogen is a virus, the structural proteins and non-structural proteins that make up the virus particle are used. Proteins and the like are used as antigens, the former includes capsid proteins and viral proteins in the envelope, and the latter includes proteins such as nuclear antigens that have functions required for virus replication and proliferation. Examples of pathogens include Epstein-Barr virus (EBV), parvovirus, mumps virus, viruses such as influenza virus, chlamydia, and bacteria such as syphilis. For example, in the case of EBV, EB virus capsid antigen (VCA), EB
Virus-specific nuclear antigen (EBNA), EB virus-associated early antigen (EA), EB virus-associated membrane antigen (MA), EB virus latent infection membrane protein (LMP), etc. are used. Above all, E
The VCA protein of BV can be preferably used in the present invention.

【0024】EBVは、伝染性単核症、上咽頭癌、バーキ
ットリンパ腫等の原因病原体であり、最近では胃癌発生
との関係も指摘されているウイルスである。その感染の
有無を把握することは、近年、ますます重要になってい
る。
EBV is a causative pathogen of infectious mononucleosis, nasopharyngeal cancer, Burkitt lymphoma and the like, and is a virus which has been recently pointed out to be associated with the development of gastric cancer. It has become more and more important in recent years to grasp the presence or absence of the infection.

【0025】本発明の抗原は、上述の病原体を培養する
ことにより得ることができ、また、該病原体のゲノムの
特定の遺伝子から遺伝子工学的に得ることもできる。こ
の際、用いる抗原は、病原体そのものであっても良い
し、病原体の構成成分となる特定の抗原であってもよ
い。
The antigen of the present invention can be obtained by culturing the above-mentioned pathogen, or can be obtained by genetic engineering from a specific gene in the genome of the pathogen. At this time, the antigen used may be the pathogen itself or a specific antigen that is a constituent of the pathogen.

【0026】3.タグに対する抗体の作製 本発明で用いるタグに対する抗体は、タグを抗原として
動物に免疫して抗血清を採取しそこから精製することに
より得ることができ、また細胞融合法を用いてモノクロ
ーナル抗体として得ることができる。また、市販のもの
を用いることもできる(例えば、抗GST抗体は、アマシ
ャムファルマシアバイオテク社より発売されている)。
3. Preparation of antibody against tag The antibody against the tag used in the present invention can be obtained by immunizing an animal with the tag as an antigen, collecting antiserum, and purifying the antiserum. Alternatively, it can be obtained as a monoclonal antibody using the cell fusion method. be able to. In addition, a commercially available product can also be used (for example, the anti-GST antibody is sold by Amersham Pharmacia Biotech).

【0027】4.タグに対する抗体の標識(標識抗体の
作製) タグに対する抗体の標識物質としてはフルオレセインイ
ソチオシアネート(FITC)等の蛍光色素、ペルオキ
シダーゼ、アルカリフォスファターゼ等の酵素、発光物
質、放射性同位体等が用いられる。タグに対する抗体へ
の標識物質の結合方法は、当業者に知られた方法により
行うことができるが、例えば、酵素標識の場合は、マレ
イミド法等(石川栄治著「超高感度酵素免疫測定法」
(学会出版センター等に記載)の方法を用いることがで
きる。
4. Labeling of antibody to tag (preparation of labeled antibody) As a labeling substance of antibody to the tag, a fluorescent dye such as fluorescein isothiocyanate (FITC), an enzyme such as peroxidase and alkaline phosphatase, a luminescent substance, a radioactive isotope and the like are used. The method of binding the labeling substance to the antibody to the tag can be carried out by a method known to those skilled in the art. For example, in the case of enzyme labeling, the maleimide method or the like (Eiji Ishikawa “Ultrasensitive enzyme immunoassay”)
The method (described in the academic society publication center etc.) can be used.

【0028】5.抗体捕捉物質固相担体の作製 測定しようとする抗体に結合する物質を適当な担体に結
合させて、本発明の抗体捕捉物質固相担体を作製するこ
とができる。抗体捕捉物質としては、ヒト抗体に対する
抗体、プロテインA、プロテインG等が挙げられ、好適に
はヒト抗体に対する抗体が用いられる。ヒト抗体に対す
る抗体としては、抗ヒトIgG抗体、抗ヒトIgM抗体、抗ヒ
トIgA抗体が挙げられる。
5. Preparation of antibody-capturing substance solid-phase carrier The substance that binds to the antibody to be measured can be bound to an appropriate carrier to prepare the antibody-capturing substance solid-phase carrier of the present invention. Examples of the antibody-capturing substance include antibodies against human antibodies, protein A, protein G and the like, and preferably antibodies against human antibodies are used. Antibodies against human antibodies include anti-human IgG antibodies, anti-human IgM antibodies, and anti-human IgA antibodies.

【0029】抗ヒトIgG抗体、抗ヒトIgM抗体、および/
または抗ヒトIgA抗体をELISA用タイタープレート、ビー
ズ等の担体に固定して本発明に用いる抗体固相担体を得
ることができる。抗ヒトIgG抗体、抗ヒトIgM抗体、抗ヒ
トIgA抗体は、市販のものを用いることもできるし、ヒ
トIgG(γ)、IgM(μ)、IgA(α)を動物に免疫して
作製することもできる。抗体はタイタープレート等の担
体に物理吸着や化学結合により固相化する。固相化量
は、特に限定されないが、担体がマイクロタイタープレ
ートの場合、1ウェル当たり数ngから数十μgが望まし
い。固相化は固相化すべき抗体を適切なバッファーに溶
解し、担体と接触させ行うことができる。例えば、マイ
クロタイターウェルを用いる場合、抗体溶液をマイクロ
タイタープレートのウェルに分注し一定時間置くことに
より固相化することができる。抗ヒトIgG抗体、抗ヒトI
gM抗体、抗ヒトIgA抗体は、測定しようとする抗体のク
ラスに応じて選択することができる。また、同時に複数
のクラスの抗体を測定する場合には、抗ヒトIgG抗体、
抗ヒトIgM抗体、抗ヒトIgA抗体の2種類または全部を混
合したものを固相化すればよい。
Anti-human IgG antibody, anti-human IgM antibody, and / or
Alternatively, the anti-human IgA antibody can be immobilized on a carrier such as an ELISA titer plate or beads to obtain the antibody solid phase carrier used in the present invention. As the anti-human IgG antibody, anti-human IgM antibody, and anti-human IgA antibody, commercially available products can be used, or human IgG (γ), IgM (μ), and IgA (α) can be immunized in animals to prepare them. You can also The antibody is immobilized on a carrier such as a titer plate by physical adsorption or chemical bonding. The amount of solid phase immobilization is not particularly limited, but when the carrier is a microtiter plate, it is preferably several ng to several tens μg per well. The immobilization can be performed by dissolving the antibody to be immobilized in an appropriate buffer and contacting with a carrier. For example, in the case of using a microtiter well, the antibody solution can be solid-phased by dispensing it into a well of a microtiter plate and leaving it for a certain period of time. Anti-human IgG antibody, anti-human I
The gM antibody and the anti-human IgA antibody can be selected according to the class of the antibody to be measured. In addition, when measuring multiple classes of antibodies at the same time, anti-human IgG antibody,
The anti-human IgM antibody and the anti-human IgA antibody may be solid-phased or a mixture of two or all of them.

【0030】6.抗体測定試薬の調製 少なくとも上述のタグを結合した抗原、タグに対する抗
体を組み合せることにより、感染症の検出に用いるため
の抗体測定試薬、すなわち抗体測定用キットを調製する
ことができる。該試薬は、さらに抗体捕捉物質固相担体
を含んでいてもよい。さらに、ブロッキング溶液、反応
溶液、反応停止液、試料を処理するための試薬等を含ん
でいてもよい。
6. Preparation of Antibody Measuring Reagent By combining at least the above-described antigen bound with a tag and an antibody against the tag, an antibody measuring reagent for use in detecting an infectious disease, that is, an antibody measuring kit can be prepared. The reagent may further include an antibody capture substance solid phase carrier. Further, it may contain a blocking solution, a reaction solution, a reaction stop solution, a reagent for treating the sample, and the like.

【0031】7.抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定 上述のタグを結合した抗原、タグに対する標識した抗体
ならびに抗ヒトIgG抗体、抗ヒトIgM抗体および/もしく
は抗ヒトIgA抗体を固相化した担体を用いて、目的とす
る抗体を測定することができる。
7. Immunological measurement of antibody by antibody capture method Antigen bound with the above-mentioned tag, labeled antibody against tag and anti-human IgG antibody, using a carrier immobilized with anti-human IgM antibody and / or anti-human IgA antibody, The target antibody can be measured.

【0032】例えば、ヒトIgM抗体に対する抗体を結合
させたマイクロプレートを用い、標識物質として酵素を
用いる抗体捕捉法によるELISAによる抗体測定を以下に
示すように行うことができる。
For example, antibody measurement by ELISA by an antibody capture method using an enzyme as a labeling substance can be performed as follows, using a microplate to which an antibody against human IgM antibody is bound.

【0033】抗体捕捉法による抗体のELISA(I) 血清由来検体を緩衝液で希釈後、5.で作製した抗体固
相プレートに添加、室温で反応させる。反応後、緩衝液
で洗浄し、1.で作製したタグ結合抗原および4.で作
製した標識抗タグ抗体をあらかじめ混合して反応させた
混合物を加え、室温で反応させる。緩衝液で洗浄後、酵
素基質液を加え室温で反応後、反応停止液を加える。比
色計等を用いて吸光度を測定することによって、検体中
の抗原の有無あるいは抗原量を判定する。
4. Antibody ELISA by antibody capture method (I) After diluting a serum-derived sample with a buffer, 5. Add to the antibody solid-phase plate prepared in step 2 and react at room temperature. After the reaction, washing with a buffer solution was performed. The mixture prepared by previously mixing the tag-bound antigen prepared in step 4 and the labeled anti-tag antibody prepared in step 4 and reacting them is added, and allowed to react at room temperature. After washing with a buffer solution, an enzyme substrate solution is added, the reaction is performed at room temperature, and then a reaction stop solution is added. The presence or absence of the antigen in the sample or the amount of the antigen is determined by measuring the absorbance using a colorimeter or the like.

【0034】抗体捕捉法によるIgMのELISA(II) 血清由来検体を緩衝液で希釈後、5.で作製した抗体固
相プレートに添加、室温で反応させる。反応後、緩衝液
で洗浄し、1.で作製したタグ結合抗原溶解液を加え、
室温で反応、緩衝液で洗浄後、4.で作製した標識抗タ
グ抗体を加え、室温で反応、緩衝液で洗浄後、酵素基質
液を加え室温で反応後、反応停止液を加える。比色計等
を用いて吸光度を測定することによって、検体中の抗原
量の有無あるいは抗原量を判定する。
4. IgM ELISA by antibody capture method (II) After diluting a serum-derived sample with a buffer solution, 5. Add to the antibody solid-phase plate prepared in step 2 and react at room temperature. After the reaction, washing with a buffer solution was performed. Add the tag-bound antigen solution prepared in
After reaction at room temperature and washing with a buffer solution, the labeled anti-tag antibody prepared in step 4 is added, followed by reaction at room temperature, washing with a buffer solution, addition of an enzyme substrate solution, reaction at room temperature, and addition of a reaction stop solution. The presence or absence of the amount of antigen in the sample or the amount of antigen is determined by measuring the absorbance using a colorimeter or the like.

【0035】(I)、(II)いずれの方法によっても検
体中の抗体を測定することが可能であるが、(I)のよ
うにタグ結合抗原および標識抗タグ抗体をあらかじめ混
合して反応させておき、その混合物を測定しようとする
抗体が結合したプレートに添加する場合には、抗体の測
定に要する工程数及び所用時間が少なくなる。標識物質
として、蛍光色素、発光物質、放射性同位元素を用いる
抗体捕捉法によるIgMの免疫学的測定についても同様に
行うことができる。
Although the antibody in the sample can be measured by either of the methods (I) and (II), the tag-binding antigen and the labeled anti-tag antibody are premixed and reacted as in (I). In addition, when the mixture is added to the plate to which the antibody to be measured is bound, the number of steps and the time required for measuring the antibody are reduced. The immunological measurement of IgM by the antibody capture method using a fluorescent dye, a luminescent substance, and a radioisotope as a labeling substance can be similarly performed.

【0036】[0036]

【実施例】以下に、本発明の実施例として、エプスタイ
ン-バールウイルス(EBV)感染の指標となる抗EBV抗体
のうち、EBV粒子の構成成分であるウイルスキャプシド
抗原(VCA)グループの一つであり、強い免疫反応性を
有するp18抗原に対するIgM抗体を検出するための抗体捕
捉法ELISAに応用した例について記載する。尚、本発明
は以下の実施例のみに限定されるものではない。
[Examples] In the following, as an example of the present invention, one of the virus capsid antigen (VCA) group, which is a constituent component of EBV particles, among anti-EBV antibodies that are indicators of Epstein-Barr virus (EBV) infection. The following describes an example applied to an antibody capture method ELISA for detecting IgM antibody against p18 antigen having strong immunoreactivity. The present invention is not limited to the following examples.

【0037】〔実施例1〕 EBVのp18抗原遺伝子のクロ
ーニング 1.ゲノムDNAの調製 (1)EBVゲノム保持細胞の培養 細胞内にEBVのゲノムを保持しているマーモセット由来
細胞株B95-8を10%ウシ胎児血清(FCS)及び2mM L-グルタ
ミンを含むRPMI 1640培地200mL中で37℃条件下において
培養した。細胞濃度が約2×106/mLとなった時点で、培
養液を回収した。
[Example 1] Cloning of EBV p18 antigen gene 1. Preparation of genomic DNA (1) Culture of EBV genome-retaining cells Marmoset-derived cell line B95-8 that retains the EBV genome in the cells is RPMI 1640 medium containing 10% fetal calf serum (FCS) and 2 mM L-glutamine. The cells were cultured in 200 mL at 37 ° C. The culture medium was collected when the cell concentration reached about 2 × 10 6 / mL.

【0038】(2)ゲノムDNAの調製 上記培養液を160×gで10分間遠心した後、上清を回収し
た。この上清に20(W/V)% ポリエチレングリコール、1M
NaClから成る溶液を等量添加し、よく混合後、4℃で一
晩放置して、EBVを沈殿させた。放置後、13,000×gで20
分間遠心し、上清を捨て沈殿を1.8mLの滅菌超純水に溶
解した。次に0.1M Tris-HCl(pH7.8),50mM EDTA及び5% S
DSから成るバッファーを200μL、続いて20mg/mL Protea
seK(Sigma社製)を10μL添加し、50℃で1時間反応させ
た。反応終了後、フェノール/クロロホルム処理を行
い、その後、10,000×gで5分間遠心し、上層の水相部
分を回収した。水相部分をエタノール沈殿させた後に回
収し、最終的に、200μLのTEバッファー(1mM EDTA,10mM
Tris-HCl(pH7.5))に溶解し、EBVゲノムDNAを得た。
(2) Preparation of genomic DNA The above culture was centrifuged at 160 × g for 10 minutes, and the supernatant was recovered. Add 20 (W / V)% polyethylene glycol, 1M to this supernatant.
An equal amount of a solution consisting of NaCl was added, mixed well, and then left overnight at 4 ° C. to precipitate EBV. After being left for 20 minutes at 13,000 × g
After centrifuging for minutes, the supernatant was discarded and the precipitate was dissolved in 1.8 mL of sterile ultrapure water. Then 0.1 M Tris-HCl (pH 7.8), 50 mM EDTA and 5% S
200 μL of DS buffer, followed by 20 mg / mL Protea
10 μL of seK (manufactured by Sigma) was added and reacted at 50 ° C. for 1 hour. After completion of the reaction, phenol / chloroform treatment was performed, followed by centrifugation at 10,000 xg for 5 minutes to recover the upper aqueous phase portion. The aqueous phase was precipitated with ethanol and recovered, and finally 200 μL of TE buffer (1 mM EDTA, 10 mM
It was dissolved in Tris-HCl (pH 7.5)) to obtain EBV genomic DNA.

【0039】2.p18抗原遺伝子のクローニング 実施例1-1で得たEBVゲノムDNA溶液1μLを用いて、Saiki
らの方法[Nature,324,163(1986)]に従い、Gene Amp P
CR Reagent Kit(宝酒造社製)を用いたPCR法で、p18抗原
遺伝子を含む遺伝子領域を増幅した。まず、発現ベクタ
ー中に組み込むため、p18抗原遺伝子の本来の配列の一
部を変異させ制限酵素切断部位を導入した配列番号1及
び2記載の配列を有する2種類のPCR用オリゴヌクレオ
チドプライマーを外注して(エスペック オリゴサービ
ス社)作製した。次に、10mM Tris-HCl(pH8.3),50mM KC
l,5mM MgCl2,0.1% ゼラチンを含む反応液中にEBVゲノム
DNA溶液1μLと上記2種類のオリゴヌクレオチドプライマ
ーそれぞれ20pmoles及び上記のキット添付のTaq polyme
rase 5unitsを加え、最終量50μLとした。
2. Cloning of p18 antigen gene Using 1 μL of the EBV genomic DNA solution obtained in Example 1-1, Saiki
Gene Amp P according to the method [Nature, 324,163 (1986)].
The gene region containing the p18 antigen gene was amplified by the PCR method using CR Reagent Kit (Takara Shuzo). First, in order to incorporate it into an expression vector, two types of PCR oligonucleotide primers having the sequences of SEQ ID NOs: 1 and 2 in which a part of the original sequence of the p18 antigen gene was mutated and a restriction enzyme cleavage site was introduced were outsourced. (Espec Oligo Service). Next, 10 mM Tris-HCl (pH 8.3), 50 mM KC
EBV genome in a reaction solution containing 1,5 mM MgCl 2 , 0.1% gelatin
1 μL DNA solution and 20 pmoles of each of the above two types of oligonucleotide primers and the Taq polyme attached to the above kit
rase 5 units were added to make a final volume of 50 μL.

【0040】この反応液を94℃,3min.→〔(94℃,1.0mi
n.→50℃,30sec.→72℃,2.0min.)×25サイクル〕→72
℃,7min.〕の条件で反応させた。反応終了液を1.5%アガ
ロースゲル電気泳動で分画した結果、約570bpのPCR増幅
産物であるDNAを確認した。この約570bpのPCR増幅産物
をGeneclean II(BIO101社製)でゲル内から回収した後、
さらにDNA Blunting Kit(宝酒造社製)を用いて平滑化し
た。
This reaction solution was heated at 94 ° C. for 3 min. → [(94 ° C., 1.0 mi
n. → 50 ℃, 30sec. → 72 ℃, 2.0min.) × 25 cycles] → 72
The reaction was performed under the conditions of ℃, 7 min. As a result of fractionating the reaction-completed solution by 1.5% agarose gel electrophoresis, a DNA of about 570 bp PCR amplification product was confirmed. After collecting the PCR amplification product of this approximately 570 bp from within the gel with Geneclean II (manufactured by BIO 101),
Further, it was smoothed using DNA Blunting Kit (manufactured by Takara Shuzo).

【0041】次にクローニング用ベクター pUC19(アマ
シャム ファルマシア バイオテク社製) 2μgを制限酵素
SmaI(NEW ENGLAND BioLabs社製) 4unitsで30℃、2時間
消化後、アルカリフォスファターゼ(BRL社製)で5'末端
を脱リン酸化した。
Next, 2 μg of the cloning vector pUC19 (manufactured by Amersham Pharmacia Biotech) was digested with a restriction enzyme.
After digestion with 4 units of SmaI (manufactured by NEW ENGLAND BioLabs) at 30 ° C. for 2 hours, the 5 ′ end was dephosphorylated with alkaline phosphatase (manufactured by BRL).

【0042】上記処理後のPCR増幅産物及びpUC19をLiga
tion Kit(宝酒造社製)を用いて結合させ、CaCl2法[Mol
ecular Cloning,p250 Cold Spring Harbar Laborator
y]によって大腸菌JM109(フナコシ社製)に導入した。
得られた形質転換体を適当に10個選択、Birnboimらのア
ルカリ―SDS法[Nuc. Acids Res.,7,1513(1979)]でプ
ラスミドDNAを精製し、制限酵素マッピングによりPCR増
幅産物を有するクローン(pp18)を得た。
After the above treatment, the PCR amplification product and pUC19 were treated with Liga.
Bonding using the Option Kit (Takara Shuzo), CaCl 2 method [Mol
ecular Cloning, p250 Cold Spring Harbar Laborator
y] was introduced into E. coli JM109 (manufactured by Funakoshi).
Properly select 10 of the obtained transformants, purify the plasmid DNA by the alkali-SDS method of Birnboim et al. [Nuc. Acids Res., 7, 1513 (1979)], and have the PCR amplification product by restriction enzyme mapping. A clone (pp18) was obtained.

【0043】得られたクローンのプラスミドDNAを精製
し、パーキンエルマージャパン社製ABI PRISMTM 310 Ge
netic Analyzerで、上記のPCR増幅産物に由来する部分
のDNAの塩基配列を決定した。その結果、発現ベクター
中に導入する目的で変異させた部分を除いて、公知の塩
基配列(特開平6-90787号公報に記載)と完全一致し
た。
The plasmid DNA of the obtained clone was purified, and ABI PRISM 310 Ge manufactured by Perkin Elmer Japan Co., Ltd.
The base sequence of the DNA of the portion derived from the above PCR amplification product was determined with a netic Analyzer. As a result, it completely matched with the known base sequence (described in JP-A-6-90787), except for the portion mutated for the purpose of introducing into the expression vector.

【0044】〔実施例2〕 大腸菌によるGSTとp18抗原
の融合蛋白質の発現 1.発現ベクターの作製 実施例1で得られたプラスミドpp18 20μgを制限酵素Sal
I(NEW ENGLAND BioLabs社製) 20unitsで37℃、2時間消
化後、フェノール抽出―エタノール沈澱を行なった。DN
Aを滅菌超純水に溶解後、制限酵素BamHI(NEW ENGLAND B
ioLabs社製) 20unitsで37℃、2時間消化後、1.5%アガロ
ースゲル電気泳動を行い、約550bp断片をGeneclean II
(BIO101社製)で回収した。
[Example 2] Expression of fusion protein of GST and p18 antigen by E. coli 1. Preparation of expression vector 20 μg of the plasmid pp18 obtained in Example 1 was digested with the restriction enzyme Sal.
After digesting with 20 units of I (NEW ENGLAND BioLabs) at 37 ° C. for 2 hours, phenol extraction-ethanol precipitation was performed. DN
After dissolving A in sterile ultrapure water, the restriction enzyme BamHI (NEW ENGLAND B
(ioLabs) 20 units, digested at 37 ℃ for 2 hours, and then subjected to 1.5% agarose gel electrophoresis to generate a Geneclean II fragment of about 550 bp.
(Manufactured by BIO101).

【0045】次にGST融合蛋白質発現ベクター pGEX-5X-
1(アマシャム ファルマシア バイオテク社製) 5μgを制
限酵素SalI 20unitsで37℃、2時間消化後、フェノール
抽出―エタノール沈澱を行なった。DNAを滅菌超純水に
溶解後、制限酵素BamHI 20unitsで37℃、2時間消化後、
1%アガロースゲル電気泳動を行い、約4.9Kbpの断片をGe
neclean IIで回収した。
Next, a GST fusion protein expression vector pGEX-5X-
5 μg of 1 (Amersham Pharmacia Biotech) was digested with the restriction enzyme SalI 20 units at 37 ° C. for 2 hours, and then phenol extraction-ethanol precipitation was performed. Dissolve DNA in sterile ultrapure water, digest with restriction enzyme BamHI 20 units at 37 ° C for 2 hours,
Perform 1% agarose gel electrophoresis, and analyze the fragment of about 4.9 Kbp with Ge.
Recovered with neclean II.

【0046】上記550bpの断片、4.9Kbpを結合させ、CaC
l2法により大腸菌JM109に導入した。得られた形質転換
体を適当に24個選択後、アルカリ―SDS法でDNAを精製
し、制限酵素SalIとBamHIによるマッピングと結合部付
近の塩基配列決定によりGSTのC末側にp18抗原が結合し
た融合蛋白質(GST-p18)をコードする発現ベクターを有
するクローン(pGST-p18)を得た。
The above 550 bp fragment, 4.9 Kbp, was ligated and CaC
It was introduced into E. coli JM109 by the l 2 method. After selecting 24 appropriately obtained transformants, the DNA was purified by the alkali-SDS method, and the p18 antigen was bound to the C-terminal side of GST by mapping with the restriction enzymes SalI and BamHI and determining the nucleotide sequence near the binding site. A clone (pGST-p18) having an expression vector encoding the fused protein (GST-p18) was obtained.

【0047】2.融合蛋白質GST-p18の発現 発現用ベクターpGST-p18で蛋白発現用大腸菌BL21(フナ
コシ社製)を形質転換して、形質転換大腸菌BL21(pGST-
p18)を作製した。形質転換体をL-Broth培地(BIO101社
製;50μg/mL Ampicillin(ナカライテスク社製)を添加)
で37℃、16時間培養した。この培養液5mLを新しいL-Bro
th培地(50μg/mL Ampicillinを添加)500mLに接種した。
37℃、約3時間培養後にO.D.600=0.4〜0.6となった時点
で、0.1mM Isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside(IPT
G;ナカライテスク社製)を添加し、さらに3時間培養し
た。培養終了後、5,000×gで遠心分離し、菌体を回収し
た。
2. Expression of the fusion protein GST-p18 Expression vector pGST-p18 was used to transform E. coli BL21 (manufactured by Funakoshi) for protein expression to obtain transformed E. coli BL21 (pGST-
p18) was prepared. L-Broth medium (BIO101; 50 μg / mL Ampicillin (Nacalai Tesque) was added) to the transformant.
The cells were cultured at 37 ° C for 16 hours. Add 5 mL of this culture to new L-Bro
500 ml of th medium (containing 50 μg / mL Ampicillin) was inoculated.
After culturing at 37 ° C for about 3 hours, when OD600 reached 0.4-0.6, 0.1 mM Isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside (IPT
G; manufactured by Nacalai Tesque, Inc.) was added, and the cells were further cultured for 3 hours. After the culture was completed, the cells were collected by centrifugation at 5,000 xg.

【0048】菌体の一部をリン酸緩衝化生理食塩水(Ph
osphate Buffered-Saline(PBS))に懸濁し超音波破砕機
で菌体を破砕した後、Laemmliの方法[Nature,227,680
(1970)]に従ってSDS―ポリアクリルアミドゲル電気泳
動(SDS-PAGE)を行い、コマシュー・ブリリアント・ブル
ー(CBB)染色した。また泳動後、抗GST抗体(アマシャム
ファルマシア バイオテク社製)を用いてウエスタンブロ
ッティングを行った。その結果、CBB染色では、GST-p18
の予想分子量である約45,000の位置に、他の分子量のバ
ンドよりも濃いバンドが確認された。このバンドはウエ
スタンブロッティングの結果、抗GST抗体と反応した。
以上より目的の蛋白質が発現していることを確認した。
[0048] A part of the bacterial cells is a phosphate buffered saline (Ph
osphate Buffered-Saline (PBS)) and suspend the cells with an ultrasonic disruptor, then use the Laemmli method [Nature, 227,680].
(1970)] and subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), and stained with Coomassie brilliant blue (CBB). After electrophoresis, the anti-GST antibody (Amersham
Western blotting was performed using Pharmacia Biotech. As a result, in CBB staining, GST-p18
A band darker than other molecular weight bands was confirmed at a position of about 45,000, which is the predicted molecular weight of. As a result of Western blotting, this band reacted with the anti-GST antibody.
From the above, it was confirmed that the target protein was expressed.

【0049】3.融合蛋白質GST-p18の精製 実施例2-2で回収したGST-p18発現菌体を菌体破砕バッフ
ァー(20mM Tris-HCl(pH8.0),5mM EDTA,5mM DTT,50mM Na
Cl)50mL中で懸濁後、超音波破砕した。破砕液を13,000
×gで遠心し、上清を回収した。上清を0.45μmフィルタ
ーろ過し、サンプル溶液とした。サンプル溶液を菌体破
砕バッファーで平衡化しておいた樹脂量5mLのGlutathio
ne Sepharoseカラム(GST Trap;アマシャム ファルマシ
ア バイオテク社製)に流速1mL/minでアプライした。サ
ンプル溶液全量をアプライ後、流速を2mL/minに上げ
て、カラムを菌体破砕バッファーで2時間洗浄した。洗
浄後、菌体破砕バッファーに10mM 還元型グルタチオン
を添加した溶出バッファーを2mL/minでカラムに送液
し、蛋白溶出画分3mLを回収した。この画分をSDS-PAGE
で分離し、CBB染色したところ、分子量約45,000の単一
バンドが認められた。蛋白純度を検定するためにイメー
ジマスター(アマシャム ファルマシア バイオテク社
製)で分析した結果、ほぼ100%であることが確認され
た。
3. Purification of fusion protein GST-p18 GST-p18 expressing bacterial cells recovered in Example 2-2 were microbial cell disruption buffer (20 mM Tris-HCl (pH8.0), 5 mM EDTA, 5 mM DTT, 50 mM Na
Cl) was suspended in 50 mL and sonicated. 13,000 crushed liquid
The supernatant was collected by centrifugation at × g. The supernatant was filtered with a 0.45 μm filter to obtain a sample solution. The sample solution was equilibrated with the cell disruption buffer and the amount of resin was 5 mL of Glutathio.
It was applied to a ne Sepharose column (GST Trap; Amersham Pharmacia Biotech) at a flow rate of 1 mL / min. After applying the total amount of the sample solution, the flow rate was increased to 2 mL / min, and the column was washed with the cell disruption buffer for 2 hours. After washing, an elution buffer containing 10 mM reduced glutathione added to the cell disruption buffer was sent to the column at 2 mL / min, and 3 mL of the protein elution fraction was collected. This fraction is SDS-PAGE
When separated by CBB staining, a single band with a molecular weight of about 45,000 was observed. As a result of analysis with Image Master (manufactured by Amersham Pharmacia Biotech Co., Ltd.) for assaying protein purity, it was confirmed to be almost 100%.

【0050】〔実施例3〕 大腸菌で発現させた融合蛋
白質を用いた抗EBV-IgM抗体の検出 1.抗体捕捉法ELISA用抗ヒトIgM抗体固相プレートの作
製 ヤギ抗ヒトIgMモノクローナル抗体(マイルス社製)を50m
M 炭酸バッファー(pH9.5)で15μg/mL濃度に希釈し、ポ
リスチレン平型マイクロプレート(ヌンク社製)に100μL
/ ウェルで分注し、4℃で一晩静置した。18時間以上静
置したマイクロプレートを最終濃度0.05% Tween20を含
むTris-HCl(pH7.6) 300μL/ウェルで2回洗浄後、最終濃
度0.5% BSAと0.05% Tween20を含むTris-HCl(pH7.6)を20
0μL/ウェル加えて4℃一晩静置し、抗ヒトIgMモノクロ
ーナル抗体固相マイクロプレートを作製した。
[Example 3] Detection of anti-EBV-IgM antibody using fusion protein expressed in E. coli 1. Preparation of anti-human IgM antibody solid-phase plate for antibody capture method ELISA Goat anti-human IgM monoclonal antibody (Miles) 50m
Dilute to a concentration of 15 μg / mL with M carbonate buffer (pH 9.5) and add 100 μL to polystyrene flat microplates (Nunc).
/ Dispensed in wells and left overnight at 4 ° C. The microplate that had been left standing for 18 hours or more was washed twice with 300 μL / well of Tris-HCl (pH 7.6) containing 0.05% Tween20 at the final concentration, and then Tris-HCl (pH 7. 6) to 20
An anti-human IgM monoclonal antibody solid phase microplate was prepared by adding 0 μL / well and allowing to stand at 4 ° C. overnight.

【0051】2.酵素標識抗GST抗体の作製 抗GSTポリクローナル抗体溶液(アマシャム ファルマ
シア バイオテク社製)2.0mL(蛋白濃度5mg/mL)を20m
M 炭酸バッファー(pH9.5)1Lに4℃で一晩透析した。一
方、パーオキシダーゼ(TypeIV;Sigma社製)4mgを1mL
の滅菌超純水に溶解し、続いて、0.1M メタ過ヨウ素酸
ナトリウム0.2mLを添加して、よく混合した。20分間放
置後、2Lの1mM 酢酸バッファー(pH4.0)に4℃で一晩透析
した。透析終了後のパーオキシダーゼ溶液に1/3体積量
の20mM 炭酸バッファーを添加し、酸化型パーオキシダ
ーゼ溶液とした。次に透析後の抗GSTポリクローナル抗
体溶液と酸化型パーオキシダーゼ溶液を混合し、室温下
で2時間撹拌し反応させた。この混合液に4mg/mLの水素
化ホウ素ナトリウム溶液を120μL添加し、氷水中で、さ
らに2時間撹拌し、反応させた。反応終了後、未反応の
部分を分離するため、10mMNa-リン酸バッファー(pH7.0)
を用いてSephacryl S-200(アマシャム ファルマシア
バイオテク社製)によるゲル濾過を行い、パーオキシダ
ーゼ標識抗GST抗体の精製画分を得た。
2. Preparation of enzyme-labeled anti-GST antibody Anti-GST polyclonal antibody solution (Amersham Pharmacia Biotech) 2.0mL (protein concentration 5mg / mL) 20m
It was dialyzed against 1 L of M carbonate buffer (pH 9.5) at 4 ° C. overnight. On the other hand, 1 mL of 4 mg of peroxidase (Type IV; Sigma)
Was dissolved in sterile ultrapure water, and then 0.2 mL of 0.1M sodium metaperiodate was added and mixed well. After standing for 20 minutes, it was dialyzed against 2 L of 1 mM acetate buffer (pH 4.0) at 4 ° C. overnight. After the dialysis, 1/3 volume of 20 mM carbonate buffer was added to the peroxidase solution to give an oxidized peroxidase solution. Then, the dialyzed anti-GST polyclonal antibody solution and the oxidized peroxidase solution were mixed and reacted at room temperature for 2 hours with stirring. 120 μL of a 4 mg / mL sodium borohydride solution was added to this mixed solution, and the mixture was stirred in ice water for 2 hours for reaction. After the reaction is completed, 10mM Na-phosphate buffer (pH 7.0) is used to separate the unreacted portion.
Using Sephacryl S-200 (Amersham Pharmacia
Gel filtration was performed with Biotech Co., Ltd. to obtain a purified fraction of peroxidase-labeled anti-GST antibody.

【0052】3.抗EBV-IgM抗体の検出 (1) 抗体捕捉法によるIgMのELISA(I) 実施例3-1記載の抗ヒトIgMモノクローナル抗体固相マイ
クロプレートウェル中のプレート保存液を除いた後、伝
染性単核症と臨床診断された血清30検体及び正常血清50
検体を0.5% BSAと0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0)で200
倍に希釈し、100μLを固相マイクロプレートのウェルに
加え、室温(15℃〜25℃)で1時間反応させた。反応後、
0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0) 200μL/ウェルで3回洗
浄した。
3. Detection of anti-EBV-IgM antibody (1) ELISA of IgM by antibody capture method (I) After removing the plate stock solution in the anti-human IgM monoclonal antibody solid-phase microplate well described in Example 3-1, the infectious monolayer was removed. 30 sera clinically diagnosed with nuclear disease and 50 normal sera
Specimen 200 with PBS (pH 7.0) containing 0.5% BSA and 0.05% Tween 20.
After doubling the dilution, 100 μL was added to the wells of the solid phase microplate, and the mixture was reacted at room temperature (15 ° C to 25 ° C) for 1 hour. After the reaction
The cells were washed 3 times with 200 μL / well of PBS (pH 7.0) containing 0.05% Tween20.

【0053】上記反応時間中に、抗原溶解液を0.5% BSA
と0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0)を用いて、実施例2-3
記載の精製品を2μg/mLに希釈して作製した。次に実施
例3-2記載のパーオキシダーゼ標識抗GST抗体を0.5% BSA
と0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0)で2μg/mLに希釈し標
識抗体液を作製した。抗原溶解液と標識抗体液を等量混
合し、抗原-標識抗体混合液を作製し、室温下で10分以
上放置した。
During the above reaction time, 0.5% BSA was added to the antigen solution.
And PBS containing 0.05% Tween 20 (pH 7.0) were used to prepare Example 2-3.
The purified product as described was diluted to 2 μg / mL and prepared. Next, the peroxidase-labeled anti-GST antibody described in Example 3-2 was added to 0.5% BSA.
And PBS (pH 7.0) containing 0.05% Tween 20 were diluted to 2 μg / mL to prepare a labeled antibody solution. The antigen solution and the labeled antibody solution were mixed in equal amounts to prepare an antigen-labeled antibody mixed solution, which was allowed to stand at room temperature for 10 minutes or more.

【0054】1時間反応後、ウェルを0.05% Tween20を含
むPBS(pH7.0) 200μL/ウェルで3回洗浄した。ついで、
抗原-標識抗体混合液を100μL/ウェルで加え、室温で1
時間反応させた。反応後、0.05% Tween20を含むPBS(pH
7.0) 200μL/ウェルで5回洗浄した。洗浄後、3.3mg/mL
O-フェニレンジアミンを含む0.1Mクエン酸−リン酸緩衝
液(pH5.0)に、0.02%過酸化水素水を加えた基質液を100
μL/ウェル加えて室温で30分間反応させた。反応後、1.
5N硫酸を100μL/ ウェル加えて反応を停止させ、マイク
ロプレート用比色計を用いて主波長492nm、副波長630nm
で各ウェルのO.D.値を測定した。O.D.値がカットオフ以
上の検体を陽性と判定した。表1に臨床診断を対照とし
た場合の、このELISAの性能を示した。なおカットオフ
値は正常ヒト血清の吸光度の平均に標準偏差を3倍した
ものを加えた値とした。
After reacting for 1 hour, the wells were washed 3 times with 200 μL / well of PBS (pH 7.0) containing 0.05% Tween20. Then,
Add 100 μL / well of antigen-labeled antibody mixture and incubate at room temperature for 1
Reacted for hours. After the reaction, PBS containing 0.05% Tween 20 (pH
7.0) Washed 5 times with 200 μL / well. After washing, 3.3 mg / mL
O-Phenylenediamine-containing 0.1M citric acid-phosphate buffer (pH 5.0), 0.02% hydrogen peroxide was added to the substrate solution 100
μL / well was added and reacted at room temperature for 30 minutes. After the reaction, 1.
The reaction was stopped by adding 100 μL / well of 5N sulfuric acid, and the main wavelength was 492 nm and the sub wavelength was 630 nm using a microplate colorimeter.
The OD value of each well was measured by. A sample with an OD value of cutoff or more was determined to be positive. Table 1 shows the performance of this ELISA when the clinical diagnosis was used as a control. The cut-off value was a value obtained by adding the standard absorbance three times the standard deviation to the average absorbance of normal human serum.

【0055】このELISAにおいて、検体をウェルに加え
てから、比色計でO.D.値を測定するまでに要した時間は
約3時間であった。 (2) 抗体捕捉法によるIgMのELISA(II) 実施例3-1記載の抗ヒトIgMモノクローナル抗体固相マイ
クロプレートウェル中のプレート保存液を除いた後、
(1)で用いたのと同じ血清を0.5% BSAと0.05% Tween20を
含むPBS(pH7.0)で200倍に希釈し、100μLを固相マイク
ロプレートのウェルに加え、室温(15℃〜25℃)で1時間
反応させた。反応後、0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0)
200μL/ウェルで3回洗浄した。ついで、抗原溶解液を0.
5% BSAと0.05% Tween20を含むPBS(pH7.0)を用いて、実
施例2-3記載の精製品を1μg/mLに希釈して作製した。
In this ELISA, the time required from the addition of the sample to the well to the measurement of the OD value with a colorimeter was about 3 hours. (2) IgM ELISA by antibody capture method (II) After removing the plate stock solution in the anti-human IgM monoclonal antibody solid phase microplate well described in Example 3-1,
The same serum used in (1) was diluted 200-fold with PBS (pH 7.0) containing 0.5% BSA and 0.05% Tween 20, and 100 μL was added to the wells of the solid-phase microplate at room temperature (15 ° C to 25 ° C). The reaction was carried out at (° C) for 1 hour. After the reaction, PBS containing 0.05% Tween 20 (pH 7.0)
Washed 3 times with 200 μL / well. Next, add 0.
It was prepared by diluting the purified product described in Example 2-3 to 1 μg / mL with PBS (pH 7.0) containing 5% BSA and 0.05% Tween20.

【0056】抗原溶解液を固相マイクロプレートのウェ
ルに100μL/ウェルで加えた後、室温(15℃〜25℃)で1時
間反応させた。反応後、0.05% Tween20を含むPBS(pH7.
0) 200μL/ウェルで3回洗浄した。ついで、実施例3-2記
載のパーオキシダーゼ標識抗GST抗体を0.5% BSAと0.05%
Tween20を含むPBS(pH7.0)で1μg/mLに希釈し標識抗体
液を作製した。この標識抗体液を100μL/ウェル加え、
室温で1時間反応させた。反応後、0.05% Tween20を含む
PBS(pH7.0) 200μL/ウェルで5回洗浄した。洗浄後、3.3
mg/mL O-フェニレンジアミンを含む0.1Mクエン酸−リン
酸緩衝液(pH5.0)に、0.02%過酸化水素水を加えた基質液
を100μL/ウェル加えて室温で30分間反応させた。反応
後、1.5N硫酸を100μL/ ウェル加えて反応を停止させ、
マイクロプレート用比色計を用いて主波長492nm、副波
長630nmで各ウェルのO.D.値を測定した。O.D.値がカッ
トオフ以上の検体を陽性と判定した。表1に臨床診断を
対照とした場合の、このELISAの性能を示した。なおカ
ットオフ値は正常ヒト血清の吸光度の平均に標準偏差を
3倍したものを加えた値とした。このELISAにおいて、検
体をウェルに加えてから、比色計でO.D.値を測定するま
でに要した時間は約4時間であった。
The antigen solution was added to the wells of the solid phase microplate at 100 μL / well, and then reacted at room temperature (15 ° C. to 25 ° C.) for 1 hour. After the reaction, PBS containing 0.05% Tween 20 (pH 7.
0) Washed 3 times with 200 μL / well. Then, the peroxidase-labeled anti-GST antibody described in Example 3-2 was added to 0.5% BSA and 0.05%.
A labeled antibody solution was prepared by diluting to 1 μg / mL with PBS containing Tween 20 (pH 7.0). Add 100 μL / well of this labeled antibody solution,
The reaction was carried out at room temperature for 1 hour. After reaction, contains 0.05% Tween 20
The plate was washed 5 times with 200 μL / well of PBS (pH 7.0). After washing 3.3
To a 0.1 M citric acid-phosphate buffer solution (pH 5.0) containing mg / mL O-phenylenediamine, 100 μL / well of a substrate solution prepared by adding 0.02% hydrogen peroxide solution was added and reacted at room temperature for 30 minutes. After the reaction, add 100 μL / well of 1.5N sulfuric acid to stop the reaction,
The OD value of each well was measured at a main wavelength of 492 nm and a sub wavelength of 630 nm using a colorimeter for microplates. A sample with an OD value of cutoff or more was determined to be positive. Table 1 shows the performance of this ELISA when the clinical diagnosis was used as a control. The cutoff value is the standard deviation of the average absorbance of normal human serum.
The value obtained by adding 3 times was used. In this ELISA, the time required from the addition of the sample to the well to the measurement of the OD value with a colorimeter was about 4 hours.

【0057】[0057]

【表1】 ※1 感度(%)= 臨床診断で伝染性単核症と診断された血
清のうちELISAで陽性と判定された血清の割合 ※2 特異性(%)=正常血清のうちELISAで陰性と判定され
た血清の割合
[Table 1] * 1 Sensitivity (%) = Percentage of sera diagnosed as infectious mononucleosis by clinical diagnosis that were determined to be positive by ELISA * 2 Specificity (%) = Normal serum determined as negative by ELISA Serum percentage

【0058】以上の結果から、酵素標識した抗GST抗体
及びGSTと遺伝子工学的に融合させたEBV抗原を抗体捕捉
法ELISAに用いることにより、EBVに対するIgM抗体を高
感度且つ特異性高く検出することが可能である。さらに
上記抗体と抗原をあらかじめ混合することにより、ELIS
Aのステップを削減することが可能であり、これによりE
LISAに要する時間を短縮することができる。また、従
来、ELISAを構築するにあたって、必要であったEBVに対
する抗体を作出する工程及びその抗体に酵素標識等をラ
ベリングする工程を省略することができる。
From the above results, it is possible to detect the IgM antibody against EBV with high sensitivity and specificity by using the enzyme-labeled anti-GST antibody and the EBV antigen genetically fused with GST in the antibody capture method ELISA. Is possible. Furthermore, by premixing the above antibody and antigen,
It is possible to reduce the steps of A, which results in E
The time required for LISA can be shortened. Further, in the conventional construction of ELISA, the step of producing an antibody against EBV and the step of labeling the antibody with an enzyme label or the like can be omitted.

【0059】[0059]

【発明の効果】標識したタグに対する抗体及びタグを結
合した抗原を用いる抗体捕捉法による免疫学的測定方法
により、抗体を高感度且つ特異性高く検出することが可
能である。また、従来、免疫学的測定方法を構築するに
あたって、必要であった抗原に対する抗体を作出する工
程及びその抗体に酵素標識等をラベリングする工程を省
略することが可能となった。
INDUSTRIAL APPLICABILITY It is possible to detect an antibody with high sensitivity and high specificity by an immunological measurement method by an antibody capture method using an antibody against a labeled tag and an antigen bound with the tag. Further, in the conventional construction of an immunological measurement method, it became possible to omit the step of producing an antibody against an antigen and the step of labeling the antibody with an enzyme label or the like, which were necessary.

【0060】[0060]

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> Denka Seiken <120> A method for immuno-detection of an antibody by an antibody capture method <130> P01-0493 <140> <141> <160> 2 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:Synthetic <400> 1 ctatcagacg gatcctggca cgccggct 28 <210> 2 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:Synthetic <400> 2 caccatgttt cgtggtcgac actgtttctt 30[Sequence list]                                SEQUENCE LISTING <110> Denka Seiken <120> A method for immuno-detection of an antibody by an       antibody capture method <130> P01-0493 <140> <141> <160> 2 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic <400> 1 ctatcagacg gatcctggca cgccggct 28 <210> 2 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Synthetic <400> 2 caccatgttt cgtggtcgac actgtttctt 30

【0061】[0061]

【配列表フリーテキスト】 配列番号1および2:合成[Sequence list free text] SEQ ID NOs: 1 and 2: synthetic

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) G01N 33/569 G01N 33/569 L 33/58 33/58 Z // C12N 15/09 C12N 15/00 A (72)発明者 佐藤 俊則 新潟県五泉市南本町一丁目2番2号 デン カ生研株式会社内 Fターム(参考) 2G045 AA28 BA13 BB01 BB03 BB07 BB10 BB20 CA26 CB01 CB21 FB03 FB04 FB05 FB07 FB15 GC10 HA16 4B024 AA11 BA32 CA03 CA07 DA06 GA11 HA03 ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 7 Identification code FI theme code (reference) G01N 33/569 G01N 33/569 L 33/58 33/58 Z // C12N 15/09 C12N 15/00 A (72) Inventor Toshinori Sato 1-2-2 Minamihonmachi, Gosen, Niigata Denka Seiken Co., Ltd. F-term (reference) 2G045 AA28 BA13 BB01 BB03 BB07 BB10 BB20 CA26 CB01 CB21 FB03 FB04 FB05 FB07 FB15 GC10 HA16 4B024A11 BA32 CA03 CA07 DA06 GA11 HA03

Claims (17)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 少なくともタグを結合した抗原およびタ
グに対する標識した抗体を使用することを特徴とする抗
体捕捉法による検体中の該抗原に対する抗体の免疫学的
測定方法。
1. A method for immunologically measuring an antibody against an antigen in a sample by an antibody capture method, which comprises using an antigen bound to at least a tag and a labeled antibody against the tag.
【請求項2】 さらに、タグが結合した抗原に対する検
体中の抗体に結合する物質を固相化したプレートを使用
することを特徴とする、請求項1記載の抗体捕捉法によ
る検体中の該抗原に対する抗体の免疫学的測定方法。
2. The antigen in the sample according to the antibody capture method according to claim 1, further comprising a plate on which a substance that binds to an antibody in the sample against the antigen bound to the tag is immobilized. Immunoassay method for antibody against sucrose.
【請求項3】 (a) 抗体に結合する物質を固相化した
プレートに、検体を添加する工程、(b) 該プレートに
タグが結合した抗原を添加する工程、および(c)該プレ
ートに該タグに対する標識した抗体を添加する工程を含
む請求項1または2記載の抗体捕捉法による検体中の該
抗原に対する抗体の免疫学的測定方法。
3. (a) adding a sample to a plate on which a substance that binds to an antibody is immobilized, (b) adding an antigen having a tag bound to the plate, and (c) adding to the plate The immunological measurement method of the antibody with respect to the said antigen in a sample by the antibody capture method of Claim 1 or 2 including the process of adding the labeled antibody with respect to this tag.
【請求項4】 免疫学的測定方法がELISAである、請求
項1〜3のいずれか1項記載の免疫学的測定方法。
4. The immunological measuring method according to claim 1, wherein the immunological measuring method is ELISA.
【請求項5】 タグを結合した抗原と標識したタグに対
する抗体をあらかじめ混合した後に使用することを特徴
とする請求項1〜4のいずれか1項記載の抗体捕捉法に
よる抗体の免疫化学的測定方法
5. The immunochemical measurement of an antibody by the antibody capture method according to claim 1, wherein the antigen bound with the tag and the antibody against the labeled tag are premixed before use. Method
【請求項6】 タグを結合した抗原が、遺伝子組換え法
により作製される、タグと抗原との融合蛋白質であるこ
とを特徴とする、請求項1〜5のいずれか1項記載の抗
体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法
6. The antibody capture according to any one of claims 1 to 5, wherein the antigen bound with the tag is a fusion protein of the tag and the antigen produced by a gene recombination method. Immunoassay method for antibody
【請求項7】 タグがHis6、GST(Glutathione S-Tran
sferase)、MBP(Maltose Binding Protein)、ガラク
トース結合蛋白質、チオレドキシンからなる群から選ば
れる蛋白質からなることを特徴とする、請求項1〜6の
いずれか1項記載の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測
定方法
7. The tag is His 6 , GST (Glutathione S-Tran
sferase), MBP (Maltose Binding Protein), galactose-binding protein, and thioredoxin. The immunology of the antibody by the antibody capture method according to any one of claims 1 to 6, which is characterized by comprising a protein selected from the group consisting of: Measurement method
【請求項8】 抗原がエプスタインーバールウイルス
(EBV)抗原であることを特徴とする、請求項1〜7の
いずれか1項記載の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測
定方法。
8. The method for immunologically measuring an antibody by the antibody capturing method according to claim 1, wherein the antigen is an Epstein-Barr virus (EBV) antigen.
【請求項9】 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト免
疫グロブリン抗体であることを特徴とする、請求項1〜
8のいずれか1項記載の抗体捕捉法による検体中の該抗
原に対する抗体の免疫学的測定方法。
9. The method according to claim 1, wherein the substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human immunoglobulin antibody.
9. A method for immunologically measuring an antibody against the antigen in a sample by the antibody capture method according to any one of 8 above.
【請求項10】 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト
IgM抗体であることを特徴とする、請求項9記載の検体
中の抗体捕捉法による抗体の免疫学的測定方法。
10. The substance that binds to the antibody in the specimen is anti-human
The method for immunologically measuring an antibody by the method for capturing an antibody in a specimen according to claim 9, which is an IgM antibody.
【請求項11】 少なくともタグを結合した抗原と標識
したタグに対する抗体を含む、抗体捕捉法により検体中
の抗体を測定するための試薬。
11. A reagent for measuring an antibody in a sample by an antibody capture method, which comprises at least a tag-bound antigen and an antibody against the labeled tag.
【請求項12】 さらに、タグが結合した抗原に対する
検体中の抗体に結合する物質を固相化したプレートを含
む、請求項11記載の抗体測定試薬。
12. The antibody measuring reagent according to claim 11, further comprising a plate on which a substance that binds to an antibody in a sample for an antigen to which a tag is bound is immobilized.
【請求項13】 タグを結合した抗原が、遺伝子組換え
法により作製される、タグと抗原との融合蛋白質である
ことを特徴とする、請求項11または12記載の抗体測
定試薬。
13. The antibody measuring reagent according to claim 11 or 12, wherein the antigen bound with the tag is a fusion protein of the tag and the antigen, which is produced by a gene recombination method.
【請求項14】 タグがHis6、GST(Glutathione S-Tr
ansferase)、MBP(Maltose Binding Protein)、ガラ
クトース結合蛋白質、チオレドキシンからなる群から選
ばれる蛋白質からなることを特徴とする、請求項11〜
13のいずれか1項記載の抗体測定試薬。
14. The tag is His 6 , GST (Glutathione S-Tr
ansferase), MBP (Maltose Binding Protein), a galactose binding protein, and a protein selected from the group consisting of thioredoxin.
13. The antibody measuring reagent according to any one of 13 above.
【請求項15】 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト
免疫グロブリン抗体であることを特徴とする、請求項1
1〜14のいずれか1項記載の抗体測定試薬。
15. The method according to claim 1, wherein the substance that binds to the antibody in the sample is an anti-human immunoglobulin antibody.
The antibody measuring reagent according to any one of 1 to 14.
【請求項16】 検体中の抗体に結合する物質が抗ヒト
IgM抗体であることを特徴とする、請求項15記載の抗
体測定試薬。
16. A substance that binds to an antibody in a sample is anti-human
The antibody measuring reagent according to claim 15, which is an IgM antibody.
【請求項17】 抗原がエプスタインーバールウイルス
(EBV)抗原であることを特徴とする、請求項11〜1
6のいずれか1項記載の抗体測定試薬。
17. The method according to claims 11 to 1, characterized in that the antigen is the Epstein-Barr virus (EBV) antigen.
6. The antibody measuring reagent according to any one of 6 above.
JP2001229713A 2001-07-30 2001-07-30 Antibody immunoassay by antibody capture method Expired - Lifetime JP4619580B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001229713A JP4619580B2 (en) 2001-07-30 2001-07-30 Antibody immunoassay by antibody capture method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001229713A JP4619580B2 (en) 2001-07-30 2001-07-30 Antibody immunoassay by antibody capture method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2003043044A true JP2003043044A (en) 2003-02-13
JP4619580B2 JP4619580B2 (en) 2011-01-26

Family

ID=19062018

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2001229713A Expired - Lifetime JP4619580B2 (en) 2001-07-30 2001-07-30 Antibody immunoassay by antibody capture method

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP4619580B2 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1300582C (en) * 2003-08-20 2007-02-14 香港神农有限公司 Reagent box for enzyme linked immunosorbent assay of EB virus protease and its preparation
JP2008241374A (en) * 2007-03-26 2008-10-09 Seiko Epson Corp Detection kit
JP2011209307A (en) * 2011-07-29 2011-10-20 Seiko Epson Corp Detection kit

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH022399A (en) * 1987-11-11 1990-01-08 G Gene Galway Ltd Identification of antigen, assay thereof and vaccine containing said antigen
WO2000006605A2 (en) * 1998-07-28 2000-02-10 Micromet Ag Heterominibodies
WO2000017235A2 (en) * 1998-09-23 2000-03-30 Zymogenetics, Inc. Cytokine receptor zalpha11
WO2000029442A1 (en) * 1998-11-16 2000-05-25 Genovac Ag Method for producing antibodies acting against a polypeptide that only recognises the coding nucleic acid

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH022399A (en) * 1987-11-11 1990-01-08 G Gene Galway Ltd Identification of antigen, assay thereof and vaccine containing said antigen
WO2000006605A2 (en) * 1998-07-28 2000-02-10 Micromet Ag Heterominibodies
WO2000017235A2 (en) * 1998-09-23 2000-03-30 Zymogenetics, Inc. Cytokine receptor zalpha11
WO2000029442A1 (en) * 1998-11-16 2000-05-25 Genovac Ag Method for producing antibodies acting against a polypeptide that only recognises the coding nucleic acid

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1300582C (en) * 2003-08-20 2007-02-14 香港神农有限公司 Reagent box for enzyme linked immunosorbent assay of EB virus protease and its preparation
JP2008241374A (en) * 2007-03-26 2008-10-09 Seiko Epson Corp Detection kit
JP2011209307A (en) * 2011-07-29 2011-10-20 Seiko Epson Corp Detection kit

Also Published As

Publication number Publication date
JP4619580B2 (en) 2011-01-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2021223701B2 (en) Methods and reagents for diagnosis of SARS-CoV-2 infection
US11054429B1 (en) SARS-CoV-2 surrogate virus neutralization test based on antibody-mediated blockage of ACE2-spike protein binding
JP5033127B2 (en) Methods and compositions for detecting herpes simplex virus type 2
CN111978377B (en) COVID-19 antigen, preparation method and application
CN110914685A (en) Use of REP proteins as protein antigens in diagnostic assays
AU2010219698A1 (en) Method for detecting substance in biological sample
CA2803234A1 (en) Histone citrullinated peptides and uses thereof
JP6808178B2 (en) Simultaneous detection method and kit for human parvovirus B19 antigen and antibody
WO2008034297A1 (en) Method of detecting antibodies against a series of human immunodeficiency virus proteins
JP6122779B2 (en) Method for measuring anti-WT1 antibody
JP4619580B2 (en) Antibody immunoassay by antibody capture method
WO2021170090A1 (en) Sars-cov-2 virus detection method and detection kit
US20220026428A1 (en) Detection of antibodies to sarsr-cov
EP3922262A1 (en) Assay for the detection of the cys-like protease (mpro) of sars-cov-2
JP2024022080A (en) Polypeptide, method for detecting anti-hepatitis E virus antibody, method for simultaneous detection of anti-hepatitis E virus antibody and hepatitis E virus, and kit
IL295754A (en) Methods and reagents for diagnosis of sars-cov-2 infection
JP2001289856A (en) Method and reagent for measurement of chlamydia pneumonia
JP2015215244A (en) Method for improving detection sensitivity of anti-htlv antibody in immunoassay

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20080626

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20100520

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20100525

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20100726

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20101005

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20101027

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131105

Year of fee payment: 3

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 4619580

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313111

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

EXPY Cancellation because of completion of term