JP2002508748A - Use of virus-like particles as adjuvants - Google Patents

Use of virus-like particles as adjuvants

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Abstract

(57)【要約】 非複製ウイルス様粒子(VLP)を含むアジュバント処方物が提要される。VLPは任意のいくつかのウイルス由来であり得、そして選択された抗原(ここで、抗原は粒子とは異なる)に対する免疫学的応答を増強するに有用である。   (57) [Summary] An adjuvant formulation comprising non-replicating virus-like particles (VLPs) is provided. VLPs can be from any of several viruses, and are useful for enhancing an immunological response to a selected antigen, where the antigen is different from the particle.

Description

【発明の詳細な説明】 アジュバントとしてのウイルス様粒子の使用 技術分野 本発明は、一般に、選択された抗原に対する免疫応答を増強する薬剤に関する 。特に、本発明は、アジュバントおよびコアジュバントとしてのウイルス様粒子 (VLP)の使用、VLPを含む処方物、ならびに本発明の組成物の作成および使用の ための方法に関する。 背景 ワクチン組成物には、しばしば、細胞媒介性免疫応答および体液性免疫応答を 増強するための免疫学的アジュバントが含まれる。例えば、投与された抗原を吸 着および/または沈殿させ、そして注入部位での抗原を保持し得る貯蔵(depot) アジュバントが、しばしば使用される。代表的な貯蔵アジュバントには、アルミ ニウム化合物および油中水エマルジョンが含まれる。しかし、貯蔵アジュバント (しかし、抗原性を増加している)は、皮下または筋肉内に注入された場合、し ばしば、肉芽腫、膿瘍および廠痕のような重篤な持続性の局部反応を刺激する。 リポ多糖およびムラミルジペプチドのような他のアジュバントは、注入および/ またはライター症状(インフルエンザ様症状、全身性の関節の不快、そして時に は、前部ブドウ膜炎、関節炎、および尿道炎)における発熱性応答を惹起し得る 。 吸着または包括された抗原を有する粒子キャリアは、これらの問題を迂回する ための試みにおいて使用されている。このようなキャリアは、免疫系に対して選 択された抗原の複数コピーを示し、そして局部リンパ節における抗原の捕獲およ び保持を促進する。粒子はマクロファージによって貴食され、そしてサイトカイ ン放出によって抗原提示を増強し得る。粒子キャリアの例には、ポリメチルメタ クリル酸ポリマ一由来の粒子キャリア、ならびにPEGとして公知である、ポリ( ラクチド)およびポリ(ラクチド-コ-グリコリド)由来の微粒子が含まれる。他 のより毒性の系を上回る重要な利点を提供する場合、抗原含有PLG微粒子は、 いくつかの欠点をこうむる。例えば、微粒子の産生は困難であり、かつ抗原を変 性しそしてその免疫原性を破壊し得る苛酷な化学物質の使用を伴う。さらに、抗 原不安定性が、小微粒子の調製に使用される高剪断力に起因して、および使用さ れるエマルジョン内の界面効果に起因して、生じ得る。 リポソームはまた、これらの問題を克服するために使用されている。リポソー ムは、薬剤を捕獲する(entrap)ために使用されるリン脂質のような脂質成分か ら形成される微小な小胞である。薬物送達システムとしてのリポソームの使用は 上記のいくつかの問題を軽減するが、リポソームは、貯蔵および使用の間低い安 定性を示し、そしてリポソームの大規模な産生および製造は問題が多い。 ウイルス粒子は、宿主の免疫系に対して捕獲されたまたはそれと結合された抗 原の適切な提示のためのマトリックスとして使用され得る。例えば、米国特許第 4,722,840号は、ウイルス由来の構造タンパク質の粒子形成フラグメント(例え ば、異種ポリペプチドに融合した、B型肝炎ウイルスウイルス(HBV)表面抗原 (HBsAg)の粒子形成フラグメント)からなるハイブリッド粒子を記載する。Tin dleら、Virology(1994)200:547-557は、ヒトパピローマウイルス(HPV)型16E 7形質転換タンパク質のエピトープを含むキメラHBVコア抗原粒子の産生および使 用を記載する。 Adamsら、Nature(1987)329:68-70は、酵母におけるハイブリッドHIVgp120:T y VLPの組換え産生を記載し、Brownら、Virology(1994)198:477-488は、ヒト パルボウイルスB19のVP2タンパク質、ならびにヒト単純ヘルペスウイルス1型お よびマウス肝炎ウイルスA59由来のエピトープからなるキメラタンパク質の産生 を記載する。Wagnerら、Virology(1994)200:162-175、Brandら、J.Virol.Me th.(1995)51:153-168およびWagnerら、Virology(1996)220:128-140は、キメ ラHIV-1 p55gag粒子のアセンブリを記載する。米国特許第5,503,833号は、治療 剤のカプセル化および送達のためのロタウイルスVP6スフェア(sphere)の使用 を記載する。 上記の抗原提示システムにかかわらず、種々の薬学的組成物およびワクチンに おける使用のための有効かつ安全なアジュバントの継続した必要が存在する。 発明の要旨 本発明者らは、驚くことに、VLPとの選択された抗原の組合わせ(ここで、抗 原はVLPと異なる)は、問題の抗原に対する免疫応答の増強を提供することを見 い出した。 1つの実施態様において、次いで、本発明は、VLPアジュバント、選択された 抗原、および薬学的に受容可能な賦形剤を含むワクチン組成物に関する。選択さ れた抗原は、VLPとは異なる。特に好ましい実施態様において、VLPは、肝炎表面 抗原の1つ以上の粒子形成ポリペプチド、またはパピローマウイルスL1および/ もしくはL2タンパク質の粒子形成ポリペプチドに由来し、そして選択された抗原 は、MenC/Hibオリゴ糖結合体またはHPV E7である。 別の実施態様において、本発明は、VLPアジュバントおよび選択された抗原を 脊椎動物体に投与する工程を包含する、脊椎動物体における増強された免疫応答 を産生するための方法に関する。抗原はVLPとは異なり、そしてVLPは、脊椎動物 体における抗原に対する増強された免疫応答を惹起するのに有効な量で投与され る。VLPは、抗原投与の前、後、または同時に被検体に投与され得る。 なお別の実施態様において、本発明は、VLPを提供する工程およびVLPと薬学的 に受容可能な賦形剤とを組合わせる工程を包含するアジュバント処方物を調製す るための方法に関する。 本発明のこれらおよび他の実施態様は、本明細書中に関して当業者に容易に達 成される。 図面の簡単な説明 図1は、B型肝炎ウイルスVLP(HBV)を含むワクチンに対する胎仔ヒヒの抗体 を示す。結果は、IU/mlにおける抗体濃度の相乗平均として示される。 図2は、HBV VLPを含むワクチンに対する、胎仔ヒヒの抗体応答を示す。結果 は、IU/mlにおける抗体濃度の相乗平均として示される。 図3は、HBV VLPを含むワクチンに対する、胎仔ヒヒの抗カプセル抗体応答を 示す。結果は、IU/mlにおける抗体濃度の相乗平均として示される。 図4は、HBV VLPを含むワクチンに対する、胎仔ヒヒの抗カプ七ル抗体応答を 示す。結果は、IU/mlにおける抗体濃度の相乗平均として示される。 図5Aおよび5Bは、HBV VLPを含むワクチンに対する、胎仔ヒヒの血清抗体応 答を示す、図5Aは、ELISAによって決定されるIgG抗カプセル抗体応答を示す。 図5Bは、相補的媒介性細菌抗体を示す。 図6は、ウサギ体液性免疫応答における、HPV6b L1 VLPとE7ワクチンとの組合 わせの効果を示す。 発明の詳細な説明 本発明の実施は、他に示されない限り、当該分野の技術範囲内である、ウイル ス学、化学、生化学、組換え技術、免疫学および薬理学の従来の方法を使用する 。このような技術は文献において十分に説明される。例えば、Virology,第3版 、第I巻および第II巻(B.N.FieldsおよびD.M.Knipe編,1996);Remlngton's Pharmaceutical Sciences,第18版(Easton,Pennsylvania:Mack Publishing Company,1990);Methods In Enzymology(S.ColowickおよびN.Kaplan編、Acade mic Press,Inc.);Handbook of Experimental Immunology,第I巻-第IV巻(D.M .WeirおよびC.C.Blackwell編,1986,Blackwell Scientific Publications); Sambrookら、Molecular Cloning:A Laboratory Manual(第2版,1989);およびDN A Cloning:A Practical Approach,第I巻および第II巻(D.Glover,編)を参照の こと。 本明細書および添付の請求の範囲で使用される場合、単数形「a」、「an」 および「the」は、内容がそうではないと明確に示さない限り、複数形の表示 を含む。 A.定義 本発明の記載において、以下の用語が使用され、そして下記のように定義され ることを意図する。 本明細書中で使用される場合、用語「ウイルス様粒子」または「VLP」とは 、以下でさらに議論されるいくつかのウイルスのいずれかから誘導される複製し ていない空のウイルス殻をいう。VLPは一般に、1つ以上のウイルスタンパク 質 (例えば、カプシド、コート、殻、表面および/またはエンベロープタンパク質 といわれるタンパク質を含むが、これらに限定されない)、あるいはこれらのタ ンパク質から誘導される粒子形成ポリペプチドから構成される。VLPは適切な発 現系において、タンパク質の組換え発現によって自発的に形成し得る。特定のVL Pを産生するための方法は、当該分野で公知であり、そして以下でより十分に議 論される。ウイルスタンパク質の組換え発現後の、VLPの存在は、当該分野で公 知の従来の技術(例えば、電子顕微鏡検査法、X線結晶学など)を使用して検出 し得る。例えば、Bakerら、Biophys.J.(1991)60:1445-1456;HagenseeらJ.Virol .(1994)68:4503-4505を参照のこと。例えば、低温電子顕微鏡検査が、問題のV LP調製物のガラス化水性サンプルについて実施され得、そして、画像が適切な 曝露条件下で記録される。 特定のウイルスタンパク質から誘導される「粒子形成ポリペプチド」によって 、全長または全長に近いウイルスタンパク質、ならびにそれらのフラグメント、 または内部欠失を有するウイルスタンパク質(これは、VLP形成に有利な条件 下でVLPを形成する能力を有する)が意味される。従って、ポリペプチドは、 参照分子の全長配列、フラグメント、短縮型および部分的配列、ならびにアナロ グおよび前駆体形態を含み得る。それゆえ、この用語は、ポリペプチドがVLPを 形成する能力を保持する限り、この配列に対する欠失、付加および置換を意味す る。従って、この用語は、特定のポリペプチドの天然の変化を含む。なぜならコ ートタンパク質における変化が、しばしばウイルス単離物の間に生じるからであ る。この用語はまた、タンパク質がVLPを形成する能力を保持する限りは、参照 タンパク質において天然では生じない欠失、付加および置換を含む。 好ましい置換は、天然に保存されている置換(すなわち、アミノ酸側鎖におい て関連するアミノ酸のファミリー内に生じる置換)である。具体的には、アミノ 酸は、一般に4つのファミリーに分けられる:(1)酸性--アスパラギン酸およ びグルタミン酸:(2)塩基性--リジン、アルギニン、ヒスチジン;(3)非極 性--アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン 、メチオニン、トリプトファン;および(4)無電荷で極性--グリシン、アスパ ラギン、グルタミン、システイン、セリン、スレオニン、チロシン。フェニルア ラ ニン、トリプトファンおよびチロシンは、時には芳香族アミノ酸として分類され る。例えば、イソロイシンまたはバリンでのロイシンの孤立置換、グルタミン酸 でのアスパラギン酸の孤立置換、セリンでのスレオニンの孤立置換、または構造 的に関連するアミノ酸での類似の保存的置換が、生物学的活性に主要な効果を有 さないことは、合理的に予想可能である。それゆえ、参照分子と実質的に同じア ミノ酸配列を有するが、タンパク質の免疫原性に実質的に影響しない少数のアミ ノ酸置換を保有するタンパク質は、参照ポリペプチドの定義内にある。 抗原がVLP内に捕捉されず、ならびに/または抗原およびVLPが融合タンパク質 として共に発現されない場合、VLPは選択された抗原とは「異なる」。しかし、V LPは、たとえ抗原とVLPとの間に疎物理的会合が存在しても、選択された抗原と は「異なる」と考えられる。 「抗原」とは、宿主の免疫系を刺激して体液性および/または細胞性抗原特異 的応答を行う、1つ以上のエピトープ(直線状、コンフォメーション状のいずれ かまたはその両方)を含有する分子をいう。この用語は、用語「免疫原」と交換 可能に使用される。通常、B細胞エピトープは、少なくとも約5アミノ酸を含む が、3〜4程度の少ないアミノ酸でもあり得る。T細胞エピトープ(例えば、C TLエピトープ)は、少なくとも約7〜9アミノ酸を含み、そしてヘルパーT細 胞エピトープは、少なくとも約12〜20アミノ酸を含む。用語「抗原」は、両 方のサブユニット抗原(すなわち、天然において抗原が関連している生物全体か ら分離および別々にされる抗原)、ならびに殺傷された、弱毒化された、または 不活化された、細菌、ウイルス、真菌、寄生虫または他の微生物を意味する。抗 イディオタイプ抗体、またはそのフラグメント、および合成ペプチドミモトープ (mimotope)(これは、抗原または抗原決定基を模倣し得る)のような抗体もまた 、本明細書中で使用される抗原の定義のもとに捕捉される。同様に、インビボ( 例えば、遺伝子治療およびDNA免疫適用)において抗原または抗原決定基を発現 するオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドもまた、本明細書中の抗原の定 義に含まれる。 本発明の目的のために、抗原は、以下でより十分に記載されるように、いくつ かの既知のウイルス、細菌、寄生虫および真菌のいずれかから誘導され得る。こ の用語はまた、種々の任意の腫瘍抗原を意図する。さらに、本発明の目的のため に、「抗原」とは、本明細書に定義されるように、タンパク質が免疫応答を誘発 する能力を保持する限り、例えば、ネイティブ配列に対して(一般的に天然にお いて保存的な)欠失、付加および置換のような改変を含むタンパク質をいう。こ れらの改変は、部位特異的突然変異誘発によってのような計画的なものであり得 るか、または抗原を産生する宿主の変異によってのような偶発的なものであり得 る。 抗原または組成物に対する「免疫学的応答」は、目的の組成物に存在する抗原 に対する体液性および/または細胞性免疫応答の、被検体における発生である。 本発明の目的のために、「体液性免疫応答」は、抗体分子によって媒介される免 疫応答をいい、一方「細胞性免疫応答」は、Tリンパ球および/または他の白血 球によって媒介されるものである。細胞性免疫の1つの重要な局面は、細胞傷害 性T細胞(「CTL」)による抗原特異的応答を含む。CTLは、主要組織適合遺伝子 複合体(MHC)によってコードされかつ細胞の表面で発現されるタンパク質に結 合して提示されるペプチド抗原についての特異性を有する。CTLは、細胞内微生 物の細胞内破壊、またはこのような微生物に感染した細胞の溶解の誘導および促 進を助ける。細胞性免疫の別の局面は、ヘルパーT細胞による抗原特異的応答を 含む。ヘルパーT細胞は、非特異的エフェクター細胞の機能の剌激を助けるよう に作用し、そして非特異的エフェクター細胞の活性をそれらの表面にMHC分子に 結合してペプチド抗原を提示する細胞に対して集中させるように作用する。「細 胞性免疫応答」はまた、サイトカイン、ケモカイン、ならびに活性化T細胞およ び/または他の白血球によって産生される他のこのような分子(CD4+およびCD8+ T細胞に由来するものを含む)の産生をいう。 細胞性免疫応答を誘発する組成物またはワクチンは、細胞表面でMHC分子と結 合した抗原の提示によって、脊椎動動物被検体を感作するように働き得る。細胞 媒介性免疫応答は、それらの表面で抗原を提示する細胞で、またはその付近に指 向される。さらに、抗原特異的Tリンパ球は、免疫された宿主の将来の防御を可 能にするように生成され得る。 特定の抗原が細胞媒介性免疫学的応答を刺激する能力は、リンパ増殖(lympho prollferation)(リンパ球活性化)アッセイ、CTL細胞傷害性細胞アッセイ、ま たは感作された被検体における抗原に特異的なTリンパ球についてのアッセイの ような多数のアッセイにより決定され得る。このようなアッセイは、当該分野で 周知である。例えば、Ericksonら、J.Immunol.(1993)151:4189-4199;Doeら、E ur.J.Immunol.(1994)24:2369-2376を参照のこと。 従って、本明細書中で使用されるような免疫学的な応答は、CTLの産生、およ び/またはヘルパーT細胞の産生もしくは活性化を刺激するものであり得る。目 的の抗原はまた、抗体媒介性免疫応答を誘発し得る。従って、免疫学的応答は、 1つ以上の以下の効果を含み得る:B細胞による抗体の産生;ならびに/あるい は目的の組成物もしくはワクチンに存在する抗体に特異的に指向される、サプレ ッサーT細胞および/またはγδT細胞の活性化。これらの応答は、感染性の中 和、および/または抗体-補体、すなわち抗体依存性細胞細胞傷害性(ADCC)の 媒介に役立って、免疫された宿主に保護を提供し得る。このような応答は、当該 分野で周知の標準的なイムノアッセイおよび中和アッセイを用いて決定され得る 。 選択された抗原を本発明のVLPアジュバントとともに含むワクチン組成物、ま たは本発明のVLPアジュバントと同時投与されるワクチン組成物は、VLPアジュバ ントまたはコアジュバント(coadjuvant)を伴わないで投与される抗原の等価な 量によって誘発される免疫応答よりも大きな免疫応答を誘発する能力を有する場 合、「増強された免疫原性」を提示する。従って、ワクチン組成物は、「増強さ れた免疫原性」を提示し得る。なぜなら、抗原はより強力に免疫原性であるから である。または、なぜなら、より低い用量またはより少ない用量の抗原は、抗原 が投与される被検体における免疫応答を達成するのに必要であるからである。こ のような増強された免疫原性は、VLP組成物および抗原コントロールを動物に投 与し、そして当該分野で周知のラジオイムノアッセイおよびELISAのような標準 的なアッセイを用いて、この2つに対する抗体力価および/または細胞媒介性免 疫を比較することによって、決定され得る。 本発明の目的のために、VLPアジュバントの「有効な量」は、同時投与される 抗原に対する免疫学的な応答を増強する量である。 「脊椎動物被検体」によって、脊索動物門亜門の任意のメンバーを意味し、こ れはヒトおよび他の霊長類(チンパンジーならびに他の無尾猿(ape)および有 尾猿(monkey)種のような非ヒト霊長類を含む);ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、 およびウマのような農場動物;イヌおよびネコのような家庭用動物;マウス、ラ ット、およびモルモットのような齧歯類を含む実験動物;ニワトリ、七面鳥、お よび他のキジ類の鳥、カモ類、ガンなどのような家庭内、野生、および狩猟用鳥 類を含む鳥類を含むが制限されない。この用語は、特定の齢を意味しない。従っ て、成体および新生児個体の両方が含まれることが意図される。上記の系は、任 意の上記の脊椎動物種における使用が意図される。なぜなら、これらの脊椎動物 の全ての免疫系は、同様に機能するからである。 「薬学的に受容可能」または「薬理学的に受容可能」によって、生物学的また は他の点で所望でない物質、すなわち、何らか所望でない生物学的効果を引き起 こさず、またはその物質が含まれる組成物の任意の成分と有害な様式で相互作用 せずに、VLPアジュバント処方物とともに個体に投与され得る物質を意味する。 「生理学的pH」または「生理学的な範囲のpH」によって、約7.2以上8.0以下の 包括的範囲の、より代表的には約7.2以上7.6以下の範囲のpHを意味する。 核酸分子を記載するために本明細書中で用いられる「組換え」とは、以下の起 源もしくは操作によって、ゲノム、cDNA、半合成、または合成起源のポリヌクレ オチドを意味する:(1)天然において関連するポリヌクレオチドの全てまたは一 部に関連しない;および/または(2)天然において連結するポリヌクレオチド以外 のポリヌクレオチドに連結する。タンパク質またはポリペプチドに関して用いら れる用語「組換え」とは、組換えポリヌクレオチドの発現によって産生されるポ リペプチドを意味する。単一細胞実体として培養される原核生物微生物もしくは 真核生物細胞株を示す「組換え宿主細胞」、「宿主細胞」、「細胞」、「細胞株 」、「細胞培養物」、および他のこのような用語は、交換可能に使用され、そし て組換えベクターまたは他の移入DNAのためのレシピエントとして使用され得る 、または使用されてきた細胞をいい、そしてトランスフェクトされた最初の細胞 の子孫の細胞を含む。単一の親細胞の子孫は、偶然的もしくは意図的な変異に起 因して、もとの親と形態的に、またはゲノムもしくは全DNA相補体において、必 ずしも完全に同一でなくともよいことが理解される。関連する特性(例えば、 所望のペプチドをコードするヌクレオチド配列の存在)によって特徴付けられる 、親に十分類似する親細胞の子孫は、この定義によって意図される子孫に含まれ 、そして上記の用語によって包含される。 本明細書中で使用されるように、「処置」とは、以下のいずれをも言う:(1) 伝統的なワクチンにおけるような、感染または再感染の予防、(ii)症状の低減ま たは排除、および(iii)問題の病原体の実質的なまたは完全な排除。処置は、(感 染前に)予防的にまたは(感染後に)治療的にもたらされ得る。 B.一般的方法 本発明の中心は、VLPが、選択された抗原とともに投与される場合、脊椎動物 被験体における体液性免疫応答および/または細胞性免疫応答を増強するための アジュバントまたはコアジュバントとして作用し得るという発見である。驚くべ きことに、増強した免疫原性を生じさせるために、抗原は、VLP内に捕捉される 必要はない。従って、本発明は、結合剤、過酷な化学処理などの使用を必要とし ない。なぜなら、目的の抗原は、VLPにカプセル化または化学的に結合体化され ないからである。さらに、抗原サイズは、限定されない。なぜなら、この系は、 抗原のカプセル化に依存しないからである。従って本発明の系は、広範な範囲の 抗原とともに有用であり、かつ多数の感染を予防および/または処置するための 強力なツールを提供する。 アジュバントとして使用するためのVLPは、適切な条件下で粒子を形成する能 力を有する、ウイルスタンパク質、ウイルスタンパク質に由来する、粒子形成ポ リペプチド、またはウイルスタンパク質もしくはそのフラグメントの組み合わせ から形成され得る。粒子形成ウイルスタンパク質の必要条件とは、宿主細胞の細 胞質で粒子が形成される場合、タンパク質は、ウイルス様構造の形成が生じるよ うに、そして使用される組換え発現系の細胞においてウイルス様構造へポリペプ チドが自動的に構築されるように発現される宿主細胞中で十分に安定でなければ ならないということである。このタンパク質が培養培地中に分泌される場合、VL Pが形成されるように条件が調節され得る。さらに、粒子形成タンパク質は、発 現宿主中で細胞傷害性であるべきではなく、VLPが使用される宿主中で複製可能 であるべきではない。 例えば、いくつかのタンパク質は、pHが適切なレベルになると、自律的にVLP を形成し得ることが公知である。同様に、いくつかのタンパク質は、VLPを形成 させるために、十分な量のタンパク質が存在することが必要である。 広範な範囲のウイルスタンパク質から粒子を形成させるための方法および適切 な条件は、当該分野で公知である。例えば、B型肝炎ウイルス(HBV)表面に由来す るタンパク質(例えば、表面抗原(sAg)、およびプレ表面配列(pre-S1およびpre-S 2(以前は、pre-Sとよばれた)、ならびにこれらの配列の任意の組み合わせ))は、 適切な宿主細胞における発現の際、例えば、哺乳動物、昆虫、酵母、またはXeno pusの細胞における発現の際に、自律的に粒子を形成し得る。従って、本発明に おける使用のためのHBV VLPとしては、sAg、pre-S1またはpre-S2、および上記の 任意の組み合わせ(例えば、sAg/pre-S1、sAg/pre-S2、sAg/pre-S1/pre-S2、およ びpre-S1/pre-S2)の粒子形成タンパク質が挙げられ得る。例えば、HBV構造の議 論については、Mackett,MおよびWilliamson,J.D.,Human Vaccines and Vaccinat ion、159-176頁の「HBV vaccines--from laboratory to license:a case study 」、および種々のHBV粒子の組換え産生の記載については米国特許第4,722,840号 、同第5,098,704号、同第5,324,513号、Beamesら、J.Virol.(1995)69:6833-683 8、Birnbau・ら、J.Vlrol.(1990)64:3319-3330、Zhouら、J.Virol.(1991)65:54 57-5464を参照のこと。 さらに、パピロマウイルス構造タンパク質L1およびL2由来の粒子形成ポリペプ チドは、本明細書中においてVLPアジュバントおよびコアジュバントとして単独 または組み合わせてのいずれかの使用が見出される。本発明に伴う使用のための L1およびL2タンパク質は、任意の種々のヒトおよび他の動物のパピロマウイルス 、ならびにそのサブグループ(HPV-1、HPV-2、HPV-5、HPV-6、HPV-8、HPV-11、HP V-16、HPV-18、HPV-31、HPV-33、およびHPV-45を含むがこれらに限定されない) 由来であり得る。L1およびL2の配列は、種々のHPV型について公知である。例え ば、種々のHPV型の配列については、Human Papillomaviruses:A Compilation an d Analysis of Nucleic Acid and Amino Acid Sequences(Myers,G.ら編)、Los A lamos National Laboratory,Los Alamos,New Mexico,1994-1996を参照のこと。 L1およびL2から、単独または組み合わせてのいずれかでVLPを形成するための 方法が公知であり、例えば、米国特許第5,437,951号(昆虫細胞におけるL1VLPの 産生);WO 95/20659(ワクシニアウイルスベクターを使用する真核生物細胞にお けるL2 VLPの産生);WO 93/02184(ワクシニアウイルスベクターを使用する真核 生物細胞におけるL1/L2 VLPの産生);Kirnbauerら、J.Virol.(1993)67:6929-693 6(昆虫細胞におけるL1およびL1/L2 VLPの産生);Heinoら、Virology(1995)214:3 49-359(哺乳動物細胞におけるL1およびL1/L2 VLPの産生);Sasagawaら、Virolog y(1995)206:126-135(酵母細胞におけるL1およびL1/L2 VLPの産生);Zhouら、Vir ology(1991)185:251-257(ワクシニアウイルスベクターに感染した上皮細胞にお けるL1/L2 VLPの産生)に報告される。 同様に、いくつかのレトロウイルスタンパク質は、発現の際にVLPを形成する ことが公知である。例えば、ロタウイルスVP6 VLPは、米国特許第5,503,833号に 記載のように産生され得る。一般的に、VP6球状粒子は、組換え産生されたVP6を 含む溶解物のpHが約pH4.0以上になると、自律的に形成する。ウシロタウイルスV P2は、バキュロウイルス系における発現の際に自律的にVLPを形成する。例えば 、Labbeら、J.Virol.(1991)65:2946-2952を参照のこと。 酵母レトロトランスポゾンTyは、VLPに構築されるタンパク質のセットをコー ドする。例えば、Mellorら、Nature(1985)318:583-586;Garfinkelら、Cell(19 85)42:507-517;Adamsら、Cell(1987)49:111-119を参照のこと。Ty VLPは、酵 母における発現の際にTyエレメント1次翻訳(primary translation)産物p1、な らびにp1とp3との組み合わせ(pre-Ty VLP)、およびp1とp3の粒子形成タンパク質 分解産物から形成され得る。例えば、Adamsら、Nature(1987)329:68-70を参照 のこと。 本発明における使用のためのVLPはまた、ヒトパルボウイルスB19由来のウイル スタンパク質(例えば、昆虫細胞において発現されるウイルスタンパク質VP1およ び/またはVP2(Brownら、Virology(1994)198:477-488)を参照のこと)および昆虫 細胞で発現されたポリオーマウイルス由来のVP1、VP2および/またはVP3タンパク 質(Delosら、Virology(1993)194:393-398;Forstovaら、Human Gene Therapy(19 95)6:297-306))に由来し得る。レトロウイルスgagタンパク質(例えば、ラウ ス肉腫ウイルス(RSV)およびモロニーマウス白血病ウイルス(MLV)に由来するもの )もまた、真核生物細胞で発現される場合、自律的にVLPを形成するHIV-1グルー プ特異的コア抗原p55gag、およびその欠失変異体と同様に、本明細書中において 使用が見出される。例えば、Wagnerら、Arch.Virol.(1992)127:117-137;Wagne rら、Virology(1994)200:162-175;Brandら、J.Virol.Meth.(1995)51:153-168、 およびWagnerら、Virology(1996)220:128-140を参照のこと。 上記で説明したように、VLPは、目的の粒子形成ポリペプチドが適切な宿主細 胞において組換え発現される場合、自律的に形成し得る。従って、本発明におけ る使用のためのVLPは、当該分野で周知の組換え技術を使用して、簡便に調製さ れる。この点で、問題の粒子形成ポリペプチドをコードする遺伝子は、公知の技 術を使用して、DNAライブラリーから、またはこの遺伝子を含む細胞および組織 から直接単離され得る。例えば、DNAを得て、単離するために使用した技術の記 載については、Sambrookら(前出)を参照のこと。粒子形成ポリペプチドをコード する遺伝子はまた、公知の配列に基づいて、合成的に生成され得る。ヌクレオチ ド配列は、所望の特定のアミノ酸配列に適切なコドンを用いて設計され得る。一 般的に、配列が発現される意図された宿主に好ましいコドンが選択される。完全 配列は、一般的に、標準的方法によって調製された重複オリゴヌクレオチドから 構築され、完全なコード配列に構築される。例えば、Edge、Nature(1981)292:7 56;Nambairら、Sclence(1984)223:1299;Jayら、J.Biol.Chem(1984)259:6311 を参照のこと。 一旦、所望の粒子形成ポリペプチドについてのコード配列が、単離されるか、 または合成されると、それらは、発現のための任意の適切なベクターまたはレプ リコンにクローニングされ得る。非常に多くのクローニングベクターが当業者に 公知である。そして適切なクローニングベクターの選択は、選択の問題である。 一般的には、Sambrookら(前出)を参照のこと。次いで、ベクターを使用して、適 切な宿主細胞を形質転換する。適切な発現系としては、当該分野で周知の細菌、 哺乳動物、バキュロウイルス/昆虫、ワクシニア、セムリキ森林ウイルス(SFV)、 哺乳動物、酵母およびXenopusの発現系が挙げられるが、これらに限定されない 。特に好ましい発現系は、哺乳動物、ワクシニア、昆虫、および酵母の系である 。 例えば、多くの哺乳動物細胞株が当該分野で公知であり、American Type Cult ure Collection(ATCC)から入手可能な不死化細胞株(例えば、チャイニーズハム スター卵巣(CHO)細胞、HeLa細胞、乳児ハムスター腎臓(BHK)細胞、サル腎臓細胞 (COS)、ヒト肝臓ガン腫細胞(例えば、Hep G2)ならびにその他)が挙げられるが、 これらに限定されない。同様に、E.coli、Bacillus subtilis,およびStreptococ cus spp.のような細菌宿主は、本発明の発現構築物での使用が見出される。本発 明において有用な酵母宿主としては、特に、Saccharomyces cerevisiae、Candid a albicans、Candida maltosa、Hansenula polymorpha、Kluyveromyces fragili s、Kluyveromyces lactis、Pichiaguillerimondii、Pichia pastoris、Schizosa ccharomyces pombeおよびYarrowia lipolyticaが挙げられる。バキュロウイルス 発現ベクターでの使用のための昆虫細胞は、とりわけ、Aedes aegypti、Autogra pha californica、Bombyx mori、Drosophila melanogaster、Spodoptera frugip erda、およびTrichoplusia niが挙げられる。例えば、SummerおよびSmith、Texa s Agricultural Experiment Station Bulletin No.1555(1987)を参照のこと。 ウイルスベクター(例えば、ポックス科のウイルス(ワクシニアウイルスおよ びトリポックスウイルスを含む)に由来するもの)は、真核生物細胞において粒 子の産生のために使用され得る。さらに、Tomeiら、J.Virol.(1993)67:4017-40 26およびSelbyら、J.Gen.Virol.(1993)74:1103-1113に記載されるように、ワク シニアベースの感染/トランスフェクション系もまた、本発明での使用が見出さ れる。この系において、細胞を、バクテリオファージT7 RNAポリメラーゼをコー ドするワクシニアウイルス組換え体でインビトロでまずトランスフェクトする。 このポリメラーゼは、これが、T7プロモータを有するテンプレートのみを転写す るという点で、精巧な特異性を提示する。感染に続いて、細胞は、T7プロモータ ーによって駆動される、目的のDNAでトランスフェクトされる。ワクシニアウイ ルス組換え体から細胞質において発現されるポリメラーゼは、次いで、宿主翻訳 機構によってタンパク質に翻訳されるRNAに、トランスフェクトされたDNAを転写 する。この方法は、大量のRNAおよびこの翻訳産物の高レベルで、一過性の、細 胞質産生を提供する。 選択した発現系および宿主に依存して、VLPを、粒子形成ポリペプチドが発現 され、そしてVLPが形成され得る条件下で発現ベクターによって形質転換された 宿主細胞を増殖させることによって生成する。適切な増殖条件の選択は、当該分 野の技術の範囲内である。VLPが細胞内的に形成される場合、細胞は、化学的、 物理的、または機械的手段を用いて破壊される。この手段は、細胞を溶解するが 、VLPを実質的にインタクトなままにする。このような方法は、当業者に公知で あり、そして例えば、Protein Purification Applications:A Practical Approa ch,(E.L.V.HarrisおよびS.Angal編,1990)において記載される。 次いで、勾配遠心分離(例えば、塩化セシウム(CsCl)およびスクロース勾配) などによるような、その完全性を保存する方法(例えば、Kirnbauerら、J.Viro l.(1993)67:6926-6936を参照のこと)、ならびに標準的な精製技術(例えば、 イオン交換クロマトグラフィーおよびゲル濾過クロマトグラフィー)を用いて、 粒子を単離する。 本発明のVLPアジュバントは、一旦得られると、所望の抗原を含むワクチン組 成物に取り込まれ得るか、または抗原を含む組成物と同時に、その直前に、また はその次にのいずれかで、別々に投与され得る。ワクチン組成物は、感染の処置 および/または予防の両方に使用され得る。さらに、本発明のアジュバント処方 物は、インビボにおいて、すなわちDNA免疫と組み合わせて産生される抗原の活 性を増強するために使用され得る。 VLPアジュバントは、1つ以上の選択された病原体に対して、もしくは病原体 に由来するサブユニット抗原に対して脊椎動物被験体を免疫するため、または1 つまたはいくつかの抗原に対する免疫応答を始動させるための組成物において使 用され得る。VLPアジュバントとともに投与され得る抗原は、タンパク質、ポリ ペプチド、抗原性タンパク質フラグメント、オリゴサッカライド、ポリサッカラ イドなどを含む。同様に、所望の抗原をコードするオリゴヌクレオチドまたはポ リヌクレオチドは、インビボ発現のためにVLPアジュバントとともに投与され得 る。 抗原は、広範な種々のウイルス、細菌、真菌、植物、原虫、および他の寄生虫 に由来し得る。例えば、本発明は、以下を含む、ヘルペスウイルスファミリーに 由来する広範な種々のタンパク質に対する免疫応答を刺激するための利用法を見 出す:単純ヘルペスウイルス(HSV)1型および2型に由来するタンパク質(例え ば、HSV-1およびHSV-2 gB、gD、gH、VP16、およびVP22);水痘−帯状ウイルス( VZV)、エプスタインバーウイルス(EBV)、およびサイトメガロウイルス(CMV)に 由来する抗原(CMV gBおよびgHを含む);ならびに他のヒトヘルペスウイルス由 来の抗原(例えば、HHV6およびHHV7)。(例えば、サイトメガロウイルスのタン パク質コードの状況の概説について、Cheeら、Cytomegaloviruses(J.K.McDou gall編、Springer-Verlag 1990)125-169頁;種々のHSV-1コードタンパク質の議 論について、McGeochら、J.Gen.Virol.(1988)69:1531-1574;HSV-1およびHSV -2のgBおよびgDタンパク質、ならびにそれをコードする遺伝子の議論について、 米国特許第5,171,568号;EBVゲノムにおけるタンパク質コード配列の同定につい て、Baerら、Nature(1984)310:207-211;そしてVZVの概説について、Davison およびScott,J.Gen.Virol.(1986)67:1759-1816を参照のこと)。 さらに、肝炎ファミリーのウイルス(A型肝炎ウイルス(HAV)、B型肝炎ウ イルス(HBV)、C型肝炎ウイルス(HCV)、デルタ型肝炎ウイルス(HDV)、E型 肝炎ウイルス(HEV)、およびG型肝炎ウイルスを含む)由来の抗原に対する免 疫応答はまた、VLPアジュバントを用いて簡便に増強され得る。例示の目的で、H CVゲノムは、いくつかのウイルスタンパク質(E1(Eとしてもまた公知)および E2(E2/NSIとしてもまた公知)を含む)をコードし、これによって本発明に関す る利用法を見出す(E1およびE2を含む、HCVタンパク質の議論について、Houghto nら、Hepatology(1991)14:381-388を参照のこと)。HDV由来のδ-抗原はまた 、本発明のVLPアジュバント系とともに使用され得る(例えば、δ-抗原の説明に ついて、米国特許第5,389,528号を参照のこと)。 同様に、インフルエンザウイルスは、本発明が特に有用となるウイルスの別の 例である。詳細には、インフルエンザAのエンベロープ糖タンパク質HAおよびNA は、免疫応答を生じさせることについて特に有益である。インフルエンザAの多 くのHAサブタイプが同定されている(Kawaokaら、Virology(1990)179:759-767 ;Websterら、「Antigenic Variation among type A influenza viruses」127-16 8頁;P.Palese and D.W.Kingsbury(編)、Genetics of influenza viruses,Sp ringer-Verlag,New York)。従って、任意のこれらの抗原に対する免疫応答 は、それらが本発明のVLPアジュバントとともに投与される場合、増強され得る 。 VLPアジュバントと組み合わせて使用されるべき特に有用な他の抗原は、ヒト パピローマウイルス(HPV)由来の抗原およびその抗原に由来するポリペプチド (例えば、E6およびE7を含む、1つ以上の種々の早期タンパク質)、ダニ媒介性 脳炎ウイルス、HIV-1(HTLV-III、LAV、ARV、hTLRなどとしてもまた公知)由来 の抗原およびそれに由来するポリペプチドを含み、この抗原は、単離物HIVIIIb 、HIVSF2、HIVLAV、HIVLAI、HIVMNに由来する抗原、例えばgp120、gp41、gp160 、gag、およびpolを含むが、それらに限定されない(例えば、種々のHIV単離物 のエンベロープ遺伝子配列の比較について、Myersら、Los Alamos Database,Lo s Alamos National Laboratory,Los Alamos,New Mexico(1992);Myersら、Hum an Retroviruses and Aids,1990,Los Alamos,New Mexico:Los Alamos Natio nal Laboratory;およびModrowら、J.Virol.(1987)61:570-578を参照のこと) 。 他のウイルスに由来するタンパク質はまた、本発明の方法における利用法を見 出し、そのタンパク質は、例えば、とりわけ以下を含むがそれらに限定されない :Picornaviridae(例えば、ポリオウイルスなど);Caliciviridae;Togavirid ae(例えば、風疹ウイルス、デングウイルスなど);Flaviviridae;Coronaviri dae;Reoviridae;Birnaviridae;Rhabodoviridae(例えば、狂犬病ウイルスな ど);Filovlridae;Paramyxoviridae(例えば、ムンプスウイルス、麻疹ウイル ス、RSウイルスなど);Orthomyxoviridae(例えば、インフルエンザウイルスA 型、B型、およびC型など);Bunyaviridae;Arenaviridae;Retroviridae(例 えば、HTLV-1;HTLV-II;HIV-1;HIV-2);サル免疫不全ウイルス(SIV)のファミ リーのメンバー由来のタンパク質。例えば、これらのウイルスおよび他のウイル スの説明について、Virology、第3版(W.K.Joklik編、1988);Fundamental V irology、第2版(B.N.FieldsおよびD.M.Knipe編、1991)を参照のこと)。 特に好ましい細菌抗原は、ジフテリア、破傷風、百日咳、髄膜炎、および他の 病原性状態を引き起こす生物に由来し、その抗原は、以下を含むがそれらに限定 されない:Corynebacterium diphtheriae、Clostridium tetani、Bordetella pe rtusis、Neisseria meningitidis(Meningococcus血清型A、B、C、Y、およ びW135(MenA、B、C、Y、およびW135)を含む)、HaemophilusインフルエンザB 型(Hib)、およびHelicobacter pylori由来の抗原。寄生虫抗原の例は、マラリ アおよびライム病を引き起こす生物由来の抗原を含む。 上記の生物由来の抗原の組み合わせは、単一のワクチン中の複数の病原体に対 する免疫を誘発するために、簡便に使用され得る。例えば、特に好ましい組み合 わせは、細菌毒素に由来する非毒性変異体キャリア(例えば、CRM197として公知 のジフテリア毒素の非毒性変異体)に結合した、MenCおよびHib由来の細菌表面 オリゴサッカライドの組み合わせである。この結合は、細菌髄膜炎を予防するた めに有用であり、そして国際公開番号WO 96/14086(1996年5月17日公開)に記 載される。 さらに、本明細書中に記載の方法は、種々の悪性ガンを処置するための手段を 提供する。例えば、本発明の系を使用して、問題のガンに特異的な特定のタンパ ク質(例えば、活性化オンコジーン、胎児性抗原、または活性化マーカー)に対 する体液性免疫応答および細胞媒介性免疫応答の両方を増強し得る。そのような 腫瘍抗原は、とりわけ以下を含む:MAGE1、2、3、4などを含む、任意の種々 のMAGE(メラノーマ関連抗原E)(Boon,T.Scientifc American(1993年3月): 82-89);任意の種々のチロシナーゼ;MART 1(T細胞によって認識されるメラノ ーマ抗原)、変異体ras;変異体p53;p97メラノーマ抗原;CEA(癌胎児性抗原) 。 本発明を使用して、広範な種々の抗原に対する免疫応答を増加させ、それによ って大多数の疾患を処置または予防し得ることは容易に明白である。 先に説明したように、VLP処方物は、目的の1つ以上の抗原を含んでもよく、 含まなくてもよい。例えば、抗原は、同じ部位または異なる部位にてVLP組成物 から別々に投与され得る。任意の事象において、1つ以上の選択された抗原は、 抗原が投与される個体において免疫応答が生じさせられ得るように、「治療有効 量」で投与される。必要とされる正確な量は、とりわけ以下の因子に依存して変 化する:処置される被験体;処置されるべき被験体の年齢および全体的な状態; 抗体を合成し、そして/または細胞媒介性免疫応答を増加させる、被験体の免疫 系の能力;所望される防御の程度;処置される状態の重篤度;選択される特定の 抗原およびその投与形態。適切な有効量は、当業者によって容易に決定され得る 。従って、「治療有効量」は、日常的な試行を通して決定され得る、比較的広い 範囲に落ち着く。一般に、抗原の「治療有効」量は、約0.1μg〜約1000μg、よ り好ましくは約1μg〜約100μgのオーダーの量である。 同様に、VLPアジュバントは、VLPアジュバントなしでの抗原単独の投与と比較 して、抗原が先に規定されるような「増強された免疫原性」を提示するような量 で存在する。増強された免疫応答を誘発するために有効である量は、当業者によ って容易に決定され得る。 組成物は、さらに、1つ以上の「薬学的に受容可能な賦形剤またはビヒクル」 (例えば、水、生理食塩水、グリセロール、エタノールなど)を含み得る。さら に、湿潤剤または乳化剤、生物学的緩衝剤などのような補助物質が、そのような ビヒクルに存在し得る。生物学的緩衝剤は、薬理学的に受容可能であり、そして アジュバント処方物に所望のpH(すなわち、薬理学的範囲のpH)を与える実質的 に任意の溶液であり得る。緩衝剤溶液の例は、生理食塩水、リン酸緩衝化生理食 塩水、Tris緩衝化生理食塩水、Hank's緩衝化生理食塩水、イーグル最小必須培地 (「MEM」)などのような増殖培地などを含む。 抗原は、組成物を受ける個体に対して有害な抗体の産生を、それ自体では誘導 しない分子であるキャリアと、必要に応じて組み合わされる。適切なキャリアは 、代表的には、大きな徐々に代謝される高分子(例えば、タンパク質、ポリサッ カライド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、重合性アミノ酸、アミノ酸コポリマー 、脂質凝集体(例えば、オイル性小滴またはリポソーム)、および不活性ウイル ス粒子である。そのようなキャリアは、当業者に周知である。さらに、これらの キャリアは、さらなる免疫刺激剤として機能し得る。さらに、抗原は、ジフテリ ア、破傷風、コレラなどに由来のトキソイドのような細菌トキソイドに結合され 得る。 本発明のVLPに加えて、コアジュバントはまた、薬学的組成物の有効性を増強 するために使用され得る。そのようなコアジュバントは、以下を含むが、それら に限定されない:(1)アルミニウム塩(alum)(例えば、水酸化アルミニウム、 リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウムなど);(2)水中油エマルジョン処方物 (これは、他の特定の免疫剌激剤(例えば、ムラミルペプチド(以下を参照のこ と)または細菌細胞壁成分を、含むまたは含まない)、例えば(a)Model 110Yミ クロフルイダイザ(microfluidizer)(Microfluidics,Newton,MA)のようなミク ロフルイダイザーを用いてサブミクロン粒子に処方された、5%Squalene、0.5 %Tween 80、および0.5%Span 85を含む(必ずしも必要ではないが、必要に応じ て種々の量のMTP-PEを含む(以下を参照のこと))を含む、MF59(国際公開番号 WO 90/14837、(b)より大きな粒子サイズのエマルジョンを生成するために、 サブミクロンエマルジョンにミクロフルイダイズされたか、またはボルテックス された、10%Squalane、0.4%Tween 80、5%プルロニックブロック化(pluronic -blocked)ポリマーL121、およびthr-MDP(以下を参照のこと)を含む、SAF、な らびに(c)2%Squalene、0.2%Tween 80、およびモノホスホリピドA(MPL) 、トレハロースジミコレート(TDM)、および細胞壁骨格(CWS)からなる群からの1 つ以上の細菌細胞壁成分、好ましくはMPL+CWS(DetoxTM)を含む、RibiTMアジ ュバント系(RAS)(Ribi Immunochem,Hamilton,MT);(3)サポニンアジュ バント、例えば、StimulonTM(Cambridge Bioscience,Worcester,MA)が使用さ れ得るか、またはそれから生成される粒子(例えば、ISCOM(免疫刺激複合体) );(4)フロイント完全アジュバント(CFA)およびフロイント不完全アジュバ ント(IFA);(5)サイトカイン(例えば、インターロイキン(IL-1、IL-2など )、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)など);(6 )粘膜アジュバント(例えば、コレラ毒素(CT)、百日咳毒素(PT)、E.coli熱不 安定性毒素(LT)、およびその変異体由来のアジュバント)(例えば、国際公開番 号WO 95/17211、WO 93/13202、およびWO 97/02348を参照のこと);そして(7 )組成物の有効性を増強する、免疫刺激剤として作用する他の物質。alumおよび MF59が好ましい。 ムラミルペプチドは、以下を含むが、それらに限定されない:N-アセチル-ム ラミル-L-スレオニル-D-イソグルタミン(thr-MDP)、N-アセチル-ノルムラミル (normuramyl)-L-アラニル-D-イソグルタミン(nor-MDP)、N-アセチルムラミル-L- アラニル-D-イソグルタミニル-L-アラニン-2-(1'-2'-ジパルミトイル-sn-グリセ ロ-3-ヒドロキシホスホリルオキシ(huydroxyphosphoryloxy))-エチルアミン(M TP-PE)など。 一旦処方されると、本発明の組成物は、非経口的、例えば、注射によって、投 与され得る。組成物は、皮下、腹腔内、静脈内、または筋肉内のいずれかで注射 され得る。投与の他の態様は、経口および肺投与、坐剤、粘膜および経皮適用を 含む。投薬処置は、単回用量スケジュールまたは複数用量スケジュールであり得 る。複数用量スケジュールは、ワクチン接種の主要な治療単位(course)が1〜 10の別々の用量、続いて、免疫応答を維持および/または増強するように選択し た、続く時間間隔で与えられる他の用量(例えば、第二の用量について1〜4ヶ 月で、および必要に応じて数ヵ月後に続きの用量)であり得る。投薬計画もまた 、少なくとも一部は、被験体の必要によって決定され、そして実施者の判断に依 存する。さらに、疾患の予防が所望される場合、ワクチンは一般に、目的の病原 体での一時感染の前に投与される。処置が所望される場合、例えば、症状または 再発の減少が所望される場合、ワクチンは、一般に、一次感染に続いて投与され る。 C.実験 以下は、本発明を行うための特定の実施態様の例である。実施例は、例示の目 的にのみ提供され、そしていかなる様式においても本発明の範囲を制限すること を意図するものではない。 使用した数値(例えば、量、温度など)に関する正確さを確認する努力を行っ たが、いくつかの実験誤差および偏差は当然許容されるべきである。 実施例1 B型肝炎ウイルス(HBV)VLPおよびHaemophilus influenzae b型(Hib)および /またはHib/Meningococcal C(MenC)結合体を含むワクチンの乳児ヒヒにおける 免疫原性を評価するために、以下の研究を行った。 材料および方法 A.ワクチン 本研究で使用したHib/MenC結合体ワクチンおよびHib結合体ワクチンは、タン パク質キャリアCRM197に独立して結合体化したオリゴ糖を含み、そして国際公開 番号第WO 96/14086(1996年5月17日公開)に記載のように産生した。 使用したVLPは、組換えB型肝炎ウイルス(HBV)プレS2/S抗原であった。VLP を産生するために、Pre-S2/sAg遺伝子を発現ベクターに組込み、そしてこれを使 用して、DG44チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞(これはまた、dhfr遺伝子 でトランスフェクトされている)をトランスフェクトした。細胞の増殖およびHB V粒子の発現を本質的にMichelら、Bio/Technology(1985年6月)3:561-566およ びPatzerら、Bio/Technology(1986年7月)4:630-636に記載されるように実施 した。 コントロールワクチン処方物は、ミョウバンに吸着した酵母由来のHBV S抗原 を含んだ。 ワクチン接種の日に、複合多糖ワクチンおよびHBV VLP処方物をともに再構成 して、約5μgの用量の各糖、合計20μgのCRM197タンパク質、および2.5μgのH BV VLPを提供した。 B.ワクチン群 研究開始時に1.5〜4ヶ月齢の乳児ヒヒを、表1に示すように各5匹の動物の 群を割り当てた。 *N=6動物/群(研究開始時に1.5〜4月齢) 血液サンプルを各免疫の前に収集し、そして第三の免疫の2週間後に収集した。 結果 図1および2は、市販のE1A(Abbott)によって決定される場合、HBV VLPに対 する乳児ヒヒの血清抗体応答を示す。結果を、IU/mlで抗体濃度の相乗平均とし て、±95%C1、対数スケールで、HBV VLPを含むワクチンが与えられた4群につ いてを示す。 理解され得るように、MF59とともに与えられたHBV VLP単独は、高度に免疫原 性で、これは、単回注射後に100IU/mlより大きな、第二の注射後に1000IU/mlよ り大きな、および第三の注射後に100,000IU/mlより大きな、相乗平均力価を達 成した。 対照的に、ミョウバンとともに与えたコントロールワクチンは、はるかに低く 免疫原性であり、1回の注射には応答せず、そして実験ワクチンと比較して、第 二および第三の注射に対して10分の1の応答をした。示さないが、MenC/Hib結合 体ワクチンがVLPなしで与えられた第5群においては、検出可能な肝炎抗体応答は 存在しなかった。これらの結果は、健常成体における臨床実験において観察され たこれらの2つのワクチン間の免疫原性における差異に対応する。 HibまたはHib/MenC結合体の存在は、B型肝炎/MF59単独を受ける群の応答と比 較して、肝炎抗体応答を減少させた。このことは、第一または第二の注射後にお いて特に真実であった。しかし、MF59アジュバント化した組合せワクチンの第三 の注射後に、HBVに対するそれぞれの抗体応答はなお、コントロールワクチンで ワクチン接種した動物の応答より10倍高かった(相乗平均は49,000および38,000 IU/ml対コントロールHBVについて5000IU/ml)(p≦0.01)。 Hib結合体ワクチンに対する乳児ヒヒの血清抗莢膜抗体応答を、放射性抗原結 合アッセイを用いて決定した。図3および4は、μg/mlでの対数スケールで、M F59とともに与えられたHib/MenC、HBV/HibおよびM4F59、ならびにMF59をともな うHBV/Hib/MenC含むワクチンを与えられた3つの群についての相乗平均抗体濃 度を示す。 3つすべての群は、Hibに対する強力な抗体応答を示した。興味深いことに、H BV VLPの存在は、Hib抗体応答を増加させるようであった。例えば、第三の注射 後に、相乗平均抗体濃度は、Hib/MenCおよびMFをともなうHBVに受ける群では、3 5μg/mlであり、対して、HBVなしでHib/MenC/MF59を受ける群については10.8μ g/mlであった。MenCなしのHBV/Hibに対するHib応答は、さらにより高かった(1 00μg/ml)。 MenC結合体ワクチンに対する乳児ヒヒの血清抗体応答もまた測定した。結果を 、図5Aおよび5Bに示す。図5Aは、ELISAによって決定されたIgG抗莢膜(capsular )抗体応答を示す。図5Bは、補体媒介性の細菌抗体応答を示す。HBV VLPを含むM F59アジュバント化したMenC組合せワクチンに対する抗体応答は、MF59を伴うHib /MenCワクチン単独を与えられた動物の応答と同等かまたはより高かった。これ は、ELISAによって決定されるIgG結合抗体、および殺菌アッセイで決定した抗体 機能活性の両方について真実であった。 表2に、すべての群についての第三の注射後の幾何的抗体応答をまとめる。理 解され得るように、ミョウバンに吸着させたコントロールワクチン、またはMF59 を伴う実験的HBV VLP調製物を与えた動物は、HBVに対してのみ応答した。さらに 、応答の大きさは、実験的MF59アジュバント化したワクチンに対して20倍を超え てより高かった。 HibまたはHibおよびMenCを含む2つの組合せワクチンに対するHBV抗体応答は 、HBV/MF59単独を与えた動物の応答のおよそ2分の1であった。それにもかかわ らず、それらはなお、コントロールワクチンで観察された応答よりも8〜10倍高 かった。すでに注記したように、HBV VLPを含む2つの組合せワクチンに対するH ib抗体応答は、HBV VLPなしでHib/MenC/MF59を与えた動物(群5)の応答よりも 高かった。 MenC結合体に関して、HBV VLPがIgG MenC抗体応答を増強し得るという証拠も もまた存在した。 *P=0.07:+P≦0.03 実施例2 実験をまた、ヒトパピローマウイルス6b(HPV 6b)L1VLPおよびびHPV E7を含 むワクチンの免疫原性を評価するために、以下のようにウサギにおいて行った。 材料および方法 A.ワクチン 本研究のワクチンにおいて使用した組換えタンパク質を、記載のようにHPV 6b からクローニングした。Schwarz、EMBO J.(1983)2:2341-2348を参照のこと。 ウイルス様粒子(VLP)ワクチンは、粒子へと自己会合し、そしてイオン交換お よびゲル濾過クロマトグラフィーを介して精製したバキュロウイルス由来の後期 1(L1)タンパク質からなった。VLPは、サイズが約50nmであり、そしてHPVビリ オンに類似していた(Greer、J.Clin.Micro.(1995)33:2058-2063)。第二の ワクチンは、E.coli由来のEarly 7(E7)タンパク質からなった。 ワクチン接種の日に、ワクチンを、VLPワクチンが17μgのHPV 6 L1 VLPを含み 、一方でE7ワクチン用量が50μgのE7を含み、そしてL1/E7組合せワクチン用量が 17μgのVLPおよび50μgのE7を含むように調製した。すべてのワクチンの合計容 量は、0.5mlであり、そして0.25mlは、MF59コアジュバントであった。 B.ワクチン群 若い成体雌性ニュージーランド白色ウサギを、表3に示すように、3つの可能 な群(1群当たり20匹)の1つに割り当てた。動物は、VLP、E7、またはL1また はE7の組合せのいずれかを含むワクチンを受けた。 C.免疫化および採血スケジュール ウサギに、0、3、および6週目の間に筋肉内(後肢)ワクチン接種を与えた 。血液サンプルを、0、4、5、7、および8週目の間に収集した。 D.抗原特異的抗体応答の決定 抗体応答を、抗原特異的ELISAを用いて測定した。力価を、光学密度0.5をもた らす希釈にて各血清について決定した。結果 E7およびL111抗原についてのウサギ血清力価の結果を、図6にまとめる。対数 スケールで提示した結果は、群についての抗体力価の相加平均である。MF59ワク チ ンを伴うE7単独から生成された抗体力価は、第二のおよび第三のワクチン接種後 のVLPよりも有意に低かった(313対106,000;p<0.0001;および1,400対65,000; p<0.0001)。しかし、E7/VLP組合せによって生成された抗E7平均力価は、MF59を 伴うE7単独と比較した場合、組合せE7/L1ワクチン(およびMF59)を注射した動 物において増加したようであった(825対313;1,567対1,363)。さらに、E7/L1 の力価の中央値は、5%レベルで5週目および8週目に有意に高かった(それぞれ 、p値は0.0018および0.0125)。さらに、非応答動物の数は、E7/L1について、E7 についてより統計学的に有意に低かった(p値0.023、フィッシャーの完全検定( exact test))。 データは、MF59を伴うVLP単独が高度に免疫原性であって、これは、第一の注 射後に482、ならびに第二および第三の注射後に106,000および65,000の力価をも たらした。しかし、第二の免疫後の組合せVLP/E7ワクチン群についての抗VLP平 均力価は減少し(106,000対89,000)、そして3免疫後は有意に減少した(65,00 0対35,000;p=0.001)。 従って、新規のVLPアジュバント組成物およびこれを使用しそして作製するた めの方法が開示される。本発明の好ましい実施態様をいくらか詳細に記載したが 、添付の請求の範囲によって規定されるような明らかな改変が本発明の精神およ び範囲を逸脱せずになされ得ることが理解される。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                 Use of virus-like particles as adjuvants Technical field   The present invention relates generally to agents that enhance an immune response to a selected antigen. . In particular, the invention relates to virus-like particles as adjuvants and coadjuvants Use of (VLP), Formulations Containing VLPs, and Preparation and Use of the Compositions of the Invention For how to. background   Vaccine compositions often include cell-mediated and humoral immune responses. An immunological adjuvant to enhance is included. For example, the administered antigen Depot that can be deposited and / or precipitated and retain the antigen at the injection site Adjuvants are often used. A typical storage adjuvant is aluminum And water-in-oil emulsions. But storage adjuvant (But increasing antigenicity) when injected subcutaneously or intramuscularly It often stimulates severe and persistent local reactions such as granulomas, abscesses and scars. Other adjuvants such as lipopolysaccharide and muramyl dipeptide can be injected and / or Or lighter symptoms (flu-like symptoms, generalized joint discomfort, and sometimes Can provoke a febrile response in anterior uveitis, arthritis, and urethritis) .   Particle carriers with adsorbed or entrapped antigens bypass these problems Used in an attempt to Such carriers are selective for the immune system. Shows multiple copies of selected antigens and capture and capture of antigen in local lymph nodes And retention. The particles are precious by macrophages and Release can enhance antigen presentation. Examples of particle carriers include polymethyl meta Particle carriers derived from acrylate polymers, as well as poly (known as PEG) (Lactide) and poly (lactide-co-glycolide) derived microparticles. other Where they offer significant advantages over more toxic systems, antigen-containing PLG microparticles It suffers from several disadvantages. For example, production of microparticles is difficult and antigen Involves the use of harsh chemicals that can destroy and destroy their immunogenicity. Furthermore, anti The primary instability is due to the high shear forces used in the preparation of small particulates and Can occur due to interfacial effects in the emulsion.   Liposomes have also been used to overcome these problems. Liposo Is a lipid component, such as a phospholipid, used to entrap a drug. These are small vesicles formed from these. The use of liposomes as drug delivery systems Although mitigating some of the above problems, liposomes have low safety during storage and use. It is qualitative and large-scale production and production of liposomes is problematic.   The virions are capable of capturing or binding anti-virus to the host immune system. It can be used as a matrix for proper presentation of the original. For example, U.S. Patent No. No. 4,722,840 is a particle-forming fragment of a structural protein derived from a virus (eg, For example, hepatitis B virus (HBV) surface antigen fused to a heterologous polypeptide (HBsAg) (particle forming fragment). Tin dle et al., Virology (1994) 200: 547-557 describe human papillomavirus (HPV) type 16E 7 Production and Use of Chimeric HBV Core Antigen Particles Containing Epitopes for Transforming Protein Describe the use.   Adams et al., Nature (1987) 329: 68-70 describes a hybrid HIV gp120: T in yeast. y describes the recombinant production of VLP, Brown et al., Virology (1994) 198: 477-488 describe human Parvovirus B19 VP2 protein and human herpes simplex virus type 1 and Of chimeric protein consisting of epitopes derived from mouse and mouse hepatitis virus A59 Is described. Wagner et al., Virology (1994) 200: 162-175; Brand et al. Virol. Me th. (1995) 51: 153-168 and Wagner et al., Virology (1996) 220: 128-140 The assembly of La HIV-1 p55gag particles is described. U.S. Pat.No. 5,503,833 treats Of rotavirus VP6 sphere for encapsulation and delivery of agents Is described.   Regardless of the antigen presentation system described above, various pharmaceutical compositions and vaccines There is a continuing need for effective and safe adjuvants for use in medicine. Summary of the Invention   We surprisingly found that the combination of the selected antigen with VLP (where the anti- Differs from VLPs) in that it provides an enhanced immune response to the antigen in question. I came out.   In one embodiment, the invention then provides a VLP adjuvant, wherein the selected A vaccine composition comprising an antigen and a pharmaceutically acceptable excipient. Selected The different antigens are different from VLPs. In a particularly preferred embodiment, the VLP is a hepatitis surface. One or more particle forming polypeptides of the antigen, or papillomavirus L1 and / or Or an antigen derived from the L2 protein particle-forming polypeptide and selected Is a MenC / Hib oligosaccharide conjugate or HPV E7.   In another embodiment, the invention provides a VLP adjuvant and a selected antigen. Enhanced immune response in a vertebrate body, comprising administering to the vertebrate body To a method for producing Antigens are different from VLPs, and VLPs are Administered in an amount effective to elicit an enhanced immune response to the antigen in the body. You. VLPs can be administered to a subject before, after, or simultaneously with antigen administration.   In yet another embodiment, the invention relates to a process for providing a VLP Preparing an adjuvant formulation comprising combining an excipient with an acceptable excipient About how to.   These and other embodiments of the invention will be readily apparent to those skilled in the art in light of the present specification. Is done. BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES   Figure 1 shows fetal baboon antibodies to a vaccine containing hepatitis B virus VLP (HBV) Is shown. Results are shown as the geometric mean of antibody concentration in IU / ml.   FIG. 2 shows the antibody response of fetal baboons to a vaccine containing HBV VLP. result Is shown as the geometric mean of the antibody concentrations in IU / ml.   FIG. 3 shows the fetal baboon anti-capsule antibody response to the vaccine containing HBV VLP. Show. Results are shown as the geometric mean of antibody concentration in IU / ml.   FIG. 4 shows the response of fetal baboon anti-capsule antibody to vaccine containing HBV VLP. Show. Results are shown as the geometric mean of antibody concentration in IU / ml.   5A and 5B show serum antibody responses of fetal baboons to a vaccine containing HBV VLP. FIG. 5A shows the IgG anti-capsule antibody response as determined by ELISA. FIG. 5B shows complementary mediated bacterial antibodies.   FIG. 6 shows the combination of HPV6b L1 VLP and E7 vaccine in rabbit humoral immune response. This shows the effect of convergence.                             Detailed description of the invention   The practice of the present invention is within the skill of the art unless otherwise indicated. Use traditional methods of science, chemistry, biochemistry, recombinant technology, immunology and pharmacology . Such techniques are explained fully in the literature. For example, Virology, 3rd edition , Volumes I and II (B.N. Fields and DM Knipe, eds., 1996); Remlngton's  Pharmaceutical Sciences, 18th edition (Easton, Pennsylvania: Mack Publishing Company, 1990); Methods In Enzymology (ed. By S. Colowick and N. Kaplan, Acade. mic Press, Inc.); Handbook of Experimental Immunology, Volumes I-IV (D.M. . Weir and C.C. Blackwell Edition, 1986, Blackwell Scientific Publications); Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2nd edition, 1989); and DN See A Cloning: A Practical Approach, Volumes I and II (D. Glover, eds.) thing.   As used herein and in the appended claims, the singular forms "a", "an" And "the" are plural, unless the content clearly indicates otherwise including. A. Definition   In describing the present invention, the following terms will be used, and are defined as follows: Intended to be.   As used herein, the term "virus-like particle" or "VLP" Replicates derived from any of several viruses discussed further below Not an empty virus shell. VLPs generally contain one or more viral proteins. quality (Eg, capsid, coat, shell, surface and / or envelope proteins Including, but not limited to, proteins referred to as It is composed of particle-forming polypeptides derived from proteins. VLP is an appropriate launch In the current system, it can be formed spontaneously by recombinant expression of the protein. Specific VL Methods for producing P are known in the art and are discussed more fully below. Discussed. The presence of VLPs after recombinant expression of viral proteins is publicly known in the art. Detection using known conventional techniques (eg, electron microscopy, X-ray crystallography, etc.) I can do it. See, for example, Baker et al., Biophys. J. (1991) 60: 1445-1456; Hagensee et al. Virol (1994) 68: 4503-4505. For example, cryo-electron microscopy has revealed that the V Can be performed on vitrified aqueous samples of LP preparations and images are Recorded under exposure conditions.   By "particle-forming polypeptides" derived from specific viral proteins Full length or near full length viral proteins, and fragments thereof, Or a viral protein with an internal deletion (this is a condition that favors VLP formation) Under the ability to form VLPs). Thus, the polypeptide Reference molecule full length sequences, fragments, truncated and partial sequences, and analogs And precursor forms. Therefore, the term implies that a polypeptide Deletions, additions and substitutions to this sequence as long as it retains its ability to form You. Thus, the term includes natural changes in the particular polypeptide. Because Changes in the protein often occur during virus isolation. You. This term is also used as long as the protein retains the ability to form VLPs. Includes deletions, additions and substitutions that do not occur naturally in the protein.   Preferred substitutions are those that are naturally conserved (ie, at amino acid side chains). Substitutions that occur within a family of related amino acids). Specifically, amino Acids are generally divided into four families: (1) acid--aspartic acid and And glutamic acid: (2) basic--lysine, arginine, histidine; (3) non-polar Sex-alanine, valine, leucine, isoleucine, proline, phenylalanine And methionine, tryptophan; and (4) uncharged and polar--glycine, aspa Lagin, glutamine, cysteine, serine, threonine, tyrosine. Phenyla La Nin, tryptophan and tyrosine are sometimes classified as aromatic amino acids You. For example, lone replacement of leucine with isoleucine or valine, glutamic acid Or substitution of aspartic acid at serine, threonine at serine, or structure Similar conservative substitutions with similarly related amino acids have major effects on biological activity Not doing so is reasonably foreseeable. Therefore, it is substantially the same as the reference molecule. A small number of amino acids that have a amino acid sequence but do not substantially affect the immunogenicity of the protein Proteins that carry no acid substitutions are within the definition of a reference polypeptide.   Antigen is not captured in VLP and / or antigen and VLP are fusion proteins VLPs are "different" from the selected antigen if not co-expressed as But V LPs are selected by the selected antigen even if there is a sparse physical association between the antigen and the VLP. Are considered "different."   "Antigen" is a humoral and / or cellular antigen specific that stimulates the host immune system One or more epitopes (linear, conformational) Or both). This term is interchangeable with the term "immunogen" Used as possible. Typically, a B cell epitope comprises at least about 5 amino acids However, it can be as few as 3-4 amino acids. T cell epitopes (eg, C TL epitope) comprises at least about 7-9 amino acids and comprises a helper T cell. A vesicle epitope comprises at least about 12-20 amino acids. The term “antigen” refers to both Subunit antigen (ie, the whole organism to which the antigen is naturally related) Antigens separated and separated from), and killed, attenuated, or Inactivated means a bacterium, virus, fungus, parasite or other microorganism. Anti Idiotype antibodies, or fragments thereof, and synthetic peptide mimotopes Antibodies such as (mimotope), which can mimic antigens or antigenic determinants, are also , Captured under the definition of antigen as used herein. Similarly, in vivo ( Expression of antigens or antigenic determinants in gene therapy and DNA immunization applications) Oligonucleotides or polynucleotides are also defined herein as antigens. Included in righteousness.   For the purposes of the present invention, the antigen may be any number as described more fully below. Derived from any of the known viruses, bacteria, parasites and fungi. This The term also contemplates any of a variety of tumor antigens. Further, for the purpose of the present invention Alternatively, an “antigen” is a protein that elicits an immune response, as defined herein. As long as it retains the ability to And conservative) modifications, such as deletions, additions and substitutions. This These modifications can be deliberate, such as by site-directed mutagenesis. Or may be accidental, such as by mutation of the host producing the antigen. You.   An “immunological response” to an antigen or composition is an antigen present in the composition of interest. Of a humoral and / or cellular immune response in a subject. For the purposes of the present invention, a “humoral immune response” is an immune response mediated by antibody molecules. Refers to an epidemiological response, while a "cellular immune response" refers to T lymphocytes and / or other leukemia. It is mediated by a sphere. One important aspect of cellular immunity is cytotoxicity. Includes antigen-specific responses by sex T cells ("CTLs"). CTL is a major histocompatibility gene Binds to proteins encoded by the complex (MHC) and expressed on the cell surface It has specificity for peptide antigens presented together. CTL is an intracellular microbe Induction and promotion of intracellular destruction of cells or lysis of cells infected with such microorganisms Help the progress. Another aspect of cell-mediated immunity involves the generation of antigen-specific responses by helper T cells. Including. Helper T cells may help stimulate the function of non-specific effector cells And the activity of non-specific effector cells on their surface to MHC molecules It acts to bind and concentrate on cells presenting the peptide antigen. "Fine The vesicular immune response also includes cytokines, chemokines, and activated T cells and And / or other such molecules produced by other leukocytes (CD4 + and CD8 + (Including those derived from T cells).   Compositions or vaccines that elicit a cellular immune response bind to MHC molecules on the cell surface. Presentation of the combined antigens can serve to sensitize a vertebrate animal subject. cell A mediated immune response is caused by fingers present at or near cells that present antigen on their surface. Turned In addition, antigen-specific T lymphocytes allow for future protection of the immunized host. Can be generated to work.   The ability of certain antigens to stimulate cell-mediated immunological responses is dependent on lymphoproliferation (lympho prollferation) (lymphocyte activation) assay, CTL cytotoxic cell assay, Or assay for antigen-specific T lymphocytes in sensitized subjects And may be determined by a number of assays. Such assays are known in the art. It is well known. See, for example, Erickson et al., J. Immunol. (1993) 151: 4189-4199; Doe et al., E ur.J.Immunol. (1994) 24: 2369-2376.   Thus, an immunological response as used herein is responsible for the production of CTLs and the And / or stimulate the production or activation of helper T cells. Eye The target antigen can also elicit an antibody-mediated immune response. Thus, the immunological response is It may include one or more of the following effects: production of antibodies by B cells; and / or Should be directed specifically to the antibodies present in the composition or vaccine of interest. T cell and / or γδActivation of T cells. These responses are infectious Sum and / or antibody-complement, ie, antibody-dependent cellular cytotoxicity (ADCC) It may serve to mediate and provide protection to the immunized host. Such a response Can be determined using standard immunoassays and neutralization assays well known in the art .   A vaccine composition comprising a selected antigen together with a VLP adjuvant of the invention, or Alternatively, a vaccine composition co-administered with a VLP adjuvant of the invention comprises a VLP adjuvant. Equivalent to an antigen administered without an adjuvant or coadjuvant A field capable of eliciting an immune response greater than the immune response elicited by the dose In this case, it presents “enhanced immunogenicity”. Thus, the vaccine composition is "enhanced" Enhanced immunogenicity ". Because antigens are more strongly immunogenic It is. Or, because the lower or lower dose of antigen is Is necessary to achieve an immune response in the subject to which it is administered. This Enhanced immunogenicity, such as administering VLP compositions and antigen controls to animals And standards such as radioimmunoassays and ELISAs well known in the art. Antibody titers and / or cell-mediated immunity against the two It can be determined by comparing the epidemics.   For the purposes of the present invention, an "effective amount" of a VLP adjuvant is co-administered. An amount that enhances the immunological response to the antigen.   By “vertebrate subject” is meant any member of the chordate phylum, These include humans and other primates (chimpanzees and other anuras (ape) and Including non-human primates, such as monkey species); cattle, sheep, pigs, goats, And farm animals such as horses; domestic animals such as dogs and cats; Laboratory animals, including rodents such as pigs and guinea pigs; chickens, turkeys, Domestic, wild, and hunting birds such as and other pheasant birds, ducks, cancer Including but not limited to birds. The term does not imply a specific age. Follow It is intended that both adult and newborn individuals be included. The above system is optional It is intended for use in any of the above vertebrate species. Because these vertebrates All immune systems function similarly.   "Pharmaceutically acceptable" or "pharmacologically acceptable" Causes an otherwise undesirable substance, i.e., some undesired biological effect. Interacts in a deleterious manner with or without any components of the composition containing the substance Rather, it refers to a substance that can be administered to an individual together with a VLP adjuvant formulation.   Depending on "physiological pH" or "physiological pH", about 7.2 or more and 8.0 or less It refers to a pH in the generic range, more typically in the range of about 7.2 to 7.6.   “Recombination” as used herein to describe a nucleic acid molecule refers to the following: Depending on the source or manipulation, polynucleotides of genomic, cDNA, semi-synthetic, or synthetic origin Otide means: (1) all or one of the naturally related polynucleotides Not related to the part; and / or (2) other than polynucleotides naturally linked To the polynucleotide. Used for proteins or polypeptides The term "recombinant" refers to a polynucleotide produced by the expression of a recombinant polynucleotide. Means a repeptide. Prokaryotic microorganisms cultured as single cell entities or "Recombinant host cell", "host cell", "cell", "cell line" indicating eukaryotic cell line "," Cell culture "and other such terms are used interchangeably and Can be used as a recipient for recombinant vectors or other transferred DNA Or the cells that have been used, and the first cells transfected Including progeny cells. The progeny of a single parent cell can be accidentally or intentionally mutated Therefore, morphologically with the original parent, or in the genomic or total DNA complement, It is understood that the components need not be exactly the same. Related properties (for example, Presence of a nucleotide sequence encoding the desired peptide) Progeny of a parent cell sufficiently similar to the parent to be included in the progeny intended by this definition , And are encompassed by the above terms.   As used herein, “treatment” refers to any of the following: (1) Prevention of infection or re-infection, as in traditional vaccines, (ii) reduction or Or (iii) substantial or complete elimination of the pathogen in question. The treatment is It can be effected prophylactically (before staining) or therapeutically (after infection). B. General method   At the heart of the invention is a vertebrate, where VLPs are administered with a selected antigen. For enhancing a humoral immune response and / or a cellular immune response in a subject It is a discovery that it can act as an adjuvant or a coadjuvant. Surprising Indeed, to produce enhanced immunogenicity, antigens are trapped within VLPs No need. Thus, the present invention requires the use of binders, harsh chemical treatments, etc. Absent. Because the antigen of interest is encapsulated or chemically conjugated to the VLP Because there is no. Further, the antigen size is not limited. Because this system is This is because it does not depend on the encapsulation of the antigen. Thus, the system of the present invention Useful with antigens and for preventing and / or treating multiple infections Provide powerful tools.   VLPs for use as adjuvants have the ability to form particles under appropriate conditions. Viable viral proteins, particles derived from viral proteins Ripeptide, or a combination of viral proteins or fragments thereof Can be formed from The requirements for particle-forming viral proteins are the details of the host cell. When particles are formed in the cytoplasm, proteins are likely to undergo the formation of virus-like structures. To the virus-like structure in the cells of the recombinant expression system used. If they are not sufficiently stable in the host cell in which they are expressed such that It is not. If this protein is secreted into the culture medium, VL Conditions can be adjusted so that P is formed. In addition, particle forming proteins Should not be cytotoxic in the current host and can replicate in the host where the VLP is used Should not be.   For example, some proteins autonomously become VLPs when the pH reaches the appropriate level. It is known that can be formed. Similarly, some proteins form VLPs Requires that a sufficient amount of protein be present.   Methods and suitable for forming particles from a wide range of viral proteins Conditions are well known in the art. For example, it is derived from the surface of hepatitis B virus (HBV). Proteins (e.g., surface antigen (sAg), and pre-surface sequences (pre-S1 and pre-S 2 (previously called pre-S), as well as any combination of these sequences)) Upon expression in a suitable host cell, for example, a mammal, insect, yeast, or Xeno It can form particles autonomously upon expression in pus cells. Therefore, the present invention HBV VLPs for use in sAg, pre-S1 or pre-S2, and Any combination (for example, sAg / pre-S1, sAg / pre-S2, sAg / pre-S1 / pre-S2, and And pre-S1 / pre-S2) particle forming proteins. For example, discussion of the HBV structure For the theory, see Macckett, M and Williamson, J.D., Human Vaccines and Vaccinat ion, "HBV vaccines--from laboratory to license: a case study," pages 159-176. And US Pat. No. 4,722,840 for a description of the recombinant production of various HBV particles. No. 5,098,704, No. 5,324,513, Beames et al., J. Virol. (1995) 69: 6833-683 8, Birnbau et al., J. Vlrol. (1990) 64: 3319-3330; Zhou et al., J. Virol. (1991) 65:54. See 57-5464.   In addition, particle-forming polypeptides derived from papillomavirus structural proteins L1 and L2 Tide is used herein alone as a VLP adjuvant and a coadjuvant. Or any use in combination. For use with the present invention The L1 and L2 proteins can be any of a variety of human and other animal papillomaviruses. , And its subgroups (HPV-1, HPV-2, HPV-5, HPV-6, HPV-8, HPV-11, HPV (Including, but not limited to, V-16, HPV-18, HPV-31, HPV-33, and HPV-45) It can be of origin. The sequences of L1 and L2 are known for various HPV types. example For example, for sequences of various HPV types, see Human Papillomaviruses: A Compilation an d Analysis of Nucleic Acid and Amino Acid Sequences (Myers, G. et al.), Los A See lamos National Laboratory, Los Alamos, New Mexico, 1994-1996.   From L1 and L2 to form VLPs either alone or in combination Methods are known, e.g., U.S. Pat.No. 5,437,951 (L1VLP in insect cells). WO 95/20659 (produced in eukaryotic cells using vaccinia virus vectors). WO93 / 02184 (Eukaryotic using vaccinia virus vector) Production of L1 / L2 VLPs in biological cells); Kirnbauer et al., J. Virol. (1993) 67: 6929-693. 6 (production of L1 and L1 / L2 VLPs in insect cells); Heino et al., Virology (1995) 214: 3. 49-359 (production of L1 and L1 / L2 VLPs in mammalian cells); Sasagawa et al., Virolog y (1995) 206: 126-135 (production of L1 and L1 / L2 VLPs in yeast cells); Zhou et al., Vir. ology (1991) 185: 251-257 (Vaccinia virus vector-infected epithelial cells L1 / L2 VLP production).   Similarly, some retroviral proteins form VLPs upon expression It is known. For example, rotavirus VP6 VLP is described in U.S. Patent No. 5,503,833. It can be produced as described. Generally, VP6 spherical particles contain recombinantly produced VP6. When the pH of the contained lysate becomes about pH 4.0 or more, it forms autonomously. Bovine rotavirus V P2 autonomously forms VLPs upon expression in the baculovirus system. For example See, Labbe et al., J. Virol. (1991) 65: 2946-2952.   Yeast retrotransposon Ty encodes a set of proteins Do. See, for example, Mellor et al., Nature (1985) 318: 583-586; Garfinkel et al., Cell (19 85) 42: 507-517; Adams et al., Cell (1987) 49: 111-119. Ty VLP is a yeast When expressed in the mother, the Ty element primary translation product p1, Combination of p1 and p3 (pre-Ty VLP), and particle-forming proteins of p1 and p3 It can be formed from degradation products. See, for example, Adams et al., Nature (1987) 329: 68-70. That.   VLPs for use in the present invention also include viruses derived from human parvovirus B19. Proteins (e.g., the viral proteins VP1 and And / or VP2 (see Brown et al., Virology (1994) 198: 477-488) and insects VP1, VP2 and / or VP3 proteins from polyomavirus expressed in cells Quality (Delos et al., Virology (1993) 194: 393-398; Forstova et al., Human Gene Therapy (19 95) 6: 297-306)). Retroviral gag proteins (e.g., Lau Derived from sarcoma virus (RSV) and Moloney murine leukemia virus (MLV) ) Are also autonomously forming VLPs when expressed in eukaryotic cells. As well as the p-specific core antigen p55gag, and deletion mutants thereof, herein Use is found. See, for example, Wagner et al., Arch. Virol. (1992) 127: 117-137; R et al., Virology (1994) 200: 162-175; Brand et al., J. Virol. Meth. (1995) 51: 153-168, And Wagner et al., Virology (1996) 220: 128-140.   As explained above, VLPs are derived from host cells for which the particle-forming polypeptide of interest is appropriate. When recombinantly expressed in cells, they can form autonomously. Therefore, in the present invention, VLPs for further use are conveniently prepared using recombinant techniques well known in the art. It is. In this regard, the gene encoding the particle forming polypeptide in question may be obtained by known techniques. Cells and tissues containing this gene using DNA surgery or from surgery Can be isolated directly from For example, a description of the technology used to obtain and isolate DNA. See Sambrook et al. (Supra) for listings. Encodes a particle-forming polypeptide Genes can also be produced synthetically, based on known sequences. Nucleoti Can be designed using codons appropriate for the particular amino acid sequence desired. one In general, one will select preferred codons for the intended host in which the sequence will be expressed. Perfect Sequences are generally derived from overlapping oligonucleotides prepared by standard methods. Build and build into a complete coding sequence. For example, Edge, Nature (1981) 292: 7 56; Nambair et al., Sclence (1984) 223: 1299; Jay et al., J. Biol. Chem (1984) 259: 6311. checking ...   Once the coding sequence for the desired particle forming polypeptide is isolated, Or, if synthesized, they may be any suitable vector or vector for expression. It can be cloned into Recon. Numerous cloning vectors are available to those skilled in the art. It is known. And the selection of an appropriate cloning vector is a matter of choice. See generally, Sambrook et al., Supra. The vector is then used to Transform a stubborn host cell. Suitable expression systems include bacteria known in the art, Mammals, baculoviruses / insects, vaccinia, semliki forest virus (SFV), Mammalian, yeast and Xenopus expression systems, including but not limited to . Particularly preferred expression systems are mammalian, vaccinia, insect, and yeast systems. .   For example, many mammalian cell lines are known in the art, and American Type Cult ure Collection (ATCC) available from immortalized cell lines (e.g., Chinese Ham) Star ovary (CHO) cells, HeLa cells, infant hamster kidney (BHK) cells, monkey kidney cells (COS), human hepatocarcinoma cells (e.g., Hep G2) and others). It is not limited to these. Similarly, E. coli, Bacillus subtilis, and Streptococ Bacterial hosts such as cus spp. find use in the expression constructs of the present invention. Departure Particularly useful yeast hosts in the field are Saccharomyces cerevisiae, Candid a albicans, Candida maltosa, Hansenula polymorpha, Kluyveromyces fragili s, Kluyveromyces lactis, Pichiaguillerimondii, Pichia pastoris, Schizosa ccharomyces pombe and Yarrowia lipolytica. Baculovirus Insect cells for use in expression vectors include, inter alia, Aedes aegypti, Autogra pha californica, Bombyx mori, Drosophila melanogaster, Spodoptera frugip erda, and Trichoplusia ni. For example, Summer and Smith, Texa s See Agricultural Experiment Station Bulletin No. 1555 (1987).   Viral vectors (for example, pox family viruses (vaccinia virus and And avian poxviruses) are particles in eukaryotic cells. It can be used for offspring production. Further, Tomei et al., J. Virol. (1993) 67: 4017-40. 26 and Selby et al., J. Gen. Virol. (1993) 74: 1103-1113. Senior-based infection / transfection systems have also found use in the present invention. It is. In this system, cells are coated with bacteriophage T7 RNA polymerase. The transfected vaccinia virus is first transfected in vitro. This polymerase transcribes only the template with the T7 promoter In that it offers elaborate specificity. Following infection, cells will have a T7 promoter And transfected with the DNA of interest. Vaccinia wi The polymerase expressed in the cytoplasm from the Lus recombinant is then Transcribes transfected DNA into RNA that is translated into protein by a mechanism I do. This method involves high-level, transient, fine-scale production of large amounts of RNA and this translation product. Provides cytoplasmic production.   Depending on the expression system and host selected, VLPs are expressed by the particle-forming polypeptide. And transformed with the expression vector under conditions that allow the formation of VLPs Produced by growing host cells. Selection of appropriate growth conditions depends on the Within the field of technology. When VLPs are formed intracellularly, cells are chemically, Destroyed using physical or mechanical means. This means lyses the cells, , Leaving the VLP substantially intact. Such methods are known to those skilled in the art. Yes, and for example, Protein Purification Applications: A Practical Approa ch, (E.L.V. Harris and S. Angel, eds., 1990).   Then, gradient centrifugation (eg, cesium chloride (CsCl) and sucrose gradient) Methods for preserving its integrity, such as by Kirnbauer et al., J. Viro l. (1993) 67: 6926-6936), as well as standard purification techniques (eg, Ion exchange chromatography and gel filtration chromatography) Isolate the particles.   Once obtained, the VLP adjuvant of the present invention provides a vaccine set containing the desired antigen. At the same time as, immediately before, immediately before, or Can be administered separately, either: Vaccine compositions are used to treat infections And / or may be used both for prevention. Further, the adjuvant formulation of the present invention The activity of the antigen produced in vivo, i.e. in combination with DNA immunization Can be used to enhance sex.   VLP adjuvants can be used against or against one or more selected pathogens. Immunizing a vertebrate subject against a subunit antigen derived from Use in eliciting an immune response to one or several antigens. Can be used. Antigens that can be administered with a VLP adjuvant include proteins, poly Peptides, antigenic protein fragments, oligosaccharides, polysaccharides Including ids. Similarly, oligonucleotides or polynucleotides encoding the desired antigen The oligonucleotide can be administered with a VLP adjuvant for in vivo expression You.   Antigens are derived from a wide variety of viruses, bacteria, fungi, plants, protozoa, and other parasites Can be derived from For example, the present invention relates to the herpesvirus family, including: See applications for stimulating immune responses to a wide variety of proteins from Issue: Herpes simplex virus (HSV) type 1 and 2 derived proteins (eg, HSV-1 and HSV-2 gB, gD, gH, VP16, and VP22); varicella-zoster virus ( VZV), Epstein-Barr virus (EBV), and cytomegalovirus (CMV) Derived antigens (including CMV gB and gH); and from other human herpes viruses Native antigens (eg, HHV6 and HHV7). (Eg, cytomegalovirus tan For an overview of the context of the protein code, see Chee et al., Cytomegaloviruses (JK McDou). gall, Springer-Verlag 1990) pp. 125-169; discussion of various HSV-1-encoded proteins For the theory, McGeoch et al. Gen. Virol. (1988) 69: 1531-1574; HSV-1 and HSV For a discussion of -2 gB and gD proteins and the genes that encode them, US Patent No. 5,171,568; Identification of Protein Coding Sequence in EBV Genome Davison, Baer et al., Nature (1984) 310: 207-211; and a review of VZV. And Scott, J .; Gen. Virol. (1986) 67: 1759-1816).   Furthermore, hepatitis family viruses (hepatitis A virus (HAV), hepatitis B virus). Ils (HBV), hepatitis C virus (HCV), hepatitis delta virus (HDV), type E Immunity to antigens from hepatitis virus (HEV), including hepatitis G virus) The epidemic response can also be conveniently enhanced using a VLP adjuvant. For illustrative purposes, H The CV genome contains several viral proteins (E1 (also known as E) and E2 (also known as E2 / NSI), thereby providing (For a discussion of HCV proteins, including E1 and E2, see Houghto n et al., Hepatology (1991) 14: 381-388). Δ-antigen from HDV also Can be used with the VLP adjuvant system of the invention (eg, for the description of the δ-antigen See US Pat. No. 5,389,528).   Similarly, influenza viruses are another class of viruses for which the present invention is particularly useful. It is an example. Specifically, the influenza A envelope glycoproteins HA and NA Are particularly beneficial for generating an immune response. Many influenza A Many HA subtypes have been identified (Kawaoka et al., Virology (1990) 179: 759-767). Webster et al., “Antigenic Variation among type A influenza viruses” 127-16 Page 8; Palese and D.W. Kingsbury (eds.), Genetics of influenza viruses, Sp ringer-Verlag, New York). Thus, the immune response to any of these antigens Can be enhanced when they are administered with a VLP adjuvant of the invention. .   Another particularly useful antigen to be used in combination with the VLP adjuvant is human Antigen derived from papilloma virus (HPV) and polypeptide derived from the antigen (Eg, one or more of various early proteins, including E6 and E7), tick-borne Encephalitis virus, derived from HIV-1 (also known as HTLV-III, LAV, ARV, hTLR, etc.) And a polypeptide derived therefrom, wherein the antigen comprises the isolate HIVIIIb , HIVSF2, HIVLAV, HIVLAI, HIVMNAntigens derived from, for example, gp120, gp41, gp160 , Gag, and pol, including, but not limited to, various HIV isolates Myers et al., Los Alamos Database, Lo s Alamos National Laboratory, Los Alamos, New Mexico (1992); Myers et al., Hum. an Retroviruses and Aids, 1990, Los Alamos, New Mexico: Los Alamos Natio nal Laboratory; and Modrow et al. Virol. (See (1987) 61: 570-578.) .   Proteins from other viruses also find use in the methods of the invention. And its proteins include, but are not limited to, for example, inter alia : Picornaviridae (eg, poliovirus); Caliciviridae; Togavirid ae (eg, rubella virus, dengue virus, etc.); Flaviviridae; Coronaviri dae; Reoviridae; Birnaviridae; Rhabodoviridae (for example, rabies virus Filovridae; Paramyxoviridae (eg, mumps virus, measles virus) Orthomyxoviridae (eg, influenza virus A) Type, type B and type C); Bunyaviridae; Arenaviridae; Retroviridae (eg For example, HTLV-1; HTLV-II; HIV-1; HIV-2); Simian immunodeficiency virus (SIV) family Proteins from Lee members. For example, these viruses and other viruses Virology, 3rd edition (W.K. Joklik, 1988); Fundamental V irology, 2nd edition (B.N. Fields and DM Knipe, eds., 1991)).   Particularly preferred bacterial antigens are diphtheria, tetanus, pertussis, meningitis, and other From an organism that causes a pathogenic condition, whose antigens include, but are not limited to: Not: Corynebacterium diphtheriae, Clostridium tetani, Bordetella pe rtusis, Neisseria meningitidis (Meningococcus serotypes A, B, C, Y, and And W135 (including MenA, B, C, Y, and W135), Haemophilus influenza B Type (Hib), and antigens from Helicobacter pylori. An example of a parasite antigen is Marari And antigens from organisms that cause Lyme disease.   Combinations of antigens from the above organisms can address multiple pathogens in a single vaccine. It can be conveniently used to induce immunity. For example, particularly preferred combinations Non-toxic mutant carriers derived from bacterial toxins (eg, CRM)197Known as Bacterial surface from MenC and Hib bound to a non-toxic mutant of diphtheria toxin It is a combination of oligosaccharides. This binding prevents bacterial meningitis. And described in International Publication No. WO 96/14086 (published May 17, 1996). Will be posted.   In addition, the methods described herein provide a means for treating various malignant cancers. provide. For example, using the system of the present invention, specific proteins specific to the cancer in question may be used. Proteins (eg, activated oncogenes, fetal antigens, or activation markers) Can enhance both the humoral immune response and the cell-mediated immune response. like that Tumor antigens include any of a variety, including, inter alia: MAGE 1, 2, 3, 4, etc. MAGE (Melanoma-associated antigen E) (Boon, T. Scientifc American (March 1993): 82-89); any of a variety of tyrosinases; MART 1 (melano recognized by T cells Mutant ras; mutant p53; p97 melanoma antigen; CEA (carcinoembryonic antigen) .   The present invention is used to increase the immune response to a wide variety of antigens, thereby It is readily apparent that most diseases can be treated or prevented.   As explained above, the VLP formulation may include one or more antigens of interest, It may not be included. For example, the antigen can be used in the VLP composition Can be administered separately. In any event, the one or more selected antigens "Therapeutically effective" such that an immune response can be generated in the individual to which the antigen is administered. Amount "administered. The exact amount required will vary depending, inter alia, on the following factors: Become: subject to be treated; age and general condition of the subject to be treated; Immunization of a subject that synthesizes antibodies and / or increases a cell-mediated immune response The ability of the system; the degree of protection desired; the severity of the condition being treated; Antigen and its administration form. An appropriate effective amount can be readily determined by one skilled in the art. . Thus, a "therapeutically effective amount" is a relatively broad range that can be determined through routine trials. Settle in range. Generally, a "therapeutically effective" amount of the antigen is from about 0.1 μg to about 1000 μg, More preferably, the amount is on the order of about 1 μg to about 100 μg.   Similarly, VLP adjuvant is compared to administration of antigen alone without VLP adjuvant And the amount by which the antigen exhibits "enhanced immunogenicity" as defined above. Exists in. The amount effective to elicit an enhanced immune response will vary depending on the skilled artisan. Can be easily determined.   The composition may further comprise one or more "pharmaceutically acceptable excipients or vehicles." (Eg, water, saline, glycerol, ethanol, etc.). Further In addition, auxiliary substances, such as wetting or emulsifying agents, biological buffers, etc. May be in the vehicle. The biological buffer is pharmacologically acceptable, and Substantially provide the desired pH (ie, pH in the pharmacological range) to the adjuvant formulation Can be any solution. Examples of buffer solutions are saline, phosphate buffered saline Saline, Tris buffered saline, Hank's buffered saline, Eagle minimum essential medium ("MEM") and the like.   Antigens, by themselves, induce the production of antibodies harmful to the individual receiving the composition It is optionally combined with a carrier that is not a molecule. A good career is Typically, large, slowly metabolized macromolecules (eg, proteins, polysaccharides) Callide, polylactic acid, polyglycolic acid, polymerizable amino acid, amino acid copolymer , Lipid aggregates (eg, oily droplets or liposomes), and inert viruses Particles. Such carriers are well-known to those skilled in the art. In addition, these The carrier can function as a further immunostimulant. In addition, the antigen It is bound to bacterial toxoids such as toxoids from a, tetanus, cholera, etc. obtain.   In addition to the VLPs of the present invention, co-adjuvants also enhance the efficacy of pharmaceutical compositions Can be used to Such coadjuvants include, but are not limited to: But not limited to: (1) aluminum salts (eg, aluminum hydroxide, (2) Oil-in-water emulsion formulation (This may be due to other specific immunostimulants, such as muramyl peptide (see below). With or without bacterial cell wall components), such as (a) Model 110Y Microfluidizer (Microfluidizer) (Microfluidics, Newton, MA) 5% Squalene, 0.5 formulated into submicron particles using a rofluidizer % Tween 80, and 0.5% Span 85 (although not required, but necessary MF59 (International Publication Number) containing various amounts of MTP-PE (see below) WO 90/14837, (b) to produce emulsions of larger particle size Microfluidized or vortexed into submicron emulsion 10% Squalane, 0.4% Tween 80, 5% pluronic blocking -blocked) SAF, including polymer L121, and thr-MDP (see below) Rabi ni (c) 2% Squalene, 0.2% Tween 80, and monophospholipid A (MPL) , Trehalose dimycolate (TDM), and cell wall skeleton (CWS) One or more bacterial cell wall components, preferably MPL + CWS (DetoxTMIncluding RibiTMHorse mackerel (3) Saponin adjuvant (RAS) (Ribi Immunochem, Hamilton, MT); Bunt, for example, StimulonTM(Cambridge Bioscience, Worcester, MA) used Particles that can be or are produced from, eg, ISCOMs (immunostimulating complexes) (4) Freund's complete adjuvant (CFA) and incomplete Freund's adjuvant (5) cytokines (eg, interleukins (IL-1, IL-2, etc.) ), Macrophage colony stimulating factor (M-CSF), tumor necrosis factor (TNF), etc.); ) Mucosal adjuvants (eg, cholera toxin (CT), pertussis toxin (PT), E. coli fever Adjuvants derived from stable toxins (LT) and variants thereof (eg, International Publication No. Nos. WO 95/17211, WO 93/13202, and WO 97/02348); and (7) )) Other substances that act as immunostimulants, which enhance the effectiveness of the composition. alum and MF59 is preferred.   Muramyl peptides include, but are not limited to: N-acetyl-mu Ramyl-L-threonyl-D-isoglutamine (thr-MDP), N-acetyl-normuramyl (normuramyl) -L-alanyl-D-isoglutamine (nor-MDP), N-acetylmuramyl-L- Alanyl-D-isoglutaminyl-L-alanine-2- (1'-2'-dipalmitoyl-sn-glyce B-3-Hydroxyphosphoryloxy) -ethylamine (M TP-PE).   Once formulated, the compositions of the present invention can be administered parenterally, for example, by injection. Can be given. The composition can be injected either subcutaneously, intraperitoneally, intravenously, or intramuscularly. Can be done. Other modes of administration include oral and pulmonary administration, suppositories, mucosal and transdermal applications. Including. Dosage treatment may be a single dose schedule or a multiple dose schedule. You. Multi-dose schedules have a primary course of vaccination of 1 to 10 separate doses, followed by selection to maintain and / or enhance the immune response Other doses given at subsequent time intervals (eg, 1-4 doses for a second dose) Month, and optionally several months later). Medication regimen , At least in part, is determined by the needs of the subject and depends on the judgment of the practitioner. Exist. In addition, if prevention of the disease is desired, the vaccine will generally comprise the pathogen of interest. It is given before a temporary infection in the body. If treatment is desired, for example, symptoms or If a reduction in recurrence is desired, the vaccine is generally administered following the primary infection. You. C.Experiment   The following are examples of specific embodiments for carrying out the present invention. The examples are provided for illustrative purposes only. Provided only in a limited manner and in any manner limits the scope of the invention It is not intended.   Efforts are made to confirm accuracy with respect to numerical values used (eg, amounts, temperatures, etc.). However, some experimental errors and deviations should of course be tolerated.                                 Example 1   Hepatitis B virus (HBV) VLP and Haemophilus influenzae type b (Hib) and And / or vaccine containing Hib / Meningococcal C (MenC) conjugate in infant baboons The following studies were performed to evaluate immunogenicity.                              Materials and methods A.vaccine   The Hib / MenC conjugate vaccine and the Hib conjugate vaccine used in this study Park Carrier CRM197Containing oligosaccharides independently conjugated to Produced as described in No. WO 96/14086 (published May 17, 1996).   The VLP used was the recombinant hepatitis B virus (HBV) pre-S2 / S antigen. VLP The Pre-S2 / sAg gene into an expression vector and use it to produce Using DG44 Chinese Hamster Ovary (CHO) cells (this is also the dhfr gene Was transfected). Cell proliferation and HB Essentially, expression of V particles was described by Michel et al., Bio / Technology (June 1985) 3: 561-566 and And Patzer et al., As described in Bio / Technology (July 1986) 4: 630-636. did.   The control vaccine formulation was HBV S antigen from yeast adsorbed on alum. Was included.   Reconstitute both complex polysaccharide vaccine and HBV VLP formulation on the day of vaccination And a dose of about 5 μg of each sugar, a total of 20 μg of CRM197Protein, and 2.5 μg of H BV VLP provided. B. Vaccine group   At the start of the study, 1.5- to 4-month-old infant baboons were Groups were assigned. * N = 6 animals / group (1.5-4 months of age at the start of the study) Blood samples were collected before each immunization and two weeks after the third immunization.                                   result   Figures 1 and 2 show HBV VLP versus HBV VLP as determined by commercial E1A (Abbott). 1 shows the serum antibody response of an infant baboon. The result is the geometric mean of the antibody concentration in IU / ml. On a log scale of ± 95% C1, the vaccine containing HBV VLPs To indicate   As can be appreciated, HBV VLP alone given with MF59 was highly immunogenic. By nature, this is greater than 100 IU / ml after a single injection and 1000 IU / ml after a second injection. Reach a geometric mean titer of> 100,000 IU / ml after the third injection Done.   In contrast, the control vaccine given with alum is much lower It is immunogenic, does not respond to a single injection, and has There was a 1/10 response to the second and third injections. Not shown, MenC / Hib binding In group 5, where the body vaccine was given without VLP, the detectable hepatitis antibody response was Did not exist. These results were observed in clinical experiments in healthy adults. Corresponding to the difference in immunogenicity between these two vaccines.   Presence of Hib or Hib / MenC conjugate was compared to the response of the group receiving hepatitis B / MF59 alone. In comparison, the hepatitis antibody response was reduced. This may occur after the first or second injection. Was especially true. However, the third of the MF59 adjuvanted combination vaccines After injection of each, the respective antibody response to HBV was still 10 times higher than the response of vaccinated animals (geometric means 49,000 and 38,000 IU / ml vs. 5000 IU / ml for control HBV) (p <0.01).   Serum anti-capsular antibody response of infant baboons to Hib conjugate vaccine Determined using a combined assay. FIGS. 3 and 4 show that on a log scale in μg / ml, With Hib / MenC, HBV / Hib and M4F59 given with F59, and MF59 Mean antibody concentrations for the three groups given the vaccine containing HBV / Hib / MenC Indicates the degree.   All three groups showed strong antibody responses to Hib. Interestingly, H The presence of BV VLP appeared to increase the Hib antibody response. For example, the third injection Later, the geometric mean antibody concentration was 3 in the group receiving HBV with Hib / MenC and MF. 5 μg / ml versus 10.8 μg for the group receiving Hib / MenC / MF59 without HBV g / ml. The Hib response to HBV / Hib without MenC was even higher (1 00 μg / ml).   The serum antibody response of infant baboons to the MenC conjugate vaccine was also measured. The result 5A and 5B. FIG. 5A shows IgG anticapsules determined by ELISA. 3) shows the antibody response. FIG. 5B shows the complement-mediated bacterial antibody response. M including HBV VLP The antibody response to the F59-adjuvanted MenC combination vaccine was Hib with MF59. Responses were equal to or higher than those of animals receiving the / MenC vaccine alone. this Are IgG binding antibodies determined by ELISA and antibodies determined by bactericidal assay This was true for both functional activities.   Table 2 summarizes the geometric antibody response after the third injection for all groups. Reason As can be seen, control vaccine adsorbed to alum, or MF59 Animals receiving an experimental HBV VLP preparation with a response only to HBV. further , The magnitude of the response is more than 20 times higher than for the experimental MF59 adjuvanted vaccine It was higher.   HBV antibody response to Hib or two combination vaccines containing Hib and MenC , Approximately one-half of the response of animals receiving HBV / MF59 alone. I'm also concerned And they are still 8-10 times higher than the response observed with the control vaccine won. As already noted, H for two combination vaccines containing HBV VLPs The ib antibody response was greater than the response of animals given Hib / MenC / MF59 without HBV VLP (Group 5) it was high.   For MenC conjugates, there is also evidence that HBV VLP can enhance IgG MenC antibody response Also existed. *P = 0.07: + P ≦ 0.03                                 Example 2   Experiments also included human papillomavirus 6b (HPV 6b) L1 VLP and HPV E7. In order to evaluate the immunogenicity of the vaccine, it was performed in rabbits as follows.                              Materials and methods A.vaccine   The recombinant protein used in the vaccine of this study was HPV 6b as described. Cloned from Schwarz, EMBO J .; (1983) 2: 2341-2348. Virus-like particle (VLP) vaccines self-assemble into particles and perform ion exchange and Late stage from baculovirus purified via gel and gel filtration chromatography 1 (L1) protein. VLPs are approximately 50 nm in size, and HPV (Greer, J. Clin. Micro. (1995) 33: 2058-2063). Second The vaccine consisted of Early 7 (E7) protein from E. coli.   On the day of vaccination, the vaccine contains 17 μg of HPV 6 L1 VLP On the other hand, the E7 vaccine dose contains 50 μg of E7, and the L1 / E7 combination vaccine dose is It was prepared to contain 17 μg of VLP and 50 μg of E7. Total volume of all vaccines The volume was 0.5 ml and 0.25 ml was MF59 coadjuvant. B. Vaccine group   Young adult female New Zealand white rabbits are available in three possible (20 animals per group). Animals can be VLP, E7, or L1 or Received vaccines containing any of the E7 combinations. C.Immunization and blood collection schedule   Rabbits received intramuscular (hind leg) vaccinations during weeks 0, 3, and 6 . Blood samples were collected during weeks 0, 4, 5, 7, and 8. D.Determination of antigen-specific antibody response   Antibody response was measured using an antigen-specific ELISA. Titer, optical density 0.5 The dilution was determined for each serum.result   The rabbit serum titer results for the E7 and L111 antigens are summarized in FIG. Logarithm The results presented on the scale are the arithmetic mean of the antibody titers for the groups. MF59 Waku H Antibody titers generated from E7 alone with Significantly lower than VLPs (313 vs. 106,000; p <0.0001; and 1,400 vs. 65,000; p <0.0001). However, the anti-E7 average titer produced by the E7 / VLP combination showed that MF59 When injected with the combined E7 / L1 vaccine (and MF59) when compared to the associated E7 alone Seemed to be increased in those (825 vs. 313; 1,567 vs. 1,363). In addition, E7 / L1 The median titer was significantly higher at weeks 5 and 8 at the 5% level (respectively , P-values 0.0018 and 0.0125). In addition, the number of non-responders was E7 / L1, Was statistically significantly lower for (p-value 0.023, Fisher's exact test ( exact test)).   The data show that VLPs alone with MF59 are highly immunogenic, indicating that Potency of 482 after firing and 106,000 and 65,000 after the second and third injections I did it. However, anti-VLP levels for the combined VLP / E7 vaccine group after the second immunization The average titer decreased (106,000 vs. 89,000) and significantly decreased after 3 immunizations (65,00 0 vs. 35,000; p = 0.001).   Accordingly, novel VLP adjuvant compositions and methods of using and making them A method is disclosed. Although the preferred embodiments of the present invention have been described in some detail, Apparent modifications, as defined by the appended claims, are within the spirit and scope of this invention. It is understood that this can be done without departing from the scope and scope.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 EP(AT,BE,CH,CY, DE,DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,I T,LU,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ ,CF,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR, NE,SN,TD,TG),AP(GH,GM,KE,L S,MW,SD,SZ,UG,ZW),EA(AM,AZ ,BY,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM),AL ,AM,AT,AU,AZ,BA,BB,BG,BR, BY,CA,CH,CN,CU,CZ,DE,DK,E E,ES,FI,GB,GE,GH,GM,GW,HU ,ID,IL,IS,JP,KE,KG,KP,KR, KZ,LC,LK,LR,LS,LT,LU,LV,M D,MG,MK,MN,MW,MX,NO,NZ,PL ,PT,RO,RU,SD,SE,SG,SI,SK, SL,TJ,TM,TR,TT,UA,UG,UZ,V N,YU,ZW (72)発明者 グリアー,キャサリン イー. アメリカ合衆国 カリフォルニア 94608, エミリービル,ホートン ストリート ア ール440 4560,カイロン コーポレイシ ョン内 (72)発明者 バン ネスト,ガリー エイ. アメリカ合衆国 カリフォルニア 94608, エミリービル,ホートン ストリート ア ール440 4560,カイロン コーポレイシ ョン内────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (81) Designated country EP (AT, BE, CH, CY, DE, DK, ES, FI, FR, GB, GR, IE, I T, LU, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ , CF, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AP (GH, GM, KE, L S, MW, SD, SZ, UG, ZW), EA (AM, AZ , BY, KG, KZ, MD, RU, TJ, TM), AL , AM, AT, AU, AZ, BA, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CU, CZ, DE, DK, E E, ES, FI, GB, GE, GH, GM, GW, HU , ID, IL, IS, JP, KE, KG, KP, KR, KZ, LC, LK, LR, LS, LT, LU, LV, M D, MG, MK, MN, MW, MX, NO, NZ, PL , PT, RO, RU, SD, SE, SG, SI, SK, SL, TJ, TM, TR, TT, UA, UG, UZ, V N, YU, ZW (72) Inventor Greer, Catherine E.             United States California 94608,             Emilyville, Houghton Street             440 4560, Chiron Corporation             Inside (72) Inventors Van Nest, Gully A.             United States California 94608,             Emilyville, Houghton Street             440 4560, Chiron Corporation             Inside

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.ウイルス様粒子(VLP)アジュバント、選択された抗原、および薬学的に受 容可能な賦形剤を含むワクチン組成物であって、該選択された抗原が該VLPとは 異なる、ワクチン組成物。 2.さらにコアジュバントを含む、請求項1に記載のワクチン組成物。 3.前記コアジュバントがMF59を含む、請求項2に記載のワクチン組成物。 4.前記VLPが、肝炎表面抗原の1つ以上の粒子形成ポリペプチドから形成され る、請求項1〜3のいずれかに記載のワクチン組成物。 5.前記粒子形成ポリペプチドが、sAg、pre-S1、およびpre-S2からなる群から 選択される少なくとも1つの肝炎表面抗原である、請求項4に記載のワクチン組 成物。 6.前記VLPが、sAgおよびpre-S2から形成される、請求項5に記載のワクチン組 成物。 7.前記VLPが、パピローマウイルスL1および/またはL2の粒子形成ポリペプチド から形成される、請求項1〜3のいずれかに記載のワクチン組成物。 8.前記選択された抗原が、MenC/Hibオリゴ糖結合体である、請求項1〜7のい ずれかに記載のワクチン組成物。 9.前記選択された抗原がHPV E7である、請求項1〜7のいずれかに記載のワク チン組成物。 10.脊椎動物被験体における増強された免疫応答を産生するのに有用な組成物 の製造のための、ウイルス様粒子(VLP)アジュバントおよび該VLPとは異なる選 択された抗原の、使用。 11.前記VLPが、肝炎表面抗原の1つ以上の粒子形成ポリペプチドから形成さ れる、請求項10に記載の使用。 12.前記粒子形成ポリペプチドが、sAg、pre-S1、およびpre-S2からなる群か ら選択される少なくとも1つの肝炎表面抗原である、請求項11に記載の使用。 13.前記VLPが、sAgおよびpre-S2から形成される、請求項12に記載の使用。 14.前記VLPが、パピローマウイルスL1および/またはL2の粒子形成ポリペプチ ドから形成される、請求項10に記載の使用。 15.前記選択された抗原が、MenC/Hibオリゴ糖結合体である、請求項10〜1 4のいずれかに記載の使用。 16.前記選択された抗原がHPV E7である、請求項10〜14のいずれかに記載 の使用。 17.アジュバント処方物を調製する方法であって、ウイルス様粒子(VLP)を 提供する工程、およびVLPを薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせる工程を包 含する、方法。 18.選択された抗原を、該VLPおよび該薬学的に受容可能な賦形剤とを組み合 わせる工程をさらに包含する、請求項17に記載の方法。[Claims] 1. Virus-like particle (VLP) adjuvants, selected antigens, and pharmaceutically acceptable A vaccine composition comprising an acceptable excipient, wherein the selected antigen is the VLP. Different, vaccine compositions. 2. The vaccine composition according to claim 1, further comprising a coadjuvant. 3. 3. The vaccine composition according to claim 2, wherein said coadjuvant comprises MF59. 4. The VLP is formed from one or more particle forming polypeptides of a hepatitis surface antigen. A vaccine composition according to any of claims 1 to 3. 5. The particle-forming polypeptide is selected from the group consisting of sAg, pre-S1, and pre-S2. 5. The vaccine set according to claim 4, which is at least one hepatitis surface antigen selected. Adult. 6. 6. The vaccine set of claim 5, wherein said VLP is formed from sAg and pre-S2. Adult. 7. The VLP is a particle forming polypeptide of papillomavirus L1 and / or L2. The vaccine composition according to any one of claims 1 to 3, which is formed from: 8. The method according to claim 1, wherein the selected antigen is a MenC / Hib oligosaccharide conjugate. A vaccine composition according to any of the preceding claims. 9. The vaccine according to any one of claims 1 to 7, wherein the selected antigen is HPV E7. Chin composition. 10. Compositions useful for producing an enhanced immune response in a vertebrate subject Virus-like particle (VLP) adjuvant and a different selection from said VLP for the production of Use of the selected antigen. 11. The VLP is formed from one or more particle forming polypeptides of a hepatitis surface antigen. The use according to claim 10, wherein 12. Wherein the particle-forming polypeptide is a group consisting of sAg, pre-S1, and pre-S2. The use according to claim 11, which is at least one hepatitis surface antigen selected from: 13. 13. Use according to claim 12, wherein the VLP is formed from sAg and pre-S2. 14. The VLP is a papillomavirus L1 and / or L2 particle-forming polypeptide. The use according to claim 10, wherein the use is formed from a metal. 15. 2. The method of claim 1, wherein the selected antigen is a MenC / Hib oligosaccharide conjugate. 4. Use according to any of 4. 16. 15. The method of claim 10, wherein the selected antigen is HPV E7. Use of. 17. A method of preparing an adjuvant formulation, comprising: adding virus-like particles (VLPs) Providing and combining the VLP with a pharmaceutically acceptable excipient. Including, the method. 18. Combining the selected antigen with the VLP and the pharmaceutically acceptable excipient 18. The method of claim 17, further comprising the step of passing.
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