JP2000507824A - Therapeutic recombinant poxvirus encoding myelin protein - Google Patents

Therapeutic recombinant poxvirus encoding myelin protein

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サリオン・バイオロジクス・コーポレイシヨン
ベス・イスラエル・デイーコンズ・メデイカル・センター
ザ・リージエンツ・オブ・ザ・ユニバーシテイ・オブ・カリフオルニア
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Abstract

(57)【要約】 ミエリンタンパク質をコードする組換えポックスウイルスが開示されている。組換えポックスウイルスの使用によってミエリンタンパク質に対する免疫応答を惹起し得る。この方法は、ミエリンタンパク質を免疫系に提示するために十分な量のポックスウイルスを導入し、このミエリンタンパク質を発現させ、ミエリンタンパク質を免疫系に提示する段階から成る。   (57) [Summary] Recombinant poxviruses encoding myelin proteins have been disclosed. The use of a recombinant poxvirus can elicit an immune response against myelin proteins. The method comprises introducing a sufficient amount of poxvirus to present the myelin protein to the immune system, expressing the myelin protein, and presenting the myelin protein to the immune system.

Description

【発明の詳細な説明】ミエリンタンパク質をコードする治療用組換えポックスウイルス 本発明の研究費の一部としてNIH補助金No.NS30727が拠出され、 従って米国政府は本発明にある程度の権利を有している。発明の背景 多発性硬化症(MS)及びギラン−バレ症候群のような中枢神経系(CNS) の炎症性脱鞘疾患は、CNS自己抗原に対する免疫応答が関与する病気であると 考えられている。実験的アレルギー性脳脊髄炎(EAE)のような疾病モデルか ら類推すると、ミエリンタンパク質、特にミエリン塩基性タンパク質(MBP) に対する免疫応答が炎症性脱鞘疾患の発症及び進行に1つの役割を果たすことを 間接的証拠が示唆している。例えば、ヒトMS患者の場合、典型的にはMBP反 応性T細胞がMS患者の脳脊髄液から回収される(1、2及び3)。MS患者の 脳脊髄液(CSF)中のMBP反応性T細胞の濃度は、他の神経系疾患に罹った 対照の濃度に比較して高い値である(2)。MBP反応性T細胞はMS病巣でも 直接検出された(3)。 EAEの場合、MBPもしくはMBPの抗原性フラグメントによる能動免疫によ ってまたはMBP反応性T細胞の養子免疫によって病気が誘発され得るので、M BPがこの病気の主要抗原である(4、5)。 MBPはミエリンタンパク質の1成分である。MBP遺伝子は選択的RNAス プライシングによって幾つかのMBP近縁タンパク質をコードする(Lemki ,G.(1988),Mikoshiba,K.ら(1991),Kamhol z,J.(1987))。プロテオリピドタンパク質(PLP)、ミエリン関連 糖タンパク質(MAG)、ミエリン/オリゴデンドロサイト糖タンパク質(MO G)のような他のミエリンタンパク質の遺伝子配列も既知である(Lining tonら,Eur.J.Immunol.23:1364(1993)参照)。 EAE感受性動物は、MSのようなヒト炎症性脱鞘疾患の研究モデルであると 認められている。EAEは典型的には、完全ミエリン、MBP、MBPの抗原性 フラグメントで免疫感作するかまたはMBP反応性T細胞で養子免疫することに よって誘発され得る(12、13、4、5)。齧歯類はEAEに罹患し た場合にも通常は回復する。これは、免疫系が細胞傷害性T細胞または抗炎症性 サイトカインを供給することによって病気を抑制することを示す(6、11)。 しかしながらヒトのMSは、齧歯類の急性EAEの大抵の形態とは異なる再発性 及び慢性の疾患である。ヒト疾患の再発の原因となる要因に関しては殆どわかっ ていない。また、ヒト疾患における調節性T細胞(例えばサプレッサーT細胞) の役割も十分には研究されていない。 霊長類Callithrix jacchus(C.jacchus、コモン マーモセット)においては、全白質で能動免疫するかまたはMBP反応性T細胞 もしくはクローンで養子免疫することによってEAEが誘発され得る(12−1 4)。マーモセットは炎症性脱鞘疾患の特に有利な研究モデルであるが、その理 由の1つは、共通の両親をもつ同胞が、遺伝的に異なる個体間のリンパ球の養子 移入を可能にする骨髄キメラ性を共有しているからである。EAEに罹ったマー モセットでは、病気が発症しているときにMBPに対するT細胞及び抗体の反応 性が検出され、これは末梢血単核細胞(PBMC)標本で観察され得る(13) 。 ポックスウイルス科のウイルス(ポックスウイルス)は、臨床及び研究のため に行われる多くの組込み操作において外来遺伝子及 び遺伝子産物をデリバリーするベクターとして有用である。幾つかの理由からオ ルトポックスウイルスOrthopoxvirus属のポックスウイルス、特に ワクシノアウイルスが使用される。その理由としては例えば、(a)天然痘根絶 のためにヒトに広く使用されていること、(b)抗原提示を専門とする細胞を含 む広範囲の細胞に感染し、挿入された遺伝子産物(例えば外来遺伝子産物)を発 現させる能力を有しており、遺伝子産物がクラスI及び/またはクラスIIのM HC分子との関係に基づいて処理されるようにできること、(c)いくつかの腫 瘍の治療において組換えワクチンとして使用されていること(Kantor,J ら,(1992))がある。 鶏痘、カナリア痘のようなアビポックスウィルス属のウイルス、豚痘のような スイポックスウイルス属のウイルスなどの他の多くのポックスウィルスが、ワク チン用ベクターとして、及び、外来遺伝子の細胞内発現用ベクターとして使用さ れている。 神経鞘タンパク質、特にMBP及びMBP近縁タンパク質のようなミエリンタ ンパク質に対する免疫寛容を誘発し得るワクチンの開発が要望されている。発明の概要 発明者らは、ミエリンタンパク質またはそのT細胞誘発性エピトープの細胞内 発現のために組換えポックスウイルスを使用することによって、脊椎動物宿主の 炎症性脱鞘疾患の症状を軽減または発症を猶予し得ることを知見した。より特定 的には、組換えポックスウイルスとミエリンタンパク質とを細胞内で同時発現さ せることによって、その後の宿主免疫系がミエリンタンパク質に対して実質的に 寛容になり、病気の症状の軽減または発症の猶予を支援することを知見した。細 胞内発現なる用語は、タンパク質の転写及び翻訳のプロセスが宿主細胞の内部で 生じることを意味する。このタンパク質自体は細胞質の内部に維持されるか、ま たは、核、細胞膜もしくはその他の細胞内領域もしくは細胞外スペースに運搬さ れ得る。 組換えポックスウイルスは、ミエリンタンパク質またはそのT細胞誘発性エピ トープをコードするDNAセグメントを含んでいる少なくとも1つの挿入部位を 有しており、このDNAセグメントは宿主内で発現し得るプロモーターに作動可 能に連結されている。“ミエリンタンパク質”なる用語は、MBP、PLP、M OP及びMAGのような軸索の周囲を包囲する同心 的オリゴデンドロサイトを構成するタンパク質を意味する。好ましいミエリンタ ンパク質はMBP、MBP近縁タンパク質及びそのT細胞誘発性エピトープであ る。他のタンパク質としてはMOP及びMDP(ミエロデンドリティックタンパ ク質)がある。 一般的には、本発明の好ましい方法は、免疫応答を刺激するために十分な量の 第一の組換えポックスウイルスベクターを宿主に導入して、ミエロデンドリティ ックタンパク質を免疫系に提示する段階を含む。いくつかの場合には、その後少 なくとも一回の追加抗原を”ブースト”として宿主に接触させるのが望ましい。 好ましくは、第一の組換えポックスウイルスは、”ブースト”とは異なる属のポ ックスウイルスに由来する。例えば、最初の投与はアビポックスに由来の組換え ポックスウイルスを用いて行い、次に、スイポックスに由来の別の組換えポック スウイルスでブーストする。第一の組換えポックスウイルスベクターは、ミエリ ンタンパク質またはそのT細胞誘導部分をコードするDNAセグメントを含んで いる。上記のように、追加抗原は例えば、第一のポックスウイルスと免疫学的に 異なるポックスウイルス、典型的には第一のポックスウイルスとは異なる 属のポックスウイルスに由来の第二の組換えポックスウイルスを用いて添加され る。 第一の組換えポックスウイルスによるミエリンタンパク質の発現に代替または 付加して、追加のミエリンタンパク質またはそのT細胞誘発性フラグメントを添 加してもよい。このためには、アジュバントもしくはリポソームに配合したミエ リンタンパク質を宿主に接触させるか、または、ミエリンタンパク質をコードす るDNAを直接DNAの形態もしくは選択的ウイルスベクターに内在する形態で 宿主に接触させる。 本発明の目的はまた、組換えポックスウイルスDNAまたは組換えポックスウ イルスを含み、コードされているミエリンタンパク質がミエリンタンパク質に対 する免疫応答を誘発するために十分な量で細胞内発現されている細胞、好ましく は均質細胞集団を提供することである。細胞は好ましくは、ウイルスまたはタン パク質の発現を少なくとも48時間は支持し得る細胞であり、その例は、哺乳類 、鳥類、爬虫類または昆虫類の細胞系である。 別の特徴によれば、本発明の目的はまた、本発明に開示された1つまたは複数 の組換えポックスウイルスを含み、(1つま たは複数の)ウイルスが医薬として許容される担体中で提供される治療用組成物 を提供することである。治療用組成物は、例えばMSのような炎症性脱鞘疾患の 発症を軽減または猶予する手段として哺乳類、好ましくはヒトに投与され得る。 本発明の治療用組成物は単独で投与されてもよく、または、例えば、ベーターイ ンターフェロン、副腎皮質刺激ホルモン(ACTH)及びMS治療用コルチコス テロイドのような炎症性脱鞘疾患を治療するための既知の治療方法に対する佐剤 として投与されてもよい。従って、イヌ、ネコ、ウマ、ウサギ、マウス、ブタ、 ウシ、爬虫類、アレチネズミ、トリ、ヒツジ、ヤギのような哺乳動物及び飼育動 物または霊長類(例えばチンパンジーなど)のような捕獲動物の炎症性脱鞘疾患 の治療も本発明の範囲内に包含される。 “炎症性脱鞘疾患”なる用語は、神経繊維の髄鞘を破壊、損傷または除去する 何らかの免疫学的応答を意味する。哺乳動物、特にヒトにおいてはこのような損 傷によって炎症性脱鞘疾患という診断が確定される。 本発明の目的はまた、宿主中のミエリンタンパク質に対する免疫応答を発生さ せる方法を提供することである。方法は、 (a)十分な量のミエリンタンパク質またはそのT細胞誘発性エピトープを宿 主に接触させる段階と、 (b)その後少なくとも1つの定期的間隔をおいて、追加のミエリンタンパク 質またはそのT細胞誘発性エピトープを宿主に接触させる段階とを含む。 本発明の目的はまた、免疫応答を誘発し得るミエリンタンパク質の製造方法を 提供することである。方法は、 (a)ミエリンタンパク質、好ましくはMBP、MBP近縁タンパク質または そのT細胞誘発性エピトープをコードするDNAセグメントを作動可能に連結さ れた状態で含む、好ましくは鶏痘、カナリア痘のようなアビポックス、カプリポ ックス、または豚痘のようなスイポックスなどの組換えポックスウイルスを合成 する段階と、 (b)ウイルスによる遺伝子の発現を支持する細胞、好ましくは皮膚細胞また は筋肉細胞に対して感染可能な条件下で組換えポックスウイルスを哺乳類宿主、 好ましくはヒトに導入する段階と、 (c)宿主体内で免疫応答が誘発されるようにミエリンタンパク質を細胞内で 発現させ適正に提示する段階とを含む。 方法はまた、宿主体内の炎症性脱鞘疾患の発症を検出するためまたはこの疾患 の進行を判断するために使用できる細胞(またはその細胞溶解液)を産生するた めに有用である。細胞は、ミエリンタンパク質を適正に提示し、従って宿主から 単離されたT細胞によって認識される。T細胞による殺傷は、例えば放射性クロ ムで標識された細胞から遊離されたクロムの測定のような標準方法によって検出 できる。 本発明の別の実施態様においては、方法が更に、組換えポックスウイルスに感 染した細胞を単離する段階と、感染細胞中で細胞内発現されたミエリンタンパク 質に結合する抗体、好ましくはモノクローナル抗体を産生させる免疫原として、 完全細胞または細胞画分の形態の細胞を使用する段階とを含む。勿論、抗体はミ エリンタンパク質のT細胞誘発性エピトープに結合してもよい。このような抗体 は当業者が慣用の免疫学的技術によって容易に製造し得る。 本発明の更に別の実施態様によれば、方法は更に、感染宿主から細胞を単離す る段階(または感染細胞自体を単離する段階)と、哺咄乳動物例えばヒトの炎症 性脱鞘疾患の発症を軽減または猶予するためにこれらの細胞を完全細胞または細 胞画分の 形態で使用することによって第二の宿主体内の免疫応答を誘発する段階とを含む 。図面の簡単な説明 図1のA及びBは、vAbT249(対照)及びvT15(MBP)のワクチ ンを接種したC.jacchusマーモセットのEAEの臨床経過を示す2つの グラフである。 図2のA、B、C及びDは、vT15(MBP)(図2のA及びC)及びvA bT249(対照)(図2のB及びD)のワクチンを接種したWM免疫C.ja cchusマーモセットのPBMC中の増殖応答を示す4つのグラフである。図 2のA及びBはMBP(50μg/ml)によるin vitro刺激を示す。 図2のC及びDはNYCBHワクシニア抗原(2μg/ml)による刺激を示す 。発明の詳細な説明 ポックスウイルス科のウイルスは公知の細胞質ウイルスである。従って、本発 明の組換えポックスウイルスによって発現された遺伝物質は典型的には細胞質に 維持され、誤って宿主細胞遺伝子に取込まれる可能性はない。更に、ポックスウ イルスは大きいゲノムを有しているので、多数の外来遺伝子を含む広範 囲の遺伝物質をデリバリーするため(即ち、多価ベクターとして作用させるため )に容易に使用され得る。 本文中に開示されたポックスウイルスは典型的には、ポックスウイルス科、好 ましくはアビポックス、カプリポックス、オルトポックス、エントモポックス及 びスイポックスから成るグループから選択されたウイルスである。好ましいアビ ポックスウイルスは、鶏痘、カナリア痘、鳩痘、七面鳥痘、鶴痘を含む。特に好 ましいアビポックスは鶏痘である。好ましいオルトポックスウイルスは、ワクシ ニア、牛痘、マウスポックス(エクトロメリア)、ウサギ痘、タヌキ痘、及び、 サル痘を含む。特に好ましいオルトポックスはワクシニアである。好ましくは、 スイポックスは豚痘であり、カプリポックスはヒツジまたはヤギのポックスウイ ルスである。 宿主がヒトのとき、ヒトを宿主としないように宿主域が制限されたポックスウ イルスを使用するのが好ましい場合もある。このような制限に対しては、アビポ ックス、カプリポックス、エントモポックスまたはスイポックスをヒトに使用す ることによって容易に対応し得る。また、宿主域にヒトを含むポックスウイルス の場合には、毒性を失う程度までポックスウイルスを 十分に希薄化(即ち弱毒化)することによってこのような制限に対応し得る。例 えば、米国特許第5,494,807号に記載のワクシニアのNYVAC株を参 照するとよい。該特許の記載内容は参照によって本発明に含まれるものとする。 また、米国特許第5,185,145号に記載のMVA株を参照するとよい。該 特許の記載内容も参照によって本発明に含まれるものとする。免疫系が損傷され た宿主に対しては、このような弱毒ポックスウイルスから成るベクターの使用が 特に好ましい。 ポックスウイルスと同じ程には好ましくないが、他の組換えウイルス(及び該 ウイルスに由来のDNA)も本発明の範囲に包含される。これらのウイルスとし ては、ヘルペスウイルス、ポリオーマウイルス(例えばSV40及びポリオーマ )、アデノウイルス、アデノ関連ウイルスなどに由来のウイルスがあり、また、 レトロウイルス及びピコルナウイルスのようなRNAウイルス、例えば、ポリオ ウイルス、シンドビスウイルス、ベネズエラ・ウマ脳炎ウイルスがある。他のウ イルスとしてはカエルウイルス、アフリカ・ブタ熱病ウイルスのようなイリドウ イルスがある。 推定宿主動物に対して毒性でない親ウイルスを選択しなけれ ばならない。例えば、より高度に弱毒化したウイルス、複製しないウイルスなど を該宿主に対して使用し得る。 本発明の好ましい実施態様において、組換えポックスウイルスは宿主の感染細 胞(即ち標的細胞)中で低い複製効率を示す。一般に複製効率は、例えば、ウイ ルスを感染させ次いで感染細胞によって産生された後代ウイルスの量を許容細胞 上の滴定(例えばウイルスプラークアッセイ)によって定量するような慣用のウ イルス学的細胞培養アッセイによって測定できる。このようにして産生された後 代ウイルスの量を、実験に使用した細胞総数に対する量として表す。本発明に従 って使用される好ましいポックスウイルスは好ましくは平均で1細胞あたり約1 0以下の生産的(即ち感染性)後代を産生し、より好ましくは約1以下の生産的 後代、更に好ましくは1細胞あたり0.1以下の後代を産生する。生産的後代な る用語は、許容宿主細胞中で感染し複製する後代を意味する。 好ましいポックスウイルスの複製効率が低いこと及び細胞質に対して非組込み 性であることによって、これらのポックスウイルスから作製された組換えポック スウイルスは他の細胞の複製及び感染を持続させない。従ってベクター及び形質 転換細胞 は、標的細胞から遠い位置にある宿主動物の細胞に不利な影響を与えない。従っ て、毒性ポックスウイルスの弱毒菌株を産生するような選択または化学的もしく は遺伝的な突然変異誘発によってウイルスの毒性が弱められているならば、本発 明の組換えポックスウイルスを調製するためにより強い毒性のポックスウイルス を使用できる。前出の米国特許第5,494,807号参照。 他の理論による解釈の可能性を否定はしないが、我々は、組換えポックスウイ ルスベクターがCD8+応答を誘発すると考えている。ミエリンがコードされた 抗原は、恐らくはCD8+細胞介在応答を介してミエリン抗原特異的CD4細胞 の下方調節を特異的にトリガする。あるいは、調節性T細胞による阻害性サイト カインの分泌が生じるかまたはその双方が生じるのであろう。組換えポックスウイルス及びベクターの調製 外来タンパク質をコードする異種DNA配列を含む組換えポックスウイルスを 作製するための基本的な技術は当業界で公知である。例えば、組換えポックスウ イルスを作製するための1つの方法では、ドナープラスミド中のDNA配列に隣 接するウ イルスDNA配列と親ウイルス中に存在する相同配列との相同組換えを利用する (Mackettら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 79: 7415−7419(1982))。米国特許第5,093,258号に記載の 組換え鶏痘ウイルスの製造方法も参照するとよい。この特許の記載内容は参照に よって本発明に含まれるものとする。 組換えポックスウイルスを作製するための別の技術では、異種DNAを挿入す るために親ウイルスベクター中に天然に存在するかまたは人為的に導入された制 限エンドヌクレアーゼ切断部位を使用する。同じく参照によって本発明に含まれ る米国特許第5,445,953号を参照するとよい。 制限酵素消化、結合、トランスフェクション、形質転換、アガロース及びポリ アクリルアミドゲル電気泳動、DNA配列決定、エレクトロポレーション、のよ うな組換えDNA操作方法が従来から当業界で公知であり、文献にも記載されて いる(例えば、Sambrookら,In Molecular Clonin g: A Laboratory Approach(1988);Ausub elら,Current Protocols in Molecular B iology,Green Publishing Associates and Wiley Inte rsciences(1993))。 代表例としては、ポックスウイルスに挿入すべき異種DNA配列をドナープラ スミド、バクテリオファージまたはウイルス、例えばpBR322またはpUC 19のような大脳菌プラスミドに配置し得る。ドナープラスミドを選択した場合 には、このプラスミドは好ましくは、複製起点(ORI)と1つまたはそれ以上 の検出可能マーカー、例えば大腸菌中で増殖する抗生物質(例えば、アンピシリ ンまたはテトラサイクリン)耐性遺伝子とを含む。以下により十分に説明するよ うに、典型的には、挿入部位に隣接するポックスウイルスDNAセクションに相 同なDNA配列が異種DNAに隣接している。 代替的または付加的に、挿入すべき異種DNA遺伝子配列を適当なプロモータ ーに結合させてもよい。次に、プロモーターー遺伝子連鎖をプラスミド内で作動 可能に配置する。即ち、所望の挿入領域であるポックスDNAの領域に隣接する DNA配列に相同なDNAがプロモーター遺伝子連鎖の両端に隣接するように配 置する。親ポックスウイルスベクターを用いる場合、通常はポックスプロモータ ーを使用する。得られた組換えプラ スミドを使用して次に大腸菌を形質転換させ、組換えプラスミドが複製される選 択的条件下で細胞を増殖させる。次に、複製されたプラスミドを標準手段によっ て精製する。勿論、異種DNAを増殖させるために別のプラスミド及び真核細胞 性ベクター(例えばミドリザル細胞中で増殖するSV40)を使用してもよい( Sambrookら,前出参照)。 本発明の組換えポックスウイルスの好ましい製造方法は、プラスミドの異種D NAを遺伝子組換えによってポックスウイルスに挿入する段階から成る。例えば 挿入すべき異種DNA配列を含む組換えプラスミドを、ニワトリ胚線維芽細胞の ような細胞培養物に、ポックスウイルス、例えば鶏痘ウイルスまたは豚痘ウイル スと共にトランスフェクトする。プラスミド中の相同ポックスDNAとウイルス ゲノムとの組換えの結果、ゲノム中のプロモーター遺伝子構築物の存在によって 修飾された組換えポックスウイルスが得られる。好ましくは、組換え部位は、ウ イルス生育力に影響を与えない部位である。 上述のように、得られる組換えウイルスのウイルス生育力に実質的に影響を与 えないウイルス中の領域(挿入領域または部位)に遺伝子を挿入する。“ウイル ス生育力”なる用語は、組 換えポックスウイルスが許容宿主細胞中で約48時間以内に感染性ウイルス粒子 を産生する能力を意味する。勿論、いくつかの状況では挿入がウイルス生育力に 影響を与えるのが望ましく、その例としては、挿入が得られる組換えポックスウ イルスを弱毒化する場合がある。その理由については以下の記載を参照するとよ い。 ウイルス生育力に実質的に影響を与えるのが望ましくない場合、当業者は所定 のウイルスDNAのセグメントを試験することによって、例えばウイルス生育力 に重大な影響を及ぼすことなく遺伝子組換えを支持する領域を容易に同定できる 。多くのウイルス中に存在し容易に使用できる1つの領域は、チミジンキナーゼ (TK)遺伝子である。この遺伝子は、試験した実質的に全部のポックスウイル スゲノム中で観察された(レポリポックスウイルス;Uptonら(1986) (ショープ線維腫ウイルス):カプリポックスウイルス;Gershonら(1 989)(Kenya sheep−1):オルトポックスウイルス;Weir ら(1983)(ワクシニア);Espositoら(1984)(サル痘ウイ ルス及び天然痘 ウイルス);Hrubyら(1983)(ワクシニア);Kilpatrick ら(1985)(Yabaサル腫瘍ウイルス):アビポックスウイルス;Bin nsら(1988)(鶏痘);Boyleら(1987)(鶏痘);Schni tzleinら(1988)(鶏痘、鶉痘):エントモポックス(Lytvyn ら(1992))。 ワクシニアでは、TK領域に加えて、ウイルス生育力に実質的に影響を与えな い他の挿入領域が例えばHindIII Mフラグメントを含む。 鶏痘では、TK領域に加えて、他の挿入領域が例えば、BamHI Jフラグ メント(Jenkinsら(1991)、EPO出願No.0308220A1 に記載されたEcoRI−HindIIIフラグメント、EcoRV−Hind IIIフラグメント、BamHIフラグメント及びHindIIIフラグメント (Calvertら(1993);Taylor(1998);Spehner ら(1990)及びBoursnellら(1990))を含む。 豚痘では、好ましい挿入部位がチミジンキナーゼ遺伝子領域 を含む。 組換えポックスウイルスによる挿入DNAの発現を成功させるために、挿入領 域に異種DNAを挿入すべきであるという要件に加えて、異種DNAに作動可能 に連結されたプロモーターの存在が必要である。即ち、異種DNAとプロモータ ーとポックスウイルスとが、異種DNAの転写を支持する適正な空間的関係で存 在しなければならない。プロモーターは、発現されるべきDNAから上流に位置 するように配置されなければならない。プロモーターは当業界で公知であり、所 望の宿主及び細胞の種類に基づいて容易に選択できる。例えば、ポックスウイル スにおいては、ポックスウイルスプロモーターに由来のプロモーターが使用され る。これらは、ワクシニアの7.5Kもしくは40KまたはFPV C1のよう な鶏痘プロモーターのような天然型プロモーターに基づくか、または適正なポッ クス配列を含む人工構築物でもよい。また、発現レベルを増進するためにプロモ ーターと共にエンハンサーエレメントを使用し得る。但し、エンハンサーは挿入 された異種DNAの必ずしも上流に位置しなくてもよい。更に、例えば、熱誘導 プロモーターまた は金属誘導プロモーターのような誘導プロモーターの使用も当業界で公知であり 、いくつかの場合には好ましい。 ポックスベクターが全部のポックスタンパク質をコードする必要はない。むし ろ、ポックスウイルスのうちの、標的細胞に感染し異種タンパク質を発現させる ために必要な部分だけをコードすればよい。この部分をときには、ポックスゲノ ムの感染及び発現に十分な部分に対応する部分と呼ぶ。 本発明の組換えポックスウイルスは任意に、β−ガラクトシダーゼ、CAT、 ネオマイシンまたはメトトレキセート耐性のようなマーカーを含み、これによっ て宿主の標的細胞を検出(または選択)し得る。当業者はこのようなマーカーを使 用して、種々のウイルスベクターについて特定の標的宿主細胞中で非溶菌性及び 細胞非傷害性のベクターをスクリーニングし得る。例えば、β−ガラクトシダー ゼをコードする遺伝子(lacZ)を本文に開示された任意の組換えポックスウ イルスに挿入し、これによって修飾されたウイルスベクターを次に標的宿主細胞 に導入し、β−ガラクトシダーゼの産生を測定する。β−galの発現がウイル ス感染力及び遺伝子発現の指標となる。免疫応答 ミエリンタンパク質またはそのT細胞誘発性エピトープに対する特異的免疫応 答は、約105−109pfuの本発明の組換えポックスウイルスを宿主に投与す ることによって惹起され得る。より好ましくは、約107−109pfuを使用す るが、この量は、例えば使用された特定宿主のような複数の要因次第で変更し得 る。好ましい宿主は、飼育動物、捕獲動物またはヒトのような哺乳動物である。 いくつかの場合、追加抗原を宿主に投与することによって提示を“ブースト”す るのが望ましい。この投与は1〜3カ月後でよい。また、好ましくは第一ブース トの1〜3カ月後に少なくとも1回の第二“ブースト”を投与してもよい。ミエ リンタンパク質とそのT細胞誘発性エピトープとが、同じポックスウイルスベク ターを用いて投与されてもよく、またはより好ましくは、抗原が、抗原的に近縁 でないポックスウイルスに由来の第二のポックスウイルスベクターを用いて投与 されてもよく、あるいは、抗原が、例えば医薬として許容される担体中のアジュ バントまたはリポソームを用いて直接投与されてもよい。IL−2、IL−6、 IL−12のよう なサイトカインを生物学的アジュバントとして使用してもよく、これらは宿主に 全身的に投与し得る。あるいは、サイトカインまたはB7.1、B7.2のよう な補助刺激分子をコードする遺伝子を組換えポックスベクターに同時挿入するこ とによってこれらの分子を同時投与してもよい。 アジュバントは例えば、RIBI Detox(Ribi immunoch emical)、QS21及び不完全フロインドアジュバントである。投与用リ ポソームの調製方法は公知である。T細胞 ミエリンタンパク質の(1つまたは複数の)エピトープまたはそのT細胞誘発 性エピトープに対して反応するT細胞は末梢血単核球(PBMC)から標準方法 によって得られる。例えば、リンパ球分離培地勾配(Lymphocyte S eparation Medium gradient)(Organon T eknika Durham NC,USA)を用いて、既に記載された手順( Boyumら,Scand J.Clin Lab Invest 21:77 −80(1968))でPBMCを分離する。洗浄 したPBMCを、例えば10%ヒトAB血清(Pel−Freeze Clin ical System,Brown Dear,WI,USA)、2mMのグ ルタミン、100U/mlのペニシリン及び100μg/mlのストレプトマイ シン(GIBCO)を補充したRPMI 1640(GIBCO)のような完全 培地に再懸濁させる。例えば100μlの容量の完全培地中の約2×106細胞 の濃度のPBMCを96ウェルの平底アッセイプレート(Costar,Cam bridge,MA,USA)の各ウェルに加える。選択されたMBPペプチド のようなタンパク質抗原を、最終濃度約50μg/mlで培養物に添加し、5% CO2を含む湿潤雰囲気中で37℃で5日間インキュベートする。MBPまたは その細胞傷害性T細胞誘発性エピトープを培地から除去し、5日後に新しいヒト IL−2(10U/ml)を培養物に加え、IL−2含有培地を3日毎に補給す る。16日目に一次培養物を同じペプチド(50μg/ml)で再刺激する。放 射線照射(4,000rad)した5×106の同原PBMCを約50μlの量 の完全培地に入れて抗原提示細胞(APC)として加える。約5日後、前記と同 じヒトIL−2 含有培地を培養物に加える。16日間の間隔をおいて細胞を5日間再刺激する。エピトープマッピング 本文中に記載の手順で調製したT細胞は、細胞傷害性T細胞のようなT細胞に よって認識されるミエリンタンパク質またはそのフラグメントの(1つまたは複 数の)エピトープを同定するために使用できる。ミエリンタンパク質のT細胞誘 発性エピトープの1つの調製方法は、例えばパパイン、トリプシンまたはキモト リプシン(SIGMA Chemical Co.St.Louis,Mo.に よって提供される)のような酵素によってタンパク質を限定タンパク質消化する 方法である。あるいは、ミエリンタンパク質のフラグメントを、例えばMerr ifield Solid−Phase Techniqueのような慣用の方 法によって化学的に合成してもよい。例えば、細胞傷害性T細胞を平板培養し、 種々のミエリンタンパク質フラグメントを種々のウェルに加える。少なくとも1 つのエピトープを有するペプチドフラグメントを特異的に認識(例えば結合)す る細胞傷害性T細胞だけが増量を継続するので、これによって容易に 同定できる。 ミエリンタンパク質のT細胞誘発性エピトープは完全タンパク質に代用できる 。更に、T細胞応答を誘発する能力を増進するエピトープを含む他のフラグメン トを調製することもできる。ミエリンタンパク質及びDNAの変異体 ミエリンタンパク質及びDNAの変異体は本発明の要旨及び範囲に包含される 。例えば、MBP DNA配列の縮重変異体は、縮重変異体が少なくとも1つの ヌクレオチド変化を含みその結果としてMBPアミノ酸配列をコードするために 1つまたはそれ以上の選択的コドンが使用されている以外は、MBP配列に等し い。20の共通アミノ酸に61のコドンが存在し、多くのアミノ酸が2つ以上の (選択的)コドンによってコードされることは当業者に理解されよう(Darn ellら,eds.,Scientific American Books,In c.,1986)。 付加的な変異体が本発明の要旨及び範囲に包含される。例えば、本発明の組換 えポックスウイルスは、少なくとも1つのヌクレオチド変化を含みその結果とし てMBPアミノ酸配列をコ ードするために1つまたはそれ以上の選択的コドンが使用されておりこれによっ て選択的コドンが保存性アミノ酸、即ち同様の特性値をもつので別のアミノ酸に 置換できるアミノ酸をコードする以外はMBP DNA配列に等しい変異体も包 含する。保存性アミノ酸置換の例は、グリシンに置換するバリン、リシンに置換 するアルギニン、バリンに置換するロイシン、トレオニンに置換するセリン、な どである。勿論、保存性アミノ酸置換は(1つまたは複数の)T細胞誘発性エピ トープに実質的に影響を与えてはならない。 変異体の更に別の例では、本発明の組換えポックスウイルスは、少なくとも1 つのヌクレオチド変化を含みその結果としてMBPアミノ酸配列をコードするた めに1つまたはそれ以上の選択的コドンが使用されておりこれによって選択的コ ドンが非保存性アミノ酸、即ちMBPアミノ酸配列中の対応するアミノ酸とは異 なる特性値をもつアミノ酸をコードする以外はMBP DNA配列に等しい変異 体も包含する。この場合、非保存性アミノ酸置換はMBPの(1つまたは複数の )T細胞誘発性エピトープに実質的に影響を与えない。 代替的または付加的に、組換えポックスウイルスは、欠失及び/または挿入が MBPの(1つまたは複数の)T細胞誘発性エピトープに実質的に影響を与えな いという条件付きで、MBP DNA配列の欠失またはMBP DNA配列に対 する外来遺伝子の挿入を含み得る。 ポリペプチドフラグメント中のMBPのT細胞誘発性エピトープは別のタイプ のMBP変異体である。治療用組成物 本発明の組換えポックスウイルスは例えば、乱切法や、経皮、皮下、筋肉内、 静脈内または腹腔内注射のような許容される任意の経路を用いて適当な宿主に投 与できる。 本発明の治療用組成物は、好ましくは1種またはそれ以上の本発明の組換えポ ックスウイルスを含んでおり、典型的には生理食塩水のような医薬として許容さ れる担体に組合わせた水性または非水性の無菌溶液、懸濁液またはエマルジョン 中の一回量の剤形で適当な宿主に投与される。非経口投与製剤はまた、賦形剤と して常用のポリエチレングリコールのようなポリアルキレングリコール、植物起 原の油、水素化ナフタレンなど を含有し得る(概論についてはRemington’s Pharmaceut ical Sciences (Mack Pub.Co.,Easton,P A,1980参照)。 本発明の治療用組成物は医薬中の単独有効成分として使用されてもよく、また は、炎症性脱鞘疾患の治療に役立つ他の化合物及び/または治療薬と併用されて もよい。 治療用組成物中の組換えポックスウイルスの量は、投与されるウィルスの量、 選択されたウィルスの毒性、投与経路、などの多くの要因次第で変更し得る。一 般に、非経口投与のためには組成物を生理食塩水バッファ中の約105〜109p fuの水溶液として投与する。宿主がヒトの場合、典型的な薬用量範囲は、約1 05〜109pfuの範囲の組換えアビポックスウイルスまたはスイポックスウイ ルス、好ましくは鶏痘または豚痘である。しかしながら、治療用組成物の好まし い薬用量は、炎症性脱鞘疾患のタイプ及び進行度、患者の全身健康状態、選択さ れた特定組換えポックスウイルスの相対的毒性及び生物学的効力、組成物の賦形 剤の組成及びその投与経路、などの変動要因に依存する。 実施例1 ベクターの構築 Pox(ポックス)ウイルス 異種蛋白の発現用の生きたウイルスベクターとして多くのポックスウイルスが 開発されている(Cepkoら,(1984):Marinら,(1987);Lo weら,(1987);Panicali & Paoletti)(1982 );Mackettら,(1982))。代表的なニワトリポックス、ブタポッ クスウイルスとワクシニアは、それぞれ受付番号VR−229,VR−363及 びVR−325でATCCから入手できる。 親ウイルスと生体内で組み換えするためのDNAベクター MBPあるいはそのT細胞誘導エピトープをコードする遺伝子をポックスウイ ルスの遺伝子内、例えばニワトリポックスウイルス、ブタウイルス、あるいはワ クシニアの遺伝子の中に、親ウイルスの蛋白の正常な発現の補完を受けて上記ウ イルスによる発現も可能になる様に挿入する。これはポックスウィルスとの生体 内組み換えのためのDNAドナープラスミドを最初に構築することにより、達成 される。 一般的には、DNAドナープラスミドには次の要素が含まれている: (i)原核生物の複製起源、これによりベクターが原核生物宿主内で増幅するこ とが可能になる; (ii)ベクターを含む原核生物宿主細胞を選別するためのマーカーをコードす る遺伝子(例えば;抗生物質耐性形質をコードしている遺伝子); (iii)遺伝子を発現させることができるプロモーターに接している所望のミ エリン蛋白質(即ち、MBP)をコードする少なくとも1つの遺伝子;と (iv)構築要素(iii)をフランキングする、外来遺伝子が挿入される親ウ イルス遺伝子の領域に相同なDNA配列。 複数の外来遺伝子をポックスウイルス内に導入するためのドナープラスミドの 構築方法はWO91/19803に記述されており、その技術は本明細書に参考 により取り込まれている。一般には、転写プロモーターを含む断片と外来遺伝子 を挿入する親ウイルス遺伝子領域い相同な配列を含む断片を含むドナーベクター を構築するためのDNA断片は全てゲノムDNAあるいはクローン化されたDN A断片より得ることができる。ドナ ープラスミドは一価、二価もしくは多価である(即ち、挿入された外来遺伝子配 列を1つ以上含むことができる)。 ドナープラスミドには外来DNAが挿入された組み換えウイルスを同定するた めのマーカーをコードする別の遺伝子が含まれていることが好ましい。この様な マーカー遺伝子を複数用いることで組み換えウイルスを特定し、単離することが できる。この様なマ一カ一遺伝子には抗生物質もしくは化学物質耐性形質をコー ドする遺伝子や(例えば、Spyropoulosら,(1988);Falk nerとMoss(1988);Frankeら,(1985)を参照)、大腸 菌のlacZ遺伝子の様な遺伝子があり、これにより発色アッセー法により組み 換えウイルスのコロニーを同定することが可能になる(Panicaliら,( 1986))。 ポックスウイルス内への異種DNAの移入 感染細胞内でのドナープラスミドDNAとウイルスDNA間で相同組み換えが 起きると、所望の要素を取り込んだ組み換え体ウイルスが形成される。生体内組 み換えに適した宿主細胞は一般にはウイルスが感染できプラスミドベクターがト ランスフェクションできる真核生物細胞である。ポックスウイルスの利 用に好適な宿主細胞の例としてはニワトリ胚繊維芽細胞、HuTK143(ヒト )細胞やCV−1、BSC−40(共にサルの腎臓)細胞がある。ポックスウイ ルスの細胞への感染とプラスミドベクターによるこれら細胞のトランスフェクシ ョンは当分野で標準的な技術により実施される(PanicaliとPaole tti、米国特許第4,603,112号、WO89/03429、共に本明細 書に参考により取り込まれる) 生体内組み換え後、幾つかある技術の一つを用いることで組み換え体ウイルス の子孫を同定することができる。例えば、DNAドナーベクターを親ウイルスチ ミジンキナーゼ(TK)遺伝子の中に1つ以上の外来遺伝子を挿入するように設 計した場合、挿入DNAを含むウイルスはTK-となり、これを利用して選別す ることができる(Mackettら,(1982))。あるいは、マーカーもし くは指示遺伝子を問題の外来遺伝子と一緒に前記と同様にして共移入する方法は 組み換え体子孫の同定に利用できる。好ましい指示遺伝子の一つは大腸菌のla cZ遺伝子である;βガラクトシダーゼを発現する組み換え体ウイルスは、この 酵素の発色基質を利用して選別することができる(Panicallら、(19 86))。 組み換え体ポックスウイルスにより発現した抗原の特性解析 組み換え体ポックスウイルスが特定できたら、様々な方法を用いて挿入された 遺伝子にコードされるポリペプチドの発現を検定することができる。これらの方 法としては黒色プラークアッセ一法(ウイルスプラーク上でin situ酵素免疫ア ッセーを行う)やウェスタンブロット法、放射免疫沈降法(RIPA)ならびに 酵素免疫アッセー法(EIA)がある。MBPやMBPー関連蛋白、もしくは該 蛋白のT−細胞活性化エピトープの様なミエリン蛋白を認識する抗体が市販で入 手できるか、もしくは公知の技術により作製することができる。例えば、これら MBP,MBP−関連蛋白、あるいはそのT−細胞誘導エピトープに対する抗体 は標準的なハイブリドーマ技術により作製できる(Kohlerら,(1975 );Kohlerら,(1976);Hammerlingら,Monoclo nal Antibodies and T Cell Hybridomas 、Elsevier NY,1981;Harlow and Lane in Antibodies:A Laboratory Approach CS HSOB(1988);とAusubelら、上記を参照)。 抗体力価の測定 免疫する前と免疫2週後に各々、抗MBP抗体をELISAを用いて定量した 。例えば、マイクロタイタープレートをMBP(100ng/ウエル、SOUR CE)、卵白アルブミン(100ng/ウエル、Sigma)あるいは1×107 PFU/ウエルの紫外線で不活化したV−Wyethを含むPBSでコーティ ングする。このプレートをPBSの2%BSAでブロックし、乾燥し、使用する まで−20℃で保存した。このプレートを1:5に希釈した血清、ならびに標準 対照としてPSAに対するモノクローナル抗体(DAKO M750、Denm ark)により24時間4℃でインキュベートさせる。このプレートを数回1% BSAを含むPBSで洗浄してから、西洋ワサビペルオキシダーゼを標識したヤ ギ抗ヒトIgGあるいはIgM重鎖特異血清(1:8000)(Souther n Biotechnology Associates,Birmingha m,AL)と37℃で45分間、インキュベートした後、HRP基質システム( Kirkegaard & Perry Laboratories,Gait hersburg,MD)を用いメーカーの取扱説明書に従い抗体を検出する。 各ウエルの405nmの吸光度を Bio−Tek EL310マイクロプレートELISAリーダー(Winoo ki、VT)で測定した。 組み換え体ポックスウイルスに対する免疫反応の最適化 本明細書に開示した組み換え体ポックスウイルスの投与は条件によっては、ポ ックスウイルスベクターに対する強い不要の免疫反応を惹起することがある。同 じベクターを繰り返して投与して継続的にブーストすると宿主からウイルスが不 必要に急速に排除されて、時間的にミエリン蛋白を十分に発現できず、この蛋白 に対する免疫反応をブーストできないことがある。即ち本発明の組み換え体ポッ クスウイルスを利用した多数回”ブースト”は可能であるが、いずれの同一ウイ ルスも繰り返し利用することが必ずしも好ましいとはかぎらない。抗原性を持つ 異なるポックスウイルスからの組み換え体ポックスウイルスを利用するこで、多 くの場合に上記問題は解決できる。 本発明によれば、組み換え体ポックスウイルスに対する高レベルの免疫反応を 最小化するために、例えば最初のポックスウイルス(あるいは組み換え体ポック スウイルスのグループ)がニワトリポックスの場合、二番目以後の組み換え体ポ ックスウイルスはオルソポックスの様な異なる属、例えばワクシニアや スイポックスから選択する。 あるいは、不要の免疫反応を最小化する別の方法は好適な宿主域を持ち及び/ 又は組織特異性を有する適当なポックスウイルスを選択することである。例えば 、ポックスウイルスを一次宿主域が遺伝子提供システムに使用した動物以外のも のから選択できる。例えば、宿主がヒトの様な許容動物でない場合にはニワトリ ポックスの様なアビポックスあるいはブタポックスの様なスイポックスが利用で きる。実施例のように、宿主がブタである獣医分野の応用の場合には、スイポッ クスを利用することは有利ではない。従って、宿主が宿主域から外れている別の ポックスウルスが利用できない場合には、弱毒化した株が望まれる。例えば、ワ クシニア(MVA株)の様な特定のオルソポックスの強く弱毒化された株を利用 することができるか、あるいは従来の遺伝的もしくは化学的突然変異誘導技術を 用いてさらに修飾を加えて、正常な宿主域内で病原性が無い状態までさらに弱毒 化することもできる。 問題のポックスウイルスの細胞特性は、感染性と増幅効率を簡単にスクリーニ ングする1つの方法である。 実施例1 MBPを発現する組み換え体ニワトリポックスウイルスの構築 MBPをコードする遺伝子をヒト脳cDNAライブラリーから単離した2.2 kbのcDNA断片から切り出した[Kamholzら,PNAS(USA)83: 4962−4966(1986)]。MBPの全516ヌクレオチドをコードする 配列と36ヌクレオチドの5’非翻訳域ならびに661ヌクレオチドの3’非翻 訳域を含む1.2kbのDNA断片をニワトリポックスウイルスプラスミドベク ター内に挿入した。得られたプラスミドはpt3064と命名し、これを用いて ワクシニアウイルスの40Kの初期/後期プロモーター(Gritzら,199 0)によりコントロールされるMBP遺伝子と、ニワトリポックスウイルスC1 プロモーター(Jenkineら,1991)によりコントロールされる大隅菌 lacZ遺伝子を含むvT92を作製した。このプラスミドは1996年3月2 2日にATCCに寄託し、受付番号97491を得た。外来遺伝子はニワトリポ ックスウイルスゲノムのBam HI J域のDNA配列に隣接する(Jenk insら,1991)。ニワトリポックスウイルスのワクチン株であるPOXV AC−TC(Schering Corp.)誘導株を親ウイルスとして用いた。組み換え体ニワトリポックスウ イルスは、pT3064でトランスフェクションされたニワトリポックスウイル スが感染したニワトリ胚上皮(CED)細胞内で、ニワトリポックスウイルスケ ノムにあるニワトリポックスウイルス配列とpT3064内の相当配列との間で 相同組み換えを起こして達成した。vT92と名付けた組み換え体ウイルスをB luogal(Life Technologies;Gaithersbur g,MD)、βガラクトシダーゼの発色基質存在下にCED細胞で増殖して同定 し、プラークを精製した。ニワトリポックスウイルスゲノム内にMBP遺伝子が 挿入されたことはポリメラーゼ鎖反応(PCR)により挿入配列を増幅して確か めた。MBPの発現はMBP−特異抗血清を用いたウエスタンブロット解析によ り調べた。 MBPを発現する組み換え体ワクシニアウイルスの構築 ヒトMBPをコードする遺伝子をヒト脳cDNAライブラリーから単離した2 .2kbのcDNA断片より切り出した[21]。MBPの全516ヌクレオチ ドをコードする配列と36ヌクレオチドの5’非翻訳域ならびに661ヌクレオ チドの3’非翻 訳域を含む1.2kbのDNA断片をワクシニアウイルストランスファーベクタ ー内に挿入した。得られたpt115と命名されたプラスミドには、ワクシニア ゲノムのHind IIIM領域から得たDNAにフランキングしたワクシニア ウイルスの初期/後期プロモーター[22]によりコントロールされるMBP遺 伝子が含まれている。これらのフランキング配列には、ヒト細胞中での増殖に必 要なワクシニアK1L宿主域遺伝子[23]が含まれている。このプラスミドを 1996年3月22日にATCCに寄託し、受付番号97490を得た。New York City Health(NYCBH)ワクシニア株を親ウイルス として用いて組み換え体ワクシニアウイルスを構築した。この親ウイルスはvA bT33(親)と名付けられた。このウイルスを1989年5月15日にATC Cに寄託し、受付番号VR−2240を得た。この親ウイルスは機能を持ったK 1L遺伝子を欠いているため、ウサギ腎臓RK13細胞では効率的に増殖するこ とができない[24]。 組み換え体ワクシニアウイルス構築は記述の標準的な相同組み換え技術を利用 して達成した。簡単に述べると、vAbT33(親)ゲノム内のワクシニアウイ ルス配列と親ウイルスを感染 させ、pT115ベクターでトランスフェクションしたRK13細胞内にある対 応配列との間で、相同組み換えを行った。RK13細胞株は公的に入手できる( ATCC:受付番号CCL37)。MBP遺伝子を持つ組み換え体ワクシニアウ イルスをRK13細胞で成長させて選択した。全MBP遺伝子を含む組み換え体 ワクシニアウイルスの1つを制限酵素消化したサザンブロットハイブリダイゼー ションより単離した。この組み換え体ウイルスをvT15(MBP)と命名した 。 動物 マーモセット(C.jacchus)はカリフォルニア大学、San Fra ncisco(UCSF)の霊長類コロニーで飼育された。本試験に使用した動 物はUCSFの動物研究委員会のガイドラインならびにNational Re seach Council、実験動物資源研究所の実験動物の飼育と利用に関 する委員会のガイドラインに従い扱われた。隔週で、最大2.5mlの血液を各 動物から採取した。瀉血ならびに免疫化は短時間の麻酔下に実施した(ケタミン 、10mgを筋肉注射)。 MBP蛋白発現のウエスタン解析 ポリクローナルのウサギ抗モルモットMBP R120抗体 を用いたウエスタンブロット分析によりvT15(MBP)感染細胞でMBPが 発現していることが示された。このポリクローナル抗体はヒトMBPと結合する 。抗体の調製は既に記述されている[25]。ウマヘルペスウイルスgHをコー ドする遺伝子を含む組み換え体ワクシニアウイルスを前記の相同組み換えの方法 により調製し、対照組み換え体ワクシニアウイルスとした。得られた組み換えワ クシニアウイルスはvAbT249(対照)と名付けた。 略記すると、ウエスタン実験は親ワクシニアウイルス(vAbT33)あるい は組み換え体ワクシニアウイルス(vT15(MBP))を、2%のウシ胎児血 清を含むDulbeccoの改良型Eagle培地内でBSC40細胞に感染さ せて実施した。感染した細胞を低張溶解緩衝液(150mM NaCl、0.0 5%EDTA、10mM KCl、1mM PMSF)内で溶解してから超音波 処理した。細胞溶解物と培地をSDS−10%アクリルアミドゲル上で電気泳動 した。蛋白質をニトロセルロース膜に写し取り、写し取ったニトロセルロース膜 をMBP(R120)に特異的な抗体と室温でインキュベートしてから、洗浄し 、さらにヤギ抗ウサギ フォスファターゼ標識 二次抗体(AP,Kirkegaard & Parry Laborator ies,Gaithersburg,MD)とインキュベートし、メーカーの取扱 説明書に従い、発色させた。 組み換え体ワクシニアウイルスでのワクチン接種 8匹のマーモセットにvAbT249(対照)もしくはvT15(MBP)い ずれかをおよそ107pfu、背中に4回皮下注射してワクチン接種した。動物 によっては、最初の注射に続いて8週後に109pfuのブースター接種を行っ た。サル一匹において最初のワクチン接種後10−14日目に一般的なウシポッ クス病の症状と一過的な発熱が観察された。この期間中その他の副作用は観察さ れなかった。動物へのワクチン接種の病理学的ならびに免疫学的作用については 、病理的症状、例えば皮膚障害の出現及び重篤度、抗ワクシニアT−細胞活性や 以下に詳細を記す抗体応答などを測定して評価した。 マーモセットにおけるEAE誘導 vAbT249(対照)あるいはvT15(MBP)でワクチン接種を行って から21から35日後、全ての動物を100mgのヒトの全WMを3mg/ml のH37Raを補完した完 全フロイントアジュバントと一緒に接種して免疫した。免疫した日と48時間後 に動物に1010のBordetella pertussisの死菌(Lede rle laboratories,NYより入手)を静脈投与した。毎日マー モセットを標準的な病理基準に基づき臨床観察してEAEの発症と進行をモニタ ーした(Massacesi,L.,ら(1995)参照)。実験終了時に動物 をケタミン麻酔薬で麻酔してから致死量のペントバルビタールを静脈内に投与( 20mg/kg)してから全採血を行つた。 PBMCへの細胞内でMBPを発現している組み換え体ワクシニアウイルスの 感染 MBPの発現について、vT15(MBP)あるいはVAbT249(対照) に感染し、かつエプスタインーバーウイルスで形質転換したB−リンパ芽球細胞 株(B−LCL)を用いて試験管内でモニターした。MBPの発現については、 ワクチン接種後2−3週毎にPBMCを対象として生体内でもモニターした。サ イトスピン標本(Shandon)を50%エタノールで固定し、1%ウシ血清 アルブミンリン酸緩衝化生理食塩水でブロックしてからR120ウサギポリクロ ーナル抗モルモッ トMBP抗体(1:200)で染色し、スライドを洗浄後ペルオキシダーゼ標識 抗ウサギIgG抗体(Sigma)とインキュベートさせた。発色は3−アミノ −9−エチル−カルバゾール(Sigma)で行い、スライドをヘマトキシリン /エオジンで二重染色した。 簡単に述べると、B−LCL細胞内でのMBPの発現は次の方法を用いて行っ た:サルの自己Bリンパ芽球細胞株(BLCL)を、新たに単離した1×105 のPBMCを含むL−グルタミン、ゲンタマイシン、及び10%FCS(Bio fluids,Rockville,MD)を添加した100mlのRPMI1 640に、ヒヒHerpes Papioを含む100mlのS594細胞(D r.M.D.Miller、Harvard Medical School, New England Regional Primate Researc h Center、Southborough,MA)の培養上清を用いて感染 させ、平底型プレート(Costar、Cambridge,MA)の96個の ウエル内に確立した。形質転換後、細胞を拡大培養し、毎週培地を交換した。 我々は組み換え体ワクシニアウイルスvT15がワクチン接 種した動物から得たPBMC内でミエリン蛋白を発現していることを発見した。 この発現はvAbT249(対照)でワクチン接種したマーモセットからなる対 照群では見られなかった。各動物においてMBPが発現されている期間に、初回 ワクチン接種後15日から45日の幅があった。 MBPとワクシニア抗原に対する免疫反応 T−細胞反応は、96ウエルの丸底プレートに新たに単離された105のPB MCへの3[H]−チミジン取り込みを用いる、標準的な72時間増殖アッッセ ー法[13]で調べた。簡単に説明すると、各プレートは200μl/AIM V(Gibco−BRL)と以下の内の一つを含む:何も加えない(対照);M BP 50μg/ml;プロテオリピッド蛋白(PLP)10μg/ml;PH A 2.5μg/ml;WM 0.1%(重量/容積);NYCBH ワクシニ ア株2μg/ml。刺激指数は刺激していないPBMCと刺激したPBMCの比 として計算した。”刺激指数”という用語は、本発明の組み換え体ワクシニアウ イルスに暴露していないPBMC中のT−細胞活性量に対する本発明の組み換え 体ワクシニアウイルスに暴露した生物試料中に検出されるPBMC中のT−細胞 活性量の比を意味 している。動物を麻酔により屠殺し;脾臓、リンパ節を集め、それからT−細胞 増殖検定を行った。 MBPとワクシニアウイルス結合抗体の産生はメーカーの取扱説明書(Bio rad)に従い、ドットブロット濾過装置を用いて14−21日毎に観察した[ 13]。簡単に説明すると、250ngのMBPあるいは500ngのNYCB H株を0.45μmのニトロセルロース濾過膜(Biorad)に吸着させ、ブ ロックしてから、a)段階希釈したマーモセットの血清;b)ペルオキシダーゼ を標識した抗サルIgG(Sigma、1:4,000希釈);c)発色基質と してジアミノベンジジン(Pierce)の順にインキユベートした。 vT15(MBP)組み換え体ワクシニアウイルスはEAEを緩和する。 vAbT249(対照)でワクチン接種した対照動物では、WMで免疫した後 およそ14−18日目にEAEが発症し(表1と図1A)、従来の研究結果と一 致した[12,13,26]。臨床症状としてEAEを発症しなかった対照動物 が1匹いたが、免疫化14日後に麻酔により死亡してしまった。表1を以下に示 す: MBPを発現している組み換え体ワクシニアウイルス(vT15(MBP)) でワクチン接種した動物では、EAEの臨床症状の出現が顕著に遅延した(表1 と図1B)。例えば、2匹(動物番号344−92と353−92)ではEAE の臨床症状は63日間にわたり見られなかった。 vT15でワクチン接種した動物に見られるEAEの臨床ならびに病理徴候は vAbT249−でワクチン接種した対照動物に比べて確実に遅延あるいは抑制 された。adjuvant/bordetella pertussisのWM を用いて30匹以上の動物を免疫した前の実験では、サルの75%以上が14− 28日以内に病気を発症し、免疫60日後には全例が病気になった。即ち、本研 究におけるEAEの遅延発症(37−120日)はvT15(MBP)でワクチ ン接種した群の動物の個々の感受性によるものではないと考えられる。データは 、vT15(MBP)によるワクチン接種の予防効果はMBPの発現を通して伝 達されるものであり、ワクチンウイルスに暴露したことによる免疫反応の非特異 的な修飾によるものではないことを示している。 神経病理検査をワクチン接種した1匹の対照動物(動物番号 346−92)について急性EAE発症時(免疫後22日目、EAE発症後5日 目、図1A参照)行った。さらにvT15(MBP)でワクチン接種した2匹の 動物(動物番号344−92と353−92、図1B参照)について最初の免後 63日目に調べた。対照動物では、典型的なC.jacchusによる急性のE AE病理現象が見られた[12,13]。例えば、CNSの白質の複数ケ所で単 核球やマクロファージの血管周辺への浸潤が認められた。この様な現象には顕著 な同軸性の脱鞘と初期グリオーシスが伴っていた。灰白質構造には異常は認めら れなかった。これらの病気所見は、対照ワクシニアウイルスでワクチン接種され た場合にはEAEを改善しないことを示した従来のアジュバントと共にWMで免 疫された未処置C.jacchusについての報告と同一である。これに対して 、vT15でワクチン接種した動物2匹を免疫後63日目に調べると、血管周囲 部への浸潤は軽微であることが判明し、脱鞘も伴っていなかった(図1、表1) 。従って、臨床的及び神経病理的基準に従うと、組み換え体MBP−ワクシニア による予防ワクチン接種はC.jacchusマーモセットをEAEから保護し た。 FDAの認可を受けたワクチン成分であるにもかかわらず、ワクシニアウイル スは脳脊髄炎病原性特性を有することがある(Paolettiら(1993) )。この様な理由から、我々はワクシニアウイルスのNYCBH株でのワクチン 接種自体がC.jacchusのEAEを増大させたのか調べた。 vAbT249(対照)あるいはvT15(MBP)組み換え体ワクシニアウ イルスでワクチン投与し、さらに白質(WM)を注射された各群のマーモセット 2匹についてWM注射後163日間にわたって追跡調査した(表1と図1Aなら びにB参照)。両群とも重度の臨床症状(3度以上)を示し死亡したり、あるい は安楽死させた動物がいた(動物番号91−92(70日目);94−92,3 26−91と499−92(それぞれ120日目)。対照動物では、大きな脱鞘 を伴う播種性の広範囲にわたる浸潤が白質と灰白質に認められた(表1)。しか し、vT18(MBP)でワクチン接種された2匹の動物では、この様な臨床症 状は動物を屠殺する前に観察されることはなかった(図1B)。これらの観察結 果は、急性の播種性脳脊髄炎がワクシニアウイルスによるワクチン接種に続いて 起きることを示唆している。投与量を減らしたり、より弱毒化したワクシニ ア株を使用したり、あるいはアビポックスやスイポックスの様な別のポックスベ クターを使用することでこれらの発症を避けることができると予測される。ミエリンおよびワクシニア抗原に対する免疫反応 1.T−細胞反応 MBP、プロテオリピッド蛋白(PLP)、ならびにワクシニアウイルス(N YCBH)刺激への反応としての3[H]−チミジン取り込みを、ワクチン接種 開始日から死亡日までPBMCについて継続して測定した。結果を図2にまとめ た。 MBPに対するT−細胞活性:vT15(MBP)でワクチン接種した2匹の マーモセットでは、WMによるEAEの誘導前に一過性で軽度(即ち刺激指数2 )の増殖反応が観察された(動物番号344−92と353−92、図2AとC 参照)。この結果は、組み換え体ワクシニアウイルスでワクチン接種すると自己 抗原に対する免疫系が生体内に現れることを示している。WMで能動免疫を行う と、MBPに対するT−細胞増殖反応がvAbT249(対照)でワクチン接種 した2匹の動物では15日と22日まで、3番目の対照のサルでは62日まで観 察された。しかし、vT15(MAB)でワクチン接種したサ ルではMBPに対するT細胞増殖は免疫後74日まで起きなかった。この群のサ ルのうち1匹(動物番号:91−92)では、全期間を通じてMBPに対するT −細胞反応が認められなかった。これらの実験でPLPに対するT−細胞反応性 を示した例はなかった。 ワクシニアウイルスに対するT−細胞の反応性:ワクチン接種、あるいはWM で免疫した後に実験群ならびに対照群の両方でNYCBHに対する強いT−細胞 増殖反応が観察された(図2CおよびD参照)。このことは、今回用いた組み換 え体ワクシニアウイルスの皮下注射がC.jacchusの細胞性免疫反応を効 果的に刺激したことを示している。後に急性の播種性脳脊髄炎を発症した動物で は、抗ワクシニアT−細胞反応が増大した。 PLPに対するT−細胞反応性:WMで免疫した動物においてPLPに対する T−細胞反応性を示した例はなかった。しかし、EAEを発症した動物1匹が強 いPLPに対する増殖反応を示した。 抗体反応 A)MBPに対する抗体:血清抗体力価はbT15(MBP) あるいはvAbT249(対照)組み換え体ワクシニアウイルスのいずれを用い たワクチン接種の後も検出されなかった。しかし、全ての動物でWMで免疫した 後14−21日目にMBPと結合する抗体が出現した。 b)ワクシニアウイルスに対する抗体:ワクシニアウイルスのNYCBH株に 対する抗体が最初のワクチン接種から14−21日後に検出された。この結果は 、T−細胞増殖反応性と同様にワクシニア抗原に対する液性免疫がワクチン接種 により誘導されたことを示している。 ワクシニアウイルスベクターによる抗原提示の一部は、MHCクラスI抗原と 共に内因性の抗原提示経路を介して行われる。これにより制御系T−細胞、特に CD8+T−細胞の増殖が刺激される。特定の理論と結びつけるつもりはないが 、これらの実験で観察されたEAEの軽減は、特定のT−細胞サブクラスが免疫 抑制されたこと、あるいは制御系T−細胞からの抑制性サイトカインの分泌、も しくはその両方によるものと考えられる。この様な防御機序(あるいはその他の 機序)はワクシニアウイルスのもつ脳脊髄炎病原性により無効になると考えられ る。 従って、脳脊髄炎病原性を弱めた組み換え体ポックスウイル スを提供し、前記に開示した組み換え体ニワトリポックスウイルスを組み換え体 ワクシニアウイルスに替えて利用し、哺乳動物、特に家畜、捕獲動物、ヒトに於 ける炎症性の脱鞘疾患の発症を無くしたり遅延させることができる。 上記の成分ならびに方法の幾つかは、臨床応用あるいは獣医分野に好適なキッ トとして利用することができる。この様なキットには、医薬品として使用可能な 担体中に本発明の組み換え体ポックスウイルス、あるいは組み換え体ポックスウ イルスを含む細胞もしくは細胞の同質集団を一つ以上含んでいる。特に、細胞又 は細胞の同質集団は、本書に記載した炎症性脱鞘病である又はそれが疑われる宿 主に由来するT−細胞と結合できるミエリン蛋白、好ましくはMBP、MBP− 関連蛋白、あるいはそのT−細胞活性化エピトープを細胞内で発現している細胞 又は細胞の同質集団として、診断キットの一部に利用できる。T−細胞と本書に 開示した細胞あるいは同質細胞間の結合は通常の免疫技術を利用することにより 検出できる。 本明細書に引用した全ての公開物が、本発明のかかわる分野の通常の技術レベ ルを示している。本書内に参考に取り込まれている全ての公開物は、引用部分が 特定の範囲ならびに個別的記載である場合でも、その全体が取り込まれている。 前記発明は理解をより明確にする目的で、図ならびに実施例によりある程度詳 細に記載されているが、当業者が添付のクレームの精神と範囲に反することなく 変更ならびに改変を行うことができることを確認することは容易だろう。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTIONTherapeutic recombinant poxvirus encoding myelin protein   As part of the research expenses of the present invention, NIH subsidy No. NS30727 was contributed, Accordingly, the United States government has certain rights in the invention.Background of the Invention   Central nervous system (CNS) such as multiple sclerosis (MS) and Guillain-Barre syndrome Inflammatory desheathing is a disease that involves an immune response to the CNS autoantigen It is considered. Is it a disease model like experimental allergic encephalomyelitis (EAE)? By analogy, myelin proteins, especially myelin basic protein (MBP) That the immune response to thyroid plays a role in the development and progression of inflammatory desheathing disease Indirect evidence suggests. For example, in the case of human MS patients, typically MBP Responsive T cells are recovered from cerebrospinal fluid of MS patients (1, 2 and 3). MS patients Concentration of MBP-reactive T cells in cerebrospinal fluid (CSF) affected other nervous system disorders It is higher than the control concentration (2). MBP-reactive T cells are also present in MS foci Directly detected (3). In the case of EAE, active immunization with MBP or an antigenic fragment of MBP Or because disease can be induced by adoptive immunization of MBP-reactive T cells, BP is the major antigen of this disease (4,5).   MBP is a component of the myelin protein. MBP gene is a selective RNA Encodes several MBP related proteins by pricing (Lemki , G .; (1988), Mikoshiba, K .; (1991), Kamhol z, J.M. (1987)). Proteolipid protein (PLP), myelin-related Glycoprotein (MAG), myelin / oligodendrocyte glycoprotein (MO The gene sequences of other myelin proteins such as G) are also known (Linging). ton et al., Eur. J. Immunol. 23: 1364 (1993)).   EAE susceptible animals are a research model for human inflammatory desheathing diseases such as MS It recognized. EAE is typically whole myelin, MBP, the antigenicity of MBP Immunization with fragments or adoptive immunization with MBP-reactive T cells Thus, it can be triggered (12, 13, 4, 5). Rodents suffer from EAE Also recovers normally. This is because the immune system is cytotoxic T cells or anti-inflammatory It shows that disease is suppressed by supplying cytokines (6, 11). However, human MS is recurrent, distinct from most forms of rodent acute EAE And chronic diseases. Little is known about the factors responsible for human disease recurrence Not. Regulatory T cells in human diseases (eg suppressor T cells) The role of has not been well studied.   Primates Callithrix jacchus (C. jacchus, common Marmosets), either active immunization in whole white matter or MBP-reactive T cells Alternatively, EAE can be induced by adoptive immunization with clones (12-1). 4). While marmosets are a particularly advantageous model for studying inflammatory desheathing, One reason is that siblings with common parents adopt lymphocytes between genetically distinct individuals. This is because they share bone marrow chimerism that allows transfer. Mars with EAE In moset, the response of T cells and antibodies to MBP during disease onset Sex is detected, which can be observed in peripheral blood mononuclear cell (PBMC) specimens (13) .   Poxviridae virus (poxvirus) is for clinical and research purposes In many integration operations performed in And a vector for delivering gene products. Oh for several reasons A poxvirus of the genus Orthopoxvirus, in particular Vaccinore virus is used. The reasons are, for example, (a) eradication of smallpox (B) including cells specialized in antigen presentation. Infects a wide range of cells and produces inserted gene products (for example, foreign gene products). The gene product is a class I and / or class II M Being able to be processed based on its relationship to HC molecules, (c) some tumors Being used as a recombinant vaccine in the treatment of ulcers (Kantor, J (1992)).   Avipoxvirus like fowlpox, canarypox, swinepox Many other poxviruses, such as those belonging to the genus Suipoxvirus, Used as a vector for chitin and as a vector for intracellular expression of foreign genes. Have been.   Myelinators such as neural sheath proteins, especially MBP and MBP-related proteins There is a need for the development of vaccines that can induce immune tolerance to proteins.Summary of the Invention   We have determined that the intracellular nature of the myelin protein or its T cell-inducing epitope By using recombinant poxvirus for expression, vertebrate host It has been found that symptoms of inflammatory desheathing disease can be reduced or postponed. More specific Typically, recombinant poxvirus and myelin protein are co-expressed in cells. This allows the subsequent host immune system to substantially respond to myelin proteins. It was found that it became tolerant and helped reduce the symptoms of the disease or delay the onset. Fine The term intracellular expression refers to the process by which protein transcription and translation take place inside a host cell. Means to occur. The protein itself is maintained inside the cytoplasm, or Or transported to the nucleus, cell membrane, or other intracellular area or extracellular space. Can be   Recombinant poxviruses contain the myelin protein or its T cell-induced epidermis. At least one insertion site containing a DNA segment encoding a tope This DNA segment is operable with a promoter that can be expressed in the host. Noh is linked. The term “myelin protein” refers to MBP, PLP, M Concentric surroundings around axons such as OP and MAG Means the protein that constitutes the target oligodendrocyte. Preferred myelinta Proteins are MBP, MBP-related proteins and their T cell-inducing epitopes. You. Other proteins include MOP and MDP (myelodendritic protein). Quality).   Generally, the preferred method of the present invention involves the use of a sufficient amount to stimulate an immune response. Introduction of the first recombinant poxvirus vector into the host Presenting the protein to the immune system. In some cases, It is desirable to contact the host with at least one booster antigen as a "boost." Preferably, the first recombinant poxvirus is a pox of a different genus than "boost". Derived from a virus. For example, the first dose is recombinant from avipox Poxvirus, followed by another recombinant pox from Suipox. Boost with virus. The first recombinant poxvirus vector was Myeri DNA segment encoding a protein or a T cell-inducing portion thereof I have. As described above, the additional antigen may be immunologically associated with the first poxvirus, for example. Different poxvirus, typically different from the first poxvirus Added using a second recombinant poxvirus derived from the genus poxvirus You.   Alternative to expression of myelin protein by first recombinant poxvirus or In addition, additional myelin protein or a T cell-inducing fragment thereof is added. May be added. For this purpose, the adjuvant or the liposome Contacting a phosphoprotein with a host or encoding a myelin protein DNA directly or in the form of a virus inherent in a selective viral vector Contact host.   It is also an object of the present invention to provide a recombinant poxvirus DNA or recombinant poxvirus. Contains the encoded myelin protein A cell, preferably intracellularly expressed in an amount sufficient to elicit an immune response Is to provide a homogeneous cell population. The cell is preferably a virus or a tan. A cell that can support expression of a protein for at least 48 hours, for example, a mammal. , Bird, reptile or insect cell lines.   According to another feature, the object of the invention also relates to one or more of the objects disclosed in the invention. Of recombinant poxviruses, Therapeutic composition wherein the virus (s) are provided in a pharmaceutically acceptable carrier It is to provide. Therapeutic compositions may be used, for example, for inflammatory desheathing diseases such as MS. It can be administered to mammals, preferably humans, as a means of reducing or delaying the onset. Therapeutic compositions of the invention may be administered alone or, for example, Interferon, corticotropin (ACTH) and corticos for the treatment of MS Adjuncts to known therapeutic methods for treating inflammatory desheathing diseases such as teroids May be administered as Thus, dogs, cats, horses, rabbits, mice, pigs, Mammals and breeding habits such as cows, reptiles, gerbils, birds, sheep and goats Inflammatory shedding disease in captive animals such as prey or primates (eg, chimpanzees) Is also included within the scope of the present invention.   The term “inflammatory desheathing disease” destroys, damages or removes the myelin of nerve fibers Means some immunological response. In mammals, especially humans, such damages The wound confirms the diagnosis of inflammatory desheathing disease.   It is also an object of the present invention to generate an immune response against a myelin protein in a host. Is to provide a way to The method is   (A) containing a sufficient amount of myelin protein or its T cell-inducing epitope; Mainly contacting,   (B) at least one regular interval thereafter, with additional myelin protein Contacting the host with the protein or its T cell-inducing epitope.   Another object of the present invention is to provide a method for producing a myelin protein capable of eliciting an immune response. To provide. The method is   (A) myelin protein, preferably MBP, MBP-related protein or The DNA segment encoding the T cell-inducing epitope is operably linked. Avipox, preferably fowlpox, canarypox, capripo Synthesizes recombinant poxviruses such as pox or swipox like swinepox To do,   (B) cells that support gene expression by the virus, preferably skin cells or Is a recombinant poxvirus that can infect muscle cells under mammalian host conditions. Preferably a step of introduction into a human,   (C) Myelin protein is injected intracellularly so that an immune response is elicited in the host body. Expressing and presenting properly.   The method also includes detecting the onset of an inflammatory desheathing disease in the host To produce cells (or their lysates) that can be used to determine the progress of Useful for The cell properly presents the myelin protein and thus Recognized by isolated T cells. Killing by T cells can be Detection by standard methods such as measurement of chromium released from cell labeled cells it can.   In another embodiment of the present invention, the method further comprises sensitizing the recombinant poxvirus. Isolating the stained cells; and expressing the myelin protein intracellularly in the infected cells. As an immunogen to produce antibodies that bind to the substance, preferably monoclonal antibodies, Using cells in the form of whole cells or cell fractions. Of course, antibodies It may bind to a T cell-inducing epitope on the Erin protein. Such antibodies Can be readily produced by those skilled in the art by conventional immunological techniques.   According to yet another embodiment of the present invention, the method further comprises isolating cells from the infected host. (Or the step of isolating the infected cells themselves) and the inflammation of the mammal, eg, a human Replace these cells with whole cells or cells to reduce or delay the onset of Spore fraction Eliciting an immune response in the second host by use in form .BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES   1A and 1B show vaccines of vAbT249 (control) and vT15 (MBP). Inoculated with C. Jacchus marmoset showing two clinical courses of EAE It is a graph.   A, B, C and D in FIG. 2 show vT15 (MBP) (A and C in FIG. 2) and vA WM immunized C. vaccinated with bT249 (control) (FIGS. 2B and D). ja 4 is four graphs showing the proliferative response in PBMC of cchus marmosets. Figure 2A and 2B show in vitro stimulation with MBP (50 μg / ml). 2C and 2D show stimulation by NYCBH vaccinia antigen (2 μg / ml). .Detailed description of the invention   Poxviridae viruses are known cytoplasmic viruses. Therefore, Genetic material expressed by light recombinant poxviruses is typically in the cytoplasm. It is maintained and cannot be accidentally incorporated into host cell genes. In addition, pox Because of the large genome of ils, it has a broad spectrum containing many foreign genes. To deliver the genetic material (ie, to act as a multivalent vector) ) Can be used easily.   The poxviruses disclosed herein are typically those of the Poxviridae family. Preferably avipox, capripox, orthopox, entmopox and And Suipox. Preferred Avi Poxviruses include fowlpox, canarypox, pigeonpox, turkeypox, and cramppox. Especially good A better avipox is fowlpox. Preferred orthopoxviruses are waxy Near, cowpox, mouse pox (Ectromelia), rabbit pox, raccoon pox, and Including monkey pox. A particularly preferred orthopox is vaccinia. Preferably, Suipox is a swinepox and Capripox is a sheep or goat pox Ruth.   When the host is a human, pox has a restricted host range so that the host is not a human. It may be preferable to use ils. Avipo Box, capripox, entmopox or suipox for human use. Can easily respond. Poxviruses containing humans in the host range In this case, poxvirus should be used until it loses toxicity. Sufficient dilution (ie, attenuation) can address such limitations. An example See, for example, the NYVAC strain of vaccinia described in US Pat. No. 5,494,807. It is good to shine. The contents of the patent are incorporated herein by reference. See also the MVA strain described in US Pat. No. 5,185,145. The The contents of patents are also included in the present invention by reference. The immune system is damaged Use of vectors consisting of such attenuated poxviruses Particularly preferred.   Although not as preferred as poxviruses, other recombinant viruses (and the Virus-derived DNA) are also included in the scope of the present invention. These viruses Herpes virus, polyoma virus (eg, SV40 and polyoma ), Adenovirus, adeno-associated virus, etc. RNA viruses such as retroviruses and picornaviruses, for example polio Virus, Sindbis virus, Venezuelan equine encephalitis virus. Other c Ils includes frog virus, African swine fever virus There is Irus.   Choose a parent virus that is not toxic to the putative host animal Must. For example, a more highly attenuated virus, a virus that does not replicate, etc. Can be used for the host.   In a preferred embodiment of the invention, the recombinant poxvirus is infectious with the host. It shows low replication efficiency in the vesicle (ie, target cell). Generally, the replication efficiency is, for example, Cells that infect the virus and then tolerate the amount of progeny virus produced by the infected cells. Conventional methods such as quantification by titration above (eg, viral plaque assay) It can be measured by an illogical cell culture assay. After being produced in this way The amount of progeny virus is expressed as an amount relative to the total number of cells used in the experiment. According to the invention The preferred poxvirus used is preferably about 1 / cell / cell on average. Produce no more than 0 productive (ie, infectious) progeny, and more preferably, no more than about 1 productive progeny Progeny, more preferably less than 0.1 progeny per cell. Productive progeny The term refers to progeny that infect and replicate in permissive host cells.   Poor poxvirus replication efficiency and low integration into the cytoplasm By virtue of being sex, the recombinant pocks produced from these poxviruses Viruses do not sustain replication and infection of other cells. Thus vectors and traits Converted cell Does not adversely affect cells of the host animal remote from the target cell. Follow To produce attenuated strains of virulent poxvirus If the viral toxicity has been attenuated by genetic mutagenesis, More virulent poxvirus to prepare light recombinant poxvirus Can be used. See the aforementioned U.S. Patent No. 5,494,807.   Although we do not deny the possibility of interpretation by other theories, we have It is believed that the lus vector elicits a CD8 + response. Myelin coded The antigen may be myelin antigen-specific CD4 cells, possibly via a CD8 + cell-mediated response. Specifically triggers down regulation of Alternatively, an inhibitory site by regulatory T cells Either secretion of cain or both may occur.Preparation of recombinant poxvirus and vector   A recombinant poxvirus containing a heterologous DNA sequence encoding a foreign protein The basic techniques for making are well known in the art. For example, recombinant pox One method for making ills is to flank the DNA sequence in the donor plasmid. Contact Utilizes homologous recombination between an ils DNA sequence and a homologous sequence present in the parent virus (Macckett et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 79: 7415-7419 (1982)). No. 5,093,258. See also the method for producing recombinant fowlpox virus. The contents of this patent are for reference only. Therefore, they are included in the present invention.   Another technique for producing recombinant poxviruses involves inserting heterologous DNA. Naturally or artificially introduced into the parent viral vector to A restriction endonuclease cleavage site is used. Also included in the present invention by reference No. 5,445,953.   Restriction digestion, ligation, transfection, transformation, agarose and poly Acrylamide gel electrophoresis, DNA sequencing, electroporation Such recombinant DNA manipulation methods have heretofore been known in the art and have been described in the literature. (Eg, Sambrook et al., In Molecular Clonin). g: A Laboratory Approach (1988); Ausub el et al., Current Protocols in Molecular B iology, Green Publishing Associates and Wiley Inte rsciences (1993)).   Typically, a heterologous DNA sequence to be inserted into a poxvirus is Sumid, bacteriophage or virus, such as pBR322 or pUC 19 may be located on a cerebral fungal plasmid. When a donor plasmid is selected In some embodiments, the plasmid preferably has one or more origins of replication (ORI). Detectable markers, such as antibiotics that grow in E. coli (eg, ampicillin). Or tetracycline) resistance gene. I'll explain more fully below As such, it typically associates with a poxvirus DNA section adjacent to the insertion site. The same DNA sequence is adjacent to the heterologous DNA.   Alternatively or additionally, a heterologous DNA gene sequence to be inserted can be replaced by a suitable promoter. May be combined with the Next, the promoter gene linkage is activated in the plasmid. Arrange as possible. That is, it is adjacent to the pox DNA region that is the desired insertion region. Place the DNA homologous to the DNA sequence adjacent to both ends of the promoter gene sequence. Place. When using the parent poxvirus vector, the pox promoter is usually Use The obtained recombinant plastic The Escherichia coli is then used to transform the Escherichia coli to select for the recombinant plasmid to replicate. Grow cells under alternative conditions. Next, the replicated plasmids are To purify. Of course, separate plasmids and eukaryotic cells for growing heterologous DNA Sex vectors (eg SV40 growing in green monkey cells) may be used ( See Sambrook et al., Supra).   A preferred method for producing the recombinant poxvirus of the present invention is to use a heterologous D Inserting the NA into the poxvirus by genetic recombination. For example The recombinant plasmid containing the heterologous DNA sequence to be inserted is replaced with chicken embryo fibroblasts. In such a cell culture, a poxvirus such as fowlpox virus or swinepox virus And transfect with it. Homologous pox DNA in plasmid and virus As a result of recombination with the genome, the presence of a promoter gene construct in the genome A modified recombinant poxvirus is obtained. Preferably, the recombination site is It is a site that does not affect the viability of ills.   As described above, the obtained recombinant virus substantially affects the virus viability. Insert the gene into a region (insertion region or site) in the virus that cannot be obtained. “Wil The term "viability" is a group Infectious virus particles within about 48 hours in the permissive host cell when the modified poxvirus Means the ability to produce Of course, in some situations the insertion will Effect, for example, the recombinant pox May attenuate ills. See the description below for the reason. No.   If it is not desired to substantially affect virus viability, one of ordinary skill in the art By testing segments of the viral DNA of Regions that support genetic recombination without significant impact on DNA . One readily available region that exists in many viruses is thymidine kinase. (TK) gene. This gene contains virtually all pox viruses tested. (Repolipoxvirus; Upton et al. (1986) (Shoop fibroma virus): Capripox virus; Gershon et al. (1 989) (Kenya sheep-1): orthopoxvirus; Weir (1983) (vaccinia); Esposito et al. (1984) (monkeypox Ruth and smallpox Hruby et al. (1983) (vaccinia); Kilpatrick. (1985) (Yaba monkey tumor virus): Avipox virus; Bin ns et al. (1988) (fowlpox); Boyle et al. (1987) (fowlpox); Schni tzlein et al. (1988) (fowlpox, quailpox): Entmopox (Lytvyn) (1992)).   In vaccinia, in addition to the TK region, virus viability is not substantially affected. Other insertion regions include, for example, a HindIII M fragment.   In fowlpox, in addition to the TK region, other insertion regions are, for example, BamHIJ flags. (Jenkins et al. (1991), EPO Application No. 0308220A1) EcoRI-HindIII fragment, EcoRV-Hind III fragment, BamHI fragment and HindIII fragment (Calvert et al. (1993); Taylor (1998); Spehner (1990) and Boursnell et al. (1990)).   In swinepox, the preferred insertion site is the thymidine kinase gene region including.   For successful expression of the insert DNA by the recombinant poxvirus, the insert Operable on heterologous DNA, in addition to the requirement that heterologous DNA be inserted into the region The presence of a promoter linked to is required. That is, the heterologous DNA and the promoter And the poxvirus exist in an appropriate spatial relationship that supports the transcription of the heterologous DNA. Must be present. The promoter is located upstream from the DNA to be expressed Must be arranged to be. Promoters are known in the art and The choice can be made easily based on the desired host and cell type. For example, Pox Will Used a promoter derived from the poxvirus promoter. You. These are like Vaccinia 7.5K or 40K or FPV C1. Based on natural promoters such as the fowlpox promoter Artificial constructs containing a matrix sequence may be used. Also, promote promoters to increase expression levels. An enhancer element may be used with the promoter. However, enhancer is inserted It does not necessarily need to be located upstream of the obtained heterologous DNA. Further, for example, heat induction Promoter or The use of inducible promoters, such as metal inducible promoters, is also known in the art. Preferred in some cases.   It is not necessary that the pox vector encodes all pox proteins. insect In addition, infect poxvirus target cells and express heterologous proteins You only need to code the necessary parts. Sometimes this part is poxgeno The part corresponding to the part sufficient for infection and expression of the virus is called a part corresponding to the part.   The recombinant poxvirus of the present invention may optionally comprise β-galactosidase, CAT, Contains markers such as neomycin or methotrexate resistance, which To detect (or select) the target cells of the host. Those skilled in the art will use such markers. For various viral vectors in certain target host cells Non-cytotoxic vectors can be screened. For example, β-galactosider Gene (lacZ) encoding any of the recombinant pox Virus into the target host cell. And the production of β-galactosidase is measured. β-gal expression is virus It is an indicator of virus infectivity and gene expression.Immune response   Specific immune response to myelin protein or its T cell-inducing epitope The answer is about 10Five-109Administer pfu of the recombinant poxvirus of the invention to a host Can be triggered by More preferably, about 107-109Use pfu However, this amount may vary depending on a number of factors, for example, the particular host used. You. Preferred hosts are domestic animals, captive animals or mammals such as humans. In some cases, the presentation is “boosted” by administering a booster antigen to the host. Is desirable. This administration may be after one to three months. Also, preferably the first booth At least one second "boost" may be administered 1 to 3 months after the injection. Mie The phosphoprotein and its T cell-inducing epitope share the same poxvirus vector Or more preferably, the antigen is antigenically related Using a second poxvirus vector derived from a non-poxvirus Alternatively, the antigen may be adjuvanted, e.g., in a pharmaceutically acceptable carrier. It may be administered directly using bunts or liposomes. IL-2, IL-6, Like IL-12 Various cytokines may be used as biological adjuvants, It can be administered systemically. Alternatively, such as cytokines or B7.1, B7.2 Gene into a recombinant pox vector And these molecules may be co-administered.   Adjuvants are, for example, RIBI Detox (Ribi immunoch) electrical), QS21 and incomplete Freund's adjuvant. Dosing Methods for preparing posomes are known.T cells   Epitope (s) of myelin protein or T cell induction thereof T cells that respond to a sexual epitope are obtained from peripheral blood mononuclear cells (PBMC) by standard methods. Obtained by For example, a lymphocyte separation medium gradient (Lymphocyte S) medium Medium gradient) (Organon T eknika Durham NC, USA) using the previously described procedure ( Boyum et al., Scand. Clin Lab Invest 21:77 -80 (1968)) to separate the PBMC. Washing For example, 10% human AB serum (Pel-Freeze Clin) ical System, Brown Dear, WI, USA). Lutamine, 100 U / ml penicillin and 100 μg / ml streptomycin Complete like RPMI 1640 (GIBCO) supplemented with Shin (GIBCO) Resuspend in medium. For example, about 2 × 10 5 in a 100 μl volume of complete medium6cell Of PBMC at a concentration of 96 wells in a flat bottom assay plate (Costar, Cam) (Bridge, MA, USA). Selected MBP peptide Was added to the culture at a final concentration of about 50 μg / ml and 5% COTwoIncubate for 5 days at 37 ° C. in a humid atmosphere containing MBP or The cytotoxic T cell-inducing epitope is removed from the medium and 5 days later a new human IL-2 (10 U / ml) is added to the culture and IL-2 containing medium is replenished every 3 days You. On day 16, the primary culture is restimulated with the same peptide (50 μg / ml). Release 5 × 10 with radiation irradiation (4,000 rad)6About 50μl of the same original PBMC And added as antigen presenting cells (APC) in complete medium. About 5 days later, same as above Human IL-2 The containing medium is added to the culture. Cells are restimulated for 5 days at 16 day intervals.Epitope mapping   T cells prepared according to the procedures described herein can be transformed into T cells such as cytotoxic T cells. (One or more of the myelin proteins or fragments thereof Number) of epitopes can be used. T cell induction of myelin protein One method of preparing the onset epitope is, for example, papain, trypsin or chymoto Lipsin (SIGMA Chemical Co. St. Louis, Mo. Limited protein digestion of proteins by enzymes such as Is the way. Alternatively, a fragment of the myelin protein can be A conventional person such as ifid Solid-Phase Technique It may be chemically synthesized by a method. For example, plating cytotoxic T cells, Different myelin protein fragments are added to different wells. At least one Specifically recognizes (eg, binds) a peptide fragment with two epitopes This facilitates the increase since only cytotoxic T cells continue to expand. Can be identified.   T cell-inducing epitope of myelin protein can substitute for complete protein . In addition, other fragments containing epitopes that enhance the ability to elicit a T cell response Can also be prepared.Mutants of myelin protein and DNA   Variants of myelin protein and DNA are included in the spirit and scope of the present invention. . For example, a degenerate variant of the MBP DNA sequence may have at least one degenerate variant. To encode a MBP amino acid sequence that contains nucleotide changes and consequently Equal to the MBP sequence except that one or more alternative codons are used No. There are 61 codons in 20 common amino acids, and many amino acids have more than one It will be understood by those skilled in the art that they are encoded by (optional) codons (Darn ell et al., eds., Scientific American Books, In. c. , 1986).   Additional variants are included within the spirit and scope of the present invention. For example, the recombination of the present invention Poxviruses contain at least one nucleotide change and consequently The MBP amino acid sequence One or more alternative codons are used to encode The alternative codon is a conservative amino acid, that is, another amino acid because it has similar properties. Includes variants that are equivalent to the MBP DNA sequence except for those that code for substitutable amino acids Include. Examples of conservative amino acid substitutions include valine, lysine, and glycine Arginine, leucine for valine, serine for threonine, etc. What is it? Of course, a conservative amino acid substitution may be Should not substantially affect the tope.   In yet another example of a mutant, the recombinant poxvirus of the invention has at least one Contains three nucleotide changes and consequently encodes the MBP amino acid sequence. One or more alternative codons are used to Is different from the corresponding amino acid in the MBP amino acid sequence. A mutation equal to the MBP DNA sequence except that it encodes an amino acid with the property value It also includes the body. In this case, a non-conservative amino acid substitution is made at the MBP (one or more ) Substantially does not affect T cell-induced epitopes.   Alternatively or additionally, the recombinant poxvirus may have deletions and / or insertions. Do not substantially affect the T cell-inducing epitope (s) of MBP. The deletion of the MBP DNA sequence or the deletion of the MBP DNA sequence. The insertion of a foreign gene.   The T cell-inducing epitope of MBP in polypeptide fragments is another type MBP mutant.Therapeutic composition   The recombinant poxvirus of the present invention is, for example, a trauma method, transdermal, subcutaneous, intramuscular, Administer to the appropriate host using any acceptable route, such as intravenous or intraperitoneal injection. Can be given.   The therapeutic compositions of the present invention preferably comprise one or more recombinant polypeptides of the present invention. Virus, and is typically pharmaceutically acceptable, such as saline. Aqueous or non-aqueous sterile solution, suspension or emulsion in combination with a carrier It is administered to a suitable host in a single dosage form. Parenteral dosage forms may also include excipients. Polyalkylene glycols such as commonly used polyethylene glycol Crude oil, hydrogenated naphthalene, etc. (For an overview, see Remington's Pharmaceutical ical Sciences (Mack Pub. Co., Easton, P. A, 1980).   The therapeutic composition of the present invention may be used as the sole active ingredient in a medicament, Is used in combination with other compounds and / or therapeutics to help treat inflammatory desheathing disease Is also good.   The amount of recombinant poxvirus in the therapeutic composition depends on the amount of virus administered, It can vary depending on many factors, such as the toxicity of the virus selected, the route of administration, and the like. one Generally, for parenteral administration, the compositions should be prepared in a saline buffer of about 10%.Five-109p It is administered as an aqueous solution of fu. When the host is human, a typical dosage range is about 1 0Five-109recombinant avipox virus or suipox wis in the pfu range And preferably fowlpox or swinepox. However, the preference for therapeutic compositions The dosage depends on the type and degree of inflammatory desheathing disease, the general health of the patient, Toxicity and biological efficacy of specific recombinant poxviruses identified, composition excipients It depends on variables such as the composition of the agent and its route of administration.                               Example 1                           Vector construction Pox virus   Many poxviruses are live viral vectors for the expression of heterologous proteins (Cepko et al., (1984): Marin et al., (1987); Lo we et al., (1987); Panicali & Paoletti (1982). ); Macett et al., (1982)). Typical chicken pox, pig pork Virus and vaccinia have accession numbers VR-229, VR-363 and And VR-325 from ATCC. DNA vector for recombination with parent virus in vivo   The gene encoding MBP or its T cell-inducing epitope is Virus gene, such as chicken pox virus, swine virus, or virus In addition to the normal expression of the parental viral protein, Insert so that expression by ills is also possible. This is a living organism with poxvirus Achieved by first constructing a DNA donor plasmid for internal recombination Is done.   Generally, a DNA donor plasmid contains the following elements: (I) Prokaryotic origin of replication, which allows the vector to be amplified in a prokaryotic host. Becomes possible; (Ii) encoding a marker for selecting prokaryotic host cells containing the vector A gene (eg, a gene encoding an antibiotic resistance trait); (Iii) a desired plasmid in contact with a promoter capable of expressing the gene; At least one gene encoding an erin protein (ie, MBP); (Iv) parent flanking a construction element (iii) into which a foreign gene is inserted DNA sequence homologous to the region of the irs gene.   Donor plasmid for introducing multiple foreign genes into poxvirus The construction method is described in WO91 / 19803, the technology of which is incorporated herein by reference. Has been captured by Generally, a fragment containing a transcription promoter and a foreign gene Donor vector containing a fragment containing a homologous sequence to the parental viral gene DNA fragments for constructing E. coli are genomic DNA or cloned DN It can be obtained from the A fragment. Donna -Plasmids are monovalent, divalent or multivalent (ie, an inserted foreign gene Can contain one or more columns).   To identify a recombinant virus having foreign DNA inserted into the donor plasmid It is preferable that another gene encoding a marker is included. Like this Recombinant virus can be identified and isolated by using multiple marker genes. it can. Such marker genes may have antibiotic or chemical resistance traits. Genes (eg, Spyropoulos et al., (1988); Falk ner and Moss (1988); see Franke et al., (1985)), colon There is a gene such as the lacZ gene of the fungus, which allows the It is possible to identify colonies of the recombinant virus (Panicali et al., ( 1986)). Transfer of heterologous DNA into poxvirus   Homologous recombination between donor plasmid DNA and viral DNA in infected cells When this occurs, a recombinant virus incorporating the desired elements is formed. In vivo group Host cells suitable for recombination are generally capable of infecting viruses and plasmid vectors. Eukaryotic cells that can be transfected. Pox virus benefits Examples of suitable host cells for use include chicken embryo fibroblasts, HuTK143 (human ) Cells and CV-1, BSC-40 (both monkey kidney) cells. Pox wi Infection of cells and transfection of these cells by plasmid vectors The implementation is performed using techniques standard in the art (Panicali and Paule). tti, U.S. Pat. No. 4,603,112, WO 89/03429, both of which are incorporated herein by reference. Is incorporated by reference into the book)   After in vivo recombination, the recombinant virus can be Offspring can be identified. For example, a DNA donor vector may be It is designed to insert one or more foreign genes into the midin kinase (TK) gene. When measured, the virus containing the inserted DNA was TK-And use this to sort (Macckett et al., (1982)). Or, if the marker Or co-transferring the indicator gene together with the foreign gene in question in the same manner as described above. It can be used to identify recombinant progeny. One preferred indicator gene is E. coli la. The recombinant virus expressing β-galactosidase is the cZ gene; Screening can be performed using the chromogenic substrate of the enzyme (Panicall et al., (19 86)). Characterization of antigens expressed by recombinant poxvirus   Once the recombinant poxvirus was identified, it was inserted using a variety of methods. The expression of the polypeptide encoded by the gene can be assayed. These people Black plaque assay (in situ enzyme immunoassay on viral plaque) ), Western blotting, radioimmunoprecipitation (RIPA) and There is an enzyme immunoassay (EIA). MBP or MBP-related protein, or Antibodies that recognize myelin proteins, such as the T-cell activation epitope of proteins, are commercially available. It can be prepared or prepared by a known technique. For example, these Antibodies against MBP, MBP-related proteins or their T-cell-derived epitopes Can be made by standard hybridoma techniques (Kohler et al., (1975). ); Kohler et al., (1976); Hammerling et al., Monoclo. nal Antibodies and T Cell Hybridomas , Elsevier NY, 1981; Harlow and Lane in.   Antibodies: A Laboratory Approach CS HSOB (1988); and Ausubel et al., Supra). Determination of antibody titer   Anti-MBP antibodies were quantified using ELISA before and 2 weeks after immunization, respectively. . For example, a microtiter plate was prepared using MBP (100 ng / well, SOUR CE), ovalbumin (100 ng / well, Sigma) or 1 × 107 Coated with PBS containing V-Wyeth inactivated with PFU / well UV To run. Block the plate with 2% BSA in PBS, dry and use -20 ° C until storage. This plate was diluted 1: 5 serum and standard As a control, a monoclonal antibody against PSA (DAKO M750, Denm ark) for 24 hours at 4 ° C. 1% of this plate several times After washing with PBS containing BSA, horseradish peroxidase-labeled yeast Giant anti-human IgG or IgM heavy chain specific serum (1: 8000) (Souther nBiotechnology Associates, Birmingha m, AL) at 37 ° C. for 45 minutes, followed by HRP substrate system ( Kirkegaard & Perry Laboratories, Gait Hersberg, MD) according to the manufacturer's instructions. The absorbance at 405 nm of each well Bio-Tek EL310 microplate ELISA reader (Winoo ki, VT). Optimization of immune response to recombinant poxvirus   Administration of the recombinant poxvirus disclosed herein may be subject to It can provoke a strong and unwanted immune response to the virus. same Continuous boosting with repeated administration of the same vector will result in no virus from the host. It was rapidly cleared as needed and could not adequately express myelin protein temporally. May not be able to boost the immune response to That is, the recombinant pot of the present invention Multiple “boosts” using virus virus are possible, but any It is not always preferable to use the ruth repeatedly. Has antigenicity By utilizing recombinant poxviruses from different poxviruses, In many cases, the above problem can be solved.   According to the present invention, a high level immune response against a recombinant poxvirus is To minimize, for example, the first poxvirus (or Virus group) is chicken pox, the second and subsequent recombinant pox Xviruses are different genera such as orthopox, for example, vaccinia and Choose from Suipox.   Alternatively, another way to minimize unwanted immune responses is to have a suitable host range and / or Or to select an appropriate poxvirus with tissue specificity. For example , Other than animals whose primary host range used poxvirus in the gene delivery system You can choose from For example, if the host is not a permissive animal such as a human, Avipox like pox or swipox like pigpox can be used Wear. In the case of veterinary applications where the host is a pig, as in the examples, It is not advantageous to use the box. Therefore, if the host is out of host range, If poxurus is not available, an attenuated strain is desired. For example, Use highly attenuated strains of specific orthopox such as xinia (MVA strain) Or use traditional genetic or chemical mutagenesis techniques Further attenuated until further non-pathogenicity in normal host range It can also be converted.   The cellular properties of the poxvirus in question easily screened for infectivity and amplification efficiency One way to do this.                                 Example 1         Construction of recombinant chicken poxvirus expressing MBP   2.2 The gene encoding MBP was isolated from a human brain cDNA library kb cDNA fragment [Kamholz et al., PNAS (USA) 83: 4962-4966 (1986)]. Encodes all 516 nucleotides of MBP Sequence and 5 'untranslated region of 36 nucleotides as well as 3' untranslated region of 661 nucleotides A 1.2 kb DNA fragment containing the translation region was ligated to the chicken poxvirus plasmid vector. Inserted into the monitor. The resulting plasmid was named pt3064 and used Vaccinia virus 40K early / late promoter (Gritz et al., 199). 0) and the chicken poxvirus C1 Osumi bacteria controlled by a promoter (Jenkine et al., 1991) vT92 containing the lacZ gene was created. This plasmid was produced on March 2, 1996. Deposited with the ATCC on the 2nd and received the accession number 97491. The foreign gene is chicken Flanking the DNA sequence in the Bam HI J region of the virus genome (Jenk ins et al., 1991). POXV, a vaccine strain of chicken poxvirus AC-TC (Schering Corp .. ) Induced strain was used as parent virus. Recombinant chicken pox Ils was a chicken pox virus transfected with pT3064. In chicken embryo epithelial (CED) cells infected with Between the chicken poxvirus sequence in Nome and the corresponding sequence in pT3064 Achieved by performing homologous recombination. The recombinant virus named vT92 was luogal (Life Technologies; Gaithersburg) g, MD), proliferated and identified in CED cells in the presence of β-galactosidase chromogenic substrate And the plaque was purified. MBP gene in chicken pox virus genome The insertion was confirmed by amplifying the inserted sequence by polymerase chain reaction (PCR). I did. MBP expression was determined by Western blot analysis using an MBP-specific antiserum. I checked.   Construction of recombinant vaccinia virus expressing MBP   Gene encoding human MBP was isolated from a human brain cDNA library 2 . It was excised from a 2 kb cDNA fragment [21]. All 516 nucleotides of MBP Coding sequence and 36 nucleotides of 5 'untranslated region and 661 nucleosides Cido's 3 'untranslated A 1.2 kb DNA fragment containing the translation region was transferred to a vaccinia virus transfer vector. Inserted in the The resulting plasmid designated pt115 contains vaccinia Vaccinia flanked by DNA obtained from the Hind IIIM region of the genome MBP relics controlled by the viral early / late promoter [22] Contains a gene. These flanking sequences are necessary for growth in human cells. An important vaccinia K1L host range gene [23] is included. This plasmid Deposited with the ATCC on March 22, 1996, and received accession number 97490. New   York City Health (NYCBH) vaccinia strain to parent virus Was used to construct a recombinant vaccinia virus. The parent virus is vA It was named bT33 (parent). The virus was released on May 15, 1989 by ATC C and deposited under the accession number VR-2240. This parent virus has a functional K Because of the lack of the 1L gene, rabbit kidney RK13 cells can grow efficiently. [24].   Construction of recombinant vaccinia virus utilizes standard homologous recombination techniques as described And achieved. Briefly, the vaccinia window in the vAbT33 (parent) genome Infects the viral sequence and parental virus RK13 cells transfected with the pT115 vector Homologous recombination was performed with the reaction sequence. The RK13 cell line is publicly available ( ATCC: accession number CCL37). Recombinant vaccinia with MBP gene Ils was selected by growing on RK13 cells. Recombinant containing all MBP genes Southern blot hybridization in which one of vaccinia viruses was digested with a restriction enzyme. Isolated. This recombinant virus was named vT15 (MBP) .   animal   Marmosets (C. jacchus) are from the University of California, San Fra ncisco (UCSF) bred in primate colonies. The dynamics used in this test These are the guidelines of the UCSF Animal Research Committee and National Re search Council, on the breeding and use of laboratory animals at the Laboratory Animal Resources Institute Was handled in accordance with the Commission's guidelines. Biweekly, up to 2.5 ml of blood Collected from animals. Phlebotomy and immunization were performed under brief anesthesia (ketamine , 10 mg intramuscularly).   Western analysis of MBP protein expression   Polyclonal rabbit anti-guinea pig MBP R120 antibody MBP was detected in vT15 (MBP) infected cells by Western blot analysis using It was shown to be expressed. This polyclonal antibody binds to human MBP . The preparation of antibodies has been described [25]. Equine herpesvirus gH Method for homologous recombination of a recombinant vaccinia virus containing a gene And used as a control recombinant vaccinia virus. The resulting recombinant cotton Xinia virus was named vAbT249 (control).   Briefly, Western experiments were performed with the parental vaccinia virus (vAbT33) or Shows recombinant vaccinia virus (vT15 (MBP)) in 2% fetal bovine blood Infect BSC40 cells in Dulbecco's modified Eagle's medium containing Qingqi It was carried out. Infect infected cells with hypotonic lysis buffer (150 mM NaCl, 0.0 Dissolved in 5% EDTA, 10 mM KCl, 1 mM PMSF) and then sonicated Processed. Electrophoresis of cell lysate and medium on SDS-10% acrylamide gel did. Transfer proteins to nitrocellulose membrane, and transfer nitrocellulose membrane Was incubated at room temperature with an antibody specific for MBP (R120), and then washed. And goat anti-rabbit phosphatase labeling Secondary antibody (AP, Kirkegaard & Parry Laboratory) ies, Gaithersburg, MD) and incubate with the manufacturer Color was developed according to the instructions.   Vaccination with recombinant vaccinia virus   Eight marmosets have vAbT249 (control) or vT15 (MBP) About 107Pfu was vaccinated with four subcutaneous injections on the back. animal In some cases, 10 weeks after the first injection9pfu booster inoculation Was. In a monkey, a common bovine pot was obtained 10-14 days after the first vaccination. Crohn's disease symptoms and transient fever were observed. No other side effects were observed during this period Was not. About the pathological and immunological effects of vaccination on animals Pathological symptoms, such as the appearance and severity of skin disorders, anti-vaccinia T-cell activity and The antibody response described in detail below was measured and evaluated.   EAE induction in marmosets   Vaccination with vAbT249 (control) or vT15 (MBP) 21 to 35 days after, all animals were treated with 100 mg human total WM at 3 mg / ml Complete with H37Ra Immunization was performed with all Freund's adjuvant. 48 hours after immunization 10 for animalsTenKilled Bordetella pertussis (Lede) rr laboratories, NY) was administered intravenously. Daily mar Monitor the onset and progression of EAE by clinically observing mosets based on standard pathological criteria (See Massacesi, L., et al. (1995)). Animals at the end of the experiment Was anesthetized with a ketamine anesthetic and then a lethal dose of pentobarbital was administered intravenously ( (20 mg / kg) and then whole blood was collected.   Recombinant vaccinia virus expressing MBP in cells to PBMC infection   For MBP expression, vT15 (MBP) or VAbT249 (control) B-lymphoblast cells infected with Epstein-Barr virus and transformed with Epstein-Barr virus The strain was monitored in vitro using a strain (B-LCL). For the expression of MBP, PBMC were also monitored in vivo every 2-3 weeks after vaccination. Sa Ito spin samples (Shandon) were fixed in 50% ethanol and 1% bovine serum R120 rabbit polyclonal block with albumin phosphate buffered saline Guinea pig Stained with MBP antibody (1: 200), washed slides and labeled with peroxidase Incubated with anti-rabbit IgG antibody (Sigma). Color is 3-amino Run with -9-ethyl-carbazole (Sigma) and slide slides in hematoxylin / Double staining with eosin.   Briefly, expression of MBP in B-LCL cells was performed using the following method. Monkey autologous B lymphoblastoid cell line (BLCL) was isolated from freshly isolated 1 × 10Five L-glutamine containing PBMC, gentamicin, and 10% FCS (Bio fluids, Rockville, MD) with 100 ml of RPMI1 At 640, 100 ml of S594 cells containing baboon Herpes Papio (D r. M. D. Miller, Harvard Medical School, New England Regional Primate Research h Center, Southborough, MA) 96 flat bottom plates (Costar, Cambridge, Mass.) Established in the well. After transformation, the cells were expanded and the medium was changed weekly.   We found that recombinant vaccinia virus vT15 It was discovered that myelin protein was expressed in PBMCs obtained from sown animals. This expression was paired with marmosets vaccinated with vAbT249 (control). It was not seen in the Teru group. During the period when MBP is expressed in each animal, There was a range of 15 to 45 days after vaccination.   Immune response to MBP and vaccinia antigen   T-cell reactions were performed on newly isolated 10 wells in 96-well round bottom plates.FivePB To MCThreeStandard 72 hour growth assay using [H] -thymidine incorporation Investigation was carried out by the method [13]. Briefly, each plate is 200 μl / AIM Includes V (Gibco-BRL) and one of the following: nothing added (control); M BP 50 μg / ml; Proteolipid protein (PLP) 10 μg / ml; PH A 2.5 μg / ml; WM 0.1% (weight / volume); NYCBH Waxini A strain 2 μg / ml. Stimulation index is the ratio of unstimulated PBMC to stimulated PBMC Calculated as The term "stimulation index" refers to the recombinant vaccinia of the present invention. Recombination of the invention for the amount of T-cell activity in PBMC not exposed to ils T-cells in PBMC detected in biological samples exposed to body vaccinia virus Mean the ratio of the amount of activity are doing. Animals are sacrificed by anesthesia; spleen, lymph nodes are collected and then T-cells Proliferation assays were performed.   The production of MBP and vaccinia virus-conjugated antibodies is described in the manufacturer's instruction manual (Bio rad) and observed every 14-21 days using a dot blot filtration device [ 13]. Briefly, 250 ng MBP or 500 ng NYCB The H strain was adsorbed on a 0.45 μm nitrocellulose filtration membrane (Biorad) and Locked, a) serially diluted marmoset serum; b) peroxidase Labeled monkey IgG (Sigma, 1: 4,000 dilution); c) chromogenic substrate And diaminobenzidine (Pierce).   vT15 (MBP) recombinant vaccinia virus alleviates EAE.   In control animals vaccinated with vAbT249 (control), after immunization with WM Approximately 14-18 days, EAE developed (Table 1 and FIG. 1A). [12,13,26]. Control animals that did not develop EAE as clinical symptoms , But died from anesthesia 14 days after immunization. Table 1 is shown below You:  Recombinant vaccinia virus expressing MBP (vT15 (MBP)) In animals vaccinated with EAE, the appearance of clinical symptoms of EAE was significantly delayed (Table 1). And FIG. 1B). For example, two animals (animal numbers 344-92 and 353-92) have EAE For 63 days.   Clinical and pathological signs of EAE seen in animals vaccinated with vT15 Ensures delay or suppression compared to control animals vaccinated with vAbT249- Was done. adjuvant / bandetella pertussis WM In experiments before immunizing more than 30 animals with, more than 75% of the monkeys had 14- The disease developed within 28 days, and all cases became ill 60 days after immunization. That is, Onset of EAE (37-120 days) in vT15 (MBP) This is not likely due to the individual susceptibility of the animals in the inoculated group. Data is The preventive effect of vT15 (MBP) on vaccination is transmitted through the expression of MBP Nonspecificity of the immune response due to exposure to the vaccine virus It is not due to a typical modification.   One control animal vaccinated for neuropathology (animal number 346-92) at the time of acute EAE onset (22 days after immunization, 5 days after EAE onset) Eye, see FIG. 1A). Two more animals vaccinated with vT15 (MBP) First exemption for animals (animal numbers 344-92 and 353-92, see FIG. 1B) Checked on day 63. In control animals, typical C. acute E by Jacchus AE pathology was seen [12,13]. For example, simply at multiple places in the white matter of the CNS Nuclear cells and macrophages infiltrated around the blood vessels. Notable for such phenomena With severe coaxial desheathing and early gliosis. Abnormality was recognized in gray matter structure Was not. These disease findings were vaccinated with the control vaccinia virus. In the case of WM with a conventional adjuvant showing no improvement in EAE Untreated C. infected Same as the report for Jacchus. On the contrary When two animals vaccinated with vT15 were examined 63 days after immunization, perivascular The infiltration into the part was found to be slight, and was not accompanied by desheathing (FIG. 1, Table 1). . Thus, according to clinical and neuropathological criteria, recombinant MBP-vaccinia Prophylactic vaccination by C. protects the Jacchus marmoset from EAE Was.   Vaccinia virus despite being an FDA approved vaccine component May have encephalomyelitis pathogenic properties (Paoletti et al. (1993) ). For these reasons, we have developed a vaccine with the NYCBH strain of vaccinia virus. The inoculation itself is C.I. Jacchus was examined for increased EAE.   vAbT249 (control) or vT15 (MBP) recombinant vaccinia Marmosets in each group vaccinated with ils and injected with white matter (WM) Two animals were followed up for 163 days after WM injection (Table 1 and FIG. 1A B). Both groups show severe clinical symptoms (more than 3 degrees) and die or Was euthanized (animal number 91-92 (day 70); 94-92,3). 26-91 and 499-92 (each on day 120). Large shedding in control animals Extensive infiltration with dissemination was observed in white and gray matter (Table 1). Only However, in two animals vaccinated with vT18 (MBP), such clinical signs No condition was observed prior to sacrifice of the animals (FIG. 1B). These observations The result is that acute disseminated encephalomyelitis follows vaccination with vaccinia virus. Suggests to get up. Reduced or more attenuated vaccini Or use another poxve such as Avipox or Suipox. It is anticipated that these symptoms can be avoided by the use of a physician.Immune response to myelin and vaccinia antigens 1. T-cell reaction   MBP, proteolipid protein (PLP), and vaccinia virus (N YCBH) as a response to a stimulusThree[H] -Thymidine incorporation, vaccination PBMC was measured continuously from the start date to the day of death. The results are summarized in FIG. Was.   T-cell activity against MBP: Two animals vaccinated with vT15 (MBP) In marmosets, transient and mild (ie, stimulation index 2) prior to induction of EAE by WM ) Were observed (animal numbers 344-92 and 353-92, FIGS. 2A and 2C). reference). This result indicates that vaccination with recombinant vaccinia virus This indicates that the immune system against the antigen appears in the living body. Active immunization with WM And T-cell proliferative response to MBP vaccinated with vAbT249 (control) Up to 15 and 22 days in the two animals and up to 62 days in the third control monkey. I was guessed. However, vaccination with vT15 (MAB) T cell proliferation to MBP did not occur until 74 days after immunization. This group In one of the animals (animal numbers: 91-92), T -No cell response was observed. T-cell reactivity to PLP in these experiments Was not shown.   T-cell reactivity to vaccinia virus: Vaccination or WM T-cells against NYCBH in both experimental and control groups after immunization with A proliferative response was observed (see FIGS. 2C and D). This is because of the recombination Subcutaneous injection of the human vaccinia virus Effective for Jacchus cell-mediated immune response This indicates that the stimulus has been effectively obtained. Later in animals that developed acute disseminated encephalomyelitis Increased the anti-vaccinia T-cell response.   T-cell reactivity to PLP: Against PLP in animals immunized with WM No examples showed T-cell reactivity. However, one animal that developed EAE was strong. Proliferative response to low PLP. Antibody reaction   A) Antibody to MBP: Serum antibody titer is bT15 (MBP) Or vAbT249 (control) recombinant vaccinia virus Was not detected after vaccination. However, all animals were immunized with WM 14-21 days later, antibodies binding to MBP appeared.   b) Antibody to vaccinia virus: against the NYCBH strain of vaccinia virus Antibodies were detected 14-21 days after the first vaccination. This result Humoral immunity against vaccinia antigen as well as T-cell proliferation reactivity Indicates that it was induced by   Part of the antigen presentation by the vaccinia virus vector is MHC class I antigen Both occur via the endogenous antigen presentation pathway. This allows for regulatory T-cells, especially The proliferation of CD8 + T- cells is stimulated. I do not intend to tie it to a specific theory The reduction in EAE observed in these experiments indicates that certain T-cell subclasses Suppression or secretion of inhibitory cytokines from regulatory T-cells Or both. Such defense mechanisms (or other Mechanism) is thought to be invalidated by the pathogenicity of vaccinia virus encephalomyelitis You.   Therefore, a recombinant poxvirus with reduced encephalomyelitis pathogenicity A recombinant chicken poxvirus as disclosed above. It is used in place of vaccinia virus in mammals, especially livestock, captive animals, and humans. Elimination or delay of the onset of inflammatory desheathing disease.   Some of the above components and methods are suitable for clinical applications or veterinary applications. Can be used as Such kits can be used as pharmaceuticals The recombinant poxvirus of the present invention or the recombinant pox virus of the present invention may be contained in a carrier. It contains one or more cells or homogeneous populations of cells that contain ills. In particular, cells or The homogenous population of cells is the host that is or is suspected of having the inflammatory desheathing disease described in this document. Myelin protein capable of binding to T-cells derived mainly, preferably MBP, MBP- Cells expressing intracellular related proteins or their T-cell activating epitopes Alternatively, it can be used as part of a diagnostic kit as a homogeneous population of cells. T-cells and this book The binding between the disclosed cells or homologous cells can be achieved by using ordinary immunization techniques. Can be detected.   All publications cited herein are subject to ordinary skill in the art to which this invention pertains. Is shown. All publications incorporated by reference in this document are quoted The specific range as well as the specific description is incorporated in its entirety.   The invention is described in some detail by means of figures and examples in order to make the understanding more clear. Described in detail, but without departing from the spirit and scope of the appended claims. It will be easy to see that changes and modifications can be made.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61K 39/275 A61K 39/275 48/00 48/00 C12N 5/10 C12N 7/00 7/00 5/00 B (71)出願人 ザ・リージエンツ・オブ・ザ・ユニバーシ テイ・オブ・カリフオルニア アメリカ合衆国、カリフオルニア・94612 ―3550、オークランド、レイクサイド・ド ライブ・300、トウエンテイセカンド・フ ロアー (72)発明者 レトビン,ノーマン アメリカ合衆国、マサチユーセツツ・ 02158、ニユートン、ブラケツト・ロー ド・36 (72)発明者 ジエナイン,クロード・ピー アメリカ合衆国、カリフオルニア・94612 ―3550、オークランド、レイクサイド・ド ライブ・300、トウエンテイセカンド・フ ロアー (72)発明者 グリツツ,リンダ アメリカ合衆国、マサチユーセツツ・ 02143、サマービル、エマーソン・ストリ ート・3 (72)発明者 ハウサー,ステイーブン・エイチ アメリカ合衆国、カリフオルニア・94612 ―3550、オークランド、レイクサイド・ド ライブ・300、トウエンテイセカンド・フ ロアー (72)発明者 パニカリ,デニス アメリカ合衆国、マサチユーセツツ・ 01720、アクトン、ノンセツト・パス・114──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) A61K 39/275 A61K 39/275 48/00 48/00 C12N 5/10 C12N 7/00 7/00 5 / 00 B (71) Applicant The Regions of the University of California, California, CA 94612-3550, Auckland, Lakeside Drive 300, Twenty Second Floor (72) Inventor Letvin, Norman United States, Massachusetts 02158, Newton, Brackett Road 36 (72) Inventor Jenine, Claude P. United States of America, California 94612-3550, Auckland, Lakeside Drive 300, Twenty Cand Floor (72) Inventor Grits, Linda United States, Massachusetts 02143, Somerville, Emerson Street 3 (72) Inventor Hauser, Steven H. United States of America, California 94612-3550, Oakland, Lakeside Drive 300, Twenty Second Floor (72) Inventor Panicali, Dennis USA, Massachusetts 01720, Acton, Non-Set Pass 114

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.ミエリンタンパク質をコードする異種DNA配列を作動可能に連結された状 態で含む少なくとも1つの挿入部位を有している組換えポックスウイルスであっ て、前記組換えポックスウイルスが宿主免疫系を調節し得ることを特徴とするポ ックスウイルスに由来の組換えポックスウイルス。 2.異種DNA配列がMBPまたはその変異体をコードすることを特徴とする請 求項1に記載の組換えポックスウイルス。 3.ポックスウイルスが、オルトポックスウイルス、アビポックスウイルスまた はスイポックスウイルスであることを特徴とする請求項1に記載の組換えポック スウイルス。 4.ポックスウイルスが、ワクシニア、鶏痘または豚痘から成るグループから選 択されることを特徴とする請求項3に記載の組換えポックスウイルス。 5.ポックスウイルスが野生型であるかまたは弱毒化されていることを特徴とす る請求項1に記載の組換えポックスウイルス。 6.免疫応答がT細胞応答であることを特徴とする請求項1に記載の組換えポッ クスウイルス。 7.細胞がミエリンタンパク質を発現し、細胞傷害性T細胞応答を誘発すること を特徴とする請求項1に記載のポックスウイルスに感染した細胞。 8.医薬として許容される担体中に請求項1に記載の組換えポックスウイルスを 含むことを特徴とする炎症性脱鞘疾患の発症を軽減または猶予する治療用組成物 。 9.ポックスウイルスが鶏痘、ワクシニア及び豚痘から成るグループから選択さ れることを特徴とする請求項8に記載の治療用組成物。 10.ミエリンタンパク質がMBPまたはその変異体であることを特徴とする請 求項8に記載の治療用組成物。 11.ミエリンタンパク質に対する免疫応答を生じさせる方法であって、 (a)免疫系にミエリンタンパク質を提示するために十分な量の第一の組換えポ ックスウイルスを宿主に導入する段階と、 (b)ミエリンタンパク質を細胞内で発現させる段階と、 (c)前記ミエリンタンパク質を免疫系に提示する段階とから成り、 第一の組換えポックスウイルスが、ミエリンタンパク質をコ ードするDNAセグメントを作動可能に連結された状態で含む少なくとも1つの 挿入部位を有することを特徴とする方法。 12.更に、第一の組換えポックスウイルスの導入後に少なくとも1つの定期的 な間隔をおいて、追加のミエリンタンパク質またはその細胞傷害性T細胞誘発性 エピトープを宿主に接触させる段階を含むことを特徴とする請求項11に記載の 方法。 13.ミエリンタンパク質をコードするDNAセグメントを作動可能に連結され た状態で含む少なくとも1つの挿入部位を有する第二の組換えポックスウイルス を導入することによって追加のミエリンタンパク質を宿主に接触させることを特 徴とする請求項12に記載の方法。 14.ミエリンタンパク質がMBPまたはその変異体であることを特徴とする請 求項13に記載の方法。 15.宿主の免疫系にミエリンタンパク質を提示する方法であって、 (a)十分な量のミエリンタンパク質またはその細胞傷害性T細胞誘発性エピト ープを宿主に接触させる段階と、 (b)その後に少なくとも1つの定期的な間隔をおいて追加のミエリンタンパク 質を宿主に接触させる段階とを含み、 追加のミエリンタンパク質を宿主に接触させる段階が、ミエリンタンパク質を コードするDNAセグメントを作動可能に連結された状態で含む少なくとも1つ の挿入部位を有する第一の組換えポックスウイルスの導入によって行われること を特徴とする方法。 16.第一の組換えポックスウイルスが、スイポックスウイルス、アビポックス ウイルス、カプリポックスウイルス及びオルトポックスウイルスから成るグルー プから選択されたウイルスに由来することを特徴とする請求項15に記載の方法 。 17.ポックスウイルスがワクシニア、鶏痘または豚痘であることを特徴とする 請求項16に記載の方法。 18.第一の組換えポックスウイルスがアビポックスに由来し、第二の組換えポ ックスウイルスがスイポックスウイルス、カプリポックスウイルス及びオルトポ ックスウイルスから成るポックスウイルスのグループから選択されたポックスウ イルスに由来することを特徴とする請求項13または16に記載の方法。 19.第一または第二の組換えポックスウイルスが弱毒ポックスウイルスに由来 することを特徴とする請求項18に記載の方法。 20.組換えポックスウイルスが前記宿主中で低い複製効率を示すことを特徴と する請求項11または15に記載の方法。 21.vT92またはvT15であることを特徴とする請求項1に記載の組換え ベクター。[Claims] 1. An operably linked heterologous DNA sequence encoding a myelin protein A recombinant poxvirus having at least one insertion site comprising Wherein the recombinant poxvirus is capable of regulating the host immune system. A recombinant poxvirus derived from a poxvirus. 2. A heterologous DNA sequence encoding MBP or a variant thereof. The recombinant poxvirus according to claim 1. 3. Poxvirus is orthopoxvirus, avipoxvirus or 2. The recombinant pock according to claim 1, wherein is a suipox virus. Virus. 4. Poxvirus selected from the group consisting of vaccinia, fowlpox or swinepox The recombinant poxvirus according to claim 3, which is selected. 5. Characterized in that the poxvirus is wild-type or attenuated The recombinant poxvirus according to claim 1. 6. 2. The recombinant pot according to claim 1, wherein the immune response is a T cell response. Kusu virus. 7. Cells express myelin protein and elicit a cytotoxic T cell response A cell infected with the poxvirus according to claim 1, characterized in that: 8. The recombinant poxvirus of claim 1 in a pharmaceutically acceptable carrier. A therapeutic composition for reducing or prolonging the onset of inflammatory desheathing disease, comprising: . 9. Poxvirus selected from the group consisting of fowlpox, vaccinia and swinepox 9. The therapeutic composition according to claim 8, wherein the composition is used. 10. The myelin protein is MBP or a variant thereof. A therapeutic composition according to claim 8. 11. A method for generating an immune response to a myelin protein, comprising: (A) a sufficient amount of the first recombinant plasmid to present the myelin protein to the immune system; Introducing a virus into a host; (B) expressing the myelin protein in a cell; (C) presenting the myelin protein to the immune system;   The first recombinant poxvirus encodes myelin protein At least one operably linked DNA segment comprising A method comprising having an insertion site. 12. In addition, at least one routine after introduction of the first recombinant poxvirus At an interval, additional myelin protein or its cytotoxic T cell-inducing properties 12. The method of claim 11, comprising contacting the epitope with a host. Method. 13. Operatively linked to a DNA segment encoding a myelin protein Recombinant poxvirus having at least one insertion site including in a closed state To bring additional myelin protein into contact with the host by introducing 13. The method according to claim 12, wherein the method comprises: 14. The myelin protein is MBP or a variant thereof. 14. The method according to claim 13. 15. A method of presenting a myelin protein to a host immune system, (A) sufficient amount of myelin protein or its cytotoxic T cell-induced epithelium Contacting the host with the host; (B) at least one subsequent regular interval of additional myelin protein Contacting the quality with the host.   Contacting the additional myelin protein with the host comprises At least one containing an encoding DNA segment in operably linked state Performed by introducing a first recombinant poxvirus having an insertion site A method characterized by the following. 16. The first recombinant poxvirus is Suipox virus, Avipox Glue consisting of virus, capripox virus and orthopox virus 16. The method of claim 15, wherein the method is derived from a virus selected from the group consisting of: . 17. Characterized in that the poxvirus is vaccinia, fowlpox or swinepox The method of claim 16. 18. The first recombinant poxvirus is derived from avipox and the second recombinant poxvirus is Virus is suipox virus, capripox virus and orthopox virus Pox virus selected from the group of pox viruses 17. The method according to claim 13 or 16, wherein the method is derived from irs. 19. First or second recombinant poxvirus derived from attenuated poxvirus The method of claim 18, wherein: 20. Wherein the recombinant poxvirus exhibits low replication efficiency in the host. The method according to claim 11 or 15, wherein 21. The recombinant according to claim 1, which is vT92 or vT15. vector.
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