【発明の詳細な説明】
アポペインの結晶構造及びその使用 発明の分野
アポトーシス。発明の背景
本発明は、結晶性アポペイン、X線結晶学により測定したアポペインの構造、
前記構造の、アポペイン類似体及びアポペインの他の結晶形態、突然変異体及び
アポペインの共複合体(co−complexes)の構造を解明するための使
用、並びにアポペイン構造及びその同族体、突然変異体及び共複合体の、アポペ
インモジュレーターを設計するための使用に関する。
本発明の1面は、X線回折法によりタンパク質の3次元(3次)構造を決定す
るのに十分な品質を有するアポペイン結晶を得ることにある。前記した結晶が得
られることは、実際極めて予期せぬ結果である。本出願以前、タンパク質結晶学
の分野においてアポペインの構造を決定するために十分な品質を有する結晶が得
られていなかったことは公知である。そこで、本発明の1つの目的は、アポペイ
ンの3次元構造を高分離能(high
resolution)で決定するために十分な品質を有する結晶を提供するこ
とである。アポペイン結晶の価値は、アポペインそのものの構造を得ることがで
きることに止まらない。アポペインに関して得た知識を利用して、関連タンパク
質の3次構造のモデルを作ることができる。本発明の別の面は、タンパク質のア
ポペインファミリーの他のメンバーの構造を決定する際に使用するための出発材
料を提供することである。タンパク質のアポペインファミリーの構造の知識から
、該タンパク質の体内での作用メカニズムを調べる手段が提供される。例えば、
上記タンパク質の各種受容体分子に対する結合を各種コンピュータモデルにより
予測することができる。前記結合が実際に起こることが知見されたら、化学者ら
はタンパク質構造の知識に基づいてアポペインのその受容体への機能的結合によ
く似た小分子を設計し、その合成を試みることができる。これは、「合理的な」
薬物設計の方法である。よって、本発明の別の面は、アポペインの作用によく似
た薬物の合理的設計における出発材料である物質を提供することである。
哺乳動物インターロイキン−1β変換酵素(ICE)及び線虫C.elega
nsでプログラムされた細胞死に必要とされ
る遺伝子の産物であるCED−3に関連するシステインプロテアーゼが脊椎動物
をアポトーシスさせる生化学的事象において重要な役割を果たすことは判明して
いる1-3。ICE/CED−3様プロテアーゼファミリーの幾つかのヒトイソ型
(これらは2つの別個の系統分類サブファミリーに分けられる)が現在同定され
ている。ICEに関連するイソ型はICErel−II(TX、ICH−2)及びI
CErel−IIIを含み、CED−3により類似のイソ型はICH−1(mNedd
2)、CPP32(アポペイン、Yama)、Mch2及びMch3(ICE−
LAP3)を含む4-14。本発明者らは、CPP32/アポペインと強力なテトラ
ペプチド−アルデヒド阻害剤の複合体の3次元構造をX線回折分析により調べた
。タンパク質は、3次及び4次構造の点で及び触媒活性に関連する特徴の点でI
CEと類似している。しかしながら、アポペインのS4サブサイトは、サイズ及
び化学組成の点でICEとは顕著に異なる。この違いから、これらの酵素の2つ
のサブファミリー間の特異性の違いを理解するための構造的基礎が与えられる。
哺乳動物アポトーシスにおけるICEそれ自体の役割はまだ明確に確立されて
はいないが15,16、この重要な生理学的過
程において少なくとも1つの同族体のアポペイン/CPP32が重要な役割を有
することは明らかである。アポペインは、アポトーシスの開始時に(P4)As
p−X−X−Asp(P1)モチーフの必須機能ドメインを分離することにより
、主要なホメオスタシス・修復酵素を無能にする。アポペインに対する公知の基
質はポリ(ADP−リボース)ポリメラーゼ(ストレス細胞におけるゲノムサー
べイランス及びDNA修復に関わる酵素)、U1−70kDa核内低分子リボ核
タンパク質(mRNAスプライシングのために必要である。)、及びDNA依存
性プロテインキナーゼ(DNA二本鎖切断修復のために必要である)の460k
Da触媒ユニットを含む15,19,21-23。細胞自殺中のアポペイン及びアポペイン
様プロテアーゼに対する別の可能性ある基質は構造タンパク質、例えばホドリン
(非赤血球型スペクトリン)、核ラミン類及び増殖停止特異性タンパク質2(G
as2)、並びにタンパク質キナーゼC∂及び幾つかのまだ同定されていないル
ープス自己抗原を含む22,24-27。これらのプロテアーゼは、ヘモスタシス・修復
過程の無能化及び死にかけている細胞の系統的構造解体に寄与する開裂事象のカ
スケードに関わると考えられる。アポトーシスのバランスの
崩れが、不十分なアポトーシス死、例えばガンや過剰もしくは未熟なアポトーシ
ス、例えばアルツハイマー病の両方を含み得る多くのヒトの病気の病因の根底を
なすと考えられる。従って、特異的生化学的アポトーシスモジュレーター、例え
ばアポペインを同定すれば、これらの病気の治療方法の可能性が開ける。
ICE/CED−3プロテアーゼはすべて、タンパク質分解プロセッシングさ
れるとヘテロダイマーの触媒ドメインを形成するプロ酵素として合成されるよう
である。最近発表されたICEの結晶構造では、2つのヘテロダイマーは結合し
てテトラマーを形成しており、この知見からこの物質が酵素の触媒活性形態であ
ることか示唆された28,29。このファミリーの最も特徴的な触媒特性は、基質P1
位置のAspをほぼ絶対的に必要とすることである4,5,28-30。前記した及び他
の点で類似性があるが、ICE及びアポペインの基質特異性は著しく異なる。I
CEは重要な決定基であるP4位置の疎水性残基を好むが、アポペインはこの位
置のAspに対して特異的であると考えられる。従って、本発明者らは、上記し
た基質特異性の著しい違いを明らかにする決定基を同定するために、前記酵素の
高特異性モジュレーターを設計するための基礎を与えるため
に、また最終的にはアポトーシス細胞死におけるアポペイン及び機能的に関連す
るファミリーメンバーの役割についての構造的基礎を理解するためにアポペイン
の3次元構造を決定しようと努めた。
本発明者らは、ペプチド−アルデヒド阻害剤Ac−DEVD−CHOとの複合
体中のアポペインの3次元構造を2.5Åの公称分解能で解明した。アポペイン
の3次及び4次構造は、ICEと非常に類似している(図1)。アポペインのp
17サブユニット及びp12サブユニットは折り畳まれて約40×35×25Å
のサイズのコンパクトなシリンダーとなり、折り畳みは、5つの平行鎖及び1つ
の逆平行鎖を有する中央6−鎖β−シートにより支配される。モジュレーター−
結合サイトの一部であるシリンダーの上部に小さな2鎖逆平行β−シート及び分
子の正面に第2の2鎖逆平行β−シートが存在する(図1A)。更に、p17サ
ブユニットのC−末端及びp12サブユニットのN−末端を含む非常に小さな2
鎖β−構造が存在する(以下の4次構造の記載を参照されたい)。5つのヘリッ
クスが存在し、そのうち3つは主β−シートの一面に、2つは他の面に存在する
。ICE(図1B)のp20サブユニットのN−末端の
ヘリックスは、アポペイン結晶中に等価物を持たず、アポペインのアラインされ
たアミノ酸中のこのヘリックスに相当する残基は結晶構造中では明らかに無秩序
である。ICE構造の場合のように、p17−p12ヘテロダイマーの対は集合
して、2回回転対称の結晶軸を横断して中央β−構造が延びることにより結晶格
子において別のテトラマーとなる(図2)。阻害剤は延長したコンホメーション
の形態にあり、その酵素に対する結合はICEに対するテトラペプチドアルデヒ
ド阻害剤の場合と非常に類似している。阻害剤のP1−P3残基を含む結合モード
は、ICE構造で見られるモードと非常に類似しているか、P4のAsp残基を
含む相互作用は明らかに異なっており、この位置での2つの酵素の特異性の違い
に一致している。
アポペイン構造及びICE構造が類似の二次構造またはコンホメーションを有
する194残基上にアラインされると、同等α炭素原子間の平均差異は1.11
Åである。2つの酵素の全構造における最も有意な違いは、ICE中に存在する
2つの小さな表面ループがアポペインにはなく、アポペインが他の酵素には存在
しない1つのエキストラループを含んでいることである。アポペインは、ICE
の残基156−160(図1Bの左
下)及び残基248−258(図1Bの上部中央)に等価の基を持たない。アポ
ペインはICEの残基381に等価の位置に10−残基挿入物を含み(図1Aの
右上部)、このエキストラループは結合した阻害剤にわたり不規則な逆ターンを
形成し、結合サイトの一部を形成する幾つかの残基を与える。このループの付加
は2つの酵素により例示される2種のICE関連プロテアーゼ間の最も有意な違
いの1つである。例えば、ICEサブファミリーの全てのメンバー(ICE、I
CErel−II、ICErel−III)は一次配列アラインメントに基づくこのループを
持たないと予想される。一方、C.elegans CED−3それ自体を含め
たCED−3様サブファミリーの全てのメンバーは等価のループ(例えばICH
−1、Mch2、Mch3)を持つと予想される。従って、このループ構造の存
在は、アポペインに対する構造及びたぶん機能関連性を示す分子特徴であると考
えられる(以下参照)。
2つの酵素の4次構造は、一般的な極めて類似している。各タンパク質におい
て、2つの鎖により形成されるヘテロダイマーは構造的に同一のヘテロダイマー
と密接に結合して、2回回転対称を有する4鎖集合体を形成する。両方のタンパ
ク質にお
いて、中央のβ−シートは生じた界面を横断して延び、残基389及び392を
含む逆平行β−構造型水素結合が2つのヘテロダイマーを連結する。生じたテト
ラマー集合体は、その中心に12鎖−β−構造が通っている約50×35×25
Åのサイズを有し、分子の広く離れた部分に2つの触媒サイトを含む(図2)。
2つのテトラマーがアラインすると、等価の388α炭素が平均2.01Åだけ
異なる。ICE及びアポペインが2つの異なる結晶格子において類似の4次構造
を取るという知見から、この構造はこのファミリーの酵素の他のメンバーに共通
であり得るという考えが裏付けられる。
アポペインにおいて、ICEの場合のように、ヘテロダイマーのより大きなサ
ブユニットのC−末端は同じヘテロダイマーのより小さなサブユニットのN−末
端とかなり離れている(52Å)。例えば、図2において暗色の左p17の残基
295は明色の左p12の残基317とは52Å離れている。この距離は、アポ
ペイン前駆体中のこれらの残基を結合しているが結晶構造においては無秩序であ
る9つの残基により補うにはあまりにも長い。このため、アポペインの折り畳み
及びプロセッシングは、ICEのように、幾つかの独特の特徴を含む。両方のタ
ンパク
質に関して、2つのモデルが提案され得る28,29。第1のモデルにおいて、暗色
p17鎖(図2の左)は暗色p12鎖(図2の右)と同じ前駆体分子に由来する
。これらの残基は12Åだけ離れており、これらは9つの無秩序残基により大き
な構造再配置なしに容易に結合され得る。しかしながら、このモデルにおいては
、成熟タンパク質(図1)に見られる比較的コンパクトなヘテロダイマーは2つ
の別々に合成され折り畳まれたポリペプチド鎖に由来しなければならない。IC
E構造及びアポペイン構造の両方において、このモデルは新しい鎖端部の接近性
により裏付けられる。ICE構造において、このモデルは、図2(左)の暗色p
17鎖に相当するサブユニットのC−末端と暗色p12鎖のN−末端の間に広い
β−構造水素結合が存在するという事実によっても裏付けられる。これらの相互
作用は、p20鎖の残基29−297をp20鎖の残基317−323に結合し
、7つの水素結合を含む。しかしながら、アポペインにおいて、対応する相互作
用はそれほど広範囲に及ばない。β−構造は、各鎖(Gly293、Ile294、I
le321、Pro322)由来の2つの残基及び2つの水素結合を含むのみである。
第2モデルにおいて、図2の左側の2つの鎖である暗色p17鎖及び明色p1
2鎖は、同じp32前駆体から誘導される。このモデルは、図2の左側の比較的
コンパクトなヘテロダイマーは1つの前駆体分子から誘導されるが、プロセッシ
ング時に比較的大きなコンホメーション変化を必要とするという考えにより支持
される。アポペイン構造において、前記した変化は局部的な効果しか持たず、タ
ンパク質の全体構造に影響を持たない。アポペイン前駆体において、表面ループ
はレッド鎖のN−末端でブルーサブユニットのC−末端を結合する。前記ループ
は、残基278−283を含むβ−鎖(図2の左から4番目)の末端から残基3
27−331にわたる鎖(図2の左から5番目)の始めまで延びており、前駆体
は小さいβ−構造が残基293−294及び321−322を含む点を除いて成
熟型タンパク質と同じ3次及び4次構造を有する。このモデルの実現可能性は、
セルピンファミリーのタンパク質分解の後により大きく且つよりラジカルなコン
ホメーション変化が起こることが知られているという事実により支持される31,3 2
。ICE構造及びアポペイン構造それ自体は、いずれのモデルを厳密には除外
しない。要するに、前駆体プロセッシングに関わるサブユニット
及び特定の残基の配置は、ICE及びアポペインの両方において非常に類似して
いるが、アポペイン及びICEの前駆体の構造の詳細及びそれらのプロセッシン
グについてはより完全な研究を必要とする。
アポペインの活性サイト及びそのテトラペプチドアルデヒド阻害剤Ac−As
p−Glu−Val−Asp−CHOとの相互作用は、2つのタンパク質が全く
異なるS4サブサイトを除いて、ICE:Ac−Try−Val−Ala−As
p−CHO複合体の同族特徴に類似している。両方のタンパク質において、阻害
剤は酵素表面の溝中で結合する。P1及びP4の側鎖は、タンパク質と多くの相互
作用をなす結合溝中の著しいくぼみに含まれるのに対して、S2及びS3側鎖はタ
ンパク質の体部から離れている。両方の複合体には、阻害剤骨格と酵素の間に3
つの逆平行β−構造様水素結合、すなわちP1O−Ser339N、P2N−Arg3 41
O及びP2−O−Arg341Nが存在する(図3)。S1サブサイトはICE及
びアポペイン複合体において非常に類似している。P1のカルボニル炭素原子は
Cys285のsγに結合し、この残基の側鎖は複雑な一連のArg179、Gln28 3
及びArg341の側鎖との極性相互作用に関わって
いる。触媒活性サイトでのアポペインとICEの3次元構造の高類似性から、こ
れらのタンパク質の触媒メカニズムの詳細が保存されることが強く示唆される。
触媒作用及びS1において構造により関わる残基の全てがICE/CED−3プ
ロテアーゼファミリーのメンバー中で保存されるという事実から、これらの酵素
は共通の触媒作用メカニズム及びP1におけるAspをほぼ完全に要求すること
が示唆される。
S1中のアルギニル側鎖の2つの正電荷の局部的集中状態は、これらの酵素の
モジュレーター及び基質の負に帯電したアスパルチル側鎖により安定化される。
阻害されたアポペイン及びICEの3次元構造において認められるコンホメーシ
ョンは非阻害酵素においては不安定であり、上記した安定化は存在しない。これ
らの所見から、遊離酵素はS1中にアセテートのような対イオンまたは幾つかの
水分子を含むか、モジュレーター及び基質の結合または放出に対して有意な局部
的なコンホメーション変化があることが示唆される。
S2及びS3でのアポペイン及びICE複合体の間の違いは主に、アミノ酸配列
の違いにより生ずる。アポペインにおいて、P3グルタミル残基の側鎖はタンパ
ク質の体部から離れている
が、該側鎖により塩はArg341側鎖に連結している。このことは、このサイト
での酵素の特異性に一致している。Arg341側鎖はP1アスパルチル側鎖とも相
互に作用する(上記参照)。P2バリンの側鎖は、Tyr338側鎖上の中央にある
溝の疎水性壁に寄りかかるようにある。
S1−S3におけるアポペイン及びICEの類似性とは反対に、S4サブサイト
は全幾何学及び化学的種類の点で根本的に異なる。ICEのS4サブサイトはチ
ロシル側鎖を容易に収容する大きく且つ浅い疎水性くぼみであり、アポペインに
おける対応するサイトはP1 Asp側鎖をぴったりと包囲する狭いソケットで
ある。2つのサイトを比較すると、アポペインサイトがTrp348及びPhe380 A
の側鎖の存在により圧縮されていることが最も明瞭な違いである(図4)。更
に、ICEにおいてArg383側鎖が占める容積には、Ser381Aで始まる挿入
ペプチドが充填されている。このペプチドは、S4内のくぼみからタンパク質の
表面を越えるくぼみまで延びている。
アポペインのS4サブサイトから、この位置での酵素の特異性が理解される。
前記サイトの境界は、Trp340、Arg341、Asn342、Trp348、Ser38 1A
及びPhe381Bによ
り定められる(図4A)。阻害剤のカルボキシル基により、Phe381Bのアミド
窒素原子及びAsn342のNδ1原子との特異的な極性相互作用が生ずる。この水
素結合のネットワークは、Asn342Nδ2原子とLys344及びAsp345のアミ
ド窒素原子との相互作用により延長する。前記サイトは、サイズ及び形の点でア
スパルチル側鎖と相補的であり、カルボキシル基と相互作用する適切な幾何学で
しっかりと位置づけられている2つの水素結合ドナーを含む。Asn342の側鎖
の配向は、水素原子アクセプターであるOδ1と水素結合ドナーであるLys344
及びAsp345のアミド窒素原子との相互作用により固定される。アポペインの
S4サブサイトのサイズと形を規定する重要な役割を有する、348位置におけ
るTrp残基及び380位置における挿入された10個のアミノ酸残基は、IC
E関連プロテアーゼの公知のCEDサブファミリーに完全に保存され、このこと
からこれらの酵素はこのサブサイトにおいて類似の特異性を有することが示唆さ
れる。
アポペインの3次元構造は、通常3次及び4次構造の点でICEと類似してい
る。更に、これらの2つのタンパク質は、S1−S3サブサイトの場合と非常に類
似の方法で同族のモジ
ュレーターペプチドと相互作用する。しかしながら、これら2つの酵素間のアミ
ノ酸配列の変化及び基質特異性の違いと一致する、S4サブサイトのサイズ及び
種類の点で大きな違いがある。これらの違いは、ICE−特異的プロテアーゼの
2つのサブファミリー間の構造及び機能の違いを理解する基礎を与える。また、
上記した2つの構造の比較から、上記タンパク質に関連する病気及び生理学的機
能の研究において重要な高特異性モジュレーターの設計のための構造的基礎が与
えられる。発明の要旨
本発明は、結晶性アポペイン、X線結晶学により測定したアポペインの構造、
前記構造の、アポペイン同族体及びアポペインの他の結晶形態、突然変異体及び
アポペインの共複合体の構造の解明のための使用、並びにアポペイン構造及びそ
の同族体、突然変異体及び共複合体の、アポペインモジュレーターの設計のため
の使用に関する。
本発明は、アポペインと称される単離・精製酵素の3次元構造及びその構造座
標に関する。また、本発明は、アポペイン結晶の構造座標を、アポペインの活性
サイト及び1つ以上の補助結合サイトの原子詳細を解明するために使用すること
である。
更に、本発明は、アポペイン結晶の構造座標を、別のアポペイン結晶、またはア
ポペインの突然変異体、同族体もしくは共複合体の結晶の構造を解明するために
使用することである。更に、本発明は、野生型アポペインとは異なる性質を1つ
以上有するアポペイン突然変異体を提供することである。更に、本発明は、アポ
ペイン、またはその突然変異体、同族体または共重合体の構造座標及び原子詳細
を、アポペインの望ましくない物理的及び薬理的性質を予防及び処理するアポペ
インモジュレーターを設計し、コンピュータを用いて評価し、合成し、使用する
ことである。前記モジュレーターは、免疫、増殖性疾患及び変性疾患の治療に有
用な治療薬として使用され得、前記疾患の非限定例には、免疫不全症候群(例え
ばAIDS)、自己免疫疾患、病原性感染、心血管及び神経損傷、脱毛症、老化
、ガン、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病、神経変性疾患及
び脊髄損傷が含まれる。
更に、本発明は、アポトーシスの分野並びにアポトーシスの低下が有用である
疾患(その非限定例は上記した)の治療において研究道具とて有用な式I
Ac-DEVD-CHO
I
の化合物(L−761,191と称される)に関する。特に、本発明は、ポリ(
ADP−リボース)ポリメラーゼ、U1−70kDaの核内低分子リポ核タンパ
ク質及びDNA依存性プロテインキナーゼの触媒サブユニットの正常な生物学的
機能を不能にすることにより少なくとも部分的にアポトーシスを引き起こすチオ
ールプロテイナーゼのプロアポトーシスタンパタ質分解活性のモジュレーターに
関する。図面の簡単な説明
図1(A)は、結晶2回回転軸で観察したアポペイン:Ac−DEVD−CH
O構造の概略図である。β−構造のα−ヘリックス、コイルは矢印である。結合
阻害剤を、図の上部に短い矢印で示す。アポペイン中のエキストラループ(残基
180A、181A−I)を矢印で示す。p17鎖は暗色、p12鎖は明色であ
る。図1(B)は、(A)とのアラインメントを最大とすべく配向させたICE
:YVAD構造を示す。ICE中の2つのエキストラループを、図の下部(残部
156−160)及び左上部(残部248−253)に白い矢印で示す。p20
鎖は暗色、p10鎖は明色である。
図1(C)は、2つのタンパク質のアラインさせた3次元構
造において類似の二次構造またはコンホメーションを有する残基をマッチさせる
ことによりアラインさせたアポペイン及びICEのアミノ酸配列を示す。下部文
字は、電子密度が明らかにない残基を示す。ICEとアポペインとの比較を容易
にするために、アポペインのアミノ酸残基をこのアラインメイントにおけるIC
Eの同族残基の配列ナンバーにより同定する。アポペイン中にICE関連残基が
存在しないときにはアポペイン配列ナンバーを省略し、アポペイン特異性挿入を
ICE配列ナンバーに文字を加えることにより示す。
アポペインの産生に使用される方法は、別々に大腸菌で発現させる成分p17
及びp12サブユニットからの活性酵素の折り畳みを含む。このセクションに記
載する組換えエンジニアリングの目的のためのアミノ酸ナンバリングについては
、Gen Bank受託番号U13738の読みとり枠から決定されるアポペイ
ンプロ酵素内のアミノ酸の位置を参照されたい(イニシエーターのメチオニンは
残基1であり、ストップコドンの前の最終残基は残基402である)。各サブユ
ニットの始めと終わりは、非−組換え精製ヒトアポペインのマススペクトル分析
及びアミノ末端ミクロ配列決定により決定される19。アポペイ
ン/CEP32 p17サブユニット(Ser141−Asp297)及びp12サブ
ユニット(Ser310−His402)を、PCR鋳型修飾によりそれぞれMetS
er141−Asp297構築物及びMetSer310−His420構築物として発現さ
せるために遺伝子操作した。p17サブユニットをコードするcDNAを、完全
長CPP32β cDNA(3ng/μl)を鋳型として使用して、センス(前
進)合成オリゴヌクレオチド5’−GCT CTA GAC TCG AGT
CAT GAG TGG AAT ATC CCT GGA CAA CAG
TTA TAA AAT GG−3’(配列番号1)及びアンチセンス(逆)オ
リゴヌクレオチド5’−GCT CTA GAC TCG AGT CAT G
AT TAG TCT GTC TCA ATG CCA CAG TCC A
GT TGT G−3’(配列番号2)で増幅させた(Pwoポリメラーゼ(0
.025U/μl)Boehringer Mannheim;94℃×1分、
60℃×1分及び72℃×45秒のサイクルを25回)。p12サブユニットを
コードするcDNAを同様に増幅させたが、ただし、センス(前進)オリゴヌク
レオチドは5’−GCT CTA GAC TCG AGT CAT
GAG TGG TGT TGA TGA TGA CAT GGC GTG
TC−3’(配列番号3)とし、アンチセンス(逆)オリゴヌクレオチドは5’
−GCT CTA GAC TCG AGT CAT GAT TAG TGA
TAA AAA TAG AGT TCT TTT GTG AGC−3’(
配列番号4)とした。生じたpCR断片を精製し、Xba Iでトリムし、次い
でpBluescript II SK(+)(Stratagene)のXba
Iサイトに結合した。配列を確認した後、挿入断片をネストしたBsp HI
サイトから切り出し、pET−11d(Novagen)のNco Iサイトに
結合した。次いで、適切に配向したクローンを大腸菌BL21(DE3)pLy
sS細胞に形質転換した。産生培養用の最適増殖条件は、組換えタンパク質の発
現のために1mMIPTGを用い、M9培地を37℃で一晩誘導しながら使用し
た。(これらの条件下で、個々のサブユニットを約50mg/lで発現させた。
いずれの場合にも、タンパク質は、通常総タンパク質の99%を越えるタンパク
質が含まれる封入体分画に専ら局在化した。)大腸菌を集め、洗浄し、プロテア
ーゼ阻害剤の存在下で切断した。次いで、封入体を単離し、6Mグアニ
ジン塩酸塩において可溶化した。活性組換えアポペインを生成するために、変性
したp17サブユニット及びp12サブユニットを混合し、迅速に100mM
HEPES/KOH(pH7.5)、10%(w/v)スクロース、0.1%(
w/v)CHAPS、0.5M NaCl、10mM DTT中で100μg/
mlの濃度に希釈した。(いくつかのパイロット実験で、これらが最適の折り畳
み条件であることが確立されている。)次いで、反応物を室温で60分間インキ
ュベートした。これら条件下で、サブユニットタンパク質の幾つかは沈殿した。
100,000×gで60分間超遠心して沈殿物を除去した。この方法を用い、
折り畳み効率は約10%(活性酵素のモル数/p17サブユニットのモル数×1
00)であった。これは培養物1リッター当たり活性酵素約5mgの総収量に相
当する。続いて、活性酵素を、HiTrap Qカラム(Pharmacia)
1mlを用いるアニオン交換クロマトグラフィーにより正しく折り畳まれていな
いタンパク質から分離した。組換えアポペイン複合体のマススペクトル分析は、
該複合体がSer141−Asp297にわたる完全なp17鎖と、主としてMetS
er310−His402からなり若干のSer310−His402を含む
P12鎖混合物とからなることを示す。得られた酵素は、Ac−DEVD−CH
Oによる阻害に対するキネティックパラメータの点では天然酵素と区別できない
。
アポペイン:Ac−DEVD−CHO複合体を、懸垂蒸気拡散法により結晶化
した。タンパク質−阻害剤溶液(10mMTris−HCl pH8.5、10
mM DTT、3mMNaN3中8.7mg/ml)1.5μlを等容量のリザ
ーバー緩衝液(7%PEG−6000(w/w)、0.10Mクエン酸ナトリウ
ム pH5.0、 10mM DTT、 3mM NaN3)と混合し、室温で
インキュベートした。結晶は斜方晶空間群1222(a=69.81、b=84
.62、c=96.79Å)に属する。
2.5Åの分解能に拡大した3次元回折データを、Siemens面積検出計
及び理学RU−200回転アノードX線発生装置からのCuKα放射を用いて室
温で集めた。これらのデータをSAINTソフトウェアパッケージ36を用いて
処理した。8,929ユニーク反射の20,801観測値を5.55%のR−因
子と統合した。構造を、X−PLOR37及び阻害されたICE28の構造のPOB38
エントリー1ICEをベースと
するモデルを用い、分子置換により解明した。現在のモデルは、相互作用のモデ
ル作成39及びX−PLORを用いる細分37により構築された。モデル建築の初期
段階において、SQUASH40を用いる相細分は電子密度マップの質を大きく改
良させた。現在のモデルは、10%模擬アニーリングオミットマップ41に対して
検査し、p17鎖の残基149−295、結合阻害剤のp12鎖の残基317−
402及び25秩序水分子を含む。p17鎖のN−末端の残基141−148、
p17鎖のC−末端の296−297及びp−12鎖のN−末端の310−31
6は、たぶん無秩序のために現在の電子密度マップでは可視化されない。細分さ
れたモデルのR−因子は26.2%(Rfree=34.2%)42であり、立体化学
は合理的である(結合のr.m.s.分布=0.006Å、角度=1.3°)。
二次構造をプログラムSTRIDE43を用いてアポペイン及びICEに帰属させ
た。P1炭素原子でのCys285Sγの求核攻撃により生ずる光学中心のキラリテ
ィーを確立するために、特別の注意を払った。細分が終わったら、この原子で考
えられる配置のそれぞれに対して同等のモデルを作成し、2つのモデルを大きさ
は同じであるが手が反対のキラル制限で同時に細分した。
次いで、この原子の8.0Å内のすべての原子をそれぞれのモデルから欠失させ
、両方の切り捨てたモデルを3000K模擬アニーリング細分にかけた。次いで
、複合体のこの部分の電子密度マップを、両組の相から計算し、このサイトでの
立体化学を決定するために検査した。アポペイン:Ac−DEVD−CHO複合
体の座標及び構造要素はProtein Data Bank38に寄託されるで
あろう。
図2は、図1に示したように配向させたアポペインテトラマーの概略図である
。この図の左側のヘテロダイマーは図1と同一である。左のヘテロダイマーにお
いて、p17鎖は暗色、p12は明色である。右のヘテロダイマーでは色は逆で
ある。結合した阻害剤分子は図の左側のダイマーの上部、また右側のダイマーの
下部の短い矢印である。
図3は、結合N−アセチルテトラペプチドアルデヒド阻害剤、(A)ICE及
び(B)アポペイン間の水素結合及び他の極性相互作用を示す。
図4(A)は、アポペイン:Ac−DEVD−CHO複合体のS4サブサイト
を示す。結合阻害剤のアセチル基及びS4アスパルチル残基を、ボール−棒モデ
ルで示す。タンパク質はロ
ッドとして示す。水素結合はダッシュ付き白線で描く。図4(B)は、ICE:
YVAD複合体のS4サブサイトを示す。(A)及び(B)は2つのタンパク質
の全体的アラインメントを最大にするために配向している。
上記した参考文献は以下の通りである。
1. Ellis,R.E.,Yuan,J.Y.& Horvitz,H.R.Annu Rev Cell Biol7,
663-98(1991).
2. Miura,M.,Zhu,H.,Rotello,R.,Hartwieg,E.A.& Yuan,J.Y.
Cell75,653-660(1993).
3. Yuan,J.Y.,Shaham,S.,Ledoux,S.,Ellis,H.M.& Horvitz,H.R.
Cell75,641-652(1993).
4. Thornberry,N.A.,et al.Nature356,768-74(1992).
5. Cerretti,D.P.,et al.Science256,97−100(1992).
6. Munday,N.A.,et al.Journal Of Biological Chemistry270,
15870-15876(1995).
7. Faucheu,C.,et al.Embo Journal14,1914-1922(1995).
8. Kamens,J.,et al.Journal of Biological Chemistry270,15250-
15256(1995).
9. Kumar,S.,Kinoshita,M.,Noda,M.,Copeland,N.G.& Jenkins,
N.A.Genes & Development8,1613-1626(1994).
10. Wang,L.,Miura,M.,Bergeron,L.,Zhu,H.& Yuan,J.Y.Cell
78,739-750(1994).
11. Fernandes-Alnemri,T.,Litwack,G.& Alnemri,E.S.Jouurnal of
Biological Chemistry269,30761-30764(1994).
12. Fernandes-Alnemri,T.,Litwack,G.& Alnemri,E.S.Cancer
Researchch55,2737-2742(1995).
13. Fernandes-Alnemri,T.,et al.Cancer Research55,6045-6052
(1995).
14. Duan,H.,et al.J.Biol.Chem.in press(1996).
15. Li,P.,et al.Cell80,401-411(1995).
16. Kuida,K.,et al.Science267,2000-2003(1995).
17. Kaufmann,S.H.,Desnoyers,S.,Ottaviano,Y.,Davidson,N.E.&
Poirier,G.G.Cancer-Res53,3976-85(1993).
18. Lazebnik,Y.A.,Kaufmann,S.H.,Desnoyers,S.,Poiricr,G.G.&
Earnshaw,W.C.Nature371,346-347(1994).
19. Nicholson,D.W.,et al.Nature376,37-43(1995).
20. Tcwari,M.,et al.Cell81,801-9(1995).
21. Casciola-Rosen,L.A.,Miller,D.K.,Anhalt,G.J.& Rosen,A.
Journal Of Biological Chemistry269,30757-30760(1994).
22. Casciola-Rosen,L.A.,Anhalt,G.J.& Rosen,A.J.Exp.Med.
182,1625-1634(1995).
23. Casciola-Rosen,L.A.,et al.J.Exp.Med.in press(1996).
24. Martin,S.J.,et al.J-Biol-Chem270,6425-8(1995).
25. Lazebnik,Y.A.,et al.Proceedings Of the National Academy Of
Sciences Of the United States Of America92,9042-9046(1995).
26. Brancolini,C.,Benedetti,M.& Schneider,C.Embo Journal14,
5179-5190(1995).
27. Emoto,Y.,et al.EMBO J.14,6148-6156(1995).
28. Wilson,K.P.,et al.Nature370,270-275(1994).
29. Walker,N.P.C.,et al.Cell78,343-352(1994).
30. Thornberry,N.A.,Miller,D.K.& Nicholson,D.W.Perspectives
in Drug Discovery and Design2,389-399(1995).
31. Engh,R.A.,Wright,H.T.& Huber,R.Protein-Eng3,469-77
(1990).
32. Stein,P.& Chothia,C.J-Mol-Biol221,615-21(1991).
33. Frankfater,A.& Kuppy,T.Biochemistry20,5517-24(1981).
34. Mackenzie,N.E.,Grant,S.K.,Scott,A.I.& Malthouse,J.P.
Biochemistry25,2293-8(1986).
35. Menard,R.,et al.Biochemistry30,8924-8(1991).
36. SAINT Software Reference Manual(Siemens Analytical
Instrnments,Madison,Wisconsin,1995).
Crystallography and NMR(Yale University Press,New Haven &
London,1992).
38. Abola,E.E.,Bernstein,F.C.,Bryant,S.H.,Koetzle,T.F.&
Weng,J.in Crystallographic Databases-Information Content,Software
Systems,Scientific Applications(eds.Allen,F.H,Bergerhoff,G.&
Sievers,R.)107-132(Data Commission of the International Union of
Crystallography,Bonn/Cambridge/Chester,1987).
39. Sack,J.S.J.Mol.Graphics6,224-225(1988).
40. Zhang,K.Y.J.Acta Crystallographica Section D Biological
Crystallography49,213-222(1993).
858(1992).
43. Frishman,D.& Argos,P.Proteins-Structure Function and
Genetics23,566-579(1995).発明の詳細な説明
本発明は、アポペインと称される単離・精製酵素の3次元構造及びその構造座
標に関する。本発明はまた、アポペイン結晶の構造座標を、アポペインの活性サ
イト及び1つ以上の補助結合サイトの原子詳細を解明するために使用することで
ある。更に、本発明は、アポペイン結晶の構造座標を、別のアポペイン結晶、ま
たはアポペインの突然変異体、同族体もしくは共複合体の結晶の構造を解明する
ために使用することである。更に、本発明は、野生型アポペインとは異なる性質
を1つ以上有する
ことを特徴とするアポペイン突然変異体を提供することである。更に、本発明は
、アポペイン、またはその突然変異体、同族体または共重合体の構造座標及び原
子詳細を、アポペインの望ましくない物理的及び薬理的性質を予防及び治療する
アポペインモジュレーターを設計し、コンピュータを用いて評価し、合成し、使
用することである。前記モジュレーターは、免疫、増殖性疾患及び変性疾患の治
療に有用な治療薬として使用され得、前記疾患の非限定例には、免疫不全症候群
(例えばAIDS)、自己免疫疾患、病原性感染、心血管及び神経損傷、脱毛症
、ガン、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病、神経変性疾患及
び脊髄損傷が含まれる。
更に、本発明は、アポトーシスの分野並びにアポトーシスの低下が有用である
疾患(その非限定例は上記した)の治療において研究道具とて有用な式I
Ac-DEVD-CHO
I
の化合物(L−761,191と称される)に関する。特に、本発明は、ポリ(
ADP−リボース)ポリメラーゼの正常な生物学的機能を不能にすることにより
少なくとも部分的にアポト
ーシスを引き起こすチオールプロテイナーゼのプロアポトーシスタンパク質分解
活性のモジュレーターに関する。
アポトーシスは、正常な形態形成、組織改造作用及び病原性感染または他の修
復不可能な細胞損傷に対する応答の間の生体における細胞自殺の組織的手段を構
成する。不適切なアポトーシスは、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチ
ントン病、免疫不全、自己免疫疾患、虚血性心血管及び神経損傷、脱毛症、白血
病、リンパ腫及び他のガンなどのヒトの病気の病因となり得るので、アポトーシ
スを管理することは治療に対する重要な潜在的標的となる。
アポトーシス細胞死に関与する幾つかの生化学的事象が最近明らかとされた。
例えば、線虫における遺伝的証拠が、アポトーシスの正及び負の調節物質を同定
した。重要なプロアポトーシス遺伝子のced−3は想定システインプロテアー
ゼをコードする。前記システインプロテアーゼは、S1サブサイトにおいてアス
パラギン酸に対してほぼ完全な特異性の特徴を有する新しいシステインプロテア
ーゼファミリーのうち最初に同定された酵素である哺乳動物インターロイキン−
1β変換酵素(ICE)6に関連する。ced−3遺伝子の欠失または突然
変異は、各種宿主細胞にトランスフェクトしたとき、さもなければ死に至るすべ
ての細胞のアポトーシス死並びにCED−3及びICEによるアポトーシスを完
全に予防した。更に、CED−3のプロアポトーシス効果は、線虫死抑制遺伝子
ced−9を一緒にトランスフェクトすることにより、ある程度はその哺乳動物
プロオンコジーンbcl−2により予防され得る。従って、真核細胞の死は、I
CE/CED−3様プロテアーゼの反対プロアポトーシス効果とBcl−2及び
/またはその同族体を含む上流調節機構との間のバランスにあり得る。
アポトーシスの間のICE/CED−3様プロテアーゼに対する可能性ある基
質の1つが、DNA修復、ゲノムサーベイランス及び完全性における主要酵素で
あるポリ(ADP−リボース)ポリメラーゼ(PARP)である。PARPは、
ICEの性質と類似の性質を有する未同定のプロテアーゼによりアポトーシスの
開始時にタンパク質分解的に開裂される。PARP(DEVD216−G217)内の
開裂サイトは、ICEにより認識され、開裂されるプロIL−1β(FEAD27
−G28)における2つのサイトのひとつに似ている。このサイトでPARPがタ
ンパク質分解的に開裂すると、自己修飾からPARPのア
ミノ末端における2つの亜鉛フィンガーDNA結合モチーフ及びポリペプチドの
カルボキシ末端に位置するポリ(ADP−リボース)イレーテイング触媒ドメイ
ンが分離する。この開裂により、PARPの触媒ドメインがDNA損傷のサイト
に補充されるのが妨げられ、その後の修復及びゲノム維持事象を調節するPAR
Pの能力が不能になるであろう。更に、アポトーシスの特徴であるヌクレオソー
ム内DNA開裂に関わるCa2+/Mg2+−依存エンドヌクレアーゼは、ポリ(A
DP−リボース)イレーション20-22により負に調節される。従って、正常なP
ARP機能が損失すると、このヌクレアーゼが死にかけている細胞において高度
に活性化される。アポペインに対する他の基質は、(二本鎖DNA切断修復及び
V(D)J組換えのために必須である)DNA依存タンパタ質キナーゼの460
kDa触媒サブユニット及び(プレ−mRNAスプライシングのために必要であ
る)U1核内低分子リボ核タンパク質の70kDaタンパク質成分を含む。これ
ら全ての基質における開裂サイトは、ICEに対する好ましい認識モチーフ(T
yr−X−X−Asp)とは明らかに異なるAsp−X−X−Aspモチーフに
あり、いずれの場合にも標的ポリペプチド中の重要な機能ド
メインが物理的に分離される。よって、重要なホメオスタシス過程の協同不能は
、アポトーシス細胞死の基本原理及び細胞死中のアポペインの重要な役割にある
と考えられる。
ヒト起源とするシステインプロテアーゼのICE/CED−3ファミリーとし
て、ICE、ICErel−II、ICErel−III、ICH−1、CPP32、Mc
h2及びMch3の7種が公知である。それぞれ、宿主細胞にトランスフェクト
されるとアポトーシス応答を開始し得る。しかしながら、プロテアーゼが過剰発
現すると、非特異的に細胞死が引き起こされ得る。他のプロテアーゼ、例えばト
リプシン、キモトリプシン、プロテイナーゼKまたはグランジムBの細胞質発現
によってアポトーシスが引き起こされることも示されている27,28。
今回の研究で、本発明者らは、CPP32の活性形態であるアポペインが、ア
ポトーシスの開始時に起こるPARPの特異的タンパク質分解に関与する酵素で
あることを立証する。更に、本発明者らは、アポペイン仲介PARP開裂を抑制
するとインビトロでアポトーシスが減ずることから、このプロテアーゼが哺乳細
胞のアポトーシスにおいて果たす中心的な役割であることを立証する。
線虫C.elegansにおいて、1つの遺伝子ced−3が欠失または突然
変異するとアポトーシス死がなくなった。配列決定したところ、ced−3は、
1つの公知の機能が不活性31kDa proIL−1βサイトカイン前駆体の
活性17kDa形態への開裂であるプロテアーゼをコードする哺乳動物インター
ロイキン−1β変換酵素(ICE)の遺伝子と相同であることが判明した。哺乳
動物細胞におけるICE様プロテアーゼのアポトーシス機能の説明は、ICEの
IL−1β形成への参加及びアポートーシスが通常ICE欠乏マウスにおいて生
ずるという知見を考慮して、4つの他の哺乳動物ICE/CED−3様プロテア
ーゼ(ICE、ICErel−II、ICErel−III、ICH−1、CPP32、M
ch2及びMch3)23-26の発見並びにゲノム構造及び一体性の調整における
重要な酵素であるポリ(ADP−リボース)ポリメラーゼ(PARP)はアポト
ーシスの開始時にプロテアーゼ類似ICE(prICE)により機能的に不活化
されるという観察とともにより明白となる。本発明者らは、実際prICEはア
ポペイン/CPP32であり、アポペイン/CPP32は哺乳動物細胞において
アポトーシスの開始時にPARP及び他の基質を開裂する特異的な
ICE/CED−3様システインプロテアーゼであることを立証した。哺乳動物
細胞死においてアポペイン/CPP32が果たす中心的役割は、インビトロでア
ポトーシスが起こるのを防ぐ強力且つ選択的なモジュレーターにより更に立証さ
れる。これらの知見とアポペインプロ酵素、CPP32及びCED−3間の配列
の関係とから、CPP32とそのタンパク質分解的に活性な形態のアポペインは
CED−3のヒト等価物であり得ることが示唆される。従って、アポペイン活性
の薬理学的調節は、不適切なアポトーシスが顕著な病的状態における治療方法の
ための適切なポイントであり得る。
クローン化したアポペインcDNAを、適当なプロモーター及び他の適切な転
写調節要素を含む発現ベクターに分子クローニングすることにより組換え的に発
現し得、原核もしくは真核宿主細胞に移入すると、組換えアポペインが産生され
得る。
本明細書において、発現ベクターは、遺伝子のクローン化コピーの転写及びそ
のmRNAの適切な宿主での翻訳に必要なDNA配列と定義される。前記ベクタ
ーを使用して、細菌、酵母、ラン藻、植物細胞、昆虫細胞及び動物細胞のような
各種宿主において真核遺伝子を発現させることができる。
特別に設計されたベクターを使用すると、細菌−酵母または細菌−動物細胞の
ような宿主間でDNAをシャトルすることができる。適切に構築された発現ベク
ターは、宿主細胞における自律複製のための複製起源、選択マーカー、特定数の
有用な制限酵素サイト、高コピー数のためのポテンシャル及び活性プロモーター
を含み得る。プロモーターは、RNAポリメラーゼをDNAに結合せしめ、RN
A合成を開始するDNA配列と定義される。mRNA合成を高頻度で開始させる
プロモーターが強力なプロモーターである。発現ベクターには、非限定的に、ク
ローニングベクター、修飾クローニングベクター、特別に設計されたプラスミド
またはウイルスが含まれ得る。
各種の哺乳動物発現ベクターを使用して、哺乳動物細胞において組換えアポペ
インを発現させることができる。組換えアポペインの発現に適した市販の哺乳動
物発現ベクターには、非限定的に、pMC1neo(Stratagene)、
pXT1(Stratagene)、pSG5(Stratagene)、EB
O−pSV2−neo(ATCC 37593)、pBPV−1(8−2)(A
TCC 37110)、pdBPV−MMTneo(342−12)(ATCC
37224)、
PRSVgPt(ATCC 37199)、pRSVneo(ATCC 371
98)、psV2−dhfr(ATCC 37146)、pUCTag(ATC
C 37460)及びIZD35(ATCC 37565)が含まれ得る。
アポペインをコードするDNAは、組換え宿主細胞に発現させるために発現ベ
クターにクローン化され得る。組換え宿主細胞は原核もしくは真核細胞であり得
、これらの細胞には、非限定的に、細菌、酵母、哺乳動物細胞及び昆虫細胞が含
まれる。適当であり、市販されている哺乳動物種を起源とする細胞系には、非限
定的に、CV−1(ATCC CCL 70)、COS−1(ATCC CRL
1650)、COS−7(ATCCCRL 1651)、CHO−K1(AT
CC CCL 61)、3T3(ATCC CCL 92)、NIH/3T3(
ATCC CRL 1658)、HeLa(ATCC CCL 2)、C127
I(ATCC CRL 1616)、BS−C−1(ATCC CCL 26)
及びMRC−5(ATCC CCL 171)が含まれる。
発現ベクターは任意の方法を用いて宿主細胞に導入され得るが、前記方法には
、非限定的に、形質転換、トランスフェクシ
ョン、感染、プロトプラスト融合及びエレクトロポレーションが含まれる。発現
ベクター含有細胞はクローン的に増殖し、個々のクローンがアポペインタンパク
質を産生するかどうか調べるために分析にかけられる。アポペイン発現宿主細胞
クローンは幾つかの手段により同定され得るが、前記手段には、非限定的に、抗
−アポペイン抗体との免疫学的反応性、宿主細胞結合アポペイン活性の存在が含
まれる。
アポペインcDNAの発現は、インビトロで産生される合成mRNAを用いて
実施され得る。合成mRNAは、各種の無細胞系で効率的に翻訳され得るが、前
記無細胞系には、非限定的に、コムギ胚芽抽出物及び網状赤血球抽出物が含まれ
る。或いは、合成mRNAは、細胞を含む系で効率的に翻訳され、非限定的に、
例えばカエル卵母細胞にミクロ注入される。
最適レベルの酵素活性及び/またはアポペインタンパク質を生ずるアポペイン
cDNA配列を決定するために、修飾アポペインcDNA分子を構築する。宿主
細胞をcDNA分子を用いて形質転換し、アポペインRNAおよびタンパク質の
レベルを測定する。
宿主細胞中のアポペインタンパク質のレベルを、イムノアフ
ィニティー法及び/またはリガンドアフィニティー法のような各種方法を用いて
定量化する。35S−メチオニン標識もしくは非標識のアポペインタンパク質を単
離するために、アポペイン特異的アフィニティービーズまたはアポペイン特異的
抗体を使用する。標識アポペインタンパク質を、SDS−PAGEにより分析す
る。非標識アポペインタンパク質を、アポペイン特異的抗体を使用するウェスタ
ンブロッティング、ELISAまたはRIAにより検出する。
アポペインを組換え宿主細胞において発現させた後、アポペインタンパク質を
回収して、活性形態のアポペインを得ることができる。幾つかのアポペイン精製
方法が利用され得、使用に適している。組換えアポペインは、当業界で公知の分
画またはクロマトグラフィーを各種組み合わせて、または個別に適用することに
より細胞ライゼートまたは条件培地から精製され得る。
更に、組換えアポペインは、完全長新生アポペインまたはアポペインのポリペ
プチド断片に対して特異的なモノクローナルまたはポリクローナル抗体を用いて
調製されるイムノアフィニティーカラムを用いて他の細胞タンパク質から分離さ
れ得る。
組換えタンパク質は、抗体を作成するために使用され得る。
本明細書において用語「抗体」は、ポリクローナル及びモノクローナル抗体、並
びにその断片、例えば抗原またはハプテンに結合し得るFv断片、Fab断片及
びF(ab)2断片が含まれ得る。
アポペインに対する単一特異性抗体は、アポペインに対して反応性の抗体を含
有する哺乳動物抗血清から精製されるか、または標準的な方法を用いてアポペイ
ンと反応性のモノクローナル抗体として産生される。本明細書において単一特異
性抗体は、単一の抗体種またはアポペインに対して均質な結合特性を有する複数
の抗体種と定義される。本明細書において均質な結合は、上記したアポペインと
結合するような特定の抗原またはエピトープに結合する抗体種の能力を指す。酵
素特異的抗体は、動物、例えばマウス、ラット、モルモツト、家兎、ヤギ、ウマ
等(家兎が好ましい)に対して、適切濃度のアポペインを適宜免疫アジュバント
と一緒に用いて免疫感作することにより作成される。
アポペインと反応性のモノクローナル抗体(mAb)は、同系繁殖させたマウ
スをアポペインを用いて免疫感作するような慣用の方法により作成され得る。マ
ウスに対して、許容され得るアジュバント(フロイント完全アジュバントが好ま
しい)を
等容量加えた緩衝液または食塩液約0.5ml中アポペイン約0.1〜約10m
g、好ましくは約1mgで免疫感作する。0日目にマウスに対して最初の免疫感
作を行い、約3〜約30週間休ませる。免疫感作したマウスに、リン酸緩衝液(
PBS)のような緩衝液中アポペイン約0.1〜約10mgによるブースター免
疫感作を静脈注射(IV)経路により1回もしくはそれ以上施す。抗体陽性マウ
ス由来のリンパ球を、免疫感作マウスから脾臓を当業界で公知の標準的な方法に
より取り出して得る。ハイブリドーマ細胞は、脾臓リンパ球を適切な融合パート
ナーと安定なハイブリドーマを形成し得る条件下で混合して産生される。融合ハ
イブリドーマ細胞を、当業界で公知の方法によりヒポキサンチン、チミジン及び
アミノプテリン補充ダルベッコ変更イーグル培地(DMEM)において増殖させ
ることにより選択する。上清流体を、約14、18及び21日目に増殖陽性ウェ
ルから集め、抗原としてアポペインを用いる固相イムノラジオアッセイ(SPI
RA)のようなイムノアッセイにより抗体産生についてスクリーニングする。培
養液をオクタロニー沈降アッセイでテストして、mAbのアイソタイプを調べた
。抗体陽性ウェルからのハイブリドーマ細胞を、Kruse及び
Paterson編、Academic Press発行(1973)、Tis
sue Culture Methods and Applications
、Soft Agar Techniques中、MacPhersonの軟寒
天法のような方法によりクローン化する。
抗−アポペインのインビトロ産生は、約2%の胎仔ウシ血清を含むDMEM中
でハイブリドーマを増殖させることにより実施され、十分量の特異的mAbが得
られる。このmAbは当業界で公知の方法により精製される。
腹水またはハイブリドーマ培養液の抗体タイターを、各種血清学的または免疫
学的アッセイにより測定するが、前記アッセイには、非限定的に、沈降、受身凝
集反応、固相酵素免疫測定法(ELISA)及びラジオイムノアッセイ(RIA
)法が含まれる。類似のアッセイが、体液または組織、及び細胞培養物中のアポ
ペインの存在を検出するために使用される。
上記したような方法は、単一特異性抗体を産生するために使用され得、または
アポペインポリペプチド断片または完全長新生アポペインポリペプチドに特異的
な抗体を産生するために使用することができる。
アポペイン抗体アフィニテイーカラムは、抗体がアガロースケルビーズ支持体
と共有結合を形成するようにN−ヒドロキシスクシンイミドエステルで前活性化
させたケル支持体、例えばAffigel−10(Biorad)に抗体を添加
することにより調製される。次いで、抗体をスペーサーアームを有するアミド結
合を介してゲルに結合させた後、残りの活性化エステルをエタノールアミンHC
l(pH8)を用いてクエンチする。カラムを水、0.23M グリシンHCl
(pH2.6)で順次洗浄して、非結合抗体または無関係のタンパク質を除去す
る。次いで、カラムをリン酸緩衝食塩液(pH7.3)で平衡化し、カラムにア
ポペインまたはアポペイン分画を含有する細胞培養上清または細胞抽出物をゆっ
くりと流す。その後、カラムを洗浄し、タンパク質を溶離させる。次いで、精製
アポペインタンパク質をリン酸緩衝食塩液に対して透析する。
アポペインcDNA、アポペインに対する抗体またはアポペインタンパク質を
含有するキットを作成することができる。前記キットは、アポペインDNAにハ
イブリダイズするDNAを検出するために、またはサンプル中のアポペインタン
パク質またはペプチド断片の存在を検出するために使用される。前記特
徴は各種目的に有用であるが、この目的には、非限定的に、法的分析または疫学
研究が含まれる。
本発明のDNA分子、RNA分子、組換えタンパク質及び抗体は、アポペイン
DNA、アポペインRNAまたはアポペインタンパク質のレベルをスクリーニン
グし、測定するために使用され得る。組換えタンパク質、DNA分子、RNA分
子及び抗体は、アポペインを検出及びタイプ分けするのに適当なキットを作成す
るのに有用である。前記キットは、少なくとも1つの容器を閉じこめた状態で保
持するのに適した区画化キャリアーを含む。更に、前記キャリアーはアポペイン
を検出するために適した組換えアポペインタンパク質または抗ーアポペイン抗体
のような試薬を含む、キャリアーは、標識抗原または酵素基質等のような検出手
段を含み得る。
アポペインをコードするcDNA配列に相補的なヌクレオチド配列を、アンチ
センス治療のために合成することができる。前記したアンチセンス分子は、DN
A、DNAの安定誘導体(例えば、ホスホロチオエートまたはメチルホスホネー
ト)、RNA、RNAの安定誘導体(例えば、2’−O−アルキルRNA)、ま
たは他のアポペインアンチセンスオリゴヌクレオチド模造物
であり得る。アポペインアンチセンス分子は、ミクロ注入、リポソームカプセル
化、またはアンチセンス配列を有するベクターからの発現により細胞に導入され
得る。アポペインアンチセンス治療は、アポペイン活性を減らすことが有効な病
気の治療に対して特に有用である。
アポペイン遺伝子治療は、標的臓器の細胞にアポペインを導入するために使用
され得る。アポペイン遺伝子は、受容体宿主細胞の感染によりアポペインDNA
の移入を仲介するウイルスベクターに結合され得る。適当なウイルスベクターに
は、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、肝炎ウイルス、ワ
クシニアウイルス、ポリオウイルス等が含まれる。或いは、アポペインDNAは
、リガンド−DNA結合体またはアデノウイルス−リガンド−DNA結合体を用
いる受容体仲介標的DNA転移、リポフェクション膜融合または直接ミクロ注入
を含めた非ウイルス方法により遺伝子治療用細胞に導入することができる。これ
らの方法及びその変法は、生体内及び生体外アポペイン遺伝子治療に適している
。アポペイン遺伝子治療は、アポペイン活性を高めることが有効な疾患の治療の
ために特に有用であり得る。
アポペインDNAまたはアポペインタンパク質を含む医薬的に有用な組成物は
、本明細書に記載されているようにして、または医薬的に許容され得る担体と混
合するような公知の方法に従って調製され得る。前記担体及び調製方法の例は、
Remington’s Pharmaceutical Sciencesに
記載されている。効果的に投与するために適した医薬的に許容され得る組成物を
作成するために、前記組成物は、有効量のタンパク質またはDNAを含む。
本発明の治療または診断用組成物は、アポペイン関連疾患を治療または診断す
るのに十分な量個体に投与される。有効量は、個体の状態、体重、性別及び年齢
のような各種因子により異なり得る。他の因子には、投与モードが含まれる。
医薬組成物は、皮下、局所、経口及び筋肉内のような各種経路により個体に投
与され得る。
特定のアミノ酸をコードする各種コドン中に多量の重複部分が存在することは
公知である。従って、本発明は、同一のアミノ酸の偶発的翻訳をコードする別の
コドンを含むDNA配列にも関する。本明細書では、1つ以上の置換コドンを有
する配列は縮重変異体と定義される。また、発現タンパク質の最終的物
性を実質的に変更しない、DNA配列または翻訳されたタンパク質の突然変異も
本発明に包含される。例えば、ロイシンをバリンに、リシンをアルギニンに、ま
たはグルタミンをアスパラギンに置換してもポリペプチドの機能性に変化は生じ
ないことがあり得る。
ペプチドをコードするDNA配列が、天然に存在するペプチドの性質とは異な
る性質を有するペプチドをコードするために変更され得ることは公知である。D
NA配列を変更する方法には、非限定的に、位置指定突然変異誘発が含まれる。
変更される性質の例には、非限定的に、基質に対する酵素のアフィニティーの変
化が含まれる。
本明細書において、アポペインの「機能的誘導体」は、アポペインの生物学的
活性と実質的に類似の生物学的活性(機能的または構造的)を有する化合物であ
る。用語「機能誘導体」は、アポペインの「断片」、「変異体」、「縮重変異体
」、「アナログ」、「相同体」または「化学的誘導体」を含むと意図される。用
語「断片」は、アポペインのポリペプチドサブセットを指す。用語「変異体」は
、構造及び機能の点で全アポペイン分子またはその断片と実質的に類似している
分子を指す。両方の
分子が実質的に類似の構造または両方の分子が類似の生物学的活性を有している
ならば、分子はアポペインに「実質的に類似」している。従って、2つの分子が
実質的に類似の活性を有している場合、たとえ1方の分子の構造が他方の分子に
見られなくとも、また2つのアミノ酸配列が同一でなくとも、両分子は変異体で
あると見做される。
用語「アナログ」は、機能の点で全アポペイン分子またはその断片と実質的に
類似している分子を指す。
用語「化学的誘導体」は、通常基本分子の一部ではない化学的部分を追加的に
含む分子を指す。前記部分により、基本分子の溶解性、半減期、吸収等が改善さ
れ得る。また、前記部分は、基本分子の望ましくない副作用を減らしたり、基本
分子の毒性を減ずることができる。前記部分の例は、いろいろな本、例えばRe
mington’s Pharmaceutical Sciencesに記載
されている。
本発明は、アポペインをコードするDNAまたはRNAの発現またはアポペイ
ンタンパク質の機能をインビボで調節する化合物をスクリーニングする方法にも
関する。これらの活性を調節する化合物は、DNA、RNA、ペプチド、タンパ
ク質、非
タンパク質有機物質であり得る。化合物は、アポペインをコードするDNAまた
はRNAの発現或いはアポペインタンパク質の機能を上昇もしくは減少すること
により調節し得る。アポペインをコードするDNAまたはRNAの発現或いはア
ポペインタンパク質の機能を調節する化合物は、各種アッセイで検出し得る。前
記アッセイは、発現または機能の変化があるかどうか調べるための単純な「イエ
ス/ノー」アッセイであり得る。このアッセイは、試験サンプルの発現または機
能を標準サンプル中の発現または機能のレベルと比較することにより定量的に行
い得る。
更に、本発明は、式Iの化合物(L−761,191)またはその医薬的に許
容され得る塩を包含する。
Ac-DEVD-CHO
I
本発明の医薬組成物は、活性成分として式Iの化合物またはその医薬的に許容
され得る塩を含み、医薬的に許容され得る担体及び任意に他の治療用成分を含み
得る。用語「医薬的に許容され得る塩」は、無機及び有機塩基を含めた医薬的に
許容され得る非毒性塩基から製造される塩を指す。無機塩基から誘導される塩に
は、アルミニウム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩、銅塩、第1鉄塩、第2鉄
塩、リチウム塩、マグネシウム塩、第1マンガン塩、第2マンガン塩、カリウム
塩、ナトリウム塩、亜鉛塩等が含まれる。特に好ましくは、カルシウム塩、マグ
ネシウム塩、カリウム塩及びナトリウム塩である。医薬的に許容
され得る有機の非毒性塩基から誘導される塩には、第1級、第2級及び第3級ア
ミン、天然に存在する置換アミンを含めた置換アミン、環状アミン、及び塩基性
イオン交換樹脂(例えば、アルギニン、ベタイン、カフェイン、コリン、N,N
’−ジベンジルエチレンジアミン、ジエチルアミン、2−ジエチルアミノエタノ
ール、2−ジメチルアミノエタノール、エタノールアミン、エチレンジアミン、
N−エチル−モルホリン、N−エチルピペリジン、グルカミン、グルコサミン、
ヒスチジン、ヒドラバミン、イソプロピルアミン、リシン、メチルグルカミン、
モルホリン、ピペラジン、ピペリジン、ポリアミン樹脂、プロカイン、プリン、
テオブロミン、トリエチルアミン、トリメチルアミン、トリプロピルアミン、ト
ロメタミン等)の塩が含まれる。
本発明の化合物が塩基性の場合には、塩は無機及び有機酸を含めた医薬的に許
容され得る非毒性酸から製造される。前記酸には、酢酸、ベンゼンスルホン酸、
安息香酸、ショウノウスルホン酸、クエン酸、エタンスルホン酸、フマル酸、グ
ルコン酸、グルタミン酸、臭化水素酸、塩酸、イセチオン酸、乳酸、マレイン酸
、リンゴ酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、粘液酸、
硝酸、パモ酸、パントテン酸、リン酸、コハク酸、硫酸、酒石酸、p−トルエン
スルホン酸等が含まれる。特に好ましくは、クエン酸、臭化水素酸、塩酸、マレ
イン酸、リン酸、硫酸及び酒石酸である。
以下の治療方法の記載において式Iの化合物を言及するとき、該化合物には医
薬的に許容され得る塩も包含されるものと理解されたい。
式Iの化合物のアポペインの作用を抑制する能力により、該化合物はアポトー
シスの分野での有用な研究ツールとなる。前記化合物は、哺乳動物、特にヒトに
おいて病気を治療、予防及び改善するために使用される。前記病気には、非限定
的に、1.免疫不全症候群(AIDESを含む)、2.I型糖尿病、3.病原性
感染、4.心血管及び神経損傷、5.脱毛症、6.老化、7.パーキンソン病、
8.アルツハイマー病が含まれる。用量範囲
式Iの化合物の治療用量は、治療を受ける状態の重篤度、並びに式VIの特定
化合物及びその投与経路により変わり、臨床医の判断によっても変わる。また、
治療用量は、各患者の年齢、体重及び反応によっても異なる。従って、活性成分
の有効用量
は、全ての基準を考慮し、患者の利益が最良になるように判断して臨床医によっ
て決定され得る。
許容され得る眼科用処方物中の式Iの化合物0.001〜1重量%溶液または
懸濁液からなる点眼用製剤を使用することができる。医薬組成物
有効量の本発明の化合物を哺乳動物、特にヒトに投与するために、適当な投与
経路が使用され得る。例えば、経口、非経口及び局所経路が使用され得る。投与
形態には、錠剤、トローチ剤、分散剤、懸濁剤、溶液剤、カプセル剤、クリーム
剤、軟膏、エアゾール等が含まれる。
本発明の医薬組成物は、式Iの化合物またはその医薬的に許容され得る塩を活
性成分として含み、医薬的に許容され得る担体及び任意に他の治療成分をも含み
得る。用語「医薬的に許容され得る塩」は、無機の酸もしくは塩基及び有機の酸
もしくは塩基を含めた医薬的に許容され得る非毒性の酸もしくは塩基から製造さ
れる塩を指す。
本発明の組成物には、経口、非経口及び眼投与に適した組成物が含まれる。こ
れらの組成物は、単位投与形態で提供され、
薬剤業界で十分に公知の方法により製造されるのが好都合である。
実際の使用において、活性成分としての式Iの化合物は、慣用の医薬コンパウ
ンディング方法に従って均質混合物の形態で医薬用担体と混合される。担体は、
所望される投与製剤の形態によって各種形態をとり得る。経口投与の形態の組成
物を製造するには、通常の医薬媒体、例えば懸濁剤、エリキシールや溶液剤のよ
うな経口液体製剤の場合には例えば水、アルコール、油、芳香剤、保存剤、着色
剤等;散剤、カプセル剤及び錠剤のように経口固体製剤の場合にはスターチ、糖
、微晶質セルロース、希釈剤、顆粒化剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤等の担体が使
用され得る。固体の経口製剤が液体製剤に比べて好ましい。投与が容易であるこ
とから、散剤及びカプセル剤が医薬用担体を必ず使用する最も有利な単位経口投
与形態である。所望ならば、錠剤に標準的な水性または非水性方法でコーティン
グを施してもよい。
本発明の経口投与に適した医薬組成物は、各々が所定量の活性成分を含むカプ
セル剤、カシェ剤または錠剤のようなディスクリート単位として、散剤または顆
粒剤として、或いは水性液
体、非水性液体、水中油型乳濁液もしくは油中水型油乳液中の溶液剤または懸濁
剤として提供され得る。前記組成物は、任意の調剤方法により製造され得るが、
いずれの方法も活性成分を1つ以上の必要成分からなる担体と接触させるステッ
プを含む。一般に、前記組成物は、活性成分を液体担体及び/または微細な固体
担体と均一かつ均質に混合し、次いで所要により生成物を所望の形態に成形して
製造される。例えば、錠剤は、任意に1つ以上の補助成分と共に圧縮または成形
して製造され得る。圧縮錠剤は、適当な機械中で、粉末または顆粒のような自由
流動性の形態の活性成分を場合により結合剤、滑沢剤、不活性希釈剤、表面活性
剤または分散剤と混合してから圧縮して製造され得る。すりこみ錠剤は、適当な
機械中で、不活性液体希釈剤で湿らせた粉末化化合物の混合物を成形して製造さ
れ得る。望ましくは、各錠剤は約1mg〜約500mgの活性成分を含み、各カ
シェ剤またはカプセル剤は約1mg〜約500mgの活性成分を含む。
本発明の化合物は、当業界で公知の方法を用いて製造するのが好都合である。ポリ(ADP−リボース)ポリメラーゼのタンパク質分解開裂は次のようにして 測定され得る。
(a) 35 S−放射性標識PARPの調製
ヒトポリ(ADP−リボース)ポリメラーゼをコードするcDNA(クローン
pCD−12;GeneBank受託番号M32721;NCBI gi 19
0266)をそのクローニングベクターからXho I制限酵素消化により切出
し、次いでXho I−切断、CIP−処理pBluescript II SK
+(Stratagene)に結合させた。コンピテント大腸菌細胞に形質転換
し、コロニー精製し、生じた形質転換細胞を液体培養物中で増殖させた後、プラ
スミドDNAを精製し、PARP cDNAの配向を制限酵素分析により調べた
。T7方向及びT3方向で配向させたクローンを得、そのプラスミドDNAを使
用して、[35S]メチオニン(New England Nuclear)の存
在下でTnT網状赤血球ライゼート(Promega)を用いる共役インビトロ
転写/翻訳により[35S]PARPを合成した。生じた[35S]PARPポリペ
プチドを、予め10mM Hepes/KOH(pH7.4)、2mM EDT
A、0.1% CHAPS、
5mM ジチオトレイトールで平衡化したSuperdex−75 HR 10
/30カラム(Pharmacie)を用いるゲル濾過クロマトグラフィーによ
り精製し、網状赤血球ライゼートの諸成分を取り除いた。
(b)PARP開裂の測定
インキュベーション混合物(最終容量25μl)は10mM Hepes/K
OH(pH7.4)、2mM EDTA、0.1%CHAPS、5mM ジチオ
トレイトールからなる緩衝液中で調製し、精製[35S]PARP 5μl、PA
RP開裂活性(例えば、アポトーシス性骨肉腫、THP−1または他の細胞由来
の分画、または精製アポペインまたは組換えアポペイン)0〜10μl及び薬物
(指示されている場合)またはベヒクルを含んでいた。混合物を37℃で60分
間インキュベート後、5倍濃縮したSDS含有PAGEサンプル緩衝液6.5μ
lを添加して停止し、95℃で5分間変性させた。サンプルを10%ポリアクリ
ルアミドゲルで分離し、エレクトロブロッティングによりポリ(ビニリデンジフ
ルオライド)膜に移した後、[35S]PARP開裂産物をオートラジオグラフィ
ーにより可視化した。PARP開裂を、113.1kDa PARPポ
リペプチドの24.1kDa断片及び89.1kDa断片への分解として調べた
。PARP開裂活性を、得られたオートラジオグラムをレーザーデンシトメトリ
ーにより測定した24.1kDa断片の容量−密度により定量化した。
(c)蛍光原基質の開裂によるPARP開裂の測定
アポペインにより認識され、PARP開裂サイトAc−DEVD−AMC(A
MCNアミノ−4−メチルクマリン)のP1−P4アミノ酸に相当するテトラペ
プチドの蛍光原誘導体を、i)N−Ac−Asp(OBn)−Glu(OBn)
−Val−CO2Hの合成、ii)Asp(oBn)−7−アミノ−4−メチルク
マリンとのカップリング、iii)ベンジル基の除去により製造した。 100mM Hepes/KOH(pH7.5)、10%(w/v)スクロー
ス、0.1%(w/v)CHAPS、10mM ジ
チオトレイトール中にAc−DEVD−AMC及び精製または粗製PARP開裂
アポペイン/CPP32酵素を含む標準反応混合物(最終容量300μl)を、
25℃でインキュベートした。反応を、分光蛍光計を用い、励起波長380nm
、放射波長460nmで連続的に追跡した。結晶の調製及びX線結晶学
用語「構造座標」は、X線単色ビームの回折に対して結晶形のアポペイン分子
の原子(散乱中心)により得られるパターンに関する数式から誘導される数学的
座標を指す。回折データを使用して、結晶の繰返し単位の電子密度マップを算出
した。分子密度マップを使用して、結晶の単位胞内の個々の原子の位置を確認し
た。
用語「重原子誘導化」は、化学的に修飾した形態のアポペイン形態を製造する
方法を指す。結晶中に拡散し、タンパク質の表面に結合し得る重金属原子塩また
は有機金属化合物を含有する溶液中に結晶を浸漬する。浸漬させた結晶をX線回
折分析にかけて結合した重金属原子の位置を調べる。この情報を使用して、タン
パク質の3次元構造を構築するために使用される相情報を得る。
当業者が理解するように、X線結晶学により決定される構造座標は標準誤差を
持たない。
用語「単位胞(unit cell)」は、基本的な平行六面体ブロックを指す。前記
ブロックを規則的に組み立てることにより結晶の全容積が構築され得る。
用語「空間群」は、結晶の対称要素の配置を指す。
用語「分子置換」は、その構造座標が公知の分子を配向させ、配置することに
よりその構造座標がわかっていないアポペイン結晶の予備モデルを作成すること
を含む方法を指す。次いで、このモデルから相を計算し、観測した振幅と合わせ
て、座標が公知の構造の近似フーリエ合成を得る。
アポペインの構造座標を使用して、酵素に結合し、各種方法で物理的特性を変
更する化合物を設計することができる。また、酵素の構造座標を使用して、酵素
に結合する化合物の小分子データ基礎をコンピュータを用いてスクリーニングす
ることができる。アポペイン突然変異体の構造座標により、関連タンパク質また
は酵素の同定が容易となり得、よってアポペイン仲介状態の治療及び予防のため
の新規治療モードを導くことができる。
以下の実施例により本発明を例示するが、これらの実施例は
本発明を限定するものではない。
実施例1 アポペインの産生
アポペインの産生方法は、大腸菌において別々に発現される成分p17サブユニ
ット及びp12サブユニットからの活性酵素の折り畳みを含む。アポペイン/C
PP32p17サブユニット(Ser141−Asp297)及びp12サブユニット
(Ser310−His402)を、PCR直接鋳型修飾によりそれぞれMetSer141
−Asp297構築物及びMetSer310−His402構築物として発現させる
ために遺伝子操作した。p17サブユニットをコードするcDNAを、完全長C
PP32β cDNA(3ng/μl)を鋳型として用い、センス(前進)合成
オリゴヌクレオチド5’−GCT CTA GAC TCG AGT CAT
GAG TGG AAT ATC CCT GGA CAA CAG TTA
TAA AAT GG−3’(配列番号5)及びアンチセンス(逆)オリゴヌク
レオチド5’−GCT CTA GAC TCG AGT CAT GAT T
AG TCT GTC TCA ATG CCA CAG TCC AGT T
CT G−3’(配列番
号6)で増幅させた(Pwoポリメラーゼ(0.025U/μl)Bohrin
ger Mannheim;94℃×1分、60℃×1分、72℃×45秒のサ
イクルを25回)。p12サブユニットをコードするcDNAを同様にして増幅
させた。ただし、センス(前進)オリゴヌクレオチドは5’−GCTCTA G
AC TCG AGT CAT GAG TGG TGT TGA TGA T
GA CAT GGC GTG TC−3’(配列番号7)とし、アンチセンス
(逆)オリゴヌクレオチドは5’−GCT CTA GAC TCG AGT
CAT GAT TAG TGA TAA AAA TAG AGT TCT
TTT GTG AGC−3’(配列番号8)とした。生じたpCR断片を精製
し、Xba Iでトリムし、次いでpBluescript II SK(+)(
Stratagene)のXba Iサイトに結合した。配列を確認した後、挿
入断片をネストしたBsp HIサイトから切り出し、pET−11d(Nov
agen)のNco Iサイトに結合した。次いで、適切に配向したクローンを
大腸菌BL21(DE3)pLysS細胞に形質転換した。産生培養用の最適増
殖条件は、組換えタンパク質の発現のために1mM IPTGを用い、M9培地
を37℃で一晩誘導しながら使用した。(これらの条件下で、個々のサブユニッ
トを約50mg/lで発現させた。いずれの場合にも、タンパク質は、通常総タ
ンパク質の99%を越えるタンパク質が含まれる封入体分画に専ら局在化した。
)大腸菌を集め、洗浄し、プロテアーゼ阻害剤の存在下で切断した。次いで、封
入体を単離し、6Mグアニジン塩酸塩において可溶化した。活性組換えアポペイ
ンを生成するために、変性したp17サブユニット及びp12サブユニットを混
合し、迅速に100mM HEPES/KOH(pH7.5)、10%(w/v
)スクロース、0.1%(w/v)CHAPS、0.5M NaCl、10mM
DTT中に100μg/mlの濃度に希釈した。(いくつかのパイロット実験
で、これらが最適の折り畳み条件であることが確立されている。)次いで、反応
物を室温で60分間インキュベートした。これら条件下で、サブユニットタンパ
ク質の幾つかは沈降した。100,000×gで60分間超遠心して沈殿物を除
去した。この方法により、折り畳み効率は約10%(活性酵素のモル数/p17
サブユニットのモル数×100)であった。これは培養物1リッター当たり活性
酵素約5mgの総収量に相当する。実施例2 アポペインの精製
続いて、活性酵素を、HiTrap Qカラム(Pharmacia)1ml
を用いるアニオン交換クロマトグラフィーにより正しく折り畳まれていないタン
パク質から分離した。組換えアポペイン複合体のマススペクトル分析は、該複合
体がSer141−Asp297にわたる完全なp17鎖と、主としてMetSer31 0
−His402からなり若干のSer310−His402を含むP12鎖混合物とから
なることを示す。得られた酵素は、Ac−DEVD−CHOによる阻害に対する
キネティックパラメータの点では天然酵素と区別できない。
実施例3 アポペインの結晶化
アポペイン:Ac−DEVD−CHO複合体を、懸垂蒸気拡散法により結晶化
した。タンパク質−阻害剤溶液(10mMTris−HCl pH8.5、10
mM DTT、3mM NaN3中8.7mg/ml)1.5μlを等容量のリ
ザーバ−緩衝液(7%PEG−6000(w/w)、0.10Mクエン酸ナトリ
ウム pH5.0、10mM DTT、3mM
NaN3)と混合し、室温でインキュベートした。結晶は斜方晶空間群T222
(a=69.81、b=84.62、c=96.79Å)に属する。
実施例4 構造解明及び細分
2.5Åの分解能に拡大した3次元回折データを、Siemens面積検出計
及び理学RU−200回転アノードX線発生装置からのCuKα放射を用いて室
温で集めた。これらのデータをSAINTソフトウェアパッケージ36を用いて処
理した。8,929ユニーク反射の20,801観測値を5.55%のR−因子
と統合した。構造を、X−PLOR37及び阻害されたICE28の構造のPDB38
エントリー1ICEをベースとするモデルを用い、分子置換により解明した。現
在のモデルは、相互作用のモデル作成39及びX−PLORを用いる細分37により
構築された。モデル作成の初期段階において、SQUASH40を用いる相細分は
電子密度マップの質を大きく改良させた。現在のモデルは、10%模擬アニーリ
ングオミットマップ41に対して検査し、p17鎖の残基149−295、結合阻
害剤のp12鎖の残基317−402及び25秩序水分子を含む。p
17鎖のN−末端の残基141−148、p17鎖のC−末端の296−297
及びp−12鎖のN−末端の310−316は、たぶん無秩序のために現在の電
子密度マップでは可視化されない。細分されたモデルのR−因子は26.2%(
Rfree=34.2%)42であり、立体化学は合理的である(結合のr.m.s.
分布=0.006Å、角度=1.3°)。二次構造をプログラムSTRIDE43
を用いてアポペイン及びICEに帰属させた。P1炭素原子でのCys285Sγの
求核攻撃により生ずる光学中心のキラリティーを確立するためにに特別の注意を
払った。細分が終わったら、この原子で考えられる配置のそれぞれに対して同等
のモデルを作成し、2つのモデルを大きさは同じであるが手が反対のキラル制限
で同時に細分した。次いで、この原子の8.0Å内のすべての原子をそれぞれの
モデルについて欠失させ、両方の切り捨てたモデルを3000K模擬アニーリン
グ細分にかけた。次いで、複合体のこの部分の電子密度マップを、両組の相から
計算し、そのサイトでの立体化学を決定するために検査した。アポペイン:Ac
−DEVD−CHO複合体の座標及び構造要素はProtein Data B
ank38に寄託されるであろう。 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Crystal structure of Apopain and its use Field of the invention
Apoptosis.Background of the Invention
The present invention relates to crystalline apopain, the structure of apopain measured by X-ray crystallography,
Apopain analogs and other crystalline forms, mutants, and
Use for elucidating the structure of apopain co-complexes
Apoppe for apopain structures and homologues, mutants and co-complexes thereof
For use in designing inmodulators.
One aspect of the present invention determines the three-dimensional (tertiary) structure of a protein by X-ray diffraction.
The present invention is to obtain an apopain crystal having a sufficient quality to be used. The above crystals are obtained
What is actually done is a very unexpected result. Prior to this application, protein crystallography
Crystals of sufficient quality to determine the structure of apopain in the field
It is known that it has not been done. Therefore, one object of the present invention is to
High resolution (high)
provide crystals of sufficient quality to be determined by resolution.
And The value of Apopain crystals is that they can obtain the structure of Apopain itself.
It doesn't stop there. Use the knowledge gained about Apopain to help
A model of quality tertiary structure can be created. Another aspect of the invention is the use of protein
Starting material for use in determining the structure of other members of the Popein family
Is to provide a fee. From the knowledge of the structure of the Apopain family of proteins
Means for examining the mechanism of action of the protein in the body are provided. For example,
Binding of the above proteins to various receptor molecules using various computer models
Can be predicted. Once the binding is found to actually occur, chemists
Is based on functional binding of apopain to its receptor based on knowledge of the protein structure.
You can design similar small molecules and try to synthesize them. This is "reasonable"
It is a method of drug design. Thus, another aspect of the invention is very similar to the action of Apopain.
To provide a starting material in the rational design of drugs.
Mammalian interleukin-1β converting enzyme (ICE) and nematodes C. elega
required for cell death programmed in ns
Cysteine protease related to CED-3, a product of a gene
To play an important role in biochemical events that apoptosis
Is1-3. Some human isoforms of the ICE / CED-3-like protease family
(Which are divided into two distinct phylogenetic subfamilies) are now identified
ing. The isoform related to ICE is ICErel-II (TX, ICH-2) and I
CErelAn isoform that is more similar to CED-3, including ICH-1 (mNedd
2), CPP32 (Apopaine, Yamaha), Mch2 and Mch3 (ICE-
LAP3)4-14. We believe that CPP32 / apopane and strong tetra
The three-dimensional structure of the peptide-aldehyde inhibitor complex was investigated by X-ray diffraction analysis
. Proteins may have I-type tertiary and quaternary structures and in terms of features related to catalytic activity.
Similar to CE. However, Apopain's SFourSubsites are
And ICE in terms of chemical composition. Because of this difference, two of these enzymes
Provides a structural basis for understanding the differences in specificity between subfamilies of
The role of ICE itself in mammalian apoptosis is still clearly established
Not15,16This important physiological
At least one homologue, Apopain / CPP32, plays an important role in the process
It is clear that. At the onset of apoptosis, apopain (PFour) As
p-XX-Asp (P1) By separating the essential functional domains of the motif
Disables key homeostasis and repair enzymes. Known groups for Apopaine
The quality is poly (ADP-ribose) polymerase (genomic server in stressed cells).
Enzymes involved in veillance and DNA repair), U1-70 kDa small nuclear ribonuclei
Protein (required for mRNA splicing), and DNA dependent
460k of an inactive protein kinase (required for DNA double-strand break repair)
Including Da catalyst unit15,19,21-23. Apopain and Apopain during cell suicide
Potential substrates for like-like proteases are structural proteins such as fodrin
(Non-erythroid spectrin), nuclear lamins and growth arrest specific protein 2 (G
as2), and protein kinase C キ ナ ー ゼ and some unidentified
Contains self-antigens22,24-27. These proteases are responsible for hemostasis and repair
Disruption events that contribute to the disabling of the process and the systematic disassembly of dying cells
It is thought to be related to cade. Apoptosis balance
Collapse, poor apoptotic death, such as cancer or excess or immature apoptosis
Underlying the etiology of many human diseases, which can include both Alzheimer's disease
It is thought to do. Thus, specific biochemical apoptosis modulators, such as
Identifying apopain, for example, opens up potential treatments for these diseases.
All ICE / CED-3 proteases are proteolytically processed.
Is synthesized as a proenzyme that forms the catalytic domain of the heterodimer
It is. In the recently published ICE crystal structure, the two heterodimers combine
From this finding, this finding indicates that this substance is a catalytically active form of the enzyme.
Was suggested28,29. The most characteristic catalytic property of this family is the substrate P1
Is that the position Asp is almost absolutely necessary4,5,28-30. Mentioned above and others
However, the substrate specificities of ICE and Apopain differ significantly. I
CE is an important determinant of PFourPrefers a hydrophobic residue at the position, but Apopa
Is considered specific for Asp. Accordingly, the present inventors have
In order to identify determinants that reveal significant differences in substrate specificity,
To provide a basis for designing high specificity modulators
And, ultimately, functionally related to apopain in apoptotic cell death
To understand the structural basis for the role of family members
Tried to determine the three-dimensional structure of.
We have developed a conjugate with the peptide-aldehyde inhibitor Ac-DEVD-CHO.
The three-dimensional structure of apopain in the body was elucidated with a nominal resolution of 2.5 °. Apopaine
Are very similar to ICE (FIG. 1). Apopain's p
The 17 subunit and the p12 subunit are folded to about 40 x 35 x 25 cm
Size compact cylinder with 5 parallel chains and 1 fold
Dominated by a central 6-chain β-sheet with antiparallel chains of Modulator-
At the top of the cylinder that is part of the binding site, a small two-chain antiparallel β-sheet and
There is a second two-strand antiparallel β-sheet in front of the offspring (FIG. 1A). In addition, p17
Very small 2 containing the C-terminus of the punit subunit and the N-terminus of the p12 subunit.
There is a chain β-structure (see description of the quaternary structure below). Five helicopters
And three of them exist on one side of the main β-sheet and two on the other side
. At the N-terminal end of the p20 subunit of ICE (FIG. 1B).
The helix has no equivalent in the Apopaine crystal and is
Residues corresponding to this helix in broken amino acids are apparently disordered in the crystal structure
It is. As in the case of the ICE structure, the p17-p12 heterodimer pair
The central β-structure extends across the twice rotationally symmetric crystal axis
It becomes another tetramer in the offspring (FIG. 2). Inhibitors have an extended conformation
And its binding to the enzyme is a tetrapeptide aldehyde to ICE.
Is very similar to the case of the inhibitor. Inhibitor P1−PThreeBinding mode with residues
Is very similar to the mode found in the ICE structure,FourThe Asp residue of
The interactions involved are clearly different, and the differences in specificity of the two enzymes at this position
Matches.
Apopain structure and ICE structure have similar secondary structure or conformation
When aligned on 194 residues, the average difference between equivalent α carbon atoms is 1.11
Å. The most significant difference in the overall structure of the two enzymes is present in ICE
Two small surface loops are absent in Apopain, ApoPain is present in other enzymes
Not including one extra loop. Apo Pain is ICE
Residues 156-160 (left of FIG. 1B)
Bottom) and residues 248-258 (top middle of FIG. 1B) have no equivalent groups. Apo
The pane contains a 10-residue insert at a position equivalent to residue 381 of the ICE (FIG. 1A).
(Top right), this extra loop has an irregular reverse turn over the bound inhibitor
To give some residues that form part of the binding site. Add this loop
Is the most significant difference between the two ICE-related proteases exemplified by the two enzymes.
One of them. For example, all members of the ICE subfamily (ICE, I
CErel-II, ICErel-III) describes this loop based on primary sequence alignment.
Not expected to have. On the other hand, C.I. elegans including CED-3 itself
All members of the CED-3-like subfamily have equivalent loops (eg, ICH
-1, Mch2, Mch3). Therefore, the existence of this loop structure
Is considered to be a molecular feature that indicates structural and possibly functional relevance to Apopain.
(See below).
The quaternary structures of the two enzymes are generally very similar. Each protein smell
The heterodimer formed by the two chains is a structurally identical heterodimer.
And form a four-chain aggregate with twofold rotational symmetry. Both tampa
Quality
And the central β-sheet extends across the resulting interface, adding residues 389 and 392.
An anti-parallel β-structured hydrogen bond comprising links the two heterodimers. The resulting Tet
The lamer aggregate is about 50 × 35 × 25 with a 12-chain-β-structure passing through its center.
It has a size of Å and contains two catalytic sites in widely separated parts of the molecule (FIG. 2).
When the two tetramers are aligned, the equivalent 388α carbon is only 2.01% on average
different. ICE and Apopain have similar quaternary structures in two different crystal lattices
This structure is common to other members of this family of enzymes
Is supported.
At Apopaine, as in the case of ICE, the larger
The N-terminal of the smaller subunit of the same heterodimer
Very far from the edge (52 °). For example, in FIG.
295 is 52 ° away from residue 317 on the left p12, which is lighter. This distance is
These residues in the Payne precursor are linked but are disordered in the crystal structure.
Too long to be complemented by nine residues. Because of this, the folding of Apopain
And processing includes some unique features, such as ICE. Both
Impact
Two models can be proposed for quality28,29. In the first model, dark
The p17 chain (left in FIG. 2) is derived from the same precursor molecule as the dark p12 chain (right in FIG. 2)
. These residues are separated by 12 ° and they are larger due to nine disordered residues.
It can be easily combined without complicated structural rearrangement. However, in this model
, Two relatively compact heterodimers found in the mature protein (Figure 1)
Must be derived from a separately synthesized and folded polypeptide chain. IC
In both the E- and apopain structures, this model shows the accessibility of the new chain ends.
Backed by In the ICE structure, this model corresponds to the dark p in FIG. 2 (left).
Wide between the C-terminus of the subunit corresponding to 17 chains and the N-terminus of the dark p12 chain
This is supported by the fact that β-structured hydrogen bonds exist. These mutual
The effect is to bind residues 29-297 of the p20 chain to residues 317-323 of the p20 chain.
, Containing seven hydrogen bonds. However, the corresponding interaction
Use is not very extensive. The β-structure consists of each chain (Gly293, Ile294, I
le321, Pro322)) And only contains two hydrogen bonds and two hydrogen bonds.
In the second model, the dark p17 chain and the light p1 which are the two chains on the left side of FIG.
The two chains are derived from the same p32 precursor. This model is shown on the left side of FIG.
Compact heterodimers are derived from a single precursor molecule,
Supported by the idea that relatively large conformational changes are required during
Is done. In the Apopain structure, the changes described above have only a local effect,
Has no effect on the overall structure of the protein. Surface loops in Apopain precursor
Binds the C-terminus of the blue subunit at the N-terminus of the red chain. The loop
Is the residue 3 from the end of the β-chain containing residues 278-283 (fourth from the left in FIG. 2).
It extends to the beginning of the chain spanning 27-331 (fifth from the left in FIG. 2) and contains the precursor
Is formed except that the small β-structure contains residues 293-294 and 321-322.
It has the same tertiary and quaternary structures as the mature protein. The feasibility of this model is
Larger and more radical cons after proteolysis of the serpin family
Supported by the fact that homeotic changes are known to occur31,3 Two
. The ICE structure and the Apopain structure themselves strictly exclude any model
do not do. In short, the subunits involved in precursor processing
And the arrangement of specific residues is very similar in both ICE and apopain.
But the structural details of the precursors of Apopain and ICE and their processing
Need more thorough research.
Active site of apopaine and its tetrapeptide aldehyde inhibitor Ac-As
Interaction with p-Glu-Val-Asp-CHO indicates that the two proteins are
ICE: Ac-Try-Val-Ala-As, except for the different S4 subsites
Similar to the homologous features of the p-CHO complex. Inhibited by both proteins
The agent binds in the groove on the enzyme surface. P1And PFourSide chains are associated with many proteins
In contrast to the marked depressions in the acting coupling groove,TwoAnd SThreeThe side chain is
Away from proteinaceous body. Both complexes have 3 between the inhibitor backbone and the enzyme.
Antiparallel β-structure-like hydrogen bonds, ie, P1O-Ser339N, PTwoN-ArgThree 41
O and PTwo-O-Arg341N is present (FIG. 3). S1Subsites are ICE and
And the apopain complex. P1The carbonyl carbon atom of
Cys285And the side chain of this residue is a complex series of Arg179, Gln28 Three
And Arg341The Polar Interaction with the Side Chain
I have. Due to the high similarity of the three-dimensional structures of Apopain and ICE at the catalytically active site,
It is strongly suggested that the details of the catalytic mechanism of these proteins are preserved.
Catalysis and S1All of the structurally related residues in ICE / CED-3
Due to the fact that they are conserved among members of the Rotase family, these enzymes
Is a common catalytic mechanism and P1Almost completely demanding Asp in
Is suggested.
S1The local concentration of the two positive charges on the arginyl side chain in
It is stabilized by the modulator and the negatively charged aspartyl side chain of the substrate.
Conformations observed in the three-dimensional structure of inhibited apopain and ICE
Are unstable in non-inhibitory enzymes and do not have the stabilization described above. this
From their findings, the free enzyme is S1Some counter ions like acetate or some
Contains water molecules or has significant locality for modulator or substrate binding or release
It is suggested that there is a typical conformational change.
STwoAnd SThreeThe difference between the Apopaine and the ICE complex in E. coli is mainly due to the amino acid sequence
It is caused by the difference. In Apopain, PThreeGlutamyl residue side chain is tamper
Away from the body
However, due to the side chain, the salt is Arg341Linked to the side chain. This means that this site
In accordance with the specificity of the enzyme at Arg341The side chain is P1Compatible with aspartyl side chain
Interact (see above). PTwoThe side chain of valine is Tyr338In the middle on the side chain
As if leaning against the hydrophobic wall of the groove.
S1-SThreeContrary to the similarity of Apopaine and ICE inFourSub site
Are fundamentally different in terms of overall geometry and chemical type. ICE SFourThe subsite is
Large and shallow hydrophobic recess that easily accommodates rosyl side chains,
The corresponding site is P1 With a narrow socket that exactly surrounds the Asp side chain
is there. Comparing the two sites, the Apo Pain site is Trp348And Phe380 A
The most obvious difference is the compression due to the presence of the side chain (FIG. 4). Change
In the ICE, Arg383The volume occupied by the side chains includes Ser381AInserts starting with
Peptide is packed. This peptide isFourOf protein from the cavity inside
It extends to the depression beyond the surface.
Apopain's SFourFrom the subsites, the specificity of the enzyme at this position is understood.
The site boundary is Trp340, Arg341, Asn342, Trp348, Ser38 1A
And Phe381BBy
(FIG. 4A). Due to the carboxyl group of the inhibitor, Phe381BAmide of
Nitrogen atom and Asn342Nδ1Specific polar interactions with the atoms occur. This water
The elementary connection network is Asn342Nδ2Atoms and Lys344And Asp345Ami
Is extended by interaction with the nitrogen atom. The site is accessible in size and shape.
Complementary to the Spartyl side chain and with the appropriate geometry to interact with the carboxyl group
Includes two well-positioned hydrogen bond donors. Asn342Side chain of
Is oriented by the hydrogen atom acceptor O 2δ1And hydrogen bond donor Lys344
And Asp345Is fixed by interaction with the amide nitrogen atom. Apopain's
SFourAt 348 positions, which have an important role in defining the size and shape of the subsite
Trp residues and the inserted 10 amino acid residues at position 380 are
Fully conserved in the known CED subfamily of E-related proteases,
Suggest that these enzymes have similar specificities at this subsite
It is.
The three-dimensional structure of Apopain is usually similar to ICE in terms of tertiary and quaternary structures.
You. Furthermore, these two proteins are1-SThreeVery similar to the case of subsites
Momo in a similar way in a similar way
Interacts with the regulator peptide. However, the amino acid between these two enzymes
In agreement with the changes in the amino acid sequence and differences in substrate specificity, SFourSubsite size and
There are significant differences in type. These differences indicate that the ICE-specific protease
It provides a basis for understanding the structural and functional differences between the two subfamilies. Also,
From the comparison of the above two structures, the disease and physiological mechanism
Provides structural basis for the design of high specificity modulators important in the study of
available.Summary of the Invention
The present invention relates to crystalline apopain, the structure of apopain measured by X-ray crystallography,
Apopain homologues and other crystalline forms, mutants, and
Uses for elucidation of the structure of apopain co-complexes, as well as
Homologues, mutants and co-complexes for the design of apopain modulators
Regarding the use of
The present invention relates to a three-dimensional structure of an isolated / purified enzyme called apopain and its structural locus.
About the mark. In addition, the present invention relates to the method of
Used to elucidate the atomic details of a site and one or more auxiliary binding sites
It is.
Further, the present invention provides a method for converting the structural coordinates of an apopain crystal to another
To elucidate the crystal structure of a mutant, homolog or co-complex of Popein
Is to use. Furthermore, the present invention has one property that differs from wild-type apopain.
An object of the present invention is to provide an apopain mutant having the above. Furthermore, the present invention
Structural coordinates and atomic details of Paine or its mutants, homologues or copolymers
For preventing and treating undesirable physical and pharmacological properties of Apopaine
Design, use a computer to evaluate, synthesize and use inmodulators
That is. The modulators are useful in treating immune, proliferative and degenerative diseases.
Non-limiting examples of the diseases include immunodeficiency syndrome (eg,
AIDS), autoimmune diseases, pathogenic infections, cardiovascular and nerve damage, alopecia, aging
, Cancer, Parkinson's disease, Alzheimer's disease, Huntington's disease, neurodegenerative diseases and
And spinal cord injury.
Furthermore, the present invention is useful in the field of apoptosis as well as in reducing apoptosis.
Formula I useful as a research tool in the treatment of diseases (non-limiting examples of which are described above)
Ac-DEVD-CHO
I
(Designated L-761, 191). In particular, the present invention relates to poly (
ADP-ribose) polymerase, U1-70 kDa nuclear small liponucleoprotein
Normal Biology of the Catalytic Subunit of Protein and DNA-Dependent Protein Kinases
Thios causing at least partial apoptosis by disabling function
A modulator of pro-apoptotic proteolytic activity of proteinase
Related.BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES
FIG. 1 (A) shows an apopain: Ac-DEVD-CH observed on the twice rotation axis of the crystal.
It is the schematic of an O structure. α-helix of β-structure, coils are arrows. Join
Inhibitors are indicated by short arrows at the top of the figure. Extra loop in apopaine (residue
180A, 181A-I) are indicated by arrows. The p17 chain is dark and the p12 chain is light
You. FIG. 1 (B) shows ICE oriented to maximize alignment with (A).
: Indicates a YVAD structure. The two extra loops in the ICE are shown at the bottom
156-160) and the upper left (remainder 248-253) with white arrows. p20
The chains are dark and the p10 chains are light.
FIG. 1 (C) shows a three-dimensional structure in which two proteins are aligned.
Match residues with similar secondary structure or conformation
1 shows the amino acid sequences of Apopain and ICE that have been aligned. Lower sentence
Letters indicate residues with apparently no electron density. Easy comparison between ICE and ApoPain
In order to make the amino acid residue of
Identified by the sequence number of the cognate residue of E. ICE-related residues in Apopain
If it does not exist, omit the Apopain sequence number and
Indicated by adding characters to the ICE sequence number.
The method used for the production of apopain consists of the component p17, which is expressed separately in E. coli.
And folding of the active enzyme from the p12 subunit. This section describes
Amino acid numbering for recombinant engineering purposes
, Apopei determined from reading frame of GenBank accession number U13738
Refer to the position of the amino acid in the protein enzyme (the methionine in the initiator is
Residue 1 and the last residue before the stop codon is residue 402). Each sub unit
The beginning and end of the knit are based on mass spectral analysis of non-recombinant purified human apopain.
And determined by amino-terminal microsequencing19. Apopei
/ CEP32 p17 subunit (Ser141-Asp297) And p12 sub
Unit (Ser310-His402) Is modified by PCR template modification to MetS
er141-Asp297Constructs and MetSer310-His420Expressed as a construct
Was genetically engineered to The cDNA encoding the p17 subunit was
Using the long CPP32β cDNA (3 ng / μl) as a template,
Hex) Synthetic oligonucleotide 5'-GCT CTA GAC TCG AGT
CAT GAG TGG AAT ATC CCT GGA CAA CAG
TTA TAA AAT GG-3 '(SEQ ID NO: 1) and antisense (reverse)
Rigo nucleotide 5'-GCT CTA GAC TCG AGT CAT G
AT TAG TCT GTC TCA ATG CCA CAG TCC A
Amplified with GT TGT G-3 '(SEQ ID NO: 2) (Pwo polymerase (0
. 025U / μl) Boehringer Mannheim; 94 ° C. × 1 minute,
25 cycles of 60 ° C. × 1 minute and 72 ° C. × 45 seconds). p12 subunit
The encoding cDNA was amplified similarly, except that the sense (forward) oligonucleotide
Leotide is 5'-GCT CTA GAC TCG AGT CAT
GAG TGG TGT TGA TGA TGA CAT GGC GTG
TC-3 '(SEQ ID NO: 3), and the antisense (reverse) oligonucleotide was 5'
-GCT CTA GAC TCG AGT CAT GAT TAG TGA
TAA AAA TAG AGT TCT TTT GTG AGC-3 '(
SEQ ID NO: 4) The resulting pCR fragment was purified, trimmed with XbaI, and then
Xba of pBluescript II SK (+) (Stratagene)
Bound to the I site. After confirming the sequence, the insert was nested with Bsp HI
Cut out from the site and place it on the Nco I site of pET-11d (Novagen)
Joined. Then, the appropriately oriented clone was cloned into E. coli BL21 (DE3) pLy.
Transformed into sS cells. Optimal growth conditions for production culture are based on recombinant protein development.
M9 medium was used at 37 ° C. overnight with induction using 1 mM IPTG for development.
Was. (Under these conditions, the individual subunits were expressed at about 50 mg / l.
In each case, the protein is usually greater than 99% of the total protein.
Localized exclusively to inclusion body fractions containing quality. ) Collect E. coli, wash, protea
Cleavage in the presence of a protease inhibitor. The inclusion bodies were then isolated and
Solubilized in gin hydrochloride. Denature to generate active recombinant apopain
The p17 and p12 subunits were mixed and immediately mixed with 100 mM
HEPES / KOH (pH 7.5), 10% (w / v) sucrose, 0.1% (
w / v) 100 μg / CHAPS, 0.5 M NaCl, 10 mM DTT
Diluted to a concentration of ml. (Some pilot experiments show that these
Conditions are established. ) The reaction was then incubated at room temperature for 60 minutes.
Was added. Under these conditions, some of the subunit proteins precipitated.
The precipitate was removed by ultracentrifugation at 100,000 × g for 60 minutes. Using this method,
The folding efficiency is about 10% (moles of active enzyme / moles of p17 subunit × 1).
00). This corresponds to a total yield of about 5 mg of active enzyme per liter of culture.
Hit. Subsequently, the active enzyme was applied to a HiTrap Q column (Pharmacia).
Improper folding by anion exchange chromatography using 1 ml
From the protein. Mass spectral analysis of the recombinant apopain complex
The complex is Ser141-Asp297Complete p17 chain and mainly MetS
er310-His402Consists of a little Ser310-His402including
And a P12 chain mixture. The resulting enzyme was Ac-DEVD-CH
Indistinguishable from native enzyme in terms of kinetic parameters for inhibition by O
.
Apopain: Crystallization of Ac-DEVD-CHO complex by suspended vapor diffusion method
did. Protein-inhibitor solution (10 mM Tris-HCl pH 8.5, 10
mM DTT, 3 mM NaNThree8.7 mg / ml) 1.5 μl in an equal volume
Buffer solution (7% PEG-6000 (w / w), 0.10 M sodium citrate)
PH 5.0, 10 mM DTT, 3 mM NaNThree) And mix at room temperature
Incubated. The crystals are orthorhombic space group 1222 (a = 69.81, b = 84
. 62, c = 96.79 °).
The three-dimensional diffraction data enlarged to a resolution of 2.5 mm is converted to a Siemens area detector.
And room using CuKα radiation from a RU-200 rotating anode X-ray generator
Collected warm. These data are obtained using the SAINT software package 36.
Processed. 20,801 observations of 8,929 unique reflections with 5.55% R-factor
Integrated with child. The structure is X-PLOR37And inhibited ICE28POB with structure38
Based on entry 1 ICE
Was elucidated by molecular replacement using a model that The current model is an interaction model
Create39And subdivision using X-PLOR37Built by Early model construction
At the stage, SQUASH40Phase subdivision greatly improves the quality of electron density maps.
I made it good. The current model is a 10% simulated annealing omit map41Against
Inspection, residues 149-295 of the p17 chain, residues 317- of the p12 chain of the binding inhibitor
It contains 402 and 25 ordered water molecules. residues 141-148 at the N-terminus of the p17 chain,
296-297 at the C-terminus of the p17 chain and 310-31 at the N-terminus of the p-12 chain.
6 is not visible in the current electron density map, probably due to disorder. Subdivision
The R-factor of the model obtained was 26.2% (Rfree= 34.2%)42And stereochemistry
Is reasonable (rms distribution of bonds = 0.006 °, angle = 1.3 °).
Program the secondary structure STRIDE43To ApoPain and ICE using
Was. P1Cys at carbon atom285Optical center chirality caused by Sγ nucleophilic attack
Special care was taken to establish After the subdivision, consider this atom.
Create an equivalent model for each of the possible configurations and scale the two models
Are subdivided simultaneously with the same but opposite chiral restrictions.
Then all atoms within 8.0% of this atom were deleted from the respective model.
, Both truncated models were subjected to a 3000K simulated annealing subdivision. Then
Calculate the electron density map for this part of the complex from both sets of phases and calculate
Examined to determine stereochemistry. Apopaine: Ac-DEVD-CHO composite
Body coordinates and structural elements are in the Protein Data Bank38Will be deposited in
There will be.
FIG. 2 is a schematic diagram of an apopain tetramer oriented as shown in FIG.
. The heterodimer on the left side of this figure is the same as in FIG. To the left heterodimer
P17 chain is dark and p12 is light. The color is reversed in the right heterodimer
is there. Bound inhibitor molecules are shown at the top of the dimer on the left side of the figure and on the right side of the dimer.
It is a short arrow at the bottom.
FIG. 3 shows bound N-acetyltetrapeptide aldehyde inhibitors, (A) ICE and
(B) shows hydrogen bonding and other polar interactions between apopains.
FIG. 4 (A) shows the S of the Apopain: Ac-DEVD-CHO complex.FourSub site
Is shown. Acetyl group and S of the binding inhibitorFourThe aspartyl residue is replaced with a ball-stick model.
Shown in Protein is ro
Shown as a pad. Hydrogen bonds are drawn with dashed white lines. FIG. 4B shows ICE:
S of YVAD complexFourIndicates a subsite. (A) and (B) are two proteins
Are oriented to maximize the overall alignment of
The references mentioned above are as follows.
1. Ellis, R.E., Yuan, J.Y. & Horvitz, H.R.Annu Rev Cell Biol7,
663-98 (1991).
2. Miura, M., Zhu, H., Rotello, R., Hartwieg, E.A. & Yuan, J.Y.
Cell 75, 653-660 (1993).
3. Yuan, J.Y., Shaham, S., Ledoux, S., Ellis, H.M. & Horvitz, H.R.
Cell 75, 641-652 (1993).
4. Thornberry, N.A., et al. Nature 356, 768-74 (1992).
5. Cerretti, D.P., et al. Science 256, 97-100 (1992).
6. Munday, N.A., et al. Journal Of Biological Chemistry270,
15870-15876 (1995).
7. Faucheu, C., et al. Embo Journal 14, 1914-1922 (1995).
8. Kamens, J., et al. Journal of Biological Chemistry270,15250-
15256 (1995).
9. Kumar, S., Kinoshita, M., Noda, M., Copeland, N.G. & Jenkins,
N.A.Genes & Development 8,1613-1626 (1994).
Ten. Wang, L., Miura, M., Bergeron, L., Zhu, H. & Yuan, J.Y.Cell
78, 739-750 (1994).
11. Fernandes-Alnemri, T., Litwack, G. & Alnemri, E.S.Jouurnal of
Biological Chemistry269,30761-30764 (1994).
12. Fernandes-Alnemri, T., Litwack, G. & Alnemri, E.S.Cancer
Researchch55, 2737-2742 (1995).
13. Fernandes-Alnemri, T., et al. Cancer Research 55, 6045-6052
(1995).
14. Duan, H., et al. J. Biol. Chem. In press (1996).
15. Li, P., et al. Cell 80, 401-411 (1995).
16. Kuida, K., et al. Science 267, 2000-2003 (1995).
17. Kaufmann, S.H., Desnoyers, S., Ottaviano, Y., Davidson, N.E. &
Poirier, G.G. Cancer-Res53, 3976-85 (1993).
18. Lazebnik, Y.A., Kaufmann, S.H., Desnoyers, S., Poiricr, G.G. &
Earnshaw, W.C.Nature 371, 346-347 (1994).
19. Nicholson, D.W., et al. Nature 376, 37-43 (1995).
20. Tcwari, M., et al. Cell 81, 801-9 (1995).
twenty one. Casciola-Rosen, L.A., Miller, D.K., Anhalt, G.J. & Rosen, A.
Journal Of Biological Chemistry269,30757-30760 (1994).
twenty two. Casciola-Rosen, L.A., Anhalt, G.J. & Rosen, A.J.Exp.Med.
182, 1625-1634 (1995).
twenty three. Casciola-Rosen, L.A., et al. J. Exp.Med. In press (1996).
twenty four. Martin, S.J., et al. J-Biol-Chem270, 6425-8 (1995).
twenty five. Lazebnik, Y.A., et al. Proceedings Of the National Academy Of
Sciences Of the United States Of America92,9042-9046 (1995).
26. Brancolini, C., Benedetti, M. & Schneider, C. Embo Journal14,
5179-5190 (1995).
27. Emoto, Y., et al. EMBO J. 14, 6148-6156 (1995).
28. Wilson, K.P., et al. Nature 370, 270-275 (1994).
29. Walker, N.P.C., et al. Cell 78, 343-352 (1994).
30. Thornberry, N.A., Miller, D.K. & Nicholson, D.W.Perspectives
in Drug Discovery and Design 2,389-399 (1995).
31. Engh, R.A., Wright, H.T. & Huber, R.Protein-Eng3,469-77
(1990).
32. Stein, P. & Chothia, C. J-Mol-Biol221, 615-21 (1991).
33. Frankfater, A. & Kuppy, T. Biochemistry 20, 5517-24 (1981).
34. Mackenzie, N.E., Grant, S.K., Scott, A.I. & Malthouse, J.P.
Biochemistry 25, 2293-8 (1986).
35. Menard, R., et al. Biochemistry 30, 8924-8 (1991).
36. SAINT Software Reference Manual (Siemens Analytical
Instrnments, Madison, Wisconsin, 1995).
Crystallography and NMR (Yale University Press, New Haven &
London, 1992).
38. Abola, E.E., Bernstein, F.C., Bryant, S.H., Koetzle, T.F. &
Weng, J.in Crystallographic Databases-Information Content, Software
Systems, Scientific Applications (eds.Allen, F.H, Bergerhoff, G. &
Sievers, R.) 107-132 (Data Commission of the International Union of
Crystallography, Bonn / Cambridge / Chester, 1987).
39. Sack, J.S.J.Mol.Graphics 6, 224-225 (1988).
40. Zhang, K.Y.J.Acta Crystallographica Section D Biological
Crystallography 49, 213-222 (1993).
858 (1992).
43. Frishman, D. & Argos, P. Proteins-Structure Function and
Genetics 23,566-579 (1995).Detailed description of the invention
The present invention relates to a three-dimensional structure of an isolated / purified enzyme called apopain and its structural locus.
About the mark. The present invention also provides a method for determining the structural coordinates of an Apopain crystal.
Used to elucidate the atomic details of the site and one or more auxiliary binding sites
is there. In addition, the present invention provides a method for converting the structural coordinates of an apopain crystal to another apopain crystal.
Elucidate the crystal structure of mutants, homologs or co-complexes
Is to use for. Furthermore, the present invention has properties different from wild-type apopain.
Has one or more
To provide an Apopain mutant. Furthermore, the present invention
, Apopain, or its mutants, homologues or copolymers
Child details to prevent and treat the unwanted physical and pharmacological properties of Apopaine
Design, evaluate, synthesize, and use ApoPain modulators using a computer.
It is to use. The modulator may be used to treat immune, proliferative and degenerative diseases.
Non-limiting examples of the diseases include immunodeficiency syndrome
(Eg AIDS), autoimmune diseases, pathogenic infections, cardiovascular and nerve damage, alopecia
, Cancer, Parkinson's disease, Alzheimer's disease, Huntington's disease, neurodegenerative diseases and
And spinal cord injury.
Furthermore, the present invention is useful in the field of apoptosis as well as in reducing apoptosis.
Formula I useful as a research tool in the treatment of diseases (non-limiting examples of which are described above)
Ac-DEVD-CHO
I
(Designated L-761, 191). In particular, the present invention relates to poly (
By disabling the normal biological function of ADP-ribose) polymerase
Apot at least partially
Pro-apoptotic proteolysis of thiol proteinase causing lysis
For modulators of activity.
Apoptosis is responsible for normal morphogenesis, tissue remodeling and pathogenic infection or other repairs.
Configure systematic means of cell suicide in vivo during response to irreversible cell damage
To achieve. Inappropriate apoptosis occurs in Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Hunch
Tonton's disease, immunodeficiency, autoimmune disease, ischemic cardiovascular and nerve damage, alopecia, leukemia
Apoptosis, as it can cause human diseases such as disease, lymphoma and other cancers
Managing health is an important potential target for treatment.
Several biochemical events involved in apoptotic cell death have recently been identified.
For example, genetic evidence in C. elegans identifies positive and negative regulators of apoptosis
did. An important pro-apoptotic gene, ced-3, is a putative cysteine protein
Code Ze. The cysteine protease is associative at the S1 subsite.
A new cysteine protea with nearly complete specificity for paraginate.
Mammalian interleukin, the first enzyme identified in the
1β converting enzyme (ICE)6is connected with. ced-3 gene deletion or sudden
Mutations should not be fatal when transfected into various host cells.
Apoptotic death of all cells and apoptosis by CED-3 and ICE
Totally prevented. Furthermore, the pro-apoptotic effect of CED-3 is due to the nematode death suppressing gene.
By transfecting ced-9 together, the mammal, to some extent,
It can be prevented by the prooncogene bcl-2. Thus, the death of a eukaryotic cell is I
Opposing pro-apoptotic effects of CE / CED-3-like proteases and Bcl-2 and
And / or a balance between upstream regulatory mechanisms, including homologs thereof.
Potential group for ICE / CED-3-like protease during apoptosis
One of the qualities is a key enzyme in DNA repair, genomic surveillance and integrity
Certain poly (ADP-ribose) polymerases (PARP). PARP is
Apoptosis is caused by an unidentified protease with properties similar to those of ICE.
Proteolytic cleavage at initiation. PARP (DEVD216-G217)Inside
The cleavage site is the pro-IL-1β (FEAD) that is recognized and cleaved by ICE.27
-G28) Is similar to one of the two sites. PARP on this site
When cleaved proteolytically, self-modification leads to
Two zinc finger DNA binding motifs at the amino terminus and the polypeptide
Poly (ADP-ribose) erasing catalyst domain located at the carboxy terminus
Are separated. This cleavage causes the catalytic domain of PARP to become a site of DNA damage.
PARs are prevented from recruiting and regulate subsequent repair and genome maintenance events
P's ability will be disabled. In addition, Nucleoso, a characteristic of apoptosis
Ca involved in intracellular DNA cleavage2+/ Mg2+The dependent endonuclease is poly (A
DP-ribose) ylation20-22Is adjusted to be negative. Therefore, the normal P
Loss of ARP function causes this nuclease to become highly reactive in dying cells.
Is activated. Other substrates for apopain include (double-stranded DNA break repair and
460 of DNA-dependent protein kinase (essential for V (D) J recombination)
kDa catalytic subunit and (necessary for pre-mRNA splicing)
C) the 70 kDa protein component of the U1 nuclear small ribonucleoprotein. this
The cleavage site in all of these substrates is a preferred recognition motif for ICE (T
yr-XX-Asp).
Yes, in each case, important functional domains in the target polypeptide.
Mains are physically separated. Therefore, the inability to cooperate in important homeostasis processes
Plays a key role in apoptotic cell death and apopin in cell death
it is conceivable that.
ICE / CED-3 family of cysteine proteases of human origin
ICE, ICErel-II, ICErel-III, ICH-1, CPP32, Mc
Seven types of h2 and Mch3 are known. Each transfected into host cells
Can initiate an apoptotic response. However, excessive protease
When manifested, cell death can be caused non-specifically. Other proteases, such as
Cytoplasmic expression of lipsin, chymotrypsin, proteinase K or glandme B
Has also been shown to cause apoptosis27,28.
In this study, we found that Apopain, the active form of CPP32,
An enzyme involved in the specific proteolysis of PARP that occurs at the onset of potosis
Prove that there is. In addition, we inhibit apopain-mediated PARP cleavage.
This protease reduces apoptosis in vitro, so this protease is
Demonstrates its central role in vesicle apoptosis.
C. elegans elegans, one gene ced-3 is deleted or suddenly
Mutation eliminated apoptotic death. When sequenced, ced-3 was:
One known function is that of the inactive 31 kDa proIL-1β cytokine precursor.
Mammalian internucleotide encoding a protease that is cleaved to an active 17 kDa form
It was found to be homologous to the gene for leukin-1β converting enzyme (ICE). Feeding
A description of the apoptotic function of ICE-like proteases in animal cells
Participation in IL-1β formation and apoptosis usually occur in ICE-deficient mice
In view of the knowledge of cheating, four other mammalian ICE / CED-3-like proteases
(ICE, ICErel-II, ICErel-III, ICH-1, CPP32, M
ch2 and Mch3)23-26Discovery and coordination of genome structure and integrity
An important enzyme, poly (ADP-ribose) polymerase (PARP), is
Functional inactivation by protease-like ICE (prICE) at the onset of lysis
Will become more apparent with the observation that The inventors have in fact found that prICE is
Popein / CPP32, which is a mammalian cell in mammalian cells
Specific cleavage of PARP and other substrates at the onset of apoptosis
ICE / CED-3-like cysteine protease. Mammal
The central role played by Apopaine / CPP32 in cell death is in vitro
Further proven by powerful and selective modulators that prevent potosis from occurring
It is. These findings and the sequence between the apopain proenzyme, CPP32 and CED-3
From the relationship, CPP32 and its proteolytically active form of Apopain
It is suggested that it may be the human equivalent of CED-3. Therefore, Apopain activity
Pharmacological regulation of therapeutics in pathological conditions marked by inappropriate apoptosis
May be a suitable point for.
The cloned Apopain cDNA is then transferred to a suitable promoter and other suitable
Recombinantly generated by molecular cloning into an expression vector containing transcriptional regulatory elements
When introduced into prokaryotic or eukaryotic host cells, recombinant apopains are produced.
obtain.
As used herein, an expression vector refers to the transcription and transcription of a cloned copy of a gene.
Is defined as the DNA sequence required for translation of the mRNA of the appropriate host. The vector
Using bacteria, yeast, cyanobacteria, plant cells, insect cells and animal cells
Eukaryotic genes can be expressed in various hosts.
With specially designed vectors, bacterial-yeast or bacterial-animal cell
DNA can be shuttled between such hosts. Properly constructed expression vector
Is the origin of replication for autonomous replication in the host cell, a selectable marker,
Useful restriction enzyme sites, potential and active promoters for high copy numbers
May be included. The promoter causes RNA polymerase to bind to DNA,
A Defined as the DNA sequence that initiates synthesis. Initiate mRNA synthesis frequently
The promoter is a strong promoter. Expression vectors include, but are not limited to,
Roning vectors, modified cloning vectors, and specially designed plasmids
Or a virus may be included.
Using a variety of mammalian expression vectors, recombinant apope in mammalian cells
Can be expressed. Commercially available mammals suitable for expression of recombinant apopain
Product expression vectors include, but are not limited to, pMC1neo (Stratagene),
pXT1 (Stratagene), pSG5 (Stratagene), EB
O-pSV2-neo (ATCC 37593), pBPV-1 (8-2) (A
TCC 37110), pdBPV-MMTneo (342-12) (ATCC
37224),
PRSVgPt (ATCC 37199), pRSVneo (ATCC 371)
98), psV2-dhfr (ATCC 37146), pUCTag (ATC
C 37460) and IZD35 (ATCC 37565).
The DNA encoding apopain is expressed in an expression vector for expression in recombinant host cells.
Can be cloned into a vector. Recombinant host cells can be prokaryotic or eukaryotic
These cells include, but are not limited to, bacteria, yeast, mammalian cells and insect cells.
I will. Suitable and commercially available cell lines of mammalian species include, but are not limited to,
CV-1 (ATCC CCL 70), COS-1 (ATCC CRL 70)
1650), COS-7 (ATCC CRL 1651), CHO-K1 (AT
CC CCL 61), 3T3 (ATCC CCL 92), NIH / 3T3 (
ATCC CRL 1658), HeLa (ATCC CCL 2), C127
I (ATCC CRL 1616), BS-C-1 (ATCC CCL 26)
And MRC-5 (ATCC CCL 171).
An expression vector can be introduced into a host cell using any method.
, But not limited to, transformation, transfection
And infection, protoplast fusion and electroporation. Expression
Vector-containing cells grow clonally, and individual clones
Analyze to see if it produces quality. Apopain-expressing host cells
Clones can be identified by several means, including but not limited to anti-
-Immunological reactivity with apopain antibodies, including the presence of host cell-bound apopain activity
I will.
Expression of apopain cDNA is performed using in vitro produced synthetic mRNA.
Can be implemented. Synthetic mRNA can be efficiently translated in various cell-free systems,
The cell-free system includes, but is not limited to, wheat germ extract and reticulocyte extract.
You. Alternatively, synthetic mRNA is efficiently translated in a system including cells, including but not limited to:
For example, microinjected into frog oocytes.
Apopain producing optimal levels of enzyme activity and / or apopain protein
To determine the cDNA sequence, a modified apopain cDNA molecule is constructed. Host
Cells are transformed with the cDNA molecule, and apopin RNA and protein
Measure the level.
The level of apopein protein in host cells
Using various methods such as the affinity method and / or the ligand affinity method
Quantify.35S-methionine-labeled or unlabeled apopain protein
Apopain-specific affinity beads or apopain-specific
Use antibodies. The labeled apopin protein is analyzed by SDS-PAGE.
You. Unlabeled Apopain protein can be transferred to Wester using Apopain-specific antibodies
Detection by immunoblotting, ELISA or RIA.
After expression of apopain in recombinant host cells, the
Upon recovery, the active form of Apopain can be obtained. Some apopain purification
Methods can be utilized and are suitable for use. Recombinant apopain is available from known sources in the art.
Application of different fractions or chromatography in various combinations or individually
It can be more purified from cell lysates or conditioned media.
In addition, recombinant apopain can be a full-length newborn apopain or an apopain polypeptide.
Using monoclonal or polyclonal antibodies specific for peptide fragments
Separated from other cellular proteins using the prepared immunoaffinity column
Can be
Recombinant proteins can be used to make antibodies.
As used herein, the term "antibody" includes polyclonal and monoclonal antibodies, as well as
And fragments thereof, such as Fv fragments, Fab fragments and
And F (ab) 2 fragments.
Monospecific antibodies to Apopain include antibodies reactive to Apopain.
Purified from mammalian antisera having
It is produced as a monoclonal antibody reactive with the protein. Monospecific herein
Antibody is a single antibody species or multiple antibodies with homogeneous binding
Antibody type. As used herein, a homogeneous bond is defined as
Refers to the ability of an antibody species to bind to a particular antigen or epitope as it binds. Yeast
Element-specific antibodies include animals such as mice, rats, guinea pigs, rabbits, goats, horses, etc.
Etc. (preferably rabbits) and an appropriate concentration of apopaine as appropriate immunoadjuvant
It is created by immunization using with.
Monoclonal antibodies (mAbs) reactive with apopain are
Can be prepared by a conventional method, such as immunization of the cells with Apopain. Ma
For mice, an acceptable adjuvant (complete Freund's adjuvant is preferred)
New)
About 0.1 to about 10 m of apopain in about 0.5 ml of buffer or saline added to an equal volume
g, preferably about 1 mg. First immunization of mice on day 0
Perform the crop and rest for about 3 to about 30 weeks. Immunized mice receive phosphate buffer (
Booster immunization with about 0.1 to about 10 mg of Apopain in a buffer such as PBS)
Epidemics are given one or more times by the intravenous (IV) route. Antibody positive mouse
Spleen from immunized mice by standard methods known in the art.
Get out more. Hybridoma cells are used to transfer spleen lymphocytes to the appropriate fusion
It is produced by mixing under conditions capable of forming a stable hybridoma with the yeast. Fusion c
The hybridoma cells may be prepared using methods known in the art for hypoxanthine, thymidine and
Grown in Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) supplemented with aminopterin
By choosing Supernatant fluid was added on days 14, 18, and 21 to
Solid-phase immunoradioassay (SPI)
Screen for antibody production by immunoassay such as RA). Culture
The nutrient solution was tested in the Ouchterlony sedimentation assay to determine the mAb isotype.
. Hybridoma cells from antibody positive wells were
Edited by Paterson, published by Academic Press (1973), Tis
Sue Culture Methods and Applications
MacPherson in Soft Agar Technologies
Clone by a method such as the heavenly method.
In vitro production of anti-apopane was performed in DMEM containing approximately 2% fetal calf serum.
By growing the hybridomas to obtain sufficient specific mAbs.
Can be This mAb is purified by methods known in the art.
Antibody titers from ascites fluid or hybridoma cultures were tested for serologic or immunological
Assays include, but are not limited to, sedimentation,
Collection reaction, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and radioimmunoassay (RIA)
) Law. Similar assays are performed in body fluids or tissues, and in apoptosis in cell culture.
Used to detect the presence of a pane.
Methods such as those described above can be used to produce monospecific antibodies, or
Specific for apopain polypeptide fragments or full-length nascent apopain polypeptides
Can be used to produce suitable antibodies.
Apopain antibody affinity columns use an agarose skeleton beads support
With N-hydroxysuccinimide ester to form a covalent bond with
Antibody is added to a Kel support, for example, Affigel-10 (Biorad)
It is prepared by Next, the antibody was conjugated to an amide having a spacer arm.
After binding to the gel via coalescence, the remaining activated ester is replaced with ethanolamine HC
Quench with 1 (pH 8). The column was washed with water, 0.23 M glycine HCl
(PH 2.6) to remove unbound antibodies or extraneous proteins
You. The column was then equilibrated with phosphate buffered saline (pH 7.3) and
Remove cell culture supernatant or cell extract containing popain or apopain fractions.
Flow away. Thereafter, the column is washed and the protein is eluted. Then purification
Dialyze Apopain protein against phosphate buffered saline.
ApoPain cDNA, antibodies to ApoPain or ApoPain protein
Kits containing the same can be made. The kit contains
For detecting hybridizing DNA or in a sample of apopaintin
Used to detect the presence of protein or peptide fragments. The above features
Signs are useful for a variety of purposes, including but not limited to legal analysis or epidemiology.
Research included.
The DNA molecules, RNA molecules, recombinant proteins and antibodies of the present invention
Screening DNA, Apopain RNA or Apopain protein levels
And can be used to measure. Recombinant protein, DNA molecule, RNA content
The offspring and antibodies make up an appropriate kit for detecting and typing apopain.
Useful for The kit contains at least one container closed.
Includes a compartmentalized carrier suitable for carrying. Further, the carrier is Apopain.
Recombinant apopain protein or anti-apopain antibody suitable for detecting
The carrier containing the reagents such as
Steps may be included.
A nucleotide sequence complementary to the cDNA sequence encoding
It can be synthesized for sense therapy. The antisense molecule described above is DN
A, A stable derivative of DNA (eg, phosphorothioate or methylphosphonate)
G), RNA, stable derivatives of RNA (eg, 2'-O-alkyl RNA),
Or other Apopain antisense oligonucleotide mimics
Can be Apopain antisense molecules are microinjected, liposome capsules
Or introduced into cells by expression from a vector having an antisense sequence.
obtain. Apopain antisense treatment is effective for reducing apopain activity
Especially useful for the treatment of qi.
Apopaine gene therapy is used to introduce apopain into cells of the target organ
Can be done. The apopain gene is transformed into apopain DNA by infection of the recipient host cell.
Can be ligated to a viral vector that mediates the transfer of E. coli. Suitable virus vector
Are retroviruses, adenoviruses, adeno-associated viruses, hepatitis viruses,
Xinia virus, poliovirus and the like. Alternatively, Apopain DNA
Using a ligand-DNA conjugate or an adenovirus-ligand-DNA conjugate
Receptor-mediated target DNA transfer, lipofection membrane fusion or direct microinjection
Can be introduced into cells for gene therapy by non-viral methods including this
These methods and variants thereof are suitable for in vivo and in vitro apophine gene therapy
. Apopaine gene therapy is a treatment for diseases in which increasing apopain activity is effective.
May be particularly useful for
Pharmaceutically useful compositions comprising apopain DNA or apopain protein are
Mixed with a pharmaceutically acceptable carrier as described herein or
It can be prepared according to known methods such as combining. Examples of the carrier and the preparation method,
To Remington's Pharmaceutical Sciences
Has been described. Pharmaceutically acceptable compositions suitable for effective administration
To make, the composition comprises an effective amount of protein or DNA.
The therapeutic or diagnostic composition of the present invention is used for treating or diagnosing an apopain-related disease.
Administered to the individual in an amount sufficient to The effective amount depends on the condition, weight, sex and age of the individual.
May vary depending on various factors. Other factors include the mode of administration.
Pharmaceutical compositions can be administered to an individual by various routes, such as subcutaneous, topical, oral and intramuscular.
Can be given.
The presence of large amounts of overlap in the various codons encoding a particular amino acid
It is known. Thus, the present invention provides another alternative that encodes an accidental translation of the same amino acid.
It also relates to DNA sequences containing codons. As used herein, one or more substituted codons
Are defined as degenerate variants. Also, the final product of the expressed protein
Mutations in the DNA sequence or translated protein that do not substantially alter sex
Included in the present invention. For example, leucine to valine, lysine to arginine, or
Or substitution of glutamine for asparagine causes a change in polypeptide functionality
It is not possible.
The DNA sequence encoding the peptide differs from the nature of the naturally occurring peptide.
It is known that it can be modified to encode a peptide having certain properties. D
Methods for altering NA sequences include, but are not limited to, site-directed mutagenesis.
Examples of altered properties include, but are not limited to, altering the affinity of an enzyme for a substrate.
Includes
As used herein, a “functional derivative” of Apopaine is a biological derivative of Apopain.
A compound having a biological activity (functional or structural) substantially similar to the activity
You. The term "functional derivative" refers to the "fragment", "variant", "degenerate variant"
"," Analog "," homolog "or" chemical derivative ". for
The term "fragment" refers to a subset of the polypeptides of Apopain. The term "variant"
Substantially similar to all apopain molecules or fragments thereof in structure and function
Refers to a molecule. Both
Molecules have substantially similar structures or both molecules have similar biological activities
If so, the molecule is "substantially similar" to Apopain. Therefore, two molecules
If they have substantially similar activities, the structure of one molecule will
If not found, and even if the two amino acid sequences are not identical, both molecules are variants
Considered to be.
The term “analog” is substantially identical to the entire apopain molecule or a fragment thereof in function.
Refers to molecules that are similar.
The term “chemical derivative” additionally includes a chemical moiety that is not normally part of the base molecule.
Refers to molecules that contain. The part improves the solubility, half-life, absorption, etc. of the base molecule.
Can be In addition, the moieties may reduce unwanted side effects of the base molecule,
The toxicity of the molecule can be reduced. Examples of such parts are found in various books, for example, Re.
Described in mington's Pharmaceutical Sciences
Have been.
The present invention relates to the expression of DNA or RNA encoding
To screen for compounds that modulate protein function in vivo
Related. Compounds that regulate these activities include DNA, RNA, peptides, and proteins.
Quality, non
It can be a protein organic substance. The compound may be a DNA encoding apopain or
Is to increase or decrease the expression of RNA or the function of apopain protein
Can be adjusted by Expression or DNA expression of DNA or RNA encoding
Compounds that modulate the function of the Popein protein can be detected in various assays. Previous
The assay described above is a simple “yes” to determine if there is a change in expression or function.
/ No "assay. This assay is based on the expression or
Quantitatively by comparing performance to the level of expression or function in a standard sample.
Can be.
Furthermore, the present invention relates to a compound of the formula I (L-761,191) or a pharmaceutically acceptable compound thereof.
And salts that can be tolerated.
Ac-DEVD-CHO
I
The pharmaceutical compositions of the present invention comprise a compound of Formula I as an active ingredient or a pharmaceutically acceptable compound thereof.
Including pharmaceutically acceptable carriers and optionally other therapeutic ingredients.
obtain. The term "pharmaceutically acceptable salt" refers to pharmaceutically acceptable salts, including inorganic and organic bases.
Refers to salts produced from acceptable non-toxic bases. For salts derived from inorganic bases
Are aluminum salts, ammonium salts, calcium salts, copper salts, ferrous salts, ferric
Salt, lithium salt, magnesium salt, manganese salt, manganese salt, potassium
Salts, sodium salts, zinc salts and the like. Particularly preferably, calcium salt, mug
Nesium, potassium and sodium salts. Pharmaceutically acceptable
Salts derived from organic non-toxic bases which may be used include primary, secondary and tertiary alcohols.
Amines, substituted amines, including naturally occurring substituted amines, cyclic amines, and basic
Ion exchange resins (eg, arginine, betaine, caffeine, choline, N, N
'-Dibenzylethylenediamine, diethylamine, 2-diethylaminoethano
, 2-dimethylaminoethanol, ethanolamine, ethylenediamine,
N-ethyl-morpholine, N-ethylpiperidine, glucamine, glucosamine,
Histidine, hydravamin, isopropylamine, lysine, methylglucamine,
Morpholine, piperazine, piperidine, polyamine resin, procaine, purine,
Theobromine, triethylamine, trimethylamine, tripropylamine,
Lomethamine, etc.).
When the compound of the present invention is basic, salts are pharmaceutically acceptable, including inorganic and organic acids.
Produced from non-toxic acids that can be tolerated. The acid includes acetic acid, benzenesulfonic acid,
Benzoic acid, camphorsulfonic acid, citric acid, ethanesulfonic acid, fumaric acid,
Luconic acid, glutamic acid, hydrobromic acid, hydrochloric acid, isethionic acid, lactic acid, maleic acid
, Malic acid, mandelic acid, methanesulfonic acid, mucus acid,
Nitric acid, pamoic acid, pantothenic acid, phosphoric acid, succinic acid, sulfuric acid, tartaric acid, p-toluene
Sulfonic acid and the like. Particularly preferred are citric acid, hydrobromic acid, hydrochloric acid and maleic acid.
Inic, phosphoric, sulfuric and tartaric acids.
When reference is made to a compound of formula I in the following description of methods of treatment, the compound may include
It is to be understood that pharmaceutically acceptable salts are also included.
Due to the ability of the compounds of formula I to inhibit the action of apopain,
It is a useful research tool in the field of cis. The compound is useful in mammals, especially humans
It is used for treating, preventing and ameliorating diseases. Not limited to the disease
Typically, 1. 1. immunodeficiency syndrome (including AIDES); 2. Type I diabetes; Pathogenicity
Infection, 4. 4. cardiovascular and nerve damage; 5. Alopecia, Aging, 7. Parkinson's disease,
8. Includes Alzheimer's disease.Dose range
The therapeutic dose of a compound of Formula I will vary with the severity of the condition being treated, as well as the specificity of Formula VI.
It depends on the compound and its route of administration, and also on the judgment of the clinician. Also,
Therapeutic doses will also depend on the age, weight and response of each patient. Therefore, the active ingredient
Effective dose of
The clinician considers all criteria, decides to best benefit the patient, and
Can be determined.
A 0.001 to 1% by weight solution of a compound of Formula I in an acceptable ophthalmic formulation or
An ophthalmic formulation consisting of a suspension can be used.Pharmaceutical composition
Suitable administration for administering an effective amount of a compound of the present invention to a mammal, especially a human.
Routes can be used. For example, oral, parenteral, and topical routes may be used. Administration
Forms include tablets, troches, dispersions, suspensions, solutions, capsules, creams
Agents, ointments, aerosols and the like.
The pharmaceutical compositions of the present invention utilize a compound of Formula I or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
Pharmaceutically acceptable carrier and optionally other therapeutic ingredients.
obtain. The term "pharmaceutically acceptable salts" refers to inorganic acids or bases and organic acids.
Or made from pharmaceutically acceptable non-toxic acids or bases, including bases.
Salt.
The compositions of the present invention include compositions suitable for oral, parenteral and ophthalmic administration. This
These compositions are provided in unit dosage form,
Conveniently, they are prepared by methods well known in the pharmaceutical arts.
In practical use, the compounds of the formula I as active ingredients are prepared in a conventional pharmaceutical composition.
It is mixed with a pharmaceutical carrier in the form of a homogeneous mixture according to the binding method. The carrier is
It may take various forms depending on the form of the desired dosage formulation. Composition in oral dosage form
To manufacture the product, the usual pharmaceutical media such as suspensions, elixirs and solutions
In the case of oral liquid preparations such as water, alcohol, oils, fragrances, preservatives, coloring
Preparations; starch, sugar in the case of oral solid preparations such as powders, capsules and tablets
Carriers such as microcrystalline cellulose, diluents, granulating agents, lubricants, binders and disintegrants
Can be used. Solid oral formulations are preferred over liquid formulations. Easy to administer
Thus, powders and capsules are the most advantageous unit oral dosage in which pharmaceutical carriers are indispensable.
It is a given form. If desired, coat tablets with standard aqueous or non-aqueous methods.
May be applied.
Pharmaceutical compositions suitable for oral administration of the present invention include capsules each containing a predetermined amount of the active ingredient.
Powder or condyle as a discrete unit such as a cell, cachet or tablet
As granules or aqueous liquid
Solutions or suspensions in the body, non-aqueous liquids, oil-in-water emulsions or water-in-oil emulsions
It can be provided as an agent. The composition can be manufactured by any dispensing method,
Either method involves contacting the active ingredient with a carrier comprising one or more necessary ingredients.
Including Generally, the compositions comprise an active ingredient in a liquid carrier and / or in a finely divided solid.
Mix homogeneously and homogeneously with the carrier, then if necessary mold the product into the desired form
Manufactured. For example, a tablet may be compressed or molded, optionally with one or more accessory ingredients.
It can be manufactured. Compressed tablets are free in a suitable machine such as powder or granules
Flowable active ingredients optionally with binders, lubricants, inert diluents, surface active
It can be manufactured by mixing with an agent or dispersant and then compressing. Reinjected tablets are suitable
Manufactured in a machine by molding a mixture of powdered compounds moistened with an inert liquid diluent.
Can be Desirably, each tablet contains from about 1 mg to about 500 mg of the active ingredient,
Chews or capsules contain from about 1 mg to about 500 mg of the active ingredient.
The compounds of the present invention are conveniently prepared using methods known in the art.Proteolytic cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase is as follows. Can be measured.
(A) 35 Preparation of S-radiolabeled PARP
CDNA encoding human poly (ADP-ribose) polymerase (clone
pCD-12; GeneBank accession number M32721; NCBI gi 19
[0266] was excised from the cloning vector by digestion with Xho I restriction enzyme.
Followed by Xho I-cleavage, CIP-treated pBluescript II SK
+ (Stratagene). Transform competent E. coli cells
After colony purification and the resulting transformed cells are grown in liquid culture,
The plasmid DNA was purified and the orientation of PARP cDNA was examined by restriction enzyme analysis.
. Obtain clones oriented in the T7 and T3 directions and use the plasmid DNA.
Using35S] Methionine (New England Nuclear)
In vitro using TnT reticulocyte lysate (Promega) in the presence
By transcription / translation35[S] PARP was synthesized. occured[35S] PARP Polype
The peptide was previously prepared with 10 mM Hepes / KOH (pH 7.4), 2 mM EDT.
A, 0.1% CHAPS,
Superdex-75 HR 10 equilibrated with 5 mM dithiothreitol
By gel filtration chromatography using a 30/30 column (Pharmacia).
Then, the components of the reticulocyte lysate were removed.
(B)Measurement of PARP cleavage
Incubation mixture (final volume 25 μl) contains 10 mM Hepes / K
OH (pH 7.4), 2 mM EDTA, 0.1% CHAPS, 5 mM dithio
Prepared in a buffer consisting of threitol and purified [35S] PARP 5 μl, PA
RP cleavage activity (e.g., from apoptotic osteosarcoma, THP-1 or other cells)
Fraction, or purified or recombinant apopaine) 0-10 μl and drug
(If indicated) or vehicle. Mixture at 37 ° C for 60 minutes
After incubation for 5 hours, PAGE sample buffer containing SDS with 5 fold concentration was 6.5 μl.
Stopped by addition of 1 and denatured at 95 ° C. for 5 minutes. 10% polyacrylic sample
Separation on a ruamide gel and electroblotting of poly (vinylidene dif
(Fluoride) film,35S] Autoradiography of PARP cleavage products
-Visualized. The PARP cleavage was performed on the 113.1 kDa PARP
Degradation of the polypeptide into 24.1 kDa and 89.1 kDa fragments was examined.
. PARP cleavage activity was determined by laser densitometry.
Quantified by the volume-density of the 24.1 kDa fragment measured by the
(C)Measurement of PARP cleavage by cleavage of fluorogenic substrates
The PARP cleavage site Ac-DEVD-AMC (A
MCN amino-4-methyl coumarin)
The fluorogenic derivative of the peptide was converted to i) N-Ac-Asp (OBn) -Glu (OBn)
-Val-COTwoH, ii) Asp (oBn) -7-amino-4-methylc
Coupling with marine, iii) prepared by removal of benzyl group. 100 mM Hepes / KOH (pH 7.5), 10% (w / v) sucrose
0.1% (w / v) CHAPS, 10 mM
Ac-DEVD-AMC and purified or crude PARP cleavage in thiothreitol
A standard reaction mixture containing Apopain / CPP32 enzyme (final volume 300 μl)
Incubated at 25 ° C. The reaction was performed using a spectrofluorometer at an excitation wavelength of 380 nm.
, Continuously tracked at an emission wavelength of 460 nm.Crystal preparation and X-ray crystallography
The term “structural coordinates” refers to the crystalline form of an apopein molecule for diffraction of an X-ray monochromatic beam
Mathematical formula derived from the mathematical formula for the pattern obtained by the atoms (scattering centers)
Refers to coordinates. Use diffraction data to calculate electron density maps of crystal repeat units
did. Use molecular density maps to locate individual atoms within a unit cell of the crystal.
Was.
The term "heavy atom derivatization" produces a chemically modified form of the apopain form
Point the way. Heavy metal atoms or salts that can diffuse into the crystal and bind to the protein surface
Immerses crystals in a solution containing an organometallic compound. X-ray rotation of immersed crystal
Investigate the position of the bound heavy metal atom by fold analysis. Use this information to
Obtain the phase information used to construct the three-dimensional structure of the protein.
As those skilled in the art will appreciate, the structural coordinates determined by X-ray crystallography have a standard error of
do not have.
The term "unit cell" refers to a basic parallelepiped block. Said
By assembling the blocks regularly, the entire volume of the crystal can be built.
The term "space group" refers to the arrangement of symmetric elements of a crystal.
The term “molecular replacement” refers to the orientation and arrangement of molecules whose structural coordinates are known.
To make a preliminary model of apopain crystal whose structure coordinates are not known better
Refers to methods that include The phase is then calculated from this model and combined with the observed amplitude.
To obtain an approximate Fourier composition of a structure whose coordinates are known.
Using the ApoPain structural coordinates, it binds to the enzyme and modifies its physical properties in various ways.
Further compounds can be designed. Also, using the enzyme's structural coordinates,
Computer-based screening of small molecule data bases for compounds that bind to
Can be Depending on the structural coordinates of the Apopain mutant,
Can facilitate the identification of enzymes, and thus for the treatment and prevention of apopain-mediated conditions
New therapeutic modes can be derived.
The following examples illustrate the invention, but these examples
It does not limit the invention.
Example 1 Apopain production
The method for producing apopain is based on the component p17 subunit expressed separately in E. coli.
And folding of the active enzyme from the p12 and p12 subunits. Apopaine / C
PP32p17 subunit (Ser141-Asp297) And p12 subunit
(Ser310-His402) Is converted to MetSer by PCR direct template modification.141
-Asp297Constructs and MetSer310-His402Express as a construct
Genetically engineered for The cDNA encoding the p17 subunit was converted to full-length C
Sense (forward) synthesis using PP32β cDNA (3 ng / μl) as template
Oligonucleotide 5'-GCT CTA GAC TCG AGT CAT
GAG TGG AAT ATC CCT GGA CAA CAG TTA
TAA AAT GG-3 '(SEQ ID NO: 5) and antisense (reverse) oligonucleotide
Reotide 5'-GCT CTA GAC TCG AGT CAT GATT
AG TCT GTC TCA ATG CCA CAG TCC AGT T
CT G-3 '(sequence number
No. 6) (Pwo polymerase (0.025 U / μl) Bohrin
ger Mannheim; 94 ° C. × 1 minute, 60 ° C. × 1 minute, 72 ° C. × 45 seconds
25 cycles). Amplify cDNA encoding p12 subunit in the same manner
I let it. However, the sense (forward) oligonucleotide is 5'-GCTCTAG
AC TCG AGT CAT GAG TGG TGT TGA TGA T
GA CAT GGC GTG TC-3 '(SEQ ID NO: 7)
(Reverse) oligonucleotide is 5'-GCT CTA GAC TCG AGT
CAT GAT TAG TGA TAA AAA TAG AGT TCT
TTT GTG AGC-3 '(SEQ ID NO: 8). Purify the resulting pCR fragment
And trimmed with Xba I, then pBluescript II SK (+) (
(Stratagene) at the Xba I site. After confirming the sequence, insert
The incoming fragment was excised from the nested Bsp HI site and pET-11d (Nov
agen) at the Nco I site. The properly oriented clones are then
E. coli BL21 (DE3) pLysS cells were transformed. Optimal expansion for production culture
Culture conditions were as follows: 1 mM IPTG was used for expression of the recombinant protein, and M9 medium was used.
Was used at 37 ° C. with induction overnight. (Under these conditions, individual subunits
Was expressed at about 50 mg / l. In each case, the protein is usually
It localized exclusively in the inclusion body fraction, which contained more than 99% of the protein.
2.) E. coli was collected, washed and cut in the presence of protease inhibitors. Then seal
The input was isolated and solubilized in 6M guanidine hydrochloride. Active recombinant Apopei
The modified p17 and p12 subunits are mixed to produce
And rapidly added to 100 mM HEPES / KOH (pH 7.5), 10% (w / v).
) Sucrose, 0.1% (w / v) CHAPS, 0.5 M NaCl, 10 mM
Diluted in DTT to a concentration of 100 μg / ml. (Some pilot experiments
It has been established that these are optimal folding conditions. ) Then the reaction
The material was incubated at room temperature for 60 minutes. Under these conditions, the subunit tampering
Some of the sediment settled. Ultracentrifuge at 100,000 xg for 60 minutes to remove precipitate
I left. By this method, the folding efficiency is about 10% (moles of active enzyme / p17
(Moles of subunit × 100). This is active per liter of culture
This corresponds to a total yield of about 5 mg of enzyme.Example 2 Apopain purification
Subsequently, 1 ml of HiTrap Q column (Pharmacia) was added to the active enzyme.
Improperly folded tan by anion exchange chromatography
Separated from Parkin. Mass spectral analysis of the recombinant apopain complex
Body is Ser141-Asp297Complete p17 chain and mainly MetSer31 0
-His402Consists of a little Ser310-His402And a P12 chain mixture containing
Indicates that The resulting enzyme is resistant to inhibition by Ac-DEVD-CHO.
Indistinguishable from natural enzymes in terms of kinetic parameters.
Example 3 Apopain crystallization
Apopain: Crystallization of Ac-DEVD-CHO complex by suspended vapor diffusion method
did. Protein-inhibitor solution (10 mM Tris-HCl pH 8.5, 10
mM DTT, 3 mM NaNThree8.7 mg / ml) in an equal volume
Server buffer (7% PEG-6000 (w / w), 0.10 M sodium citrate
PH 5.0, 10 mM DTT, 3 mM
NaNThree) And incubated at room temperature. The crystals are orthorhombic space group T222
(A = 69.81, b = 84.62, c = 96.79 °).
Example 4 Structure elucidation and subdivision
The three-dimensional diffraction data enlarged to a resolution of 2.5 mm is converted to a Siemens area detector.
And room using CuKα radiation from a RU-200 rotating anode X-ray generator
Collected warm. These data are stored in the SAINT software package36Using
I understood. 20,801 observations of 8,929 unique reflections with 5.55% R-factor
And integrated. The structure is X-PLOR37And inhibited ICE28PDB with structure38
Elucidated by molecular replacement using a model based on Entry 1 ICE. Present
Existing models create interaction models39And subdivision using X-PLOR37By
It was constructed. In the early stages of model creation, SQUASH40The subdivision using
Significantly improved the quality of the electron density map. The current model is 10% simulated
Nguomit map41And residues 149-295 of p17 chain, binding inhibition
Includes residues 317-402 of the p12 chain of the harmful agent and 25 ordered water molecules. p
Residues 141-148 at the N-terminus of the 17 chain, 296-297 at the C-terminus of the p17 chain
And 310-316 at the N-terminus of the p-12 chain may be due to current disorder, possibly due to disorder.
It is not visualized in the child density map. The R-factor of the refined model is 26.2% (
Rfree= 34.2%)42And the stereochemistry is reasonable (the rms of the bond is
Distribution = 0.006 °, angle = 1.3 °). Program the secondary structure STRIDE43
Was assigned to Apopain and ICE. P1Cys at carbon atom285Sγ
Special care has been taken to establish the chirality of the optical center caused by nucleophilic attacks
paid. After subdivision, equivalent for each possible configuration of this atom
And create two models of the same size but opposite hands.
At the same time. Then all atoms within 8.0% of this atom are
The model was deleted and both truncated models were replaced with a 3000K mock
Crushed. Then an electron density map of this part of the complex was obtained from both sets of phases.
Calculated and examined to determine stereochemistry at that site. Apopaine: Ac
-The coordinates and structural elements of the DEVD-CHO complex are described in Protein Data B
ank38Will be deposited with
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考)
C12R 1:19)
(C12P 21/02
C12R 1:19)
(81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE,
DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L
U,MC,NL,PT,SE),CA,JP,US
(72)発明者 ニコルソン,ドナルド・ダブリユ
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 フアジル,キンバリー・エイ
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ガラン,ミツシエル
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ガロ,イブ
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ラベル,マルク
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ラスパー,デイータ・エム
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ルール,リジアン
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 バイランコート,ジヨン・ピイ
カナダ国、ケベツク・アシユ・9・アシ
ユ・3・エル・1、カークランド、トラン
ス・カナダ・ハイウエイ・16711
(72)発明者 ベツカー,ジヨージフ・ダブリユ
アメリカ合衆国、ニユー・ジヤージー・
07065―0907、ローウエイ、イースト・リ
ンカーン・アベニユー・126
(72)発明者 ロトンダ,ジエニフアー
アメリカ合衆国、ニユー・ジヤージー・
07065―0907、ローウエイ、イースト・リ
ンカーン・アベニユー・126
(72)発明者 ソーンベリイ,ナンシー・エイ
アメリカ合衆国、ニユー・ジヤージー・
07065―0907、ローウエイ、イースト・リ
ンカーン・アベニユー・126
(72)発明者 ピーターソン,エリン・ピー
アメリカ合衆国、ニユー・ジヤージー・
07065―0907、ローウエイ、イースト・リ
ンカーン・アベニユー・126──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) C12R 1:19) (C12P 21/02 C12R 1:19) (81) Designated country EP (AT, BE, CH) , DE, DK, ES, FI, FR, GB, GR, IE, IT, LU, MC, NL, PT, SE), CA, JP, US (72) Inventor Nicholson, Donald d'Abrieu Quebec, Canada・ Ashiyu 9 ・ Ashiyu 3 ・ El ・ 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Huazil, Kimberly Ai, Quebec Ashiu ・ 9 ・ Ayuyu ・ 3 ・ El 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Galant, Mitsiel Canada Quebec Ashyu 9 Ashyu 3 El 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Gallo, Eve Canada, Quebec Ashyu 9 Ashyu 3 El 1 , Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Label, Marc Canada, Quebec Ashyu 9, Ashyu 3 El, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Laspar, Data Em Canada Quebec Ashyu 9 Ashyu 3 El 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Ruhr, Lizian Canada Quebec Ashyu, 9 Ashyu 3 El 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Bailan Court, Jillon Piy Quebec, Canada・ Acy 9 ・ Acy 3 ・ 3 ・ 1, Kirkland, Trans Canada Highway 16711 (72) Inventor Betska, Jyozhoff-Doubled, United States, New Jersey 07065-0907, Lowway, East Lincoln Avenue 126 (72) Inventor Rotonda, Jennifer United States, New Jersey 07065-0907, Lowway, East Lincoln Avenille 126 (72) Inventor Thornbury, Nancy A United States of America, New Jersey 07065- 0907, Lowway, East Rinkan Avenue 126 (72) Inventor Peterson, Erin P. United States, New Jersey 07065-0907, Lowway, East Rinkan Avenue 126