JP2000266748A - MOUSE IgE MEASUREMENT KIT USING ANTI-MOUSE IgE ANTIBODY AND MEASURING METHOD - Google Patents

MOUSE IgE MEASUREMENT KIT USING ANTI-MOUSE IgE ANTIBODY AND MEASURING METHOD

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JP2000266748A
JP2000266748A JP11073372A JP7337299A JP2000266748A JP 2000266748 A JP2000266748 A JP 2000266748A JP 11073372 A JP11073372 A JP 11073372A JP 7337299 A JP7337299 A JP 7337299A JP 2000266748 A JP2000266748 A JP 2000266748A
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JP
Japan
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antibody
ige
mouse ige
mouse
measurement
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JP11073372A
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Japanese (ja)
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Haruki Shibata
治樹 柴田
Susumu Suzuki
進 鈴木
Tsutomu Honjo
勉 本庄
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Morinaga and Co Ltd
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Morinaga and Co Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To carry out easily operable measurement with excellently high precision and sensitiveness by comprising an antibody recognizing at least a part of mouse immunoglobulin E(IgE) and performing an antigen-antibody reaction in the presence of serum containing no mouse IgE. SOLUTION: A measurement kit comprises various solid phase carrier, a mouse IgE standard, a detection reagent, non-mouse IgE-containing serum, and a reaction medium or a sample diluting solution and the like in addition to a various antibody recognizing at least a part of mouse IgE. This kit and a method thereof are used for measuring mouse IgE. In this case, any sample including blood, plasma, serum, and IgE may be used as an objective sample. As the measurement method, an agglutination method, a sandwich method, a competitive method, and a solid phase direct method and the like are available. In the agglutination method, an antibody is bound to the surface of a particle or a blood cell, and a degree of agglutination is measured as an index. In any of the measurement methods, a combination of a label enzyme - a coloring substrate can be substituted by a combination of a label enzyme - bioluminescent/chemical luminescent substrate, a label enzyme - a fluorescent substrate or the like.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、マウスイムノグロ
ブリンE(IgE)を認識する抗体を含む、対象試料中のマ
ウスIgEを測定するための測定キット、及び、マウスイ
ムノグロブリンE(IgE)を認識する抗体を用いて対象試
料中のマウスIgEを測定するための測定方法に関する。
本発明の測定方法によってマウスIgEを測定して得られ
る結果は、マウスを用いた動物モデル実験における各種
アレルギー疾患の病勢や薬剤による治療効果、および予
知、診断に有用な情報を提供する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a measurement kit for measuring mouse IgE in a target sample, including an antibody recognizing mouse immunoglobulin E (IgE), and a mouse immunoglobulin E (IgE) recognition kit. The present invention relates to a measurement method for measuring mouse IgE in a target sample using an antibody to be tested.
The results obtained by measuring mouse IgE by the measurement method of the present invention provide useful information for the pathology of various allergic diseases, therapeutic effects by drugs, and prediction and diagnosis in animal model experiments using mice.

【0002】[0002]

【従来の技術】生体内に異物が侵入したとき、それを排
除しようとする免疫反応が起こる。この免疫反応が生体
に対して様々な病気をもたらす場合をアレルギーと呼
び、現在このアレルギー反応の作用機序によりI型から
V型の5種類に分類されている。近年では、乳幼児を中
心としてアトピー性皮膚炎に代表される種々のアレルギ
ー疾患患者が激増し、社会問題となっているが、これら
のアレルギー疾患の多くはアレルゲンに反応するIgEが
過剰に産生されることにより発症する即時型(I型)ア
レルギーと呼ばれている。
2. Description of the Related Art When a foreign substance enters a living body, an immune reaction occurs in an attempt to eliminate the foreign substance. The case where this immune response causes various diseases to the living body is called allergy, and is currently classified into five types from type I to type V according to the mechanism of action of this allergic reaction. In recent years, the number of patients with various allergic diseases represented by atopic dermatitis, especially infants, has become a social problem, but many of these allergic diseases produce excessive allergen-responsive IgE This is called an immediate (type I) allergy that develops.

【0003】一般的に、アレルギーを発症していない状
態では血中IgE濃度はおよそ数ng/mL程度と極めて微量に
保たれているが、いったんアレルギーを発症すると血中
IgE濃度はこれの数十倍から数千倍に増加する。大量に
産生されたIgEは肥満細胞上のリセプターに結合し、さ
らに体内に侵入したアレルゲンによって細胞膜上で架橋
されることにより肥満細胞からヒスタミンなどの炎症因
子が血中に放出されてアレルギー疾患を発症すると考え
られている。
[0003] In general, the blood IgE concentration is kept at a very small level of about several ng / mL in a state where no allergy has developed.
IgE concentrations increase tens to thousands of times. IgE produced in large quantities binds to receptors on mast cells and is cross-linked on the cell membrane by allergens that have entered the body, causing inflammatory factors such as histamine to be released from mast cells into the blood from mast cells and causing allergic diseases It is believed that.

【0004】このI型アレルギーの治療を最終目標とし
てIgE産生調節メカニズムを解明する研究が盛んに行わ
れており、肥満細胞から放出されるヒスタミンやロイコ
トリエンなどのケミカルメディエーターによる炎症反応
を抑える薬剤や、IgEとリセプターとの結合を阻害する
薬剤などの開発が進められている。
[0004] With the goal of treating this type I allergy as the ultimate goal, studies for elucidating the mechanism of regulating IgE production have been actively conducted, and drugs for suppressing the inflammatory reaction caused by chemical mediators such as histamine and leukotriene released from mast cells, Drugs that inhibit the binding of IgE to the receptor are being developed.

【0005】このため、血中のIgE量を定量することは
I型アレルギー疾患、特にアトピー性疾患においては重
要な診断基準となる。また、寄生虫感染、重症肝障害、
湿疹、IgEミエローマでも上昇することが知られてお
り、血中IgE量を定量することはこれらの疾患を判別す
ることにも役立つ。
[0005] Therefore, quantifying the amount of IgE in the blood is an important diagnostic criterion for type I allergic diseases, particularly atopic diseases. Also, parasitic infections, severe liver damage,
It is also known to be elevated in eczema and IgE myeloma, and quantifying the amount of IgE in blood is useful for discriminating these diseases.

【0006】ヒト血中IgEの測定方法は、ヒトIgEに対す
る抗体を組み合わせたELISA系やRIA系により測定するこ
とが可能であり、サンドイッチ法や競合法により行われ
ている。また、肥満細胞や好塩基球上に存在するIgEリ
セプター(FcεRI及びFcεRII)との結合を応用したアレ
ルギーの発症に関与するIgEの測定方法も開発されてい
る(特開平7−072150(特願平5-218920)、特開平8−101
194(特願平6-237590))。
[0006] Human blood IgE can be measured by an ELISA system or an RIA system combining antibodies against human IgE, and is performed by a sandwich method or a competition method. In addition, a method for measuring IgE involved in the development of allergy utilizing the binding to IgE receptors (FcεRI and FcεRII) present on mast cells and basophils has also been developed (Japanese Patent Application Laid-Open No. 7-072150). 5-218920), JP-A-8-101
194 (Japanese Patent Application No. 6-237590).

【0007】[0007]

【発明が解決しようとする課題】動物モデルとしては、
一般にマウスが用いられており、マウスIgEを測定する
試薬類は既に市販されているが、測定感度が高々10ng
/ml程度であり、更に25倍以上に希釈した検体試料が
100μlも必要であった。そこで、本発明者等は、操
作が簡便で、測定精度および測定感度、再現性が優れ、
将来的に広く一般的に使用されることを目的としたマウ
スIgEの測定系(キット)を開発すべく、鋭意研究を進
めてきた。
Problems to be Solved by the Invention As an animal model,
Generally, mice are used, and reagents for measuring mouse IgE are already commercially available, but the measurement sensitivity is at most 10 ng.
/ ml, and 100 μl of a sample sample diluted 25 times or more was required. Therefore, the present inventors, the operation is simple, measurement accuracy and measurement sensitivity, excellent reproducibility,
We have been working hard to develop a mouse IgE measurement system (kit) that is intended to be widely and generally used in the future.

【0008】その結果、マウスIgEを認識する抗体を用
い、抗原抗体反応をマウスIgE非含有血清の存在下で行
うことによって、従来公知の測定方法に比べて約500
倍程度高い測定感度が得られることを見出し、それに基
づいて対象試料中のマウスIgEを測定するための、簡便
で、測定精度、測定感度および再現性に優れている測定
キット及び測定方法に関する本発明を完成させた。
As a result, by using an antibody that recognizes mouse IgE and performing an antigen-antibody reaction in the presence of mouse IgE-free serum, it is possible to reduce the amount of antibody by about 500
The present invention relates to a measurement kit and a measurement method which are simple, excellent in measurement accuracy, measurement sensitivity and reproducibility for measuring mouse IgE in a target sample based on the finding that a measurement sensitivity about twice as high can be obtained, and the present invention. Was completed.

【課題を解決するための手段】[Means for Solving the Problems]

【0009】即ち、本発明は、マウスIgEの少なくとも
一部を認識する抗体を含み、抗原抗体反応をマウスIgE
非含有血清の存在下で行うことを特徴とする、対象試料
中のマウスIgEを測定するための測定キットに係る。更
に、本発明は、マウスIgEの少なくとも一部を認識する
抗体を用い、抗原抗体反応をマウスIgE非含有血清の存
在下で行うことを特徴とする、対象試料中のマウスIgE
を測定するための測定方法に係わる。該方法は、上記本
発明の測定キットを使用して行うことが好ましい。本発
明の測定方法における抗原抗体反応は、マウスIgE非含
有血清の存在下で実施することが特徴である。ここで、
「マウスIgE非含有血清」とは、マウスIgEを実質的に含
まない(本発明測定方法の検出感度以下のマウスIgEし
か含まない)ような血清を意味する。抗原抗体反応溶液
中の該マウスIgE非含有血清の最終濃度は、当業者が適
宜決めることができ、高い測定感度を得るためには、好
ましくは、5容量%〜90容量%、より好ましくは10
容量%〜50容量%である。かかるマウスIgE非含有血
清は、ウサギ、モルモット、ラット、マウス、ヤギ、ヒ
ツジ、ウマ、ブタ、ニワトリ等の温血動物の血清を、抗
マウスIgE抗体を固相化した樹脂に通してマウスIgEを吸
収する等の当業者に公知の方法で調製することが出来
る。マウスIgE非含有血清は、例えば、抗原抗体反応に
際して、その系に直接加えても良いし、抗体又はマウス
IgEを含む対象試料(検体)又は標識抗体を希釈する為
の希釈溶液に予め含有させておくこともできる。
That is, the present invention includes an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE, and performs an antigen-antibody reaction on mouse IgE.
The present invention relates to a measurement kit for measuring mouse IgE in a target sample, which is performed in the presence of non-containing serum. Furthermore, the present invention uses an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE, and performs an antigen-antibody reaction in the presence of mouse IgE-free serum.
The present invention relates to a measuring method for measuring the This method is preferably performed using the above-described measurement kit of the present invention. The antigen-antibody reaction in the assay method of the present invention is characterized in that it is performed in the presence of mouse IgE-free serum. here,
“Mouse IgE-free serum” means a serum that does not substantially contain mouse IgE (only contains mouse IgE that is lower than the detection sensitivity of the measurement method of the present invention). The final concentration of the mouse IgE-free serum in the antigen-antibody reaction solution can be appropriately determined by those skilled in the art, and is preferably 5% by volume to 90% by volume, more preferably 10% by volume, in order to obtain high measurement sensitivity.
% By volume to 50% by volume. Such mouse IgE-free serum can be obtained by passing serum of warm-blooded animals such as rabbits, guinea pigs, rats, mice, goats, sheep, horses, pigs, chickens, etc. It can be prepared by a method known to those skilled in the art such as absorption. Mouse IgE-free serum may be added directly to the system, for example, during an antigen-antibody reaction, or an antibody or mouse.
The target sample (sample) containing IgE or the diluted solution for diluting the labeled antibody may be contained in advance.

【0010】[0010]

【発明の実施の形態】本発明に於いて、マウスIgEとは
マウス血中に存在する全てのIgEを指す。即ち、血中に
は遊離のIgEとして肥満細胞や好塩基球上のIgEリセプタ
ー(FcεRIおよびFcεRII)に結合するものと、それらリ
セプターには結合しないものが存在するが、その何れで
あってもよく、あるいは、これらの混合物であってもよ
い。また、マウスB細胞やマウスミエローマ細胞などの
マウスIgEを産生しうる細胞を人為的に培養した培養上
清中に遊離されるIgEでもよい。更に、B細胞のmRNA等を
用いて遺伝子工学的に作製したリコンビナントのマウス
IgEでもよい。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION In the present invention, mouse IgE refers to all IgE present in mouse blood. That is, in blood, there are those that bind to IgE receptors (FcεRI and FcεRII) on mast cells and basophils as free IgE, and those that do not bind to these receptors, but any of them may be used. Alternatively, a mixture thereof may be used. Alternatively, IgE released in a culture supernatant obtained by artificially culturing cells capable of producing mouse IgE such as mouse B cells and mouse myeloma cells may be used. Furthermore, a recombinant mouse prepared by genetic engineering using B cell mRNA etc.
IgE may be used.

【0011】本発明の測定方法は、マウスIgEの少なく
とも一部を認識する抗体を含むことを特徴とするが、以
下にこの抗体について説明する。本発明で用いる抗体
は、前述のマウスIgEを抗原として認識し得る抗体であ
れば如何なるものでも良い。従って、本発明で用いる抗
体は、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗
体であっても良い。尚、固相化抗体としてポリクローナ
ル抗体を使用する場合には、抗体の非特異的反応を抑え
る為に、精製したマウスIgEを固相化したカラム等を使
用して特異的に精製したものが好ましい。又、遺伝子工
学的に作成されるキメラ抗体等であっても良い。更に、
以上の抗体にペプシン、パパイン等のタンパク質分解酵
素を作用させて得られる、F(ab’)、Fab’、Fab等の
抗体のFc部分を除去したフラグメントも本発明で使用す
る抗体に含まれる。これらのフラグメントは、抗体のFc
部分がない為にマイクロタイタープレート等の固相への
非特異的結合が低く、本発明において酵素等の化学物質
で標識して使用する標識抗体として好ましい。高測定感
度を得る為には、特に、F(ab’)を標識抗体として使
用することが好ましい。例えば、固相サンドイッチ法な
どのような二段階の抗原抗体反応を行う測定方法におい
ては、担体へのコーティングに用いられる固相化抗体
(一次抗体)としてはポリクローナル抗体又はモノクロ
ーナル抗体、標識二次抗体としてはポリクローナル抗体
由来のFc部分を除去したフラグメント、というように二
種類以上の抗体を使用することが出来る。
[0011] The measurement method of the present invention is characterized by including an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE. This antibody will be described below. The antibody used in the present invention may be any antibody that can recognize the above-mentioned mouse IgE as an antigen. Therefore, the antibody used in the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. When a polyclonal antibody is used as the immobilized antibody, it is preferable to use a column specifically immobilized with purified mouse IgE to suppress nonspecific reaction of the antibody. . Further, a chimeric antibody or the like produced by genetic engineering may be used. Furthermore,
F (ab ′) 2 , Fab ′, fragments obtained by removing the Fc portion of an antibody such as Fab, which are obtained by allowing a proteinase such as pepsin or papain to act on the above antibody, are also included in the antibody used in the present invention. . These fragments contain the Fc of the antibody.
Since there is no portion, non-specific binding to a solid phase such as a microtiter plate is low, and it is preferable as a labeled antibody to be labeled with a chemical substance such as an enzyme in the present invention. In order to obtain high measurement sensitivity, it is particularly preferable to use F (ab ') 2 as a labeled antibody. For example, in a measurement method in which a two-stage antigen-antibody reaction is performed, such as a solid phase sandwich method, the immobilized antibody (primary antibody) used for coating the carrier is a polyclonal antibody or a monoclonal antibody, or a labeled secondary antibody. For example, two or more types of antibodies can be used, such as a fragment obtained by removing the Fc portion derived from a polyclonal antibody.

【0012】本発明で用いる抗体は、B細胞のmRNA等を
用いて遺伝子工学的に作製したり、動物に免疫する等の
当業者に公知の如何なる方法で作製することができる
が、抗体の作製方法として、以下の方法が一般的であ
る。まず、マウスIgE、もしくはその一部を免疫原とし
て用い、動物に免疫する。ここで用いる免疫原は、前述
のマウスIgEを認識する所望の抗体が得られるようなも
のであればよく、マウスIgE全体であっても一部であっ
てもよく、また、天然であっても人工的に作製されたも
のであってもよい。
The antibody used in the present invention can be prepared by any method known to those skilled in the art, such as by genetic engineering using B-cell mRNA or the like, or by immunizing an animal. The following method is generally used. First, an animal is immunized using mouse IgE or a part thereof as an immunogen. The immunogen used here may be any as long as a desired antibody recognizing the above-mentioned mouse IgE can be obtained, and the whole or part of the mouse IgE may be used. It may be artificially produced.

【0013】免疫原として用いるマウスIgEを天然から
得る場合は、IgEを含むマウス血清画分あるいは血漿画
分から塩析、透析やアフィニティークロマトグラフィ
ー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラ
フィー等各種クロマトグラフィーを用いて精製すること
が可能である。また、IgEを産生するマウスミエローマ
細胞等、適当な細胞を培養し、その培養上清から精製す
ることも可能である。
When mouse IgE to be used as an immunogen is obtained from nature, various chromatographic methods such as salting out, dialysis, affinity chromatography, ion exchange chromatography, and hydrophobic chromatography are used from the mouse serum or plasma fraction containing IgE. And can be purified. In addition, it is also possible to culture appropriate cells such as mouse myeloma cells that produce IgE and purify them from the culture supernatant.

【0014】マウスIgEを人工的に作製するには、所望
のマウスIgEのアミノ酸配列をコードするDNAを作製し、
該DNAで適当な宿主細胞を形質転換し、形質転換された
宿主細胞の培養上清から回収すればよい。
To artificially produce mouse IgE, a DNA encoding the amino acid sequence of the desired mouse IgE is prepared,
An appropriate host cell may be transformed with the DNA, and the DNA may be recovered from a culture supernatant of the transformed host cell.

【0015】上記のようにして得たマウスIgEを免疫原
とする動物の免疫に際して有用な免疫動物は、ウサギ、
モルモット、ラット、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ニワトリ等
の温血動物である。また、これらの動物を免疫する方法
は、当該技術分野で通常行われている方法でよい。尚、
二種類の抗マウスIgE抗体を使用するような場合には、
それぞれ別の免疫原に由来するものを使用することも出
来る。
An immunized animal useful for immunizing an animal using the mouse IgE obtained as described above as an immunogen is a rabbit,
They are warm-blooded animals such as guinea pigs, rats, sheep, goats, pigs and chickens. The method of immunizing these animals may be a method commonly used in the art. still,
When using two kinds of anti-mouse IgE antibodies,
Those derived from different immunogens can also be used.

【0016】次に、免疫した動物から抗体を得るのであ
るが、この方法も、当該技術分野で従来公知の方法によ
ればよい。その一例を挙げると、下記のとおりである。
Next, an antibody is obtained from the immunized animal. This method may also be performed by a method conventionally known in the art. An example is as follows.

【0017】目的の抗体がポリクローナル抗体である場
合は、免疫した動物から得られる抗血清を既存のプロテ
インGカラムに供し、カラム吸着画分をグリシン塩酸緩
衝液等の酸性緩衝液で溶出してIgG画分を回収したの
ち、透析等によって目的の溶媒に置換する。次に、この
画分に抗マウスIgE活性があるか否かを判定する。判定
の具体的方法としては、公知の酵素免疫測定法に従い、
プレートに吸着した抗原に抗体を反応させ、これに酵素
標識した二次抗体を反応させ、酵素の作用による基質の
発色反応で酵素活性を測定する方法、あるいはラジオア
イソトープで標識された抗原を用いる公知のラジオイム
ノアッセイ法等が例示されるが、公知の各種の方法を用
いることが可能である。
When the target antibody is a polyclonal antibody, the antiserum obtained from the immunized animal is applied to an existing protein G column, and the column-adsorbed fraction is eluted with an acidic buffer such as a glycine hydrochloride buffer to elute IgG. After collecting the fractions, the target solvent is replaced by dialysis or the like. Next, it is determined whether or not this fraction has anti-mouse IgE activity. As a specific method of determination, according to a known enzyme immunoassay,
A method of reacting an antibody with an antigen adsorbed on a plate and reacting it with a secondary antibody labeled with an enzyme, and measuring the enzyme activity by a color reaction of a substrate by the action of the enzyme, or a known method using an antigen labeled with a radioisotope And the like, but various known methods can be used.

【0018】また、モノクローナル抗体を調製する場合
は、免疫した動物の脾細胞とミエローマ細胞株などの細
胞融合用のペアレントセルを融合させ、得られる融合細
胞(ハイブリドーマ)の中から好適なものを選択してク
ローン化し、次いで、その融合細胞を生体外または生体
内で培養し、この培養混合物より特異性の高いモノクロ
ーナル抗体を採取する。
When preparing a monoclonal antibody, spleen cells of an immunized animal are fused with a parent cell for cell fusion such as a myeloma cell line, and a suitable one is selected from the obtained fused cells (hybridomas). Then, the fused cells are cultured in vitro or in vivo, and a monoclonal antibody having higher specificity is collected from the culture mixture.

【0019】上記のようにして得た抗体は、必要に応じ
て精製を行う。精製方法は、塩析、透析、イオン交換ク
ロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー
等の公知の方法を任意に組み合わせればよい。
The antibody obtained as described above is purified if necessary. The purification method may be any combination of known methods such as salting out, dialysis, ion exchange chromatography, and affinity chromatography.

【0020】本発明の測定方法では、上記のようにして
得た抗体を用いるが、該抗体は、例えば、固相化抗体及
び/又は標識抗体として、対象試料中の被検物質である
マウスIgEとの抗原抗体反応によって、対象試料中の被
検物質マウスIgEをトラップする為に使用されることが
望ましい。標識抗体及びマウスIgE標準品は、溶液又は
凍結乾燥等の各種形態で提供することができる。固相化
抗体は、ビーズ、マイクロタイタープレート、試験管、
ニトロセルロース膜、ナイロン膜等の固相化担体表面
に、当業者には公知の方法によって、マウスIgEの少な
くとも一部を認識する抗体を結合させることによって調
製される。本発明の測定キットは、マウスIgEの少なく
とも一部を認識する各種抗体に加えて、以下に記載する
測定方法・測定原理に応じて、様々な試薬、材料、器具
等を含有するものである。例えば、各種固相化担体(測
定に際して、測定者自らが固相化抗体を調製するような
場合)、マウスIgE標準品、検出用試薬、マウスIgE非含
有血清、反応媒体又は試料用の希釈溶液等、当業者には
公知のものを挙げることが出来る。
In the measurement method of the present invention, the antibody obtained as described above is used. The antibody may be, for example, a mouse IgE, which is a test substance in a target sample, as an immobilized antibody and / or a labeled antibody. It is preferably used to trap the test substance mouse IgE in the target sample by an antigen-antibody reaction with the antibody. The labeled antibody and the mouse IgE standard can be provided in various forms such as a solution or freeze-dried. Immobilized antibodies are available in beads, microtiter plates, test tubes,
It is prepared by binding an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE to the surface of a solid support such as a nitrocellulose membrane or a nylon membrane by a method known to those skilled in the art. The measurement kit of the present invention contains various reagents, materials, instruments, and the like according to the measurement method and principle described below, in addition to various antibodies that recognize at least a part of mouse IgE. For example, various solid-phased carriers (in the case where the measurer prepares the solid-phased antibody for measurement), mouse IgE standard, detection reagent, mouse IgE-free serum, reaction medium or diluted solution for sample And others known to those skilled in the art.

【0021】本発明の測定キット及び測定方法は、以上
に説明したように、試料中のマウスIgEを測定すること
を目的としている。この場合、対象試料は血液、血漿、
血清およびIgE産生細胞の培養上清等が好ましいが、マ
ウスIgEを含む溶液であれば、これらに限定されるもの
ではない。本発明の測定キット及び測定方法における被
検物質の検出原理は特定のものに限定されない。測定方
法として、凝集法、サンドイッチ法、競合法、及び、固
相直接法等を挙げることができる。
As described above, the measurement kit and the measurement method of the present invention aim to measure mouse IgE in a sample. In this case, the target sample is blood, plasma,
Serum and culture supernatant of IgE-producing cells are preferred, but not limited thereto, as long as the solution contains mouse IgE. The principle of detecting a test substance in the measurement kit and the measurement method of the present invention is not limited to a specific one. Examples of the measuring method include an aggregation method, a sandwich method, a competitive method, and a solid phase direct method.

【0022】凝集法では、抗体を粒子、例えばラテック
ス粒子や赤血球の表面に結合させ、マウスIgEが存在す
ると粒子の凝集が生じるようにし、この粒子の凝集の程
度を指標としてマウスIgEを測定する。なお、この凝集
法では、ラテックスや赤血球以外にも、ゼラチンやマイ
クロビーズ、カーボン粒子等、一般に用いられている粒
子を使用することができる。
In the agglutination method, an antibody is bound to the surface of particles, for example, latex particles or erythrocytes, so that the aggregation of particles occurs when mouse IgE is present, and mouse IgE is measured using the degree of aggregation of the particles as an index. In addition, in this agglutination method, generally used particles such as gelatin, microbeads, and carbon particles can be used in addition to latex and red blood cells.

【0023】また、サンドイッチ法、固相直接法、競合
法では、標識された抗体や抗原を使用し、エンザイムノ
アッセイ(EIA)、ラジオイムノアッセイ(RIA)、ケミルミ
ネッセンスイムノアッセイ(化学発光免疫測定法)、フル
オロイムノアッセイ(蛍光免疫測定法)、時間分解蛍光免
疫測定法(TR-FIA)等の原理で測定を行うことが出来る。
In the sandwich method, the solid phase direct method, and the competitive method, labeled antibodies and antigens are used, and enzyme immunoassay (EIA), radioimmunoassay (RIA), chemiluminescence immunoassay (chemiluminescence immunoassay), The measurement can be performed based on principles such as fluoroimmunoassay (fluorescence immunoassay) and time-resolved fluorescence immunoassay (TR-FIA).

【0024】以下に、本発明の好適例として、EIAの原
理に基づく固相サンドイッチ法を説明する。EIAによる
固相サンドイッチ法ではまず、ペルオキシダーゼ、アル
カリフォスファターゼ、β-ガラクトシダーゼ等の酵素
で標識した、マウスIgEを認識する抗体を準備する。ま
た、使用する固相にはマウスIgEを認識する抗体を吸着
させておく。次に固相の抗体非吸着面を、その反応系に
は影響しないタンパク質、例えばBSA(ウシ血清アルブミ
ン)などでブロッキング処理を行う。サンプル(試料)
もしくはスタンダードを固相に添加し、第一ステップの
抗原抗体反応を行わしめる。反応後、固相を洗浄し、上
述の酵素標識抗体を添加して固相化抗体と反応したマウ
スIgEと、第二ステップの抗原抗体反応を行わしめる。
なお、サンプル(試料)もしくはスタンダードと酵素標識
抗体を同時に添加することも可能である。過剰の酵素標
識抗体を洗浄操作で除去した後、使用する酵素に応じた
発色基質、例えば1,2-フェニルジアミンとH2O2、P-ニト
ロフェニルリン酸、2-ニトロフェニル-β-D-ガラクトシ
ド、3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジン等を加えて酵
素と反応させる。基質の発色は、酵素量、ひいてはサン
プル中のマウスIgE物質量に依存するので、発色最終産
物の量を測定することにより、マウスIgEを定量するこ
とが出来る。
Hereinafter, a solid-phase sandwich method based on the principle of EIA will be described as a preferred example of the present invention. In the solid phase sandwich method using EIA, first, an antibody that recognizes mouse IgE, which is labeled with an enzyme such as peroxidase, alkaline phosphatase, or β-galactosidase, is prepared. Further, an antibody recognizing mouse IgE is adsorbed on the solid phase to be used. Next, the antibody non-adsorbed surface of the solid phase is subjected to a blocking treatment with a protein that does not affect the reaction system, for example, BSA (bovine serum albumin). Sample (sample)
Alternatively, the standard is added to the solid phase, and the antigen-antibody reaction in the first step is performed. After the reaction, the solid phase is washed, and the above-mentioned enzyme-labeled antibody is added, and mouse IgE reacted with the immobilized antibody is subjected to the antigen-antibody reaction in the second step.
Note that a sample (sample) or standard and an enzyme-labeled antibody can be added simultaneously. After removing the excess enzyme-labeled antibody by a washing operation, a chromogenic substrate corresponding to the enzyme to be used, for example, 1,2-phenyldiamine and H 2 O 2 , P-nitrophenyl phosphate, 2-nitrophenyl-β-D -Galactoside, 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine and the like are added and reacted with the enzyme. Since the color development of the substrate depends on the amount of the enzyme and thus the amount of mouse IgE substance in the sample, mouse IgE can be quantified by measuring the amount of the end product of color development.

【0025】固相直接法では、サンプル(試料)を直接
固相に吸着させ、固相のマウスIgE非吸着面を、その反
応系には影響しないタンパク質、例えばBSA(ウシ血清ア
ルブミン)などでブロッキング処理し、次いでマウスIgE
を認識する酵素標識抗体を添加、反応させる。以降は、
固相サンドイッチ法と同様の操作を行い、サンプル中の
マウスIgEの有無を判定するか、定量を行う。
In the solid phase direct method, a sample (sample) is directly adsorbed on a solid phase, and the mouse IgE non-adsorbed surface of the solid phase is blocked with a protein that does not affect the reaction system, such as BSA (bovine serum albumin). Treated, then mouse IgE
Is added and allowed to react. Later,
The same operation as in the solid phase sandwich method is performed to determine the presence or absence or quantification of mouse IgE in the sample.

【0026】固相競合法では、使用する抗体が認識する
一定量のマウスIgEを直接固相に吸着させ、次いでブロ
ッキング処理をした後、ここにマウスIgEを認識する酵
素標識抗体とサンプル(試料)とを添加する。一定時間反
応させた後、洗浄して固相に非結合の物質を除去し、発
色基質を加えて酵素と反応させる。反応後、サンプル添
加による、酵素標識抗体の固相マウスIgEへの結合阻害
度を測定することにより、サンプル中のマウスIgEを定
量する。尚、はじめに抗体を固相に吸着させ、酵素標識
したマウスIgEをサンプル(試料)と同時に添加し、サン
プル添加による、標識物の固相化抗体への結合阻害度を
測定することにより、サンプル(試料)中のマウスIgEを
定量しても良い。
In the solid phase competition method, a certain amount of mouse IgE recognized by the antibody to be used is directly adsorbed on a solid phase, and then subjected to a blocking treatment, whereupon an enzyme-labeled antibody recognizing mouse IgE and a sample (sample) And. After reacting for a certain period of time, washing is performed to remove substances not bound to the solid phase, and a chromogenic substrate is added to react with the enzyme. After the reaction, mouse IgE in the sample is quantified by measuring the degree of inhibition of binding of the enzyme-labeled antibody to solid-phase mouse IgE due to the addition of the sample. The antibody was first adsorbed to the solid phase, enzyme-labeled mouse IgE was added at the same time as the sample (sample), and the addition of the sample was measured to determine the degree of inhibition of the binding of the labeled substance to the immobilized antibody. Mouse IgE in the sample) may be quantified.

【0027】上記以外の方法として、抗原抗体反応を固
相ではなく液相で行い、後に、抗体を用いた凝集沈降法
もしくは物理化学的な手法によって、標識抗体と結合し
たマウスIgEを不溶化して定量する方法もある。また、
マウスIgEを認識する抗体を標識するのではなく、その
抗体を認識する二次抗体を得、それを標識し、抗原抗体
反応を行わせて、マウスIgEを測定することも可能であ
る。
As a method other than the above, the antigen-antibody reaction is performed not in the solid phase but in the liquid phase, and thereafter, the mouse IgE bound to the labeled antibody is insolubilized by a coagulation sedimentation method using an antibody or a physicochemical method. There is also a method of quantification. Also,
Instead of labeling an antibody recognizing mouse IgE, it is also possible to obtain a secondary antibody recognizing the antibody, label the antibody, perform an antigen-antibody reaction, and measure mouse IgE.

【0028】サンドイッチ法、固相直接法、競合法のい
ずれにおいても、標識酵素−発色基質の組み合わせを、
標識酵素−生物発光基質または化学発光基質、標識酵素
−蛍光基質等の組み合わせに変えることが可能である。
この場合の、酵素−発光基質の代表的な組み合わせは、
アルカリフォスファターゼーAMPPD、ホースラディッシ
ュペルオキシダーゼールミノール、ルシフェラーゼール
シフェリン等があり、酵素−蛍光基質の代表的な組み合
わせは、アルカリフォスファターゼーウンベリフェリル
フォスフェート、ホースラディッシュペルオキシダーゼ
ーp-ハイドロキシフェニルプロピオン酸等がある。
In any of the sandwich method, the solid-phase direct method, and the competitive method, the combination of the labeling enzyme and the chromogenic substrate is used.
It is possible to change to a combination of a labeling enzyme-bioluminescent substrate or a chemiluminescent substrate, a labeling enzyme-fluorescent substrate and the like.
In this case, a typical combination of the enzyme-luminescent substrate is
There are alkaline phosphatase-AMPPD, horseradish peroxidase luminol, luciferase luciferin, etc., and a typical combination of enzyme-fluorescent substrate is alkaline phosphatase-umbelliferyl phosphate, horseradish peroxidase-p-hydroxyphenylpropionic acid, etc. is there.

【0029】さらに、上記3種の測定方法において、酵
素に代わって、放射性物質や化学発光物質あるいは蛍光
物質で直接あるいは間接的に標識された抗体や抗原を用
い、放射能や発光、蛍光の強度を測定することにより、
サンプル(試料)中のマウスIgEを測定することも可能で
ある。放射性物質としては、125Iや131I等が一般に使用
されており、化学発光物質の代表的なものには、アクリ
ジニウムエステル等がある。また、蛍光強度を測定する
場合には、より高感度な方法として、抗体あるいは抗原
にキレート剤を直接あるいは間接的に結合させ、励起光
照射後にそのキレート剤から発せられる蛍光の強度を時
間分解的に測定することにより、試料中のマウスIgEを
測定する方法(時間分解蛍光免疫測定法)も有用である。
尚、代表的な希土類金属の例として、ユーロピウムがあ
げられる。
Further, in the above three kinds of measurement methods, an antibody or an antigen directly or indirectly labeled with a radioactive substance, a chemiluminescent substance or a fluorescent substance is used in place of the enzyme, and the radioactivity, luminescence and fluorescence intensity are used. By measuring
It is also possible to measure mouse IgE in a sample (sample). As the radioactive substance, 125 I, 131 I and the like are generally used, and a typical chemiluminescent substance is acridinium ester. When measuring fluorescence intensity, as a more sensitive method, a chelating agent is directly or indirectly bound to an antibody or antigen, and the intensity of fluorescence emitted from the chelating agent after irradiation with excitation light is time-resolved. A method (time-resolved fluorescence immunoassay) of measuring mouse IgE in a sample by performing the above measurement is also useful.
Europium is a typical rare earth metal.

【0030】本発明の各測定方法におけるその他の反応
条件等は、その目的・対象試料の種類・測定原理等に応
じて、当業者が適宜決定することが出来る。
Other reaction conditions and the like in each measurement method of the present invention can be appropriately determined by those skilled in the art according to the purpose, the type of the target sample, the measurement principle, and the like.

【0031】以下の実施例で示されるように、本発明の
測定キットを使用する検出系・測定方法は、マウス血清
中のIgEを測定することにおいて非常に安定な系であ
る。更に、測定に必要な対象試料は、わずか数μlとい
う微量なもので充分であり、且つ、0.5ng/ml以上の
マウスIgEが検出可能であるような高感度なものであ
る。以上、説明した本発明の測定キット及び測定方法
は、マウスを用いた動物モデル実験における各種アレル
ギー疾患の病勢や薬剤による治療効果、および予知、診
断に有用な情報を提供する。
As shown in the following examples, the detection system and the measurement method using the measurement kit of the present invention are very stable in measuring IgE in mouse serum. Further, the target sample required for the measurement is only a small amount of only a few μl, and has high sensitivity such that mouse IgE of 0.5 ng / ml or more can be detected. The measurement kit and the measurement method of the present invention described above provide useful information for the pathology of various allergic diseases, therapeutic effects by drugs, and prediction and diagnosis in animal model experiments using mice.

【0032】[0032]

【実施例】以下に、実施例をもって本発明をよりいっそ
う具体的に説明するが、これらは実施例の一例として示
すものであり、本発明はこれらにより何等限定されるも
のではない。なお、記載に用いる略号は、当該技術分野
における慣用略号によるものである。
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but these are shown as examples of the present invention, and the present invention is not limited thereto. The abbreviations used in the description are those commonly used in the art.

【0033】マウスIgE非含有血清の作製 マウスIgE非含有ラット血清を以下のように作製した。 (1)抗マウスIgE抗体固相化樹脂の作製 ヤギ抗マウスIgE抗血清から精製した抗マウスIgE抗体を
N-ヒドロキシスクシンイミド活性化樹脂(AmershamPhar
maciaBiotech社、HiTrap NHS-activated)に5mg/mlにな
るように取扱説明書通り結合させた。 (2)マウスIgEの吸収操作 ラット血清を抗マウスIgE抗体固相化樹脂に1mm/min.の
線流速で通し、素通りしてきた画分を集め、固相サンド
イッチ法により、ラット血清中のマウスIgEを測定し
た。血清中のマウスIgE濃度が測定限界以下になるま
で、上記の操作を繰り返した。
[0033]Production of mouse IgE-free serum  A mouse IgE-free rat serum was prepared as follows. (1) Preparation of anti-mouse IgE antibody-immobilized resin Anti-mouse IgE antibody purified from goat anti-mouse IgE antiserum
N-hydroxysuccinimide activated resin (AmershamPhar
maciaBiotech, HiTrap NHS-activated)
As described in the instruction manual. (2) Absorption operation of mouse IgE Rat serum was applied to anti-mouse IgE antibody-immobilized resin at 1 mm / min.
Collect the fractions that passed through at the linear flow rate,
Mouse IgE in rat serum was measured by the
Was. The serum IgE concentration in serum should be below the measurement limit.
The above operation was repeated.

【0034】西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギF(a
b’)2抗マウスIgEポリクローナル抗体の調製 (1)ヤギF(ab’)2抗マウスIgEの調製 ヤギ抗マウスIgE抗血清から得られたIgG画分を0.1M 酢
酸ナトリウム緩衝液(pH4.5)に一晩透析する。同緩衝液
で2mg/mlとなるように調製し、同緩衝液で溶解したブ
タペプシンを終濃度4%となるように添加した。37℃に保
たれたインキュベーターで24時間インキュベーションし
酵素消化を行った。酵素消化後、0.2M NaHCo3で平衡化
したSuperose 12カラム(Pharmacia製)で分離を行い、F
(ab’)2画分を回収した。回収されたF(ab’)2画分は2mg
/mlに濃度調整し、使用するまで-80℃で保存した。 (2)過ヨウ素酸活性化西洋ワサビペルオキシダーゼと
ヤギF(ab’)2抗マウスIgEとのカップリング 公知の方法に従い調製した過ヨウ素酸活性化西洋ワサビ
ペルオキシダーゼ(4mg/ml,0.2M NaHCO3に溶解)と、上記
(1)で調製したヤギF(ab’)2抗マウスIgE(2mg/ml)を
等量づつ混合し、常温、遮光下で6時間インキュベーシ
ョンした。その後、カップリングを行った総タンパク量
と等量の水素化ホウ素ナトリウムを加え、4℃で一晩放
置した。20mM Tris-HCl,150mM NaCl(pH7.4)に一晩透析
し、透析後、ELISAで使用しうる濃度に希釈し、以下の
測定系で使用した。
[0034]Horseradish peroxidase-labeled goat F (a
b ') Preparation of 2 anti-mouse IgE polyclonal antibodies  (1) Goat F (ab ')TwoPreparation of anti-mouse IgE The IgG fraction obtained from goat anti-mouse IgE antiserum was
Dialyze overnight against sodium acid buffer (pH 4.5). Same buffer
To a concentration of 2 mg / ml, and dissolved in the same buffer.
Tapepsin was added to a final concentration of 4%. Keep at 37 ° C
Incubate in the incubator for 24 hours
Enzymatic digestion was performed. After enzyme digestion, 0.2M NaHCoThreeEquilibrate with
Separation with a Superose 12 column (Pharmacia)
(ab ’)TwoFractions were collected. F (ab ') recoveredTwoFraction 2mg
/ ml and stored at -80 ° C until use. (2) Periodate-activated horseradish peroxidase
Goat F (ab ')TwoCoupling with anti-mouse IgE. Periodic acid-activated horseradish prepared according to known methods.
Peroxidase (4 mg / ml, 0.2 M NaHCOThreeDissolved in)
Goat F (ab ') prepared in (1)TwoAnti-mouse IgE (2mg / ml)
Mix in equal amounts and incubate at room temperature, protected from light for 6 hours.
I did it. After that, the total amount of protein subjected to coupling
Add an equal volume of sodium borohydride and release at 4 ° C overnight
Was placed. Dialysis overnight against 20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl (pH 7.4)
After dialysis, dilute to a concentration that can be used in ELISA.
Used in the measurement system.

【0035】ELISAの原理に基づく、固相サンドイッチ
法による測定 ELISAの原理に基づく、固相サンドイッチ法によるマウ
スIgEの測定系を以下のように作製した。
Solid phase sandwich based on the principle of ELISA
A measurement system for mouse IgE by the solid phase sandwich method based on the principle of measurement ELISA by the ELISA method was prepared as follows.

【0036】[0036]

【実施例1】A モノクローナル抗体ー酵素標識ポリク
ローナル抗体の系 (1)抗マウスIgE抗体の担体へのコーティング 抗マウスIgEラットモノクローナル抗体(Crystal Chem I
nc. 製)を炭酸緩衝液(pH9.6)に2μg/mlとなるよ
うに溶解した。これをマイクロタイタープレート(Nunc
社、マイクロモジュールプレート、Maxsorp-F8)に100μ
lずつ分注し、4℃で一晩放置した。 (2)マイクロタイタープレートのブロッキング 各ウェルを300μlの洗浄液(150mM NaCl,0.05% Tween20
を含む20 mMトリス塩酸緩衝液 (pH7.4))で3回洗浄後、
ブロッキング溶液(0.1% BSA(オリエンタル酵母社製),15
0mM NaCl,0.05% Tween20を含む20 mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4))300μlを加え25℃で2時間放置した。 (3)マウスIgEの測定 各ウェル中のブロッキング溶液を除去後、各ウェルに希
釈溶液(30%マウス IgE非含有ラット血清,0.1 % BSA,150
mM NaCl,0.05% Tween20を含む20mMトリス塩酸緩衝液 (p
H7.4))を95μl分注した。ここに、検体血清を5μl加
え、25℃で4時間放置した。標準マウスIgEとしては、
マウスミエローマ細胞由来精製 (100ng/ml)を用い、こ
れを希釈溶液で2倍段階希釈し、同様に各ウェルに5μl
加え、25℃で4時間放置した。また、この系での測定範
囲以外の検体については予め検体希釈溶液で希釈してか
ら測定した。各ウェルを洗浄液300μlで5回洗浄後、西
洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgEポリク
ローナル抗体を希釈液で希釈し、100μlずつ加え、25℃
で2時間放置した。次に、各ウェルを洗浄液300μlで5回
洗浄後、TMB溶液(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)
を100μlずつ加え、25℃遮光下で30分間反応させた。そ
の後、1規定硫酸を100μlずつ加え反応を停止させた。
各ウェルの吸光度をマイクロプレートリーダーを用いて
主波長450nm、副波長630nmで測定した。図1に標準マウ
スIgE (100ng/ml)の2倍段階希釈したものの希釈直線性
を示す。良好な希釈直線性を示している。
Embodiment 1A Monoclonal antibody-enzyme-labeled polyc
Lonal antibody system  (1) Coating of carrier with anti-mouse IgE antibody Anti-mouse IgE rat monoclonal antibody (Crystal Chem I
nc.) in carbonate buffer (pH 9.6) to 2 μg / ml.
Dissolved. Put this in a microtiter plate (Nunc
100μ on Micro Module Plate, Maxsorp-F8)
The mixture was dispensed in 1 l increments and left at 4 ° C. overnight. (2) Blocking of microtiter plate Each well was washed with 300 μl of a washing solution (150 mM NaCl, 0.05% Tween20).
After washing three times with 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing
Blocking solution (0.1% BSA (Oriental Yeast), 15
20 mM Tris-HCl buffer containing 0 mM NaCl, 0.05% Tween20
(pH 7.4)), and left at 25 ° C for 2 hours. (3) Measurement of mouse IgE After removing the blocking solution from each well, dilute each well.
Solution (30% mouse IgE-free rat serum, 0.1% BSA, 150
20 mM Tris-HCl buffer containing mM NaCl and 0.05% Tween 20 (p
H7.4)) was dispensed in an amount of 95 μl. Add 5 μl of sample serum here
And left at 25 ° C. for 4 hours. As standard mouse IgE,
Using mouse myeloma cell-derived purification (100 ng / ml),
This was serially diluted two-fold with a diluting solution, and 5 μl was similarly added to each well.
In addition, it was left at 25 ° C. for 4 hours. In addition, the measurement range in this system
For samples other than those in the box,
Measured. After washing each well 5 times with 300 μl of washing solution,
Horseradish peroxidase-labeled goat anti-mouse IgE polyc
Dilute the lonal antibody with the diluent, add 100 μl each, and
For 2 hours. Next, wash each well 5 times with 300 μl of washing solution
After washing, TMB solution (3,3 ', 5,5'tetramethylbenzidine)
Was added thereto in an amount of 100 μl each, and reacted at 25 ° C. under light shielding for 30 minutes. So
Thereafter, 100 μl of 1N sulfuric acid was added to stop the reaction.
Measure the absorbance of each well using a microplate reader.
The measurement was performed at a main wavelength of 450 nm and a sub wavelength of 630 nm. Figure 1 shows the standard mouse
Dilution linearity of serially diluted 2-fold IgE (100 ng / ml)
Is shown. It shows good dilution linearity.

【0037】[0037]

【実施例2】B ポリクローナル抗体ー酵素標識ポリク
ローナル抗体の系 (1)抗マウスIgE抗体の担体へのコーティング 抗マウスIgEラットポリクローナル抗体を炭酸緩衝液
(pH9.6)に10μg/mlとなるように溶解した。これ
をマイクロタイタープレート(Nunc社、マイクロモジュ
ールプレート、Maxsorp-F8)に100μlずつ分注し、4℃で
一晩放置した。 (2)マイクロタイタープレートのブロッキング 各ウェルを300μlの洗浄液(150mM NaCl,0.05% Tween20
を含む20 mMトリス塩酸緩衝液 (pH7.4))で3回洗浄後、
ブロッキング溶液(0.1% BSA(オリエンタル酵母社製),15
0mM NaCl,0.05% Tween20を含む20 mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4))300μlを加え25℃で2時間放置した。 (3)マウスIgEの測定 各ウェル中のブロッキング溶液を除去後、各ウェルに希
釈溶液(マウス30% IgE非含有ラット血清,0.1 % BSA,150
mM NaCl,0.05% Tween20を含む20mMトリス塩酸緩衝液 (p
H7.4))を95μl分注した。ここに、検体血清を5μl加
え、25℃で4時間放置した。標準マウスIgEとしては、
マウスミエローマ細胞由来精製IgE(100ng/ml)を用い、
これを希釈溶液で2倍段階希釈し、同様に各ウェルに5
μl加え、25℃で4時間放置した。また、この系での測
定範囲以外の検体については予め検体希釈溶液で希釈し
てから測定した。各ウェルを洗浄液300μlで5回洗浄
後、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgE
ポリクローナル抗体を希釈液で希釈し、100μlずつ加
え、25℃で2時間放置した。次に、各ウェルを洗浄液300
μlで5回洗浄後、TMB溶液(3,3’,5,5’テトラメチルベ
ンジジン)を100μlずつ加え、25℃遮光下で30分間反応
させた。その後、1規定硫酸を100μlずつ加え反応を停
止させた。各ウェルの吸光度をマイクロプレートリーダ
ーを用いて主波長450nm、副波長630nmで測定した。図2
に標準マウスIgE(100ng/ml)の2倍段階希釈したものの希
釈直線性を示す。良好な希釈直線性を示している。
Embodiment 2B polyclonal antibody-enzyme-labeled polyc
Lonal antibody system  (1) Coating of anti-mouse IgE antibody on carrier Anti-mouse IgE rat polyclonal antibody was added to carbonate buffer
(PH 9.6) so as to be 10 μg / ml. this
The microtiter plate (Nunc
Plate, Maxsorp-F8) at 4 ° C.
Left overnight. (2) Blocking of microtiter plate Each well was washed with 300 μl of a washing solution (150 mM NaCl, 0.05% Tween20).
After washing three times with 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing
Blocking solution (0.1% BSA (Oriental Yeast), 15
20 mM Tris-HCl buffer containing 0 mM NaCl, 0.05% Tween20
(pH 7.4)), and left at 25 ° C for 2 hours. (3) Measurement of mouse IgE After removing the blocking solution from each well, dilute each well.
Solution (mouse 30% IgE-free rat serum, 0.1% BSA, 150%
20 mM Tris-HCl buffer containing mM NaCl and 0.05% Tween 20 (p
H7.4)) was dispensed in an amount of 95 μl. Add 5 μl of sample serum here
And left at 25 ° C. for 4 hours. As standard mouse IgE,
Using mouse myeloma cell-derived purified IgE (100 ng / ml),
This was serially diluted 2-fold with a diluting solution, and 5 wells were similarly added to each well.
μl was added and left at 25 ° C. for 4 hours. In addition, measurement in this system
For samples outside the specified range, dilute in advance with the sample dilution solution.
And then measured. Wash each well 5 times with 300 μl wash solution
Later, horseradish peroxidase-labeled goat anti-mouse IgE
Dilute the polyclonal antibody with the diluent and add 100 μl each.
And left at 25 ° C. for 2 hours. Next, wash each well with 300
After washing 5 times with μl, the TMB solution (3,3 ', 5,5'
100 μl each and react for 30 minutes in the dark at 25 ° C.
I let it. Then, add 100 μl of 1 N sulfuric acid to stop the reaction.
Stopped. Microplate reader for absorbance of each well
The measurement was carried out at 450 nm in the main wavelength and 630 nm in the sub wavelength using a laser beam. FIG.
Diluted two-fold serial dilutions of standard mouse IgE (100 ng / ml).
Shows linearity. It shows good dilution linearity.

【0038】[0038]

【実施例3】C ポリクローナル抗体ー酵素標識F(a
b’)2ポリクローナル抗体の系 (1)抗マウスIgE抗体の担体へのコーティング 抗マウスIgEラットポリクローナル抗体を炭酸緩衝液
(pH9.6)に2μg/mlとなるように溶解した。これ
をマイクロタイタープレート(Nunc社、マイクロモジュ
ールプレート、Maxsorp-F8)に100μlずつ分注し、4℃で
一晩放置した。 (2)マイクロタイタープレートのブロッキング 各ウェルを300μlの洗浄液(150mM NaCl,0.05% Tween20
を含む20 mMトリス塩酸緩衝液 (pH7.4))で5回洗浄後、
ブロッキング溶液(0.1% BSA(オリエンタル酵母社製),15
0mM NaCl,0.05% Tween20を含む20 mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4))300μlを加え25℃で2時間放置した。 (3)マウスIgEの測定 各ウェル中のブロッキング溶液を除去後、各ウェルに希
釈溶液(30% マウスIgE非含有ラット血清,0.1 % BSA,150
mM NaCl,0.05% Tween20を含む20mMトリス塩酸緩衝液 (p
H7.4))を95μl分注した。ここに、検体血清を5μl加
え、4℃で16時間放置した。標準マウスIgEとしては、マ
ウスミエローマ細胞由来精製IgE(200ng/ml)を用い、こ
れを希釈溶液で2倍段階希釈し、同様に各ウェルに5μl
加え、4℃で16時間放置した。また、この系での測定範
囲以外の検体については予め検体希釈溶液で希釈してか
ら測定した。各ウェルを洗浄液300μlで5回洗浄後、西
洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギF(ab’)2抗マウスIg
Eポリクローナル抗体を希釈液で希釈し、100μlずつ加
え、25℃で2時間放置した。次に、各ウェルを洗浄液300
μlで5回洗浄後、TMB溶液(3,3’,5,5’テトラメチルベ
ンジジン)を100μlずつ加え、25℃遮光下で30分間反応
させた。その後、1規定硫酸を100μlずつ加え反応を停
止させた。各ウェルの吸光度をマイクロプレートリーダ
ーを用いて主波長450nm、副波長630nmで測定した。図3
に標準マウスIgE(200ng/ml)の2倍段階希釈したものの希
釈直線性を示す。良好な希釈直線性を示している。実際
に検体中のIgE量を測定する場合は、これをマウスIgE標
準曲線とし検体中のIgE量を換算した。
Embodiment 3C polyclonal antibody-enzyme labeled F (a
b ') 2 polyclonal antibody system  (1) Coating of anti-mouse IgE antibody on carrier Anti-mouse IgE rat polyclonal antibody was added to carbonate buffer
(PH 9.6) to give a concentration of 2 μg / ml. this
The microtiter plate (Nunc
Plate, Maxsorp-F8) at 4 ° C.
Left overnight. (2) Blocking of microtiter plate Each well was washed with 300 μl of a washing solution (150 mM NaCl, 0.05% Tween20).
After washing 5 times with 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing
Blocking solution (0.1% BSA (Oriental Yeast), 15
20 mM Tris-HCl buffer containing 0 mM NaCl, 0.05% Tween20
(pH 7.4)), and left at 25 ° C for 2 hours. (3) Measurement of mouse IgE After removing the blocking solution from each well, dilute each well.
Solution (30% mouse IgE-free rat serum, 0.1% BSA, 150%
20 mM Tris-HCl buffer containing mM NaCl and 0.05% Tween 20 (p
H7.4)) was dispensed in an amount of 95 μl. Add 5 μl of sample serum here
And left at 4 ° C. for 16 hours. As standard mouse IgE,
Use purified IgE (200 ng / ml) derived from usmyeloma cells.
This was serially diluted two-fold with a diluting solution, and 5 μl was similarly added to each well.
In addition, it was left at 4 ° C. for 16 hours. In addition, the measurement range in this system
For samples other than those in the box,
Measured. After washing each well 5 times with 300 μl of washing solution,
Horseradish peroxidase-labeled goat F (ab ')TwoAnti mouse Ig
E Dilute the polyclonal antibody with the diluent and add 100 μl
And left at 25 ° C. for 2 hours. Next, wash each well with 300
After washing 5 times with μl, the TMB solution (3,3 ', 5,5'
100 μl each and react for 30 minutes in the dark at 25 ° C.
I let it. Then, add 100 μl of 1 N sulfuric acid to stop the reaction.
Stopped. Microplate reader for absorbance of each well
The measurement was carried out at 450 nm in the main wavelength and 630 nm in the sub wavelength using a laser beam. FIG.
Dilution of serial two-fold dilutions of standard mouse IgE (200 ng / ml)
Shows linearity. It shows good dilution linearity. Actual
When measuring the amount of IgE in the sample, use the mouse IgE standard
The amount of IgE in the sample was converted as a quasi-curve.

【0039】[0039]

【実施例4】D モノクローナル抗体ー酵素標識F(a
b’)2ポリクローナル抗体の系 (1)抗マウスIgE抗体の担体へのコーティング 抗マウスIgEラットモノクローナル抗体(Crystal Chem I
nc. 製)を炭酸緩衝液(pH 9.6)に1μg/mlとなるよう
に溶解した。これをマイクロタイタープレート(Nunc
社、マイクロモジュールプレート、Maxsorp-F8)に100μ
lずつ分注し、4℃で一晩放置した。 (2)マイクロタイタープレートのブロッキング 各ウェルを300μlの洗浄液(150mM NaCl,0.05% Tween20
を含む20 mMトリス塩酸緩衝液 (pH7.4))で5回洗浄後、
ブロッキング溶液(0.1% BSA(オリエンタル酵母社製),15
0mM NaCl,0.05% Tween20を含む20 mMトリス塩酸緩衝液
(pH7.4) )300μlを加え25℃で2時間放置した。 (3)マウスIgEの測定 各ウェル中のブロッキング溶液を除去後、各ウェルに希
釈溶液(30% マウスIgE非含有ラット血清,0.1 % BSA,150
mM NaCl,0.05% Tween20を含む20mMトリス塩酸緩衝液 (p
H7.4))を95μl分注した。ここに、検体血清を5μl加
え、4℃で16時間放置した。標準マウスIgEとしては、マ
ウスミエローマ細胞由来精製IgE(32ng/ml)を用い、これ
を希釈溶液で2倍段階希釈し、同様に各ウェルに5μl加
え、4℃で16時間放置した。また、この系での測定範囲
以外の検体については予め検体希釈溶液で希釈してから
測定した。各ウェルを洗浄液300μlで5回洗浄後、西洋
ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギF(ab’)2抗マウスIgE
ポリクローナル抗体を希釈液で希釈し、100μlずつ加
え、25℃で2時間放置した。次に、各ウェルを洗浄液300
μlで5回洗浄後、TMB溶液(3,3’,5,5’テトラメチルベ
ンジジン)を100μlずつ加え、25℃遮光下で30分間反応
させた。その後、1規定硫酸を100μlずつ加え反応を停
止させた。各ウェルの吸光度をマイクロプレートリーダ
ーを用いて主波長450nm、副波長630nmで測定した。図4
に標準マウスIgE(32ng/ml)の2倍段階希釈したものの希
釈直線性を示す。良好な希釈直線性を示している。実際
に検体中のIgE量を測定する場合は、これをマウスIgE標
準曲線とし検体中のIgE量を換算した。以上の本発明の
測定キットを使用することにより、5μlのマウス血清を
用いて0.5ng/ml以上のマウスIgEが検出することがで
きた。
Example 4 D monoclonal antibody-enzyme-labeled F (a
b ') 2 polyclonal antibody system (1) Coating of anti-mouse IgE antibody on carrier Anti-mouse IgE rat monoclonal antibody (Crystal Chem I)
nc.) was dissolved in a carbonate buffer (pH 9.6) to a concentration of 1 μg / ml. Put this in a microtiter plate (Nunc
100μ on Micro Module Plate, Maxsorp-F8)
The mixture was dispensed in 1 l increments and left at 4 ° C. overnight. (2) Blocking of microtiter plate Each well was washed with 300 μl of a washing solution (150 mM NaCl, 0.05% Tween20).
After washing 5 times with 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing
Blocking solution (0.1% BSA (Oriental Yeast), 15
20 mM Tris-HCl buffer containing 0 mM NaCl, 0.05% Tween20
(pH 7.4)) 300 μl was added, and the mixture was left at 25 ° C. for 2 hours. (3) Measurement of mouse IgE After removing the blocking solution in each well, a dilution solution (30% mouse IgE-free rat serum, 0.1% BSA, 150%) was added to each well.
20 mM Tris-HCl buffer containing mM NaCl and 0.05% Tween 20 (p
H7.4)) was dispensed in an amount of 95 μl. Here, 5 μl of the sample serum was added, and left at 4 ° C. for 16 hours. As standard mouse IgE, purified mouse myeloma cell-derived IgE (32 ng / ml) was serially diluted 2-fold with a diluting solution, and 5 μl was similarly added to each well and left at 4 ° C. for 16 hours. In addition, a sample outside the measurement range in this system was measured after diluting with a sample diluting solution in advance. After washing each well five times with 300 μl of a washing solution, horseradish peroxidase-labeled goat F (ab ′) 2 anti-mouse IgE
The polyclonal antibody was diluted with a diluent, added in 100 μl portions, and left at 25 ° C. for 2 hours. Next, wash each well with 300
After washing 5 times with μl, 100 μl of a TMB solution (3,3 ′, 5,5 ′ tetramethylbenzidine) was added thereto, and the reaction was carried out at 25 ° C. under light shielding for 30 minutes. Thereafter, 100 μl of 1 N sulfuric acid was added to stop the reaction. The absorbance of each well was measured at a primary wavelength of 450 nm and a secondary wavelength of 630 nm using a microplate reader. FIG.
Shows the dilution linearity of a two-fold serial dilution of standard mouse IgE (32 ng / ml). It shows good dilution linearity. When actually measuring the amount of IgE in the sample, this was used as a mouse IgE standard curve to convert the amount of IgE in the sample. By using the above-described measurement kit of the present invention, mouse IgE of 0.5 ng / ml or more could be detected using 5 μl of mouse serum.

【0040】[0040]

【実施例5】マウスIgE測定キットの基礎性能試験 (1)血清検体の希釈試験 実施例4の試験法に従って実際にマウス血清検体の希釈
試験を行った。血清はIgE量の不明な血清2検体を検体希
釈液でそれぞれ2倍段階希釈し、同時に測定した標準マ
ウスIgEから得られた標準曲線に基づいて、検体のIgE濃
度を算出した。図5の結果に示すとおり、ほぼ原点を通
る良好な直線性が得られている。 (2)添加回収試験 上記の試験法に従ってマウスIgEの添加回収試験を行っ
た。血清検体3検体に標準マウスIgEを添加し、測定値か
ら添加したIgE量の回収率を求めた。表1に示すとお
り、添加回収率は84.8%から126.8%(平均値107.2%)と
良好な結果が得られている。
Example 5 Basic Performance Test of Mouse IgE Measurement Kit (1) Dilution Test of Serum Sample According to the test method of Example 4, a dilution test of a mouse serum sample was actually performed. Two sera of two sera with unknown IgE amounts were serially diluted with a sample diluent, and the IgE concentration of the sera was calculated based on a standard curve obtained from simultaneously measured standard mouse IgE. As shown in the results of FIG. 5, good linearity substantially passing through the origin is obtained. (2) Addition / recovery test A mouse IgE addition / recovery test was performed according to the test method described above. Standard mouse IgE was added to three serum samples, and the recovery rate of the added IgE amount was determined from the measured values. As shown in Table 1, good results were obtained with an addition recovery rate of 84.8% to 126.8% (average value 107.2%).

【0041】[0041]

【表1】 [Table 1]

【0042】(3)同時再現性試験 上記の試験法に従って同時再現性試験を行った。表2に
結果を示すとおり、CV値は10%以下で良好な同時再現性
を示している。
(3) Simultaneous reproducibility test A simultaneous reproducibility test was performed according to the test method described above. As shown in Table 2, the CV value is 10% or less, indicating good simultaneous reproducibility.

【0043】[0043]

【表2】 [Table 2]

【0044】(4)日差再現性試験 上記の試験法に従って日差再現性試験を行った。表3に
結果を示すとおり、CV値は10%以下で良好な日差再現性
を示している。
(4) Daily Difference Reproducibility Test A daily difference reproducibility test was performed according to the test method described above. As shown in Table 3, the CV value is 10% or less, indicating good reproducibility of daily difference.

【0045】[0045]

【表3】 [Table 3]

【0046】(3)および(4)の結果から、この検出
系がマウス血清中のIgEを測定することにおいて非常に
安定な系であることを示している。また、本測定系を用
いると、わずか5μlのマウス血清を用いることにより0.
5ng/ml以上のマウスIgEが検出可能であった。
The results of (3) and (4) show that this detection system is very stable in measuring IgE in mouse serum. In addition, when using this measurement system, only 5 μl of mouse serum can be used.
Mouse IgE of 5 ng / ml or more was detectable.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】図1は、モノクローナル抗体ー酵素標識ポリク
ローナル抗体の系において、マウスミエローマ由来標準
IgE(100 ng/ml)を2倍段階希釈により希釈し、本発明の
実施例の方法(ELISAの原理に基づく、固相サンドイッチ
法)により測定波長450nm、副波長630nmでの吸光度を測
定した結果を示すグラフである。
FIG. 1 shows a mouse myeloma-derived standard in a monoclonal antibody-enzyme-labeled polyclonal antibody system.
IgE (100 ng / ml) was diluted by 2-fold serial dilution, and the absorbance was measured at a measurement wavelength of 450 nm and a sub-wavelength of 630 nm by the method of the example of the present invention (solid-phase sandwich method based on the principle of ELISA). FIG.

【図2】図2は、ポリクローナル抗体ー酵素標識ポリク
ローナル抗体の系において、マウスミエローマ由来標準
IgE(100 ng/ml)を2倍段階希釈により希釈し、本発明の
実施例の方法(ELISAの原理に基づく、固相サンドイッチ
法)により測定波長450nm、副波長630nmでの吸光度を測
定した結果を示すグラフである。
FIG. 2 shows a polyclonal antibody-enzyme-labeled polyclonal antibody system using a mouse myeloma-derived standard.
IgE (100 ng / ml) was diluted by 2-fold serial dilution, and the absorbance was measured at a measurement wavelength of 450 nm and a sub-wavelength of 630 nm by the method of the example of the present invention (solid-phase sandwich method based on the principle of ELISA). FIG.

【図3】図3は、ポリクローナル抗体ー酵素標識ポリク
ローナルF(ab’)2抗体の系において、マウスミエローマ
由来標準IgE(200 ng/ml)を2倍段階希釈により希釈し、
本発明の実施例の方法(ELISAの原理に基づく、固相サン
ドイッチ法)により測定波長450nm、副波長630nmでの吸
光度を測定した結果を示すグラフである。
FIG. 3 shows that in a polyclonal antibody-enzyme-labeled polyclonal F (ab ′) 2 antibody system, mouse myeloma-derived standard IgE (200 ng / ml) was diluted by two-fold serial dilution.
5 is a graph showing the results of measuring the absorbance at a measurement wavelength of 450 nm and a sub-wavelength of 630 nm by the method of the example of the present invention (solid-phase sandwich method based on the principle of ELISA).

【図4】図4は、モノクローナル抗体ー酵素標識F(a
b’)2ポリクローナル抗体の系において、マウスミエロ
ーマ由来標準IgE(32 ng/ml)を2倍段階希釈により希釈
し、本発明の実施例の方法(ELISAの原理に基づく、固相
サンドイッチ法)により測定波長450nm、副波長630nmで
の吸光度を測定した結果を示すグラフである。
FIG. 4 shows monoclonal antibody-enzyme-labeled F (a
b ′) In a two- polyclonal antibody system, mouse myeloma-derived standard IgE (32 ng / ml) was diluted by 2-fold serial dilution, and the method of the example of the present invention (solid-phase sandwich method based on the principle of ELISA) was used. It is a graph which shows the result of having measured the light absorbency in measurement wavelength 450nm and subwavelength 630nm.

【図5】図5は、マウス血清検体を測定系に0.0625μ
l、0.125μl、0.25μl用いて、本発明の実施例4の方法
(ELISAの原理に基づく、固相サンドイッチ法)により測
定波長450nm、副波長630nmでの吸光度を測定し濃度を図
4より算出したグラフである。
FIG. 5 shows that a mouse serum sample was applied to a measurement system at 0.0625 μm.
l, 0.125 μl, 0.25 μl using the method of Example 4 of the invention
5 is a graph in which the absorbance at a measurement wavelength of 450 nm and a sub-wavelength of 630 nm was measured by (solid-phase sandwich method based on the principle of ELISA), and the concentration was calculated from FIG. 4.

Claims (15)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 マウスIgEの少なくとも一部を認識する
抗体を含み、抗原抗体反応をマウスIgE非含有血清の存
在下で行うことを特徴とする、対象試料中のマウスIgE
を測定するための測定キット。
1. A mouse IgE in a target sample comprising an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE, wherein the antigen-antibody reaction is performed in the presence of mouse IgE-free serum.
Measurement kit for measuring.
【請求項2】 前記抗体として、ポリクローナル抗体及
びモノクローナル抗体の二種類の組み合わせを使用する
請求項1に記載の測定キット。
2. The measurement kit according to claim 1, wherein two kinds of combinations of a polyclonal antibody and a monoclonal antibody are used as the antibody.
【請求項3】 前記ポリクローナル抗体がF(ab’)
はFab’の形態である、請求項1又は2に記載の測定キ
ット。
3. The measurement kit according to claim 1, wherein the polyclonal antibody is in the form of F (ab ′) 2 or Fab ′.
【請求項4】 前記血清がウサギ、モルモット、ラッ
ト、マウス、ヤギ、ヒツジ、ウマ、ブタ、又はニワトリ
由来の血清である、請求項1ないし3のいずれか一項に
記載の測定キット。
4. The assay kit according to claim 1, wherein the serum is a serum derived from rabbit, guinea pig, rat, mouse, goat, sheep, horse, pig, or chicken.
【請求項5】 測定方法としてエンザイムノアッセイを
用いる、請求項1ないし4のいずれか一項に記載の測定
キット。
5. The measurement kit according to claim 1, wherein an enzyme immunoassay is used as a measurement method.
【請求項6】 測定方法としてラジオイムノアッセイを
用いる、請求項1ないし4のいずれか一項に記載の測定
キット。
6. The measurement kit according to claim 1, wherein a radioimmunoassay is used as a measurement method.
【請求項7】 測定方法としてフルオロイムノアッセイ
を用いる、請求項1ないし4のいずれか一項に記載の測
定キット。
7. The measurement kit according to claim 1, wherein a fluoroimmunoassay is used as a measurement method.
【請求項8】 測定方法としてケミルミネッセンスイム
ノアッセイを用いる、請求項1ないし4のいずれか一項
に記載の測定キット。
8. The measurement kit according to claim 1, wherein a chemiluminescence immunoassay is used as a measurement method.
【請求項9】 測定方法として時間分解蛍光免疫測定法
を用いる、請求項1ないし4のいずれか一項に記載の測
定キット。
9. The measurement kit according to claim 1, wherein a time-resolved fluorescence immunoassay is used as the measurement method.
【請求項10】測定方法として粒子の凝集を指標とする
イムノアッセイを用いる、請求項1ないし4のいずれか
一項に記載の測定キット。
10. The measurement kit according to claim 1, wherein an immunoassay using the aggregation of particles as an index is used as a measurement method.
【請求項11】前記粒子がラテックス粒子である請求項
10に記載の測定キット。
11. The measurement kit according to claim 10, wherein said particles are latex particles.
【請求項12】マウスIgEの少なくとも一部を認識する
抗体を用い、抗原抗体反応をマウスIgE非含有血清の存
在下で行うことを特徴とする、対象試料中のマウスIgE
を測定するための測定方法。
12. A mouse IgE in a target sample, wherein an antigen-antibody reaction is performed in the presence of a mouse IgE-free serum using an antibody that recognizes at least a part of mouse IgE.
A measuring method for measuring.
【請求項13】前記対象試料が、血漿、血清または細胞
培養上清から選ばれる請求項12に記載の測定方法。
13. The method according to claim 12, wherein the target sample is selected from plasma, serum, or cell culture supernatant.
【請求項14】抗原抗体反応溶液中の該マウスIgE非含
有血清の最終濃度が、5容量%〜90容量%である、請
求項12に記載の測定方法。
14. The method according to claim 12, wherein the final concentration of the mouse IgE-free serum in the antigen-antibody reaction solution is 5% by volume to 90% by volume.
【請求項15】対象試料中に含まれる0.5ng/ml以上
のマウスIgEが検出可能である、請求項12に記載の測
定方法。
15. The method according to claim 12, wherein mouse IgE of 0.5 ng / ml or more contained in the target sample can be detected.
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2005009427A1 (en) * 2003-07-29 2005-02-03 Cell Signals Inc. Curative medicine for allergosis
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