JP2000217595A - Screening of cd14 agonist or antagonist - Google Patents

Screening of cd14 agonist or antagonist

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JP2000217595A
JP2000217595A JP11332587A JP33258799A JP2000217595A JP 2000217595 A JP2000217595 A JP 2000217595A JP 11332587 A JP11332587 A JP 11332587A JP 33258799 A JP33258799 A JP 33258799A JP 2000217595 A JP2000217595 A JP 2000217595A
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lipopolysaccharide
compound
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mfi
labeled
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Japanese (ja)
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Katsunori Takashima
勝典 高島
Yuji Iizawa
祐史 飯澤
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Takeda Pharmaceutical Co Ltd
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Takeda Chemical Industries Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To screen a compound capable of changing the affinity of a lipopolysaccharide and CD14 and effective for treating diseases caused by lipopolysaccharide of bacteria by using a labeled lipopolysaccharide and a cell containing expressed membrane-bonded CD14. SOLUTION: A compound capable of changing the affinity of a lipopolysaccharide and CD14 is screened by using a lipopolysaccharide labeled with fluorescein isothiacyanate, biotin, enzyme, radioactive isotope, etc., and a cell containing about >=100,000 molecules of expressed membrane-bonded CD14 based on one cell and measuring, by flow cytometry, the mean fluorescence intensity(MFI) generated by contacting the labeled lipopolysaccharide with the cell containing expressed membrane-bonded CD14, the MFI generated by contacting the labeled lipopolysaccharide with the test compound and the cell containing expressed membrane-bonded CD14 and the MFI generated by contacting the labeled lipopolysaccharide with an anti-CD14 antibody and the cell containing expressed CD14.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、リポ多糖とCD1
4の結合性を変化させる化合物を効率良く見出すための
高感度スクリーニング方法を提供する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to lipopolysaccharide and CD1
And a high-sensitivity screening method for efficiently finding a compound that changes the binding property of No. 4.

【0002】[0002]

【従来の技術】高度の侵襲に対する不適切あるいは過度
の生体反応によって起こる全身性の炎症反応を伴った症
候群(systemic inflammatory response syndrome(SIR
S))のなかで最も顕著な病態であるセプティックショ
ック、特にグラム陰性菌による重症感染症に対して抗菌
薬を投与した際に、溶菌した菌体から遊離したエンドト
キシンであるリポ多糖(LPS)によって引き起こされ
るセプティックショックが抗菌薬治療における大きな問
題となっている。セプティックショックは細菌感染の際
に遊離してくる菌体成分による主に単球系の細胞の活性
化およびこれらの細胞からの各種メディエーターの過剰
産生が原因で引き起こされる。細菌感染の際に遊離した
菌体成分がマクロファージ等の標的細胞を活性化するた
めには、標的細胞側の受容体が菌体成分を認識する必要
があるが、近年の研究により、標的細胞による菌体成分
の認識にはマクロファージ・単球の分化抗原であるCD
14が重要な役割を果たしていることが明らかにされた
(Science, 1990年249巻1431頁)。CD14は膜結合型
(mCD14)と可溶化型(sCD14)の2形態で存在す
る。mCD14は膜貫通領域を持たず、グリコシルホス
ファチジルイノシトールにより細胞表面上に留められた
アンカー蛋白質である。一方、sCD14は血清中に存
在し、肝臓で合成されるものとマクロファージや単球等
の表面よりホスファチジルイノシトール特異的ホスホリ
パーゼの作用により切り出されてくるものとがある(Mo
l. Immunol., 1989年26巻657頁)。mCD14への菌体
成分の結合において、グラム陰性菌の場合、菌体成分の
1種であるLPSが血清中の急性期蛋白であるLPS結
合蛋白質(LBP)と複合体を形成する。LBPは触媒的
な作用を有し、mCD14へのLPSの結合を促進する
(Annu. Rev. Immunol., 1995年13巻437頁)。菌体成分
により活性化された細胞からはTNF-α、IL−1、
IL−6、IL−8等のサイトカイン、一酸化窒素(N
O)、スーパーオキサイド、血小板活性化因子(PA
F)およびアラキドン酸カスケード産物等の種々のメデ
ィエーターが産生される(Clin. Infect. Dis., 1994年
18巻(Suppl. 2)S205頁)。これらのメディエーターは
各々が複数の活性を発現し、相互に関連し合っているた
めに活性の発現は複数多岐にわたり、活性が過剰に発現
された場合には生体に障害的な作用を及ぼす。その結
果、血圧低下、汎発性血管内血液凝固症候群(DI
C)、成人性呼吸窮迫症候群(ARDS)、呼吸不全、
多臓器不全(MODS)等、重篤で多彩な臨床症状が生
じる(Clin. Infect. Dis., 1994年18巻(Suppl. 2)S2
05頁)。前述のようにセプティックショックは細菌感染
の際に遊離してくる菌体成分による主に単球系の細胞の
活性化およびこれらの細胞からの各種メディエーターの
過剰産生が原因で引き起こされ(Clin. Infect. Dis.,
1994年18巻(Suppl. 2)S205頁)、その治療薬も菌側因
子をブロックする方法と、宿主側因子をブロックする方
法が研究されている。グラム陰性菌由来の菌側因子をブ
ロックすることによる治療方法としては、(1)抗エン
ドトキシンモノクローナル抗体を用いる方法(Infect.
Immun., 1993年61巻3863頁、JAMA, 1991年266巻1097
頁)、(2)BPI(Bactericidal Permeability-Incre
asing Protein)を用いる方法(Antimicrob. Agents Che
mother.,1996年40巻65頁)、(3)エンドトキシンアン
タゴニストを用いる方法(Science, 1995年268巻80頁、W
O9639411)、(4)ポリミキシンBを用いる方法(第36
回ICAAC)、(5)HDL(High-density Lipoprotein)
を用いる方法(J. Exp. Med., 1996年184巻1601頁)、
(6)LPS生合成阻害による方法(Science, 1996年2
74巻980頁)等が研究されている。また、宿主側因子
(マクロファージの活性化により過剰産生されたTNF
−α、IL−1、NO、PAF等の種々のメディエータ
ー)をブロックすることによる治療方法としては、(1
a)抗TNF-α抗体を用いる方法(Nature, 1987年330
巻662頁、Lancet, 1998年351巻929頁)、(1b)可溶
性TNF-α受容体を用いる方法(第36回ICAAC)、(1
c)TNF-α産生抑制による方法(Nature, 1994年370
巻558頁、Nature, 1994年370巻218頁)、(2)IL−
1受容体アンタゴニストを用いる方法(J. Exp. Med.,
1991年173巻1029頁、JAMA, 1994年271巻1836頁)あるい
はIL−1β変換酵素阻害による方法(J. Antibiot.,
1996年49巻333頁、(3)抗E-セレクチン抗体を用いる
方法(Inflamm. Res., 1996年45巻448頁、Crit. Care.
Med.,1996年24巻229頁)等が研究されている。宿主側因
子を制御するセプティックショック治療薬はその作用機
序からグラム陽性菌および陰性菌の両方のセプティック
ショックを治療することが可能であるが、セプティック
ショックでは複数のメディエーターが相互に関連しあっ
て複数多岐にわたる活性を発現していることから、上記
のような単一のメディエーターを抑制するような方法で
臨床試験において効果のみられたものはない。また、菌
側因子を制御するセプティックショック治療薬について
はそのほとんどが上記のようなグラム陰性菌のLPSが
作用標的であり、グラム陽性菌と陰性菌で宿主の細胞活
性化因子が異なることから、菌側因子そのものを制御す
る方法ではグラム陽性菌と陰性菌の両方のセプティック
ショックを治療することはできない。しかしながら、グ
ラム陽性菌および陰性菌感染で遊離してくる菌体成分が
ともに宿主の標的細胞表面上に存在するmCD14に結
合し、細胞を活性化していることが明らかになった(Im
munity, 1994年1巻509頁)。したがって、mCD14へ
の菌側因子の結合を阻害し、細胞の活性化を抑制するよ
うな薬剤は、グラム陰性菌と陽性菌の両方のセプティッ
クショックを治療できる可能性がある。Infection and
Immunity, June 1997年2272-2277頁には、フルオレッセ
ンイソチアシアネート(FITC)とLPSの結合比率
(FITC/LPS)が1:0.9であるFITC標識
LPSと単核球との結合試験が開示されており、Infect
ion and Immunity, Feb. 1998年486-491頁には、FIT
C標識LPSと1,25−ジヒドロキシビタミンD3
よりmCD14を高発現させたTHP−1細胞の結合試
験が開示されている。
2. Description of the Related Art A systemic inflammatory response syndrome (SIR) caused by an inappropriate or excessive biological response to a severe invasion.
Lipopolysaccharide (LPS), an endotoxin released from lysed cells when an antibacterial agent is administered to septic shock, the most prominent condition among S)), especially severe infections caused by gram-negative bacteria The septic shock caused by is a major problem in antimicrobial treatment. Septic shock is caused mainly by the activation of monocyte cells by bacterial components released during bacterial infection and the overproduction of various mediators from these cells. In order for bacterial components released during bacterial infection to activate target cells such as macrophages, the receptor on the target cell side needs to recognize the bacterial components. CD which is differentiation antigen of macrophages and monocytes
14 was found to play an important role (Science, 1990, 249: 1431). CD14 is membrane-bound
(mCD14) and solubilized form (sCD14). mCD14 has no transmembrane domain and is an anchor protein anchored on the cell surface by glycosylphosphatidylinositol. On the other hand, sCD14 is present in serum and is synthesized in the liver, or is excised from the surface of macrophages or monocytes by the action of phosphatidylinositol-specific phospholipase (Mo).
l. Immunol., 1989 26: 657). In the binding of bacterial components to mCD14, in the case of Gram-negative bacteria, LPS, one of the bacterial components, forms a complex with LPS-binding protein (LBP), which is an acute phase protein in serum. LBP has a catalytic action and promotes the binding of LPS to mCD14 (Annu. Rev. Immunol., 1995, 13: 437). From cells activated by the bacterial cell components, TNF-α, IL-1,
Cytokines such as IL-6 and IL-8, nitric oxide (N
O), superoxide, platelet activating factor (PA
F) and various mediators such as arachidonic acid cascade products are produced (Clin. Infect. Dis., 1994)
18 (Suppl. 2) S205). Each of these mediators expresses a plurality of activities, and since these mediators are related to each other, the expression of the activities is diversified, and when the activities are overexpressed, they exert a detrimental effect on the living body. As a result, hypotension, generalized intravascular coagulation (DI)
C), adult respiratory distress syndrome (ARDS), respiratory failure,
Serious and diverse clinical symptoms such as multiple organ failure (MODS) occur (Clin. Infect. Dis., 1994, 18 (Suppl. 2) S2
05). As described above, septic shock is caused mainly by the activation of monocyte cells by bacterial components released during bacterial infection and the overproduction of various mediators from these cells (Clin. Infect. Dis.,
1994, 18 (Suppl. 2, p. S205), a method of blocking bacterial factors and a method of blocking host factors have also been studied. As a treatment method by blocking bacterial side factors derived from Gram-negative bacteria, (1) a method using an anti-endotoxin monoclonal antibody (Infect.
Immun., 1993, 613863, JAMA, 1991, 266 1097
Page), (2) BPI (Bactericidal Permeability-Incre)
asing Protein) (Antimicrob. Agents Che
mother., 1996, 40, 65), (3) Method using an endotoxin antagonist (Science, 1995, 268, 80, W
O9639411), (4) Method using polymyxin B (No. 36)
Times ICAAC), (5) HDL (High-density Lipoprotein)
(J. Exp. Med., 1996, 184, 1601),
(6) Method by inhibition of LPS biosynthesis (Science, 1996, 2
74, p. 980). In addition, host-side factors (TNF overproduced by macrophage activation)
The treatment method by blocking various mediators such as -α, IL-1, NO, PAF, etc. includes (1)
a) Method using anti-TNF-α antibody (Nature, 1987, 330)
Volume 662, Lancet, 1998, Volume 351 929), (1b) Method using soluble TNF-α receptor (36th ICAAC), (1)
c) Method by suppressing TNF-α production (Nature, 370, 1994)
558, Nature, 1994, 370, 218), (2) IL-
1 receptor antagonist (J. Exp. Med.,
1991, 173, 1029, JAMA, 271, 1836, 1994) or a method by inhibiting IL-1β converting enzyme (J. Antibiot.,
1996 49: 333, (3) Method using anti-E-selectin antibody (Inflamm. Res., 1996 45: 448, Crit. Care.
Med., 1996, 24: 229). Septic shock drugs that control host factors can treat both Gram-positive and negative bacterium septic shock because of their mechanism of action, but septic shock involves multiple mediators However, since they exhibit a wide variety of activities, none of them has been effective in clinical trials by a method that suppresses a single mediator as described above. In addition, most of septic shock drugs that control bacterial side factors are targeted by LPS of Gram-negative bacteria as described above, and host cell activating factors differ between Gram-positive bacteria and negative bacteria. However, it is not possible to treat both gram-positive and negative bacterium septic shock by controlling the bacterial factor itself. However, it was revealed that both bacterial components released by infection with Gram-positive bacteria and negative bacteria both bind to mCD14 present on the surface of the target cell of the host and activate the cells (Im
munity, 1994, vol. 1, p. 509). Therefore, an agent that inhibits the binding of bacterial side factors to mCD14 and suppresses cell activation may be able to treat septic shock of both Gram-negative and positive bacteria. Infection and
Immunity, June 1997, pages 2272-2277, describes a binding test between FITC-labeled LPS and mononuclear cells in which the binding ratio of fluorescein isothiocyanate (FITC) to LPS (FITC / LPS) is 1: 0.9. Disclosed and Infect
ion and Immunity, Feb. 1998, pages 486-491
A binding test of THP-1 cells in which mCD14 is highly expressed by C-labeled LPS and 1,25-dihydroxyvitamin D 3 is disclosed.

【0003】[0003]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、(1)リポ
多糖とCD14との結合性を変化させる化合物のスクリ
ーニング方法、(2)該スクリーニング用キット、
(3)該スクリーニング方法またはスクリーニング用キ
ットを用いて得られうるリポ多糖とCD14との結合性
を変化させる化合物(例えば、細菌感染で遊離する菌体
成分と膜結合性CD14との結合を阻害することによ
り、細胞の活性化を抑制するような化合物、すなわちC
D14アンタゴニスト等)および(4)リポ多糖とCD
14との結合性を変化させる化合物を含有する医薬(例
えば、前記アンタゴニストを含有するセプティックショ
ック治療薬等)を含有する医薬等を提供する。
DISCLOSURE OF THE INVENTION The present invention provides (1) a method for screening a compound that changes the binding property between lipopolysaccharide and CD14, (2) a kit for the screening,
(3) Compounds that alter the binding between lipopolysaccharide and CD14 that can be obtained using the screening method or the screening kit (for example, inhibit the binding between bacterial components released by bacterial infection and membrane-bound CD14) Thus, a compound that suppresses cell activation, that is, C
D4 antagonist etc.) and (4) Lipopolysaccharide and CD
It is intended to provide a drug or the like containing a drug (for example, a therapeutic agent for septic shock or the like containing the antagonist) containing a compound that alters the binding to 14 or the like.

【0004】[0004]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の課
題に鑑み、鋭意研究を重ねた結果、ヒト単球細胞THP
−1を1,25−ジヒドロキシビタミンD3存在下で培
養してmCD14の発現を誘導し、FITCで標識され
たLPSを被検化合物とともに該mCD14発現誘導細
胞に加え、反応後、細胞を洗浄し、細胞に付着したLP
Sを蛍光強度で検出するという新規なスクリーニング方
法を用いることにより、LPSとCD14の結合性を変
化させる化合物、すなわち蛍光強度を変化させた化合物
を効率良くスクリーニングできることを見出し、本発明
を完成するに至った。
Means for Solving the Problems In view of the above problems, the present inventors have conducted intensive studies and as a result, have found that human monocyte cells THP
-1 was cultured in the presence of 1,25-dihydroxyvitamin D 3 to induce mCD14 expression, LPS labeled with FITC was added to the mCD14 expression-inducing cells together with the test compound, and after the reaction, the cells were washed. LP attached to cells
By using a novel screening method of detecting S by fluorescence intensity, it has been found that a compound that changes the binding property between LPS and CD14, that is, a compound with changed fluorescence intensity, can be efficiently screened. Reached.

【0005】すなわち、本発明は、(1)標識されたリ
ポ多糖(以下、LPSと略記)および膜結合型CD14
(以下、mCD14と略記)を発現した細胞を用いるこ
とを特徴とするLPSとCD14との結合性を変化させ
る化合物のスクリーニング方法、(2)LPSがフルオ
レッセンイソチアシアネート、ビオチン、酵素または放
射性同位元素で標識されたLPSである第(1)項記載
のスクリーニング方法、(3)LPSがラフ型LPSで
ある第(1)項記載のスクリーニング方法、(4)LP
Sがフルオレッセンイソチアシアネートで標識されたL
PSである第(1)項記載のスクリーニング方法、
(5)結合比率(フルオレッセンイソチアシアネート/
LPS)が約0.03ないし約1.0であるフルオレッ
センイソチアシアネートで標識されたLPS、およびm
CD14が高発現した細胞を用いる第(1)項記載のス
クリーニング方法、(6)細胞あたりmCD14を約1
00,000分子以上発現している細胞を用いる第
(1)項または第(5)項記載のスクリーニング方法、
(7)細胞が1,25−ジヒドロキシビタミンD3によ
りmCD14の発現を誘導させた細胞である第(1)項
記載のスクリーニング方法、(8)細胞が単核球または
多形核球である第(1)項記載のスクリーニング方法、
(9)細胞が単球、マクロファージまたは好中球である
第(1)項記載のスクリーニング方法、(10)細胞が
ヒト細胞である第(1)項記載のスクリーニング方法、
(11)細胞がTHP−1である第(1)項記載のスク
リーニング方法、(12)細胞約106個当り約1ng
ないし約30ngの標識LPSを使用する第(1)項記
載のスクリーニング方法、(13)(i)標識されたL
PSとmCD14を発現した細胞とを接触させた場合
と、(ii)標識されたLPSおよび試験化合物とmCD
14を発現した細胞とを接触させた場合における、標識
したLPSとmCD14との結合性を測定することを特
徴とする第(1)項記載のスクリーニング方法、(1
4)フローサイトメトリー法を用いて、(i)標識され
たLPSとmCD14を発現した細胞とを接触させたと
きの平均蛍光強度(Mean fluorescence intensity(M
FI))値、(ii)標識されたLPSおよび試験化合物
とmCD14を発現した細胞とを接触させたときのMF
I値、および(iii)標識されたLPSおよび抗CD1
4抗体とmCD14を発現した細胞とを接触させたとき
のMFI値を測定し、次式(I) 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることを
特徴とするLPSとCD14との結合性を変化させる化
合物のスクリーニング方法、(15)LPSとCD14
との結合性を変化させる化合物がCD14アンタゴニス
トである第(1)項記載のスクリーニング方法、(1
6)LPSとCD14との結合性を変化させる化合物が
CD14アゴニストである第(1)項記載のスクリーニ
ング方法、(17)第(13)項または第(14)項記
載のスクリーニング方法で得られた化合物のLPS様作
用の有無を測定することを特徴とするCD14アゴニ
スト、CD14アンタゴニスト、mCD14に結合
しないが、LPS、CD14またはLPS結合蛋白質
(以下、LBPと略記)に作用して、LPSとCD14
との結合を阻害する化合物またはLPSとCD14と
の結合を促進する化合物のスクリーニング方法、(1
8)LPS様作用がTNF−α、IL−1、IL−6、
IL−8、NO、スーパーオキサイド、血小板活性化因
子またはアラキドン酸カスケード産物の産生である第
(17)項記載のスクリーニング方法、(19)標識さ
れたLPSおよびmCD14が発現した細胞を含有す
る、LPSとCD14との結合性を変化させる化合物の
スクリーニング用キット、(20)第(1)項記載のス
クリーニング方法で得られうるLPSとCD14との結
合性を変化させる化合物またはその誘導体、(21)第
(17)項記載のスクリーニング方法で得られうるC
D14アゴニスト、CD14アンタゴニスト、mC
D14に結合しないが、LPS、CD14またはLBP
に作用して、LPSとCD14との結合を阻害する化合
物、LPSとCD14との結合を促進する化合物また
はその誘導体、(22)第(1)項記載のスクリーニン
グ方法で得られうるLPSとCD14との結合性を変化
させる化合物またはその誘導体を含有してなるセプティ
ックショックの予防・治療剤、(23)化合物がCD1
4アンタゴニストである第(22)項記載のセプティッ
クショックの予防・治療剤、(24)化合物がmCD1
4と結合しないが、LPS、CD14またはLBPに作
用して、LPSとCD14との結合を阻害する化合物で
ある第(22)項記載のセプティックショックの予防・
治療剤、(25)第(1)項記載のスクリーニング方法
で得られうるLPSとCD14との結合性を変化させる
化合物またはその誘導体を含有してなる免疫賦活剤、
(26)化合物がCD14アゴニストである第(25)
項記載の免疫賦活剤、(27)化合物がLPSとCD1
4との結合を促進する化合物である第(25)項記載の
免疫賦活剤、(28)(A)(i)標識されたLPSと
mCD14を発現した細胞とを接触させた場合と、(i
i)標識されたLPSおよび試験化合物とmCD14を
発現した細胞とを接触させた場合における、標識したL
PSとmCD14との結合性を測定するか、または
(B)フローサイトメトリー法を用いて、(i)標識さ
れたLPSとmCD14を発現した細胞とを接触させた
ときの平均蛍光強度(Mean fluorescence intensity
(MFI))値、(ii)標識されたLPSおよび試験化
合物とmCD14を発現した細胞とを接触させたときの
MFI値、および(iii)標識されたLPSおよび抗C
D14抗体とmCD14を発現した細胞とを接触させた
ときのMFI値を測定し、次式 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることに
より、LPSとCD14との結合性を変化させる化合物
を選択し、次いで、選択した化合物のTNF−α、IL
−1、IL−6、IL−8、NO、スーパーオキサイ
ド、血小板活性化因子またはアラキドン酸カスケード産
物の産生誘導活性を測定し、(a)該産生誘導活性を有
する化合物をCD14アゴニストまたはLPSとC
D14との結合を促進する化合物として選択し、(b)
該産生誘導活性を有しない化合物をCD14アンタゴ
ニストまたはmCD14に結合しないが、LPS、C
D14またはLBPに作用して、LPSとCD14との
結合を阻害する化合物として選択することを特徴とす
る、CD14アゴニスト、LPSとCD14との結
合を促進する化合物、CD14アンタゴニストまたは
mCD14に結合しないが、LPS、CD14または
LBPに作用して、LPSとCD14との結合を阻害す
る化合物のスクリーニング方法、および(29)コンビ
ナトリアルケミストリー技術により製造され得る化合物
ライブラリーの中から、第(28)項記載のスクリーニ
ング方法を用いて選択されたCD14アゴニスト、
LPSとCD14との結合を促進する化合物、CD1
4アンタゴニスト、mCD14に結合しないが、LP
S、CD14またはLBPに作用して、LPSとCD1
4との結合を阻害する化合物またはその誘導体に関す
る。
That is, the present invention provides (1) labeled lipopolysaccharide (hereinafter abbreviated as LPS) and membrane-bound CD14
(Hereinafter, abbreviated as mCD14), a method for screening a compound that changes the binding property between LPS and CD14, and (2) LPS is fluorescein isothiocyanate, biotin, an enzyme or a radioisotope. The screening method according to (1), wherein the LPS is an element-labeled LPS, (3) the screening method according to (1), wherein the LPS is a rough LPS, (4) LP.
L in which S is labeled with fluorescein isothiocyanate
The screening method according to (1), which is PS.
(5) Bonding ratio (fluorescein isothiocyanate /
LPS labeled with fluorescein isothiocyanate having an LPS of about 0.03 to about 1.0, and m.
(1) The screening method according to the above (1), which uses cells in which CD14 is highly expressed;
The screening method according to the above (1) or (5), wherein a cell expressing not less than 000 molecules is used,
(7) The screening method according to (1), wherein the cell is a cell in which mCD14 expression is induced by 1,25-dihydroxyvitamin D 3 , (8) a method wherein the cell is a mononuclear cell or a polymorphonuclear cell. (1) the screening method according to the above,
(9) the screening method according to (1), wherein the cells are monocytes, macrophages or neutrophils; (10) the screening method according to (1), wherein the cells are human cells;
(11) The screening method according to (1), wherein the cells are THP-1, (12) about 1 ng per about 10 6 cells.
The screening method according to (1), wherein from about 30 ng of labeled LPS is used, (13) (i) labeled L
The case where PS and mCD14-expressing cells were brought into contact with each other, and (ii) labeled LPS and a test compound and mCD14.
14. The screening method according to item (1), wherein the binding between the labeled LPS and mCD14 is measured when the cells are brought into contact with cells that have expressed 14;
4) The mean fluorescence intensity (Mean fluorescence intensity (M) when the labeled LPS and the cells expressing mCD14 were brought into contact with each other using the flow cytometry method.
FI)) value, (ii) MF upon contact of labeled LPS and test compound with cells expressing mCD14
I value, and (iii) labeled LPS and anti-CD1
The MFI value when the antibody 4 and mCD14-expressing cells were contacted was measured, and the following formula (I) inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = MFI when test compound was added-MFI when anti-CD14 antibody was added MFI 2 = MFI when test compound was not added-anti-CD14
(15) a method for screening a compound that alters the binding between LPS and CD14, wherein the inhibition rate is determined by MFI when an antibody is added, (15) LPS and CD14
(1) The screening method according to (1), wherein the compound that alters the binding to CD1 is a CD14 antagonist.
6) The screening method according to (1), (17) or (14), wherein the compound that alters the binding between LPS and CD14 is a CD14 agonist. The compound does not bind to a CD14 agonist, a CD14 antagonist, or mCD14, but does not bind to LPS, CD14, or LPS-binding protein (hereinafter, abbreviated as LBP).
A method for screening a compound that inhibits the binding to CD14 or a compound that promotes the binding between LPS and CD14, (1
8) LPS-like action is TNF-α, IL-1, IL-6,
(17) The screening method according to (17), which is a production of IL-8, NO, superoxide, platelet activating factor or arachidonic acid cascade product, (19) LPS containing labeled LPS and cells expressing mCD14 Kit for screening for a compound that alters the binding between CDS and CD14, (20) a compound or a derivative thereof that alters the binding between LPS and CD14 obtainable by the screening method described in (1), (21) C obtained by the screening method described in (17).
D14 agonist, CD14 antagonist, mC
Does not bind to D14, but does not bind to LPS, CD14 or LBP
, A compound that inhibits the binding between LPS and CD14, a compound that promotes the binding between LPS and CD14, or a derivative thereof; (22) LPS and CD14 that can be obtained by the screening method described in (1). (23) a compound for preventing or treating septic shock, which comprises a compound that changes the binding property of CD1 or a derivative thereof;
(24) The preventive or therapeutic agent for septic shock according to (22), wherein the compound is mCD1
(2) a compound which does not bind to 4, but acts on LPS, CD14 or LBP to inhibit the binding between LPS and CD14.
A therapeutic agent, (25) an immunostimulant comprising a compound capable of changing the binding property between LPS and CD14 or a derivative thereof obtainable by the screening method according to (1),
(26) The compound (25) wherein the compound is a CD14 agonist
Item 27, wherein the compound is LPS and CD1
(28) (A) (i) a labeled LPS which is a compound that promotes binding to mCD14 and a cell that expresses mCD14,
i) Labeled L in the case of contacting cells expressing mCD14 with labeled LPS and a test compound.
The binding between PS and mCD14 is measured, or (B) the average fluorescence intensity (Mean fluorescence) when contacting (i) a cell expressing mCD14 with labeled LPS using flow cytometry. intensity
(MFI)) value, (ii) the MFI value when contacting cells expressing mCD14 with labeled LPS and test compound, and (iii) labeled LPS and anti-C
The MFI value when the D14 antibody was contacted with the cells expressing mCD14 was measured, and the following equation: Inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = MFI when added-MFI when anti-CD14 antibody was added MFI 2 = MFI when test compound was not added-anti-CD14
The compound that alters the binding between LPS and CD14 is selected by determining the inhibition ratio by MFI when an antibody is added, and then TNF-α, IL
-1, IL-6, IL-8, NO, superoxide, platelet activating factor or arachidonic acid cascade product production-inducing activity was measured. (A) A compound having the production-inducing activity was identified as a CD14 agonist or LPS and C
Selected as a compound that promotes the binding to D14, (b)
The compound having no production-inducing activity does not bind to CD14 antagonist or mCD14,
A CD14 agonist, a compound that promotes the binding of LPS to CD14, a CD14 antagonist or a compound that does not bind to mCD14, wherein the compound acts on D14 or LBP to inhibit the binding of LPS to CD14. The screening method according to (28), out of a method for screening a compound that acts on LPS, CD14 or LBP to inhibit the binding between LPS and CD14, and (29) a compound library that can be produced by combinatorial chemistry technology. A CD14 agonist selected using the method,
Compound that promotes binding between LPS and CD14, CD1
4 antagonist, does not bind to mCD14, but LP
Acting on S, CD14 or LBP, LPS and CD1
A compound that inhibits binding to No. 4 or a derivative thereof.

【0006】さらに、本発明は、(30)コンビナトリ
アルケミストリー技術により製造され得る化合物ライブ
ラリーの中から、第(28)項記載のスクリーニング方
法を用いて選択されたCD14アゴニスト、LPS
とCD14との結合を促進する化合物またはその誘導
体を含有してなる免疫賦活剤、および(31)コンビナ
トリアルケミストリー技術により製造され得る化合物ラ
イブラリーの中から、第(28)項記載のスクリーニン
グ方法を用いて選択されたCD14アンタゴニスト、
mCD14に結合しないが、LPS、CD14または
LBPに作用して、LPSとCD14との結合を阻害す
る化合物またはその誘導体を含有してなるセプティッ
クショックの予防・治療剤、(32)哺乳動物に対し
て、第(1)項記載のスクリーニング方法で得られうる
LPSとCD14との結合性を変化させる化合物または
その誘導体を有効量投与することを特徴とするセプティ
ックショックの予防・治療方法、(33)哺乳動物に対
して、第(1)項記載のスクリーニング方法で得られう
るLPSとCD14との結合性を変化させる化合物また
はその誘導体を有効量投与することを特徴とする免疫賦
活方法、(34)セプティックショックの予防・治療剤
を製造するための第(1)項記載のスクリーニング方法
で得られうるLPSとCD14との結合性を変化させる
化合物またはその誘導体の使用、および(35)免疫賦
活剤を製造するための第(1)項記載のスクリーニング
方法で得られうるLPSとCD14との結合性を変化さ
せる化合物またはその誘導体の使用に関する。
Further, the present invention relates to (30) a CD14 agonist, LPS selected from the compound library which can be produced by the combinatorial chemistry technique using the screening method described in (28).
(31) an immunostimulant containing a compound or a derivative thereof that promotes the binding between CD14 and CD14, and (31) a compound library that can be produced by combinatorial chemistry technology, using the screening method described in (28). A CD14 antagonist, selected from
a prophylactic / therapeutic agent for septic shock, comprising a compound or a derivative thereof that does not bind to mCD14 but acts on LPS, CD14 or LBP to inhibit the binding of LPS to CD14; (33) a method for preventing or treating septic shock, which comprises administering an effective amount of a compound or a derivative thereof that alters the binding between LPS and CD14, which can be obtained by the screening method described in (1). (34) an immunostimulatory method, which comprises administering to a mammal an effective amount of a compound or a derivative thereof that alters the binding between LPS and CD14, which can be obtained by the screening method described in (1), or (34) ) LPS and C obtainable by the screening method according to (1) for producing a prophylactic / therapeutic agent for septic shock Use of a compound or a derivative thereof that alters the binding to CD14, and (35) alters the binding between LPS and CD14 obtainable by the screening method described in (1) for producing an immunostimulating agent. It relates to the use of the compounds or derivatives thereof.

【0007】[0007]

【発明の実施の形態】(1)標識されたLPSの調製 本発明において、LPSとしては、サルモネラ菌、大腸
菌等のグラム陰性菌由来のものであればいかなるもので
も用いることができるが、いわゆるラフ型のものが好ま
しい。ラフ型はO抗原糖鎖がなく、スムース型よりも分
子量が小さいという特徴を有している。具体的には、サ
ルモネラ菌、なかでもSalmonella minnesota由来のもの
が好ましく、とりわけ、Re595(Sigma社)が好ま
しく用いられる。また、LPSそれ自身のみならず、リ
ピッドA(Lipid A)等の各種誘導体、異性体等も用い
ることができるが、これらを含めて、以下単にLPSと
略称する。本発明において、LPSは、化学的もしくは
生物化学的な方法によって検出され得る標識化合物、ま
たは放射性同位元素等によって標識されることが必要で
ある。該標識化合物としては、例えば、FITC、ビオ
チン(biotin)、酵素等が用いられる。FITCとして
は、FITCそれ自身のみならず、各種誘導体(例え
ば、フルオレッセン−5−イソチアシアネート(FIT
Cisomer I)、フルオレッセン−6−イソチアシアネ
ート(FITCisomer II)など)等も用いることがで
きるが、以下単にFITCと略称する。本発明において
は、FITCisomer I(同仁社)が好ましく用いられ
る。ビオチンとしては、例えば、biotin-LC-hydrazide
(biotinamido hexanoyl hydorazide)、biotin-LC-ASA
(1-(4-azidosalicylamide)-6-(biotinamido)-hexene)
等が用いられる。酵素としては、例えば、アルカリフォ
スファターゼ(alkaline phosphatase)、西洋ワサビパ
ーオキシダーゼ(horseradish peroxidase)等が用いら
れる。放射性同位元素としては、例えば、[3H]、[
51Cr]、[125I]等が用いられる。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION (1) Preparation of labeled LPS In the present invention, any LPS derived from Gram-negative bacteria such as Salmonella and Escherichia coli can be used. Are preferred. The rough type has no O-glycan, and has a characteristic that the molecular weight is smaller than that of the smooth type. Specifically, Salmonella bacteria, especially those derived from Salmonella minnesota, are preferred, and Re595 (Sigma) is particularly preferred. In addition, not only LPS itself, but also various derivatives such as Lipid A (Lipid A), isomers and the like can be used. In the present invention, LPS needs to be labeled with a labeled compound that can be detected by a chemical or biochemical method, a radioisotope, or the like. As the labeling compound, for example, FITC, biotin, an enzyme and the like are used. As FITC, not only FITC itself but also various derivatives (for example, fluorescein-5-isothiocyanate (FIT
Cisomer I), fluorescein-6-isothiocyanate (FITC isomer II) and the like can also be used, but are simply abbreviated as FITC below. In the present invention, FITC Isomer I (Dojinsha) is preferably used. As biotin, for example, biotin-LC-hydrazide
(biotinamido hexanoyl hydorazide), biotin-LC-ASA
(1- (4-azidosalicylamide) -6- (biotinamido) -hexene)
Are used. As the enzyme, for example, alkaline phosphatase, horseradish peroxidase, and the like are used. As the radioisotope, for example, [ 3 H], [
51 Cr], [ 125 I] and the like.

【0008】LPSの標識は、それ自体公知の方法によ
り行うことができる。例えば、LPSをFITCで標識
する場合、Infection and Immunity, June 1997年,227
2-2277頁等に記載の方法あるいはそれに準じた方法によ
り行うことができるが、具体的には、以下の方法あるい
はそれに準じた方法により行うことができる。まず、L
PS1mgあたりトリエチルアミン等の塩基を約10μl
ないし約2,000μl、好ましくは、約100μlない
し約1,000μl、より好ましくは、約500μl加
え、所望により超音波処理を行った後、エチレンジアミ
ンテトラ酢酸(EDTA)等のキレート剤(好ましく
は、100mM EDTA)を約1μlないし約200μ
l、好ましくは、約10μlないし約100μl、より好
ましくは、約50μl加え、所望によりさらに超音波処
理することにより、凝集したLPSを解離させる(好ま
しくは単量体にする)。該超音波処理は、通常約0℃な
いし室温で行うことができるが、好ましくは約4℃ない
し約20℃、特に約4℃ないし15℃で行うのが好まし
い。超音波処理時間は、約30秒ないし約60分間が好
ましく、なかでも約1分間ないし約30分間が好まし
く、特に約5分間ないし約20分間が好ましい。また、
塩基を加えた後、またはキレート剤を加えた後のどちら
か1回のみ超音波処理を行ってもよいし、それぞれを加
えた後に別個に行ってもよい。なかでも、塩基を加えた
後に約15分間、キレート剤を加えた後に約5分間処理
するのが好ましい。
[0008] The labeling of LPS can be performed by a method known per se. For example, when labeling LPS with FITC, Infection and Immunity, June 1997, 227
The method can be performed by the method described on page 2-2277 or the like or a method analogous thereto, and specifically, the method can be performed by the following method or a method analogous thereto. First, L
About 10μl of base such as triethylamine per 1mg of PS
To about 2,000 μl, preferably about 100 μl to about 1,000 μl, more preferably about 500 μl, and after sonication as desired, a chelating agent such as ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) (preferably 100 mM EDTA) from about 1 μl to about 200 μl
l, preferably about 10 μl to about 100 μl, more preferably about 50 μl, and if necessary, further sonication, to dissociate the aggregated LPS (preferably to a monomer). The sonication can be carried out generally at about 0 ° C. to room temperature, preferably at about 4 ° C. to about 20 ° C., particularly preferably at about 4 ° C. to 15 ° C. The sonication time is preferably about 30 seconds to about 60 minutes, more preferably about 1 minute to about 30 minutes, and particularly preferably about 5 minutes to about 20 minutes. Also,
The sonication may be performed only once after the addition of the base or after the addition of the chelating agent, or may be performed separately after each addition. In particular, it is preferable to perform the treatment for about 15 minutes after adding the base and for about 5 minutes after adding the chelating agent.

【0009】次いで、1N塩酸を用いてpHを約3ない
し約7、好ましくは約4ないし約6、より好ましくは約
5に調整した後、約4℃ないし約40℃、好ましくは約
4℃ないし約30℃、より好ましくは室温程度で、約3
0秒間ないし約15分間、好ましくは約1分間ないし約
10分間、より好ましくは約1分間ないし約5分間、特
に好ましくは約2分間放置する。1N水酸化ナトリウム
等を用いて反応液を中和した後、pHが約8ないし約1
1、好ましくは約9ないし約10、より好ましくは約
9.5の適当な緩衝液(例えば、ホウ酸緩衝液または炭
酸・重炭酸緩衝液等、好ましくは炭酸・重炭酸緩衝液、よ
り好ましくは約0.5M炭酸・重炭酸緩衝液等)に溶解
したFITC(FITC濃度は約1mg/mlないし約20
0mg/ml、好ましくは約5mg/mlないし約100mg/ml、
より好ましくは約25mg/ml)を加え、所望により超音
波処理を行う。該超音波処理は前記超音波処理と同様の
温度で行うのが好ましく、処理時間は約15秒間ないし
約15分間、好ましくは約30秒間ないし約5分間、よ
り好ましくは約1分間ないし約3分間であり、なかでも
約1分間行うのが好ましい。超音波処理後、約0.1%
ないし約10%、好ましくは約1.6%(w/v)の界
面活性剤(好ましくはデオキシコール酸塩(好ましくは
ナトリウム塩))を加え、約1時間ないし約48時間、
好ましくは、約6時間ないし約24時間、より好ましく
は、約18時間、約4℃ないし約40℃、好ましくは、
室温ないし約40℃、より好ましくは約37℃で、好ま
しくは遮光条件下に、攪拌しながらインキュベートす
る。インキュベート後、所望により蒸留水またはpHが
約3ないし11、好ましくは約6ないし約10の、LP
SとFITCの結合に影響を与えない適当な緩衝液等を
加えることにより反応液の液量を調節し、透析膜を用い
た透析、あるいはセファデックスG-25M(Pharmacia
Biotech社)等を用いたゲルろ過等によりLPSに結合
していない、いわゆる遊離のFITCを除去する。例え
ば、セファデックスG-25Mが充填されたPD-10カ
ラム(Pharmacia Biotech社)を用いる場合、反応液の
液量を蒸留水で2.5mlに調節し、PD−10カラムに
付し、溶出用緩衝液を3mlアプライして得られる溶出画
分をFITC標識LPSを含む画分とすることが出来
る。ゲルろ過用樹脂の平衡化および溶出用緩衝液として
は、pHが約6ないし約8のものであればいずれのもの
も用いることが出来るが、好ましくはPBSが、より好
ましくはDulbecco's PBS(大日本製薬社)が用いられ
る。該緩衝液には0.01%ないし1%、好ましくは
0.16%(いずれもw/v)の界面活性剤(好ましく
はデオキシコール酸塩(好ましくはナトリウム塩))を
加えることが好ましい。得られたFITC標識LPSの
FITC量は、Fluoroskan II(Labsystems社)等の蛍
光光度計を用いて、例えば、励起波長485nm、測定波
長538nmで測定することにより求めることが出来る。
Then, the pH is adjusted to about 3 to about 7, preferably about 4 to about 6, more preferably about 5 using 1N hydrochloric acid, and then about 4 ° C. to about 40 ° C., preferably about 4 ° C. to about 40 ° C. About 30 ° C., more preferably about room temperature, about 3
Leave for 0 seconds to about 15 minutes, preferably about 1 minute to about 10 minutes, more preferably about 1 minute to about 5 minutes, particularly preferably about 2 minutes. After neutralizing the reaction solution with 1N sodium hydroxide or the like, the pH is about 8 to about 1
1, preferably about 9 to about 10, more preferably about 9.5 of a suitable buffer (eg, borate buffer or carbonate / bicarbonate buffer, preferably carbonate / bicarbonate buffer, more preferably FITC dissolved in about 0.5 M carbonate / bicarbonate buffer (FITC concentration is about 1 mg / ml to about 20
0 mg / ml, preferably about 5 mg / ml to about 100 mg / ml,
More preferably, about 25 mg / ml) is added, and sonication is performed if desired. The sonication is preferably performed at the same temperature as the sonication, and the treatment time is about 15 seconds to about 15 minutes, preferably about 30 seconds to about 5 minutes, more preferably about 1 minute to about 3 minutes. In particular, it is preferably performed for about 1 minute. After sonication, about 0.1%
To about 10%, preferably about 1.6% (w / v) of a surfactant (preferably a deoxycholate (preferably a sodium salt)) for about 1 hour to about 48 hours,
Preferably, for about 6 hours to about 24 hours, more preferably for about 18 hours, about 4 ° C. to about 40 ° C., preferably
Incubate at room temperature to about 40 ° C., more preferably about 37 ° C., preferably under shading conditions, with stirring. After incubation, optionally, distilled water or LP with a pH of about 3 to 11, preferably about 6 to about 10,
The volume of the reaction solution was adjusted by adding an appropriate buffer or the like that did not affect the binding between S and FITC, and the volume was adjusted by dialysis using a dialysis membrane or Sephadex G-25M (Pharmacia).
The so-called free FITC which is not bound to LPS is removed by gel filtration using Biotech) or the like. For example, when a PD-10 column (Pharmacia Biotech) packed with Sephadex G-25M is used, the volume of the reaction solution is adjusted to 2.5 ml with distilled water, applied to the PD-10 column, and used for elution. The eluted fraction obtained by applying 3 ml of the buffer can be used as a fraction containing FITC-labeled LPS. As the buffer for equilibration and elution of the resin for gel filtration, any buffer having a pH of about 6 to about 8 can be used, but preferably PBS, more preferably Dulbecco's PBS (Dainippon) Pharmaceutical company) is used. It is preferable to add 0.01% to 1%, preferably 0.16% (all in w / v) of a surfactant (preferably deoxycholate (preferably sodium salt)) to the buffer. The amount of FITC in the obtained FITC-labeled LPS can be determined, for example, by using a fluorometer such as Fluoroskan II (Labsystems) at an excitation wavelength of 485 nm and a measurement wavelength of 538 nm.

【0010】前記したFITC標識LPSにおいて、L
PSに対するFITCの結合比率(FITC/LPS)として
は、例えば、次の〜のように設定するのが好まし
い。 約0.03〜約1.0 約0.1〜約1.0 約0.3〜約1.0 約0.3〜約0.8 約0.3〜約0.5 約0.3 このように、LPSに対するFITCの結合比率を特定
の割合に設定することによって、測定感度が上がり、よ
り低濃度のLPSで、すなわち、生体内でのLPS濃度
に近い条件で結合実験を行うことができる。したがっ
て、このようなFITC標識LPSを用いる後述の本発
明のスクリーニング方法によって、効率良く目的化合物
をスクリーニングすることができる。
In the FITC-labeled LPS described above, L
The binding ratio of FITC to PS (FITC / LPS) is preferably set, for example, as follows. About 0.03 to about 1.0 about 0.1 to about 1.0 about 0.3 to about 1.0 about 0.3 to about 0.8 about 0.3 to about 0.5 about 0.3 As described above, by setting the binding ratio of FITC to LPS to a specific ratio, the measurement sensitivity is increased, and a binding experiment can be performed with a lower concentration of LPS, that is, under conditions close to the LPS concentration in vivo. . Therefore, the target compound can be efficiently screened by the screening method of the present invention described below using such FITC-labeled LPS.

【0011】(2)mCD14を発現した細胞の調製 本発明に用いられる細胞は、mCD14を細胞表面に発
現しているものであればいかなるものでもよいが、mC
D14を高発現しているものが好ましく、具体的には、
細胞あたりmCD14を約100,000分子以上発現
しているものを用いることができ、なかでも、約10
0,000分子ないし約2,000,000分子、好ま
しくは約100,000分子ないし約1,500,00
0分子、より好ましくは約500,000分子ないし約
1,500,000分子、とりわけ好ましくは約1,0
00,000分子発現しているものが好ましく用いられ
る。本発明においては、より多く発現しているものであ
っても支障無く用いることができる。また、発現量が本
来的に高い細胞のみならず、mCD14の発現が誘導さ
れた細胞も好ましく用いることが出来る。mCD14の
発現誘導は、例えば、1,25−ジヒドロキシビタミン
3等によって行うことができる。該誘導剤は、通常、
細胞3×105個あたり約1ngないし約500ng、好ま
しくは、約10ngないし約100ng、より好ましくは約
30ngないし約40ng用いる。細胞の種類としては、例
えば、単核球、多形核球等が用いられ、好ましくは単
球、マクロファージ、好中球等が用いられる。なかで
も、単球が好ましく用いられる。該細胞は哺乳類(例、
モルモット、マウス、ネコ、イヌ、ブタ、ヒツジ、ウ
シ、サル、ヒト等)由来のものであればいかなるもので
も用いることが出来るが、なかでも、THP−1、HL
−60、U937、MonoMac−6等のヒト細胞が
好ましく用いられ、とりわけTHP−1が好ましく用い
られる。
(2) Preparation of cells expressing mCD14 Cells used in the present invention may be any cells as long as they express mCD14 on the cell surface.
Those that highly express D14 are preferred, and specifically,
Cells expressing mCD14 per cell of about 100,000 or more can be used.
0,000 to about 2,000,000 molecules, preferably about 100,000 to about 1,500,000 molecules.
0 molecules, more preferably from about 500,000 to about 1,500,000 molecules, particularly preferably about 1,0
Those expressing 000 molecules are preferably used. In the present invention, even those expressed more can be used without any problem. In addition, not only cells whose expression level is inherently high, but also cells in which mCD14 expression is induced can be preferably used. induction of the expression of mCD14, for example, can be performed by 1,25-dihydroxyvitamin D 3 and the like. The inducer is usually
About 1 ng to about 500 ng, preferably about 10 ng to about 100 ng, more preferably about 30 ng to about 40 ng per 3 × 10 5 cells. As the cell type, for example, mononuclear cells, polymorphonuclear cells, etc. are used, and preferably, monocytes, macrophages, neutrophils, etc. are used. Among them, monocytes are preferably used. The cell is a mammal (eg,
Guinea pigs, mice, cats, dogs, pigs, sheep, cows, monkeys, humans, etc.) can be used as long as they are derived from THP-1, HL, etc.
Human cells such as -60, U937 and MonoMac-6 are preferably used, and THP-1 is particularly preferably used.

【0012】本発明において最も好ましく用いられる細
胞は、具体的には後述の参考例2で得られる1,25−
ジヒドロキシビタミンD3によってmCD14の発現が
誘導されたTHP−1である。この細胞は、細胞あたり
mCD14を約1,000,000分子発現している
(Journal of Leukocyte Biology 61巻 June 1997年721
-728頁)。前記のように、本発明においてはCD14の
発現が誘導された細胞を用いることが出来るが、その誘
導はJournal of Leukocyte Biology 61巻 June 1997年7
21-728頁に記載の方法またはそれに準じた方法により行
うことが出来る。例えば、THP−1(大日本製薬社よ
り購入)等の細胞を約3×105個/mlとなるように適
当な培地(例えば、RPMImedium 1640 with L-gluta
mine(GIBCO社)に非働化ウシ胎児血清(GIBCO社)を1
0%(v/v)の濃度で、ペニシリン−ストレプトマイシ
ン(GIBCO社)をペニシリンGナトリウム、硫酸ストレ
プトマイシンとしてそれぞれ100 U/ml、100μg/mlの濃
度になるように加えたもの)に懸濁し、CD14の発現
を誘導する物質を適当量加える。具体的には、例えば、
1,25−ジヒドロキシビタミンD3(VD3; Roussel Uc
laf社)を最終濃度が約10nMないし約1000nMにな
るよう、好ましくは約50nMないし約500nMになるよ
う、より好ましくは約50nMないし約200nMになるよ
う、とりわけ好ましくは、最終濃度が約100nMとなる
よう加える。次に、例えば、CO2インキュベーターを
用いて約5%CO2存在下、約37℃で通常1日間ない
し7日間程度、好ましくは3日間程度培養することによ
りmCD14の発現の誘導を行うことができる。mCD
14の発現量は、CD14に対する抗体を用いることに
より測定することが出来る。CD14に対する抗体とし
ては、市販のものを用いることもできるし、CD14を
免疫原として、自体公知の方法に従って該抗体を製造す
ることもできる。mCD14の発現量の測定は、具体的
には、まずCD14の発現を誘導した細胞を約106
/mlとなるようにPBSに懸濁し、この細胞懸濁液に、
通常、約0.1μg/mlないし約10μg/ml、好ましくは
約1.6μg/mlの濃度でFITC標識抗ヒトCD14モノ
クローナル抗体clone.UCHM1(Ancell社)を加え、通常約
4℃ないし約25℃、好ましくは約4℃ないし15℃、
より好ましくは約4℃で、通常、約15分間ないし約2
4時間、好ましくは、約15分間ないし約12時間、よ
り好ましくは約30分間ないし約3時間、とりわけ好ま
しくは約1時間インキュベートする。細胞はPBSを用
いて通常1回ないし5回、好ましくは、3回遠心(1,000
rpm、3分、20℃)洗浄後、適量(例えば、1,000μl)の
PBSに懸濁し、フィルター付チューブ(FALCON2235[Be
cton Dickinson社])でろ過する。得られる細胞懸濁液に
ついて、通常10,000個の細胞に結合したFITC標識抗
CD14抗体量をフローサイトメーターCyto ACE-300
(日本分光社)を用いて測定する。溶出用緩衝液にはFACS
Flow(Becton Dickinson社)等を用いる。
The cells most preferably used in the present invention are, specifically, 1,25-cells obtained in Reference Example 2 described later.
This is THP-1 in which the expression of mCD14 is induced by dihydroxyvitamin D 3 . These cells express approximately 1,000,000 molecules of mCD14 per cell (Journal of Leukocyte Biology 61 June 1997 721
-728 pages). As described above, in the present invention, cells in which CD14 expression has been induced can be used, and the induction is carried out in the Journal of Leukocyte Biology 61 June 1997, July 1997.
It can be carried out by the method described on page 21-728 or a method analogous thereto. For example, cells such as THP-1 (purchased from Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) can be prepared in a suitable medium (eg, RPMI medium 1640 with L-gluta) at about 3 × 10 5 cells / ml.
mine (GIBCO) with 1 inactivated fetal bovine serum (GIBCO)
At a concentration of 0% (v / v), penicillin-streptomycin (GIBCO) was suspended in sodium penicillin G and streptomycin sulfate at concentrations of 100 U / ml and 100 μg / ml, respectively, and CD14. An appropriate amount of a substance that induces the expression of is added. Specifically, for example,
1,25-dihydroxyvitamin D 3 (VD 3 ; Roussel Uc
laf) to a final concentration of about 10 nM to about 1000 nM, preferably about 50 nM to about 500 nM, more preferably about 50 nM to about 200 nM, particularly preferably a final concentration of about 100 nM. Add Next, for example, mCD14 expression can be induced by culturing in a CO 2 incubator in the presence of about 5% CO 2 at about 37 ° C. for usually about 1 to 7 days, preferably about 3 days. . mCD
The expression level of 14 can be measured by using an antibody against CD14. As the antibody against CD14, a commercially available antibody can be used, or the antibody can be produced using CD14 as an immunogen according to a method known per se. Specifically, the measurement of the expression level of mCD14 is carried out by first suspending CD14-induced cells at about 10 6 cells / ml in PBS.
Usually, FITC-labeled anti-human CD14 monoclonal antibody clone.UCHM1 (Ancell) is added at a concentration of about 0.1 μg / ml to about 10 μg / ml, preferably about 1.6 μg / ml, usually at about 4 ° C. to about 25 ° C. Preferably about 4 ° C to 15 ° C,
More preferably at about 4 ° C., usually for about 15 minutes to about 2 minutes.
Incubate for 4 hours, preferably about 15 minutes to about 12 hours, more preferably about 30 minutes to about 3 hours, particularly preferably about 1 hour. Cells are usually centrifuged once to five times, preferably three times with PBS (1,000 times).
After washing at rpm, 3 minutes, 20 ° C.), the cells were suspended in an appropriate amount (for example, 1,000 μl) of PBS, and the tube with a filter (FALCON2235 [Be
cton Dickinson]). For the cell suspension obtained, the amount of FITC-labeled anti-CD14 antibody bound to 10,000 cells is usually measured using a flow cytometer Cyto ACE-300.
(JASCO Corporation). FACS for elution buffer
Flow (Becton Dickinson) is used.

【0013】(3)スクリーニング方法 本発明のスクリーニング方法は、(A法)標識されたL
PSおよびmCD14を発現した細胞を用いることを特
徴とするLPSとCD14との結合性を変化させる化合
物のスクリーニング方法であり、好ましくは、(B法)
(i)標識されたLPSとmCD14を発現した細胞と
を接触させた場合と、(ii)標識されたLPSおよび
試験化合物とmCD14を発現した細胞とを接触させた
場合における、標識したLPSとmCD14との結合性
を測定することを特徴とするLPSとCD14との結合
性を変化させる化合物のスクリーニング方法、より好ま
しくは、(C法)フローサイトメトリー法を用いて、
(i)標識されたLPSとmCD14を発現した細胞と
を接触させたときの平均蛍光強度(Mean fluorescence
intensity(MFI))値、(ii)標識されたLPSお
よび試験化合物とmCD14を発現した細胞とを接触さ
せたときのMFI値、および(iii)標識されたLPS
および抗CD14抗体とmCD14を発現した細胞とを
接触させたときのMFI値を測定し、次式(I) 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることを
特徴とするLPSとCD14との結合性を変化させる化
合物のスクリーニング方法である。C法においては、得
られたMFI値を細胞に結合したFITC標識LPS量
とし、その測定値をもとに、各試験化合物のmCD14
とFITC標識LPSの特異的結合性を変化させる活性
を上記式(I)により求める。
(3) Screening method The screening method of the present invention comprises a method (A) labeled L
A method for screening a compound that alters the binding between LPS and CD14, characterized by using cells expressing PS and mCD14, and is preferably a method (Method B)
Labeled LPS and mCD14 in the case where (i) the cell that expressed mCD14 was contacted with the labeled LPS and (ii) the case where the cell that expressed mCD14 was contacted with the labeled LPS and the test compound. Using a method for screening a compound that alters the binding between LPS and CD14, which is characterized by measuring the binding to LPS, and more preferably using (Method C) flow cytometry.
(I) Mean fluorescence intensity (Mean fluorescence) when the labeled LPS is brought into contact with cells expressing mCD14
intensity (MFI)) value, (ii) labeled LPS and MFI value when a test compound is brought into contact with cells expressing mCD14, and (iii) labeled LPS
The MFI value was measured when the anti-CD14 antibody and the cells expressing mCD14 were brought into contact with each other, and the following formula (I) inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = MFI with test compound added-MFI with anti-CD14 antibody added MFI 2 = MFI without test compound added-anti-CD14
This is a method for screening for a compound that alters the binding between LPS and CD14, wherein the inhibition rate is determined by MFI when an antibody is added. In the method C, the obtained MFI value is defined as the amount of FITC-labeled LPS bound to the cells, and the mCD14 of each test compound is determined based on the measured value.
The activity of altering the specific binding properties of and FITC-labeled LPS is determined by the above formula (I).

【0014】通常、試験化合物を加え、標識されたLP
SとmCD14が発現した細胞との結合試験を行うこと
により、LPSとCD14との結合性を変化させる化合
物のスクリーニングを行うことが出来るが、具体的には
以下に述べる方法またはそれに準じた方法により行うこ
とが出来る。まず、mCD14を発現している細胞に試
験化合物を加える。試験化合物は、スクリーニングに適
した緩衝液に溶解することが望ましい。そのような緩衝
液としては、LPSとCD14との結合性に影響を与え
ない緩衝液が用いられるが、好ましくはpHが約6ない
し約10の緩衝液が用いられ、より好ましくはPBS等
が用いられる(以下、PBS等の緩衝液という)。試験
化合物溶液は、細胞約106個あたり約1μlないし約
1,000μl、好ましくは約5μlないし約200μ
l、とりわけ好ましくは約5μlないし約100μl、な
かでも好ましくは約20μl加える。試験化合物溶液に
おける試験化合物の濃度は、適宜選択することができ
る。次に、所望により、例えば、約5%CO2存在下、
約37℃で約1分間ないし約60分間、好ましくは約5
分間ないし約30分間、より好ましくは約15分程度プ
レインキュベーションする。細胞約106個あたり約1n
gないし約1000ng、好ましくは約1ngないし約10
0ng、より好ましくは約1ngないし約30ng、とりわけ
好ましくは約5ngのFITC標識LPSを加え、(I)P
BS等の緩衝液で約1倍ないし約1000倍、好ましく
は約2倍ないし約100倍、より好ましくは約5倍ない
し約50倍、とりわけ好ましくは約10倍に希釈したヒ
ト血清、または(ii)約1ngないし約1000ng、好ま
しくは約1ngないし約100ng、とりわけ好ましくは約
20ngのLBPを加え、例えば約5%CO2存在下、約
37℃で約15分間ないし約12時間、好ましくは約1
5分間ないし約2時間、より好ましくは約1時間程度イ
ンキュベーションする。細胞を、例えば、PBS等の緩
衝液でマルチスクリーンフィルトレーションシステムバ
キュームマニホールド(Millipore社)等の細胞洗浄に用
いることが出来る装置を用いて数回、好ましくは3回洗
浄後、300μlのPBSに懸濁し、ろ過する。得られた細
胞懸濁液について1,000個の細胞に結合したFITC標
識LPS量をCyto ACE-300等のフローサイトメーターを
用いて測定する。溶出用緩衝液には通常FACS Flowを用
いることができる。試験化合物を加えない場合、すなわ
ち最大結合量(ネガティブコントロール)の測定は、試
験化合物にかえてPBS等の緩衝液を試験化合物と等量
加えることによって行うことができる。
Usually, a test compound is added and labeled LP
By performing a binding test between S and mCD14-expressed cells, a compound that changes the binding property between LPS and CD14 can be screened. Specifically, the method described below or a method analogous thereto can be used. You can do it. First, a test compound is added to cells expressing mCD14. The test compound is desirably dissolved in a buffer suitable for screening. As such a buffer, a buffer that does not affect the binding between LPS and CD14 is used, preferably a buffer having a pH of about 6 to about 10, more preferably PBS or the like. (Hereinafter referred to as a buffer such as PBS). The test compound solution is used in an amount of about 1 μl to about 1,000 μl, preferably about 5 μl to about 200 μl per about 10 6 cells.
l, particularly preferably about 5 μl to about 100 μl, particularly preferably about 20 μl. The concentration of the test compound in the test compound solution can be appropriately selected. Then, if desired, for example, in the presence of about 5% CO 2 ,
At about 37 ° C. for about 1 minute to about 60 minutes, preferably about 5 minutes.
The preincubation is performed for about 30 minutes to about 30 minutes, more preferably about 15 minutes. About 1n per about 10 6 cells
g to about 1000 ng, preferably about 1 ng to about 10 ng.
0 ng, more preferably about 1 ng to about 30 ng, particularly preferably about 5 ng of FITC-labeled LPS are added, and (I) P
Human serum diluted about 1-fold to about 1000-fold, preferably about 2-fold to about 100-fold, more preferably about 5-fold to about 50-fold, particularly preferably about 10-fold with a buffer such as BS, or (ii) ) About 1 ng to about 1000 ng, preferably about 1 ng to about 100 ng, particularly preferably about 20 ng of LBP, for example in the presence of about 5% CO 2 at about 37 ° C. for about 15 minutes to about 12 hours, preferably about 1 hour.
Incubate for about 5 minutes to about 2 hours, more preferably about 1 hour. The cells are washed several times using a device that can be used for cell washing such as a multi-screen filtration system vacuum manifold (Millipore) with a buffer such as PBS, preferably three times, and then washed with 300 μl of PBS. Suspend and filter. The amount of FITC-labeled LPS bound to 1,000 cells of the obtained cell suspension is measured using a flow cytometer such as Cyto ACE-300. Usually, FACS Flow can be used as the elution buffer. When the test compound is not added, that is, the maximum binding amount (negative control) can be measured by adding a buffer such as PBS instead of the test compound in the same amount as the test compound.

【0015】mCD14への特異的結合量(ポジティブ
コントロール)の測定は、試験化合物にかえて抗CD1
4抗体(例えば、PBS等の緩衝液で約1倍から約10
0倍、好ましくは約10倍に希釈した抗ヒトCD14モ
ノクローナル抗体、具体的にはclone.MEM18(SANBIO
社))を試験化合物と等量加えることによって行うこと
ができる。得られたMFI値を細胞に結合したFITC
標識LPS量とし、その測定値をもとに、各試験化合物
のmCD14とFITC標識LPSの特異的結合性を変
化させる活性を前記式(I)により求めることができ
る。阻害率が約20%以上、好ましくは約50%以上で
ある試験化合物を、LPSとCD14の結合を阻害する
化合物として選択することができる。一方、阻害率が−
約20%以上、好ましくは−約50%以上である試験化
合物を、LPSとCD14の結合を促進する化合物とし
て選択することができる。
[0015] The amount of specific binding to mCD14 (positive control) was measured by using anti-CD1 instead of the test compound.
4 antibodies (for example, about 1 to 10 times with a buffer such as PBS)
An anti-human CD14 monoclonal antibody diluted 0-fold, preferably about 10-fold, specifically clone.MEM18 (SANBIO
Can be carried out by adding an equivalent amount of the compound (1) to the test compound. FITC obtained by binding the obtained MFI value to cells
Based on the amount of labeled LPS, based on the measured value, the activity of each test compound for changing the specific binding between mCD14 and FITC-labeled LPS can be determined by the above formula (I). A test compound having an inhibition of about 20% or more, preferably about 50% or more can be selected as a compound that inhibits the binding of LPS to CD14. On the other hand, the inhibition rate is-
Test compounds that are about 20% or more, preferably -about 50% or more, can be selected as compounds that promote binding of LPS to CD14.

【0016】このように、本発明のスクリーニング法
は、CD14とLPSの結合を阻害または促進する化合
物をスクリーニングするための試薬として有用である。
CD14とLPSの結合を阻害する化合物には、次の3
種類の化合物が含まれる。 mCD14と結合してCD14とLPSの結合を阻害
し、それ自体がLPS様作用を有する化合物(いわゆる
CD14アゴニスト)。 mCD14と結合してCD14とLPSの結合を阻害
するが、それ自体はLPS様作用を有しない化合物(い
わゆるCD14アンタゴニスト)。 mCD14と結合しないが、CD14、LPSまたは
LBP等に作用して、CD14とLPSの結合を阻害す
る化合物(以下、CD14阻害化合物と略記する)。該
化合物とmCD14との結合の有無は、一般的なリガン
ドと受容体との結合活性の測定法、例えば、European J
ournal of Pharmacology, 1991年208巻199-205頁に記載
の方法又はそれに準じた方法により行うことができる。
LPS様作用の有無は、自体公知の方法、例えば、Anti
microb. Agents Chemother., 1998年42巻1015-1021頁に
記載の方法又はそれに準じた方法により測定することが
できる。LPS様作用としては、例えば、TNF−α、
IL−1、IL−6、IL−8などのサイトカインや、
一酸化窒素(NO)、スーパーオキサイド、血小板活性
化因子、アラキドン酸カスケード産物などの産生誘導活
性が挙げられる。
As described above, the screening method of the present invention is useful as a reagent for screening a compound that inhibits or promotes the binding between CD14 and LPS.
Compounds that inhibit the binding of CD14 to LPS include the following 3
Class of compounds. A compound that binds to mCD14 and inhibits the binding of CD14 to LPS and has an LPS-like action itself (a so-called CD14 agonist). A compound that binds to mCD14 and inhibits the binding of CD14 to LPS, but does not itself have an LPS-like effect (a so-called CD14 antagonist). A compound that does not bind to mCD14 but acts on CD14, LPS, LBP, or the like to inhibit the binding between CD14 and LPS (hereinafter, abbreviated as CD14 inhibitor compound). The presence or absence of the binding of the compound to mCD14 can be determined by a general method for measuring the binding activity between a ligand and a receptor, for example, European J
The method can be performed by the method described in ournal of Pharmacology, 1991, 208, pp. 199-205, or a method analogous thereto.
The presence or absence of an LPS-like effect can be determined by a method known per se, for example, Anti
It can be measured by the method described in Microb. Agents Chemother., 1998, Vol. 42, pp. 1015-1021 or a method analogous thereto. LPS-like actions include, for example, TNF-α,
Cytokines such as IL-1, IL-6, and IL-8;
Production inducing activity of nitric oxide (NO), superoxide, platelet activating factor, arachidonic acid cascade product and the like can be mentioned.

【0017】したがって、本発明のスクリーニング方法
は、さらに好ましくは、上記(A法)ないし(C法)に
よって選択された化合物について、さらに該化合物と
mCD14との結合の有無および該化合物のLPS様
作用の有無を測定することにより、CD14アゴニス
ト、CD14アンタゴニスト、CD14阻害化合物また
はCD14とLPSの結合性を促進する化合物(以下、
CD14促進化合物)を選別する方法である。より具体
的には、本発明は、(A)(i)標識されたLPSとm
CD14を発現した細胞とを接触させた場合と、(ii)
標識されたLPSおよび試験化合物とmCD14を発現
した細胞とを接触させた場合における、標識したLPS
とmCD14との結合性を測定するか、または(B)フ
ローサイトメトリー法を用いて、(i)標識されたLP
SとmCD14を発現した細胞とを接触させたときのM
FI値、(ii)標識されたLPSおよび試験化合物とm
CD14を発現した細胞とを接触させたときのMFI
値、および(iii)標識されたLPSおよび抗CD14
抗体とmCD14を発現した細胞とを接触させたときの
MFI値を測定し、次式 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることに
より、LPSとCD14との結合性を変化させる化合物
を選択し、次いで、選択した化合物のTNF−α、IL
−1、IL−6、IL−8、NO、スーパーオキサイ
ド、血小板活性化因子またはアラキドン酸カスケード産
物の産生誘導活性を測定し、(a)該産生誘導活性を有
する化合物をCD14アゴニストまたはCD14促
進化合物として選択し、(b)該産生誘導活性を有しな
い化合物をCD14アンタゴニストまたはCD14
阻害化合物として選択することを特徴とする、CD1
4アゴニスト、CD14促進化合物、CD14アン
タゴニストまたはCD14阻害化合物のスクリーニン
グ方法である。特に、試験化合物として、コンビナトリ
アルケミストリー技術により製造され得る化合物ライブ
ラリーを用いて、上記スクリーニング方法を実施するこ
とにより、CD14アゴニスト、CD14促進化合
物、CD14アンタゴニストまたはCD14阻害化
合物を効率良くスクリーニングすることができる。コン
ビナトリアルケミストリー技術としては、自体公知の技
術であってもよいし、今後開発される技術であってもよ
い。
Therefore, the screening method of the present invention is more preferably applied to the compound selected by the above (Method A) to (Method C), furthermore, the presence or absence of the binding of the compound to mCD14 and the LPS-like action of the compound. By measuring the presence or absence of the compound, a CD14 agonist, a CD14 antagonist, a CD14 inhibitory compound or a compound that promotes the binding between CD14 and LPS (hereinafter, referred to as a compound)
CD14 promoting compound). More specifically, the present invention relates to (A) (i) labeled LPS and m
Contacting cells expressing CD14, and (ii)
Labeled LPS when contacting labeled LPS and test compound with cells expressing mCD14
The binding between mCD14 and (B) using flow cytometry (i) labeled LP
M when contacting S with cells expressing mCD14
FI value, (ii) labeled LPS and test compound and m
MFI when contacted with cells expressing CD14
Values, and (iii) labeled LPS and anti-CD14
The MFI value when the antibody was contacted with cells expressing mCD14 was measured, and the following equation: Inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = addition of test compound MFI when added-MFI when anti-CD14 antibody was added MFI 2 = MFI when test compound was not added-anti-CD14
The compound that alters the binding between LPS and CD14 is selected by determining the inhibition ratio by MFI when an antibody is added, and then TNF-α, IL
-1, IL-6, IL-8, NO, superoxide, platelet activating factor or arachidonic acid cascade product production-inducing activity is measured, and (a) a compound having the production-inducing activity is converted to a CD14 agonist or a CD14 promoting compound (B) a compound having no production-inducing activity is a CD14 antagonist or CD14
CD1 characterized by being selected as an inhibitory compound
4 is a method for screening a CD14 promoting compound, a CD14 antagonist or a CD14 inhibitory compound. In particular, a CD14 agonist, a CD14 promoting compound, a CD14 antagonist or a CD14 inhibitory compound can be efficiently screened by performing the above screening method using a compound library that can be produced by combinatorial chemistry technology as a test compound. . As the combinatorial chemistry technique, a technique known per se or a technique to be developed in the future may be used.

【0018】(4)スクリーニング用キット 本発明のスクリーニング用キットは、前述した標識され
たLPS、mCD14を発現した細胞等を含有するもの
である。本発明のスクリーニング用キットの例として
は、次のものが挙げられる。 [スクリーニング用試薬] 緩衝液等 PBS、ヒト血清 LPS 結合比率(FITC/LPS)が0.3であるFITC標識LP
S 細胞 mCD14を細胞あたり約1,000,000分子発現
している、1,25−ジヒドロキシビタミンD3処理T
HP−1 その他 抗ヒトCD14モノクローナル抗体(MEM18) 測定 1,000個の細胞に結合したFITC標識LPS量をCyto
ACE-300等のフローサイトメーターを用いて測定する。
(4) Screening Kit The screening kit of the present invention contains the above-mentioned labeled LPS, cells expressing mCD14, and the like. Examples of the screening kit of the present invention include the following. [Reagent for screening] Buffer, etc. PBS, human serum LPS FITC-labeled LP having binding ratio (FITC / LPS) of 0.3
S-cell 1,25-dihydroxyvitamin D 3 treated T expressing approximately 1,000,000 molecules of mCD14 per cell
HP-1 Others Anti-human CD14 monoclonal antibody (MEM18) measurement The amount of FITC-labeled LPS bound to 1,000 cells was determined by Cyto
Measure using a flow cytometer such as ACE-300.

【0019】(5)LPSとCD14の結合性を変化さ
せる化合物 本発明のスクリーニング方法またはスクリーニング用キ
ットを用いて得られうる化合物は、上記した試験化合
物、例えば、ペプチド、タンパク、非ペプチド性化合
物、合成化合物、発酵生産物、細胞抽出液、植物抽出
液、動物組織抽出液、血漿等から選ばれた化合物であ
り、CD14とLPSとの結合性を変化させる化合物で
ある。本発明のスクリーニング方法またはスクリーニン
グ用キットを用いて得られうる化合物の誘導体として
は、該化合物の化学構造中の任意の置換基を欠失させ
た化合物、該化合物の化学構造に任意の置換基を付加
した化合物、該化合物の化学構造中の任意の置換基を
他の置換基に変換した化合物、該化合物のプロドラッ
グなどが用いられる。本発明のスクリーニング方法また
はスクリーニング用キットを用いて得られうる化合物
(以下、本発明の化合物と略記する場合がある)のプロ
ドラッグは、生体内における生理条件下で酵素や胃酸等
による反応により本発明の化合物に変換する化合物、す
なわち酵素的に酸化、還元、加水分解等を起こして本発
明の化合物に変化する化合物、胃酸等により加水分解等
を起こして本発明の化合物に変化する化合物であってよ
い。
(5) Compounds that alter the binding between LPS and CD14 Compounds that can be obtained using the screening method or screening kit of the present invention include the test compounds described above, for example, peptides, proteins, non-peptide compounds, It is a compound selected from a synthetic compound, a fermentation product, a cell extract, a plant extract, an animal tissue extract, plasma, and the like, and is a compound that changes the binding between CD14 and LPS. Examples of the derivative of the compound that can be obtained by using the screening method or the screening kit of the present invention include a compound in which any substituent in the chemical structure of the compound is deleted, and an optional substituent in the chemical structure of the compound. Addition compounds, compounds in which an arbitrary substituent in the chemical structure of the compound is converted into another substituent, prodrugs of the compound, and the like are used. A prodrug of a compound (hereinafter, sometimes abbreviated as the compound of the present invention) obtainable by using the screening method or the screening kit of the present invention can be obtained by a reaction with an enzyme, gastric acid, or the like under physiological conditions in a living body. A compound that converts to the compound of the present invention, that is, a compound that changes to the compound of the present invention by enzymatic oxidation, reduction, hydrolysis, or the like, or a compound that changes to the compound of the present invention by hydrolysis or the like due to stomach acid or the like. May be.

【0020】本発明の化合物のプロドラッグとしては、
本発明の化合物のアミノ基がアシル化、アルキル化、り
ん酸化された化合物(例、本発明の化合物のアミノ基が
エイコサノイル化、アラニル化、ペンチルアミノカルボ
ニル化、(5−メチル−2−オキソ−1,3−ジオキソ
レン−4−イル)メトキシカルボニル化、テトラヒドロ
フラニル化、ピロリジルメチル化、ピバロイルオキシメ
チル化、tert−ブチル化された化合物など);本発
明の化合物の水酸基がアシル化、アルキル化、りん酸
化、ほう酸化された化合物(例、本発明の化合物の水酸
基がアセチル化、パルミトイル化、プロパノイル化、ピ
バロイル化、サクシニル化、フマリル化、アラニル化、
ジメチルアミノメチルカルボニル化された化合物な
ど);本発明の化合物のカルボキシル基がエステル化、
アミド化された化合物(例、本発明の化合物のカルボキ
シル基がエチルエステル化、フェニルエステル化、カル
ボキシメチルエステル化、ジメチルアミノメチルエステ
ル化、ピバロイルオキシメチルエステル化、エトキシカ
ルボニルオキシエチルエステル化、フタリジルエステル
化、(5−メチル−2−オキソ−1,3−ジオキソレン
−4−イル)メチルエステル化、シクロヘキシルオキシ
カルボニルエチルエステル化、メチルアミド化された化
合物など)等が挙げられる。これらの化合物は自体公知
の方法によって本発明の化合物から製造することができ
る。また、本発明の化合物のプロドラッグは、広川書店
1990年刊「医薬品の開発」第7巻分子設計163頁
から198頁に記載されているような、生理的条件で、
本発明の化合物に変化するものであってもよい。
The prodrug of the compound of the present invention includes
Compounds in which the amino group of the compound of the present invention is acylated, alkylated or phosphorylated (eg, the amino group of the compound of the present invention is eicosanoylated, alanylated, pentylaminocarbonylated, (5-methyl-2-oxo- 1,3-dioxolen-4-yl) methoxycarbonylation, tetrahydrofuranylation, pyrrolidylmethylation, pivaloyloxymethylation, tert-butylated compound, etc.); the hydroxyl group of the compound of the present invention is acylated, Alkylated, phosphorylated, and borated compounds (eg, the compound of the present invention has a hydroxyl group acetylated, palmitoylated, propanoylated, pivaloyylated, succinylated, fumarylated, alanylated,
Dimethylaminomethylcarbonylated compound, etc.); the carboxyl group of the compound of the present invention is esterified,
Amidated compounds (e.g., the carboxyl group of the compound of the present invention is ethylesterified, phenylesterified, carboxymethylesterified, dimethylaminomethylesterified, pivaloyloxymethylesterified, ethoxycarbonyloxyethylesterified, Phthalidyl esterification, (5-methyl-2-oxo-1,3-dioxolen-4-yl) methyl esterification, cyclohexyloxycarbonylethyl esterification, methylamidated compound, and the like. These compounds can be produced from the compound of the present invention by a method known per se. The prodrug of the compound of the present invention can be prepared under physiological conditions as described in Hirokawa Shoten, 1990, “Development of Pharmaceuticals,” Vol. 7, Molecular Design, pp. 163 to 198.
It may be changed to the compound of the present invention.

【0021】本発明のスクリーニング方法またはスクリ
ーニング用キットを用いて得られうる化合物またはその
誘導体は、塩を形成していてもよい。そのような塩とし
ては、薬学的、生理学的に許容される塩が用いられ、例
えば、無機塩基との塩、有機塩基との塩、無機酸との
塩、有機酸との塩、塩基性または酸性アミノ酸との塩等
が用いられる。無機塩基との塩の好適な例としては、例
えば、ナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩;
カルシウム塩、マグネシウム塩等のアルカリ土類金属
塩;ならびにアルミニウム塩、アンモニウム塩等が用い
られる。有機塩基との塩の好適な例としては、例えば、
トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコ
リン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエ
タノールアミン、ジシクロヘキシルアミン、N,N’−
ジベンジルエチレンジアミン等との塩が用いられる。無
機酸との塩の好適な例としては、例えば塩酸、臭化水素
酸、硝酸、硫酸、リン酸等との塩が用いられる。有機酸
との塩の好適な例としては、例えばギ酸、酢酸、トリフ
ルオロ酢酸、フマール酸、シュウ酸、酒石酸、マレイン
酸、クエン酸、コハク酸、リンゴ酸、メタンスルホン
酸、ベンゼンスルホン酸、p−トルエンスルホン酸等と
の塩が用いられる。塩基性アミノ酸との塩の好適な例と
しては、例えばアルギニン、リジン、オルニチン等との
塩が用いられ、酸性アミノ酸との塩の好適な例として
は、例えばアスパラギン酸、グルタミン酸等との塩が用
いられる。
The compound or derivative thereof obtained by using the screening method or the screening kit of the present invention may form a salt. As such salts, pharmaceutically and physiologically acceptable salts are used, for example, salts with inorganic bases, salts with organic bases, salts with inorganic acids, salts with organic acids, basic or Salts with acidic amino acids and the like are used. Preferred examples of the salt with an inorganic base include, for example, alkali metal salts such as sodium salt and potassium salt;
Alkaline earth metal salts such as calcium salts and magnesium salts; and aluminum salts and ammonium salts are used. Preferred examples of the salt with an organic base include, for example,
Trimethylamine, triethylamine, pyridine, picoline, ethanolamine, diethanolamine, triethanolamine, dicyclohexylamine, N, N'-
A salt with dibenzylethylenediamine or the like is used. Preferred examples of salts with inorganic acids include salts with hydrochloric acid, hydrobromic acid, nitric acid, sulfuric acid, phosphoric acid, and the like. Suitable examples of salts with organic acids include, for example, formic acid, acetic acid, trifluoroacetic acid, fumaric acid, oxalic acid, tartaric acid, maleic acid, citric acid, succinic acid, malic acid, methanesulfonic acid, benzenesulfonic acid, p A salt with toluenesulfonic acid or the like is used. Preferred examples of the salt with a basic amino acid include, for example, salts with arginine, lysine, ornithine, and preferred examples of the salt with an acidic amino acid include, for example, salts with aspartic acid, glutamic acid, and the like. Can be

【0022】本発明のスクリーニング方法またはスクリ
ーニング用キットを用いて得られうる化合物またはその
誘導体のうち、CD14アンタゴニストまたはCD14
阻害化合物は、LPSとmCD14との結合によって惹
起される疾患の予防・治療剤として有用である。そのよ
うな疾患としては、例えば、心疾患、自己免疫疾患、炎
症性疾患、中枢神経系疾患、感染性疾患、セプシス、セ
プティックショック等の疾患等が挙げられ、より具体的
には、例えば敗血症、エンドトキシンショック、エキソ
トキシンショック、心不全、ショック、低血圧、リウマ
チ関節炎、骨関節炎、胃炎、潰瘍性大腸炎、消化性潰
瘍、ストレス性胃潰瘍、クローン病、自己免疫疾患、臓
器移植後の組織障害及び拒絶反応、虚血再潅流障害、急
性冠微小血管塞栓、ショック性血管塞栓(汎発性血管内
血液凝固症候群(DIC)等)、虚血性脳障害、動脈硬
化、悪性貧血、ファンコニー貧血症、鎌形赤血球性貧血
病、膵炎、ネフローゼ症候群、腎炎、腎不全、インシュ
リン依存性糖尿病、インシュリン非依存性糖尿病、肝性
ポルフィリン症、アルコール中毒、パーキンソン病、慢
性白血病、急性白血病、腫瘍、骨髄腫、抗癌剤副作用軽
減、幼児および成人性呼吸窮迫症候群、肺気腫、痴呆、
アルツハイマー病、多発性硬化症、ビタミンE欠乏症、
老化、サンバーン、筋ジストロフィー、心筋炎、心筋
症、心筋梗塞、心筋梗塞後遺症、骨粗鬆症、肺炎、肝
炎、乾癬、疼痛、白内障、インフルエンザ感染症、マラ
リア、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)感染症、放射線
障害、火傷、体外受精効率化、高カルシウム血症、硬直
性脊椎炎、骨減少症、骨ペーチェット病、骨軟化症、骨
折、急性バクテリア髄膜炎、ヘリコバクター・ピロリ感
染症、侵襲性ブドウ状球菌感染症、結核、全身性真菌感
染症、単純ヘルペスウイルス感染症、水痘−帯状疱疹ウ
イルス感染症、ヒトパピローマウイルス感染症、急性ウ
イルス脳炎、脳炎、喘息、アトピー性皮膚炎、アレルギ
ー性鼻炎、逆流性食道炎、発熱、高コレステロール血
症、高グリセリド血症、高脂血症、糖尿病性合併症、糖
尿病性腎症、糖尿病性神経障害、糖尿病性網膜症、痛
風、胃アトニー、痔疾、全身性エリテマトーサス、脊髄
損傷、不眠症、精神分裂症、癲癇、肝硬変、肝不全、不
安定狭心症、心弁膜症、透析による血小板減少症、急性
虚血性脳卒中、急性期脳血栓症、癌転移、膀胱癌、乳
癌、子宮頸部癌、大腸癌、胃癌、卵巣癌、前立腺癌、小
細胞肺癌、非小細胞肺癌、悪性黒色腫、ホジキン病、非
ホジキン性リンパ腫等が挙げられる。とくに、セプティ
ックショックの予防・治療剤として有用である。一方、
本発明のスクリーニング方法またはスクリーニング用キ
ットを用いて得られうる化合物またはその誘導体のう
ち、CD14促進化合物またはCD14アゴニストは、
例えば、免疫不全症、免疫抑制剤投与時の感染症の予
防、治療剤、免疫賦活剤等の医薬として有用である。
Among the compounds or derivatives thereof that can be obtained using the screening method or screening kit of the present invention, CD14 antagonists or CD14
The inhibitory compound is useful as an agent for preventing or treating a disease caused by the binding between LPS and mCD14. Such diseases include, for example, heart disease, autoimmune disease, inflammatory disease, central nervous system disease, infectious disease, sepsis, septic shock, etc., and more specifically, for example, sepsis , Endotoxin shock, exotoxic shock, heart failure, shock, hypotension, rheumatoid arthritis, osteoarthritis, gastritis, ulcerative colitis, peptic ulcer, stress gastric ulcer, Crohn's disease, autoimmune disease, tissue damage after organ transplantation and Rejection, ischemia / reperfusion injury, acute coronary microvascular embolism, shock vascular embolism (general intravascular blood coagulation syndrome (DIC), etc.), ischemic encephalopathy, arteriosclerosis, pernicious anemia, Fanconi anemia, Sickle cell anemia, pancreatitis, nephrotic syndrome, nephritis, renal failure, insulin-dependent diabetes, non-insulin-dependent diabetes, hepatic porphyrin , Alcoholism, Parkinson's disease, chronic leukemia, acute leukemia, tumor, myeloma, anticancer reducing the side effect, infant and adult respiratory distress syndrome, emphysema, dementia,
Alzheimer's disease, multiple sclerosis, vitamin E deficiency,
Aging, sunburn, muscular dystrophy, myocarditis, cardiomyopathy, myocardial infarction, sequelae of myocardial infarction, osteoporosis, pneumonia, hepatitis, psoriasis, pain, cataract, influenza infection, malaria, human immunodeficiency virus (HIV) infection, radiation injury, Burn, in vitro fertilization efficiency, hypercalcemia, ankylosing spondylitis, osteopenia, bone Pechet disease, osteomalacia, fracture, acute bacterial meningitis, Helicobacter pylori infection, invasive staphylococcal infection , Tuberculosis, systemic fungal infection, herpes simplex virus infection, varicella-zoster virus infection, human papillomavirus infection, acute viral encephalitis, encephalitis, asthma, atopic dermatitis, allergic rhinitis, reflux esophagitis, Fever, hypercholesterolemia, hyperglyceridemia, hyperlipidemia, diabetic complications, diabetic nephropathy, diabetic god Disorders, diabetic retinopathy, gout, gastric atony, hemorrhoids, systemic lupus erythematosus, spinal cord injury, insomnia, schizophrenia, epilepsy, cirrhosis, liver failure, unstable angina, valvular heart disease, thrombocytopenia due to dialysis , Acute ischemic stroke, acute cerebral thrombosis, cancer metastasis, bladder cancer, breast cancer, cervical cancer, colon cancer, gastric cancer, ovarian cancer, prostate cancer, small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, malignant melanoma, Hodgkin's disease , Non-Hodgkin's lymphoma and the like. In particular, it is useful as a prophylactic / therapeutic agent for septic shock. on the other hand,
Among the compounds or derivatives thereof that can be obtained using the screening method or the screening kit of the present invention, a CD14 promoting compound or a CD14 agonist is
For example, it is useful as a medicament such as an immunodeficiency, prevention of infectious diseases upon administration of an immunosuppressant, a therapeutic agent, and an immunostimulant.

【0023】本発明のスクリーニング方法またはスクリ
ーニング用キットを用いて得られうる化合物、その誘導
体または塩を上述の治療・予防剤として使用する場合、
常套手段に従って実施することができる。該化合物、そ
の誘導体または塩は、それ自体または適当な医薬組成物
として投与することができる。上記投与に用いられる医
薬組成物は、上記化合物またはその誘導体と薬理学的に
許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤とを含むもの
である。かかる組成物は、経口または非経口投与に適す
る剤形として提供される。すなわち、例えば、経口投与
のための組成物としては、固体または液体の剤形、具体
的には錠剤(糖衣錠、フィルムコーティング錠を含
む)、丸剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤(ソフトカプセ
ル剤を含む)、シロップ剤、乳剤、懸濁剤等があげられ
る。かかる組成物は自体公知の方法によって製造され、
製剤分野において通常用いられる担体、希釈剤もしくは
賦形剤を含有するものである。例えば、錠剤用の担体、
賦形剤としては、乳糖、でんぷん、蔗糖、ステアリン酸
マグネシウム等が用いられる。非経口投与のための組成
物としては、例えば、注射剤、坐剤等が用いられ、注射
剤は静脈注射剤、皮下注射剤、皮内注射剤、筋肉注射
剤、点滴注射剤等の剤形を包含する。かかる注射剤は、
自体公知の方法に従って、例えば、該化合物、その誘導
体または塩を通常注射剤に用いられる無菌の水性もしく
は油性液に溶解、懸濁または乳化することによって調製
する。注射用の水性液としては、例えば、生理食塩水、
ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液等が用いられ、
適当な溶解補助剤、例えば、アルコール(例、エタノー
ル)、ポリアルコール(例、プロピレングリコール、ポ
リエチレングリコール)、非イオン界面活性剤〔例、ポ
リソルベート80、HCO−50(polyoxyethylene
(50mol)adduct of hydrogenated castor oil)〕
等と併用してもよい。油性液としては、例えば、ゴマ
油、大豆油等が用いられ、溶解補助剤として安息香酸ベ
ンジル、ベンジルアルコール等を併用してもよい。調製
された注射液は、通常、適当なアンプルに充填される。
直腸投与に用いられる坐剤は、上記化合物、その誘導体
または塩を通常の坐薬用基剤に混合することによって調
製される。上記の経口用または非経口用医薬組成物は、
活性成分の投与量に適合するような投薬単位の剤形に調
製されることが好都合である。かかる投薬単位の剤形と
しては、錠剤、丸剤、カプセル剤、注射剤(アンプ
ル)、坐剤等が例示され、それぞれの投薬単位剤形当た
り通常5〜500mg、とりわけ注射剤では5〜100
mg、その他の剤形では10〜250mgの上記化合
物、その誘導体または塩が含有されていることが好まし
い。なお前記した各組成物は、上記化合物、その誘導体
または塩との配合により好ましくない相互作用を生じな
い限り、他の活性成分を含有してもよい。このようにし
て得られる製剤は安全で低毒性であるので、例えば、哺
乳動物(例えば、マウス、ラット、ウサギ、ヒツジ、ブ
タ、ウシ、ウマ、トリ、ネコ、イヌ、サル、チンパンジ
ー、ヒト等)に対して投与することができる。
When a compound, derivative or salt thereof obtainable by using the screening method or screening kit of the present invention is used as the above-mentioned therapeutic or prophylactic agent,
It can be carried out according to conventional means. The compounds, derivatives or salts thereof can be administered as such or as a suitable pharmaceutical composition. The pharmaceutical composition used for the administration contains the compound or a derivative thereof and a pharmacologically acceptable carrier, diluent or excipient. Such compositions are provided in dosage forms suitable for oral or parenteral administration. That is, for example, compositions for oral administration include solid or liquid dosage forms, specifically tablets (including sugar-coated tablets and film-coated tablets), pills, granules, powders, capsules (soft capsules and the like). Syrup, emulsion, suspension and the like. Such a composition is produced by a method known per se,
It contains a carrier, diluent or excipient commonly used in the field of pharmaceuticals. For example, carriers for tablets,
As an excipient, lactose, starch, sucrose, magnesium stearate and the like are used. As compositions for parenteral administration, for example, injections, suppositories and the like are used, and the injections are in the form of intravenous injections, subcutaneous injections, intradermal injections, intramuscular injections, intravenous injections and the like. Is included. Such injections are
The compound is prepared according to a method known per se, for example, by dissolving, suspending or emulsifying the compound, a derivative or salt thereof in a sterile aqueous or oily liquid commonly used for injections. Examples of aqueous liquids for injection include physiological saline,
Isotonic solutions containing glucose and other adjuvants are used,
Suitable solubilizing agents, for example, alcohols (eg, ethanol), polyalcohols (eg, propylene glycol, polyethylene glycol), nonionic surfactants [eg, polysorbate 80, HCO-50 (polyoxyethylene)
(50mol) adduct of hydrogenated castor oil)]
And the like. As the oily liquid, for example, sesame oil, soybean oil, and the like are used, and benzyl benzoate, benzyl alcohol, and the like may be used in combination as a solubilizing agent. The prepared injection is usually filled in a suitable ampoule.
Suppositories used for rectal administration are prepared by mixing the above compound, its derivative or salt with a conventional suppository base. The oral or parenteral pharmaceutical composition,
Conveniently, dosage units may be prepared in dosage units that are compatible with the dosage of the active ingredient. Examples of such dosage unit dosage forms include tablets, pills, capsules, injections (ampoules), suppositories and the like. Usually, each dosage unit dosage form is 5 to 500 mg, especially 5 to 100 mg for injection.
mg or another dosage form preferably contains 10 to 250 mg of the above compound, derivative or salt thereof. Each of the above-described compositions may contain other active ingredients as long as the compound and its derivative or salt do not cause an undesirable interaction. Since the preparation thus obtained is safe and has low toxicity, for example, mammals (eg, mouse, rat, rabbit, sheep, pig, cow, horse, bird, cat, dog, monkey, chimpanzee, human, etc.) Can be administered.

【0024】該化合物、その誘導体またはその塩の投与
量は、その作用、対象疾患、投与対象、投与ルート等に
より差異はあるが、例えば、セプティックショック治療
の目的でCD14アンタゴニストまたはCD14阻害化
合物を経口投与する場合、一般的に成人(体重60kg
として)においては、一日につき該CD14アンタゴニ
ストまたはCD14阻害化合物を約0.1〜100m
g、好ましくは約1.0〜50mg、より好ましくは約
1.0〜20mg投与する。該CD14アンタゴニスト
またはCD14阻害化合物を非経口的に投与する場合の
1回投与量は,投与対象、対象疾患等によっても異なる
が、例えば、セプティックショック治療の目的で該CD
14アンタゴニストまたはCD14阻害化合物を注射剤
の形で通常成人(60kgとして)に投与する場合、一
日につき該CD14アンタゴニストまたはCD14阻害
化合物を約0.01〜30mg程度、好ましくは約0.
1〜20mg程度、より好ましくは約0.1〜10mg
程度を静脈注射により投与するのが好都合である。他の
動物の場合も、60kg当たりに換算した量を投与する
ことができる。一方、免疫賦活剤としてCD14アゴニ
ストまたはCD14促進化合物を経口投与する場合、一
般的に成人(体重60kgとして)においては、一日に
つき該CD14アゴニストまたはCD14促進化合物を
約0.1〜100mg、好ましくは約1.0〜50m
g、より好ましくは約1.0〜20mg投与する。該C
D14アゴニストまたはCD14促進化合物を非経口的
に投与する場合の1回投与量は、投与対象、対象疾患等
によっても異なるが、例えば、免疫賦活剤として該CD
14アゴニストまたはCD14促進化合物を注射剤の形
で通常成人(60kgとして)に投与する場合、一日に
つき該CD14アゴニストまたはCD14促進化合物を
約0.01〜30mg程度、好ましくは約0.1〜20
mg程度、より好ましくは約0.1〜10mg程度を静
脈注射により投与するのが好都合である。他の動物の場
合も、60kg当たりに換算した量を投与することがで
きる。
The dose of the compound, its derivative or its salt varies depending on its action, target disease, subject to be administered, administration route and the like. For example, a CD14 antagonist or a CD14 inhibitor compound is used for the purpose of treating septic shock. In the case of oral administration, generally an adult (body weight 60 kg
), The CD14 antagonist or CD14 inhibitor is administered in an amount of about 0.1 to 100 m / day.
g, preferably about 1.0-50 mg, more preferably about 1.0-20 mg. When the CD14 antagonist or the CD14 inhibitor is administered parenterally, the single dose varies depending on the administration subject, the target disease, and the like.
When the 14-antagonist or CD14-inhibiting compound is usually administered to an adult (as 60 kg) in the form of an injection, about 0.01 to 30 mg, preferably about 0.1 to 30 mg of the CD14-antagonist or CD14-inhibiting compound is administered per day.
About 1 to 20 mg, more preferably about 0.1 to 10 mg
It is convenient to administer the degree by intravenous injection. In the case of other animals, the dose can be administered in terms of 60 kg. On the other hand, when a CD14 agonist or a CD14 promoting compound is orally administered as an immunostimulant, generally, in an adult (assuming a body weight of 60 kg), about 0.1 to 100 mg, preferably, 100 mg of the CD14 agonist or CD14 promoting compound per day is used. About 1.0-50m
g, more preferably about 1.0-20 mg. The C
The parenteral administration of the D14 agonist or CD14-promoting compound may vary depending on the administration target, the target disease, etc.
When the 14 agonist or CD14 promoting compound is usually administered to an adult (as 60 kg) in the form of an injection, about 0.01 to 30 mg, preferably about 0.1 to 20 mg of the CD14 agonist or CD14 promoting compound per day is administered.
It is convenient to administer about mg, more preferably about 0.1 to 10 mg by intravenous injection. In the case of other animals, the dose can be administered in terms of 60 kg.

【0025】[0025]

【実施例】本発明は、さらに以下の参考例および実施例
によって詳しく説明されるが、これらは本発明を限定す
るものではなく、また本発明の範囲を逸脱しない範囲で
変化させてもよい。
The present invention will be further described in detail with reference to the following reference examples and examples, which do not limit the present invention and may be changed without departing from the scope of the present invention.

【参考例1】FITC標識LPSの作製 Salmonella minnesota Re595LPS(Sigma社) 1mgにト
リエチルアミン(和光純薬社) 500μlを加え、マルチ超
音波洗浄器VS-III(井内盛栄堂社)を用いて氷水浴中で15
分間超音波処理後、100mM エチレンジアミンテトラ酢酸
(EDTA) 50μlを加え、さらに氷水浴中で5分間超
音波処理した。超音波処理後の反応液に1N塩酸22.5μl
を加え、反応液のpHが5以下になったことを確認し、室
温で2分間放置した後、1N水酸化ナトリウムを加え、反
応液を中和した。この反応液にFITC isomer I(同仁
社) 5mgを0.5M炭酸・重炭酸緩衝液(pH9.5) 200μlに溶解
したものを加え、再度氷水浴中で1分間超音波処理し
た。超音波処理後、1.6% デオキシコール酸ナトリウム
(DOC;和光純薬社)溶液250μlを加え、反応容器をア
ルミホイルで覆って遮光し、攪拌しながら、37℃で18時
間インキュベートした。インキュベート後、蒸留水を加
えて反応液の液量を2.5mlとし、セファデックスG−2
5Mを充填したPD−10カラム(Pharmacia Biotech
社)を用いてゲルろ過を行うことにより遊離FITCを
除去した。すなわち、反応液をアプライ後、溶出用緩衝
液3mlをカラムにアプライし、この溶出用緩衝液をカラ
ムにアプライしたときに溶出されてきた画分をFITC
標識LPSを含む画分とした。なお、平衡化および溶出
用緩衝液にはDOCを最終濃度が0.16%となるように加
えたDulbecco's PBS(without Mg2+ and Ca2+;大日本製
薬社)を用いた。得られたFITC標識LPSのFITC
量を蛍光光度計Fluoroskan II(Labsystems社)を用いて
励起波長485nm、測定波長538nmで測定したところ、LP
S 1mg当たり36.18μgのFITCが結合していた。FI
TCisomer Iの分子量が389.4、S. minnesota Re595 L
PSの分子量が3,400であることから、作製したFIT
C標識LPSのFITCとLPSの結合比率は約1:3で
あった。
[Reference Example 1] Preparation of FITC-labeled LPS To 1 mg of Salmonella minnesota Re595 LPS (Sigma) was added 500 µl of triethylamine (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), and the mixture was placed in an ice water bath using a multi ultrasonic cleaner VS-III (Iuchi Seieido). At 15
After sonication for 50 minutes, 50 μl of 100 mM ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) was added, followed by sonication for 5 minutes in an ice water bath. 22.5 μl of 1N hydrochloric acid in the reaction solution after sonication
Was added, and it was confirmed that the pH of the reaction solution was 5 or less. After allowing the mixture to stand at room temperature for 2 minutes, 1N sodium hydroxide was added to neutralize the reaction solution. To this reaction solution, a solution prepared by dissolving 5 mg of FITC isomer I (Dojinsha) in 200 μl of 0.5 M carbonate / bicarbonate buffer (pH 9.5) was added, and the mixture was again subjected to ultrasonic treatment in an ice water bath for 1 minute. After sonication, 1.6% sodium deoxycholate
(DOC; Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 250 μl of the solution was added, the reaction vessel was covered with aluminum foil to shield from light, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 18 hours with stirring. After the incubation, distilled water was added to adjust the volume of the reaction solution to 2.5 ml. Sephadex G-2
PD-10 column packed with 5M (Pharmacia Biotech
The free FITC was removed by performing gel filtration using the above method. That is, after the reaction solution was applied, 3 ml of elution buffer was applied to the column, and the fraction eluted when this elution buffer was applied to the column was FITC.
A fraction containing labeled LPS was used. As a buffer for equilibration and elution, Dulbecco's PBS (without Mg 2+ and Ca 2+ ; Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) to which DOC was added to a final concentration of 0.16% was used. FITC of the obtained FITC-labeled LPS
When the amount was measured using a fluorometer Fluoroskan II (Labsystems) at an excitation wavelength of 485 nm and a measurement wavelength of 538 nm, LP
36.18 μg of FITC was bound per mg of S. FI
TCisomer I has a molecular weight of 389.4, S. minnesota Re595 L
Since the molecular weight of PS is 3,400, the prepared FIT
The binding ratio between FITC and LPS of the C-labeled LPS was about 1: 3.

【0026】[0026]

【参考例2】THP−1細胞におけるCD14の発現誘
導 細胞としてはヒト単球系THP−1細胞(大日本製薬社
から購入)を用いた。培地はRPMI medium 1640 with L-g
lutamine(RPMI;GIBCO社)に非働化ウシ胎児血清(GIBCO
社)を10%の濃度で、ペニシリン−ストレプトマイシン(G
IBCO社)をペニシリンGナトリウム、硫酸ストレプトマイ
シンとしてそれぞれ100 U/ml、100μg/mlの濃度となる
ように加えたものを用いた。CD14の発現誘導は3×1
05個/mlとなるように培地に懸濁した細胞に1,25−
ジヒドロキシビタミンD3(VD3;Roussel Uclaf社)を最終
濃度が100nMとなるように加え、CO2インキュベーターMO
DEL 6200-03(National appliance company社)を用いて5
% CO2存在下、37℃で3日間培養することにより行った。
培養細胞は106個/mlとなるようにPBSに懸濁し、この
細胞懸濁液に1.6μg/mlの濃度でFITC標識抗ヒトC
D14モノクローナル抗体clone.UCHM1(Ancell社)を加
え、4℃で1時間インキュベートした。細胞はPBSを用い
て3回遠心(1,000rpm、3分、20℃)洗浄後、1,000μlのPB
Sに懸濁し、フィルター付チューブ(FALCON2235[Becton
Dickinson社])でろ過した。得られた細胞懸濁液につい
て10,000個の細胞に結合したFITC標識抗CD14抗
体量をフローサイトメーターCyto ACE-300(日本分光社)
を用いて測定した。溶出用緩衝液にはFACS Flow(Becton
Dickinson社)を用いた。得られた平均蛍光強度(Mean f
luorescence intensity[MFI])の値はVD3添加CD1
4発現誘導THP−1細胞で114.9、VD3非添加THP−
1細胞で40であった。この値は10,000個の細胞に結合し
たFITC標識抗CD14抗体量、すなわち、CD14
発現量に相当すると考えられる。従って、VD3添加によ
り明らかにCD14発現量が増加していた。
Reference Example 2 Induction of CD14 Expression in THP-1 Cells As cells, human monocyte THP-1 cells (purchased from Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) were used. Medium is RPMI medium 1640 with Lg
Inactivated fetal bovine serum (GIBCO) was added to lutamine (RPMI; GIBCO).
At a concentration of 10%, penicillin-streptomycin (G
IBCO) were added as penicillin G sodium and streptomycin sulfate to give concentrations of 100 U / ml and 100 μg / ml, respectively. CD14 expression induction is 3 × 1
0, 25- cells were added to cells suspended in
Dihydroxyvitamin D 3 (VD 3 ; Roussel Uclaf) was added to a final concentration of 100 nM, and the CO 2 incubator MO was added.
5 using DEL 6200-03 (National appliance company)
This was performed by culturing at 37 ° C. for 3 days in the presence of% CO 2 .
The cultured cells were suspended in PBS at 10 6 cells / ml, and the FITC-labeled anti-human C was added to the cell suspension at a concentration of 1.6 μg / ml.
D14 monoclonal antibody clone.UCHM1 (Ancell) was added and incubated at 4 ° C. for 1 hour. The cells are washed three times by centrifugation (1,000 rpm, 3 minutes, 20 ° C) using PBS.
Suspend in S and filter tube (FALCON2235 [Becton
Dickinson]). For the obtained cell suspension, the amount of the FITC-labeled anti-CD14 antibody bound to 10,000 cells was measured using a flow cytometer Cyto ACE-300 (JASCO Corporation).
It measured using. FACS Flow (Becton
Dickinson) was used. The obtained average fluorescence intensity (Mean f
The value of luorescence intensity [MFI]) is VD 3 addition CD1
4 Expression induced THP-1 cells at 114.9, VD 3 not added THP-
It was 40 per cell. This value is the amount of FITC-labeled anti-CD14 antibody bound to 10,000 cells, ie, CD14.
It is considered to correspond to the expression level. Therefore, the amount of clearly CD14 expression was increased by VD 3 addition.

【0027】[0027]

【実施例1】CD14発現誘導THP−1細胞およびF
ITC標識LPSを用いたCD14アンタゴニストのス
クリーニング (1)CD14発現誘導THP−1細胞を用いたFIT
C標識LPS結合阻害活性の測定 CD14発現誘導THP−1細胞をPBSを用いて3回遠心
(1,000rpm、3分、20℃)洗浄後、細胞の最終濃度が6.67
×106個/mlとなるようにPBSに懸濁し、150μlずつマル
チフィルトレーションシステム96穴プレート(Millipore
社)の各ウェルに分注した(最終濃度106個/ウェル)。試験化
合物を20μlずつ各ウェルに分注し、5% CO2存在下、37
℃で15分間プレインキュベートした。最大結合量の測定
にはPBSを、mCD14への特異的結合量の測定にはPBS
で10倍希釈した抗ヒトCD14モノクローナル抗体clon
e.MEM18(SANBIO社)をそれぞれ20μlずつ分注した。プレ
インキュベート後、0.25μg/mlの濃度のFITC標識L
PSを20μl(最終濃度5ng/106個細胞)、PBSで10倍希釈
したヒト血清(Bio Whittaker社)を10μl(最終濃度1%)ず
つ各ウェルに分注し、5% CO2存在下、37℃で1時間イン
キュベートした。細胞はPBSでマルチスクリーンフィル
トレーションシステムバキュームマニホールド(Millipo
re社)を用いて3回洗浄後、300μlのPBSに懸濁し、フィ
ルター付チューブでろ過した。得られた細胞懸濁液につ
いて1,000個の細胞に結合したFITC標識LPS量を
フローサイトメーターCyto ACE-300を用いて測定した。
溶出用緩衝液にはFACS Flowを用いた。得られたMFI
値を細胞に結合したFITC標識LPS量とし、その測
定値をもとに各試験化合物のmCD14とFITC標識
LPSの特異的結合を阻害する活性を前記式(I)によ
り求めた。 (2)THP−1細胞を用いたTNF-α産生阻害活性
の測定 THP−1細胞をRPMIを用いて3回遠心(1,000rpm、3
分、20℃)洗浄後、細胞の最終濃度が6.67×106個/mlと
なるようにPBSに懸濁し、150μlずつマルチフィルトレ
ーションシステム96穴プレート(Millipore社)の各ウェ
ルに分注した(最終濃度106個/ウェル)。試験化合物を20μl
ずつ各ウェルに分注し、5% CO2存在下、37℃で15分間プ
レインキュベートした。対照ウェルにはRPMIを20μl分
注した。プレインキュベート後、0.25μg/mlの濃度のEs
cherichia coli O111:B4 LPS(Sigma社)を20μl(最終濃
度5ng/106個細胞)、RPMIで10倍希釈したヒト血清(Bio W
hittaker社)を10μl(最終濃度1%)ずつ各ウェルに分注
し、5% CO2存在下、37℃で4時間インキュベートした。
インキュベート後、マルチスクリーンフィルトレーショ
ンシステムバキュームマニホールド(Millipore社)を用
いて培養上清を回収した。得られた培養上清中のTNF-α
量はヒトTNF-α測定用ELISAキット(Genzyme社)を用いて
測定した。 (3)THP−1細胞を用いた細胞毒性試験 THP−1細胞を10% 非働化ウシ胎児血清加RPMIを用
いて3回遠心(1,000rpm、3分、20℃)洗浄後、細胞の最終
濃度が106個/mlとなるように同培地に懸濁し、90μlず
つ96穴マイクロウェルプレート(ICN社)の各ウェルに分
注した(最終濃度9×104個/ウェル)。試験化合物を10μlず
つ各ウェルに分注し、5% CO2存在下、37℃で24時間イン
キュベートした。対照ウェルにはRPMIを10μl分注し
た。インキュベート後、Cell counting kit(同仁社)を
用いて細胞毒性の有無を調べた。すなわち、添付の呈色
試薬を10μl分注し、5% CO2存在下、37℃で3時間インキ
ュベート後、測定波長450nm、参照波長620nmとして吸光
度を測定した。
Example 1 CD14 Expression-Induced THP-1 Cells and F
Screening of CD14 antagonist using ITC-labeled LPS (1) FIT using CD14 expression-induced THP-1 cells
Measurement of C-labeled LPS binding inhibitory activity CD14 expression-induced THP-1 cells were centrifuged three times using PBS
(1,000 rpm, 3 minutes, 20 ° C) After washing, the final concentration of cells is 6.67
× 10 6 cells / ml suspended in PBS, 150 μl each in a multi-filtration system 96-well plate (Millipore
Was dispensed into each well of the company) (final concentration 10 6 cells / well). Test compounds dispensed each well 20 [mu] l, 5% CO 2 presence 37
Preincubated for 15 minutes at ° C. PBS was used to measure the maximum binding amount, and PBS was used to measure the specific binding amount to mCD14.
Anti-human CD14 monoclonal antibody clon diluted 10 times with
e.MEM18 (SANBIO) was dispensed at 20 μl each. After pre-incubation, FITC-labeled L at a concentration of 0.25 μg / ml
20 μl of PS (final concentration 5 ng / 10 6 cells), 10 μl of human serum (Bio Whittaker) diluted 10 times with PBS was dispensed to each well by 10 μl (final concentration 1%), and in the presence of 5% CO 2 , Incubated at 37 ° C. for 1 hour. Cells are washed in PBS with a multi-screen filtration system vacuum manifold (Millipo
After washing three times using Re. Co., Ltd., the cells were suspended in 300 μl of PBS and filtered through a filter tube. The amount of FITC-labeled LPS bound to 1,000 cells of the obtained cell suspension was measured using a flow cytometer Cyto ACE-300.
FACS Flow was used as an elution buffer. Obtained MFI
The value was defined as the amount of FITC-labeled LPS bound to the cells, and the activity of each test compound to inhibit the specific binding between mCD14 and FITC-labeled LPS was determined by the above formula (I) based on the measured value. (2) Measurement of TNF-α production inhibitory activity using THP-1 cells THP-1 cells were centrifuged three times using RPMI (1,000 rpm, 3 rpm).
After washing, the cells were suspended in PBS so that the final concentration of the cells was 6.67 × 10 6 cells / ml, and 150 μl was dispensed into each well of a multifiltration system 96-well plate (Millipore). (final concentration of 10 6 cells / well). 20 μl of test compound
Each well was dispensed to each well and pre-incubated at 37 ° C. for 15 minutes in the presence of 5% CO 2 . 20 μl of RPMI was dispensed into control wells. After preincubation, a concentration of 0.25 μg / ml Es
20 μl (final concentration 5 ng / 10 6 cells) of cherichia coli O111: B4 LPS (Sigma), human serum (Bio W
10 μl (final concentration 1%) was dispensed into each well and incubated at 37 ° C. for 4 hours in the presence of 5% CO 2 .
After the incubation, the culture supernatant was recovered using a multi-screen filtration system vacuum manifold (Millipore). TNF-α in the obtained culture supernatant
The amount was measured using an ELISA kit for human TNF-α measurement (Genzyme). (3) Cytotoxicity test using THP-1 cells THP-1 cells were centrifuged three times (1,000 rpm, 3 minutes, 20 ° C.) using RPMI supplemented with 10% inactivated fetal bovine serum, and then the final concentration of the cells was determined. Was suspended in the same medium at a concentration of 10 6 cells / ml, and 90 μl was dispensed into each well of a 96-well microwell plate (ICN) (final concentration 9 × 10 4 cells / well). 10 μl of the test compound was dispensed into each well and incubated at 37 ° C. for 24 hours in the presence of 5% CO 2 . 10 μl of RPMI was dispensed into control wells. After the incubation, the presence or absence of cytotoxicity was examined using a Cell counting kit (Dojinsha). That is, 10 μl of the attached color reagent was dispensed, incubated at 37 ° C. for 3 hours in the presence of 5% CO 2 , and the absorbance was measured at a measurement wavelength of 450 nm and a reference wavelength of 620 nm.

【0028】上記(1)の方法を用いて10種の化合物
の結合阻害活性を2μMの濃度で測定した結果、表1に
示すような結果が得られた。 表1より、化合物1から10がLPSとCD14の結合
性に対して強い結合阻害活性を有することが確認され
た。
The binding inhibitory activity of the ten compounds was measured at a concentration of 2 μM using the above method (1). The results shown in Table 1 were obtained. From Table 1, it was confirmed that Compounds 1 to 10 have strong binding inhibitory activity on the binding between LPS and CD14.

【0029】さらに、上記(1)〜(3)の方法を用い
て、3種の化合物の各種in vitro活性を測定した結果を
〔表2〕に示す。 〔表2〕 化合物No. FITC標識LPS結合阻害 TNF-α産生阻害細胞毒性 IC50値 IC50値 IC50値 A 4.39μM 4.79μM >10μM B 4.39μM 10.39μM >10μM C 4.26μM 9.21μM >10μM 表2より、化合物A〜CがLPSとCD14の結合性に
対して強い結合阻害活性を有し、かつTNF−α産生阻
害活性を有する、いわゆるCD14アンタゴニストとし
ての活性を有することが確認された。
Further, the results obtained by measuring the in vitro activities of the three compounds using the above methods (1) to (3) are shown in Table 2. [Table 2] Compound No. FITC-labeled LPS binding inhibition TNF-α production inhibition cytotoxicity IC50 value IC50 value IC50 value A 4.39 μM 4.79 μM> 10 μM B 4.39 μM 10.39 μM> 10 μM C 4.26 μM 9.21 μM> 10 μM From Table 2, It was confirmed that Compounds A to C had a strong binding inhibitory activity on the binding between LPS and CD14 and also had a TNF-α production inhibitory activity, ie, a so-called CD14 antagonist activity.

【0030】[0030]

【発明の効果】本発明のスクリーニング法およびスクリ
ーニング用キットは、LPSとCD14の結合性を変化
させる化合物のスクリーニングに有用であり、該スクリ
ーニングによって得られうるLPSとCD14の結合性
を変化させる化合物またはその誘導体は、セプティック
ショック等の予防・治療剤あるいは免疫賦活剤として有
用である。
The screening method and the screening kit of the present invention are useful for screening a compound that changes the binding between LPS and CD14, and a compound or a compound that changes the binding between LPS and CD14 that can be obtained by the screening. The derivative is useful as a prophylactic / therapeutic agent for septic shock or an immunostimulant.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) G01N 33/53 G01N 33/53 Y 33/566 33/566 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) G01N 33/53 G01N 33/53 Y 33/566 33/566

Claims (29)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】標識されたリポ多糖および膜結合型CD1
4を発現した細胞を用いることを特徴とするリポ多糖と
CD14との結合性を変化させる化合物のスクリーニン
グ方法。
1. Labeled lipopolysaccharide and membrane-bound CD1
4. A method for screening a compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14, comprising using a cell that has expressed No.4.
【請求項2】リポ多糖がフルオレッセンイソチアシアネ
ート、ビオチン、酵素または放射性同位元素で標識され
たリポ多糖である請求項1記載のスクリーニング方法。
2. The screening method according to claim 1, wherein the lipopolysaccharide is fluorescein isothiocyanate, biotin, an enzyme or a lipopolysaccharide labeled with a radioisotope.
【請求項3】リポ多糖がラフ型リポ多糖である請求項1
記載のスクリーニング方法。
3. The lipopolysaccharide according to claim 1, wherein the lipopolysaccharide is a rough lipopolysaccharide.
The screening method as described above.
【請求項4】リポ多糖がフルオレッセンイソチアシアネ
ートで標識されたリポ多糖である請求項1記載のスクリ
ーニング方法。
4. The screening method according to claim 1, wherein the lipopolysaccharide is a lipopolysaccharide labeled with fluorescein isothiocyanate.
【請求項5】結合比率(フルオレッセンイソチアシアネ
ート/リポ多糖)が約0.03ないし約1.0であるフ
ルオレッセンイソチアシアネートで標識されたリポ多
糖、および膜結合型CD14が高発現した細胞を用いる
請求項1記載のスクリーニング方法。
5. A lipopolysaccharide labeled with fluorescein isothiocyanate having a binding ratio (fluorescein isothiocyanate / lipopolysaccharide) of about 0.03 to about 1.0, and high expression of membrane-bound CD14. The screening method according to claim 1, wherein cells are used.
【請求項6】細胞あたり膜結合型CD14を約100,
000分子以上発現している細胞を用いる請求項1また
は5記載のスクリーニング方法。
6. The method according to claim 1, wherein the membrane-bound CD14 per cell is about 100,
6. The screening method according to claim 1, wherein cells expressing at least 000 molecules are used.
【請求項7】細胞が1,25−ジヒドロキシビタミンD
3により膜結合型CD14の発現を誘導させた細胞であ
る請求項1記載のスクリーニング方法。
7. The method according to claim 1, wherein the cells are 1,25-dihydroxyvitamin D.
The screening method according to claim 1, wherein the cells that are induced expression of membrane-bound CD14 by 3.
【請求項8】細胞が単核球または多形核球である請求項
1記載のスクリーニング方法。
8. The screening method according to claim 1, wherein the cells are mononuclear cells or polymorphonuclear cells.
【請求項9】細胞が単球、マクロファージまたは好中球
である請求項1記載のスクリーニング方法。
9. The screening method according to claim 1, wherein the cells are monocytes, macrophages or neutrophils.
【請求項10】細胞がヒト細胞である請求項1記載のス
クリーニング方法。
10. The screening method according to claim 1, wherein the cells are human cells.
【請求項11】細胞がTHP−1である請求項1記載の
スクリーニング方法。
11. The screening method according to claim 1, wherein the cells are THP-1.
【請求項12】細胞約106個当り約1ngないし約3
0ngの標識リポ多糖を使用する請求項1記載のスクリ
ーニング方法。
12. About 1 ng to about 3 cells per about 10 6 cells.
The screening method according to claim 1, wherein 0 ng of the labeled lipopolysaccharide is used.
【請求項13】(i)標識されたリポ多糖と膜結合型C
D14を発現した細胞とを接触させた場合と、(ii)標
識されたリポ多糖および試験化合物と膜結合型CD14
を発現した細胞とを接触させた場合における、標識した
リポ多糖と膜結合型CD14との結合性を測定すること
を特徴とする請求項1記載のスクリーニング方法。
(I) labeled lipopolysaccharide and membrane-bound C
And (ii) labeled lipopolysaccharide and a test compound and membrane-bound CD14.
2. The screening method according to claim 1, wherein the binding between the labeled lipopolysaccharide and the membrane-bound CD14 is measured when the cell is brought into contact with a cell that has expressed.
【請求項14】フローサイトメトリー法を用いて、
(i)標識されたリポ多糖と膜結合型CD14を発現し
た細胞とを接触させたときの平均蛍光強度(Mean fluor
escence intensity(MFI))値、(ii)標識された
リポ多糖および試験化合物と膜結合型CD14を発現し
た細胞とを接触させたときのMFI値、および(iii)
標識されたリポ多糖および抗CD14抗体と膜結合型C
D14を発現した細胞とを接触させたときのMFI値を
測定し、次式(I) 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることを
特徴とするリポ多糖とCD14との結合性を変化させる
化合物のスクリーニング方法。
14. The method according to claim 14, wherein the flow cytometry method is used.
(I) Mean fluorescence intensity (Mean fluor) when the labeled lipopolysaccharide is brought into contact with cells expressing membrane-bound CD14
luminescence intensity (MFI)) value, (ii) MFI value when the labeled lipopolysaccharide and test compound are brought into contact with cells expressing membrane-bound CD14, and (iii)
Labeled lipopolysaccharide and anti-CD14 antibody and membrane-bound C
The MFI value was measured when the cells were brought into contact with cells expressing D14, and the following formula (I) inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = MFI when added-MFI when anti-CD14 antibody was added MFI 2 = MFI when test compound was not added-anti-CD14
A method for screening a compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14, wherein the inhibition rate is determined by MFI when an antibody is added.
【請求項15】リポ多糖とCD14との結合性を変化さ
せる化合物がCD14アンタゴニストである請求項1記
載のスクリーニング方法。
15. The screening method according to claim 1, wherein the compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14 is a CD14 antagonist.
【請求項16】リポ多糖とCD14との結合性を変化さ
せる化合物がCD14アゴニストである請求項1記載の
スクリーニング方法。
16. The screening method according to claim 1, wherein the compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14 is a CD14 agonist.
【請求項17】請求項13または14記載のスクリーニ
ング方法で得られた化合物のリポ多糖様作用の有無を測
定することを特徴とするCD14アゴニスト、CD
14アンタゴニスト、膜結合型CD14に結合しない
が、リポ多糖、CD14またはリポ多糖結合蛋白質に作
用して、リポ多糖とCD14との結合を阻害する化合物
またはリポ多糖とCD14との結合を促進する化合物
のスクリーニング方法。
17. A CD14 agonist or CD, which is for determining the presence or absence of a lipopolysaccharide-like action of a compound obtained by the screening method according to claim 13 or 14.
14 antagonists, compounds that do not bind to membrane-bound CD14 but act on lipopolysaccharide, CD14 or lipopolysaccharide binding protein to inhibit the binding of lipopolysaccharide to CD14 or compounds that promote the binding of lipopolysaccharide to CD14 Screening method.
【請求項18】リポ多糖様作用がTNF−α、IL−
1、IL−6、IL−8、NO、スーパーオキサイド、
血小板活性化因子またはアラキドン酸カスケード産物の
産生である請求項17記載のスクリーニング方法。
(18) the lipopolysaccharide-like action is TNF-α, IL-
1, IL-6, IL-8, NO, superoxide,
The screening method according to claim 17, wherein the method is production of a platelet activating factor or an arachidonic acid cascade product.
【請求項19】標識されたリポ多糖および膜結合型CD
14が発現した細胞を含有する、リポ多糖とCD14と
の結合性を変化させる化合物のスクリーニング用キッ
ト。
19. Labeled lipopolysaccharide and membrane-bound CD
A screening kit for a compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14, comprising a cell in which 14 has been expressed.
【請求項20】請求項1記載のスクリーニング方法で得
られうるリポ多糖とCD14との結合性を変化させる化
合物またはその誘導体。
[20] a compound or a derivative thereof which alters the binding property between lipopolysaccharide and CD14, which can be obtained by the screening method according to [1];
【請求項21】請求項17記載のスクリーニング方法で
得られうるCD14アゴニスト、CD14アンタゴ
ニスト、膜結合型CD14に結合しないが、リポ多
糖、CD14またはリポ多糖結合蛋白質に作用して、リ
ポ多糖とCD14との結合を阻害する化合物、リポ多
糖とCD14との結合を促進する化合物またはその誘導
体。
21. A lipopolysaccharide, CD14 or a lipopolysaccharide-binding protein which does not bind to a CD14 agonist, a CD14 antagonist, or a membrane-bound CD14 obtainable by the screening method according to claim 17. A compound that inhibits the binding of lipopolysaccharide to a compound or a derivative thereof that promotes the binding between CD14 and lipopolysaccharide.
【請求項22】請求項1記載のスクリーニング方法で得
られうるリポ多糖とCD14との結合性を変化させる化
合物またはその誘導体を含有してなるセプティックショ
ックの予防・治療剤。
(22) A prophylactic / therapeutic agent for septic shock, comprising a compound capable of changing the binding property between lipopolysaccharide and CD14 or a derivative thereof obtainable by the screening method according to (1).
【請求項23】化合物がCD14アンタゴニストである
請求項22記載のセプティックショックの予防・治療
剤。
23. The agent for preventing or treating septic shock according to claim 22, wherein the compound is a CD14 antagonist.
【請求項24】化合物が膜結合型CD14に結合しない
が、リポ多糖、CD14またはリポ多糖結合蛋白質に作
用して、リポ多糖とCD14との結合を阻害する化合物
である請求項22記載のセプティックショックの予防・
治療剤。
24. The septic according to claim 22, wherein the compound does not bind to membrane-bound CD14 but acts on lipopolysaccharide, CD14 or lipopolysaccharide binding protein to inhibit the binding of lipopolysaccharide to CD14. Shock prevention
Therapeutic agent.
【請求項25】請求項1記載のスクリーニング方法で得
られうるリポ多糖とCD14との結合性を変化させる化
合物またはその誘導体を含有してなる免疫賦活剤。
25. An immunostimulator comprising a compound capable of changing the binding property between lipopolysaccharide and CD14 or a derivative thereof obtainable by the screening method according to claim 1.
【請求項26】化合物がCD14アゴニストである請求
項25記載の免疫賦活剤。
26. The immunostimulant according to claim 25, wherein the compound is a CD14 agonist.
【請求項27】化合物がリポ多糖とCD14との結合を
促進する化合物である請求項25記載の免疫賦活剤。
27. The immunostimulant according to claim 25, wherein the compound promotes the binding between lipopolysaccharide and CD14.
【請求項28】(A)(i)標識されたリポ多糖と膜結
合型CD14を発現した細胞とを接触させた場合と、
(ii)標識されたリポ多糖および試験化合物と膜結合型
CD14を発現した細胞とを接触させた場合における、
標識したリポ多糖と膜結合型CD14との結合性を測定
するか、または(B)フローサイトメトリー法を用い
て、(i)標識されたリポ多糖と膜結合型CD14を発
現した細胞とを接触させたときの平均蛍光強度(Mean f
luorescence intensity(MFI))値、(ii)標識さ
れたリポ多糖および試験化合物と膜結合型CD14を発
現した細胞とを接触させたときのMFI値、および(ii
i)標識されたリポ多糖および抗CD14抗体と膜結合
型CD14を発現した細胞とを接触させたときのMFI
値を測定し、次式 阻害率(%) = (1− MFI1/MFI2) × 100 (I) (MFI1=試験化合物を加えたときのMFI − 抗CD14抗体
を加えたときのMFI MFI2=試験化合物を加えなかったときのMFI − 抗CD14
抗体を加えたときのMFI)により阻害率を求めることに
より、リポ多糖とCD14との結合性を変化させる化合
物を選択し、次いで、選択した化合物のTNF−α、I
L−1、IL−6、IL−8、NO、スーパーオキサイ
ド、血小板活性化因子またはアラキドン酸カスケード産
物の産生誘導活性を測定し、(a)該産生誘導活性を有
する化合物をCD14アゴニストまたはリポ多糖と
CD14との結合を促進する化合物として選択し、
(b)該産生誘導活性を有しない化合物をCD14ア
ンタゴニストまたは膜結合型CD14に結合しない
が、リポ多糖、CD14またはリポ多糖結合蛋白質に作
用して、リポ多糖とCD14との結合を阻害する化合物
として選択することを特徴とする、CD14アゴニス
ト、リポ多糖とCD14との結合を促進する化合物、
CD14アンタゴニストまたは膜結合型CD14に
結合しないが、リポ多糖、CD14またはリポ多糖結合
蛋白質に作用して、リポ多糖とCD14との結合を阻害
する化合物のスクリーニング方法。
(A) (i) contacting a labeled lipopolysaccharide with cells expressing membrane-bound CD14;
(Ii) contacting the cells expressing the membrane-bound CD14 with the labeled lipopolysaccharide and the test compound,
Measuring the binding property between the labeled lipopolysaccharide and membrane-bound CD14, or (B) using flow cytometry to contact (i) the cell that expressed membrane-bound CD14 with the labeled lipopolysaccharide Average fluorescence intensity (Mean f
luorescence intensity (MFI)) value, (ii) MFI value when the labeled lipopolysaccharide and test compound are brought into contact with cells expressing membrane-bound CD14, and (ii)
i) MFI when contacting labeled lipopolysaccharide and anti-CD14 antibody with cells expressing membrane-bound CD14
The values were measured and the following formula: Inhibition rate (%) = (1−MFI 1 / MFI 2 ) × 100 (I) (MFI 1 = MFI when test compound was added−MFI when anti-CD14 antibody was added MFI MFI 2 = MFI without test compound added-anti-CD14
The compound that alters the binding between lipopolysaccharide and CD14 is selected by determining the inhibition rate by MFI when an antibody is added, and then TNF-α, I
L-1, IL-6, IL-8, NO, superoxide, platelet activating factor, or arachidonic acid cascade product production-inducing activity was measured, and (a) a compound having the production-inducing activity was identified as a CD14 agonist or lipopolysaccharide. Selected as a compound that promotes the binding of
(B) as a compound that does not bind to the CD14 antagonist or membrane-bound CD14 but acts on lipopolysaccharide, CD14 or lipopolysaccharide binding protein to inhibit the binding between lipopolysaccharide and CD14 A compound that promotes the binding between CD14 agonist, lipopolysaccharide and CD14,
A method for screening a compound that does not bind to a CD14 antagonist or membrane-bound CD14 but acts on lipopolysaccharide, CD14 or a lipopolysaccharide binding protein to inhibit the binding of lipopolysaccharide to CD14.
【請求項29】コンビナトリアルケミストリー技術によ
り製造され得る化合物ライブラリーの中から、請求項2
8記載のスクリーニング方法を用いて選択されたCD
14アゴニスト、リポ多糖とCD14との結合を促進
する化合物、CD14アンタゴニスト、膜結合型C
D14に結合しないが、リポ多糖、CD14またはリポ
多糖結合蛋白質に作用して、リポ多糖とCD14との結
合を阻害する化合物またはその誘導体。
29. A compound library which can be produced by a combinatorial chemistry technique.
CD selected using the screening method described in Item 8
14 agonist, compound promoting binding of lipopolysaccharide to CD14, CD14 antagonist, membrane-bound C
A compound or derivative thereof that does not bind to D14 but acts on lipopolysaccharide, CD14 or lipopolysaccharide-binding protein to inhibit the binding between lipopolysaccharide and CD14.
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