JP2000139500A - Measuring of hiv gene by real time detection pcr, and primer and probe used therefor - Google Patents

Measuring of hiv gene by real time detection pcr, and primer and probe used therefor

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JP2000139500A
JP2000139500A JP10326308A JP32630898A JP2000139500A JP 2000139500 A JP2000139500 A JP 2000139500A JP 10326308 A JP10326308 A JP 10326308A JP 32630898 A JP32630898 A JP 32630898A JP 2000139500 A JP2000139500 A JP 2000139500A
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JP
Japan
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oligonucleotide
seq
primer
hiv
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JP10326308A
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Michinori Obara
道法 小原
Aki Abe
亜紀 阿部
Ryuji Kawaguchi
竜二 川口
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Tokyo Metropolitan Institute of Medical Science
SRL Inc
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Tokyo Metropolitan Institute of Medical Science
SRL Inc
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain the subject new reversed side primer comprising an oligonucleotide having a specific base sequence and useful for accurate measurement of human immunodeficiency virus(HIV) gene, or the like, by real time detection PCR method. SOLUTION: This reversed side new primer is an oligonucleotide having a base sequence (T may be V) comprising continuing 15-47 bases in a base sequence represented by the formula and having a base sequence containing 21st carbon of the base sequence represented by the formula and is used for measuring HIV gene by real time detection PCR method, and the HIV measuring method using this new primer can measure HIV gene more accurately in higher sensitivity than conventional method and is useful for diagnosis of AIDS, or the like. The primer is obtained by considering to minimize the influence by multiform of HIV gene having many variations on detection sensitivity and setting the condition for detection in good sensitivity after repeating trials and errors.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、リアルタイム検出
PCR法によるヒト免疫不全ウイルス(本明細書におい
て「HIV」という)の測定方法並びにプライマー及び
プローブに関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for measuring human immunodeficiency virus (herein referred to as "HIV") by real-time detection PCR, and primers and probes.

【0002】[0002]

【従来の技術】リアルタイム検出PCRは、レポーター
蛍光色素と、クエンチャー蛍光色素とが結合されたプロ
ーブの存在下にPCRを行うことにより、標的核酸の増
幅に伴ってリアルタイムに増加する蛍光強度を測定する
ことにより、検体中の標的核酸の測定を行なう技術であ
り、そのためのキットも市販されている。
2. Description of the Related Art In real-time detection PCR, a PCR is carried out in the presence of a probe to which a reporter fluorescent dye and a quencher fluorescent dye are bound, thereby measuring the fluorescence intensity that increases in real time as the target nucleic acid is amplified. This is a technique for measuring a target nucleic acid in a sample, and a kit for this is also commercially available.

【0003】従来より、HIVをリアルタイムPCRに
より測定することが提案されている(特表平6-50002
1)。
[0003] Hitherto, it has been proposed to measure HIV by real-time PCR (Tokuhei 6-50002).
1).

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、リアル
タイムPCRの感度は、用いるプライマー及びプローブ
により有意に影響される。従来報告されている方法より
も高感度にHIVを測定することができれば有利である
ことは言うまでもない。
However, the sensitivity of real-time PCR is significantly affected by the primers and probes used. It goes without saying that it would be advantageous to be able to measure HIV with higher sensitivity than previously reported methods.

【0005】従って、本発明の目的は、HIVを従来報
告されている方法よりも高感度で正確に測定することが
できるHIVの測定方法並びにそれに用いることができ
るプライマー及びプローブを提供することである。
Accordingly, an object of the present invention is to provide a method for measuring HIV which can measure HIV more sensitively and accurately than previously reported methods, and a primer and a probe which can be used for the method. .

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、鋭意研究
の結果、特定のプライマー及びプローブを用いることに
よりリアルタイム検出PCR法を用いて非常に高感度
に、高い再現性をもってHIVを正確に定量することが
できることを見出し、本発明を完成した。
Means for Solving the Problems As a result of intensive studies, the present inventors have found that using specific primers and probes, real-time detection PCR can be used to accurately detect HIV with very high sensitivity and high reproducibility. They have found that they can be quantified and completed the present invention.

【0007】すなわち、本発明は、配列表の配列番号1
に示される塩基配列のうち連続する15塩基ないし47
塩基から成る塩基配列(ただし、TはUでもよい)であっ
て、配列番号1に示される塩基配列の第21番目のCを
含む塩基配列を有するオリゴヌクレオチドである、リア
ルタイム検出PCR法によるHIV遺伝子の測定のため
に用いられるリバース側プライマーを提供する。また、
本発明は、配列表の配列番号3で示される塩基配列のう
ち連続する15塩基ないし44塩基から成る塩基配列を
有するオリゴヌクレオチドに、レポーター蛍光色素と、
クエンチャー蛍光色素とが結合されており、前記レポー
ター蛍光色素は、該レポーター蛍光色素が前記クエンチ
ャー蛍光色素と同一のプローブに結合されている場合に
は蛍光共鳴エネルギー転移によりその蛍光強度が抑制さ
れ、前記クエンチャー蛍光色素と同一のプローブに結合
されていない状態では蛍光強度が抑制されないものであ
る、リアルタイム検出PCR法によるHIV遺伝子の測
定のために用いられるプローブを提供する。さらに、本
発明は、配列表の配列番号5に示される塩基配列のうち
連続する15塩基ないし50塩基から成る塩基配列(た
だし、TはUでもよい)であって、配列番号5に示され
る塩基配列の第14番目のG及び第17番目のGのうち
少なくともいずれか一方を含む塩基配列を有するオリゴ
ヌクレオチドであるフォワード側プライマーと、上記本
発明のリバース側プライマーと、上記本発明のプローブ
とを用い、被検試料中の測定すべきHIV遺伝子を鋳型
として逆転写PCRを行ない、反応液からの蛍光をリア
ルタイムに測定することから成る、被検試料中のHIV
遺伝子の測定方法を提供する。
[0007] That is, the present invention relates to SEQ ID NO: 1
15 to 47 consecutive nucleotides in the nucleotide sequence shown in
An HIV gene obtained by real-time detection PCR, which is an oligonucleotide having a base sequence consisting of bases (T may be U) and having a base sequence containing the 21st C of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 And a reverse-side primer used for the measurement of Also,
The present invention relates to an oligonucleotide having a base sequence consisting of 15 to 44 consecutive bases among the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, a reporter fluorescent dye,
A quencher fluorescent dye is bound, and when the reporter fluorescent dye is bound to the same probe as the quencher fluorescent dye, its fluorescence intensity is suppressed by fluorescence resonance energy transfer. And a probe used for measuring an HIV gene by a real-time detection PCR method, the fluorescence intensity of which is not suppressed when not bound to the same probe as the quencher fluorescent dye. Furthermore, the present invention relates to a base sequence consisting of consecutive 15 to 50 bases (where T may be U) of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, wherein the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 A forward primer that is an oligonucleotide having a base sequence containing at least one of the 14th G and 17th G of the sequence, the reverse primer of the present invention, and the probe of the present invention. Using the HIV gene to be measured in the test sample as a template, performing reverse transcription PCR, and measuring the fluorescence from the reaction solution in real time.
Provided is a method for measuring a gene.

【0008】[0008]

【発明の実施の形態】本発明のリバース側プライマー及
びプローブは、変異の多いHIV遺伝子において塩基配
列の多型による検出感度への影響を最低限にするように
考慮し、かつ、感度良く検出できるように試行錯誤して
設定されたものである。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The reverse-side primer and probe of the present invention can be detected with high sensitivity in consideration of minimizing the influence on the detection sensitivity due to nucleotide sequence polymorphism in an HIV gene having many mutations. It is set by trial and error as follows.

【0009】本発明のリバース側プライマーは、配列表
の配列番号1に示される塩基配列のうち連続する15塩
基ないし47塩基から成る塩基配列(ただし、TはUで
もよい)であって、配列番号1に示される塩基配列の第
21番目のCを含む塩基配列を有するオリゴヌクレオチ
ドであり、好ましくは、配列番号1に示される塩基配列
の第8番目ないし第40番目の塩基のうち連続する24
塩基ないし30塩基から成る配列を有するオリゴヌクレ
オチドである。特に好ましいものとして、配列番号2に
示される、27塩基から成る塩基配列を有するものを挙
げることができる。なお、配列番号2で示される塩基配
列は、HIV1ゲノムの1474番目のヌクレオチド(以下、「1
474nt」のように記載)〜1500ntにハイブリダイズするも
のである。なお、HIV1ゲノムの全塩基配列は公知であ
り、Adachi A.et al., J.Virol.1992;66:3151-3154に記
載されている。
The reverse primer of the present invention is a nucleotide sequence consisting of 15 to 47 contiguous nucleotides (where T may be U) of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing. 1. An oligonucleotide having a nucleotide sequence containing the 21st C of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, preferably 24 consecutive nucleotides among the eighth to 40th nucleotides in the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1.
It is an oligonucleotide having a sequence consisting of bases to 30 bases. Particularly preferred are those having a base sequence of 27 bases shown in SEQ ID NO: 2. The nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2 corresponds to the 1474th nucleotide of the HIV1 genome (hereinafter referred to as “1
474 nt ”) to 1500 nt. The entire nucleotide sequence of the HIV1 genome is known, and is described in Adachi A. et al., J. Virol. 1992; 66: 3151-3154.

【0010】本発明のプローブは、オリゴヌクレオチド
に後述するレポーター蛍光色素とクエンチャー蛍光色素
が結合したものである。該プローブのオリゴヌクレオチ
ド部分は、配列表の配列番号3で示される塩基配列のう
ち連続する15塩基ないし44塩基から成る塩基配列を
有するオリゴヌクレオチドあり、好ましくは、配列番号
3に示される塩基配列の第4番目ないし第37番目の塩
基のうち連続する25塩基ないし31塩基から成る配列
を有するオリゴヌクレオチドである。特に好ましいもの
として、配列表の配列番号4に示される塩基配列を有す
るオリゴヌクレオチドを挙げることができる。なお、配
列番号4で示される塩基配列は、HIV1ゲノムの1403nt〜
1430ntに相当するものである。
[0010] The probe of the present invention is a probe in which a reporter fluorescent dye and a quencher fluorescent dye described later are bound to an oligonucleotide. The oligonucleotide portion of the probe is an oligonucleotide having a base sequence consisting of 15 to 44 contiguous bases of the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 in the sequence listing, and is preferably an oligonucleotide having a base sequence represented by SEQ ID NO: 3. It is an oligonucleotide having a sequence consisting of consecutive 25 to 31 bases among the fourth to 37th bases. Particularly preferred is an oligonucleotide having the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing. The nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4 is from 1403 nt of the HIV1 genome.
It is equivalent to 1430nt.

【0011】前記レポーター蛍光色素は、該レポーター
蛍光色素が前記クエンチャー蛍光色素と同一のプローブ
に結合されている場合には蛍光共鳴エネルギー転移によ
りその蛍光強度が抑制され、前記クエンチャー蛍光色素
と同一のプローブに結合されていない状態では蛍光強度
が抑制されないものである。レポーター蛍光色素として
は、FAM(6−カルボキシ−フルオレッセイン)のよ
うなフルオレッセイン系蛍光色素が好ましく、クエンチ
ャー蛍光色素としては、TAMRA(6−カルボキシ−
テトラメチル−ローダミン)のようなローダミン系蛍光
色素が好ましい。これらの蛍光色素は公知であり、市販
のリアルタイム検出PCR用キットに含まれているので
それを用いることができる。レポーター蛍光色素及びク
エンチャー蛍光色素の結合位置は特に限定されないが、
通常、プローブのオリゴヌクレオチド部の一端(好まし
くは5’末端)にレポーター蛍光色素が、他端にクエン
チャー蛍光色素が結合される。なお、オリゴヌクレオチ
ドに蛍光色素を結合する方法は公知であり、例えばNobl
e et al., (1984) Nuc. Acids Res. 12:3387-3403及びI
yer et al., (1990) J. Am. Chem. Soc. 112:1253-1254
に記載されている。
When the reporter fluorescent dye is bound to the same probe as the quencher fluorescent dye, the fluorescence intensity of the reporter fluorescent dye is suppressed by fluorescence resonance energy transfer, and the same as the quencher fluorescent dye. When the probe is not bound to the probe, the fluorescence intensity is not suppressed. As the reporter fluorescent dye, a fluorescein-based fluorescent dye such as FAM (6-carboxy-fluorescein) is preferable, and as the quencher fluorescent dye, TAMRA (6-carboxy-fluorescein) is used.
Rhodamine-based fluorescent dyes such as tetramethyl-rhodamine) are preferred. These fluorescent dyes are known and can be used since they are contained in a commercially available kit for real-time detection PCR. The binding position of the reporter fluorescent dye and the quencher fluorescent dye is not particularly limited,
Usually, a reporter fluorescent dye is bound to one end (preferably the 5 'end) of the oligonucleotide portion of the probe, and a quencher fluorescent dye is bound to the other end. Incidentally, a method of binding a fluorescent dye to an oligonucleotide is known, for example, Nobl
e et al., (1984) Nuc. Acids Res. 12: 3387-3403 and I
yer et al., (1990) J. Am. Chem. Soc. 112: 1253-1254.
It is described in.

【0012】本発明の方法では、フォワード側プライマ
ーと、上記本発明のリバース側プライマーと、上記本発
明のプローブとを用い、被検試料中の測定すべきHIV
遺伝子を鋳型として逆転写PCR(RT−PCR)を行
ない、反応液からの蛍光をリアルタイムに測定する。こ
のリアルタイム検出PCR法自体は公知であり、そのた
めの装置及びキットも市販されているので、このような
市販の装置及びキットを用いて行なうことができる。
In the method of the present invention, the HIV to be measured in the test sample is prepared by using the forward primer, the reverse primer of the present invention, and the probe of the present invention.
Reverse transcription PCR (RT-PCR) is performed using the gene as a template, and the fluorescence from the reaction solution is measured in real time. The real-time detection PCR method itself is publicly known, and apparatuses and kits for the real-time detection PCR method are also commercially available. Therefore, the PCR can be performed using such commercially available apparatuses and kits.

【0013】本発明の方法に用いられるフォワード側プ
ライマーは、配列表の配列番号5に示される塩基配列の
うち連続する15塩基ないし50塩基から成る塩基配列
(ただし、TはUでもよい)であって、配列番号5に示さ
れる塩基配列の第14番目のG及び第17番目のGのう
ち少なくともいずれか一方を含む塩基配列を有するオリ
ゴヌクレオチドであり、好ましくは、配列番号5に示さ
れる塩基配列の第8番目ないし第43番目の塩基のうち
連続する27塩基ないし33塩基から成る配列を有する
オリゴヌクレオチドである。特に好ましいものとして、
配列番号6に示される、30塩基から成る塩基配列を有
するものを挙げることができる。なお、配列番号6で示
される塩基配列は、HIV1ゲノムの1359nt〜1388ntに相当
するものである。なお、上記本発明のプローブのオリゴ
ヌクレオチド部分がハイブリダイズするHIV遺伝子の
領域は、上記フォワード側プライマーがハイブリダイズ
する領域と近接して一部重複しているが、実際に反応を
行なう場合には、フォワード側プライマーとプローブの
ハイブリダイズする領域が互いに重複することがない組
み合わせを選択する必要がある。
The forward primer used in the method of the present invention has a nucleotide sequence consisting of 15 to 50 consecutive nucleotides in the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
(Where T may be U), which is an oligonucleotide having a base sequence containing at least one of the 14th G and 17th G of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5, Preferably, it is an oligonucleotide having a sequence consisting of 27 to 33 consecutive bases from the eighth to 43rd bases of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5. Particularly preferred are:
One having a base sequence of 30 bases shown in SEQ ID NO: 6 can be mentioned. The nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 6 corresponds to 1359 nt to 1388 nt of the HIV1 genome. The region of the HIV gene to which the oligonucleotide portion of the probe of the present invention hybridizes is close to and partially overlaps with the region to which the forward primer hybridizes, but when the reaction is actually performed, It is necessary to select a combination in which the regions where the forward primer and the probe hybridize do not overlap with each other.

【0014】反応は、被検HIVのRNA、上記フォワ
ード側プライマー、リバース側プライマー及び上記プロ
ーブ並びに耐熱性DNAポリメラーゼ(逆転写酵素活性
をも有するもの)、dATP, dGTP, dCTP, dTTPを含む溶液
を調製して行なう。dTTPに代えて、dUTPを用い、ウラシ
ル−N−グリコシラーゼ(UNG)を加えることによ
り、前回のPCR産物からの混入DNAを分解すること
ができるので好ましい。反応の具体的な条件は下記実施
例に詳述されている。なお、被検試料としては、HIV
を含有する疑いのあるいずれのものであってもよく、例
えば血清等の体液である。HIVのRNAの調製は、従
来のRT−PCRの場合と同様に行なうことができ、下
記実施例にも具体的に記載されている。
The reaction is carried out using a solution containing test HIV RNA, the above-mentioned forward primer, reverse-side primer and the above-mentioned probe, heat-resistant DNA polymerase (which also has reverse transcriptase activity), dATP, dGTP, dCTP and dTTP. Prepare and perform. Using dUTP instead of dTTP and adding uracil-N-glycosylase (UNG) is preferable because contaminating DNA from the previous PCR product can be degraded. Specific conditions for the reaction are described in detail in the Examples below. In addition, as a test sample, HIV
May be included, for example, a body fluid such as serum. Preparation of HIV RNA can be performed in the same manner as in the case of conventional RT-PCR, and is also specifically described in Examples below.

【0015】反応では、まず、HIVのRNAを鋳型と
してcDNAが合成され、次いで、このcDNAを鋳型
としてPCRによりDNAの増幅が起きる。増幅DNA
は、上記プローブと相補的な領域を含んでいるので、プ
ローブは一本鎖状態の増幅DNAにハイブリダイズす
る。プローブが完全にハイブリダイズした状態で、プロ
ーブがハイブリダイズしている一本鎖DNAを鋳型とす
る伸長が起きると、DNAポリメラーゼのエキソヌクレ
アーゼ活性によりプローブが5’末端側から加水分解さ
れる。この分解の結果、プローブのオリゴヌクレオチド
部分に結合されているレポーター蛍光色素とクエンチャ
ー蛍光色素とがバラバラになり、クエンチャー蛍光色素
に起因する蛍光共鳴エネルギー転移により抑制されてい
たレポーター蛍光色素からの蛍光強度が増加する。一
方、被検試料中にHIVのRNAが存在しない場合に
は、DNAの増幅が起きないので、プローブはDNAに
ハイブリダイズせず、従ってDNAポリメラーゼによっ
て加水分解されることもない。このため、レポーター蛍
光色素からの蛍光は、クエンチャー蛍光色素により抑制
されたままであり、蛍光強度は増加しない。従って、蛍
光強度を測定することにより、被検試料中にHIVのR
NAを検出することが可能である。
In the reaction, first, cDNA is synthesized using HIV RNA as a template, and then DNA is amplified by PCR using this cDNA as a template. Amplified DNA
Contains a region complementary to the probe, so that the probe hybridizes to the single-stranded amplified DNA. In the state where the probe is completely hybridized, when the elongation using the single-stranded DNA to which the probe is hybridized as a template occurs, the probe is hydrolyzed from the 5 ′ terminal side by the exonuclease activity of DNA polymerase. As a result of this decomposition, the reporter fluorescent dye and the quencher fluorescent dye bound to the oligonucleotide portion of the probe are separated, and the fluorescence from the reporter fluorescent dye suppressed by the fluorescence resonance energy transfer caused by the quencher fluorescent dye is reduced. The fluorescence intensity increases. On the other hand, when HIV RNA is not present in the test sample, amplification of the DNA does not occur, so that the probe does not hybridize to the DNA and is therefore not hydrolyzed by the DNA polymerase. Therefore, the fluorescence from the reporter fluorescent dye remains suppressed by the quencher fluorescent dye, and the fluorescence intensity does not increase. Therefore, by measuring the fluorescence intensity, the R
It is possible to detect NA.

【0016】本発明の方法では、蛍光強度をリアルタイ
ムに測定する。すなわち、蛍光強度を測定しながらPC
R反応を行なう。測定される蛍光強度は、あるサイクル
数を過ぎると検出限界を超え、急激に増加する。そし
て、被検試料中のHIVRNAの量が多いほど、少ない
サイクル数で蛍光強度が急に増加する。従って、何サイ
クルを過ぎた時に蛍光強度の急激な増加が始まるかを調
べることにより、被検試料中のHIVRNAの定量測定
を行なうことができる。より具体的には、例えば、HC
VRNAを含まないネガティブコントロールにおける各
サイクル(例えば3〜15サイクル)の蛍光強度の標準
偏差の10倍を閾値として設定し、蛍光強度がこの閾値
を超えるサイクル数を調べることにより、正確に被検試
料中のHIVRNAを定量測定することができる。すな
わち、被検試料中のHIVのRNA数の常用対数を横軸
に、上記閾値を超えた時のサイクル数を縦軸にとると、
測定結果はほぼ完全に直線上にのるので、検量線を作成
しておけば、何サイクルで閾値を超えるかを調べること
により被検試料中のHIVRNAの量を定量測定するこ
とができる。従って、本発明の方法によれば、従来のR
T−PCRのように、PCR後に電気泳動を行なって増
幅を調べる操作が不要であり、非常に簡便である。
In the method of the present invention, the fluorescence intensity is measured in real time. That is, while measuring the fluorescence intensity, the PC
Perform the R reaction. The measured fluorescence intensity exceeds the detection limit after a certain number of cycles and increases rapidly. Then, as the amount of HIV RNA in the test sample increases, the fluorescence intensity rapidly increases with a smaller number of cycles. Therefore, by examining the number of cycles after which the rapid increase in the fluorescence intensity starts, the quantitative measurement of HIV RNA in the test sample can be performed. More specifically, for example, HC
By setting a threshold of 10 times the standard deviation of the fluorescence intensity of each cycle (for example, 3 to 15 cycles) in a negative control containing no VRNA as a threshold, and examining the number of cycles in which the fluorescence intensity exceeds this threshold, the test sample can be accurately detected HIV RNA in the sample can be quantitatively measured. That is, when the horizontal axis is the common logarithm of the number of HIV RNAs in the test sample and the vertical axis is the number of cycles when the threshold value is exceeded,
Since the measurement results are almost completely on a straight line, if a calibration curve is prepared, it is possible to quantitatively measure the amount of HIV RNA in the test sample by examining how many cycles the threshold value is exceeded. Therefore, according to the method of the present invention, the conventional R
As in T-PCR, there is no need to perform an operation to check the amplification by performing electrophoresis after PCR, which is very simple.

【0017】[0017]

【実施例】以下、本発明を実施例に基づきより具体的に
説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定される
ものではない。
DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The present invention will be described below more specifically based on embodiments. However, the present invention is not limited to the following examples.

【0018】実施例1 1 プライマーの合成 配列番号6に示される30塩基から成る塩基配列を有する
30merのオリゴDNAを化学合成し、フォワード側プライマ
ーとした。また配列番号2に示される27塩基から成る塩
基配列を有する27merのオリゴDNAを化学合成し、リバー
ス側プライマーとした。
Example 1 1 Synthesis of Primer Having a base sequence consisting of 30 bases shown in SEQ ID NO: 6
A 30-mer oligo DNA was chemically synthesized and used as a forward primer. In addition, a 27-mer oligo DNA having a base sequence of 27 bases shown in SEQ ID NO: 2 was chemically synthesized and used as a reverse primer.

【0019】2 プローブの調製 配列番号4に示される28塩基から成る塩基配列を有する
28merのオリゴDNAを化学合成した。このオリゴDNAの5’
末端にFAMを、3’末端にTAMRAを上記文献記載の方法に
より結合し、プローブとした。
2 Preparation of Probe The probe has a base sequence consisting of 28 bases shown in SEQ ID NO: 4.
A 28-mer oligo DNA was chemically synthesized. 5 'of this oligo DNA
FAM was bound to the end and TAMRA was bound to the 3 'end by the method described in the above-mentioned literature, and used as a probe.

【0020】3 合成RNAの調製 HIV遺伝子のgag領域を含むプラスミドを作製し、これを
鋳型としてT7ポリメラーゼによりRNAを合成し、1.0×10
7から1.0×100コピー/μlまで10倍希釈系列を作製し
た。
3 Preparation of Synthetic RNA A plasmid containing the gag region of the HIV gene was prepared, and using this as a template, RNA was synthesized using T7 polymerase, and 1.0 × 10
To prepare a 10-fold dilution series from 7 to 1.0 × 10 0 copies / [mu] l.

【0021】4 反応液の調製 上記プライマー、プローブ及びPerkin Elmer TaqMan EZ
RT-PCR Core Reagentkit(商品名、Perkin Elmer社製)
を用いて、反応チューブ1本あたり、下記表1に示す反応
液を調製した。
4 Preparation of Reaction Solution The above primer, probe and Perkin Elmer TaqMan EZ
RT-PCR Core Reagentkit (trade name, manufactured by Perkin Elmer)
Was used to prepare a reaction solution shown in Table 1 below per one reaction tube.

【0022】[0022]

【表1】 [Table 1]

【0023】5 リアルタイム検出PCR Perkin Elmer Microamp Optical Tube(商品名、Perkin
Elmer社製)1本あたり上記反応液を40μl加え、そこに上
記合成RNA10μlを添加した。キャップ(PerkinElmer Opt
ical Cap)をした後、ABI PRISM 7700 Sequence Detecti
on System(商品名、Perkin Elmer社製)にセットし、以
下の条件で反応を行った。PCRの各サイクル毎に蛍光強
度を測定しデータを収集した。
5 Real-time detection PCR Perkin Elmer Microamp Optical Tube (trade name, Perkin
40 μl of the above reaction solution was added per one (Elmer), and 10 μl of the above synthetic RNA was added thereto. Cap (PerkinElmer Opt
CAP) and then ABI PRISM 7700 Sequence Detecti
The system was set on an On System (trade name, manufactured by Perkin Elmer) and reacted under the following conditions. The fluorescence intensity was measured at each cycle of PCR and data was collected.

【0024】 このPCRサイクルは53回繰り返した。[0024] This PCR cycle was repeated 53 times.

【0025】6 結果 サイクル数を横軸に、蛍光強度の変化を縦軸にとってプ
ロットした結果を図1に示す。図1中、各線の近傍には試
料中のHIV RNAのコピー数を示す。それぞれの被検試料
について、ある一定のサイクル数をすぎるまでは蛍光強
度に変化は見られないが、あるサイクル数を過ぎると蛍
光強度が急に増加することがわかる。そして、この蛍光
強度の急激な増加が始まるサイクル数は被検試料中のHI
V RNAコピー数が大きいほど小さいことがわかる。ま
た、上記リアルタイムPCRにおいて、HIVのRNAを含まな
い試料について行ったネガティブコントロールの3〜15
サイクルにおける蛍光強度の標準偏差の10倍を閾値と
し、この閾値を超えたサイクル数(すなわち、蛍光強度
が急激に増加し始めたときのサイクル数)を求めた。RNA
コピー数の常用対数を横軸に、上記閾値を超えたサイク
ル数を縦軸にとってプロットした図を図2に示す。図2に
示すように、RNAコピー数の常用対数と上記閾値を超え
たサイクル数との間には直線関係があり(相関係数0.9
9)、上記サイクル数を測定することにより被検試料中の
HIV RNAを定量測定できることが明らかになった。
6 Results FIG. 1 shows the results of plotting the number of cycles on the horizontal axis and the change in fluorescence intensity on the vertical axis. In FIG. 1, the copy number of HIV RNA in the sample is shown near each line. For each test sample, no change is observed in the fluorescence intensity until after a certain number of cycles, but it can be seen that the fluorescence intensity sharply increases after a certain number of cycles. The number of cycles at which the rapid increase in the fluorescence intensity starts depends on the HI in the test sample.
It can be seen that the larger the V RNA copy number, the smaller the value. In the real-time PCR, 3 to 15 of the negative control performed on the sample containing no HIV RNA was used.
Using 10 times the standard deviation of the fluorescence intensity in the cycle as a threshold value, the number of cycles exceeding the threshold value (that is, the number of cycles when the fluorescence intensity starts to rapidly increase) was determined. RNA
FIG. 2 shows a plot in which the common logarithm of the copy number is plotted on the horizontal axis and the cycle number exceeding the threshold is plotted on the vertical axis. As shown in FIG. 2, there is a linear relationship between the common logarithm of the RNA copy number and the cycle number exceeding the threshold (correlation coefficient 0.9.
9), by measuring the above cycle number,
It was revealed that HIV RNA can be quantitatively measured.

【0026】実施例2 1 被検HIV RNAの調製 AIDS患者の血清各200μlに、SepaGene RV-R(商品
名、三光純薬社製核酸抽出用試薬)1液(蛋白質変性
液)300μl、2液(緩衝液)300μlを加え撹拌し、3液
(抽出剤)600μlを加え10分間撹拌後-20℃で10分間静
置した。12000×gで15分間遠心し、水相に等量のイソプ
ロパノールを加え4℃で5分間静置後、12000×gで20分間
遠心した。次いで、1mlの75%エタノールで2回洗浄し、
20μlのDTT、Rnase阻害剤加DEPC処理水で溶解し、測定
まで-80℃で保存した。
Example 2 1 Preparation of test HIV RNA To 200 μl of each serum of AIDS patient, 300 μl of 1 solution (Protein denaturing solution) of 1 solution of SepaGene RV-R (trade name, reagent for nucleic acid extraction manufactured by Sanko Junyaku Co.), 2 solutions (Buffer solution) 300 μl was added and stirred, 600 μl of 3 solution (extractant) was added, and the mixture was stirred for 10 minutes and allowed to stand at −20 ° C. for 10 minutes. After centrifugation at 12000 × g for 15 minutes, an equal volume of isopropanol was added to the aqueous phase, the mixture was allowed to stand at 4 ° C. for 5 minutes, and then centrifuged at 12000 × g for 20 minutes. Then, wash twice with 1 ml of 75% ethanol,
The cells were dissolved in 20 µl of DTT-treated water containing RTT inhibitor and DEPC, and stored at -80 ° C until measurement.

【0027】2 リアルタイム検出PCRによる測定 実施例1と同じプローブ、プライマーを用い、実施例1と
同じ組成の反応液を調製した。Perkin Elmer Microamp
Optical Tube1本あたり、この反応液を40μl加え、そこ
に上記被検血清由来RNA溶液10μlを加え、実施例1と同
様に反応を行い、各サイクル毎に蛍光を測定した。一
方、従来のRT-PCR法を利用した市販品(Amplicor HIV Mo
nitor、商品名、Roche社製)により、同じ被検試料につ
いてHIV RNAのコピー数を測定した。両法による測定値
の相関関係を図3に示す。図3に示されるように、本発明
の方法による測定結果は従来法で得られた成績とよく相
関し、より高感度に測定できることが明らかとなった。
本発明により、HIVを高感度で正確に、かつ簡便に測定
することが可能になった。
2 Measurement by real-time detection PCR A reaction solution having the same composition as in Example 1 was prepared using the same probes and primers as in Example 1. Perkin Elmer Microamp
For each Optical Tube, 40 μl of this reaction solution was added, and 10 μl of the above-described RNA solution derived from the test serum was added thereto, and the reaction was carried out in the same manner as in Example 1, and the fluorescence was measured at each cycle. On the other hand, a commercial product utilizing the conventional RT-PCR method (Amplicor HIV Mo
nitor (trade name, manufactured by Roche)), the copy number of HIV RNA was measured for the same test sample. FIG. 3 shows the correlation between the measured values obtained by both methods. As shown in FIG. 3, the measurement results obtained by the method of the present invention correlated well with the results obtained by the conventional method, and it became clear that measurement could be performed with higher sensitivity.
According to the present invention, it has become possible to measure HIV with high sensitivity, accurately and simply.

【0028】実施例3 実施例1で用いたプライマー及びプローブ並びに文献に
記載されているプライマー及びプローブの各種の組合せ
を用いて、実施例1と同様にしてリアルタイムPCRを
行なった。なお、本実施例において、「文献1」とは、蛋
白質 核酸 酵素41:686-695,1996を意味し、「特許1」
とは、上記した特表平6-500021を意味する。
Example 3 Real-time PCR was carried out in the same manner as in Example 1 using the primers and probes used in Example 1 and various combinations of primers and probes described in the literature. In this example, "Literature 1" means protein nucleic acid enzyme 41: 686-695, 1996, and "Patent 1"
Means the above-mentioned Japanese Translation of PCT International Publication No. 6-500021.

【0029】用いたプライマー、プローブの塩基配列を
下記に示す。
The base sequences of the primers and probes used are shown below.

【0030】 フォワード側プライマー1 5' AGTGGGGGGACATCAAGCAGC
CATGCAAAT 3' フォワード側プライマー2 5' AGTTGGAGGACATCAAGCAGC
CATGCAAAT 3'
Forward side primer 1 5 ′ AGTGGGGGGACATCAAGCAGC
CATGCAAAT 3 'forward primer 2 5' AGT T GG A GGACATCAAGCAGC
CATGCAAAT 3 '

【0031】 リバース側プライマー1 5' TGCTATGTCACTTCCCCTTGG
TTCTCT 3' リバース側プライマー2 5' TGCTATGTCAGTTCCCCTTGG
TTCTCT 3'
Reverse side primer 15 ′ TGCTATGTCACTTCCCCTTGG
TTCTCT 3 'reverse primer 2 5' TGCTATGTCA G TTCCCCTTGG
TTCTCT 3 '

【0032】 プローブ1 5' TCAATGAGGAAGCTGCAGAATG
GGATAG 3' プローブ2 5' GAGACCATCAATGAGGAAGCTGCAGAATG
GGAT 3'
Probe 1 5 'TCAATGAGGAAGCTGCAGAATG
GGATAG 3 'probe 2 5' GAGACCA TCAATGAGGAAGCTGCAGAATG
GGAT 3 '

【0033】なお、フォワード側プライマー1(配列番
号6)は、特許1に記載されたプライマーであり、本発
明の方法で用いられるプライマーでもある。フォワード
側プライマー2は、文献1に記載されたプライマーであ
る。リバース側プライマー1は本発明のプライマーであ
り(配列番号2)、リバース側プライマー2は文献1及
び特許1に記載された、本発明外のプライマーである。
プローブ1は、本発明のプローブであり(配列番号4)、
プローブ2は文献1及び特許1に記載された、本発明外
のプローブである。
The forward primer 1 (SEQ ID NO: 6) is a primer described in Patent 1, and is also a primer used in the method of the present invention. The forward-side primer 2 is a primer described in Reference 1. The reverse side primer 1 is a primer of the present invention (SEQ ID NO: 2), and the reverse side primer 2 is a primer other than the present invention described in Reference 1 and Patent 1.
Probe 1 is the probe of the present invention (SEQ ID NO: 4),
The probe 2 is a probe described in Document 1 and Patent 1 and not included in the present invention.

【0034】各プライマー、プローブによる検出系の感
度比較のため、各々の組み合わせでのリアルタイムPCR
による測定を実施例1と同様にして行った。
To compare the sensitivity of the detection system with each primer and probe, real-time PCR was performed for each combination.
Was measured in the same manner as in Example 1.

【0035】セット1 フォワード側プライマー1、リバース側プライマー1、プ
ローブ1(本発明の組み合わせ) セット2 フォワード側プライマー1、リバース側プライマー2、プ
ローブ1 セット3 フォワード側プライマー1、リバース側プライマー1、プ
ローブ2 セット4 フォワード側プライマー2、リバース側プライマー2、プ
ローブ2(文献1の組み合わせ) セット5 フォワード側プライマー1、リバース側プライマー2、プ
ローブ2(特許1の組み合わせ)
Set 1 forward primer 1, reverse primer 1, probe 1 (combination of the present invention) set 2 forward primer 1, reverse primer 2, probe 1 set 3 forward primer 1, reverse primer 1, probe 2 Set 4 Forward primer 2, reverse primer 2, probe 2 (combination of literature 1) Set 5 Forward primer 1, reverse primer 2, probe 2 (combination of patent 1)

【0036】合成RNA 1×108〜1×101コピーを用い測定
した結果を下記表2に示す。セット2、3、4、5の値はセ
ット1による値を定量標準値として用いたときの定量値
である。
The results of measurement using 1 × 10 8 to 1 × 10 1 copy of synthetic RNA are shown in Table 2 below. The values of sets 2, 3, 4, and 5 are quantitative values when the values according to set 1 are used as quantitative standard values.

【0037】[0037]

【表2】 (例えば「E+08」は「×108」を意味する)[Table 2] (For example, “E + 08” means “× 10 8 ”)

【0038】この結果、セット2、3、4、5共1×101コピ
ーのHIV RNAを検出できず、また1×102コピー以上にお
いては、全てのセットがセット1よりも低感度であっ
た。したがってセット1が最もHIV RNAを高感度に検出可
能である。セット1とセット2の比較から、本発明のリ
バース側プライマーの効果がわかる。セット1とセット
3の比較から、本発明のプローブの効果がわかる。ま
た、セット1とセット4又はセット5との比較から、本
発明の方法が、文献及び特許公表公報記載の方法よりも
感度が優れていることがわかる。
As a result, 1 × 10 1 copies of HIV RNA could not be detected in all of the sets 2, 3, 4, and 5, and all the sets had a lower sensitivity than the set 1 in 1 × 10 2 copies or more. Was. Therefore, set 1 can detect HIV RNA with the highest sensitivity. Comparison between Set 1 and Set 2 shows the effect of the reverse primer of the present invention. Comparison between Set 1 and Set 3 shows the effect of the probe of the present invention. Also, a comparison between Set 1 and Set 4 or Set 5 reveals that the method of the present invention is more sensitive than the methods described in the literature and the patent publication.

【0039】[0039]

【発明の効果】本発明により、リアルタイムPCRによ
り高感度にHIVを測定するために用いられるリバース
側プライマー及びプローブ並びにリアルタイムPCRに
より高感度にHIV遺伝子を測定する方法が提供され
た。本発明によれば、従来よりも高感度に正確にHIV
遺伝子を測定することができるので、AIDSの診断等に多
いに貢献するものと期待される。
According to the present invention, there are provided reverse primers and probes used for measuring HIV with high sensitivity by real-time PCR, and a method for measuring HIV gene with high sensitivity by real-time PCR. According to the present invention, HIV can be detected with higher sensitivity and accuracy than before.
Since the gene can be measured, it is expected to greatly contribute to the diagnosis of AIDS and the like.

【0040】[0040]

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> SRL, INC. <120> Realtime-detecting PCR for measuring HIV gene and primers and pro bes used therefor <130> 98580 <160> 9[Sequence List] SEQUENCE LISTING <110> SRL, INC. <120> Realtime-detecting PCR for measuring HIV gene and primers and probe bes used therefor <130> 98580 <160> 9

【0041】 <210> 1 <211> 47 <212> DNA <213> HIV <400> 1 tagtagttcc tgctatgtca cttccccttg gttctctcat ctggcct 47<210> 1 <211> 47 <212> DNA <213> HIV <400> 1 tagtagttcc tgctatgtca cttccccttg gttctctcat ctggcct 47

【0042】 <210> 2 <211> 27 <212> DNA <213> HIV <400> 2 tgctatgtca cttccccttg gttctct 27<210> 2 <211> 27 <212> DNA <213> HIV <400> 2 tgctatgtca cttccccttg gttctct 27

【0043】 <210> 3 <211> 44 <212> DNA <213> HIV <400> 3 agaccatcaa tgaggaagct gcagaatggg atagattgca tcca 44<210> 3 <211> 44 <212> DNA <213> HIV <400> 3 agaccatcaa tgaggaagct gcagaatggg atagattgca tcca 44

【0044】 <210> 4 <211> 28 <212> DNA <213> HIV <400> 4 tcaatgagga agctgcagaa tgggatag 28<210> 4 <211> 28 <212> DNA <213> HIV <400> 4 tcaatgagga agctgcagaa tgggatag 28

【0045】 <210> 5 <211> 50 <212> DNA <213> HIV <400> 5 tgctaaacac agtgggggga catcaagcag ccatgcaaat gttaaaagag 50<210> 5 <211> 50 <212> DNA <213> HIV <400> 5 tgctaaacac agtgggggga catcaagcag ccatgcaaat gttaaaagag 50

【0046】 <210> 6 <211> 30 <212> DNA <213> HIV <400> 6 agtgggggga catcaagcag ccatgcaaat 30<210> 6 <211> 30 <212> DNA <213> HIV <400> 6 agtgggggga catcaagcag ccatgcaaat 30

【0047】 <210> 7 <211> 30 <212> DNA <213> HIV <400> 7 agttggagga catcaagcag ccatgcaaat 30<210> 7 <211> 30 <212> DNA <213> HIV <400> 7 agttggagga catcaagcag ccatgcaaat 30

【0048】 <210> 8 <211> 27 <212> DNA <213> HIV <400> 8 tgctatgtca gttccccttg gttctct 27<210> 8 <211> 27 <212> DNA <213> HIV <400> 8 tgctatgtca g ttccccttg gttctct 27

【0049】 <210> 9 <211> 33 <212> DNA <213> HIV <400> 9 gagaccatca atgaggaagc tgcagaatgg gat 33<210> 9 <211> 33 <212> DNA <213> HIV <400> 9 gagaccatca atgaggaagc tgcagaatgg gat 33

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】本発明の方法により、各種被検試料中のHIV
のRNAを測定した場合の、PCRのサイクル数と蛍光
強度の変化の関係を示す図である。
FIG. 1. HIV in various test samples by the method of the present invention.
FIG. 4 is a diagram showing the relationship between the number of PCR cycles and the change in fluorescence intensity when RNA was measured.

【図2】各種被検試料についてHIVのRNAのコピー
数の常用対数と、本発明の方法により被検試料中のHI
VのRNAを測定した場合における、蛍光強度の変化が
閾値を超えたサイクル数との関係を示す図である。
FIG. 2: Common logarithm of the copy number of HIV RNA for various test samples and HI in the test samples by the method of the present invention.
FIG. 9 is a diagram showing the relationship between the change in fluorescence intensity and the number of cycles in which the change in fluorescence intensity exceeds a threshold value when RNA of V was measured.

【図3】本発明の方法及び従来のRT−PCR法により
測定したHIVのRNAのコピー数の相関関係を示す図
である。
FIG. 3 is a diagram showing a correlation between HIV RNA copy numbers measured by the method of the present invention and a conventional RT-PCR method.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 川口 竜二 東京都八王子市小宮町51 株式会社エスア ールエル八王子ラボラトリー内 Fターム(参考) 4B024 AA11 AA20 CA01 CA09 CA11 CA20 HA13 HA14 4B063 QA01 QA18 QA19 QQ03 QQ10 QQ52 QR08 QR12 QR42 QR56 QR62 QS25 QS34 QX02  ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing on the front page (72) Inventor Ryuji Kawaguchi 51 Komiyacho, Hachioji-shi, Tokyo F-term in SRL Hachioji Laboratory Co., Ltd. (Reference) 4B024 AA11 AA20 CA01 CA09 CA11 CA20 HA13 HA14 4B063 QA01 QA18 QA19 QQ03 QQ10 QQ52 QR08 QR12 QR42 QR56 QR62 QS25 QS34 QX02

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 配列表の配列番号1に示される塩基配列
のうち連続する15塩基ないし47塩基から成る塩基配
列(ただし、TはUでもよい)であって、配列番号1に示
される塩基配列の第21番目のCを含む塩基配列を有す
るオリゴヌクレオチドである、リアルタイム検出PCR
法によるHIV遺伝子の測定のために用いられるリバー
ス側プライマー。
1. A nucleotide sequence consisting of 15 to 47 consecutive nucleotides (where T may be U) of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 of the sequence listing, wherein the nucleotide sequence is represented by SEQ ID NO: 1. Real-time detection PCR, which is an oligonucleotide having a nucleotide sequence containing the 21st C of
Reverse primer used for measurement of HIV gene by the method.
【請求項2】 配列表の配列番号1に示される塩基配列
の第8番目ないし第40番目の塩基のうち連続する24
塩基ないし30塩基から成る配列を有するオリゴヌクレ
オチドである請求項1記載のプライマー。
2. A continuous 24 of the eighth to forty bases of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
The primer according to claim 1, which is an oligonucleotide having a sequence consisting of bases to 30 bases.
【請求項3】 配列表の配列番号2に示される塩基配列
を有するオリゴヌクレオチドである請求項1記載のプラ
イマー。
3. The primer according to claim 1, which is an oligonucleotide having the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
【請求項4】 配列表の配列番号3で示される塩基配列
のうち連続する15塩基ないし44塩基から成る塩基配
列を有するオリゴヌクレオチドに、レポーター蛍光色素
と、クエンチャー蛍光色素とが結合されており、前記レ
ポーター蛍光色素は、該レポーター蛍光色素が前記クエ
ンチャー蛍光色素と同一のプローブに結合されている場
合には蛍光共鳴エネルギー転移によりその蛍光強度が抑
制され、前記クエンチャー蛍光色素と同一のプローブに
結合されていない状態では蛍光強度が抑制されないもの
である、リアルタイム検出PCR法によるHIV遺伝子
の測定のために用いられるプローブ。
4. A reporter fluorescent dye and a quencher fluorescent dye are bound to an oligonucleotide having a continuous base sequence of 15 to 44 bases in the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing. The reporter fluorescent dye, when the reporter fluorescent dye is bound to the same probe as the quencher fluorescent dye, the fluorescence intensity is suppressed by fluorescence resonance energy transfer, the same probe as the quencher fluorescent dye A probe used for measurement of an HIV gene by a real-time detection PCR method, wherein the fluorescence intensity is not suppressed in a state not bound to the DNA.
【請求項5】 前記オリゴヌクレオチドは、配列表の配
列番号3に示される塩基配列の第4番目ないし第37番
目の塩基のうち連続する25塩基ないし31塩基から成
る配列を有するオリゴヌクレオチドである請求項4記載
のプローブ。
5. The oligonucleotide according to claim 1, wherein the oligonucleotide has a sequence consisting of consecutive 25 to 31 bases from the fourth to 37th bases of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing. Item 7. The probe according to Item 4.
【請求項6】 前記オリゴヌクレオチドは、配列表の配
列番号4に示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチ
ドである請求項5記載のプローブ。
6. The probe according to claim 5, wherein the oligonucleotide is an oligonucleotide having a base sequence shown in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing.
【請求項7】配列表の配列番号5に示される塩基配列の
うち連続する15塩基ないし50塩基から成る塩基配列
(ただし、TはUでもよい)であって、配列番号5に示さ
れる塩基配列の第14番目のG及び第17番目のGのう
ち少なくともいずれか一方を含む塩基配列を有するオリ
ゴヌクレオチドであるフォワード側プライマーと、請求
項1ないし3のいずれか1項に記載のリバース側プライ
マーと、請求項4ないし6のいずれか1項に記載のプロ
ーブとを用い、被検試料中の測定すべきHIV遺伝子を
鋳型として逆転写PCRを行ない、反応液からの蛍光を
リアルタイムに測定することから成る、被検試料中のH
IV遺伝子の測定方法。
7. A base sequence consisting of 15 to 50 consecutive bases of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing.
(Where T may be U), which is an oligonucleotide having a base sequence containing at least one of the 14th G and 17th G of the base sequence shown in SEQ ID NO: 5. An HIV gene to be measured in a test sample, using the side primer, the reverse side primer according to any one of claims 1 to 3, and the probe according to any one of claims 4 to 6. Is used as a template to perform reverse transcription PCR, and the fluorescence from the reaction solution is measured in real time.
Method for measuring IV gene.
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2004520075A (en) * 2001-05-10 2004-07-08 バイロメッド・リミテッド Oligonucleotide specific for retrovirus and method for measuring retrovirus concentration using the same
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