JP2000105232A - PREPARATION OF MEASURING REAGENT FOR MEASURING ANTI-HBs ANTIBODY - Google Patents

PREPARATION OF MEASURING REAGENT FOR MEASURING ANTI-HBs ANTIBODY

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JP2000105232A
JP2000105232A JP10275208A JP27520898A JP2000105232A JP 2000105232 A JP2000105232 A JP 2000105232A JP 10275208 A JP10275208 A JP 10275208A JP 27520898 A JP27520898 A JP 27520898A JP 2000105232 A JP2000105232 A JP 2000105232A
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hbs
antigen
small
surfactant
hbs antigen
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Atsushi Doi
淳 土居
Masahiro Furuya
昌弘 古谷
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Sekisui Chemical Co Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To prepare a highy sensitive anti-HBs antibody measuring reagent, in particular an anti-HBs antibody measuring latex-flocculated reagent, by using a small-granulated HBs antigen which is prepared by adding an additive selected from the group comprising a surfactant and a protein modifier into an HBs antigen solution to be treated to form particulates. SOLUTION: A particulate HBs antigen prepared by adding an additive selected from the group comprising a surfactant and a protein modifier into an HBs antigen solution and by conducting small-granulating treatment is carried on an insoluble carrier to prepare an anti-HBs antibody measuring reagent. The surfactant is required only to be lipid-removable without being specified, and a variety of anion surfactants, a cationic surfactant, an amphoteric surfactant, a nonionic surfactant and the like are used for the surfactant. The protein modifier is a modifier capable of loosing higher-order stucture of a protein to dissociate a hydrogen bond and a hydrophobic bond between polypeptide side chains, and hydrochloric acid salt of guanidine or the like is used for this purpose. The small-granulated HBs antigen holding an antibody activity is prepared by the small-granulating treatment.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、抗HBs抗体測定
試薬の製造方法に関し、詳しくは、小粒子化HBs抗原
を用いる抗HBs抗体測定試薬の製造方法に関する。
[0001] The present invention relates to a method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent, and more particularly, to a method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent using small-particle HBs antigen.

【0002】[0002]

【従来の技術】B型肝炎ウイルス(HBV)感染時の患
者血清中には、直径42nmのDane粒子と呼ばれる
二本鎖DNAウイルスの他に、直径22nmの小型球状
粒子や同じ外径で長さ50〜700nmの管状粒子が存
在することが知られている。これらHBVには、HBV
の外被(surface)、芯(core)に対応する
表面抗原(HBs抗原)、核抗原(HBc抗原)等が存
在する。
2. Description of the Related Art In addition to a double-stranded DNA virus called Dane particles having a diameter of 42 nm, small spheroid particles having a diameter of 22 nm and lengths having the same outer diameter are included in the serum of a patient at the time of hepatitis B virus (HBV) infection. It is known that 50-700 nm tubular particles are present. These HBVs include HBV
There are a surface antigen (HBs antigen), a nuclear antigen (HBc antigen), and the like corresponding to the surface, the core, and the like.

【0003】このような各抗原に対する抗体の検出は、
臨床診断上重要である。特に、HBs抗体は、HBVに
対する感染防御抗体であるので、過去にHBVの感染が
あり既に排除されている場合やHBVワクチン接種後で
ある場合に血中に検出される。従って、HBs抗体が陽
性であることは、HBVに対して抵抗性があり、再感染
のおそれがないことを示すものである。
[0003] Detection of such antibodies against each antigen is carried out as follows.
Important for clinical diagnosis. In particular, since the HBs antibody is a protective antibody against HBV, it is detected in the blood when HBV infection has been eliminated in the past and has already been eliminated or after HBV vaccination. Thus, a positive HBs antibody indicates that it is resistant to HBV and does not have a risk of re-infection.

【0004】血中のHBs抗体の定量的測定法として
は、通常、抗原抗体反応を利用した免疫測定法が用いら
れ、例えば、HBs抗原を血球やラテックス等の不溶性
担体に担持させた血球凝集法やラテックス凝集法等が挙
げられる。
As a method for quantitatively measuring HBs antibody in blood, an immunoassay utilizing an antigen-antibody reaction is usually used. For example, a hemagglutination method in which the HBs antigen is carried on an insoluble carrier such as blood cells or latex is used. And latex agglutination method.

【0005】血球凝集法やラテックス凝集法は、精製し
たHBs抗原をラテックスや血球等に担持させ、これを
HBs抗体含有検体と混合させる。抗原抗体反応の結
果、ラテックスや血球が抗体により架橋され、凝集が生
じ、この凝集度を測定することにより検体中のHBs抗
体を定量することができる。
In the hemagglutination method or latex agglutination method, a purified HBs antigen is carried on latex, blood cells, or the like, and this is mixed with an HBs antibody-containing specimen. As a result of the antigen-antibody reaction, latex and blood cells are cross-linked by the antibody to cause agglutination. By measuring the degree of agglutination, the amount of HBs antibody in the sample can be quantified.

【0006】ラテックスや血球に担持させる抗原量は、
多ければ多いほど反応性が増加し、試薬の測定感度が向
上する。しかしながら、HBs抗原は分子量300万〜
400万という巨大分子であるために、担体(ラテック
スや血球)の表面積当たりの担持分子数が少なくなり、
充分な試薬感度を得ることが困難であった。そのため、
HBs抗原を小粒子化処理して、これを不溶性担体に担
持させることができれば、従来の試薬に比べて測定感度
の向上が可能となる。
The amount of antigen carried on latex or blood cells is
As the number increases, the reactivity increases, and the measurement sensitivity of the reagent improves. However, HBs antigens have a molecular weight of 3,000,000
Because it is a macromolecule of 4 million, the number of supported molecules per surface area of the carrier (latex or blood cell) decreases,
It was difficult to obtain sufficient reagent sensitivity. for that reason,
If the HBs antigen can be reduced in particle size and supported on an insoluble carrier, measurement sensitivity can be improved as compared with conventional reagents.

【0007】特開平6−138123号公報には、HB
s抗原を還元剤、例えば10%ジチオスレイトールを用
いてHBs抗原のジスルフィド(−SS−)結合を開裂
し、分子量が50万〜100万の小粒子化処理したHB
s抗原を調製し、これを用いて酵素標識体を調製する方
法が開示されている。しかしながら、このような方法で
得られたHBs抗原は、抗原活性に関与するジスルフィ
ド結合まで開裂するため、活性の低下が生じ、目的とす
る試薬感度を向上させることはできなかった。従って、
抗原活性を保持した小粒子化HBs抗原を調製し、これ
を試薬化する方法が望まれていた。
[0007] JP-A-6-138123 discloses HB
HBs obtained by cleaving the disulfide (-SS-) bond of the HBs antigen using a reducing agent, for example, 10% dithiothreitol, to obtain a microparticle having a molecular weight of 500,000 to 1,000,000.
A method for preparing an s-antigen and using the same to prepare an enzyme-labeled product is disclosed. However, since the HBs antigen obtained by such a method cleaves to a disulfide bond involved in antigen activity, the activity of the HBs antigen decreases, and the desired reagent sensitivity cannot be improved. Therefore,
There has been a demand for a method of preparing a small-particle HBs antigen having antigen activity and converting it into a reagent.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記現状に
鑑み、抗原活性を保持した小粒子化HBs抗原を用いる
抗HBs抗体測定試薬の製造方法を提供することを目的
とする。
SUMMARY OF THE INVENTION In view of the above circumstances, an object of the present invention is to provide a method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent using a small-sized HBs antigen that retains antigen activity.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】本発明は、小粒子化HB
s抗原を用いる抗HBs抗体測定試薬の製造方法であっ
て、上記小粒子化HBs抗原は、界面活性剤及びタンパ
ク質変性剤からなる群より選択される少なくとも1種を
HBs抗原溶液に添加することにより小粒子化処理され
たものである抗HBs抗体測定試薬の製造方法である。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is directed to a small particle HB.
A method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent using s antigen, wherein the small-particle HBs antigen is obtained by adding at least one selected from the group consisting of a surfactant and a protein denaturant to an HBs antigen solution. This is a method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent which has been subjected to a small particle treatment.

【0010】本発明の抗HBs抗体測定試薬の製造方法
は、小粒子化HBs抗原を用いるものである。上記小粒
子化HBs抗原は、界面活性剤及びタンパク質変性剤か
らなる群より選択される少なくとも1種をHBs抗原溶
液に添加することにより小粒子化処理されたものであ
る。上記小粒子化処理を行うことによって、抗原活性を
保持した小粒子化HBs抗原を得ることができる。本明
細書中において、小粒子化HBs抗原とは、HBs抗原
を界面活性剤及びタンパク質変性剤からなる群より選択
される少なくとも1種で処理することによって得られ
る、低分子量化したHBs抗原を意味する。
[0010] The method for producing an anti-HBs antibody assay reagent of the present invention uses a small-particle HBs antigen. The above-mentioned HBs antigen having a small particle size is obtained by adding at least one selected from the group consisting of a surfactant and a protein denaturant to an HBs antigen solution, and then performing a particle-izing treatment. By performing the above-mentioned small particle size treatment, a small particle size HBs antigen retaining the antigen activity can be obtained. As used herein, the term “microparticled HBs antigen” refers to a HBs antigen having a reduced molecular weight obtained by treating the HBs antigen with at least one selected from the group consisting of a surfactant and a protein denaturant. I do.

【0011】上記界面活性剤としては、脂質を除去可能
なものであれば特に限定されず、例えば、ドデシル硫酸
ナトリウム(SDS、cmc=8.2mM)、ドデシル
スルホン硫酸ナトリウム(cmc=9.8mM)、コー
ル酸ナトリウム(cmc=14mM)、デオキシコール
酸ナトリウム(cmc=5mM)、タウロデオキシコー
ル酸ナトリウム(cmc=4mM)等の陰イオン性界面
活性剤;セチルトリメチルアンモニウムブロマイド(C
16TAB、cmc=0.92mM)、ドデシルピリジ
ニウムクロライド(cmc=16mM)等の陽イオン性
界面活性剤;3−[(コールアミドプロピル)ジメチル
アンモニオ]−1−プロパンスルホン酸(CHAPS、
cmc=8mM)、3−[(コールアミドプロピル)ジ
メチルアンモニオ]−2−ヒドロキシ−1−プロパンス
ルホン酸(CHAPSO、cmc=8mM)等の両性界
面活性剤;オクチルグルコシド(OG、cmc=25m
M)、オクチルチオグルコシド(cmc=9mM)、ノ
ナノイル−N−メチルグルカミド(MEGA−9、cm
c=25mM)、デカノイル−N−メチルグルカミド
(MEGA−10、cmc=7mM)、ポリオキシエチ
レン ドデシルエーテル(Briji、cmc=0.0
02〜0.3mM)、ポリオキシエチレンi−オクチル
フェニルエーテル(TritonX−100、cmc=
0.24mM:TritonX−114、cmc=0.
20mM:TritonX−165、cmc=0.43
mM)、ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル
(Nonidet P−40、cmc=0.29m
M)、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル(Spa
n)、ポリオキシエチレンソルビトールエステル(Tw
een、cmc=0.012〜0.059mM)等の非
イオン性界面活性剤が挙げられる。
The surfactant is not particularly limited as long as it can remove lipids. For example, sodium dodecyl sulfate (SDS, cmc = 8.2 mM) and sodium dodecyl sulfone sulfate (cmc = 9.8 mM) , Sodium cholate (cmc = 14 mM), sodium deoxycholate (cmc = 5 mM), sodium taurodeoxycholate (cmc = 4 mM), and other anionic surfactants; cetyltrimethylammonium bromide (C
Cationic surfactants such as 16TAB, cmc = 0.92 mM) and dodecylpyridinium chloride (cmc = 16 mM); 3-[(cholamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfonic acid (CHAPS,
amphoteric surfactants such as cmc = 8 mM) and 3-[(cholamidopropyl) dimethylammonio] -2-hydroxy-1-propanesulfonic acid (CHAPSO, cmc = 8 mM); octylglucoside (OG, cmc = 25 m)
M), octylthioglucoside (cmc = 9 mM), nonanoyl-N-methylglucamide (MEGA-9, cm
c = 25 mM), decanoyl-N-methylglucamide (MEGA-10, cmc = 7 mM), polyoxyethylene dodecyl ether (Briji, cmc = 0.0)
02-0.3 mM), polyoxyethylene i-octylphenyl ether (Triton X-100, cmc =
0.24 mM: Triton X-114, cmc = 0.
20 mM: Triton X-165, cmc = 0.43
mM), polyoxyethylene nonyl phenyl ether (Nonidet P-40, cmc = 0.29 m)
M), polyoxyethylene fatty acid ester (Spa
n), polyoxyethylene sorbitol ester (Tw
een, cmc = 0.012 to 0.059 mM).

【0012】上記界面活性剤は、溶液中の濃度により、
その存在形態が異なり、薄い濃度ではモノマーとして存
在するが、ある濃度以上ではミセルを形成するようにな
る。上記ミセルは、複数のモノマーがコンパクトに集合
した会合体であり、親水性(極性)部分が外側を向いて
水と接し、疎水性(非極性)部分が内側に隠されたよう
な構造をとっている。このミセルの状態でタンパク質の
疎水部分との相互作用が大きくなるため、HBs抗原を
小粒子化処理する場合には、ミセルが形成される濃度
(臨界ミセル濃度:critical micelle
concentration、以下cmcともい
う。)以上の濃度を存在させることが好ましい。
[0012] The above-mentioned surfactants are selected depending on the concentration in the solution.
Its existence form is different, and exists as a monomer at a low concentration, but forms a micelle at a certain concentration or more. The micelle is an aggregate in which a plurality of monomers are compactly assembled, and has a structure in which a hydrophilic (polar) portion faces outward and comes into contact with water, and a hydrophobic (non-polar) portion is hidden inside. ing. In the micelle state, the interaction with the hydrophobic part of the protein becomes large. Therefore, when the HBs antigen is subjected to the particle reduction treatment, the concentration at which micelles are formed (critical micelle concentration: critical micelle concentration)
concentration, hereinafter also referred to as cmc. It is preferred that the above concentrations be present.

【0013】上記タンパク質変性剤としては、タンパク
質の高次構造をほぐしポリペプチド側鎖間の水素結合、
疎水性相互作用を解離するものであれば特に限定され
ず、例えば、グアニジン塩酸塩、尿素等が挙げられる。
上記タンパク質変成剤の使用濃度は、処理するHBs抗
原濃度によって異なるが、0.1〜8Mの範囲が好まし
い。上記界面活性剤及びタンパク質変性剤は、それぞれ
単独で用いても、混合して用いてもよい。
The above-mentioned protein denaturing agents include unfolding of higher-order structure of protein, hydrogen bonding between polypeptide side chains,
There is no particular limitation as long as it can dissociate the hydrophobic interaction, and examples thereof include guanidine hydrochloride and urea.
The concentration of the protein denaturant varies depending on the concentration of HBs antigen to be treated, but is preferably in the range of 0.1 to 8M. The surfactant and the protein denaturant may be used alone or as a mixture.

【0014】上記界面活性剤及び/又はタンパク質変性
剤に加えて、更に、少量であるならば、還元剤を添加し
てもよい。上記還元剤は、タンパク質のジスルフィド結
合を解離させるものであれば特に限定されず、例えば、
β−メルカプトエタノール、2−メルカプトエチルアミ
ン、ジチオスレイトール、ジチオエリスルトール、水素
化ホウ素ナトリウム、モノチオリン酸等が挙げられる。
In addition to the above-mentioned surfactant and / or protein denaturant, a small amount of a reducing agent may be further added. The reducing agent is not particularly limited as long as it can dissociate the disulfide bond of the protein, for example,
β-mercaptoethanol, 2-mercaptoethylamine, dithiothreitol, dithioerythritol, sodium borohydride, monothiophosphoric acid, and the like.

【0015】上記還元剤の使用濃度としては、処理する
HBs抗原の濃度によって異なるが、通常は溶液中の濃
度が0.001〜10mMの範囲で用いることができ
る。0.001mM未満であると、その効果が発揮でき
ない場合があり、10mMを超えると、抗原活性に必要
な分子内ジスルフィド結合まで解離する。
The concentration of the reducing agent depends on the concentration of the HBs antigen to be treated, but it can usually be used in a concentration of 0.001 to 10 mM in the solution. If the amount is less than 0.001 mM, the effect may not be exhibited. If the amount exceeds 10 mM, dissociation up to an intramolecular disulfide bond required for antigen activity is achieved.

【0016】本発明の小粒子化HBs抗原は、上記界面
活性剤及びタンパク質変性剤からなる群より選択される
少なくとも1種を溶解させた溶液と、HBs抗原溶液と
を混合し、反応させることにより得ることができる。
[0016] The HBs antigen of the present invention can be prepared by mixing a solution in which at least one selected from the group consisting of the above-mentioned surfactants and protein denaturants is dissolved, with an HBs antigen solution, and reacting. Obtainable.

【0017】上記HBs抗原溶液の希釈液としては特に
限定されず、例えば、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グ
ッド緩衝液、グリシン緩衝液、トリス塩酸緩衝液等が挙
げられる。上記希釈液のイオン強度としては、HBs抗
原を希釈するのに好適なものであれば特に限定されない
が、NaClを0.05〜1Mとなるようにしたものが
好ましい。上記希釈液のpHは特に限定されないが、
4.5〜9.0の範囲が好ましい。
The diluting solution of the HBs antigen solution is not particularly limited, and examples thereof include a phosphate buffer, a Tris buffer, a Good buffer, a glycine buffer, and a Tris-HCl buffer. The ionic strength of the diluent is not particularly limited as long as it is suitable for diluting the HBs antigen, but is preferably one in which NaCl is adjusted to 0.05 to 1M. The pH of the diluent is not particularly limited,
The range of 4.5 to 9.0 is preferred.

【0018】上記界面活性剤及びタンパク質変性剤から
なる群より選択される少なくとも1種、又は、それに還
元剤を添加したものを溶解させておく緩衝液としては特
に限定されず、上記HBs抗原の希釈液で例示したもの
等が挙げられる。上記HBs抗原の処理濃度としては特
に限定されず、0.001〜10mg/mLが通常用い
られる。
The buffer for dissolving at least one selected from the group consisting of the above-mentioned surfactants and protein denaturants, or a buffer to which a reducing agent is added, is not particularly limited. Examples thereof include those exemplified for the liquid. The treatment concentration of the HBs antigen is not particularly limited, and 0.001 to 10 mg / mL is usually used.

【0019】上記小粒子化処理反応は、例えば10〜6
0℃等の一定温度条件下で1〜10時間インキュベーシ
ョンするだけでも小粒子化HBs抗原を調製することが
できるが、更に、攪拌操作、超音波処理又は加熱処理等
を行うことによって、小粒子化反応を促進することもで
きる。
The above-mentioned particle-reducing treatment reaction is, for example, 10 to 6
Although the HBs antigen can be prepared as a small particle by simply incubating for 1 to 10 hours under a constant temperature condition such as 0 ° C., the particle size can be reduced by further performing a stirring operation, an ultrasonic treatment or a heat treatment. It can also accelerate the reaction.

【0020】本発明においては、上記小粒子化HBs抗
原を用いて、抗HBs抗体測定試薬の製造を行う。上記
小粒子化HBs抗原は、不溶性担体に担持されたもので
あることが好ましい。
In the present invention, an anti-HBs antibody measurement reagent is produced using the above-mentioned small-particle HBs antigen. It is preferable that the small-particle HBs antigen is carried on an insoluble carrier.

【0021】上記不溶性担体としては、疎水性の表面を
有する不活性担体、及び、部分的に疎水性表面を有する
不活性担体が挙げられ、例えば、ラテックス、プラスチ
ックビーズ、プラスチックプレート等の合成高分子化合
物からなるもの;シリカ等の無機材料からなるもの;タ
ンニン酸処理した赤血球;ニトロセルロース等の高分子
膜等が挙げられる。なかでも、工業的に安定した品質で
大量生産しうるラテックス;プラスチックビーズ、プラ
スチックプレート等のプラスチック成型品が好ましい。
Examples of the insoluble carrier include an inert carrier having a hydrophobic surface and an inert carrier having a partially hydrophobic surface. Examples thereof include synthetic polymers such as latex, plastic beads, and plastic plates. Compounds; inorganic materials such as silica; erythrocytes treated with tannic acid; and polymer membranes such as nitrocellulose. Among them, latexes that can be mass-produced with industrially stable quality; plastic molded products such as plastic beads and plastic plates are preferable.

【0022】上記不溶性担体の表面には、化学結合を目
的とする種々の官能基が存在してもよく、また、アビジ
ン−ビオチン等の親和性を利用して物質を固定化するた
めのスペーサー等を有していてもよい。
Various functional groups for the purpose of chemical bonding may be present on the surface of the insoluble carrier, and a spacer or the like for immobilizing a substance by utilizing affinity such as avidin-biotin. May be provided.

【0023】特に、検査の全自動化処理による検査時間
の短縮及び省力化が可能なこと等から、ラテックスがよ
り好ましい。上記ラテックスとしては、ポリスチレン
系、合成ゴム系等特に限定されないが、好ましくはポリ
スチレン系のものである。上記ラテックスの平均粒径は
0.05μm〜2.0μmのものが好ましく、より好ま
しくは、0.1μm〜0.5μmのものである。
In particular, latex is more preferable because the inspection time can be shortened and labor can be saved by fully automatic inspection processing. The latex is not particularly limited, such as a polystyrene type or a synthetic rubber type, but is preferably a polystyrene type. The average particle diameter of the latex is preferably from 0.05 μm to 2.0 μm, more preferably from 0.1 μm to 0.5 μm.

【0024】上記不溶性担体への担持方法としては、例
えば、本発明によって得られた小粒子化HBs抗原をそ
のまま、又は、好適な緩衝液で希釈し、若しくは、透析
処理を行って界面活性剤等を除去して、これをHBs抗
原液とする。上記HBs抗原液と上記不溶性担体とを、
pH4.5〜9.0の水性媒体中で接触させ、所定時間
インキュベートすることによりHBs抗原を不溶性担体
に固定化することができる。
The above-mentioned method of loading on an insoluble carrier includes, for example, a method in which the small-particle HBs antigen obtained by the present invention is used as it is, or diluted with a suitable buffer, or subjected to dialysis treatment to obtain a surfactant or the like. Is removed to obtain an HBs antigen solution. The HBs antigen solution and the insoluble carrier,
The HBs antigen can be immobilized on an insoluble carrier by contacting with an aqueous medium having a pH of 4.5 to 9.0 and incubating for a predetermined time.

【0025】上記不溶性担体への担持においては、界面
活性剤の濃度はcmc濃度以下にして行うことが好まし
い。即ち、不溶性担体への小粒子化HBs抗原の担持と
は、両者の疎水性相互作用に基づく物理吸着であるた
め、界面活性剤がミセル状態で存在している場合、疎水
性相互作用が妨害されるためである。上記界面活性剤の
濃度がcmc濃度以下になるとモノマーとして存在する
ため、透析等の処理によって界面活性剤の濃度を低下さ
せることができる。
In carrying on the above-mentioned insoluble carrier, it is preferable that the concentration of the surfactant is not more than the cmc concentration. That is, the loading of the HBs antigen in the form of small particles on the insoluble carrier is physical adsorption based on the hydrophobic interaction between the two, so that when the surfactant is present in a micelle state, the hydrophobic interaction is hindered. That's because. When the concentration of the surfactant is less than the cmc concentration, the surfactant is present as a monomer. Therefore, the concentration of the surfactant can be reduced by a treatment such as dialysis.

【0026】上記不溶性担体とのインキュベーション終
了後、試薬の非特異的反応を抑制することを目的とし
て、ウシ血清アルブミン溶液等でブロッキング操作等を
行い、その後、遠心分離操作等により抗原担持不溶性担
体を回収することができる。洗浄操作を数回行った後、
適当な緩衝液を用いて、希釈、保存する。
After the completion of the incubation with the insoluble carrier, a blocking operation or the like is performed with a bovine serum albumin solution or the like for the purpose of suppressing nonspecific reaction of the reagent, and then the antigen-carrying insoluble carrier is centrifuged or the like. Can be recovered. After performing the washing operation several times,
Dilute and store using an appropriate buffer.

【0027】上記小粒子化HBs抗原を担持させた不溶
性担体を保存する液、及び、抗原抗体反応の反応液とし
て使用する水性媒体としては特に限定されず、例えば、
上記HBs抗原の希釈緩衝液として例示したもの等の一
般に用いられている緩衝液が好ましい。
The solution for preserving the insoluble carrier carrying the above-mentioned small-particle HBs antigen and the aqueous medium used as the reaction solution for the antigen-antibody reaction are not particularly limited.
Commonly used buffers such as those exemplified as the dilution buffer for the HBs antigen are preferred.

【0028】上記酵素標識した小粒子化HBs抗原、及
び、上記不溶性担体に担持させた小粒子化HBs抗原
は、免疫測定試薬として使用した場合、高感度な免疫測
定法を行うことができる。例えば、上記不溶性担体に担
持させた小粒子化HBs抗原と検体とを混合して、免疫
凝集反応後、この凝集を検出することにより、検体中の
HBs抗体の量を測定することができる。
When the above-mentioned enzyme-labeled small-particle HBs antigen and the small-particle HBs antigen supported on the insoluble carrier are used as immunoassay reagents, a highly sensitive immunoassay can be performed. For example, the amount of the HBs antibody in the sample can be measured by mixing the sample with the small-particle HBs antigen supported on the insoluble carrier and detecting the agglutination after the immunoagglutination reaction.

【0029】上記HBs抗原は、タンパク質、脂質及び
リン脂質から構成されている巨大分子であることが知ら
れている。巨大分子の形成には、主としてリン脂質が関
与しており、タンパク質の疎水部がリン脂質膜の疎水部
に埋没することにより、安定な構造に保たれている考え
られる。更に、タンパク質間のジスルフィド結合や非共
有結合(水素結合、疎水性結合等)等の安定化により、
巨大分子を形成していると推定される。
It is known that the HBs antigen is a macromolecule composed of proteins, lipids and phospholipids. Phospholipids are mainly involved in the formation of macromolecules, and it is thought that a stable structure is maintained by burying the hydrophobic part of the protein in the hydrophobic part of the phospholipid membrane. Furthermore, by stabilizing disulfide bonds and non-covalent bonds (hydrogen bonds, hydrophobic bonds, etc.) between proteins,
It is presumed that they form macromolecules.

【0030】本発明は、界面活性剤やタンパク質変性剤
を用いることによって、巨大分子の形成の要因であると
考えられるリン脂質やタンパク質間の非共有結合を除去
する。上記界面活性剤は、タンパク質の疎水部に相互作
用してタンパク質と脂質を分離することにより、また、
上記タンパク質変性剤は、タンパク質間の水素結合や疎
水相互作用等の非共有結合を解離させることにより、抗
原活性を保持した小粒子化HBs抗原を得ることができ
る。
The present invention removes non-covalent bonds between phospholipids and proteins, which are considered to be factors in the formation of macromolecules, by using a surfactant or a protein denaturant. The surfactant interacts with the hydrophobic part of the protein to separate the protein and lipid,
The protein denaturing agent can obtain a small-sized HBs antigen that retains antigen activity by dissociating non-covalent bonds such as hydrogen bonds and hydrophobic interactions between proteins.

【0031】[0031]

【実施例】以下に本発明の実施例を掲げて更に詳しく説
明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものでは
ない。
The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0032】実施例1 小粒子化HBs抗原の調製
(1) (1)試薬及び材料 HBs抗原:ヒト陽性血漿より精製した。精製方法は、
塩化セシウム溶液及びショ糖溶液による密度勾配法によ
り小型球状粒子抗原を回収し、更にゲル濾過法により精
製した。得られたHBs抗原を、50mMリン酸ナトリ
ウム緩衝液(pH7.5)+0.2M NaClを用い
て4mg/mLとなるように調製し、これをHBs抗原
液とした。 小粒子化用液:50mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.5)+0.2MNaClに、オクチルグルコシド
(同仁化学社製)を60mMとなるように添加して、こ
れを小粒子化用液とした。 HBs抗原量測定用キット:ヘキストジャパン社製のエ
ンザイグノストHBsAg モノクローナルを用いた。
Example 1 Preparation of Small Particle HBs Antigen (1) (1) Reagents and Materials HBs antigen: Purified from human positive plasma. The purification method is
The small spherical particle antigen was recovered by a density gradient method using a cesium chloride solution and a sucrose solution, and further purified by a gel filtration method. The obtained HBs antigen was adjusted to 4 mg / mL using 50 mM sodium phosphate buffer (pH 7.5) +0.2 M NaCl, and this was used as an HBs antigen solution. Liquid for reducing particles: 50 mM sodium phosphate buffer (pH
7.5) Octylglucoside (manufactured by Dojindo Co.) was added to +0.2 M NaCl to a concentration of 60 mM, and this was used as a liquid for reducing particles. HBs antigen amount measurement kit: Enzygnost HBsAg monoclonal manufactured by Hoechst Japan was used.

【0033】(2)小粒子化方法及びジスルフィド反応 HBs抗原溶液2mL及び小粒子化用液2mLを混合
し、25℃にて2時間インキュベーションした。この粒
子化抗原含有液の少量を適当量希釈して、この液の抗原
性をHBs抗原測定キットを用いて測定した結果、小粒
子化操作前の抗原液とほぼ同等の抗原活性を保持してい
ることを確認した。
(2) Particle size reduction method and disulfide reaction 2 mL of the HBs antigen solution and 2 mL of the particle size reduction solution were mixed and incubated at 25 ° C. for 2 hours. After diluting a small amount of the particle-containing antigen-containing solution to an appropriate amount and measuring the antigenicity of the solution using an HBs antigen measurement kit, it was found that the antigen activity was almost the same as that of the antigen solution before the particle size reduction operation. I confirmed that.

【0034】(3)分子量の測定 この操作で得られた小粒子化HBs抗原の分子量分布を
調べるために高速液体クロマトグラフィーによる解析を
行った。高速液体クロマトグラフィーは島津社製HPL
C−10Aシステムを、カラムは東ソー社製のゲル濾過
クロマト用カラムTSKgelG4000SWXLを用
い、溶離液として50mMリン酸ナトリウム緩衝液(p
H7.5)+0.1M NaClにオクチルグルコシド
30mM添加した液を用いた。検出は280nmの吸光
度を測定することにより行い、また分子量標準物質とし
て東ソー社製のTSK標準ポリエチレンオキシドを用い
て較正曲線を作製し、これをもとに分子量分布を求め
た。その結果、分子量分布60〜90万付近にピークが
認められた。
(3) Measurement of Molecular Weight In order to examine the molecular weight distribution of the small-particle HBs antigen obtained by this operation, analysis was performed by high performance liquid chromatography. High performance liquid chromatography is HPL manufactured by Shimadzu
The C-10A system was used, and a column for gel filtration chromatography TSKgelG4000SW XL manufactured by Tosoh Corporation was used as a column, and 50 mM sodium phosphate buffer (p
H7.5) +0.1 M NaCl was used in which 30 mM octylglucoside was added. Detection was performed by measuring the absorbance at 280 nm, and a calibration curve was prepared using TSK standard polyethylene oxide manufactured by Tosoh Corporation as a molecular weight standard substance, and the molecular weight distribution was determined based on this curve. As a result, a peak was observed around 600,000 to 900,000 in the molecular weight distribution.

【0035】実施例2 小粒子化HBs抗原の調製
(2) (1)試薬及び材料 小粒子化用液として下記のものを使用したこと以外は、
実施例1と同様のものを使用した。 小粒子化用液:50mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.5)+0.2MNaClに、オクチルグルコシド
(同仁化学社製)を70mM、グアニジン塩酸塩(和光
純薬社製)を6Mとなるように、それぞれ添加して、こ
れを小粒子化用液とした。
Example 2 Preparation of HBs Antigen of Small Particles (2) (1) Reagents and Materials Except for using the following as a liquid for small particles,
The same one as in Example 1 was used. Liquid for reducing particles: 50 mM sodium phosphate buffer (pH
7.5) To 70 mM of octylglucoside (manufactured by Dojindo Chemical Co., Ltd.) and 6 M of guanidine hydrochloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries) are added to +0.2 M NaCl so as to be 6 M, respectively. did.

【0036】(2)小粒子化方法 実施例1と同様に行った。この粒子化抗原含有液の少量
を適当量希釈して、この液の抗原性をHBs抗原測定キ
ットを用いて測定した結果、小粒子化操作前の抗原液と
ほぼ同等の抗原活性を保持していることを確認した。
(2) Method for reducing particle size The procedure was the same as in Example 1. After diluting a small amount of the particle-containing antigen-containing solution to an appropriate amount and measuring the antigenicity of the solution using an HBs antigen measurement kit, it was found that the antigen activity was almost the same as that of the antigen solution before the particle size reduction operation. I confirmed that.

【0037】(3)分子量の測定 実施例1と同様にして行った結果、約40〜60万付近
にピークが認められた。
(3) Measurement of molecular weight As a result of carrying out in the same manner as in Example 1, a peak was observed at about 400,000 to 600,000.

【0038】実施例3 小粒子化HBs抗原の調製
(3) (1)試薬及び材料 小粒子化用液として下記のものを使用したこと以外は、
実施例1と同様のものを使用した。 小粒子化用液:50mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.5)+0.2MNaClに、MEGA−9(同仁化
学社製)を50mM、尿素(和光純薬社製)を8Mとな
るように、それぞれ添加して、これを小粒子化用液とし
た。
Example 3 Preparation of HBsAg in the form of small particles (3) (1) Reagents and materials
The same one as in Example 1 was used. Liquid for reducing particles: 50 mM sodium phosphate buffer (pH
7.5) MEGA-9 (manufactured by Dojin Chemical Co., Ltd.) was added to +0.2 M NaCl to 50 mM, and urea (manufactured by Wako Pure Chemical Industries) was added to 8 M, respectively, to obtain a liquid for reducing particles. .

【0039】(2)小粒子化方法 実施例1と同様に行った。この粒子化抗原含有液の少量
を適当量希釈して、この液の抗原性をHBs抗原測定キ
ットを用いて測定した結果、小粒子化操作前の抗原液と
ほぼ同等の抗原活性を保持していることを確認した。
(2) Method for Reducing Particle Size The same procedure as in Example 1 was carried out. After diluting a small amount of the particle-containing antigen-containing solution to an appropriate amount and measuring the antigenicity of the solution using an HBs antigen measurement kit, it was found that the antigen activity was almost the same as that of the antigen solution before the particle size reduction operation. I confirmed that.

【0040】(3)分子量の測定 実施例1と同様にして行った結果、約40〜60万付近
にメインピークが出現した。
(3) Measurement of molecular weight As a result of the same procedure as in Example 1, a main peak appeared at about 400,000 to 600,000.

【0041】実施例4 小粒子化HBs抗原の調製
(4) (1)試薬及び材料 小粒子化用液として下記のものを使用したこと以外は、
実施例1と同様のものを使用した。小粒子化用液:50
mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)+0.2M
NaClに、CHAPS(同仁化学社製)を40mM、
グアニジン塩酸塩(和光純薬社製)を8M、ジチオスレ
イトール(和光純薬社製)を1mMとなるように、それ
ぞれ添加して、これを小粒子化用液とした。
Example 4 Preparation of miniaturized HBs antigen (4) (1) Reagents and materials Except that the following was used as the miniaturized liquid,
The same one as in Example 1 was used. Liquid for reducing particles: 50
mM sodium phosphate buffer (pH 7.5) + 0.2 M
40 mM CHAPS (manufactured by Dojindo) in NaCl,
Guanidine hydrochloride (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added to a concentration of 8M, and dithiothreitol (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added to a concentration of 1 mM.

【0042】(2)小粒子化方法 実施例1と同様に行った。 この粒子化抗原含有液の少量を適当量希釈して、この液
の抗原性をHBs抗原測定キットを用いて測定した結
果、小粒子化操作前の抗原液とほぼ同等の抗原活性を保
持していることを確認した。
(2) Method for Reducing Particle Size The procedure was the same as in Example 1. After diluting a small amount of the particle-containing antigen-containing solution to an appropriate amount and measuring the antigenicity of the solution using an HBs antigen measurement kit, it was found that the antigen activity was almost the same as that of the antigen solution before the particle size reduction operation. I confirmed that.

【0043】(3)分子量の測定 実施例1と同様にして行った結果、約20〜40万付近
にメインピークが出現した。
(3) Measurement of Molecular Weight As a result of the same procedure as in Example 1, a main peak appeared at about 200,000 to 400,000.

【0044】実施例5 HBs抗体試薬用ラテックス試
薬の調製(1) (1)HBs抗原感作ラテックス試薬の調製 実施例1で得られた小粒子化HBs抗原を50mMリン
酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)を用いて1.0mg
/mLに希釈し、この液7.5mLに、平均粒径0.3
μmのポリスチレンラテックス(固形分10%(W/
V)、積水化学工業社製)0.5mLと0.1MNaC
lを添加した36mMリン酸ナトリウム緩衝液2mLと
を添加し、30℃にて60分間攪拌した。次いで、この
液にウシ血清アルブミン(BSA)を1重量%含有する
リン酸−食塩緩衝液(0.05Mリン酸緩衝液(pH
7.0)、0.1MNaCl、以下PBSともいう)を
添加し、30℃にて60分間攪拌した後、4℃にて20
分間、18000rpmで遠心分離することにより洗浄
した。洗浄操作は3回行った。得られた沈殿物にBSA
を1重量%含有するPBSを10mL添加し、ラテック
スを懸濁した後、超音波破砕機にて分散処理を行い、固
形分0.1%(W/V)のHBs抗原感作ラテックス液
を調製した。
Example 5 Preparation of Latex Reagent for HBs Antibody Reagent (1) (1) Preparation of HBs Antigen-Sensitized Latex Reagent The small-sized HBs antigen obtained in Example 1 was treated with a 50 mM sodium phosphate buffer (pH 7.0). 1.0 mg using 5)
/ ML, and 7.5 mL of this solution was added to an average particle size of 0.3.
μm polystyrene latex (solid content 10% (W /
V), Sekisui Chemical Co., Ltd.) 0.5 mL and 0.1 M NaC
The mixture was added with 2 mL of 36 mM sodium phosphate buffer to which 1 l was added, and stirred at 30 ° C. for 60 minutes. Next, a phosphate-salt buffer (0.05 M phosphate buffer (pH: 1) containing 1% by weight of bovine serum albumin (BSA) in this solution was used.
7.0), 0.1 M NaCl, hereinafter also referred to as PBS), and stirred at 30 ° C for 60 minutes.
Washed by centrifugation for 1 minute at 18000 rpm. The washing operation was performed three times. BSA is added to the resulting precipitate.
Was added and 10% of PBS containing 1% by weight was added. After suspending the latex, dispersion treatment was performed with an ultrasonic crusher to prepare an HBs antigen-sensitized latex solution having a solid content of 0.1% (W / V). did.

【0045】(2)検体希釈液の調製 平均分子量500,000のポリエチレングリコール
(以下、PEGともいう:和光純薬社製)を、BSAを
1重量%含有するPBSに、0.9重量%の濃度となる
ように溶解した。
(2) Preparation of Sample Diluent 0.9% by weight of polyethylene glycol having an average molecular weight of 500,000 (hereinafter also referred to as PEG: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added to PBS containing 1% by weight of BSA. It dissolved so that it might become a density | concentration.

【0046】(3)HBs抗体測定試薬 本実施例のHBs抗体測定試薬は、上記(1)項のHB
s抗原感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2)
項のPEG溶液からなる第2試薬とから構成される2液
系の試薬である。
(3) HBs Antibody Measurement Reagent The HBs antibody measurement reagent of this example is the HBs antibody measurement reagent of the above item (1).
a first reagent comprising a s antigen-sensitized latex, (2)
And a second reagent composed of the PEG solution described in the above section.

【0047】(4)標準HBs抗体液 HBs抗体を0、300、600、1200、1800
mIU/mL濃度で含むヒト血清を標準品として使用し
た。
(4) Standard HBs Antibody Solution 0, 300, 600, 1200, and 1800 HBs antibodies
Human serum at a concentration of mIU / mL was used as a standard.

【0048】(5)測定方法 検体20μLと上記(2)項の検体希釈液120μLを
混合し、37℃で適時保持した後、上記(1)項のHB
s抗原感作ラテックス液120μLを添加攪拌した。こ
の後、1分後及び5分後の波長750nmでの吸光度を
測定し、この差を吸光度変化量(△Abs)とした。測
定は日立自動分析7150形を使用した。標準HBs抗
体液を測定して、検量線を作成した。得られた結果を表
1及び図1に示す。
(5) Measuring method 20 μL of the sample and 120 μL of the sample diluent described in the above item (2) are mixed and kept at 37 ° C. for an appropriate time.
120 μL of s antigen-sensitized latex solution was added and stirred. Thereafter, the absorbance at a wavelength of 750 nm after 1 minute and 5 minutes was measured, and this difference was defined as the change in absorbance (△ Abs). The measurement was performed using Hitachi Automatic Analysis Model 7150. A standard HBs antibody solution was measured to prepare a calibration curve. The obtained results are shown in Table 1 and FIG.

【0049】実施例6 HBs抗体測定用ラテックス試
薬の調製(2) 実施例3で得られた小粒子化HBs抗原を用いた以外
は、実施例5と同様にしてHBs抗体測定用のラテック
ス試薬を調製し、検量線を作成した。得られた結果を表
1及び図1に示す。
Example 6 Preparation of Latex Reagent for Measurement of HBs Antibody (2) A latex reagent for measurement of HBs antibody was prepared in the same manner as in Example 5, except that the small-sized HBs antigen obtained in Example 3 was used. It was prepared and a calibration curve was created. The obtained results are shown in Table 1 and FIG.

【0050】比較例1 ラテックスに感作する抗原を、実施例1で調製した小粒
子化HBs抗原の代わりに小粒子化処理していない精製
HBs抗原を用いた以外は実施例5と同様に行った。得
られた結果を表1及び図1に示す。
Comparative Example 1 The same procedure as in Example 5 was carried out except that the antigen sensitizing the latex was replaced with a purified HBs antigen that had not been subjected to particle reduction treatment in place of the particle-sized HBs antigen prepared in Example 1. Was. The obtained results are shown in Table 1 and FIG.

【0051】比較例2 ラテックスに感作する抗原を、実施例1において、小粒
子化用液の70mMオクチルグルコシド、8M尿素の代
わりに、100mMジチオスレイトールを用いて調製し
た小粒子化HBs抗原を用いたこと以外は実施例5と同
様に行った。得られた結果を表1及び図1に示す。
Comparative Example 2 The antigen sensitizing the latex was obtained by using the HBs antigen prepared in Example 1 by using 100 mM dithiothreitol instead of 70 mM octylglucoside and 8 M urea in the liquid for forming particles. Except having used, it carried out similarly to Example 5. The obtained results are shown in Table 1 and FIG.

【0052】[0052]

【表1】 [Table 1]

【0053】[0053]

【発明の効果】本発明の抗HBs抗体測定試薬の製造方
法は、上述の構成よりなるので、活性を保持した小粒子
化HBs抗原を用いることにより、高感度な抗HBs抗
体測定試薬、特に、抗HBs抗体測定用ラテックス凝集
試薬を調製することが可能となった。
The method for producing a reagent for measuring anti-HBs antibody of the present invention has the above-mentioned constitution. Therefore, by using a small HBs antigen which retains its activity, a highly sensitive reagent for measuring anti-HBs antibody, particularly, It has become possible to prepare a latex agglutination reagent for anti-HBs antibody measurement.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】実施例5及び6並びに比較例1及び2における
抗HBs抗体の抗体量と吸光度変化量との関係を示すグ
ラフである。縦軸は吸光度変化量、横軸は抗HBs抗体
の抗体量を示す単位(mIU/mL)である。
FIG. 1 is a graph showing the relationship between the amount of anti-HBs antibody and the change in absorbance in Examples 5 and 6 and Comparative Examples 1 and 2. The vertical axis indicates the amount of change in absorbance, and the horizontal axis indicates the unit (mIU / mL) indicating the amount of the anti-HBs antibody.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 小粒子化HBs抗原を用いる抗HBs抗
体測定試薬の製造方法であって、前記小粒子化HBs抗
原は、界面活性剤及びタンパク質変性剤からなる群より
選択される少なくとも1種をHBs抗原溶液に添加する
ことにより小粒子化処理されたものであることを特徴と
する抗HBs抗体測定試薬の製造方法。
1. A method for producing an anti-HBs antibody measurement reagent using a small HBs antigen, wherein the small HBs antigen comprises at least one selected from the group consisting of a surfactant and a protein denaturant. A method for producing a reagent for measuring an anti-HBs antibody, characterized in that the reagent has been subjected to a small particle treatment by being added to an HBs antigen solution.
【請求項2】 小粒子化HBs抗原は、不溶性担体に担
持させるものである請求項1記載の抗HBs抗体測定試
薬の製造方法。
2. The method for producing a reagent for measuring an anti-HBs antibody according to claim 1, wherein the small-particle HBs antigen is carried on an insoluble carrier.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2018529978A (en) * 2015-07-28 2018-10-11 フォルシュンクツェントラム ボルステル ライプニッツ ランゲンツェントラム Improved bacterial endotoxin test for endotoxin determination
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