HU229967B1 - Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids - Google Patents

Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids Download PDF

Info

Publication number
HU229967B1
HU229967B1 HU1100695A HUP1100695A HU229967B1 HU 229967 B1 HU229967 B1 HU 229967B1 HU 1100695 A HU1100695 A HU 1100695A HU P1100695 A HUP1100695 A HU P1100695A HU 229967 B1 HU229967 B1 HU 229967B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
sequence
pcr
primer
complementary
spacer
Prior art date
Application number
HU1100695A
Other languages
Hungarian (hu)
Inventor
Peták István dr.
Pintér Ferenc dr.
Schwab Richárd dr.
Original Assignee
Kps Diagnosztika Zrt
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kps Diagnosztika Zrt filed Critical Kps Diagnosztika Zrt
Priority to HU1100695A priority Critical patent/HU229967B1/en
Priority to PCT/HU2012/000137 priority patent/WO2013093530A1/en
Publication of HUP1100695A2 publication Critical patent/HUP1100695A2/en
Publication of HU229967B1 publication Critical patent/HU229967B1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869Methods for sequencing

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

The invention relates to new sequencing methods for the efficient and reliable identification of the nucleotide sequence of fragmented or degraded nucleic acids, primarily in biological samples. Furthermore, the present invention relates to the spacer molecules used in such methods and to the kits required for carrying out such methods.

Description

Eljárás töredezett nukleinsswk szekvenciájának meghatározásáraProcedure for determining the sequence of a fragmented nucleinsswk

A találmány területeFIELD OF THE INVENTION

A jelen találmány a molekuláris diagnosztikai területére tartók találmány szekvenáló eljárásokra vonatkozik, amely károsodott degradált) nukieinsavák nukteofíd-sorrendjének hatékony és sát teszik tehetővé, elsősorban biológiai mintákban. A találmány fásokban alkalmazott spacer-molekulákra és az eljárások kiviteles reagens-készletekre is vonatkozik.The present invention pertains to the molecular diagnostic domain of the present invention for sequencing methods that provide efficient nucleotide sequences for degraded degraded nucleic acids and make them available, particularly in biological samples. The invention also relates to spacer molecules used in combs and to kits for use in methods.

néniéit vagy ó azonosítási a fenti eljá-aunts or oh identification in the above procedure-

ti információi hordozó nukielnsavak, a DNS- és RNS-molekuták nukleotld-sorrendjének, szekvenciájának meghatározására sok esetben olyan biológiai minták állnak csak rendelkezésre, melyekben ezek a nukleínsavak összetöredeztek, Leggyakoribb példák erre a diagnosztikai célra eltávolítod daganatos szövetminták, melyeket formaiinnal fixáinak és paraffinba ágyazva tárolnak. Köztudott, hogy már a minták rögzítésekor és a tárolás során Is elkerülhetetlen a mintában lévő nukielnsavak fragmentálódása (széttöredezése). Egyre gyakrabban szükség van az ilyen mintákból kinyert nukielnsavak egyes célzott szakaszai szekvenciájának a meghatározására. Azonban, egy későbbi időpontban történő analízis során ezeknek a niíkielnsavaknak a kimutatása kisméretűknél és mennyiségüknél fogva problémát jelent, A nukleinsav-szekvencia meghatározásának legspecifikusabb módszere a oélszekveneia PCR-raf történő amplifikáiását követő, két irányból történő didezoxiszekvenálás (Sanger-féle didezoxi-szekvenálás vagy lánelermmácíós eljárás).In many cases, biological samples in which these nucleic acids are fragmented are only available for determining the nucleotide sequence and sequence of DNA and RNA molecules. The most common examples for this diagnostic purpose are the removal of tumor tissue samples which are fixed with paraffin and . It is well-known that fragmentation (fragmentation) of nucleic acids in a sample is inevitable even when the samples are recorded and stored. There is a growing need to determine the sequence of each of the targeted sections of nucleic acids extracted from such samples. However, at a later point in time, the detection of these nickel acids is problematic due to their small size and amount. ).

A molekuláris diagnosztika területén az utóbbi években bekövetkezett robbanásszerű fejlődés azonban inkább a didezoxl-szekvenálástól elférő nuklemsavszekvencia vizsgáló módszerek, igy például a „high resolutlon melting analízis s; „nexf generálion seguencing” (NGS) technológia, a real-time PCR (RT-PCR) alapú módszerek fejlesztésére fókuszál (lásd pl, Borras E. ef al/, BMC Cancer, 2011 Sep 24, 11:406: Solassol d. etal: int. J. Mot, Sót '2011,12(5):3191-3204: Knapp lüt et al.: Genes, 2010. 1(2):227-243).However, explosive developments in molecular diagnostics in recent years have tended to be more nucleic acid sequencing assays than dideoxl sequencing, such as high resolution melting analysis ; Nexf general ion mixing (NGS) technology, focuses on the development of real-time PCR (RT-PCR) based methods (see, e.g., Borras, E. ef al., BMC Cancer, 2011 Sep 24, 11: 406: Solassol d. Etal) : Int. J. Mot, Salt '2011.12 (5): 3191-3204: Knapp Lüt et al .: Genes 2010. 1 (2): 227-243).

...... 'ésl ifejtík a regi a Cikket ságának és érzékenységének a problémáját, de nem ajánlanak megoldást ezeknek a klküszöbőléséFe. Az egyetlen széles körben használt fejlesztés az Ml3 szekvenáló primer kötőhely beépítése a céiszekvenciába egy olyan ampliflkáló primerrel, amelyen túlnyúló („overhang”) szekvencia formájában rajta van az Ml3 primer is (Querings S. ef ah: PLoS One. 2011 May 5; 6(5):el 9601 s. Ez a fejlesztés azonban nern javítja a hatékonyságot és az érzékenységet, csak gazdaságosabbá teszi a szekvenálást. mert nem szükséges minden egyes célszekvenciáboz külön-kölőn szekvenáló púmért beszerezni és a szekvenálásl reakciót külőn-külőn optimalizálni. A másik problémája ennek a széles körben elterjedt módszernek abban all hogy a túlnyúló Mi 3 kötőhellyel meghosszabbított PCR primer hajlamosabb a óiméiképződésre és ez rontja a POR: hatásfokát, ráadásul a hosszú primerek szintézisekor gyakoribbak a primer szintézishibák, pl, delécíok és leszerelek, amelyek zajossá teszik a szekvenciaképet és ezáltal csökkentik a vizsgálat érzékenységét....... 'jal young people look at the problem of Article and Sensitivity, but do not suggest a solution to these problems. The only widely used development is the insertion of the M13 sequencing primer binding site into the target sequence with an amplifying primer that also contains the M13 primer in the form of an overhang (Querings S. ef ah: PLoS One. 2011 May 5; 6 ( 5): el 9601 s However, this enhancement does not improve efficiency and sensitivity, but only makes sequencing more economical because it is not necessary to obtain a separate sequencer for each target sequence and to optimize the sequencing reaction. the widespread method is that the PCR primer extended by the protruding Mi 3 binding site is more prone to oligonucleotide formation and that this degrades the efficiency of POR: reduce the exam animal sensitivity.

A WO 9743449 számú (Hagiwara Kolehi el al.) illetve a WO 9908904 számó (Lto Qiang et at) es a WO 99/84624 számú ÍWailace Andrew el al) közzétételi iratokban Ismertetett technológiáknak az a célja, begy egyetlen szekvenálásl reakció során több célszekvenciát összekapcsolva egyszerre lehessen szekvenálni. Ettől azt az előnyt várták, hoqv a didezoxhszekvenálás költsége csökken, hatékonysága pedig nő. Azonban ezek a technológiák nem terjedtek el a gyakorlatban az alább vázolt problémák miatt, Ezekben a módszerekben az overlap fúziót a célszekvenclák között két külön PCR-reakcíóvai oldották meg. Az elsőben az egyes célszekvenciákat külön-kűlön olyan primerekkel ampliíikáiták, amelyeknek túlnyúló végei a másik célszekvenciával, illetve az ampliflkáló primer szekvenciákkal fednek át, majd a második PCR-reakció során keverték össze egy reakcióba az első PCR-reakció termékeit és fözlonáltatták. Bár a fúziós termék létrejön, a következő problémák lépnek fel; a) az elegyben lévő célszekvenoiák POR amplifikácíója külön-külön is tovább zajlik kompetioiöban a fúziós termékkel, b) hosszú primerekkel a PCR hatékonysága csökken, c) az átfedő primerek dimereket képeznek a fúziós PCR során, ami szekvencia zajt okoz, d) a primerekben lévő szintetikus hibák szintén zajként jelentkeznek a szekvencia kiértékelésekor, e) két külön PCR-reakció miatt az összköltségek sem csökkennek.The techniques disclosed in WO 9743449 (Hagiwara Kolehi et al.) And WO 9908904 (Lto Qiang et al.) And in WO 99/84624 by Wailace Andrew et al. Aim to combine multiple target sequences in a single sequencing reaction. can be sequenced simultaneously. This was expected to give Hoqv the cost and efficiency of dideoxy sequencing. However, these technologies were not widespread in practice due to the problems outlined below. In these methods, overlap fusion between target sequences was solved by two separate PCR reactions. In the first, each target sequence was amplified separately with primers having overlapping ends with the other target and amplifying primer sequences, and in the second PCR reaction, the products of the first PCR reaction were mixed and fused together. Although the fusion product is created, the following problems occur; a) POR amplification of the target sequences in the mixture continues to compete with the fusion product b) Long primers reduce the efficiency of PCR, c) Overlap primers form dimers during fusion PCR, d) Sequence noise in the primers synthetic errors also appear as noise during sequence evaluation; (e) two separate PCR reactions do not reduce overall costs.

A WO 2Ö07/02534Ö sz. közzétételi iratban (Keith S, et ai.) eljárást ismertetnek szekvenciák halmazának zaj- és diszkriminációmentes ampiitikálására, amely két ampiífikációs lépésből áll. Ez a módszer felhasználható kis mennyiségben rendelke3 zésre átló DHS-msWk· rendem elöampiihkálásra. Az így kapott, megnövelt minta mennyiséget későbbi analízisek során jól lehet alkalmazni több oéiszekveocla vizsgalatéra. Azonban ez a technika nem növeli meg a fragmentumok méretét, hanem csak a mennyiségét. Ezáltal a fűi rövid DRS-szekveneíák továbbra sem fognak a szekvenálás! reakcióban részt venni.WO02 / 07/025340. Publication Publication (Keith S, et al.) discloses a procedure for noise-free and non-discriminatory amplification of a set of sequences, which consists of two amplification steps. This method can be used to advance the small-scale DHS-msWk system. The resulting increased amount of sample can be well applied in subsequent analyzes for multiple oeissecveocla assays. However, this technique does not increase the size of the fragments but only the amount thereof. This will keep the grass short DRS sequences from sequencing! to participate in the reaction.

A WO 2009/124085 sz. közzétételi iratban (Ohmba d.S. et al.) eljárást ismertetnek zaj csökkentésére nukleinsav-szekvenálási reakcióban. Az eljárás szerint a szekvenálást megelőző amplifíkáclóban keletkező fals láncíermlnáelös termékeket a szekvenálás! reakció során szelektíven degradálják. A rövid szekvenciák szekvenálásáva! kapcsolatos technológiai problémára ez az eljárás nem nyújt megoldástWO 2009/124085. (Ohmba D.S. et al.) disclose a method for reducing noise in a nucleic acid sequencing reaction. According to the method, the false-stranded products generated in the amplifier prior to sequencing are sequenced. it is selectively degraded during the reaction. Sequencing the short sequences! technology is not solved by this procedure

A dldezoxí-szekvenálásl módszer hátránya, hogy az első 30-50 nukleotid sorrendjének pontos meghatározása nem lehetséges vagy meghatározása mindkét irányból analítikailag rossz minőségű, nehezen értékelhető. A leggyakrabban alkalmazott megoldás erre problémára az, hogy a vizsgálni kívánt szekvenciánál 70-70 bp-ral (prtmerhossz e 50 bpj hosszabb szekvencia-szakaszt ampiifikáloak, így a vizsgálandó szakasz már jó minőségű,The disadvantage of the Ddeoxy sequencing method is that it is not possible to determine the exact sequence of the first 30-50 nucleotides, or it is difficult to evaluate analytically poorly in both directions. The most commonly used solution to this problem is to amplify the sequence to be tested by amplifying it by 70-70 bp (prm length e 50 bpj longer sequence length, so that the test portion is of high quality,

Összetöredezett nukieinsavakat tartalmazó minták esetében a POR célszekvenciájának meghosszabbítása azt eredményezi, hogy csak kevesebb megfelelő méretű nukleinsav kópia áll rendelkezésre a POR amplifikáláshoz. Ilyenkor a kimutatás érzékenysége csökken, sok esetben a kimutatás eredménytelen, vagy ha eredményes, a PCR során nő az alléi diszkrimináció (allé! bias) esélye, azaz, hogy véletlenszerűen csak az egyik szekvencia-variáns amplifíkáiódik. A mutáns és normál alléit egyaránt tartalmazó mintában Ilyenkor gyakori, hogy a mutáns alléi 10ö%~os vagy 0%-os gyakorisággal jelenik meg. Az utóbbi esetnek igen nagy a klinikai jelentősége, hiszen ilyenkor a vizsgálat fals negatív eredményt ad. A kevesebb kiindulási nukleinsav kópiaszám nagyobb ampiifikációs igényt Is jelent, ami növeli a PCR artefactmutációk kialakulásának valószínűségét.For samples containing fragmented nucleic acids, the extension of the POR target sequence results in only fewer copies of the appropriate size of nucleic acid available for POR amplification. In this case, the sensitivity of the detection is reduced, in many cases the detection is ineffective or, if successful, the probability of allele discrimination (i.e., random amplification of only one sequence variant) increases during PCR. In a sample containing both a mutant and a normal allele, it is common for the mutant allele to appear at a frequency of 10% or 0%. The latter case is of great clinical importance, as the test results are false negative. Fewer starting nucleic acid copy numbers also translate into higher amplification requirements, which increases the likelihood of PCR artifact mutations.

A másik gyakran használt módszer a fenti probléma megoldására a célszekvencián túlnyúló „overhang” primerek használata a PCR amplifikácio során, melynek segítségéve! a rövidebb eélszekvenesa Is hosszabb PCR-terméket hoz létre. Ennek a módszernek az a hátránya, hogy a hosszú primerek szintézisekor sok prímedben előfordul egy-két nukleotid hiba, sok esetben nukleotid-deléció, Az erről a DNS-száiröl készült szekvencia egy nukleotiddal elcsúszott eredményt ad. Az Ilyen elcsúszott szekvenciáié célszekvenciák egymásra vetülve zajossá teszik anaiitlkalíag a. szekvenciaképet („segoence noiee”).Another commonly used method to solve the above problem is to use overhang primers beyond the target sequence during PCR amplification! a shorter edge sequence also produces a longer PCR product. The disadvantage of this method is that in the synthesis of long primers, many primers have one to two nucleotide errors, in many cases, nucleotide deletion. The sequence of this DNA strand yields a nucleotide deletion. The target sequences of such slipped sequences make each other noisy with respect to each other. sequence image ("segoence noiee").

Megoldást jelenthet a fenti problémára, ha a célszekvenelához amphhkáaó után egy legalább 70 bp hosszú DNS-moiekulát Illesztünk.A solution to the above problem may be provided by inserting a DNA molecule of at least 70 bp in length after the target sequence.

Két DNS-molekula összeillesztésének egy korábban leid módszere az „overlap extension PCR” (rövidítve: ÖEP), Az US 5.023,171 sz. szabadalomban (Ho Steffan et al.) leírt ÖEP módszer alapja, hogy a hibridizációra kerülő egyszálú DNSek S’-végén található átfedő olígonukleofidok prtmerkénf szolgálnak a DNS-polimeráz szamara a kétszáiú fúziós DNS-molekula létrehozásakor.A previously found method for joining two DNA molecules is the "overlap extension PCR" (abbreviated as "OEP"), U.S. Patent No. 5,023,171. (Ho Steffan et al.) discloses that the overlapping oligonucleotides at the S 'end of the single-stranded DNAs to be hybridized serve as primer markers for the production of the double-stranded fusion DNA molecule.

SWSW

It a lka k tra q LíuIt a lka k tra q Líu

A módszer eredeti és legg termék fúziójára kerül sor j es Andrew wallace ( o A módszer két egymást követe PCR-reakeióf alkalmaz. Az első PCR során öszszekötö szekvenciákat tartalmazó primerek alkalmazásával állítják elő az átfedő DNS-szálakab amelyek a második FÜR során egymás primereíkénf szolgálva fúziósainak, Az első PCR során alkalmazott összekötő primerek a 3’-végükőn a templát DNS-sel, míg az S-végükön a szomszédos DNS-sel komplementerek, Ennek a módszernek az a hátránya, hogy a tempiát-szekvencia amplifíkálásakor a szómI primer hatékonyságát, ezzel szédos DNS-sel komplementer 5; rész nagyban az érzékenység csökken. Továbbá primer-dirnerek képződnek az első PCR során, ami kismennyiségü DNS-mlnták esetében jelentősen rontja a POR hatásfokát. A· képződő pi!me -dímerek, amennyiben nem kerülnek eltávolításra, ugyanúgy fuzionálnak a második PCR-reakcio során, mint a tempiát-szekveneiáhól képződő DNS-szál. Az így megjelenő, tempfátot-nem-tartatmaző DNS-száíak a szekvenálás során zajt okoznak, A módszerből következik az is, hogy az összekötő prlmerekben előforduló szekvencia-eltérések beépülnek a fúzíönált szálba, leszerelő vagy deledé esetén ez az egész szekvenálásl eléktroferogrammon végigfutó zajként jelenik meg, melynek amplitúdója megegyezik az ínszerciót/delédőt tartalmazö primerek arányával Az említett hátrányok nagyban gátolják az addig kifejlesztett OEP-aiapű módszerek alkalmazását a kismennyiségü és/vagy töredezett nukíelnsav-tartalmú DNS-ekThe original and legg product of the method is fused by j and Andrew wallace (o The method is followed by two consecutive PCR reactions. The first PCR uses primers containing binding sequences to produce overlapping DNA strands which serve as primers for each other during the second FUR. , The linker primers used in the first PCR are complementary to the template DNA at their 3 'ends and complementary to their adjacent DNA at their S-ends. The disadvantage of this method is that when amplifying the template sequence, bouring DNA complementary to 5;. part greatly the sensitivity decreases Further, primer dimers formed during the first stage PCR, could significantly impair the POR efficiency for a small amount of DNA mlnták A · p i formed is methyl dimer, if not removed,.! fusion in the same way as in the second PCR reaction as in the template sequence sequencing The resulting non-phosphatic DNA strands produce noise during sequencing. It also follows that the sequence differences in the linker primers are incorporated into the fused strand, or in the case of deletion or deletion. Sequence appears as a continuous noise on an elec troferogram with amplitude equal to the ratio of primers containing insertion / deletion These disadvantages greatly inhibit the use of the OEP-based methods developed so far for low and / or fragmented nucleic acid content

A jelen találmány célja, hogy a fent-emh'tett módszerek hátrányait kiküszöbölve az ces ás talóságát növeljük olyan mintákban, amelyekben a nuklelnsavak íragroenláltak,It is an object of the present invention to overcome the drawbacks of the above-mentioned methods by increasing the resilience of ceses in samples in which the nucleic acids are irradiated,

A fent-vázoít problémák megoldására egy olyan overlap extension PCR-on alapuló technológiát terveztünk, amely a lehető legrövidebb prímerekkel biztosítja rövid PCR'terroékek fúzióját, illetve terveztünk egy mutáció-mentes adapter szekvenciát, amely a szélső POR-fermékhez fuzionálva kitölti a szekvenálás első 30-50 bp alatt képződő zajos szekvenciát anélkül, hogy ebhez hosszú PCR-terméket kellene amplífíkálnl,To solve the problems outlined above, we designed an overlap extension PCR-based technology to provide fusion of short PCR'terroids with the shortest possible primers, and designed a mutation-free adapter sequence that fused to the extreme POR fusion for the first 30 minutes of sequencing. Noisy sequence generated in -50 bp without the need to amplify a long PCR product,

A találmány összefoglalásaSummary of the Invention

A találmány szerinti eljárás során; - egyetlen PCP segítségévei - a vizsgálni kívánt célszekvenciához mindkét oldalon olyan hosszú előre elkészített mesterséges távtartó, „spaeer DNS-roolekuiát illesztünk, amely lehetővé teszi, hogy a célszekvencia a szekvenáiö primer bekötési helyétől a zajmentes Sangerleolvasáshoz elegendő távolságra kerüljön, így a módszer tehetővé teszi, hogy a kétirányú Sanger-szekvenálás rövidebb DNS-molekuíákről képes leolvasni ugyanaz! a célszekvenciát, mint a fúziót nem alkalmazó hagyományos eljárás. Mindezt pedig úgy érjük el, hogy a fúziót megelőzően nincs szükség arra, hogy a célszekvenciát lementer szekvenciákat juttassunk, tartalmazó DNS-szálm más DNS-láneeaí azaz olyan prímerekai használjunk, amelyek a templát DHS-sel komplementer szekvencíák mellett a I rontó.In the process of the invention; - with the aid of a single PCP - a long pre-engineered artificial spacer spool DNA DNA is inserted on both sides of the target sequence to allow the target sequence to be spaced sufficiently far from the sequencing primer binding site, thus enabling the method to be performed. that bi-directional Sanger sequencing can read from shorter DNA molecules is the same! a conventional method that does not use the target sequence as a fusion. All this is achieved without the need for delivery of the target sequence into lementer sequences prior to fusion, using other DNA strands, i.e., primers that destroy I in addition to the template DHS.

t is tartalmaznak. Külön előny, hogy az adapter DNS a célszekvencia amplifikácíójához használt primer kötőhelyen, illetve attól pár nukleotiddal beljebb hibridízái ezáltal a korábbi amplifikáció során nmernem szer előnyösebb annál is, leszfes, Ezaífal ez a szekvenciákat ligáiással Illesztenénk at. It is a particular advantage that the hybridization hybrid DNA at the primary binding site used for amplification of the target sequence, or a few nucleotides within it, is therefore not much more advantageous during the previous amplification, so that this sequence is ligated.

Az ábrák rövid leírása t ábra: Nuklelnsavak szekvenciájának molekulák fúziónáltatásával (talá szerinti eljárás)BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS Figure t: Nucleic Acids Sequence by Molecular Fusion (Invented Method)

2, ábra: A spacer-moiekuiaFigure 2: The spacer molecule

3, ábra: A fúziós PCR~t megelőző PCR primőrének és a spacer-moíekula hibrídizáci ós helyének elhelyezkedéseFigure 3: Location of the PCR primer prior to the fusion PCR and hybridization site of the spacer molecule

4, ábra: A H1N1 influenza vírus Nt-rezisztencia mutációit vizsgáló kétlépcsős PCR eljárás sémájaFigure 4: Schematic of a two-step PCR procedure for Nt resistance mutations in the H1N1 influenza virus

5, ábra: A találmány szerinti módszer hatékonyságának Igazolása az 1977-2008-ásFigure 5: Proof of the Effectiveness of the Method of the Invention 1977-2008

H1N1 Ni-rezisztencla mutációinak vizsgálatában 8, ábra: A találmány szerinti módszer hatékonyságának igazolása az új típusú Hl NIFigure 8: Demonstration of the Effect of the Method of the Invention on H1N1 Ni-Resistant Mutations

Rí-reztszfencia mutációinak vizsgálatábanIn the study of mutations in R 1 -resistence

7. ábra: Az ismert és a találmány szerinti eljárásban basznál amplikonok szekvenciái az EGFR 21 -es exonjának vizsgálatakorFigure 7: Sequences of amplicons for the exon 21 EGFR assay in the known method and the present invention

8. ábra: Az alléi hias faiá szerintiFigure 8: Allele according to hias wall

I történő csökkentésének igazolásaProof of I reduction

A találmány részletes le írásaDETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

A találmány szerinti eljárás során a vizsgálni kívánt célszekvenciához egyetlen PCR segítségével· mindkét oldalról olyan hosszúságú. előzőleg megszintetizált „spaceC-molekulát illesztünk, amely lehetővé teszt, hogy a szefcvenálandő oelszekvencia a primer 3!-végétől elegendő távolságra kerüljön a zajmentes Sangerleolvasáshoz, így a didezoxi-szekvenálást megelőző ampllfikáció a célszekvenciát csak körülbelül 2 x 20 bp-ral (2 x primerhossz) meghaladó nuklei.nsavrői is végbemehet. Kis kiindulási terápiát nukleínsav-tarialom esetén, a spacer-molekulát illesztő PCR-f megelőzően, a megfelelő templát-kópiaszám biztosítására, a célszekvencia PCR amplifikációjáf elvégezhetjük. Ebhez elegendő olyan primerek használata, amelyek csak a templáltai komplementer szekvenciát tartalmazzák. Ilyen esetben az >. 2 x 30In the method of the invention, the target sequence to be tested by a single PCR is of sufficient length on both sides. a previously synthesized "spaceC" molecule was inserted, which allows the test of the sequence to be sequenced to be the primary 3 ! is sufficiently distant for silent Sanger reading, so that amplification prior to dideoxy sequencing can only occur with nucleic acid more than about 2 x 20 bp (2 x primer length) above the target sequence. Small initial therapy with a nucleic acid array prior to the spacer molecule-matching PCR can be performed to amplify the target sequence to provide the appropriate template copy number. For this, it is sufficient to use primers that contain only the template complementary sequence. In this case,>. 2 x 30

-ral (2 x primerhossz e 2 χ 10) megampllfikáció a céiszekvenclát csak haladó nukleinsavról is végbemehet.(2 x primer length e 2 χ 10), only nucleic acid progressing the target sequence can occur.

Kísérteti úton is bizonyítottuk, hogy az ismert didezoxi-szekvenáiáskor szükséges, kétszer 70 bp extra szekvencia ampílfikálása kiváltható egy rövldebb szekvenciával, ezáltal az PCR ampitkon mérete csökkenthető, ami a vártnál is jobban növeli a szekvenálás érzékenységét, azaz a fragmentált, kis mennyiségben jelenlévő, mutációt hordozó ONS-szekveneiák kimutatását, és csökkenti az alléi hias kialakulását olyan DNS-minták esetében, amelyek íormalin-fixáSf szövetekből származnak (lásd 8 példa).It has also been hauntingly demonstrated that the amplification of the double 70 bp extra sequence required for known dideoxy sequencing can be replaced by a shorter sequence, thereby reducing the size of the PCR amplicon, which increases the sensitivity of the sequencing detection of carrier ONS sequences and reduces allele production in DNA samples derived from myormaline fixation tissues (see Example 8).

A találmány szerinti eljárásban alkalmazott spacer-molekula, amely egyszálö vagy kétszálú DNS lehet, a következőket tartalmazza (lásd 2. ábra):The spacer molecule used in the method of the invention, which may be single-stranded or double-stranded DNA, comprises the following (see Figure 2):

- a célszekvencia egyik végén lévő templát oukléinsavval vagy amplikonnal komplementer szakasz (kb, 20 bp},- a region complementary to a template or an amplicon at one end of the target sequence (about 20 bp),

- egy legalább 20 bp (de 120 bp-nál kisebb) köztes DNS-szakasz, amely az előbbi szakasszal együtt biztosítja, hogy a szekvenáló primer 3’-vége megfelelő, több mint 40 bp (de 140 bp-nál kisebb) távolságra ke rőt jön a eélszekvencláfól,- an intermediate DNA region of at least 20 bp (but less than 120 bp) which, together with the former, ensures that the 3 'end of the sequencing primer is adequate, spanning more than 40 bp (but less than 140 bp) comes from the edge sequence,

- szekvenáló primerre! komplementer szakasz (15-40 bp),- sequencing primer! complementary section (15-40 bp),

- ampiltikálö printerre! komplementer szakasz (15-40 bp).- Amplifying the printer! complementary region (15-40 bp).

A fentiek alapján a találmány egyik szempontjában egy eljárást nyújt töredezett nukleinsavak szekvenciájának meghatározására egy célszekvencia PCR ampiifikáoiöjával és az ezt követő didezoxi-szekvenálással, amely a kővetkező lépéseket tartalmazza:Accordingly, in one aspect the invention provides a method for determining the sequence of fragmented nucleic acids by PCR amplification of a target sequence and subsequent dideoxy sequencing comprising the following steps:

a) a szekvenálandö nukielnsavat vagy nukleinsavat tartalmazó sejteket elkülönítb) egy PCR-reakciót kivitelezőnk a eélszekvencia fuzionálására és ampliflkálására, amelyben egy vagy több olyan mesterséges spacer-molekuiát alkalmazunk, amely tartalmaz egy, a eélszekvencia egyik végén lévő templát nukleinsawaí komplementer szakaszt, egy legalább 20 bp távtartó szakaszt, egy szekvenáló primőrrel komplementer szakaszt és egy ampiltikálö primerre! komplementer szakaszt, ésa) separating the cells containing the nucleic acid or nucleic acid to be sequenced b) performing a PCR reaction to fuse and amplify the edge sequence using one or more artificial spacer molecules comprising at least one template nucleic acid complement at one end of the edge sequence; bp spacer section, a sequence complementary to a sequencing primer and an ampile primer! a complementary section, and

c) az így kapott PCR-terméket, adott esetben tisztítás után, szekvenáljuk.c) sequencing the resulting PCR product, optionally after purification.

A fenti eljárás egyik előnyös kiviteli módjában a nukielnsavat a biológia! mintából izoláljuk. Egy másik előnyős kiviteli módban ez a) Izolálás! lépés megfelelő polimeráz alkalmazása esetén elhagyható. Egy további előnyös kiviteli módban a nukielnsavat tartalmazó sejteket izoláljuk a biológiai mintából, előnyösen lézer mikrodisszekcióval.In a preferred embodiment of the above process, nucleic acid is biology! from a sample. In another preferred embodiment, this is a) Isolation! Steps may be omitted if appropriate polymerase is used. In another preferred embodiment, the cells containing the nucleic acid are isolated from the biological sample, preferably by laser microdissection.

A spacer DNS-moiekuiákat fuzionáltak) PCR-reakciót az 1. ábrán mutatjuk be:The spacer DNA molecules are fused) as shown in Figure 1:

a spacer DNS-molekula és a célszekvenciát tartalmazó DNS-molekulák komplementer 3'-végei hibrídizálnak, Igy a polimeráz felépíti a 2. szálú egyik oldalról fuzionáltthe spacer DNA molecule and the complementary 3 'ends of the DNA molecules containing the target sequence hybridize, so that the polymerase builds a single-stranded 2-stranded fusion

DNS-molekulát, Ezzel egyidejűleg mindez végbemegy a célszekvencia másik oldalán is. Az egyszeresen fuzionált DNS-molekulához a másik oldali spacer DNS-molekuia ugyanígy hlbridizál, és létrejön a mindkét oldalról fúziónál* kétszálú DNS-molekuia, amely a fomard és a reverse prímetekkel komplementer szekvenciákat Is tartalmazza, és így egyúttal lehetővé válik a fúziós molekula ampliíikáelóla. Áz ampllfikáló primerek nagy kiindulási koncentrációja biztosítja, hogy az ampllfikáit fúziós szál végső koncentrációja nagymértékben meghaladja a kiindulási és az intermedier molekulák koncentrációját. Végeredményben ebben az esetben a PCR-reakoic egy multiplex reakció, amelyben a fuzionálás ős amplifikáiás egy lépésben történik.DNA molecule, At the same time, this happens on the other side of the target sequence. For a single-fused DNA molecule, the spacer DNA molecule on the other side also hybridizes to form a double-stranded DNA molecule that is complemented by fusion and reverse primers on both sides, thereby enabling amplification of the fusion molecule. The high initial concentration of the gas amplification primers ensures that the final concentration of the amplified fusion strand is significantly higher than the concentration of the parent and intermediate molecules. Ultimately, in this case, the PCR reaction is a multiplex reaction in which fusion priming is amplified in a single step.

Ha a fúziós PCR-t megelőzően ia alkalmazunk RCR-reakoiót, akkor ezt a reakciót úgy érdemes megtervezni, hogy a primerek S’-végel a terápiát nukleinsav legalább 0-70 bp-ral S'-irányban kijjebb lévő szekvenciával legyenek komplementerek, mint a spacer DHS-mofekula templát-specifikus része itasd 3, abrak így elkerülhető az első PCR során képződött primer-dimerek fúziója a spacer DNS-molekulákkal a fúziós PCR során.If an RCR reaction is used prior to the fusion PCR, it is advisable to design this reaction such that the S 'end of the primers is complementary to the sequence at least 0-70 bp downstream of the nucleic acid as the sequence. the template-specific portion of the spacer DHS mofecula is watered 3 to avoid fusion of the primer dimers formed during the first PCR with spacer DNA molecules during the fusion PCR.

A fentiek alapján a találmány egy másik szempontjában egy eljárást bocsát rendelkezésre töredezett nuklelnsavák szekvenciájának meghatározására egy célszekvencia kétlépcsős PCR ampiitíkációjával és az ezt kővető dldezoxiszakvenálássak amely a következő lépéseket tartalmazza:Accordingly, in another aspect, the present invention provides a method for determining the sequence of fragmented nucleic acids by two-step PCR amplification of a target sequence and subsequent sequencing of deoxy, comprising the steps of:

a) a szekvenálandő nukíeinsavat vagy nukieinsavat tartalmazó sejteket elkülönítjük egy biológiai mintából,a) isolating cells containing the nucleic acid or nucleic acid to be sequenced from a biological sample,

b) egy első PCRneakciót kivitelezünk a célszekvencia ampíifikálásáta, cl ezt követően egy második PCR-t kivitelezőnk az amplikon fuzionálására és amplíílkálására, amelyben egy vagy főbb olyan mesterséges spacer-molekulát alkalmazunk, amely tartalmaz egy, az amplikonrial komplementer szakaszt, egy legalább 20 bp távtartó szakaszt, egy szekvenáló primőrrel komplementer szakaszt és egy ampllfikáló primőrrel komplementer szakaszt, ahol az. amptlkonnal komplementer szakasznak megfelelő szekvencia a terápiát ÖHSen 0-70 bp-ral távolabb kezdődik 5’-iránybans mint sz ampllfikáló príménél komplementer szakasz 5’-vége, ésb) performing a first PCR reaction to amplify the target sequence, followed by a second PCR for amplicon fusion and amplification, using one or more of the artificial spacer molecules comprising an ampliconrial complementary region of at least 20 bp spacer a region complementary to a sequencing primer and a region complementary to an amplification primer, wherein. amptlkonnal corresponding complementary sequence phase of therapy begins OHSE 0-70 bp farther 5 'direction and as No. ampllfikáló primena complementary to the 5'-end portion, and

d) az így kapott PCR-tsrméket adott esetben tisztítás után, szekvenáljuk.d) sequencing the resulting PCR products, optionally after purification.

A fenti eljárás egyik előnyős kiviteli módjában a nuklsínsavat a biológiai mintából izoláljuk. Egy másik előnyös kiviteli módban az a) izolálás! lépés megfelelő pofímeraz alkalmazásé esetén elhagyható, Egy további előnyös kiviteli módban a nukleinsavat tartalmazó sejteket izoláljuk a biológiai mintából, előnyösen lézer míkrodisszekclóval.In a preferred embodiment of the above method, the nucleic acid is isolated from the biological sample. In another preferred embodiment, isolation (a) is carried out. In a further preferred embodiment, the cells containing the nucleic acid are isolated from the biological sample, preferably by a laser microdissector.

Szükség esetén a b) lépésben az első PCR után egy további nested: PCR-íIf necessary, an additional nested PCR is performed in step b) after the first PCR

A találmány szerinti eljárásokban a szekvenáianöő nukleinsav DNS vagy RNS lehet.In the methods of the invention, the sequencing nucleic acid may be DNA or RNA.

A találmány érteimében a szekvenálandó töredezett nukleínsavon tragmentált DNS-t, RNS-t vagy miRNS-t értünk. A „töredezett nukleinsav” kifejezés a találmány értelmében 30-1 ÖOG bp hosszúságú nukteinsavat, előnyösen 55-300 bp hosszúságú nukteinsavat jelent.According to the invention, fragmented nucleic acid to be sequenced is DNA, RNA or miRNA tragmented. The term "fragmented nucleic acid" as used herein means a nucleic acid of 30-100 bp in length, preferably 55-300 bp in length.

Az eljárás minőén olyan esetben előnyösen alkalmazható, amikor a DNSszakasz, amelynek nukleotid-szekvenciáját meg akarjuk határozni, nem olyan DNSmolekula része, amely legalább 70 bp-al hosszabb, mint a célszakasz. Tehát, ha egy 100 bp hosszú DNS- vagy RNS-szakasz szekvenciáját akarjuk meghatározni, akkor az egy minimum 240 bp hosszú DNS-rtarab közepén; kell elhelyezkednie, hogy az ismert módszerekkel szekvenálni tehessen. Egy 200 bp hosszú szekvenálandó szakasz egy minimum 340 bp hosszé szakasz közepén kell, hogy legyen. Felső határt csak a didezoxi-szekvenálás technikai korlátja jelenti, ami kb, 1000 bp,The method is advantageously applicable when the DNA sequence whose nucleotide sequence is to be determined is not part of a DNA molecule that is at least 70 bp longer than the target region. Thus, if the sequence of a 100 bp DNA or RNA segment is to be determined, it should be in the middle of a minimum 240 bp DNA fragment; must be located in order to be sequenced by known methods. A 200 bp sequence to be sequenced must be in the middle of a minimum 340 bp sequence. The upper limit is only the technical limit of dideoxy sequencing, which is about 1000 bp,

A biológiai minta alatt blopszlákat, szövetmintákat, citológiai keneteket, vérmintákat, aszcitesz folyadékot, gerincvelőt, vizeletet, stb, értőnk. A találmány szerinti eljárásokhoz előnyösek a szövetminták. A nukteínsav-rnínta származhat emberi, állati vagy növényi szövetből vagy sejtből. Különösen előnyösen a módszer alkalmazása egy olyan biológiai minta esetén, amelyben a nukleinsav-fragmensek mérete különböze és mennyisége is kevés, ilyenkor a célszekvencia méretének csökkentése arányában jelentősen növeljük a terápiáiként rendelkezésre álló DNS-fragmensek számát. Ilyen alkalmazásra példa a szövettani minták vagy citológiai minták olyan feldől· gozása, amikor lézer mikrodisszekoios mikroszkóppal juttatunk egy-két, egy-két száz vagy egy-két ezer sejfnyl nukteinsavat a vizsgálócsőbe, amelyből ezután a nukteínsavat vagy elkülönítjük vagy közvetlenül PCR-ampliflkáljuk.By biological sample is meant blops, tissue samples, cytological smears, blood samples, ascites fluid, spinal cord, urine, etc. Tissue samples are preferred for the methods of the invention. The nucleic acid extract may be derived from human, animal or plant tissue or cells. It is particularly advantageous to apply the method to a biological sample in which the size and size of the nucleic acid fragments are small, thereby significantly increasing the number of DNA fragments available for therapy in proportion to reducing the size of the target sequence. An example of such use is the tilting of histological specimens or cytological specimens when a laser microdissection microscope is used to inject one, two, one hundred, or two thousand cellular nucleic acids into a test tube, from which the nucleic acid is then either isolated or directly PCR amplified.

A spacer DNS-moiekulát etlndlg a célszekvenciának megfelelően, amelyet előre ismernünk kell, megszintetizáljuk vagy megszlnfetizáltetjuk. A spaoer-molekuia a tent-megadortakon túlmenően tartalmazhat amplifikálő primer-kötőhelyei, NT13 kötőhelyet és a eélszekvenciával átfedő kötőhelyet.The spacer DNA molecule is synthesized or synthesized according to the target sequence, which must be known in advance. In addition to the tarpaulins, the spaoer molecule may comprise its amplifying primary binding site, the NT13 binding site, and the overlapping binding site.

A találmány szerinti szekvenáló eljárás egyik kiviteli módiéban tornázd és reverse spacer-molekulákat alkalmazunk, melyeket az alábbi módon állíthatunk elő. A iötward spacer-motekuiák vázának a :pCR24-TÖRO vektor (Invitrogen) M13F primer környéki részeit, a re verse spacer-molekulák vázának pedig a pENTR/HI/TÖ' vektor (Invitrogen) M13R primer környéki részeit használjuk. Két oldalról ehhez a vázhoz illesztjük OEP-et alkalmazva a diagnosztikai rendszerekre specifikus szekvenciákat. A spacer-vázhoz az Ι7Γ13F vagy R primőrtől 3' irányba a templáttal komplementer szakaszt, majd ezen túl további nukleotídokat Illesztünk. amelyek: a későbbi restrikciós hasításhoz szükségesek. A spacer-váz másik oldalára az előző oldalival megegyező restrikciós enzim hasítási hely kialakításához szükséges szekvenciákat illesztjük. Az így előállított mesterséges szekvenciákat CionedET1.2 PCR Cloníng Kittel: (Fermentas) és Topíö baktériummal klónozzuk. A szekvenciát Igazoltan tartalmazó klónból történő vektor-izolálást követően, restrikciós enzimes hasítással és gélizolálással állítjuk elő a spacer-molekulákaí. A két H1N1 influenza diagnosztikus rendszerhez csak fotwsrd spacerekef, a KRAS és EGFR diagnosztikai rendszerekhez forward: és reverse: spacer-molekulákat használtunk.In one embodiment of the sequencing method of the present invention, we use torn and reverse spacer molecules, which may be prepared as follows. The M13F primer portions of the framework of the i-forward spacer mock-ups are used: the M13F primer portions of the pCR24-TÖRO vector (Invitrogen) and the M13R primer portions of the re verse spacer molecule framework. On both sides, this frame is fitted with OEP using sequences specific for diagnostic systems. For the spacer backbone 3 'to the primer Ι7Γ13F or R, complementary nucleotides were inserted. which are required for subsequent restriction cleavage. On the other side of the spacer backbone, the sequences required to generate the same restriction enzyme cleavage site were inserted. The resulting artificial sequences were cloned with CionedET1.2 PCR Cloning Kit (Fermentas) and Topi. Following vector isolation from a clone that has been verified to contain the sequence, it is produced by restriction enzyme cleavage and gel isolation with the spacer molecules. For the two H1N1 influenza diagnostic systems, only fotwsrd spacer heads were used, for KRAS and EGFR diagnostic systems we used forward: and reverse: spacer molecules.

A találmány szerinti eljárások mindegyikében kivitelezünk egy PCR-t, amelyben a spaoer-molekulákat a célszekvenciákkal fúzionáifaíjuk. Ehhez a reakeloefagynek a golímeráz működéséhez szükséges komponenseken kívül a következő összetevőket kell tartalmaznia: a célszekvencia végeihez fuzionáló spacer-molekulákat az amplifikálö primereknéi kisebb mennyiségben; és a fúziónak molekulát, amplifikálö forward és reverse primereketIn each of the methods of the invention, a PCR is performed in which the spaoer molecules are fused to the target sequences. For this reakeloal freeze to contain, in addition to the components necessary for the action of golimerase, the following components: spacer molecules fusing to the ends of the target sequence in smaller amounts than the amplifying primers; and the fusion molecule, amplifying forward and reverse primers

Ha a fúziós tépést megelőzően a eéiszekvenciákat elöamplíflkál)uk egy vagyIf one or more of the precursor sequences are pre-amplified prior to fusion rupture

PCR-reakeiŐbao, akkor ebben az esetben a fúziót az így előállított ampllkonokon végezzük el, Egyik előnyös kiviteli módban mindkét oldalról spacermoíekulát fuzionáltatunk az ampiíkonokhoz (lásd 1-3. példa), így ezekre a rendszerekre érvényes az 1. ábra. Egy másik előnyös kiviteli módban, például: az influenza neuraminidáz gén vizsgálata során, a fúzió csak az egyik oldalon történik (lásd 4. ábra), a másik oldalon overlap fúziót végzünk a 2 neuraminidáz génrégió között átfedő szekvenciákkal, melyeket a másik régióba túlnyúló primerekkel hoztunk létre még a fúziót megelőző PCR ampliflkálás során (lásd 4-5. példa).In a preferred embodiment, a spacer molecule is fused to both amplicons from both sides (see Examples 1-3), so that these systems are the subject of Figure 1. In another preferred embodiment, for example: in the analysis of the influenza neuraminidase gene, fusion occurs on one side only (see Figure 4), on the other side, overlap fusion with sequences between the neuraminidase 2 region regions provided with primers extending into the other region. generated during pre-fusion PCR amplification (see Examples 4-5).

A fözsonáló és am pliflkálö POR során kapott terméket ezt követően közvetlenül vagy tisztítás után szekvenáljuk, Kívánt esetben a PCR-terméket Ismert módon latjuk, pl etanofos kicsapásssaf, szillkaoszfoppal XTermlnátor® segítségével.The product obtained by the sponing and amplifying POR is subsequently sequenced either directly or after purification. If desired, the PCR product is loaded in a known manner, e.g.

A szekvenálást önmagában Ismert módon végezzük,The sequencing itself is done in a known way,

A találmány szerinti módszer az. alábbi előnyökkel rendelkezik a technika állásából ismert eljárásokhoz képest;The method of the invention is. has the following advantages over prior art processes;

1) Érzékenység növelése: a hagyományos, hosszabb p:MS;-szskaszbóf kiinduló eljárással szemben ezt azáltal épük el, hogy a szekvencia-vizsgálathoz szükséges templat me á nevel;1) Sensitivity enhancement: This is done by contrasting to the traditional longer p: MS; -scascus initial procedure by increasing the template for sequencing;

tikezésre álló fragmensek számát, Az átfedő pnmereket használó módszerekhez képest az érzékenység azáltal javul, hogy az előbbi módszerekkel szemben, fit nem szükséges a céiszekvenclát tartalmazó DNS szálra más DNS lánccal komplementer szekvenciákat juttatni Az Ilyen átfedő (overhang) primerek alkalmazása ugyanis, bár a kiinduláskor szükséges templát méretét szintén csökkenti a fokozott: dlmer-képzésí hajlam miatt, rontja a PCR: hatásfokát.The number of fragments that can be labeled, Compared to the methods using overlapping pnmers, the sensitivity is improved by the fact that it is not necessary to transfer sequences complementary to other DNA strands to the target DNA strand, although the use of such overhang primers is necessary also reduces the size of the template due to its increased tendency to dlmer formation and degrades PCR: efficiency.

2) Alléi blas csökkentése: szintén a szekvencia-vizsgálathoz szükséges templát méretének csökkentésével és így a rendelkezésre álló DNS-íragmensek számának növelésével magyarázható, vagyis csökken annak esélye, hogy az egyszerre előforduló több szekvencia-variáns közül, véletlenszerűen csak az egyik amplif lká lód ik,2) Reduction of allele blas: This can also be explained by reducing the size of the template necessary for sequence analysis and thus increasing the number of available DNA fragments, thus reducing the chance that only one of the multiple sequence variants will be randomly generated. .

3} Artefact mutációk előfordulásának csökkenése; A szekvencia-vizsgálathoz szükséges templát méretének csökkentésével együtt iáró DNS-fragmens-szám emelkedés a szükséges ampltíikáeió mértékét Is csökkenti, Nlindez a polimeráz-bibák előfordulásának esélyét is csökkenti,3} Decrease in Artefact mutations; Increasing the number of DNA fragments consumed in combination with reducing the size of the template required for sequencing also reduces the amount of amplification required, while Nlindez also reduces the chance of polymerase bugs occurring,

4) Zaj csökkentés: átfedő primerek alkalmazásakor, az ezekben a phmerekben megjelenő szekvencia-eltérések beépülnek a fúziós termékbe, Inszerció vagy deiéoió esetén ez az egész szekvenálásl elektroíerogr&mmon végigfutó zajként jelenik meg, melynek amplitúdója megegyezik, az ínszercíőtzdetéefoí tartalmazó primerek arányával Az átfedő primerek alkotta dímerek ugyanúgy fuzionálnak a 2, POR reakció során, mint a templát szekvenciából képződő DNS szál Az így megjelenő, templáfot nem-tartalmazó fuzionált DNS szálak a szekvenálás során szintén zajt okoznak. A. találmány szerinti eljárással mindkét jelenség: előfordulását kiiktatjuk, jelentős zajcsökkentést érve el, A space r-mole kólák baktérium klánokban történő előállításával kizárható a bennük lévő különböző szekvencia-variánsok előfordulása, A spacer12 molekula hibridizációs helyének megfeleld megválasztásával pedig a célszekvencía nélküli reakcíöterroékek fúzióját akadályozzuk meg,4) Noise Reduction: When using overlapping primers, the sequence differences appearing in these phmers are incorporated into the fusion product. fused in the same manner as the DNA strand formed from the template sequence. The resulting non-template fused DNA strands also cause noise during sequencing. A. The process of the present invention both eliminates its occurrence and achieves significant noise reduction. By producing space r-mole cola in bacterial clans, the occurrence of different sequence variants in them is excluded, and by selecting the hybridization site for the spacer12 molecule, it

A találmány szerinti eljárás számos területen alkalmazható. Egyik alkalmazási területe génszekvenciák azonosítása töredezett DNS-t tartalmazó növényi, állati vagy emberi szövetmintákban, így például a találmány szennti eljárássá! kimutathatók a Hl Ni influenza neuraminidáz génjének mutációi, melyek alapján a terápia tervezhető,The process of the invention is applicable in a number of fields. One of its applications is the identification of gene sequences in plant, animal or human tissue samples containing fragmented DNA, such as the method of the invention. mutations in the H1 Ni influenza neuraminidase gene can be detected to guide therapy,

A találmány továbbá olyan töredezett nuklelnsavak nnkleötid-szekvenoiájának meghatározására szolgál, amelyek adott esetben mutációkat tartalmaznak és ezek a pontos szekvenálással megbízhatóan kimutathatók. Ennek egyik tipikus területe a mutációk kimutatása daganatszövetből származó fragmentáíódott DNS-mintákban.The invention further provides for the determination of the nucleotide sequence of fragmented nucleic acids which optionally contain mutations and which can be reliably detected by accurate sequencing. One typical area for this is the detection of mutations in fragmented DNA samples from tumor tissue.

A találmány szerinti szekvenáló eljárás különösen alkalmas formaiinnal fixált, tárolt, és ennek következtében károsodott, töredezett nukleinsavat tartalmazó szövetminták megbízható vizsgálatára. Ennek tipikus felhasználási területe a rák diagnosztikája, a kezelés módját befolyásoló genetikai markerek azonosítása. Ezekre példaként szolgálnak, de nem korlátozó jelleggel az EGFR 18-as, 19-es, 20-as és 21-es exonjában előforduló ismert mutációk, a KRAS, HRAS és NRAS 2-os, 3-as ésThe sequencing method of the present invention is particularly suitable for the reliable examination of tissue samples containing formalin-fixed, stored and consequently degraded fragmented nucleic acid. Typical applications are in the diagnosis of cancer and in the identification of genetic markers that influence the mode of treatment. Examples include, but are not limited to, known mutations in EGFR exons 18, 19, 20 and 21, KRAS, HRAS and NRAS 2, 3 and

4-es exonjának mutációi, a BRAF 11-es és 15-ös exonjában előforduló mutációk, a HER2 19-es es 2Ö-as exonjának mutációi, a PI3KCA gén 1-es, 9-es es 20-as exonjában előforduló mutációk, KIT S~es, 11-es,13-as es 1?~es exonjának mutációi, a POGFR-A 12~e$, 14-es és 18-as exonjában előforduló mutációk és az ALK gén 20as, 22-es,. 23-as, 24-es és 2S-ös exonjának mutációi.Mutations in exon 4, mutations in BRAF exons 11 and 15, mutations in HER2 exon 19, mutations in PI3KCA gene exons 1, 9 20, KIT Mutations in exons S, 11, 13, exon 1, mutations in exons 12, 14, and 18 of POGFR-A, and genes 20, 22, 22 of the ALK gene. Mutations of exons 23, 24 and 2S.

A találmány egy további szempontjában reagenskészletekre (kit) vonatkozik a találmány szerinti eljárások kivitelezéséhez, A találmány szennti reagenskeszlef az egy PCR-t alkalmazó találmány szerinti eljáráshoz a használati utasításon kívül a kővetkezőket tartalmazhatja; egy vagy több spacer-molekula; vagy egy vagy több spacer-molekuía és amplifikáló primerek. Kívánt esetben a reagenskészlet tartalmazhatja a POR kivitelezéséhez szükséoes polimerázf és reagenseket is.In another aspect, the invention relates to kits for carrying out the methods of the invention. The kit of the invention may comprise, in addition to the instructions for use, a method of the invention employing a single PCR; one or more spacer molecules; or one or more spacer molecules and amplifying primers. If desired, the kit may also contain polymerase reagents and reagents needed to perform the POR.

A reagenskészlet a találmány szerinti több PCR~f alkalmazó eljáráshoz a használati utasításon kívül a következőket tartalmazhatja: egy vagy több spacermolekula; vagy egy vagy több spacer-molekula és amplifikáló primerek a fuzionálóIn addition to the instructions for use, the kit may comprise, in addition to the instruction manual, one or more spacer molecules; or one or more spacer molecules and amplifying primers are fusion

-hoz;-to;

PCR-hoz és amplifikáló primerek az első iiflkálóPCR primers and amplifying primers are the first ones

-hoz. Kívánt esető spacer-molekula, amphíikálé primerek a fuzionáló feágenskesziet tartalmazhatja a pöfimerázokat és reagenseket Is.-to. Desired falling spacer molecules, amphiliceal primers in the fusion phage can also contain the diphtherases and reagents.

A találmányt az alábbi példákkal részletesen ismertetjük, anélkül, bármi módon korlátoznak az oltalmi kört.The invention is illustrated in detail by the following examples, without limiting the scope of the invention in any way.

Példák;Examples;

A találmány szerinti eljárást δ nukleinsav-szekvenela amplifíkálásén és szekvenálásán keresztül szemléltetjük, 3 esetben emberi génszakasz vizsgálata veit a cetek. A KRAS 2 exonját és az EBRR 19-es és 21-es emujának - az előforduló mutációk miatt - legrelevánsabb régióit kívántuk vizsgálói. Ezen vizsgálatok esetében a kiindulási nukleinsav DNS veit. Eljárásunkkal vszsgáll másik két génszakasz az influenza neuraminidáz génjének két olyan szakasza volt, melynek mutációi a ző neuraminidáz-gátlókkal (NI) szembeni eltérő mértékű rezisztenciával összefüggésbe. RNS vírusról lévén szó, a vizsgálat tempiátjaként itt az RNS szolgált. A H1N1 influenza gyógyszerhatást befolyásoló génréglóínak vizsgálatának megtervezésekor az 1977-től 2005-ig előforduló Hí Ni Influenza vírusok génszekvenciáiboi indultunk ki. Az így beállított assay az. 1977-től 2008-ig előforduló összes influenza detektálására képes, A 2009-ben megjelent új típusú H1NÍ influenza 337 variánsának neuraminidáz génjét megvizsgálva a korábbi variánsoktól nagyfokú eltérést tapasztaltunk. Ezért a 337 génszekvencíát felhasználva az új típusú H1N1 Influenza kimutatására optimalizált assayt terveztünk, amely a primerelcben és a spaeer templát-specifikus részeiben tartalmaz néhány nukleotidnyí eltérést a 2008-as MINI assay összetevőihez képest,The method of the present invention is illustrated by amplification and sequencing of a δ nucleic acid sequence, in 3 cases the human gene sequence has been tested in whales. The KRAS exon 2 and the most relevant regions of the EBRR 19 and 21 emu, due to the presence of mutations, were sought. For these assays, the starting nucleic acid was DNA. The other two gene sequences in our procedure were two sections of the influenza neuraminidase gene, whose mutations were associated with different levels of resistance to the major neuraminidase inhibitors (NI). As for RNA virus, the RNA was used as the tempo of the study. In designing a study of the drug-acting genes for influenza H1N1 influenza, we started with the gene sequences of the HI Ni Influenza viruses from 1977 to 2005. The assay set this way is. Capable of detecting all influenza cases from 1977 to 2008 Examining the neuraminidase gene of the 337 variant of the new type H1N1 influenza released in 2009, we found a significant difference from the earlier variants. Therefore, using the 337 gene sequence, we designed an assay optimized for the detection of a new type of H1N1 Influenza, which contains a few nucleotide deviations from the components of the 2008 MINI assay in the primer relay and template-specific portions of the spaer,

A találmány szerinti eljáráson alapúié diagnosztikus rendszerek paramétere? az 1, táblázatban mutatjuk be.Is a Parameter of Diagnostic Systems Based on the Methods of the Invention? as shown in Table 1.

la: la: 'MMw 'MMW Ípscsriáíw Ípscsriáíw ampákon ho-szá in amps to ho :„·;<·,a$:-, ní.'Sjsiasax 8S5S2Í: : "·; <·, A $: -, n''Sjsiasax 8S5S2Í: WsfeiSRöitósífaJil· ntá&nsav hasisa Íálifís íírffiétteífí WsfeiSröfslıfJil · nta & nic acid hashali Íalifis lyrite ·, ί ·, Ί KfíAS svon ,> KfíAS svon,> üartelápism: üartelápism: 3S5 3S5 síBStSí öísSaíró? SkiSiSiSiSiRiOr? 128 128 Sbff Sbff »Sp- »SP- 2S2bfj 2S2bfj L i L i 56R ÍSKW 19 56R ÍSKW 19 Hornt· · Horn í>f« f> f ' SSÖSlíÍisíÍ3:rí? SSÖSlíÍisíÍ3: rí? M? M? Hí;?· H i;? · 77 bp 77 bp bp bp X X lÜÍR SiOf'. 21 lyric SiOf '. 21 •«eme Sapiens • «eme Sapiens sas eagle ra»rf8sísSSa:sí! to "rf8sísSSa: skiing! 287 287 888? 888? S&iís S & IIS 79SSP 79SSP 4: ; 4:; Itmotti v3í;ííW;í Itmotti v3í; iíW; i :«915 «915 cíwlsWí'sf cíwlsWí'sf Wíi* Wii * «V "V ö?:sft ö? SFT 5. 5th Ü· ÍÍÖUSU rfi&i W ivStfiS Ü · ÍÍÖUSU rfi & i W ivStfiS S9S S9S sgyfcsS&Rs sgyfcsS & Rs ;.?Ssp ;.? Ssp iVbjs iVbjs aSáls aSáls

1, táblázat Az s//áráaon,ken e/apo/ó d/agnoszákus rendszerek paramétere/. Az /náe~ enza esetében a *~pa/ ,/e/ö/t W-íí őp-nyf szekvene/a nem a t&mplátróí amplífikálódik, hanem a más/k pénrég/óba tönyúfd szekvenciákat tarfafeaze pnrnerekkef fbzfooá/é14Table 1 Parameters of s // price, ken e / apo / h d / agnosos systems /. In the case of / náe-enza, the * ~ pa /, / e / δ / t W-ppp-sequence is not amplified, but rather the other / pén pén / / / / / 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14 14.

Epace mmofekufák efőáiOása; A. diagnosztikai rendszerhez egy forward és egy reverse spacer molekulát állítottunk elő: „spacer'>-t. A forward spacer molekulák vázának a pCR2,1-TQPQ vektor (Invitrogen) M13F primer környéki részeit, a reverse spacer molekulák vázának pedig a pENTR/HDTO vektor (Invitrogen) M13R primer környéki részest használtuk,Effectiveness of Epace mmofekufa; For the diagnostic system A. we produced a forward and a reverse spacer molecule: "spacer"> . For the forward spacer molecule backbone, we used the primer region M13F of the pCR2,1-TQPQ vector (Invitrogen) and for the reverse spacer molecule backbone the pENTR / HDTO vector (Invitrogen) backbone M13R,

A pCR2,1-TQPO vektor forward spacer molekulák vázául szolgáld, SEQ ID MO: 1 szerinti szekvenciája (104 bp, a szürkén satírozott rész a forward ampllfikáló primőrnek megfelelő szakasz, fekete alapon fehér hetükkel jelölt rész az. M13F szekvenáló prlmernek: megfelelő szekvencia):Serve as the backbone of forward spacer molecules of pCR2,1-TQPO vector, SEQ ID MO: 1 (104 bp, gray shaded portion corresponding to forward amplification primer, black weekly portion on M13F sequencing primer: matching sequence) :

rVf-ATTÁAGGGGGGrAACXiC'CAGGóWTZCCCAGrCACGAGGT AATTGTAATACGACTCACTATAGGGCGAAT’IWSCC-CTCTAGrVf-ATAGAGGGGGGrAACXiC'CAGGóWTZCCCAGrCACGAGGT AATTGTAATACGACTCACTATAGGGCGAAT'IWSCC-CTCTAG

AAAACGACGGCCAGIAAAACGACGGCCAGI

A pENTR/Hl/TÖ vektor reverse spacer molekulák vázául szolgáló, SEQ ID MO: 2 szennti szekvenciája (110 bp, a szürkén satírozott rész a reverse ampllfikáló primernek megfelelő szakasz, fekete alapon fehér hetükkel jelölt rész az Mf 3R prlmernek megfelelő szekvencia):Sequence sequence of SEQ ID MO: 2 (110 bp, gray shaded region corresponding to reverse amplification primer, black segmented on white with Mf 3R primer) as the backbone of pENTR / HI / TÖ vector:

GTG-G\:GA0-GTAACATG;v5AGATT-T?rGAGACACGGGCCAGAGC?GC^M^^^MOgM ^.ITAATACGZiCTGACTATAöGGGATATCAGCTGGATGGGAAATAATG Két oldalról ehhez a vázhoz illesztettük QEP-et alkalmazva a diagnosztikai rendszerekre specifikus szekvenciákat. A vektor-szekvenciához az M13F vagy R primertel 3’ irányba a KRAS génnel komplementer szakaszt, majd ezen túl további nukleotidoksf illesztettünk, amelyek a későbbi restrikciós hasításhoz szükségesek, A forward spacer molekulák esetében ehhez az alábbi reverse prímért (SEQ ID MO; 3) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az KRAS génrészlettei egyező szekvencia, dőlt betűvel: a pCR2,l-7ÖPÖ vektor-szekvenciával komplemenler szakasz):GTG-G \: GA0-GTAACATG; v5AGATT-T ? rGAGACACGGGCCAGAGC? GC ^ M ^^^ MOgM ^ .ITAATACGZiCTGACTATAöGGGATATCAGCTGGATGGGAAATAATG On both sides, QEP was fitted to this framework using diagnostic system-specific sequences. The vector sequence was inserted in the 3 'direction of the M13F or R primer complementary to the KRAS gene, followed by additional nucleotide sequences required for subsequent restriction cleavage. For forward spacer molecules, the reverse primer (SEQ ID MO; 3) used was (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, underlined: sequence identical to the KRAS gene fragment, italics: complementary to the vector sequence pCR2, 1-7PÖÖ):

GATGGCCACAAGTTTAGATTGAGTCAÓGTTATAATCTAGAGgGGCCAZlTlWGGATGGCCACAAGTTTAGATTGAGTCAÓGTTATAATCTAGAGgGGCCAZlTlWG

A reverse spacer molekulák esetében: ehhez az alábbi reverse prímért (SEQ ID MO:For reverse spacer molecules: For the following reverse primer (SEQ ID MO:

4) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az4) (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, underlined:

KRAS génrészlettel komplementer szakasz, dőlt betűvel: a pENTR/Hí/TÖ vektorrésszel egyező szekvencia):Complementary to KRAS gene fragment, italics: sequence corresponding to vector pENTR / HI / TÖ):

GAlOeAAGAGTGCCTTGACGATACCWAGTTGGCATCCAGCTGGAlOeAAGAGTGCCTTGACGATACCWAGTTGGCATCCAGCTG

A spacer molekulaváz másik (53 oldalára az előző oldalival megegyező restrikciós enzim hasítási hely kialakításához szükséges szekvenciákat illesztettünk. A forwmd spacer molekulák esetében ehhez az alábbi forward prímért (SEQ ID NÖ; 5) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, dőlt betűvel; a pCR.2,1TOPO vektor-résszel egyező szekvencia)'.For the spacer molecule, the sequences needed to construct the same restriction site as the previous one were inserted on the 53 pages of the spacer molecule. For the forward spacer molecules, the following forward primer (SEQ ID NO: 5) was used (gray shaded: restriction site, italic) sequence corresponding to vector pCR.2,1TOPO).

CTPOGCCAGCGATTAAGríGGO-TAACGCCTPOGCCAGCGATTAAGríGGO-TAACGC

A reverse spacer molekulák esetében ehhez az alábbi forward; prímért (SEQ ID NO: 6) használtuk (szürkén satírozva; a restrikciós enzim hasító helye, dőli betűvel: a pENTR/H1/TO veMonrésszei komplementer szekvencia):In the case of reverse spacer molecules, the following forward; primer (SEQ ID NO: 6) (gray shaded; restriction enzyme cleavage site, deletion: sequence complementary to the pENTR / H1 / TO veMon moiety):

ezil||ll||Gesylate || G || II

Az illesztéseket a forward és a reverse spaeer-molekuíák esetében külön-külön PCRben végeztük. A két reakció csak az alkalmazott primerekben különbözött egymástól Az ampílfíkáslót a pCRS-VTÖPÖ, illetve pENTR/H1/TO vektorokat tartalmazó oldatokban végeztük, AccuPríme Taq HIFI DNS polímerázt (invitrogen, 0,02 U/pl), Ix-es t-es AccuPríme PCR puffért és 0,4 /vM koncentrációjú forward és reverse primereket alkalmazva. A POR az alábbi ciklusokat tartalmazta:Alignment was performed by PCR for forward and reverse spaeer molecules separately. The two reactions differed only in the primers used. The amphiphilic cleavage was performed in solutions containing pCRS-VTOPÖP and pENTR / H1 / TO vectors, AccuPrime Taq HIFI DNA polymerase (invitrogen, 0.02 U / pl), Ix t AccuPrime PCR buffer and 0.4 / vM forward and reverse primers. The POR contained the following cycles:

1. Ciklus: (Ixj 1. Cycle: {Ixj 1. lépés 1st step 64sü 1 ρ OOmp64 s ü 1 ρ OOmp 2, cAlus-.DOx) 2, cAlus-.DOx) 1. lépés 2. lépés 1st step Step 2 94;'C· üp 20mp 63“C0p 20mp94 ; 'C · üp 20mp 63' C0p 20mp Minden ciklust kő Each cycle is stone vetően ez a ciklus 0,68 3. lépés sowing this cycle is 0.68 Step 3 Ű-ka 1 csökkent 68“C Op 40mp U of 1 decreased 68 “C Op 40mp 3. cikius:(30x) Cycle 3: (30x) 1. lépés 2. lépés 3. lépés 1st step Step 2 Step 3 94'C Op 20mp 63cC Op 20mp 68'C Op 40mp94'C Op 20mp 63 c C Op 20mp 68'C Op 40mp 4. cíkius:(30xj Title 4: (30xj 1. lépés 1st step 6S':C Sp OOmp6S ' : C Sp OOmp 5. ciklus:(1 x) Cycle 5: (1x) 1. l épés 1st step 4°C ® 4 ° C ®

Az így előállított mesterséges szekvenciákat ClonedET1.2 PCR Cloníno főttel (Fermenfas) és Top10 baktériummal (Invstrogen) klönoztuk. A spacer molekulákat tartalmazó pdETI.2 vektorokat MidiPrep-pei izoláltuk. A forward spacer molekulát Mlu Nk reverse spacer molekulát Ávlll restrikciós enzimmel (mindkettő Roche, 0,4U/pi 16 órán ár 37°C~on Inkubálva) vágtuk ki a vektorból E-Gel SizeSelect (invitrogen) rendszert alkalmazva, a spacer-molekulákat gélből Izoláltuk.The resulting artificial sequences were cloned by ClonedET1.2 PCR with Clonino cooked (Fermenfas) and Top10 (Invstrogen). The pdETI.2 vectors containing the spacer molecules were isolated with MidiPrep. The forward spacer molecule was cut from the vector by the Mlu Nk reverse spacer molecule from the vector using restriction enzyme Ávlll (both Roche, 0.4U / pi incubated at 37 ° C for 16 hours) using the E-Gel SizeSelect (invitrogen) system, spacer molecules from gel We isolated.

A restrikciós hasítást követően létrejött íorward spacer-moíekufa szekvenciája (SEQ 10 NO; 7) (137 bp, a szürkén satírozott rész a íorward ampllíikáló primőrnek megfelelő rész, fekete alapon fehér betűkkel jelölt rész az W113F szekvenáló primemék megfelelő szakasz, az aláhúzott a KRAS gén egy részletével komplementer szekvencia):The sequence of the spacer spacer molecule formed after restriction cleavage (SEQ 10 NO; 7) (137 bp, the gray shaded part corresponds to the forward amplifier primer, the part in black on white is the corresponding section of the W113F sequencing primer, the underlined KRAS gene sequence complementary to one part):

ISSAAGTGTAATAGGACTCACTATAGGGCGAATTGGCeCCTCGAGATTAr&AGAttXIACTGAAISSAAGTGTAATAGGACTCACTATAGGGCGAATTGGCeCCTCGAGATTAr & AGAttXIACTGAA

TATAAACTTGTGGTATAAACTTGTGG

A restrikciós hasítást követően létrejött reverse spacer-molekuia szekvenciája (SEQ ID NO: 8) (134 bp, a szürkén satírozott rész a reverse ampiiflkáío primernek megfelelő rész, fekete alapon fehér betűkkel jelölt rész az M13R szekvenáló primernek megfelelő szakasz, aláhúzott betűvel KRAS gén egy részletével komplementer szekvenGTGCAATGTtWCZVfCAGAGATTyTGAGhGAOGGGCGAGAGCTGG^^BBWW^ggM ||STAATAGGACTGAGyA?AöGGGA7ATGAGCTGGA7GGCAAA7AATGGTATCGTCAAGGCAThe reverse spacer molecule generated after restriction cleavage (SEQ ID NO: 8) (134 bp, gray shaded part corresponding to reverse amplification primer, black underlined section corresponding to M13R sequencing primer, underlined KRAS gene) sequence complementary to the fragmentGTGCAATGTtWCZVfCAGAGATTyTGAGhGAOGGGCGAGAGCTGG ^^ BBWW ^ ggM || STAATAGGACTGAGyA? AöGGGA7ATGAGCTGGA7GGCAAA7AATGGTATCGTCAAGGCA

GTCTTGGGTCTTGG

in-íixált mintából izolált, töredezett DNS-t tartalmazó mintákon a fúziót megelőzően PCR ampüíikáciől végeztünk. A PCR körülményei megegyeztek a spacer molekula eiőálirtásánál használt reakeioévaL Aforward primer szekvenciája (SEQ ID NO: 9):Samples containing fragmented DNA isolated from an immobilized sample were subjected to PCR amplification prior to fusion. The PCR conditions were the same as the Aforward primer sequence (SEQ ID NO: 9) used for the pre-killing of the spacer molecule:

GACATGTTCTAATATA.GTCACATTTTCATTA.TT, a reverse primer szekvenciája (SEQ IDGACATGTTCTAATATA.GTCACATTTTCATTA.TT, reverse primer sequence (SEQ ID:

10): TCTGAATTAGCGGTATGGTCAAGG VOtt.10): TCTGAATTAGCGGTATGGTCAAGG VOtt.

A PCR eredményeként az alábbi 120 bp hosszú amplikon (SEQ ID NO: 11/képződött (szürkén satírozva a íorward primernek megfelelő és a reverse primerref komplementer szekvenciák, aláhúzva: a íorward spacer molekula templátspecifikus részének megfelelő és a reverse spacer molekula templátspecifikus részével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb KRAS mutációk helyei):As a result of the PCR, the following 120 bp amplicon (SEQ ID NO: 11 /) (gray shaded sequences matching the forward primer and reverse primerref, underlined) is the template specific part of the spacer spacer molecule and complementary to the template specific part of the reverse spacer molecule. black on white: locations of major KRAS mutations):

GAGATGGTCTAATATAGTCACATTTTCATTATTTTyATTATAAGATGACTGfekTATfekAGTTGAGATGGTCTAATATAGTCACATTTTCATTATTTTyATTATAAGATGACTGfekTATfekAGTT

GrrGG7AGTTGG^AGCTÍ|7^GTAGGCfi.AGAGTGCCTÍ7GACCATACAGe7AAirTGAGAGrrGG7AGTTGG ^ AGCTÍ | 7 ^ GTAGGCfi.AGAGTGCCT Í 7GACCATACAGe7AA i rTGAGA

Spacer-mo/eku/ák fezfená/fefesa: A íorward és a reverse spacer-molekulákat PCR alkalmazásával fuzioná Itattuk az előző ltott ampllkonnal. A PCR-oldat az amplikonokon kívül az alábbi összetevőket tartalmazta·. AccuPhme Tag HIFI ÖNSpolimerází (Invitrogen, 0,02 Ufel), Ix-es l-es AccuPhme PCR puffért ás 0,4 pM kon17 centrációjú forward prímért (SEQ ID NO: 12) (attaagttgggtaacgccagggttt) és reverse prímért (SEQ ID NO: 13) (agattttgagac.acgggccag?\), forward és reverse -meleky lakat A PCR-okfat összeáll Másakor a térfogat egyik ötödet az. snokat tartalmazó PCR-oidat WOx-os hígítása, egy másik ötödét pedig a spacer-moíekuíák géi-izoiátuma adta. A PCR-oidat tehát -0,012 pM-nyl forward és ugyanennyi reverse spacer-t tartalmazott. A PCR az alá t tartalmazta:Spacer-mo / ecu / s fezfená / fefesa: The forward and reverse spacer molecules were fused to the previous amplitude using PCR. In addition to the amplicons, the PCR solution contained the following components. AccuPhme Tag HIFI Self Polymerase (Invitrogen, 0.02 Ufel), Ix1 AccuPhme PCR Buffer and 0.4 pM Conc17 Forward Primer (SEQ ID NO: 12) (attaagttgggtaacgccagggttt) and Reverse Primer (SEQ ID NO: 13) ) (agattttgagac.acgggccag? \), forward and reverse -meleky padlock PCR okfat assembles Otherwise, one fifth of the volume is. WOx dilution of the PCR solution containing the snails and another fifth was the gel isolate of the spacer molecules. The PCR solution thus contained -0.012 pM-nyl forward and the same number of reverse spacers. The PCR contained below:

1, ciklus:(1x)1, cycles: (1x)

2, cíkkjs:(Sx)2, tag: (Sx)

3, ciklus:(35>3, cycles: (35>

4. cikluséi x)Cycle 4 x)

5. ciklus:(1x)Cycle 5: (1x)

1, lépés1st step

1, lépés1st step

2, lépésStep 2

3, lépésStep 3

1. lépés1st step

2. lépésStep 2

3. lépés 1. lépés 1. lépésStep 3 Step 1 Step 1

57°C Op 30mp 6S°C 1p OOmp 94°C Op 30mp 62°C Op 30mp 68C 1p OOmp 68ÖC 10p OOmp 4*0’Mp 57 ° C 30sec 1min Oompa 6S ° C 94 ° C 30 sec 62 ° C Mp Mp 68C 30sec 68 ° C 1min Oompa 10p Oompa 4 * 0 '

A reakció során, amennyiben a vizsgált minta KRAS-génszakasza kiinduláskor nem tartalmazott mutációt az alábbi 288 bp hosszá fúziós termék (SEQ ID NO: 14) keletkézen (szürkén satírozva a forward prímemek megfelelő és a reverse prtmerref komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér dót hetükkel: az M13E szekvenálő pőmemek megfelelő, illetve az MISE prlmerrel komplementer szekvenciák, aláhúzva: a forward spacer-molekula tempiátspeeifikos részének megfelelő és a reverse spaoer-molekula templátspeeiíikus részével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér normál betűkkel: a legjelentősebb KRAS mutációk helyei):During the reaction, if the KRAS gene section of the sample did not initially contain a mutation in the following 288 bp fusion product (SEQ ID NO: 14) in the east hand (gray shaded forward primers matched and reverse prtmerref complementary sequences, black on white): sequences of M13E sequencing subspecies and those complementary to MISE prlmer, underlined: corresponding to the tempo-specific portion of the forward spacer molecule and complementary to the template-specific portion of the reverse spacer molecule, in black on white: most important KRAS mutations

ATTAAGTW'3GTAACdO^A?OmTTTCCC.?<4TCACQACGTSieSei^SSSöArt-T ηη/'-Γρ \ x ·-:* -a .-'yx x, A. ►'-'•’Τ'Ά nn Λ >v<rwj A A ·Λ ,-p:v< -A <;». y>,· y. x a A A.RX7vrtt A i Vri .( i Ainub’\JVUAíü λ L. i 1 £ IATTAAGTW'3GTAACdO ^ A? OmTTTCCC.? <4TCACQACGTSieSei ^ SSSöArt-T ηη / '- Γρ \ x · -: * -a .-' yx x, A. ► '-' • 'Τ'Ά nn Λ> v <. rw j AA · Λ , -p : v <-A <; ». y>, · y. xa A A.RX7vrtt A i Vri. (i Ainub '\ JVUAíü λ L. i 1 £ I

CTTGZGG,f7\GtrfrGGÁGC'I^^T^^CG'TAGGCAAGAGTGCC’TTGACGATACCATTA.TÍr!t1GCCA,TCTTGZGG , f7 \ G t r f rGGÁGC'I ^^ T ^^ CG'TAGGCAAGAGTGCC'TTGACGATACCATTA.T Í r ! t 1 GCCA , T

IggagoIIIIIggagoIIII

ATGGTCATAGCTÖTS'TCCTiATGGTCATAGCTÖTS'TCCTi

CCAGCTGATATCCCCTATAGTCAGTCGTATTACCCAGCTGATATCCCCTATAGTCAGTCGTATTAC

GCCCGTGTCTCAAAA^GTGCCCGTGTCTCAAAA ^ GT

A fúziós fennek szekvená/ása; A fúziós terméket a PCR-t követően Exo-SAP-IT (USB) enzlmkeverékket tisztítottuk, majd kétirányú terminálé reakciót végeztünk BígDye Terminalor v3.1 Seguencing Kitel (Applied Bíosystems) és M13F prímért (SEQSequencing of fusion plateaus; Following fusion, the fusion product was purified with Exo-SAP-IT (USB) enzyme mixtures and subjected to bidirectional terminal reaction for BígDye Terminalor v3.1 Seguencing Kitel (Applied Biosystems) and M13F Primer (SEQ.

ID NO: 18) (tgtaaaacgacggccagt), illetve M13R prímért (SEQ ID NO: 16) (caggaaacágcbatöag) alkalmam, A terminálő reakció termékét BigDye XTermlnator (Applied Blosystems) kit segítségével tisztítottuk, majd a DNSszekvenciái ABi Prism 3130 Geneöc Analyzer (Applied Biosysíems) készüléken végzett kapilláris-elekfrotorézissei olvastuk le.ID NO: 18) (tgtaaaacgacggccagt) and M13R primer (SEQ ID NO: 16) (caggaaacagccagag), The terminal reaction product was purified using BigDye XTermlnator (Applied Blosystems) kit and DNA sequences ABi Prism 3130 Gemsöc capillary electrophoresis.

Ei paraffinba ágyazott formaiin fixáit mintából Izolált, töredezett DNS-t tartalmazó izolátum esetében sikeresen elvégeztük a szekveneia-vizsgáíatet.Sequence analysis was successfully performed on E1 from paraffin-embedded formalin fixed sample Isolate containing fragmented DNA was successfully performed.

tatadaddy

Spaeer rno/ekufak e^áOása; A diagnosztikai rendszerhez itt is egy forward es egy reverse spaoer-rnoíekuiát állítottunk ele, az első példában leírt módon, az alábbi módosításokkal. Az QEP reakció során a forward spaeer-molekulák esetében az M13F primőrtől 3’ Irányba az EGER génnel komplementer szakaszt és a restrikciós hasításhoz szükségesek további nukieetidokat az alábbi reverse primőrre! (8EG: ÍD NO: 17): illesztettük a pCR2.1-TORQ vektor-szekvenciához (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az EGFR génréazlettei egyező szekvencia, dőlt betűvel: a vektor-szekvenciával komplementer szakasz):Spa e nding; Here, too, a forward and a reverse spa scan were prepared for the diagnostic system, as described in the first example, with the following modifications. During the QEP reaction, for the forward spaeer molecules, the complementary region to the EGER gene from the M13F primer 3 'and additional nucleotides for restriction digestion to the reverse primer below is required! (8EG: ID NO: 17): Aligned with vector sequence pCR2.1-TORQ (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, underlined: sequence identical to EGFR gene set, italic font: complementary to vector sequence):

GAGTTAACTTTCTGAC€T?CTGGGATCCACTAGAGGGCC3AATV:CGGGAGTTAACTTTCTGAC € T? CTGGGATCCACTAGAGGGCC3AATV : CGG

A reverse spaeer-molekulák esetében ehhez az alábbi reverse primer! (SEQ ID NO: 18) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az EGFR génrészlettel komplementer szakasz, dóit betűvel: a pENTR/Ht/TO vektorrésszel egyező szekvencia):For reverse spaeer molecules, use the following reverse primer! (SEQ ID NO: 18) (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, underlined: complementary to the EGFR gene fragment, dotted: sequence corresponding to vector pENTR / Ht / TO):

GACAGCTGCTGTGCTGTGTGOGGG;rr3Afr3:ATyTGCCAyCC^igTG Utóbbi printerrel a pENTR/Hh-TO vektorban található egyik guanint a molekulában citozinra (az előbbi szekvenciában fekete alapon fehér betüve cseréltük, hogy az itt lévő CAGCTG restrikciós hasítási helyet megszüntessük i jelölve) lk, megyozva így a spacer-moiekuia olA forward spaeer-molekulák esetében a pCR2.1-TOPQ vektor-szekvencia dalára a restrikciós enzim hasítási hely kialakításához az alábbi forward primőrt (SEQ ID NO:19) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, dőlt betűvel; a vektor-résszel egyező szekvencia):GACAGCTGCTGTGCTGTGTGOGGG ; rr3A f r3 : ATyTGCCAyCC ^ igTG With the latter printer, one of the guanines in the pENTR / Hh-TO vector in the molecule was replaced with cytosine (in the former the sequence was replaced by a black letter on a black background to eliminate the CAGCTG restriction site herein marked by spacer). Molecular ol For forward spaeer molecules, the following forward primer (SEQ ID NO: 19) was used to construct the restriction enzyme cleavage site for the vector pCR2.1-TOPQ (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, italics); vector sequence sequence):

CTGTGAAGGCGATGyutGTGGGGAkSCGCCTGTGAAGGCGATGyutGTGGGGAkSCGC

A reverse spacer-molekulák esetében ehhez az alábbi forward prímért (SE1 20) használtak (szőrkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, dőlt betűvel: a pENTR/HI ZTQ vektor-résszel komplementer szekvencia);The reverse was used for spacer molecules to the following forward primer (SE 1 20) (shaded gray szőrkén the restriction enzyme cleavage site, italic: pENTR / HI ZTQ vector portion complementary sequence);

CTCAGCT^dTÖCAATörAACATCAŐAÖATTTK?CTCAGCT ^ dTÖCAATörAACATCAŐAÖATTTK?

A resthkcös hasításhoz a forward spacer-molekula esetében a Hpal enzimet, a reverse spacer molekula esetében a PvoII enzimet használtok,For restriction digestion, you use the Hpal enzyme for the forward spacer molecule and the PvoII enzyme for the reverse spacer molecule,

A restrikciós hasítást követően létrejött forward spacer-molekula szekvenciája (SEQ IÖ NÖ; 21) (1.31 bp, a szü rkén satírozott rész a forward amplffikálö primőrnek mer lelő rész, fekete alapon fehér hetükkel jelölt rész az M13F szekvenáló megfelelő szakasz, aláhúzott betűvel EGER gén egy részletével komplementer szekvencia):Sequence of the forward spacer molecule generated after restriction cleavage (SEQ IÖ NÖ; 21) (1.31 bp), the screen-shaded portion is the nucleus forward of the forward amplification primer, the black weekly moiety is the M13F sequencer, underlined by the EGER gene sequence complementary to one part):

AACGCGÁT1 AAGGTGÖGGAACGCCAGÖGTTTGGGCAGTCZ^CCACG jgGAATTGTAATACGACGCACTATAGGGCGAATTGGG€CCTCTAG?GGA?CCCAGAAGG?GAAACGCGÁT1 AAGGTGÖGGAACGCCAGÖGTTTGGGCAGTCZ ^ CCACG jgGAATTGTAATACGACGCACTATAGGGCGAATTGGG € CCTCTAG? GGA? CCCAGAAGG? GA

GAAAGTTGAAAGTT

A restrikciós hasítást követően létrejött reverse spaeer-moiekula szekvenciája (SEQ IÖ MO: 22) (133 bp, a szürkén satírozott rész: a reverse emplifikálö primőrnek megfelelő rész, fekete alapon fehér hetükkel; az M13R szekvenáló primőrnek megfelelő szakasz, aláhúzott betűvel: az EGER gén egy részletével komplementer szekvencia, fekete alapon fehér dóit befő: a vektor szekvenciában az OEP során kicserélt nukleotidk t'GGGTGCZGrTG tFWCAOCAGAGATGTTGAGAG AGGGQOCAGAGCTGr jGTAATACGACTCAGTÁTAGGGGATATGÁGSTGGArrGGCAaATAATGACCGCCACACA GGA4AGCAGSEQ ID NO: 22) (133 bp, gray-shaded part: corresponding to the reverse amplifying primer, black on white; section corresponding to the M13R sequencing primer, underlined: EGER) sequence complementary to a portion of a gene on a black background: the nucleotides exchanged in the vector sequence during the OEP t'GGGTGCZGrTG tFWCAOCAGAGATGTTGAGAG AGGGQOCAGAGCTGr jGTAATACGACTCAGTÁTAGGGGATGGGGGGGGGGAT

Fúz/bf n ampOtádő; A paraffinba ágyazott formalin-fixált mintából izolált, töredezett DNS-t tartalmazó mintákon, a fúziót megelőzően PCR arnplifíkációt végeztünk, A PCR csak a használt primereket illetően különbözött az első példában alkalmazott reakciótól, A förward primer szekvenciája: tctctstcatagggactctggaFugue / bf n Amp; Samples containing fragmented DNA isolated from paraffin-embedded formalin-fixed specimens were PCR amplified prior to fusion. The PCR differed only in the primers used in the first example. The sequence of the förward primer was tctctstcatagggactctgga

GCCATGGACCCCCACAC (SEQ ID NO: 23), a reverseGCCATGGACCCCCACAC (SEQ ID NO: 23), reverse

MO; 24) volt, A PCR eredményeként az alábbi 147 bp hosszú amplikon (SEQ ID NO:MO; 24), The PCR resulted in the following 147 bp amplicon (SEQ ID NO:

25) képződött (szürkén satírozva a forward primőrnek megfelelő és a reverse primerrel komplementer szekvenciák, aláhúzva; a forward spacer-mplekula templátspecifikus részének megfelelő és a reverse spaeer-mofekuia temptátspeclfikus ré20 szével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb EGFR 19-es exon mutációk által érintett helyek):25) formed (gray-shaded sequences corresponding to forward primer and complementary to reverse primer, underlined; sequences corresponding to the template-specific part of the forward spacer set and complementary to the reverse-spacer mofecia with the tail specific tail 20, black on white: 19 most significant EG) sites affected by exon mutations):

TCkteTGTCArtG^GGACTCTGGA3CGCAGAAGGTGAGAAAGTGAAAATTCGCGTCGCGATCg ^CGAGGGGAGTTTCTGGTTCkteTGTCArtG ^ GGACTCTGGA3CGCAGAAGGTGAGAAAGTGAAAATTCGCGTCGCGATCg ^ CGAGGGGAGTTTCTGGT

GAATTAAGAGAAGCAGAATTAAGAGAAGCA

GC T'GTGTGGGGGTCCATGGCCGC T'GTGTGGGGGTCCATGGCC

Spacer mp/ekp/ák· fuzíonáftatása: A spacer mateké leírt PCR reakciót alkalmaztuk a fúzió során génszakasza nem tartalmazott mutációt, az alá ve, az első pet flben a minta vizsgált EGER1 315 be hosszú fúziós termék (SEÖ ID NO: 28} keletkezett (szurkán satírozva a forward primernek megfelelő és a reverse primőrrel komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér dőlt betűkkel: azSpacer mp / ek / s · fusion transfer: The PCR reaction described for the spacer math was used during the fusion with no gene mutation, the first pet fl in the sample tested in the EGER1 315 long fusion product (SEE ID NO: 28} coded sequences corresponding to the forward primer and complementary to the reverse primer, in black italics with white italics:

M13F szekvenálő primernek megfelelő, illetve az MÓR prímemet komplementer szekvenciák, aláhúzva: a íorward spacer molekula templátspecífikus részének megfelelő és a reverse spacer molekula templátspecífikus részével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér normái betűkkel: a legjelentősebb EGFR mutációk által érintett helyek):Sequences corresponding to the M13F sequencing primer and to the MÓR primer complement, underlined: sequences corresponding to the template specific part of the spacer spacer molecule and complementary to the template specific part of the reverse spacer molecule, in black normal white: most affected by EGFR mutations.

ATT\A?tGTTGGGTAA.GGGC.AGGGÍ?T:r':rc:CCAGTr:AGGACG''ll^gSMMM^^R<S:-Gv,rATT \ A? TGTTGGGTAA.GGGC.AGGG Í ? T : r ': rc: CCAGTr: AGGACG''ll ^ gSMMM ^^ R <S: -Gv , r

TGTAATACÖACTCACTATAGGGCGAATTGGGCCCTCTAGTGGATCCCAGAAGGTGAGAAAGTTGTAATACÖACTCACTATAGGGCGAATTGGGCCCTCTAGTGGATCCCAGAAGGTGAGAAAGT

Oztcgatgtgagtttg^gctttggtcwtgggggtcattatttgccatccacgtgatatccOztcgatgtgagtttg ^ gctttggtcwtgggggtcattatttgccatccacgtgatatcc

CCT.ATAGTGAGTGGTATTACCT.ATAGTGAGTGGTATTA

AGCTCTGGCCGGTG'TCTCtkAAGCTCTGGCCGGTG'TCTCtkA

AATCTAATCT

A fez/ós termék szék verte,'ása: A szekvencia-analízis az 1. példában leirt módon tör10 paraffinba ágyazott íprmáltn fixált mintából Izolált, töredezett DNS-t tartalmazó Izolálom esetében sikeresen elvégeztük a szekvencia-vizsgálatot.Bead Protein Beat: Sequence Analysis Sequence Analysis of the Isolated Protein Fixed Sample from Paraffin Embedded in Paraffin as described in Example 1 was successfully performed.

.á£dááZzE?Gfekutek_c/öákdasa; A diagnosztikai reverse spacer-molekulát állítottunk aló, az első :t ts egy íorward es egy teírt módon, az alábbi módosításckkak Az OEP reakció során a forward spacer-molekulák esetében ez Mi3F primertőí 3’ irányba az EGFR génnel komplementer szakaszt és a restrikciós hasításhoz szükségesek további nukleotldokat az alábbi reverse príménél (SEQ ID NO: 27) illesztettük a pCR2,1 -TÖRŐ vektor-szekvenciához (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az EGER génrészlettel egyező szekvencia, dőlt betűvel: a vektor-szekvenciával komplementer szakasz):.a £ dááZzE Gfekutek_c / öákdasa?; The diagnostic reverse spacer molecule was set up first: t ts one or more forward and one described, with the following modifications During the OEP reaction, for forward spacer molecules, this is the 3 'complement to the EGFR gene and is required for restriction cleavage. additional nucleotides were inserted at the following reverse primer (SEQ ID NO: 27) into the vector sequence pCR2,1 (BOLD) (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, underlined: sequence identical to the EGER gene fragment, italic font: complementary to the vector sequence) ):

GAGGGGGCGCTGGGCAAAATGTGTGATCTTGACATGGC7AGAGGGCCCAA^mGC A reverse spacer-molekoiák esetében ehhez az alábbi reverse prímért (SEQ ID NO: 23) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az EGFR génrészlettel komplementer szakasz, dőlt betűvel: a pENTR/HI/Tö vektorrésszel egyező szekvencia):GAGGGGGCGCTGGGCAAAATGTGTGATCTTGACATGGC7AGAGGGCCCAA ^ mGC For reverse spacer molecules, the following reverse primer (SEQ ID NO: 23) was used (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, insertional / d) matching sequence):

CT^WGGATGCAGAAGGAGGCAAAGGTGGOTGGáGCGOAZAGCCCT ^ WGGATGCAGAAGGAGGCAAAGGTGGOTGGáGCGOAZAGCC

A forward spaoer-molekólák esetében a pOR2,1-TGFÖ vektor-szekvencia másik oldalára a restrikciós enzim hasítási hely kialakításához az alábbi forward prímért (SEQ IP NO: 23) használtuk (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, dőlt betűvel: a vektor-résszel egyező szekvencia):For forward spaoer molecules, the following forward primer (SEQ IP NO: 23) was used to construct the restriction enzyme cleavage site on the other side of the pOR2,1-TGF6 vector sequence (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, vector) sequence):

CTGCGGCCGCTGGCCAGCGATWiGTWGGAaACGCCTGCGGCCGCTGGCCAGCGATWiGTWGGAaACGC

A reverse spacer-molekulák esetében ehhez az alábbi forward prímért (SEQ· ID NO: 30) használtok (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, dőlt betűvel: a pENTR/H 1ZTO vektor-résszel komplementer szekvencia):For reverse spacer molecules, the following forward primer (SEQ ID NO: 30) was used (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, italic font: sequence complementary to vector pENTR / H1ZTO):

GATGGCCAGTGCAATGTZfeGAGCAGAGAGTTGGGATGGCCAGTGCAATGTZfeGAGCAGAGAGTTGG

A resínkeős hasításhoz a mindkét oldali spacer-molekola esetében az lüííeNi enzimet használtuk,For lattice cleavage, the lysylNi enzyme was used for both spacer molecules,

A restrikciós hasítást kővetően létrejött íorward spacer-molekula szekvenciája (SEO ID NO: 31) (131 bp, a szürkén satírozott rész a forward ampíifikálő prímernek megfelelő; rész, fekete alapon fehér betűkkel jelölt rész az M13F szekvenáió prímernek megfelelő szakasz, aláhúzott betűvel EGER gén egy részletével komplementer szekvencia):The sequence of the spacer spacer molecule following the restriction cleavage (SEO ID NO: 31) (131 bp, gray shaded part corresponding to forward amplifier primer; part, black part in white letters corresponding to M13F sequencing primer, underlined EGER gene) sequence complementary to one part):

CCAGrlCfeTmAAGTTGGGTJBvCGGGAGGGTmpTCCCAGTCAGGACG'TM^MgjMiM g5AATTGTAAT.AGGACTCACTATaGGGCGAA?TGGGCCGTCTAGGCATG7CAAGA7CACAGCCAGrlCfeTmAAGTTGGGTJBvCGGGAGGGTmpTCCCAGTCAGGACG'TM ^ MgjMiM g5AATTGTAAT.AGGACTCACTATaGGGCGAA? TGGGCCGTCTAGGCATG7CAAGA7CACAG

ATTT7GGA restrikciós hasítást követően létrejött reverse spacenmolekula szekvenciája (SEQSequence of reverse spacer molecule generated after restriction cleavage of ATTT7GGA (SEQ

ID NO: 32) (127 bp, a szűrkén satírozott rész; a reverse ampiíhkáló prímernek megfe22 lelő rész, fekete alapon fehér betűkkel; az M13R szekvenáló primőrnek megfelelő szakasz, aláhúzott betűvel; az EGFR gén egy részletével komplementer szekvencia);ID NO: 32) (127 bp, portion shaded on filter; corresponding to reverse amplifier primer, in black on white; section corresponding to M13R sequencing primer, underlined; sequence complementary to part of the EGFR gene);

CGAGI'GeAATGTAACATCAGiiiilliBiBeBiiOGBWGC'tGCiCGAGI'GeAATGTAACATCAGiiiilliBiBeBiiOGBWGC'tGCi

HA Lóvkcíivi OAű. λ Al Α\-^ίρΛ>ΑÍ7*i-á CAGk- A i-Π AskA- λΛ.Λ.. j. 1-u A ksVMHA Lóvkcíivi OAû. λ Al Α \ - ^ ίρΛ> ΑÍ7 * i-á CAGk- A i-Π AskA- λΛ.Λ .. j. 1-u A ksVM

A O\.őOh

Fúz/óf megelőző PCR emplifÍkááó: A paraffinba ágyazott formalin-ílxált mintából izolált, töredezett DNS-t tartalmazó mintákon, a fúziót megelőzően PCR amplifikációt végeztünk, A PCR csak a használt primereket illetően különbözött az első példában alkalmazott reakciótól. A forward primer szekvenciája: gaaaacaccgcaggatgtg (SEC ID NO: 33), a reverse primer szekvenciája: aaaggcacctccttactttgc (SEC ID no, 34) volt. A PCR eredményeként az alábbi 107 bp hosszó amplikon (SEQ ID NG: 35) képződött (szürkén satírozva a forward primőrnek megfelelő és a reverse primerrel komplementer szekvenciák, aláhúzva: a forward spacor-molekula eeiílkus részének megfelelő és a reverse spaoer- molekula tátspeciflkus részével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér betűkkel;Fusion / hr pre-PCR PCR amplification: Samples containing fragmented DNA isolated from paraffin-embedded formalin-fixed sample were pre-PCR amplified, except that the PCR used was different from the one used in the first example. The forward primer had the sequence gaaaacaccgcaggatgtg (SEC ID NO: 33) and the reverse primer had the sequence aaaggcacctccttactttgc (SEC ID no, 34). The PCR resulted in the following 107 bp amplicon (SEQ ID NG: 35) (gray shaded sequences corresponding to the forward primer and complementary to the reverse primer, underlined: corresponding to the forward part of the forward spacer molecule and complementary to the feed specific part of the reverse sequences with white letters on a black background;

a legjelentősebb EGFR 21-es exonban lévő mutációk helyei);sites of major mutations in EGFR exon 21);

gaaaacagcggagcatgtcaagai'cacagattttgggcBggcca.aacígctgggtgcggaag ΑΟΑΑΑαΑΑΤΑΰ€ΑΤ00ΑδΑ^0^^ΒβίΒΐΙΙΙΙβ|||βΙgaaaacagcggagcatgtcaagai'cacagattttgggcBggcca.aacígctgggtgcggaag ΑΟΑΑΑαΑΑΤΑΰ € ΑΤ00ΑδΑ ^ 0 ^^ ΒβίΒΐΙΙΙΙβ ||| βΙ

Oafása; A spaeer-molékulákst kicserélve, az első példában leirt PCR reakciót alkalmaztuk a fúzió során. Amennyiben a minta vizsgáit EGFRgénszakasza nem tartalmazott mutációt, az alábbi 288 bp hosszú fúziós termék (SEQ ID NG: 26) keletkezett (szürkén satírozva a forward primernek megfelelő és a reverse primerrel komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér dőlt betűkkel; az M13F szekvenáló primernek megfelelő, illetve az M13R primőrrel komplementer szekvenciák, aláhúzva: a forward: spacer molekula tempfátspeciflkus részének megfelelő és a. reverse spacer-molektra templáfspeeifikus részével komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér normál betűkkel: a legjelentősebb EGFR mutációk által érintett helyek):Oafása; By replacing the spaeer molluscs, the PCR reaction described in Example 1 was used during the fusion. If the EGFR gene section of the sample did not contain a mutation, the following 288 bp long fusion product (SEQ ID NG: 26) was generated (gray shaded sequences corresponding to forward primer and complementary to reverse primer, black italics, M13F sequencing primer, sequences complementary to the M13R primer, underlined: corresponding to the template specific part of the forward: spacer molecule and complementary to the template specific part of the reverse spacer-molecule, black normal white: sites affected by the major EGFR mutations):

ATTáUkGTTGCklTAACGGCAG^TTTTGCCAGTCAGGA.C^^rg^M^ggr^MlíSARTATTáUkGTTGCklTAACGGCAG TTTTGCCAGTCAGGA.C ^ ^^ ^ rg ^ M ^ GGR MlíSART

GGTAATACGAGTGACTATAGGGGGAAPGGGGGGCTCTAGGCAmGTCAAGATCACAGATTTTGGGTAATACGAGTGACTATAGGGGGAAPGGGGGGCTCTAGGCAmGTCAAGATCACAGATTTTG

GQCSgGCCAAACSgCTGGGTGCGGAAGAGAAAGAATACCATGCAGAAGGAGGCAAA.GTTGCC'GQCSgGCCAAACSgCTGGGTGCGGAAGAGAAAGAATACCATGCAGAAGGAGGCAAA.GTTGCC '

ATCCAGCTGATATCCCCTATAGTGAGTCGTATTAC ATCCAGCTGATATCCCCTATAGTGAGTCGTATTAC

3CAGCTC3CAGCTC

TÖGCCCGTGTC7CA?^ATCTTÖGCCCGTGTC7CA? ^ ATCT

A álz/os termék szekvená/ása: A szekvencia-analízis az 1, példában leírt módon történ f.Sequencing of False Product: Sequence analysis was performed as described in Example 1 f.

paraffinba ágyazott formaíin fixált mintából Izolált, töredezett DNS-t tartalmazó izolálom esetében sikeresen elvégeztük a szekvencia-vizsgálatot.sequence isolation from paraffin-embedded formalin-fixed sample We successfully performed the sequence analysis.

A Hl Nt influenza gyógyszerhafásf befolyásoló génréglóínák vizsgálatának megtervezésekor az 1977-től 2005-ig előforduló H1N1 influenza vírusok génszekvenciáiból Indultunk ki. Az, így beállított assay az 1977401 2008-lg előforduló összes Influenza detektálására képes. Míg az első 3 példa esetben mindkét oldalról spaoer-t fuzionálfaliunk az am pl ikonokhoz (így ezekre a rendszerekre érvényes az 1, ábra), az influenza neuramlnídáz génjének vizsgálata során ez: csak az egyik oldalról történt még (ezt a 4. ábra szemlélteti). A másik oldalon overlap fúziót végeztünk a 2 neuramlnídáz génrégiö között átfedő szekvenciákkal, melyeket a másik régióba túlnyúló prímerekkel hoztunk létre, még a fúziót megelőző PCR ampliflkálás során.When designing the study of influenza H1 Nt influenza gene mutations, we started from the gene sequences of H1N1 influenza viruses from 1977 to 2005. The assay configured in this way is capable of detecting all Influenza occurring from 1977401 to 2008. While in the first 3 examples we have fused a spaoer from both sides to the am pl icons (thus applies to these systems in Figure 1), in the study of the influenza neuraminidase gene: only one side (illustrated in Figure 4). . On the other side, an overlap fusion was performed with the overlapping sequences between the 2 neuraminylidase gene regions, which were generated with primers extending to the other region, even during the pre-fusion PCR amplification.

A spaeer molekula előállítása: A diagnosztikai rendszerhez itt egy forward spaeer molekulát állítottunk elő, az első példában leírt módon, az alábbi módosításokkal. Az ÖEP reakció során az M13F primerfől 3S Irányba az NA génnel komplementer szakaszt és a restrikciós hasításhoz szükségesek további nukleotidokat az alábbi reverse primerrel (SEQ ID NO:37) illesztettük a pCR2,1-TOPÖ vektor-szekvenciához (szürkén satírozva: a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az NA génrészlettel egyező szekvencia, dőlt betűkkel: a vektor-szekvenciával komplementer szakasz); GATTTAAAAACATCTCCTTTGGAGCC CTAGAGGGCCCAA TTGGGPreparation of the Spaeer Molecule: A forward spaeer molecule was prepared for the diagnostic system, as described in the first example, with the following modifications. During the OEP reaction, the 3 S- direction complementary to the NA gene and additional nucleotides for restriction cleavage were inserted with the following reverse primer (SEQ ID NO: 37) into the vector sequence pCR2,1-TOP0 (gray shaded: restriction enzyme). cleavage site, underlined: sequence corresponding to the NA gene fragment, italics: complementary to vector sequence); GATTTAAAAACATCTCCTTTGGAGCC CTAGAGGGCCCAA TTGGG

A pCR2,1-TOPO vektor-szekvencia másik oldalára a restrikciós enzim hasítási hely kialakításához az alábbi forward prímed (SEQ ID NO;38) használtuk (szürkén sati'~ rozva: a restrikciós enzim hasáé helye, dőlt betűkkel: a vektor-résszel egyező szekvencia);On the other side of the vector sequence pCR2,1-TOPO, the following forward primer (SEQ ID NO; 38) was used to construct the restriction enzyme cleavage site (gray shaded: restriction enzyme cleavage site, italic font) sequence);

CATTTAAAGCÖA/J’Z’AAGTTGGGr.AACűCCATTTAAAGCÖA / J'Z'AAGTTGGGr.AACűC

A restrikciós hasításhoz a Orsi enzimet használtük, A gél-izolálás során a -6//g (4 weil) spacer molekulát egyedül gyűjtöttük be az 1 ml vizes oldatba.For restriction digestion, the enzyme Orsi was used. During gel isolation, the -6 µg (4 weil) spacer molecule was collected alone in 1 ml of aqueous solution.

A restrikciós hasítást követően létrejött spacer molekula szekvenciája (SEG ID NO: 39) (128 bp, a szürkén satírozott rész a torward ampllfikáló primernek megfelelő rész, fekete alapon fehér betűkkel jelölt rész az M13F szekvenáló primernek megfelelő szakasz, aláhúzva az HA gén egy részletével komplementer szekvencia): .Vfo.GCGATTAAGTTOÖGTAlkCGCCAGGSTTTTCCCzSGTC/SC.GACGT^illlllllg^g IjGAATTGTAATACGÁeTeACTATAGGGCGAATTGGGGeCTCTAGGGCTCeAAAGGAGATGTThe sequence of the spacer molecule generated after restriction cleavage (SEG ID NO: 39) (128 bp, gray shaded part corresponding to torward amplification primer, black part on white) corresponding to M13F sequencing primer, underlining one part of the HA gene sequence): .Vfo.GCGATTAAGTTOÖGTAlkCGCCAGGSTTTTCCCzSGTC / SC.GACGT ^ illlllllg ^ g IjGAATTGTAATACGÁeTeACTATAGGGCGAATTGGGGeCTCTAGGGCTCeAAAGGAGATGT

Fúziót mepe/ező PCR amp^káefó; Áz RNS izolálását követően, RT-PCR-t alkalmaztunk. A Gíagen cég GneStep RT-PCR Klt-jét használva, a reakció-oldat 1 x-es koncentrációjú puffért, egyenként 400 /ΛΊ dNTP-t, ö,Q4/Ayu! enzim mixel, 0,6-0,6 /Al forward és reverse prímért, 0,1 U/pi RHasin Píus RNAse lnhibíiorf-1 (Promega) tartalmazod. Az RT-PCR az alábbi eíktosokaf tartalmazta:Fusion mapping / pre-PCR amp; After isolation of the RNA, RT-PCR was used. Using GneStep RT-PCR Klt from Gíagen, the reaction solution was a 1x buffer at 400 µg dNTP each,,, Q4 / Ayu! enzyme mix, 0.6-0.6 / Al forward and reverse primer, 0.1 U / µl RHasin Plus RNAse Inhibitory-1 (Promega). RT-PCR contained the following eictosokaf:

1, ciklusúi x) 2. clklus;(1 x) 1, cycles x) Clklus 2 (1x) 1, lépés 1st step Ső'C 30p Oömp 9SöClSpÖÖmpS ? C 30p? 9?? Cl ? 3. clklus;(40x) Clk 3; (40x) 1, lépés 1st step 94°C Op 3ömp 94 ° C Op 3mp 2. lépés Step 2 56°C Op 30mp 56 ° C Op 30mp 3. lépés Step 3 ?4C Op 45mp ? 4C Op 45mp 4. ciklusúi x) Cycle 4 x) 1, lépés 1st step ?2°C top Oömp 2 ° C top Oömp 5. ciklusúi x) Cycle 5 x) ί 5 > ί 5> 4cC * 4c C *

Az NA gén két régióját külön reakcióban amplífikáltuk. Az első génrégró areplífikáelőja során az alábbi primereket használtuk:The two regions of the NA gene were amplified in a separate reaction. The following primers were used in the areplaphysis precursor of the first gene repair:

ard: AAGACAACAGCATAAGAATGGGGTGe (SEG IG NO Reverse (vastag dőlt betűvel: a másik gén régióval kompi CTATTSATTTGGiAGCTTGACCTAGAGGACASCTCAtTA (SEG emeuter rész): tO NO: 41) ,vardard: AAGACAACAGCATAAGAATGGGGTGe (SEG IG NO Reverse (in bold italics: the other gene region is CTATTSATTTGGiAGCTTGACCTAGAGGACASCTCAtTA (SEG emeuter part): tO NO: 41), vard

A második génrégió amplifikáeiöja során használt primerek:Primers used for amplification of the second gene region:

lóit betűvel: az első génréglöval komplementer HAATCAATAGAGT-TGAATCCACCCAAT (SEG IO ; GGATTGTCACCGAACACTCGACT (SEG ÍD NOLetter: HAATCAATAGAGT-TGAATCCACCCAAT (SEG IO; GGATTGTCACCGAACACTCGACT (SEG ID NO

Ας első génrégfő amplifikációjának eredményeként azAs a result of the amplification of gς's first genus prime

Bkon (SEQ ID NO: 44) képződött (a Solomon lsSands/3/2006 vírus >~et élő es a reverse pnvé ve; szürkén satírozva a merre! komplementer szekvenciák,, vastag dőlt betűvel: a lementer rész aláhúzva: a spacer molekula tempiátspeciíikus részének megfelelő szekvenciák, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb neuraminidáz-gáifókkai szembeni rezisztenciát okozó mutációk helyei):Bkon (SEQ ID NO: 44) was formed (Solomon lsands / 3/2006 virus > live and reverse pseudon; gray shaded by the complementary sequences, bold italics: underlining the spacer molecule) sequences corresponding to that of the most important mutations causing resistance to the neuraminidase blockade):

AAGACÁACAGCATAAgMTT^TCCAAAGGAGATGTTTTTGTCATAAGTlS^iCCTTTCA'rA^ ^ AAGACÁACAGCATAAgMTT TCCAAAGGAGATGTTTTTGTCATAAGTlS iCCTTTCA'rA

TCATGTTCTCACTTGGAATGCAGAACCTTTTTTCTGACCCAAGGTGCTCTATTÁAATGACAA.TCATGTTCTCACTTGGAATGCAGAACCTTTTTTCTGACCCAAGGTGCTCTATTÁAATGACAA.

ACvVimCAAATGGGACCGS’AAAr^^^gAGTCCIGGVrAGGACCTTAATGAGCTGTCCTCTAG^^^ ACvVimCAAATGGGACCGS'AAAr gAGTCCIGGVrAGGACCTTAATGAGCTGTCCTCTAG

GGGAJáGCTCCAAATCA&TAGTAG & GGGAJáGCTCCAAATCA

A második génrégió ampíííikációjának eredményeként az alábbi 196 bp bosszú ampllkon (SEQ ID NO: 45} képződött (a Solomon ls!and$/3/20Öő vírus PN-S-ét templátként véve; szürkén satírozva a forward primernek megfelelő és a reverse prímeméi k lementer szekvenciák, vastag dőlt betűvel: a másik génrégióval komplementer rész, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb neuramlnldáz-gátlókkal szembeni rezisztenciát okozó mutációk helyei):Amplification of the second gene region resulted in the following 196 bp revenge amplicon (SEQ ID NO: 45} (taken from the PN-S of Solomon ls! And $ / 3/2000) as a template; gray-shaded for forward primer and reverse primer. lementer sequences, bold italics: complementary to the other gene region, in black letters on a black background: sites of mutations responsible for the most important neuraminidase inhibitors):

^TGAA^CTCeAíáAOCAATAGAGTGGAATGCkX’CCAATTTT^gTATGAGGAATGTS’CCTG'rTGAA ^ ^ ^ CTCeAíáAOCAATAGAGTGGAATGCkX'CCAATTTT gTATGAGGAATGTS'CCTG'r

TACCCAGACACTGGCACAGTGATGTGTGTATGCSjKBGMjSSfeGGCATGGTTCA&ATCGACCTACCCAGACACTGGCACAGTGATGTGTGTATGCSjKBGMjSSfeGGCATGGTTCA & ATCGACC

T?GGGTGT€T?TT;<aTG.AAAAC?TGGAT:IATCAAATAGGATACATCTGCAG'TGGAGTOTGGT? GGGTGT € T? TT; <aTG.AAAAC? TGGAT : IATCAAATAGGATACATCTGCAG'TGGAGTOTGG

GTGZvCAATGCGTGZvCAATGC

Spacer mo/eáu/e és a két pénréq/ó amp&kon/ámak (nzfoná/fafeha; A fúziót megvalósító PCR-oldát AccuPrime Tag HIFI DNS polimerázt (Invitrogen, 0,02 U/pl), Ix-es ί-es AccuPrime PCR puffért és 0,4 pM koncentrációjú forward prímért (SEQ ID NO: 46) (ATTAAGTTGGGTAACGCCAGGGTTT) és reverse prímért (SEQ ID NO: 47) (cactccactgcagatgtatcctattt) tartalmazott, A térfogat egyik ötödét az. egyik génréglo ampiíkonjaít, egy másik ötödét a másik génréglo ampiíkonjaít tartalmazó PCR oldat fÖÖx-os hígítása, a harmadik ötödét pedig: a spacer molekulák gélizofátema adta. A Solomon lsNnds/3/2006 vírus RNS-ét templátként véve, amennyiben a minta nem tartalmazott Nl-rezisztencia mutációt, az alábbi 448 bp hosszú fúziós termék (SEQ ID NQ: 48) keletkezett (szürkén satírozva: a forward primőrnek megfelelő és a reverse pumerrel komplementer szekvenciák, fekete alapon fehér dőlt betűkkel: az M13F szekvenáiő primernek megfelelő szekvencia, aláhúzva; a forward spacer molekula tempfátspecifikus részének megfelelő szekvencia, fekete alapon fehér normál betűkkel: a legjelentősebb neuramínidáz-gáflókkal szembeni rezisztenciát okozo mutációk helyéi):Spacer mo / euu / e and two coin ampoules (nzfona / wooda; fusion PCR solution AccuPrime Tag HIFI DNA Polymerase (Invitrogen, 0.02 U / pl), Ix ß AccuPrime PCR buffer and 0.4 pM forward primer (SEQ ID NO: 46) (ATTAAGTTGGGTAACGCCAGGGTTT) and reverse primer (SEQ ID NO: 47) (cactccactgcagatgtatcctattt). f0X dilution of the PCR solution containing the amphiponite, and the third one was given by the gel isophathase of the spacer molecules, using the 448 bp long fusion of Solomon lsNnds / 3/2006 as template if the sample did not contain the N1 resistance mutation. product (SEQ ID NQ: 48) generated (gray shaded: sequences corresponding to the forward primer and complementary to the reverse pumerus, in black with white italics: corresponding to the M13F sequencing primer) , underlined; sequence corresponding to the template specific part of the forward spacer molecule, black normal white on white: locations of mutations causing major resistance to neuraminidase blockers):

ATT^C^C^TAACvXOTGSOTTTCCCAGCCACGAC'ÍTHBBBBIHHBB0^'ATT ^ C ^ C ^ TAACvXOTGSOTTTCCCAGCCACGAC'ÍTHBBBBIHHBB 0 ^ '

TGTxAATACGAC:rCACTATAGGGCGAATfPGG!GCCCTCG'AGGGCTCGAA,AGGAGATG,TT7T7G7 cataaga!TGTxAATACGAC : rCACTATAGGGCGAAT f PGG ! GCCCTCG'AGGGCTCGAA, AGGAGATG , TT7T7G7 cataaga!

gCCTTTCATATCATGTTCTCACTTGGAATGCAGAACeWTTTTCTGACCCAAG GTGGTgTATTAAATGACAAAGAT7GAAATGGGACCG:rASAGgMÍfe.GTCCTTATAGGACC TTAATGAGCTÖTGCGCTAGGTGAAGCTCCAAATCAATAGAGTTGAATGCAGGCAATTTT TATGAG(SAATgTTCCTGTTACCCAGACAC?GGCACAGTCATGTGTGTATGcMbA<^BSTG GCATGGTTC,4AATCGACCTTGGGTG7C?TTTAATC;G7GN?TTGGAT7ATCAAATAGGATAGAgCCTTTCATATCATGTTCTCACTTGGAATGCAGAACeWTTTTCTGACCCAAG GTGGTgTATTAAATGACAAAGAT7GAAATGGGACCG: rASAGgMÍfe.GTCCTTATAGGACC TTAATGAGCTÖTGCGCTAGGTGAAGCTCCAAATCAATAGAGTTGAATGCAGGCAATTTT TATGAG (SAATgTTCCTGTTACCCAGACAC GGCACAGTCATGTGTGTATGcMbA <^ BSTG GCATGGTTC, 4AATCGACCTTGGGTG7C TTTAATC; G7GN TTGGAT7ATCAAATAGGATAGA???

Λ X, i. Wk-itw ~ b-JÍ-iW i Ό .4 fuz/ós termek szekvená/ása: A íerward irányú terminálé reakciót az M13F primerrel. míg a reverse irányút a termék fúziója során használt reverse primőrrel végeziΛ X, i. Sequencing of Wk-itw ~ b-JI-iWi 4 .4 Fuser: The forward directional reaction with the M13F primer. while the reverse directs with the reverse primer used in product fusion

-analízis egyéb kondíciói megegyeztek az 1. példában leírThe other conditions of the assay were the same as those described in Example 1

A szekvencia-vizsgálat működésének hatékonyságát 4 influenzavírust tartalmazó mintán ellenőriztük: 2 köpetet vizsgáltunk (nomenklatúránk szerint; ATI és AT minta), amelyeket 2008 elején vételeztünk 2, az akkori (a 2000-os salamon-szlgeteki vírus-variáns által okozott) influenzajárványban fertőződött betegből, A 3, és a 4 minta az Omninvest cég által előállított, Fiúval AB és Fiúval P injekció, amely embriónál tyúktojáson eiszaporított három, illetve egy influenzatörzs tisztított és koncentrált, formaldehiddel inaktivált, aluminiumfoszfát gélhez, adszorbeált szuszpenziója. A Fiúval AB egy 2007-es H1N1-es (A/Brisbane/59/2007), egy 2007-es H3N2~es {A/Uruguay/716/2007) és egy 2008-as tnfuenza 8 törzset tartalmaz, A Fiúval P egy új típusú Hl NI influenza A vírust (A/Csíifornia/7/2QÖ9) tartalmaz.The effectiveness of the sequence test was tested on 4 samples of influenza viruses: 2 sputum samples (according to nomenclature; ATI and AT samples) were taken from 2 patients infected with the influenza pandemic (caused by the Salmon-Slgetek virus variant in 2000) Specimens 3 and 4 are an injection of Son AB and Son P from Omninvest, which is an adsorbed suspension of three strains of an embryo grown on a hen's egg and one purified and concentrated strain of influenza inactivated on formaldehyde aluminum phosphate gel. The Son AB has a 2007 H1N1 (A / Brisbane / 59/2007), a 2007 H3N2 {A / Uruguay / 716/2007) and a 2008 tnfuenza containing 8 strains, the Son P has one contains a new type of HIV NI influenza A virus (A / Chifornia / 7 / 2Q9).

Míg a 2009~es influenza esetében a fúziót megelőző RT-PCR sikertelen volt, mindhárom 2008-Pan vagy azelőtt Izolált H1N1 vírust tartalmazó minta esetében hatékonyan működött (5. ábra). Mindhárom esetben a fúzió is sikeresen lezajlott. A Fiúval AB-s minta esetében a fuzionált génszakaszok szekvenciája teljes mértékben megegyezett - az NCBI adatbázisból letöltött - A/Brisbane/59/200? neuramlnidáz génjének megfelelő génrégióinak bázissorrendjével. Az ÁTL és az AT minta esetében nagy volt - szintén az NCBI adatbázisból letöltött - az AZSolomon lslands/3/2006 neuraminidáz génjével a homológla, csak néhány nukleotidnyi eltérést tapasztaltunk.While pre-fusion RT-PCR was unsuccessful for influenza 2009, all three specimens containing H1N1 virus on or before 2008 (Figure 5). In all three cases, the merger was successfully completed. In the AB sample with the Boy, the sequence of the fused gene sequences was identical - downloaded from NCBI database - A / Brisbane / 59/200? base sequence of the corresponding gene regions of the neuraminylnidase gene. In the ATL and AT samples, there was only a few nucleotide differences in the homology with the neuraminidase gene of AZSolomon lslands / 3/2006, also downloaded from the NCBI database.

amely nem érintették a neuraminidáz gáttó (Ni) rezisztencávaí összefüg;e hozott hotwhich has not been associated with resistance to the neuraminidase inhibitor (Ni);

A 2009-ben megjelent új típusú H1N1 Influenza 337 variánsának neuraminidáz génjét megvizsgálva a korábbi variánsoktól nagyfoké eltérést tapasztaltunk, Ezért a 337 génszekvenciát felhasználva az új típusú H1N1 influenza kimutatására optimalizált assayt terveztünk, amely csak a primerekben és a spacer templátspecifikus részeiben tartalmaz néhány nukleotidnyi eltérést az előbbi példában leírt vizsgálathoz képest.Examining the neuraminidase gene of the 337 variant of the new H1N1 Influenza, released in 2009, we found a major difference from the earlier variants. Therefore, using the 337 gene sequence, we designed an assay compared to the assay described in the previous example.

A spacer mo/eku/a e/őá/tításs: Az ÖEP reakció során az M13F primertől 3’ irányba az NA génnel komplementer szakaszt és a restrikciós hasításhoz szükséges további nukleotidokat az alábbi reverse primerre! (SEQ ID NO: 49) Illesztettük a pCR2.1TOPO vektor-szekvenciához (szürkén; satírozva; a restrikciós enzim hasító helye, aláhúzva: az NA génrészfettei: egyező szekvencia, dóit betűvel: a vektorszekvenciával komplementer szakasz);Spacer Moisture / Transformation: During the OEP reaction, the 3 'complement of the M13F primer is complementary to the NA gene and additional nucleotides for restriction cleavage to the reverse primer below! (SEQ ID NO: 49) Aligned to vector sequence pCR2.1TOPO (gray; shaded; restriction enzyme cleavage site, underlined: NA gene fragments: identical sequence, dotted: complementary to vector sequence);

GATtb.VGKCACATGCOCCl ZuGAACCC'rA<?AGG?CCC.-t-dTeJC Iára aGATtb.VGKCACATGCOCCl ZuGAACCC'rA <? AGG? CCC.-t-dTeJC Iára a

A pCR2,t-TOPO vektor-szekvencia másik oldalara a restrikciós enzim kialakításához használt primer, Illetve a spacer molekula előállításának sel megegyeztek a 4. példában leírtakkalThe other side of the pCR2, t-TOPO vector sequence was the same as described in Example 4 for the construction of the restriction enzyme primer or spacer molecule.

A restrikciós hasítást kővetően létrejött spacer molekula szekvenciája (SEQ ID 50) (128 bp, a szürkén satírozott rész a forward ampllfikálő primőrnek megfelelő rész, fekete alapon fehér betűkkel jelölt rész az M13F szekvenáló primernek megfelelő szakasz, aláhúzott betűkkel sz NA gén egy részletévei komplementer szekvenAAA,GCG.A7iódkdTTr?CkW.AS<GGCCAGGGTTTTGCCAGTCAC<.AAC:GÍr|eiili^Heil ||GAAT7G:TAATAGGAC4'GACTATAGGGCGAA7TGGGGCeTGTAGGGTTCMAAGGíXíGATGTThe sequence of the spacer molecule following the restriction cleavage (SEQ ID 50) (128 bp, gray shaded part corresponding to the forward amplification primer, section in black on white, corresponding to the M13F sequencing primer, underlined in detail of the NA gene) , GCG.A7iódkdTTr? CkW.AS <GGCCAGGGTTTTGCCAGTCAC <.AAC: G Í r | eiili ^ Heil || GAAT7G: TAATAGGAC4'GACTATAGGGCGAA7TGGGGCeTGTAGGGTTCMAAGGíXíGATGT

GTTTGTTT

Foz/ót mepe/őző RCR amp/iékáoló: Az RNS izoiátumon végzett RT-PCR csak a használt primereket illetően különbözött az első példában alkalmazott reakcióktólFold / RCR Amplifier: RT-PCR on the RNA isolate differed only in the primers used in the first example.

Áz első génrégió ampllfíkáeioja sörén az alábbi primereket használtuk;The following primers were used in the amplification region of the first gene region;

Forwaró: AAAGACAACÁGGATAÁGAATCGGTTCCÁ (SEQ © NO: 51}Forwaró: AAAGACACAGAGAGAGAGAATCGGTTCCA (SEQ © NO: 51}

Reverse (vastag dőlt betűvel: a másik génrégióval komplementer rész);Reverse (in bold italics: the complement to the other gene region);

ÍGAA.CTTCA.CCAATAGGACAGCTCATTA (SEQ IQ NíÍGAA.CTTCA.CCAATAGGACAGCTCATTA (SEQ IQ Ni

A második génrégió ampiif ikáciőja során használt primerek·, forward (vastag dóit betűvel: az első gén régióval komplementer rész):Primers used in the amplification of the second gene region ·, forward (bold dot: part complementary to the first gene region):

GkSZ^AASTTCCAAATCAGTCGAAATGAATGGGCCGksz ^ AASTTCCAAATCAGTCGAAATGAATGGGCC

Reverse: ggattgtctccgaaaatgcCzXCT (SEQ ID NO: 54)Reverse: ggattgtctccgaaaatgcCzXCT (SEQ ID NO: 54)

Az első génrégió ampilílkgelőjának eredményeként az alábbi 207 bp hosszú amplikon (SEQ ID NQ: 55) képződéit (a Cahfornía/07/2009 vaus RNS-ét templátkénf véve: szürkén satírozva a forward primőrnek megfelelő és a reverse primerrei komplementer szekvenciák, vastag dőlt betűvel: a másik génrégíóval komplementer rész, aláhúzva: a spacer molekula templátspecifikus részének megfelelő szekvenciák, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb neuramínidáz-gátlőkkal szomneni rezisztenciát okozó mutációk helyei):As a result of the first gene region amphiphilic generator, the following 207 bp long amplicon (SEQ ID NQ: 55) was obtained (Cahfornia / 07/2009 vaus RNA as template): gray-shaded forward primer and reverse primer complementary sequences, bold italics complementary to the other gene region, underlined: sequences corresponding to the template-specific part of the spacer molecule, in black on white: locations of mutations that confer resistance to the major neuraminidase inhibitors):

AAAGAC2>ACAGfrGTAAGAATCGGT7GCAAGGGGŰATG?GT7?GTCA?AAGCgiCCA?TCA?AAAGAC2> ACAG f rGTAAGAATCGGT7GCAAGGGGŰATG? GT7? GTCA? AAGCgiCCA? TCA?

ATCATGGTCGCCCTTGíSAATGCAGAACCTTCTTCTTGACGGAAGGGGCCTTGCTAAATGACÁATCATGGTCGCCCTTGíSAATGCAGAACCTTCTTCTTGACGGAAGGGGCCTTGCTAAATGACÁ

AACATT-CCtoVrGGAAGCATTAAA^^WlAGCCCATATCGAAGCCTAATGAGCZGTGCTATTAACATT-CCtoVrGGAAGCATTAAA ^^ WlAGCCCATATCGAAGCCTAATGAGCZGTGCTATT

A második génréglc amplitlkáciojának eredményeként az alábbi 196 bp hosszú amplikon (SEQ ID NQ; 55) képződött (a Calífornia/07/2009 vírus RNS-ét fempláfként véve; szürkén satírozva a forward primőrnek megfelelő és a reverse primerrei komplementer szekvenciák, vastag dőlt betűvel: a másik génrégióval komplementer rész, fekete alapon fehér betűkkel: a legjelentősebb neuramínidáz-gátlókkal szembeni rezisztenciát okozó mutációk helyei):As a result of amplification of the second gene reticulum, the following 196 bp amplicon (SEQ ID NQ; 55) was generated (taken as template from Califnia / 07/2009 virus; gray shaded with forward primer and reverse primer complementary sequences in bold italics): complementary to the other gene region, in black on white: locations of mutations responsible for the major neuraminidase inhibitors):

rWdAArgTTCgAAATCAGTGGAAAGGAATCmCGCTAATTAllMTAZGAGGAATGCTGCGGTrWdAArgTTCgAAATCAGTGGAAAGGAATCmCGCTAATTAllMTAZGAGGAATGCTGCGGT

T%rCCTGATTGTAGTGAAATCACA?G?GTGTGC^feA4^STGGCATGGCGGGAATGGAGCRCCTGATTGTAGTGAAATCACA% T? G? ^ GTGTGC feA4 ^ STGGCATGGCGGGAATGGAGC

GTGGGTGTeTTrGAACGAGAATCGGGAATAGGAGATAGGATAGATATGClI^^lllllli^^ GTGGGTGTeTTrGAACGAGAATCGGGAATAGGAGATAGGATAGATATGClI lllllli

ŰAGACAATCC mo/e.k,o7a és érnépté ampBon/á/oak fbztenaitetasa; A fúziót megvalósító PCR csak a reverse prímért (aatgcgactgcagatgtatgctatcg) (SEQ ID NO:ŰAGACAATCC mo / e.k, o7a and fbztenaitetas ampBon / á / oak; Fusion PCR only for reverse primer (aatgcgactgcagatgtatgctatcg) (SEQ ID NO:

57) illetően különbözött az 4. példában használttól. A Californía/07/2003 vírus RNSét templátkénf véve, amennyiben a minta nem tartalmazott NI-rezisztencia mutációt, az alábbi 448 bp hosszú fúziós termék (SEQ ID NO: 58) keletkezeti (szürkén satírozva: a forward primőrnek megfelelő és a reverse primerrei komplementer szekvencl.57) was different from that used in Example 4. Taking the RNA of California / 07/2003 as a template, if the sample did not contain an NI resistance mutation, the following 448 bp long fusion product (SEQ ID NO: 58) is generated (gray shaded: forward primer and reverse primer complementary sequence) .

fekete alapon fehér dőlt betűkkel: az M13F szekvenáló primőrnek megfelelő szekvencia, aláhúzva: a fc-rward spacer molekula femplátspeclfikus részének megfelelő szekvencia, fekete alapon fehér normál betűkkel: a legjelentősebb neuramlnidázgátlókkai szembeni rezisztenciát okozó mutációk helyei):black italics: sequence corresponding to the M13F sequencing primer, underlined: sequence corresponding to the template specific portion of the fc-rward spacer molecule, black normal white: sites of major mutations conferring resistance to neuraminidase inhibitors):

TGTAATrXCŰACTCACTATAGGGCöAATTGGGCCCTCTAGGGTTCCAAaSGGGATGTGTTrGT CATAACTGTAATrXCŰACTCACTATAGGGCöAATTGGGCCCTCTAGGGTTCCAAaSGGGATGTGTTrGT CATAAC

ΟθηθΟΤΤΟΟ!ΓΑΆΑΤ(;ΑΓΑΆΑΟΑ?ΤΖΟΑΆ?η··;ΑΑ<·Λ::ΑΤΤΑΆΑ»^^ΆΟΓΟΓ:ΑΊ7·ητ:ΟΑΆ€0ΟθηθΟΤΤΟΟ ! ΓΑΆΑΤ (; ΑΓΑΆΑΟΑ ΤΖΟΑΆ η ··; ΑΑ <· Λ :: ΑΤΤΑΆΑ »ΆΟΓΟΓ ^^:? ΑΊ7 · ητ: ΟΑΆ € 0

GTAA7GAGCTGTGCGA7TGGTGAAG7C'eCAAATC:AGTCGAAATGAATGCCCGTAATTAT|||:GTAA7GAGCTGTGCGA7TGGTGAAG7C'eCAAATC: AGTCGAAATGAATGCCCGTAATTAT |||:

GArGAGGAATGCTCCTG?TATGCTGA?TGTAGGC:AA?G;CACATGTGTGTGC^feAG^^TGGArGAGGAATGCTCCTG? TATGCTGA? TGTAGGC: AA? G ; ^ ^^ CACATGTGTGTGC FEAGA TG

GCATGGCTGGAATCGAGCGTGGGTGTGTTTCAACICHWZGkTCTGGAATATCAGATAGGATACAGCATGGCTGGAATCGAGCGTGGGTGTGTTTCAACICHWZGkTCTGGAATATCAGATAGGATACA

TATGCAG'XSGGGATT .A fuz/os rermék szekveoá/ása: A forward irányú termináló reakciót az M13F primerrel, míg a reverse irányút a termék felőle során használt reverse primerrel végeztük. A szekvencia-analízis egyéb kondíciói megegyeztek az 1. példában leírtakkal.TATGCAG'XSGGGATT. Sequencing of Fus Core: The forward terminating reaction was performed with the M13F primer and the reverse direction with the reverse primer used on the product side. Other conditions for sequence analysis were as described in Example 1.

Az új típusú H1N1 neuraminidáz génrégióit vizsgáló módszert az Omnimvest cég által előállított Fiúval P oltásból izolált RNS esetében teszteltük. Az oltás az új típusú A/Caiiíorraa/7/2Qö9-es vírus inaktivált tormáját tartalmazta. A vizsgálati módszer ez esetben is hatékonyan működött (6. ábra). A fúziós termék vírus-specifikus szekvenciái megegyeztek - az NCBI adatbázisból letöltött - A/California/7/2009 neuraminidáz génjének megfelelő génrégióinak bázissorrendjével.The method of testing the gene regions of the novel H1N1 neuraminidase gene was tested on RNA isolated from the Boy P vaccine produced by Omnimvest. The vaccine contained an inactivated horseradish of the new type A / Celororaa / 7 / 2Q9. The test method worked well in this case as well (Figure 6). The virus-specific sequences of the fusion product were identical to the base sequence of the corresponding regions of the neuraminidase gene A / California / 7/2009, downloaded from the NCBI database.

A találmány szerinti módszer esetében az allét bias csökkenését, és ezzel együtt a szenzitivitás növelését az alábbi modellen sikerült igazolnunk.In the method according to the invention, the reduction of the allele bias and, consequently, the increase of the sensitivity were demonstrated in the following model.

Módszer:Method:

Patoiógusi szakvélemény alapján 30% tumor-arányt tartalmazó FFPE-mlnÍáböl DNSi izoláltunk. A mintában 2 független (hagyományos) PCR reakciót követő szekvenciaanalízissel detektáltuk az EGFR gén 21?-es exonjának 2573T>G=LS58R pontrnutacsójáí fa mutáns alléi átlagos gyakorisága 50% volt). A mintát a hagyomáegylépcsős g (a ΙΟχ-ére) hígrtotfok, A hígított mintán a hagyományos (normál PCR-t követő nested PCR) és a találmány szerinti új módszerrel fe 10-10 párhuzamos mutációs vizsgálatot végeztünk.According to pathologist's advice, DNA was isolated from FFPE-million cells containing 30% tumor ratio. In the sample, sequence analysis after 2 independent (conventional) PCR reactions revealed a median frequency of the tree mutant allele of the exon 21 exon 2573T> G = LS58R of the EGFR gene. The sample was subjected to the traditional step (g) (ΙΟχ) dilution of the dilution, the diluted sample was subjected to conventional (nested PCR following normal PCR) and f10-10 parallel mutation assays using the new method of the invention.

A hagyományos PCR során az első ampffikáció során az alábbi primereket alkalmaztuk: forward: tact-tggaggaccgtcgcttg (SEQ ID NO',59), reverse (SEQ IO NO: 60): ggzgcctggtgtcaggaaaaL· A reakciót kővetően az oldatot a 25x-ére hígítottuk, maid a nested PCR-elegy ötödének megfelelő térfogatban alkalmaztuk. A nested PCR során az alábbi primereket alkalmaztuk; forward (SEQ ID NO: 61): AGCCRGGAAGGTACTGGTGAAAAC, reverse: GCTGGCTGACCTAAAGCCACCT (SEQ ID NO: 62). Minőkét PCP oldata az egyéb paramétereket illetően megegyezett az 1. példa spacer-molekula előállításánál leírtakkal. Az új módszerrel történt vizsgálatok során a 3. példában leírtak szerint jártunk el. A két módszerrel előállított amptíkonok szekvenciái az 7, ábrán láthatóak, A két módszer végtermékeinek szekvenálása megegyezett Az allélvariánsek jelintenzitását az eléktro-forogrammokról leolvasott értékek adták.For conventional PCR, the following primers were used for the first amplification: forward: tact-tggaggaccgtcgcttg (SEQ ID NO ', 59), reverse (SEQ ID NO: 60): ggzgcctggtgtcaggaaaaL · Following the reaction, the solution was diluted to 25x, maid in a volume of one-fifth of the nested PCR mix. The following primers were used for nested PCR; forward (SEQ ID NO: 61): AGCCRGGAAGGTACTGGTGAAAAC, reverse: GCTGGCTGACCTAAAGCCACCT (SEQ ID NO: 62). The other two parameters of the PCP solution were the same as those described for the preparation of the spacer molecule of Example 1. In the tests with the new method, the procedure described in Example 3 was followed. The sequences of the amphiphones produced by the two methods are shown in Figure 7. The sequences of the final products of the two methods are identical The signal intensity of the allelic variants is given by the values read from the preprograms.

Az esszehasoniltó-vizsgáiat eredményei a 8, ábrán láthatóak, A hagyományos nested PCR során az első PCR-t követően 8/10 csőbén volt gélképen látható termék, a nested PCR mind a 10 csőben gélképen látható terméket eredményezett. Az új technikát alkalmazva az eloamplifikációs PCR után mind a 10 csőben gélképen látható termék keletkezett. Mind a 10 terméket, sikeresen fuzionáltattuk a 2. lépcsőben.The results of the assay screening assay are shown in Figure 8. In conventional nested PCR, 8/10 tubes showed gel product after the first PCR, and nested PCR resulted in gel images in all 10 tubes. Using the new technique, all 10 tubes produced a gel image after the pre-amplification PCR. All 10 products were successfully fused in Step 2.

A 2 módszer 10-10 termékét mindkét irányból sikeresen szekvenáltuk, A hagyományos módszerrel 5/10 esetben jelent meg (4 esetben 100%-os allél-arányban) a mutáció, a szenzitivitás tehát itt 56% volt, A mutáns jel allél-aránya átlagosan 42%, az arány szórása 50% volt. Az új módszerrel a mutáció 9/10 esetben jelent meg, ami 90%-os szenzitivitásnak felelt meg. Míg a mutáns jel átlagos allél-aránya itt is 42% volt, az arány szórása már csak 23% volt.The 10-10 products of Method 2 were successfully sequenced from both directions. In the conventional method, the mutation appeared in 5/10 cases (in 4 cases at 100% allele ratio), thus the sensitivity was 56%. It was 42%, and the standard deviation was 50%. With the new method, the mutation appeared in 9/10 cases, which corresponded to 90% sensitivity. While the average allele ratio of the mutant signal was 42%, the standard deviation was only 23%.

Claims (19)

Szabadalmi IgénypontokPatent Claims 1. Eljárás töredezett nuklelnsavak szekvenciájának meghatározására egy eélszekvenola POR ampilttkáclöjával és az ezt követő dldezoxl-szekvenálással, amely a következő lépeseket tartalmazza;A method for determining the sequence of a fragmented nucleic acid by an POR ampile sequence of an edge sequencer and subsequent sequencing of dldoxox, comprising the following steps; aj a szekvenálandö nokleinsavaí vagy nukleínsavaí tartalmazó sejteket elkülönítjük egy biológiai mintábólisolating cells containing the nucleic acid or nucleic acid to be sequenced from a biological sample e) sgy FCR-reakelöl kivitelezőnk a célszekvencía fuzionálására és empllttkálására, amelyben egy vagy több olyan mesterséges, 70-220 bp hosszúsága spaoenmoiekoiát alkalmazunk, amely 73 Irányban egymást komio-m egm ·-. mugatta kommemenk·' szak-mm, egv isgaiabo 3e legfeljebb 120 ep távtartó szakaszt, egy szekvenáló primerrel komplementer szakaszt és egy ampiíííkáíő primerrel komplementer szakaszt tartalmaz, és el az így kapott PCAttermékek adott esetben tisztítás után, szekvenáíiuk.e) Thus, our FCR reagent performs fusion and amplification of the target sequence using one or more artificial 70-220 bp spanning-73 molar pathways. mugatta kommemenk · mm-mm, egv isgaiabo 3e contains up to 120 bp spacer region, a sequencing primer complementary region and an amplification primer complementary sequence, and the resulting PCAt products are optionally sequenced after purification. 2, Az 1, Igénypont szerinti eljárás, ahol a b) lépésben olyan spacer molekulát alkalmazónk, amelyben a templáttal komplementer szakasz 20-30 bp, a szekvenáló príménél komplementer szakasz 15-40 bp és az amplifikáló príménél komplemenier szakasz 15-40 bp Hosszúságú.The method of claim 1, wherein in step b) a spacer molecule is used wherein the template complementary region is 20-30 bp, the sequencing primer is 15-40 bp and the amplifier primer is 15-40 bp. 3. Eljárás töredezett nuklelnsavak azonosítására egy eéiszekvencla kétlépcsős PCA ampíifikáeiöjávaí és az ezt követő őldezoxl-szekvenálással, amely a következő lépéseket tartalmazza:3. A method for identifying fragmented nucleic acids by two-stage amplification of a sequence of PCA and subsequent field deoxygen sequencing, comprising the steps of: aj a szekvenálande nuklelnsavat vagy nuklelnsavat tartalmazó sejteket elkülönítjük egy biológiai mintából.j) sequencing the cells containing the nucleic acid or nucleic acid from a biological sample. b) egy első PCRneakrzot kivitelezünk a célszekvencía amplltlkáiására, sj ezt követően egy második PCR-t kivitelezünk az amsükön fuzionálására és ampükkálására. amelyben egy vagy több olyan mesterséges, 70-220 bp hosszú epaeer ÖNS-molekulát alkalmazunk, amely ö'm' Irányban egymást követően egy, az amplikonnai komplementer szakaszt, agy legalább 20 legfeljebb 120 bp távtartó szakaszt, egy szekvenátő primőrrel komplementer szakaszt és sgy amplifikáló primerrel komplementer szakaszt tartalmaz, ahol az ampiAonnai kompiemenfer szakasznak megfelelő szekvemna ö'-vége a templát ölMS-en Ö-7ö öp-rai távolabb kezdődik S’-kényban, mini az amplifikáló prlrnerrei komplementer szakasz ö'-vége, és dl az Így kapott PCiá-termékeh adott esetben tisztítás után. szekvenaüuk.b) carrying out a first PCR PCR to amplify the target sequence, followed by a second PCR to fuse and amplify the amine. wherein one or more artificial 70-220 bp long epaeer OES molecules are used which, in the 'm' direction, comprise a complementary stretch of amplicon, a spacer region of at least 20 bp up to 120 bp, a sequence complementary to a sequencing primer, and a sgy amplifier. contains a primer complementary region, wherein the ′ end of the sequence corresponding to the amplitude of the AmpiAonnean complement region begins at the template enMS Ö -7 ö more distant in the ′ -min, the ′ end of the amplifying primer complementary region, and dl PCiá producteh optionally after purification. szekvenaüuk. 4. A 3 igénypont szerinti eljárás, ahol a ej lépesben olyan spacer molekulát alkalmazunk. amelyben a templállai komplementer szakasz 20-30 bp. a szekvenáló primőrrel komplementer szakasz 15-40 bp és az ampllhkáSö prlmerrei komplementer szakasz 15-40 op hosszúságú.The method of claim 3, wherein a spacer molecule is used in the ej step. wherein the complementary section of the Templars is 20-30 bp. the sequence complementary to the sequencing primer is 15-40 bp and the complementary region to the amplifier is 15-40 bp. 5, Az 1. vagy 3, 5, 1 or 3, Igénypont szerinti On demand eljárás, ahol az a method wherein a j lépésben a In step j, the szekvenálandö nukleinsav Iz nucleic acid to be sequenced Iz omlása elhagyható. collapse can be neglected. 6. Az 1. vagy 3 6 igénypont ezer inti claim 1 thousand eljárás, abof procedure, abof az a that ) lépésben a step a) s ze kvená 1 a ndö n oki e irma va t s ze kvená 1 a ndö n oki e irma va t Izoláljuk a biológiai mintából Isolate it from the biological sample 7. Az 1. vagy 3, 7. The 1st or 3rd, igénypont szerinti According to claim 1 eljárás, ahol procedure where az a that ) lépésben a step a)
szekvenáíandó nuklelnsavat tartalmazó sejteket különbjük el a biológiai mintábólcells containing the nucleic acid to be sequenced are separated from the biological sample
8. A 7. Igénypont szennti eljárás, amelyben az elknienitést lézer mlkrodisszekclöval végezzük,8. The method of claim 7, wherein the bleaching is performed using a laser mlcrodisector, 9. Az 1. vagy 3 Igénypont szennti eljárás, ahol a bt vagy ej lépésben alkalmazott spaser-molekala egyszálb vagy kétszáló: DNS.The process of claim 1 or 3, wherein the spaser molecule used in step bt or ej is single-stranded or double-stranded: DNA. 10. Az 1. vagy 3. Igénypont szerinti eljárás, ahol a bj vagy c) tépésben egyetlen spaoemmoieteiát alkalmazunk.10. The method of claim 1 or 3, wherein a single spaoemmoethel is used in step bj or c). 11 Az 1. vagy 3. igénypont szerinti eljárás, ahol a bt vagy ej lépésben két, egy tonnám és egy reverse spacer-nvdekulal alkalmazunk.The method of claim 1 or claim 3, wherein step bt or ej is applied with two, one tonne and one reverse spacer nvdecul. 12. A 3. igénypont szerinti eljárás, ahol a b) lépésben egy második, nesied PCR-t Is kivitelezünk.The method of claim 3, wherein in step b) a second, nested PCR is also performed. 10. Az = -12. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, ahol a d> lépésben a szekvenálást a PCRAermek Usztkása étén végezzük.10. The = -12. The method of any one of claims 1 to 4, wherein in step d, sequencing is performed on the PCRA Children's Pest. 14, Spaoer-moleknia az 1-13. igénypontok bármelyike szerinti eljáráshoz, amely 70 - 220 bp hosszúságú és 3S-5S irányban egymást követően tartalmaz:14, Spaoer Molecules 1-13. Process according to any one of claims that 70 - 220 bp comprising successively and 3S -5 S direction: -- egy, a eétszekvenola egyik vegén iává tompját nuklelnsavval vagy amplikonnat komplementer szakaszt (20-30 bp), egy legalább 20 -· legfeljebb 120 bp távtartó DNS-szakaszt. amely az előbb; szakasszal együtt biztosítja, hogy a szekvenáló primer S’-vége megfeleld, több * ν \ ο ' η Λ r a a χ e- ?' t \ ? mm \ m ? . ?' e r- a nucleic acid or amplicon complement (20-30 bp) complementary to one of the vegenium mutants of the food sequence, a DNA stretch spanning at least 20 - up to 120 bp. which comes first; section ensures that the S 'end of the sequencing primer matches, more * ν \ ο' η Λ raa χ e-? ' t \? mm \ m? . ? ' er - egy szekvenáló primőrrel komplementer szakaszt (- a sequence complementary to a sequencing primer ( 15-40 bp) és15-40 bp) and - egy amptlflkáló prlmerrei komplementer szakaszt (15-40 bp), ;o. A 14. igénypont szenna spaoer-melekola, amely egyszála vagy keiszálü- an amplifying complementary region (15-40 bp) complementary to the primer, p. The antenna spaoeram melecola of claim 14, which is single-stranded or quilted 16. A 14. vagy 15, igénypont szerinti spaoenmoíekuia, amely forward vagy reverse «pacet-moiekula,The spaoenolayer according to claim 14 or 15, which is a forward or reverse packet molecule, 17, Az 1-13. igénypernek bármelyike szerinti eljárás alkalmazásé génszenvekoták azonosítására töredezett DNS-t tartalmazó növényi, általi vagy e mbe ri szövőim ínfákban.17, pp. 1-13. using a method according to any one of claims 1 to 6 for the identification of genotypes in plant, plant or tissue tissues containing fragmented DNA. 18, A 17. igénypont szerinti alkalmazás HI.Nt influenza neoramírtidáz génjének azonosítására töredezett DNS-t tartalmazd emberi szövetmintában.18. Use according to claim 17, for the identification of the neoramyrididase gene of influenza HI.Nt in a human tissue sample containing fragmented DNA. 19. Az 1-13, igénypontok bármelyike szerinti eljárás alkalmazása meláoíök azonosítására öenenelszövelböl származó töredezett DbíS-míntákban,Use of the method according to any one of claims 1 to 13 for the identification of molars in fragmented DbIS specimens derived from the fibula, 94 A Ά igenvpont sze; rt> mknim,mas kRA$ '-es omoröuv mutációk azonosítására,94 Saturation of Ά yes; rt> mknim, to identify om Kro $ 'omoruvian mutations, 21 A 19, igénypont szenntl alkalmazás 3GFR 19-®s és/vagy 21 -es exomában előforduló műtérnek azonosítására,The use of claim 19 for the identification of a workshop in exoma 3GFR 19 and / or 21, 22. A 19, igénypont szerinti alkalmazás, ahol a DNS-mmtak formailnnai nxáií sző ve le kböl sza rmazna k.The use of claim 19, wherein the DNA is formatted by formatting. 23. Reagenskészíet az 1, Igénypont szerinti eljárás kivitelezésére, amely a használati utasítással együtt a kővetkezőket tartalmazza;23. A reagent preparation for carrying out the process of claim 1, comprising the following, together with an instruction manual; - egy vagy több 14. igénypont szerinti spacenmoíekulát; vagyone or more spacolymers according to claim 14; obsession - egy vagy több 14, Igénypont szerinti spacermioiekuísí és amnkíikáio prlmereket a PCR-boz;: és adott esőiben a PCR kivitelezéséhez szükséges peilmerázl és reagenseket.- one or more spacer and amino acid primers for use in the PCR according to claim 14, and, in appropriate cases, the polymerase and reagents necessary for the PCR. 24. Reagenskészíet a 3, igénypont szerinti eljárás kivitelezésére, amely a használati utasítással együtt a kővetkezőket tartalmazza;A reagent kit for carrying out the method of claim 3, comprising, together with an instruction manual, the following; • 49? vagy több 14. Igénypont szerinti spacer-moiekeíát: vagy egy vagy több 14. igénypont szerinti spacoi-molekulát és ampilfíkátö prlmereket a fuzionáló PCR-boz; vagy• 49? or more of the spacer molecule of claim 14: or one or more spacer molecule of claim 14 and the amylphase primer for the fusion PCR; obsession - egy vagy több 14, Igénypont szenntl spacer-moiekuiát amplmkálo prlmereket a fuzionáló PCR-boz és ampllflkálö prlmereket az első ampllfikálö PCR-boz; és aöoti esetben a PCR-reakeiokhoz szükséges poíímetázokai és reagenseket.one or more spacer molecule amplifiers of claim 14 for the fusion PCR and amplifier primers for the first amplifier PCR; and, in particular, the polymerases and reagents required for the PCR reactions.
HU1100695A 2011-12-20 2011-12-20 Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids HU229967B1 (en)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU1100695A HU229967B1 (en) 2011-12-20 2011-12-20 Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids
PCT/HU2012/000137 WO2013093530A1 (en) 2011-12-20 2012-12-19 Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU1100695A HU229967B1 (en) 2011-12-20 2011-12-20 Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUP1100695A2 HUP1100695A2 (en) 2013-06-28
HU229967B1 true HU229967B1 (en) 2015-03-30

Family

ID=89990543

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU1100695A HU229967B1 (en) 2011-12-20 2011-12-20 Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids

Country Status (2)

Country Link
HU (1) HU229967B1 (en)
WO (1) WO2013093530A1 (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012109500A2 (en) 2011-02-09 2012-08-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Analysis of nucleic acids
CN105555972B (en) * 2013-07-25 2020-07-31 伯乐生命医学产品有限公司 Genetic assay
CN106755418B (en) * 2016-12-24 2020-08-21 广州艾基生物技术有限公司 Exon assembly sequencing method

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5023171A (en) 1989-08-10 1991-06-11 Mayo Foundation For Medical Education And Research Method for gene splicing by overlap extension using the polymerase chain reaction
WO1997043449A1 (en) 1996-05-15 1997-11-20 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Methods for sequencing large nucleic acid segments and compositions for large sequencing projects
WO1999016904A1 (en) 1997-09-29 1999-04-08 City Of Hope Efficient linking of nucleic acid segments
GB9812674D0 (en) 1998-06-12 1998-08-12 Central Manchester Healthcare Nucleic acids
WO2002059353A2 (en) * 2001-01-26 2002-08-01 Bio S & T Two-step amplification using a program primer followed by specific primers
EP1937834B1 (en) 2005-09-01 2014-06-11 AusDiagnostics Pty Ltd. Methods for the amplification, quantitation and identification of nucleic acids
US8354233B2 (en) 2008-04-01 2013-01-15 University Of Washington Sequence data by reduction of noise due to carry-over primer

Also Published As

Publication number Publication date
HUP1100695A2 (en) 2013-06-28
WO2013093530A1 (en) 2013-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11768200B2 (en) Methods for maintaining the integrity and identification of a nucleic acid template in a multiplex sequencing reaction
CA2936564C (en) Methods for generating double stranded dna libraries and sequencing methods for the identification of methylated cytosines
CN105705515B (en) Transposase aptamers for DNA manipulation
US9255291B2 (en) Oligonucleotide ligation methods for improving data quality and throughput using massively parallel sequencing
CN105121664B (en) Mixture and its it is compositions related in nucleic acid sequencing approach
US20120252686A1 (en) Methods for maintaining the integrity and identification of a nucleic acid template in a multiplex sequencing reaction
US20150284769A1 (en) Reduced representation bisulfite sequencing with diversity adaptors
JP6860662B2 (en) Construction of a bar-coded circular library for identification of chimeric products
EP4119679A1 (en) Polynucleotide adapter design for reduced bias
US11898204B2 (en) Generation of single-stranded circular DNA templates for single molecule sequencing
JP2008502367A (en) Fast generation of oligonucleotides
JP6876785B2 (en) Methods for Generating Single-stranded Circular DNA Libraries for Single-Molecular Sequencing
ES2936478T3 (en) Generation of single-stranded circular DNA templates for single-molecule sequencing
US9957548B2 (en) Methods of capturing sperm nucleic acids
KR20130099092A (en) Method for inhibiting nucleic acid amplification using light and highly sensitive method for selective nucleic acid amplification
CN107109698A (en) RNA STITCH are sequenced:For RNA in directly mapping cell:The measure of RNA interactions
EP3810142A1 (en) Anti-retroviral therapies and reverse transcriptase inhibitors for treatment of alzheimer&#39;s disease
HU229967B1 (en) Method for determining the sequence of fragmented nucleic acids
US20220002796A1 (en) Quality control of lna oligonucleotide therapeutics using massively parallel sequencing
US20180362968A1 (en) Methods of library construction for target polynucleotides
JP5243829B2 (en) Method for analyzing methylated DNA
JP2023553984A (en) Method of double strand repair
US20180327811A1 (en) Methods and kits for capturing sperm nucleic acids
US10030241B2 (en) Methods and kits for capturing sperm nucleic acids
WO2020100079A2 (en) Multimer for sequencing and methods for preparing and analyzing the same

Legal Events

Date Code Title Description
GB9A Succession in title

Owner name: KPS DIAGNOSZTIKA ZRT., HU

Free format text: FORMER OWNER(S): KPS ORVOSI BIOTECHNOLOGIAI ES EGESZSEGUEGYI SZOLGALTATO KFT., HU; KPS ORVOSI BIOTECHNOLOGIAI ES EGESZSEGUEGYI SZOLGALTATO KFT., HU

HC9A Change of name, address

Owner name: KPS DIAGNOSZTIKA ZRT., HU

Free format text: FORMER OWNER(S): KPS ORVOSI BIOTECHNOLOGIAI ES EGESZSEGUEGYI SZOLGALTATO KFT., HU; KPS ORVOSI BIOTECHNOLOGIAI ES EGESZSEGUEGYI SZOLGALTATO KFT., HU

MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees