HU209929B - Process for production of thiostrepton antibiotic process for production of thiostrepton antibiotic - Google Patents
Process for production of thiostrepton antibiotic process for production of thiostrepton antibiotic Download PDFInfo
- Publication number
- HU209929B HU209929B HU147692A HU147692A HU209929B HU 209929 B HU209929 B HU 209929B HU 147692 A HU147692 A HU 147692A HU 147692 A HU147692 A HU 147692A HU 209929 B HU209929 B HU 209929B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- antibiotic
- thiostrepton
- fermentation
- strain
- streptomyces
- Prior art date
Links
Abstract
A találmány tárgya eljárás tiosztrepton antibiotikum előállítására mikrobiológiai úton, aerob fermentációval, Streptomyces laurentii fajhoz tartozó törzzsel asszimilálható szén- és nitrogénforrást, valamint ásványi sókat tartalmazó táptalajon, oly módon, hogy mik- roorganizmusként a Streptomyces laurentii törzsnek kloramfenikol rezisztens mutánsát tenyésztik, majd a fermentációt követően a keletkezett antibiotikumot a sejtekből elkülönítik. HU 209 929 B A leírás terjedelme: 6 oldalThe present invention relates to a method for the preparation of a thiostrepton antibiotic by means of microbiology, aerobic fermentation, carbon and nitrogen source assimilable with a strain of Streptomyces laurentii, and mineral salts, by culturing the chloramphenicol resistant mutant of the strain Streptomyces laurentii as a microorganism and after fermentation. the resulting antibiotic is isolated from the cells. EN 209 929 B Description: 6 pages
Description
Találmányunk tárgya eljárás tiosztrepton antibiotikum előállítására mikrobiológiai úton aerob fermentációval, Streptomyces laurentii fajhoz tartozó mikroorganizmus törzsnek kloramfenikol mutánsával, asszimilálható szén- és nitrogén forrást, valamint ásványi sókat tartalmazó táptalajon.The present invention relates to a process for the preparation of an antibiotic thiostrepton by microbial digestion by aerobic fermentation, a chloramphenicol mutant of a strain of a microorganism of the species Streptomyces laurentii, a medium containing assimilable carbon and nitrogen sources and mineral salts.
A tiosztrepton ciklikus polipeptid típusú antibiotikum, amit különböző Streptomyces fajhoz tartozó mikroorganizmus törzsek, így például a Streptomyces azureus, hawaiiensis és laurentii törzsek termelnek. Az egyes Streptomyces fajok e tulajdonságát először a 2 982 689 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírásban írták le. Eszerint a Streptomyces laurentii fajhoz tartozó törzset asszimilálható szén- és nitrogénforrást, valamint ásványi sókat tartalmazó táptalajon aerob körülmények között tenyésztik ipari méretben, majd a fermentáció alatt keletkezett antibiotikumot a fermentléből elkülönítik.Thiostrepton is a cyclic polypeptide antibiotic produced by strains of microorganisms belonging to various species of Streptomyces, such as strains of Streptomyces azureus, hawaiiensis and laurentii. This property of each Streptomyces species was first described in U.S. Patent No. 2,982,689. U.S. Pat. Accordingly, the strain of the species Streptomyces laurentii is cultivated on an industrial scale under aerobic conditions in a medium containing assimilable carbon and nitrogen sources and mineral salts, and the antibiotic formed during fermentation is isolated from the fermentation broth.
A tiosztrepton előállítására alkalmazott eddig ismert eljárások viszonylag alacsony kitermeléssel dolgoznak. Bár leírtak olyan eljárást, ahol a tiosztrepton a fermentlében nagy mennyiségben termelődik, az eljárás azonban csak folyamatos fermentációval, bonyolult szabályozó berendezések alkalmazásával, laboratóriumi körülmények között, valósítható meg, ezért eddig még nem került sor e tudományos eredmény ipari alkalmazására.Hitherto known processes for the preparation of thiostrepton have a relatively low yield. Although a process has been described in which thiostrepton is produced in large quantities in the fermentation broth, the process can only be achieved by continuous fermentation using sophisticated control equipment under laboratory conditions, so that this scientific result has not yet been commercially applied.
Az ipari méretben való tiosztrepton előállításánál a fermentációt szakaszosan, 4-5 napos aerob fermentációval végzik, és az ilyen fermentációknál a fermentlében a tiosztrepton koncentrációja 10001100 pg/ml /Appl. Microbiol. Biotechnoi.. 25, 520531 (1987)/. Célul tűztük ki kísérleteinkben, hogy a Streptomyces laurentii fajhoz tartozó törzzsel végzett fermentációknál az eljárás hatékonyságát növeljük új, nagyobb termelőképességű törzsek izolálásával. Ismeretes, hogy a Streptomyces genus fajainak jelentős részében a spóraképzéssel összefüggő légmicélium-képzés és az antibiotikum-termelés közös szabályozás alatt áll /Doull J. L. and Vining L.C., Biotech. Adv. 8, 141-158 (1990)/. E szabályozásnak még számos részlete tisztázatlan ugyan, de több kísérleti adat bizonyítja, hogy összefügg a guanozin-trifoszfát (GTP) valamint a guanozin-tetra- és -pentafoszfát (ppGpp ill. pppGpp) sejteken belüli szintézisével /Ochi,K., J. Bact., 169, 3608-3616, (1987)/.In the production of industrial-scale thiostrepton, the fermentation is carried out intermittently for 4-5 days with aerobic fermentation, and the concentration of thiostrepton in the fermentation broth is 1000 to 100 pg / ml / Appl. Microbiol. Biotechnol. 25: 520531 (1987). The aim of our experiments was to increase the efficiency of the process by isolation of new, more productive strains in strains of the strain of Streptomyces laurentii. It is known that aerial mycelium formation associated with spore formation and antibiotic production are co-regulated in most species of the Streptomyces genus / Doull J.L. and Vining L.C., Biotech. Adv. 8, 141-158 (1990). While many details of this regulation are unclear, several experimental data show that it is related to the intracellular synthesis of guanosine triphosphate (GTP) and guanosine tetra- and pentaphosphate (ppGpp and pppGpp). Ochi, K., J. Bact. 169: 3608-3616 (1987).
Egyes esetekben kísérleti adatokkal bizonyították, hogy szoros összefüggés van a sejtekben lévő pp Gppszint és az antibiotikum-termelés között. /Ochi, K., J. Gén. Microbiol., 132, 2621-2631 (1986), Ochi et al, J. Antibiot. 41, 1106-1115 (1988)/.In some cases, experimental data have shown that there is a close relationship between pp Gpp levels in cells and antibiotic production. / Ochi, K., J. Gén. Microbiol. 132: 2621-2631 (1986); Ochi et al., J. Antibiot. 41: 1106-1115 (1988).
A szabályozás tanulmányozását és megértését nehezíti, hogy a GTP-szint változása összefügg az ún. stringens válasszal is, azaz azzal a jelenséggel, hogy a táptalaj nitrogén- vagy szénforrás tartalmának csökkenésére a mikroorganizmusok az ún. stabil RNS-ek szintézisének csökkentésével „válaszolnak”, a GTP-szint csökkenésével párhuzamosan. /Freese et al. Developmental Bioi. 102,438-451 (1984)/. Ez a válasz azonban az ún. rel Aés rel C mutáns törzsekben elmarad.It is difficult to study and understand the regulation that the change in GTP level is related to the so-called. with a stringent response, that is, the phenomenon that microorganisms are known as "microorganisms" to reduce the nitrogen or carbon source of the medium. they respond by decreasing the synthesis of stable RNAs, in parallel with decreasing GTP levels. / Freese et al. Developmental Bioi. 102: 438-451 (1984). However, this answer is the so-called. rel in A and rel C mutant strains.
Ismeretes továbbá az is, hogy a ppGpp és pppGpp szintézist csökkenti az igen kis koncentrációban alkalmazott kloramfenikol, az egyébként erre érzékeny mikroorganizmus törzseknél. Ebben a koncentrációban (0,7-4 pg/ml) a kloramfenikol a növekedést még nem gátolja. /Ochi, K és Freese, E. J. Gén. Microbiol 129, 3709-3720 (1983), Ochi, K.: J. Gén. Microbiol 132, 2621-2631 (1986)/.It is also known that the synthesis of ppGpp and pppGpp is reduced by the use of very low concentrations of chloramphenicol in strains of the microorganism that are otherwise sensitive. At this concentration (0.7-4 pg / ml), chloramphenicol does not inhibit growth yet. / Ochi, K and Freese, E. J. Gene. Microbiol 129, 3709-3720 (1983), Ochi, K .: J.Gen. Microbiol 132: 2621-2631 (1986).
Ugyanezeknél a törzseknél a kloramfenikolt nagyobb koncentrációban alkalmazva, leállítja azok növekedését a fehérjeszintézis gátlása útján.When used in higher concentrations, chloramphenicol stops their growth by inhibiting protein synthesis.
A kloramfenikol rezisztencia kialakulása az esetek többségében nem jár együtt a mutánsokban a ppGpp és a pppGpp növekedésével, az esetek kis részében viszont együtt jár. Ugyanígy a ppGpp és a pppGpp-szint növekedése sem minden esetben jár együtt az antibiotikum bioszintézisének fokozódásával /Ochi, K.. J. Bact. 169, 3608-3616 (1987)/. A fenti nukleotidok szintézisének hiánya viszont minden esetben az antibiotikum termelőképesség elvesztését eredményezi.In most cases, the development of chloramphenicol resistance is not accompanied by an increase in ppGpp and pppGpp in the mutant, but in a minority of cases. Similarly, an increase in ppGpp and pppGpp levels is not always associated with an increase in antibiotic biosynthesis / Ochi, K .. J. Bact. 169: 3608-3616 (1987). However, the lack of synthesis of the above nucleotides always results in a loss of antibiotic productivity.
A tiosztrepton és a hozzá nagyon hasonló szerkezetű tiopeptin antibiotikumokat többször sikeresen alkalmazták rel mutánsok izolálására. Kísérleti tapasztalatok szerint ugyanis a tiosztrepton ill. tiopeptin rezisztens mutánsok jelentős része rel mutáns, melyekben a táptalaj szénforrásának és/vagy nitrogénforrásának kimerülése után nem következik be a GTP-szint csökkenése, gyakorlatilag kimutathatatlan a ppGpp és pppGpp, valamint elveszik az antibiotikum termelőképesség. A tiosztreptont termelő Streptomyces laurentii törzs, mely a saját maga által termelt tiosztreptonnal szemben nyilvánvalóan rezisztens, ugyanilyen nyilvánvalóan nem lehet rel mutáns, mivel antibiotikum termelőképessége (ezzel együtt a ppGpp szintézise) megvan. Várható tehát, hogy a törzsben a ppGpp és pppGpp szint növekedése az antibiotikum termelőképesség növekedésével jár a kloramfenikol rezisztens mutánsok egy részében.Thiosteptin and thiopeptin antibiotics of very similar structure have been successfully used several times to isolate rel mutants. Experimental experience shows that thiostreptone and A significant proportion of thiopeptin resistant mutants are rel mutants in which, after depletion of the carbon source and / or nitrogen source of the medium, there is no reduction in GTP, virtually undetectable ppGpp and pppGpp, and loss of antibiotic productivity. The thiostrepton-producing strain Streptomyces laurentii, which is apparently resistant to self-produced thiostrepton, is equally obviously not mutant because it has the capacity for antibiotic production (and thus the synthesis of ppGpp). Thus, it is expected that increased levels of ppGpp and pppGpp in the strain will result in an increase in antibiotic productivity in some chloramphenicol resistant mutants.
Kísérleteinkben a tiosztreptont termelő Streptomyces laurentii fajhoz tartozó törzset mutagén kezelésnek tettük ki és kloramfenikol rezisztens mutánsokat izoláltunk. Akiindulási törzs rezisztenciája kloramfenikollal szemben mintegy 30 pg/ml, míg a mutánsok rezisztenciája >200 pg/ml. A mutagén kezelést az irodalomból ismert módon, UV besugárzással végeztük, de alkalmazhatunk más, az irodalomból jól ismert mutagént is, így pl. N-metil-N-nitro-N-nitrozoguanidint, radioaktív sugárzást, nitrogén mustárokat stb.In our experiments, the strain of Streptomyces laurentii producing thiostrepton was subjected to mutagenic treatment and chloramphenicol resistant mutants were isolated. Resistance of the parent strain to chloramphenicol is about 30 pg / ml, while that of the mutants is> 200 pg / ml. The mutagenic treatment is carried out in a manner known in the art by UV irradiation, but other mutagens well known in the art may be used, e.g. N-methyl-N-nitro-N-nitrosoguanidine, radioactive radiation, nitrogen mustard, etc.
Az UV besugárzást 30 W-os germicid lámpával végeztük úgy, hogy 109 spórát 20 cm távolságból 10, 20, 30 percig tettük ki UV besugárzásnak, majd a besugárzott spórákat szelektív táptalajra szélesztettük és tenyésztettük. Általában 10 perces UV besugárzást követően az életképes spórák száma 109-ről lCÉ-re csökkent.UV irradiation was performed with a 30 W germicidal lamp by exposing 10 9 spores from a distance of 20 cm to UV irradiation for 10, 20, 30 minutes, and then irradiating the spores with selective medium and culturing them. Generally, after 10 minutes of UV irradiation, the number of viable spores decreased from 10 to 9 ° C.
A mutagenizált spórák tenyésztését 200 pg/ml kloramfenikolt tartalmazó szelektív táptalajon végeztük, a táptalaj jelzése G/1 és összetétele a következő:The mutagenized spores were cultured on a selective medium containing 200 pg / ml chloramphenicol, labeled G / 1 and composed as follows:
HU 209 929 Β glükóz 10,0 g élesztőkivonat 2,5 g dikálium-hidrogén-foszfát 1,0 g agar 20,0 g desztillált víz 1000 ml-re kiegészítveEN 209 929 Β glucose 10.0 g yeast extract 2.5 g dipotassium hydrogen phosphate 1.0 g agar 20.0 g distilled water per 1000 ml
A pH-t autoklávozás előtt 7,0-7,2-re állítjuk beThe pH is adjusted to 7.0-7.2 before autoclaving
NaOH-dal.NaOH.
Mutagenizálás után a 200 μg/ml klóramfenikolt tartalmazó szelektív táptalajon kinőtt telepeket először kloramfenikolt nem tartalmazó G/1 táptalajra, majd ezt követően ismét szelektív táptalajra szélesztettük, hogy a rezisztens mutánsok stabilitását ellenőrizzük. Azután megvizsgáltuk a stabil kloramfenikol rezisztens mutánsok tiosztrepton termelő képességét. A rezisztens mutánsok között találtunk olyanokat, melyek tiosztrepton termelőképessége szignifikánsan nagyobb volt a kiindulási törzs termelőképességénél. Ezek aránya mintegy 10%.After mutagenization, colonies grown on selective medium containing 200 μg / ml chloramphenicol were plated first on G / 1 medium containing no chloramphenicol and then again on selective medium to check the stability of the resistant mutants. The ability of stable chloramphenicol resistant mutants to produce thiostrepton was then tested. Among the resistant mutants, we found that thiosstreptone productivity was significantly higher than that of the parent strain. They account for about 10%.
E mutánsok közül az egyiket, mely ipari fermentáció szempontjából a legkedvezőbb tulajdonsággal rendelkezett, letétbe helyeztük a Mezőgazdasági és Ipari Mikroorganizmusok Nemzeti Gyűjteményében NCAIM 0 01149 sz. alatt, a kiindulási törzset pedig NCAIM 001150 sz. alatt, 1991. IX. 3-án (deponálási irat mellékelve).One of these mutants, which had the most favorable property for industrial fermentation, was deposited in the National Collection of Agricultural and Industrial Microorganisms, NCAIM 0 01149. and the parent strain under NCAIM 001150. during 1991, IX. 3 (deposit instrument attached).
A NCAIM 001149 sz. törzs előnyös tulajdonsága, hogy az ipari fermentációban használatos olcsó nyersanyagokban is gyorsan szaporodik, így azonos idő alatt a fermentlében nagyobb mennyiségű sejt és ezzel együtt nagyobb mennyiségű antibiotikum állítható elő, mint a kiindulási törzzsel. A törzsnek további előnyös tulajdonsága, hogy spóraképzését, ezzel együtt az antibiotikum termelését könnyen hasznosítható szén- és nitrogénforrások nem gátolják, így azokat is alkalmazhatjuk a fermentáció nyersanyagaként, meggyorsítva ezzel a sejtek szaporodását.No. NCAIM 001149. The advantage of the strain is that it rapidly multiplies in cheap raw materials used in industrial fermentation, so that a greater amount of cells and thus a greater amount of antibiotics can be produced in the fermentation broth in the same time than the parent strain. A further advantage of the strain is that its spore formation and thus the production of the antibiotic are not inhibited by easily utilizable sources of carbon and nitrogen, so that they can also be used as a raw material for fermentation, thereby accelerating cell proliferation.
Az előbbiek alapján találmányunk szerint a tiosztrepton antibiotikum előállítása céljából úgy járunk el, hogy a Streptomyces laurentii NCAIM 001150 jelzésű kiindulási törzsnek kloramfenikol rezisztens mutánsát, előnyösen a NCAIM 001149 jelzésű törzset asszimilálható szénforrást, így például kukorica-, búza-, burgonyakeményítőt és/vagy alfa-amilázzal elfolyósított kukorica, búza-, burgonyakeményítőt, és/vagy glükózt, és/vagy dextrint, és/vagy szacharózt, valamint asszimilálható nitrogénforrást, így például szójalisztet és/vagy kukoricalekvárt, és/vagy fehéijehidrolizátumot, mint például élesztőkivonatot, kazein-hidrolizátumot, és/vagy takarmány-élesztőt, és/vagy ammónium-szulfátot, és/vagy karbamidot, valamint ásványi sókat tartalmazó táptalajban aerob körülmények között 20-40 °C, előnyösen 28 °C hőmérsékleten tenyésztjük, majd a tiosztreptont a fermentléből ismert módon elkülönítjük. A találmányunk szerinti eljárásnál a fermentáció végén a fermentlé antibiotikum tartalma 1600-2200 μg/ml között van.In view of the foregoing, the present invention provides for the preparation of a thiostrepton antibiotic comprising the isolation of a chloramphenicol resistant mutant of the parent strain Streptomyces laurentii NCAIM 001150, preferably a strain of NCAIM 001149 that assimilates, such as corn, corn, wheat, potato starch and / or glucose and / or dextrin and / or sucrose liquefied with amylase as well as assimilable nitrogen sources such as soy flour and / or corn jam and / or protein hydrolyzate such as yeast, and / or cultured in culture medium containing feed yeast and / or ammonium sulfate and / or urea and mineral salts at 20-40 ° C, preferably 28 ° C, and isolating the thiostrepton from the fermentation broth in a known manner. In the process of the present invention, at the end of the fermentation, the antibiotic content of the fermentation broth is between 1600 and 2200 µg / ml.
Ez a termelési érték lényegesen nagyobb, mint az eddig ismert eredmények. Az irodalomban ismertetett eddigi legmagasabb érték 1000-1100 pg/ml volt, 10 literes, szakaszos fermentációban /Applied Microbiology and Biotechnology, 25, 520-531 (1987)/.This production value is significantly higher than the results so far known. The highest so far reported in the literature was 1000-1100 pg / ml in a 10 liter batch fermentation (Applied Microbiology and Biotechnology, 25, 520-531 (1987)).
A fermentlé és végtermék antibiotikum tartalmának meghatározását az USP XXII-ben leirt módon agar-diffúziós módszerrel végeztük, teszt-organizmusként Bacillus subtilis ATCC 6633 és/vagy Staphylococcus aureus 6538P törzseket alkalmaztunk és az adatokat a kereskedelmi forgalomban beszerezhető tiosztrepton referencia standardra vonatkoztattuk.The antibiotic content of the fermentation broth and the final product was determined by agar diffusion as described in USP XXII using Bacillus subtilis ATCC 6633 and / or Staphylococcus aureus 6538P as test organisms and refer to a commercially available thiostrepton reference standard.
A tiosztrepton végtermék minőségi analízisére HPLC-s módszert is alkalmaztunk az alábbiak szerint:The HPLC analysis of thiostrepton end product was also performed as follows:
Oszlop: LiChrosfer RP 8 5 um (250 mm x 4 mm)Column: LiChrosfer RP 8 5 um (250mm x 4mm)
Eluens: 72% metanol + 28% vízEluent: 72% methanol + 28% water
Detektálás: 280 nm hullámhosszonDetection: 280 nm
Áramlási sebesség: 1,0 ml/percFlow rate: 1.0 ml / min
Injektált mennyiség: 20 μΐInjected volume: 20 μΐ
Az alábbiakban leirt kiviteli példákban bemutatjuk a Streptomyces laurentii NCAIM 001149 törzzsel végzett fermentációt anélkül, hogy ezzel találmányunkat korlátozni akarnánk.The following examples illustrate fermentation with Streptomyces laurentii strain NCAIM 001149 without limiting the invention.
A mikroorganizmus törzsek összehasonlító mikrobiológiai jellemzéseComparative microbiological characterization of microorganism strains
A kiindulási Streptomyces laurentii törzsnek valamint a mutagén kezelés után izolált mutáns törzsnek mikrobiológiai jellemzését az International Streptomyces Project (ISP) és Shirling et al. Int. J. Syst. Bact., 16:313340(1966) által leírt módon végeztük a rendelkezésünkre álló anyagok és eszközök által adott lehetőségek szerint.The microbiological characterization of the parent Streptomyces laurentii strain and the mutant strain isolated after the mutagenic treatment were described by the International Streptomyces Project (ISP) and Shirling et al. Int. J. Syst. Bact., 16: 313340 (1966), according to the available materials and devices.
Az alábbiakban a kiindulási és a mutáns törzs mikrobiológiai jellemzőinek vizsgálati eredményeit foglaljuk össze. Az adatok összehasonlítása alapján nem volt szignifikáns különbség a két törzs között.The results of the microbiological characterization of the parent and mutant strains are summarized below. Comparison of the data showed no significant difference between the two strains.
HU 209 929 ΒHU 209 929 Β
PÉLDÁK 25EXAMPLES 25
1. példaExample 1
A Streptomyces laurentii NCAIM 001150 jelzésű törzs mélyhűtve tárolt (-20-tól -30 °C-ig) spóraszuszpenzióját szobahőmérsékleten felolvasztjuk, és annak 30 0,5 ml-ével beoltjuk a következő összetételű inokulumA frozen spore suspension of the strain Streptomyces laurentii NCAIM 001150 (-20 to -30 ° C) was thawed at room temperature and inoculated with 30 ml of the following inoculum.
A táptalaj pH-ját autoklávozás előtt 7,4-re állítjuk NaOH-dal, autoklávozás (121 °C 20 perc) után a pH=6,3-6,5-re áll.The pH of the medium was adjusted to 7.4 with NaOH prior to autoclaving, and the pH to 6.3-6.5 after autoclaving (121 ° C for 20 minutes).
A nyomelem oldat összetétele:Composition of the trace element solution:
CoCl2 CoCl 2
CuCl2 CuCl 2
MgCl2 MgCl 2
CaCl2 CaCl 2
FeCl2 FeCl 2
ZnCl2 ZnCl 2
MnCl2 MnCl 2
NaClNaCl
HCl (0,05%-os) desztillált vízHCl (0.05%) distilled water
5g 0,027 g5g 0.027 g
35,5 g 0,59 g 0,48 g 0,20 g 0,30 g 0,25 g 8ml/l35.5 g 0.59 g 0.48 g 0.20 g 0.30 g 0.25 g 8ml / L
1000 ml-re kiegészítveMake up to 1000 ml
A TF-17 jelzésű táptalajból 50 ml-t teszünk 500 ml-es Erlenmeyer lombikba. A beoltott TF-17 táptalajban a tenyésztést 28 °C-on 180/perc fordulatszámú sikrázógépen 96 óráig folytatjuk. A fermentáció végén a fermentlé tiosztrepton tartalma 700-1100 μg/ml.Add 50 ml of TF-17 medium to a 500 ml Erlenmeyer flask. The inoculated TF-17 medium was cultured at 28 ° C in a 180 / min shaker for 96 hours. At the end of the fermentation, the thiostrepton content of the fermentation broth is 700-1100 μg / ml.
2. példaExample 2
A Streptomyces laurentii NCAIM 001149 jelzésű törzs mélyhűtve tárolt (-20-tól -30 °C-ig) spóraszuszpenzióját szobahőmérsékleten felolvasztjuk, és annak 0,5 ml-ével beoltjuk az 1. példában leírt Ti-15 jelzésű táptalajt. A továbbiakban mindenben az 1. példában leírtak szerint járunk el. A laboratóriumi fermentáció végén a fermentlé tiosztrepton tartalma 1500-1900 pg/ml.The frozen spore suspension of Streptomyces laurentii NCAIM 001149 (-20 to -30 ° C) was thawed at room temperature and inoculated with 0.5 ml of Ti-15 medium described in Example 1. In the following, all the procedures of Example 1 are followed. At the end of the laboratory fermentation, the thiostrepton content of the fermentation broth is 1500-1900 pg / ml.
3. példaExample 3
HU 209 929 Β kalcium-karbonát 80 kg polipropilén-glikol 13 kg kálium-dihidrogén-foszfát 1 kg alfa-amiláz 2 liter magnézium-klorid 710 g csapvíz 20000 literEN 209 929 Β calcium carbonate 80 kg polypropylene glycol 13 kg potassium dihydrogen phosphate 1 kg alpha-amylase 2 liters magnesium chloride 710 g tap water 20000 liters
A táptalaj pH-ját sterilezés előtt 7,6-7,8-ra állítjuk, sterilezés után (121 °C, 45 perc) a pH=6,2-6,5.The medium was adjusted to pH 7.6-7.8 before sterilization, and after sterilization (121 ° C, 45 minutes), the pH was 6.2-6.5.
A fermentációt 28 °C-os hőmérsékleten folytatjuk 4 napig, 0,5 bar belső túlnyomáson, 1200 m3/óra levegőztetés mellett. A keverő fordulatszáma az első 20 órában 50/perc, ezt követően a fermentáció végéig 100/perc. A 20. órától kezdődően a pH-t kénsav adagolással szabályozzuk úgy, hogy 6,2-6,8 között legyen. A fermentáció végén a fermentlé hatóanyag tartalma 1500 μg/ml.Fermentation was continued at 28 ° C for 4 days at an internal pressure of 0.5 bar with aeration of 1200 m 3 / h. The agitator speed is 50 rpm for the first 20 hours, then 100 rpm until the end of the fermentation. From the 20th hour onwards, the pH was adjusted to 6.2 to 6.8 by addition of sulfuric acid. At the end of the fermentation, the active substance content of the fermentation broth is 1500 μg / ml.
A fermentléből a tiosztreptont a következő módon különítjük el. A fermentáció végén a 20 °C-ra lehűtött fermentléből a sejteket szeparátorral összegyűjtjük. 20 m3 fermentléből 1500 kg nedves sejttömeget kapunk. Az összegyűjtött sejteket 5000 liter metanolban szuszpendáljuk, majd centrifugálás és metanolos mosás után a metanolos szuszpendálást és mosást 1500 liter metanollal megismételjük. A centrifugálással összegyűjtött metanolos sejttömeg 700 kg, ezt 2400 liter kloroform:metanol=l:l arányú elegyével extraháljuk. Az extraktumot az eredeti térfogat egytizedére (kb. 250 liter) bepároljuk 30-34 °C-on vákuumban, majd azonos térfogatú metanol hozzáadásával a tiosztreptont 4 °C-on kristályosítjuk. A kristályokat szűréssel összegyűjtjük, vákuum szárítószekrényben 25 °C-on szárítjuk, majd porítjuk. Fenti módon 20 m3 fermentléből 13 kg tiosztreptont nyerünk, melynek tisztasága HPLC-vel mérve 98%-os, biológiai aktivitása 1350 μg/ml.The thiostrepton is isolated from the fermentation broth as follows. At the end of the fermentation, cells are harvested from the fermentation broth cooled to 20 ° C with a separator. From 20 m 3 of fermentation broth, 1500 kg of wet cell mass is obtained. The harvested cells were resuspended in 5000 L of methanol, and after centrifugation and washing with methanol, the methanol suspension and wash were repeated with 1500 L of methanol. The methanol cell weight collected by centrifugation was 700 kg and extracted with 2400 liters of chloroform: methanol = 1: 1. The extract was evaporated to one-tenth of the original volume (about 250 L) at 30-34 ° C in vacuo and the thiostreptone crystallized at 4 ° C by addition of an equal volume of methanol. The crystals were collected by filtration, dried in a vacuum oven at 25 ° C and then pulverized. Above 20 m 3 of fermentation broth obtained 13 kg of thiostrepton with a purity by HPLC of 98%, the biological activity of 1350 pg / ml.
Claims (4)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU318791A HUT62942A (en) | 1991-10-09 | 1991-10-09 | Process for producing antibiotic |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU209929B true HU209929B (en) | 1994-12-28 |
Family
ID=10963015
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU318791A HUT62942A (en) | 1991-10-09 | 1991-10-09 | Process for producing antibiotic |
HU147692A HU209929B (en) | 1991-10-09 | 1991-10-09 | Process for production of thiostrepton antibiotic process for production of thiostrepton antibiotic |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU318791A HUT62942A (en) | 1991-10-09 | 1991-10-09 | Process for producing antibiotic |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
HU (2) | HUT62942A (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2023043982A1 (en) * | 2021-09-17 | 2023-03-23 | Rs Oncology, Llc | Thiostrepton compositions and preparation thereof |
-
1991
- 1991-10-09 HU HU318791A patent/HUT62942A/en unknown
- 1991-10-09 HU HU147692A patent/HU209929B/en not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2023043982A1 (en) * | 2021-09-17 | 2023-03-23 | Rs Oncology, Llc | Thiostrepton compositions and preparation thereof |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
HUT62942A (en) | 1993-06-28 |
HU913187D0 (en) | 1992-01-28 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Cang et al. | High production of prodigiosin by Serratia marcescens grown on ethanol | |
EP0271581B1 (en) | Novel compounds dc-88a and dc-89a1 and process for their preparation | |
Lee et al. | Effect of nitrogen source on biosynthesis of rapamycin by Streptomyces hygroscopicus | |
EP0388152B1 (en) | Process for producing an immunosuppressant agent (demethimmunomycin) using a mutant strain of a microorganism | |
HU182267B (en) | Process for preparing the antibiotic c-15003 p-3 | |
US5407826A (en) | Isolated cultures of microorganisms of Clonostachys Cylindrospora, Gliocladium and Nectria Gliocladioides | |
US20070142424A1 (en) | Process for producing tacrolimus (FK-506) using vegetable oil as sole source of carbon | |
EP0345735B1 (en) | Glycoside antibiotics bu-3608d and bu-3608e | |
EP0765938B1 (en) | Fermentative production of vitamin B6 | |
EP0213536B1 (en) | Process for producing l-threonine by fermentation | |
US4954641A (en) | Novel antitumor antibiotic substance and a method for production thereof | |
US20080318289A1 (en) | Fermentation Processes for the Preparation of Tacrolimus | |
HU194306B (en) | Process for influencing biosynthesis of antibiotics with in vivo genetical recombination | |
KR870001987B1 (en) | Process for preparing enduracidin | |
Kim et al. | STUDIES ON MIKAMYCIN B LACTONASE I. DEGRADATION OF MIKAMYCIN B BY STREPTOMYCES MITAKAENSIS | |
HU209929B (en) | Process for production of thiostrepton antibiotic process for production of thiostrepton antibiotic | |
JPH06237761A (en) | Streptomyces strain for producing antiparasitic compound and method for production thereof by using said strain | |
KR100422307B1 (en) | Microorganism producing riboflavin and production method of riboflavin using thereof | |
EP0444503A2 (en) | Staurosporine fermentation process | |
JP2583554B2 (en) | New substance DC-107 | |
EP1671640A1 (en) | Mutant strain of Actinoplanes teichomyceticus for the production of teicoplanin | |
IE912643A1 (en) | A novel antibiotic, Balhimycin, a process for its production¹and its use as pharmaceutical | |
US5272068A (en) | Process for producing immunosuppressant agent L-683942 by fermentation | |
CN114854613A (en) | Streptomyces albus strain, application thereof and method for producing neomycin | |
US4600691A (en) | R-(Z)-4-amino-3-chloro-2-pentenedioic acid, novel antibacterial agent |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |