HU193585B - Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms - Google Patents

Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms Download PDF

Info

Publication number
HU193585B
HU193585B HU305984A HU305984A HU193585B HU 193585 B HU193585 B HU 193585B HU 305984 A HU305984 A HU 305984A HU 305984 A HU305984 A HU 305984A HU 193585 B HU193585 B HU 193585B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
acrylamide
medium
solution
microorganisms
polyacrylamide gel
Prior art date
Application number
HU305984A
Other languages
Hungarian (hu)
Other versions
HUT37955A (en
Inventor
Vladimir V Gasinszkij
Tatjana I Krainjukova
Natalja V Kokosa
Vladimir G Kolladenko
Viktor I Stepanenko
Borisz E Bilics
Vitalij F Maidanjuk
Vladimir P Egorov
Valerij G Vojtszekovszkij
Igor N Morgunov
Nikolaj N Marcsenko
Mihail M Kolesznikov
Viktor A Pavlenko
Jurij D Gots
Original Assignee
Kijevszkij Medicinszkij Inst I
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kijevszkij Medicinszkij Inst I filed Critical Kijevszkij Medicinszkij Inst I
Priority to HU305984A priority Critical patent/HU193585B/en
Publication of HUT37955A publication Critical patent/HUT37955A/en
Publication of HU193585B publication Critical patent/HU193585B/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

A találmány tárgya eljárás mikroorganizmusok és makroorganizmusok sejtkultúráinak tenyésztésére alkalmas, szilárd táptalaj előállítására akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid fiziológiás oldatban, gyökös iniciátor jelenlétében végzett kopolimerizációjával, majd a kapott poliakrilamid-gél fiziológiás oldattal való átmosásával, oly módon, hogy (15,0 20,0) : (0,019—0,132) tömeg- arányú akril amid- Ν,Ν’-metilén-bisz-akril amid monomerkeveréket kopolimerizálják, valamely fiziológiás oldattal mossák és a kimosás után kiváló poliakrilamid-gélt a) a fiziológiás oldattal duzzasztják, amíg tömege 2,8—4,5-szörösére növekszik, majd valamely folyékony tápközeggel kezelik, vagy b) valamely folyékony tápközeggel duzzasztják, amíg tömege 2,5—3,5-szörösére növekszik. -1-The present invention relates to a solid culture medium for culturing microorganisms and microorganisms of cell cultures by copolymerization of acrylamide and N, N'-methylene-bis-acrylamide in physiological saline, in the presence of a radical initiator, and washing of the resulting polyacrylamide gel with a physiological solution such that: (15.0 20.0): copolymerize acrylic amide Ν, Ν-methylene-bis-acrylic amide monomer mixture (0.019 to 0.132), wash with a physiological solution and wash out the polyacrylamide gel after washing (a) physiological with a liquid medium, or b) swollen with a liquid medium until its weight increases 2.5 to 3.5 times. -1-

Description

A találmány tárgya eljárás mikroorganizmusok és makroorganizmusok sejtkultúráinak tenyésztésére alkalmas, szilárd táptalajok előállítására.The present invention relates to a process for the production of solid media for culturing cell cultures of microorganisms and macroorganisms.

Jelenleg a mikrobiológiai gyakorlatban általában agar-agar természetes gélbázisú, szilárd táptalajokat alkalmaznak, amely igen költséges és felhasználása gyakran deficites. Ezért a szintetikus bázisú, az agar-agar mikrobiológiai területen helyettesítő gélfajták kidolgozásával kapcsolatos fejlesztések igen aktuálisak.Currently, in microbiological practice, agar-agar is generally a natural gel-based solid medium which is very expensive and often deficient in use. Therefore, developments in the development of synthetic-based gel varieties replacing agar-agar in the microbiological field are very topical.

A 659 619 számú szovjet szabadalmi leírásból ismert az az eljárás, amely szerint mikroorganizmusok tenyésztésére alkalmas, .szilárd táptalajt pkrilamid és N,N’-metilénúbisz-akrilamíd .kopoiimerizációjávai, majd a 1(Spoti ^liakjjl^id-gél vizes mosásával és az ezt követő tápanyaggal való átitatásával és sterilizációval állítanak elő.From U.S. Patent No. 659,619, there is known a process for culturing microorganisms in solid medium by copolymerization of prylamide and N, N'-methylenebisacrylamide followed by aqueous washing of 1 (Spotolyl lactide) gel with soaked in nutrients and sterilized.

A poliakrilamid-gél táptalaj-alapként való alkalmazásának fő előnye abban rejlik, hogy az stabil összetételű, megfelelő, vizes mosása után nem tartalmaz olyan anyagokat, amelyek a mikroorganizmusok tenyésztését károsan befolyásolnák, továbbá nincs szükség a felhasználás előtti derítésre. A fenti szabadalmi leírás szerinti eljárással előállított és szilárd táptalajként számításba jövő poliakrilamid-gél meglehetősen nagy keménységű, amely a poliakrilamid nagyfokú térhálósodására vezethető vissza, és megnehezíti a tápanyag nagymolekulájú frakcióinak a hordozóba való bediffundálását. Az ilyen táptalajokról a tenyésztett mikroorganizmusok levétele csak fiziológiai oldattal való öblítéssel végezhető el.The main advantage of using the polyacrylamide gel as a substrate base is that it has a stable composition, suitable after washing with water, and does not contain substances that would adversely affect the cultivation of microorganisms and does not require clarification before use. The polyacrylamide gel produced by the process of the above-mentioned patent and used as a solid medium is quite hard, due to the high cross-linking of the polyacrylamide and makes it difficult to diffuse the high molecular weight fractions of the nutrient into the carrier. The removal of cultured microorganisms from such media can only be accomplished by rinsing with saline.

A 977 466 számú szovjet szabadalmi leírás egy másik, szintén biológiai és orvosi célra alkalmas poliakrilamid-gél előállítására alkalmas előállítási eljárást ismertetnek, amely felhasználható szilárd táptalajok alapjaként. Ezen eljárás szerint az akrilamid és Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid kopolimerizációját 0,5%-os nárium-klorid oldatban, gyökös iniciátor jelenlétében végzik, és a kiindulási anyagokat 0,5—40,0 : 2,5—12,0 tömegarányban alkalmazzák.US-A-977466 discloses another process for the production of a polyacrylamide gel, also for biological and medical purposes, which can be used as a base for solid media. According to this procedure, the copolymerization of acrylamide and Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide is carried out in a 0.5% sodium chloride solution in the presence of a radical initiator, and the starting materials are 0.5 to 40.0: 2.5 to 12 , 0 in weight ratio.

Az így előállított polakrilamid-gélt, amely a kopolimerizáció befejezése után a maximálisan lehetséges vízmennyiséget tartalmazza, 0,5%-os nátrium-klorid oldattal mosnak 12 órán keresztül a reagálatlan monomerek eltávolítására, miközben az oldatot 4 óránként cserélik. Az így nyert poliakrilamid-gél összetétele a következő:The resulting polyacrylamide gel, which contains the maximum amount of water after completion of the copolymerization, is washed with 0.5% sodium chloride solution for 12 hours to remove unreacted monomers, and the solution is changed every 4 hours. The resulting polyacrylamide gel has the following composition:

poliakrilamid 3,0—28 tömeg%polyacrylamide 3.0-28% by weight

0,5%-os nátrium-klorid oldat 72,0—97,0 tömeg%0.5% sodium chloride solution, 72.0 to 97.0% by weight

Az így nyert poliakrilamid-gélt különböző mikroorganizmusok tenyésztésére alkalmas tápoldatokkal, így például hús-pepton-húsleves szubsztrátumokkal itatják át.The resulting polyacrylamide gel is soaked in nutrient media suitable for culturing various microorganisms, such as meat-peptone broth substrates.

A fenti eljárás szerint előállított, szilárd táptalaj nem tartalmaz toxikus monomereket, 2 és alkalmazható különböző mikroorganizmusok, állati- és emberi sejtek biológiai tulajdonságainak tanulmányozására.The solid medium prepared according to the above procedure is free of toxic monomers 2 and can be used to study the biological properties of various microorganisms, animal and human cells.

Hátránya azonban a fenti eljárás szerint előállított géleknek, hogy· keménysége miatt felületük a különböző műveletek során igen sérülékeny, így például a sterilizáció, a mikroorganizmusokkal való beoltás vagy a kolóniák bakteriológiai kaccsal való levétele során könnyen megsérül. Továbbá a mikroorganizmusok levétele ismételt inokulálás után csupán fiziológiai oldattal való öblítéssel végezhető, amely a legtöbb mikrobiológiai munkafolyamatnál nem előnyös. Különösen komplikált ez a folyamat a mikroorganizmusok hoszszab tenyésztése esetén.However, the disadvantages of gels prepared according to the above process are that their hardness makes their surface very vulnerable to various operations, such as sterilization, inoculation with microorganisms or bacteriological stripping of colonies. Furthermore, the microorganisms can be removed after repeated inoculation only by rinsing with saline, which is not advantageous in most microbiological workflows. This process is particularly complicated in the case of long cultivation of microorganisms.

Találmányunk célja olyan eljárás biztosítása, amellyel a mikroorganizmusok és sejtkultúrák tenyésztésére alkalmas olyan szilárd táptalajok állíthatók elő, amelyek fizikai-kémiai tulajdonságaik révén a mikrobiológiai felhasználás területét kiszélesíthetik.SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to provide a process for producing solid media suitable for culturing microorganisms and cell cultures which, by virtue of their physico-chemical properties, can broaden the field of microbiological application.

A célkitűzés szerinti feladatot olyan eljárással oldhatjuk meg, amely során akrilamidot Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamiddal fiziológiás oldatban gyökös iniciátor jelenlétében, a kiindulási anyagokat 15,0—20,0 :The object of the present invention can be accomplished by a process wherein acrylamide is prepared with Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide in physiological saline in the presence of a radical initiator, starting from 15.0 to 20.0:

: 0,019—0,132 tömegarány szerint alkalmazva, kopolimerizálunk, és a kimosás után kiváló poliakrilamid-gélt a fiziológiás oldatban tartjuk addig, amíg tömege 2,8—4,5-szeresére növekszik, ill. a mosás után kicsapódó poliakrilamid-gélt valamely folyékony tápközegben tömegének 2,5—3,5-szörösére duzzasztjuk.: 0.019-0.132% (w / w) copolymerize and after washing wash the excellent polyacrylamide gel in saline until its weight is 2.8-4.5 times. the polyacrylamide gel which precipitates after washing is swollen in a liquid medium 2.5 to 3.5 times its weight.

A találmány szerinti eljárással előállított, szilárd táptalaj a különféle behatásokkal szemben ellenálló, a vele való különböző műveletek során nem károsodik, sűrűsége megközelíti az agar-agar sűrűségét, elasztikus és adhéziós tulajdonságai jók (jól tapad a Petri-csészéhez). összehasonlítva ismert szilárd táptalajokkal, a találmány szerinti eljárással előállított, szilárd táptalaj az inokuláció és a mikroorganizmusok levételénél jó csúszási tulajdonságokat mutat, és felülete nem sérülékeny.The solid medium produced by the process of the present invention is resistant to various influences, is not damaged during various operations, has a density close to that of agar, has good elastic and adhesive properties (adheres well to a Petri dish). Compared to known solid media, the solid media produced by the process of the present invention exhibits good slip properties when inoculated and microorganisms are removed and its surface is not vulnerable.

A mikroorganizmus-kultúrák az újtípusú, szilárd táptalaj felületén jól eloszlanak, anélkül, hogy belenőnének, így biztosíthatók a kedvező életfeltételek, ami növelheti a biomassza kitermelést. A kopolimerizáció során a szilárd táptalaj minőségének növelése érdekében az akrilamidból és N,N’-metilén-bisz-akrilamidból álló kiindulási keverék tömegaránya a fiziológiás oldathoz viszonyítva a polimerizációs reakció során megteremti a feltételét egy olyan háromdimenziós, térhálós szerkezetű poliakrilamid-gél kialakulásának, amely előnyös fizikai-mechanikai tulajdonságokat biztosít a belőle kialakítandó, szilárd táptalajnak.Microorganism cultures are well dispersed on the surface of a new type of solid medium without ingestion, thus providing favorable living conditions, which can increase biomass yield. In order to increase the quality of the solid medium during copolymerization, the weight ratio of the starting mixture of acrylamide and N, N'-methylene-bis-acrylamide to the physiological solution during the polymerization reaction creates a precondition for the formation of a three-dimensional, cross-linked polyacrylamide gel. it provides the physical-mechanical properties of the solid medium to be formed.

A találmány szerinti eljárással előállított, szilárd táptalajok mikrobiológiai célú felhasználási területének kiszélesítése érdekében fiziológiás sóoldatként előnyösen 0,85%-osIn order to broaden the microbiological application of the solid media produced by the process of the invention, it is advantageous to use 0.85% saline as a saline solution.

-2193585 vizes nátrium-klorid oldatot, Ringer-Locke-, Earl-, Hanks-féle oldatot (összetételüket lásd:-2193585 aqueous sodium chloride solution, Ringer-Locke, Earl, Hanks solution (for composition see

D. Pol: „Sejt- és szövetkultúrák, Medgiz kiadó, 1963, 96. old.), ill. 5%-os vizes glükózoldatot és folyékony tápközegként Hottinger-féle tripszin emésztőoldatot, Marten-féle húsleves tápközeget (összetételüket lásd: J. A. Kozlov: „Tápközegek az orvosi mikrobiológiában, Medgiz kiadó, 1950, 51-52. és 63. oldal), hús-pepton-húsleves tápközeget, pepton-víz-oldatot, kazeinhidrolizátumot, sókeverékes- vagy 199-jelü tápközeget (összetételüket lásd: D. Pol: „Sejt- és szövetkultúrák”, Medgiz kiadó, 1963, 103. oldal) alkalmazunk.D. Pol: "Cell and Tissue Cultures, Medgiz Publishers, 1963, p. 96), respectively. 5% aqueous glucose solution and Hottinger's trypsin digestion solution as a liquid medium, Marten's broth medium (for composition, see JA Kozlov, "Mediums for Medical Microbiology, Medgiz, 1950, pp. 51-52 and 63), peptone broth medium, peptone water solution, casein hydrolyzate, saline or 199 medium (for composition see D. Pol, "Cell and Tissue Cultures", Medgiz, 1963, p. 103).

Gonococcusok tenyésztése esetén a fiziológiás oldatban megduzzasztott poliakrilamid-gélt célszerűen folyékony tápközegben kezeljük, amely tápközeg inaktivált, sterilizált emberi vérszérum és emberi vérből nyert vérkészítmény, plazmol 1:1 arányú keveréke. Az ily módon előállított,szilárd táptalaj a gonococcus-kultúrák igen jó minőségű tenyésztését biztosítja, morfológiai, színezékkultúra és más biológiai tulajdonságai megtartása mellett. E szilárd táptalaj alkalmazásával növelhető a gonorrhca kimutatásának és bakteriológiai diagnosztizálhatóságának lehetősége, különösen annak krónikus és torpid (renyhe) lefutású formáinak esetében. E szilárd táptalaj előállítási ideje más, a gonococcusok tenyésztésére alkalmas, szilárd táptalajok (pl. aszcites hús-pepton-agar, Baily-agar (összetételét lásd J. A. Kozlov fentiekben idézett könyve, 63. old.), szérum-agar) előállítási idejéhez viszonyítva jelentősen rövidebb és számos igen költséges komponens alkalmazása kiküszöbölhető.In the case of culturing gonococci, the swollen polyacrylamide gel in saline is suitably treated in a liquid medium which is a 1: 1 mixture of inactivated, sterilized human blood serum and human blood derived plasma product. The solid medium thus produced provides high quality cultures of gonococcal cultures while maintaining morphological, dye culture and other biological properties. The use of this solid medium increases the chances of detection and bacteriological diagnosis of gonorrhea, particularly in chronic and torpid (reny) forms. The production time of this solid medium is significantly greater than that of other solid media suitable for culturing gonococci (e.g., ascites meat peptone agar, Baily agar (for composition see JA Kozlov, cited above, p. 63), serum agar). shorter and many costly components can be eliminated.

A találmány szerinti, szilárd táptalajok felhasználási területének kiszélesítése érdekében a poliakrilamid-gélt a kopolimerizáció során két lapos csíkban is kialakíthatjuk. Ezek közül az egyiken üregeket képezünk ki koaxiális vagy sakktábla-szerű elrendezésben, majd ezeket a csíkokat itatjuk át 15,0—20,0 : :0,019—0,132 tömegarányban összekevert akrilamid és Ν,Ν'-metilén-bisz-akrilamid oldatokkal,és úgy hozzuk őket össze, hogy zárt üregek alakuljanak ki a mikroorganizmusok és sejtkultúrák tenyésztése számára. Az egymásra nelyezett csíkokat addig tartjuk így, amíg egységes blokk alakul ki, majd olyan részekre választjuk szét, amelyek mindegyike legalább egy üreget foglal magába. Az így kapott darabokat fiziológiás oldatban duzzasztjuk, majd folyékony tápközeggel kezeljük.In order to expand the field of application of the solid media according to the invention, the polyacrylamide gel may be formed in two flat strips during copolymerization. One of these is cavities formed in a coaxial or chessboard-like arrangement, and these strips are soaked in solutions of acrylamide and Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide in a ratio of 15.0 to 20.0: 0.019-0.132, and so on. bringing them together to form closed cavities for the cultivation of microorganisms and cell cultures. The interlaced strips are thus held until a uniform block is formed and then separated into sections each containing at least one cavity. The resulting pieces were swelled in saline and treated with liquid medium.

Az ily módon előállított, zárt üregeket tartalmazó darabok mint diffúziós kamrák működnek, és a poliakrilamid-gél előnyös tulajdonságainak következtében jó szilárdságot, elasztikusságot és hőállóságot mutatnak. Könnyen reprodukálhatók, hosszú ideig tárolhatók, sterilizálhatok. Ez a diffúziós kamra formájában előállított^szilárd táptalaj széles4 körűen alkalmazható in vivő és in vitro felhasználás során egyaránt, és valamely organizmusba, például állatok hasüregébe való transzplantációjuk során atraumatikusak. Az organizmus számára inertek, amely tény a kamraüregbe bevitt objektumok és a különböző környezeti faktorok kölcsönhatásának vizsgálata során igen nagy fontosságú.The cavities formed in this way function as diffusion chambers and, due to the advantageous properties of the polyacrylamide gel, exhibit good strength, elasticity and heat resistance. Easy to reproduce, long-term storage, sterilization. This solid medium in the form of a diffusion chamber is widely applicable for both in vivo and in vitro use and is atraumatic when transplanted into an organism such as the abdominal cavity of an animal. They are inert to the organism, which is very important when examining the interaction between objects introduced into the ventricular cavity and various environmental factors.

A poliakrilamid-gél előnyös tulajdonságai, nak következtében a belőle előállított diffúziós kamrák igen jó diffúziós tulajdonságokat mutatnak, amely lehetővé teszi, hogy a kamrák üregében elhelyezett vizsgálandó sejtkultúrához a szükséges táp- és egyéb anyagok eljussanak, és otta kívánt hatásukat kifejtsék. További előnye ezen objektumoknak, hogy transzparensek, így a vizsgálandó sejtkultúrák, ill. mikroorganizmusok mikroszkopikus úton megfigyelhetők.Due to the advantageous properties of the polyacrylamide gel, the diffusion chambers produced therefrom exhibit very good diffusion properties, which allow the necessary nutrients and other substances to reach the desired cell culture in the chamber cavity and exert their desired effect. A further advantage of these objects is that they are transparent, such as the cell cultures to be examined and the cells. microorganisms can be observed microscopically.

Mikroorganizmusok tenyésztésére alkalmas, szilárd táptalajt a következőképpen készítünk. Először elkészítjük a reakciókeveréket, amely a kiindulási monomereket fiziológiás oldatban tartalmazza, és amelyben az akrilamid és Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid tömegaránya 15,0—20,0 : 0,019—0,132.Solid media suitable for culturing microorganisms are prepared as follows. First, a reaction mixture is prepared which contains the starting monomers in physiological saline and has a weight ratio of acrylamide to Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide of 15.0 to 20.0: 0.019 to 0.132.

Fiziológiás oldatként a monomerkeverékhez 4:1—7, ill. I tömegarányban 0,85%-os vagy 0,9%-os nátrium-klorid oldatot, 5%-os vizes glükóz oldatot, Ringer-Locke-, Hanksvagy Earl-oldatot alkalmazunk. A kiindulási monomerkeverék és a fiziológiás oldat egymáshoz viszonyított súlyarányát változtatva, különböző típusú poliakrilamid-géleket nyerünk. Ezek mindegyike az ismert géleknél elasztikusabb, feldolgozásuk egyszerűbb és igen jómínőségü táptalajt szolgáltatnak.As a saline solution, the monomer mixture is 4: 1 to 7, respectively. 0.85% or 0.9% sodium chloride solution, 5% glucose solution in water, Ringer-Locke, Hanks or Earl solution are used. By varying the weight ratio of the starting monomer mixture and saline, different types of polyacrylamide gels are obtained. All of them are more elastic than the known gels and provide a simpler and high quality medium.

A kiindulási monomerek kopolimerizációját végezhetjük melegítéssel vagy anélkül, ismert iniciátorok alkalmazása mellett. Az alkalmazott reaktor anyaga lehet üveg, fém, kerámia vagy műanyag. A kopolimerizációs reakció során a képződő poliakrilamid-gél felvesszi a reaktor alakját. A kopolimerizáció után a képződött poliakrilamid-gélt fiziológiás oldattal átmossuk, majd fiziológiás oldatban tömegének 2,8—4,5-szörösére duzzasztjuk, majd a kapott gélt folyékony táptalajjal kezeljük. Erre a célra alkalmazhatunk tripszin emésztési Hottinger-féle oldatot, Marten-húslevest, hús-pepton-husleves oldatot, pepton-víz oldatot, kazeinhidrolizátumot, sókeverékes és 199 jelű táptalajt.Copolymerization of the starting monomers may be carried out with or without heating, using known initiators. The reactor material used may be glass, metal, ceramic or plastic. During the copolymerization reaction, the resulting polyacrylamide gel takes the form of a reactor. After copolymerization, the resulting polyacrylamide gel is washed with saline, swelled in saline 2.8 to 4.5 times its weight and treated with the liquid medium. Trypsin digestion Hottinger's solution, Marten's broth, meat-peptone-broth solution, peptone-water solution, casein hydrolyzate, saline and 199 medium can be used for this purpose.

A találmány szerinti eljárás egy másik kiviteli alakjánál a fiziológiás oldattal átmosott poliakrilamid-gélt valamely íentemlített, folyékony tápközegben közvetlenül duzzasztjuk tömegének 2,5—3,5-szörösére, majd a megduzzadt poliakrilamid-gélt sterilizáljuk. Az így nyert szilárd tápközeg felhasználására kész és előnye, hogy a biomassza-kitermelés igen jó.In another embodiment of the process of the invention, the polyacrylamide gel washed with saline is directly swollen in a fluid medium of 2.5 to 3.5 times its weight and then the swollen polyacrylamide gel is sterilized. The solid medium thus obtained is ready for use and has the advantage that the biomass yield is very good.

Az alkalmazásra kerülő folyékony tápközeg összetétele a mikroorganizmusok konk3The composition of the liquid medium used is the microorganism conc3

-3193585 rét csoportjának tápanyag igényétől függ. A találmány szerinti eljárással előállított poliakrilamid-gélek duzzasztására alkalmazható bármely, ismert, folyékony tápközeg, amely az ismert mikroorganizmusok és sejtek tápanyagigényét kielégítik, beleértve a természetes, félszintetikus és szintetikus szubsztrátum összetételeket és ezek keverékét is. A találmány szerinti eljárással előállított, mikroorganizmusok és sejtkultúrák tenyésztésére alkalmas, szilárd tápközegek adhéziós tulajdonságai jók (a Petri-csészéhez jól tapadnak), különböző, behatásokkal szemben ellenállók, a műveletek során nem károsodnak, a mikroorganizmusok inokulációja és levétele során a bakteriológiai kacsnak jó csúszást biztosítanak, anélkül, hogy a felülete megsérülne.-3193585 depends on the nutritional requirements of the group of meadows. Any known liquid medium that meets the nutritional requirements of known microorganisms and cells, including natural, semi-synthetic and synthetic substrate compositions and mixtures thereof, can be used to swell the polyacrylamide gels of the present invention. The solid media produced by the process of the invention for cultivation of microorganisms and cell cultures have good adhesion properties (good adhesion to Petri dishes), various resistance to action, no damage during operations, good slip of bacteriological duck during inoculation and removal of microorganisms. , without damaging its surface.

A mikroorganizmus-kultúrák a táptalaj felületén jól eloszlanak — anélkül, hogy belenőnének — a mikroorganizmusok életműködéséhez optimális feltételeket teremtve, miáltal növelhető a biomasszakitermelés.Microorganism cultures are well distributed on the surface of the medium without being ingested, creating optimal conditions for the microorganisms to function, thereby increasing biomass production.

A szilárd táptalajok fentiekben felsorolt tulajdonságait a duzzasztott poliakrilamid-gél biztosítja, és ezt, mint azt már korábban is említettük, előnyösen alkalmazhatjuk gonococcus-kultúrák tenyésztésére. A fiziológiás oldatban előnyösen a tömegének 4,5-szörösére duzzasztott poliakrilamid-gélt folyékony tápközeggel kezelünk, amely tápközeg inaktivált, steril emberi vérszérum és plazmol keveréke.The above-mentioned properties of the solid media are provided by the expanded polyacrylamide gel and, as mentioned above, can be advantageously used for culturing gonococcal cultures. Preferably, the polyacrylamide gel, swelled at 4.5 times its weight in saline, is treated with a liquid medium which is a mixture of inactivated, sterile human blood serum and plasmol.

A plazmol emberi vérből előállított, színtelen vagy enyhén sárgás színű vagy gyengén áttetsző, jellegzetes szagú gyógyszerkészítmény, amelyet 100°C hőmérsékleten és 1,2—105 Pa nyomáson sterilizálnak.The plazmol, colorless or slightly yellowish transparent or weakly characteristic odor pharmaceutical composition in the human blood, which has been sterilized at 100 ° C and 1.2 to 10 5 psi.

A gonorrhea differenciált diagnosztikájánál a következőképpen járunk el.The differential diagnosis of gonorrhea is as follows.

A poiiakrilamid lapocskákat fiziológiás oldatban 4,5-szörösére duzzasztjuk, Petri-csészébe helyezzük, ismert módon sterilizáljuk, hozzápipettázunk 0,25—0,5 mi emberi vérszérumot, 0,25—0,5 ml plazmolt és ismert módon inaktiváljuk. Ezután 20 akut gonorrheas betegtől származó, válogatott, agarszérumon tenyésztett gonococcus kultúrával ismételten beoltjuk, összehasonlításul is ezt az agarszérum táptalajt alkalmazzuk (I. M. Ovesinyikov: Laboratóriumi diagnosztika, Moszkva, Medicina kiadó, 1967, 67-69). Az inokulátumokat tartalmazó Petri-csészéket ezután exszikkátorba helyezzük és 24 órán át 37°C-on termosztáljuk. A szérumtalajon a poliakrilamid-géllel tenyésztett gonorrhea kolóniák simafelületű harmatcsepphez hasonló formában oszlanak szét a felületen, színtelenek és áttetszőek. A bakterioszkópos vizsgálat során a kolóniákból készített kénetekből gramnegatív, babszerű diplococcus mutatható ki. (A kolóniák színezését Gram, ill. a 826208 számú „Eljárás gonorrhea és bakteriális ureteritis differenciált diagnosztizálására című szabadalmi leírás alapján végeztük.)Polyacrylamide disks were swelled 4.5 times in saline, placed in a Petri dish, sterilized in a known manner, pipetted with 0.25-0.5 ml of human blood serum, 0.25-0.5 ml of plasma and inactivated in known manner. Subsequently, inoculated cultures of selected gonococcal cultures from 20 patients with acute gonorrhea are again inoculated using this agar serum medium (I. M. Ovesinikov: Laboratory Diagnostics, Moscow, Medicina Publisher, 1967, 67-69). Petri dishes containing the inoculum were then placed in a desiccator and thermostated for 24 hours at 37 ° C. Gonorrhea colonies cultured on polyacrylamide gel are distributed on the serum in a form similar to a smooth surface dew drop, colorless and translucent. Gram-negative, bean-like diplococcus can be detected in bacterial scintillation by sulfur prepared from colonies. (Colonization was performed according to Gram and 826208, "Procedure for the differential diagnosis of gonorrhea and bacterial ureteritis.")

Egy másik vizsgálatnál a találmány szerinti táptalajon az inokulációt 30 akut, ill. kro4 nikus gonorrhea-s megbetegedésben szenvedő beteg uréteréből vett mintákkal végeztük. A diagnózist bakterioszkópos (színezés Gram, ill. a 826208 számú szovjet szabadalmi leírás szerint) és bakteriológiai eljárással (szérum-agar talajba való inokuláció) bizonyítottuk, A találmány szerinti táptalajon ismét igen jó eredménnyel tenyésztettük a gonorrhea törzseket.In another assay, the inoculation medium according to the invention was administered 30 or more times. was performed on ureter samples from a patient with chronic gonorrhea. Diagnosis was confirmed by bacterioscopy (Gram staining or US Patent No. 826208) and bacteriological procedure (inoculation into serum agar). Gonorrhea strains were again bred with good results in the culture medium according to the invention.

Kísérleteink eredményeképpen megállapítottuk, hogy a napi kultúrák növekedése a találmány szerinti táptalajon sokkal intenzívebb, mint más, ismert táptalajon. A gonococcus kolóniák a találmány szerinti táptalajon növekedésük során megtartották morfológiai, színezék- és kultúratulajdonságait. E táptalajok alkalmazásával a diagnosztikai módszerek gonorrhea esetében — különösen annak torpid és krónikus formáinál — jelentősen kiszélesíthetek.As a result of our experiments, it has been found that the growth of daily cultures on the medium according to the invention is much more intensive than on other known media. Gonococcal colonies retained their morphological, dye, and culture properties as they grew on the medium of the invention. By using these media, diagnostic methods for gonorrhea, especially its torpid and chronic forms, can be significantly expanded.

Mikroorganizmusok és makroorganizmus-sejtkultúrák kölcsönhatásának és ezek in vivő és in vitro hatásmechanizmusának vizsgálatánál a tenyésztéshez szükséges táptalajt a következőképpen állítjuk elő.For the study of the interaction of microorganisms and macroorganism cell cultures and their in vivo and in vitro mechanism of action, the culture medium for cultivation is prepared as follows.

Akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid és egy gyökös iniciátor — például tetrametilén-diamin és ammónium-peroxo-diszulfát keveréke — fiziológiás oldatban készített keverékét egy reaktorban kopolimerizáljuk. A képződött poliakrilamid-gélből két lapos csíkot készítünk, amelyek közül az egyikben koaxiális vagy sakktábla-szerű elrendezésben üregeket alakítunk ki. E csíkokat ezután akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid oldatok 15,0—20,0 : 0,019—0,132 tömegarányú keverékével átitatjuk, és oly módon helyezzük egymásra, hogy zárt üregek alakuljanak ki, amelyek később a mikroorganizmusok, ill. sejtkultúrák tenyésztésére szolgálnak. A csíkokat ezután egy egységes blokk kialakulásáig állni hagyjuk, majd olyan részekre választjuk szét, amelyek mindegyike legalább egy üreget tartalmaz.A mixture of acrylamide and N, N'-methylene bis-acrylamide and a radical initiator such as a mixture of tetramethylenediamine and ammonium peroxodisulfate is copolymerized in a reactor in a reactor. The resulting polyacrylamide gel is formed into two flat strips, one of which forms cavities in a coaxial or chessboard arrangement. These strips are then impregnated with a mixture of acrylamide and N, N'-methylene-bis-acrylamide solutions in a weight ratio of 15.0 to 20.0: 0.019 to 0.132, and superimposed to form closed cavities, which are then microorganisms or microorganisms. cell cultures. The strips are then allowed to stand until a single block is formed and then separated into sections each containing at least one cavity.

Ezek a kis üregeket magában foglaló darabok diffúziós kamráknak tekinthetők, amelyeket fiziológiás oldatban térfogatuk 2,5— —4,5-szörösére duzzasztunk, maid a vizsgálandó mikroorganizmusnak, ill. sejtkultúrának megfelelően kiválasztott, folyékony táptalajjal kezeljük. Az a tény, hogy, a csíkok kialakításához és ezek későbbi átalakításához azo nos összetételű reakciókeveréket alkalmaztunk, biztosítja, hogy a diffúziós, kamrák szerkezete és a falvastagsága egyenletes, ami lehetővé teszi az anyagok egyenletes diffúzióját.These small cavities are considered as diffusion chambers, which are swollen 2.5 to 4.5 times their volume in physiological saline, and are thus the microorganism to be tested. liquid culture medium selected according to cell culture. The fact that an identical mixture reaction mixture was used to form the strips and subsequently convert them ensures that the diffusion, chamber structure, and wall thickness are uniform, allowing uniform diffusion of the materials.

Az üregek elrendezésétől függően kialakíthatunk olyan csíkokat, amelyekben csak egy, vagy olyanokat, amelyekben több üreg helyezkedik el. Az üregek távolsága és a csík vastagsága a felhasználástól függ. Előnyösen több üreget tartalmazó csíkok esetében, az üregek távolsága 0,5—2,0 mm és sakktáblaszerüen vannak elrendezve. Ez optimális,Depending on the arrangement of the cavities, strips having only one or several cavities may be formed. The distance between the cavities and the thickness of the strip depends on the application. Preferably, for strips comprising multiple cavities, the cavities have a spacing of 0.5 to 2.0 mm and are arranged in a chessboard-like manner. This is optimal,

-4193585 diffúziós folyamatokat tesz lehetővé az egymástól elválasztott kamrák között. Ugyanakkor meg van a lehetőség többkomponensű rendszerek esetében az egymás között vagy a környezettel lejátszódó kölcsönhatás, valamint az élő organizmusokat befolyásoló különböző hatások vizsgálatára is. Egy üreget tartalmazó kamrák esetében az üregeket koaxiálisán képezzük ki.-4193585 allows diffusion processes between separated chambers. At the same time, it is possible to study the interaction between each other or the environment and the various effects on living organisms in multi-component systems. For chambers containing a cavity, the cavities are coaxially formed.

A fenti módon előállított kamrákat makroés mikroorganizmusok sejtjeinek in vivő és in vitro tanulmányozására alkalmazzuk. E célból a kamrák üregébe például injekcióstű segítségével, a fal átszúrása után például lyphoid szervek (pl. lép, nyirokcsomó, thymus, csontvelő) sejtjeit juttatjuk, majd a kamrát a recipiens szervébe implantáljuk. Meghatározott idő után kivesszük és mikroszkopikus úton megfigyeljük a sejtorganizációt, valamint a kultúrák jellegzetességeit. A kamrafal átszúrásával a sejtek az egyes üregekből kivehetők és morfológiájuk, valamint funkcionális tulajdonságaik megvizsgálhatok. Csontvelősejtek in vivő tenyésztésénél sikerült a sejtek növekedését 1 hónapon át megfigyelni és megállapítani, hogy ez az idő jelentősen hosszabb, mint a más anyagból készült kamrák esetében mért túlélési idő.The chambers prepared as described above are used for in vivo and in vitro studies of cells of macro and microorganisms. To this end, for example, cells in lymphoid organs (e.g., spleen, lymph node, thymus, bone marrow) are inserted into the chamber cavity using a needle, and the chamber is implanted into the recipient organ. After a fixed period of time, cellular organization and culture characteristics are harvested and observed microscopically. By puncturing the ventricular wall, cells can be removed from each well and examined for morphology and functional properties. In vivo growth of bone marrow cells was followed by cell growth for 1 month and was found to be significantly longer than the survival time of chambers made of other material.

A következő példákban a találmány szerinti eljárást mutatjuk be részletesebben.The following examples illustrate the process of the invention in more detail.

1. példaExample 1

A poliakrilamid-gél előállításához három oldatot (A, B, C) készítünk a következőképpen (a kiindulási anyagok megadott mennyiségeit minden esetben 1000 ml oldatra vonatkoztatjuk) :For the preparation of the polyacrylamide gel, three solutions (A, B, C) are prepared as follows (in each case, the indicated amounts of starting materials per 1000 ml of solution):

A) oldat készítése ml Ν,Ν,Ν’,Ν’-tetrametil-etilén-diamint 995 ml 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldatban oldunk és fénytől védve 4°C hőmérsékleten tároljuk.Preparation of solution A ml of Ν, Ν, Ν ', Ν'-tetramethylethylenediamine is dissolved in 995 ml of 0.85% aqueous sodium chloride solution and stored at 4 ° C protected from light.

B) oldat készítéseB) Preparation of solution

0,594 g N,N’-metilén-bisz-akrilamidot 500 ml 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldatban oldunk, hozzáadunk 470 g akrilamidot és addig melegítjük 60°C hőmérsékleten, amíg teljesen feloldódik. Ekkor a kapott oldatot szűrjük és 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldattal 1000 ml-re egészítjük ki. Az oldatot fénytől védve, 4aC-on tároljuk.Dissolve 0.594 g of N, N'-methylene bisacrylamide in 500 ml of 0.85% aqueous sodium chloride solution, add 470 g of acrylamide and heat at 60 ° C until completely dissolved. At this time, the solution was filtered and made up to 1000 ml with 0.85% aqueous sodium chloride. The solution was protected from light and stored at 4 ° C.

C) oldat készítéseC) preparation of a solution

1,78 g peroxi-szulfátot 100 ml 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldatban oldjuk és fénytől védve tároljuk.1.78 g of peroxysulphate are dissolved in 100 ml of 0.85% aqueous sodium chloride solution and stored protected from light.

A fenti módon készített oldatokból állítjuk össze a reakciókeveréket a következő arány szerint keverve őket:From the solutions prepared as above, prepare the reaction mixture by mixing them in the following ratio:

A : B : C = 16 : 31 : 52.A: B: C = 16: 31: 52.

Az oldatok ilyen arányú keverése esetében a monomerek tömegaránya akrilamid : N, N’-metilén-bisz-akrilamid = 15,0 : 0,019, és a monomerkeveréknek a fiziológiás oldathoz viszonyított tömegaránya 1 : 6.In such a mixture of solutions, the weight ratio of the monomers to acrylamide: N, N'-methylene-bis-acrylamide = 15.0: 0.019 and the weight ratio of the monomer mixture to physiological saline is 1: 6.

A fenti reakciókeveréket 200 ml-es reaktorba öntjük, és meghatározott átmérőjű poliakrilamid-gél tárcsákat állítunk elő. A polimerizációs reakció 40 perc alatt végbemegy. A kapott tárcsákat fiziológiás oldattal átmossuk, és 0,85%-os nátrium-klorid oldatban tömegük 4,5-szörösére duzzasztjuk. Ekkor a poliakrilamid-gél a következő összetételű:The above reaction mixture was poured into a 200 ml reactor and polyacrylamide gel discs of a certain diameter were prepared. The polymerization reaction was completed in 40 minutes. The resulting discs were washed with saline and swollen to 4.5 times their weight in 0.85% sodium chloride solution. The polyacrylamide gel then has the following composition:

Akrilamid-N, N’-metilén-biszakrilamid kopolimer 3,3 tömeg%Acrylamide-N, N'-methylene-bisacrylamide copolymer 3.3% by weight

Fiziológiás oldat 96,7 tömeg%.Saline was 96.7% by weight.

A fenti jellemzőjű gélből ezután Hottinger-féle szilárd táptalajt készítünk. Ehhez a tárcsákat üvegedénybe helyezzük,és Hottinger-féle 200 mg% aminonitrogént tartalmazó tripszin emésztési-húsleves folyékony tápközeggel leöntjük, minden tárcsára 200 ml oldatot számítva, majd 2-3 órán át állni hagyjuk. Ezután az átitatódott tárcsákat gőzzel, nyomás alatt, 120°C hőmérsékleten 30 percig sterilizáljuk. Az így. felhasználásra kész táptalajt a vizsgálandó mikroorganizmusokkal beoltjuk. A kísérletnél a következő törzseket használjuk: St. aureus 209, E. coli K-12,The above-described gel is then made into a Hottinger solid medium. To do this, the discs were placed in a glass jar, and the Hottinger's trypsin digestive broth containing 200 mg% aminonitrogen was poured into each of the disks with 200 ml of solution and allowed to stand for 2-3 hours. The impregnated discs are then sterilized by steam at 120 ° C for 30 minutes under pressure. That's it. the ready-to-use medium is inoculated with the microorganisms to be tested. The following strains were used in the experiment: St. aureus 209, E. coli K-12,

E. coli Μ-17, Sh. flexneri, Bac. cereus 504, Bac. subtilis, Candida albicans.E. coli Μ-17, Sh. flexneri, Bac. cereus 504, Bac. subtilis, Candida albicans.

Kontrollként ugyancsak a fenti mikroorganizmusokat, a 977466 számú szovjet szerzői tanúsítványban leírt eljárással előállított poliakrilamid-gélből készített táptalajon tenyésztjük.As a control, the above microorganisms are also cultured on a medium prepared from a polyacrylamide gel prepared according to the procedure described in US Patent No. 977466.

A táptalajok a felhasználás során nem sérültek meg, a mikroorganizmusok jellegzetes növekedést mutattak, a táptalajba nem nőttek bele és bakteriológiai kaccsal a levételük igen könnyen ment. A következő 1. táblázatban összefoglaljuk a különböző mikroorganizmusok esetében mért növekedési intenzitásokat a találmány szerinti eljárással, valamint a 977466 számú szovjet szerzői tanúsítvány szerinti eljárással előállított táptalajokon meghatározva.The media were not damaged during use, the microorganisms showed a characteristic growth, did not grow into the medium and were easily removed by bacteriological piglets. The following Table 1 summarizes the growth rates for the various microorganisms as determined by the method according to the invention as well as the media prepared according to the method of the US Patent No. 977466.

-5193585-5193585

1. TáblázatTable 1

Mikroorganizmus törzs fajtája Type of strain of microorganism Oltási mennyiség (kolóniaképző egységben) Vaccination volume (colony forming unit) A képződött kolóniák átlagszáma (1, példa szerinti tápolaj) The formed colonies average number (Example 1 of nutritional oils) Képződött kolóniák átlagszáma 977466 sz. szer. tanúsítvány szerinti tápolaj Mean number of colonies formed No. 977466 times. certified nutrient oil Staph. aureus 209 Staph. aureus 209 100 100 98 98 94 94 E. Coli K-12 E. Coli K-12 100 100 96 96 92 92 E. Coli V-17 E. Coli V-17 100 100 94 94 84 84 Sh. flexneri Sh. flexneri 100 100 82 82 70 70 Bac. cereus 504 Bac. cereus 504 100 100 86 86 78 78 Bac. subtilis Bac. subtilis 100 100 88 88 74 74 Candida albicans Candida albicans 100 100 78 78 70 70

Mint ez a táblázat adataiból kitűnik, a találmány szerinti eljárással előállított, szilárd táptalajon a mikroorganizmusok növekedési ^5 intenzitása nagyobb, mint a kontrollként alkalmazott 977466 számú szovjet szerzői tanúsítvány szerinti táptalajon.As can be seen from the data in this table, the growth media of the solid medium produced by the process of the present invention have a higher growth rate than the control medium according to US Patent 977466.

2. példa 30Example 2 30

Az A és C oldatokat az I. példában leírtak szerint állítjuk elő. A B oldat előállításához 0,844 g N,N’-metilén-bisz-akrilamidot 500 ml 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldatban oldunk, 60°C-ra melegítjük,és feloldjuk benne 35 470 g akrilamidot, majd szűrjük és 0,85%-os nátrium-klorid oldattal 1000 ml-re egészítjük ki.Solutions A and C were prepared as described in Example I. To obtain solution B, 0.844 g of N, N'-methylene bisacrylamide is dissolved in 500 ml of 0.85% aqueous sodium chloride solution, heated to 60 ° C and dissolved in 35 470 g of acrylamide, filtered and Make up to 1000 ml with 85% sodium chloride solution.

A reakciókeveréket az 1. példában leírtak szerint készítjük. 40The reaction mixture was prepared as described in Example 1. 40

A fenti reakciókeverék ily módon az akrilamid és Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid monomereket 15,0 : 0,027 tömegarányban tartalmazza, és a monomerkeverék fiziológiás oldathoz viszonyított tömegarány 1 : 7. A kopo- 45 limerizáció az I. példában leírtak szerint megy végbe. A kapott poliakrilamid-gél tárcsákat Hanks-féle fiziológiás oldatban tömegük 3,2szeresére duzzasztjuk, amikor is a poliakrilamid-gél a következő összetételű: 50The above reaction mixture thus contains the acrylamide and Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide monomers in a weight ratio of 15.0: 0.027 and the weight ratio of the monomer mixture to physiological solution is 1: 7. The copolymerization proceeds as described in Example I. place. The resulting polyacrylamide gel discs were swelled in Hanks saline solution 3.2 times their weight, whereby the polyacrylamide gel had the following composition:

Akrilamid-N,N’-metilén-bisz-akrilamid kopolimer 4,0 tömeg%Acrylamide-N, N'-methylene-bis-acrylamide copolymer 4.0% by weight

Fiziológiás oldat 96,0 tömeg%Saline 96.0% by weight

A fenti gélből készült tárcsákat ezután -hús-pepton húsleves tápoldattal itatjuk át, az 55 1. példában leírtak szerint. Vizsgálandó mikroorganizmusként Staphylococcus aureus 209 P törzset alkalmazunk. Kontrollként a fentemlített mikroorganizmus 977466 számú szovjet szerzői tanúsítvány szerint előállított 60 szilárd táptalajon és hús-pepton-agar táptalajon tenyésztett kultúráit alkalmaztuk. Az inokuláció, majd a termosztátban 37°C hőmérsékleten 24 órán át végzett inkubálás után a találmány szerinti eljárással előállított táp- θ_ talajon sokkal intenzívebb Staphylococcus6The discs made from the above gel were then soaked in meat-peptone broth medium as described in Example 55.1. Staphylococcus aureus strain 209P was used as test microorganism. As a control, cultures of the aforementioned microorganism were cultured on 60 solid media and meat peptone agar medium prepared according to US Patent 977466. After inoculation and then incubation in the thermostat for 24 hours at 37 ° C, the Staphylococcus6

-kultúra növekedést figyelhetünk meg, mint a kontroll táptalajon.culture was observed as in the control medium.

A Staphylococcus kolóniák megjelenése jellegzetes, kerek, sima, fényes, olajos, intenzív pigmentálódással. A megfigyeléseket mikroszkopikus úton végeztük. A kolóniák bakteriológiai kaccsal való levételekor a táptalaj felülete nem károsodik.Staphylococcus colonies have a characteristic, round, smooth, shiny, oily, intense pigmentation. Observations were made microscopically. Removal of colonies with bacteriological duck does not damage the surface of the medium.

3. példaExample 3

Az A és C oldatokat az 1. példában leírtak szerint állítjuk elő. A B oldat előállításához 1000 ml-es mérőlombikba bemérünk 0,937 g Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamidot és 400 ml 0,85%-os fiziológiás oldatban feloldjuk, majd 60°C-ra melegítjük és hozzáadunk 625 g akrilamidot és teljes oldódása után a térfogatot 1000 ml-re egészítjük ki.Solutions A and C were prepared as described in Example 1. To prepare solution B, place 0.937 g of Ν, Ν'-methylene bisacrylamide in a 1000 ml volumetric flask and dissolve in 400 ml of 0.85% saline, heat to 60 ° C and add 625 g of acrylamide after complete dissolution. make up to 1000 ml.

A reakciókeverék az akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid monomereket 20,0 : : 0,03 tömegarányban tartalmazza és a keverék fiziológiás oldathoz viszonyított tömegaránya 1 : 4. A kopolimerizációs reakció az 1. példában leírtak szerint megy végbe.The reaction mixture contains the acrylamide and N, N'-methylene-bis-acrylamide monomers in a weight ratio of 20.0: 0.03 and a weight ratio of the mixture to physiological saline of 1: 4. The copolymerization reaction proceeds as described in Example 1.

A kapott poliakrilamid-gél tárcsákat fiziológiás Earl-oldatban tömegüknek 3,7-szeresére duzzasztjuk. Ekkor a poliakrilamid-gél a következő összetételű:The resulting polyacrylamide gel discs were swollen to 3.7 times their weight in Earl saline. The polyacrylamide gel then has the following composition:

Akrilamid-N,N’-metilén-bisz-akrilamid kopolimer 5,3 tömeg%Acrylamide-N, N'-methylene-bis-acrylamide copolymer 5.3% by weight

Fiziológiás oldat 94,7 tömeg%.Saline was 94.7% by weight.

A poliakrilamid-gél tárcsák átitatására sókeverékes, folyékony tápközeget alkalmazunk, és a műveletet, valamint a sterilizálást is az 1. példában leírtak szerint végezzük. Sterilizálás után a szilárd táptalaj tulajdonságai nem változnak. Vizsgálandó mikroorganizmusként e kísérletünkben Fusarium avenaceum gombakultúrát alkalmazunk. A tenyésztés 4. napján jellegzetes rózsaszínű kolóniák jelennek meg sűrű gombatelepekkel. Mikroszkopikus vizsgálat során e telepek karakterisztikus szerkezete és spóraképződés figyelhető meg. A kolóniák bakteriológiai kacs-6193585 csal jól levehetők és a táptalaj felülete nem károsodik,Salt mixed liquid medium was used to impregnate the polyacrylamide gel discs, and the procedure and sterilization were performed as described in Example 1. The properties of the solid medium remain unchanged after sterilization. Fusarium avenaceum fungal cultures were used as test microorganisms in this experiment. On the 4th day of breeding, characteristic pink colonies appear with dense colonies of fungi. Microscopic examination shows the characteristic structure and spore formation of these colonies. The colonies can be easily removed by bacteriological duck-6193585 and the surface of the medium is not damaged,

4. példaExample 4

Az A és C oldatokat az I. példa szerint ál- 5 lítjuk elő. A B oldat előállításához 4,125 g N.N’-metilén-bisz-akrilamidot 500 ml 0,85%os vizes nátrium-klorid oldatban oldunk, 60°C-ra felmelegítjük, hozzáadunk 470 g akrilamidot és a teljes oldódásig keverjük. Ek- 10 kor leszűrjük és a térfogatot 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldattal 1000 ml-re egészítjük ki.Solutions A and C were prepared as in Example I. To prepare solution B, 4.125 g of N, N'-methylene bisacrylamide are dissolved in 500 ml of 0.85% aqueous sodium chloride solution, heated to 60 ° C, and 470 g of acrylamide are added and stirred until completely dissolved. Filter and make up to 1000 ml with 0.85% aqueous sodium chloride solution.

A fenti oldatokból a reakciókeverék elkészítését és a kopolimerizációt az 1. példában 15 leírtak szerint végezzük.Preparation of the reaction mixture and copolymerization from the above solutions was carried out as described in Example 1.

A reakciókeverék ily módon az akrilamid és N.N’-metilén-bisz-akrilamid monomereket 15,0 : 0,132 tömegarányban tartalmazza, és a keverék fiziológiás sóoldathoz viszonyított 20 tömegaránya l : 5.The reaction mixture thus contains the acrylamide and N.N'-methylene-bis-acrylamide monomers in a weight ratio of 15.0: 0.132 and a weight ratio of the mixture to physiological saline of 20: 1: 5.

A fenti poliakrilamid gélt Staphylococcus 209 P biomassza előállításához szükséges, szilárd táptalaj alapjaként alkalmazzuk. Az előállított poliakrilamid tárcsákat 0,85%-os nátrium-klorid oldatban mossuk és Hottingerféle 200 mg% aminonitrogént tartalmazó tripszin-emésztési húsleves tápoldattal tömegük 2,5-szörösére duzzasztjuk.The above polyacrylamide gel is used as a base for solid media for Staphylococcus 209P biomass. The resulting polyacrylamide discs were washed in 0.85% sodium chloride solution and swelled with Hottinger's trypsin digestion broth containing 200 mg% aminonitrogen 2.5 times their weight.

A kész, szilárd táptalajt gőzben, nyomás alatt, 120°C hőmérsékleten 30 percig sterilizáljuk. Kontroll táptalajként agarizált Hottinger-táptalajt (200 mg% aminonitrogén tartalommal) és a 977466 számú szovjet szerzői tanúsítványban leírt eljárással előállított szilárd táptalajt alkalmazzuk. 1-1 60—63 mm átmérőjű tárcsára számítva 10-8 mikroba/1 ml Staphylococcus-t inokulálunk. A következő 2. táblázatban összefoglaljuk a kapott eredményeket, azaz megadjuk a különböző táptalajokon kapott Staphylococcus biomassza mennyiségeket.The final solid medium is sterilized by steam at 120 ° C for 30 minutes under pressure. The control medium is agarized Hottinger's medium (containing 200 mg% of aminonitrogen) and solid medium prepared according to the procedure described in US Patent No. 977466. 1-1 60-63 mm from pulley diameter of 10 -8 microbes / ml was inoculated with 1 Staphylococcus. The following Table 2 summarizes the results obtained, i.e., the amounts of Staphylococcus biomass obtained on different media.

2. TáblázatTable 2

Staphylococcus biomassza Staphylococcus biomass 2 mennyisége mg/cm 2 in mg / cm ben in E példa szerint According to this example 1. példa szerint Example 1 977466 számú 977466 Agarizált Agarizált előállított táp- produced nutrition előállított táp- produced nutrition szovjet szer- Soviet táptalaj on medium on talajon ground talajon ground zői tanúsítvány szerinti táptalaj on culture medium 2,01 2.01 1,57 1.57 1 ,50 1.50 1,55 1.55

A példa szerinti poliakrilamid-gél duzzasztás utáni összetétele a következő:The composition of the exemplary polyacrylamide gel after swelling is as follows:

Akrilatnid-Ν,Ν’ -metilén-bisz-akri1amid kopolimer 6,0 tömegéAcrylate-Ν, Ν '-methylene-bis-acrylamide copolymer 6.0 wt.

Hottinger-féle tripszin-emésztésí-húsleves oldat 94,0 tömegéHottinger's trypsin digestion broth solution was 94.0 wt

5. példaExample 5

A poliakrilamid gélt az 1. példában leírtak szerint állítjuk elő és Verticilium dahliae gom- 50 ba tenyésztéséhez szükséges, szilárd táptalaj alapjaként alkalmazzuk. A poliakrilamid-gél tárcsákat 0,85%-os nátrium-klorid oldattal átmossuk, majd sókeverékes folyékony tápoldatban tömegük 3,5-szörösére duzzasztjuk. 55The polyacrylamide gel was prepared as described in Example 1 and used as a solid medium for culturing Verticilium dahliae in fungi. The polyacrylamide gel discs were washed with 0.85% sodium chloride solution and then swelled to 3.5 times their weight in saline medium. 55

Sterilizálás után a kész táptalajt a gombakultúrával beoltjuk. Kontrollként agarizált, sókeverékes tápoldattal átitatott, 1. példa szerint előállított táptalajt alkalmazunk, θθ Az inkubálást 28°C hőmérsékleten végezzük.After sterilization, the medium is inoculated with the fungal culture. As a control, agarized medium saturated with saline was prepared as in Example 1, θθ Incubation was performed at 28 ° C.

A példa szerint előállított, szilárd táptalajon a gombák a tenyésztés harmadik napján igen intenzív szaporodást mutattak karakterisztikus morfológiai és kultúratulajdonságok mellett, míg hasonló szaporodás a kont- 65 roll-táptalajokon csak a tenyésztés ötödik napján volt megfigyelhető.Media prepared according to Example, the solid exhibited a very intense fungal growth third day of culture in addition to the characteristic morphological and cultural properties, while similar to the growth media of a contrast roll 65 was observed on the fifth day of culture.

példaexample

Az 1. példa szerint elkészített reakcióké veréket egy reaktorba öntjük és a képződő poliakrilamid-gélből két lapos csíkot alakítunk ki. Ezek egyike 180 x 100 x 0,8 mm méretű, a másik 180 x 100 x 2,5 mm méretű, és ez utóbbin 3 x 1,0 mm-es üregeket képezünk ki sakktábla-szerű elrendezésben, egymástól 1 — —1,5 mm távolságra. A sterilizációt 40 percig végezzük, majd a két csíkot az 1. példában leírt összetételnek megfelelő reakciókeverékkel átitatjuk, és oly módon helyezzük egymásra, hogy zárt üregek alakuljanak ki a makroés mikroorganizmusok tenyésztése számára. Ezt követően 40 perc után egy egységes blokk alakul ki, amelyet úgy választunk részekre,The reactions prepared in Example 1 were poured into a reactor and formed into two flat strips of the resulting polyacrylamide gel. One of these is 180 x 100 x 0.8 mm and the other is 180 x 100 x 2.5 mm, the latter forming 3 x 1.0 mm cavities in a chessboard-like arrangement of 1 to 1.5 cm apart. mm. Sterilization is carried out for 40 minutes and the two strips are soaked in the reaction mixture corresponding to the composition described in Example 1 and placed in such a manner that closed cavities are formed for the cultivation of macro and microorganisms. Then, after 40 minutes, a single block is formed which we choose to split,

-7193585 hogy mindegyike három-három üreget tartalmazzon. Az így kialakított diffúziós kamrákat ezután 0,85%-os nátrium-klorid oldatban tömegük 4,5-szörösére duzzasztjuk, majd 1 — 1,5 órán át sterilizáljuk és 199-es közeggel átitatjuk.-7193585 to have three cavities each. The diffusion chambers thus formed are then swelled to 4.5 times their weight in 0.85% sodium chloride solution, then sterilized for 1 to 1.5 hours and soaked in medium 199.

A diffúziós kamra három üregének egyikébe 199-es tápközegben eloszlatott 2 χ 106 menynyiségű csontvelősejtet helyezünk, a másikba 2 x 105 mennyiségű, fiziológiás oldatban szuszpendált Staphylococcus Cowan törzset helyezünk, majd a diffúziós kamrákat syngén-állatok (fajtiszta) hasüregébe implantáljuk.Into one of the three cavities of the diffusion chamber was placed 2 x 10 6 bone marrow cells distributed in medium 199, the other into 2 x 10 5 staphylococcus Cowan strains suspended in physiological saline, and the diffusion chambers were implanted into the syngeneic animal.

Az első három napon a myeioid sejtek növekedési zónáiban főleg makrófág és granulocita kolóniákat figyelhetünk meg. A makrofágok formája és mérete különböző.For the first three days, macrophage and granulocyte colonies were observed in the growth zones of myeloid cells. Macrophages vary in shape and size.

A hetedik napon a makrofág-kolóniák száma jelentős növekedésnek indult, és a makrofágok és lymphociták között citoplazmás hidak, valamint szövettípusú kapcsolódások, histiocyták, valamint osteoblastomaszerű sejtek kialakulása figyelhető meg. A retikuláris sejtekből és neutrophylekből kolóniák fejlődnek ki.On the seventh day, the number of macrophage colonies began to increase significantly, and cytoplasmic bridges and tissue-type junctions, histiocytes, and osteoblastoma-like cells were observed between macrophages and lymphocytes. Colonies develop from reticular cells and neutrophils.

A második üregben jellegzetes, kerek, sima Staphylococcus kolóniák képződnek, amelyek száma az idő függvényében növekedett, öszszeíolytak,és az üregben folyamatos növekedési zónát alakítottak ki.In the second cavity, characteristic, round, smooth Staphylococcus colonies are formed, the number of which has grown over time, converged, and a continuous growth zone has been formed in the cavity.

7. példaExample 7

Az A és C oldatokat az 1. példában, a B oldatot a 2. példában leírtak szerint állítjuk elő.Solutions A and C were prepared as described in Example 1 and Solutions B as described in Example 2.

A reakciókeverék az akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid monomereket 15,0 :The reaction mixture of the acrylamide and N, N'-methylene-bis-acrylamide monomers 15.0:

: 0,027 tömegarányban tartalmazza és a keverék fiziológiás oldathoz viszonyított tömegaránya 1:7. Ezt a reakciókeveréket ezután reaktorba töltjük,és a képződő poliakrilamid-gélből egy 120 x 75 x 2,2 mm és egy 120 x 75 x 1,0 mm nagyságú csíkot képezünk, amely utóbbin 4 x 1,2 mm-es üregeket alakítunk ki, egymástól 1,7 mm távolságban, koaxiális elrendezésben.: 0.027 w / w and the ratio of the mixture to physiological saline is 1: 7. This reaction mixture is then filled into a reactor and a polyacrylamide gel formed is formed into a 120 x 75 x 2.2 mm and 120 x 75 x 1.0 mm strip, the latter forming cavities 4 x 1.2 mm, 1.7 mm apart, in a coaxial arrangement.

A kopolimerizációt 40—50 percig végezzük, majd a csíkokat a kiindulási monomerkeveréknek megfelelő összetételű keverékkel itatjuk át, és oly módon helyezzük egymásra, hogy zárt üregek alakuljanak ki, és egy egységes blokk képződéséig egyben tartjuk őket. Ekkor részekre választjuk szét, úgy, hogy mindegyik egy üreget tartalmazzon. Az így nyert diffúziós kamrákat ezután fiziológiás oldatban mossuk és 0,85%-os fiziológiás sóoldatban tömegük 2,8-szorosára duzzasztjuk, majd 1 —1,5 órán át sterilizáljuk, végül 199-es tápközeggel telítjük.The copolymerization is carried out for 40-50 minutes and the strips are soaked in a mixture of the composition of the starting monomer mixture and superimposed so that closed cavities are formed and held together until a uniform block is formed. Then we divide it into sections so that each one contains a cavity. The resulting diffusion chambers were then washed in saline and swollen at 2.8 times their weight in 0.85% saline, then sterilized for 1-1.5 hours and finally saturated with medium 199.

Intakt syngén állatok combcsontvelőjéből a csontvelősejteket (4 χ 106 mennyiségben) 0,2 ml mennyiségű 199-es tápközegben szuszpendáljuk, és a diffúziós kamrába helyezzük, majd azokat a syngén recipiensek hasüregébe implantáljuk.From the femoral bone of intact syngeneic animals, bone marrow cells (4 x 10 6 ) were resuspended in 0.2 ml of medium 199 and placed in the diffusion chamber and implanted into the abdominal cavity of syngenic recipients.

A sejtek in vivő tenyésztése után a diffúziós kamrát a hasüregből kiemeljük és mikroszkopikus úton a sejt-monoréteget (növekedési zóna, sejtkultúra), valamint a sejtkultúrákról készített kontakt-preparátumot megvizsgáljuk.After in vivo culturing of the cells, the diffusion chamber is removed from the abdominal cavity and examined by microscopic examination of the cell monolayer (growth zone, cell culture) and contact preparation from cell cultures.

A normál állatok hasüregében elhelyezett diffúziós kamrákban tenyésztett csontvelősejtek a tenyésztés harmadik napján heterogén sejtszerkezetet mutatnak, amelyekre az intakt csontvelő volt jellemző. A hetedik napon e sejtek egy része degenerálódik, egy másik rész meghatározott formájúvá kezd átalakúlni. Megfigyelhetők a granulocyták differenciálódásának különböző lépései. Nem differenciálódott szövetek gyorsan növekedő fonaljainak közelében metamyelocita sejtek csoportokat alakítanak ki, és felületükön boltozatok képződnek. Az érett granulocyták neutrophylként jellemezhető magot tartalmaznak. Közbülső formáikban kifejezett mag-szegmentálódás figyelhető meg. A növekedési zónába nagy epithelsejtek (40 pm) képződnek jelentéktelen burjánzásokkal a felületükön, a monorétegben csoportokká alakulnak és elszigetelődnek, magjuk ellaposodó formájú és a citoplazmában hiányoznak a fagocitált zárványok.Bone marrow cells cultured in the diffusion chambers of the abdominal cavity of normal animals on the third day of culture exhibited a heterogeneous cell structure characterized by intact bone marrow. On the seventh day, some of these cells degenerate, and some begin to convert to a specific form. Different steps of granulocyte differentiation can be observed. In the vicinity of fast-growing filaments of non-differentiated tissues, metamyelocyte cells form clusters and form arches on their surface. The mature granulocytes contain a nucleus that is characterized as a neutrophil. In their intermediate forms, pronounced core segmentation is observed. In the growth zone, large epithelial cells (40 pm) are formed with insignificant proliferation on their surface, become monolayer clustered and isolated, their nuclei are flattened and phagocytic inclusions are absent in the cytoplasm.

Rendkívül életképesnek mutatkoznak a monocyták. Fagocita-vacuolák gyakran tartalommal vannak kitöltve. A monocyták magjuk babszerü formája alapján azonosíthatók, amely gyakran excentrikusán helyezkedik el. Hosszabb tenyésztési idő után a mag kerekebb formájúra alakul. A monocyták gyakran az epithelsejtek közelében helyezkednek el, de aggregációra nem mutatnak hajlandóságot.Monocytes appear to be extremely viable. Phagocyte vacuoles are often filled with content. Monocytes are identified by their bean-like shape, which is often eccentric. After a longer cultivation time, the seed is rounded. Monocytes are often located near the epithelial cells but do not show a tendency to aggregate.

A 21 napos kultúrákban a növekedő sej tek kitöltik a diffúziós kamra üregét és egy meghatározott sejtorganizációt képeznek. A közvetlenül a felületen fekvő réteget epithelsejtek alkotják, majd egy csoport monozyta, zsírsejt és fiatal formájú neutrophyl következik. Az érett formák a periférián gyűlnek össze. A limphocytaszerű és csírasejtek az adhéziós rétegen belül helyezkednek el. A növekedési zónában zsírsejtek jelennek meg kicsi, sűrű maggal, gyakran kétmagú formában. Az elektromikroszkópos felvételen jól felismerhető a citoplazmán elhelyezkedő, kis zsírcseppek alakjában. A lipidzárványok gyakran fészekszerű formában alakulnak ki, néha összefolynak és 40 pm nagyságú cseppeket alakítanak ki. A zsír akkumulációja következtében ezek a sejtek néha 120 pm nagyságot is elérnek. Egy elszigetelt vacuolamembrán sejten belüli lipidszintézisre utal. Egy kerek és ovális formájú mag kondenzált kromatinból tevődik össze. Az érett sejtek citoplazmája számos mitochondriomát tartalmaz. A korábbi zsírakkumuláció egyes lépései során citoplazma semlegesítődik. A zsírsejtek csoportok képzésére hajlamosak és gócokat képeznek a granulocitált kolóniák között, de funkcionális függőségüket hosszabb ideig megtartják.In 21-day cultures, growing cells fill the cavity of the diffusion chamber and form a defined cellular organization. The layer lying directly on the surface is made up of epithelial cells, followed by a group of monozytes, adipose cells and neutrophils in young form. Mature forms gather on the periphery. Lymphocyte-like and germ cells are located within the adhesive layer. In the growth zone, fat cells appear as small, dense nuclei, often in the form of dicotyledons. It is well recognized by electromicroscopy as small droplets of fat on the cytoplasm. Lipid outbreaks often develop in nest-like form, sometimes fusing and forming droplets of 40 µm. Due to the accumulation of fat, these cells sometimes reach 120 µm. It refers to the intracellular lipid synthesis of an isolated vacuole membrane. A round and oval core consists of condensed chromatin. The cytoplasm of mature cells contains a number of mitochondria. During the previous steps of fat accumulation, the cytoplasm is neutralized. Fat cells tend to form clusters and form foci between granulocytic colonies but retain their functional dependence for a longer period of time.

-8193585-8193585

A vizsgálat során megakaryocita sejteket is megfigyelhetük. Ezek az óriás sejtek szférikus formájúak,és néha a citoplazmamembrán felületén boltozatos kialakításúak. Trom bocitaképződést nem tapasztalható.Megakaryocyte cells may also be observed during the assay. These giant cells are spherical and sometimes arched on the surface of the cytoplasmic membrane. No Trom bocyte formation was observed.

8. példaExample 8

Az A és C oldatot az 1. példában, a B oldatot a 4. példában leírtak szerint állítjuk elő.Solution A and C were prepared as in Example 1 and Solution B as described in Example 4.

A reakciókeverék az akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid monomereket 10,0:0,132 tömegarányban tartalmazza, és a keverék fiziológiás oldathoz viszonyított tömegaránya l : 5. A reakciókeveréket egy reaktorba öntjük, és a képződő poliakrilamid-gélből két lapos csíkot alakítunk ki, amely közül az egyik 150 x 80 x 12 mm, a másik 150 x 80 x 2,5 mm méretű, és ez utóbbin 5 x 1,3 mm-es üregeket képezünk ki egymástól 1,8 mm távolságra, koaxiális elrendezésben. A kopolimerizációt 40 percig végezzük. A poliakrilamid alapú csíkokat ezután a kiindulási monomerkeveréknek megfelelő keverékkel átitatjuk, és oly módon helyezzük el egymáson, hogy zárt üregek alakuljanak ki, majd 50 percig, amíg egységes blokk nem képződik, így tartjuk, és ekkor úgy osztjuk részekre, hogy mindegyik egy-egy zárt üreget tartalmazzon. Az így nyert diffúziós kamrákat fiziológiás oldatban tömegük 3,2-szeresére duzzasztjuk, majd sterilizáljuk és Hanks-oldattal átitatjuk.The reaction mixture contains acrylamide and N, N'-methylene-bisacrylamide monomers in a weight ratio of 10.0: 0.132 and a weight ratio of the mixture to physiological solution of 1: 5. The reaction mixture is poured into a reactor and two flat strips of the resulting polyacrylamide gel are formed. One of them is 150 x 80 x 12 mm, the other 150 x 80 x 2.5 mm, and the latter is formed 5 x 1.3 mm cavities 1.8 mm apart, in a coaxial arrangement. The copolymerization was carried out for 40 minutes. The polyacrylamide-based strips are then impregnated with a mixture corresponding to the starting monomer mixture and placed in such a manner that closed cavities are formed, and then held for 50 minutes until a uniform block is formed, and then divided into pieces so that each is closed. contain a cavity. The resulting diffusion chambers were swelled in saline 3.2 times their weight, then sterilized and impregnated with Hanks' solution.

Egészséges emberi leukocyták tenyésztése céljából leukocyta populációt helyezünk a diffúziós kamra üregeibe, amely 1 x 106 menynyiségben tartalmazza a fehér vérsejtek minden formáját, Hanks-oldatban szuszpendálva. Ezután a diffúziós kamrákat xenogén állatok (keverék, nem fajtiszta) szervébe implantáljuk, majd a kívánt megfigyelési idő letelte után kivesszük. A kísérletek kiértékelésénél megállapítottuk, hogy a lymphociták a 20 nap alatt fennmaradtak, bár mennyiségük 79%ról 20%-ra csökkent. A neutrophylek és monocyták is életképesek maradtak, legalábbis az első 2-3 napon. A makrofágok mennyisége a második napon 15%-ra, a huszadik napon 50% ra növekedett. A nyolcadik napon a kultúrában csírák, fibróblast-szerű és átmeneti sejtek jelentek meg.For the cultivation of healthy human leukocytes, a leukocyte population is placed in the wells of the diffusion chamber, containing 1 x 10 6 volumes of all forms of white blood cells, suspended in Hanks' solution. The diffusion chambers are then implanted into the organs of xenogeneic animals (mixture, non-purebred) and removed after the desired observation time. Evaluation of the experiments showed that the lymphocytes survived for 20 days, although they decreased from 79% to 20%. Neutrophils and monocytes remained viable, at least for the first 2-3 days. Macrophages increased to 15% on the second day and 50% on the twentieth day. On the eighth day, germ, fibroblast-like and transitional cells appeared in the culture.

Claims (6)

SZABADALMI IGÉNYPONTOKPATENT CLAIMS 1. Eljárás mikroorganizmusok és makroorganizmusok sejtkultúráinak tenyésztésére alkalmas,szilárd táptalaj előállítására akrilamid és Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid fiziológiás oldatban, gyökös iniciátor jelenlétében végzett kopolimerizációjával, majd a kapottA process for the preparation of a solid culture medium for cultivation of cell cultures of microorganisms and macroorganisms in a physiological solution of acrylamide and Ν, Ν'-methylene-bis-acrylamide in the presence of a radical initiator, followed by 5 poliakrilamid-gél fiziológiás oldattal való átmosásával, azzal jellemezve, hogy (15,0— —20,0) : (0,019—0,132) tömegarányú akrilamid-Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid monomerkeveréket kopolimerizálunk, valam'ely fizio10 logiás oldattal mossuk,és a kimosás után kiváló poliakrilamid-gélt.Washing of 5 polyacrylamide gels with physiological saline, characterized by copolymerization of a (15.0—20.0): (0.019-0.132) weight ratio of acrylamide-Ν, metil-methylene-bis-acrylamide monomer. solution and, after washing, an excellent polyacrylamide gel. a) a fiziológiás oldattal duzzasztjuk, amíg tömege 2,8—4,5-szörösére növekszik, majd valamely folyékony tápközeggel kezeljük.a) swelling with saline until its mass is increased to 2.8 to 4.5 times and then treated with a liquid medium. 15 vagyYou are 15 b) valamely folyékony tápközeggel duzzasztjuk, amíg tömege 2,5—3,5-szörösére növekszik.b) swelling with a liquid medium until its mass is increased 2.5 to 3.5 times. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal 20 jeltemezve, hogy a kopolimerizációnál az akrilamid-Ν,Ν’-metilén-bisz-akrilamid monomerkeveréket a fiziológiás oldathoz viszonyítva 1:4 és 1:7 tömegarány közötti mennyiségben alkalmazzuk.2. A process according to claim 1, wherein the copolymerization is carried out in an amount of 1: 4 to 1: 7 by weight of the acrylamide-Ν, Ν-methylene-bis-acrylamide monomer mixture. 2525 3. Az 1—2. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fiziológiás oldatként 0,85%-os vizes nátrium-kloridot, Ringer-Locke-, Earl-, Hanks- vagy 5%-os glükóz oldatot alkalmazunk.3. A process according to any one of claims 1 to 5, characterized in that the saline solution is 0.85% aqueous sodium chloride, Ringer-Locke, Earl, Hanks or 5% glucose solution. 3030 4. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy folyékony tápközegként Hottinger-féle tripszin-emésztési-oldatot, Marten-húsleves-, pepton-víz-táptalajt, kazeinhidrolizátumot, sókeveréket vagy 199-es közegetThe method of claim 1, wherein the liquid medium is Hottinger's trypsin digestion solution, Marten's broth, peptone-aqueous medium, casein hydrolyzate, salt mixture or medium 199. 35 alkalmazunk.35 applied. 5. Az 1—3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a poliakrilamid-gél duzzasztására inaktivált emberi vérszérum és plazmol 1:1 arányú keverékét5. The process according to any one of claims 1 to 3, characterized in that a 1: 1 mixture of human blood serum and plasmol inactivated to swell the polyacrylamide gel is used. 40 alkalmazzuk folyékony tápközegként.40 as a liquid medium. 6. Az 1—3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kopolimerizáció során a poliakrilamid-gélt két lapos csíkká alakítjuk, amelyek közül az egyiken koaxiális és/vagy sakktábla-szerű elrendezésbe üregeket alakítunk ki, majd a csíkokat 15,0—20,0 : 0,019—0,132 tömegarányú akrilamid-N,N’-metilén-bisz-akrilamid monomerkeverékkel átitatjuk, és egymásra helyezzük6. A process according to any one of claims 1 to 6, characterized in that the copolymerization is carried out by forming the polyacrylamide gel into two flat strips, one of which forms cavities in a coaxial and / or chessboard arrangement, and then strips 15.0 to 20.0: 0.019 - Impregnated with 0.132 wt.% Acrylamide-N, N'-methylene-bis-acrylamide monomer mixture 50 úgy, hogy zárt üregeket alakítunk ki, majd ezekből egységes blokkot képezünk, majd ezeket legalább egy zárt üreget tartalmazó darabokra osztjuk.50 by forming closed cavities and forming a unitary block therewith dividing them into at least one closed cavity.
HU305984A 1984-08-10 1984-08-10 Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms HU193585B (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU305984A HU193585B (en) 1984-08-10 1984-08-10 Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU305984A HU193585B (en) 1984-08-10 1984-08-10 Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT37955A HUT37955A (en) 1986-03-28
HU193585B true HU193585B (en) 1987-10-28

Family

ID=10962332

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU305984A HU193585B (en) 1984-08-10 1984-08-10 Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms

Country Status (1)

Country Link
HU (1) HU193585B (en)

Also Published As

Publication number Publication date
HUT37955A (en) 1986-03-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109207384A (en) modified yeast cell wall and its preparation method and application
JP6581650B2 (en) Culture container for spheroid formation using temperature-sensitive glycol chitosan derivative and method for forming spheroid using the same
SU1090263A3 (en) Process for preparing biomass of microorganisms of the beggiatoa type having bacteriostatic effect
GB2114578A (en) Polyacrylamide gel for medical and biological application and method of its preparation
Khojanazarova et al. Investigating the cultural-morphological features of rhizobacteria and allocating it from the cotton plant (Gossýpium hirsútum): in the example of irrigated meadow soils of Uzbekistan
US20040241241A1 (en) Polyfunctional biocompatible hydrogel and method for the production thereof
CN109452283A (en) A kind of application of mannosylerythritol lipid in suppressing growth of microorganism
JP3414444B2 (en) Immobilization device, method for immobilizing and culturing biological tissue using the same
HUE029031T2 (en) Cell carrier containing collagen
HU193585B (en) Process for production of microorganisms and medium suitable for growing of cell-culture of microorganisms
Das et al. Aquasorbent guargum grafted hyperbranched poly (acrylic acid): A potential culture medium for microbes and plant tissues
SU977466A1 (en) Polyacrylamide gel for medical and biological uses and process for producing the ssame
GB2162198A (en) Process for producing dense nutrient medium for culturing microorganisms and macroorganism cell cultures
CN102181068A (en) Polyurethane material subjected to photo-induced graft surface modification by fungi polysaccharide and preparation method thereof
JPS6156073A (en) Production of concentrated nutritive culture for microorganism culture and macro-organism tissue culture
DE3430316C2 (en)
Peckham THE INFLUENCE OF ENVIRONMENT UPON THE BIOLOGICAL PROCESSES OF THE VARIOUS MEMBERS OF THE COLON GROUP OF BACILLI: An Experimental Study.
Alexander et al. Mechanism of emergence of resistance to streptomycin of H. pertussis and H. parapertussis during treatment with this antibiotic
Ramadhan et al. Synthesis and Characterization of Ulvan-Alginate Hydrogel Beads as a Scaffold for Probiotic Immobilization
CN108067157A (en) A kind of quaternary cationics containing hydroxylpropyl groups and preparation
NL2034102B1 (en) Bacillus velezensis ye-1 antagonistic to aspergillus flavus and application thereof
Sasongkowati et al. Peanut Sucrose for Modifications Medium on Growing of Candida Albicans and Tinea Versicolor.
EP0315690B1 (en) Method of obtaining solid medium for cultivation of microorganisms
Sudhesh et al. Study of exopolysaccharide extracted from Klebsiella spp. isolated from the gut of Poecilia sphenops
Aloysius The induction of non-pathogenic infections in plants with L-phase bacteria

Legal Events

Date Code Title Description
HU90 Patent valid on 900628
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee