HU192775B - Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof - Google Patents

Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof Download PDF

Info

Publication number
HU192775B
HU192775B HU334882A HU334882A HU192775B HU 192775 B HU192775 B HU 192775B HU 334882 A HU334882 A HU 334882A HU 334882 A HU334882 A HU 334882A HU 192775 B HU192775 B HU 192775B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
gentamicin
sulfate
ammonium hydroxide
antibiotics
aminocyclitols
Prior art date
Application number
HU334882A
Other languages
Hungarian (hu)
Other versions
HUT34989A (en
Inventor
Miklos Jaarai
Laszlo Keegl
Sandor Piukovich
Gabiella Zlatos
Original Assignee
Chinoin Gyogyszer Es Vegyeszet
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Chinoin Gyogyszer Es Vegyeszet filed Critical Chinoin Gyogyszer Es Vegyeszet
Priority to HU334882A priority Critical patent/HU192775B/en
Publication of HUT34989A publication Critical patent/HUT34989A/en
Publication of HU192775B publication Critical patent/HU192775B/en

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

Amino-cyclitols, amino-cyclitol-amino-glucoside antibiotics and their derivs. are sepd. form aq. soln. by binding a weakly acidic cation-exchange resins in their ammonium form, followed by chromatographic elution with aq. ammonium-hydroxide soln. contg. short chain alcohols and/or ketones and prepn. of the desired derivs. as salts. - The efficiency of the process is improved by this method, the capacity of the column and the productivity are increased. - A further advantage of the method is that the ratio of the starting components of raw genta-mycin can be changed and controlled at the desired value.

Description

Találmányunk tárgya eljárás aminociklitolok, aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik ioncserés kromatográfiás elválasztására és vizes oldataikból való előállítására, a komponensek ammónium formában levő, gyengén savas kationcserélö gyantán történő megkötése és ammónium-hidroxidok oldattal való kromatografálása, majd a kívánt komponensek só formában való kinyerése útján.The present invention relates to a process for the separation of aminocyclitols, aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semisynthetic derivatives by ion exchange chromatography and preparation of their aqueous solutions, the binding of the components on the weakly acidic cation exchange resin and the desired .

Ismeretes, hogy az aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik előállítása során a célterméket számos más, hasonló szerkezetű vegyülettől kell elválasztani a megkívánt tisztaság érdekében. Az aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok bioszintézise sorén sok, a céltermékhez hasonló szerkezetű aminoglikozid molekula is keletkezik, tovább a fermentlé mindig tartalmaz bioszintetikus intermediereket is. Ezen anyagok mennyiségét a végtermékben előírt határérték alatt kell tartani. Számos esetben célszerű azonban ezeket a melléktermékeket is tiszta állapotban izolálni, hiszen nem egy ilyen melléktermék komoly terápiás hatással rendelkezik (pl. gentamicin B és gentamicin Bi). A fermentléból izolált bioszintetikus intermedierek (pl. a garamin) pedig félszintetikus származékok kindulási anyagai lehetnek.It is known that in the preparation of aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semi-synthetic derivatives, the target product must be separated from a number of other compounds of similar structure in order to achieve the desired purity. In the course of the biosynthesis of aminocyclitol aminoglycoside antibiotics, many aminoglycoside molecules with a structure similar to the target product are formed, and further the fermentation broth always contains biosynthetic intermediates. The quantity of these substances shall be kept below the limit prescribed in the final product. In many cases, however, it is also desirable to isolate these by-products in pure form, since no such by-product has a significant therapeutic effect (e.g., gentamicin B and gentamicin Bi). Biosynthetic intermediates isolated from fermentation broths (e.g., garamine) may serve as safeners for semisynthetic derivatives.

Az aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok félszintetikus származékainak előállításakor (több azonos funkciós csoport jelenléte miatt) mellékreakciókkal és így melléktermékek megjelenésével kell számolni. Ezért az aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik előállításához kellő hatásfokot biztosító, megfelelő kapacitású, üzemi méretben is alkalmazható elválasztási módszerre van szükség.In the production of semisynthetic derivatives of aminocyclitol aminoglycoside antibiotics (due to the presence of several same functional groups), side reactions and thus the appearance of by-products are to be expected. Therefore, the production of aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semisynthetic derivatives requires a suitably efficient, commercially available separation process.

Az eddig ismert eljárások túlnyomó többségében az elválasztást oszlopkromatográfiával végzik. Közismert, hogy az oszlopkromatográfiánál az oszlop elválasztóképessége, az elválasztás hatásfoka függ az oszlop terhelésétől, vagyis az oszlopra felvitt anyag mennyiségétől.In the vast majority of known processes, separation is carried out by column chromatography. It is well known that for column chromatography, the separation capacity of the column depends on the load on the column, i.e. the amount of material applied to the column.

Minél nagyobb az oszlopra felvitt elválasztandó anyagkeverék mennyisége, annál nagyobbak lesznek az átfedések és romlik a kihozatal. Gazdaságossági szempontból célszerű minél jobb kihozatalt biztosító terheléssel dolgozni. A túl alacsony terhelés azonban a nyers- és segédanyagfelhasználás, valamint a termelékenység szempontjából kedvezőtlen.The greater the amount of material mixture to be separated on the column, the greater the overlap and the yield will be degraded. From an economic point of view, it is advisable to work with the best possible load. However, too low a load is unfavorable in terms of raw and auxiliary material consumption and productivity.

Az aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok elválasztására a gyakorlatban alkalmazott eljárások két nagy csoportra oszthatók. Az adszorpciós kromatográfiás módszereknél az allófázis legtöbbször szilikagél vagy cellulózpor, a mozgó fázis pedig különböző összetételű oldószerelegy, leggyakrabban kloroform-metanol-ammónium-hidroxid rendszer. Az ilyen kromatográfiás eljárásokkal sok komponenst tartalmazó elegyek is jó hatásfokkal választhatók szét, az oszlop terhelhetősége azonban kicsi. Az eddig publikált adatok szerint a szilikagéies elválasztások kapacitása 5-20 g aminoglikozid bázis/lit.er állófázis. A módszer üzemi kivitelezésénél komoly hátrány az üzemi léptékű oszlopok ellenállása. Az eluensként használt kloroform-metanol-ammónium-hidroxid elegy mérgező és erősen agresszív, alkalmazása speciális szerkezeti anyag (teflon) felhasználását követeli meg.The methods used in practice for separating aminocyclitol aminoglycoside antibiotics can be divided into two broad groups. In adsorption chromatography methods, the allophase is most often silica gel or cellulose powder and the mobile phase is a mixed solvent mixture, most often a chloroform-methanol-ammonium hydroxide system. Mixtures containing many components can be separated efficiently by such chromatographic techniques, but the load on the column is low. According to the data published so far, the capacity of silica gel separations is 5-20 g aminoglycoside base / lit.er stationary phase. A major disadvantage in the operational implementation of the method is the resistance of the columns on the operational scale. The chloroform-methanol-ammonium hydroxide mixture used as eluent is toxic and very aggressive and requires the use of a special structural material (Teflon).

Szilikagéies kromatográfiás elválasztásokat írnak le többek között a 3 828 021, a 3 651 042 és a 4 085 208 lajstromszámú amerikai egyesült államokbeli szabadalmak, a 818 431 lajstromszámú belga szabadalom.Silica gel chromatographic separations are described, inter alia, in U.S. Patent Nos. 3,828,021, 3,651,042 and 4,085,208, Belgian Patent 818,431.

Az eljárások másik nagy csoportja álló- _ fázisként ioncserélő gyantát alkalmaz (Pirotta és társai: Előadás a IV. Ioncserés Szimpóziumon, 1980.) Erősen bázikus anioncserélők esetén az eluens ionmentes víz, gyengén savas kationcserélők alkalmazása esetén az eluens vizes ammónium-hidroxid oldat. Az ioncserés kromatográfiás módszerek hátránya, hogy az elválasztás esetén nem elég hatékony, az átfedések miatt a kívánt termék alacsonyabb hatásfokkal nyerhető csak ki, vagy egyáltalán nem izolálható tisztán. Az elválasztás mértéke erősen függ az oszlop terhelésétől. így pl. a 168 778 lajstromszámú magyar szabadalmi leírás szerinti nyers gentamicin szulfátból jó hatásfokkal izolálható gentamicin C komplex mellett melléktermékként gentamicin X, gentamicin A, gentamicin B és Bi sziszomicín többé-kevésbé tiszta állapotban. A leírt eljárás szerint az oszlop kapacitása azonban csupán 25 g bázis/liter gyanta, vagyis alig jobb, mint a szilikagéies eljárásoké. Ha a gyantaoszlop terhelését 50-60 g bázis/liter gyanta értékre emeljük, akkor elsősorban a kisebb mennyiségben jelenlévő anyagok elválása romlik, a gentamicin C komplex kihozatala alig változik, igy pl. a 174 695 lajstromszámú magyar szabadalmi leírás szerinti 52 g bázis/liter gyanta terhelés mellett a gentamicin B és Bi már nem válik el egymástól, hasonlóképpen a gentamicin A és a gentamicin X sem választható el.Another large group of methods use ion exchange resin as a stationary phase (Pirotta et al., Presentation at the Ion Exchange Symposium IV, 1980). In the case of highly basic anion exchangers, the eluent is deionized water and the weak acid cation exchanger is aqueous ammonium hydroxide. The disadvantage of ion-exchange chromatography methods is that they are not efficient enough in the separation, because of the overlaps, the desired product can be recovered only with lower efficiency or not isolated at all. The degree of separation depends strongly on the column load. so e.g. the crude gentamicin sulfate according to Hungarian Patent Application No. 168,778 can be isolated efficiently in addition to gentamicin X, gentamicin A, gentamicin B and Bi-isomycin Bi in a more or less pure state. However, according to the process described, the capacity of the column is only 25 g of base / liter of resin, which is barely better than that of silica gel processes. Raising the load of the resin column to 50-60 g of base / liter of resin results in primarily a decrease in the separation of minor amounts, with little change in the yield of the gentamicin C complex, e.g. with a load of 52 g of base / liter of resin according to Hungarian Patent Application No. 174,695, gentamicin B and bi are no longer separated, nor can gentamicin A and gentamicin X be separated.

A félszintetikus aminociklitol-aminoglikozid származékok előállításához az eddig ismertetett ioncserés kromatográfiás eljárásokban az oszlop terhelhetősége erősen függ a reakcióktól, azok szelektivitásától, valamint a védocsoportok alkalmazásától, továbbá attól is, hogy végterméket vagy intermediert állítanak—e elő. A végtermék tisztaságát biztosító kromatográfiás lépéseknél az oszlop kapacitása az esetek többségében alacsony (20-30 g bázis/liter gyanta). Ilyen eljárást írnak le pl. a 3 796 698 és a 3 796 699 lajstromszámú amerikai egyesült államokbeli szabadalmak, a 172 446 és a 175 575 lajstromszámú magyar szabadalmak.For the preparation of semisynthetic aminocyclitol aminoglycoside derivatives in the ion-exchange chromatography methods described above, the loading capacity of the column is highly dependent on the reactions, their selectivity, the use of protecting groups and whether the final product or intermediate is prepared. In the chromatographic steps to ensure the purity of the final product, the column capacity is in most cases low (20-30 g of base / liter of resin). Such a procedure is described e.g. U.S. Patents 3,796,698 and 3,796,699; Hungarian Patents 172,446 and 175,575.

Célul tűztük ki egy olyan elválasztási módszer kidolgozását, mely nagy oszlop terhelés mellett is jó elválasztást biztosít.The aim is to develop a separation method that provides good separation even under high column load.

Kísérleteinkben meglepő módon azt találtuk, hogy az elválasztás hatásfoka nagymértékben javítható és a kihozatal növelhető, ha gyengén savas kationcserélő gyanta alkalmazása esetén a kromatografálást olyan vizes ammónium-hidroxid oldattal végezzük, mely 2-15% rövid szénláncú alkoholt és/vagy ketont, előnyösen metanolt és/vagy etanolt és/vagy acetont tartalmaz.Surprisingly, our experiments have shown that the separation efficiency can be greatly improved and the yield increased by chromatography on a weakly acidic cation exchange resin with aqueous ammonium hydroxide solution containing 2-15% lower alcohol and / or ketone, preferably methanol and / or containing ethanol and / or acetone.

Találmányunk tárgya tehát aminociklitolok, aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik ioncserés kromatográfiás elválasztása oly módon, hogy az elválasztani kívánt vegyületeket ammónium formában lévő gyengén savas kationcserélő gyantán kötjük meg, majd az anyagokat 2-15% rövid szénláncú alkoholokat és/vagy ketonokat, előnyösen metanolt és/vagy etanolt és/vagy acetont tartalmazó 0,05-0,5 n ammóniumhidroxid oldatokkal kromatografáljuk.Thus, the present invention relates to the separation of aminocyclitols, aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semisynthetic derivatives by ion-exchange chromatography by coupling the compounds to be separated on a weakly acidic cation exchange resin in the form of ammonium, followed by 2 to 15% and / or 0.05-0.5 N ammonium hydroxide solutions containing ethanol and / or acetone.

A találmány szerinti eljárás lehetővé teszi, hogy aminociklitolok, aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik gyengén savas kationcserélö gyantán való kromatográfiás szétválasztásakor az elválasztás hatásfokát javítsuk és egyidejűleg az oszlop kapacitását növeljük.The process of the present invention allows the separation of aminocyclitols, aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semi-synthetic derivatives by chromatography on a weakly acid cation exchange resin to improve the separation efficiency and at the same time increase the capacity of the column.

A találmány szerinti eljárás további előnye, hogy nyers gentamicin szulfát kromatografálásakor a gentamicin C komplex komponensei egymástól is jobban szétválaszthatok, mint a tiszta vizes ammónium-hidroxid oldatokkal végzett kromatografálás során, így a gentamicin C komplex komponensei kedvezőtlen (nem a gyógyszerkönyvek által előirt) arányban tartalmazó nyers gentamicin szulfátból jobb kihozatallal állítható elő a gyógyszerkönyvi előírásoknak megfelelő komponens-összetételű gentamicin C szulfát. A találmány szerinti eljárás lehetővé teszi tág határok között megkívánt komponens összetételű gentamicin C szulfát előállítását.A further advantage of the process according to the invention is that when chromatographing crude gentamicin sulphate, the components of the gentamicin C complex can be separated more than when chromatographed with pure aqueous ammonium hydroxide solutions, so that the components of the gentamicin C complex have an unfavorable Gentamicin C sulphate can be obtained from raw gentamycin sulfate in a better yield, with a component composition according to the Pharmacopoeia. The process of the present invention enables the preparation of gentamicin C sulfate with a desired component composition over a wide range.

Az alábbi példákban bemutatjuk az aminociklitolok, aminoglikozid antibiotikumok és félszíntetikus származékaik ioncserés kromatográfiás elválasztását a találmány szerinti eljárással, anélkül, hogy ezzel a találmány oltalmi körét korlátozni kívánnánk.The following examples illustrate the ion-exchange chromatography of aminocyclitols, aminoglycoside antibiotics, and their semisynthetic derivatives by the process of the present invention, without limiting the scope of the invention.

1. példa g nyers gentamicin szulfátot, amelyet a 174 695 lajstromszámú magyar szabadalmi leírás alapján állítottunk elő és amely gentamicin C bázis tartalma 540 E/mg, továbbá 3% garamin szulfátot, 5% gentamicin B-Bi szulfátot, 1% gentamicin X szulfátot, 2% gentamicin A szulfátot és 6% sziszomicin szulfátot is tartalmaz - 200 ml ionmentes vízben feloldunk. Az oldat pH-ját 5 n ammóni4 um-hidroxid oldattal 7,0 értékre állítjuk és az oldatot 25 g aktív szénnel derítjük. A derítőszén kiszűrése után az oldat gentamicin tartalmát 750 ml ammóniumciklusban lévő Amberlite CG-50 Type I. gyantán kötjük meg. A gyantaoszlop átmérője 3,6 cm, magasságaExample 1 g of crude gentamicin sulfate, prepared according to Hungarian Patent Application No. 174,695, containing 540 U / mg gentamicin C base, 3% garamine sulfate, 5% gentamicin B-Bi sulfate, 1% gentamicin X sulfate. It contains 2% gentamicin A sulfate and 6% sisomycin sulfate - dissolved in 200 ml deionized water. The pH of the solution was adjusted to 7.0 with 5N ammonium hydroxide solution and the solution was clarified with 25 g of activated carbon. After filtration of the charcoal, the gentamicin content of the solution was bound to Amberlite CG-50 Type I resin in 750 ml of ammonium cycle. The resin column has a diameter of 3.6 cm and a height

74,5 cm. A megkötés lineáris sebesége 0,2 m/ó, amely 3,4 ml/perc térfogati sebességének felel meg. A gentamicin antibiotikumok megkötése után 0,2 m/ó lineáris sebességgel ionmentes vízzel mosatjuk az oszlopot 12 órán keresztül.74.5 cm. The linear rate of binding was 0.2 m / h, corresponding to a volumetric rate of 3.4 ml / min. After binding of the gentamicin antibiotics, the column was washed with deionized water at a linear speed of 0.2 m / h for 12 hours.

Ezután 2% metanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldattal megkezdjük a kromatögram kifejlesztését. Az eluens átfolyási sebessége is 0,2 m/ó. 500 ml-es frakciókat szedünk. Az eluálást papír- és vékonyrétegkromatográfiával (J. Antibiotics 28, 35, 1975) valamint nagynyomású folyadék kromatográfiával.Then develop the chromatogram with 0.1 N ammonium hydroxide solution containing 2% methanol. The flow rate of the eluent is also 0.2 m / h. 500 ml fractions were collected. Elution was carried out with paper and thin layer chromatography (J. Antibiotics 28, 35, 1975) and high performance liquid chromatography.

(HPLC-vel) ellenőrizzük. A gentamicin Cz-2b megjelenése után az eluens ammónium-hidroxid koncentrációját 0,3 n-ra emeljük, a metanol tartalmat pedig 5%-ra növeljük. A kívánt anyagokat a következő frakciók tartalmazzák:(By HPLC). After the appearance of gentamicin Cz-2b, the ammonium hydroxide concentration in the eluent was raised to 0.3 n and the methanol content increased to 5%. Desirable substances are contained in the following fractions:

frakciók fractions száma number 23-27 23-27 gentamicin X gentamicin X 29-35 29-35 gentamicin A gentamicin A 37-46 37-46 gentamicin B gentamicin B 47-55 47-55 gentamicin Bi (némi gentamicin Bi (some

micin B-vel szennyezve)contaminated with micin B)

59-70 59-70 garamin garamin 73-93 73-93 sziszomicin sisomicin 97-180 97-180 gentamicin C komplex gentamicin C complex

A megfelelő frakciókat egyesítjük, bepároljuk, a bepárolt koncentrátumokhoz a 168 778The appropriate fractions were combined and evaporated to give the concentrated concentrates as described in 168,778

l.sz. magyar szabadalmi leírás 1. példájának 9. lépésében leirt módon kénsavat adunk és az így képzett szulfátsókat metanollal kicsapjuk. A kapott szulfátsók mennyisége a következő:E.g. The sulfuric acid formed is precipitated with methanol as described in Example 1, step 9 of the Hungarian patent. The amount of sulfate salts obtained is as follows:

1.6 g gentamicin B szulfát1.6 g gentamicin B sulfate

1.7 g gentamicin Bi szulfát1.7 g gentamicin Bi sulfate

0.5 g gentamicin X szulfát0.5 g gentamicin X sulfate

1.2 g gentamicin A szulfát1.2 g gentamicin A sulfate

2.1 g garamin szulfát2.1 g of garamine sulphate

4.1 g sziszomicin szulfát4.1 g of schizomycin sulphate

65.9 g gentamicin C szulfát (komponensaránya:65.9 g gentamicin C sulfate (component ratio:

gentamicin Cl 28.6%. gentamicin Cz-2b 49.2%® gentamicin Cla 22.2%)’gentamicin Cl 28.6%. gentamicin Cz-2b 49.2% ® gentamicin Cla 22.2%) '

2. példaExample 2

Az 1. példában leírt eljárás szerint kapott 97-180. frakcióban az egyes gentamicin 3 komponensek megoszlása a következő:97-180 obtained according to the procedure of Example 1. The distribution of the individual gentamicin 3 components is as follows:

97-118 gentamicin Cz-2b97-118 gentamicin Cz-2b

119-139 gentamicin C2-2b és gentamicin Cl119-139 gentamicin C2-2b and gentamicin Cl

140-162 gentamicin C2-2b, gentamicin Ci és gentamicin Cu140-162 gentamicin C2-2b, gentamicin Ci and gentamicin Cu

163-171 gentamicin Ci és gentamicin Cla163-171 gentamicin Ci and gentamicin Cla

172-180 gentamicin Cia172-180 gentamicin Cia

Látható, hogy megfelelően kiválasztott frakciók egyesítésével illetve elhagyásával a nyers gentamicin szulfát kiindulási komponensaránya megváltoztatható és a kívánt értékre beállítható, igy pl. a 140-180. frakciókat egyesítve és az 1. példában leírt módon eljárva 54,0 g gentamicin C szulfátot kapunk, amelynek komponensaránya:It can be seen that by combining or omitting appropriately selected fractions, the starting component ratio of crude gentamicin sulfate can be changed and adjusted to the desired value, e.g. 140-180. fractions were combined to give gentamicin C sulfate (54.0 g) having the following component ratio:

gentamicin Ci 31.0% gentamicin C2-2b 40.9% gentamicin Cia 28.1%gentamicin Ci 31.0% gentamicin C2-2b 40.9% gentamicin Cia 28.1%

3. példaExample 3

100 ml derített nyers sziszomicin koncentrátumot - amelyet a 179 145, a 179 146 és a 179 147 lajstromszámú magyar szabadalmak alapján állítottuk elő és amely 40 g sziszomicin szulfátnak megfelelő sziszomicin bázist és 3 g 4-demetilsziszomicin bázist valamint 1,5 g 4-epi-demetilsziszomicin bázist tartalmaz - 400 ml ammóniumciklusban lévő100 ml of clarified crude sisomycin concentrate - prepared according to Hungarian Patents Nos. 179,145, 179,146, and 179,147, containing 40 g of the isomycin base corresponding to isomycin sulfate and 3 g of 4-demethylisomycin base and 1.5 g of 4-epi- contains demethylisomycin base - in 400 ml of ammonium cycle

Amberlite CG-50 Type I. gyantán eresztünk át 1,5 ml/perc sebességgel. A megkötés után az oszlopot ugyanezzel a sebességgel 12 órán át mosatjuk ionmentes vízzel.Passed through Amberlite CG-50 Type I resin at 1.5 ml / min. After curing, the column was washed with deionized water for 12 hours at the same rate.

A kromatografálást 10% metanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldattal kezdjük el. A kromatografálás sebességeChromatography was started with 0.1 N ammonium hydroxide solution containing 10% methanol. Speed of chromatography

1,5 ml/perc. 200 ml-es frakciókat szedünk, amelyek antibiotikum tartalmát papír- és vékonyrétegkromatográfiával ellenőrizzük. A demetil-sziszomicin epimerek leoldása után a sziszomicint 10% metanolt tartalmazó 0,2 n ammónium-hidroxid oldattal oldjuk le. A megfelelő frakciókat egyesítve és az 1. példában leírt módon eljárva 2,5 g 4’-epidemetil-sziszomicin szulfátot, 4,3 g 4'-demetil-sziszomicin szulfátot és 32,0 g sziszomicin szulfátot kapunk.1.5 ml / min. 200 ml fractions were collected and the antibiotic content was checked by paper and thin layer chromatography. After dissolution of the demethylisomycin epimers, the isomycin is dissolved in 0.2N ammonium hydroxide solution containing 10% methanol. The appropriate fractions were combined and reacted as described in Example 1 to give 2.5 g of 4'-epidemethyl-isomycin sulfate, 4.3 g of 4'-demethyl-isomycin sulfate and 32.0 g of isomycin sulfate.

4. példaExample 4

Gentamicin C komplex sósavas hidrolíziséből nyert 9 g nyers 2-dezoxisztreptamin szulfátot 25 ml ionmentes vízben oldunk. Az oldat pH-ját 5 n ammónium-hidroxid oldattal 7,0-re állítjuk, majd az oldatot 1,5 g aktív szénnel derítjük, szűrjük. A derített oldat 2-dezoxisztreptamin tartalmát '80 ml ammóniumciklusü Amberlite CG-50 gyantán kötjük meg. A megkötés lineáris sebessége 0,25 m/ó. A megkötés után az oszlopot ionmentes vízzel mosatjuk 10 órán keresztül 0,25 m/ό lineáris sebességgel.9 g of crude 2-deoxystreptamine sulfate obtained by hydrolysis of the gentamicin C complex with hydrochloric acid are dissolved in 25 ml of deionized water. The solution was adjusted to pH 7.0 with 5N ammonium hydroxide solution, and the solution was clarified with 1.5 g of activated carbon and filtered. The clarified solution was bound to 2-deoxystreptamine on '80 ml of Amberlite CG-50 ammonium ring. The linear velocity of the bond is 0.25 m / h. After curing, the column was washed with deionized water for 10 hours at a linear rate of 0.25 m / ό.

A kromatografálást 5% metanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldattal végezzük. A kromatografálás sebessége megegyezik az előbbiekkel. 100 ml térfogatú frakciókat szedünk. Az anyagok elválását vékonyrétegkromatográfiával ellenőrizzük (réteg: szilikagél, mozgó fázis: kloroform-metanol-cc. ammónium-hidroxid-viz 1:4;2:1 arányú elegye). A 2-dezoxisztreptamint tartalmazó frakciókat összeöntjük és bepároljuk. A 25 ml-re bepárolt oldatot 5 n kénsavval pHChromatography was carried out with 0.1 N ammonium hydroxide solution containing 5% methanol. The chromatographic speed is the same. Fractions containing 100 ml were collected. The separation of the materials was monitored by thin layer chromatography (layer: silica gel, mobile phase: chloroform: methanol: c. Ammonium hydroxide: water 1: 4; 2: 1). The fractions containing 2-deoxystreptamine were combined and evaporated. The solution was concentrated to 25 ml with 5 N sulfuric acid

4,5 értékig savanyítjuk és az oldatot 1 g aktív szénnel derítjük. A derített oldatból a 2-dezoxisztreptamin-szulfatot metanollal csapjuk ki. 6,2 g 2-dezoxisztreptamin-szulfátot kapunk.It is acidified to 4.5 and the solution is clarified with 1 g of activated carbon. From the clarified solution, 2-deoxystreptamine sulfate is precipitated with methanol. 6.2 g of 2-deoxystreptamine sulfate are obtained.

5. példaExample 5

A 4. példában leírtakhoz hasonlóan 9 g nyers 2-dezoxisztreptamin-szulfátot kromatografálunk 80 ml ammóniumciklusú Amberlite CG-50 gyantán. Eluensként 8% etanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldatot használunk. A 2-dezoxisztreptamint tartalmazó frakciókat egysitve és a 4. példában leírt módon eljárva 6,0 g 2-dezoxisztreptamin-szulfátot kapunk.As in Example 4, 9 g of crude 2-deoxystreptamine sulfate were chromatographed on 80 ml of Amberlite CG-50 ammonium ring resin. Elution was carried out with 0.1N ammonium hydroxide solution containing 8% ethanol. The fractions containing 2-deoxystreptamine were combined and performed as described in Example 4 to give 6.0 g of 2-deoxystreptamine sulfate.

6. példaExample 6

A 4. példában leírtakhoz hasonlóan 2-dezoxisztreptamin-szulfátot állítunk elő oly módon, hogy eluensként 5% acetont tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldatot használunk. 5,8 g 2-dezoxisztreptamin-szulfátot kapunk.Similarly to Example 4, 2-deoxystreptamine sulfate was prepared using 0.1 N ammonium hydroxide in 5% acetone as eluent. 5.8 g of 2-deoxystreptamine sulfate are obtained.

7. példaExample 7

A 4. példában leírtakhoz hasonlóan 2-dezoxisztreptamin-szulfátot állítunk elő oly módon, hogy eluensként 5% metanolt és 5% acetont tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldatot hsználunk. 6,1 g 2-dezoxisztreptamin-szulfátot kapunk.As in Example 4, 2-deoxystreptamine sulfate was prepared by eluting with 0.1N ammonium hydroxide solution containing 5% methanol and 5% acetone. 6.1 g of 2-deoxystreptamine sulfate are obtained.

8. példaExample 8

Sziszomicin aikilezéséből kapott 8 g reakcióterméket (amely vékonyrétegkromatogrefiás vizsgálatok alapján mintegy 25% netilmicin szulfátot és 40% el nem reagált sziszomicin szulfátot is tartalmaz) 200 ml amnióniumciklusú Amberlite CG-50 gyantán kromatografáljuk. A 8 g reakcióterméket 25 ml ionmentes vízben feloldjuk, és 1,5 ml/perc sebességgel megkötjük a gyantán. Megkötés után az oszlopot 8 órán keresztül ionmentes vízzel mosatjuk ugyanilyen sebességgel. A kromatografálás sebessége szintén8 g of the reaction product obtained from the alkylation of isomycin (containing about 25% netilmicin sulfate and 40% unreacted isomycin sulfate by thin layer chromatography) are chromatographed on 200 ml of Amberlite CG-50 Ammonium Cycle. The reaction product (8 g) was dissolved in deionized water (25 mL) and bound to the resin at a rate of 1.5 mL / min. After setting, the column was washed with deionized water for 8 hours at the same rate. Chromatography speed as well

1,5 ml/perc, eluensként 10% metanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldatot alkal5 mázunk. 100 ml térfogatú frakciókat gyűjtünk, amelyeket vékonyrétegkromatográfiával ellenőrzünk (állófázis: szilikagél, mozgófázis metiletilketon-ammónium-hidiOxid-etanol 2:1:1 arányú elegye). A megfelelő frakciókat egye- 5 sitve és az 1. példában leirt. módon feldolgozva, 2 g nyers netilmicin szulfátot és 3 g sziszomicin szulfátot kapunk.1.5 ml / min of 0.1 N ammonium hydroxide solution containing 10% methanol was eluted. Fractions (100 ml) were collected and monitored by TLC (stationary phase: silica gel, mobile phase: methylethylketone-ammonium hydroxide-ethanol 2: 1: 1). The appropriate fractions were combined and described in Example 1. Work-up gave 2 g of crude netilmicin sulfate and 3 g of isomycin sulfate.

9. példaExample 9

A 8. példában leirt módon nyert 4 g nyers netilmicin szulfátot 180 ml ammóniumciklusú Amberlite CG-50 gyantán kromatogra- 15 faljuk, A kromatogrammot 20-szoros oszloptérfogatnyi 10% metanolt tartalmazó 0,75 n ammónium-hidroxid oldattal fejlesztjük ki, majd a netilmicint 10% metanolt tartalmazó 0,1 n ammónium-hidroxid oldattal oldjuk le. A 20 netilmicint tartalmazó frakciókat az 1. példában leírt módon feldolgozva, 3,0 g netilmicin szulfátot kapunk.4 g of crude netilmycin sulphate obtained in Example 8 are chromatographed on 180 ml of Amberlite CG-50 ammonium ring resin. Dissolve in 0.1N ammonium hydroxide solution containing 1% methanol. The fractions containing 20 netilmicin were worked up as described in Example 1 to give 3.0 g of netilmicin sulfate.

Claims (6)

SZABADALMI IGÉNYPONTOKPATENT CLAIMS 1. Eljárás aminociklitolok, aminociklitolaminoglíkozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik ioncseres kromatografias elvalasztására és vizes oldataikból való előállítására, a komponenseknek ammónium formában levő, gyengén savas kationcserélő gyantán történő megkötése és ammónium-hidroxid oldattal való kromatogrnfálása, majd a kívánt komponensek só formában való kinyerése útján, azzal jellemezve, hogy a kromatogrufálást rövid szénláncú alkoholokat és/vagy ketonokat tartalmazó ammónium-hidroxid oldattal végezzük el.1. A process for separating aminocyclitols, aminocyclytolaminoglycoside antibiotics and their semisynthetic derivatives by ion exchange chromatography and preparing them from their aqueous solutions, binding the components to a weakly acidic cation exchange resin in the form of ammonium and reacting with the desired solution of ammonium hydroxide. characterized in that the chromatography is carried out with ammonium hydroxide solution containing lower alcohols and / or ketones. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a rövid szénláncú alkoholként metanolt, etanolt, és ketonként acetont alkalmazunk. ~2. The process according to claim 1, wherein the lower alcohol is methanol, ethanol and the ketone is acetone. ~ 3. Az 1, igénypont szerinti eljárás ákzal jellemezve, hogy a rövid szénláncú alkohol és/vagy keton koncentrációja 2-15 térfogat százalék, előnyösen 5-10 térfogat százalék.3. A process according to claim 1, wherein the concentration of the lower alcohol and / or ketone is from 2 to 15% by volume, preferably from 5 to 10% by volume. 4. Az 1, igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy 0,05-0,5 n koncentrációjú ammónium-hidroxid oldatokat alkalmazunk.4. A process according to claim 1, wherein the ammonium hydroxide solutions are present in a concentration of 0.05-0.5 n. 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy a gyengén savas kationcserélő gyantaként Amberlite CG-50 típusú gyantát alkalmazunk.5. The process of claim 1, wherein the weakly acidic cation exchange resin is Amberlite CG-50. 6. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy az aminociklitolok, aminociklitol-aminoglikozid antibiotikumok és félszintetikus származékaik szulfát sóját állítjuk elő.6. A process according to claim 1 wherein the sulfate salt of the aminocyclitols, aminocyclitol aminoglycoside antibiotics and their semi-synthetic derivatives is prepared.
HU334882A 1982-10-20 1982-10-20 Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof HU192775B (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU334882A HU192775B (en) 1982-10-20 1982-10-20 Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU334882A HU192775B (en) 1982-10-20 1982-10-20 Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT34989A HUT34989A (en) 1985-05-28
HU192775B true HU192775B (en) 1987-07-28

Family

ID=10963671

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU334882A HU192775B (en) 1982-10-20 1982-10-20 Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof

Country Status (1)

Country Link
HU (1) HU192775B (en)

Also Published As

Publication number Publication date
HUT34989A (en) 1985-05-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4861870A (en) Process for purifying anthracyclinone glycosides by selective adsorption on resins
DE2719912C3 (en) Process for the isolation of 0- | 4,6-dideoxy-4- [JJl SO, 4,6 / 5) -4,5,6-trihydroxy-3-hydroxymethyl-2cyclohexen-1-yl] -amino] - a - D-glucopyranosyl} - (I right arrow 4) -0- a D-glucopyranosyl- (l right arrow 4) -D-glucopyranose from culture broths
US3651042A (en) Separation of the components of the gentamicin complex
CN108892699B (en) Refining method of high-purity nucleotide
US4065615A (en) Deoxyaminoglycoside antibiotic derivatives
US3707536A (en) Process for the isolation and purification of s-adenosyl methionine and ethionine and novel sulfates thereof
US5986089A (en) Process for the preparation of moenomycin A
US4252971A (en) Chromatographic process
HU192775B (en) Process for separating aminocyclitols, aminocyclitolaminogly-coside antibiotics and derivatives thereof
DE69613100T2 (en) METHOD FOR PRODUCING PALATINITOL
US5463035A (en) Process for purifying pentostatin
CA1082696A (en) Separation of coformycin and its related nucleosides
KR0144345B1 (en) How to prepare amikacin
US3215687A (en) Process for preparing sodium salts of ribonucleotides
US3493558A (en) Purification of adenosine triphosphate
US2702263A (en) Process for recovering vitamin b12
DE69613101T2 (en) METHOD FOR PRODUCING PALATINITOL
Johnson et al. 609. Chemistry of the vitamin B 12 group. Part II. Synthesis of 5: 6-dimethyl-1-α-D-ribofuranosylbenziminazole
US4242503A (en) Process for O-demethylating fortimicins
US4196285A (en) Antibiotic purification process
JP2005509640A (en) Acarbose purification method
US20020183262A1 (en) Method for purification of acarbose
WO2003014135A1 (en) Method for purification of acarbose
CA1074789A (en) Process for purifying fortimicin a
KR920000102B1 (en) A process for purifying anthracyclinonic glycosides by selective adsorption on resins

Legal Events

Date Code Title Description
HU90 Patent valid on 900628
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee