HU190803B - Lymphocytes against carcinoma cells, process for producing them, and citostatic active agents containing the said lymphocytes - Google Patents
Lymphocytes against carcinoma cells, process for producing them, and citostatic active agents containing the said lymphocytes Download PDFInfo
- Publication number
- HU190803B HU190803B HU210282A HU210282A HU190803B HU 190803 B HU190803 B HU 190803B HU 210282 A HU210282 A HU 210282A HU 210282 A HU210282 A HU 210282A HU 190803 B HU190803 B HU 190803B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- gra
- carbohydrate
- lectin
- antigen
- cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
A találmány tárgya eljárás ráksejtellenes limfociták előállítási eljárására vonatkozik. A limfociták szenzibilizálását ráksejtekből származó szénhidrátot tartalmazó antigénnel végzik, amely szénhidrátot tartalmazó antigén lektinnel kapcsolódni képes a szénhidrát láncvégi galaktózcsoportján és a láncvégi N-acetil-galaktóz-amin csoportján keresztül. A találmány tárgya továbbá eljárás a szénhidrátot tartalmazó antigén előállítására, amelyet humán ráksejt hártyából különítenek el -1-The present invention relates to a method for the production of anti-cancer lymphocytes. Sensitization of lymphocytes is carried out with an antigen containing carbohydrate from cancer cells, which can bind to carbohydrate antigen lectin on the end galactose group of the carbohydrate and the N-acetyl galactose amine of the end of the chain. The invention further relates to a method for producing a carbohydrate-containing antigen which is isolated from a human cancer cell membrane -1
Description
A találmány tárgya ráksejtellenes limfociták (a következőkben „killer sejtek” = „gyilkos funkciójú sejtek”) előállítási folyamatára vonatkozik. Részletesebben az olyan killer limfociták előállítási eljárására vonatkozik, melyek szénhidrátot tartalmazó antigént (ezt az antigént a ráksejtekből nyerjük és az alábbiakban „GRA”-val jelöljük) tartalmaznak és ráksejtekre hatnak, ezeket pusztítják. A találmány tárgya továbbá rákellenes hatóanyag előállítása, mely killer sejtet vagy GRA-t tartalmaz hatóanyagként.The present invention relates to a process for the production of anticancer cell lymphocytes (hereinafter "killer cells" = "killer cells"). More particularly, it relates to a process for the production of killer lymphocytes which contain carbohydrate-containing antigen (obtained from cancer cells and hereinafter referred to as "GRA") and act on and kill cancer cells. The present invention also relates to the preparation of an anticancer agent comprising a killer cell or GRA as the active ingredient.
Az immunválasz effektor sejtjei, főleg a T-limfociták, jelentős szerepet játszanak a sejt közvetítette immunválaszban és a szervezetbe került idegen sejt antigénjeinek köszönhetőén az átültetett szövet kilökődését okozzák. Rákos sejtekkel szemben a limfocitáknak ez a tevékenysége nem figyelhető meg vagy igen csekély, így a ráksejtek nem pusztulnak el, hanem tovább élnek és az élő szervezetben elszaporodva végül a rákhordozó gazdaszervezet halálát okozzák.The effector cells of the immune response, especially the T-lymphocytes, play an important role in the cell-mediated immune response and cause the rejection of the transplanted tissue by the presence of foreign cell antigens. In contrast to cancerous cells, this activity of lymphocytes is not observed or very small, so that the cancer cells do not die, but survive and, when multiplied in the living organism, eventually cause the death of the cancerous host.
Mindamellett a szervezet önfelismerő képességéért (vagyis, hogy egy szervezet mit ismer el sajátjának és mit idegennek) felelős mechanizmus még nem teljesen tisztázott és különböző kutatások folynak, hogy bepillantást nyerjünk ezen rendszerek anyagi természetébe. Például a sejtfelszíni markerek esetében, az egérleukémia sejtjein vagy az embrionális karcinoma sejtjein alkalmazzák a lektineket, mint a Dolichos biflorus agglutinint (DBA) és amerikai mogyoró agglutinint (PNA), lásd Biochem. Biophys. Rés. Comm.-ban [89 (2) 448-455 (1979)], uo. [96 (4) 1547-1553 (1980)], J. Biochem.ben [59 473-481 (1981)] és Cell.-ben [75 183-191 (1979) szeptember].However, the mechanism responsible for the self-recognition of an organization (that is, what an organization recognizes as its own and what is a stranger) is not yet fully understood and various research is ongoing to gain an insight into the material nature of these systems. For example, for cell surface markers, murine leukemia cells or embryonic carcinoma cells use lectins such as Dolichos biflorus agglutinin (DBA) and American hazelnut agglutinin (PNA), see Biochem. Biophys. Gap. Comm. In [89 (2) 448-455 (1979)], ibid. (96 (4), 1547-1553 (1980)), J. Biochem. (59, 473-481 (1981)) and Cell.
Tudomásunk szerint nincsen olyan kísérlet, mely új limfocitákat állítana elő, amelyek képesek felvenni a specifikus küzdelmet a rákos sejtekkel és nincs olyan rákellenes hatóanyag sem, amely felhasználható a limfociták immunválaszának kiváltására.To the best of our knowledge, there are no attempts to produce new lymphocytes capable of specifically fighting cancer cells and no anticancer agent that can be used to elicit a lymphocyte immune response.
A találmány szerinti eljárással a killer sejteket készíthetjük olyan módon például, hogy GRA-t használunk a limfociták érzékennyé tételére.The method of the invention can be used to prepare killer cells by, for example, using GRA to sensitize lymphocytes.
A fenti módon használt GRA-t emberi és állati GRA-tartalmú ráksejtekből nyerhetünk, például ráksejt tenyészetekből, átültetett ráksejtekből, spontán előforduló ráksejtekből, kémiai anyaggal vagy vírus által előidézett ráksejtekből és műtéti úton eltávolított rákos szövetből, a következő eljárással.The GRA used in the above manner can be obtained from human and animal GRA-containing cancer cells, for example, cancer cell cultures, transplanted cancer cells, spontaneous cancer cells, chemical or viral-induced cancer cells, and surgically removed cancerous tissue.
A sejtmembrán alkotórészeit elválasztjuk a rákos sejttől az alábbiakban ismertetett módon és lektinnel kezeljük, amely specifikusan kapcsolódik a terminális N-acetil-galaktóz-aminhoz, ahol is a GRA lektinhez kapcsolódik és így könnyen elkülöníthetjük, lásd J. B. C.-ben [250, 8518-8523 (1975)], Biochem. Biophys. Rés. Comm.-ben [62, 144 (1975)]; Z. Immunitatsforsch.-ban [138, 423-433 (1969)], Br. J. Exp. Pathol.-ban [27, 228-236 (1946)]; Proc. Nat. Acad. Sci.-ben [75, 5. sz. 2215-2219 (1978)]; Biochemistry-ben [13, 196-204 (1974)] Carbohydrate Research-ben [57, 107-118 (1976)].The cell membrane constituents are separated from the cancer cell as described below and treated with lectin which specifically binds to the terminal N-acetylgalactosamine where GRA is attached to lectin and can thus be readily isolated, see JBC [250, 8518-8523 ( 1975)], Biochem. Biophys. Gap. Comm., 1972, 62, 144; Z. Immunitatsforsch., 138, 423-433 (1969), Br. J. Exp. Pathol., 27, 228-236 (1946); Proc. Nat. Acad. Sci. [75, no. 2215-2219 (1978)]; Biochemistry (13, 196-204 (1974)) and Carbohydrate Research (1976, 57, 107-118).
Alkalmas példák a lektin és az N-acetil-galaktózamin kapcsolódására a Dolichos bab (Dolichos biflorus) agglutinin, és a szójabab (Glycine hispida) lektin.Suitable examples of the coupling between lectin and N-acetylgalactosamine are Dolichos bean (Dolichos biflorus) agglutinin and soybean (Glycine hispida) lectin.
A ráksejt membránjának alkotórészeit elkülöníthetjük olyan ismert eljárásokkal, mint a homogenizálás vagy az oldási eljárás, azaz oldást elősegítő anyagot használó szolubilizációs módszer. Még előnyösebb, ha olyan eljárást alkalmazunk, amelyben a ráksejteket fiziológiás sóoldatban vagy megfelelő puffer-elegyben homogenizáljuk. A kicsapódott részt összegyűjtjük centrífugálással, oldjuk fiziológiás sóoldatban, vagy puffertartalmú oldatban, oldódást elősegítő anyagot használva és a felülúszó részt centrifúgálással különítjük el. Oldódást segítő anyagként használhatunk felületaktív anyagokat, amelyek a sejtmembránt oldani képesek : ilyenek például a nemionos felületaktív anyagok, mint pl. a TRITON X-100 (a Wako Pure Chemical Industries Ltd terméke), NP-40 (Shell Co. Ltd. terméke), a digitonin, karbamid és anionos felületaktív anyagok, pl. a nátrium-dodecilszulfonát (SDS).The components of the cancer cell membrane may be isolated by known methods such as homogenization or dissolution, i.e., a solubilization method using a solubilizing agent. More preferably, the method comprises homogenizing the cancer cells in physiological saline or in an appropriate buffer mixture. The precipitated part is collected by centrifugation, dissolved in physiological saline or in a buffer solution using a solubilizer, and the supernatant is separated by centrifugation. Suitable solubilizing agents are surfactants which are capable of solubilizing the cell membrane, such as nonionic surfactants, e.g. TRITON X-100 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries Ltd), NP-40 (manufactured by Shell Co. Ltd.), digitonin, urea and anionic surfactants, e.g. sodium dodecyl sulfonate (SDS).
Az igy kapott sejtmembrán alkotórészektől a lektinnel kapcsolódni képes GRA-t el lehet különíteni a szokásos fizikai-kémiai vagy biokémiai eljárásokkal, amelyek a lektin sajátságait hasznosítják. Az ilyen eljárások a lektintartalmú töltetet alkalmazó oszlopkromatográfia, az olyan immun kicsapásos eljárás, amely a GRA antitestjét vagy hasonló anyagot használ, a dialízises eljárás, a gélszűrési eljárás, az elektroforózises módszer, és olyan fizikai kicsapási eljárás, amelyben cukrot és fehérjét kicsapó anyagot alkalmazunk, pl. polietilénglikolt és • acetont, valamint ezek kombinációját.The lectin-binding GRA from the cell membrane components thus obtained can be isolated by conventional physico-chemical or biochemical techniques that utilize the properties of the lectin. Such methods include column chromatography using a lectin-containing packing, immunoprecipitation using GRA antibody or the like, dialysis, gel filtration, electrophoresis, and physical precipitation using sugar and protein precipitants, e.g. polyethylene glycol and • acetone, and combinations thereof.
Előnyösebb a lektint tartalmazó oszlopon végzett affinitáskromatográfia. A lektintartalmú hordozót könnyen elkészíthetjük úgy, hogy a lektint oldhatatlan hordozóhoz kötjük. A lektin megkötését egy oldhatatlan hordozón megvalósíthatjuk azokkal az ismert módszerekkel, amelyeket biológiai anyagok rögzítésére használunk. Ezen módszerek közül előnyös a poliszacharidok bróm-ciános aktiválási eljárása és az N-hidroxi-szukcinimidésztert alkalmazó rögzítés. A poliszacharidok bróm-ciános aktiválása olyan módszer, melyben egy oldhatatlan hordozót bróm-ciánnal kezelünk és az eljárás során nyert aktivált terméket használjuk fel a lektinnel való kapcsolási reakcióban. Az oldhatatlan hordozó bróm-ciános kezelésekor a pHMore preferably, affinity chromatography on a column containing lectin is preferred. The lectin-containing carrier can be readily prepared by binding the lectin to an insoluble carrier. Binding of lectin on an insoluble carrier can be accomplished by known methods used to fix biological materials. Among these methods, the preferred method is the bromocyanic activation of the polysaccharides and the attachment using the N-hydroxysuccinimide ester. The bromocyanic activation of polysaccharides is a method in which an insoluble support is treated with bromocyan and the activated product obtained in the process is used in the coupling reaction with lectin. The pH of the insoluble carrier is treated with bromine
7,5 és 12 közötti tartományának biztosítására használhatunk bázisos vegyületeket, pl. nátrium-hidroxidot, nátrium-hidrogén-karbonátot, a hordozót pedig kezelhetjük vízben, acetonitrilben, vagy valamely puffertartalmú oldatban, ahol a pH-t 0,1 mól nátrium-hidrogén-karbonát pufferral (a pH körülbelül 8,7) és 0,01 mól foszfát-pufferrel (a pH körülbelül 7,7) tartjuk 7,5 és 12 közötti tartományban. A kezelést szobahőmérsékleten végezzük 1-től 12 percig.In order to provide a range of 7.5 to 12, basic compounds, e.g. sodium hydroxide, sodium bicarbonate, and the carrier may be treated with water, acetonitrile, or a buffered solution having a pH of 0.1 molar sodium bicarbonate buffer (pH about 8.7) and 0.01 moles of phosphate buffer (pH about 7.7) in the range of 7.5 to 12. The treatment is carried out at room temperature for 1 to 12 minutes.
Előnyös, ha a bróm-cián mennyisége egyenlő az oldhatatlan hordozó mennyiségével.Preferably, the amount of bromocyano is equal to the amount of insoluble carrier.
A találmány szerinti eljárásban bármely ismert oldhatatlan hordozó alkalmazható, amely nem specifikusan adszorbeálja a biológiai anyagokat, nagy porozitású, funkciós csoportokat tartalmaz,Any known insoluble carrier which is non-specifically adsorbed to biological materials, has high porosity functional groups, can be used in the process of the invention.
190 803 melyek megkötik a biológiai anyagokat enyhe körülmények között, és kémiailag és fizikailag stabil.190 803 which bind biological materials under mild conditions and are chemically and physically stable.
A nem oldódó hordozó készülhet cellulózból, így amino-metil-cellulózból, karboxi-metil-cellulózból, bróm-acetil-cellulózból, p-anilino-cellulózból, lehet keresztkötéseket tartalmazó dextrán alapanyagú hordozó, például Sephadex és CM Sephadex (Farmacia Corp. terméke), lehet agaróz alapú hordozó, mint a Sepharose 4B, Sepharose 2B és a Sepharose 6B (a Farmacia Corp. terméke).The insoluble carrier may be made from cellulose such as aminomethyl cellulose, carboxymethyl cellulose, bromoacetyl cellulose, p-anilino cellulose, and may be a cross-linked dextran based carrier such as Sephadex and CM Sephadex (product of Farmacia Corp.). , can be an agarose based carrier such as Sepharose 4B, Sepharose 2B and Sepharose 6B (product of Farmacia Corp.).
A fentiek szerinti bróm-ciánnal aktivált hordozó és a lektin kapcsolódási reakciójában az aktivált hordozó a lektin mennyiségének 30-80-szorosa; a vegyületeket megfelelő oldószerben reagáltatjuk, például nátrium-hidrogén-karbonát 0,1 mól/íiter vizes oldatában (mely 0,5 mól/liter nátrium-kloridot tartalmaz, a pH értéke 8,4), a hőmérséklet 0 és 40 ’C közötti lehet. Előnyös azonban, ha 2 és 8 ’C között tartjuk az oldatot 10-20 órán át. Ezen a módon nyerünk lektintartalmú hordozót a kromatográfiás eljáráshoz.In the coupling reaction of the bromocyano-activated carrier as described above with the lectin, the activated carrier is 30-80 times the amount of lectin; the compounds are reacted in a suitable solvent, for example, in a 0.1 mol / L aqueous solution of sodium bicarbonate (containing 0.5 mol / L sodium chloride, pH 8.4), the temperature may be from 0 to 40 ° C. . However, it is preferred to hold the solution at 2 to 8 ° C for 10 to 20 hours. In this way, a lectin-containing support for the chromatography is obtained.
A fenti módon készített lektintartalmú hordozót alkalmazó kromatográfia során a kívánt GRA a lektintartalmú hordozóhoz kapcsolódik és az oszlopban marad. Azok az anyagok, amelyek kapcsolódni képesek a lektinnel, áthaladhatnak az oszlopon, egy kicserélődési reakcióban véve részt, vagy más módszer szerint egy adszorpciós elkülönítőt (eluáló oldat), például kálium-tiocianát nagytöménységű vizes oldatát és egy nitrát puffért bocsátunk át az oszlopon a disszociáció érdekében, így a kívánt GRA-t nyerjük.During chromatography using a lectin-containing support prepared as described above, the desired GRA is attached to the lectin-containing support and remains in the column. Substances that are capable of binding to lectin may pass through the column via an exchange reaction, or alternatively, an adsorption separator (eluting solution) such as a high potassium thiocyanate aqueous solution and a nitrate buffer may be passed through the column for dissociation. to obtain the desired GRA.
A kicserélődési reakcióban az anyagminta képes a lektinhez kapcsolódni, ha az affinitás-kromatografálás során olyan hordozót használunk, amely galaktózkötő lektint tartalmaz, beleértve azokat, amelyek alkalmasak olyan terminális galaktózhoz kapcsolódni mint például a galaktóz, diszacharidok és oligoszacharidok, melyek terminális galaktózt tartalmaznak, valamint az anyagminta alkalmas a lektinnel való kapcsolódásra akkor is, ha az affinitás kromatografálás során olyan hordozót használunk, mely N-acetil-galaktóz-amin-kötő lektint tartalmaz, beleértve azokat, amelyek alkalmasak a kapcsolódásra a terminális N-acetil-galaktózaminnal vegyülő lektinnel is. Ilyen például az N-acetil-galaktóz-amin, a diszacharidok, amelyek terminális N-acetil-galaktóz-amint és oligiszacharidok, amelyek végállású N-acetil-galaktóz-amint tartalmaznak.In the exchange reaction, the material sample is capable of binding to lectin using a carrier containing galactose-binding lectin for affinity chromatography, including those suitable for binding to terminal galactose, such as galactose, disaccharides and oligosaccharides containing terminal galactose, a sample of a substance is also suitable for coupling with lectin, even when using a carrier containing N-acetyl-galactosamine-binding lectin for affinity chromatography, including those suitable for coupling with terminal N-acetyl-galactosamine. Examples are N-acetylgalactosamine, disaccharides containing terminal N-acetylgalactosamine and oligosaccharides containing terminal N-acetylgalactosamine.
Az ilyen módon előállított GRA terminális galaktóz és/vagy N-acetil-galaktóz-amint tartalmazó glükoproteint, glükolipidet és/vagy szacharidot tartalmaz. Az így előállított GRA liofilezhető és kívánt esetben még tisztább anyagot állíthatunk elő, ennek során a szokásos tisztítási eljárásokat alkalmazzuk. Például a galaktóz-kötő lektinnel izolált GRA készítményeket egy olyan elkülönítési eljárásnak vethetjük alá, ahol terminális N-acetilgalaktóz-aminhoz kapcsolódó lektint használunk, míg az N-acetil-galaktóz-aminhoz kapcsolódó lektinnel izolált GRA készítményeket az elkülönítési eljárás során a galaktóz-kötő lektinnel kezelhetjük.The GRA produced in this manner contains glycoprotein, glycolipid and / or saccharide containing terminal galactose and / or N-acetylgalactose amine. The GRA thus prepared can be lyophilized and, if desired, even more purified, using conventional purification procedures. For example, GRA compositions isolated with galactose-binding lectin may be subjected to an isolation process using terminal N-acetylgalactosamine-linked lectin, while GRA compositions isolated with N-acetyl-galactosamine-linked lectin may be subjected to a galactose-binding lectin isolation process. We can manage.
A limfociták eredete nem fontos, és egyaránt használhatunk ép, egészséges, vagy rákos emberi szervezetből vagy állati szervezetből származó limfocitákat a perifériás vérből, a csontvelőből, nyirokcsomóból, lépből, mandulából és a csecsemőmirigyből. A limfocitákat fizikai vagy kémiai módszerek segítségével, membrán-felszín módszerrel [The Japanese Journal of Chemical Pathology-ban ismertetett módszer, 25. különszám (1976) 105. oldal] vagy más módszerrel különítjük el.The origin of lymphocytes is irrelevant and lymphocytes from intact, healthy or cancerous human or animal organs from peripheral blood, bone marrow, lymph node, spleen, tonsil and thymus can be used. Lymphocytes are isolated by physical or chemical methods, membrane surface method (method described in The Japanese Journal of Chemical Pathology, Vol. 25, 1976, p. 105) or other methods.
A limfociták GRA-val történő érzékenyítését a limfocitáknak GRA-tartalmú tápközegen végzett tenyésztésével végezzük 1-10 nap alatt, előnyösenGRA-sensitization of lymphocytes is performed by culturing lymphocytes in GRA-containing medium for 1-10 days, preferably
2-7 nap alatt.2-7 days.
A limfociták érzékenyítésére bármely, általában a sejttenyésztéshez használatos közönséges tápközeget használhatunk. Jól használható tápközegek: a RPMI 1640 tápközeg [J. A. M. A.-bán, 799 (1967) p. 519. leírt tápközeg], az Eagle MÉM tápközeg [Science-ben, 130 (1959) p. 432 tápközeg], mindezek emberi szérummal, borjúembrió szérummal (FCS), borjúszérummal, lószérummal vagy más hasonló szérumokkal kiegészítve. A tenyészethez adandó GRA mennyisége cukor-mennyiségként számolva 1-1000 mg/ml, előnyösen 1-500 mg/ml 1 x 106/ml limfocitára.Any of the conventional media usually used for cell culture can be used to sensitize lymphocytes. Useful Mediums: RPMI 1640 Medium [JAMA-b. 799 (1967), p. 519], the Eagle MEM medium [Science, 130 (1959) p. 432 medium], all supplemented with human serum, fetal calf serum (FCS), calf serum, equine serum or similar sera. The amount of GRA to be added to the culture is 1-1000 mg / ml, preferably 1-500 mg / ml, 1 x 10 6 / ml of lymphocyte, calculated as sugar.
A tenyésztést hagyományos módon végezzük, például kb. 7,2 pH-n 37 ’C körüli hőmérsékleten.The cultivation is carried out in a conventional manner, e.g. 7.2 at pH 37 ° C.
A találmány szerint előállított killer sejtek lényegében „közönséges” limfociták és specifikus GRA elleni aktivitással rendelkeznek. Például a GRA-l-KT, amely egyike a találmány szerinti killer sejteknek, tulajdonságai hasonlóak az emberi perifériás vér T sejtjeihez, és specifikus sejtpusztitó aktivitást mutat a GRA-t tartalmazó ráksejtek ellen, amint azt az alábbiakban ismertetjük.The killer cells of the present invention are essentially "normal" lymphocytes and have specific anti-GRA activity. For example, GRA-1-KT, one of the killer cells of the invention, has properties similar to human peripheral blood T cells and exhibits specific cell killing activity against GRA-containing cancer cells as described below.
A találmány szerinti új killer sejtek jellemző példája a GRA-l-KT és a GRA-M-1, amelyek előállítását az alábbiakban leírt példákkal mutatjuk be. A találmány összes killer sejtje a rendelkezésre áll, a feltalálótól beszerezhető.Representative examples of novel killer cells of the invention are GRA-1-KT and GRA-M-1, the preparation of which is illustrated by the following examples. All killer cells of the invention are available and can be obtained from the inventor.
A találmány szerinti killer sejteket korlátlanul szaporíthatjuk a fent leírt, T sejt növesztő faktort is (TCGF-IL-2) tartalmazó táptalajon. Ebben az esetben a killer sejtek kiónjainak szelektív tenyésztését ultrahígításos módszerrel valósítjuk meg. Ezeket a killer sejteket hosszú ideig tárolhatjuk, például folyékony nitrogénben.The killer cells of the present invention can be grown indefinitely in medium containing the T cell growth factor (TCGF-IL-2) described above. In this case, selective growth of the clones of the killer cells is accomplished by the ultrasound method. These killer cells can be stored for a long time, for example in liquid nitrogen.
A GRA önálló hatóanyagként és más baktérium- és rákellenes szerekkel együtt is alkalmazható. A találmány szerinti GRA-t hatóanyagként tartalmazó rákellenes szerek bármely formában kiszerelhetők, mindaddig, amíg olyan állapotúak, hogy a GRA-t hatásos mennyiségben tartalmazzák. A hatóanyagot intravénásán, szubkután, bőrbe vagy intramuszkulárisan, oldat, szuszpenzió vagy emulzió formájában alkalmazhatjuk. A hatóanyagot elkészíthetjük előre száraz termék formájában is, amelyet oldatba vihetünk megfelelő vivőanyag hozzáadásával. A folyadék, melyben az oldást végezzük, tartalmazhat szuszpendáló szert, például metil-cellulózt, emulgeáló szert, például lecitint, tartósítószereket, például metil-p-hidroxi-benzoátot, és olyan stabilizáló szert, amely nem vált ki semmilyen immunválaszt emberből vagy állatból, puffért és más hasonlókat.GRA can be used as a single agent and in combination with other antibacterial and anticancer agents. The anti-cancer agents containing the GRA of the invention as active ingredient may be formulated in any form as long as they are present in an effective amount of the GRA. The active ingredient may be administered intravenously, subcutaneously, intradermally or intramuscularly in the form of a solution, suspension or emulsion. The active ingredient may also be formulated as a pre-dry product which may be reconstituted by addition of a suitable vehicle. The liquid in which the solution is made may contain a suspending agent such as methylcellulose, an emulsifying agent such as lecithin, preservatives such as methyl p-hydroxybenzoate, and a stabilizing agent that does not elicit any immune response in humans or animals, buffers. and the like.
Vizes vivőanyagként alkalmazhatunk fiziológiásAn aqueous vehicle can be used as a physiological vehicle
-3190 803 .-3190 803.
sóoldatot, nem vizes vivőanyagként pedig növényi olajat, például szezámolajat, ásványi olajat, például paraffint, állati olajat, például szkvalént vagy propilénglikolt. Az immunológiai hatás fokozása érdekében megfelelő adjuvánst is adhatunk hozzá, amely lehet a Freund-féle komplett adjuváns, állatok számára lehet a szaponin, emberek számára aluminium-hidroxid.saline, and as a non-aqueous vehicle, vegetable oil such as sesame oil, mineral oil such as paraffin, animal oil such as squalene or propylene glycol. Suitable adjuvants may be added to enhance the immunological effect, which may be Freund's complete adjuvant, saponin for animals, aluminum hydroxide for humans.
Rákos betegek kezelésére a találmány szerinti készítményeket adhatjuk egy alkalommal vagy hosszú időn át ismételve, de adhatjuk megelőzésképpen is olyan személyeknek, akik ki vannak téve a rákbetegség veszélyének.For the treatment of cancer patients, the compositions of the present invention may be administered once or repeatedly, or may be administered prophylactically to individuals at risk of cancer.
A GRA LDS0 értéke (egérben, intraperitoneálisan) cukorként számítva 500 mg/kg, így a találmány szerinti rákellenes hatóanyag kis toxicitású és ennél fogva széles határok között változtathatjuk az alkalmazott dózis mennyiségét. Bár a GRA koncentrációja a találmány szerinti rákellenes készítményekben nem alapvető fontosságú, mégis előnyös, ha a cukorként számított mennyisége 0,001 és 10 gg/ml között van. Előnyös, ha a rákellenes hatóanyagot 0,001-1,000 pg/kg/nap mennyiségben adagoljuk, egyszerre vagy több apró dózisban elosztva, ez azonban függ a betegség kiterjedésétől, a beteg korától és nemétől is.The LD S0 value of GRA (intraperitoneal in mice) is 500 mg / kg of sugar, so that the dosage of the anticancer agent of this invention is of low toxicity and can therefore be varied within wide limits. Although the concentration of GRA in the anticancer compositions of the present invention is not critical, it is preferred that the amount of sugar as a sugar is between 0.001 and 10 µg / ml. Preferably, the anti-cancer agent is administered in an amount of 0.001-1,000 pg / kg / day, administered in one or more small doses, however, depending upon the extent of the disease, the age and sex of the patient.
Az ilyen módon elkészített, a killer sejteket mint hatóanyagot tartalmazó rákellenes szert előnyösen alkalmazhatjuk injekció alakjában és kombináljuk olyan vivőanyagokkal, amelyek hasonló vérkészítményeknél elterjedten használatosak. A felhasznált vivőanyagok fajtái nem döntőek, de a vérrel izotóniás vivőanyagok alkalmazása előnyös. Különösen előnyös, ha hordozóként fiziológiás sóoldatot használunk. A hatóanyag készítésekor előnyös, ha a killer sejteket elegendő mennyiségű fiziológiás sóoldattal vagy ehhez hasonlóval mossuk, annak érdekében, hogy eltávolítsuk a fentiekben leírt tápközeget, és a killer sejtek lebegjenek a hordozóban.The anticancer agent prepared in this manner, containing the killer cells as the active ingredient, can be advantageously used in the form of an injection and combined with carriers commonly used in similar blood products. The types of carriers used are not critical, but isotonic carriers with blood are preferred. It is particularly advantageous to use physiological saline as the carrier. In the preparation of the active ingredient, it is advantageous to wash the killer cells with a sufficient amount of physiological saline or the like to remove the medium described above and to kill the killer cells in the vehicle.
A killer sejtek koncentrációja nem szigorúan meghatározott, de előnyös, ha 10’ és 109/ml közötti értékeket alkalmazunk. Ha a killer sejteket 10* koncentrációban intraperitoneálisan adagoljuk egereknek, nem észlelünk toxikus elváltozásokat. Bár a találmány szerinti rákellenes készítmény dózisa függ a betegség súlyosságától, a beteg korától és nemétől, általában előnyös, ha a készítményt 10s és 10®/kg/nap dózisokban adagoljuk, egyszerre vagy több részletben.The concentration of killer cells is not strictly determined, but it is preferable to use values ranging from 10 'to 10 9 / ml. No toxic lesions were observed when the killer cells were administered intraperitoneally at 10x concentration to mice. Although the dosage of the anticancer composition of the present invention will depend on the severity of the disease, the age and sex of the patient, it is generally preferred to administer the composition in doses of 10 s and 10 ® / kg / day, in one or more administrations.
A továbbiakban a találmány tárgyát, annak oltalmi körének szűkítése nélkül, tájékoztató, kísérleti és összehasonlító példákkal szemléltetjük.The present invention is further illustrated, without limiting its scope, by way of illustrative, experimental and comparative examples.
I. Tájékoztató példa A GRA lokalizálása (1) - A FITC-tal (fluoreszcein-izotiocianát) jelzett lektin készítése (PNA-FITC).Information Example I Localization of GRA (1) - Preparation of FITC (Fluorescein Isothiocyanate) Labeled Lectin (PNA-FITC).
mg amerikai mogyoró lektint (PNA, az E Y, Laboratories, Inc. Califomia terméke) oldunk 2 ml 0,01 mólos, 0,85% nátrium-kloridot tartalmazó foszfátpufferben (pH = 7,2). 1 ml 0,5 mólos hidrogén-karbonát puffért oldunk (pH = 9) 2 mg FITCban (Sigma Laboratories Inc. terméke), az így kat ímg of hazelnut lectin (PNA, Califomia product of EY, Laboratories, Inc.) was dissolved in 2 ml of 0.01 M phosphate buffer (pH 7.2) containing 0.85% sodium chloride. 1 ml of 0.5 M hydrogen carbonate buffer (pH 9) was dissolved in 2 mg FITC (product of Sigma Laboratories Inc.) to give
pott oldat 0,5 ml-ét a fentiek szerinti PNA-pufferoldathoz adjuk. Az elegyet 2 órán át szobahőmérsékleten keverjük, ezt követően Sephadex G 25-ön (10 mm x 300 mm, Farmacia Corp. terméke) különítjük el. A kezdő csúcsot összegyűjtjük. FITC/PNA aránya 1,0.0.5 ml of the solution is added to the above PNA buffer solution. After stirring for 2 hours at room temperature, the mixture was separated on Sephadex G 25 (10mm x 300mm, Farmacia Corp.). The initial peak is collected. FITC / PNA ratio 1.0.
(1) - B FITC-tal jelzett lektin készítése (DBAFITC)(1) - Preparation of B-FITC-labeled lectin (DBAFITC)
Dolichos bab agglutinin. Hasonló módon mint az (1)—A pontban DBA-FITC-ot nyerünk, a használt DBA az E. Y. Inc, terméke. A FITC/DBA hányadosa = 0,9.Dolichos bean agglutinin. In a similar manner to DBA-FITC (1) -A, the DBA used is a product of E. Y. Inc. FITC / DBA ratio = 0.9.
(1) - C FITC-tal jelzett szójabab agglutinin (SBA-FITC) beszerezhető az E. Y. Inc.-től(1) - C FITC-labeled soybean agglutinin (SBA-FITC) is available from E. Y. Inc.
A FITC/SBA hányadosa =1,4.FITC / SBA ratio = 1.4.
(2) A GRA helye különféle rákos sejtekben.(2) Location of GRA in various cancer cells.
(a) A tenyésztett emberi ráksejteket (1 χ 106)(a) Cultured human cancer cells (1 × 10 6 )
0,85%-os nátrium-kloridot tartalmazó 0,05 mólos trisz(hidrogén-klorid)-pufferral (pH 7,2) háromszor mossuk, centrifugáljuk és ezután - a fenti (1) példában leírt eljárással készített -F1TC-PNA vagy FITC-DBA vagy FITC-SBA 100 ml-ét (200 pg/ml)-t adjuk hozzá. A kapott elegyet szobahőmérsékleten 30 percig állni hagyjuk. A reakció befejeződése után, a reakcióelegyet háromszor 0,85% nátrium-kloridot tartalmazó 0,01 mólos foszfátpufferral (pH 7,2) mossuk, ezután a sejteket tárgylemezre helyezzük és fluoreszcens mikroszkóppal vizsgáljuk.Washed three times with 0.05 M Tris-hydrogen chloride buffer (pH 7.2) containing 0.85% sodium chloride, centrifuged and then -F1TC-PNA or FITC prepared as described in Example 1 above. 100 ml (200 pg / ml) of -DBA or FITC-SBA is added. The resulting mixture was allowed to stand at room temperature for 30 minutes. After completion of the reaction, the reaction mixture was washed three times with 0.01 M phosphate buffer (pH 7.2) containing 0.85% sodium chloride, and the cells were placed on a slide and examined under a fluorescent microscope.
Az eredményeket az 1. táblázatban mutatjuk be. Az alkalmazott rákos sejtek mindegyike ismert, származási helyük a First Pathology Laboratories, .Medical Departmant of Niigata University.The results are shown in Table 1. All cancer cells used are known and come from First Pathology Laboratories, Medical Department of Niigata University.
7. táblázatTable 7
190 803190 803
1. táblázat folytatásaContinuation of Table 1
A rákos betegekből származó rosszindulatú szövetet rozsdamentes acélhálón átnyomjuk (lyukbősége 150 mesh), így olyan szuszpenziót készítünk, melyben a sejtek egyenként helyezkednek el.Malignant tissue from cancer patients is pressed through a stainless steel mesh (150 mesh) to form a suspension in which the cells are individually placed.
Miután 2 mmól/1 kalcium-kloridot, 2 mmól/1 magnézium-kloridot és 0,85% nátrium-kloridot tartalmazó 0,01 mólos trisz(hidrogén-kloridos)pufferral (pH 7,4) kétszer átmostuk, 5 x 105 sejtet újra szuszpendálunk 100 μΐ pufferben. A sejt-szuszpenzióhoz 100 μΐ PNA-FITC-t vagy DBA-FITC-t (200 μg/ml) adunk, összekeverjük és szobahőmérsékleten 20 percig inkubáljuk. Ezután háromszor mossuk hideg PBS-sel (0,15 mólos foszfát puffer, amely nátrium-kloridot tartalmaz és pH értéke 7,6) és a sejteket fluoreszcens mikroszkóppal vizsgáljuk. Az eredményt a 2. táblázatban szemléltetjük. A rákos betegekből származó malignus szövetet a Kansai Medical University bocsátotta rendelkezésünkre.After washing twice with 0.01 M Tris (hydrochloric acid) buffer (pH 7.4) containing 2 mM calcium chloride, 2 mM magnesium chloride and 0.85% sodium chloride, 5 x 10 5 cells were washed. resuspend in 100 μΐ buffer. To the cell suspension was added 100 μC PNA-FITC or DBA-FITC (200 μg / ml), mixed and incubated at room temperature for 20 minutes. It is then washed three times with cold PBS (0.15 M phosphate buffer containing sodium chloride and pH 7.6) and the cells are examined under a fluorescent microscope. The result is shown in Table 2. Malignant tissue from cancer patients was provided by Kansai Medical University.
2. táblázatTable 2
Megjegyzés:Comment:
+ jelölés: a GRA megjelent a sejtfelszínen,+ label: GRA appeared on the cell surface,
- jelölés: a GRA nem jelent meg a sejtfelszínen.- Labeling: GRA did not appear on the cell surface.
2. Tájékoztató példa A GRA előállítására (1) - A Kötött lektin előállítása (PNA-Sepharose) 3 g bróm-ciánnal aktivált Sepharose^4B-t (a Farmacia Corp. terméke) alaposan átmosunk 1 mmól/1 sósav-oldattal és 200 ml 0,1 mólos nátriumhidrogén-karbonátban (pH 8,5) szuszpendáljuk. Azután 5 ml 20 mg PNA-t tartalmazó 0,01 mól foszfátpuffert (pH 8,5) adunk hozzá és 25 °C hőmérsékleten 2 órán át reagáltatjuk időnkénti keverés mellett, hogy elkészítsük a PNA-Sepharose-t.Information Example 2 for GRA Preparation (1) - Preparation of Bound Lectin (PNA-Sepharose) 3 g of bromocyano-activated Sepharose ^ 4B (product of Farmacia Corp.) were thoroughly washed with 1 mM hydrochloric acid and 200 ml. It is suspended in 0.1 M sodium bicarbonate, pH 8.5. Then, 5 ml of 0.01 M phosphate buffer (pH 8.5) containing 20 mg of PNA was added and reacted at 25 ° C for 2 hours with occasional stirring to prepare PNA-Sepharose.
(1) - B Hasonló módon, mint a fenti (1 )-A pontban, használhatunk DBA-t PNA helyett és ekkor DBA-Sepharose-t kapunk (Dolichos bab).(1) - B In a similar manner to (1) -A above, DBA can be used in place of PNA and DBA-Sepharose (Dolichos bean) is obtained.
(2) GRA készítése (a) BT-1 (Burkitt limfoma) sejteket (1,3 x 108) háromszor fiziológiás sóoldattal mosunk és 30 ml 0,01 mólos trisz-(hidrogén-klorid)-puffert (pH = 7,4) - amely 2% TRITON-X-100-at (a Wako Pure Chemical Industries Ltd. terméke), 0,85% nátriumkloridot, 2 mmól/1 kalcium-kloridot és 2 mmól/1 magnézium-kloridot tartalmaz - adunk hozzá. A keveréket 4 °C-on 15 percig keverjük és ultracentrifugával elkülönítjük (100 000 xg). Az így nyert 28 ml felülúszó folyadék 14 ml részletét átbocsátjuk egy oszlopon (átmérő 0,5 cm, hosszúság 1 cm), affinitási kromatográfiai végezve; az oszlop PNA-agarózos töltetű (a Maruzen Co., Ltd. terméke), amelyet 0,1% TRITON-X-100, 0,85% nátrium-klorid, 2 mmól/I kalcium-klorid és 2 mmól/1 magnézium-klorid-tartalmú trisz-(hidrogénklorid)-pufferral (pH 7,4) egyensúlyoztuk ki. A fenti pufferral való mosás után a 0,01 mólos trisz-(hidrogén-klorid) (pH = 7,4)-pufferral eluálunk, amely 0,1 mól/1 íaktózt, 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kalcium-kloridot, 2 mmól/1 magnézium-kloridot és 0,1% TRITON-X-100-at tartalmaz. Az így eluált részt 0,01 mólos trisz-(hidrogénklorid)-pufferral szemben - amely 0,85% nátriumkloridot, 2 mmól/1 magnézium-kloridot és 2 mmól/1 kalcium-kloridot tartalmaz - 48 órán át dializáljuk, és így 17 ml GRA oldatot kapunk. A GRA oldatban meghatározzuk a fehérje és a cukor mennyiségét a Folin-Lowry, illetve a fenol-kénsav-módszerrel és ennek értékét 644 pg-nak illetve 120 pg-nak találjuk. Ezt az oldatot a továbbiakban „GRA-1”ként említjük.(2) Preparation of GRA (a) BT-1 (Burkitt's lymphoma) cells (1.3 x 10 8 ) are washed three times with physiological saline and 30 ml of 0.01 M Tris-hydrogen chloride buffer, pH 7.4 ) containing 2% TRITON-X-100 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries Ltd.), 0.85% sodium chloride, 2 mM calcium chloride and 2 mM magnesium chloride. The mixture was stirred at 4 ° C for 15 minutes and separated by ultracentrifuge (100,000 xg). A 14 ml portion of the resulting 28 ml supernatant fluid was passed through a column (0.5 cm diameter, 1 cm length) by affinity chromatography; the column was packed with PNA agarose (product of Maruzen Co., Ltd.) containing 0.1% TRITON-X-100, 0.85% sodium chloride, 2 mM calcium chloride and 2 mM magnesium. chloride-containing Tris (hydrogen chloride) buffer (pH 7.4). After washing with the above buffer, eluted with 0.01 M Tris-Hydrochloride pH 7.4 buffer containing 0.1 M lactose, 0.85% sodium chloride, 2 mM containing calcium chloride, 2 mM magnesium chloride and 0.1% TRITON-X-100. The eluted portion was dialyzed against 0.01 M Tris (hydrochloric acid) buffer containing 0.85% sodium chloride, 2 mM magnesium chloride and 2 mM calcium chloride to yield 17 ml. GRA solution was obtained. The amount of protein and sugar in the GRA solution was determined by the Folin-Lowry and the phenolic sulfuric acid method and found to be 644 pg and 120 pg. This solution is hereinafter referred to as "GRA-1".
(b) C3H egér emlőrák (MMT) sejteket (1 x 10!O) háromszor fiziológiás sóoldattal mosunk és 30 ml 0,01 mólos trisz-(hidrogén-klorid)-puffert (pH 7,4) adunk hozzá, amely 2% TRITON-X-100-t 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kalcium-kloridot és 2 mmól/1 magnézium-kloridot tartalmaz. Az elegyet 4° C-on 30 percen át keverjük. Ezt követően ultracentrifugával elválasztjuk (100000xg) 2 órán át, és a felülúszó folyadékot egész éjjel 0,1 mólos trisz(hidrogén-klorid)-pufferral szemben (pH = 7,4) amely 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kalciumkloridot és 2 mmól/1 magnézium-kloridot tartalmaz - dializáljuk. A dializált folyadékot 3 ml-re betöményítjük és ennek 1 ml-es részletét engedjük affinitási kromatográfiás oszlopon (átmérő 0,5 cm, hosszúság 2 cm), amely a fentiekben leírt PNA-Sepharose töltetű, és amelyet előzőleg 0,005% TRI5(b) C3H mouse mammary tumor (MMT) cells (1 x 10! O) was washed three times with saline and 30 ml of 0.01 M Tris (HCl) PCA buffer (pH 7.4) was added containing 2% TRITON X-100 contains 0.85% sodium chloride, 2 mM calcium chloride and 2 mM magnesium chloride. The mixture was stirred at 4 ° C for 30 minutes. The supernatant was then separated by ultracentrifugation (100,000 x g) for 2 hours and the supernatant fluid was added overnight against 0.1 M Tris hydrochloride buffer (pH 7.4) containing 0.85% sodium chloride, 2 mM containing calcium chloride and 2 mM magnesium chloride - dialysis. The dialyzed liquid is concentrated to 3 ml and a 1 ml portion of this is passed through an affinity chromatography column (diameter 0.5 cm, length 2 cm) filled with PNA-Sepharose as described above, previously prepared with 0.005% TRI5.
190 803190 803
TON-X-lOO-at, 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kalcium-kloridot és 2 mmól/1 magnézium-kloridot tartalmazó 0,1 mólos trisz-(hidrogén-klorid)pufferral (pH = 7,4) hozunk egyensúlyba. Miután alaposan átmossuk a fenti pufferral, 0,1 mól/1 lak- 5 tózt, 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kalciumkloridot és 0,005% TRITON-X-100-at tartalmazó 0,1 mólos trisz-(hidrogén-klorid)-pufferrel (pH =TON-X-100, 0.85% sodium chloride, 2 mM calcium chloride and 2 mM magnesium chloride in 0.1 M Tris-hydrogen chloride buffer, pH 7.4 ) balance. After thoroughly washed with the same buffer, 0.1 mol / 1 in 0.1 M tris inhabit 5 maltose, 0.85% sodium chloride, 2 mmol / 1 calcium chloride, and 0.005% Triton X-100 (H chloride) buffer (pH =
7,4) eluálunk, és az így nyert eluátumot 48 óráig dializáljuk 0,85% nátrium-kloridot, 2 mmól/1 kai- 10 cium-kloridot és 2 mmól/1 magnézium-kloridot tartalmazó 0,01 mólos triszt-(hidrogén-klorid)-pufferral, hogy 2 ml GRA oldatot nyerjünk. Az ily módon nyert GRA oldat fehéije és cukor tartalma 156 pg, illetve 94 pg. A továbbiakban ezt 15 „GRA-M-l”-ként említjük.7.4) was eluted, and the eluate was dialyzed for 48 hours with 0.85% sodium chloride, 2 mmol / 1 Kai triszt- 0.01 M calcium chloride and 10 2 mmoles / 1 of magnesium chloride (H chloride) buffer to obtain 2 ml of GRA solution. The GRA solution thus obtained had a protein and a sugar content of 156 pg and 94 pg respectively. This is also referred to as 15 "GRA-MI" used herein.
(c) Körülbelül 120 g (vizes súly) KATO-III-at 100 ml PBS-sel (foszfátpüffer, amely nátrium-kloridot tartalmaz, pH = 7,6) homogenizálunk turmixgépben. Egy órás (100 000 x g) centrifugálás után 20 a pelletet oldjuk 100 ml, 2%-os TRITON-X-100at, 0,15 mól/1 nátrium-kloridot tartalmazó 0,01 mólos trisz-(hidrogén-klorid)-pufferban (pH =(c) About 120 g (aqueous weight) of KATO-III is homogenized in 100 ml PBS (phosphate buffer containing sodium chloride, pH 7.6) in a blender. After centrifugation for one hour (100,000 xg), 20 pellets were dissolved in 100 ml of 0.01 M Tris-hydrogen chloride buffer containing 2% TRITON-X-100at, 0.15 M NaCl pH =
7,6). A felúlúszót 1 órás ( 100 000 x g) centrifugálással összegyűjtjük, egy PNA-Sepharose-4B ősz- 25 lopra (0,8 x 15 mm) töltjük és az oszlopot egyensúlyba hozzuk 0,015%-os TRITON-X-100-at, 0,15 mól nátrium-kloridot tartalmazó 0,01 mólos trisz(hidrogén-klorid)-pufferral (pH = 7,6). 50 ml-nyi pufferral való mosás után a GRA-t 0,1 mól/1 lak- 30 tózt tartalmazó fenti pufferral eluáljuk. Az eluált GRA-t 0,85%-os nátrium-klorid oldattal ismét dializáljuk, betöményítjük Sephadex-en (Pharmacia Co. terméke), és a használatig - 20 ’C-on tároljuk.7.6). The supernatant was collected for 1 hour (100,000 x g) centrifugation, loaded into a PNA-Sepharose 4B ősz- Lopra 25 (0.8 x 15 mm) and the column was equilibrated with 0.015% Triton-X-100, 0, 0.01 M Tris (Hydrochloride) buffer, pH 7.6, containing 15 moles of sodium chloride. After washing with 50 ml of a buffer of the GRA is eluted with 0.1 mol / 1 inhabit the same buffer containing 30 maltose. The eluted GRA is again dialyzed with 0.85% sodium chloride solution, concentrated on Sephadex (from Pharmacia Co.) and stored at -20 ° C until use.
A fehérje és a cukor mennyiségét az (a) pont 35 szerinti eljárással határozzuk meg, melynek értéke 2,0 mg illetőleg 0,8 mg. Ezt a továbbiakban GRA-2-nek nevezzük.The amount of protein and sugar is determined by the method of (a) 35 , which is 2.0 mg and 0.8 mg, respectively. This is hereinafter referred to as GRA-2.
(d) A (c) pont szerint a következő GRA mintákat állíthatjuk elő: 40 in (d) (c) can be obtained from samples GRA: 40
3. táblázatTable 3
(e) A (c) pont szerinti eljárással előállíthatunk GRA-t úgy is, hogy KATO-III helyett ΜΚΝ-45-öt (kb. 29 g-ot) PNA-Sepharose-4B helyett az (1)—B 60 pont szerint nyert DBA-Sepharose-t használjuk és a (c) pont szerinti eljárással 0,01 mólos trisz-(hidrogén-klorid)-pufferral - amely N-acetil-galaktózamint is tartalmaz - eluáljuk. A nyert GRA készítmény 0,03 mg fehérjét és 0,01 mg cukrot tartalmaz. 65(e) The method of (c) may also be used to produce GRA by substituting ATO-45 (about 29 g) for PNA-Sepharose-4B instead of KATO-III according to (1) to B 60. The resulting DBA-Sepharose was used and eluted by the procedure of (c) with 0.01 M Tris-hydrogen chloride buffer containing N-acetylgalactosamine. The resulting GRA formulation contains 0.03 mg of protein and 0.01 mg of sugar. 65
A továbbiakban ezt „GRA-8”-nak nevezzük.Hereinafter referred to as "GRA-8".
(f) A (d) pont szerinti GRA-3 5 ml-ét egy DBASepharose oszlopra visszük és 0,01 mólos trisz(hidrogén-klorid)-pufferral, pH = 7,2 eluálunk (0,015% TRITON-X-100, 2 mmól/1 magnéziumklorid, 2 mmól/1 kalcium-klorid és 0,85% nátriumklorid), hogy 4 ml-es frakciókat nyerjünk 1-12-ig. Az 1-3 frakciókat GRA-3-A-nak, 4—12-ig GRΑ-3-B-nek nevezzük. Ezután az oszlopot eluáljuk, ugyanazzal a pufferral, amely még 0,1 mól N-acetil-galaktóz-amint is tartalmaz, így a GRA-3-C jelzésű frakciót kapjuk.(f) 5 ml of GRA-3 according to (d) was applied to a DBASepharose column and eluted with 0.01 M Tris-Hydrochloride buffer, pH 7.2 (0.015% TRITON-X-100, 2). 1 mM magnesium chloride, 2 mM calcium chloride, and 0.85% sodium chloride) to obtain 4 ml fractions for 1-12. Fractions 1-3 are referred to as GRA-3-A and 4-12 are referred to as GR-3-B. The column was then eluted with the same buffer containing even 0.1 mol of N-acetylgalactosamine to give the fraction GRA-3-C.
(g) SDS gél elektroforézis(g) SDS gel electrophoresis
Minden, a fenti eljárásokkal előállított GRA készítményt a Fairbanks által előírt elektroforézisnek vetjük alá. [Fairbanks és munkatársai, Biochemistry 10. k. 2606 oldal (1971)]. A kapott eredményeket az ábrák 17-21-ig mutatják.All GRA formulations prepared by the above procedures are subjected to Fairbanks electrophoresis. [Fairbanks et al., Biochemistry 10 vol. 2606: 1971]. The results obtained are shown in Figures 17-21.
A 17-18. ábrán a számok 1-5-ig a következőket mutatják:17-18. In Figures 1 to 5, numbers 1-5 show:
- standard, 2 - GRA-M-3, 3 - GRA-7, 4 - GRA-1, és 5 - GRA-2.- standard, 2 - GRA-M-3, 3 - GRA-7, 4 - GRA-1, and 5 - GRA-2.
A 19. ábrában a számok 1-4-ig a következőket mutatják:In Figure 19, numbers 1 through 4 show:
- standard, 2 - GRA-M-2, 3 - GRA-6, 4 - GRA-5.- standard, 2 - GRA-M-2, 3 - GRA-6, 4 - GRA-5.
A 20. ábrán a számok 1—3-ig a következőket mutatják:In Figure 20, the numbers 1 through 3 show:
- GRA-M-4, 2 - GRA-M-5, 3 - standard.- GRA-M-4, 2 - GRA-M-5, 3 - Standard.
A 21. ábrában a számok 1—4-ig a következőket mutatják:In Figure 21, the numbers from 1 to 4 show:
- GRA-3, 2 - GRA-3-A, 3 - GRA-3-B, 4 - GRA-3-C.- GRA-3, 2 - GRA-3-A, 3 - GRA-3-B, 4 - GRA-3-C.
A 17. ábra a fehérje festési reakciónak alávetett GRA állapotát mutatja C. Β. B. technika szerint. [Fairbanks és munkatársai Biochemistry 10. k. 2606 oldal, (1971)].Figure 17 shows the GRA status of the protein staining reaction C. Β. B. technique. [Fairbanks et al., Biochemistry Vol. 2606: 1971].
A 18-20. ábra a PÁS festési reakciónak alávetett GRA állapotát mutatja. [Zacharius R. M. és munkatársai Anal. Biochem. 30. k. 148. oldal (1962)].18-20. Figure 4A shows the GRA status of the PAS staining reaction. Zacharius R.M., et al., Anal. Biochem. 30th 148, 1962].
A 21. ábra a C. Β. B. fenti festési módszer eredményének sematikus ábrázolása.Figure 21 is a diagram of C. Β. B. Schematic representation of the result of the above staining method.
Az alábbiakban megadjuk a használt standard anyagok listáját [Biorad Láb. Calif. terméke, Amerikai Egyesült Államok]Below is a list of standard materials used [Biorad Foot. Calif. product, United States]
200 K dalton, miozin200 K dalton, myosin
116 K dalton, β-galaktozidáz116 K dalton, β-galactosidase
92.5 K dalton, foszforiláz92.5 K dalton, phosphorylase
66,2 K dalton, BSA66.2 K dalton, BSA
K dalton, ovalbuminK dalton, ovalbum
21.5 K dalton, szójabab tripszin inhibitor21.5 K dalton, soybean trypsin inhibitor
3. Tájékoztató példa (a) Japán majom lépét (4 kg); (beszerzési forrás a Japán Plymates Co. Ltd.) kimetsszük és kétszer RPMI-1640 tenyészközeggel (a Flow Laboratory Co. terméke) mossuk. A sejteket szitával (a Millipore Inc. terméke, lyukbősége 150 mesh) kiszűrjük, majd a sűrűségkülönbség alapján centrifugáljuk, (sűrűség 1,076), hogy 2 liter, 2 x 19’/ml limfocitát tartalmazó szuszpenziót nyeljünk. Áz így kapott limfocitákat háromszor RPMI-1640 tenyészközeggel mossuk, majd a limfociták számát 5 x 107/ml-re3. Informative Example (a) Japanese Monkey Spleen (4 kg); (purchased from Japan Plymates Co. Ltd.) and washed twice with RPMI-1640 culture medium (product of Flow Laboratory Co.). The cells were filtered through a sieve (150 mesh from Millipore Inc.) and centrifuged at a density difference of 1.076 to absorb 2 liters of a suspension containing 2 x 19 '/ ml of lymphocyte. The lymphocytes so obtained are washed three times with RPMI-1640 culture medium and the lymphocytes are then washed to 5 x 10 7 / ml.
190 803 állítjuk be a fenti tenyészközeggel, amely 10% FCS-t is tartalmaz. Ezután 37 ’C-on egy órán át széndioxidos fermentáló készülékben állni hagyjuk.190,803 with the above culture medium containing 10% FCS. It is then allowed to stand at 37 'C for one hour in a carbon dioxide fermenter.
A felülúszó limfocitákat visszanyerjük és számukat 1 x 10*/ml-re állítjuk be a fenti tápközeggel, amely 1 % FCS-t is tartalmaz. Ezt követőleg 1 pg/ml indometacint (a Sigma Laboratories Inc. terméke) és 2% PHA-P-t (tisztított fíthemagglutinin) (a Difco Co. terméke) adunk hozzá és széndioxidos fermentáló készülékben, 37 ’C-os hőmérsékleten 48 óráig 10 tenyésztjük. Ezután centrifugálással választjuk el (3000 ford/perc) 10. percen át, a felülúszót visszanyerjük és Millipore szűrőn (a Millipore Inc. terméke 0,2 pm) szűrve csíramentesítjük, hogy 21TCGFet (T sejt növekedési faktor, interleukin-2) nyerjünk.Supernatant lymphocytes were recovered and adjusted to 1 x 10 * / ml with the above medium containing 1% FCS. Subsequently, 1 pg / ml of indomethacin (obtained from Sigma Laboratories, Inc.) and 2% PHA-P (purified fíthemagglutinin) (Difco Co.) was added and carbon dioxide fermentation apparatus 37 'at 10 C for 48 hours culturing. It is then separated by centrifugation (3000 rpm) for 10 minutes, the supernatant recovered, and germinated on a Millipore filter (Millipore Inc. 0.2 µm) to obtain 21TCGF (T cell growth factor, interleukin-2).
(b) A TCGF-et tíz egészséges donor perifériás véréből származó kevert limfocita tenyészetnek felülúszójából nyerjük. C. F. szerint (Conray Ficol Japan Immunoreseardh Co.) szeparált limfóciták- 20 ból 37 ’C-on 1 órás szuszpendálással műanyag felületen készített nem-összetapadó limfocitákat 1 %-os FCS tartalmú RPMI 1640-es oldattal szuszpendáljuk (1,5 χ 10« sejt/ml) és inkubáljuk 0,2% PHA-Pvel, indometacinnak (1 pg/ml) és 50 pg/ml) mitomi- 25 cin C-vel előkezelt humán B sejtvonallal. Negyvennyolc óra múlva a tenyészet felülúszóját begyűjtjük és TCGF forrásként használjuk [Inone és munkatársai, Scand. J. Immunoi. 12, 149-150. oldal (1980)]. 30(b) TCGF is obtained from the supernatant of a mixed lymphocyte culture from peripheral blood of ten healthy donors. According CF (Conray Ficoll Immunoreseardh Japan Co.) separated limfóciták- suspended in 1% FCS-containing RPMI 1640 with 20 made from non-adherent lymphocytes were 37 ° C for 1 hour suspending plastic surface (1.5 χ 10 "cells / ml) and incubated with 0.2% PHA-P, indomethacin (1 pg / ml) and 50 pg / ml) with human B cell line pretreated with mitomycin C. After forty-eight hours, the culture supernatant was harvested and used as a source of TCGF [Inone et al., Scand. J. Immunol. 12, 149-150. (1980). 30
4. Tájékoztató példa A limfóciták készítése (1) Humán perifériás vérből származó limfóciták ml heparinizációs eljárással egészséges felnőttből vagy különböző rákos betegekből nyert vért centrifugálással elválasztunk Ficol Pack (a Farmacia Japan Co. Ltd. terméke) alkalmazásával, hogy 40 5 x lO’/ml perifériás vérből származó limfocitát nyerjünk.Information Example 4 Preparation of Lymphocytes (1) Human peripheral blood lymphocytes are centrifuged in ml of heparinization blood obtained from healthy adult or various cancer patients using Ficol Pack (product of Farmacia Japan Co. Ltd.) to 40 5 x 10 '/ ml. obtaining peripheral blood lymphocytes.
(2) Egérlép limfóciták(2) Mouse spleen lymphocytes
C3H/He egerekből (hím 6 hetes) kimetsszük a lépet és kétszer RPMI-1640 tenyészközeggel mos- 45 suk. Ekkor a lépet injekciós tűvel megdolgozzuk és egy rozsdamentes acélból készült szitán (100 mesh) átnyomjuk, hogy eltávolítsuk a nagyobb darabokat. Az így átszűrt sejteket háromszor ugyanazzal - a fentiekben alkalmazott - tápközeggel átmossuk 50 és centrifugálással elválasztjuk 1200 ford/perccel 10 percig, hogy 4 x 107/ml léplimfocitát nyerjünk.The spleen was excised from C3H / He mice (6 weeks old male) and washed twice with RPMI-1640 culture medium. The spleen is then worked with a needle and passed through a 100 mesh stainless steel sieve to remove larger pieces. The cells so screened were washed three times with the same medium as described above and separated by centrifugation at 1200 rpm for 10 min to obtain 4 x 10 7 / ml alpha lymphocytes.
. tápközeg 5 ml-éhez és Petri-csészébe helyezzük, majd 37 ’C-on 2 napig tenyésztjük. A (3) tájékoztató példa szerinti eljárással nyert 20% TCGF és 15% FCS tartalmú RPMI-1640 tenyészközégen továbbtenyésztjük azokat további 5 napig, hogy a killer sejtek 20 ml-es olyan oldatát nyerjük, amelynek minden ml-ben 1 x 106-on killer sejt van. Ezt a továbbiakban „GRA-l-K-T”-ként említjük.. 5 ml of medium and placed in a petri dish and cultured at 37 ° C for 2 days. They are cultured on 20% TCGF and 15% FCS-containing RPMI-1640 media obtained in Reference Example (3) for a further 5 days to obtain a 20 ml solution of killer cells at 1 x 10 6 per ml. there is a killer cell. This is hereinafter referred to as "GRA-lKT".
2. példaExample 2
A (4) tájékoztató példa (2) pontja szerinti eljárással nyert egérlép limfóciták számot 5 x lO'Vml-re állítjuk be, 15% FCS tartalmú RPMI-1640 tápközeggel. Ekkor a (2) tájékoztató példa (b) pontja szerinti eljárással nyert GRA-M-l-t adunk hozzá úgy, hogy a cukor és a fehérje végső mennyisége 0,9 pg/ml illetve 1,5 pg/ml legyen. A kapott keverék 5 mi-ét Petri csészén tenyésztjük (60 mm x 15 mm, a Falcon Co. terméke), 37 ’C hőmérsékleten 2 napig. A kiónok képződését megfigyeljük. Ezt követően továbbtenyésztjük 15% FCS tartalmú és 20% TCGF tartalmú (a Japan Immuno Research Láb. Co., Ltd. terméke) RPMI-1640 tápközegen 4 napig, így 50 ml 1 χ 106/ml killer sejtet tartalmazó oldatot kapunk. Ezt a továbbiakban „GRA-M-l-K-T”-nek nevezzük.The number of mouse spleen lymphocytes obtained by the procedure of Informative Example 4 (2) is adjusted to 5 x 10 .mu.l with RPMI-1640 medium containing 15% FCS. GRA-Ml obtained by the procedure of informative Example 2 (b) is then added so that the final amounts of sugar and protein are 0.9 pg / ml and 1.5 pg / ml, respectively. 5 ml of the resulting mixture was grown on a Petri dish (60 mm x 15 mm, product of Falcon Co.) at 37 ° C for 2 days. Clone formation is monitored. Subsequently, it was further cultured in RPMI-1640 medium containing 15% FCS and 20% TCGF (product of Japan Immuno Research Lab. Co., Ltd.) for 4 days to obtain 50 ml of a solution containing 1 x 10 6 / ml killer cells. This is hereinafter referred to as "GRA-MlKT".
3. példaExample 3
Egészséges donor perifériás véréből származó limfocitákat (5 x 10*/ml) 50 ng/ml (proteintartalom) GRA-2-t és 15% FCS-t tartalmazó RPMI-1640 tápközegen inkubálunk 37 ’C-on. A második napon a fenti humán eredetű TCGF-t adjuk az oldathoz, addig, amíg a koncentráció el nem éri a 20 %ot. Az inkubálást további 3 napig folytatjuk, hogy killer sejteket nyerjünk. Az alábbiakban ezt GRA-2-K-T-nek nevezzük.Peripheral blood lymphocytes from healthy donors (5 x 10 * / ml) were incubated at 37 ° C in 50 ng / ml (protein content) RPMI-1640 medium containing 15% FCS. On the second day, the above human TCGF is added to the solution until the concentration reaches 20%. The incubation was continued for another 3 days to obtain killer cells. This is referred to below as GRA-2-K-T.
4. példaExample 4
Killer sejt készítményeket, így a GRA-8-K-T, GRA-3-A-K-T és GRA-3-C-K-T, az 1. példa szerinti eljárással állítunk elő GRA-8-at, GRA-3-A-t, GRA-3-C-t (fehérjetartalmuk 50 ng/ml) és a 3. tájékoztató példa (b) pontja szerint nyert TCGF-et használva.Killer cell preparations such as GRA-8-KT, GRA-3-AKT and GRA-3-CKT were prepared according to the procedure of Example 1, GRA-8, GRA-3-A, GRA-3-C ( protein content of 50 ng / ml) and TCGF obtained according to Informative Example 3 (b).
7. példa 55Example 7 55
A (2) (a) tájékoztató példa szerint nyert GRA-l-t (fehérjemennyiség 40 pg/ml, cukormenynyiség 7,5 gg/ml) az eredeti térfogat ezerszeresére hígítjuk RPMI-1640 tápközeggel, amely 15% FCS-t θθ tartalmaz, hogy elkészítsük az érzékenyítő táptalajt.The GRA obtained in Informative Example (2) (a) (40 pg / ml protein, 7.5 gg / ml sugar) was diluted 1 000 times the original volume with RPMI-1640 medium containing 15% FCS θθ to prepare the sensitizing medium.
A 4. tájékoztató példa (1) pontja szerinti humán perifériás vérből származó limfocitákat (5 x 10®/5 ml) adunk a fentiek szerint készített érzékenyítőHuman peripheral blood lymphocytes (5 x 10 ® / 5 ml) of Informative Example 4 (1) are added to the sensitizer prepared as described above.
5. példaExample 5
C3H/He egér (nőstény, 8 hetes) bőrébe ugyanabból a törzsből származó 106 x 5563 sejtet ültetünk. A daganatot sebészi úton hét nap múlva eltávolítjuk. Újabb hét nap múlva ugyanabból a törzsből származó 10’ χ 5563 sejtet oltunk az állatba. Azt az egeret, amely rezisztens az oltással szemben, immunis egérnek nevezzük.10 6 x 5563 cells from the same strain were implanted into the skin of a C3H / He mouse (female, 8 weeks old). The tumor is surgically removed after seven days. After another seven days, 10 'χ 5563 cells from the same strain were inoculated. The mouse that is resistant to the vaccine is called an immune mouse.
Mind az immunis egér, mint a normál C3H/He egér lépének sejtjeit feldolgozzuk a szokásos technikával. A lépsejteket érzékenyítjük 40 ng/ml kon-71Spleen cells from both the immune mouse and the normal C3H / He mouse are processed by standard techniques. Spleen cells were sensitized with 40 ng / ml con-71
190 803 centrációjú (fehérjetartalom) GRA-M-5-tel, RPMI-1640 tápközegen, amely 15% FCS-t tartalmaz. Az érzékenyítést 5 napig végezzük, így killer sejteket nyerünk.190,803 (protein content) with GRA-M-5 RPMI-1640 medium containing 15% FCS. Sensitization was performed for 5 days to obtain killer cells.
A normál lépből nyert killer sejteket az alábbiakban GRA-M-5-K-T-l-nek az immunis egér lépéből származókat pedig GRA-M-5-K-T-2-nek nevezzük.Killer cells derived from normal spleen are referred to below as GRA-M-5-K-T-1 and those derived from immune mouse spleen GRA-M-5-K-T-2.
6. példaExample 6
Humán perifériás vérből származó limfocitákat (5x10*) 50 ng/ml koncentrációjú (fehérjetartalom) GRA-l-et tartalmazó RPMI-1640 tápközegen inkubálunk 37 ’C-on két napig. A harmadik napon a limfocitákat átvisszük olyan RPMI-1640 tápközegbe, amely 10%, a limfocita donortól származó szérumot, valamint 0-100 ng/ml (proteintartalom) GRA-l-t tartalmaz. Az inkubálást további 5 napig folytatjuk, hogy killer sejteket nyerjünk.Human peripheral blood lymphocytes (5x10x) are incubated in RPMI-1640 medium containing 50 ng / ml (protein content) GRA-1 for two days at 37 ° C. On the third day, lymphocytes are transferred to RPMI-1640 medium containing 10% lymphocyte donor serum and 0-100 ng / ml (protein content) GRA-1. The incubation was continued for another 5 days to obtain killer cells.
A készítményeket a 4. táblázat mutatja be.The formulations are shown in Table 4.
4. táblázatTable 4
GRA koncentráció (nglml)GRA concentration (nglml)
7. példa (a) Már megműtött, különféle rákos megbetegedésben szenvedő betegek perifériás véréből nyert limfocitákat GRA-3-mal érzékenyítjük, hogy killer sejtkészítményeket nyerjünk. A betegekből származó PBL-t (perifériás vérből vett limfocita) (5x10®) 50 ng/ml (proteintartalom) GRA-3-at tartalmazó RPMI-1640 tápközegben inkubálunk két napon át, majd 20% TCGF-et és 15% FCS-t tartalmazó RPMI-1640 közegben további öt napon át inkubáljuk, hogy killer sejteket nyerjünk, ahogy azt azExample 7 (a) Lymphocytes obtained from peripheral blood of patients who have already undergone various cancers are sensitized with GRA-3 to obtain killer cell preparations. Patient-derived PBL (peripheral blood lymphocyte) (5x10®) was incubated in RPMI-1640 medium containing 50 ng / ml (protein content) GRA-3 for two days followed by 20% TCGF and 15% FCS. incubated in RPMI-1640 medium for another five days to obtain killer cells as described in
5. táblázat mutatja.Table 5 shows.
5. táblázatTable 5
A fenti táblázatban a P-GRA és a D-GRA jelzi a GRA elhelyezkedését a műtéti úton eltávolított daganatszövetben, az 1. és 2. (b) tájékoztató példákban ismertetett eljárás szerint meghatározva.In the above table, P-GRA and D-GRA indicate the location of GRA in surgically removed tumor tissue as determined by the procedure described in Reference Examples 1 and 2 (b).
A tumorszövet olyan betegektől származik, akiktől előzőleg a PBL-t gyűjtöttük. A P-GRA és a D-GRA eredményeit a FITC-PNA illetve a FITC-DBA alkalmazásával nyerjük. A műtét utáni napok azt az időt jelzik, amikor a PBL-t a műtét után gyűjtjük.Tumor tissue is derived from patients with prior PBL collection. The results of P-GRA and D-GRA are obtained using FITC-PNA and FITC-DBA respectively. The days after surgery indicate the time at which PBL is collected after surgery.
(b) A PBL-t (5x10®) emlőrákos betegektől a műtét utáni 21. napon gyűjtjük és RPMI-1640 közegben inkubáljuk, amely 50 ng/ml (proteintartalom) GRA-3-at és a 7. naptól a betegből származó 10%-os szérumot tartalmaz, ily módon érzékenyítjük a PBL-t és killer sejt készítményeket kapunk. A továbbiakban ezt a GRA-3-K-T-7-nek nevezzük.(b) PBL (5x10®) was collected from breast cancer patients on day 21 postoperatively and incubated in RPMI-1640 medium containing 50 ng / ml (protein content) GRA-3 and 10% of containing serum, thereby sensitizing PBL to obtain killer cell preparations. Hereinafter referred to as GRA-3-K-T-7.
8. példa (i) A (2) tájékoztató példa (2)—b pontja szerinti eljárással nyert GRA-M-l-et fiziológiás sóoldattal hígítjuk, úgy hogy a cukor és a fehérje mennyisége 1,0 pg/ml illetve 1,6 pg/ml legyen, hogy előállítsuk az 1. számú rákellenes készítményt.Example 8 (i) GRA-M1 obtained by the procedure of Informative Example 2 (2) - (b) was diluted with physiological saline solution so that the amount of sugar and protein was 1.0 pg / ml and 1.6 pg / ml, respectively. ml to produce anticancer composition # 1.
(ii) Spontán keletkezett emlőrákból származó C3H/He rákos daganatot csíramentesen 5 mm-es kockaalakú darabokra vágjuk és átültetjük azokat 10 db C3H/He azonos törzsű egerek hátsó bőre alá (7 hetes hím egerek). Az átültetés után 7 nappal bizonyítható a rák rögzülése és terjedése. A fenti 10 egérből 5 darabot az (i) pont szerinti 1. számú rákellenes készítmény szubkután adagolt 300 μΐ/ napos adagjaival 2 napos időközönként kezeljük. A másik 5 egér a kezeletlen ellenőrző csoportot képezi. Tíz nappal az első kezelés után a rákot műtéti úton kimetsszük és átlagsúlyát lemérjük. Ugyanabban az időben szövettani vizsgálatot is végzünk.(ii) C3H / He cancerous tumor derived from spontaneous breast cancer was dissected germ-free into 5 mm cubic sections and transplanted under the dorsal skin of 10 C3H / He mice of the same strain (7-week-old male mice). Seven days after transplantation, the cancer can be confirmed and spread. 5 of the 10 mice above were treated with a subcutaneous dose of 300 μΐ / day of the anticancer composition # 1 (i) at 2-day intervals. The other 5 mice form the untreated control group. Ten days after the first treatment, the cancer is surgically excised and weighed. At the same time, a histological examination is also performed.
Tumor térfogat:Tumor volume:
Kezelt csoport 22,3 mm3 (14. ábra)Treated group 22.3 mm 3 (Figure 14)
Kezeletlen csoport 162,6 mm3 (15. ábra)Untreated group 162.6 mm 3 (Figure 15)
E szerint a tumor 86,3%-os csökkenése tapasztalható.According to this, the tumor was reduced by 86.3%.
Szövettani vizsgálat:Histological examination:
Az összehasonlító csoportban (15. ábra) fészkes szerkezetű tumor keletkezett, a szövet típusa velős szerkezetű rákhoz hasonló, és a tumorsejtek szaporodása az egész szövetre kiterjedt. Másfelől, a hatóanyaggal kezelt csoportban (16. ábra) a rákos sejtek elfolyósodtak, elhaltak, elmeszesedtek, valamint elrostosodtak. Nagyon kis mennyiségű rákos sejt maradt életben. így tehát megfigyelhető a találmány szerinti rákellenes készítmény daganatgátló hatása.In the control group (Fig. 15), a tumor with a nest structure was formed, the type of tissue was similar to that of an articular cancer, and the proliferation of tumor cells extended throughout the tissue. On the other hand, in the drug-treated group (Fig. 16), the cancer cells became fluid, died, calcified, and fibrated. Very few cancer cells survived. Thus, the antitumor activity of the anticancer composition of the invention is observed.
1. Teszt példa1. Test Example
Az 1. példa szerinti eljárással előállított GRA-l-K-T 1 μΐ-ét tárgylemezre helyezzük (a Falcon Corp. terméke) és szobahőmérsékleten 15 percig állni hagyjuk. Ekkor 4 μΐ FCS-et (a Falcon Corp. terméke) adunk hozzá és az elegyet 30 percen át szobahőmérsékleten állni hagyjuk. 1 x 10° ml neuraminidázzal kezelt birka vörösvérsejteket (SRBCN) adagolunk, és 5 μΐ 0,01 mól foszfátpuffert1 μΐ of the GRA-1KT prepared in Example 1 was placed on a slide (Falcon Corp.) and allowed to stand at room temperature for 15 minutes. At this time, 4 μΐ FCS (from Falcon Corp.) was added and the mixture was allowed to stand at room temperature for 30 minutes. 1 x 10 ° ml neuraminidase treated sheep erythrocytes (SRBC N ) was added and 5 μΐ 0.01 mol phosphate buffer
190*803 (pH 7,2), amely 0,85% nátrium-kloridot tartalmaz, adunk hozzá és a lemezt centrifugálásnak vetjük alá (600 ford/perc, 5 perc). A lemezt megfordítjuk és eltávolítjuk a nem reagált SRBCN-t. A lemezhez festékoldatot adunk (brillient cresyl blue, a Merck 5 and Co. terméke), hogy a limfocitákat megfessük és rozetta alakú pozítivitásra megvizsgáljuk. Legalább 98% mutat rozetta alakú pozitivitást (Tsejtek).190 x 803 (pH 7.2) containing 0.85% sodium chloride was added and the plate was centrifuged (600 rpm for 5 min). The plate is inverted and unreacted SRBC N is removed. Dye solution (brillient cresyl blue, Merck 5 and Co.) was added to the plate to stain the lymphocytes and assay for rosette positivity. At least 98% shows rosette-like positivity (Cells).
gén tenyésztjük. Egy óra elteltével a maradék sejtek számát meghatározzuk, és a citotoxikus hatás %-át az alábbi egyenlet alapján számoljuk ki:gene. After one hour, the number of cells remaining is determined and the percent cytotoxic activity is calculated from the following equation:
citotoxikus hatás %-a = a sejtek száma _ a tenyésztés után „ — (1 —-; x iw a sejtek szama tenyésztés előtt (4x 10e)cytotoxicity =% of the number of cells after culturing _ "- (1 - x is the number of cells before culturing iw (4x 10-e)
Az eredményeket a 7. táblázatban szemléltetjük.The results are shown in Table 7.
2: Teszt példa2: Test Example
Specifikus ráksejtpusztító aktivitás (a) Az 1. táblázatban bemutatott sejtek közül a következő 5 sejtcsoportot - melyek különböző GRA pozitivitást mutattak - alkalmaztuk a vizsgálat tárgyát képező emberi rákos sejtekként.Specific Cancer Cell Killing Activity (a) Of the cells shown in Table 1, the following 5 cell groups, which showed different GRA positivity, were used as human cancer cells to be tested.
Rákos célsejtek:Target cancer cells:
(Burkitt limfoma) (Burkitt limfoma) (gyomorrák) (gyomorrák) (T-sejt leukémia)(Burkitt's lymphoma) (Burkitt's lymphoma) (stomach cancer) (stomach cancer) (T-cell leukemia)
Falcon Corp. terméke)Falcon Corp. product)
1. számú BT-1No. 1 BT-1
2. számú DaudiDaudi # 2
3. számú KATO-IIINo. 3 KATO-III
4. számú MKN-45No. 4 MKN-45
5. számú MOLT Egy tárgylemezre (a x 10* célsejtet rétegzünk centrifugálás segítségével (800 ford/perc, 5 perc).MOLT 5 On a slide (x 10 * target cells are layered by centrifugation (800 rpm, 5 min).
Ekkor üvegenként 4χ 103 1. példa szerinti eljárással nyert GRA-l-K-T-t adunk hozzá óvatosan és inkubáljuk egy órán át.At this time, GRA-1KT obtained according to the procedure of Example 1 ( 4 x 10 3 ) was carefully added and incubated for one hour.
A pusztító hatást a tarfoltképződés (plaque) alapján határoztuk meg és az alábbi módon jelöljük:The killing effect was determined on the basis of plaque formation and is denoted as follows:
7. táblázatTable 7
(c) A fenti (b) szerinti eljárást ismételjük azzal a különbséggel, hogy a GRA-l-K-T és a célsejtek arányát megváltoztatjuk 5/3-ra. Az eredményeket a 8. táblázat szemlélteti.(c) The procedure of (b) above is repeated except that the ratio of GRA-1-K-T to target cells is changed to 5/3. The results are shown in Table 8.
8. táblázat + + szignifikáns pusztító hatás figyelhető meg + pusztító hatás figyelhető meg ± pusztító hatás kis mértékben figyelhető megTable 8 + + Significant destruction effect observed + Destruction effect observed ± Destruction effect observed slightly
- pusztító hatás nem figyelhető meg.- no destructive effect is observed.
. A kontrollcsoportban nem érzékenyített, emberi perifériás vérből származó limfocitákat alkalmazunk, amelyeket az 1. példa szerinti eljárással állítunk elő, azzal a különbséggel, hogy GRA-t nem használtunk. Az eredményeket a 6. táblázat szemlélteti.. In the control group, non-sensitized human peripheral blood lymphocytes prepared according to the procedure of Example 1 were used, except that GRA was not used. The results are shown in Table 6.
Szembetűnő ebből (6. táblázat), hogy a találmány szerinti eljárással készített killer T sejtek erőteljes GRA specifikus citotoxikus hatással rendelkeznek.It is striking (Table 6) that the killer T cells prepared by the method of the invention have potent GRA specific cytotoxic activity.
Célsejttarget
Sejtszám tenyésztés tenyésztés előtt után a citotoxikus hatás %-a% Of cytotoxic activity after culture before culturing
A fenti példában megfigyelhetjük, hogy a GRA-l-K-T erőteljesen kötődik a Daudi, a KATO-III és a BT-1 esetében, kevésbé aktív az MKN-45 és a MOLT esetében.In the example above, it can be observed that GRA-1-K-T is highly bound to Daudi, KATO-III and BT-1, and less active to MKN-45 and MOLT.
6. táblázatTable 6
3. Teszt példa3. Test Example
C3H/He spontán emlőrákos egereket bőr alá oltással kezelünk a 2. példa szerint előállított GRA-M-l-K-T-vel '3 x 10®/0,3 ml/egér dózissal egy hétig minden második nap. Tíz nap után a gócot feltárjuk és megvizsgáljuk.C3H / He spontaneous breast cancer mice were challenged subcutaneously with GRA-M-1-K-T prepared in Example 2 at a dose of 3 x 10 10 / 0.3 ml / mouse for one week every other day. After ten days, the nucleus is exposed and examined.
Amint az a 12. ábrán látható, a limfociták a rákos sejtek közé beszűrődtek és a rákos szövet feltöredezése figyelhető meg. A 13. ábrán szintén megfigyelhető a rák meszesedése és ezt úgy tekinthetjük, hogy a találmány szerinti killer sejteknek valóban rákellenes hatásuk van.As shown in Figure 12, lymphocytes are infiltrated between cancer cells and a break in the cancerous tissue is observed. Figure 13 also shows the calcification of the cancer and it can be considered that the killer cells of the invention have indeed anti-cancer activity.
(b) Ugyanazokat a rákos célsejteket, amelyeket az (a) szerinti vizsgálatnál alkalmazunk, (3,3 x 10®) 8xl05 GRA-l-K-T-vel keverjük, (sejtarány: 5:1) és a kapott sejtkeveréket (a teljes szám 4x 10®) 15% FCS tartalmú RPMI-1640 tápköze- 65(b) The same tumor target cells, which are used in (a) test compound, (3.3 x 10 ®) for 8xl0 5 GRA LKT, with a (cell ratio: 5: 1) and the resulting cell mixture (the total number 4x 10®) RPMI-1640 15% FCS Media- 65
1. összehasonlító példaComparative Example 1
Ebben a példában magukat a rákos sejteket, mint specifikus antigéneket alkalmazzuk a GRA helyett a találmány szerinti eljárásban.In this example, the cancer cells themselves are used as specific antigens instead of GRA in the method of the invention.
-9190 803-9190 803
Az 1. példa szerint rákos sejtekre érzékenyített limfocitákat nyerünk, azzal a különbséggel, hogy GRA helyett BT-1, Daudi, KATO-III vagy ΜΚΝ-45-t alkalmazunk 1 x 10s mennyiségben Petri csészénként.As in Example 1, cancer cell-sensitized lymphocytes are obtained, except that BT-1, Daudi, KATO-III or ΜΚΝ-45 are used in 1 x 10 s per Petri dish instead of GRA.
A citotoxikus hatást a fenti limfocitákkal a 2. teszt példa szerinti (a) eljárással vizsgáljuk. Az eredményeket a 9. táblázat szemlélteti.The cytotoxic activity of the above lymphocytes is assayed according to Test Procedure 2 (a). The results are shown in Table 9.
A 9. táblázatból látható, hogy a fenti eljárással előállított limfociták nem rendelkeznek semmilyen 0 citotoxikus hatással.Table 9 shows that lymphocytes are produced by this process do not have any cytotoxic effect 0.
9. táblázatTable 9
A limfociták érzékenyítésére alkalmazott sejtek 5 Cells used in the lymphocytes of sensitizing 5
Célsejt BT-1 Daudi ΚΑΤΟ-Ι11 MKN-45Target cell BT-1 Daudi ΚΑΤΟ-Ι11 MKN-45
KATO-IIIKATO-III
MKN-45MKN-45
4. Teszt példa 25Test Example 4
A 2—(b) teszt példával azonos módon határozzuk meg a 4. példa szerint előállított GRA-8-K-T, GRA-3-A-K-T és a GRA-3-C-K-T rákos sejteket pusztító hatását. Az eredményeket a 10. tábla- 30 zat mutatja be.Assays 2 to 2 (b) determine the cancer cell killing activity of GRA-8-K-T, GRA-3-A-K-T and GRA-3-C-K-T prepared in Example 4. The results are shown in Table 10.
70. táblázatTable 70
A citotoxikus hatás %-a% Of cytotoxic effect
5. Teszt példa (a) Minden citotoxikus killer sejtkészítményt melyet a 6. példa szerint állítunk elő - meghatározunk az 5,Cr felszabadulás teszttel [J. Immunoi. 122. 2577-2553, (1979)].Test Example 5 (a) All cytotoxic killer cell preparations prepared according to Example 6 are determined by the 5 Cr release assay [J. Immunol. 122: 2577-2553 (1979)].
Azaz: 50pCi radioaktív slCr-et (Japan Isotope Assciation) adunk KATO-III-hoz (2 x 107) és a sejteket inkubáljuk 37 °C-on egy órán át RPMI-1640 közegben és mossuk centrifugálással, hogy kinyerjük a 51Cr-rel jelzett sejteket. Killer sejteket (effektor sejteket) (2x 10®) adunk a célsej.. z, ,Λ.\ ,, τ-rr. effektor sejt tekhez (1 χ 105) (így az E/T = · * = :1) és a keveréket inkubáljuk 37 °C-on 4 órán át RPMI-1640 tápközegben. A felülúszót centrifugálással gyűjtjük össze és a radioaktivitást folyadék szcintillációs eljárással határozzuk meg.That is, 50 µCi of radioactive sl Cr (Japan Isotope Assciation) is added to KATO-III (2x10 7 ) and the cells are incubated at 37 ° C for one hour in RPMI-1640 medium and washed by centrifugation to obtain 51 Cr. cells. Killer cells (effector cells) (2x10®) are added to the target cell.,, Λ . \ ,, τ-rr. effector cell tekhez (χ 1 10 5) (for the E / T · = * = 1) and the mixture was incubated at 37 ° C for 4 hours in RPMI-1640 medium. The supernatant was collected by centrifugation and radioactivity was determined by liquid scintillation.
A specifikus51 Cr felszabadulást (%), mely megfelel az effektor sejtek sejtoldódási arányának, a következő egyenlettel számítjuk ki:The specific 51 Cr release (%) corresponding to the cell lysis rate of effector cells is calculated by the following equation:
Specifikus slCr felszabadulás (%) = (felszabadulás a tesztben) (maximális felszabadulás) (A maximális felszabadulás azt a radioaktivitást jelzi, amikor az összes sejt már feloldódott.)Specific sl Cr release (%) = (release in the assay) (maximum release) (Maximum release refers to the radioactivity when all cells are already lysed.)
A kapott eredményeket all. táblázat tartalmazza.The results obtained are all. Table.
z _ 77. táblázat (spontán felszabadulás) χ ^θθ (spontán felszabadulás)z _ Table 77 (spontaneous release) χ ^ θθ (spontaneous release)
6. Teszt példa (a) KATO-III-at (E/T = 20/1), mint célsejtet 40 használva és a killer sejtek (melyeket a 7-{a) példa szerinti eljárással kapunk) sejttoxicitását a 2—(b) teszt példa szerint határozzuk meg.Test Example 6 (a) Using KATO-III (E / T = 20/1) as the target cell 40 and the cell toxicity of the killer cells (obtained by the procedure of Example 7- (a)) is shown in Figs. test example.
Az eredményeket a 12. táblázatban találjuk.The results are shown in Table 12.
A 11. táblázat eredményei azt mutatják, hogy 55 nincs kapcsolat a TCGF, az FCS és a killer sejtek keletkezése között.The results in Table 11 show that there is no connection 55 between the TCGF, the FCS and the formation of killer cells.
(b) A 3. példában nyert GRA-2-K-T sejttoxicitását a specifikus slCr felszabaduló teszttel határozzuk meg, az (a) pontban ismertetett' eljárással. 60 A specifikus !1Cr felszabadulás 14,3%-a 51Cr-rel jelzett KATO-III-nál ugyanúgy, mint a célsejtnél.(b) The cellular toxicity of GRA-2-KT obtained in Example 3 was determined by the specific sl Cr release assay as described in (a). 60 14.3% of the specific 1 Cr release was 51 Cr labeled for KATO-III as for the target cell.
(E/T = eff<,t;°rsej1 - 20/1) (b) A 7—(b) példa szerinti GRA-3-K-T sejttoxicitását 51Cr-rel jelzett KATO-III-mal (E/T = 20/1) mint célsejttel határozzuk meg, ugyanolyan módon mint az 5. teszt példában. A killer sejtek specifikus slCr felszabadulását 25,5%-nak találtuk.(E / T = eff <, t ; ° rse 1-20/ 1 ) (b) The cell toxicity of GRA-3-KT of Example 7- (b) was labeled with 51 Cr KATO-III (E / T). = 20/1) as the target cell in the same manner as in Test Example 5. The specific sl Cr release of the killer cells was found to be 25.5%.
7. Teszt példa7. Test Example
Az 5. példa szerinti killer sejtek sejttoxicitását slCr felszabadító teszttel határozzuk meg, ugyan10The cell toxicity of the killer cells of Example 5 was determined by the sl Cr release assay.
-101-101
190 803 úgy, mint az 5. teszt példában. A célsejtek a 51Cr-rel . jelzett X5563-sejtek voltak. Kontroll limfocitákként az 5. példa szerinti limfocitákat használjuk, kivéve, hogy a lépsejtek érzékennyé tételét 1 x 105/ egységenkénti mitomicin C-vel kezelt X5563 sejttel 5 végezzük (5 x 10®/ml X5563 sejtet 50 pg/ml mitomicin C-vel kezelünk 60 percig) a GRA-M-5 helyett.190,803 as in Test Example 5. The target cells are 51 Cr. were labeled X5563 cells. Control limfocitákként used lymphocytes obtained in Example 5, except that X5563 cells Sensitization of spleen cells 1 x 10 5 / unit mitomycin C treated 5 is carried out (5 x 10® / ml X5563 cells were treated with 50 pg / ml mitomycin C. 60 minutes) instead of GRA-M-5.
Az eredményt a 13. táblázat tartalmazza.The result is shown in Table 13.
13. táblázatTable 13
Specifikus 51 Cr felszabadulás (%)Specific release of 51 Cr (%)
8. Teszt példa (H-2 próba)Test Example 8 (H-2 Test)
A 2. tájékoztató példa szerinti GRA-M-l-et, GRA-M-3-at és GRA-M-4-et sorozatban hígítunk 0,15 mólos foszfátpufferral (amely 0,85% nátrium-kloridot tartalmaz és pH értéke 7,6), hogy mintákat készítsünk. A National Institute of Genetic 30 Research-től kapott anti-H-2-szérumot és a fenti mintát összekeverjük és 4 °C-on 2 órán át inkubáljuk. A célsejtek így kapcsolatba kerülnek az antiΗ-2-szérummal. Lép- vagy nyirokcsomó sejteket, melyeket célsejteknek használunk, B10 (H-2b) és BIO.BR (H-2k) egerekből a szokásos módon nyerhetünk. A sejtek PBS-sel történő mosása után nyúlkomplementet adunk a sejtekhez és 37 °C-on 1 órán át inkubáljuk a sejteket, majd megfestjük 0,2%-os tripan-kék PBS-sel, hogy meghatározzuk a %-os sejttoxicitást. Az anti-H-2 Szérumot maximális hígításban használjuk úgy, hogy az végül 95% sejttoxicitást mutat GRA távollétében.GRA-M1, GRA-M-3, and GRA-M-4 of Example 2, Information Sheet 2, were serially diluted in 0.15 M phosphate buffer (0.85% sodium chloride, pH 7.6). ) to create samples. The anti-H-2 serum obtained from the National Institute of Genetic Research 30 and the above sample were mixed and incubated at 4 ° C for 2 hours. The target cells are thus contacted with anti-2-serum. Spleen or lymph node cells used as target cells can be obtained from B10 (H-2 b ) and BIO.BR (H-2 k ) mice in the usual manner. After washing the cells with PBS, rabbit complement was added to the cells and incubated at 37 ° C for 1 hour and stained with 0.2% trypan blue in PBS to determine% cell toxicity. Anti-H-2 Serum is used at maximum dilution so that it ultimately exhibits 95% cellular toxicity in the absence of GRA.
A rendszerek GRA gátló hatásának meghatározását a 14. táblázat mutatja be.The GRA inhibitory activity of the systems is determined in Table 14.
14. táblázatTable 14
A kapott eredményeket a 15. táblázat mutatja.The results are shown in Table 15.
A sejttoxicitás %-a% Of cell toxicity
15. táblázatTable 15
Megjegyzések: GRA I: GRA-M-1 GRA II: GRA-M-3 GRA III: GRA-M-4Notes: GRA I: GRA-M-1 GRA II: GRA-M-3 GRA III: GRA-M-4
A feltüntetett sejttoxicitás akkor, ha csak komplementet használunk.The cellular toxicity shown is when complement is used alone.
A 15. táblázat eredményeiből azt láthatjuk, hogy GRA-M-1, a GRA-M-3 és a GRA-M-4 esetében a H-2 hiánya megfigyelhető.The results of Table 15 show that HRA is deficient in GRA-M-1, GRA-M-3 and GRA-M-4.
9. Teszt példa9. Test Example
C57BL/6 egérbe transzplantálunk Lewis tüdőrákot (LLC) (2x10®) azonos törzsből és hat nap múlva 1 ng (fehérje - a 2—(d) tájékoztató példa szerinti - GRA-M-3-at adunk bőr alá. Ezek után a kezelést megismételjük 4 napon keresztül, egyszer naponta, azonos adaggal. Az utolsó kezelést követő napon a tumort kimetsszük és megmérjük. Kontrollként fiziológiás sóoldattal kezelt állatokat használunk. Minden tesztcsoport 5 állatból áll.Lewis Lung Cancer (LLC) (2x10®) from the same strain was transplanted into C57BL / 6 mice and, after six days, 1 ng of protein (GRA-M-3 as in Example 2- (d)) was subcutaneously administered. Repeat for 4 days, once daily, at the same dose.
Az eredmények: az átlagos tumorsúly a kontrollcsoportban 500 mg körüli. A GRA-M-3-mal kezelt csoportban 3 esetben a tumor eltűnését észleljük, és két alkalommal a tumorok súlyának átlaga 100 mg volt.Results: The average tumor weight in the control group was about 500 mg. In the GRA-M-3 treated group, tumor disappearance was observed in 3 cases, and twice the mean tumor weight was 100 mg.
-1110. Teszt példa-1 110. Test example
C57BL/6 egeret bőr alatti oldattal immunizálunk 1 ng (fehérje) GRA-M-3-mal - melyet a 2 (d) tájékoztató példa szerinti eljárással kapunk. A ke- 5 zelést 3 napon át naponta egy alkalommal végezzük és az 5. napon a lépsejteket összegyűjtjük az állatokból, hogy effektor sejteket nyerjünk. Az effektor sejtek és a Lewis tüdőrák (LLC) sejtjeinek, mint célsejteknek a keverékét készítjük el, az arány 1 n E/T = 50 : 1 ebből egy részt (1 χ 105) ebből átültetünk azonos törzsből származó egerekbe és Winn próbát hajtunk végre. [J. Immunoi. 86, p. 228-239 (1961)].C57BL / 6 mice were immunized with a subcutaneous solution of 1 ng (protein) GRA-M-3 obtained by the procedure described in Reference Example 2 (d). A bypass from the Work at 5 is carried out once on day 5 and the spleen cells were collected from the animals to obtain the effector cells per day for 3 days. A mixture of effector cells and Lewis lung cancer (LLC) cells as target cells was prepared at a ratio of 1 n E / T = 50: 1, of which a portion (1 × 10 5 ) was transplanted into mice from the same strain and a Winn test was performed. . [J. Immunol. 86, p. 228-239 (1961)].
16. táblázatTable 16
Megjegyzés: Az A csoport lépsejteket jelent a GRA-M-3 immun egérből.Note: Group A represents spleen cells from the GRA-M-3 immune mouse.
A B csoport lépsejteket jelent normál egérből.Group B represents spleen cells from a normal mouse.
A C csoport lépsejteket jelent 10 nappal az LLC (1 x 10*) átültetése után egérből.Group C represents spleen cells 10 days after transplantation of LLC (1 x 10 *) from mouse.
190 803 i190,803 i
17. táblázatTable 17
Megjegyzés: Az S. I. a stimulációs mutatót jelenti a kísérleti kontroll arányában.Note: S.I. represents the stimulation index in proportion to the experimental control.
12. Teszt példa12. Test Example
A C3H/He normál egér, az X5563 immunis egér, az 5. példa szerinti módon előállított MH134 im20 munis egér, all. teszt példa szerinti módon előállított, GRA-M-4 immunis egér és GRA-M-5 immunis egér késleltetett típusú hiperszenzitivitási válaszát (DTH) a talppáma reakcióval határozzuk meg (FPR). Azaz GRA-val vagy MMC-vel (mito25 micin c) kezelt daganatsejteket juttatunk az állat lábának talppárnájába. A talppárna duzzadását a kezelés után 24 órával határozzuk meg. A DTH válasz fokát úgy számítjuk ki, hogy a talppárna kezelés előtti duzzadást fokát (10“2 mm) kivonjuk 30 a kezelés utáni duzzadást fokból.The C3H / He normal mouse, the X5563 immune mouse, is the MH134 im 20 munis mouse, prepared as in Example 5, all. Delayed Type Hypersensitivity Response (DTH) of GRA-M-4 Immune Mouse and GRA-M-5 Immune Mouse, Prepared as Exemplified by Test Example 3, was determined by the footprint reaction (FPR). That is, tumor cells treated with GRA or MMC (mito25 micin c) are introduced into the foot pad of the animal. Swelling of the sole is determined 24 hours after treatment. The degree of DTH response was calculated by subtracting the pre-swelling of the footpad treatment level (10 '2 mm) of 30 degrees to swelling after cure.
A kapott eredményeket a 18-22. táblázat mutatja.The results obtained are shown in Figures 18-22. Table.
A tumor növekedést a következő egyenletből i számítjuk: 35 Tumor growth is calculated from the following equation: 35
T -TT-T
Tumor növekedési arány (%) = -4=—- x 100, ahol a TA a talppárna vastagságát jelenti azon az oldalon, ahol a tumort beültettük és a TN az egész- 40 séges talppárna vastagságát jelenti.Tumor Growth Rate (%) = -4 = —- x 100, where T A represents the thickness of the sole of the foot where the tumor was implanted and T N represents the thickness of the healthy sole of the foot.
11. Teszt példa 45 11. Test Example 45
C3H/He egeret 4,5 pg (fehérje) GRA-M-4-gyel (amelyet a 2 (d) tájékoztató példa szerint kapunk) valamint 0,1 ml komplett Freund féle adjuvánssal immunizálunk a keresztcsonti régióba történő ol- 5Q tással. Két hét után a nyirokcsomó sejtjeit hagyományos módszerrel összegyűjtjük, és ezeket használjuk válaszoló sejtekként, hogy meghatározzuk a GRA-M-4 által előidézett sejtburjánzást választ.C3H / He mice 4.5 pg (protein) GRA-M-4, (obtained according to Example 2 (d) information) and 0.1 ml complete Freund's adjuvant-immunized ol 5Q TASS in the sacral region. After two weeks, lymph node cells were harvested by conventional means and used as responding cells to determine GRA-M-4-induced cell proliferation.
Ez okból a válaszoló sejteket (4 x 105) 15% FCS- 55 et tartalmazó RPMI-1640-ben inkubáljukFor this reason, responding cells (4 x 10 5 ) were incubated in RPMI-1640 containing 15% FCS- 55 .
GRA-M-4 jelenlétében, 5 napon át. Az inkubálás utolsó 18 órájában periodikusan 1 pCi 3H timidint (3H-TdR) adunk a közegbe és megszámoljuk azokat a sejteket, melyekbe a timidin beépült. A kapott eredményeket a'· 17. táblázat mutatja: 60 In the presence of GRA-M-4 for 5 days. During the last 18 hours of incubation, 1 pCi 3 H thymidine ( 3 H-TdR) was periodically added to the medium and the number of cells into which thymidine was incorporated was counted. The results obtained are shown in Table '17: 60
18. táblázatTable 18
Megjegyzés:Comment:
1. csoport, normál iépsejt 1 x 10“/20 μΙ tápközeg (Hanks oldat)Group 1, normal spleen cell 1 x 10 ″ / 20 μΙ medium (Hanks' solution)
2. csoport, MH134 sejt 1 x 10®/20 pl tápközegGroup 2, MH134 cells 1 x 10 10/20 µl medium
3. csoport, 20 μΐ tápközegGroup 3, 20 μΐ medium
4. csoport, GRA-M-4, 0,8 pg (fehéije)/20 μΐ tápközegGroup 4, GRA-M-4, 0.8 pg (protein) / 20 μΐ medium
5. csoport, GRA-M-4, 0,4 pg (fehétjej/20 pl tápközegGroup 5, GRA-M-4, 0.4 µg (protein / 20 µl medium)
19. táblázatTable 19
Megjegyzés:Comment:
1. csoport, 20 pl tápközeg (Hanks oldat)Group 1, 20 µl medium (Hanks' solution)
2. csoport, GRA-M-4, 4 pg (fehérje)/20 pl tápközegGroup 2, GRA-M-4, 4 µg (protein) / 20 µl medium
3. csoport, GRA-M-5, 4 pg (fehérje)/20 pl tápközegGroup 3, GRA-M-5, 4 µg (protein) / 20 µl medium
-121-121
190 803190 803
20. táblázatTable 20
Megjegyzés:Comment:
1. csoport, 20 μΐ tápközeg (Hanks oldat)Group 1, 20 μΐ medium (Hanks' solution)
2. csoport, GRA-M-4, 4 gg (fehérje)/20 gl tápközegGroup 2, GRA-M-4, 4 µg (protein) / 20 µl medium
21. táblázatTable 21
A talppáma duzzadást fokának átlagaThe soles of the soles are the average of the degree of swelling
Megjegyzések:Notes:
1. csoport, 20 gl tápközeg (Hanks oldat)Group 1, 20 g medium (Hanks' solution)
2. csoport, GRA-M-4, 4 gg (fehérje)/10 gl tápközegGroup 2, GRA-M-4, 4 µg (protein) / 10 µl medium
3. csoport, 4 gg (protein)/20 gl tápkőzeg, ez esetben a GRA-M-4 PNA-oszlopon átbocsátóit frakciója (az alábbiakban „C. P.”-nek nevezzük).Group 3, 4 µg (protein) / 20 µl of nutrient, in this case the fraction of GRA-M-4 passing through the PNA column (hereinafter referred to as "C.P.").
22. táblázatTable 22
Megjegyzések:Notes:
1. csoport, 20 gl tápközeg (Hanks oldat)Group 1, 20 g medium (Hanks' solution)
2. csoport, GRA-M-4, 3,8 gg (fehéije)/20 gl tápközegGroup 2, GRA-M-4, 3.8 µg (protein) / 20 µl medium
3. csoport, 3,8 gg (fehérje)/20 gl a fenti „C. P.” tápközegbőlGroup 3, 3.8 gg (protein) / 20 g of the above "C. P. " broth
4. csoport, 3,8 gg (fehérje)/20 gl a GRA-M-4-ből és 3,8 gg (fehérje)/20 gl „C. P.” tápközegGroup 4, 3.8 µg (protein) / 20 µl of GRA-M-4 and 3.8 µg (protein) / 20 µl of “C. P. " medium
Tájékoztató tesztInformative test
Az 5. példa szerinti eljárással kapott X5563 immunis egér lépsejtjeit, mint effektor sejteket használjuk és az effektor sejtek (107) és a célsejteket (X5563,10s) együtt beültetjük egy hasonló törzsből származó egérbe. A 10. teszt példa szerinti Winn próbát alkalmazzuk.The spleen cells of the immune mouse X5563 obtained by the procedure of Example 5 were used as effector cells and the effector cells (10 7 ) and target cells (X5563.10 sec ) were implanted into a mouse from a similar strain. The Winn probe of Test Example 10 is used.
A kapott eredményeket a 22. ábra mutatja, melyben az abszcissza a napokat mutatja és az ordináta a tumor átlagos méretét (cmJ) ± standard hiba, és a különböző jelek a következőket mutatják:The results obtained are shown in Figure 22, in which the abscissa shows the days and the ordinate represents the mean tumor size (cm J ) ± standard error, and the various signals are as follows:
•_· Az a csoport, amelyhez effektor sejteket nem adunk.• _ · The group to which effector cells are not added.
o_o Az a csoport, amelyhez nem-kezeit effektor sejteket adunk.o_o The group to which untreated effector cells are added.
δ_δ Az a csoport, melyben nyúl-komplementtel kezelt effektor sejteket adunk.δ_δ The group in which effector cells treated with rabbit complement are administered.
χ_χ Az a csoport, melyben az effektor sejteket anti-Thy-l-gyel* (New England Nuclear Co., terméket, Amerikai Egyesült Államok), és nyúlkomplementtel kezelünk.csoport_χ The group in which effector cells are treated with anti-Thy-1 * (New England Nuclear Co., USA) and rabbit complement.
□__o Az a csoport, amelyben anti-Lyt-l-gyel* (New England Nuclear Co., terméke, Amerikai Egyesült Államok) és nyúl-komplementtel kezelt effektor sejteket adunk.□ __o The group in which effector cells are treated with anti-Lyt-1 * (New England Nuclear Co., USA) and rabbit complement.
__ Áz a csoport, amelyben anti-Lyt-2-vel* (New England Nuclear Co. terméke, Ámerikai Egyesült Államok) és nyúl-komplementtel kezelt sejteket adunk.__ Az is the group in which cells treated with anti-Lyt-2 * (product of New England Nuclear Co., United States of America) and rabbit complement are added.
(* Az anti-Thy-1, az anti-Lyt-1 és az anti-Lyt-2 monoklónális antitestek, amelyek az egerek T-sejtjeinek szubpopulációjával specifikusak és nincsen hatásuk a rákterápiában.)(* Anti-Thy-1, anti-Lyt-1, and anti-Lyt-2 are monoclonal antibodies that are specific for a subset of mouse T cells and have no effect on cancer therapy.)
A 22. ábra eredményeiből látható, hogy az anti Lyt-1 típusú T-sejtek fontos szerepet játszanak a tumor immunválasz mechanizmusában in vivő.The results of Figure 22 show that anti-Lyt-1 type T cells play an important role in the tumor immune response mechanism in vivo.
Továbbá, köztudott, hogy a DTH válasz az anti Lyt-1 T-sejteken keresztül történik. [J. Exp. Med. 143 p. 1534-39, (1976)].Furthermore, it is known that the DTH response is through anti-Lyt-1 T cells. [J. Exp Med 143 p. 1534-39 (1976)].
A találmányt részletesen ismertettük, különös tekintettel annak sajátos vonásaira, nyilvánvaló, hogy szakképzett, megfelelő jártasságú szakember számára nem jelentenek nehézséget a különféle változtatások, módosítások végrehajtása azon, anélkül, hogy eltérne a találmány szellemétől és annak oltalmi körétől.The invention has been described in detail, with particular regard to its particular features, and it will be understood that it will not be difficult for one of ordinary skill in the art to make various changes or modifications thereto without departing from the spirit and scope of the invention.
Az ábrák rövid leírásaBrief Description of the Drawings
1. ábra A Daudi ráksejtek mikroszkópos felvétele.Figure 1. Microscopy of Daudi cancer cells.
2. ábra Mikroszkópos felvétel, amely az első ábra ráksejtjeinek GRA-l-K-T-ja által kiváltott tarfolt-képződést (plakkok) mutatja.Figure 2 Microscopic image showing plaque formation by GRA-1-K-T of cancer cells in Figure 1.
3. ábra KATO-III ráksejtek mikroszkópos felvétele.Figure 3 Microscopy of KATO-III cancer cells.
4. ábra Mikroszkópos felvétel, mely a 3. ábra ráksejtjeinek GRA-l-K-T-je által kiváltott tarfolt képződést mutatja.Figure 4 A microscopic view showing the plaque formation induced by the GRA-1-K-T of the cancer cells of Figure 3.
5. ábra BT-I ráksejtek mikroszkópos felvétele.Figure 5 Microscopy of BT-I cancer cells.
. 6. ábra Mikroszkópos felvétel, mely az 5. ábra ráksejtjeinek GRA-l-K-T-ja által előidézett tarfolt képződést mutatja.. Figure 6: Microscopic image showing plaque formation induced by GRA-1-K-T of the cancer cells of Figure 5.
7. ábra MKN-45 ráksejtek mikroszkópos felvétele.Figure 7 Microscopy of MKN-45 cancer cells.
8. ábra Mikroszkópos felvétel, amely a 7. ábra ráksejtjeinek GRA-l-K-T-je által kiváltott tarfoltképződést mutatja.Figure 8 Microscopic image showing plaque formation induced by GRA-1-K-T of the cancer cells of Figure 7.
9. ábra MOLT ráksejtek mikroszkópos felvétele.Figure 9 Microscopy of MOLT cancer cells.
10. ábra Mikroszkópos felvétel, amely a 9. ábra ráksejtjeinek GRA-l-K-T-ja által előidézett tarfol [képződést mutatja.Figure 10 A microscopic image showing the formation of tarfol [GRA-1-K-T induced by the cancer cells of Figure 9.
11. ábra BT-1 mikroszkópos felvétele, amelyet nem szenzibilizált emberi perifériás vérből származó limfociták keverékével kezeltünk.Figure 11: Microscopic view of BT-1 treated with a mixture of non-sensitized human peripheral blood lymphocytes.
12. és 13. ábra Mindkettő rákos egérszövet mikroszkópos felvétele. A rákos egérnek GRA-M-l-K-t adtunk.Figures 12 and 13 Microscopy of both cancerous mouse tissues. The cancerous mouse was given GRA-M-1-K.
14. ábra Rákos egércsoportokon a rák állapotát bemutató mikroszkópos felvétel, a rákot hordozó egereknek GRA-M-l-et adtunk.Figure 14 Microscopic imaging of cancerous mice in groups of cancerous mice bearing GRA-M-1.
75. ábra Olyan csoportból származó rákos egerek szövetéből készült felvétel, mely csoportnak GRA-M-l-et nem adagoltunk.Figure 75. Tissue taken from cancerous mice from a group to which no GRA-M-1 was added.
16. ábra Rákos szövet mikroszkópos felvétele, mely csoportot GRÁ-M-l-gyel kezeltünk.Figure 16 Microscopic image of cancerous tissue treated with GR-M-1.
-131-131
190 803190 803
77. ábra A GRA SDS gélelektroforézisének diagramja C. B. B. fa C. B. B. módszer szerint a proteint coomassie brilliant blue-val (4-hidroxi-5-[(4-fenilamino)-5-szulfo-1 -naftalin-azo]-2,7-naftalindiszulfonsav trinátriumsója, Ayerst Co. terméke), festjük, (Biochemistry, 10. (1971) 2606-2617. oldal] ismertetett módszerrel történő proteinfestést alkalmazva).Figure 77. Graph of GRA SDS gel electrophoresis of GRA by CBB wood CBB method coomassie brilliant blue (4-hydroxy-5 - [(4-phenylamino) -5-sulfo-1-naphthalenazo] -2,7-naphthalenedisulfonic acid) disodium salt, product of Ayerst Co.), stained using protein staining according to the method described in Biochemistry 10 (1971) 2606-2617).
18-20. ábra A GRA SDS gélelektroforézisének diagramjai cukorfestést használva PÁS módszerrel. [A PÁS módszer szerint a proteint Schiff sav reagenssel festjük, Biochemistry, 10. (1971) 2606-2617. oldal].18-20. Graphs of GRA SDS gel electrophoresis using sugar staining by PÁS. (According to the PÁS method, the protein is stained with Schiff's acid reagent, Biochemistry 10: 2606-2617 (1971)). side].
27. ábra A GRA SDS gélelektroforézise diagramjának vázlatos rajza, C. B. B. módszerrel történő proteinfestést alkalmazva.Figure 27 is a schematic diagram of the GRA SDS gel electrophoresis diagram using protein staining by C. B. B.
22. ábra A C3H/He egérbe X5563 immunis egér lépsejtek és X5563 sejtek beültetése után a tumor növekedésének mértékét mutatja be.Figure 22 shows the extent of tumor growth after implantation of X5563 immune mouse spleen cells and X5563 cells into C3H / He mouse.
Claims (13)
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP15641481A JPS5857321A (en) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | Anticancer agent |
JP56156413A JPS5857318A (en) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | Production of lymphocytes inhibiting cancer cells |
JP57111168A JPS591420A (en) | 1982-06-28 | 1982-06-28 | Sugar chain-relating antigen and its preparation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU190803B true HU190803B (en) | 1986-11-28 |
Family
ID=27311898
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU210282A HU190803B (en) | 1981-10-01 | 1982-06-29 | Lymphocytes against carcinoma cells, process for producing them, and citostatic active agents containing the said lymphocytes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
HU (1) | HU190803B (en) |
-
1982
- 1982-06-29 HU HU210282A patent/HU190803B/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Maddox et al. | Stimulated macrophages express a new glycoprotein receptor reactive with Griffonia simplicifolia I-B4 isolectin. | |
WO1985000812A1 (en) | Conjugates of proteins with anti-tumour agents | |
WO1996017614A1 (en) | Adjuvant-incorporated cellular antigens: conjugation and methods | |
JP3502125B2 (en) | Extraction and culture of transformed cells and production of antibodies against them | |
US5500215A (en) | Methods for the production of antibodies and induction of immune responses to tumor-associated gangliosides by immunization with ganglioside lactones | |
EP0128097B1 (en) | Immunostiumulating derivatives, their preparation and their use as medicines | |
Glinsky et al. | Inhibition of colony formation in agarose of metastatic human breast carcinoma and melanoma cells by synthetic glycoamine analogs | |
Herberman et al. | Delayed Cutaneous Hypersensitivity Reactions to Extracts of Human Tumors 1.2 | |
Tria et al. | Presence of a Phosphatido-peptide Fraction in Liver Cell Membrane and its Possible Role in the Active Transport of Ammo-acids | |
Ceriani et al. | Immunologic methods for the identification of cell types. II. Expression of normal mouse mammary epithelial cell antigens in mammary neoplasia | |
DE69624586T2 (en) | PEPTIDE VACCINE BASED ON FUSION PROTEINS WITH ONCOGENIC PART | |
GB2106935A (en) | Cancer cell-combatting lymphocytes process, for the production thereof, and anticancer agents containing said lymphocytes | |
HU190803B (en) | Lymphocytes against carcinoma cells, process for producing them, and citostatic active agents containing the said lymphocytes | |
FI80711C (en) | Process for Preparing a Therapeutically Useful Thermally The Aturized, Glucoside Binding Antigen (GRA) Linked to Cancer Cells | |
US4849510A (en) | Process for preparing glycosidic linkage related antigen | |
RU2205010C2 (en) | Natural antitumor or antiviral substances and their application | |
CA1336322C (en) | Use of hemocyanins and arylphorins to influence the immune system and for the treatment of tumors | |
US5705351A (en) | Diagnosis of cancer using tumor-mimetic cell surface antigen from chemically modified normal cells | |
US5418129A (en) | Blood treatment method | |
FI77157B (en) | FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV GLYKOBUNDEN ANTIGEN OCH FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV FOER KANCERCELLER TOXISKA LYMFOCYTER, SOM AER SPECIFIKA MOT DENNA Antigen. | |
Hoyle | A Lipoidal Antigen Produced by Certain Malignant Tumours of the Mouse | |
WO2000043403A1 (en) | 2-methyl-3-butenyl-1-pyrophosphoric acid salts and agents for treating lymphocytes | |
KR880001758B1 (en) | Process for preparing lymp cell against cancer | |
SU1412596A3 (en) | Method of producing lymphocytes cyto-toxic to cancer cells, and method of producing glyco-bound substance | |
Roozemond et al. | Effect of mycobacterial lipids on membrane fluidity and natural killer cell-mediated cytotoxicity |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |