HU183432B - Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type - Google Patents
Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type Download PDFInfo
- Publication number
- HU183432B HU183432B HU130481A HU130481A HU183432B HU 183432 B HU183432 B HU 183432B HU 130481 A HU130481 A HU 130481A HU 130481 A HU130481 A HU 130481A HU 183432 B HU183432 B HU 183432B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- lewis base
- water
- solvent
- acetone
- polypeptides
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
A találmány tárgya új eljárás kallikrein-inhibitor és tripszin-inhibitor hatású polipeptidek specifikus leoldására szilikát típusú adszorbensekröl, szerves poláris oldószer és víz 1—3 pH-értékre savanyított elegyével, azzal jellemezve, hogy leoldó oldószerelegyként oly 1-3 pH-értékre savanyított vizes oldószerelegyet alkalmazunk, amely víz mellett 5-95% mennyiségben valamely savas vizes közegben protont fel nem vevő Lewisbázist és kívánt esetben e Lewis-bázis egy része helyett valamely protikus szerves oldószert, előnyösen metanolt, etanolt vagy acetont tartalmaz. Az új eljárással a hatóanyag jobb hatásfokkal és nagyobb tisztaságban nyerhető ki, mint az eddig ismert eljárásokkal. -1-FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a specific method for the specific release of kallikrein inhibitor and trypsin inhibitory polypeptides from silicate-type adsorbents, an organic polar solvent and an acidified mixture of water at pH 1 to 3, characterized in that it is an aqueous solvent mixture acidified to pH 1-3 as a release solvent. which comprises, in addition to water, 5-95% Lewisbase not proton-containing in an acidic aqueous medium, and optionally a protic organic solvent, preferably methanol, ethanol or acetone, instead of a portion of this Lewis base. With the new method, the active ingredient can be obtained with better efficacy and greater purity than previously known methods. -1-
Description
A találmány tárgya új eljárás kallikrein-inhibitor és tripszin-inhibitor hatású polipeptidek specifikus le oldására szilikát-típusú adszorbensről.The present invention relates to a novel process for the specific release of kallikrein inhibitor and trypsin inhibitor polypeptides from a silicate-type adsorbent.
Több eljárás ismert már az állati szén’kivonatokban levő kallikrein-inhibitor és tripszin-inhibitor hatású polipeptidek kinyerésére és tisztítására, adszorbensen, ioncserélőn, vagy immobilizált enzimen történő megkötés, illetőleg az ezekről való leoldás útján.Several methods are known for the recovery and purification of kallikrein inhibitor and trypsin inhibitory polypeptides in animal carbon extracts by binding to, or dissolving from, adsorbent, ion exchanger, or immobilized enzyme.
A 153 247 számú magyar szabadalom szerinti eljárásban a szervkivonatból a hatóanyagot szilikát-típusú adszorbensen 5-7 pH értékű közegből kötik meg, majd az adszorbensről 3 pH érték alá savanyított, vízzel hígított poláris szerves oldószerrel, célszerűen vízzel 30— 90%-osra hígított kis szénatomszámú alkohollal, vagy ketonnal oldják le.In the process of the Hungarian Patent No. 153,247, the active ingredient is bound from the organic extract to a silicate-type adsorbent from a pH of 5 to 7 and then from the adsorbent to a pH of 30-90% diluted with a polar organic solvent diluted with water. Carbon alcohol or ketone.
Az eljárás hátránya, hogy az adszorbens ugyan közel kvantitative megköti a hatóanyag polipeptidet, de emellett igen sok ballasztanyagot is adszorbeál (v. ö.: 307 615 számú osztrák szabadalmi leírás, 3. oldal, 56—58. sor), a leoldószer pedig gyenge hatásfokkal (50-60%) és nem specifikusan oldja le a hatóanyagot, így a tisztulás mértéke sem megfelelő.The disadvantage of the process is that while the adsorbent binds almost quantitatively to the active polypeptide, it also adsorbs a large amount of ballast (cf. Austrian Patent No. 307,615, page 3, lines 56-58) and the solvent is poor effective (50-60%) and non-specific dissolution of the active ingredient, so the degree of purification is not satisfactory.
A 2 509 482 számú NSZK-beli szabadalmi közrebocsátási irat oly eljárást ismertet, amely szerint a tripszininhibitor hatású polipeptideket immobilizált tripszinen kötik meg és erről a pH-érték változtatásával oldják azt le. Az eljárás hátránya, hogy igen nagy mennyiségű immobilizált enzim szükséges a megkötéshez, ami kérdésessé teszi nagyüzemi méretben a megvalósíthatóságot. Másik hátránya, hogy a megkötés és leoldás során az inhibitor-hatású polipeptidből részben hatástalan műtermék keletkezik, amely csökkenti a hozamot és nehezíti a további tisztítási lépéseket. így ez az eljárás nyers szervkivonatok tisztítására nem alkalmas.German Patent Publication No. 2,509,482 discloses a process in which trypsin inhibitory polypeptides are bound by immobilized trypsin and resolved by varying the pH. The disadvantage of the process is that a very large amount of immobilized enzyme is required for binding, which makes it questionable on a large scale. Another disadvantage is that during capture and release, the inhibitory polypeptide produces a partially inactive artificial product which reduces yield and complicates further purification steps. Thus, this method is not suitable for purifying crude organ extracts.
A 76 773 számú NDK-beli szabadalmi leírás szerint a szervkivonatból a proteáz-inhibitor hatású polipeptidet aktívszénen kötik meg, és erről 20°C és 60° C között 1 — 20%-os kis szénatomszámú alifás monokarbonsawal vagy ásványi sawal oldják le 2—5% fenol jelenlétében. Az eljárás hátránya, hogy a hatóanyag leoldását csak igen nagy térfogatban teszi lehetővé, így töményítést alig ér el, és a hatóanyag további kinyerésére a szervkivonat térfogatának 2—2,5-szeresét kitevő térfogatú aceton szükséges.According to GD 76,773, the protease inhibitor polypeptide is bound from the organic extract to activated carbon and lysed with 1 to 20% lower aliphatic monocarboxylic acid or mineral acid at 20 to 60 ° C. in the presence of% phenol. The disadvantage of the process is that it allows only a very large volume of the active ingredient to be dissolved, so that it is hardly concentrated, and further recovery of the active ingredient requires 2 to 2.5 times the volume of the organic extract in acetone.
A 2 120 088 számú NSZK-beli szabadalmi közrebocsátási iratban megadott eljárás szerint a kallikrein-tripszin-inhibitor polipeptidet oldatából polistirol-bázisú amfoter ioncserélőn kötik meg, a hatóanyag leoldását pedig sógradienssel kromatografálva valósítják meg. Az eljárás hátránya, hogy az ioncserélőn való megkötést az oldatban levő szervetlen és szerves ionok nagy mértékben befolyásolják. A leírásban közölt példa szerint nem nyers, hanem már előzetesen tisztított 2000 KIE/mg fehérje aktivitású oldatból (KIÉ: kallikrein-inhibitor egység, TIE: tripszin-inhibitor egység) végzik a megkötést. Másik hátránya, hogy a sógradienssel történő kromatografálás nagyüzemi méretben nehezen valósítható meg.According to the method disclosed in German Patent Application No. 2,201,088, the kallikrein-trypsin inhibitor polypeptide is bound from its solution on a polystyrene-based amphoteric ion exchanger, and the active ingredient is released by chromatography on a salt gradient. The disadvantage of the process is that the binding on the ion exchanger is greatly influenced by the inorganic and organic ions present in the solution. In the example described herein, binding is performed using a solution of 2000 KIE / mg protein (CIU: kallikrein inhibitor unit, TIE: trypsin inhibitor unit) which has been purified in advance and not crude. Another drawback is that salt gradient chromatography is difficult to achieve on a large scale.
A találmány célja olyan eljárás kidolgozása volt, amely kiküszöböli az ismert eljárások hátrányait és lehetővé teszi a kallikrein- és tripszin-inhibitor hatású polipeptid jó hozammal és megfelelő tisztaságban való kinyerését állati szervkivonatokból, ipari méretben is könnyen megvalósítható módszerrel.SUMMARY OF THE INVENTION The object of the present invention was to provide a method which overcomes the drawbacks of the known methods and allows the recovery of the polypeptide having kallikrein and trypsin inhibitory activity from animal organ extracts in good yield and purity by a method which is readily commercially available.
Ezt a célt a találmány értelmében oly módon éljük el, hogy az állati szervkivonatból szilikát-típusú adszorbensen megkötött kallikrein- és tripszin-inhibitor hatású 2 polipeptideket, valamely vizes közegben a víznél nehezebben protonálható Lewis-bázis és víz, illetőleg adott esetben Lewis-bázis, valamely protikus oldószer és viz 1—3 pH-értékre savanyított elegyével oldjuk le az adszorbensről. Lewis-bázis alatt olyan vegyületeket értünk, amelyek leadható elektronpárjuk révén proton megkötésére vagy koordinatív kötés létrehozására képesek (vö.: Szántay: Elméleti szerves kémia, Budapest 1975, 161. old.). Víznél nehezebben azok a Lewis-bázisok protonálhatók, amelyek savas vizes közegben nem vesznek fel protont és így megőrzik koordinatív kötés létrehozására való képességüket. (Az olyan Lewis-bázisok, amelyek savas vizes közegben protonálódnak, a találmány szerinti eljárásban nem segítik elő a peptidek az adszorbensről való leoldását.) Víznél nehezebben protonálható Lewisbázisként a találmány szerinti eljárásban előnyösen Nszubsztituált vagy szubsztituálatlan karbonsavamidok, valamint karbonsavnitrilek, szulfoxidok, nyílt láncú vagy gyűrűs éterek vagy tioéterek alkalmazhatók. Protikus oldószerként előnyösen etanolt vagy metanolt alkalmazhatunk. A Lewis-bázis mennyiségi aránya a leoldó vizes oldószerelegyben 5—95%, a kívánt esetben a Lewisbázis egy része helyett alkalmazható protikus szerves oldószeré (az egész oldószerelegy súlyára számítva) 20— 70% lehet; a pH-érték beállítására célszerűen sósavat alkalmazunk.This object is achieved by the use of silicone adsorbent-bound kallikrein and trypsin inhibitory polypeptides 2 from an animal organ extract, a Lewis base and water, or optionally a Lewis base, which is more difficult to protonate than water in an aqueous medium, dissolve in the adsorbent using a mixture of a protic solvent and water to pH 1-3. By Lewis base we mean compounds which are capable of binding protons or coordinate bonds through their release electron pair (cf. Szántay, Theoretical Organic Chemistry, Budapest 1975, p. 161). More difficult than water is the protonization of Lewis bases which do not take up a proton in acidic aqueous media and thus retain their ability to form a coordinate bond. (Lewis bases which are protonated in acidic aqueous media do not facilitate dissolution of the peptides from the adsorbent in the process of the invention.) As the Lewis base more difficult to protonate than water, the process of the invention preferably has N-substituted or unsubstituted carboxylic acid amides, carboxylic cyclic ethers or thioethers. Preferably, the protic solvent is ethanol or methanol. The amount of Lewis base in the dissolving aqueous solvent mixture may be from 5% to 95%, and if desired, the protic organic solvent may be used in place of a portion of the Lewis base (based on the weight of the total solvent mixture); hydrochloric acid is conveniently used to adjust the pH.
A találmány szerinti eljárás bármely olyan ismert kallikrein- és tripszin-inhibitor kinyerési eljárással kapcsolatban alkalmazható, amelynek során az erre alkalmas állati szervekből, mint marhatüdőből, pankreaszból, parotisból vagy májból ismert módszerekkel készített vizes kivonatból a bázisos jellegű kallikrein- és tripszin-inhibitort valamilyen szilikáttípusú adszorbensen, például bentoniton, montmorilloniton vagy hasonlókon abszorbeálhatják, majd erről az adszorbensről szelektíven kívánják leoldani. Ilyen eljárásokat például a 153 140 számú magyar, a 2 447 050 számú NSZK-beli és az 519 914 számú svájci szabadalmi leírások ismertetnek.The process of the present invention is applicable to any known method of recovering kallikrein and trypsin inhibitors, wherein the basic extracts of kallikrein and trypsin inhibitors from an appropriate animal organ such as bovine lung, pancreas, parotid or liver are of a silicate type. adsorbent, such as bentonitone, montmorillonitone or the like, and then selectively dissolve the adsorbent therefrom. Such procedures are described, for example, in Hungarian Patent Nos. 153,140, German Patent 2,447,050 and Swiss Patent No. 519,914.
A kívánt hatóanyagnak az adszorbensről való szelektív leoldására a találmány értelmében tehát oly 1—3 pHértékre savanyított vizes oldószerelegyet alkalmazunk, amely víz mellett 5—95% mennyiségben valamely savas közegben protont fel nem vevő Lewis-bázist és kívánt esetben e Lewis-bázis egy része helyett valamely protikus szerves oldószert, előnyösen metanolt, etanolt vagy acetont tartalmaz.Thus, according to the present invention, an aqueous solvent mixture which is acidified to a pH of 1 to 3 is used to selectively dissolve the desired active ingredient from the adsorbent, with 5 to 95% water in a non-proton Lewis base and optionally part of this Lewis base. containing a protic organic solvent, preferably methanol, ethanol or acetone.
Előnyösen úgy járunk el, hogy a hatóanyagként kinyerni kívánt polipeptidet víz mellett 20-90% Lewis-bázist tartalmazó 1—3 pH-értékre savanyított vizes oldattal oldjuk le a szilikát-típusú adszorbensről. Leoldható a hatóanyagként kinyerni kívánt polipeptid víz mellett legalább 5% Lewis-bázist és 20—70% etanolt vagy metanolt tartalmazó, 1—3 pH-értékre savanyított vizes oldattal is.Preferably, the polypeptide to be recovered as the active ingredient is dissolved in a silicate-type adsorbent in an aqueous solution containing from 20% to 90% Lewis base, acidified to pH 1-3. The polypeptide to be recovered as the active ingredient may also be dissolved in an aqueous solution of at least 5% Lewis base and 20-70% ethanol or methanol acidified to pH 1-3.
Lewis-bázisként különösen dimetil-formamid, dimetilszulfoxid, tetrahidrófurán, merkapto-etanol, acetamid, aeetonitril, vagy dioxán alkalmazható előnyösen.In particular, the Lewis base is preferably dimethylformamide, dimethylsulfoxide, tetrahydrofuran, mercaptoethanol, acetamide, acetonitrile or dioxane.
A találmány szerinti eljárás előnye elsősorban az, hogy a korábbi eljárásokkal szemben lényegesen jobb hatásfokkal és tisztábban nyerhető a polipeptid-hatóanyag. A 153 247 számú magyar szabadalmi leírásban megadott leoldási eljárással a példák szerint a kivonatban levő polipeptid-batóanyag 54—60%-a oldható le a szilikát-alapú adszorbensről. Ezzel szemben a jelen eljárás szerint, Lewis-bázisoknak a leoldószerben való alkalmazásával, a hozam 80—95%-ra növelhető és a kapott termék lényege-21The process according to the invention has the advantage, in particular, that the polypeptide active ingredient can be obtained with a much better efficiency and purity than the previous processes. According to the solubilization process disclosed in Hungarian Patent No. 153,247, between 54% and 60% of the polypeptide surfactant in the extract can be liberated from the silicate-based adsorbent. In contrast, by using Lewis bases in the solvent according to the present process, the yield can be increased to 80-95% and the product obtained is essentially
183 432 sen tisztább. Azonos tisztaságú tüdőkivonatból kiindulva, a 153 247 számú magyar szabadalmi leírás szerinti eljárással átlagban 2,3 TIE/g, illetőleg 0,45—0,8 millió KIE/g fehérje tisztaságú termék volt nyerhető, a jelen találmány szerint eljárva 1,1-2,1 millió KIE/g, illetőleg 4,2-8,0 ΤΓΕ/g fehérje tisztaságú termék nyerhető (TIE: tripszin-inhibitor egység; KIÉ: kallikrein-inhibitor egység).183,432 sen cleaner. Starting from lung extract of the same purity, the procedure according to Hungarian Patent No. 153,247 yielded an average of 2.3 TIE / g and 0.45-0.8 million KIE / g protein purity product, respectively. , 1 million KIE / g or 4.2-8.0 ΤΓΕ / g protein product (TIE: trypsin inhibitor unit; KIE: kallikrein inhibitor unit).
A találmány szerinti eljárás további előnye, hogy olyan anyagok is alkalmazhatók a leoldásnál, amelyek a polipeptidek kinyerésére alkalmazott acetonos kicsapás esetében a polipeptid-csapadék elkülönülése után lehetővé teszik a kicsapáshoz használt aceton regenerálását. A korábbi eljárásban leoldószerként alkalmazott etanol (fp:78,3° C) és a kicsapáshoz használt aceton (fp: 56,3°C) forráspontjai között az eltérés 22°C, ez az oldószerek regenerálhatóságát olyan mértékben megnehezíti, hogy az már nem oldható meg gazdaságosan. Ezzel szemben a magasabb forrpontú Lewis-bázisoknak a leoldáshoz való alkalmazásával elkerülhető az acetonhoz közelálló fonáspontú rövidszénláncú alkoholok alkalmazása, így a kicsapáshoz használt aceton és a leoldáshoz használt Lewis-bázis desztillálással egymástól könnyen elválasztható. Az alkalmazható Lewis-bázisok közül például a dimetilformamid forráspontja 153 °C, a dioxáné 106 °C, az acetamidé 221 °C. Az oldószerek ezáltal lehetővé váló regenerálhatósága igen jelentős gazdasági előnyt jelent.A further advantage of the process according to the invention is that it is also possible to use substances which, in the case of acetone precipitation used to recover the polypeptides, allow the recovery of the acetone used in the precipitation after separation of the polypeptide precipitate. The difference between the boiling points of ethanol (fp: 78.3 ° C) used in the previous process and the acetone (fp: 56.3 ° C) used for the precipitation is 22 ° C, which makes the regenerability of the solvents so difficult that it is no longer soluble and economically. In contrast, the use of higher boiling Lewis bases for solubilization avoids the use of low-alcohol alcohols close to acetone, so that the acetone used for precipitation and the Lewis base used for leaching can be easily separated by distillation. Suitable Lewis bases include, for example, dimethylformamide boiling point 153 ° C, dioxane 106 ° C, acetamide 221 ° C. The recoverability of the solvents thus afforded a very significant economic advantage.
A találmány szerinti eljárás gyakorlati kiviteli módjait közelebbről az alábbi példák szemléltetik. A példák szerint előállított termékek hatékonyságának és tisztaságának a meghatározására az alábbi módszereket alkalmaztuk:Practical embodiments of the process of the invention are illustrated by the following examples. The following methods were used to determine the efficacy and purity of the products prepared by the examples:
A kallikrein-inhibitor aktivitást (KIÉ) Werle-Kaufmann-Boetsch szerint [Hoppe-Seyler’s Z.f.physiol. Chem. 319, 52 (1960)], a tripszin-inhibitor aktivitást (TIE) pedig Anson szerint [J. Gén. Physiol. 22, 79 (1949)] mértük. A fehérjetartalmat a 280 gm hullámhosszon mért extinkció alapján számítottuk.The kallikrein inhibitor activity (CI) was according to Werle-Kaufmann-Boetsch [Hoppe-Seyler's Z.f.physiol. Chem. 319, 52 (1960)] and trypsin inhibitor activity (TIE) according to Anson [J. Gene. Physiol. 22, 79 (1949)]. Protein content was calculated from extinction at 280 gm.
1. példaExample 1
100 kg marhatüdö 400 liter térfogatú vizes kivonatát, amely összesen 150 millió KIÉ és 577 TIE aktivitású polipeptidet tartalmaz, kalcium-hidroxiddal 5,6 pH-értékre állítjuk be, majd 4 kg savval aktivált bentonitot adunk az oldathoz és egy óra hosszat keverjük. Ezután az adszorbenst szűréssel elkülönítjük és vízzel átmossuk, majd 60 tf% etanolt, 10 tf% dimetil-formamidot és 0,2 n végkoncentrációnak megfelelő mennyiségű sósavat tartalmazó vizes elegy (pH = 0,8) 10 literével fél óra hosszat keverjük, leszűrjük és ezt a műveletet 5 liter ugyanilyen vizes eleggyel megismételjük. A szűrleteket egyesítjük és háromszoros térfogatú acetonnal kicsapjuk a polipeptidhatóanyagot, a csapadékot szűréssel elkülönítjük és levegőn megszárítjuk. Az acetonnal kicsapott termék, 138 millió KIÉ és 530 TIE össz-aktivitást tartalmaz, 1,1 millió KIE/g, illetőleg 4,23 TIE/g fehérje tisztaságban, ami 92% hozamnak felel meg. Ebből a száraz csapadékból az inhibitor-hatású polipeptid ismert módszerekkel nyerhető ki. például oly módon, hogy a száraz csapadéksúly tízszeresének megfelelő mennyiségű 90%-os etanollal keverjük, leszűrjük és a műveletet a csapadéksúly ötszörösének megfelelő mennyiségű 90%-os etanollal megismételjük, majd az egyesített szüredékhez két és félszeres térfogatú acetont adva újból kicsapjuk a polipeptidhatóanyagot.An aqueous extract of 100 kg of bovine milk with 400 liters of aqueous extract containing a total of 150 million KIU and 577 TIE activity polypeptides is adjusted to pH 5.6 with calcium hydroxide, and then 4 kg of acid-activated bentonite are added to the solution and stirred for one hour. The adsorbent was then filtered off and washed with water, and the mixture was stirred with 10 liters of aqueous ethanol, 10% v / v dimethylformamide and 0.2 N HCl (pH 0.8) for half an hour, filtered and filtered. repeat the operation with 5 liters of the same aqueous mixture. The filtrates were combined and the polypeptide drug was precipitated with three volumes of acetone and the precipitate was collected by filtration and air dried. The acetone precipitated product had a total activity of 138 million CIs and 530 TIEs, with a purity of protein of 1.1 million KIE / g and 4.23 TIE / g, respectively, corresponding to a 92% yield. From this dry precipitate, the inhibitory polypeptide can be recovered by known methods. for example, by mixing with 90% ethanol at 10 times the dry precipitate weight, filtering and repeating the process with 5 times the precipitate weight with 90% ethanol, and then adding to the combined filtrate two and a half volumes of acetone to precipitate the polypeptide.
2. példaExample 2
100 kg marhatüdőből származó vizes kivonatból az 1. példában leírttal egyező módon 4 kg savval aktivált bentonitra adszorbeáltatjuk a nyers hatóanyagot. A leoldást 10 liter, majd 5 liter 70% metanolt és 10% acetamidot tartalmazó 0,1 n vizes sósavoldattal (pH = 1,45) végezzük, a két leoldó-folyadékot egyesítjük és a polipeptid-hatóanyagot háromszoros térfogatú aceton hozzáadásával csapjuk ki az oldatból. A kapott csapadékot leszűrjük, és megszárítjuk, oldjuk. Az így kapott tennék 138 millió KIÉ és 530 TIE aktivitást tartalmaz, ami a kiindulási kivonat hatóanyag-tartalma 92%-ának felel meg. A termék tisztasága 1,6 millió KIE/g illetőleg 6,1 TIE/g fehérje.From the aqueous extract of 100 kg of bovine lung, the crude active ingredient was adsorbed to 4 kg of acid-activated bentonite as described in Example 1. The dissolution was performed with 10 L followed by 5 L of 0.1 N aqueous hydrochloric acid (pH 1.45) containing 70% methanol and 10% acetamide, the two leaching liquids were combined and the polypeptide active compound was precipitated by adding three volumes of acetone. . The resulting precipitate was filtered off, dried and dissolved. The product thus obtained contains 138 million CIs and 530 TIE activities, corresponding to 92% of the active ingredient content of the starting extract. The product has a purity of 1.6 million KIE / g or 6.1 TIE / g protein.
3. példa kg marhatüdőből kapott 40 liter vizes kivonatból, amely 20,5 millió KIÉ és 78,8 TIE aktivitású polipeptidet tartalmaz, 600 g őrölt montmorilloniton adszorbeáltatjuk a hatóanyag-polipeptidet. Az adszorbenst vízzel átmossuk, majd 90% dimetil-formamid és 10% 0,5 n vizes sósavoldat tízszeres térfogatú elegyével (pH = 2,1) eluáljuk. Az eluátumból két és félszeres térfogatú aceton hozzáadásával kicsapjuk a hatóanyagot, a csapadékot elkülönítjük, megszárítjuk, majd az I. példában leírt módon, 90%-os alkoholban történő oldás és acetonnal való újbóli kicsapás útján tisztítjuk. Az így kapott termék 17,4 millió KIÉ és 67 TIE aktivitású és 2,4 millió KIE/g fehérje, illetőleg 9,2 TIE/g fehéije tisztaságú. A nyers tüdőkivonat aktivitására számított hozam: 85%.Example 3 From a 40 liter aqueous extract from a kg of bovine lung containing 20.5 million KIU and 78.8 TIE activity polypeptide, the active ingredient polypeptide was adsorbed on 600 g of ground montmorillon. The adsorbent was washed with water and eluted with a 10-fold mixture of 90% dimethylformamide and 10% 0.5 N aqueous hydrochloric acid (pH 2.1). The eluate was precipitated from the eluate by the addition of two and a half volumes of acetone, the precipitate was collected, dried and purified by dissolving it in 90% alcohol and re-precipitating with acetone as described in Example I. The product thus obtained has a purity of 17.4 million IU and 67 TIE and a purity of 2.4 million IU / g protein or 9.2 TIE / g protein. Yield of crude lung extract activity: 85%.
4. példa kg marha-parotiszból kapott 5 liter vizes kivonatot, amely 1,9 millió KIÉ és 7,26 TIE aktivitást tartalmaz, kalcium-hidroxiddal 5,6 pH-értékre állítunk be, majd ebből a vizes kivonatból az aktív anyagot savval kezelt bentonitra adszorbeáltatjuk. Az adszorbensen megkötött hatóanyagot 40 tf% etanol, 30 tf% dimetil-szulfoxid és 30 tf% víz sósavval 2,5 pH-értékre savanyított elegyével eluáljuk. Az eluátumból az előző példák szerint acetonnal kicsapott termék 1,68 millió KJE és 6,42 TIE aktivi-. tású, a hatóanyag-polipeptid 1,85 millió KIE/g fehérje, illetőleg 7,1 TIE/g fehéije tisztaságú. A nyers parotisz-kivonat aktivitására számított hozam: 88 %.EXAMPLE 4 5 L of aqueous extract of Bovine Parotid, containing 1.9 million CIs and 7.26 TIE activity, was adjusted to pH 5.6 with calcium hydroxide and from this aqueous extract the active substance was treated with acid-treated bentonite. adsorbing. The adsorbent-bound active ingredient was eluted with a mixture of 40% v / v ethanol, 30% v / v dimethylsulfoxide and 30% v / v water and acidified to pH 2.5 with hydrochloric acid. From the eluate, the product precipitated with acetone according to the previous examples was 1.68 million KJE and 6.42 TIE active. The active ingredient polypeptide has a purity of 1.85 million KIE / g protein or 7.1 TIE / g protein. Yield of crude parotis extract: 88%.
5. példa kg marha-pankreászból kapott vizes kivonatból, amely 8,5 millió KIÉ és 32,7 TIE aktivitást tartalmaz, 400 g őrölt, savval kezelt bentonitra adszorbeáltatjuk a polipeptidet. A leoldást 4 liter olyan oldószereleggyel végezzük, amely 60% dioxánt és 40% vizes sósavat tartalmaz, az elegy pH-ját 2,5-re állítjuk be és a pH-értéket az egy órán át tartó keverés közben több alkalommal 2,5-re korrigáljuk 2 n sósavoldat adagolásával. Az eluátumból a hatóanyagot háromszoros térfogatú acetonnal kicsapjuk, a csapadékot elkülönítjük, és megszárítjuk. A termék 6,8 millió KIÉ és 26,1 TIE összaktivitást tartalmaz, 2,1 millió KIE/g és 8,2 TIE/g fehéije tisztaságban; a nyers pankreász-kivonat aktivitására számított hozam: 80%.EXAMPLE 5 A polypeptide was adsorbed on 400 g of ground acid-treated bentonite from an aqueous extract of kg bovine pancreas containing 8.5 million CIs and 32.7 TIE activity. Dissolution is carried out with 4 liters of a mixture of 60% dioxane and 40% aqueous hydrochloric acid, the pH of the mixture is adjusted to 2.5 and the pH is repeated several times with stirring for one hour. adjust by addition of 2N hydrochloric acid. The eluate was precipitated with three volumes of acetone, and the precipitate was collected and dried. The product contains total activity of 6.8 million CIUs and 26.1 TIEs, with a purity of 2.1 million CIU / g and 8.2 TIE / g protein; Yield for crude pancreas extract: 80%.
6. példa kg marhatüdőből kapott 50 liter vizes kivonatból, amely 17 millió KIÉ és 65 TIE aktivitású polipeptidetExample 6: 50 liters of aqueous extract from kg bovine lung containing 17 million CIF and 65 TIE activity polypeptides
183 432 tartalmaz, 400 g savval kezelt bentonittal adszorbeáljuk az inhibitor-polipeptidet. Az adszorpció megtörténte után a bcntonitot elkülönítjük, majd a 4 liter 90% dimetii-formamidot és 10% vizet tartalmazó eleggyel 1 órán át keverjük, miközben 2 n sósav adagolásával az elegy pH-ját 3,0 értéken tartjuk. Ezután a bentonitot szűréssel elkülönítjük. A szűrlethez két és félszeres térfogatú acetont adunk, a kivált csapadékot szűrjük, 400 ml acetonnal átmossuk, majd megszárítjuk. Ezután az 1. példában megadott módon 90%-os etanolban a hatóanyag-polipeptidet oldjuk és az oldatból acetonnal kicsapjuk. A termék 14 millió KIÉ és 54 TIE aktivitást tartalmaz. 2,6 millió KIE/g és 10 TIE/g fehérje tisztaságban. A nyers szervkivonat aktivitására számított hozam; 82%.183,432 contains 400 g of acid-treated bentonite to adsorb the inhibitor polypeptide. After adsorption, the btontonite was collected and stirred with 4 liters of 90% dimethylformamide and 10% water for 1 hour while maintaining the pH of the mixture at 3.0 with 2N hydrochloric acid. The bentonite is then isolated by filtration. The filtrate was treated with two and a half volumes of acetone, and the precipitate was filtered off, washed with 400 ml of acetone and dried. The active compound polypeptide was then dissolved in 90% ethanol as in Example 1 and precipitated from the solution with acetone. The product contains 14 million ICUs and 54 TIE activities. 2.6 million KIE / g and 10 TIE / g protein purity. Yield calculated for activity of crude organ extract; 82%.
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU130481A HU183432B (en) | 1981-05-12 | 1981-05-12 | Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU130481A HU183432B (en) | 1981-05-12 | 1981-05-12 | Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU183432B true HU183432B (en) | 1984-05-28 |
Family
ID=10953798
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU130481A HU183432B (en) | 1981-05-12 | 1981-05-12 | Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
HU (1) | HU183432B (en) |
-
1981
- 1981-05-12 HU HU130481A patent/HU183432B/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4264738A (en) | Process for purification of proteolytic enzymes | |
DE2518352C2 (en) | ||
HU198085B (en) | Process for producing new hirudine derivatives with anticoagulant effect and pharmaceutical compositions comprising same as active ingredient | |
DK173231B1 (en) | Method for Extraction of Glycopeptidic Antibiotics | |
US3715345A (en) | Glucagon separation process | |
US4769474A (en) | Process for purifying tryptophane | |
Chen et al. | Primary structure of major outer-membrane protein I (ompF protein, porin) of Escherichia coli B/r | |
Butler et al. | Importance of the molecular weight of humic and fulvic acids in determining their effects on protease activity | |
US4440753A (en) | Purification of glycopeptide antibiotics using non-functional resins | |
CA1093554A (en) | Process for producing d,1-5-methyltetrahy-drofolic acid and its salts | |
EP0097057B1 (en) | Method of producing human epidermal growth factor | |
IE883393L (en) | A process for the isolation and purification of hirudin | |
CA2126082A1 (en) | Separation of amino acids, amino-acid-based monomer, and process for the preparation thereof, as well as polymer material and process for the preparation thereof | |
EP0292729B1 (en) | Process for solid phase peptide synthesis | |
AU651482B2 (en) | Improved vancomycin precipitation process | |
Funk et al. | Affinity Chromatographic Purification of Papain a Reinvestigation | |
HU183432B (en) | Process for the specific elution of polypeptides with callicreine-inhiaitor and trypsine-inhibitor activity from adsorbents of silicate type | |
DE2509482C2 (en) | Process for the preparation of the kallikrein trypsin inhibitor from bovine lung | |
CN112898172B (en) | Synthesis method of amphiphilic functional group compound capable of being enzymolyzed by carboxypeptidase | |
US3809748A (en) | Kallikrein isolation and purification | |
JPS63253057A (en) | Production of refined amino acid | |
JPH0342280B2 (en) | ||
US4868285A (en) | Antibiotic production | |
JPS5840472B2 (en) | Method for removing kinin-degrading enzyme from kallikrein-containing solution | |
IE45013B1 (en) | Improvements in or relating to the preparation of insulin |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HU90 | Patent valid on 900628 | ||
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |