FR2956905A1 - METHOD OF IDENTIFYING ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED - Google Patents

METHOD OF IDENTIFYING ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED Download PDF

Info

Publication number
FR2956905A1
FR2956905A1 FR1051379A FR1051379A FR2956905A1 FR 2956905 A1 FR2956905 A1 FR 2956905A1 FR 1051379 A FR1051379 A FR 1051379A FR 1051379 A FR1051379 A FR 1051379A FR 2956905 A1 FR2956905 A1 FR 2956905A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
species
peaks
spectra
spectrum
animal species
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR1051379A
Other languages
French (fr)
Other versions
FR2956905B1 (en
Inventor
Michel Drancourt
Didier Raoult
Thi-Nguyen-Ny Tran
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Assistance Publique Hopitaux de Marseille APHM
Original Assignee
Assistance Publique Hopitaux de Marseille APHM
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Assistance Publique Hopitaux de Marseille APHM filed Critical Assistance Publique Hopitaux de Marseille APHM
Priority to FR1051379A priority Critical patent/FR2956905B1/en
Priority to PCT/FR2011/050257 priority patent/WO2011104462A1/en
Publication of FR2956905A1 publication Critical patent/FR2956905A1/en
Application granted granted Critical
Publication of FR2956905B1 publication Critical patent/FR2956905B1/en
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6803—General methods of protein analysis not limited to specific proteins or families of proteins
    • G01N33/6848—Methods of protein analysis involving mass spectrometry
    • G01N33/6851—Methods of protein analysis involving laser desorption ionisation mass spectrometry
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5082—Supracellular entities, e.g. tissue, organisms
    • G01N33/5088—Supracellular entities, e.g. tissue, organisms of vertebrates
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/46—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/46—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
    • G01N2333/465—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates from birds
    • H—ELECTRICITY
    • H01—ELECTRIC ELEMENTS
    • H01J—ELECTRIC DISCHARGE TUBES OR DISCHARGE LAMPS
    • H01J49/00—Particle spectrometers or separator tubes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

La présente invention concerne un procédé d'identification de l'espèce animale d'origine éventuelle des protéines contenues dans un échantillon de matière biologique à tester, caractérisé en ce que l'on réalise les étapes suivantes dans lesquelles : a/on réalise une préparation peptidique purifiée à partir d'un extrait de protéines totales dudit échantillon, et b/on réalise un spectre de ladite préparation par spectrométrie de masse dite de type MALDI TOF MS, et c/on compare le spectre obtenu à l'étape b/avec des spectres de références préalablement réalisés de différents extraits peptidiques de différentes espèces animales, et d/On identifie une espèce animale d'origine du dit échantillon testé comme étant celle d'une (des)dite(s) espèce(s) animale(s) de référence si on retrouve dans le spectre obtenu à l'étape b/ci-dessus, tous les pics d'un dit spectre de référence de l'étape c/ci-dessus.The present invention relates to a method for identifying the animal species of possible origin of the proteins contained in a sample of biological material to be tested, characterized in that the following steps are carried out in which: a / a preparation is carried out peptide purified from a total protein extract of said sample, and b / a spectrum of said preparation is made by mass spectrometry known as MALDI TOF MS type, and c / the spectrum obtained in step b / is compared with reference spectra previously made of different peptide extracts of different animal species, and d / One identifies an animal species of origin of said sample tested as that of one or more animal species (s) ) if we find in the spectrum obtained in step b / above, all the peaks of a said reference spectrum of step c / above.

Description

PROCEDE D'IDENTIFICATION DE L'ESPECE ANIMALE D'ORIGINE EVENTUELLE DES PROTEINES CONTENUES DANS UN ECHANTILLON A TESTER La présente invention concerne un procédé d'identification de l'espèce animale d'origine éventuelle des protéines contenues dans un échantillon de matière biologique à tester. On entend ici par "échantillon de matière biologique", aussi bien un prélèvement biologique suspecté de provenir d'une espèce animale indéterminée, qu'un prélèvement de matière alimentaire dont on veut déterminer les différentes sources animales des protéines qu'elle contient. L'identification précise des animaux au niveau de l'espèce est un point clé pour la recherche concernant la biologie des animaux ainsi que pour les sciences appliquées aux animaux, par exemple le suivi des espèces animales menacées, ou bien encore l'identification des espèces animales entrant dans la composition de l'alimentation humaine. De façon historique, l'identification des individus animaux était basée sur des critères purement morphologiques après une observation macroscopique des animaux. En réalité, l'identification morphologique est extrêmement limitée car des animaux de morphologie voisine peuvent appartenir à des espèces différentes. Dans certaines circonstances on ne dispose que de fragments d'individus et l'analyse morphologique ne permet pas d'attribuer ces fragments de façon certaine à une espèce animale donnée. C'est pourquoi, se sont développées les méthodes moléculaires basées sur l'analyse de l'ADN pour l'identification des animaux. Ces méthodes reposent sur l'amplification par un procédé connu par ailleurs comme «Polymerase Chain Reaction» (PCR) d'un ou de plusieurs fragments de l'ADN du génome de l'espèce animale. L'ADN amplifié est ensuite séquencé, la séquence obtenue est comparée avec des séquences contenues dans des bases électroniques de données. The present invention relates to a method for identifying the animal species of possible origin of the proteins contained in a biological sample of material to be tested. . The term "sample of biological material" is used here, as well as a biological sample suspected of coming from an indeterminate animal species, as well as a sample of food material whose various animal sources of the proteins it contains are to be determined. The precise identification of animals at the species level is a key point for research on animal biology as well as for animal sciences, for example the monitoring of endangered animal species, or the identification of species. animals used in the composition of human nutrition. Historically, the identification of animal individuals was based on purely morphological criteria after macroscopic observation of the animals. In reality, morphological identification is extremely limited because animals of similar morphology can belong to different species. In certain circumstances, only fragments of individuals are available and morphological analysis does not allow these fragments to be definitively assigned to a given animal species. This is why molecular methods based on DNA analysis have been developed for the identification of animals. These methods are based on amplification by a method known elsewhere as "Polymerase Chain Reaction" (PCR) of one or more fragments of the DNA of the genome of the animal species. The amplified DNA is then sequenced, the sequence obtained is compared with sequences contained in electronic databases of data.

Plusieurs séquences d'ADN ont été utilisées comme cible de l'identification moléculaire essentiellement la séquence du gène cytochrome b qui est utilisée comme référence internationale pour l'identification moléculaire des animaux. Le gène cytochrome b est un gène mitochondrial dont le nombre de copies par cellule animale est donc très important augmentant ainsi la sensibilité de cette méthode d'identification; par ailleurs, il a été montré que la séquence du gène cytochrome b était spécifique de l'espèce animale. La séquence du gène cytochrome b constitue une variété de code-barre moléculaire pour l'identification des espèces animales [Lane N. Nature 2009 ; 462 :272-4]. Cependant, l'analyse moléculaire de la séquence du gène cytochrome b est limitée par la dégradation taphonomique que subit l'ADN au cours du temps pour des restes animaux enterrés conduisant ainsi à des faux négatifs. Par ailleurs, toutes les méthodes basées sur l'amplification d'ADNpar PCR sont sujettes à des risques importants de contamination et de faux positifs. Il est donc nécessaire de développer d'autres techniques d'identification des animaux faisant appel à des méthodes ne dépendant pas de l'opérateur (méthodes objectives), mais permettant une connaissance cumulée sous forme de bases de données. Il a été montré que d'autres molécules organiques pouvaient être utilisées comme marqueurs d'identification animale. Parmi ces molécules organiques, les protéines présentent l'avantage d'avoir une séquence et éventuellement une structure résistant aux dégradations après la mort de l'animal. Actuellement, le séquençage des acides aminés qui constituent une protéine peut être utilisé pour identifier des espèces animales et cela est utilisé par exemple en paléontologie. Toutefois, ces techniques sont limitées à l'analyse d'un tout petit nombre de protéines, essentiellement les kératines [Hollemeyer K et al. Anal. Chem. 2002, 74, 5960-8] et l'albumine. En outre, les techniques de séquençage des protéines sont des techniques extrêmement sophistiquées demandant un équipement très spécifique et une expertise rare dans ce domaine. Several DNA sequences have been used as a target for molecular identification essentially the cytochrome b gene sequence which is used as an international reference for the molecular identification of animals. The cytochrome b gene is a mitochondrial gene whose copy number per animal cell is therefore very important, thus increasing the sensitivity of this identification method; Moreover, it has been shown that the cytochrome b gene sequence is specific to the animal species. The cytochrome b gene sequence constitutes a variety of molecular bar-code for the identification of animal species [Lane N. Nature 2009; 462: 272-4]. However, the molecular analysis of the cytochrome b gene sequence is limited by the taphonomic degradation that DNA undergoes over time for buried animal remains, thus leading to false negatives. In addition, all methods based on amplification of DNA by PCR are subject to significant risks of contamination and false positives. It is therefore necessary to develop other animal identification techniques using methods that do not depend on the operator (objective methods), but that allow cumulative knowledge in the form of databases. It has been shown that other organic molecules can be used as animal identification markers. Among these organic molecules, the proteins have the advantage of having a sequence and possibly a structure resistant to degradation after the death of the animal. Currently, the sequencing of amino acids that constitute a protein can be used to identify animal species and this is used for example in paleontology. However, these techniques are limited to the analysis of a very small number of proteins, essentially keratins [Hollemeyer K et al. Anal. Chem. 2002, 74, 5960-8] and albumin. In addition, protein sequencing techniques are extremely sophisticated techniques requiring very specific equipment and rare expertise in this field.

Au cours de leurs travaux de recherches sur des échantillons anciens de tissus d'animaux, qui avaient pour objectif de détecter des micro-organismes, les inventeurs ont observé de façon inattendue qu'il était possible d'obtenir des spectres de peptides en utilisant une variété particulière de spectrométrie de masse appelée «matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight» (MALDI-TOF). De façon encore plus inattendue, les inventeurs ont observé que les profils peptidiques obtenus par l'analyse par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF de certains tissus animaux permettaient d'obtenir des spectres de peptides spécifiques de l'espèce animale. A partir de ces observations inattendues, les inventeurs ont développé un protocole expérimental permettant de tester l'hypothèse que l'analyse de profils peptidiques obtenus à partir de certains tissus mous permettait d'identifier l'espèce animale de l'individu d'où était extraits ces tissus et montrer ainsi que l'analyse des profils peptidiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF, constituait une nouvelle méthode d'identification spécifique des espèces animales. L'identification des animaux par l'analyse des profils peptidiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF offre des avantages sur les méthodes actuellement disponibles pour l'identification des espèces animales. Premièrement, elle ne repose pas sur l'observation morphologique ni macroscopique ni microscopique et peut donc être appliquée non seulement à des individus intègres mais aussi à des fragments d'animaux. Deuxièmement, il suffit de disposer d'un petit fragment de tissu dont le volume est toujours disponible quelques soient les circonstances y compris lorsqu'il s'agit d'analyser la composition en espèces animales d'aliments contenant de tels tissus animaux broyés; ou qu'il s'agisse d'identifier des espèces animales en paléontologie et en anthropologie. Troisièmement, il s'agit d'une technique rapide puisque l'identification peut être obtenue en 24 heures c'est-à-dire dans un délai sensiblement inférieur au délai actuel d'obtention des séquences d'ADN. Quatrièmement, la méthode est extrêmement moins coûteuse puisque après investissement dans l'achat d'un spectromètre de masse, le coût d'une analyse est inférieur de 1 centime d'euro. Cinquièmement, cette approche permet de constituer des bases de données à partir desquelles les différents utilisateurs peuvent identifier les espèces animales dont les représentants sont contenus dans la base de données, et augmenter par eux-mêmes la base de données en incrémentant des nouveaux profils et des nouvelles espèces animales. Enfin, contrairement aux méthodes actuelles reposant sur l'analyse d'une seule protéine, l'approche développée selon la présente invention consiste à analyser des peptides issus de toutes les protéines présentes dans l'échantillon initial en garantissant la sensibilité et la spécificité de l'approche. La présente invention fournit donc un procédé d'identification de l'espèce animale d'origine éventuelle des protéines contenues dans un échantillon de matière biologique à tester, caractérisé en ce que l'on réalise les étapes suivantes dans lesquelles : a/ on réalise une préparation peptidique purifiée, lesdits peptides étant obtenus, de préférence par digestion enzymatique, à partir d'un extrait de protéines totales dudit échantillon, et b/ on réalise un spectre de ladite préparation par spectrométrie de masse dite de type MALDI TOF MS ("Matrix-Assisted-Laser Desorbtion-Ionisation-Time-Of-Flight"), et c/ on compare le spectre obtenu à l'étape b/avec : c.1/ au moins un spectre de référence d'un extrait peptidique purifié d'un échantillon d'une espèce animale de référence particulière, préalablement réalisé, si on recherche seulement à identifier si ledit échantillon testé comprend des protéines d'une dite espèce animale particulière, ou c.2/ une pluralité de spectres de références préalablement réalisés de différents extraits peptidiques purifiés d'échantillons de respectivement différentes espèces animales de référence constituant une banque de spectres de référence desdites différentes espèces animales, si on cherche à identifier si ledit échantillon testé comprend des protéines d'une espèce animale sélectionnée parmi un groupe d'espèces animales dont au moins un spectre est inclus dans la banque de spectres de référence, et d/ On identifie une espèce animale d'origine du dit échantillon testé comme étant celle d'une (des)dite(s) espèce(s) animale(s) de référence si on retrouve dans le spectre obtenu à l'étape b/ ci-dessus, tous les pics caractéristiques d'un dit spectre de référence de l'étape c/ ci-dessus. In their research on old animal tissue samples, which were intended to detect microorganisms, the inventors unexpectedly observed that it was possible to obtain peptide spectra using a particular variety of mass spectrometry called matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight (MALDI-TOF). Even more unexpectedly, the inventors have observed that the peptide profiles obtained by MALDI-TOF mass spectrometric analysis of certain animal tissues made it possible to obtain peptide spectra specific for the animal species. From these unexpected observations, the inventors have developed an experimental protocol making it possible to test the hypothesis that the analysis of peptide profiles obtained from certain soft tissues makes it possible to identify the animal species of the individual from which was extracted these tissues and show that the analysis of peptide profiles by MALDI-TOF mass spectrometry, was a new method of specific identification of animal species. The identification of animals by the analysis of peptide profiles by MALDI-TOF mass spectrometry offers advantages over the methods currently available for the identification of animal species. Firstly, it is not based on morphological or macroscopic or microscopic observation and can therefore be applied not only to honest individuals but also to fragments of animals. Secondly, it is sufficient to have a small piece of tissue whose volume is always available whatever the circumstances, including when it comes to analyzing the composition of animal species of food containing such crushed animal tissues; or to identify animal species in paleontology and anthropology. Thirdly, it is a fast technique since the identification can be obtained in 24 hours, that is to say in a time substantially lower than the current time for obtaining the DNA sequences. Fourthly, the method is extremely less expensive since after investing in the purchase of a mass spectrometer, the cost of an analysis is less than 1 euro cent. Fifth, this approach allows databases to be created from which different users can identify the animal species whose representatives are contained in the database, and increase the database by incrementing new profiles and data sets. new animal species. Finally, unlike current methods based on the analysis of a single protein, the approach developed according to the present invention consists in analyzing peptides derived from all the proteins present in the initial sample while ensuring the sensitivity and specificity of the protein. 'approach. The present invention therefore provides a method for identifying the animal species of possible origin of the proteins contained in a sample of biological material to be tested, characterized in that the following steps are carried out in which: a / a purified peptide preparation, said peptides being obtained, preferably by enzymatic digestion, from an extract of total proteins of said sample, and b / a spectrum of said preparation is carried out by mass spectrometry known as MALDI TOF MS ("Matrix -Assisted-Laser Desorbtion-Ionization-Time-Of-Flight "), and c / the spectrum obtained in step b / is compared with: c.1 / at least one reference spectrum of a purified peptide extract of a sample of a particular reference animal species, previously made, if it is only necessary to identify whether said tested sample comprises proteins of a said particular animal species, or c.2 / a plurality of previously made reference spectra of different purified peptide extracts of samples of respectively different reference animal species constituting a reference spectra library of said different animal species, if it is sought to identify whether said tested sample comprises proteins of a animal species selected from a group of animal species of which at least one spectrum is included in the reference spectra library, and d / An animal species of origin of said tested sample is identified as that of one of said (s) reference animal species if we find in the spectrum obtained in step b / above, all the characteristic peaks of a said reference spectrum of step c / above .

Selon une autre caractéristique particulière, à l'étape cl, on réalise le(s)dit(s) spectre(s) de référence à partir d'échantillon(s) d'au moins un tissu mou de dite(s) espèce(s) animale(s) de référence, et, à l'étape d/, on identifie un dit tissu mou d'une espèce animale d'origine dudit échantillon testé comme étant un tissu d'une espèce animale de référence. Ces tissus mous présentent l'avantage de permettre de préparer facilement des suspensions liquides en vue de leur traitement à l'étape a/ pour préparer et purifier desdites préparations peptidiques. Plus particulièrement, lesdits tissus mous sont choisis parmi les tissus musculaires, adipeux, cutanés, sanguins, pulmonaires, hépatiques, et, le cas échéant, de pulpe dentaire. Plus particulièrement encore, lesdits tissus mous sont choisis parmi la pulpe dentaire pour les espèces mammifères et les tissus musculaires pour des espèces animales choisies parmi oiseaux. According to another particular characteristic, in step c1, said reference spectrum (s) are made from sample (s) of at least one soft tissue of said species (s) ( s) reference animal (s), and in step d /, a said soft tissue of an animal species of origin of said sample tested is identified as a tissue of a reference animal species. These soft tissues have the advantage of making it possible to easily prepare liquid suspensions for their treatment in step a / to prepare and purify said peptide preparations. More particularly, said soft tissues are chosen from muscle, adipose, cutaneous, blood, pulmonary, hepatic and, where appropriate, dental pulp tissues. More particularly, said soft tissues are selected from dental pulp for mammalian species and muscle tissue for selected animal species among birds.

Selon d'autres caractéristiques préférées du procédé de l'invention: - A l'étape a:, on réalise une préparation peptidique présentant une concentration peptidique d'au moins 0,1 mg/ml. - A l'étape b/ et cl, on réalise des spectres dont les pics sont définis par une paire de coordonnées composés d'un rapport masse/charge (m/z), en tant que coordonnée en abscisses, et d'une intensité absolue relative, en tant que coordonnées en ordonnés, le rapport m/z étant de 500 à 10 000, de préférence de 900 à 3 500. - Aux étapes b/ et cl, on ne prend en compte les spectres d'échantillons testés et de dits échantillons d'espèce(s) de référence que si lesdits spectres présentent un score de qualité supérieure à 2, ledit score de qualité étant constitué de l'addition des deux notes ni et n2, chacune ayant une valeur de 0 à 6 avec : - ni est la note attribuée en fonction du nombre de pics caractéristiques dudit spectre n, avec n1=0pour n<_8 ni = 1 pour 8<n<_27 . ni = 2 pour 27<n<_43 ni = 3 pour 43<n<_78 ni = 4 pour 78<n<_86 . ni = 5 pour 86<n<_110 ni = 6 pour 110<n, et - n2 est la note attribué en fonction de la valeur du rapport signal/bruit (Rmax) du pic de plus grande intensité dudit spectre, avec . n2 = 0 pour Rmax<_6,8 . n2 = 1 pour 6,8<Rmax<_26,8 . n2 = 2 pour 26,8<Rmax<_52,6 . n2 = 3 pour 52,6<Rmax<_208,6 . n2 = 4 pour 208,2<Rmax<_398,6 . n2 = 5 pour 398,6<Rmax<_1 092,2 . n2 = 6 pour 1 092,2<Rmax. - À l'étape c/ de comparaison, on compare le spectre obtenu avec des spectres de référence d'une dite banque comprenant : 1/- les spectres différents d'échantillons de dites espèces animales de référence, et 2/- desquels ont été retirés les pics de spectres d'échantillons peptidiques provenant d'un matérial ne contenant pas des protéines utilisées dans les étapes d'extraction et/ou de purification à l'étape a/, notamment des pics d'autolyse de la trypsine, et 3/- desquels ont été retirés les pics de kératine. Ces spectres 2/ et 3/ constituent des témoins négatifs et, à ce titre, les pics qu'ils contiennent sont considérés comme non caractéristiques, donc non pris en compte le cas échéant à l'étape d/ si on les retrouve dans les spectres de l'échantillon testé. Plus particulièrement, à titre de témoin négatif, on réalise des spectres de préparations peptidiques résultant de l'autolyse de l'enzyme, de préférence la trypsine, utilisée pour ladite digestion enzymatique de l'étape a/, et des spectres provenant de la digestion enzymatique de protéines d'une colonne de purification utilisée à l'étape a/. Dans un mode de réalisation particulier, aux étapes b/ et c/, on réalise les spectres de référence comprenant les spectres de pulpe dentaire des 13 espèces mammifères de référence choisies parmi les espèces suivantes : homme (Homo sapiens), boeuf (Bos taurus), chèvre (Capra hircus), dromadaire (Camelus dromedarius), sanglier (Sus scrofa), cochon (Sus scrofa subsp. domesticus), chevreuil (Capreolus capreolus), lapin (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), cochon d'Inde (Cavia porcellus), chat (Felix catus), chien (Canis familiaris), renard (Vulpes vulpes), et les spectres de tissus musculaires des 4 espèces d'oiseaux choisis parmi les espèces suivantes : canard (Cairina moschata), caille (Cotunix cotunix), dinde (Meleagris gallopavo) et poulet (Gallus gallus). La présente invention s'applique également à la détection d'autres espèces animales entrant dans la composition de l'alimentation humaine, tels que, par exemple, le mouton, le lièvre, différentes espèces de mammifères constituant du gibier de chasse; différentes espèces de volailles dont l'oie; différentes espèces de poissons. Plus particulièrement encore, aux étapes b/ et c/, on compare le spectre de l'échantillon testé avec les spectres de référence comprenant des spectres de pulpe dentaire de 13 espèces mammifères et des spectres de tissus musculaires de 4 espèces d'oiseaux, comprenant les pics caractéristiques mentionnés dans les tableaux suivants : - tableau 1 : 40 pics pour l'espèce Homo sapiens, - tableau 2 : 42 pics pour l'espèce Bos taurus, - tableau 3 : 16 pics pour l'espèce Felix catus, - tableau 4 : 27 pics pour l'espèce Capra hircus, - tableau 5 : 34 pics pour l'espèce Canis familiaris, - tableau 6 : 19 pics pour l'espèce Capreolus capreolus, - tableau 7 : 23 pics pour l'espèce Cavia porcellus, - tableau 8 : 15 pics pour l'espèce Rattus rattus, - tableau 9 : 27 pics pour l'espèce Vulpes vulpes, - tableau 10 : 27 pics pour l'espèce Camelus dromedarius, - tableau 11 : 11 pics pour l'espèce Sus scrofa, - tableau 12 : 12 pics pour l'espèce Sus scrofa subsp. domesticus, - tableau 13 : 29 pics pour l'espèce Ocryctolagus cuniculus, - tableau 14 : 27 pics pour l'espèce Cairina moschata, - tableau 15 : 34 pics pour l'espèce Cotunix cotunix, - tableau 16 : 51 pics pour l'espèce Meleagris gallopavo, - tableau 17 : 35 pics pour l'espèce Gallus gallus. Les tableaux 1 à 17 sont décrits dans les exemples 1 et 2 ci- après. Dans les tableaux 1 à 17, la première colonne numérote les pics caractéristiques, et les paramètres suivants des deuxième, troisième et quatrième colonnes ont les significations suivantes pour chaque pic : - m/z : rapport masse/charge en abscisse du spectre, - S/N : rapport (intensité du pic/intensité du bruit de fond), La présente invention fournit également un programme d'ordinateur comportant des instructions pour l'exécution des étapes b/ à d/ de dit procédé d'identification selon linvention. La présente invention fournit également un support d'enregistrement lisible par un ordinateur sur lequel est enregistré un programme d'ordinateur selon l'invention. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention ressortiront mieux à la lecture des exemples de réalisation fait en référence aux figures 1 à 18 dans lesquelles : - les figures 1 à 13 représentent des spectres de pulpe dentaire des espèces animales mammifères suivantes : . figure 1 : Bos taurus . figure 2 : Felix catus . figure 3 : Canis familiaris . figure 4 : Capreolus capreolus . figure 5 : Capra hircus . figure 6 : Cavia porcelus . figure 7 : Camelus dromaderius . figure 8 : Ocryctolagus cuniculus . figure 9 : Rattus rattus . figure 10 : Vulpes vulpes . figure 11 : Sus scrofa domesticus . figure 12 : Sus scrofa . figure 13 : Homo sapiens - les figures 14 à 17 représentent des spectres de préparations peptidiques obtenues à partir de tissus musculaires d'espèces animales d'oiseaux, à savoir : . figure 14 : Cotunix cotunis . figure 15 : Cairina moschata . figure 16 : Meleagris gallopavo . figure 17 : Gallus gallus - la figure 18 représente une installation 1 d'analyse et comparaison de spectres 5 selon le procédé de l'invention, comprenant un dispositif de spectrométrie de masse de type MALDI-TOF 2 coopérant avec un ordinateur 3 mettant en oeuvre un logiciel d'analyse et comparaison de spectres selon un algorithme dans lequel les étapes suivantes sont réalisées : . étape El : analyse d'une pluralité de spectres de l'échantillon testé acquis par le spectromètre de masse 2 : calcul des notes ni et n2 des spectres relatives à la qualité des spectres et sélection des spectres pour lesquels ni+n2 est supérieur à 2, . étape E2 : comparaison des spectres sélectionnés à l'étape El, avec des spectres de témoins négatifs et détermination des pics caractéristiques des spectres sélectionnés, étape E3 : comparaison des spectres acquis sélectionnés, ayant nl+n2 supérieur à 2, comparés avec des spectres de référence des échantillons des espèces de référence tels que ceux des tableaux 1 à 17 et figures 1 à 17, et calcul des scores d'identification entre spectres analysés et spectres de référence, et . étape E4 : identification d'une espèce animale si les spectres analysés sélectionnés présentent un score d'identification est supérieur ou égal à 1,8 par rapport à un des spectres de référence de ladite espèce animale. Exemple 1. Identification des espèces mammifères par analyse de spectres peptidiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF sur des échantillons peptidiques obtenus à partir de la pulpe dentaire. Les inventeurs ont choisi d'analyser le profil peptidique de la pulpe dentaire qui est un tissu spécifique des mammifères [Tran-Hung L. PLoS ONE 2007 ; 2 :e1062]. Ce choix est basé sur les propriétés spécifiques de ce tissu, qui est un tissu conjonctif très richement vascularisé comportant plusieurs types de cellules, entièrement protégé de l'environnement extérieur par la chambre pulpaire de la dent, laquelle constitue un habitacle particulièrement résistant protégeant ainsi la pulpe dentaire de la destruction taphonomique et de la destruction par la chaleur observée par exemple au cours de la crémation [Myers SL et al. J Forensic Sci 1999, 44, 805-9]. Ce point est important pour les scientifiques désirant identifier les restes humains ou animaux de charniers comportant des corps qui ont subi une crémation. Pour ce travail les inventeurs ont collecté les dents des 37 individus représentant 13 espèces mammifères : homme (Homo sapiens) (les dents ont été collectées auprès des praticiens dentistes, les dents ont été retirées dans le cadre d'un soin imposé par l'état dentaire du patient, après consentement éclairé, signé par le patient), boeuf (Bos taurus), chèvre (Capra hircus), dromadaire (Camelus dromedarius), sanglier (Sus scrofa), cochon (Sus scrofa subsp. domesticus), chevreuil (Capreolus capreolus), lapin (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), cochon d'Inde (Cavia porcellus), chat (Felix catus), chien (Canis familiaris), renard (Vulpes vulpes). Pour chacun de ces individus, on a extrait la pulpe dentaire, puis l'ADN total de la pulpe, selon un protocole publié [Aboudharam G, Drancourt M, Raoult D. Culture of C. burnetii from the dental pulp of experimentally infected guinen pigs. Microb. Pathog. 2004 ; 36:349-50] consistant en une ouverture longitudinale de la dent après décontamination externe, puis recueil de la pulpe dentaire par raclage de l'hemi-chambre pulpaire à l'aide d'instruments stériles, dans un tube stérile. According to other preferred features of the process of the invention: In step a:, a peptide preparation having a peptide concentration of at least 0.1 mg / ml is prepared. In step b / and cl, spectra are produced whose peaks are defined by a pair of coordinates composed of a mass / charge ratio (m / z), as a coordinate on the abscissa, and an intensity Relative absolute, as ordinate coordinates, the m / z ratio being from 500 to 10,000, preferably from 900 to 3500. - In steps b / and cl, the spectra of tested samples are taken into account. of said species of reference samples only if said spectra have a quality score greater than 2, said quality score consisting of the addition of the two notes ni and n2, each having a value of 0 to 6 with : - ni is the score given according to the number of characteristic peaks of said spectrum n, with n1 = 0 for n <_8 ni = 1 for 8 <n <_27. ni = 2 for 27 <n <_43 ni = 3 for 43 <n <_78 ni = 4 for 78 <n <_86. ni = 5 for 86 <n <_110 ni = 6 for 110 <n, and - n2 is the score given according to the value of the signal-to-noise ratio (Rmax) of the peak of greater intensity of said spectrum, with. n2 = 0 for Rmax <_6.8. n2 = 1 for 6.8 <Rmax <_26.8. n2 = 2 for 26.8 <Rmax <_52.6. n2 = 3 for 52.6 <Rmax <_208.6. n2 = 4 for 208.2 <Rmax <= 398.6. n2 = 5 for 398.6 <Rmax <1.02.2. n2 = 6 for 1 092.2 <Rmax. In step c / of comparison, the spectrum obtained is compared with reference spectra of a said bank comprising: 1 / - the different spectra of samples of said reference animal species, and 2 / - of which have been removed spectral peaks of peptide samples from a material not containing proteins used in the steps of extraction and / or purification in step a /, including trypsin autolysis peaks, and 3 from which the keratin peaks were removed. These spectra 2 / and 3 / constitute negative controls and, as such, the peaks they contain are considered as non-characteristic, therefore not taken into account if necessary in step d / if they are found in the spectra of the sample tested. More particularly, as a negative control, spectra of peptide preparations resulting from the autolysis of the enzyme, preferably trypsin, used for said enzymatic digestion of step a / and spectra derived from digestion are carried out. enzymatic protein of a purification column used in step a /. In a particular embodiment, in steps b / and c /, the reference spectra comprising the dental pulp spectra of the 13 reference mammal species chosen from the following species are made: human (Homo sapiens), beef (Bos taurus) , goat (Capra hircus), camel (Camelus dromedarius), wild boar (Sus scrofa), pig (Sus scrofa subsp. domesticus), roe deer (Capreolus capreolus), rabbit (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), guinea pig (Cavia porcellus), cat (Felix catus), dog (Canis familiaris), fox (Vulpes vulpes), and muscle tissue spectra of the 4 bird species selected from the following species: duck (Cairina moschata), quail (Cotunix) cotunix), turkey (Meleagris gallopavo) and chicken (Gallus gallus). The present invention is also applicable to the detection of other animal species used in the composition of the human diet, such as, for example, sheep, hare, different species of mammals constituting hunting game; different species of poultry including goose; different species of fish. More particularly, in steps b / and c /, the spectrum of the tested sample is compared with reference spectra comprising pulp spectra of 13 mammalian species and muscle tissue spectra of 4 bird species, comprising the characteristic peaks mentioned in the following tables: - Table 1: 40 peaks for the species Homo sapiens, - Table 2: 42 peaks for the species Bos taurus, - Table 3: 16 peaks for the species Felix catus, - Table 4: 27 peaks for the species Capra hircus, - Table 5: 34 peaks for the species Canis familiaris, - Table 6: 19 peaks for the species Capreolus capreolus, - Table 7: 23 peaks for the species Cavia porcellus, - Table 8: 15 peaks for Rattus rattus, - Table 9: 27 peaks for Vulpes vulpes, - Table 10: 27 peaks for Camelus dromedarius, - Table 11: 11 peaks for Sus scrofa, - Table 12: 12 peaks for Sus scrofa subsp. domesticus, - Table 13: 29 peaks for the species Ocryctolagus cuniculus, - Table 14: 27 peaks for the species Cairina moschata, - Table 15: 34 peaks for the species Cotunix cotunix, - Table 16: 51 peaks for the species Meleagris gallopavo, - Table 17: 35 peaks for the species Gallus gallus. Tables 1 to 17 are described in Examples 1 and 2 below. In Tables 1 to 17, the first column numbers the characteristic peaks, and the following parameters of the second, third and fourth columns have the following meanings for each peak: - m / z: mass / load ratio on the abscissa of the spectrum, - S The present invention also provides a computer program comprising instructions for executing steps b / d of said identification method according to the invention. The present invention also provides a computer readable recording medium on which a computer program according to the invention is recorded. Other characteristics and advantages of the present invention will emerge more clearly on reading the exemplary embodiments made with reference to FIGS. 1 to 18 in which: FIGS. 1 to 13 show dental pulp spectra of the following mammalian animal species: Figure 1: Bos taurus. Figure 2: Felix catus. Figure 3: Canis familiaris. Figure 4: Capreolus capreolus. Figure 5: Capra hircus. Figure 6: Cavia porcelus. Figure 7: Camelus dromaderius. Figure 8: Ocryctolagus cuniculus. Figure 9: Rattus rattus. Figure 10: Vulpes vulpes. Figure 11: Sus scrofa domesticus. Figure 12: Sus scrofa. Figure 13: Homo sapiens - Figures 14 to 17 show spectra of peptide preparations obtained from muscle tissue of animal species of birds, namely: Figure 14: Cotunix cotunis. Figure 15: Cairina moschata. Figure 16: Meleagris gallopavo. FIG. 17: Gallus gallus - FIG. 18 represents an installation 1 for the analysis and comparison of spectra 5 according to the method of the invention, comprising a mass spectrometry device of the MALDI-TOF 2 type cooperating with a computer 3 implementing spectral analysis and comparison software according to an algorithm in which the following steps are performed: step E1: analysis of a plurality of spectra of the test sample acquired by the mass spectrometer 2: calculation of the notes n1 and n2 spectra relating to the quality of the spectra and selection of the spectra for which ni + n2 is greater than 2 ,. step E2: comparison of the spectra selected in step E1, with negative control spectra and determination of the characteristic peaks of the selected spectra, step E3: comparison of the selected acquired spectra, having n1 + n2 greater than 2, compared with spectra of reference samples of the reference species such as those of Tables 1 to 17 and Figures 1 to 17, and calculation of the identification scores between analyzed spectra and reference spectra, and. step E4: identification of an animal species if the selected analyzed spectra present an identification score is greater than or equal to 1.8 relative to one of the reference spectra of said animal species. Example 1. Identification of mammalian species by analysis of peptide spectra by MALDI-TOF mass spectrometry on peptide samples obtained from the dental pulp. The inventors have chosen to analyze the peptide profile of the dental pulp which is a specific tissue of mammals [Tran-Hung L. PLoS ONE 2007; 2: e1062]. This choice is based on the specific properties of this tissue, which is a very richly vascularized connective tissue with several types of cells, fully protected from the external environment by the pulp chamber of the tooth, which constitutes a particularly resistant interior thus protecting the skin. dental pulp of taphonomic destruction and destruction by heat observed for example during cremation [Myers SL et al. J Forensic Sci 1999, 44, 805-9]. This is important for scientists wishing to identify human remains or animals from mass graves with bodies that have been cremated. For this work the inventors collected the teeth of the 37 individuals representing 13 mammalian species: man (Homo sapiens) (the teeth were collected from the dentist practitioners, the teeth were removed as part of a care imposed by the state Patient's dental, after informed consent, signed by the patient), beef (Bos taurus), goat (Capra hircus), dromedary (Camelus dromedarius), wild boar (Sus scrofa), pig (Sus scrofa subsp domesticus), deer (Capreolus capreolus), rabbit (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), guinea pig (Cavia porcellus), cat (Felix catus), dog (Canis familiaris), fox (Vulpes vulpes). For each of these individuals, the dental pulp was extracted, then the total DNA of the pulp, according to a published protocol [Aboudharam G, Drancourt M, Raoult D. Culture of C. burnetii from the dental pulp of experimentally infected guinen pigs . Microb. Pathogenesis. 2004 ; 36: 349-50] consisting of a longitudinal opening of the tooth after external decontamination, then collection of the dental pulp by scraping the pulp hemi chamber using sterile instruments, in a sterile tube.

L'identification de séquences de référence des animaux a été réalisée par le séquençage d'un fragment de 307 paires de bases du gène du cytochrome b en utilisant les amorces L 14841 et H 15149 décrites dans la littérature [Kocher TD et al. Proc Natl Acad Sci. USA 1989; 86: 6196-6200]. On a vérifié, pour chacun des individus analysé, la détection d'une séquence partielle du gène cytochrome b de 307 pb présentant 100% de similarité (c'est-à-dire 100% d'identité de séquence) avec la séquence de référence pour la même espèce animale, permettant de confirmer sans aucun doute l'espèce animale de chacun de ces 37 individus. The identification of animal reference sequences was performed by sequencing a 307 base pair fragment of the cytochrome b gene using primers L 14841 and H 15149 described in the literature [Kocher TD et al. Proc Natl Acad Sci. USA 1989; 86: 6196-6200]. For each of the individuals analyzed, the detection of a partial sequence of the 307 bp cytochrome b gene with 100% similarity (i.e., 100% sequence identity) with the reference sequence was verified. for the same animal species, confirming undoubtedly the animal species of each of these 37 individuals.

A partir de la pulpe dentaire obtenue pour chacun de ces 37 individus, les protéines totales ont été extraites de façon connue par incubation de la pulpe dentaire avec 1 ml d'EDTA 500 mM pH 8,0 sous agitation à température ambiante pendant 24 heures, l'EDTA étant un chélateur du calcium qui favorise la dissociation des liaisons interprotéiques faisant intervenir le calcium. From the dental pulp obtained for each of these 37 individuals, the total proteins were extracted in a known manner by incubation of the dental pulp with 1 ml of 500 mM EDTA pH 8.0 with stirring at room temperature for 24 hours. EDTA is a calcium chelator that promotes the dissociation of interproteic bonds involving calcium.

Les protéines ont été soniquées pendant 1 minute puis centrifugées à 17.900 g pendant 40 min à température ambiante afin de les précipiter par centrifugation. Les protéines ont été ensuite dialysées toute la nuit, en utilisant 2 litres d'un tampon Tris-HCI 50 mM, pH 8,0;NaCl 150 mM afin de les purifier. On a ensuite quantifié la concentration des protéines par une méthode de quantification bien connue de l'homme de l'art la méthode de Bradford (Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgramm quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. The proteins were sonicated for 1 minute and then centrifuged at 17,900 g for 40 min at room temperature to precipitate by centrifugation. The proteins were then dialyzed overnight, using 2 liters of 50 mM Tris-HCl buffer, pH 8.0, 150 mM NaCl to purify them. The concentration of the proteins was then quantified by a method of quantification well known to those skilled in the art, the Bradford method (Bradford MM, A Rapid and Sensitive Method for the Quantitation of Micrograms of Protein Using the Principle of Protein dye binding, Anal.

Biochem. 1976 ; 72 :248-2554. Pour les analyses en spectrométrie de masse de type MALDI-TOF, 100 pL de cette suspension liquide ont été digérés par 100 pL d'une solution de trypsine à 12,5 ng/pL en présence de 50 mM de NH4HCO3 à 30°C pendant toute la nuit, pour obtenir une préparation peptidique. Les manipulations ont été réalisées en présence de contrôle négatif, ne contenant aucun extrait tissulaire animal. Les peptides produits de la digestion enzymatique ont été purifiés et concentrés en utilisant une colonne de purification par phase inverse C18 Zip Tips (Milipore MA) en suivant les instructions du fournisseur. Précisément 3 microlitres de peptides purifiés à une concentration > 1 mg/mL ont été déposés sur une plaque de spectrométrie de masse MPP anchorchip 384 TF Maldi stiplet (Bruker Daltonics GMBH, Leipzig, Allemagne). Dès que le dépôt peptidique a séché à température ambiante, 1 microlitre d'une solution de matrice de a-cyano-4-acide hydroxycinnamique (CCA) a été appliqué sur le dépôt et les échantillons peptidiques ont été analysés avec un spectromètre de masse pour spectrométrie de type MALDI-TOF de modèle Autoflex (Bruker Daltonics GMBH) dans un mode reflectron. La liste des pics a été établie automatiquement en utilisant le logiciel Flex analysis (Bruker Daltonics) utilisant les critères suivants : 1) nombre de pics (n) de poids (m/z avec z=1) compris entre 900 et 3.000 daltons, et 2) valeur maximale (Rmax) du rapport S/N = intensité du signal du pic de plus grande intensité/ intensité du bruit de fond, Rmax 3. Chacun de ces deux paramètres n et Rmax a été noté selon des notes ni et, respectivement, n2, de 0 à 6 listés dans les tableaux 5 suivants : Note ni Nombre de pics (n) 0 n8 1 8<n27 2 27<n43 3 43<n78 4 78<n 86 86<n110 6 110 < n Note n2 Rmax) 0 Rmax 6,8 1 6,8 < Rmax 26,8 2 26,8 < Rmax 52,6 3 52,6 < Rmax 208,2 4 208,2 < Rmax 398,6 5 398,6 < Rmax 1.092,2 6 1 092,2 < Rmax Pour chacun des profils peptidiques obtenus, on a calculé un score de qualité de spectres en additionnant les deux notes obtenues ni + n2 et en écartant les profils ayant un score de qualité 2. Utilisant cette méthode, on a constitué une banque de données comportant actuellement 279 spectres peptidiques de référence (environ 20 spectres pour chacune des 13 espèces animales) après avoir retiré les spectres contenant des pics contaminants observés dans les témoins négatifs. En effet, l'analyse de 100 spectres peptidiques obtenus avec 10 témoins négatifs (10 spectres par témoin) a permis d'observer 62 pics comprenant 7 pics liés à l'autolyse de la trypsine, 6 pics provenant de kératine et 49 pics non spécifiques provenant d'extrait peptidique issus de la colonne de purification par phase inverse utilisée pour la purification des peptides. Plus précisément, ces 49 pics non spécifiques sont obtenus à partir d'une solution ne contenant ni protéine, ni peptide, et traversant ladite colonne purifiés et concentrés comme décrit ci-dessus après avoir passé ladite colonne. Dans un deuxième temps, on a analysé en aveugle des extraits peptidiques obtenus à partir de pulpes dentaires d'individus comparés avec la base de données en vue de leur identification. On a déterminé la valeur de 1,8 comme la valeur limite inférieure du score d'identification donnée par le logiciel Flex Analysis (Bruker) qui analyse la ressemblance des spectres peptidiques :2 spectres sont considères comme provenant d'un même échantillon si leur score d'identification est supérieur a 1,8. Pour 49 échantillons de pulpes dentaires d'individus analysés en aveugle, 3 sur 49 (6%) n'ont pas permis d'obtenir un spectre, il a été noté que la concentration peptidique de ces échantillons était inférieure à 0,img/ml. On a obtenu un spectre pour 44 sur 46 (85,5%) échantillons qui présentaient une concentration peptidique > 0,1 mg/ml (P< 0,05, X2). Dans un échantillon de renard, le score de qualité de spectre n1+n2 < 2 n'a pas permis l'identification du fait de la mauvaise qualité du spectre. Dans un autre échantillon de renard, l'identification n'a pas pu être obtenue avec le seuil de score d'identification de 1,8 du logiciel utilisé dans ce travail. Dans les 44 autres cas, l'identification déterminée par l'analyse des spectres par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF était exacte avec des scores d'identification > 1,8, lors de la comparaison avec l'ensemble des spectres de référence. Ce résultat illustre que l'analyse de spectres peptidiques obtenus par extraction des protéines totales d'un tissu tel que la pulpe dentaire permet l'identification spécifique d'un individu mammifère au niveau de l'espèce. Des spectres illustratifs de la banque de spectres de référence pour les 13 espèces animales mentionnées ci-dessus sont donnés dans les figures 1 à 13. Dans la banque de référence utilisée pour la comparaison du spectre obtenu de l'échantillon à analyser, on a enregistré une pluralité, au moins une vingtaine de spectres par espèces animales, qui correspondent pour les 13 espèces animales mammifères suivantes à des pics aux valeurs m/z suivantes et d'intensités suivantes : Tableau 1 : HUMAIN/ Homo sapiens m/z S/N 1 1105,4691 ± 0,33 11,36 ± 4,82 2 1189,4838 ± 0,33 22,54 ± 13,7 3 1235,5162 ± 0,39 4,42 ± 1,15 4 1454,2891 ± 0,50 5,82 ± 3,43 5 1459,5939 ± 0,33 9,38 ± 4,38 6 1467,7537 ± 0,32 95,32 ± 26,22 7 1493,6722 ± 0,31 13,54 ± 5,40 8 1533,6058 ± 0,34 3,84 ± 1,63 9 1546,7168 ± 0,32 15,14 ± 7,75 10 1580,6741 ± 0,34 7,26 ± 2,62 11 1586,6692 ± 0,36 10,28 ± 4,30 12 1623,7253 ± 0,31 35,58 ± 12,60 13 1699,7733 ± 0,34 4,00 ± 1,11 14 1742,7811 ± 0,32 7,86 ± 1,72 15 1812,8048 ± 0,30 5,84 ± 2,26 16 1848,8149 ± 0,31 8,80 ± 5,40 17 1898,9629 ± 0,31 86,66 ± 34,18 18 1961,9419 ± 0,30 16,68 ± 10,56 19 2003,953 ± 0,30 14,82 ± 9,54 20 2027,9949 ± 0,36 6,10 ± 1,62 21 2062,0375 ± 0,33 11,34 ± 3,21 22 2081,0111 ± 0,31 40,04 ± 11,89 23 2090,0478 ± 0,35 8,02 ± 2,67 24 2096,9947 ± 0,33 4,98 ± 0,51 25 2104,9879 ± 0,36 6,32 ± 3,05 26 2120,9851 ± 0,30 6,98 ± 3,70 27 2188,0805 ± 0,33 5,06 ± 1,30 28 2198,9741 ± 0,41 7,40 ± 5,46 29 2232,0813 ± 0,37 7,56 ± 3,49 30 2265,1099 ± 0,34 10,06 ± 3,43 31 2281,1185 ± 0,42 5,22 ± 2,27 32 2284,1348 ± 0,38 12,44 ± 7,69 33 2410,1529 ± 0,39 11,18 ± 6,11 34 2513,2431 ± 0,43 11,40 ± 7,02 35 2801,4092 ± 0,52 5,46 ± 4,03 36 2833,4493 ± 0,51 8,38 ± 5,84 37 2847,4426 ± 0,53 19,68 ± 4,58 38 2885,5042 ± 0,52 17,22 ± 10,92 39 2957,5294 ± 0,61 17,44 ± 13,35 40 2960,487 ± 0,48 11,56 ± 9,83 Tableau 2 : BîUF/ Bos taurus m/z S/N 1 1032,4211 ± 0,5 3,25 ± 0,21 2 1088,3531 ± 0,36 3,57 ± 0,18 3 1095,4479 ± 0,40 5,7 ± 0,9 4 1105,4887 ± 0,39 22,25 ± 4,33 1208,5856 ± 0,41 19,67 ± 3,62 6 1264,5358 ± 0,47 6,5 ± 0,39 7 1267,6053 ± 0,47 7,63 ± 0,5 8 1280,6518 ± 0,47 6,93 ± 0,95 9 1295,5792 ± 0,43 5,36 ± 0,98 1435,6447 ± 0,43 27,84 ± 9,39 11 1443,6726 ± 0,43 16,41 ± 6,99 12 1459,66 ± 0,42 24,18 ± 5,29 13 1473,6181 ± 0,44 13,82 ± 5,39 14 1532,7175 ± 0,44 7,13 ± 2,11 1586,739 ± 0,45 17,5 ± 6,11 16 1648,7907 ± 0,42 12,87 ± 4,54 17 1655,7819 ± 0,40 7,12 ± 2,47 18 1676,7804 ± 0,45 8,59 ± 2,49 19 1783,7755 ± 0,52 6,24 ± 3,09 1848,8523 ± 0,43 18,53 ± 4,85 21 1921,9168 ± 0,42 10,37 ± 5,01 22 1937,9593 ± 0,43 25,7 ± 7,00 23 1975,9957 ± 0,43 24,25 ± 2,89 24 1997,0015 ± 0,43 21,09 ± 2,15 2019,9858 ± 0,43 13,46 ± 4,17 26 2043,8226 ± 0,52 7,61 ± 4,48 27 2199,0449 ± 0,46 11,18 ± 4,01 28 2253,1452 ± 0,47 16,33 ± 3,24 29 2294,108 ± 0,46 12,71 ± 4,18 30 2309,0977 ± 0,48 10,46 ± 4,55 31 2410,2159 ± 0,48 14,36 ± 4,23 32 2418,2116 ± 0,51 10,91 ± 5,11 33 2487,2879 ± 0,49 12,4 ± 4,79 34 2513,2775 ± 0,50 11,03 ± 5,39 35 2565,303 ± 0,48 9,5 ± 5,77 36 2644,3584 ± 0,49 9,3 ± 5,96 37 2660,3436 ± 0,50 7,35 ± 6,66 38 2703,264 ± 0,61 9,75 ± 6,39 39 2719,3375 ± 0,51 11,85 ± 6,06 40 2735,378 ± 0,48 10,07 ± 6,72 41 2853,5012 ± 0,53 11,84 ± 6,55 42 2869,5217 ± 0,50 19,65 ± 5,67 Tableau 3 : CHAT/ Felix catus m/z S/N 1 1105,4819 ± 0,40 16,4 ± 4,67 2 1409,731 ± 0,42 16,56 ± 4,24 3 1459,6161 ± 0,44 12,96 ± 6,41 4 1565,6834 ± 0,47 4,28 ± 0,3 1975,9085 ± 0,47 7,77 ± 2,99 6 2019,91 ± 0,48 7,55 ± 1,04 7 2052,993 ± 0,54 7,1 ± 1,22 8 2198,9268 ± 0,51 7,57 ± 4,15 9 2216,0137 ± 0,53 7,51 ± 1,12 2410,0995 ± 0,53 5,42 ± 1,22 11 2471,1682 ± 0,59 4,58 ± 0,51 12 2703,2172 ± 0,54 7,27 ± 1,34 13 2719,1695 ± 0,58 7,39 ± 1,02 14 2753,2787 ± 0,60 5,6 ± 0,89 20 15 2853,3585 ± 0,58 12,54 ± 2,56 16 2869,3346 ± 0,60 8,11 ± 2,80 Tableau 4 : CHEVRE/ Capra hircus m/z S/N 1 1105,4952 ± 0,45 20,51 ± 4,34 2 1152,6321 ± 0,54 7,09 ± 0,65 3 1283,6326 ± 0,47 26,79 ± 50,03 4 1287,6754 ± 0,53 4,73 ± 0,60 1435,6636 ± 0,47 19,69 ± 3,60 6 1459,6718 ± 0,48 14,56 ± 2,71 7 1473,6649 ± 0,49 6,65 ± 1,61 8 1585,7541 ± 0,52 15,9 ± 2,37 9 1586,8267 ± 0,56 4,79 ± 2,26 1648,8555 ± 0,49 18,34 ± 1,79 11 1743,8433 ± 0,57 4,01 ± 0,53 12 1779,9525 ± 0,54 5,01 ± 0,85 13 1821,8941 ± 0,60 4,14 ± 0,67 14 1848,8849 ± 0,522 6,01 ± 1,24 1931,0892 ± 0,61 5,54 ± 0,83 16 1976,0518 ± 0,51 15,48 ± 1,31 17 2020,0432 ± 0,53 12,90 ± 1,70 18 2089,0911 ± 0,56 4,01 ± 0,36 19 2105,0891 ± 0,53 5,95 ± 0,64 2199,0823 ± 0,54 8,71 ± 0,91 21 2232,1598 ± 0,52 8,75 ± 1,38 22 2409,233 ± 0,55 12,45 ± 3,27 23 2513,3102 ± 0,56 14,75 ± 2,13 24 2565,3132 ± 0,53 9,49 ± 1,24 2718,337 ± 0,57 5,86 ± 1,08 26 2766,393 ± 0,57 7,63 ± 0,80 27 2939,6513 ± 0,78 6,21 ± 1,91 Tableau 5 : CHIEN/ Canis familiaris m/z S/N 1 1076,439 ± 0,51 4,93 ± 1,13 2 1105,4702 ± 0,43 19,8 ± 3,93 3 1164,3948 ± 0,48 5,34 ± 1,40 4 1261,523 ± 0,49 5,09 ± 0,85 1459,6443 ± 0,49 15,01 ± 2,46 6 1469,7479 ± 0,49 30,59 ± 6,10 7 1473,6046 ± 0,50 6,08 ± 1,09 8 1566,7114 ± 0,51 5,30 ± 0,97 9 1576,7751 ± 0,51 7,65 ± 1,51 1586,726 ± 0,52 10,8 ± 2,54 11 1590,7751 ± 0,56 7,91 ± 2,28 12 1743,7845 ± 0,52 32,14 ± 5,29 13 1931,0999 ± 0,61 14,31 ± 3,97 14 1953,1315 ± 0,65 6,72 ± 1,55 1992,1264 ± 0,64 31,73 ± 4,78 16 2019,9884 ± 0,54 10,35 ± 1,54 17 2046,072 ± 0,59 11,29 ± 1,69 18 2105,0316 ± 0,61 8,55 ± 1,43 19 2194,0463 ± 0,63 4,89 ± 0,76 2198,9959 ± 0,59 12,08 ± 1,84 21 2216,0556 ± 0,65 4,33 ± 0,57 22 2261,2322 ± 0,62 3,78 ± 0,52 23 2271,3189 ± 0,68 4,14 ± 0,67 24 2330,1612 ± 0,71 4,69 ± 0,81 2350,1781 ± 0,57 23,29 ± 3,21 26 2497,2595 ± 0,63 3,64 ± 0,30 27 2785,3648 ± 0,66 3,79 ± 0,38 28 2820,4338 ± 0,68 5,03 ± 0,75 29 2847,4481 ± 0,64 56,14 ± 14,88 30 2853,4674 ± 0,63 15,36 ± 16,79 31 2869,4663 ± 0,63 14,07 ± 1,98 32 2911,2221 ± 1,14 8,26 ± 2,84 33 2975,4311 ± 0,71 5,62 ± 0,68 34 2999,5726 ± 0,67 8,04 ± 1,03 Tableau 6 : CHEVREUIL/ Capreolus capreolus m/z S/N 1 1060,5119 ± 0,05 9,79 ± 2,19 2 1105,4778 ± 0,47 7,92 ± 2,43 3 1130,5226 ± 0,48 10,94 ± 1,49 4 1152,6769 ± 0,48 69,12 ± 9,23 1161,5632 ± 0,61 6,95 ± 0,80 6 1163,4982 ± 0,46 8,29 ± 1,31 7 1265,789 ± 0,51 365,14 ± 39,36 8 1283,6272 ± 0,53 5,73 ± 0,98 9 1287,671 ± 0,52 13,04 ± 2,69 1309,6568 ± 0,58 8,64 ± 1,62 11 1459,6414 ± 0,54 5,47 ± 1,35 12 1611,7162 ± 0,66 4,78 ± 0,66 13 1648,7969 ± 0,59 5,88 ± 0,79 14 2338,1745 ± 0,60 5,30 ± 1,43 2438,2798 ± 0,61 10,41 ± 1,58 16 2533,3686 ± 0,65 4,35 ± 0,49 17 2757,4638 ± 0,67 6,97 ± 0,92 18 2870,5746 ± 0,61 59,07 ± 7,94 19 2983,6772 ± 0,60 123,53 ± 15,16 Tableau 7 : COCHON D'INDE/ Cavia porcellus m/z S/N 1 1105,3159 ± 0,46 7,30 ± 1,29 2 1435,4445 ± 0,50 7,32 ± 1,53 3 1471,4977 ± 0,64 5,05 ± 0,38 4 1501,4659 ± 0,54 6,88 ± 1,45 1586,475 ± 0,57 4,93 ± 0,94 6 1743,5634 ± 0,51 33,55 ± 5,54 7 1757,5872 ± 0,58 5,18 ± 0,67 8 1772,5985 ± 0,52 8,45 ± 1,95 9 1930,8638 ± 0,53 14,80 ± 2,42 1945,7224 ± 0,56 10,46 ± 0,95 11 1998,7276 ± 1,36 4,04 ± 0,58 12 2014,6332 ± 0,53 13,73 ± 2,92 13 2017,803 ± 0,69 11,49 ± 2,04 14 2087,8499 ± 0,68 4,10 ± 0,54 2100,8085 ± 0,59 5,42 ± 1,04 16 2103,8787 ± 0,57 13,20 ± 1,04 17 2124,7526 ± 0,78 4,95 ± 0,77 18 2267,9535 ± 0,56 20,00 ± 2,36 19 2423,011 ± 0,66 5,74 ± 0,54 2767,0372 ± 0,61 4,79 ± 0,83 21 2899,1125 ± 0,62 8,94 ± 1,61 22 2915,2734 ± 0,63 62,26 ± 26,86 23 2933,2407 ± 0,62 24,70 ± 7,79 Tableau 8 : RAT/ Rattus rattus m/z S/N 1 1051,5195 ± 0,49 6,14 ± 1,18 2 1105,4939 ± 0,45 17,93 ± 2,29 3 1451,6588 ± 0,56 4,52 ± 0,44 4 1572,6691 ± 0,61 5,33 ± 0,67 1655,7644 ± 0,55 6,25 ± 0,46 6 1671,7782 ± 0,55 5,1 ± 0,57 7 1840,8591 ± 0,56 4,59 ± 0,73 8 1975,9343 ± 0,59 8,35 ± 0,88 9 2014,9626 ± 0,57 17,4 ± 1,76 2081,9776 ± 0,65 5,05 ± 0,46 11 2098,0493 ± 0,65 4,22 ± 0,48 12 2277,1019 ± 0,61 4,70 ± 0,65 13 2471,2275 ± 0,64 5,96 ± 0,70 14 2679,2954 ± 0,62 5,20 ± 0,59 2695,2961 ± 0,61 10,73 ± 1,09 Tableau 9 : RENARD/ Vulpes vulpes m/z S/N 1 1105,4825 ± 0,44 11,51 ± 1,75 2 1437,6805 ± 0,49 11,80 ± 1,22 3 1459,6456 ± 0,50 8,26 ± 1,25 4 1469,7071 ± 0,49 7,40 ± 0,81 5 1565,7361 ± 0,59 3,71 ± 0,44 6 1655,7488 ± 0,53 3,84 ± 0,52 7 1967,9148 ± 0,58 4,20 ± 0,31 8 1992,1908 ± 0,53 58,24 ± 5,39 9 2012,9696 ± 0,51 5,9 ± 0,52 10 2019,9618 ± 0,52 5,86 ± 0,73 11 2027,1134 ± 0,54 8,42 ± 0,72 12 2104,0505 ± 0,55 9,02 ± 1,01 13 2198,9672 ± 0,57 4,31 ± 0,55 14 2261,2679 ± 0,57 8,13 ± 1,15 15 2312,156 ± 0,55 6,31 ± 0,86 16 2350,219 ± 0,53 30,45 ± 3,06 17 2486,2455 ± 0,56 5,67 ± 0,50 18 2719,2766 ± 0,62 4,81 ± 0,59 19 2737,4841 ± 0,61 4,31 ± 0,58 20 2785,4201 ± 0,64 6,71 ± 0,87 21 2847,4149 ± 0,58 29,51 ± 3,28 22 2853,4495 ± 0,57 8,78 ± 1,13 23 2869,433 ± 0,58 12,14 ± 1,34 24 2911,3189 ± 0,57 26,69 ± 3,64 25 2957,6348 ± 0,61 16,20 ± 1,52 26 2975,3969 ± 0,64 5,09 ± 0,67 27 2999,5273 ± 0,61 9,83 ± 1,17 Tableau 10 : DROMADAIRE/ Camelus dromedarius m/z S/N 1 1105,3464 ± 0,38 37,3 ± 11,10 2 1161,3947± 0,54 3,58 ± 0,41 3 1221,4563 ± 0,48 6,63 ± 1,34 4 1435,5666 ± 0,41 22,88 ± 5,10 1459,5876 ± 0,41 19,89 ± 4,46 6 1469,7191 ±0,59 4,43 ± 0,82 7 1473,5706 ± 0,45 8,41 ± 1,25 8 1496,589 ± 0,43 4,77 ± 0,64 9 1550,6737 ± 0,41 8,52 ± 1,74 1586,6964 ± 0,43 14,96 ± 4,57 11 1634,7595 ± 0,44 6,32 ± 1,05 12 1655,7541 ± 0,40 8,10 ± 2,06 13 1790,8862 ± 0,47 6,73 ± 1,41 14 1961,9612 ± 0,64 6,65 ± 2,09 1976,0538 ± 0,46 31,91 ± 8,44 16 2006,034 ± 0,46 10,18 ± 1,75 17 2043,0622 ± 0,72 11,12 ± 3,86 18 2199,1588 ± 0,49 6,59 ± 1,32 19 2410,3397 ± 0,51 10,28 ± 2,99 20 2454,3228 ± 0,55 7,60 ± 1,92 21 2471,4173 ± 0,56 7,20 ± 1,62 22 2513,4077 ± 0,56 7,64 ± 1,19 23 2704,9057 ± 0,69 16,44 ± 5,06 24 2719,4889 ± 0,68 13,85 ± 4,69 25 2727,5048 ± 0,82 8,44 ± 1,73 26 2741,5661 ± 0,57 14,24 ± 3,20 27 2959,7381 ± 0,60 16,35 ±6,67 Tableau 11 : SANGLIER/ Sus scrofa m/z S/N 1 1105,4757 ± 0,41 4,61 ± 0,67 2 1198,5802 ± 0,44 3,85 ± 0,20 3 1240,5751 ± 0,45 4,08 ± 0,47 4 1296,6194 ± 0,44 15,26 ± 0,61 1422,6603 ± 0,44 3,95 ± 0,40 6 1445,6788 ± 0,47 4,65 ± 0,55 7 1459,6576 ± 0,46 7,98 ± 0,77 8 1655,7809 ± 0,49 4,50 ± 0,35 9 1961,9912 ± 0,52 5,79 ± 0,59 2013,0061 ± 0,49 4,45 ± 0,55 11 2110,0825 ± 0,52 5,63 ± 1,54 Tableau 12 : PORC/ Sus scrofa subsp. domesticus m/z S/N 1 1105,4436 ± 0,39 11,40 ± 1,94 2 1121,4685 ± 0,35 4,83 ± 0,80 3 1240,5708 ± 0,40 15,70 ± 2,95 4 1459,6215 ± 0,43 18,51 ± 3,74 1550,7333 ± 0,52 6,07 ± 1,88 6 1655,773 ± 0,48 6,19 ± 1,31 7 1934,1196 ± 0,60 5,81 ± 0,91 8 1961,9572 ± 0,51 18,7 ± 4,10 9 2012,9817 ± 0,53 8,17 ± 1,69 2027,0281 ± 0,57 4,23 ± 0,60 11 2274,1078 ± 0,54 5,87 ± 1,39 12 2549,2212 ± 0,74 5,53 ± 1,34 Tableau 13 : LAPIN/ Ocryctolagus cuniculus m/z S/N 1 1083,488 ± 0,40 5,75 ± 0,60 2 1105,4417 ± 0,40 5,56 ± 0,53 3 1191,4568 ± 0,53 3,51 ± 0,68 4 1261,5512 ± 0,39 5,41 ± 0,47 5 1277,5677 ± 0,40 24,3 ± 3,11 6 1291,6095 ± 0,40 17,24 ± 2,53 7 1353,8018 ± 0,59 5,81 ± 1,23 8 1467,7551 ± 0,41 21,53 ± 1,71 9 1476,6832 ± 0,42 10,99 ± 0,69 10 1501,6799 ± 0,49 6,60 ± 0,63 11 1583,8355 ± 0,53 5,50 ± 0,69 12 1860,984 ± 0,47 4,05 ± 0,80 13 1947,9491 ± 0,43 7,32 ± 0,86 14 2005,9523 ± 0,45 5,99 ± 0,63 2027,0162 ± 0,52 4,32 ± 0,38 16 2059,0714 ± 0,40 11,43 ± 2,83 17 2129,1316 ± 0,47 9,25 ± 1,27 18 2193,2125 ± 0,47 93,38 ± 16,15 19 2513,2476 ± 0,51 5,02 ± 0,56 20 2530,2685 ± 0,51 10,96 ± 1,85 21 2697,4184 ± 0,52 24,83 ± 5,95 22 2719,3218 ± 0,59 8,66 ± 1,24 23 2727,3754 ± 0,58 5,29 ± 0,57 24 2763,366 ± 0,54 6,15 ± 0,86 25 2785,5103 ± 0,56 4,30 ± 0,59 26 2847,4369 ± 0,54 13,23 ± 2,34 27 2953,6149 ± 0,52 16,41 ± 3,04 28 2959,4107 ± 0,54 5,11 ± 0,72 29 2975,5653 ± 0,58 7,06 ± 1,01 Exemple 2 : Identification d'oiseaux par analyse de spectres peptidiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF sur des échantillons obtenus à partir de tissus musculaires. On a utilisé un fragment de tissu musculaire comme source de protéines permettant l'identification des individus par l'analyse des spectres protéiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF. Dans cet exemple, on a utilisé les tissus musculaires provenant de 12 individus représentant 4 espèces d'oiseaux. Les animaux ont été identifiés par l'analyse de la séquence partielle du gène cytochrome b comme indiqué dans l'exemple 1, et les protéines ont été extraites selon le protocole exposé dans l'exemple 1. Dans cet exemple, tous les échantillons présentaient une concentration peptidique > 0,1 mg/ml permettant d'obtenir un spectre utilisable par spectrométrie de masse. Dans cet exemple, on a constitué une base de données des spectres peptidiques pour l'identification des espèces d'oiseaux, comportant actuellement 118 spectres de masse de référence représentatifs des 4 espèces d'oiseaux étudiées : canard (Cotunix cotunix), caille (Cairina moschata), dinde (Méleagris gallopavo) et poulet (Gallus gallus). Biochem. 1976; 72: 248-2554. For the MALDI-TOF mass spectrometry analyzes, 100 μl of this liquid suspension were digested with 100 μl of a trypsin solution at 12.5 ng / μl in the presence of 50 mM NH 4 HCO 3 at 30 ° C. for all night, to get a peptide preparation. The manipulations were performed in the presence of negative control, containing no animal tissue extract. Peptides produced from enzymatic digestion were purified and concentrated using a C18 Zip Tips reverse phase purification column (Milipore MA) following the instructions of the supplier. Precisely 3 microliters of peptides purified at a concentration> 1 mg / ml were deposited on an MPP anchorchip 384 TF Maldi stiplet mass spectrometry plate (Bruker Daltonics GMBH, Leipzig, Germany). As soon as the peptide deposit dried at room temperature, 1 microliter of a solution of α-cyano-4-hydroxycinnamic acid (CCA) matrix was applied to the deposit and the peptide samples were analyzed with a mass spectrometer for MALDI-TOF spectrometry model Autoflex (Bruker Daltonics GMBH) in a reflectron mode. The list of peaks was established automatically using the Flex analysis software (Bruker Daltonics) using the following criteria: 1) number of peaks (n) of weight (m / z with z = 1) between 900 and 3,000 daltons, and 2) maximum value (Rmax) of the S / N ratio = intensity of the signal of the peak of greater intensity / intensity of the background noise, Rmax 3. Each of these two parameters n and Rmax was noted according to notes ni and, respectively , n2, from 0 to 6 listed in the following tables: Note or Number of peaks (n) 0 n8 1 8 <n27 2 27 <n43 3 43 <n78 4 78 <n 86 86 <n110 6 110 <n Note n2 Rmax) 0 Rmax 6.8 1 6.8 <Rmax 26.8 2 26.8 <Rmax 52.6 3 52.6 <Rmax 208.2 4 208.2 <Rmax 398.6 5 398.6 <Rmax 1.092 For each of the peptide profiles obtained, a spectral quality score was calculated by adding the two scores obtained n + n2 and discarding the profiles having a quality score 2. Using this method, we built a bank of data currently containing 279 reference peptide spectra (approximately 20 spectra for each of the 13 animal species) after removing the spectra containing contaminant peaks observed in the negative controls. In fact, the analysis of 100 peptide spectra obtained with 10 negative controls (10 spectra per control) made it possible to observe 62 peaks comprising 7 peaks related to the autolysis of trypsin, 6 peaks originating from keratin and 49 non-specific peaks. from peptide extract from the reverse phase purification column used for the purification of peptides. More specifically, these nonspecific peaks are obtained from a solution containing neither protein nor peptide, and passing through said column purified and concentrated as described above after passing said column. In a second step, peptide extracts obtained from dental pulp of individuals compared with the database were blindly analyzed for identification. The value of 1.8 was determined as the lower limit value of the identification score given by the Flex Analysis software (Bruker) which analyzes the resemblance of the peptide spectra: 2 spectra are considered as coming from the same sample if their score identification is greater than 1.8. For 49 samples of dental pulp from blinded individuals, 3 out of 49 (6%) failed to obtain a spectrum, it was noted that the peptide concentration of these samples was less than 0, img / ml . A spectrum was obtained for 44 out of 46 (85.5%) samples that had a peptide concentration> 0.1 mg / ml (P <0.05, X2). In a fox sample, the spectrum quality score n1 + n2 <2 did not allow identification because of the poor quality of the spectrum. In another fox sample, identification could not be obtained with the identification score threshold of 1.8 of the software used in this work. In the other 44 cases, the identification determined by the MALDI-TOF mass spectrometry analysis was accurate with identification scores> 1.8, when compared with all the reference spectra. . This result illustrates that the analysis of peptide spectra obtained by extraction of total proteins from a tissue such as the dental pulp allows the specific identification of a mammalian individual at the species level. Illustrative spectra of the reference spectra library for the 13 animal species mentioned above are given in FIGS. 1 to 13. In the reference bank used for the comparison of the spectrum obtained from the sample to be analyzed, it was recorded a plurality, at least twenty spectra per animal species, which correspond for the following 13 mammalian animal species to peaks with the following m / z values and intensities: Table 1: HUMAN / Homo sapiens m / z S / N 1 1105.4691 ± 0.33 11.36 ± 4.82 2 1189.4838 ± 0.33 22.54 ± 13.7 3 1235.5162 ± 0.39 4.42 ± 1.15 4 1454.2891 ± 0.50 5.82 ± 3.43 5 1459.5939 ± 0.33 9.38 ± 4.38 6 1467.7537 ± 0.32 95.32 ± 26.22 7 1493.6722 ± 0.31 13, 54 ± 5.40 8 1533.6058 ± 0.34 3.84 ± 1.63 9 1546.7168 ± 0.32 15.14 ± 7.75 10 1580.6741 ± 0.34 7.26 ± 2.62 11 1586.6692 ± 0.36 10.28 ± 4.30 12 1623.7253 ± 0.31 35.58 ± 12.60 13 1699.7733 ± 0.34 4.00 ± 1.11 14 1742.7811 ± 0.32 7 , 86 ± 1.72 15 1812.8048 ± 0.30 5.84 ± 2.26 16 1848.8149 ± 0.31 8.80 ± 5.40 17 1898.9629 ± 0.31 86.66 ± 34, 18 18 1961.9419 ± 0.30 16.68 ± 10.56 19 2003.953 ± 0.30 14.82 ± 9.54 20 2027.9949 ± 0.36 6.10 ± 1.62 21 2062.0375 ± 0.33 11.34 ± 3.21 22 2081.0111 ± 0.31 40.04 ± 11.89 23 2090.0478 ± 0.35 8.02 ± 2.67 24 2096.9947 ± 0.33 4 , 98 ± 0.51 25 2104.9879 ± 0.36 6.32 ± 3.05 26 2120.9851 ± 0.30 6.98 ± 3.70 27 2188.0805 ± 0.33 5.06 ± 1, 30 28 2198.9741 ± 0.41 7.40 ± 5.46 29 2232.0813 ± 0.37 7.56 ± 3.49 30 2265.1099 ± 0.34 10.06 ± 3.43 31 2281.1185 ± 0.42 5.22 ± 2.27 32 2284.1488 ± 0.38 12.44 ± 7.69 33 2410.1529 ± 0.39 11.18 ± 6.11 34 2513.2431 ± 0.43 11 , 40 ± 7.02 2801.4092 ± 0.52 5.46 ± 4.03 36 2833.4493 ± 0.51 8.38 ± 5.84 37 2847.4426 ± 0.53 19.68 ± 4, 58 38 2885,5042 ± 0.52 17.22 ± 10.92 39 2957.5294 ± 0.61 17.44 ± 13.35 40 2960.487 ± 0.48 11.56 ± 9.83 Table 2: BIFU / Bos taurus m / z S / N 1 1032.4211 ± 0.5 3.25 ± 0.21 2 1088.3531 ± 0.3 6 3.57 ± 0.18 3 1095.4479 ± 0.40 5.7 ± 0.9 4 1105.4887 ± 0.39 22.25 ± 4.33 1208.5856 ± 0.41 19.67 ± 3 , 62 6 1264.5358 ± 0.47 6.5 ± 0.39 7 1267.6053 ± 0.47 7.63 ± 0.5 8 1280.6518 ± 0.47 6.93 ± 0.95 9 1295, 5792 ± 0.43 5.36 ± 0.98 1435.6447 ± 0.43 27.84 ± 9.39 11 1443.6726 ± 0.43 16.41 ± 6.99 12 1459.66 ± 0.42 24 , 18 ± 5.29 13 1473.6181 ± 0.44 13.82 ± 5.39 14 1532.7175 ± 0.44 7.13 ± 2.11 1586.739 ± 0.45 17.5 ± 6.11 16 1648.7907 ± 0.42 12.87 ± 4.54 17 1655.7819 ± 0.40 7.12 ± 2.47 18 1676.7804 ± 0.45 8.59 ± 2.49 19 1783.7755 ± 0.52 6.24 ± 3.09 1848.8523 ± 0.43 18.53 ± 4.85 21 1921.9168 ± 0.42 10.37 ± 5.01 22 1937.9593 ± 0.43 25.7 ± 7.00 23 1975.9957 ± 0.43 24.25 ± 2.89 24 1997.0015 ± 0.43 21.09 ± 2.15 2019.9858 ± 0.43 13.46 ± 4.17 26 2043 , 8226 ± 0.52 7.61 ± 4.48 27 2199.0449 ± 0.46 11.18 ± 4.01 28 2253.1482 ± 0.47 16.33 ± 3.24 29 2294.108 ± 0, 46 12.71 ± 4.18 30 2309.0977 ± 0.48 10.46 ± 4.55 31 2410.2159 ± 0.48 14.36 ± 4.23 32 2418.211 6 ± 0.51 10.91 ± 5.11 33 2487.2879 ± 0.49 12.4 ± 4.79 34 2513.2775 ± 0.50 11.03 ± 5.39 35 2565.303 ± 0.48 9.5 ± 5.77 36 2644.3584 ± 0.49 9.3 ± 5.96 37 2660.3436 ± 0.50 7.35 ± 6.66 38 2703.264 ± 0.61 9.75 ± 6 , 39 39 2719.3375 ± 0.51 11.85 ± 6.06 40 2735.378 ± 0.48 10.07 ± 6.72 41 2853.5012 ± 0.53 11.84 ± 6.55 42 2869, 5217 ± 0.50 19.65 ± 5.67 Table 3: CAT / Felix catus m / z S / N 1 1105.4819 ± 0.40 16.4 ± 4.67 2 1409.731 ± 0.42 16, 56 ± 4.24 3 1459.6161 ± 0.44 12.96 ± 6.41 4 1565.6834 ± 0.47 4.28 ± 0.3 1975.9085 ± 0.47 7.77 ± 2.99 6 2019.91 ± 0.48 7.55 ± 1.04 7 2052.993 ± 0.54 7.1 ± 1.22 8 2198.9268 ± 0.51 7.57 ± 4.15 9 2216.0137 ± 0 , 53 7.51 ± 1.12 2410.0995 ± 0.53 5.42 ± 1.22 11 2471.1682 ± 0.59 4.58 ± 0.51 12 2703.2172 ± 0.54 7.27 ± 1.34 13 2719,1695 ± 0.58 7.39 ± 1.02 14 2753.2787 ± 0.60 5.6 ± 0.89 20 15 2853.3585 ± 0.58 12.54 ± 2.56 16 2869.3346 ± 0.60 8.11 ± 2.80 Table 4: GOAT / Capra hircus m / z S / N 1 1105.4952 ± 0.45 20.51 ± 4.34 2 1152.6321 ± 0.54 7.09 ± 0.65 3 1283.6326 ± 0.47 26.79 ± 50.03 4 1287.6754 ± 0.53 4.73 ± 0.60 1435, 6636 ± 0.47 19.69 ± 3.60 6 1459.6718 ± 0.48 14.56 ± 2.71 7 1473.6649 ± 0.49 6.65 ± 1.61 8 1585.7541 ± 0.52 15.9 ± 2.37 9 1586.8267 ± 0.56 4.79 ± 2.26 1648.8555 ± 0.49 18.34 ± 1.79 11 1743.8433 ± 0.57 4.01 ± 0, 53 12 1779.9525 ± 0.54 5.01 ± 0.85 13 1821.8941 ± 0.60 4.14 ± 0.67 14 1848.8849 ± 0.522 6.01 ± 1.24 1931.0892 ± 0, 61 5.54 ± 0.83 16 1976.0518 ± 0.51 15.48 ± 1.31 17 2020.0432 ± 0.53 12.90 ± 1.70 18 2089.0911 ± 0.56 4.01 ± 0.36 19 2105.0891 ± 0.53 5.95 ± 0.64 2199.0823 ± 0.54 8.71 ± 0.91 21 2232.1598 ± 0.52 8.75 ± 1.38 22 2409, 233 ± 0.55 12.45 ± 3.27 23 2513.3102 ± 0.56 14.75 ± 2.13 24 2565.3132 ± 0.53 9.49 ± 1.24 2718.337 ± 0.57 5 , 86 ± 1.08 26 2766.393 ± 0.57 7.63 ± 0.80 27 2939.6513 ± 0.78 6.21 ± 1.91 Table 5: DOG / Canis familiaris m / z S / N 1 1076.439 ± 0.51 4.93 ± 1.13 2 1105.4702 ± 0.43 19.8 ± 3.93 3 1164.3948 ± 0 , 48 5.34 ± 1.40 4 1261.523 ± 0.49 5.09 ± 0.85 1459.6443 ± 0.49 15.01 ± 2.46 6 1469.7479 ± 0.49 30.59 ± 6.10 7 1473.6046 ± 0.50 6.08 ± 1.09 8 1566.7114 ± 0.51 5.30 ± 0.97 9 1576.7751 ± 0.51 7.65 ± 1.51 1586, 726 ± 0.52 10.8 ± 2.54 11 1590.7751 ± 0.56 7.91 ± 2.28 12 1743.7845 ± 0.52 32.14 ± 5.29 13 1931.0999 ± 0.61 14.31 ± 3.97 14 1953.1315 ± 0.65 6.72 ± 1.55 1992,1264 ± 0.64 31.73 ± 4.78 16 2019.9884 ± 0.54 10.35 ± 1, 54 17 2046.072 ± 0.59 11.29 ± 1.69 18 2105.0316 ± 0.61 8.55 ± 1.43 19 2194.0463 ± 0.63 4.89 ± 0.76 2198.9959 ± 0.59 12.08 ± 1.84 21 2216.0556 ± 0.65 4.33 ± 0.57 22 2261.2322 ± 0.62 3.78 ± 0.52 23 2271.3189 ± 0.68 4, 14 ± 0.67 24 2330,1612 ± 0.71 4.69 ± 0.81 2350.1781 ± 0.57 23.29 ± 3.21 26 2497.2595 ± 0.63 3.64 ± 0.30 27 2785.3648 ± 0.66 3.79 ± 0.38 28 2820.4338 ± 0.68 5.03 ± 0.75 29 2847.4481 ± 0.64 56.14 ± 14.88 30 2853.4674 ± 0 , 63 15.36 ± 16.79 31 2869.4663 ± 0.63 14.07 ± 1.98 32 2911.2221 ± 1.14 8.26 ± 2.84 33 297 5.4311 ± 0.71 5.62 ± 0.68 34 2999.5726 ± 0.67 8.04 ± 1.03 Table 6: Roebuck / Capreolus capreolus m / z S / N 1 1060.5119 ± 0.05 9.79 ± 2.19 2 1105.4778 ± 0.47 7.92 ± 2.43 3 1130.5226 ± 0.48 10.94 ± 1.49 4 1152.6769 ± 0.48 69.12 ± 9 , 23 1161.5632 ± 0.61 6.95 ± 0.80 6 1163.4982 ± 0.46 8.29 ± 1.31 7 1265.789 ± 0.51 365.14 ± 39.36 8 1283.6272 ± 0.53 5.73 ± 0.98 9 1287.671 ± 0.52 13.04 ± 2.69 1309.6568 ± 0.58 8.64 ± 1.62 11 1459.6414 ± 0.54 5, 47 ± 1.35 12 1611.7162 ± 0.66 4.78 ± 0.66 13 1648.7969 ± 0.59 5.88 ± 0.79 14 2338.1745 ± 0.60 5.30 ± 1.43 2438.2798 ± 0.61 10.41 ± 1.58 16 2533.3686 ± 0.65 4.35 ± 0.49 17 2757.4638 ± 0.67 6.97 ± 0.92 18 2870.5746 ± 0 , 61 59.07 ± 7.94 19 2983.6772 ± 0.60 123.53 ± 15.16 Table 7: PIG OF INDIA / Cavia porcellus m / z S / N 1105.3159 ± 0.46 7, 30 ± 1.29 2 1435.4445 ± 0.50 7.32 ± 1.53 3 1471.4977 ± 0.64 5.05 ± 0.38 4 1501.4659 ± 0.54 6.88 ± 1.45 1586.475 ± 0.57 4.93 ± 0.94 6 1743.5634 ± 0.51 33.55 ± 5.54 7 1757.5872 ± 0.58 5.18 ± 0.67 8 1772.5985 ± 0.52 8.45 ± 1.95 9 1930.8638 ± 0.53 14.80 ± 2.42 1945.7224 ± 0, 56 10.46 ± 0.95 11 1998.7276 ± 1.36 4.04 ± 0.58 12 2014.6332 ± 0.53 13.73 ± 2.92 13 2017.803 ± 0.69 11.49 ± 2.04 14 2087.8499 ± 0.68 4.10 ± 0.54 2100.8085 ± 0.59 5.42 ± 1.04 16 2103.8787 ± 0.57 13.20 ± 1.04 17 2124, 7526 ± 0.78 4.95 ± 0.77 18 2267.9535 ± 0.56 20.00 ± 2.36 19 2423.011 ± 0.66 5.74 ± 0.54 2767.0372 ± 0.61 4 , 79 ± 0.83 21 2899.1125 ± 0.62 8.94 ± 1.61 22 2915.2734 ± 0.63 62.26 ± 26.86 23 2933.2407 ± 0.62 24.70 ± 7, 79 Table 8: RAT / Rattus rattus m / z S / N 1,1051.5195 ± 0.49 6.14 ± 1.18 2 1105.4939 ± 0.45 17.93 ± 2.29 3 1451.6588 ± 0 , 56 4.52 ± 0.44 4 1572.6691 ± 0.61 5.33 ± 0.67 1655.7644 ± 0.55 6.25 ± 0.46 6 1671.7782 ± 0.55 5.1 ± 0.57 7 1840.8591 ± 0.56 4.59 ± 0.73 8 1975.9343 ± 0.59 8.35 ± 0.88 9 2014.9626 ± 0.57 17.4 ± 1.76 2081, 9776 ± 0.65 5.05 ± 0.46 11 2098.0493 ± 0.65 4.22 ± 0.48 12 2277.1019 ± 0.61 4.70 ± 0 , 65 13 2471.2275 ± 0.64 5.96 ± 0.70 14 2679.2954 ± 0.62 5.20 ± 0.59 2695.2961 ± 0.61 10.73 ± 1.09 Table 9: FOX / Vulpes vulpes m / z S / N 1 1105.4825 ± 0.44 11.51 ± 1.75 2 1437.6805 ± 0.49 11.80 ± 1.22 3 1459.6456 ± 0.50 8.26 ± 1.25 4 1469.7071 ± 0.49 7.40 ± 0.81 5 1565.7361 ± 0.59 3.71 ± 0.44 6 1655.7488 ± 0.53 3.84 ± 0.52 7 1967.9148 ± 0.58 4.20 ± 0.31 8 1992.1908 ± 0.53 58.24 ± 5.39 9 2012.9696 ± 0.51 5.9 ± 0.52 10 2019.9618 ± 0 , 52 5.86 ± 0.73 11 2027.1134 ± 0.54 8.42 ± 0.72 12 2104.0505 ± 0.55 9.02 ± 1.01 13 2198.9672 ± 0.57 4.31 ± 0.55 14 2261.2679 ± 0.57 8.13 ± 1.15 15 2312.156 ± 0.55 6.31 ± 0.86 16 2350.219 ± 0.53 30.45 ± 3.06 17 2486.2455 ± 0.56 5.67 ± 0.50 18 2719.2766 ± 0.62 4.81 ± 0.59 19 2737.4841 ± 0.61 4.31 ± 0.58 20 2785.4201 ± 0 , 64 6.71 ± 0.87 21 2847.4149 ± 0.58 29.51 ± 3.28 22 2853.4495 ± 0.57 8.78 ± 1.13 23 2869.433 ± 0.58 12.14 ± 1.34 24 2911.3189 ± 0.57 26.69 ± 3.64 25 2957.6348 ± 0.61 16.20 ± 1.52 26 2975.3 969 ± 0.64 5.09 ± 0.67 27 2999.5273 ± 0.61 9.83 ± 1.17 Table 10: DROMATIC / Camelus dromedarius m / z S / N 1 1105.3464 ± 0.38 37, 3 ± 11.10 2 1161.3947 ± 0.54 3.58 ± 0.41 3 1221.4563 ± 0.48 6.63 ± 1.34 4 1435.5666 ± 0.41 22.88 ± 5.10 1459.5876 ± 0.41 19.89 ± 4.46 6 1469.7191 ± 0.59 4.43 ± 0.82 7 1473.5706 ± 0.45 8.41 ± 1.25 8 1496.589 ± 0 , 43 4.77 ± 0.64 9 1550.6737 ± 0.41 8.52 ± 1.74 1586.6964 ± 0.43 14.96 ± 4.57 11 1634.7595 ± 0.44 6.32 ± 1.05 12 1655.7541 ± 0.40 8.10 ± 2.06 13 1790.8862 ± 0.47 6.73 ± 1.41 14 1961.9612 ± 0.64 6.65 ± 2.09 1976 0538 ± 0.46 31.91 ± 8.44 16 2006.034 ± 0.46 10.18 ± 1.75 17 2043.0622 ± 0.72 11.12 ± 3.86 18 2199.1588 ± 0.49 6.59 ± 1.32 19 2410.3397 ± 0.51 10.28 ± 2.99 20 2454.3228 ± 0.55 7.60 ± 1.92 21 2471.4173 ± 0.56 7.20 ± 1 , 62 22 2513.4077 ± 0.56 7.64 ± 1.19 23 2704.9057 ± 0.69 16.44 ± 5.06 24 2719.4889 ± 0.68 13.85 ± 4.69 25 2727, 5048 ± 0.82 8.44 ± 1.73 26 2741.5661 ± 0.57 14.24 ± 3.20 27 2959.7381 0.60 16.35 ± 6.67 Table 11: SANGLIER / Sus scrofa m / z S / N 1 1105.4757 ± 0.41 4.61 ± 0.67 2 1198.5802 ± 0.44 3.85 ± 0.20 3 1240.5751 ± 0.45 4.08 ± 0.47 4 1296.6194 ± 0.44 15.26 ± 0.61 1422.6603 ± 0.44 3.95 ± 0.40 6 1445, 6788 ± 0.47 4.65 ± 0.55 7 1459.6576 ± 0.46 7.98 ± 0.77 8 1655.7809 ± 0.49 4.50 ± 0.35 9 1961.9912 ± 0.52 5.79 ± 0.59 2013.0061 ± 0.49 4.45 ± 0.55 11 2110.0825 ± 0.52 5.63 ± 1.54 Table 12: PORC / Sus scrofa subsp. domesticus m / z S / N 1 1105.4436 ± 0.39 11.40 ± 1.94 2 1121.4685 ± 0.35 4.83 ± 0.80 3 1240.5708 ± 0.40 15.70 ± 2 , 95 4 1459.6215 ± 0.43 18.51 ± 3.74 1550.7333 ± 0.52 6.07 ± 1.88 6 1655.773 ± 0.48 6.19 ± 1.31 7 1934.1196 ± 0.60 5.81 ± 0.91 8 1961.9572 ± 0.51 18.7 ± 4.10 9 2012.9817 ± 0.53 8.17 ± 1.69 2027.0281 ± 0.57 4, 23 ± 0.60 11 2274.1078 ± 0.54 5.87 ± 1.39 12 2549.2212 ± 0.74 5.53 ± 1.34 Table 13: RABBIT / Ocryctolagus cuniculus m / z S / N 1083 , 488 ± 0.40 5.75 ± 0.60 2 1105.4417 ± 0.40 5.56 ± 0.53 3 1191.4568 ± 0.53 3.51 ± 0.68 4 1261.5512 ± 0, 39 5.41 ± 0.47 5 1277.5677 ± 0.40 24.3 ± 3.11 6 1291.6095 ± 0.40 17.24 ± 2.53 7 1353.8018 ± 0.59 5.81 ± 1.23 8 1467.7551 ± 0.41 21.53 ± 1.71 9 1476.6832 ± 0.42 10.99 ± 0.69 10 1501.6799 ± 0.49 6.60 ± 0.63 11 1583 , 8355 ± 0.53 5.50 ± 0.69 12 1860.984 ± 0.47 4.05 ± 0.80 13 1947.9491 ± 0.43 7.32 ± 0.86 14 2005.9523 ± 0, 45 5.99 ± 0.63 2027.0162 ± 0.52 4.32 ± 0.38 16 2059.0714 ± 0.40 11.43 ± 2.83 17 2129,1316 ± 0.47 9.25 ± 1.27 18 2193.2125 ± 0.47 93.38 ± 16.15 19 2513.2476 ± 0.51 5.02 ± 0.56 20 2530.2685 ± 0.51 10.96 ± 1.85 21 2697.4184 ± 0.52 24.83 ± 5.95 22 2719.3218 ± 0.59 8.66 ± 1.24 23 2727.3754 ± 0.58 5, 29 ± 0.57 24 2763.366 ± 0.54 6.15 ± 0.86 25 2785.5103 ± 0.56 4.30 ± 0.59 26 2847.4369 ± 0.54 13.23 ± 2.34 27 2953.6149 ± 0.52 16.41 ± 3.04 28 2959.4107 ± 0.54 5.11 ± 0.72 297575.5653 ± 0.58 7.06 ± 1.01 Example 2: Identification of by analysis of peptide spectra by MALDI-TOF mass spectrometry on samples obtained from muscle tissue. A fragment of muscle tissue was used as a source of proteins for the identification of individuals by the analysis of protein spectra by MALDI-TOF mass spectrometry. In this example, muscle tissue from 12 individuals representing 4 bird species was used. The animals were identified by partial sequence analysis of the cytochrome b gene as shown in Example 1, and the proteins were extracted according to the protocol set forth in Example 1. In this example, all the samples showed peptide concentration> 0.1 mg / ml making it possible to obtain a spectrum that can be used by mass spectrometry. In this example, a database of peptide spectra for the identification of bird species has been compiled, currently comprising 118 reference mass spectra representative of the 4 studied bird species: duck (Cotunix cotunix), quail (Cairina moschata), turkey (Meleagris gallopavo) and chicken (Gallus gallus).

Utilisant cette base de données, on a identifié en aveugle les échantillons d'oiseaux qui ont tous été identifiés au niveau de l'espèce (figures 14 à 17). Cet exemple illustre que l'analyse des profils peptidiques par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF permet l'identification des espèces d'oiseaux. Dans la banque de référence utilisée pour la comparaison du spectre obtenu de l'échantillon à analyser, on a enregistré une pluralité, au moins une vingtaine de spectres par espèces animales, qui correspondent pour les 4 espèces animales d'oiseaux suivantes à des pics aux valeurs m/z suivantes et d'intensités suivantes Tableau 14 : CAILLE/ Cairina moschata m/z S/N 1 1268,9764 ± 0,48 5,71 ± 0,68 2 1289,0057 ± 0,51 4,93 ± 0,44 3 1341,0312 ± 0,55 7,42 ± 0,78 4 1392,0612 ± 0,49 10,15 ± 1,80 5 1426,1386 ± 0,50 12,72 ± 1,84 6 1477,8833 ± 1,14 6,95 ± 2,03 7 1496,1326 ± 0,50 76,26 ± 19,23 8 1512,1092 ± 0,48 53,34 ± 14,93 9 1518,1556 ± 0,54 10,73 ± 7,02 1528,0942 ± 0,49 13,37 ± 2,30 11 1612,1614 ± 0,55 6,48 ± 1,88 12 1744,0626 ± 0,53 7,07 ± 1,60 13 1816,1669 ± 0,54 22,92 ± 6,42 14 1819,2706 ± 0,53 68,91 ± 22,13 1875,1358 ± 0,63 3,82 ± 0,49 16 1975,1895 ± 0,52 27,17 ± 10,04 17 2059,2014 ± 0,52 44,50 ± 15,66 18 2097,2382 ± 0,53 20,82 ± 8,41 19 2169,2739 ± 0,58 6,63 ± 1,77 20 2185,277 ± 0,59 9,82 ± 2,90 21 2349,216 ± 0,57 8,33 ± 2,17 22 2393,2572 ± 0,57 8,25 ± 1,95 23 2720,1396 ± 0,60 3,80 ± 0,43 24 2807,1634 ± 0,65 21,74 ± 6,03 25 2910,1852 ± 0,81 23,92 ± 7,12 26 2921,1417 ± 0,60 25,92 ± 4,04 27 2996,2599 ± 0,62 12,55 ± 4,65 Tableau 15 : CANARD/ Cotunix cotunix m/z S/N 1 1100,9083 ± 0,40 20,76 ± 5,15 2 1153,9393 ± 0,39 9,84 ± 2,07 3 1197,9438 ± 0,41 732,17 ± 141,32 4 1211,9169 ± 0,41 5,82 ± 1,33 1213,917 ± 0,39 12,59 ± 2,21 6 1229,921 ± 0,40 12,99 ± 3,02 7 1326,0306 ± 0,41 19,40 ± 3,77 8 1343,0595 ± 0,45 7,21 ± 1,51 9 1397,039 ± 0,48 7,26 ± 1,51 1400,0866 ± 0,46 10,75 ± 3,70 11 1491,2054 ± 0,43 117,91 ± 43,57 12 1507,1304 ± 0,44 9,85 ± 2,78 13 1588,2131 ± 0,46 14,78 ± 3,38 14 1652,141 ± 0,45 8,52 ± 2,02 15 1658,1653 ± 0,44 14,47 ± 3,04 16 1691,1782 ± 0,47 6,71 ± 1,41 17 1710,201 ± 0,4 5,42 ± 0,88 18 1794,3156 ± 0,46 30,49 ± 9,22 19 1859,2355 ± 0,45 9,58 ± 1,91 20 1867,228 ± 0,49 6,31 ± 1,37 21 1982,3498 ± 0,47 11,38 ± 1,5 22 1988,253 ± 0,49 9,36 ± 1,76 23 1993,2482 ± 0,48 9,02 ± 1,73 24 2006,3257 ± 0,4 6,70 ± 1,26 25 2156,4175 ± 0,47 97,65 ± 17,65 26 2172,377 ± 0,47 7,16 ± 1,48 27 2200,4237 ± 0,46 81,68 ± 24,38 28 2226,3979 ± 0,46 36,58 ± 7,29 29 2281,4769 ± 0,49 10,82 ± 2,33 30 2294,3469 ± 0,47 10,38 ± 2,61 31 2394,4437 ± 0,4 15,96 ± 4,12 32 2595,47 ± 0,55 27,06 ± 5,52 33 2871,5033 ± 0,50 49,54 ± 8,78 34 2988,5892 ± 0,52 27,04 ± 9,24 Tableau 16 : DINDE/ Meleagris gallopavo m/z S/N 1 1062,8426 ± 0,40 4,59 ± 0,55 2 1197,8902 ± 0,39 22,31 ± 2,63 3 1204,8969 ± 0,44 4,30 ± 0,44 4 1289,021 ± 0,40 17,0 ± 2,79 1302,9596 ± 0,40 5,97 ± 1,05 6 1330,0201 ± 0,40 20,96 ± 2,60 7 1370,969 ± 0,40 15,85 ± 1,84 8 1400,0283 ± 0,43 15,11 ± 1,47 9 1408,9887 ± 0,42 4,74 ± 0,66 1427,0499 ± 0,45 5,09 ± 0,79 11 1435,0108 ± 0,40 7,17 ± 1,30 12 1448,0247 ± 0,43 5,49 ± 1,13 13 1462,0429 ± 0,41 10,95 ± 1,18 14 1500,0278 ± 0,44 6,21 ± 1,15 1528,9564 ± 0,42 19,82 ± 2,66 16 1531,0268 ± 0,41 44,11 ± 4,53 17 1565,0282 ± 0,42 5,09 ± 0,56 18 1618,1136 ± 0,44 5,36 ± 0,65 19 1626,1009 ± 0,43 26,35 ± 2,77 1636,9959 ± 0,45 4,67 ± 2,15 21 1658,069 ± 0,41 5,34 ± 0,95 22 1750,0242 ± 0,44 15,11 ± 2,87 23 1769,1815 ± 0,43 10,52 ± 1,49 24 1779,1463 ± 0,42 13,99 ± 1,22 25 1794,2246 ± 0,43 65,56 ± 10,25 26 1804,1327 ± 0,41 20,63 ± 2,85 27 1859,1327 ± 0,42 45,64 ± 5,83 28 1870,1512 ± 0,43 7,39 ± 0,84 29 1988,1797 ± 0,44 15,73 ± 1,63 30 2006,2121 ± 0,42 22,7 ± 3,27 31 2063,0984 ± 0,50 5,25 ± 0,42 32 2107,2355 ± 0,41 16,62 ± 2,46 33 2115,2649 ± 0,41 7,63 ± 1,76 34 2149,2645 ± 0,50 4,92 ± 0,52 35 2169,2839 ± 0,42 31,31 ± 5,05 36 2183,3197 ± 0,45 7,74 ± 0,96 37 2213,2215 ± 0,45 11,97 ± 2,22 38 2226,2635 ± 0,42 29,78 ± 5,00 39 2233,2586 ± 0,43 28,99 ± 3,14 40 2294,2186 ± 0,44 15,49 ± 1,91 41 2316,217 ± 0,45 23,76 ± 3,7 42 2318,3224 ± 0,42 47,72 ± 6,23 43 2374,2201 ± 0,50 16,09 ± 2,15 44 2394,3148 ± 0,44 39,26 ± 8,06 45 2454,1997 ± 0,55 6,94 ± 1,00 46 2480,3435 ± 0,55 6,08 ± 0,69 47 2495,3337 ± 0,46 19,84 ± 3,61 48 2595,3935 ± 0,46 107,29 ± 17,91 49 2611,3686 ± 0,47 7,20 ± 1,06 50 2752,3261 ± 0,49 7,36 ± 1,22 51 2981,3256 ± 0,53 6,50 ± 0,95 Tableau 17 : POULET/ Gallus gallus m/z S/N 1 1176,1814 ± 0,44 6,09 ± 1,14 2 1289,2723 ± 0,44 10,44 ± 1,54 3 1303,1506 ± 0,44 5,26 ± 0,99 4 1322,1959 ± 0,48 5,22 ± 0,84 1402,354 ± 0,47 8,32 ± 1,29 6 1436,2929 ± 0,47 6,38 ± 1,15 7 1459,36 ± 0,47 7,31 ± 1,62 8 1533,3188 ± 0,51 6,20 ± 1,10 9 1617,2772 ± 0,44 13,89 ± 5,82 1626,3735 ± 0,48 5,33 ± 0,64 11 1676,3712 ± 0,44 22,08 ± 2,42 12 1723,5079 ± 0,45 20,63 ± 5,40 13 1744,3142 ± 0,49 8,43 ± 1,70 14 1780,4744 ± 0,45 47,53 ± 17,07 1848,358 ± 0,45 10,13 ± 3,18 16 1866,3649 ± 0,44 25,72 ± 3,70 17 1929,4195 ± 0,50 7,45 ± 1,17 18 2079,4971 ± 0,44 37,42 ± 5,71 19 2121,4988 ± 0,48 7,40 ± 2,92 20 2125,5259 ± 0,48 7,65 ± 1,18 21 2169,5472 ± 0,45 44,92 ± 10,86 22 2183,5603 ± 0,46 24,36 ± 3,67 23 2192,5972 ± 0,97 14,17 ± 1,93 24 2208,5035 ± 0,49 15,30 ± 2,27 25 2218,4723 ± 0,59 6,81 ± 1,03 26 2226,5243 ± 0,47 406,65 ± 93,95 27 2242,4997 ± 0,46 20,34 ± 6,47 28 2249,4828 ± 0,50 7,33 ± 2,24 29 2339,583 ± 0,48 36,14 ± 7,94 30 2373,5346 ± 0,46 73,77 ± 14,02 31 2595,5866 ± 0,48 10,84 ± 2,30 32 2617,6005 ± 0,59 3,85 ± 0,49 33 2915,7269 ± 0,52 55,97 ± 25,42 34 2933,6602 ± 0,58 9,88 ± 3,44 35 2955,5974 ± 0,57 6,39 ± 1,31 Using this database, bird samples that have all been identified at the species level have been blindly identified (Figures 14-17). This example illustrates that the analysis of peptide profiles by MALDI-TOF mass spectrometry allows the identification of bird species. In the reference bank used for the comparison of the spectrum obtained from the sample to be analyzed, a plurality, at least about twenty spectra per animal species, have been recorded, which correspond for the following 4 animal species of birds to peaks at following m / z values and following intensities Table 14: CAILLE / Cairina moschata m / z S / N 1 1268.9764 ± 0.48 5.71 ± 0.68 2 1289.0057 ± 0.51 4.93 ± 0.44 3 1341.0312 ± 0.55 7.42 ± 0.78 4 1392.0612 ± 0.49 10.15 ± 1.80 5 1426.1366 ± 0.50 12.72 ± 1.84 6 1477 , 8833 ± 1.14 6.95 ± 2.03 7 1496.1366 ± 0.50 76.26 ± 19.23 8 1512.1092 ± 0.48 53.34 ± 14.93 9 1518.1556 ± 0, 54 10.73 ± 7.02 1528.0942 ± 0.49 13.37 ± 2.30 11 1612.1614 ± 0.55 6.48 ± 1.88 12 1744.0626 ± 0.53 7.07 ± 1 , 60 13 1816, 1669 ± 0.54 22.92 ± 6.42 14 1819.2706 ± 0.53 68.91 ± 22.13 1875.1358 ± 0.63 3.82 ± 0.49 16 1975.1895 ± 0.52 27.17 ± 10.04 17 2059.2014 ± 0.52 44.50 ± 15.66 18 2097.2382 ± 0.53 20.82 ± 8.41 19 2169.2 739 ± 0.58 6.63 ± 1.77 20 2185.277 ± 0.59 9.82 ± 2.90 21 2349.216 ± 0.57 8.33 ± 2.17 22 2393.2572 ± 0.57 8.25 ± 1.95 23 2720.1396 ± 0.60 3.80 ± 0.43 24 2807.1634 ± 0.65 21.74 ± 6.03 25 2910.1852 ± 0.81 23.92 ± 7 , 12 26 2921,1417 ± 0.60 25.92 ± 4.04 27 2996.2599 ± 0.62 12.55 ± 4.65 Table 15: DUCK / Cotunix cotunix m / z S / N 1 1100.9083 ± 0.40 20.76 ± 5.15 2 1153.9393 ± 0.39 9.84 ± 2.07 3 1197.9438 ± 0.41 732.17 ± 141.32 4 1211.9169 ± 0.41 5, 82 ± 1.33 1213.917 ± 0.39 12.59 ± 2.21 6 1229.921 ± 0.40 12.99 ± 3.02 7 1326.0306 ± 0.41 19.40 ± 3.77 8 1343.0595 ± 0.45 7.21 ± 1.51 9 1397.039 ± 0.48 7.26 ± 1.51 1400.0866 ± 0.46 10.75 ± 3.70 11 1491.2054 ± 0, 43 117.91 ± 43.57 12 1507.1304 ± 0.44 9.85 ± 2.78 13 1588.2131 ± 0.46 14.78 ± 3.38 14 1652.141 ± 0.45 8.52 ± 2.02 15 1658,1653 ± 0.44 14.47 ± 3.04 16 1691.1782 ± 0.47 6.71 ± 1.41 17 1710.201 ± 0.4 5.42 ± 0.88 18 1794 , 3156 ± 0.46 30.49 ± 9.22 19 1859.2355 ± 0.45 9.58 ± 1.91 1867.228 ± 0.49 6.31 ± 1.37 21 1982.3498 ± 0.47 11.38 ± 1.5 22 1988.253 ± 0.49 9.36 ± 1.76 23 1993.2482 ± 0.48 9, 02 ± 1.73 24 2006.3257 ± 0.4 6.70 ± 1.26 25 2156.4175 ± 0.47 97.65 ± 17.65 26 2172.377 ± 0.47 7.16 ± 1.48 27 2200.4237 ± 0.46 81.68 ± 24.38 28 2226.3979 ± 0.46 36.58 ± 7.29 29 2281.4769 ± 0.49 10.82 ± 2.33 30 2294.3469 ± 0.47 10.38 ± 2.61 31 2394.4437 ± 0.4 15.96 ± 4.12 32 2595.47 ± 0.55 27.06 ± 5.52 33 2871.5033 ± 0.50 49, 54 ± 8.78 34 2988.5892 ± 0.52 27.04 ± 9.24 Table 16: TURKEY / Meleagris gallopavo m / z S / N 1,1062.8426 ± 0.40 4.59 ± 0.55 2 1197 , 8902 ± 0.39 22.31 ± 2.63 3 1204.8969 ± 0.44 4.30 ± 0.44 4 1289.021 ± 0.40 17.0 ± 2.79 1302.9596 ± 0.40 5.97 ± 1.05 6 1330.0201 ± 0.40 20.96 ± 2.60 7 1370.969 ± 0.40 15.85 ± 1.84 8 1400.0283 ± 0.43 15.11 ± 1 , 47 9 1408.9887 ± 0.42 4.74 ± 0.66 1427.0499 ± 0.45 5.09 ± 0.79 11 1435.0108 ± 0.40 7.17 ± 1.30 12 1448.0247 ± 0.43 5.49 ± 1.13 13 1462.0429 ± 0.41 10.95 ± 1.18 14 1500.0278 ± 0.44 6 , 21 ± 1.15 1528.9564 ± 0.42 19.82 ± 2.66 16 1531.0268 ± 0.41 44.11 ± 4.53 17 1565.0282 ± 0.42 5.09 ± 0.56 18 1618.136 ± 0.44 5.36 ± 0.65 19 1626.1009 ± 0.43 26.35 ± 2.77 1636.9959 ± 0.45 4.67 ± 2.15 21 1658.069 ± 0 , 41 5.34 ± 0.95 22 1750.0242 ± 0.44 15.11 ± 2.87 23 1769.1815 ± 0.43 10.52 ± 1.49 24 1779.1463 ± 0.42 13.99 ± 1.22 25 1794.2246 ± 0.43 65.56 ± 10.25 26 1804.1277 ± 0.41 20.63 ± 2.85 27 1859.1277 ± 0.42 45.64 ± 5.83 28 1870,1512 ± 0.43 7.39 ± 0.84 29 1988,1797 ± 0.44 15.73 ± 1.63 30 2006.2121 ± 0.42 22.7 ± 3.27 31 2063.0984 ± 0 , 50 5.25 ± 0.42 32 2107.2355 ± 0.41 16.62 ± 2.46 33 2115.2649 ± 0.41 7.63 ± 1.76 34 2149.2645 ± 0.50 4.92 ± 0.52 35 2169.2839 ± 0.42 31.31 ± 5.05 36 2183.3197 ± 0.45 7.74 ± 0.96 37 2213.2215 ± 0.45 11.97 ± 2.22 38 2226,2635 ± 0.42 29.78 ± 5.00 39 2233.2586 ± 0.43 28.99 ± 3.14 40 2294.2186 ± 0.44 15.49 ± 1.91 41 2316.217 ± 0 , 45 23.76 ± 3.7 42 2318.3224 ± 0.42 47.72 ± 6.23 43 2374.2201 ± 0.50 16.09 ± 2.15 44 2394.3148 ± 0.44 39.26 ± 8.06 45 2454.1997 ± 0.55 6.94 ± 1.00 46 2480.3435 ± 0.55 6.08 ± 0.69 47 2495.3337 ± 0.46 19.84 ± 3.61 48 2595.3935 ± 0.46 107.29 ± 17.91 49 2611.3686 ± 0.47 7.20 ± 1.06 50 2752.3261 ± 0 , 49 7.36 ± 1.22 51 2981.3256 ± 0.53 6.50 ± 0.95 Table 17: CHICKEN / Gallus gallus m / z S / N 1 1176.1814 ± 0.44 6.09 ± 1 , 14 2 1289.2723 ± 0.44 10.44 ± 1.54 3 1303.1506 ± 0.44 5.26 ± 0.99 4 1322.1959 ± 0.48 5.22 ± 0.84 1402.354 ± 0.47 8.32 ± 1.29 6 1436.2929 ± 0.47 6.38 ± 1.15 7 1459.36 ± 0.47 7.31 ± 1.62 8 1533.3188 ± 0.51 6 , 20 ± 1.10 9 1617.2772 ± 0.44 13.89 ± 5.82 1626.3735 ± 0.48 5.33 ± 0.64 11 1676.3712 ± 0.44 22.08 ± 2.42 12 1723.5079 ± 0.45 20.63 ± 5.40 13 1744.3142 ± 0.49 8.43 ± 1.70 14 1780.4744 ± 0.45 47.53 ± 17.07 1848.358 ± 0 , 45 10.13 ± 3.18 16 1866.3649 ± 0.44 25.72 ± 3.70 17 1929.4195 ± 0.50 7.45 ± 1.17 18 2079.4971 ± 0.44 37.42 ± 5.71 19 2121.4988 ± 0.48 7.40 ± 2.92 20 2125.5259 ± 0.48 7.65 ± 1.18 21 2169.5472 ± 0.45 44.92 ± 10.86 22 2183.5603 ± 0.46 24.36 ± 3.67 23 2192.5972 ± 0.97 14.17 ± 1.93 24 2208.5035 ± 0 , 49 15.30 ± 2.27 25 2218.4723 ± 0.59 6.81 ± 1.03 26 2226.5243 ± 0.47 406.65 ± 93.95 27 2242.4997 ± 0.46 20.34 ± 6.47 28 2249.4828 ± 0.50 7.33 ± 2.24 29 2339.583 ± 0.48 36.14 ± 7.94 30 2373.5346 ± 0.46 73.77 ± 14.02 31 2595.5866 ± 0.48 10.84 ± 2.30 32 2617.6005 ± 0.59 3.85 ± 0.49 33 2915.7269 ± 0.52 55.97 ± 25.42 34 2933.6602 ± 0 , 58 9.88 ± 3.44 35 2955.5974 ± 0.57 6.39 ± 1.31

Claims (13)

REVENDICATIONS1. Procédé d'identification de l'espèce animale d'origine éventuelle des protéines contenues dans un échantillon de matière biologique à tester, caractérisé en ce que l'on réalise les étapes suivantes dans lesquelles : a/ on réalise une préparation peptidique purifiée, lesdits peptides étant obtenus, de préférence par digestion enzymatique, à partir d'un extrait de protéines totales dudit échantillon, et b/ on réalise un spectre de ladite préparation par spectrométrie de masse dite de type MALDI TOF MS ("Matrix-Assisted-LaserûDesorbtionlonisation-Time-Of-Flight"), et c/ on compare le spectre obtenu à l'étape b/avec : c.1/ au moins un spectre de référence d'un extrait peptidique purifié d'un échantillon d'une espèce animale de référence particulière, préalablement réalisé, si on recherche seulement à identifier si ledit échantillon testé comprend des protéines d'une dite espèce animale particulière, ou c.2/ une pluralité de spectres de références préalablement réalisés de différents extraits peptidiques purifiés d'échantillons de respectivement différentes espèces animales de référence constituant une banque de spectres de référence desdites différentes espèces animales, si on cherche à identifier si ledit échantillon testé comprend des protéines d'une espèce animale sélectionnée parmi un groupe d'espèces animales dont au moins un spectre est inclus dans la banque de spectres de référence, et d/ On identifie une espèce animale d'origine du dit échantillon testé comme étant celle d'une (des)dite(s) espèce(s) animale(s) de référence si on retrouve dans le spectre obtenu à l'étape b/ ci-dessus, tous les pics caractéristiques d'un dit spectre de référence de l'étape c/ ci-dessus. REVENDICATIONS1. Process for the identification of the animal species of possible origin of the proteins contained in a sample of biological material to be tested, characterized in that the following steps are carried out in which: a / a purified peptide preparation is carried out, said peptides being obtained, preferably by enzymatic digestion, from an extract of total proteins of said sample, and b / a spectrum of said preparation is carried out by mass spectrometry known as MALDI TOF MS ("Matrix-Assisted-LaserûDesorbtionlonisation-Time -Of-Flight "), and c / the spectrum obtained in step b / is compared with: c.1 / at least one reference spectrum of a purified peptide extract of a sample of a reference animal species particular, previously realized, if one only seeks to identify whether said tested sample comprises proteins of a said particular animal species, or c.2 / a plurality of reference spectra these previously made different purified peptide extracts of samples of respectively different reference animal species constituting a bank of reference spectra of said different animal species, if one seeks to identify if said tested sample comprises proteins of an animal species selected from a group of animal species of which at least one spectrum is included in the reference spectra bank, and d / An animal species of origin of said tested sample is identified as that of one or more of said species ( s) animal (s) of reference if we find in the spectrum obtained in step b / above, all the peaks characteristic of a said reference spectrum of step c / above. 2. Procédé d'identification selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'à l'étape cl, on réalise le(s)dit(s) spectre(s) de référence à partir d'échantillon(s) d'au moins un tissu mou de dite(s) espèce(s) animale(s) de référence, et, à l'étape dl, on identifie un dit tissu d'une espèce animale d'origine dudit échantillon testé comme étant un tissu d'une espèce animale de référence. 2. Identification method according to claim 1, characterized in that in step c1, said reference spectrum (s) is made from a sample (s) of at least a soft tissue of said reference animal species, and in step d1, a said tissue of an animal species of origin of said tested sample is identified as being a tissue of a reference animal species. 3. Procédé d'identification selon la revendication 2, caractérisé en ce que lesdits tissus mous sont choisis parmi les tissus musculaires, adipeux, cutanés, sanguins, pulmonaires, hépatiques, osseux, et, le cas échéant, de pulpe dentaire. 3. Identification method according to claim 2, characterized in that said soft tissues are selected from the muscle, adipose, cutaneous, blood, pulmonary, hepatic, bone, and, where appropriate, pulp tissues. 4. Procédé d'identification selon la revendication 3, caractérisé en ce que lesdits tissus mous sont choisis parmi la pulpe dentaire pour les espèces mammifères et les tissus musculaires pour des espèces animales choisies parmi oiseaux. 4. Identification method according to claim 3, characterized in that said soft tissues are selected from dental pulp for mammalian species and muscle tissue for selected animal species among birds. 5. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que à l'étape a/, on réalise une préparation peptidique présentant une concentration peptidique d'au moins 0,1 mg/ml. 5. Identification method according to one of claims 1 to 4, characterized in that in step a /, there is provided a peptide preparation having a peptide concentration of at least 0.1 mg / ml. 6. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'à l'étape b/ et cl, on réalise des spectres dont les pics sont définis par une paire de coordonnées composés d'un rapport masse/charge (m/z), en tant que coordonnée en abscisses, et d'une intensité absolue relative, en tant que coordonnées en ordonnés, le rapport m/z étant de 500 à 10 000, de préférence de 900 à 3 500. 6. Identification method according to one of claims 1 to 5, characterized in that in step b / and cl, it produces spectra whose peaks are defined by a pair of coordinates composed of a mass ratio / load (m / z), as abscissa coordinate, and relative absolute intensity, as ordinate coordinates, the m / z ratio being from 500 to 10,000, preferably from 900 to 3,500. 7. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que aux étapes b/ et c/, on ne prend en compte les spectres d'échantillons testés et de dits échantillons d'espèce(s) de référence que si lesdits spectres présentent un score de qualité supérieure à 2, ledit score de qualité étant constitué de l'addition des deux notes ni et n2 ayant chacune une valeur de 0 à 6 avec :- ni est la note attribuée en fonction du nombre de pics caractéristiques dudit spectre n, avec n1=0pour n<_8 ni = 1 pour 8<n<_27 . ni = 2 pour 27<n<_43 ni = 3 pour 43<n<_78 ni = 4 pour 78<n<_86 . ni = 5 pour 86<n<_110 ni = 6 pour 110<n, et - n2 est la note attribué en fonction de la valeur du rapport signal/bruit (Rmax) du pic de plus grande intensité dudit spectre, avec . n2 = 0 pour Rmax<_6,8 . n2 = 1 pour 6,8<Rmax<_26,8 . n2 = 2 pour 26,8<Rmax<_52,6 . n2 = 3 pour 52,6<Rmax<_208,6 . n2 = 4 pour 208,2<Rmax<_398,6 . n2 = 5 pour 398,6<Rmax<_1 092,2 . n2 = 6 pour 1 092,2<Rmax. 7. Identification method according to one of claims 1 to 6, characterized in that in steps b / and c /, one takes into account the spectra of samples tested and said species samples (s) of reference that if said spectra have a quality score greater than 2, said quality score consisting of the addition of the two notes ni and n2 each having a value of 0 to 6 with: - ni is the score given according to the number of characteristic peaks of said spectrum n, with n1 = 0 for n <_8 ni = 1 for 8 <n <_27. ni = 2 for 27 <n <_43 ni = 3 for 43 <n <_78 ni = 4 for 78 <n <_86. ni = 5 for 86 <n <_110 ni = 6 for 110 <n, and - n2 is the score given according to the value of the signal-to-noise ratio (Rmax) of the peak of greater intensity of said spectrum, with. n2 = 0 for Rmax <_6.8. n2 = 1 for 6.8 <Rmax <_26.8. n2 = 2 for 26.8 <Rmax <_52.6. n2 = 3 for 52.6 <Rmax <_208.6. n2 = 4 for 208.2 <Rmax <= 398.6. n2 = 5 for 398.6 <Rmax <1.02.2. n2 = 6 for 1 092.2 <Rmax. 8. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce qu'à l'étape c/ de comparaison, on compare le spectre obtenu avec des spectres de référence d'une dite banque comprenant :- les spectres différents d'échantillons de dites espèces animales de référence, et - des spectres d'échantillons peptidiques provenant d'un matérial contenant des protéines utilisées pour les étapes d'extraction et/ou de purification à l'étape a/, et - des spectres de préparations peptidiques purifiées de tissus cutanés humains, notamment obtenus par digestion de kératine.8. Identification method according to one of claims 1 to 7, characterized in that in step c / comparison, comparing the spectrum obtained with reference spectra of a said bank comprising: - the spectra different samples of said reference animal species, and - spectra of peptide samples from a material containing proteins used for the steps of extraction and / or purification in step a /, and - spectra of purified peptide preparations of human cutaneous tissues, in particular obtained by digestion of keratin. 9 Procédé d'identification selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'on réalise des spectres de préparations peptidiques résultant de l'autolyse de l'enzyme, de préférence la trypsine, utilisée pour ladite digestion enzymatique de l'étape a/, et des spectres de préparations peptidiques purifiées provenant de la digestion enzymatique de protéines d'une colonne de purification utilisée à l'étape a/.9 Identification method according to Claim 8, characterized in that spectra of peptide preparations resulting from the autolysis of the enzyme, preferably trypsin, used for said enzymatic digestion of step a /, are prepared. and spectra of purified peptide preparations from the enzymatic digestion of proteins of a purification column used in step a /. 10. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé en ce qu'aux étapes b/ et c/, on réalise les spectres de référence comprenant les spectres de pulpe dentaire des 13 espèces mammifères de référence choisies parmi les espèces suivantes : homme (Homo sapiens), boeuf (Bos taurus), chèvre (Capra hircus), dromadaire (Camelius dromedarius), sanglier (Sus scrofa), cochon (Sus scrofa subsp. domesticus), chevreuil (Capreolus), lapin (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), cochon d'Inde (Cavia porcellus), chat (Felix catus), chien (Canis familiaris), renard (Vulpes vulpes), et les spectres de tissus musculaires des 4 espèces d'oiseaux choisis parmi les espèces suivantes : canard (Cairina moschata), caille (Cotunix cotunix), dinde (Meleagris gallopavo) et poulet (Gallus gallus).10. Identification method according to one of claims 1 to 9, characterized in that in steps b / and c /, one makes the reference spectra comprising the pulp spectra of the 13 reference mammalian species selected from the following species: man (Homo sapiens), beef (Bos taurus), goat (Capra hircus), camel (Camelius dromedarius), wild boar (Sus scrofa), pig (Sus scrofa subsp. domesticus), deer (Capreolus), rabbit (Ocryctolagus cuniculus), rat (Rattus rattus), guinea pig (Cavia porcellus), cat (Felix catus), dog (Canis familiaris), fox (Vulpes vulpes), and the muscle tissue spectra of the 4 bird species selected from the following species: duck (Cairina moschata), quail (Cotunix cotunix), turkey (Meleagris gallopavo) and chicken (Gallus gallus). 11. Procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé en ce qu'aux étapes b/ et c/, on compare le spectre de l'échantillon testé avec les spectres de référence comprenant des spectres de pulpe dentaire de 13 espèces mammifères et des spectres de tissus musculaires de 4 espèces d'oiseaux, comprenant les pics caractéristiques mentionnés dans les tableaux 1 à 17 suivants, danslesquels les différents pics caractéristiques sont numérotés dans la première colonne, et les paramètres suivants des deuxième, troisième, quatrième colonnes ont les significations suivantes - m/z : rapports (masse/charge) en abscisse des différents pics 5 caractéristiques du spectre, les différentes valeurs de m/z pouvant varier de <1% dans les tableaux 1 à 17. - S/N : rapports (intensité du pic/intensité du bruit de fond) des différents pics caractéristiques du spectre - tableau 1 : 40 pics pour l'espèce Homo sapiens HUMAIN/ Homo sapiens m/z S/N 1 1105,4691 ± 0,33 11,36 ± 4,82 2 1189,4838 ± 0,33 22,54 ± 13,7 3 1235,5162 ± 0,39 4,42 ± 1,15 4 1454,2891 ± 0,50 5,82 ± 3,43 1459,5939 ± 0,33 9,38 ± 4,38 6 1467,7537 ± 0,32 95,32 ± 26,22 7 1493,6722 ± 0,31 13,54 ± 5,40 8 1533,6058 ± 0,34 3,84 ± 1,63 9 1546,7168 ± 0,32 15,14 ± 7,75 1580,6741 ± 0,34 7,26 ± 2,62 11 1586,6692 ± 0,36 10,28 ± 4,30 12 1623,7253 ± 0,31 35,58 ± 12,60 13 1699,7733 ± 0,34 4,00 ± 1,11 14 1742,7811 ± 0,32 7,86 ± 1,72 1812,8048 ± 0,30 5,84 ± 2,26 16 1848,8149 ± 0,31 8,80 ± 5,40 17 1898,9629 ± 0,31 86,66 ± 34,18 18 1961,9419 ± 0,30 16,68 ± 10,56 19 2003,953 ± 0,30 14,82 ± 9,54 20 2027,9949 ± 0,36 6,10 ± 1,62 21 2062,0375 ± 0,33 11,34 ± 3,21 22 2081,0111 ± 0,31 40,04 ± 11,89 23 2090,0478 ± 0,35 8,02 ± 2,67 24 2096,9947 ± 0,33 4,98 ± 0,51 25 2104,9879 ± 0,36 6,32 ± 3,05 26 2120,9851 ± 0,30 6,98 ± 3,70 27 2188,0805 ± 0,33 5,06 ± 1,30 28 2198,9741 ± 0,41 7,40 ± 5,46 29 2232,0813 ± 0,37 7,56 ± 3,49 30 2265,1099 ± 0,34 10,06 ± 3,43 31 2281,1185 ± 0,42 5,22 ± 2,27 32 2284,1348 ± 0,38 12,44 ± 7,69 33 2410,1529 ± 0,39 11,18 ± 6,11 34 2513,2431 ± 0,43 11,40 ± 7,02 35 2801,4092 ± 0,52 5,46 ± 4,03 36 2833,4493 ± 0,51 8,38 ± 5,84 37 2847,4426 ± 0,53 19,68 ± 4,58 38 2885,5042 ± 0,52 17,22 ± 10,92 39 2957,5294 ± 0,61 17,44 ± 13,35 40 2960,487 ± 0,48 11,56 ± 9,83 - tableau 2 : 42 pics pour l'espèce Bos taurus BîUF/ Bos taurus m/z S/N 1 1032,4211 ± 0,5 3,25 ± 0,21 2 1088,3531 ± 0,36 3,57 ± 0,18 3 1095,4479 ± 0,40 5,7 ± 0,9 4 1105,4887 ± 0,39 22,25 ± 4,33 1208,5856 ± 0,41 19,67 ± 3,62 6 1264,5358 ± 0,47 6,5 ± 0,39 7 1267,6053 ± 0,47 7,63 ± 0,5 8 1280,6518 ± 0,47 6,93 ± 0,95 9 1295,5792 ± 0,43 5,36 ± 0,98 10 1435,6447 ± 0,43 27,84 ± 9,39 11 1443,6726 ± 0,43 16,41 ± 6,99 12 1459,66 ± 0,42 24,18 ± 5,29 13 1473,6181 ± 0,44 13,82 ± 5,39 14 1532,7175 ± 0,44 7,13 ± 2,11 15 1586,739 ± 0,45 17,5 ± 6,11 16 1648,7907 ± 0,42 12,87 ± 4,54 17 1655,7819 ± 0,40 7,12 ± 2,47 18 1676,7804 ± 0,45 8,59 ± 2,49 19 1783,7755 ± 0,52 6,24 ± 3,09 20 1848,8523 ± 0,43 18,53 ± 4,85 21 1921,9168 ± 0,42 10,37 ± 5,01 22 1937,9593 ± 0,43 25,7 ± 7,00 23 1975,9957 ± 0,43 24,25 ± 2,89 24 1997,0015 ± 0,43 21,09 ± 2,15 25 2019,9858 ± 0,43 13,46 ± 4,17 26 2043,8226 ± 0,52 7,61 ± 4,48 27 2199,0449 ± 0,46 11,18 ± 4,01 28 2253,1452 ± 0,47 16,33 ± 3,24 29 2294,108 ± 0,46 12,71 ± 4,18 30 2309,0977 ± 0,48 10,46 ± 4,55 31 2410,2159 ± 0,48 14,36 ± 4,23 32 2418,2116 ± 0,51 10,91 ± 5,11 33 2487,2879 ± 0,49 12,4 ± 4,79 34 2513,2775 ± 0,50 11,03 ± 5,39 35 2565,303 ± 0,48 9,5 ± 5,77 36 2644,3584 ± 0,49 9,3 ± 5,96 37 2660,3436 ± 0,50 7,35 ± 6,66 38 2703,264 ± 0,61 9,75 ± 6,39 39 2719,3375 ± 0,51 11,85 ± 6,06 40 2735,378 ± 0,48 10,07 ± 6,72 41 2853,5012 ± 0,53 11,84 ± 6,55 42 2869,5217 ± 0,50 19,65 ± 5,67 - tableau 3 : 16 pics pour l'espèce Felix catus CHAT/ Felix catus m/z S/N 1 1105,4819 ± 0,40 16,4 ± 4,67 2 1409,731 ± 0,42 16,56 ± 4,24 3 1459,6161 ± 0,44 12,96 ± 6,41 4 1565,6834 ± 0,47 4,28 ± 0,3 1975,9085 ± 0,47 7,77 ± 2,99 6 2019,91 ± 0,48 7,55 ± 1,04 7 2052,993 ± 0,54 7,1 ± 1,22 8 2198,9268 ± 0,51 7,57 ± 4,15 9 2216,0137 ± 0,53 7,51 ± 1,12 2410,0995 ± 0,53 5,42 ± 1,22 11 2471,1682 ± 0,59 4,58 ± 0,51 12 2703,2172 ± 0,54 7,27 ± 1,34 13 2719,1695 ± 0,58 7,39 ± 1,02 14 2753,2787 ± 0,60 5,6 ± 0,89 2853,3585 ± 0,58 12,54 ± 2,56 16 2869,3346 ± 0,60 8,11 ± 2,80 - tableau 4 : 27 pics pour l'espèce Capra hircus CHEVRE/ Capra hircus m/z S/N 1 1105,4952 ± 0,45 20,51 ± 4,34 2 1152,6321 ± 0,54 7,09 ± 0,65 3 1283,6326 ± 0,47 26,79 ± 50,03 4 1287,6754 ± 0,53 4,73 ± 0,60 5 1435,6636 ± 0,47 19,69 ± 3,60 6 1459,6718 ± 0,48 14,56 ± 2,71 7 1473,6649 ± 0,49 6,65 ± 1,61 8 1585,7541 ± 0,52 15,9 ± 2,37 9 1586,8267 ± 0,56 4,79 ± 2,26 10 1648,8555 ± 0,49 18,34 ± 1,79 11 1743,8433 ± 0,57 4,01 ± 0,53 12 1779,9525 ± 0,54 5,01 ± 0,85 13 1821,8941 ± 0,60 4,14 ± 0,67 14 1848,8849 ± 0,522 6,01 ± 1,24 15 1931,0892 ± 0,61 5,54 ± 0,83 16 1976,0518 ± 0,51 15,48 ± 1,31 17 2020,0432 ± 0,53 12,90 ± 1,70 18 2089,0911 ± 0,56 4,01 ± 0,36 19 2105,0891 ± 0,53 5,95 ± 0,64 20 2199,0823 ± 0,54 8,71 ± 0,91 21 2232,1598 ± 0,52 8,75 ± 1,38 22 2409,233 ± 0,55 12,45 ± 3,27 23 2513,3102 ± 0,56 14,75 ± 2,13 24 2565,3132 ± 0,53 9,49 ± 1,24 25 2718,337 ± 0,57 5,86 ± 1,08 26 2766,393 ± 0,57 7,63 ± 0,80 27 2939,6513 ± 0,78 6,21 ± 1,91 - tableau 5 : 34 pics pour l'espèce Canis familiaris CHIEN/ Canis familiaris m/z S/N 1 1076,439 ± 0,51 4,93 ± 1,13 2 1105,4702 ± 0,43 19,8 ± 3,93 3 1164,3948 ± 0,48 5,34 ± 1,40 4 1261,523 ± 0,49 5,09 ± 0,85 1459,6443 ± 0,49 15,01 ± 2,46 6 1469,7479 ± 0,49 30,59 ± 6,10 7 1473,6046 ± 0,50 6,08 ± 1,09 8 1566,7114 ± 0,51 5,30 ± 0,97 9 1576,7751 ± 0,51 7,65 ± 1,51 10 1586,726 ± 0,52 10,8 ± 2,54 11 1590,7751 ± 0,56 7,91 ± 2,28 12 1743,7845 ± 0,52 32,14 ± 5,29 13 1931,0999 ± 0,61 14,31 ± 3,97 14 1953,1315 ± 0,65 6,72 ± 1,55 15 1992,1264 ± 0,64 31,73 ± 4,78 16 2019,9884 ± 0,54 10,35 ± 1,54 17 2046,072 ± 0,59 11,29 ± 1,69 18 2105,0316 ± 0,61 8,55 ± 1,43 19 2194,0463 ± 0,63 4,89 ± 0,76 20 2198,9959 ± 0,59 12,08 ± 1,84 21 2216,0556 ± 0,65 4,33 ± 0,57 22 2261,2322 ± 0,62 3,78 ± 0,52 23 2271,3189 ± 0,68 4,14 ± 0,67 24 2330,1612 ± 0,71 4,69 ± 0,81 25 2350,1781 ± 0,57 23,29 ± 3,21 26 2497,2595 ± 0,63 3,64 ± 0,30 27 2785,3648 ± 0,66 3,79 ± 0,38 28 2820,4338 ± 0,68 5,03 ± 0,75 29 2847,4481 ± 0,64 56,14 ± 14,88 30 2853,4674 ± 0,63 15,36 ± 16,79 31 2869,4663 ± 0,63 14,07 ± 1,98 32 2911,2221 ± 1,14 8,26 ± 2,84 33 2975,4311 ± 0,71 5,62 ± 0,68 34 2999,5726 ± 0,67 8,04 ± 1,03 - tableau 6 : 19 pics pour l'espèce Capreolus capreolus CHEVREUIL/ Capreolus capreolus m/z S/N1 1060,5119 ± 0,05 9,79 ± 2,19 2 1105,4778 ± 0,47 7,92 ± 2,43 3 1130,5226 ± 0,48 10,94 ± 1,49 4 1152,6769 ± 0,48 69,12 ± 9,23 1161,5632 ± 0,61 6,95 ± 0,80 6 1163,4982 ± 0,46 8,29 ± 1,31 7 1265,789 ± 0,51 365,14 ± 39,36 8 1283,6272 ± 0,53 5,73 ± 0,98 9 1287,671 ± 0,52 13,04 ± 2,69 1309,6568 ± 0,58 8,64 ± 1,62 11 1459,6414 ± 0,54 5,47 ± 1,35 12 1611,7162 ± 0,66 4,78 ± 0,66 13 1648,7969 ± 0,59 5,88 ± 0,79 14 2338,1745 ± 0,60 5,30 ± 1,43 2438,2798 ± 0,61 10,41 ± 1,58 16 2533,3686 ± 0,65 4,35 ± 0,49 17 2757,4638 ± 0,67 6,97 ± 0,92 18 2870,5746 ± 0,61 59,07 ± 7,94 19 2983,6772 ± 0,60 123,53 ± 15,16 - tableau 7 : 23 pics pour l'espèce Cavia porcellus COCHON D'INDE/ Cavia porcellus m/z S/N 1 1105,3159 ± 0,46 7,30 ± 1,29 2 1435,4445 ± 0,50 7,32 ± 1,53 3 1471,4977 ± 0,64 5,05 ± 0,38 4 1501,4659 ± 0,54 6,88 ± 1,45 5 1586,475 ± 0,57 4,93 ± 0,94 6 1743,5634 ± 0,51 33,55 ± 5,54 7 1757,5872 ± 0,58 5,18 ± 0,67 8 1772,5985 ± 0,52 8,45 ± 1,95 9 1930,8638 ± 0,53 14,80 ± 2,42 10 1945,7224 ± 0,56 10,46 ± 0,95 11 1998,7276 ± 1,36 4,04 ± 0,58 12 2014,6332 ± 0,53 13,73 ± 2,92 13 2017,803 ± 0,69 11,49 ± 2,04 14 2087,8499 ± 0,68 4,10 ± 0,54 15 2100,8085 ± 0,59 5,42 ± 1,04 16 2103,8787 ± 0,57 13,20 ± 1,04 17 2124,7526 ± 0,78 4,95 ± 0,77 18 2267,9535 ± 0,56 20,00 ± 2,36 19 2423,011 ± 0,66 5,74 ± 0,54 20 2767,0372 ± 0,61 4,79 ± 0,83 21 2899,1125 ± 0,62 8,94 ± 1,61 22 2915,2734 ± 0,63 62,26 ± 26,86 23 2933,2407 ± 0,62 24,70 ± 7,79 - tableau 8 : 15 pics pour l'espèce Rattus rattus RAT/ Rattus rattus m/z S/N 1 1051,5195 ± 0,49 6,14 ± 1,18 2 1105,4939 ± 0,45 17,93 ± 2,29 3 1451,6588 ± 0,56 4,52 ± 0,44 4 1572,6691 ± 0,61 5,33 ± 0,67 1655,7644 ± 0,55 6,25 ± 0,46 6 1671,7782 ± 0,55 5,1 ± 0,57 7 1840,8591 ± 0,56 4,59 ± 0,73 8 1975,9343 ± 0,59 8,35 ± 0,88 9 2014,9626 ± 0,57 17,4 ± 1,76 2081,9776 ± 0,65 5,05 ± 0,46 11 2098,0493 ± 0,65 4,22 ± 0,48 12 2277,1019 ± 0,61 4,70 ± 0,65 13 2471,2275 ± 0,64 5,96 ± 0,70 14 2679,2954 ± 0,62 5,20 ± 0,59 15 2695,2961 ± 0,61 10,73 ± 1,09 - tableau 9 : 27 pics pour l'espèce Vulpes vulpes RENARD/ Vulpes vulpes m/z S/N 1 1105,4825 ± 0,44 11,51 ± 1,75 2 1437,6805 ± 0,49 11,80 ± 1,22 3 1459,6456 ± 0,50 8,26 ± 1,25 4 1469,7071 ± 0,49 7,40 ± 0,81 1565,7361 ± 0,59 3,71 ± 0,44 6 1655,7488 ± 0,53 3,84 ± 0,52 7 1967,9148 ± 0,58 4,20 ± 0,31 8 1992,1908 ± 0,53 58,24 ± 5,39 9 2012,9696 ± 0,51 5,9 ± 0,52 2019,9618 ± 0,52 5,86 ± 0,73 11 2027,1134 ± 0,54 8,42 ± 0,72 12 2104,0505 ± 0,55 9,02 ± 1,01 13 2198,9672 ± 0,57 4,31 ± 0,55 14 2261,2679 ± 0,57 8,13 ± 1,15 2312,156 ± 0,55 6,31 ± 0,86 16 2350,219 ± 0,53 30,45 ± 3,06 17 2486,2455 ± 0,56 5,67 ± 0,50 18 2719,2766 ± 0,62 4,81 ± 0,59 19 2737,4841 ± 0,61 4,31 ± 0,58 2785,4201 ± 0,64 6,71 ± 0,87 21 2847,4149 ± 0,58 29,51 ± 3,28 22 2853,4495 ± 0,57 8,78 ± 1,13 23 2869,433 ± 0,58 12,14 ± 1,34 24 2911,3189 ± 0,57 26,69 ± 3,64 2957,6348 ± 0,61 16,20 ± 1,52 26 2975,3969 ± 0,64 5,09 ± 0,67 27 2999,5273 ± 0,61 9,83 ± 1,17- tableau 10 : 27 pics pour l'espèce Camelius dromedarius DROMADAIRE/ Camelus dromedarius m/z S/N 1 1105,3464 ± 0,38 37,3 ± 11,10 2 1161,3947± 0,54 3,58 ± 0,41 3 1221,4563 ± 0,48 6,63 ± 1,34 4 1435,5666 ± 0,41 22,88 ± 5,10 1459,5876 ± 0,41 19,89 ± 4,46 6 1469,7191 ±0,59 4,43 ± 0,82 7 1473,5706 ± 0,45 8,41 ± 1,25 8 1496,589 ± 0,43 4,77 ± 0,64 9 1550,6737 ± 0,41 8,52 ± 1,74 1586,6964 ± 0,43 14,96 ± 4,57 11 1634,7595 ± 0,44 6,32 ± 1,05 12 1655,7541 ± 0,40 8,10 ± 2,06 13 1790,8862 ± 0,47 6,73 ± 1,41 14 1961,9612 ± 0,64 6,65 ± 2,09 1976,0538 ± 0,46 31,91 ± 8,44 16 2006,034 ± 0,46 10,18 ± 1,75 17 2043,0622 ± 0,72 11,12 ± 3,86 18 2199,1588 ± 0,49 6,59 ± 1,32 19 2410,3397 ± 0,51 10,28 ± 2,99 2454,3228 ± 0,55 7,60 ± 1,92 21 2471,4173 ± 0,56 7,20 ± 1,62 22 2513,4077 ± 0,56 7,64 ± 1,19 23 2704,9057 ± 0,69 16,44 ± 5,06 24 2719,4889 ± 0,68 13,85 ± 4,69 2727,5048 ± 0,82 8,44 ± 1,73 26 2741,5661 ± 0,57 14,24 ± 3,20 27 2959,7381 ± 0,60 16,35 ±6,67 - tableau 11 : 11 pics pour l'espèce Sus scrofaSANGLIER/ Sus scrofa m/z S/N 1 1105,4757 ± 0,41 4,61 ± 0,67 2 1198,5802 ± 0,44 3,85 ± 0,20 3 1240,5751 ± 0,45 4,08 ± 0,47 4 1296,6194 ± 0,44 15,26 ± 0,61 5 1422,6603 ± 0,44 3,95 ± 0,40 6 1445,6788 ± 0,47 4,65 ± 0,55 7 1459,6576 ± 0,46 7,98 ± 0,77 8 1655,7809 ± 0,49 4,50 ± 0,35 9 1961,9912 ± 0,52 5,79 ± 0,59 10 2013,0061 ± 0,49 4,45 ± 0,55 PORC/ Sus scrofa subsp. domesticus m/z S/N 1 1105,4436 ± 0,39 11,40 ± 1,94 2 1121,4685 ± 0,35 4,83 ± 0,80 3 1240,5708 ± 0,40 15,70 ± 2,95 4 1459,6215 ± 0,43 18,51 ± 3,74 5 1550,7333 ± 0,52 6,07 ± 1,88 6 1655,773 ± 0,48 6,19 ± 1,31 7 1934,1196 ± 0,60 5,81 ± 0,91 8 1961,9572 ± 0,51 18,7 ± 4,10 9 2012,9817 ± 0,53 8,17 ± 1,69 10 2027,0281 ± 0,57 4,23 ± 0,60 1 1 2274,1078 ± 0,54 5,87 ± 1,39 12 2549,2212 ± 0,74 5,53 ± 1,34 50 1 2110,0825 ± 0,52 5,63 ± 1,54 tableau 12 : 12 pics pour l'espèce Sus scrofa subsp. Domesticus - tableau 13 : 29 pics pour l'espèce Ocryctolagus cuniculus LAPIN/ Ocryctolagus cuniculus m/z S/N 1 1 1083,488 ± 0,40 5,75 ± 0,60 2 1105,4417 ± 0,40 5,56 ± 0,53 3 1191,4568 ± 0,53 3,51 ± 0,68 4 1261,5512 ± 0,39 5,41 ± 0,47 1277,5677 ± 0,40 24,3 ± 3,11 6 1291,6095 ± 0,40 17,24 ± 2,53 7 1353,8018 ± 0,59 5,81 ± 1,23 8 1467,7551 ± 0,41 21,53 ± 1,71 9 1476,6832 ± 0,42 10,99 ± 0,69 1501,6799 ± 0,49 6,60 ± 0,63 11 1583,8355 ± 0,53 5,50 ± 0,69 12 1860,984 ± 0,47 4,05 ± 0,80 13 1947,9491 ± 0,43 7,32 ± 0,86 14 2005,9523 ± 0,45 5,99 ± 0,63 2027,0162 ± 0,52 4,32 ± 0,38 16 2059,0714 ± 0,40 11,43 ± 2,83 17 2129,1316 ± 0,47 9,25 ± 1,27 18 2193,2125 ± 0,47 93,38 ± 16,15 19 2513,2476 ± 0,51 5,02 ± 0,56 2530,2685 ± 0,51 10,96 ± 1,85 21 2697,4184 ± 0,52 24,83 ± 5,95 22 2719,3218 ± 0,59 8,66 ± 1,24 23 2727,3754 ± 0,58 5,29 ± 0,57 24 2763,366 ± 0,54 6,15 ± 0,86 2785,5103 ± 0,56 4,30 ± 0,59 26 2847,4369 ± 0,54 13,23 ± 2,34 27 2953,6149 ± 0,52 16,41 ± 3,04 28 2959,4107 ± 0,54 5,11 ± 0,72 29 2975,5653 ± 0,58 7,06 ± 1,01 - tableau 14 : 27 pics pour l'espèce Cairina moschata CAILLE/ Cairina moschatam/z S/N 1 1268,9764 ± 0,48 5,71 ± 0,68 2 1289,0057 ± 0,51 4,93 ± 0,44 3 1341,0312 ± 0,55 7,42 ± 0,78 4 1392,0612 ± 0,49 10,15 ± 1,80 1426,1386 ± 0,50 12,72 ± 1,84 6 1477,8833 ± 1,14 6,95 ± 2,03 7 1496,1326 ± 0,50 76,26 ± 19,23 8 1512,1092 ± 0,48 53,34 ± 14,93 9 1518,1556 ± 0,54 10,73 ± 7,02 1528,0942 ± 0,49 13,37 ± 2,30 11 1612,1614 ± 0,55 6,48 ± 1,88 12 1744,0626 ± 0,53 7,07 ± 1,60 13 1816,1669 ± 0,54 22,92 ± 6,42 14 1819,2706 ± 0,53 68,91 ± 22,13 1875,1358 ± 0,63 3,82 ± 0,49 16 1975,1895 ± 0,52 27,17 ± 10,04 17 2059,2014 ± 0,52 44,50 ± 15,66 18 2097,2382 ± 0,53 20,82 ± 8,41 19 2169,2739 ± 0,58 6,63 ± 1,77 2185,277 ± 0,59 9,82 ± 2,90 21 2349,216 ± 0,57 8,33 ± 2,17 22 2393,2572 ± 0,57 8,25 ± 1,95 23 2720,1396 ± 0,60 3,80 ± 0,43 24 2807,1634 ± 0,65 21,74 ± 6,03 2910,1852 ± 0,81 23,92 ± 7,12 53 26 2921,1417 ± 0,60 25,92 ± 4,04 27 2996,2599 ± 0,62 12,55 ± 4,65 - tableau 15 : 34 pics pour l'espèce Cotunix cotunix CANARD/ Cotunix cotunix m/z S/N 1 1100,9083 ± 0,40 20,76 ± 5,15 2 1153,9393 ± 0,39 9,84 ± 2,07 3 1197,9438 ± 0,41 732,17 ± 141,32 4 1211,9169 ± 0,41 5,82 ± 1,33 1213,917 ± 0,39 12,59 ± 2,21 6 1229,921 ± 0,40 12,99 ± 3,02 7 1326,0306 ± 0,41 19,40 ± 3,77 8 1343,0595 ± 0,45 7,21 ± 1,51 9 1397,039 ± 0,48 7,26 ± 1,51 1400,0866 ± 0,46 10,75 ± 3,70 11 1491,2054 ± 0,43 117,91 ± 43,57 12 1507,1304 ± 0,44 9,85 ± 2,78 13 1588,2131 ± 0,46 14,78 ± 3,38 14 1652,141 ± 0,45 8,52 ± 2,02 1658,1653 ± 0,44 14,47 ± 3,04 16 1691,1782 ± 0,47 6,71 ± 1,41 17 1710,201 ± 0,4 5,42 ± 0,88 18 1794,3156 ± 0,46 30,49 ± 9,22 19 1859,2355 ± 0,45 9,58 ± 1,91 1867,228 ± 0,49 6,31 ± 1,37 21 1982,3498 ± 0,47 11,38 ± 1,5 22 1988,253 ± 0,49 9,36 ± 1,76 23 1993,2482 ± 0,48 9,02 ± 1,73 24 2006,3257 ± 0,4 6,70 ± 1,26 25 2156,4175 ± 0,47 97,65 ± 17,65 26 2172,377 ± 0,47 7,16 ± 1,48 27 2200,4237 ± 0,46 81,68 ± 24,38 28 2226,3979 ± 0,46 36,58 ± 7,29 29 2281,4769 ± 0,49 10,82 ± 2,33 30 2294,3469 ± 0,47 10,38 ± 2,61 31 2394,4437 ± 0,4 15,96 ± 4,12 32 2595,47 ± 0,55 27,06 ± 5,52 33 2871,5033 ± 0,50 49,54 ± 8,78 34 2988,5892 ± 0,52 27,04 ± 9,24 - tableau 16 : 51 pics pour l'espèce Meleagris gallopavo DINDE/ Meleagris gallopavo m/z S/N 1 1062,8426 ± 0,40 4,59 ± 0,55 2 1197,8902 ± 0,39 22,31 ± 2,63 3 1204,8969 ± 0,44 4,30 ± 0,44 4 1289,021 ± 0,40 17,0 ± 2,79 1302,9596 ± 0,40 5,97 ± 1,05 6 1330,0201 ± 0,40 20,96 ± 2,60 7 1370,969 ± 0,40 15,85 ± 1,84 8 1400,0283 ± 0,43 15,11 ± 1,47 9 1408,9887 ± 0,42 4,74 ± 0,66 10 1427,0499 ± 0,45 5,09 ± 0,79 11 1435,0108 ± 0,40 7,17 ± 1,30 12 1448,0247 ± 0,43 5,49 ± 1,13 13 1462,0429 ± 0,41 10,95 ± 1,18 14 1500,0278 ± 0,44 6,21 ± 1,15 15 1528,9564 ± 0,42 19,82 ± 2,66 16 1531,0268 ± 0,41 44,11 ± 4,53 17 1565,0282 ± 0,42 5,09 ± 0,56 18 1618,1136 ± 0,44 5,36 ± 0,65 19 1626,1009 ± 0,43 26,35 ± 2,77 20 1636,9959 ± 0,45 4,67 ± 2,15 21 1658,069 ± 0,41 5,34 ± 0,95 22 1750,0242 ± 0,44 15,11 ± 2,87 23 1769,1815 ± 0,43 10,52 ± 1,49 24 1779,1463 ± 0,42 13,99 ± 1,22 25 1794,2246 ± 0,43 65,56 ± 10,25 26 1804,1327 ± 0,41 20,63 ± 2,85 27 1859,1327 ± 0,42 45,64 ± 5,83 28 1870,1512 ± 0,43 7,39 ± 0,84 29 1988,1797 ± 0,44 15,73 ± 1,63 30 2006,2121 ± 0,42 22,7 ± 3,27 31 2063,0984 ± 0,50 5,25 ± 0,42 32 2107,2355 ± 0,41 16,62 ± 2,46 33 2115,2649 ± 0,41 7,63 ± 1,76 34 2149,2645 ± 0,50 4,92 ± 0,52 35 2169,2839 ± 0,42 31,31 ± 5,05 36 2183,3197 ± 0,45 7,74 ± 0,96 37 2213,2215 ± 0,45 11,97 ± 2,22 38 2226,2635 ± 0,42 29,78 ± 5,00 39 2233,2586 ± 0,43 28,99 ± 3,14 40 2294,2186 ± 0,44 15,49 ± 1,91 41 2316,217 ± 0,45 23,76 ± 3,7 42 2318,3224 ± 0,42 47,72 ± 6,23 43 2374,2201 ± 0,50 16,09 ± 2,15 44 2394,3148 ± 0,44 39,26 ± 8,06 45 2454,1997 ± 0,55 6,94 ± 1,00 46 2480,3435 ± 0,55 6,08 ± 0,69 47 2495,3337 ± 0,46 19,84 ± 3,61 48 2595,3935 ± 0,46 107,29 ± 17,91 49 2611,3686 ± 0,47 7,20 ± 1,06 50 2752,3261 ± 0,49 7,36 ± 1,22 51 2981,3256 ± 0,53 6,50 ± 0,95 - tableau 17 : 35 pics pour l'espèce Gallus gallus POULET/ Gallus gallus m/z S/N 1 1176,1814 ± 0,44 6,09 ± 1,14 2 1289,2723 ± 0,44 10,44 ± 1,54 3 1303,1506 ± 0,44 5,26 ± 0,99 4 1322,1959 ± 0,48 5,22 ± 0,84 1402,354 ± 0,47 8,32 ± 1,29 6 1436,2929 ± 0,47 6,38 ± 1,15 7 1459,36 ± 0,47 7,31 ± 1,62 8 1533,3188 ± 0,51 6,20 ± 1,10 9 1617,2772 ± 0,44 13,89 ± 5,82 10 1626,3735 ± 0,48 5,33 ± 0,64 11 1676,3712 ± 0,44 22,08 ± 2,42 12 1723,5079 ± 0,45 20,63 ± 5,40 13 1744,3142 ± 0,49 8,43 ± 1,70 14 1780,4744 ± 0,45 47,53 ± 17,07 15 1848,358 ± 0,45 10,13 ± 3,18 16 1866,3649 ± 0,44 25,72 ± 3,70 17 1929,4195 ± 0,50 7,45 ± 1,17 18 2079,4971 ± 0,44 37,42 ± 5,71 19 2121,4988 ± 0,48 7,40 ± 2,92 20 2125,5259 ± 0,48 7,65 ± 1,18 21 2169,5472 ± 0,45 44,92 ± 10,86 22 2183,5603 ± 0,46 24,36 ± 3,67 23 2192,5972 ± 0,97 14,17 ± 1,93 24 2208,5035 ± 0,49 15,30 ± 2,27 25 2218,4723 ± 0,59 6,81 ± 1,03 26 2226,5243 ± 0,47 406,65 ± 93,95 27 2242,4997 ± 0,46 20,34 ± 6,47 28 2249,4828 ± 0,50 7,33 ± 2,24 29 2339,583 ± 0,48 36,14 ± 7,94 30 2373,5346 ± 0,46 73,77 ± 14,02 31 2595,5866 ± 0,48 10,84 ± 2,30 32 2617,6005 ± 0,59 3,85 ± 0,49 33 2915,7269 ± 0,52 55,97 ± 25,42 34 2933,6602 ± 0,58 9,88 ± 3,44 35 2955,5974 ± 0,57 6,39 ± 1,3111. Identification method according to one of claims 1 to 10, characterized in that in steps b / and c /, the spectrum of the tested sample is compared with the reference spectra comprising spectra of dental pulp of 13 mammalian species and muscle tissue spectra of 4 bird species, including the characteristic peaks mentioned in the following Tables 1 to 17, in which the different characteristic peaks are numbered in the first column, and the following parameters of the second, third, fourth columns have the following meanings - m / z: ratios (mass / load) on the abscissa of the different peaks 5 characteristics of the spectrum, the different values of m / z being able to vary from <1% in tables 1 to 17. - S / N: ratios (intensity of the peak / intensity of the background noise) of the different characteristic peaks of the spectrum - Table 1: 40 peaks for the species Homo sapiens HUMAN / Homo sapiens m / z S / N 1 1105,469 1 ± 0.33 11.36 ± 4.82 2 1189.4838 ± 0.33 22.54 ± 13.7 3 1235.5162 ± 0.39 4.42 ± 1.15 4 1454.2891 ± 0.50 5.82 ± 3.43 1459.5939 ± 0.33 9.38 ± 4.38 6 1467.7537 ± 0.32 95.32 ± 26.22 7 1493.6722 ± 0.31 13.54 ± 5, 40 8 1533,6058 ± 0.34 3.84 ± 1.63 9 1546.7168 ± 0.32 15.14 ± 7.75 1580.6741 ± 0.34 7.26 ± 2.62 11 1586.6692 ± 0.36 10.28 ± 4.30 12 1623.7253 ± 0.31 35.58 ± 12.60 13 1699.7733 ± 0.34 4.00 ± 1.11 14 1742.7811 ± 0.32 7, 86 ± 1.72 1812.8048 ± 0.30 5.84 ± 2.26 16 1848.8149 ± 0.31 8.80 ± 5.40 17 1898.9629 ± 0.31 86.66 ± 34.18 18 1961.9419 ± 0.30 16.68 ± 10.56 19 2003.953 ± 0.30 14.82 ± 9.54 20 2027.9949 ± 0.36 6.10 ± 1.62 21 2062.0375 ± 0 , 33 11.34 ± 3.21 22 2081.0111 ± 0.31 40.04 ± 11.89 23 2090.0478 ± 0.35 8.02 ± 2.67 24 2096.9947 ± 0.33 4.98 ± 0.51 25 2104.9879 ± 0.36 6.32 ± 3.05 26 2120.9851 ± 0.30 6.98 ± 3.70 27 2188.0805 ± 0.33 5.06 ± 1.30 28 2198.9741 ± 0.41 7.40 ± 5.46 29 2232.0813 ± 0.37 7.56 ± 3.49 30 2265.1099 ± 0.34 10.0 6 ± 3.43 31 2281.118 ± 0.42 5.22 ± 2.27 32 2284.1488 ± 0.38 12.44 ± 7.69 33 2410.1529 ± 0.39 11.18 ± 6.11 34 2513.2431 ± 0.43 11.40 ± 7.02 35 2801.4092 ± 0.52 5.46 ± 4.03 36 2833.4493 ± 0.51 8.38 ± 5.84 37 2847.4426 ± 0.53 19.68 ± 4.58 38 2885.5042 ± 0.52 17.22 ± 10.92 39 2957.5294 ± 0.61 17.44 ± 13.35 40 2960.487 ± 0.48 11, 56 ± 9.83 - Table 2: 42 peaks for Bos taurus BUUF / Bos taurus m / z S / N 1 1032.4211 ± 0.5 3.25 ± 0.21 2 1088.3531 ± 0.36 3.57 ± 0.18 3 1095.4479 ± 0.40 5.7 ± 0.9 4 1105.4887 ± 0.39 22.25 ± 4.33 1208.5856 ± 0.41 19.67 ± 3, 62 6 1264.5358 ± 0.47 6.5 ± 0.39 7 1267.6053 ± 0.47 7.63 ± 0.5 8 1280.6518 ± 0.47 6.93 ± 0.95 9 1295.5792 ± 0.43 5.36 ± 0.98 10 1435.6447 ± 0.43 27.84 ± 9.39 11 1443.6726 ± 0.43 16.41 ± 6.99 12 1459.66 ± 0.42 24 , 18 ± 5.29 13 1473.6181 ± 0.44 13.82 ± 5.39 14 1532.7175 ± 0.44 7.13 ± 2.11 1586.739 ± 0.45 17.5 ± 6, 11 16 1648.7907 ± 0.42 12.87 ± 4.54 17 1655.7819 ± 0.40 7.12 ± 2.47 18 1676.7804 ± 0.45 8.59 ± 2.49 19 1783.7755 ± 0.52 6.24 ± 3.09 20 1848.8523 ± 0.43 18.53 ± 4.85 21 1921.9168 ± 0 , 42 10.37 ± 5.01 22 1937.9593 ± 0.43 25.7 ± 7.00 23 1975.9957 ± 0.43 24.25 ± 2.89 24 1997.0015 ± 0.43 21.09 ± 2.15 25 2019.9858 ± 0.43 13.46 ± 4.17 26 2043.8226 ± 0.52 7.61 ± 4.48 27 2199.0449 ± 0.46 11.18 ± 4.01 28 2253,1452 ± 0.47 16.33 ± 3.24 29 2294.108 ± 0.46 12.71 ± 4.18 30 2309.0977 ± 0.48 10.46 ± 4.55 31 2410.2159 ± 0 , 48 14.36 ± 4.23 32 2418.2116 ± 0.51 10.91 ± 5.11 33 2487.2879 ± 0.49 12.4 ± 4.79 34 2513.2775 ± 0.50 11.03 ± 5.39 35 2565.303 ± 0.48 9.5 ± 5.77 36 2644.3584 ± 0.49 9.3 ± 5.96 37 2660.3436 ± 0.50 7.35 ± 6.66 38 2703.264 ± 0.61 9.75 ± 6.39 39 2719.3375 ± 0.51 11.85 ± 6.06 40 2735.378 ± 0.48 10.07 ± 6.72 41 2853.5012 ± 0 , 53 11.84 ± 6.55 42 2869.5217 ± 0.50 19.65 ± 5.67 - Table 3: 16 peaks for Felix catus CHAT / Felix catus m / z S / N 1 1105.4819 ± 0.40 16.4 ± 4.67 2 1409.731 ± 0.42 16.56 ± 4.24 3 1459.6161 ± 0.44 12.96 ± 6.41 4 1565.6834 ± 0.47 4.28 ± 0.3 1975.9085 ± 0.47 7.77 ± 2.99 6 2019.91 ± 0, 48 7.55 ± 1.04 7 2052.993 ± 0.54 7.1 ± 1.22 8 2198.9268 ± 0.51 7.57 ± 4.15 9 2216.0137 ± 0.53 7.51 ± 1.12 2410.0995 ± 0.53 5.42 ± 1.22 11 2471.1682 ± 0.59 4.58 ± 0.51 12 2703.2172 ± 0.54 7.27 ± 1.34 13 2719, 1695 ± 0.58 7.39 ± 1.02 14 2753.2787 ± 0.60 5.6 ± 0.89 2853.3585 ± 0.58 12.54 ± 2.56 16 2869.3346 ± 0.60 8 , 11 ± 2.80 - Table 4: 27 peaks for the species Capra hircus CHEVRE / Capra hircus m / z S / N 1 1105.4952 ± 0.45 20.51 ± 4.34 2 1152.6321 ± 0, 54 7.09 ± 0.65 3 1283.6326 ± 0.47 26.79 ± 50.03 4 1287.6754 ± 0.53 4.73 ± 0.60 5 1435.6636 ± 0.47 19.69 ± 3.60 6 1459.6718 ± 0.48 14.56 ± 2.71 7 1473.6649 ± 0.49 6.65 ± 1.61 8 1585.7541 ± 0.52 15.9 ± 2.37 9 1586 , 8267 ± 0.56 4.79 ± 2.26 10 1648.8555 ± 0.49 18.34 ± 1.79 11 1743.8433 ± 0.57 4.01 ± 0.53 12 1779.9525 ± 0, 54 5.01 ± 0.85 13 1821.8941 ± 0.60 4.14 ± 0.67 14 1848.8849 ± 0.522 6.01 ± 1.24 15 1931.0892 ± 0.61 5.54 ± 0.83 16 1976.0518 ± 0.51 15.48 ± 1.31 17 2020.0432 ± 0.53 12.90 ± 1.70 18 2089.0911 ± 0.56 4.01 ± 0.36 19 2105.0891 ± 0.53 5.95 ± 0.64 20 2199.0823 ± 0.54 8.71 ± 0.91 21 2232.1598 ± 0 , 52 8.75 ± 1.38 22 2409.233 ± 0.55 12.45 ± 3.27 23 2513.3102 ± 0.56 14.75 ± 2.13 24 2565.3132 ± 0.53 9.49 ± 1.24 25 2718.337 ± 0.57 5.86 ± 1.08 26 2766.393 ± 0.57 7.63 ± 0.80 27 2939.6513 ± 0.78 6.21 ± 1.91 - Table 5: 34 peaks for Canis familiaris CHIEN / Canis familiaris m / z S / N 1,1076.439 ± 0.51 4.93 ± 1.13 2 1105.4702 ± 0.43 19.8 ± 3, 93 3 1164.3948 ± 0.48 5.34 ± 1.40 4 1261.523 ± 0.49 5.09 ± 0.85 1459.6443 ± 0.49 15.01 ± 2.46 6 1469.7479 ± 0.49 30.59 ± 6.10 7 1473.6046 ± 0.50 6.08 ± 1.09 8 1566.7114 ± 0.51 5.30 ± 0.97 9 1576.7751 ± 0.51 7, 65 ± 1.51 10 1586.726 ± 0.52 10.8 ± 2.54 11 1590.7751 ± 0.56 7.91 ± 2.28 12 1743.7845 ± 0.52 32.14 ± 5.29 13 1931.0999 ± 0.61 14.31 ± 3.97 14 1953.1315 ± 0.65 6.72 ± 1 , 55 15 1992,1264 ± 0.64 31.73 ± 4.78 16 2019.9884 ± 0.54 10.35 ± 1.54 17 2046.072 ± 0.59 11.29 ± 1.69 18 2105, 0316 ± 0.61 8.55 ± 1.43 19 2194.0463 ± 0.63 4.89 ± 0.76 20 2198.9959 ± 0.59 12.08 ± 1.84 21 2216.0556 ± 0.65 4.33 ± 0.57 22 2261.2322 ± 0.62 3.78 ± 0.52 23 2271.3189 ± 0.68 4.14 ± 0.67 24 2330.1612 ± 0.71 4.69 ± 0 , 81 25 2350, 1781 ± 0.57 23.29 ± 3.21 26 2497.2595 ± 0.63 3.64 ± 0.30 27 2785.3648 ± 0.66 3.79 ± 0.38 28 2820, 4338 ± 0.68 5.03 ± 0.75 29 2847.4481 ± 0.64 56.14 ± 14.88 30 2853.4674 ± 0.63 15.36 ± 16.79 31 2869.4663 ± 0.63 14.07 ± 1.98 32 2911.2221 ± 1.14 8.26 ± 2.84 33 2975.4311 ± 0.71 5.62 ± 0.68 34 2999.5726 ± 0.67 8.04 ± 1 , 03 - Table 6: 19 peaks for the species Capreolus capreolus HENRY / Capreolus capreolus m / z S / N1 1060.5119 ± 0.05 9.79 ± 2.19 2 1105.4778 ± 0.47 7.92 ± 2.43 3 1130.5226 ± 0.48 10.94 ± 1.49 4 1152.6769 ± 0.48 69.12 ± 9.23 1161.5632 ± 0.61 6.95 ± 0.80 6 1163, 4982 ± 0.46 8.29 ± 1.31 7 1265.789 ± 0.51 365.14 ± 39.36 8 1283.6272 ± 0.53 5.73 ± 0.98 9 1287.671 ± 0.52 13.04 ± 2.69 1309.6568 ± 0.58 8.64 ± 1.62 11 1459.6414 ± 0.54 5.47 ± 1.35 12 1611.7162 ± 0.66 4.78 ± 0.66 13 1648.7969 ± 0.59 5.88 ± 0.79 14 2338.1745 ± 0.60 5.30 ± 1.43 2438.2798 ± 0.61 10.41 ± 1.58 16 2533.3686 ± 0.65 4.35 ± 0.49 17 2757.4638 ± 0, 67 6.97 ± 0.92 18 2870.5746 ± 0.61 59.07 ± 7.94 19 2983.6772 ± 0.60 123.53 ± 15.16 - Table 7: 23 peaks for the species Cavia porcellus PIGLE OF INDIA / Cavia porcellus m / z S / N 1 1105.3159 ± 0.46 7.30 ± 1.29 2 1435.4445 ± 0.50 7.32 ± 1.53 3 1471.4977 ± 0, 64 5.05 ± 0.38 4 1501.4659 ± 0.54 6.88 ± 1.45 5 1586.475 ± 0.57 4.93 ± 0.94 6 1743.5634 ± 0.51 33.55 ± 5.54 7 1757.5872 ± 0.58 5.18 ± 0.67 8 1772.5985 ± 0.52 8.45 ± 1.95 9 1930.8638 ± 0.53 14.80 ± 2.42 10 1945 , 7224 ± 0.56 10.46 ± 0.95 11 1998.7276 ± 1.36 4.04 ± 0.58 12 2014.6332 ± 0.53 13.73 ± 2.92 13 2017.803 ± 0, 69 11.49 ± 2.04 14 2087.8499 ± 0.68 4.10 ± 0.54 15 2100.8085 ± 0.59 5.42 ± 1.04 16 2103.8787 ± 0.57 13.20 ± 1.04 17 2124.7526 ± 0.78 4.95 ± 0.77 18 2267.9535 ± 0.56 20 , 00 ± 2.36 19 2423.011 ± 0.66 5.74 ± 0.54 20 2767.0372 ± 0.61 4.79 ± 0.83 21 2899.1125 ± 0.62 8.94 ± 1, 61 22 2915.2734 ± 0.63 62.26 ± 26.86 23 2933.2407 ± 0.62 24.70 ± 7.79 - Table 8: 15 peaks for Rattus rattus RAT / Rattus rattus m / z S / N 1,1051.5195 ± 0.49 6.14 ± 1.18 2 1105.4939 ± 0.45 17.93 ± 2.29 3 1451.6588 ± 0.56 4.52 ± 0.44 4 1572 , 6691 ± 0.61 5.33 ± 0.67 1655.7644 ± 0.55 6.25 ± 0.46 6 1671.7782 ± 0.55 5.1 ± 0.57 7 1840.8591 ± 0.56 4.59 ± 0.73 8 1975.9343 ± 0.59 8.35 ± 0.88 9 2014.9626 ± 0.57 17.4 ± 1.76 2081.9776 ± 0.65 5.05 ± 0, 46 11 2098.0493 ± 0.65 4.22 ± 0.48 12 2277.1019 ± 0.61 4.70 ± 0.65 13 2471.2275 ± 0.64 5.96 ± 0.70 14 2679.2954 ± 0.62 5.20 ± 0.59 15 2695.2961 ± 0.61 10.73 ± 1.09 - Table 9: 27 peaks for the Vulpes vulpes species RENARD / Vulpes vulpes m / z S / N 1 1105 , 4825 ± 0.44 11.51 ± 1.75 2 1437.6805 ± 0.49 11.80 ± 1.22 3 1459.6456 ± 0.50 8.26 ± 1.25 4 1469.7071 ± 0.49 7.40 ± 0.81 1565.7361 ± 0.59 3, 71 ± 0.44 6 1655.7488 ± 0.53 3.84 ± 0.52 7 1967.9148 ± 0.58 4.20 ± 0.31 8 1992.1908 ± 0.53 58.24 ± 5.39 9 2012.9696 ± 0.51 5.9 ± 0.52 2019.9618 ± 0.52 5.86 ± 0.73 11 2027.134 ± 0.54 8.42 ± 0.72 12 2104.0505 ± 0 , 55 9.02 ± 1.01 13 2198.9672 ± 0.57 4.31 ± 0.55 14 2261.2679 ± 0.57 8.13 ± 1.15 2312.156 ± 0.55 6.31 ± 0.86 16 2350.219 ± 0.53 30.45 ± 3.06 17 2486.2455 ± 0.56 5.67 ± 0.50 18 2719.2766 ± 0.62 4.81 ± 0.59 19 2737 , 4841 ± 0.61 4.31 ± 0.58 2785.4201 ± 0.64 6.71 ± 0.87 21 2847.4149 ± 0.58 29.51 ± 3.28 22 2853.4495 ± 0.57 8.78 ± 1.13 23 2869.433 ± 0.58 12.14 ± 1.34 24 2911.3189 ± 0.57 26.69 ± 3.64 2957.6348 ± 0.61 16.20 ± 1, 52 26 2975.3969 ± 0.64 5.09 ± 0.67 27 2999.5273 ± 0.61 9.83 ± 1.17- Table 10: 27 peaks for the species Camelius dromedarius DROMADAIRE / Camelus dromedarius m / z S / N 1 1105.3464 ± 0.38 37.3 ± 11.10 2 1161.3947 ± 0 , 54 3.58 ± 0.41 3 1221.4563 ± 0.48 6.63 ± 1.34 4 1435.5666 ± 0.41 22.88 ± 5.10 1459.5876 ± 0.41 19.89 ± 4.46 6 1469.7191 ± 0.59 4.43 ± 0.82 7 1473.5706 ± 0.45 8.41 ± 1.25 8 1496.589 ± 0.43 4.77 ± 0.64 9 1550 , 6737 ± 0.41 8.52 ± 1.74 1586.6964 ± 0.43 14.96 ± 4.57 11 1634.7595 ± 0.44 6.32 ± 1.05 12 1655.7541 ± 0.40 8.10 ± 2.06 13 1790.8862 ± 0.47 6.73 ± 1.41 14 1961.9612 ± 0.64 6.65 ± 2.09 1976.0538 ± 0.46 31.91 ± 8, 44 16 2006.034 ± 0.46 10.18 ± 1.75 17 2043.0622 ± 0.72 11.12 ± 3.86 18 2199.1588 ± 0.49 6.59 ± 1.32 19 2410.3397 ± 0.51 10.28 ± 2.99 2454.3228 ± 0.55 7.60 ± 1.92 21 2471.4173 ± 0.56 7.20 ± 1.62 22 2513.4077 ± 0.56 7, 64 ± 1.19 23 2704.9057 ± 0.69 16.44 ± 5.06 24 2719.4889 ± 0.68 13.85 ± 4.69 2727.5048 ± 0.82 8.44 ± 1.73 26 2741.5661 ± 0.57 14.24 ± 3.20 27 2959.7381 ± 0.60 16.35 ± 6.67 - Table 11: 11 peaks for the species Sus scrofaSANGLIER / Sus scrofa m / z S / N 1 1105.4757 ± 0.41 4.61 ± 0.67 2 1198.5802 ± 0.44 3.85 ± 0.20 3 12 40.5751 ± 0.45 4.08 ± 0.47 4 1296.6194 ± 0.44 15.26 ± 0.61 5 1422.6603 ± 0.44 3.95 ± 0.40 6 1445.6788 ± 0 , 47 4.65 ± 0.55 7 1459.6576 ± 0.46 7.98 ± 0.77 8 1655.7809 ± 0.49 4.50 ± 0.35 9 1961.9912 ± 0.52 5.79 ± 0.59 10 2013.0061 ± 0.49 4.45 ± 0.55 PORC / Sus scrofa subsp. domesticus m / z S / N 1 1105.4436 ± 0.39 11.40 ± 1.94 2 1121.4685 ± 0.35 4.83 ± 0.80 3 1240.5708 ± 0.40 15.70 ± 2 , 95 4 1459.6215 ± 0.43 18.51 ± 3.74 5 1550.7333 ± 0.52 6.07 ± 1.88 6 1655.773 ± 0.48 6.19 ± 1.31 7 1934, 1196 ± 0.60 5.81 ± 0.91 8 1961.9572 ± 0.51 18.7 ± 4.10 9 2012.9817 ± 0.53 8.17 ± 1.69 10 2027.0281 ± 0.57 4.23 ± 0.60 1 1 2274.1078 ± 0.54 5.87 ± 1.39 12 2549.2212 ± 0.74 5.53 ± 1.34 50 1 2110.0825 ± 0.52 5.63 ± 1.54 Table 12: 12 peaks for Sus scrofa subsp. Domesticus - Table 13: 29 peaks for the species Ocryctolagus cuniculus RABBIT / Ocryctolagus cuniculus m / z S / N 1 1 1083.488 ± 0.40 5.75 ± 0.60 2 1105.4417 ± 0.40 5.56 ± 0.53 3 1191.4568 ± 0.53 3.51 ± 0.68 4 1261.5512 ± 0.39 5.41 ± 0.47 1277.5677 ± 0.40 24.3 ± 3.11 6 1291 , 6095 ± 0.40 17.24 ± 2.53 7 1353.8018 ± 0.59 5.81 ± 1.23 8 1467.7551 ± 0.41 21.53 ± 1.71 9 1476.6832 ± 0, 42 10.99 ± 0.69 1501.6799 ± 0.49 6.60 ± 0.63 11 1583.8355 ± 0.53 5.50 ± 0.69 12 1860.984 ± 0.47 4.05 ± 0 , 80 13 1947.9491 ± 0.43 7.32 ± 0.86 14 2005.9523 ± 0.45 5.99 ± 0.63 2027.0162 ± 0.52 4.32 ± 0.38 16 2059.0714 ± 0.40 11.43 ± 2.83 17 2129.1136 ± 0.47 9.25 ± 1.27 18 2193.2125 ± 0.47 93.38 ± 16.15 19 2513.2476 ± 0.51 5 , 02 ± 0.56 2530.2685 ± 0.51 10.96 ± 1.85 21 2697.4184 ± 0.52 24.83 ± 5.95 22 2719.3218 ± 0.59 8.66 ± 1.24 23 2727.3754 ± 0.58 5.29 ± 0.57 24 2763.366 ± 0.54 6.15 ± 0.86 2785.5103 ± 0.56 4.30 ± 0.59 26 2847.4369 ± 0 , 54 13.23 ± 2.34 27 2953.6149 ± 0.52 16.41 ± 3.04 28 2959.4107 ± 0.54 5.11 ± 0.72 29 2975.5653 ± 0.58 7.06 ± 1.01 - Table 14: 27 peaks for the species Cairina moschata CAILLE / Cairina moschatam / z S / N 1 1268.9764 ± 0.48 5.71 ± 0.68 2 1289.0057 ± 0.51 4.93 ± 0.44 3 1341.0312 ± 0.55 7.42 ± 0.78 4 1392.0612 ± 0.49 10.15 ± 1.80 1426.1386 ± 0.50 12.72 ± 1.84 6 1477.8833 ± 1.14 6.95 ± 2.03 7 1496, 1326 ± 0.50 76.26 ± 19.23 8 1512.1092 ± 0.48 53.34 ± 14.93 9 1518.1556 ± 0.54 10.73 ± 7.02 1528.0942 ± 0.49 13 , 37 ± 2.30 11 1612.1614 ± 0.55 6.48 ± 1.88 12 1744.0626 ± 0.53 7.07 ± 1.60 13 1816.1669 ± 0.54 22.92 ± 6, 42 14 1819.2706 ± 0.53 68.91 ± 22.13 1875.1358 ± 0.63 3.82 ± 0.49 16 1975.1895 ± 0.52 27.17 ± 10.04 17 2059.2014 ± 0.52 44.50 ± 15.66 18 2097.2382 ± 0.53 20.82 ± 8.41 19 2169.2739 ± 0.58 6.63 ± 1.77 2185.277 ± 0.59 9.82 ± 2.90 21 2349.216 ± 0.57 8.33 ± 2.17 22 2393.2572 ± 0.57 8.25 ± 1.95 23 2720.1396 ± 0.60 3.80 ± 0.43 24 2807,1634 ± 0.65 21.74 ± 6.03 2910.1852 ± 0.81 23 , 92 ± 7.12 53 26 2921.1417 ± 0.60 25.92 ± 4.04 27 2996.2599 ± 0.62 12.55 ± 4.65 - Table 15: 34 peaks for Cotunix cotunix DUCK / Cotunix cotunix m / z S / N 1 1100.9083 ± 0.40 20.76 ± 5.15 2 1153.9393 ± 0.39 9.84 ± 2.07 3 1197.9438 ± 0.41 732.17 ± 141.32 4 1211.9169 ± 0.41 5.82 ± 1.33 1213.917 ± 0.39 12.59 ± 2.21 6 1229.921 ± 0.40 12.99 ± 3.02 7 1326 , 0306 ± 0.41 19.40 ± 3.77 8 1343.0595 ± 0.45 7.21 ± 1.51 9 1397.039 ± 0.48 7.26 ± 1.51 1400.0866 ± 0.46 10.75 ± 3.70 11 1491.2054 ± 0.43 117.91 ± 43.57 12 1507.1304 ± 0.44 9.85 ± 2.78 13 1588.2131 ± 0.46 14.78 ± 3 , 38 14 1652,141 ± 0.45 8.52 ± 2.02 1658.1653 ± 0.44 14.47 ± 3.04 16 1691.1782 ± 0.47 6.71 ± 1.41 17 1710.201 ± 0.4 5.42 ± 0.88 18 1794.3156 ± 0.46 30.49 ± 9.22 19 1859.2355 ± 0.45 9.58 ± 1.91 1867.228 ± 0.49 6, 31 ± 1.37 21 1982.3498 ± 0.47 11.38 ± 1.5 22 1988.253 ± 0.49 9.36 ± 1.76 23 1993.2482 ± 0.48 9.02 ± 1.73 24 2006.3257 ± 0.4 6.70 ± 1.26 25 2156.4175 ± 0.47 97.65 ± 17.65 26 2172.377 ± 0.47 7.16 ± 1.48 27 2200.4237 ± 0.46 81.68 ± 24.38 28 2226.3979 ± 0.46 36.58 ± 7.29 29 2281.4769 ± 0.49 10.82 ± 2.33 30 2294.3469 ± 0.47 10.38 ± 2.61 31 2394.4437 ± 0.4 15.96 ± 4.12 32 2595.47 ± 0 , 55 27.06 ± 5.52 33 2871.5033 ± 0.50 49.54 ± 8.78 34 2988.5892 ± 0.52 27.04 ± 9.24 - Table 16: 51 peaks for the species Meleagris gallopavo TURDE / Meleagris gallopavo m / z S / N 1,1062.8426 ± 0.40 4.59 ± 0.55 2 1197.8902 ± 0.39 22.31 ± 2.63 3 1204.8969 ± 0.44 4 , 30 ± 0.44 4 1289.021 ± 0.40 17.0 ± 2.79 1302.9596 ± 0.40 5.97 ± 1.05 6 1330.0201 ± 0.40 20.96 ± 2.60 7 1370.969 ± 0.40 15.85 ± 1.84 8 1400.0283 ± 0.43 15.11 ± 1.47 9 1408.9887 ± 0.42 4.74 ± 0.66 10 1427.0499 ± 0.45 5.09 ± 0.79 11 1435.0108 ± 0.40 7.17 ± 1.30 12 1448.0247 ± 0.43 5.49 ± 1.13 13 1462.0429 ± 0.41 10, 95 ± 1.18 14 1500.0278 ± 0.44 6.21 ± 1.15 15 1528.9564 ± 0.42 19.82 ± 2.66 16 1531.0268 ± 0.41 44.11 ± 4.53 17 1565.0282 ± 0.42 5.09 ± 0.56 18 1618.1136 ± 0.44 5.36 ± 0.65 19 1626.1009 ± 0.43 26.35 ± 2.77 20 1636.9959 ± 0.45 4.67 ± 2.15 21 1658.069 ± 0.41 5, 34 ± 0.95 22 1750.0242 ± 0.44 15.11 ± 2.87 23 1769.1815 ± 0.43 10.52 ± 1.49 24 1779.1463 ± 0.42 13.99 ± 1.22 1794.2246 ± 0.43 65.56 ± 10.25 26 1804.1277 ± 0.41 20.63 ± 2.85 27 1859.1277 ± 0.42 45.64 ± 5.83 28 1870.1512 ± 0.43 7.39 ± 0.84 29 1988,1797 ± 0.44 15.73 ± 1.63 30 2006.2121 ± 0.42 22.7 ± 3.27 31 2063.0984 ± 0.50 5, 25 ± 0.42 32 2107.2355 ± 0.41 16.62 ± 2.46 33 2115.2649 ± 0.41 7.63 ± 1.76 34 2149.2645 ± 0.50 4.92 ± 0.52 35 2169.2839 ± 0.42 31.31 ± 5.05 36 2183.3197 ± 0.45 7.74 ± 0.96 37 2213.2215 ± 0.45 11.97 ± 2.22 38 2226.2635 ± 0.42 29.78 ± 5.00 39 2233.2586 ± 0.43 28.99 ± 3.14 40 2294.2186 ± 0.44 15.49 ± 1.91 41 2316.217 ± 0.45 23, 76 ± 3.7 42 2318.3224 ± 0.42 47.72 ± 6.23 43 2374.2201 ± 0.50 16.09 ± 2.15 44 2394.3148 ± 0.44 39.26 ± 8.06 45 2454.1997 ± 0.55 6.94 ± 1.00 46 2480.3435 ± 0.55 6.08 ± 0.69 47 2495.3337 ± 0.46 19.84 ± 3.61 48 2595.3935 ± 0.46 107.29 ± 17.91 49 2611.3686 ± 0.47 7.20 ± 1.06 50 2752.3261 ± 0.49 7 , 36 ± 1.22 51 2981.3256 ± 0.53 6.50 ± 0.95 - Table 17: 35 peaks for the species Gallus gallus CHICKEN / Gallus gallus m / z S / N 1 1176.1814 ± 0, 44 6.09 ± 1.14 2 1289.2723 ± 0.44 10.44 ± 1.54 3 1303.1506 ± 0.44 5.26 ± 0.99 4 1322.1959 ± 0.48 5.22 ± 0.84 1402.354 ± 0.47 8.32 ± 1.29 6 1436.2929 ± 0.47 6.38 ± 1.15 7 1459.36 ± 0.47 7.31 ± 1.62 8 1533, 3188 ± 0.51 6.20 ± 1.10 9 1617.2772 ± 0.44 13.89 ± 5.82 10 1626.3735 ± 0.48 5.33 ± 0.64 11 1676.3712 ± 0.44 22.08 ± 2.42 12 1723.5079 ± 0.45 20.63 ± 5.40 13 1744.3142 ± 0.49 8.43 ± 1.70 14 1780.4744 ± 0.45 47.53 ± 17 , 07 15 1848.358 ± 0.45 10.13 ± 3.18 16 1866.3649 ± 0.44 25.72 ± 3.70 17 1929.4195 ± 0.50 7.45 ± 1.17 18 2079, 4971 ± 0.44 37.42 ± 5.71 19 2121.4988 ± 0.48 7.40 ± 2.92 20 2125.5259 ± 0.48 7.65 ± 1.18 21 2169.5472 ± 0.45 44.92 ± 10.86 22 2183.5603 ± 0.46 24.36 ± 3.67 23 2192.5972 ± 0.97 14.17 ± 1.93 24 2208.5035 ± 0.49 15.30 ± 2.27 25 2218.4723 ± 0.59 6.81 ± 1.03 26 2226.5243 ± 0.47 406 , 65 ± 93.95 27 2242.4997 ± 0.46 20.34 ± 6.47 28 2249.4828 ± 0.50 7.33 ± 2.24 29 2339.583 ± 0.48 36.14 ± 7, 94 30 2373.5346 ± 0.46 73.77 ± 14.02 31 2595.5866 ± 0.48 10.84 ± 2.30 32 2617.6005 ± 0.59 3.85 ± 0.49 33 2915.7269 ± 0.52 55.97 ± 25.42 34 2933.6602 ± 0.58 9.88 ± 3.44 35 2955.5974 ± 0.57 6.39 ± 1.31 12. Programme d'ordinateur comportant des instructions pour l'exécution des étapes b/ à d/ de dit procédé d'identification selon l'une des revendications 1 à 11.12. Computer program comprising instructions for performing steps b / d said identification process according to one of claims 1 to 11. 13. Support d'enregistrement lisible par un ordinateur sur lequel est enregistré un programme selon la revendication 12. 13. A computer-readable recording medium on which a program according to claim 12 is recorded.
FR1051379A 2010-02-26 2010-02-26 METHOD FOR IDENTIFYING THE ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED Expired - Fee Related FR2956905B1 (en)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR1051379A FR2956905B1 (en) 2010-02-26 2010-02-26 METHOD FOR IDENTIFYING THE ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED
PCT/FR2011/050257 WO2011104462A1 (en) 2010-02-26 2011-02-08 Method for identifying the mammalian animal species at the origin of proteins contained in a sample being tested

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR1051379A FR2956905B1 (en) 2010-02-26 2010-02-26 METHOD FOR IDENTIFYING THE ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2956905A1 true FR2956905A1 (en) 2011-09-02
FR2956905B1 FR2956905B1 (en) 2012-06-01

Family

ID=42332482

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR1051379A Expired - Fee Related FR2956905B1 (en) 2010-02-26 2010-02-26 METHOD FOR IDENTIFYING THE ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED

Country Status (2)

Country Link
FR (1) FR2956905B1 (en)
WO (1) WO2011104462A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015052405A1 (en) * 2013-10-11 2015-04-16 Fondation Mediterranee Infection Method for identifying the mammal animal species of origin for the meat or gelatin of a specimen to be tested

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105241993B (en) * 2015-10-28 2018-03-09 中国科学院天津工业生物技术研究所 The detection method of cashmere in textile
CN109791131B (en) * 2016-09-08 2022-12-02 Dh科技发展私人贸易有限公司 LC/MS/MS analysis for meat species identification of raw and processed meat products

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040234952A1 (en) * 2003-01-07 2004-11-25 Wibke Kallow Process for identifying microoraganisms by means of mass spectrometry

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040234952A1 (en) * 2003-01-07 2004-11-25 Wibke Kallow Process for identifying microoraganisms by means of mass spectrometry

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BUCKLEY MICHAEL ET AL: "A method of isolating the collagen (I) alpha 2 chain carboxytelopeptide for species identification in bone fragments", ANALYTICAL BIOCHEMISTRY, vol. 374, no. 2, March 2008 (2008-03-01), pages 325 - 334, XP022477599, ISSN: 0003-2697 *
BUCKLEY MICHAEL ET AL: "Species identification by analysis of bone collagen using matrix-assisted laser desorption/ionisation time-of-flight mass spectrometry", RAPID COMMUNICATIONS IN MASS SPECTROMETRY, vol. 23, no. 23, December 2009 (2009-12-01), pages 3843 - 3854, XP002593347, ISSN: 0951-4198 *
HOLLEMEYER K ET AL: "Identification and quantification of feathers, down, and hair of avian and mammalian origin using matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry", ANALYTICAL CHEMISTRY, vol. 74, no. 23, 1 December 2002 (2002-12-01), AMERICAN CHEMICAL SOCIETY US, pages 5960 - 5968, XP002593343, DOI: 10.1021/AC020347F *
HOLLEMEYER K ET AL: "Identification of furs of domestic dog, raccoon dog, rabbit and domestic cat by hair analysis using MALDI-ToF mass spectrometry", SPECTROSCOPY EUROPE, vol. 19, no. 2, April 2007 (2007-04-01), JOHN WILEY AND SONS LTD; THE ATRIUM GB, pages 8 - 15, XP008124843 *
MAZZEO M F ET AL: "Fish authentication by MALDI-TOF mass spectrometry.", JOURNAL OF AGRICULTURAL AND FOOD CHEMISTRY, vol. 56, no. 23, 14 November 2008 (2008-11-14), pages 11071 - 11076, XP002593344, DOI: 10.1021/jf8021783 *
MUKOYAMA REI ET AL: "Forensic application of human DNA quantitation: Species identification and human DNA quantitation in dental pulp", INTERNATIONAL CONGRESS SERIES; PROGRESS IN FORENSIC GENETICS 7, 1998, & PROCEEDINGS OF THE 17TH INTERNATIONAL ISFH (INTERNATIONAL SOCIETY FOR FORENSIC HAEMOGENETICS) CONGRE; OSLO, NORWAY; SEPTEMBER 2-6, 1997, pages 133 - 135, XP008124768 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015052405A1 (en) * 2013-10-11 2015-04-16 Fondation Mediterranee Infection Method for identifying the mammal animal species of origin for the meat or gelatin of a specimen to be tested
FR3011937A1 (en) * 2013-10-11 2015-04-17 Assist Publ Hopitaux Marseille METHOD FOR IDENTIFYING ANIMAL MAMMAL ANIMAL SPECIES OF MEAT OR GELATINE ORIGIN OF A SAMPLE TO BE TESTED

Also Published As

Publication number Publication date
WO2011104462A1 (en) 2011-09-01
FR2956905B1 (en) 2012-06-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
McGrath et al. Identifying archaeological bone via non-destructive ZooMS and the materiality of symbolic expression: examples from Iroquoian bone points
Steenwyk et al. Variation among biosynthetic gene clusters, secondary metabolite profiles, and cards of virulence across Aspergillus species
Mezhoud et al. Global quantitative analysis of protein expression and phosphorylation status in the liver of the medaka fish (Oryzias latipes) exposed to microcystin-LR: I. Balneation study
Gauss et al. Analysis of the mouse proteome.(I) Brain proteins: separation by two‐dimensional electrophoresis and identification by mass spectrometry and genetic variation
Martyniuk et al. DIGE and iTRAQ as biomarker discovery tools in aquatic toxicology
Giuffrida et al. Back to the past: deciphering cultural heritage secrets by protein identification
FR2951548A1 (en) METHOD FOR CHARACTERIZING AT LEAST ONE MICROORGANISM BY MASS SPECTROMETRY
CA2704613A1 (en) Non-invasive method for collecting biological data for establishing a diagnosis of a skin pathology
Barker et al. Complexities associated with the molecular and proteomic identification of Paecilomyces species in the clinical mycology laboratory
Ong et al. Mass spectrometry imaging and identification of peptides associated with cephalic ganglia regeneration in Schmidtea mediterranea
Tran et al. Classification of ancient mammal individuals using dental pulp MALDI-TOF MS peptide profiling
EP3024942B1 (en) Method for detecting microbial contamination of a blood sample product by mass spectrum analysis
Longnecker et al. Mining mass spectrometry data: Using new computational tools to find novel organic compounds in complex environmental mixtures
Schweitzer et al. Protein molecular data from ancient (> 1 million years old) fossil material: pitfalls, possibilities and grand challenges
FR2956905A1 (en) METHOD OF IDENTIFYING ANIMAL SPECIES OF THE ORIGIN OF THE PROTEINS CONTAINED IN A SAMPLE TO BE TESTED
Schroeter et al. Deep time paleoproteomics: Looking forward
Horricks et al. Differential protein abundance during the first month of regeneration of the Caribbean star coral Montastraea cavernosa
WO2015052405A1 (en) Method for identifying the mammal animal species of origin for the meat or gelatin of a specimen to be tested
EP3212801B1 (en) Method for identifying a microbe in a clinical sample
FR2967691A1 (en) METHOD FOR IDENTIFYING A FUNGUS, IN PARTICULAR A FILAMENTOUS FUNGUS, AND USES
Kim et al. THE UTILITY OF PROTEOMICS IN ALGAL TAXONOMY: BOSTRYCHIA RADICANS/B. MORITZIANA (RHODOMELACEAE, RHODOPHYTA) AS A MODEL STUDY 1
Yoshida et al. Integrative omics analysis reveals differentially distributed proteins in dimorphic euspermatozoa of the squid, Loligo bleekeri
Iwai et al. Molecular evidence of chemical disguise by the socially parasitic spiny ant Polyrhachis lamellidens (Hymenoptera: Formicidae) when invading a host colony
Maikkara et al. “OMICS” Techniques–Applications and Future Perspectives
Crawford et al. A comparison of field and molecular techniques for sexing beavers

Legal Events

Date Code Title Description
ST Notification of lapse

Effective date: 20131031