FR2473550A1 - Glucose isomerase prepn. by fermentation - using Streptomyces N 1339 and isomerising in presence of cobalt and magnesium ions - Google Patents

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Abstract

Prepn. of glucose isomerase by fermentation of Streptomyces sp. N 1339 for 36-72 h at 24-36 deg. C in a culture medium contg. xylose as inducer, the initial pH being 6.5 to 9. Isomerisation of glucose takes place at 50-80 deg. C and pH 6 to 9 in presence of CoCl2.6H2O at 0.1-3 M. The organism has 4 to 20 times the activity of known organisms. The enzyme is quite stable at 40-65 deg. C and has an optimum pH of 7.0. During isomerisation, optimum low concns. of 10 power minus 4 M Co2+ and 10 power minus 2 M Mg2+ are advised.

Description

L'invention concerne un procédé d'obtention de l'isomérase du glucose, ou glucose-isomérase, à partir d'une souche de Streptomyces. The invention relates to a method for obtaining glucose isomerase, or glucose isomerase, from a strain of Streptomyces.

On sait que l'enzyme appelé glucose-isomérase permet de transformer le D-glucose en D-fructose, qui trouve des applications de plus en plus larges dans l'industrie du traitement des aliments et dans l'alimentation diététique dans un certain nombre de pays développés. La glucose-isomérase, en association avec un complexe d'enzymes amylolytiques ( o( -amylase et gluco-amylase) permet d'obtenir des sirops de glucose-fructose et de fructose directement à partir de l'amidon, à l'aide d'enzymes. It is known that the enzyme called glucose-isomerase transforms D-glucose into D-fructose, which is finding increasing applications in the food processing industry and in the dietetic diet in a number of developed nations. Glucose isomerase, in combination with a complex of amylolytic enzymes (o (-amylase and gluco-amylase) makes it possible to obtain glucose-fructose and fructose syrups directly from starch, using 'enzymes.

Certains procédés d'obtention de la glucose-isomérase sont connus depuis 1957, lorsque R.O. Marshall et E.R. Kooi (29) démontrèrent pour la première fois la possibilité de transformation directe du D-glucose en D-fructose au moyen de cellules appartenant à la souche bactérienne Pseudomonas hydrophila Nr. 491 et 492. Pour obtenir la glucose-isomérase, des micro-organismes du genre Streptomyces et surtout les espèces Str. phaeochromogenes (34,38), Str. venezuelae (I,24), Str. griseus (23), Str. wedmorensis (3), Str. albus (35), Str. flavovirens, Str.achromogenes, Str.achinatus(36), Str.olivocinerous (20,24,26), Str. achromogenes, Str. olivaceus (17,18), et autres, sont le plus largement utilisées.Outre le genre Streptomyces, il existe d'autres producteurs actifs tels que proactinomyces et actinomyces appartenant à d'autres genres : Nocardia, Micromonospora (21,22), Actinoplanes (30,31), Thermoactinomyces, Thermopolyspora (37), et aussi certaines souches bactériennes appartenant aux genres
Aerobacter (20), Acetobacter (28), Lactobacillus (25),
Bacillus (33), Arthrobacter (27), Flavobacterium (4), et autres.
Certain methods for obtaining glucose-isomerase have been known since 1957, when RO Marshall and ER Kooi (29) demonstrated for the first time the possibility of direct transformation of D-glucose into D-fructose by means of cells belonging to the strain. bacterial Pseudomonas hydrophila Nr. 491 and 492. To obtain glucose-isomerase, microorganisms of the genus Streptomyces and especially the species Str. phaeochromogenes (34,38), Str. venezuelae (I, 24), Str. griseus (23), Str. wedmorensis (3), Str. albus (35), Str. flavovirens, Str.achromogenes, Str.achinatus (36), Str.olivocinerous (20,24,26), Str. achromogenes, Str. olivaceus (17,18), and others, are the most widely used. Besides the genus Streptomyces, there are other active producers such as proactinomyces and actinomyces belonging to other genera: Nocardia, Micromonospora (21,22), Actinoplanes (30,31), Thermoactinomyces, Thermopolyspora (37), and also certain bacterial strains belonging to the genera
Aerobacter (20), Acetobacter (28), Lactobacillus (25),
Bacillus (33), Arthrobacter (27), Flavobacterium (4), and others.

Les procédés déjà connus d'obtention de la glucose-isomérase présentent un certain nombre d'inconvénients dûs principalement au fait que les souches productrices combinent rarement un fort degré d'activité de glucose-isomérase avec une température et un optimum de pH favorables de l'enzyme. La température du procédé d'isomérisation, inférieure à 60 - 650C, entraîne un danger de pollution microbienne de la colonie. L'augmentation de la température à 900C diminue la stabilité de l'enzyme, provoque la coloration du sirop et certaines modifications de viscosité.En ce qui concerne l'application industrielle, le pH le plus favorable est de 6,5 à 7,0, car lorsque le pH est supérieur à 7,0 une isomérisation alcaline du glucose se produit avec formation de Dpsicose et coloration du sirop, et un pH inférieur-(moins de 5,5) provoque une dénaturation irréversible de l'enzyme. The already known methods for obtaining glucose-isomerase have a certain number of drawbacks mainly due to the fact that the producing strains rarely combine a high degree of glucose-isomerase activity with a favorable temperature and pH optimum of 1 'enzyme. The temperature of the isomerization process, below 60 - 650C, involves a danger of microbial pollution of the colony. Increasing the temperature to 900C decreases the stability of the enzyme, causes the syrup to color and changes in viscosity. For industrial application, the most favorable pH is 6.5 to 7.0 , because when the pH is higher than 7.0 an alkaline isomerization of glucose occurs with the formation of dyspsis and coloring of the syrup, and a lower pH (less than 5.5) causes an irreversible denaturation of the enzyme.

L'objectif de la présente invention est de procurer un procédé d'obtention de la glucose-isomérase à partir d'une souche de Streptomyces qui présente une grande activité avec un optimum de température élevé et un pH favorable de l'enzyme.  The objective of the present invention is to provide a process for obtaining glucose-isomerase from a strain of Streptomyces which exhibits great activity with a high temperature optimum and a favorable pH of the enzyme.

La souche de Streptomyces sp. Nr. 1339, qui est un producteur de glucose-isomérase, a été isolée de terre de
Bulgarie. 874 souches de Streptomyces ont été triées pour sa découverte. Le triage a été réalisé sur le milieu de culture synthétique modifié Nr. 1 d'après Krassilnikov, la sélection étant réalisée sur deux niveaux de substrat à l'aide de xylose et de xylane. Dans ces conditions, on a découvert 18 souches de Streptomyces qui peuvent développer et produire l'enzyme appelée glucose-isomérase. Parmi ces souches de
Streptomyces, l'espèce Nr. 1339 s'est avérée la plus prometteuse à des fins industrielles. La souche a été déposée dans la collection du State Institute for Drugs Control, bul.
The strain of Streptomyces sp. Nr. 1339, which is a producer of glucose-isomerase, was isolated from
Bulgaria. 874 strains of Streptomyces were sorted for its discovery. The sorting was carried out on the synthetic culture medium modified Nr. 1 according to Krassilnikov, the selection being carried out on two levels of substrate using xylose and xylan. Under these conditions, 18 strains of Streptomyces have been discovered which can develop and produce the enzyme called glucose isomerase. Among these strains of
Streptomyces, the species Nr. 1339 has proven to be the most promising for industrial purposes. The strain was deposited in the collection of the State Institute for Drugs Control, bul.

Vladimir Zaimov Nr. 26, le 29 septembre 1979 sous le numéro 144, et elle possède les caractéristiques morphologiques et biochimiques suivantes.Vladimir Zaimov Nr. 26, September 29, 1979 under number 144, and has the following morphological and biochemical characteristics.

Sur milieu de culture 1 avec une source minérale d'azote (d'après G.F. Gause et ses collaborateurs), les colonies ont habituellement une forme ovale, avec des bords informes, plates avec un centre convexe en forme de dôme et légèrement pliées. Les sporanges sont en spirale avec pas plus de 1 à 3 spires. Sur certains milieux de culture, des corémia se forment. La croissance est bonne. Les spores sont allongées avec des extrémités nettement découpées et une surface inégale. Leur taille est de 0,4 à 0,9 micron de longueur et de 0,3 à 0,6 micron de largeur. Les extrémités ont des angles bien marqués. Dans certains cas, les spores sont légèrement concaves au milieu. Elles se forment par fragmentation. Les colonies sont ovales, avec des bords informes, plates, avec un centre convexe en forme de dôme, légèrement pliées, dans certains cas segmentées radialement. On culture medium 1 with a mineral source of nitrogen (after G.F. Gause and his collaborators), the colonies usually have an oval shape, with shapeless edges, flat with a convex dome-shaped center and slightly folded. The sporangia are spiral with no more than 1 to 3 turns. On some culture media, coremias are formed. The growth is good. The spores are elongated with clearly cut ends and an uneven surface. Their size is 0.4 to 0.9 micron in length and 0.3 to 0.6 micron in width. The ends have well-defined angles. In some cases, the spores are slightly concave in the middle. They are formed by fragmentation. The colonies are oval, with shapeless edges, flat, with a convex dome-shaped center, slightly folded, in some cases segmented radially.

On détermine la coloration du mycélium aérien et du mycélium substratique selon l'échelle de couleur de A.S. The coloration of the aerial mycelium and of the substrate mycelium is determined according to the color scale of A.S.

Bondartsev et l'échelle de Tresner et Backus.Bondartsev and the Tresner and Backus scale.

Avec les différents milieux de culture, la couleur du mycélium aérien passe du gris clair au gris foncé (a4 - a2) suivant les sources de carbone et d'azote. Sur le milieu de culture 1 avec une source minérale d'azote (d'après G.F. With the different culture media, the color of the aerial mycelium changes from light gray to dark gray (a4 - a2) depending on the sources of carbon and nitrogen. On culture medium 1 with a mineral source of nitrogen (after G.F.

Gause et ses collaborateurs), la couleur est gris souris (a4) à gris foncé (a2), et sur milieu de culture 2 avec une source organique d'azote (d'après G.F. Gause) la couleur est gris foncé (a2). Sur des milieux de culture contenant différentes sources de carbone de d'azote, le mycélium aérien est gris à gris foncé.Gause et al.), The color is mouse gray (a4) to dark gray (a2), and on culture medium 2 with an organic source of nitrogen (after G.F. Gause) the color is dark gray (a2). On culture media containing different sources of nitrogen carbon, the aerial mycelium is gray to dark gray.

Sur milieu 1 avec une source minérale d'azote (d'après
G.F. Gause et ses collaborateurs), le mycélium substratique a une coloration citron clair à jaune orangé (d5 - d2). Sur milieu de culture 2 avec une source organique d'azote (d'après G.F. Gause et ses collaborateurs), le mycélium substratique est jaune or, et après culture prolongée, il devient presque châtain (m7 - o7).
On medium 1 with a mineral nitrogen source (from
GF Gause et al.), The substrate mycelium has a light lemon to orange-yellow coloration (d5 - d2). On culture medium 2 with an organic source of nitrogen (according to GF Gause and his collaborators), the substrate mycelium is golden yellow, and after prolonged culture, it becomes almost chestnut (m7 - o7).

Sur des milieux de culture contenant différentes sources de carbone et d'azote, le mycélium substratique est de jaune à jaune grisâtre vert. On culture media containing different sources of carbon and nitrogen, the substrate mycelium is yellow to greyish green yellow.

Sur milieu de culture viande-peptone-gélose : croissance faible, mycélium aérien blanc, très peu abondant, mycélium substratique incolore. On meat-peptone-agar culture medium: weak growth, very sparse white aerial mycelium, colorless substrating mycelium.

Sur milieu de culture pomme de terre-glucose-gélose croissance très bonne, mycélium aérien gris à gris foncé, mycélium substratique brun clair à brun foncé, jaune sur le bord de la colonie, pigment au centre jaune.  On potato-glucose-agar culture medium very good growth, gray to dark gray aerial mycelium, light brown to dark brown substrate mycelium, yellow on the edge of the colony, pigment in the yellow center.

Sur milieu de culture Tchapek avec du saccharose croissance moyenne, mycélium aérien gris clair, mycélium substratique beige. On Tchapek culture medium with medium growth sucrose, light gray aerial mycelium, beige substrate mycelium.

Sur milieu de culture Tchapek avec du glucose : croissance moyenne, mycélium aérien grisâtre, mycélium substratique de couleur crème. On Tchapek culture medium with glucose: medium growth, greyish aerial mycelium, cream-colored substrate mycelium.

Sur milieu de culture avec du saccharose : croissance bonne, mycélium aérien gris, mycélium substratique jaune. On culture medium with sucrose: good growth, gray aerial mycelium, yellow substrate mycelium.

Sur milieu de culture amidon -gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris clair, coloration cendrée pale, mycélium substratique jaune à citron. On starch-agar culture medium: medium growth, light gray aerial mycelium, pale ashy coloration, mycelium yellow to lemon.

Sur milieu de culture amidon-ammoniac, d'après
Mishustin : bonne croissance, mycélium aérien gris à gris foncé, mycélium substratique jaune à jaune clair.
On starch-ammonia culture medium, according to
Mishustin: good growth, gray to dark gray aerial mycelium, yellow to light yellow substrate mycelium.

Sur milieu de culture synthétique selon Krassilnikov : croissance faible à moyenne, mycélium aérien gris beige, mycélium substratique jaune. On synthetic culture medium according to Krassilnikov: low to medium growth, beige gray aerial mycelium, yellow substrate mycelium.

Sur CPI selon N.A. Krassilnikov : croissance bonne, mycélium aérien gris laiteux, gris bleu, mycélium substratique jaune grisâtre vert. On CPI according to N.A. Krassilnikov: good growth, milky gray, blue gray aerial mycelium, greenish yellowish green mycelium.

Sur CPII selon N.A. Krassilnikov : croissance bonne, mycélium aérien gris, un exsudat blanc se sépare, mycélium substratique gris crème. On CPII according to N.A. Krassilnikov: good growth, gray aerial mycelium, a white exudate separates, creamy gray substrate mycelium.

Sur CPIII selon N.A. Krassilnikov : croissance bonne, mycélium aérien gris, mycélium substratique jaune à jaune citron. On CPIII according to N.A. Krassilnikov: good growth, gray aerial mycelium, yellow to lemon yellow substrate mycelium.

Sur CPIV selon N.A. Krassilnikov : croissance moyenne, mycélium aérien gris clair à grisâtre, mycélium substratique de couleur crème. On CPIV according to N.A. Krassilnikov: medium growth, light gray to greyish aerial mycelium, cream-colored substrate mycelium.

Sur CPV selon N.A. Krassilnikov : croissance faible, mycélium aérien blanc, mycélium substratique beige, couleur crème foncée. On CPV according to N.A. Krassilnikov: weak growth, white aerial mycelium, beige substrate mycelium, dark cream color.

Sur milieu de culture synthétique selon Vaxman croissance moyenne, mycélium aérien blanc, gris sur des parties séparées, mycélium substratique jaune à orange. On medium Vaxman synthetic growth medium, white, gray aerial mycelium on separate parts, yellow to orange substrating mycelium.

Sur milieu de culture viande-amidon -gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris, mycélium substratique jaune.  On meat-starch-agar culture medium: medium growth, gray aerial mycelium, yellow substrate mycelium.

Sur peptone-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris à gris foncé, mycélium substratique incolore avec une nuance du mycélium aérien. On peptone agar: good growth, gray to dark gray aerial mycelium, colorless substrate mycelium with a shade of aerial mycelium.

Sur glucose-asparagine-gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris clair, mycélium substratique de couleur jaune à crème. On glucose-asparagine-agar: medium growth, light gray aerial mycelium, yellow to cream colored mycelium substrate.

Sur glycérine-asparagine-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris clair, devenant gris au cours du vieillissement, mycélium substratique jaune foncé. On glycerin-asparagine-agar: good growth, light gray aerial mycelium, becoming gray during aging, dark yellow substrating mycelium.

Sur tyrosine-gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris, dans certaines colonies jaune grisâtre, mycélium substratique jaune foncé à orange. On tyrosine agar: medium growth, gray aerial mycelium, in some greyish yellow colonies, dark yellow to orange mycelium substrate.

Sur tyrosine-caséine-nitrate-gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris cendré, mycélium substratique jaune. On tyrosine-casein-nitrate-agar: medium growth, ashy gray aerial mycelium, yellow substrate mycelium.

Sur glucose-tyrosine-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris crème à gris, mycélium substratique jaune brun. On glucose-tyrosine-agar: good growth, creamy gray to gray aerial mycelium, yellowish brown mycelium.

Sur saccharose-nitrate-gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris, mycélium substratique jaune crème. On sucrose-nitrate-agar: medium growth, gray aerial mycelium, creamy yellow mycelium.

Sur glycérol-calcium-malate-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris clair à gris, mycélium substratique jaune à orange. On glycerol-calcium-malate-agar: good growth, light gray to gray aerial mycelium, yellow to orange substrate mycelium.

Sur peptone-boeuf-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris, mycélium substratique incolore à beige. On peptone-beef-agar: good growth, gray aerial mycelium, colorless to beige substrate mycelium.

Sur avoine-gélose : croissance très bonne, mycélium aérien gris, mycélium substratique jaune clair. On oats-agar: very good growth, gray aerial mycelium, light yellow substrating mycelium.

Sur tomate-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris foncé, mycélium substratique couleur terre cuite. On tomato-agar: good growth, dark gray aerial mycelium, terracotta-colored substrate mycelium.

Sur acétate de plomb-gélose : croissance faible, mycélium aérien grisâtre, mycélium substratique jaune foncé brun. On lead acetate agar: weak growth, greyish aerial mycelium, dark yellow brown mycelium substrate.

Sur fer-peptone-gélose : croissance moyenne, mycélium aérien gris souris, mycélium substratique incolore avec une nuance grise du mycélium aérien. On iron-peptone-agar: medium growth, mouse gray aerial mycelium, colorless substrating mycelium with a gray shade of aerial mycelium.

Sur malte de levure-gélose : croissance bonne, mycélium aérien gris, mycélium substratique orange. On yeast-agar malt: good growth, gray aerial mycelium, orange substrate mycelium.

Tolérance de la souche vis-à-vis de NaCl. La souche présente une faible tolérance vis-à-vis de la concentration du chlorure de sodium dans le milieu. La concentration maximale est de 4 %. A cette concentration, la croissance est faible. Le mycélium aérien est blanc. Le mycélium substrat que est jaune. Une concentration supérieure à 1 % a un effet négatif sur le degré de sporulation. Tolerance of the strain vis-à-vis NaCl. The strain has a low tolerance for the concentration of sodium chloride in the medium. The maximum concentration is 4%. At this concentration, growth is weak. The aerial mycelium is white. The substrate mycelium is yellow. A concentration above 1% has a negative effect on the degree of sporulation.

La souche peptonise le lait écrémé. Au début de la peptonisation, la réaction est acide, et au bout d'un certain temps elle devient alcaline. The strain peptonizes the skim milk. At the start of peptonization, the reaction is acidic, and after a while it becomes alkaline.

La souche dilue la gélatine. Elle se développe très bien sur un milieu de saccharose, mais elle n'intervertit pas le saccharose. Elle se développe très bien sur un milieu amidon-gélose et elle hydrolyse bien l'amidon. The strain dilutes the gelatin. It grows very well on a sucrose medium, but it does not invert sucrose. It grows very well on a starch-agar medium and it hydrolyzes starch well.

Elle ne décompose pas la cellulose et ne réduit pas les nitrates en nitrites. Elle libère de l'acide sulfhydrique. Elle se développe sur des pommes de terre. Le test d'hémolyse est positif et le test de la tyrosinase négatif. It does not break down cellulose and does not reduce nitrates to nitrites. It releases hydrogen sulfide acid. It grows on potatoes. The hemolysis test is positive and the tyrosinase test negative.

On a constaté que sur un milieu de culture basique de
Pridham et Gottlieb la croissance est bonne en présence des sources de carbone suivantes : glucose, fructose, lévulose, xylose, maltose, cellobiose, galactose-, mannitol, arabinose, dextrose, ribose et glycérol.
It was found that on a basic culture medium of
Pridham and Gottlieb growth is good in the presence of the following carbon sources: glucose, fructose, levulose, xylose, maltose, cellobiose, galactose-, mannitol, arabinose, dextrose, ribose and glycerol.

La souche absorbe le salicine dans une faible mesure. The strain absorbs salicin to a small extent.

Elle n'absorbe pas les sources de carbone telles que le lactose, la sorbite, l'inosite, le saccharose et le raffinose. It does not absorb carbon sources such as lactose, sorbite, inosite, sucrose and raffinose.

On constate certaines différences de pigmentation du mycélium aérien et du mycélium substratique suivant la source de carbone. There are certain differences in pigmentation of the aerial mycelium and the substrate mycelium depending on the carbon source.

On a constaté que sur un milieu de culture basique modifié de Pridham et Gottlieb, la croissance de la souche est bonne en présence des sources d'azote suivantes : NH4C1, (NH4)2SO4, (NH4)2HPO4, NH4H2Po4 NH4NO3, Na2HPO4 et carbamide. It was found that on a modified basic culture medium of Pridham and Gottlieb, the growth of the strain is good in the presence of the following nitrogen sources: NH4C1, (NH4) 2SO4, (NH4) 2HPO4, NH4H2Po4 NH4NO3, Na2HPO4 and carbamide .

La croissance est modérée sur un milieu de culture contenant du nitrate de sodium. La souche ne se développe pas sur un milieu de culture contenant du nitrite de sodium. Growth is moderate on a culture medium containing sodium nitrate. The strain does not grow on a culture medium containing sodium nitrite.

On a observé une très bonne croissance de la souche sur des milieux de culture contenant les amino acides suivants : acide asparaginique, asparagine, proline, cystine, tyrosine. La croissance est modérée sur un milieu de culture contenant de la valine, de l'hydroxyproline, de la phénylalanine, de la leucine et de l'alanine. La souche ne se développe pas sur un milieu de culture contenant de l'acide glutamique. A very good growth of the strain was observed on culture media containing the following amino acids: asparaginic acid, asparagine, proline, cystine, tyrosine. Growth is moderate on a culture medium containing valine, hydroxyproline, phenylalanine, leucine and alanine. The strain does not grow on a culture medium containing glutamic acid.

Suivant la source d'azote, on constate certaines différences de pigmentation du mycélium aérien et du mycélium substratique. Depending on the nitrogen source, there are certain differences in pigmentation of the aerial mycelium and of the substrate mycelium.

Selon certaines caractéristiques, la souche de Streptomyces ressemble à Streptomyces griseoflavus, appartenant aux sériesGray d'après Bergey (1974) - Actinomyces griseoflavus du groupe Flavus d'après N.A. Krassilnikov - 1970. According to certain characteristics, the Streptomyces strain resembles Streptomyces griseoflavus, belonging to the Gray series after Bergey (1974) - Actinomyces griseoflavus from the Flavus group after N.A. Krassilnikov - 1970.

Cette dernière se distingue par un certain nombre de propriétés morphologiques, culturelles, physiologiques et biochimiques qui sont décrites dans la caractérisation de l'espèce par Bergey (1974) et par N.A. Krassilnikov (1970).The latter is distinguished by a number of morphological, cultural, physiological and biochemical properties which are described in the characterization of the species by Bergey (1974) and by N.A. Krassilnikov (1970).

Streptomyces griseoflavus, par exemple, possède des spores en batonnets allongés et de forme ovale avec une surface lisse ; il présente une tolérance vis-àvis du chlorure de sodium, de 7 à 10 %. I1 hydrolyse faiblement l'amidon. I1 absorbe le saccharose et la sorbite et n'absorbe pas le galactose. Par conséquent, la souche de Streptomyces Nr.Streptomyces griseoflavus, for example, has spores in elongated, rod-shaped sticks with a smooth surface; it has a tolerance towards sodium chloride, from 7 to 10%. It weakly hydrolyzes the starch. It absorbs sucrose and sorbite and does not absorb galactose. Therefore, the strain of Streptomyces Nr.

1339 n'est pas identique à la souche similaire de Streptomyces griseoflavus (Actinomyces griseoflavus). C'est pourquoi on l'appelle Streptomyces sp. Nr. 1339, appartenant aux séries Gray d'après Bergey (1974) et au groupe Flavus d'après N.A. Krassilnikov (1970).1339 is not identical to the similar strain of Streptomyces griseoflavus (Actinomyces griseoflavus). This is why it is called Streptomyces sp. Nr. 1339, belonging to the Gray series after Bergey (1974) and the Flavus group after N.A. Krassilnikov (1970).

On cultive la souche productrice dans des flacons
Erlenmeyer de 500 ml contenant 50 ml de milieu de culture de fermentation, pendant 36 à 96 heures à une température de 24 à 360C, avec un pH de culture initial de 6,5 à 9,0, sur un dispositif de secouage tournant à 180 - 320 tours par minu te.
We cultivate the producing strain in flasks
500 ml Erlenmeyer flask containing 50 ml of fermentation culture medium, for 36 to 96 hours at a temperature of 24 to 360C, with an initial culture pH of 6.5 to 9.0, on a shaker rotating at 180 - 320 revolutions per minute.

L'isomérisation du glucose en fructose au moyen de la glucose-isomérase de la souche Streptomyces sp. Nr. 1339 peut se faire par traitement direct avec le mycélium frais (séparé par centrifugation à 1 200 tours par minute et lavé trois fois avec un tampon de phosphate 0,05 M à pH 7,0) ou bien avec du mycélium sec (cellules séchées à l'air ou séchées à l'acétone), avec une solution d'enzyme (obtenue après désintégration ultrasonique ou autolyse du matériau cellulaire et séparation du liquide surnageant par centrifugation à 15 000 tours par minute)1 le résultat de la centrifugation de la culture contenant de l'isomérase extracellulaire ou des cellules immobilisées sur un support dur. The isomerization of glucose to fructose by means of the glucose-isomerase of the Streptomyces sp. Nr. 1339 can be done by direct treatment with fresh mycelium (separated by centrifugation at 1200 rpm and washed three times with 0.05 M phosphate buffer at pH 7.0) or with dry mycelium (cells air dried or acetone dried), with an enzyme solution (obtained after ultrasonic disintegration or autolysis of the cellular material and separation of the supernatant liquid by centrifugation at 15,000 rpm) 1 the result of the centrifugation of the culture containing extracellular isomerase or cells immobilized on a hard support.

On détermine la quantité de fructose formé dans le mélange réactionnel en utilisant la méthode cystéine-carbazole (19), et on exprime l'activité de la souche en milligrammes de fructose par ml de liquide de culture ou bien en unités international de glucose-isomérase (G.I.U.). Une
G.I.U. est égale à la quantité d'enzymes qui, à 700C et dans une solution de glucose 1 M de pH 7,0 dans un tampon de phos phate 0,05 M, contenant 1.10 4 M Cal2. 6 H2O et 1.10 M
MgSO4 . 7 H2O, transforme en une minute 1 + mole de glucose en lp, mole de fructose.
The amount of fructose formed in the reaction mixture is determined using the cysteine-carbazole method (19), and the activity of the strain is expressed in milligrams of fructose per ml of culture fluid or in international units of glucose isomerase. (GIU). A
GIU is equal to the quantity of enzymes which, at 700C and in a 1 M glucose solution of pH 7.0 in a 0.05 M phate phos buffer, containing 1.10 4 M Cal2. 6 H2O and 1.10 M
MgSO4. 7 H2O, transforms in one minute 1 + mole of glucose into lp, mole of fructose.

Les avantages du procédé selon l'invention sont les suivants
Pour obtenir la glucose-isomérase, on a utilisé la souche de Streptomyces sp. Nr. 1339, qui possède une grande capacité de bio-synthèse de l'enzyme (12 000 à 20 000
G.I.U.), c'est-à-dire qui est de 4 à 20 fois plus grande que l'activité des souches productrices décrites dans les brevets antérieurs (5 - 6). L'enzyme que l'on obtient se caractérise par un optimum de température élevé (700C)à une faible concentration optimale de Co++ (1,10-4 M) et de Mg+ (1.10 2 M) dans le mélange d'isomérisation. Elle possède un optimum de pH favorable (7,0) et une thermostabilité considérable entre 40 et 650C.
The advantages of the process according to the invention are as follows:
To obtain glucose isomerase, the strain of Streptomyces sp. Nr. 1339, which has a great capacity for bio-synthesis of the enzyme (12,000 to 20,000
GIU), that is to say which is 4 to 20 times greater than the activity of the producing strains described in previous patents (5 - 6). The enzyme obtained is characterized by a high temperature optimum (700C) at a low optimal concentration of Co ++ (1.10-4 M) and Mg + (1.10 2 M) in the isomerization mixture. It has a favorable pH optimum (7.0) and considerable thermostability between 40 and 650C.

L'invention est illustrée par les exemples suivants
Exemple 1.
The invention is illustrated by the following examples
Example 1.

On maintient la souche productrice dans des tubes à essai avec de la gélose inclinée sur des milieux de culture ayant la composition suivante 1. Milieu de culture à base de xylose
Xylose 20 g
Gélose 20 9
KNO3 1,0 g
K2HPO4 0,5 g
MgSO4.7H2O 0,5 g
NaCl 0,5 g CaCO3 1,0 g FeS04 0,001 g eau en quantité suffisante pour faire 1 1.
The producing strain is kept in test tubes with inclined agar on culture media having the following composition 1. Xylose-based culture medium
Xylose 20 g
Agar 20 9
KNO3 1.0 g
K2HPO4 0.5 g
MgSO4.7H2O 0.5 g
NaCl 0.5 g CaCO3 1.0 g FeS04 0.001 g water in sufficient quantity to make 1 1.

2. Pomme de terre-glucose-gélose
Extrait de pomme de terre obtenu à partir de 300 g de pommes de terre bouillies
Glucose 10 g
Gélose 20 g eau en quantité suffisante pour faire 2 1.
2. Potato-glucose-agar
Potato extract obtained from 300 g of boiled potatoes
Glucose 10 g
Agar 20 g water in sufficient quantity to make 2 1.

I1 est recommandé, pour entretenir la souche, de faire alterner les deux milieux de culture ci-dessus. It is recommended, to maintain the strain, to alternate the two culture media above.

A une matière bien ensemencée résultant d'une culture de 10 à 15 jours sur un milieu de culture 1 ou 2 (1 est recommandé), on ajoute 6 ml de milieu de culture d'inoculation ayant la composition suivante
Xylose 1,0 %
Tryptone 2,0 %
MgS04.7H20 0,1 %
K2HPO4 0,25 %
On procède à un lavage de la masse cellulaire et on place le tube à essai sur un dispositif de secouage pendant 24 heures à 300C et à 240 tours par minute.A partir de la culture ainsi adaptée, on ensemence un milieu d'inoculation ayant la composition suivante
Xylose 1,0 %
Extrait de mais 3,0 % (poids à sec) MgS04.7H20 0,1 %
K2HPO4 0,25 % gélose 0,1 %
Après 60 heures de culture dans les conditions susmentionnées, on introduit 5 % de l'inoculum dans un milieu de culture de fermentation ayant la composition suivante
Xylose 1 %
Extrait de mais 3,0 % (poids Ci sec) MgS04.7H20 0,1 %
KC1 0,0075 % CoC12.6H20 0,024 %
On procède à la culture dans des flacons Erlenmeyer de 500 ml contenant 50 ml de milieu de culture de fermentation. On réalise la culture pendant 60 heures à 300C sur un dispositif de secouage à 240 tours par minute.Le pH initial de la culture est de 8,5.
To a well-seeded material resulting from a culture of 10 to 15 days on a culture medium 1 or 2 (1 is recommended), 6 ml of inoculation culture medium having the following composition is added.
Xylose 1.0%
Tryptone 2.0%
MgS04.7H20 0.1%
K2HPO4 0.25%
The cell mass is washed and the test tube is placed on a shaking device for 24 hours at 300 ° C. and at 240 rpm. From the culture thus adapted, an inoculation medium having the next composition
Xylose 1.0%
Corn extract 3.0% (dry weight) MgS04.7H20 0.1%
K2HPO4 0.25% agar 0.1%
After 60 hours of culture under the above conditions, 5% of the inoculum is introduced into a fermentation culture medium having the following composition
Xylose 1%
Corn extract 3.0% (dry weight Ci) MgS04.7H20 0.1%
KC1 0.0075% CoC12.6H20 0.024%
The culture is carried out in 500 ml Erlenmeyer flasks containing 50 ml of fermentation culture medium. The culture is carried out for 60 hours at 300C on a shaker at 240 rpm. The initial pH of the culture is 8.5.

Après 60 heures de culture de Streptomyces sp. Nr. After 60 hours of culture of Streptomyces sp. Nr.

1339, on obtient 140 à 220 g de biomasse humide pour 1 1 de liquide de culture.1339, 140 to 220 g of wet biomass are obtained per 1 1 of culture liquid.

Exemple 2.Example 2.

On procède à l'isomérisation du glucose en fructose au moyen de glucose-isomérase de la souche Streptomyces sp. Nr. The isomerization of the glucose into fructose is carried out by means of glucose-isomerase of the strain Streptomyces sp. Nr.

1339, à une température de 700C, un pH de 7,0, en présence de CoC12.6H20 à une concentration de 1.10 4M, en présence de MgSO4.7H20 à une concentration de 1.10 2M et une concentration de substrat de 1 M.1339, at a temperature of 700C, a pH of 7.0, in the presence of CoC12.6H20 at a concentration of 1.10 4M, in the presence of MgSO4.7H20 at a concentration of 1.10 2M and a substrate concentration of 1 M.

L'activité de la souche de Streptomyces sp. Nr. 1339 est de 130 à 215 mg de fructose par ml de liquide de culture, ou de 12 000 à 20 000 G.I.U. par litre de liquide de culture. The activity of the Streptomyces sp. Nr. 1339 is 130 to 215 mg of fructose per ml of culture fluid, or 12,000 to 20,000 G.I.U. per liter of culture fluid.

REFERENCES 1. Gratcheva I.M., Mositchev M.S., Gravistov A.B.,
Filippov S.A., 1977. Cert. d'auteur URSS nO 542763.
REFERENCES 1. Gratcheva IM, Mositchev MS, Gravistov AB,
Filippov SA, 1977. Cert. from the USSR No. 542763.

Bull. "Otkritia, izobretenia" N.2. Bull. "Otkritia, izobretenia" N.2.

2. Gratcheva I.M., Mositchev M.S., Gravistov A.B.,
Filippov S.A., 1976. Cert. d'auteur URSS nO 534490.
2. Gratcheva IM, Mositchev MS, Gravistov AB,
Filippov SA, 1976. Cert. USSR author No. 534490.

Bull. "Otkritia, izobretenia" N.41. Bull. "Otkritia, izobretenia" N.41.

3. Brevet nO 1361846, Angleterre 4. Brevet nO 3956066, USA 5. Brevet nO 3616221, USA 6. Brevet nO 3884988, USA 7. Brevet nO 1376787, Angleterre 8. Brevet nO 1284218, Angleterre 9. Brevet nO 534490, URSS 10. Brevet nO 534491, URSS 11. Brevet nO 542763, URSS 12. Brevet nO 2219713, BRD 13. Brevet nO 2247922, BRD 14. Brevet nO 2247922, BRD 15. Brevet nO 2018518, BRD 16. Brevet nO 1934461, BRD 17. Brevet nO 2223340, BRD 18. Brevet n 2131984, France 19. Dische Z., Borenfreund E. 1951. J.Biol.Chem., 192, 583 20. Heady R.E., Jacaway W.A. Demande de brevet allemand n
2225864.
3. Patent n ° 1361846, England 4. Patent nO 3956066, USA 5. Patent nO 3616221, USA 6. Patent nO 3884988, USA 7. Patent nO 1376787, England 8. Patent nO 1284218, England 9. Patent nO 534490, USSR 10 Patent no 534491, USSR 11. Patent no 542763, USSR 12. Patent no 2219713, BRD 13. Patent no 2247922, BRD 14. Patent no 2247922, BRD 15. Patent no 2018518, BRD 16. Patent no 1934461, BRD 17. Brevet nO 2223340, BRD 18. Brevet n 2131984, France 19. Dische Z., Borenfreund E. 1951. J.Biol.Chem., 192, 583 20. Heady RE, Jacaway WA German patent application n
2225864.

21. Horwath R.O., Cole G.W. 1973. Brevet n 2156622, France 22. Horwath R.O., Cole G.W. 1973. Brevet n 2247922, RFA 23. Hsu T.Y., Shon S.C. 1964. Sheng Wu Hum Usuen Yu Sheng Wu
Li Isuen Pao, 4, 342.
21. Horwath RO, Cole GW 1973. Patent n 2156622, France 22. Horwath RO, Cole GW 1973. Patent n 2247922, RFA 23. Hsu TY, Shon SC 1964. Sheng Wu Hum Usuen Yu Sheng Wu
Li Isuen Pao, 4, 342.

24. Lizuka H., Ayukawa Y., Suekane M., Kanno M. 1971. brevet
n 3622463 25. Kent C.A., Emery A.N. 1973. J. Appl. Chem. and Biote
chnol., 23, 68.
24. Lizuka H., Ayukawa Y., Suekane M., Kanno M. 1971. patent
n 3622463 25. Kent CA, Emery AN 1973. J. Appl. Chem. and Biote
chnol., 23, 68.

26. Kooi E.R., Smyth R.J. 1972. Food Technol., 26, 9, 57 27. Loe C.K., Lawrence E.N., Long M.E. 1972. brevet n
3645848, USA 28. Lliyd N.E., Lewis L.T., Logan R.M., Patel D.N. 1972.
26. Kooi ER, Smyth RJ 1972. Food Technol., 26, 9, 57 27. Loe CK, Lawrence EN, Long ME 1972. patent n
3645848, USA 28. Lliyd NE, Lewis LT, Logan RM, Patel DN 1972.

brevet n 3694314, USA 29. Marschall R.O., Kooi E.R. 1957. Science, 125, nO 3249,
648 30. Scallet B.L., Shieh K., Ehrenthal I. 1974. Stârke, 26,
12, 405 31. Shieh K.K., Lee H.A., Donnelly B.J., 1974. brevet nO
3834988, USA- 32. Shieh K.K., Donnelly Bit., Lee H.A. 1974. brevet nO
3813320, USA 33. Skot G., Outtrup H. dans "5th Int. Ferment. Symp., 4th
Int. Spec. Sym. Yeasts, Berlin, 1976, Abstr. Pap."
Berlin, 1976, 256.
patent n 3694314, USA 29. Marschall RO, Kooi ER 1957. Science, 125, nO 3249,
648 30. Scallet BL, Shieh K., Ehrenthal I. 1974. Stârke, 26,
12, 405 31. Shieh KK, Lee HA, Donnelly BJ, 1974. Patent no.
3834988, USA- 32. Shieh KK, Donnelly Bit., Lee HA 1974. Patent no.
3813320, USA 33. Skot G., Outtrup H. in "5th Int. Ferment. Symp., 4th
Int. Spec. Sym. Yeasts, Berlin, 1976, Abstr. Pap. "
Berlin, 1976, 256.

34. Strandberg J.W., Smily K.L. 1971. Appl. Microbiol., 21,
4, 588 35. Takasaki Y. brevet n 49981, Japon 36. Takasaki Y. 1971 brevet n 361221, USA 37. Takasaki Y. 1975 brevet n 50-175660, Japon 38. Tsumura M., Sato T., ibid., 1129
34. Strandberg JW, Smily KL 1971. Appl. Microbiol., 21,
4, 588 35. Takasaki Y. patent no. 49981, Japan 36. Takasaki Y. 1971 patent no. 361221, USA 37. Takasaki Y. 1975 patent no 50-175660, Japan 38. Tsumura M., Sato T., ibid., 1129

Claims (2)

REVENDICATIONS 1. Procédé d'obtention de glucose-isomérase, caractérisé en ce qu'il consiste à cultiver la souche productrice d'enzyme 1. Method for obtaining glucose-isomerase, characterized in that it consists in cultivating the enzyme-producing strain Streptomyces sp. Nr. 1339 déposée sous le Nr. 144 au StateStreptomyces sp. Nr. 1339 filed under Nr. 144 at the State Institute for Drugs Control, pendant 36 à 72 heures dans un milieu de culture en utilisant le xylose comme milieu d'inoculation, la température étant maintenue entre 24 et 360C, le pH initial de la culture étant de 6,5 à 9,0, la température d'isomérisation étant de 50 à 800C, le pH étant de 6,0 à 9,0, en présence de CoC12.6H2O et avec une concentration du substrat de 0,1 à 3 M.Institute for Drugs Control, for 36 to 72 hours in a culture medium using xylose as an inoculation medium, the temperature being maintained between 24 and 360C, the initial pH of the culture being from 6.5 to 9.0, the isomerization temperature being from 50 to 800C, the pH being from 6.0 to 9.0, in the presence of CoC12.6H2O and with a substrate concentration of 0.1 to 3 M. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le milieu de culture que l'on utilise a la composition suivante 2. Method according to claim 1, characterized in that the culture medium which is used has the following composition Xylose 1,0 - 2,0 %Xylose 1.0 - 2.0% Extrait de mais 1,5 - 4,0 % (poids à sec)Corn extract 1.5 - 4.0% (dry weight) MgSO4.7H2O 0,05 - 0,2 %MgSO4.7H2O 0.05 - 0.2% KC1 0,005 - 0,01 %KC1 0.005 - 0.01% CoC12.6H2O 0,008 - 0,036 %. CoC12.6H2O 0.008 - 0.036%.
FR8025321A 1979-11-29 1980-11-28 Glucose isomerase prepn. by fermentation - using Streptomyces N 1339 and isomerising in presence of cobalt and magnesium ions Granted FR2473550A1 (en)

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Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE678033A (en) * 1965-05-11 1966-09-01
LU65203A1 (en) * 1971-04-22 1972-07-13
US3694314A (en) * 1970-11-09 1972-09-26 Standard Brands Inc Process for isomerizing glucose to fructose
FR2138797A1 (en) * 1971-05-20 1973-01-05 Cpc International Inc
FR2225514A1 (en) * 1973-04-10 1974-11-08 Roquette Freres
US3957587A (en) * 1973-11-21 1976-05-18 Cpc International Inc. Production of xylose (dextrose) isomerase enzyme preparations

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE678033A (en) * 1965-05-11 1966-09-01
US3694314A (en) * 1970-11-09 1972-09-26 Standard Brands Inc Process for isomerizing glucose to fructose
LU65203A1 (en) * 1971-04-22 1972-07-13
FR2138797A1 (en) * 1971-05-20 1973-01-05 Cpc International Inc
FR2225514A1 (en) * 1973-04-10 1974-11-08 Roquette Freres
US3957587A (en) * 1973-11-21 1976-05-18 Cpc International Inc. Production of xylose (dextrose) isomerase enzyme preparations

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CA1979 *

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