ES2799581T3 - Assay to capture and detect circulating multiple myeloma cells in the blood - Google Patents
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Abstract
Un método para capturar, aislar y analizar células de mieloma múltiple circulantes en una muestra de sangre obtenida de un sujeto de prueba que comprende (a) poner en contacto dicha muestra con partículas magnéticas coloidales que se conjugan con un primer ligando, que es anti-CD138, y un segundo ligando, que es anti-CD38; (b) someter la muestra del paso (a) a un campo magnético para producir una facción separada de células de mieloma múltiple circulantes unidas a partículas magnéticas; (c) tratar la muestra del paso (b) con un primer marcador adicional; y (d) analizar las células de mieloma múltiple circulantes.A method for capturing, isolating and analyzing circulating multiple myeloma cells in a blood sample obtained from a test subject comprising (a) contacting said sample with colloidal magnetic particles that are conjugated to a first ligand, which is anti- CD138, and a second ligand, which is anti-CD38; (b) subjecting the sample from step (a) to a magnetic field to produce a separate faction of circulating multiple myeloma cells attached to magnetic particles; (c) treating the sample from step (b) with an additional first marker; and (d) analyzing circulating multiple myeloma cells.
Description
DESCRIPCIÓNDESCRIPTION
Ensayo para capturar y detectar células de mieloma múltiple circulantes de la sangreAssay to capture and detect circulating multiple myeloma cells in the blood
Solicitudes relacionadasRelated requests
Esta presentación no provisional reivindica la prioridad a una solicitud de patente provisional, la Solicitud de Patente de Estados Unidos N° de Serie 61/510.170, presentada el 21 de julio de 2011.This non-provisional filing claims priority to a provisional patent application, United States Patent Application Serial No. 61 / 510,170, filed on July 21, 2011.
Antecedentes de la invenciónBackground of the invention
El mieloma múltiple (también conocido como mieloma o mieloma de células plasmáticas) es un cáncer hematológico progresivo de las células plasmáticas. La afección se caracteriza por un número excesivo de células plasmáticas en la médula ósea y la sobreproducción de inmunoglobulina monoclonal intacta o cadenas ligeras monoclonales libres.Multiple myeloma (also known as myeloma or plasma cell myeloma) is a progressive hematologic cancer of plasma cells. The condition is characterized by an excessive number of plasma cells in the bone marrow and the overproduction of intact monoclonal immunoglobulin or free monoclonal light chains.
Clínicamente, la enfermedad se diagnostica, clasifica y trata en base a una variedad de parámetros que incluyen la masa de células tumorales de mieloma en base a la cantidad de proteína monoclonal (o mieloma) (proteína M) en el suero y/u orina, junto con las concentraciones de hemoglobina y calcio en suero, el número de lesiones óseas líticas basadas en un estudio esquelético y la presencia o ausencia de insuficiencia renal. Los enfoques adicionales para caracterizar la afección incluyen la detección de más del diez por ciento (10%) de células plasmáticas en un examen de médula ósea, la presencia de plasmacitomas de tejidos blandos y la detección de la cadena ligera de inmunoglobulina sérica kappa y lambda libre. El examen de la médula ósea se realiza usando técnicas estándar de histología e inmunohistoquímica. Puede realizarse una citogenética adicional de muestras de médula ósea para determinar el pronóstico. La vigilancia de seguimiento consiste de evaluaciones químicas y de médula ósea, si está clínicamente indicado debido a su naturaleza invasiva.Clinically, the disease is diagnosed, classified, and treated based on a variety of parameters including the mass of myeloma tumor cells based on the amount of monoclonal protein (or myeloma) (M protein) in serum and / or urine, together with serum hemoglobin and calcium concentrations, the number of lytic bone lesions based on a skeletal study, and the presence or absence of renal failure. Additional approaches to characterizing the condition include the detection of greater than ten percent (10%) of plasma cells in a bone marrow examination, the presence of soft tissue plasmacytomas, and the detection of the serum kappa and lambda immunoglobulin light chain. free. Examination of the bone marrow is performed using standard histology and immunohistochemical techniques. Additional cytogenetics of bone marrow samples can be performed to determine prognosis. Follow-up surveillance consists of chemical and bone marrow evaluations, if clinically indicated due to its invasive nature.
Actualmente, el análisis de citometría de flujo de la médula ósea se está evaluando como una herramienta para la caracterización de la enfermedad y para distinguir entre los trastornos de células plasmáticas neoplásicas de las células plasmáticas normales, y para detectar una enfermedad residual mínima. No obstante, este enfoque continúa dependiendo de un procedimiento invasivo. Hay una necesidad significativa de desarrollar técnicas menos invasivas para detectar, monitorizar y caracterizar la enfermedad a lo largo de su historia y la presencia de estas células en la sangre puede brindar esa oportunidad.Currently, bone marrow flow cytometric analysis is being evaluated as a tool for characterization of disease and to distinguish between neoplastic plasma cell disorders from normal plasma cells, and to detect minimal residual disease. However, this approach continues to rely on an invasive procedure. There is a significant need to develop less invasive techniques to detect, monitor, and characterize disease throughout its history, and the presence of these cells in the blood can provide that opportunity.
Además, se necesita desarrollar herramientas más sensibles para una evaluación más precisa del riesgo y la monitorización de la progresión de la enfermedad en etapas más tempranas de la enfermedad, incluyendo la gammapatía monoclonal de importancia indeterminada (MGUS) y el mieloma múltiple latente. Algunos datos de investigación sugieren que las células plasmáticas circulantes pueden detectarse en etapas tempranas de la enfermedad y pueden correlacionarse con el pronóstico, lo que respalda el uso de una metodología estandarizada para capturar, enumerar y caracterizar estas células en las etapas tempranas de la enfermedad.Additionally, more sensitive tools need to be developed for more accurate risk assessment and monitoring of disease progression in earlier stages of the disease, including monoclonal gammopathy of undetermined significance (MGUS) and latent multiple myeloma. Some research data suggests that circulating plasma cells can be detected in the early stages of the disease and can be correlated with prognosis, supporting the use of a standardized methodology to capture, enumerate, and characterize these cells in the early stages of the disease.
El consenso general dentro de la bibliografía (Report of the European Myeloma NetWork on Multiparametric Flow Cytometry in Multiple Myeloma and Related Disorders. Andy C. Rawstron et al. Haematologica, 2008; 93 (3)) para la identificación de células plasmáticas anormales, particularmente por citometría de flujo, ha incluido varios biomarcadores clave que consisten principalmente de CD138, CD38 y CD45. Los biomarcadores adicionales como CD19 y CD56 también han demostrado utilidad en el diagnóstico.The general consensus within the bibliography (Report of the European Myeloma NetWork on Multiparametric Flow Cytometry in Multiple Myeloma and Related Disorders. Andy C. Rawstron et al. Haematologica, 2008; 93 (3)) for the identification of abnormal plasma cells, particularly By flow cytometry, he has included several key biomarkers consisting primarily of CD138, CD38, and CD45. Additional biomarkers such as CD19 and CD56 have also shown diagnostic utility.
La presente invención investiga las células de mieloma circulantes para evaluar si estos biomarcadores particulares, ya sea solos o en combinación con uno o más biomarcadores adicionales o con FISH, pueden usarse tanto para la captura como para la detección de células plasmáticas circulantes anormales, incluyendo la detección de enfermedad residual mínima. El FISH puede usarse para detectar numerosas anomalías citogenéticas que se han descrito en el mieloma múltiple. Se ha demostrado que las translocaciones en el locus IGH, t(4;14) y las deleciones en el locus p53, del(17p) tienen un valor de pronóstico para la supervivencia libre de eventos y general en el mieloma múltiple. (Genetic Abnormalities and Survival in Multiple Myeloma: The Experience of the InterGroupe Francophone du Myelome. Herve Avet-Loiseau et al. Blood, 2007; 109: 3489-3495). Estas sondas y varios otros marcadores de mieloma múltiple están disponibles en el catálogo de Poseidon y podrían adaptarse para usarlas con la plataforma CellTracks®.The present invention investigates circulating myeloma cells to evaluate whether these particular biomarkers, either alone or in combination with one or more additional biomarkers or with FISH, can be used for both the capture and detection of abnormal circulating plasma cells, including detection of minimal residual disease. FISH can be used to detect numerous cytogenetic abnormalities that have been described in multiple myeloma. Translocations at the IGH locus, t (4; 14) and deletions at the p53, del (17p) locus have been shown to have prognostic value for event-free and overall survival in multiple myeloma. (Genetic Abnormalities and Survival in Multiple Myeloma: The Experience of the InterGroupe Francophone du Myelome. Herve Avet-Loiseau et al. Blood, 2007; 109: 3489-3495). These probes and various other multiple myeloma markers are available from the Poseidon catalog and could be adapted for use with the CellTracks® platform.
Comercialmente hay kits de selección inmunomagnética que usan partículas magnéticas CD138. Stem Cell Technologies tiene un kit de selección positiva CD138 humana EasySep® que puede seleccionar células positivas CD138 de células de médula ósea y mononucleares sangre periférica (PBMC) y Miltenyi Biotech tiene las microperlas CD138 para la selección de células positivas CD138 de médula ósea, PBMC y sangre completa. El análisis de las muestras recogidas se realiza típicamente usando citometría de flujo.Immunomagnetic screening kits are commercially available that use CD138 magnetic particles. Stem Cell Technologies has an EasySep® human CD138 positive selection kit that can select CD138 positive cells from bone marrow and peripheral blood mononuclear cells (PBMC) and Miltenyi Biotech has the CD138 microbeads for selection of CD138 positive cells from bone marrow, PBMC and whole blood. Analysis of collected samples is typically performed using flow cytometry.
La WO 99/41613 A1 se refiere a métodos para el aislamiento rápido y eficiente de células cancerosas circulantes. WO 99/41613 A1 relates to methods for the rapid and efficient isolation of circulating cancer cells.
Sumario de la invenciónSummary of the invention
La invención proporciona un método para capturar, aislar y analizar células de mieloma múltiple circulantes en una muestra de sangre obtenida de un sujeto de prueba que comprende: (a) poner en contacto dicha muestra con partículas magnéticas coloidales que se conjugan con un primer ligando, que es anti-CD138 y un segundo ligando, que es anti CD-38; (b) someter la muestra del paso (a) a un campo magnético para producir una facción separada de células de mieloma múltiple circulantes unidas a partículas magnéticas; (c) tratar la muestra del paso (b) con un primer marcador adicional; y (d) analizar las células de mieloma múltiple circulantes.The invention provides a method for capturing, isolating and analyzing circulating multiple myeloma cells in a blood sample obtained from a test subject comprising: (a) contacting said sample with colloidal magnetic particles that are conjugated to a first ligand, which is anti-CD138 and a second ligand, which is anti CD-38; (b) subjecting the sample from step (a) to a magnetic field to produce a separate faction of circulating multiple myeloma cells attached to magnetic particles; (c) treating the sample from step (b) with an additional first marker; and (d) analyzing circulating multiple myeloma cells.
La invención también proporciona un método para determinar si un paciente es un candidato probable para intervención terapéutica para enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales que comprende: (a) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra, en donde el procesamiento comprende el método de la invención; y (b) determinar por recuento si el número de CMMC presentes en dicha muestra es igual o mayor que o igual al intervalo normal.The invention also provides a method for determining whether a patient is a likely candidate for therapeutic intervention for diseases associated with abnormal plasma cells comprising: (a) processing said patient's blood to determine how many CMMC are in the sample, wherein the processing comprises the method of the invention; and (b) determining by counting whether the number of CMMC present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range.
La invención también proporciona un método para determinar si un paciente que está siendo sometido a intervención terapéutica está reduciendo el número de CMMC, o para determinar si un paciente que tenía una enfermedad de células plasmáticas anormales y ha sido tratado con éxito para dicha enfermedad, permanece en remisión; el método comprendiendo: (a) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra en un primer punto temporal, en donde el procesamiento comprende el método de la invención; (b) determinar por recuento si el número de CMMC presentes en dicha muestra es igual o mayor o igual que el intervalo normal; (c) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra en un segundo punto temporal, en donde el procesamiento comprende el método de la invención; y (d) determinar por recuento si el número de CMMC presentes en dicha muestra, es igual o mayor o igual que el intervalo normal; (e) comparar los números en los pasos (b) y (d).The invention also provides a method for determining whether a patient undergoing therapeutic intervention is reducing the number of CMMC, or for determining whether a patient who had abnormal plasma cell disease and has been successfully treated for said disease remains in remission; the method comprising: (a) processing the blood of said patient to determine how many CMMC are in the sample at a first time point, wherein the processing comprises the method of the invention; (b) determining by counting whether the number of CMMC present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range; (c) processing the blood of said patient to determine how many CMMC are in the sample at a second time point, wherein the processing comprises the method of the invention; and (d) determining by counting whether the number of CMMC present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range; (e) compare the numbers in steps (b) and (d).
La invención también proporciona un reactivo para capturar células de mieloma múltiple circulantes que comprenden partículas magnéticas coloidales y por lo menos dos ligandos, en donde los por lo menos dos ligandos comprenden anti-CD-138 y anti-CD-38.The invention also provides a reagent for capturing circulating multiple myeloma cells comprising colloidal magnetic particles and at least two ligands, wherein the at least two ligands comprise anti-CD-138 and anti-CD-38.
En la presente se divulga un método para la captura y detección de células plasmáticas circulantes (CPC) y células plasmáticas anormales o células de mieloma múltiple ("CMMC") que incluye la detección de enfermedad residual mínima de sangre periférica. En la presente se divulga un medio no invasivo de detectar cantidades muy bajas de CMMC en volúmenes milimétricos de muestra de sangre para detectar, monitorizar y caracterizar la enfermedad a lo largo de su historia, así como también proporciona las herramientas más sensibles para una evaluación más precisa del riesgo y la monitorización para la progresión de la enfermedad en las etapas tempranas de la enfermedad incluyendo la detección de células plasmáticas circulantes en las primeras etapas de la enfermedad, incluyendo la gammapatía monoclonal de importancia indeterminada (MGUS) y el mieloma múltiple latente. La captura y caracterización de estas células plasmáticas circulantes de sangre periférica puede proporcionar nuevos biomarcadores para la gestión de pacientes con mieloma múltiple.Disclosed herein is a method for the capture and detection of circulating plasma cells (CPC) and abnormal plasma cells or multiple myeloma cells ("CMMC") that includes detection of minimal residual peripheral blood disease. Disclosed herein is a non-invasive means of detecting very low amounts of CMMC in millimeter volumes of blood sample to detect, monitor, and characterize disease throughout its history, as well as providing the most sensitive tools for further evaluation. Accurate risk and monitoring for disease progression in the early stages of the disease including detection of circulating plasma cells in the early stages of the disease, including monoclonal gammopathy of undetermined significance (MGUS) and latent multiple myeloma. Capturing and characterizing these circulating peripheral blood plasma cells may provide new biomarkers for the management of multiple myeloma patients.
La sangre se recoge en tubos CellSave que contienen un conservante que permite el transporte y el almacenamiento de la sangre a la vez que minimiza la degradación celular. Las células se capturan usando partículas magnéticas coloidales conjugadas con Syndecan-1 o CD138, un marcador de la superficie celular presente en las células plasmáticas. Una vez capturadas, las células se marcan con los marcadores celulares adicionales CD38-PE (Ficoeritrina), CD19 y CD45-APC (aloficocianina) y CD56-FITC (isotiocianato de fluoresceína) para diferenciar las células de mieloma múltiple de los leucocitos contaminantes de fondo (glóbulos blancos). Los reactivos ferrofluidos y de marcadores celulares forman parte de un nuevo kit de servicio CellSearch® CMMC. El kit consta de 7 componentes, de los cuales 4 son idénticos a los reactivos encontrados en el kit Cellsearch® Epithelial Cell. Estos 4 reactivos comunes son el reactivo de mejora de captura, el reactivo Perm, colorante de ácidos nucleicos y CellFix. Los 3 nuevos reactivos consisten del ferrofluido CD138, un reactivo de tinción que consiste de CD38-PE, CD19 y CD45-APC y un reactivo de tinción de marcadores separado que consiste de CD56-FITC.Blood is collected into CellSave tubes that contain a preservative that allows for the transport and storage of blood while minimizing cell degradation. Cells are captured using colloidal magnetic particles conjugated to Syndecan-1 or CD138, a cell surface marker present on plasma cells. Once captured, cells are labeled with the additional cell markers CD38-PE (Phycoerythrin), CD19 and CD45-APC (allophycocyanin) and CD56-FITC (fluorescein isothiocyanate) to differentiate multiple myeloma cells from contaminating background leukocytes. (white blood cells). Ferrofluidic and cell marker reagents are part of a new CellSearch® CMMC service kit. The kit consists of 7 components, 4 of which are identical to the reagents found in the Cellsearch® Epithelial Cell kit. These 4 common reagents are Capture Enhancement Reagent, Perm Reagent, Nucleic Acid Stain, and CellFix. The 3 new reagents consist of the CD138 ferrofluid, a staining reagent consisting of CD38-PE, CD19, and CD45-APC, and a separate marker staining reagent consisting of CD56-FITC.
Breve descripción de las figurasBrief description of the figures
La Figura 1 ilustra la reactividad de los anticuerpos de CD 138 con ciertas líneas celulares.Figure 1 illustrates the reactivity of CD 138 antibodies with certain cell lines.
La Figura 2 ilustra la reactividad de los anticuerpos de CD 38 con ciertas líneas celulares.Figure 2 illustrates the reactivity of CD 38 antibodies with certain cell lines.
La Figura 3 ilustra la reactividad de diferentes pruebas de anticuerpos de CD19 APC en PBMC.Figure 3 illustrates the reactivity of different CD19 APC antibody tests in PBMC.
La Figura 4 ilustra la tinción de CD 19 APC a varias diluciones.Figure 4 illustrates CD 19 APC staining at various dilutions.
La Figura 5 ilustra la tinción de anticuerpos de CD 56 en PBMC. Figure 5 illustrates CD 56 antibody staining in PBMC.
La Figura 6 ilustra la tinción de CD 56 en varias líneas celulares.Figure 6 illustrates CD 56 staining in various cell lines.
La Figura 7 ilustra la tinción sin CD56.Figure 7 illustrates staining without CD56.
La Figura 8 ilustra la tinción de CD 56 FITC de una línea celular a una dilución.Figure 8 illustrates CD 56 FITC staining of a cell line at one dilution.
La Figura 9 ilustra la tinción de CD 56 FITC de una línea celular a una dilución.Figure 9 illustrates CD 56 FITC staining of a cell line at one dilution.
La Figura 10 ilustra la tinción de CD 56 FITC de una línea celular a una dilución.Figure 10 illustrates CD 56 FITC staining of a cell line at one dilution.
La Figura 11 ilustra imágenes representativas de células MM 1S.Figure 11 illustrates representative images of MM 1S cells.
La Figura 12 ilustra imágenes representativas de células H929.Figure 12 illustrates representative images of H929 cells.
La Figura 13 ilustra imágenes representativas de los glóbulos blancos sobrantes.Figure 13 illustrates representative images of the leftover white blood cells.
La Figura 14 ilustra imágenes de una muestra de paciente.Figure 14 illustrates images of a patient sample.
La Figura 15 ilustra imágenes de una muestra de paciente.Figure 15 illustrates images of a patient sample.
La Figura 16 ilustra imágenes de una muestra de paciente.Figure 16 illustrates images of a patient sample.
La Figura 17 ilustra imágenes de una muestra de paciente.Figure 17 illustrates images of a patient sample.
La Figura 18 ilustra imágenes de donantes normales.Figure 18 illustrates images of normal donors.
Descripción detalladaDetailed description
La invención incluye un método para capturar, aislar y analizar células de mieloma múltiple circulantes en una muestra de sangre obtenida de un sujeto de prueba que comprendeThe invention includes a method of capturing, isolating and analyzing circulating multiple myeloma cells in a blood sample obtained from a test subject comprising
(a) poner en contacto dicha muestra con partículas magnéticas coloidales que se conjugan con un primer ligando, que es anti-CD138, y un segundo ligando, que es anti-CD38;(a) contacting said sample with colloidal magnetic particles that are conjugated to a first ligand, which is anti-CD138, and a second ligand, which is anti-CD38;
(b) someter la muestra del paso (a) a un campo magnético para producir una fracción separada de células de mieloma múltiple circulantes unidas a partículas magnéticas(b) subjecting the sample from step (a) to a magnetic field to produce a separate fraction of circulating multiple myeloma cells attached to magnetic particles
(c) tratar la muestra del paso (b) con un primer marcador adicional; y(c) treating the sample from step (b) with an additional first marker; and
(e) analizar las células de mieloma múltiple circulantes.(e) analyzing circulating multiple myeloma cells.
Como se usa en la presente, el término "muestra" se refiere a una cantidad de sangre, preferiblemente expresada como una medición volumétrica. El volumen preferido de una muestra de sangre es de aproximadamente 2 ml a 10 ml, más preferiblemente 3-7,5 ml, lo más preferible de 4 ml. El término "partículas magnéticas coloidales" se refiere a partículas que son metálicas u organometálicas. Ejemplos de tales partículas se divulgan en las Patentes de Estados Unidos N° 5.597.531; 5.698.271; 5.698.271; 6.365.662, particularmente por su descripción de tales partículas magnéticas coloidales. Pueden recubrirse opcionalmente con un polímero, preferiblemente un polímero de origen biológico tal como albúmina de suero bovino y caseína.As used herein, the term "sample" refers to an amount of blood, preferably expressed as a volumetric measurement. The preferred volume of a blood sample is about 2 ml to 10 ml, more preferably 3-7.5 ml, most preferably 4 ml. The term "colloidal magnetic particles" refers to particles that are metallic or organometallic. Examples of such particles are disclosed in US Patent Nos. 5,597,531; 5,698,271; 5,698,271; 6,365,662, particularly for its description of such colloidal magnetic particles. They can optionally be coated with a polymer, preferably a polymer of biological origin such as bovine serum albumin and casein.
El término "ligando" se refiere a proteínas que se unen a marcadores asociados a células de CMMC. Las proteínas preferidas son los anticuerpos. Los ligandos son anti CD 138 y anti-CD 38. Tales ligandos pueden conjugarse con partículas magnéticas coloidales por métodos que son sustancialmente similares a los métodos divulgados en la 6.365.662. En el paso (a) de la invención pueden usarse dos o más ligandos.The term "ligand" refers to proteins that bind to CMMC cell-associated markers. Preferred proteins are antibodies. The ligands are anti-CD 138 and anti-CD 38. Such ligands can be conjugated to colloidal magnetic particles by methods that are substantially similar to the methods disclosed in 6,365,662. In step (a) of the invention two or more ligands can be used.
El término "campo magnético" puede ser producido por cualquiera de varios métodos, particularmente por dos separadores magnéticos sustancialmente como se describe en la Patente de Estados Unidos N° 7.901.950. El término "marcador adicional" significa una proteína asociada a la célula que es específica para CMMC o excluye CMMC. Tales proteínas incluyen, pero no están limitadas a, anticuerpos seleccionados del grupo que consiste de anti CD19 y anti CD45, anti CD 56, anti lambda, anti kappa, anti CD 200, anti Ki67. Tales anticuerpos pueden marcarse con indicadores como ficoeritrina, isotiocianato de fluoresceína y aloficocianina, y es preferible que estén marcados con uno o más marcadores. El marcador adicional puede incluir colorantes de ácido nucleico como DAPI. El marcador adicional preferido se selecciona del grupo que consiste de anti CD19 y anti CD45. En el paso (c) de la invención pueden usarse dos o más marcadores adicionales y se prefiere que se usen por lo menos dos marcadores adicionales, más preferiblemente, tres marcadores adicionales, lo más preferible cuatro marcadores adicionales. The term "magnetic field" can be produced by any of several methods, particularly by two magnetic separators substantially as described in US Patent No. 7,901,950. The term "additional marker" means a cell-associated protein that is specific for CMMC or excludes CMMC. Such proteins include, but are not limited to, antibodies selected from the group consisting of anti CD19 and anti CD45, anti CD 56, anti lambda, anti kappa, anti CD 200, anti Ki67. Such antibodies can be labeled with indicators such as phycoerythrin, fluorescein isothiocyanate and allophycocyanin, and it is preferable that they are labeled with one or more labels. The additional label can include nucleic acid dyes such as DAPI. The preferred additional marker is selected from the group consisting of anti CD19 and anti CD45. In step (c) of the invention two or more additional markers may be used and it is preferred that at least two additional markers are used, more preferably three additional markers, most preferably four additional markers.
El término "analizar" significa evaluar la muestra capturada magnéticamente para determinar uno o más de los siguientes: si la muestra contiene CMMC. Dicha identificación puede realizarse visual o electrónicamente para determinar el grado de fluorescencia de una muestra capturada magnéticamente. Tales métodos de análisis se divulgan en la Patente de Estados Unidos N° 7.011.794. En particular, las muestras capturadas magnéticamente que son positivas para CD38 y negativas para CD19 y CD45 se identifican como CMMC.The term "analyze" means to evaluate the magnetically captured sample to determine one or more of the following: whether the sample contains CMMC. Such identification can be done visually or electronically to determine the degree of fluorescence of a magnetically captured sample. Such methods of analysis are disclosed in US Patent No. 7,011,794. In particular, magnetically captured samples that are positive for CD38 and negative for CD19 and CD45 are identified as CMMC.
La invención incluye un método para determinar si un paciente es un candidato probable para intervención terapéutica para enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales que comprendeThe invention includes a method of determining whether a patient is a likely candidate for therapeutic intervention for diseases associated with abnormal plasma cells comprising
(a) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra, en donde el procesamiento comprende el método de la invención; y(a) processing the blood of said patient to determine how many CMMC are in the sample, wherein the processing comprises the method of the invention; and
(b) determinar mediante recuento si el número de células CMMC presentes en dicha muestra es igual o mayor que o igual al intervalo normal.(b) determining by counting whether the number of CMMC cells present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range.
Como se usa en la presente, el término muestra tiene el significado mencionado anteriormente y el intervalo preferido. El término "procesamiento" significa tratar una muestra de sangre del paciente mediante los métodos descritos en la presente para aislar e identificar CMMC.As used herein, the term "sample" has the aforementioned meaning and the preferred range. The term "processing" means treating a patient's blood sample by the methods described herein to isolate and identify CMMC.
El término "intervención terapéutica" significa buscar u obtener cualquier intervención médica para tratar enfermedades asociadas con niveles plasmáticos anormales. Tales enfermedades incluyen, entre otras, mieloma múltiple, MGUS y mieloma múltiple latente. Dicha intervención terapéutica incluye, pero no está limitada a, visitar a un médico, obtener tratamiento terapéutico como radiación, y tratamiento con fármacos que tratan cualquiera de las enfermedades asociadas con niveles plasmáticos anormales, y monitorizar el efecto de dichos tratamientos terapéuticos. Por ejemplo, si un paciente está siendo tratado con un fármaco, los niveles de CMMC del paciente pueden evaluarse durante el curso del tratamiento para determinar si el fármaco está funcionando. Tales medicamentos incluyen, pero no están limitados a, dexametasona, ciclofosfamida, vincristina, bortezomib, melfalan, zometa, aloxi, lenalidomida, doxirubicina, y similares.The term "therapeutic intervention" means to seek or obtain any medical intervention to treat diseases associated with abnormal plasma levels. Such diseases include, but are not limited to, multiple myeloma, MGUS, and smoldering multiple myeloma. Such therapeutic intervention includes, but is not limited to, visiting a physician, obtaining therapeutic treatment such as radiation, and treatment with drugs that treat any of the diseases associated with abnormal plasma levels, and monitoring the effect of said therapeutic treatments. For example, if a patient is being treated with a drug, the patient's CMMC levels can be assessed during the course of treatment to determine if the drug is working. Such drugs include, but are not limited to, dexamethasone, cyclophosphamide, vincristine, bortezomib, melphalan, zometa, aloxy, lenalidomide, doxirubicin, and the like.
El término "intervalo normal" significa el número de células CMMC presentes en una población de muestra que no tiene enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales. Preferiblemente, el intervalo normal es inferior a 7 CMMC en una muestra de sangre de aproximadamente 2 ml a aproximadamente 10 ml. Preferiblemente, el intervalo normal es inferior a 7 CMMC en una muestra de sangre de aproximadamente 3 ml a aproximadamente 7,5 ml. El término "mayor que el intervalo normal" es un número de CMMC que excede el intervalo normal. Cuanto mayor sea este número, más probable es que el paciente tenga una de las enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales. Si un paciente tiene entre 8 y 20 CMMC en una muestra de sangre, dicho paciente tiene una probabilidad más alta de tener una de las enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales. Si un paciente tiene entre 21 y 49 CMMC el paciente tiene un nivel elevado y es más probable que tenga una de las enfermedades asociadas con células plasmáticas anormales, sin un paciente tiene entre 50 y decenas de miles de CMMC ese paciente tiene un nivel altamente elevado e incluso más probabilidad de tener una de tales enfermedades.The term "normal range" means the number of CMMC cells present in a sample population that do not have diseases associated with abnormal plasma cells. Preferably, the normal range is less than 7 CMMC in a blood sample from about 2 ml to about 10 ml. Preferably, the normal range is less than 7 CMMC in a blood sample from about 3 ml to about 7.5 ml. The term "greater than normal range" is a number of CMMC that exceeds the normal range. The higher this number, the more likely it is that the patient has one of the diseases associated with abnormal plasma cells. If a patient has between 8 and 20 CMMC in a blood sample, that patient has a higher chance of having one of the diseases associated with abnormal plasma cells. If a patient has between 21 and 49 CMMC the patient has an elevated level and is more likely to have one of the diseases associated with abnormal plasma cells, without a patient has between 50 and tens of thousands of CMMC that patient has a highly elevated level and even more likely to have one of these diseases.
Además, la invención incluye un método para determinar si un paciente que se está sometiendo a intervención terapéutica está reduciendo el número de CMMC, o para determinar si un paciente que tenía una enfermedad de células plasmáticas anormales y ha sido tratado con éxito para dicha enfermedad, sigue en remisión; el método comprendiendoFurthermore, the invention includes a method for determining whether a patient undergoing therapeutic intervention is reducing the number of CMMC, or for determining whether a patient who had an abnormal plasma cell disease and has been successfully treated for said disease, still in remission; the method comprising
(a) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra en un primer punto en el tiempo, en donde el procesamiento comprende el método de la invención;(a) processing the blood of said patient to determine how many CMMC are in the sample at a first point in time, wherein the processing comprises the method of the invention;
(b) determinar mediante recuento si el número de CMMC presentes en dicha muestra es igual o mayor o igual que el intervalo normal;(b) determining by counting whether the number of CMMC present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range;
(c) procesar la sangre de dicho paciente para determinar cuántas CMMC hay en la muestra en un segundo punto en el tiempo, en donde el procesamiento comprende el método de la invención;(c) processing the blood of said patient to determine how many CMMC are in the sample at a second point in time, wherein the processing comprises the method of the invention;
(d) determinar mediante recuento si el número de CMMC presentes en dicha muestra es igual o mayor que o igual al intervalo normal; y(d) determining by counting whether the number of CMMC present in said sample is equal to or greater than or equal to the normal range; and
(e) comparar los números en los pasos (b) y (d).(e) compare the numbers in steps (b) and (d).
Todos los términos definidos anteriormente tienen su mismo significado e intervalo preferido.All the terms defined above have the same meaning and preferred range.
Además, la invención incluye un reactivo para capturar células de mieloma múltiple circulantes que comprenden partículas magnéticas coloidales y por lo menos dos ligandos, en donde los por lo menos dos ligandos comprenden anti-CD138 y anti-CD38.Furthermore, the invention includes a reagent for capturing circulating multiple myeloma cells comprising colloidal magnetic particles and at least two ligands, wherein the at least two ligands they comprise anti-CD138 and anti-CD38.
Todos los términos definidos anteriormente tienen su mismo significado e intervalos preferidos.All terms defined above have the same meaning and preferred ranges.
Las células circulantes de mieloma múltiple (CMMC), una forma de células plasmáticas anormales, capturadas de la sangre, se han capturado y analizado usando los sistemas CellTracks® AutoPrep® y CellTracks Analyzer II®. En este procedimiento, se usa una combinación de reactivo de captura (ferrofluido) y biomarcadores fluorescentes (como el anticuerpo anti-CD38-Ficoeritrina (PE)) y colorantes (como el colorante de ácidos nucleicos DAPI) para identificar células plasmáticas anormales y distinguirlas de leucocitos y desechos contaminantes. CD138 o Syndecan-1 es un marcador de la superficie celular que se encuentra en las células plasmáticas maduras y en las neoplasias malignas de las células plasmáticas, como el mieloma múltiple pero no en otros leucocitos normales de la sangre periférica. Por esta razón, el anti-CD138 se acopló a nanopartículas magnéticas ferrofluidas, que se usan para seleccionar magnéticamente las células plasmáticas circulantes a partir de una muestra de sangre periférica. Para detectar las células plasmáticas anormales de los leucocitos contaminantes se usan varios biomarcadores fluorescentes. El anti-CD38 se conjuga con ficoeritrina (PE) y se usa como marcador positivo para la detección de células plasmáticas. Sin embargo, como CD38 también se encuentra en algunos tipos de leucocitos (células T y B activadas), el ensayo también usa anti-CD45 conjugado con aloficocianina (APC) y anti-CD19 conjugado con aloficocianina (APC) como marcador negativo. El CD45 es un marcador de pan-leucocitos que se encuentra en los leucocitos de la sangre periférica y CD19 es un marcador específico de células B. Las células de mieloma son células B funcionalmente diferenciadas que no expresan ni CD45 ni CD19. Un marcador final en este ensayo es anti-CD56 conjugado con isotiocianato de fluoresceína (FITC). El CD56 puede encontrarse en algunos subconjuntos de leucocitos periféricos como las células NK, pero también se expresa en el 75% de las células de mieloma y a menudo se asocia con un peor pronóstico del paciente. Por lo tanto, aunque CD56 no es ni un marcador positivo ni negativo para el mieloma múltiple, durante la terapia farmacológica del paciente sus niveles de expresión en las células pueden controlarse.Circulating multiple myeloma cells (CMMC), a form of abnormal plasma cells, captured from the blood, have been captured and analyzed using the CellTracks® AutoPrep® and CellTracks Analyzer II® systems. In this procedure, a combination of capture reagent (ferrofluid) and fluorescent biomarkers (such as anti-CD38-Phycoerythrin (PE) antibody) and dyes (such as DAPI nucleic acid stain) are used to identify abnormal plasma cells and distinguish them from leukocytes and polluting wastes. CD138 or Syndecan-1 is a cell surface marker found in mature plasma cells and in malignant plasma cell neoplasms such as multiple myeloma but not in other normal peripheral blood leukocytes. For this reason, anti-CD138 was coupled to ferrofluid magnetic nanoparticles, which are used to magnetically select circulating plasma cells from a peripheral blood sample. Various fluorescent biomarkers are used to detect abnormal plasma cells from contaminating leukocytes. Anti-CD38 is conjugated to phycoerythrin (PE) and is used as a positive marker for the detection of plasma cells. However, since CD38 is also found in some types of leukocytes (activated T and B cells), the assay also uses allophycocyanin-conjugated anti-CD45 (APC) and allophycocyanin-conjugated anti-CD19 (APC) as a negative marker. CD45 is a pan-leukocyte marker found in peripheral blood leukocytes, and CD19 is a B-cell specific marker. Myeloma cells are functionally differentiated B cells that express neither CD45 nor CD19. A final marker in this assay is anti-CD56 conjugated to fluorescein isothiocyanate (FITC). CD56 can be found in some peripheral leukocyte subsets such as NK cells, but it is also expressed in 75% of myeloma cells and is often associated with a worse patient prognosis. Therefore, although CD56 is neither a positive nor a negative marker for multiple myeloma, its expression levels in cells can be controlled during drug therapy of the patient.
El ensayo se desarrolló inicialmente usando líneas celulares como RPMI 8226, H929 y MM.1S para evaluar diferentes anticuerpos contra los marcadores que se determinó que estaban presentes en las células de mieloma múltiple que incluyen CD138, CD38 y CD56. Como estas líneas celulares eran negativas para CD45 y CD19, se usaron PBMC en su lugar para evaluar esos anticuerpos.The assay was initially developed using cell lines such as RPMI 8226, H929, and MM.1S to evaluate different antibodies against markers that were determined to be present on multiple myeloma cells including CD138, CD38, and CD56. Since these cell lines were negative for CD45 and CD19, PBMC were used instead to test for those antibodies.
Las células enriquecidas y teñidas se transfirieron a un cartucho CellTracks® y MagNest® para montaje magnético. El cartucho se escaneó usando CellTracks Analyzer II®. Las imágenes individuales de las células se presentaron al operador para su revisión, y se puntuaron como CMMC, en base a la fluorescencia y la morfología celular. En un sistema de espigas modelo, el ensayo recuperó consistentemente ~60% de las células de la línea celular de mieloma múltiple H929 añadidas a 4,0 ml de sangre de donantes sanos. El ensayo fue lineal en el intervalo probado de 0 a 2000 células H929 con espigas (r2 0.98, pendiente 0.50, intercepción 10). El ensayo se validó usando sangre de donantes sanos compatibles con la edad (n = 22) y pacientes con mieloma múltiple (n = 66) y MGUS (n = 7). En 4,0 ml de sangre de donantes normales, se detectaron 0 CPC en 12/22 (55%) y se detectaron números bajos (1-6 CPC) en 10/22 (45%) de las muestras. Curiosamente, se encontró un CPC positivo para CD56 en un donante normal. Las CMMC en pacientes con mieloma múltiple varió de 0 a 17.000 /4,0ml de sangre. Se detectaron una o más CMMC en el 91% de los pacientes, >5 en el 68%, >10 en el 58% y >100 en el 35%. La expresión de CD56 fue muy variable en la población de pacientes. La CMMC en pacientes con MGUS varió entre 0 112 /4,0ml de sangre. Se detectaron una o más CMMC en 6/7 de los pacientes, >5 en 4/6, >10 en 2/6 y >100 en 1/6.The enriched and stained cells were transferred to a CellTracks® and MagNest® cartridge for magnetic mounting. The cartridge was scanned using CellTracks Analyzer II®. Individual cell images were presented to the operator for review, and scored as CMMC, based on fluorescence and cell morphology. In a model spike system, the assay consistently recovered ~ 60% of the H929 multiple myeloma cell line cells added to 4.0 ml of blood from healthy donors. The assay was linear in the range tested from 0 to 2000 H929 cells with spikes (r2 0.98, slope 0.50, intercept 10). The assay was validated using blood from healthy age-compatible donors (n = 22) and patients with multiple myeloma (n = 66) and MGUS (n = 7). In 4.0 ml of blood from normal donors, 0 CPCs were detected in 12/22 (55%) and low numbers (1-6 CPCs) were detected in 10/22 (45%) of the samples. Interestingly, a CD56 positive CPC was found in a normal donor. CMMC in multiple myeloma patients ranged from 0 to 17,000 / 4.0ml of blood. One or more CMMC were detected in 91% of patients,> 5 in 68%,> 10 in 58%, and> 100 in 35%. The expression of CD56 was highly variable in the patient population. CMMC in patients with MGUS ranged from 0 112 / 4.0 ml of blood. One or more CMMC were detected in 6/7 of the patients,> 5 in 4/6,> 10 in 2/6 and> 100 in 1/6.
Para caracterizar adicionalmente la CMMC y diferenciar CPC del CMMC, se desarrolló un ensayo de hibridación fluorescente in situ interfase (FISH) para usarlo con el sistema de captura y detección descrito anteriormente. Se usó una sonda FISH de cuatro colores para detectar simultáneamente mutaciones de alto riesgo. Los siguientes ejemplos ilustran la invención.To further characterize CMMC and differentiate CPC from CMMC, a fluorescent in situ interphase hybridization (FISH) assay was developed for use with the capture and detection system described above. A four-color FISH probe was used to simultaneously detect high-risk mutations. The following examples illustrate the invention.
EjemplosExamples
AbreviaturasAbbreviations
PE-FicoeritrinaPE-Phycoerythrin
FITC-isotiocianato de fluoresceínaFITC-fluorescein isothiocyanate
APC-AloficocianinaAPC-Allophycocyanin
PBMC-células mononucleares de sangre periféricaPBMC-peripheral blood mononuclear cells
Fuentes de anticuerposAntibody sources
CD138:CD138:
Gen-Probe Diaclone SASGen-Probe Diaclone SAS
1 Bd A Fleming, BP 1985 1 Bd A Fleming, BP 1985
F-25020 Besancon Cedex, FranciaF-25020 Besancon Cedex, France
CD38 y CD19CD38 and CD19
R&D SystemsR&D Systems
614 McKinley Place NE614 McKinley Place NE
Minneapolis, MN 55413Minneapolis, MN 55413
Ejemplo 1 Objetivos de capturaExample 1 Capture targets
La Figura 1 muestra que de los anticuerpos anti-CD138 probados para la reactividad con las líneas celulares RPMI 8226, H929 y MM.1S, el anticuerpo con mejor rendimiento fue el clon B-A38. Las líneas celulares se marcaron primero con los diferentes anticuerpos, que eran todos anticuerpos antihumanos de ratón, luego se marcaron posteriormente con un conjugado PE anti-ratón y se analizaron por citometría de flujo. El clon B-A38 proporcionó la tinción fluorescente más alta en todas las líneas celulares de mieloma múltiple.Figure 1 shows that of the anti-CD138 antibodies tested for reactivity with RPMI 8226, H929 and MM.1S cell lines, the best performing antibody was clone B-A38. The cell lines were first labeled with the different antibodies, which were all mouse anti-human antibodies, then subsequently labeled with an anti-mouse PE conjugate and analyzed by flow cytometry. Clone B-A38 provided the highest fluorescent staining in all multiple myeloma cell lines.
Ejemplo 2 Objetivos de detecciónExample 2 Detection targets
La Figura 2 muestra que de los anticuerpos anti-CD38 probados para la reactividad con las líneas celulares RPMI 8226, H929 y MM.1S, el anticuerpo con mejor rendimiento fue el clon 240742. Las líneas celulares se probaron inicialmente usando un conjugado anti-CD38-FITC directo pero más tarde se descubrió que el conjugado FITC no era lo suficientemente adecuado para la detección en la plataforma CellTracks®. Posteriormente se preparó y probó un conjugado de PE de este anticuerpo y se descubrió que era adecuado para la detección.Figure 2 shows that of the anti-CD38 antibodies tested for reactivity with RPMI 8226, H929 and MM.1S cell lines, the best performing antibody was clone 240742. Cell lines were initially tested using an anti-CD38 conjugate. -FITC direct but later it was discovered that the FITC conjugate was not adequate enough for detection on the CellTracks® platform. A PE conjugate of this antibody was subsequently prepared and tested and found to be suitable for detection.
Ejemplo 3 Determinación de la diluciónExample 3 Determination of dilution
Anti CD19 y anti-CD45, ambos como conjugados de APC, se eligieron como marcadores de detección negativos ya que la ausencia de ambos es indicativa de células plasmáticas anormales. El anti-CD45APC ya es un componente del reactivo de tinción CellSearch® CTC, por lo que no fue necesaria una optimización adicional. Y como ninguna de las líneas celulares de mieloma bajo evaluación expresó CD19, se usaron PBMC para evaluar los diferentes clones anti-CD19APC. Los resultados de las pruebas anti-CD19 en PBMC pueden verse en la Figura 3. La tinción se realizó de acuerdo con los protocolos recomendados por el fabricante en PBMC recogido de tubos EDTA y CellSave. Se eligió el clon SJ25C1 como el conjugado de mejor rendimiento. El conjugado se probó luego a varias diluciones en los mismos volúmenes de reacción usados en AutoPrep®, Figura 4. Se eligió una dilución de 1:5 como la dilución final para la tinción.Anti CD19 and anti-CD45, both as APC conjugates, were chosen as negative detection markers since the absence of both is indicative of abnormal plasma cells. Anti-CD45APC is already a component of the CellSearch® CTC staining reagent, so no further optimization was necessary. And since none of the myeloma cell lines under evaluation expressed CD19, PBMCs were used to evaluate the different anti-CD19APC clones. The results of the anti-CD19 tests in PBMC can be seen in Figure 3. Staining was performed according to the manufacturer's recommended protocols on PBMC collected from EDTA and CellSave tubes. Clone SJ25C1 was chosen as the best performing conjugate. The conjugate was then tested at various dilutions in the same reaction volumes used in AutoPrep®, Figure 4. A dilution of 1: 5 was chosen as the final dilution for staining.
Ejemplo 4 Tinción de CD56 y PBMCExample 4 CD56 and PBMC staining
Se eligió anti-CD56 como reactivo marcador FITC, ya que se expresa en el 75% de los casos de mieloma con expresión anormal. Las pruebas se realizaron en líneas celulares (Figura 6) y PBMC (Figura 5) de acuerdo con el protocolo recomendado por el fabricante. Se eligió NCAM 16.2 como el conjugado de mejor rendimiento.Anti-CD56 was chosen as the FITC marker reagent, since it is expressed in 75% of cases of myeloma with abnormal expression. The tests were carried out on cell lines (Figure 6) and PBMC (Figure 5) according to the protocol recommended by the manufacturer. NCAM 16.2 was chosen as the best performing conjugate.
Ejemplo Diluciones de 5 CD 56 FITCExample Dilutions of 5 CD 56 FITC
El conjugado anti-CD56 FITC NCAM 16.2 se probó a varias diluciones con células H929 en AutoPrep®, ver Figura 7-10.. Ninguna dilución clara probada fue mejor en la línea celular. Se eligió una dilución de 1:4 como la dilución final para la tinción hasta que pudieron probarse las muestras de pacientes para ayudar a determinar la concentración óptima.The anti-CD56 FITC NCAM 16.2 conjugate was tested at various dilutions with H929 cells in AutoPrep®, see Figure 7-10. No clear dilution tested was better in the cell line. A dilution of 1: 4 was chosen as the final dilution for staining until patient samples could be tested to help determine the optimal concentration.
Ejemplo 6 ImágenesExample 6 Images
Luego se construyó un kit prototipo CMMC que consistía en ferrofluido anti-CD138, reactivo de tinción consistente de PE anti-CD38, APC anti-CD45 y APC anti-CD19, y un reactivo marcador FITC anti-CD56. Los componentes restantes del kit fueron el reactivo de mejora de captura (PN 7037), el reactivo de permeabilización (PN 7038), el colorante de ácidos nucleicos (PN 7041) y CellFix (PN 7042). La primera ronda de pruebas usó ferrofluido anti-CD138 a diferentes concentraciones. La concentración final de PE anti-CD38 se ajustó a 1 pg/ml (concentración de reactivo de tinción de 5,7 pg/ml) en base a los datos de flujo anteriores. La concentración final de APC anti-CD45 fue de aproximadamente 2 pg/ml (concentración de reactivo de tinción de 13 pg/ml, lo mismo que en el Kit CellSearch® CTC) y el conjugado de APC anti-CD19 original se diluyó 1:5 en el reactivo de tinción. Se usó FITC anti-CD56 a una concentración de 1:4 en el vial de reactivo de marcador. Las células H929 se añadieron a 7,5 ml de sangre CellSave y se procesaron en AutoPrep® a concentraciones de ferrofluido de 135, 185, 220 y 270 pg/ml. Luego, las muestras se analizaron en CellTracks Analyzer II® y la recuperación de las células H929 alcanzó una meseta del 55-60% a aproximadamente 220 pg/ml.A CMMC prototype kit was then constructed consisting of anti-CD138 ferrofluid, staining reagent consisting of anti-CD38 PE, anti-CD45 APC and anti-CD19 APC, and an anti-CD56 FITC marker reagent. The remaining components of the kit were Capture Enhancement Reagent (PN 7037), Permeabilization Reagent (PN 7038), Nucleic Acid Dye (PN 7041), and CellFix (PN 7042). The first round of testing used anti-CD138 ferrofluid at different concentrations. The final concentration of anti-CD38 PE was adjusted to 1 pg / ml (staining reagent concentration of 5.7 pg / ml) based on the above flow data. The final concentration of anti-CD45 APC was approximately 2 pg / ml (staining reagent concentration of 13 pg / ml, the same as in the CellSearch® CTC Kit) and the original anti-CD19 APC conjugate was diluted 1: 5 in the staining reagent. Anti-CD56 FITC was used at a concentration of 1: 4 in the marker reagent vial. H929 cells were added to 7.5 ml of CellSave blood and processed in AutoPrep® at ferrofluid concentrations of 135, 185, 220 and 270 pg / ml. The samples were then analyzed on the CellTracks Analyzer II® and the recovery of H929 cells reached a plateau of 55-60% at approximately 220 pg / ml.
Por lo tanto, se decidió que la concentración final de ferrofluido en el kit sería de 220 pg/ml por7,5 ml de muestra de sangre, que es similar a las concentraciones usadas en muchos otros kits CellSearch®. Therefore, it was decided that the final concentration of ferrofluid in the kit would be 220 pg / ml per 7.5 ml of blood sample, which is similar to the concentrations used in many other CellSearch® kits.
Las imágenes de CellTracks® de las células H929 y MM.1S recuperadas pueden verse en las Figuras 11 y 12 respectivamente. Tener en cuenta la mayor tinción de CD56 de las células H929 en comparación con las células MM.1S. En la Figura 13 pueden verse los glóbulos blancos sobrantes (CD38 /CD45+).CellTracks® images of recovered H929 and MM.1S cells can be seen in Figures 11 and 12 respectively. Take into account the higher CD56 staining of H929 cells compared to MM.1S cells. In Figure 13 you can see the excess white blood cells (CD38 / CD45 +).
Ejemplo 7 Muestras de pacientesExample 7 Patient samples
Se analizaron un total de 66 muestras de pacientes con mieloma múltiple para CMMC. Estas muestras se obtuvieron de Conversant y originalmente se analizaron 7,5 ml de sangre usando el kit de servicio CellTracks® CMMC, pero como se hizo evidente que muchas muestras tenían un alto número de CMMC, se tomó la decisión de reducir el volumen de sangre probado a 4 ml. Las muestras se procesaron en CellTracks® AutoPrep® y luego escaneadas en CellTracks Analyzer II®. La Figura 10 es una tabla de datos generados a partir de las muestras de sangre del paciente. Las CMMC en pacientes con mieloma múltiple variaron de 0 a 17.000 /4,0ml de sangre. Se detectaron una o más CMMC en el 91% de los pacientes, >5 en el 68%, >10 en el 58% y >100 en el 35%. La expresión de CD56 fue muy variable en la población de pacientes. Las CMMC en pacientes con MGUS variaron entre 0-112 /4,0ml de sangre. Se detectaron una o más CMMC en 6/7 de los pacientes, >5 en 4/6, >10 en 2/6 y >100 en 1/6. Las Figuras 14-17 muestra algunas imágenes representativas de CellTracks® de muestras de pacientes. A total of 66 samples from multiple myeloma patients were analyzed for CMMC. These samples were obtained from Conversant and originally 7.5 ml of blood was analyzed using the CellTracks® CMMC Service Kit, but as it became apparent that many samples had a high number of CMMC, the decision was made to reduce the blood volume tested at 4 ml. The samples were processed in CellTracks® AutoPrep® and then scanned in CellTracks Analyzer II®. Figure 10 is a table of data generated from patient blood samples. CMMC in multiple myeloma patients ranged from 0 to 17,000 / 4.0ml of blood. One or more CMMC were detected in 91% of patients,> 5 in 68%,> 10 in 58%, and> 100 in 35%. The expression of CD56 was highly variable in the patient population. CMMC in patients with MGUS ranged from 0-112 / 4.0ml of blood. One or more CMMC were detected in 6/7 of the patients,> 5 in 4/6,> 10 in 2/6 and> 100 in 1/6. Figures 14-17 show some representative CellTracks® images of patient samples.
Leyenda de Tabla 1Legend of Table 1
Etapa: una clasificación diagnóstica de la extensión y características de las células de mieloma que comprenden las Etapas I, II y III. La cantidad de células cancerosas progresa de relativamente pocas a moderadas a relativamente muchas a medida que avanza la Etapa. Los síntomas adicionales como la proteína M, la anemia y el calcio sérico también aumentan a medida que avanza la Etapa.Stage: a diagnostic classification of the extent and characteristics of myeloma cells comprising Stages I, II, and III. The number of cancer cells progresses from relatively few to moderate to relatively many as the Stage progresses. Additional symptoms such as M protein, anemia, and serum calcium also increase as the Stage progresses.
Estado del tratamiento: refleja el estado de la enfermedad y el enfoque del tratamiento. Tipo de tratamiento: terapia con fármacos o radioterapia.Treatment Status - Reflects disease status and treatment focus. Type of treatment: drug therapy or radiation therapy.
Volumen: Volumen de sangre periférica procesada en el sistema CellSearch®.Volume: Volume of peripheral blood processed in the CellSearch® system.
Eventos totales: número total de imágenes del navegador CellTracks® presentadas al usuario para una clasificación manual de células de mieloma múltiple.Total Events - Total number of CellTracks® browser images presented to the user for manual multiple myeloma cell sorting.
Células MM totales (CD38+, CD19/45-): número total de imágenes de los eventos totales que el usuario ha determinado que cumplen los criterios de una célula de mieloma múltiple (MM). Estas células son CD38 positivas y CD19/45 negativas.Total MM Cells (CD38 +, CD19 / 45-) - Total number of images from total events that the user has determined meet the criteria for a multiple myeloma (MM) cell. These cells are CD38 positive and CD19 / 45 negative.
CD38+, CD19/45-, CD56+: el número de células de mieloma múltiple que fueron positivas para CD56.CD38 +, CD19 / 45-, CD56 +: the number of multiple myeloma cells that were positive for CD56.
CD38+, CD19/45-, CD56-: el número de células de mieloma múltiple que fueron negativas para CD56.CD38 +, CD19 / 45-, CD56-: the number of multiple myeloma cells that were negative for CD56.
Eventos no asignados: los eventos totales menos las células MM totales, que fueron eventos que el usuario clasificó como células de mieloma múltiple. Los eventos no asignados son una combinación de glóbulos blancos, ruido dela ordenador u otros residuos no clasificados como células MM. Unassigned Events - Total events minus total MM cells, which were events that the user classified as multiple myeloma cells. Unassigned events are a combination of white blood cells, computer noise, or other debris not classified as MM cells.
Ejemplo 8 Sujetos normalesExample 8 Normal subjects
También se probaron veintidós normales de la misma edad. Estas muestras también se obtuvieron de Conversant y se analizaron 4 ml de sangre con el kit de servicio CellTracks® CMMC. Las muestras se procesaron en CellTracks® AutoPrep® y luego se escanearon en CellTracks Analyzer II®. La Tabla 2 es una tabla de datos generados a partir de las muestras de sangre de 4 ml. En 4,0 ml de sangre de donantes normales, se detectaron 0 CPC en 12/22 (55%) y se detectaron números bajos (1-6 CPC) en 10/22 (45%) de las muestras. Curiosamente, se encontró un CPC positivo para CD56 en un donante normal. Ver la Figura 18. El número medio de eventos totales del navegador fue de aproximadamente 1500.Twenty-two normals of the same age were also tested. These samples were also obtained from Conversant and 4 ml of blood was analyzed with the CellTracks® CMMC Service Kit. Samples were processed in CellTracks® AutoPrep® and then scanned in CellTracks Analyzer II®. Table 2 is a table of data generated from the 4 ml blood samples. In 4.0 ml of blood from normal donors, 0 CPCs were detected in 12/22 (55%) and low numbers (1-6 CPCs) were detected in 10/22 (45%) of the samples. Interestingly, a CD56 positive CPC was found in a normal donor. See Figure 18. The average number of total browser events was approximately 1500.
Para caracterizar adicionalmente CMMC y diferenciar CPC de CMMC, se desarrolló un ensayo de hibridación fluorescente in situ entre fases (FISH) para usarlo con el sistema de captura y detección descrito anteriormente. Se usó una sonda FISH de cuatro colores para detectar simultáneamente mutaciones de alto riesgo, incluyendo dos translocaciones recurrentes del locus IgH (t(4;14) (p16; q32) y t(14;16) (q32; q23)), así como la deleción del locus TP53 (A17p13). El ensayo FISH se verificó en las líneas celulares H929, Mm 1 y U266, que mostraban mutaciones en t(4;14), t(14;16) y A17p13, respectivamente. El ensayo FISH se probó en 9 muestras de pacientes de CMMC y 8 muestras proporcionaron resultados evaluables. Dos muestras mostraron fusiones t(4;14), 3 pacientes mostraron patrones de señal de FISH aberrantes que indican aneuploidía del cromosoma 4 o 14 y los pacientes restantes mostraron patrones de FISH normales.To further characterize CMMC and differentiate CPC from CMMC, a fluorescent in situ inter-phase hybridization (FISH) assay was developed for use with the capture and detection system described above. A four-color FISH probe was used to simultaneously detect high-risk mutations, including two recurrent translocations of the IgH locus (t (4; 14) (p16; q32) and t (14; 16) (q32; q23)), as well as the deletion of the TP53 locus (A17p13). The FISH assay was verified in cell lines H929, M m 1 and U266, which showed mutations in t (4; 14), t (14; 16) and A17p13, respectively. The FISH assay was tested on 9 samples from CMMC patients and 8 samples provided evaluable results. Two samples showed t (4; 14) fusions, 3 patients showed aberrant FISH signal patterns indicating aneuploidy of chromosome 4 or 14, and the remaining patients showed normal FISH patterns.
Tabla 2: Taba de CMMC de donantes de san re normales de la misma edad de 4 mlTable 2: Table of CMMC from normal blood donors of the same age of 4 ml
Ejemplo 9 Captura utilizando Anti-CD 38 y Anti CD 138 Muestras de pacientesExample 9 Capture using Anti-CD 38 and Anti CD 138 Patient samples
Anti CD138, el marcador de la superficie celular conjugado con partículas magnéticas coloidales usadas para capturar células de mieloma en la presente invención puede desprenderse de la superficie celular del mieloma con el tiempo. CD38, un marcador de superficie también presente en las células de mieloma, no se desprende de la superficie celular. Se desarrolló una nanopartícula magnética que se unió tanto a anti-CD138 como a anti-CD38 y se probó con muestras de pacientes y donantes normales para su capacidad de capturar células de mieloma. Se usaron anti-CD38 y anti CD 138, ambos conjugados con ficoeritrina (PE), y ambos reconociendo un epítopo diferente al anti CD38 y anti-CD 138 usados en la elaboración de la nanopartícula magnética, para la detección junto con anti-CD45 y anti-CD19 conjugado con aloficocianina (APC).Anti CD138, the cell surface marker conjugated to used colloidal magnetic particles to capture myeloma cells in the present invention can be shed from the myeloma cell surface over time. CD38, a surface marker also present on myeloma cells, is not shed from the cell surface. A magnetic nanoparticle was developed that bound both anti-CD138 and anti-CD38 and tested with normal patient and donor samples for its ability to capture myeloma cells. Anti-CD38 and anti-CD 138, both conjugated with phycoerythrin (PE), and both recognizing an epitope different from the anti-CD38 and anti-CD 138 used in the manufacture of the magnetic nanoparticle, were used for detection together with anti-CD45 and anti-CD19 conjugated to allophycocyanin (APC).
Se probaron un total de 22 muestras de pacientes con mieloma múltiple para CMMC usando el reactivo de captura alternativo. Estas muestras se obtuvieron de Conversant y se procesaron 4 ml en CellTracks® AutoPrep® y luego se escanearon en CellTracks Analyzer II®. La Tabla 3 es una tabla generada a partir de las muestras de pacientes. La CMMC en pacientes con mieloma múltiple varió de 0-2244/4,0 ml de sangre. Se detectaron una o más CMMC en el 82% de los pacientes, >5 en el 64%, >10 en el 59% y >100 en el 23%.A total of 22 samples from multiple myeloma patients were tested for CMMC using the alternative capture reagent. These samples were obtained from Conversant and 4 ml were run on CellTracks® AutoPrep® and then scanned on CellTracks Analyzer II®. Table 3 is a table generated from the patient samples. CMMC in multiple myeloma patients ranged from 0-2244 / 4.0 ml of blood. One or more CMMC were detected in 82% of patients,> 5 in 64%,> 10 in 59%, and> 100 in 23%.
Ejemplo 9 Captura usando muestras normales de Anti-CD 38 y Anti-CD 138Example 9 Capture using normal samples of Anti-CD 38 and Anti-CD 138
También se probaron doce donantes normales, usando la misma configuración de kit que en el Ejemplo 8. Estas muestras se hicieron en donantes internos y se procesaron 4 ml de sangre en CellTracks® AutoPrep® y luego se escanearon en el CellTracks Analyzer II®. La tabla 4 es una tabla generada a partir de las muestras de sangre de 4 ml. En 4,0 ml de sangre de donantes normales, se detectaron 0 CPC en 5/12 (42%) y se detectaron números bajos (1-3 CPC) en 7/12 (58%) de las muestras. Twelve normal donors were also tested, using the same kit configuration as in Example 8. These samples were made from internal donors and 4 ml of blood was run on CellTracks® AutoPrep® and then scanned on the CellTracks Analyzer II®. Table 4 is a table generated from the 4 ml blood samples. In 4.0 ml of blood from normal donors, 0 CPCs were detected in 5/12 (42%) and low numbers (1-3 CPCs) were detected in 7/12 (58%) of the samples.
Tabla 4 de CPC de donantes normalesTable 4 of CPCs from normal donors
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