ES2370432B1 - PROCEDURE, SET OF PRIMERS AND KIT FOR DETECTION OF INFECTIOUS PANCREATIC NECROSIS VIRUS (IPNV) IN ASYMPTOMATIC FISH. - Google Patents
PROCEDURE, SET OF PRIMERS AND KIT FOR DETECTION OF INFECTIOUS PANCREATIC NECROSIS VIRUS (IPNV) IN ASYMPTOMATIC FISH. Download PDFInfo
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Abstract
Procedimiento, conjunto de cebadores y kit para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos, utilizando la combinación de RT-PCR, RT-PCR anidada e hibridación en dot-blot. Para la RT-PCR se han diseñado cebadores específicos que amplifican un fragmento de 599 pares de bases de la región del precursor de VP2. Para la RT-PCR anidada se han diseñado cebadores internos que amplifican un fragmento de 191 pb. Para la hibridación se ha diseñado una sonda de ADN bicatenario marcada con digoxigenina a partir de los productos purificados de la RT-PCR anidada. Se han establecido condiciones óptimas para los diferentes pasos de amplificación del ARN, así como para la hibridación en dot-blot. La invención permite detectar este virus en tejidos del pez, incluyendo muestras de sangre, de forma rápida, fiable y eficaz. El procedimiento descrito es de aplicación en el sector de la acuicultura.Procedure, set of primers and kit for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish, using the combination of RT-PCR, nested RT-PCR and dot-blot hybridization. Specific primers designed to amplify a 599 base pair fragment of the VP2 precursor region have been designed for RT-PCR. For the nested RT-PCR, internal primers that amplify a 191 bp fragment have been designed. For hybridization, a double-stranded DNA probe labeled with digoxigenin has been designed from the purified products of nested RT-PCR. Optimum conditions have been established for the different RNA amplification steps, as well as for dot-blot hybridization. The invention allows detecting this virus in fish tissues, including blood samples, quickly, reliably and effectively. The procedure described is applicable in the aquaculture sector.
Description
Procedimiento, conjunto de cebadores y kit para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos. Procedure, set of primers and kit for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish.
Sector de la técnica Technical sector
La presente invención se refiere a un conjunto de cebadores, procedimiento y kit para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos, más concretamente a la aplicación de un procedimiento no destructivo ni cruento que comprende la combinación de RT-PCR, RT-PCR anidada, e hibridación en dot-blot; a los cebadores empleados en dicho procedimiento; y al kit que permite la realización de dicho procedimiento. La presente invención es de aplicación en el sector de la acuicultura, y más particularmente en el control del estado de salud de peces, tanto de poblaciones naturales como cultivadas. The present invention relates to a set of primers, method and kit for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish, more specifically to the application of a non-destructive or bloody procedure comprising the combination of RT- PCR, nested RT-PCR, and dot blot hybridization; to the primers used in said procedure; and to the kit that allows performing said procedure. The present invention is applicable in the aquaculture sector, and more particularly in the control of the state of health of fish, both natural and cultivated populations.
Estado de la técnica State of the art
La enfermedad de la necrosis pancreática infecciosa (IPN) es una patología vírica aguda, altamente contagiosa y de muy amplia distribución geográfica que afecta a peces cultivados y salvajes tanto de agua dulce como de ambientes marinos, así como a especies diádromas. Esta enfermedad, que puede cursar como brotes epizoóticos alcanzando alta tasa de morbilidad y mortalidad, ha sido descrita en los cinco continentes, siendo más frecuente en Europa, en el Lejano Oriente, y en América del Norte y Sur (Rodríguez et al., 2003. Adv. Virus Res., 62:113-165). Infectious pancreatic necrosis disease (IPN) is an acute, highly contagious viral disease with a very wide geographic distribution that affects farmed and wild fish, both freshwater and marine environments, as well as diadromous species. This disease, which can occur as epizootic outbreaks reaching a high morbidity and mortality rate, has been described in the five continents, being more frequent in Europe, in the Far East, and in North and South America (Rodríguez et al., 2003 Adv. Virus Res., 62: 113-165).
El agente causal de esta enfermedad se ha denominado IPNV, un virus perteneciente al género Aquabirnavirus, familia Birnaviridae. Este virus posee un virión icosaédrico desnudo con dos segmentos de ARN bicatenario como material genético. Las principales proteínas de la nucleocápside son la VP2 (proteína mayoritaria) y VP3 (proteína interna de la cápside) (Dobos, 1995. Ann. Rev. Dis., 5:25-54). El uso de técnicas inmunológicas ha demostrado la existencia de diversos serogrupos y serotipos dentro del IPNV, aunque estas técnicas no tipifican aislados de orígenes de peces marinos (Riji John and Richards, 1999. J. Gen. Virol., 80:2061-2065). Por estas razones, recientemente se han aplicado técnicas moleculares para la clasificación de los aquabirnavirus (Blake et al., 2001. Dis. Aquat. Org., 45:89-102). Se han establecido seis genoprupos (I a VI) comprendiendo 10 genotipos (I.1, I.2, II, III.1, II.2, IV.1, IV.2, V.1, V.2 y VI) basándose en los análisis de restricción (RFLP) y secuenciación del gen que codifica la proteína VP2 de la cápside del virus (Cutrin et al., 2004. Appl. Environ. Microbiol., 70:1059-1067). Posteriormente, se ha establecido un séptimo genogrupo (VII) en base a la secuencia de la región de unión entre los genes de VP2 y VP4 (Nishizawa et al., 2005. J. Gen. Virol., 86:1973-1978). The causative agent of this disease has been called IPNV, a virus belonging to the genus Aquabirnavirus, family Birnaviridae. This virus has a naked icosahedral virion with two segments of double stranded RNA as genetic material. The main proteins of the nucleocapsid are VP2 (major protein) and VP3 (internal capsid protein) (Dobos, 1995. Ann. Rev. Dis., 5: 25-54). The use of immunological techniques has demonstrated the existence of various serogroups and serotypes within the IPNV, although these techniques do not typify isolated marine fish origins (Riji John and Richards, 1999. J. Gen. Virol., 80: 2061-2065) . For these reasons, molecular techniques have recently been applied for the classification of aquabirnaviruses (Blake et al., 2001. Dis. Aquat. Org., 45: 89-102). Six genoprupos (I to VI) comprising 10 genotypes (I.1, I.2, II, III.1, II.2, IV.1, IV.2, V.1, V.2 and VI) have been established based on restriction analysis (RFLP) and sequencing of the gene encoding the virus capsid VP2 protein (Cutrin et al., 2004. Appl. Environ. Microbiol., 70: 1059-1067). Subsequently, a seventh genogroup (VII) has been established based on the sequence of the binding region between the VP2 and VP4 genes (Nishizawa et al., 2005. J. Gen. Virol., 86: 1973-1978).
IPNV causa infecciones clínicas en alevines y juveniles de peces salvajes y cultivados, y los supervivientes de la infección pueden convertirse en portadores asintomáticos del virus (Imajoh et al., 2005. Fish Shellfish Immunol., 18:163-177). El método de análisis estándar recomendado por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE) en 2003 se basa en los siguientes puntos: IPNV causes clinical infections in fry and juveniles of wild and farmed fish, and survivors of the infection may become asymptomatic carriers of the virus (Imajoh et al., 2005. Fish Shell fi sh Immunol., 18: 163-177). The standard analysis method recommended by the World Organization for Animal Health (OIE) in 2003 is based on the following points:
1. Aislamiento del IPNV en cultivo celular a partir de los tejidos de peces enfermos. Identificación del IPNV aislado en cultivo celular, mediante neutralización con anticuerpos específicos o por inmunofluorescencia indirecta 1. Isolation of IPNV in cell culture from the tissues of diseased fish. Identification of the isolated IPNV in cell culture, by neutralization with specific antibodies or by indirect immuno fl uorescence
o por un enzimoinmunoensayo. or by an enzyme immunoassay.
2. Detección directa del IPNV en tejidos de peces afectados por inmunofluorescencia indirecta, enzimoinmunoensayo, por coaglutinación o por inmunohistoquímica. 2. Direct detection of IPNV in fish tissues affected by indirect immuno fl uorescence, enzyme immunoassay, coagglutination or immunohistochemistry.
Como puede observarse, el método recomendado implica una destrucción de tejidos y muerte del pez analizado, y asimismo se requiere mucho tiempo para los análisis. Existe una demanda, por parte de empresas del sector de la Acuicultura, para el desarrollo de sistemas rápidos y eficaces de detección de IPNV y que eviten el sacrificio de peces con el objeto de establecer un plan de saneamiento de portadores inaparentes. As can be seen, the recommended method involves tissue destruction and death of the analyzed fish, and much time is required for the analyzes. There is a demand, by companies in the Aquaculture sector, for the development of rapid and effective systems for the detection of IPNV and to avoid the slaughter of fish in order to establish a plan for sanitation of non-transparent carriers.
Los sistemas más efectivos de detección de microorganismos por métodos moleculares, que no requieren su cultivo, están basados en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) (Mullis y Faloona, 1987. Meth. Enzymol. 155: 335350). La presente invención se refiere a un protocolo basado en técnicas de PCR para la detección del virus IPNV, así como los cebadores específicos para ello. Además, éste se combina con un protocolo de hibridación en dot-blot, utilizando una sonda de ADN bicatenario (ADNbc), para aumentar la sensibilidad de la técnica y como herramienta de confirmación de los productos de amplificación. Este método, al ser no destructivo, evitaría la consiguiente pérdida valiosa del cultivo de peces, como por ejemplo ejemplares reproductores. The most effective systems for detecting microorganisms by molecular methods, which do not require their culture, are based on the polymerase chain reaction (PCR) (Mullis and Faloona, 1987. Meth. Enzymol. 155: 335350). The present invention refers to a protocol based on PCR techniques for the detection of the IPNV virus, as well as the primers specific for it. In addition, it is combined with a dot-blot hybridization protocol, using a double-stranded DNA probe (cDNA), to increase the sensitivity of the technique and as a tool for the confirmation of amplification products. This method, being non-destructive, would prevent the consequent valuable loss of fish culture, such as breeding specimens.
Descripción detallada de la invención Detailed description of the invention
El problema técnico planteado es lograr un método rápido y fiable que permita la detección específica de IPNV en muestras de sangre de peces. El procedimiento no destructivo propuesto se basa en la aplicación de dos técnicas moleculares, una RT-PCR anidada y una hibridación dot-blot para la detección del IPNV a partir de sangre de peces portadores inaparentes del virus. Para la RT-PCR se han diseñado cebadores específicos que amplifican un fragmento de 599 pares de bases (pb) de la región del precursor de VP2 (proteína mayoritaria de la cápside vírica) dentro del gen vírico que codifica la poliproteína. Para la RT-PCR anidada se han diseñado cebadores internos que amplifican un fragmento de 191 pb. Mediante esta técnica hemos conseguido detectar IPNV en menos de un día de trabajo y sin necesidad de realizar cultivos celulares de las muestras. A partir de este producto de amplificación de 191 pb, se ha diseñado una sonda de ADNbc marcada con digoxigenina para hibridar en dot-blot los productos obtenidos mediante las reacciones de RT-PCR y RT-PCR anidada. The technical problem posed is to achieve a fast and reliable method that allows the specific detection of IPNV in fish blood samples. The proposed non-destructive procedure is based on the application of two molecular techniques, a nested RT-PCR and a dot-blot hybridization for the detection of IPNV from the blood of non-transparent fish carrying the virus. For RT-PCR, specific primers have been designed that amplify a 599 base pair (bp) fragment of the VP2 precursor region (majority viral capsid protein) within the viral gene encoding polyprotein. For the nested RT-PCR, internal primers have been designed that amplify a 191 bp fragment. Through this technique we have been able to detect IPNV in less than a day's work and without the need for cell cultures of the samples. From this 191 bp ampli fi cation product, a digoxigenin-labeled cDNA probe has been designed to hybridize the products obtained by the RT-PCR and nested RT-PCR reactions in dot-blot.
De este modo, constituye un objeto de la presente invención un procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos, incluyendo muestras de sangre, que comprende las siguientes etapas: Thus, an object of the present invention is a method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish, including blood samples, comprising the following steps:
- a. to.
- Extracción y purificación del ARN total de las muestras. Extraction and purification of the total RNA from the samples.
- b. b.
- Amplificación mediante RT-PCR de una secuencia de 599 pb de la región del precursor de la proteína VP2 utilizando un conjunto de cebadores en el cual al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias que comprenden SEQ ID NO 1 y SEQ ID NO 2. Preferentemente, dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 1 y por un segundo cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 2. Más preferentemente, la secuencia de nucleótidos del primer cebador es idéntica a SEQ ID NO1yla secuencia de nucleótidos del segundo cebador es idéntica a SEQ ID NO 2. RT-PCR ampli fi cation of a 599 bp sequence of the VP2 protein precursor region using a set of primers in which at least two of the primers of said set have sequences comprising SEQ ID NO 1 and SEQ ID NO 2 Preferably, said set is formed by a first primer whose sequence comprises SEQ ID NO 1 and a second primer whose sequence comprises SEQ ID NO 2. More preferably, the nucleotide sequence of the first primer is identical to SEQ ID NO1 and the nucleotide sequence of the second primer is identical to SEQ ID NO 2.
- c. C.
- Amplificación de un fragmento de 191 pb de los productos resultantes de la primera amplificación mediante RT-PCR anidada utilizando un conjunto de cebadores en el cual al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias que comprenden SEQ ID NO 3 y SEQ ID NO 4. Preferentemente, dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 3 y por un segundo cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 4. Más preferentemente, la secuencia de nucleótidos del primer cebador es idéntica a la SEQ ID NO 3 y la secuencia de nucleótidos del segundo cebador es idéntica a la SEQ ID NO 4. Amplification of a 191 bp fragment of the products resulting from the first amplification by nested RT-PCR using a set of primers in which at least two of the primers of said set have sequences comprising SEQ ID NO 3 and SEQ ID NO 4 Preferably, said assembly is formed by a first primer whose sequence comprises SEQ ID NO 3 and a second primer whose sequence comprises SEQ ID NO 4. More preferably, the nucleotide sequence of the first primer is identical to SEQ ID NO 3 and The nucleotide sequence of the second primer is identical to SEQ ID NO 4.
- d. d.
- Obtención de sondas de ADN bicatenario a partir de los productos resultantes de la segunda amplificación (RT-PCR anidada). Obtaining double-stranded DNA probes from the products resulting from the second amplification (nested RT-PCR).
- e. and.
- Hibridación en dot-blot de los productos resultantes de la segunda amplificación (RT-PCR anidada) usando las sondas de ADN bicatenario obtenidas en la etapa (d). Dot-blot hybridization of the products resulting from the second ampli fi cation (nested RT-PCR) using the double stranded DNA probes obtained in step (d).
- f. F.
- Detección de los productos hibridados mediante inmunoensayo. Detection of hybridized products by immunoassay.
Constituyen otro objeto de la presente invención los conjuntos de cebadores referidos anteriormente y empleados en las amplificaciones mediante RT-PCR y RT-PCR anidada. Another set of the present invention are the sets of primers referred to above and used in ampli fi cations by means of RT-PCR and nested RT-PCR.
Constituye otro objeto de la presente invención un kit para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos, incluyendo muestras de sangre, que comprende al menos unos conjuntos de cebadores tal y como los antes referidos. Another object of the present invention is a kit for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish, including blood samples, comprising at least a few sets of primers as described above.
Preferentemente el kit comprende: Preferably the kit comprises:
- a. to.
- Conjunto de cebadores para la amplificación mediante RT-PCR de una secuencia de 599 pb de la región del precursor de la proteína VP2 en el cual al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias que comprenden SEQ ID NO 1 y SEQ ID NO 2; preferentemente, dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 1 y por un segundo cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 2; más preferentemente, la secuencia de nucleótidos del primer cebador es idéntica a la SEQ ID NO 1 y la secuencia de nucleótidos del segundo cebador es idéntica a la SEQ ID NO 2; Set of primers for RT-PCR amplification of a 599 bp sequence of the VP2 protein precursor region in which at least two of the primers of said set have sequences comprising SEQ ID NO 1 and SEQ ID NO 2 ; preferably, said set is formed by a first primer whose sequence comprises SEQ ID NO 1 and a second primer whose sequence comprises SEQ ID NO 2; more preferably, the nucleotide sequence of the first primer is identical to SEQ ID NO 1 and the nucleotide sequence of the second primer is identical to SEQ ID NO 2;
- b. b.
- Conjunto de cebadores para la amplificación de un fragmento de 191 pb de los productos resultantes de la primera amplificación mediante RT-PCR anidada en el cual al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias que comprenden SEQ ID NO 3 y SEQ ID NO 4; preferentemente, dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 3 y por un segundo cebador cuya secuencia comprende SEQ ID NO 4; más preferentemente, la secuencia de nucleótidos del primer cebador es idéntica a la SEQ ID NO 3 y la secuencia de nucleótidos del segundo cebador es idéntica a la SEQ ID NO 4; y Set of primers for the amplification of a 191 bp fragment of the products resulting from the first amplification by nested RT-PCR in which at least two of the primers of said set have sequences comprising SEQ ID NO 3 and SEQ ID NO 4 ; preferably, said set is formed by a first primer whose sequence comprises SEQ ID NO 3 and by a second primer whose sequence comprises SEQ ID NO 4; more preferably, the nucleotide sequence of the first primer is identical to SEQ ID NO 3 and the nucleotide sequence of the second primer is identical to SEQ ID NO 4; Y
- c. C.
- una muestra control para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV). a control sample for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV).
Descripción de los dibujos Description of the drawings
Figura 1.-Alineamiento de la secuencia de los productos de la RT-PCR y RT-PCR anidada con secuencias publicadas de aislados de IPNV: IPNV Ab (L40580), IPNV VR-299 (L40584), solevirus (EF493156), IPNV Sp (AF342728). Se indica la localización de los cebadores diseñados para la RT-PCR (SoleSegA-F2 y SoleSegA-R2) y la de los cebadores para la nested RT-PCR (R23 y R24). Figure 1.-Alignment of the sequence of the products of the RT-PCR and RT-PCR nested with published sequences of isolates of IPNV: IPNV Ab (L40580), IPNV VR-299 (L40584), solevirus (EF493156), IPNV Sp (AF342728). The location of the primers designed for RT-PCR (SoleSegA-F2 and SoleSegA-R2) and the location of the primers for nested RT-PCR (R23 and R24) are indicated.
Figura 2.-Especificidad de la RT-PCR (A) y RT-PCR anidada (B) para la detección de IPNV. M: marcador molecular de 100 pb XIV (Roche); 1: control negativo, agua-DEPC; 2: VNNV; 3: VHSV; 4: control negativo, ARN de células BF-2 no inoculadas; 5: IPNV Ab; 6: solevirus; 7: IPNV Sp; 8: IPNV VR-299. Figure 2.-Speci fi city of RT-PCR (A) and nested RT-PCR (B) for the detection of IPNV. M: 100 bp XIV molecular marker (Roche); 1: negative control, water-DEPC; 2: VNNV; 3: VHSV; 4: negative control, RNA from non-inoculated BF-2 cells; 5: IPNV Ab; 6: solevirus; 7: IPNV Sp; 8: IPNV VR-299.
Figura 3.-Detección específica de diferentes genotipos de IPNV por la técnica de hibridación en dot-blot a partir de los productos de (A) RT-PCR y (B) RT-PCR anidada. C1 y C2 son controles negativos consistentes en el reactivo de PCR y de ARN extraído de células BF-2 sin inocular, respectivamente. Figure 3.-Specific detection of different IPNV genotypes by dot-blot hybridization technique from the products of (A) RT-PCR and (B) nested RT-PCR. C1 and C2 are negative controls consisting of the PCR and RNA reagent extracted from uninoculated BF-2 cells, respectively.
Figura 4. Porcentajes de detección de IPNV a partir de muestras de sangre de especímenes asintomáticos de urtas y pargos. Las muestras fueron analizadas mediante RT-PCR anidada y combinación de RT-PCR anidada e hibridación en dot-blot. Figure 4. Percentages of detection of IPNV from blood samples of asymptomatic specimens of letters and snappers. The samples were analyzed by nested RT-PCR and combination of nested RT-PCR and dot-blot hybridization.
Modos de realización de la invención Embodiments of the invention
A continuación se describe detalladamente, y sin carácter limitativo, un modo de realización de la invención. An embodiment of the invention will be described in detail below and without limitation.
Extracción y purificación del ARN total de las muestras Extraction and purification of total RNA from samples
Para la extracción del ARN total se utilizó un kit comercial (QIAamp® RNA Blood Mini Kit, QIAGEN). A commercial kit (QIAamp® RNA Blood Mini Kit, QIAGEN) was used to extract the total RNA.
Descripción detallada del protocolo de PCR Detailed description of the PCR protocol
Los cebadores utilizados se diseñaron con la ayuda del programa informático OLIGO 6.7.1. La información de los cebadores aparece resumida en la Tabla 1. Para la detección específica de IPNV se diseñó la pareja de cebadores externos SoleSegA-F2 y SoleSegA-R2, que se encuentran en las posiciones 832 y 1431, respectivamente, de la secuencia del segmento A del IPNV Sp (genotipo III. 1, GenBank nº de acceso AF342728) (Fig. 1). Estos cebadores amplifican un fragmento de 599 pb del gen que codifica la poliproteína, concretamente en la secuencia correspondiente al precursor de la proteína VP2 (pVP2). Los cebadores internos, R23 y R24, se diseñaron atendiendo a la secuencia del segmento A del solevirus (GenBank nº de acceso EF493156), y generan un amplicón de 191 pb. The primers used were designed with the help of the OLIGO 6.7.1 software. The information of the primers is summarized in Table 1. For the specific detection of IPNV, the pair of external primers SoleSegA-F2 and SoleSegA-R2 were designed, which are located at positions 832 and 1431, respectively, of the segment sequence. A of IPNV Sp (genotype III. 1, GenBank accession number AF342728) (Fig. 1). These primers amplify a 599 bp fragment of the gene that encodes the polyprotein, specifically in the sequence corresponding to the VP2 protein precursor (pVP2). The internal primers, R23 and R24, were designed according to the sequence of the segment A of the solevirus (GenBank accession no. EF493156), and generate an amplicon of 191 bp.
Las RT-PCR se realiza en un solo paso utilizando el sistema SuperScriptTM III One-Step RT-PCR System Platinum® Taq DNA polymerase (Invitrogen). La mezcla de reacción (50 μl, volumen final) contiene 25 μl de 2x Reaction Mix [desoxinucleótidos (dNTPs) 0,2 mM, MgSO4 1,6 mM], 0,45 pmol/μl de cada cebador, y 2 μl de la enzima SuperScriptTM III RT/Platinum Taq Mix. Como molde se emplea 1 μg de ARN del virus. Los controles negativos utilizados fueron ARN total extraído de células BF-2 no inoculadas, y agua tratada con dietilpirocarbonato (DEPC). RT-PCR is performed in one step using the SuperScriptTM III One-Step RT-PCR System Platinum® Taq DNA polymerase (Invitrogen). The reaction mixture (50 μl, final volume) contains 25 μl of 2x Reaction Mix [0.2 mM deoxynucleotides (dNTPs), 1.6 mM MgSO4], 0.45 pmol / μl of each primer, and 2 μl of the SuperScriptTM III RT / Platinum Taq Mix enzyme. 1 μg of virus RNA is used as template. The negative controls used were total RNA extracted from non-inoculated BF-2 cells, and water treated with diethyl pyrocarbonate (DEPC).
TABLA 1 TABLE 1
Cebadores diseñados para la detección específica de IPNV por la técnica de RT-PCR y RT-PCR anidada Primers designed for the specific detection of IPNV by the technique of RT-PCR and nested RT-PCR
Las reacciones de RT-PCR consistieron en un primer paso de síntesis de ADNc a 45ºC durante 30 min, seguido de una desnaturalización a 94ºC durante 2 min. A continuación se llevaron a cabo 35 ciclos de amplificación consistentes en una desnaturalización a 94ºC durante 15 s, anillamiento a 58ºC durante 30 s y extensión a 68ºC durante 30 s. Finalmente se realizó un ciclo de extensión a 68ºC durante 10 min. The RT-PCR reactions consisted of a first step of cDNA synthesis at 45 ° C for 30 min, followed by a denaturation at 94 ° C for 2 min. Next, 35 cycles of amplification were carried out consisting of a denaturation at 94 ° C for 15 s, banding at 58 ° C for 30 s and extension at 68 ° C for 30 s. Finally, an extension cycle was performed at 68 ° C for 10 min.
Para la realización de reacciones de RT-PCR anidada se utilizaron como molde 2 μl de los productos resultantes de la primera amplificación. Las reacciones se llevaron a cabo en una mezcla de 50 μl (volumen final) que contenía: 5 μl de dNTPs 0,2 mM (Roche); 1x buffer (Tris HC1 10 mM, MgCl2 1,5 mM, KC1 50 mM, pH 8,3 20ºC); 0,3 pmol/μl de cada cebador, y 2,5 U de la enzima Taq DNA Polymerase (Roche). Las segundas amplificaciones consistieron en una fase inicial de desnaturalización a 94ºC durante 5 min, seguida de 35 ciclos compuestos por una desnaturalización a 94ºC durante 30 s, anillamiento a 58ºC durante 30 s, y extensión a 72ºC durante 30 s. La extensión final se realizó a 72ºC durante 5 min. To carry out nested RT-PCR reactions, 2 μl of the products resulting from the first ampli fi cation were used as a template. The reactions were carried out in a mixture of 50 μl (final volume) containing: 5 μl of 0.2 mM dNTPs (Roche); 1x buffer (10 mM Tris HC1, 1.5 mM MgCl2, 50 mM KC1, pH 8.3 20 ° C); 0.3 pmol / μl of each primer, and 2.5 U of the enzyme Taq DNA Polymerase (Roche). The second ampli fi cations consisted of an initial phase of denaturation at 94 ° C for 5 min, followed by 35 cycles composed of a denaturation at 94 ° C for 30 s, banding at 58 ° C for 30 s, and extension at 72 ° C for 30 s. The final extension was performed at 72 ° C for 5 min.
La visualización de los productos de amplificación se realizó mediante electroforesis en geles de agarosa al 2% teñidos con bromuro de etidio. Como marcador molecular se utilizó ADN de 100 pb MWXIV (Roche). La confirmación de los productos de amplificación se realizó mediante secuenciación directa de los mismos, utilizando el Analizador Genético ABI PRISM 3130 (Applied Biosystems) y los cebadores específicos de cada reacción. The amplification products were visualized by electrophoresis in 2% agarose gels stained with ethidium bromide. The molecular marker used was 100 bp DNA MWXIV (Roche). The confirmation of the amplification products was carried out by direct sequencing thereof, using the ABI PRISM 3130 Genetic Analyzer (Applied Biosystems) and the specific primers of each reaction.
Con el fin de evaluar la especificidad de las técnicas desarrolladas para la detección de IPNV se realizaron amplificaciones en las que se utilizaron ARN total extraído de cultivos celulares inoculados con aislados pertenecientes a diferentes genogrupos de IPNV, así como de cultivos celulares inoculados con los virus VHSV (virus de la septicemia hemorrágica viral) y VNNV genotipo SJNNV (virus de la necrosis nerviosa viral). Los resultados se especifican en la Fig. 2. In order to evaluate the specificity of the techniques developed for the detection of IPNV, ampli fi cations were made in which total RNA extracted from cell cultures inoculated with isolates belonging to different IPNV genogroups was used, as well as cell cultures inoculated with VHSV viruses. (viral haemorrhagic septicemia virus) and VNNV genotype SJNNV (viral nerve necrosis virus). The results are specified in Fig. 2.
Para la determinación del límite de sensibilidad se determinó el título de IPNV, para ello se extrajo el ARN total del lisado vírico titulado, y se realizaron baterías de diluciones decimales seriadas que se utilizaron como molde en diversas reacciones de RT-PCR. El límite de sensibilidad de la técnica varia desde 10-100 Unidades Formadoras de Placas (UFP)/ml para RT-PCR y desde 1-10 UFP/ml para la RT-PCR anidada. For the determination of the sensitivity limit, the IPNV titer was determined, for this purpose the total RNA was extracted from the titrated viral lysate, and batteries of serial dilutions were used that were used as template in various RT-PCR reactions. The sensitivity limit of the technique varies from 10-100 Plate Forming Units (PFU) / ml for RT-PCR and from 1-10 PFU / ml for nested RT-PCR.
Obtención de sondas de ADN específicas Obtaining specific DNA probes
Los productos resultantes de la amplificación mediante RT-PCR anidada del ARN de solevirus, fueron clonados en el vector pCR®4-TOPO® y posteriormente secuenciados. El mareaje de las sondas con digoxigenina (DIG) se llevó a cabo mediante reacciones de PCR usando estos plásmidos como molde en reacciones de amplificación que contenían DIG-11-dUTP (Roche). The products resulting from ampli fi cation by nested RT-PCR of solevirus RNA were cloned into the vector pCR®4-TOPO® and subsequently sequenced. The mapping of the probes with digoxigenin (DIG) was carried out by PCR reactions using these plasmids as a template in amplification reactions containing DIG-11-dUTP (Roche).
Dichas reacciones de PCR se realizaron en un volumen final de 100 μl. La mezcla de reacción está compuesta por 10 μl de la solución PCR DIG Labeling Mix (Roche) (dATP, dCTP, dGTP 0,2 mM; dTTP 0,19 mM; DIG-11-dUTP 0,01 mM), 0,5x Colorless GoTaq® Flexi Buffer, MgCl2 4,5 mM, 0,15 pmol/μl de los cebadores internos específicos (Tabla 1), 2,5 U de GoTaq® DNA Polymerase (Promega), y 0,5 μg de ADN plasmídico. Said PCR reactions were performed in a final volume of 100 μl. The reaction mixture is composed of 10 μl of the DIG Labeling Mix (Roche) PCR solution (dATP, dCTP, 0.2 mM dGTP; 0.19 mM dTTP; 0.01 mM DIG-11-dUTP), 0.5x Colorless GoTaq® Flexi Buffer, 4.5 mM MgCl2, 0.15 pmol / μl of the specific internal primers (Table 1), 2.5 U of GoTaq® DNA Polymerase (Promega), and 0.5 μg of plasmid DNA.
El perfil de amplificación está constituido por un ciclo de desnaturalización a 95ºC durante 2 min, seguido de 35 ciclos consistentes en una desnaturalización a 95ºC durante 1 min, 1 min de anillamiento a 53ºC y 10 min de extensión a 72ºC. Finalmente se llevó a cabo una extensión de 10 min a 72ºC y las reacciones se mantuvieron durante 5 min a 25ºC. The amplification profile is constituted by a cycle of denaturation at 95 ° C for 2 min, followed by 35 cycles consisting of a denaturation at 95 ° C for 1 min, 1 min of banding at 53 ° C and 10 min of extension at 72 ° C. Finally, an extension of 10 min at 72 ° C was carried out and the reactions were maintained for 5 min at 25 ° C.
Los productos de amplificación se visualizaron en geles de agarosa al 2% teñidos con bromuro de etidio, y fueron utilizados como sondas sin una purificación posterior. Las sondas marcadas se conservaron a -20ºC hasta su utilización. The ampli fi cation products were visualized on 2% agarose gels stained with ethidium bromide, and were used as probes without further purification. The labeled probes were stored at -20 until use.
Hibridación en dot-blot Dot blot hybridization
Se desarrolló un método de hibridación en dot-blot utilizando sondas de ADN bicatenario (ADNbc) obtenidas según se ha indicado anteriormente. Esta técnica se ha aplicado en combinación con la RT-PCR o RT-PCR anidada descritas anteriormente con el fin de incrementar la sensibilidad en la detección del genoma viral. A dot-blot hybridization method was developed using double-stranded DNA probes (cDNA) obtained as indicated above. This technique has been applied in combination with the nested RT-PCR or RT-PCR described above in order to increase the sensitivity in the detection of the viral genome.
Se analizaron 10 μl de los productos de RT-PCR o RT-PCR anidada previamente desnaturalizados mediante ebullición durante 5 min. Estas muestras se enfriaron rápidamente en hielo y se dispusieron, empleando los equipos MilliBlot-D o MilliBlot-S (Millipore), sobre membranas de nylon (Hybond-N+, Amersham Biosciences). Las membranas fueron previamente humedecidas con agua bidestilada estéril y tampón salino sodio-citrato (SSC) 5x (SSC 1x: NaCl 50 mM; citrato sódico 15 mM; pH 7). La fijación se realizó con luz UV (2 pulsos de 700 μJ/cm2) (Ultraviolet Crosslinker, Amersham Biosciences). 10 μl of the previously denatured RT-PCR or nested RT-PCR products were analyzed by boiling for 5 min. These samples were rapidly cooled on ice and placed, using the MilliBlot-D or MilliBlot-S (Millipore) equipment, on nylon membranes (Hybond-N +, Amersham Biosciences). The membranes were previously moistened with sterile double-distilled water and 5x sodium salt citrate buffer (SSC) (1x SSC: 50 mM NaCl; 15 mM sodium citrate; pH 7). The fixation was carried out with UV light (2 pulses of 700 μJ / cm2) (Ultraviolet Crosslinker, Amersham Biosciences).
La optimización del protocolo de hibridación en dot-blot incluyó la evaluación de diferentes temperaturas de prehibridación e hibridación (45, 51, 57 y 68ºC), así como la necesidad de utilizar formamida al 50% en el tampón de hibridación. Las condiciones óptimas de hibridación fueron 57ºC y formamida al 50% en el tampón de hibridación, para garantizar la total eliminación de posibles inespecifidades ocasionadas por la utilización de ARN extraído de células BF-2 sin inocular como molde de las reacciones basadas en la RT-PCR. La prehibridación se realizó durante 1-6 h con tampón de hibridación (SSC 5x; Sarcosyl 0,1%; SDS 0,02%; Stock Blocking 2% -Roche; formamida 50% -Roche) precalentado a la temperatura de ensayo. La sonda se desnaturalizó mediante ebullición durante 5 min. Una vez enfriada rápidamente en hielo se diluyó en tampón de hibridación precalentado. La hibridación se llevó a cabo a la temperatura ensayada en un horno de hibridación (Amersham Pharmacia, Biotech) durante 16 h en agitación. Una vez finalizada, la sonda diluida se recogió y se guardó a -20ºC para posteriores usos. The optimization of the dot-blot hybridization protocol included the evaluation of different prehybridization and hybridization temperatures (45, 51, 57 and 68 ° C), as well as the need to use 50% formamide in the hybridization buffer. The optimal hybridization conditions were 57 ° C and 50% formamide in the hybridization buffer, to guarantee the total elimination of possible unexpectedities caused by the use of RNA extracted from uninoculated BF-2 cells as a template for RT-based reactions. PCR Prehybridization was performed for 1-6 h with hybridization buffer (5x SSC; 0.1% Sarcosyl; 0.02% SDS; 2% Stock Blocking -Roche; 50% formamide-Roche) preheated to the test temperature. The probe was denatured by boiling for 5 min. Once cooled rapidly on ice, it was diluted in preheated hybridization buffer. Hybridization was carried out at the temperature tested in a hybridization oven (Amersham Pharmacia, Biotech) for 16 h with stirring. Once finalized, the diluted probe was collected and stored at -20 ° C for later use.
Posteriormente, se realizaron dos lavados sucesivos en agitación continua con tampones suplementados con diferentes concentraciones de sales (SSC 2x y SSC 1x a temperatura ambiente durante 5 y 15 min, respectivamente, y SSC 0,1x a la temperatura de hibridación durante 15 min). Subsequently, two successive washes were carried out in continuous agitation with buffers supplemented with different concentrations of salts (SSC 2x and SSC 1x at room temperature for 5 and 15 min, respectively, and 0.1x SSC at the hybridization temperature for 15 min).
Detección de los productos hibridados Detection of hybridized products
La detección de los productos hibridados se realizó mediante inmunoensayo siguiendo las instrucciones de los sistemas de mareaje (DIG-11-dUTP, Roche) y de detección con DIG (anti-DIG-AP, Roche) utilizados. El revelado de la actividad fosfatasa alcalina (AP) en la membrana se llevó a cabo mediante quimioluminiscencia, utilizando CSPD (Roche) como sustrato de la AP, y la película radiográfica Hyperfilm ECL (Amersham, Biosciences). La exposición de la película a la reacción luminiscente se realizó en un casete (HypercassetteTM, Amersham Biosciences) durante distintos tiempos de sobreexposición (entre4y30 min). The detection of the hybridized products was performed by immunoassay following the instructions of the marking systems (DIG-11-dUTP, Roche) and detection with DIG (anti-DIG-AP, Roche) used. The development of the alkaline phosphatase (AP) activity in the membrane was carried out by chemiluminescence, using CSPD (Roche) as the substrate of the AP, and the Hyper fi lm ECL radiographic film (Amersham, Biosciences). The film was exposed to the luminescent reaction in a cassette (HypercassetteTM, Amersham Biosciences) during different times of overexposure (between 4 and 30 min).
Para evaluar la especificidad del sistema de hibridación desarrollado la sonda ADNbc diseñada se hibridó con productos de amplificación obtenidos mediante RT-PCR y RT-PCR anidada, utilizando como molde ARN extraído de células BF-2 y SSN-1 inoculadas con VHSV y VNNV (genotipo SJNNV), respectivamente. La especificidad de la sonda diseñada para la detección de IPNV se evaluó utilizando el genogrupo II (IPNV Ab), y genotipos I.2 (IPNV VR-299) y III.1 (IPNV Sp). Los resultados se expresan en la Fig. 3. To evaluate the specificity of the hybridization system developed, the designed ADNbc probe was hybridized with amplification products obtained by means of nested RT-PCR and RT-PCR, using RNA extracted from BF-2 and SSN-1 cells inoculated with VHSV and VNNV as template. SJNNV genotype), respectively. The specificity of the probe designed for the detection of IPNV was evaluated using genogroup II (IPNV Ab), and genotypes I.2 (IPNV VR-299) and III.1 (IPNV Sp). The results are expressed in Fig. 3.
La sensibilidad de la técnica se estimó atendiendo al título vírico según la metodología descrita en el apartado de sensibilidad de RT-PCR y RT-PCR anidada. Como muestras se utilizaron los productos de amplificación de reacciones de RT-PCR o RT-PCR anidada. La sensibilidad de la hibridación en dot-blot es similar a los métodos basados en PCR, con un límite de sensibilidad de 10-100 UFP/ml para la hibridación en dot-blot procedente de las reacciones de RT-PCR y de 1-10 UFP/ml para la hibridación en dot-blot procedente de las reacciones de RT-PCR anidada. The sensitivity of the technique was estimated according to the viral titer according to the methodology described in the sensitivity section of RT-PCR and nested RT-PCR. As samples, the amplification products of nested RT-PCR or RT-PCR reactions were used. The sensitivity of dot-blot hybridization is similar to PCR-based methods, with a sensitivity limit of 10-100 PFU / ml for dot-blot hybridization from RT-PCR reactions and 1-10 PFU / ml for hybridization in dot-blot from the nested RT-PCR reactions.
Ejemplo 1 Example 1
La presente invención se ilustra adicionalmente mediante el siguiente ejemplo de aplicación. The present invention is further illustrated by the following application example.
Detección de IPNV a partir de peces asintomáticos IPNV detection from asymptomatic fish
Las técnicas de diagnóstico desarrolladas en la presente invención se han aplicado a la detección de portadores asintomáticos en poblaciones de pargo y urta capturadas del medio natural y estabuladas como pre-reproductores. Con este fin se realizó la extracción de sangre a partir de un número representativo de animales. La sangre fue inmediatamente mezclada con heparina (0,1%, concentración final) y conservada a 4ºC hasta su procesamiento (no más de 24 h). The diagnostic techniques developed in the present invention have been applied to the detection of asymptomatic carriers in snapper and rta populations captured from the natural environment and established as pre-reproducers. For this purpose, blood was drawn from a representative number of animals. The blood was immediately mixed with heparin (0.1%, final concentration) and stored at 4 ° C until processing (no more than 24 h).
El ARN total de las muestras de sangre se extrajo utilizando el sistema comercial QIAamp® RNA Blood Mini Kit (QIAGEN) a partir de 200 μl de sangre tratada con heparina siguiendo las instrucciones de la casa comercial. El ARN se cuantificó mediante espectrofotometría, a 260 nm, empleando el ND-1000 (NanoDrop), y se conservó a -80ºC hasta su análisis mediante la combinación de las técnicas de amplificación e hibridación en dot-blot descritas en la presente invención. El análisis de las muestras de sangre se realizó mediante la combinación de una RT-PCR, RT-PCR anidada e hibridación en dot-blot de los productos de RT-PCR anidada con la sonda desarrollada. Total RNA from the blood samples was extracted using the commercial QIAamp® RNA Blood Mini Kit (QIAGEN) from 200 µl of blood treated with heparin following the instructions of the commercial house. RNA was quantified by spectrophotometry, at 260 nm, using ND-1000 (NanoDrop), and stored at -80 ° C until analysis by combining the dot-blot amplification and hybridization techniques described in the present invention. The blood samples were analyzed by combining a RT-PCR, nested RT-PCR and dot-blot hybridization of the nested RT-PCR products with the developed probe.
Ninguna de las muestras de sangre analizadas mediante RT-PCR resultó positiva para la detección de IPNV. En la Figura 4 se muestra los porcentajes de individuos portadores de IPNV en función del método de detección utilizado (RT-PCR anidada o combinación de RT-PCR anidada e hibridación en dot-blot de los productos de amplificación de la RT-PCR anidada). None of the blood samples analyzed by RT-PCR were positive for the detection of IPNV. Figure 4 shows the percentages of individuals carrying IPNV according to the detection method used (nested RT-PCR or combination of nested RT-PCR and dot-blot hybridization of the amplification products of nested RT-PCR) .
La aplicación de RT-PCR anidada permitió la detección de IPNV en un 53,1% de las urtas analizadas. Los ensayos basados en la combinación de RT-PCR anidada e hibridación en dot-blot de los productos de amplificación han permitido la detección del genoma de IPNV en todas las muestras de urta analizadas (Figura 4). En el caso de la población de pargos, la utilización de la RT-PCR anidada permitió la detección de IPNV en hasta un 77,8% de animales analizados. La combinación de RT-PCR anidada e hibridación permitió la detección de IPNV en un 94,4% de las muestras analizadas. The application of nested RT-PCR allowed the detection of IPNV in 53.1% of the analyzed erts. Assays based on the combination of nested RT-PCR and dot-blot hybridization of the ampli fi cation products have allowed the detection of the IPNV genome in all the analyzed samples of urta (Figure 4). In the case of the snapper population, the use of nested RT-PCR allowed the detection of IPNV in up to 77.8% of animals analyzed. The combination of nested RT-PCR and hybridization allowed the detection of IPNV in 94.4% of the analyzed samples.
Claims (17)
- 1. one.
- Conjunto de cebadores para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos caracterizado por que al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias idénticas a SEQ IDNO 1y SEQ ID NO 2. Set of primers for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish characterized in that at least two of the primers of said set have sequences identical to SEQ IDNO 1 and SEQ ID NO 2.
- 2. 2.
- Conjunto de cebadores para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según la reivindicación anterior caracterizado por que dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia es idéntica a SEQ ID NO 1 y por un segundo cebador cuya secuencia es idéntica a SEQ ID NO 2. Set of primers for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to the preceding claim characterized in that said set is formed by a first primer whose sequence is identical to SEQ ID NO 1 and by a second primer whose sequence It is identical to SEQ ID NO 2.
- 3. 3.
- Conjunto de cebadores para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos caracterizado por que al menos dos de los cebadores de dicho conjunto presentan secuencias idénticas a SEQ IDNO 3y SEQ ID NO 4. Set of primers for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish characterized in that at least two of the primers of said set have sequences identical to SEQ IDNO 3 and SEQ ID NO 4.
- 4. Four.
- Conjunto de cebadores para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según la reivindicación anterior caracterizado por que dicho conjunto está formado por un primer cebador cuya secuencia es idéntica a SEQ ID NO 3 y por un segundo cebador cuya secuencia es idéntica a SEQ ID NO 4. Set of primers for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to the preceding claim characterized in that said set is formed by a first primer whose sequence is identical to SEQ ID NO 3 and by a second primer whose sequence It is identical to SEQ ID NO 4.
- 5. 5.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos que comprende: Procedure for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish comprising:
- a. to.
- Extracción y purificación del ARN total de las muestras, Extraction and purification of the total RNA from the samples,
- b. b.
- Amplificación mediante RT-PCR de una secuencia de 599 pb de la región del precursor de la proteína VP2 utilizando un conjunto de cebadores según la reivindicación1ó2. RT-PCR ampli fi cation of a 599 bp sequence of the VP2 protein precursor region using a set of primers according to claim 1 or 2.
- c. C.
- Amplificación de un fragmento de 191 pb de los productos resultantes de la primera amplificación mediante RT-PCR anidada utilizando un conjunto de cebadores según la reivindicación 3 ó 4. Amplification of a 191 bp fragment of the products resulting from the first amplification by nested RT-PCR using a set of primers according to claim 3 or 4.
- d. d.
- Obtención de sondas de ADN bicatenario a partir de los productos resultantes de la segunda amplificación (RT-PCR anidada). Obtaining double-stranded DNA probes from the products resulting from the second amplification (nested RT-PCR).
- e. and.
- Hibridación en dot-blot de los productos resultantes de la segunda amplificación (RT-PCR anidada) usando las sondas de ADN bicatenario obtenidas en la etapa (d). Dot-blot hybridization of the products resulting from the second ampli fi cation (nested RT-PCR) using the double stranded DNA probes obtained in step (d).
- f. F.
- Detección de los productos hibridados mediante inmunoensayo. Detection of hybridized products by immunoassay.
- 6. 6.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según la reivindicación anterior caracterizado por que la reacción de RT-PCR (b) se lleva a cabo en las condiciones de: 30 minutos a 45ºC, 2 minutos a 94ºC, 35 ciclos de 15 segundos a 94ºC -30 segundos a 58ºC -30 segundos a 68ºC, y 10 minutos a 68ºC. Method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to the preceding claim characterized in that the RT-PCR reaction (b) is carried out under the conditions of: 30 minutes at 45 ° C, 2 minutes at 94 ° C, 35 cycles of 15 seconds at 94 ° C -30 seconds at 58 ° C -30 seconds at 68 ° C, and 10 minutes at 68 ° C.
- 7. 7.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según la reivindicación5ó6 caracterizado por que la reacción de RT-PCR anidada (c) se lleva a cabo en las condiciones de: 5 minutos a a 94ºC, 35 ciclos de 30 segundos a 94ºC -30 segundos a 58ºC -30 segundos a 72ºC, y 5 minutos a 72ºC. Method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to claim 5 or 6 characterized in that the nested RT-PCR reaction (c) is carried out under the conditions of: 5 minutes at 94 ° C, 35 cycles of 30 seconds at 94ºC -30 seconds at 58ºC -30 seconds at 72ºC, and 5 minutes at 72ºC.
- 8. 8.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 7 caracterizado por que las sondas obtenidas son marcadas con digoxigenina (DIG). Method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to any of claims 5 to 7, characterized in that the probes obtained are labeled with digoxigenin (DIG).
- 9. 9.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según cualquiera de las reivindicaciones5a8 caracterizado por que la hibridación en dot-blot comprende: Method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to any of claims 5 to 8 characterized in that dot-blot hybridization comprises:
- a. to.
- Desnaturalización de los productos de amplificación; Denaturation of amplification products;
- b. b.
- Filtración de los productos desnaturalizados a través de membranas de nylon; Filtration of denatured products through nylon membranes;
- c. C.
- Fijación con luz ultravioleta; Fixing with ultraviolet light;
- d. d.
- Incubación a 57ºC de 1-6 horas en tampón de hibridación con 50% de formamida; e Incubation at 57 ° C for 1-6 hours in hybridization buffer with 50% formamide; and
- e. and.
- Hibridación a 57ºC durante 16 horas con la sonda de ADNbc desnaturalizada y marcada con digoxigenina. Hybridization at 57 ° C for 16 hours with the denatured cDNA probe labeled with digoxigenin.
- a. to.
- Lavados sucesivos en tampones con 2xSSC a temperatura ambiente (5 minutos), y repetir el proceso con 1xSSC durante 15 minutos a temperatura ambiente; Successive washings in buffers with 2xSSC at room temperature (5 minutes), and repeat the process with 1xSSC for 15 minutes at room temperature;
- b. b.
- Lavados a 57ºC 15 minutos con 0,1xSSC; Washes at 57 ° C 15 minutes with 0.1xSSC;
- c. C.
- Detección mediante inmunoensayo, utilizando un anticuerpo anti-DIG-AP; y Detection by immunoassay, using an anti-DIG-AP antibody; Y
- d. d.
- Revelado de actividad AP mediante quimioluminiscencia con el sustrato CSPD. Development of AP activity by chemiluminescence with the CSPD substrate.
- 11. eleven.
- Procedimiento para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos según cualquiera de las reivindicaciones5a10 caracterizado por que las muestras son muestras de sangre. Method for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish according to any of claims 5 to 10 characterized in that the samples are blood samples.
- 12. 12.
- Kit para la detección del virus de la necrosis pancreática infecciosa (IPNV) en peces asintomáticos mediante el procedimiento definido en cualquiera de las reivindicaciones5a11que comprende: Kit for the detection of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) in asymptomatic fish by the method defined in any of claims 5 to 11, comprising:
- a. to.
- Conjunto de cebadores según cualquiera de las reivindicaciones1ó2, Set of primers according to any of claims 1 or 2,
- b. b.
- Conjunto de cebadores según cualquiera de las reivindicaciones3ó4,y Set of primers according to any of claims 3 or 4, and
- c. C.
- Muestra control. Show control.
- Categoría Category
- Documentos citados Reivindicaciones afectadas Documents cited Claims Affected
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- Categoría de los documentos citados X: de particular relevancia Y: de particular relevancia combinado con otro/s de la misma categoría A: refleja el estado de la técnica O: referido a divulgación no escrita P: publicado entre la fecha de prioridad y la de presentación de la solicitud E: documento anterior, pero publicado después de la fecha de presentación de la solicitud Category of the documents cited X: of particular relevance Y: of particular relevance combined with other / s of the same category A: reflects the state of the art O: refers to unwritten disclosure P: published between the priority date and the date of priority submission of the application E: previous document, but published after the date of submission of the application
- El presente informe ha sido realizado • para todas las reivindicaciones • para las reivindicaciones nº: This report has been prepared • for all claims • for claims no:
- Fecha de realización del informe 14.11.2011 Date of realization of the report 14.11.2011
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- Novedad (Art. 6.1 LP 11/1986) Novelty (Art. 6.1 LP 11/1986)
- Reivindicaciones 3-12 Reivindicaciones 1, 2 SI NO Claims 3-12 Claims 1, 2 IF NOT
- Actividad inventiva (Art. 8.1 LP11/1986) Inventive activity (Art. 8.1 LP11 / 1986)
- Reivindicaciones Reivindicaciones 1-12 SI NO Claims Claims 1-12 IF NOT
- Documento Document
- Número Publicación o Identificación Fecha Publicación Publication or Identification Number publication date
- D01 D01
- GARCÍA-ROSADO, E. et al. International Microbiology. Septiembre 2007, Vol. 10, Nº 3, páginas 193-199. 09.2007 GARCÍA-ROSADO, E. et al. International Microbiology September 2007, Vol. 10, No. 3, pages 193-199. 09.2007
- D02 D02
- CANO, I. et al. Journal of Applied Microbiology. Enero 2007, Vol. 102, Nº 1, páginas 32-40. 01.2007 CANO, I. et al. Journal of Applied Microbiology. January 2007, Vol. 102, No. 1, pages 32-40. 01.2007
- D03 D03
- RODRÍGUEZ, S. et al. Fish Pathology. Septiembre 2001, Vol. 36, Nº 3, páginas 139-146. 09.2001 RODRÍGUEZ, S. et al. Fish Pathology September 2001, Vol. 36, No. 3, pages 139-146. 09.2001
- D04 D04
- PHROMJAI, J. et al. Diseases of Aquatic Organisms. Octubre 2002, Vol. 51, Nº 3, páginas 227-232. 04.10.2002 PHROMJAI, J. et al. Diseases of Aquatic Organisms. October 2002, Vol. 51, No. 3, pages 227-232. 04.10.2002
- D05 D05
- LOPEZ-LASTRA, M. et al. Journal of Fish Diseases. 1994, Vol. 17, Nº 3, páginas 269-282. 1994 LOPEZ-LASTRA, M. et al. Journal of Fish Diseases. 1994, Vol. 17, No. 3, pages 269-282. 1994
- D06 D06
- WONGTEERASUPAYA, C. et al. Diseases of Aquatic Organisms. Diciembre 1997, Vol. 31, Nº 3, páginas 181-186. 30.12.1997 WONGTEERASUPAYA, C. et al. Diseases of Aquatic Organisms. December 1997, Vol. 31, No. 3, pages 181-186. 30.12.1997
- D07 D07
- CUTRÍN, J. M. et al. Journal of Fish Diseases. Diciembre 2005, Vol. 28, Nº 12, páginas 713-722. 12.2005 CUTRÍN, J. M. et al. Journal of Fish Diseases. December 2005, Vol. 28, No. 12, pages 713-722. 12.2005
- 1.2.1.2.
- REIVINDICACIONES DE LA 3 A LA 12 CLAIMS FROM 3 TO 12
- 2.2.
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