ES2342852T3 - Polimero. - Google Patents
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Abstract
Una composición que comprende un polímero de poliamidoamina (PAA) que comprende un resto colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
Description
Polímero.
La presente invención se refiere a polímeros y,
en particular, a poliamidoaminas, y a procedimientos para su
fabricación. La invención se extiende al uso de dichos polímeros de
poliamidoamina para formar composiciones reticuladas e hidrogeles,
y al uso de dichas composiciones en diversas aplicaciones biológicas
y no biológicas, tales como el suministro de biomoléculas a sitios
diana y en sistemas de seguimiento de fluidos.
Las poliamidoaminas lineales (PAA) son polímeros
conocidos, que están constituidos por una cadena básica que tiene
grupos amido y amino terciario que se disponen regularmente a lo
largo de la estructura básica. Las PAA están cargadas positivamente
(es decir, son catiónicas) y son degradables en agua porque
contienen enlaces amídicos hidrolizables en su cadena básica junto
con funciones amínicas terciarias nucleófilas en su posición beta.
Los polímeros pueden sintetizarse a partir de una amplia variedad de
monoaminas primarias o bisaminas secundarias, que permite ejercer
un control total sobre el espaciado y el pKa de los grupos
catiónicos a lo largo de la estructura
básica.
básica.
Las PAA pueden diseñarse para que tengan un
intervalo de propiedades fisicoquímicas útiles, dependiendo de qué
monómeros o co-monómeros específicos se elijan, y
también de su posición a lo largo de la estructura básica. Las PAA
han demostrado tener una toxicidad biológica relativamente baja en
contraste con muchos otros polímeros catiónicos. Además, los
polímeros son altamente hidrófilos y, normalmente, se degradan en
medios acuosos a una velocidad que depende de su estructura. La
combinación de propiedades fisicoquímicas beneficiosas y una buena
biocompatibilidad hacen a las PAA una elección adecuada para su uso
en diversas aplicaciones biológicas.
Los polímeros catiónicos tales como PAA tienen
aplicaciones potenciales en muchas áreas debido a su carga
positiva. Los polímeros cargados positivamente han encontrado uso en
la unión de diversas moléculas biológicas cargadas para su
purificación (por ejemplo, unión a heparina), y también en la
formación de complejos de polielectrolito. El término
"polielectrolito" se da para polímeros cuyas unidades de
repetición llevan un grupo electrolito, que se disocia en
soluciones acuosas (por ejemplo, agua), creando así polímeros
cargados. Los polímeros cargados tales como
poli(D-lisina) y
poli(L-lisina) (PLL) se han usado como
sustratos de adhesión celular durante muchos años, aunque su
toxicidad les hace problemáticos para este propósito.
Las PAA se han usado también en diversas
aplicaciones médicas. Por ejemplo, las PAA pueden actuar como
polímeros útiles para la preparación de complejos de
polielectrolito para el suministro de biomoléculas con carga útil,
tales como construcciones de ADN, a un sitio diana en un paciente.
Por ejemplo, in vitro, las PAA con un número diferente de
combinaciones de co-monómeros han presentado una
buena actividad de transfección para diversas biomoléculas con
carga útil. Se sabe que hay diversas barreras físicas que hacen
difícil el suministro de una biomolécula con carga útil, tal como
ADN plasmídico, al núcleo de las células. Dichas barreras incluyen
medios fisiológicos tales como la sangre con altos contenidos de sal
y de proteínas, la captación inicial hacia la célula, evitar la
degradación en la célula mediante sistemas de endosoma/liposoma,
transporte a través del citoplasma al núcleo y cruzar la propia
membrana nuclear. Por lo tanto, hay una necesidad de desarrollar
nuevos complejos de PAA que presenten un suministro mejorado de
biomoléculas con carga útil al sitio diana.
Además de las aplicaciones médicas de las PAA,
tales como sistemas de suministro de ADN para su uso en pacientes,
también hay considerables aplicaciones para el uso de complejos de
PAA en el suministro y protección de biomoléculas con carga útil
activas en el entorno. Sin embargo, en muchas aplicaciones
medioambientales, donde la molécula con carga útil puede exponerse
a condiciones extremas, la estabilidad del complejo
PAA-biomolécula es una consideración importante y,
por lo tanto, es vital que el complejo esté suficientemente
estabilizado para que sea eficaz. Adicionalmente, un problema
significativo con el uso de PAA en muchas aplicaciones es que los
polímeros tienen una tendencia a agregarse e interaccionar con
superficies cargadas, tales como suelos y minerales. Por
consiguiente, para reducir la agregación y evitar la interacción de
las PAA con dichas superficies cargadas, se han usado PAA
estabilizadas estéricamente complejadas con una superficie PEGilada.
La PEGilación en entornos altamente salinos ha demostrado aumentar
la estabilización contra la agregación no deseada de los complejos
de PAA.
Los complejos de PAA para su uso en dichas
aplicaciones médicas y medioambientales se han desarrollado también
con la incorporación de co-polímeros de bloque de
polietilenglicol (PEG) para aumentar la semi-vida de
los complejos que circulan en la sangre. Por lo tanto, se han
desarrollado procedimientos para producir complejos estabilizados
estéricamente que incorporan PAA y PEG. Sin embargo, aunque los
complejos de polielectrolito que se producen por estos
procedimientos son razonablemente estables en algunos entornos,
padecen el problema de que carecen de estabilidad en entornos
biológicos de alto contenido de sal y alta concentración de
proteínas. Los complejos PAA-PEG, por lo tanto, se
desestabilizan rápidamente y finalmente se disgregan, liberando de
esta manera la molécula con carga útil de la biomolécula en áreas
lejos del sitio diana pretendido. Por consiguiente, tienen una
aplicación limitada en entornos de altas concentraciones de sal y/o
proteína. Para evitar que ocurra esta disgregación, los complejos
de PAA pueden estabilizarse usando reticulaciones físicas entre las
cadenas de PAA próximas. Además, para entornos marinos, donde
existen altas concentraciones de sal y ambientes contaminados donde
están presentes altas concentraciones de diversos agentes químicos,
la estabilización de los complejos de PAA por reticulación física
sería también altamente deseable.
Debido a su naturaleza hidrófila, cuando están
reticuladas, las PAA pueden formar hidrogeles. Los hidrogeles de
PAA tienen el potencial de actuar como estructuras de soporte en
aplicaciones de ingeniería tisular. Adicionalmente, los hidrogeles
basados en PAA han demostrado actuar también como sustratos
biodegradables y biocompatibles para técnicas de cultivo
celular.
Las PAA reticuladas pueden obtenerse por
diversos procedimientos. Por ejemplo, PAA que llevan enlaces vinilo
que están distribuidos regularmente a lo largo de la cadena
principal, obtenidas por co-polimerización con
monómeros adecuados, tales como alil amina pueden emplearse para
resinas reticuladas mediante post-polimerización
por radicales. Otro procedimiento es emplear aminas
multi-funcionales como agentes de reticulación entre
cadenas de PAA próximas. Por ejemplo, los diaminoalcanos contienen
cuatro hidrógenos móviles y se comportan como monómeros
tetrafuncionales, lo que favorece las conexiones intercadena o las
reticulaciones entre cadenas de PAA próximas.
Por lo tanto, hay una necesidad significativa
para la preparación de complejos de PAA reticulados, reducibles,
(es decir, reversibles), que puedan usarse en diversas aplicaciones
médicas y medioambientales, por ejemplo, para suministrar moléculas
con carga útil biológicas. Un número de grupos de investigación han
concebido estrategias en las que los complejos de polielectrolito
con polímeros catiónicos como polietilenimina (PEI) y
poli-L-lisina (PLL) pueden
estabilizarse por reticulación. Un procedimiento anterior usaba
reticulantes de escisión para estabilizar la superficie de los
complejos de polielectrolito pre-formados. Otra
estrategia implica la oligomerización de plantillas en la que se
usan policationes muy pequeños, que después se polimerizan y/o se
reticulan en presencia de ADN. En una modificación de esta
estrategia, un oligómero más grande se reticula o enlaza usando
enlaces disulfuro para dar una cadena lineal de pequeños segmentos
de poli-ión, que se ensamblan por separado, o con
el ADN para dar un polímero de alto peso molecular, reducible.
Pueden usarse uniones no reducibles, aunque menos activas en
términos de actividad de transfección de ADN.
Hay varias razones para el uso de estas diversas
estrategias para reticular los polielectrolitos. En general,
policationes más pequeños no condensan el ADN eficazmente o de forma
estable. Sin embargo, la toxicidad de los polímeros catiónicos
normalmente depende del peso molecular y, por lo tanto, el uso de
polímeros catiónicos de alto peso molecular aumenta la toxicidad
del complejo y, de esta manera, limita su aplicación particularmente
en el campo médico. Por lo tanto, hay un equilibrio que en estos
casos puede resolverse produciendo polímeros de mayor peso
molecular escindibles que proporcionan también un mecanismo de
liberación mejorado para la molécula de ADN con carga útil.
En el caso de las PAA que tienen una toxicidad
intrínseca menor, es posible una estrategia diferente. En este caso
pueden usarse polímeros más grandes, que simplemente están
reticulados para estabilidad y que pueden escindirse para liberar
el ADN. Los inventores de la presente invención han descrito
previamente un procedimiento para producir complejos de PAA
estabilizados estéricamente basados en co-polímeros
tri-bloque
PEG-PAA-PEG (Biochimica et
Biophysica Acta 2002, 1576, 269-286). Sin embargo,
los inventores han descubierto que en el caso de las PAA, no es
posible formar fácilmente reticulaciones para producir una
estructura de PAA PEGilada reticulada, reducible y, por lo tanto,
reversible. Esto se debe a que no hay ningún grupo amina libre
disponible en la estructura para formar reticulaciones después del
ensamblaje de la cadena de PAA.
Por lo tanto, un objeto de la presente invención
es obviar o mitigar uno o más de los problemas de la técnica
anterior, identificados en el presente documento o en otro, y
proporcionar una ruta sintética sencilla, barata y práctica para el
ensamblaje de complejos de PAA reticulados, reducibles (es decir,
reversibles), estabilizados estéricamente, que también sean no
tóxicos. Otro objeto de la invención es proporcionar diversas
aplicaciones, biológicas u otras para el uso de
co-polímeros de PPA-PEG reticulados,
reducibles, estabilizados estéricamente, y sistemas de suministro
producidos con estos polímeros.
Los inventores de la presente invención
investigaron maneras en las que un complejo de PAA reticulado,
reducible, podría producirse usando rutas sintéticas químicas.
Creen que un mecanismo adecuado para reticular cadenas de polímeros
próximas, sería incorporar átomos de azufre en cada molécula de PAA
de manera que podrían formarse enlaces disulfuro (es decir,
reticulaciones) entre ellas.
Por consiguiente, los inventores intentaron
hacer reaccionar piridiltioetilamina (preparada mediante una primera
etapa de reacción de aldritiol-2 con aminoetano
tiol) con una poliamidoamina. Sin embargo, un problema con este
sistema es que la mayor parte del producto se descompone en las
condiciones de poliadición de PAA. Adicionalmente, este esquema de
reacción implica también diversas etapas. Para resolver estos
problemas, los inventores consideraron una ruta sintética
alternativa.
Los inventores concibieron un nuevo esquema de
reacción, mostrándose una realización del mismo en el Esquema 1. En
primer lugar, un compuesto de bisacriloílo se hace reaccionar con
una amina primaria y/o una di-amina secundaria, una
o ambas de las cuales contiene un grupo disulfuro, para formar un
primer compuesto intermedio que comprende un polímero de
poliamidoamina que tiene grupos colgantes que contienen restos
disulfuro. Este primer intermedio se reduce después de manera que
el resto disulfuro se escinde para formar un segundo compuesto
intermedio que comprende un polímero de poliamidoamina que tiene
grupos colgantes que contienen grupos sulfhidrilo (o grupos tiol).
El segundo compuestos intermedio puede oxidarse (por ejemplo, en
aire) de manera que se forman enlaces disulfuro intermoleculares
entre los grupos sulfhidrilo colgantes, formando de esta manera
reticulaciones y produciendo una composición de PAA reticulada que
comprende poliamidoamina reticulada (PAA), en la que las
reticulaciones se forman
entre los restos sulfhidrilo colgantes correspondientes. La composición reticulada tenía naturaleza de gel o de hidrogel.
entre los restos sulfhidrilo colgantes correspondientes. La composición reticulada tenía naturaleza de gel o de hidrogel.
Como se muestra en el Esquema 1, la primera
etapa de la reacción puede implicar también la reacción con
moléculas de amina que no contienen grupos disulfuro, por ejemplo,
en cualquiera de la amina primaria o la di-amina
secundaria. Mediante la elección apropiada de los reactantes y sus
proporciones, puede ejercerse control sobre el nivel (es decir,
concentración, posición y espaciado) de los restos disulfuro
colgantes que se incorporan en la composición final que se prepara.
Dichas moléculas de amina que no contienen grupos disulfuro son más
convenientemente aminas secundarias.
Adicionalmente, como se indica también en el
Esquema 1, los grupos SH libres del segundo compuesto intermedio
pueden activarse para facilitar la reticulación. Como se ilustra,
dicha activación puede ser por reacción con un agente de activación
adecuado, tal como disulfuro de bi-piridilo. Como se
ilustra en los Ejemplos y, en particular, en el Ejemplo 11, la
reacción fue sorprendentemente exitosa y convirtió los reactantes
sustancialmente líquidos (es decir, una composición no reticulada)
en un producto sustancialmente de tipo gel (es decir, una
composición reticulada). Por lo tanto, los inventores han demostrado
exitosamente un nuevo esquema de reacción para preparar polímeros
de PAA que contienen sulfhidrilo, en los que los grupos sulfhidrilo
reaccionan para formar reticulaciones y, de esta manera, formar un
gel. Los inventores creen que, hasta la fecha, no se ha informado
sobre complejos reticulados de PAA. Adicionalmente, los inventores
continuaron para demostrar que añadiendo un agente reductor
adecuado a la composición de hidrogel reticulada o poniendo el
hidrogel en ciertas condiciones, de manera que pueda ocurrir la
reducción, es posible invertir la reacción de reticulación para
producir así una solución de polímero de PAA que no tenga grupos
sulfhidrilo colgantes reticulados. Los inventores creen que son los
primeros en preparar dicha composición de polímero de PAA
reticulable, reducible.
Por lo tanto, de acuerdo con un primer aspecto
de la presente invención, se proporciona una composición que
comprende un polímero de poliamidoamina (PAA) que comprende un resto
colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
Mediante la expresión "resto colgante" se
entiende un grupo que está unido a la cadena principal del polímero
de PAA, pero que no es parte de la cadena principal.
Preferentemente, la composición comprende un
polímero de poliamidoamina (PAA) lineal que comprende un resto
colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
Mediante la expresión "polímero de PAA
lineal" se entienden monómeros de cadena sencilla sin puntos de
ramificación, excluyendo aquí dendrímeros u otras estructuras
ramificadas.
Preferentemente, la composición de acuerdo con
el primer aspecto está adaptada para formar reticulaciones entre el
resto colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado. En la
invención, dichas reticulaciones implican la formación de enlaces
disulfuro.
Cuando la composición no comprende cadenas de
polímero de PAA reticulado, puede tener la forma de una solución.
Sin embargo, cuando la composición está reticulada, forma un gel y
puede denominarse hidrogel. Por consiguiente, la composición de
acuerdo con el primer aspecto puede denominarse también
"composición precursora de hidrogel". Preferentemente, la
composición reticulada es un gel en condiciones normales de
temperatura y presión (es decir, 1 atmósfera, 20ºC).
Preferentemente, la composición reticulada es
reducible, de manera que tras la reducción de la composición
reticulada, las reticulaciones entre las cadenas poliméricas se
rompen. La reducción de la composición reticulada puede conseguirse
mediante un agente reductor adecuado, tal como
1,4-ditiotreitol, metabisulfito sódico o glutatión
reducido. Se observa también que los agentes reductores adecuados se
encuentran también en tejidos biológicos, siendo los agentes
principales glutatión y cisteína.
Ventajosamente, la composición de acuerdo con la
invención es sustancialmente no tóxica o, al menos, tiene una menor
toxicidad que los polímeros catiónicos conocidos usados
habitualmente. Los valores de toxicidad in vitro para varias
PAA normales (es decir, no anfóteras) son del orden de
0,5-4 mg/ ml (E. Ranucci y col., J Biomat. Sci
Polymer Edn 2, 303-315,1991; ICR Hill y col., BBA
1427, 161-174, 1999). Las PAA anfóteras normalmente
son incluso menos tóxicas, siendo algunas de ellas aproximadamente
tan biocompatibles como el dextrano. Por lo tanto, se cree que
dichos polímeros de PAA reticulados reducibles tienen numerosas
aplicaciones en los campos médicos y no médicos, porque es posible
cambiar la composición de la solución a gel (es decir, estados de
hidrogel) y viceversa. Adicionalmente, la composición de acuerdo con
la invención puede usarse para suministrar una molécula con carga
útil, por ejemplo, una biomolécula con carga útil biológicamente
activa a un sitio diana, como se describirá posteriormente en el
presente documento, que también tiene numerosas aplicaciones
biológicas y no biológicas.
El polímero de PAA puede sintetizarse a partir
de un amplio intervalo de amidas y aminas, con la condición de que
la amina sea un disulfuro terminado en amina primara y/o una
di-amina secundaria que contiene un grupo
disulfuro. Esto es útil para variar la interacción del polímero de
PAA resultante con diversas moléculas con carga útil. Se prefiere
que el polímero de PAA sea sustancialmente soluble en agua.
\newpage
El polímero de PAA de acuerdo con el primer
aspecto de la invención puede contener grupos repetidos X e Y
representados por la Fórmula general I:
(Fórmula
I)-\{-[X]-[Y]-\}_{n}
en la
que,
n es entre 5 y 500;
los grupos X, que pueden ser iguales o
diferentes, son grupos que contienen amida de la fórmula
-[-L^{1}-CO-NR^{1}-L^{2}-NR^{2}-CO-L^{3}-]
en la
que
L^{1} y L^{3} representan,
independientemente, grupos etileno opcionalmente sustituidos;
L^{2} representa una cadena de alquileno
opcionalmente sustituida; y
R^{1} y R^{2} representan,
independientemente, hidrógeno o un grupo alquilo opcionalmente
sustituido;
y los grupos Y, que pueden ser iguales o
diferentes, representan grupos derivados de amina de la fórmula:
-[-NR^{3}-]-
\hskip0.3cm o \hskip0.3cm
-[-NR^{4}-L^{4}-NR^{5}-]-
en las
que
R^{3}, R^{4} y R^{5} representan grupos
alquilo opcionalmente sustituidos; y
L^{4} representa un grupo alquileno
opcionalmente sustituido;
o R^{4}, R^{5} y L^{4}, junto con los
átomos de nitrógeno a los que están unidos, forman un anillo
opcionalmente sustituido, con la condición de que al menos alguno
de R^{3}, R^{4} y R^{5} contenga grupos disulfuro,
sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
Se prefiere que R^{1} y R^{2} sean
hidrógeno. Cuando R^{1} y/o R^{2} representan un grupo alquilo
opcionalmente sustituido, más preferentemente un grupo alquilo que
contiene una cadena C_{1}-C_{20}, más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{10} y aún más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{5}.
R^{3}, R^{4} y R^{5} representan más
preferentemente grupos alquilo opcionalmente sustituidos que
contienen una cadena C_{1}-C_{20}, más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{10} y aún más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{5}.
L^{2} y L^{4} representan más
preferentemente cadenas de alquileno opcionalmente sustituido que
contiene 1-10 átomos de carbono, más adecuadamente
1-5 átomos de carbono y aún más adecuadamente
1-3 átomos de carbono. L^{2} y L^{4}
preferentemente están no sustituidos. L^{2} representa más
preferentemente -CH_{2}-. L^{4} representa más preferentemente
-CH_{2}CH_{2}-.
Cuando cualquiera de L^{1}, L^{2}, L^{3} y
L^{4} están sustituidos, los sustituyentes pueden seleccionarse
entre un amplio intervalo, incluyendo, sin limitación, alquilo,
alcoxi, acilo, acilamino, carboxi, ciano, halo, hidroxi, nitro,
trifluorometilo y amino.
Cuando R^{1} y/o R^{2} está sustituido, los
sustituyentes pueden seleccionarse entre un amplio intervalo,
incluyendo, sin limitación, alquilo, alcoxi, acilo, acilamino,
carboxi, ciano, halo, hidroxi, nitro, trifluorometilo y amino.
Cuando cualquiera de R^{3}, R^{4} y R^{5}
están sustituidos, los sustituyentes pueden seleccionarse entre un
amplio intervalo, incluyendo, sin limitación, alquilo, alcoxi,
acilo, acilamino, carboxi, ciano, halo, hidroxi, nitro,
trifluorometilo y amino. Al menos alguno de R^{3}, R^{4} y
R^{5} están sustituidos con grupos seleccionados entre
sulfhidrilo, sulfhidrilo activado y
-S-S-R^{6}, en la que R^{6}
representa alquilo opcionalmente sustituido con uno o más
sustituyentes seleccionados entre un amplio intervalo, incluyendo,
sin limitación, alquilo, alcoxi, acilo, acilamino, carboxi, ciano,
halo, hidroxi, nitro, trifluorometilo y amino.
A menos que el contexto indique otra cosa, las
referencias en el presente documento a grupos alquilo debería
considerarse que indican grupos alquilo opcionalmente sustituidos
que contienen una cadena C_{1}-C_{20}, más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{10} y aún más
adecuadamente una cadena C_{1}-C_{5}.
\newpage
En la Fórmula I, n puede ser entre 5 y 400, más
adecuadamente entre 10 y 300 y aún más adecuadamente entre 20 y
100.
Preferentemente, el peso molecular del polímero
de PAA es entre 1500 Da y 120.000 Da, más preferentemente entre
3.000 Da y 90.000 Da, aún más preferentemente entre 4.000 Da y
60.000 Da y los más preferentemente entre 6.000 Da y 30.000 Da. Los
inventores han apreciado la importancia de su nuevo esquema de
reacción como se muestra en el Esquema 1 usado para la preparación
de la composición de acuerdo con el primer aspecto.
Por consiguiente, en un segundo aspecto de la
invención, se proporciona un procedimiento de preparación de un
polímero de poliaminoamida (PAA) que comprende un resto colgante
disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado, comprendiendo el
procedimiento hacer reaccionar un compuesto de bisacriloílo con una
amina primaria y/o una di-amina secundaria, una o
ambas de las cuales contiene un grupo disulfuro.
Una realización del procedimiento del segundo
aspecto se resume en el Esquema 1, y comprende el uso de diferentes
monómeros para formar un co-polímero. Se apreciará
que la composición de acuerdo con el primer aspecto, que se prepara
por el procedimiento del segundo aspecto, comprende un polímero o
co-polímeros de PAA. Los
co-polímeros se preparan uniendo juntas dos o más
secuencias lineales de diferentes homopolímeros diferentes y, en los
casos en los que los homopolímeros son largos, se produce un
co-polímero de bloque. El técnico experto apreciará
cómo preparar co-polímeros
di-bloque, tri-bloque, de bloques
intercalados o de estereo-bloque, y cómo elegir
combinaciones de diversos monómeros o co-monómeros
para conseguir el polímero deseado.
Como se muestra en el Esquema 1 y como se
describe en los Ejemplos, las PAA (que son preferentemente lineales)
que contienen un grupo colgante disulfuro, sulfhidrilo o
sulfhidrilo activado, pueden sintetizarse en un número de
estructuras y secuencias poliméricas diferentes, dependiendo de los
monómeros elegidos.
El compuesto de bisacriloílo usado en el
procedimiento puede tener la fórmula II:
(Fórmula
II)-CH_{2}=CH-CO-NR^{1}-L^{2}-NR^{2}-CO-CH=CH_{2}
en la que R^{1}, R^{2}, y
L^{2} son como se han definido con respecto a la Fórmula
I.
Preferentemente, R^{1} y R^{2} son
hidrógeno. Preferentemente, L^{2} es un grupo CH_{2}. Se
prefiere más que el compuesto de bisacriloílo sea bisacrilamida de
metileno (MBA).
En las realizaciones preferidas del
procedimiento en las que se usa una amina primaria que contiene un
disulfuro, la amina primaria que contiene un grupo disulfuro puede
tener la fórmula III:
(Fórmula
III)-NH_{2}-R^{3}
en la que R^{3} es como se ha
definido en la Fórmula
I.
Preferentemente, R^{3} representa un grupo
alquilo, más preferentemente alquilo C_{1-2},
sustituido con -S-S-R^{6}, en la
que R^{6} es como se ha definido anteriormente, y es más
preferentemente un grupo alquilo C_{1-2} que
puede estar opcionalmente sustituido.
Preferentemente, la amina primaria que contiene
un grupo disulfuro es cistamina, que puede estar sin proteger. Sin
embargo, preferentemente, se usa un derivado
mono-protegido de la amina primaria en el
procedimiento. De esta manera, más preferentemente, la amina
primaria es cistamina, uno de cuyos grupos amina lleva un grupo
protector. Los inventores creen que el uso de un disulfuro terminado
en amina primaria en la preparación de la composición es ventajoso
porque requiere el uso de un pequeño número de etapas y porque la
mayor parte del producto no se descompone en las condiciones de
poliadición de PAA. Los Ejemplos 1 a 3 ilustran el procedimiento
del segundo aspecto.
En realizaciones del procedimiento en las que se
usa di-amina secundaria que contiene un disulfuro,
la di-amina secundaria puede tener la fórmula
IV:
(Fórmula
IV)H-NR^{4}-L^{4}-NR^{5}-H
en la que R^{4}, R^{5} y
L^{4} son como se han definido en relación con la Fórmula
I.
R^{4} o R^{5} pueden representar un grupo
alquilo, más preferentemente alquilo C_{1-2},
sustituido con - S-S-R^{6}, en la
que R^{6} es como se ha definido anteriormente, y más
preferentemente es un grupo alquilo C_{1-2}, que
opcionalmente puede estar sustituido.
\newpage
En una realización, el procedimiento de acuerdo
con el segundo aspecto puede comprender hacer reaccionar un
compuesto de bisacriloílo con una amina primaria que contiene un
grupo disulfuro (es decir, de Fórmula III). En otra realización, el
procedimiento puede comprender hacer reaccionar un compuesto de
bisacriloílo con una di-amina secundaria que
contiene un grupo disulfuro (es decir, de Fórmula IV). Se apreciará
que el procedimiento puede comprender también hacer reaccionar un
compuesto de bisacriloílo con una amina primaria que contiene un
grupo disulfuro, mostrada como Fórmula III y además, una
di-amina secundaria que contiene un grupo disulfuro,
mostrada como Fórmula IV.
Sin embargo, para controlar el nivel de grupos
disulfuro o sulfhidrilo introducidos en el polímero de PAA
producido, se prefiere especialmente que el procedimiento de acuerdo
con el segundo aspecto implique el uso de moléculas de amina que no
contienen ningún grupo disulfuro. Por ejemplo, la amina primaria
(que contiene grupos disulfuro) puede usarse junto con una
di-amina secundaria (que no contiene grupos
disulfuro), o viceversa, para dar un polímero con un nivel
controlado de restos disulfuro colgantes.
En una realización más preferida, la
di-amina secundaria puede no contener un disulfuro.
Por lo tanto, con referencia a la Fórmula IV, preferentemente
R^{4} es metilo. Preferentemente, R^{5} es metilo.
Preferentemente L^{4} comprende un CH_{2} y más preferentemente
CH_{2}CH_{2,} Por lo tanto, la di-amina
secundaria puede tener preferentemente la fórmula V:
(Fórmula
V)-CH_{3}-NH-CH_{2}-CH_{2}-NH-CH_{3}
Por lo tanto, se prefiere que una
di-amina secundaria sea dimetiletilendiamina
(DMEDA), como se muestra en los Esquemas 1 y 4, o
2-metil-piperazina, como se muestra
en los Esquemas 2 y 3.
Por lo tanto, preferentemente, el procedimiento
de acuerdo con un segundo aspecto comprende hacer reaccionar un
compuesto de bisacriloílo, preferentemente de Fórmula II, con una
amina primaria que contiene un grupo disulfuro, preferentemente de
Fórmula III, con una di-amina secundaria,
preferentemente de Fórmula V.
Por lo tanto, como se muestra en el Esquema 1,
en la etapa uno del procedimiento, el compuesto de bisacriloílo, la
amina primaria que contiene un grupo disulfuro y, preferentemente,
la di-amina secundaria se hacen reaccionar juntas.
Las condiciones de reacción adecuadas para la etapa uno comprenden
disolver una bisacrilamida y BOC-cistamina en agua
y agitarlas juntas en atmósfera de nitrógeno durante 6 h. El
componente de di-amina se añade después y se hacer
reaccionar durante 72 horas más. La bisacrilamida se usa en una
cantidad equimolar respecto a la suma de los componentes
di-amina y BOC-cistamina. La
cantidad de BOC-cistamina puede ajustarse para
variar la proporción de unidades de repetición que contiene un
grupo sulfhidrilo. Los Ejemplos 1-3 y el Esquema 5
ilustran esta
reacción.
reacción.
Como se muestra en el Esquema 1, en la etapa dos
del procedimiento de acuerdo con el segundo aspecto, el disulfuro
colgante puede reducirse posteriormente para dar un grupo
sulfhidrilo libre. La reducción puede realizarse usando cualquier
agente de reducción conocido por el técnico experto, por ejemplo,
ditiotreitol (DTT). Las condiciones de reacción adecuadas para la
etapa dos comprenden una reacción en agua que contiene tampón tris
a pH 8,5 durante 6 horas. Para el DTT, puede usarse un exceso molar
de 3 veces, aunque para el bisulfito sódico, se requiere una
cantidad 1000 veces mayor. Los ejemplos de reducción de polímero se
muestran en los Ejemplos 4-9 usando metabisulfito
sódico (véanse los Ejemplos 5, 7 y 9) o DTT (véanse los Ejemplo 4, 6
y 8) y la reacción mostrada en el Esquema 6. Como se muestra en el
Esquema 1, en la etapa tres del procedimiento de acuerdo con el
segundo aspecto, el grupo sulfhidrilo libre puede activarse tras la
adición de un agente de activación adecuado, por ejemplo, disulfuro
de dipiridilo, como se ilustra en los Ejemplos 10 y 12 y en el
Esquema 7. Preferentemente, el grupo sulfhidrilo libre se hace
reaccionar con un bisulfuro de dipiridilo para dar un grupo
sulfhidrilo protegido/activado. Las condiciones de reacción
adecuadas para la etapa tres comprenden tratar el polímero reducido
con una cantidad equimolar de disulfuro de dipiridilo durante 15
horas en agua que contiene tampón tris a pH 8,5, como se detalla en
los Ejemplos 10 y 12. Como alternativa, como se describe en el
Ejemplo 34, puede usarse ácido
5,5-ditiobis(2-nitrobenzoico)
en lugar de disulfuro de dipiridilo como un agente de
activación.
Como se ha mencionado anteriormente, la
composición de acuerdo con el primer aspecto puede existir como una
solución en condiciones en las que hay poca o sustancialmente
ninguna reticulación entre las cadenas de polímero de PAA. Sin
embargo, los inventores han descubierto que la composición que
comprende PAA lineal que comprende un resto colgante disulfuro,
sulfhidrilo o sulfhidrilo activado proporciona un sistema de
reticulación sorprendentemente útil, que puede modificarse para su
uso en una diversidad de aplicaciones biológicas y no biológicas. En
particular, los inventores creen que la composición de acuerdo con
el primer aspecto puede usarse eficazmente en un procedimiento para
la preparación de composiciones reticuladas, tales como hidrogeles,
que tienen diversas aplicaciones en medicina.
Por lo tanto, de acuerdo con un tercer aspecto
de la invención, se proporciona un hidrogel que comprende una
pluralidad de cadenas de polímero de poliamidoamina (PAA) que están
reticuladas mediante grupos de unión que contienen enlaces
disulfuro reducibles.
Mediante el término "hidrogel", se entiende
un gel en el que el agua es el medio de dispersión principal. Por
lo tanto, preferentemente, los componentes y subunidades del
hidrogel, es decir, las cadenas poliméricas de PAA reticuladas se
dispersan dentro del agua. Preferentemente, el hidrogel comprende al
menos un 80% (p/p) de agua, más preferentemente al menos un 90%
(p/p) de agua y más preferentemente, al menos un 95% (p/p), incluso
más preferentemente, al menos un 98% (p/p) de agua.
Los componentes reticulados del hidrogel (es
decir, las cadenas de PAA) pueden tener un grado de polimerización
entre 5 y 500, más preferentemente entre 10 y 250 y más
preferentemente aún entre 10 y 100. Suponiendo un peso molecular
unitario repetido de 300, estos pueden tener intervalos de peso
molecular de 1500 Da a 150.000 Da y más preferentemente entre 3.000
Da y 75.000 Da y aún más preferentemente entre 3.000 Da y 30.000
Da.
Mediante el término "reticulación", se
entiende un enlace covalente formado entre grupos colgantes unidos
a dos cadenas poliméricas diferentes. En la invención, dichas
reticulaciones implican la formación de enlaces disulfuro.
Preferentemente, el hidrogel reticulado del
tercer aspecto es reducible, en el que las reticulaciones entre las
cadenas poliméricas de PAA pueden romperse cuando el hidrogel se
reduce. Los hidrogeles se conocen per se. Sin embargo, un
hidrogel que comprende polímeros de PAA reticulados, reducibles, no
se conoce, y es esta capacidad de reducción la que proporciona
ventajas significativas sobre los hidrogeles conocidos.
El hidrogel de PAA reticulado (sustancialmente
insoluble) puede reducirse tras ponerlo en contacto con un agente
reductor, por ejemplo, ditiotreitol (DTT), metabisulfito sódico o
glutatión. Las condiciones de reacción adecuadas para la reducción
del hidrogel son que el hidrogel hidratado se ajusta a un pH de 8,5
con hidróxido sódico y se hace reaccionar con un exceso de 3 veces
de ditiotreitol o un exceso molar de 3000 veces de metabisulfito
sódico. Esta reacción de reducción se ejemplifica en el Esquema 9 y
los Ejemplos 23, 25 y 27, que describen la reducción con DTT y los
Ejemplos 24, 26 y 28 que describen la reducción del hidrogel con
metabisulfito sódico. Esto da como resultado una composición
correspondiente (sustancialmente soluble) de acuerdo con el primer
aspecto en el que las cadenas de PAA tienen grupos colgantes que
contienen grupos sulfhidrilo.
La composición de PAA reducida, soluble, puede
purificarse por procedimientos conocidos en la técnica, con la
condición de que se mantenga una atmósfera sustancialmente libre de
oxígeno. En la mayoría de los casos, la purificación se consigue
por ultrafiltración (Biomacromolecules 2, 1023-1028,
2001; Biomacromolecules 6, 2229-2235, 2005;
Biomacromolecules 7, 1215-1222, 2006), y como se
describe en diversos ejemplos. Por lo tanto, ventajosamente, la
composición de acuerdo con el primer aspecto que comprende una
composición que contiene un polímero de PAA puede almacenarse en
condiciones inertes, por ejemplo, en nitrógeno, en estado de
hidrogel sólido (es decir, el hidrogel de acuerdo con el tercer
aspecto) o como una solución sustancialmente acuosa (es decir, la
composición del primer aspecto).
Si se purifica a partir del agente reductor, es
decir, tras la re-oxidación, entonces la PAA que
lleva sulfhidrilo vuelve a convertirse de nuevo en la red
reticulada del hidrogel del tercer aspecto. Los inventores han
descubierto que el aire es un agente oxidante suficientemente
fuerte y esto se muestra en los Ejemplos 29, 31 y 33.
Adicionalmente, la temperatura también es un factor que influye en
si la composición es acuosa o un hidrogel. Por lo tanto, en verano
(es decir, a temperaturas por encima de 30ºC), la solución acuosa
puede dejarse en un vaso de precipitados durante un tiempo y se
observará gelificación a medida que se desarrollan reticulaciones
entre las cadenas de PAA adyacentes. Puede usarse también peróxido
de hidrógeno diluido para provocar la gelificación. El polímero
reducido típicamente en este tampón tris a pH 8,5 se haría
reaccionar con una cantidad equimolar de solución al 5% de peróxido
de hidrógeno durante 3 horas. Sin embargo, debería evitarse un
exceso (más de 1,3 veces la cantidad estequiométrica).
Debe apreciarse que la composición de PAA
soluble que comprende PAA reducido (debido a la acción del agente
reductor) puede usarse para formar un hidrogel directamente. Debe
apreciarse también que la PAA activada puede usarse también para
formar un hidrogel directamente.
Adicionalmente, en otro aspecto, se proporciona
un procedimiento de preparación de un hidrogel que comprende una
pluralidad de cadenas de polímero de poliamidoamina (PAA) que están
reticuladas mediante grupos de unión que contienen enlaces
disulfuro reducibles, comprendiendo el procedimiento: (i) hacer
reaccionar un compuesto de bisacriloílo con una amina primaria y/o
una di-amina secundaria, una o ambas de las cuales
contiene un grupo disulfuro, para formar cadenas de polímero de PAA
y (ii) permitir que los enlaces disulfuro reducibles se formen
entre las cadenas de polímero de PAA.
El hidrogel puede prepararse in situ, por
ejemplo, usando cistamina no protegida como la amina primaria. Este
procedimiento se describe en los Ejemplos 20 a 22.
Los inventores han descubierto que la
composición de acuerdo con el primer aspecto o el hidrogel de
acuerdo con el tercer aspecto pueden convertirse fácilmente en o
sintetizarse como un co-polímero con PEG, para
formar PAA reticulables PEGiladas. La inclusión de PEG en
hidrogeles puede tener numerosos efectos beneficiosos, que
comprenden mejorar la biocompatibilidad y reducir adicionalmente la
toxicidad de los polímeros catiónicos y conferir propiedades de
circulación prolongada de los hidrogeles si se formulan como
nanopartículas. Por lo tanto, en una realización preferida, la
composición del primer aspecto o el hidrogel del tercer aspecto
comprenden un co-polímero de poliamidoamina (PAA)
que comprende un resto colgante disulfuro, sulfhidrilo o
sulfhidrilo activado y PEG.
El técnico experto apreciará la estructura y el
comportamiento del PEG, que se ilustra en el Esquema 2.
Preferentemente, la composición comprende un
co-polímero de bloque de
poli(amidoamina)-(etilenglicol). Preferentemente, la
composición del primer aspecto del hidrogel o el hidrogel del tercer
aspecto comprenden un co-polímero de bloque que
tiene la estructura con bloques repetidos de
poli(etilenglicol) y poli(amidoamina), en los que PEG
contiene entre 2 y 500 y más preferentemente entre 10 y 250 unidades
de etilenglicol. Los inventores creen que un procedimiento para
incorporar PEG en la composición del primer aspecto o el hidrogel
del tercer aspecto es particularmente útil.
Por lo tanto, de acuerdo con un cuarto aspecto
de la invención, se proporciona un procedimiento para preparar una
composición que comprende un co-polímero de
polietilenglicol (PEG) y poliamidoamina (PAA) que comprende un
resto colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado, que
puede estar o no reticulada, comprendiendo el procedimiento poner
en contacto monómeros de poliamidoamina (PAA) que comprenden un
resto colgante disulfuro, sulfhidrilo y sulfhidrilo activado con
PEG terminado en amina; y permitir que se forme el
co-polímero correspondiente.
Los inventores han previsto un nuevo
procedimiento de acuerdo con el cuarto aspecto para preparar PAA
reticulables PEGiladas. Las etapas (a) a (e) del Esquema 2 ilustran
una realización del procedimiento del cuarto aspecto que da como
resultado la preparación de un co-polímero de PAA
PEGilada, donde n se refiere al número de monómeros de PEG. Por lo
tanto, PEG puede hacerse reaccionar con un activador de
polimerización adecuado, tal como carbodiimida (CDI), para producir
una estructura PEGilada. Adecuadamente, n (mostrado en el Esquema 2)
puede ser entre 0 y 100, más adecuadamente entre 5 y 8 y, aún más
adecuadamente, entre 10 y 50. El producto de esta etapa (c) puede
mezclarse con un disulfuro terminado en amina primaria (b) y/o una
amina primaria o di-amina secundaria (a) en una
proporción de a+b+c = 1, y hacerse reaccionar con una bisacrilamida
como en el procedimiento del segundo aspecto. Preferentemente, la
cantidad total de reactantes a+b+c es sustancialmente igual a la
cantidad de bisacrilamida.
Como se muestra en el Esquema 2, el producto de
esta etapa es un co-polímero
multi-bloque de PAA lineal que comprende un
polímero de poliamidoamina que tiene grupos colgantes que contienen
restos disulfuro. Este puede reducirse con un agente reductor
adecuado, de manera que el resto disulfuro se escinde y se sustituye
por hidrógeno para formar un segundo compuesto intermedio que
comprende un polímero de poliamidoamina que tiene grupos colgantes
que contienen grupos sulfhidrilo (es decir, un grupo tiol). El
segundo compuesto intermedio puede oxidarse (por ejemplo, al aire),
de manera que se forman enlaces disulfuro intramoleculares entre los
grupos sulfhidrilo colgantes formando de esta manera reticulaciones
y produciendo una composición de PAA reticulada que comprende
poliamidoamina (PAA) reticulada, en la que se forman reticulaciones
entre los restos sulfhidrilo colgantes correspondientes. La
composición reticulada es un hidrogel en condiciones normales. Como
alternativa, el segundo compuesto intermedio puede hacerse
reaccionar con un agente activante adecuado, tal como disulfuro de
piridilo, para producir una poliamidoamina (PAA) que comprende un
resto sulfhidrilo colgante, que a su vez forma la composición que
comprende una poliamidoamina reticulada (PAA) que comprende un resto
sulfhidrilo colgante. El producto resultante es un
co-polímero de PEG-PAA lineal
multi-bloque que contiene un grupo sulfhidrilo
colgante para la reticulación.
Como alternativa, un co-polímero
tri-bloque
PEG-PAA-PEG puede producirse usando
una reacción en dos etapas en la que un pequeño exceso de
bisacriloílo está presente en la mezcla de reacción de
polimerización para producir un polímero terminado en acrilato.
Este producto puede hacerse reaccionar después adicionalmente
mediante adición de PEG terminado en amina para dar un
co-polímero tri-bloque terminado en
amina.
Como se ilustra en el Esquema 3, que es otra
realización del procedimiento del cuarto aspecto, los inventores
han descubierto también que un monometoxi PEG (es decir,
mono-protegido) puede modificarse con una
di-amina primaria, que puede hacerse reaccionar
posteriormente con otros co-monómeros para dar un
co-polímero de PEG-PAA de tipo
peine con las cadenas de PEG colgando de la cadena de polímero
principal. Por la expresión "co-polímero de
peine" se entiende uno en el que las cadenas de polímero (por
ejemplo, PEG) se fijan a (es decir, cuelgan de) la cadena de
polímero principal (por ejemplo, PAA), de la misma forma que las
púas de un peine.
En esta realización del procedimiento, la
adición secuencial de monometoxi PEG modificado con diamina después
de la síntesis de PAA da como resultado, ventajosamente, una
conformación tri-bloque
PEG-PAA-PEG con grupos terminales
protegidos con metoxi, como se muestra en el Esquema 4.
Los inventores creen que la composición y el
hidrogel de acuerdo con la invención tendrán una utilidad
considerable en muchos escenarios biomédicos, por ejemplo, en el
suministro de biomoléculas con carga útil a un sitio diana.
Por lo tanto, de acuerdo con un quinto aspecto
de la invención, se proporciona una composición de suministro para
suministrar una molécula con carga útil, comprendiendo la
composición de suministro una molécula con carga útil combinada con
la composición de acuerdo con el primer aspecto, o un hidrogel de
acuerdo con el tercer aspecto.
De acuerdo con un sexto aspecto de la invención,
se proporciona un procedimiento para preparar la composición de
suministro de acuerdo con el quinto aspecto, comprendiendo el
procedimiento poner en contacto una molécula con carga útil con la
composición de acuerdo con el primer aspecto o con un hidrogel de
acuerdo con el tercer aspecto, y exponer la mezcla a condiciones
tales que la molécula con carga útil se combina con la composición
o hidrogel, formando de esta manera una composición de suministro
con carga útil de acuerdo con el quinto aspecto.
La composición de suministro puede ser una
solución o un hidrogel y puede asumir cualquier forma o dimensión
dependiendo de la molécula con carga útil a suministrar y la
aplicación específica requerida. Por ejemplo, si la molécula con
carga útil es una molécula polianiónica, tal como ADN, entonces tras
complejarse con un polímero catiónico tal como PAA, hay una
neutralización mutua de cargas. Esta neutralización conduce a una
pérdida de hidrofilicidad y la pérdida resultante de moléculas de
agua del complejo dirige la condensación de partículas a una
estructura altamente enrollada. En dichos casos, no se formaría un
hidrogel. Por consiguiente, preferentemente, la composición de
suministro con carga útil puede comprender una partícula de soporte,
por ejemplo, una micropartícula o una nanopartícula.
Por lo tanto, en un séptimo aspecto, se
proporciona una partícula de soporte adaptada durante el uso para
llevar una molécula con carga útil a un sitio diana, comprendiendo
la partícula de soporte la composición de acuerdo con el quinto
aspecto, en la que la molécula con carga útil es capaz de ser activa
cuando la partícula es al menos adyacente al sitio diana.
La molécula con carga útil puede comprender un
compuesto biológicamente activo (o biomolécula). Mediante el
término "biomolécula", se hace referencia a cualquier molécula
orgánica con una actividad y/o especificidad biológica, es decir,
el compuesto tiene un efecto biológico sobre el alcance del sitio
diana. La biomolécula puede ser una macromolécula de un organismo
vivo. Por ejemplo, la molécula con carga útil puede comprender una
célula entera, una parte de una célula, un virus, fago o un
microorganismo o un orgánulo, o una partícula de virus, etc., un
aminoácido, péptido, proteína, enzima, anticuerpo o un polisacárido.
La carga útil puede comprender alternativamente otras moléculas o
construcciones tales como materiales colorantes o particulados
tales como micropartículas, nanopartículas u otros complejos de
polielectrolito.
Sin embargo, preferentemente, la molécula con
carga útil comprende una molécula polianiónica biológicamente
activa, que preferentemente comprende una matriz regular de cargas
negativas a lo largo de la misma. Por ejemplo, la molécula con
carga útil puede comprender un ácido nucleico o un derivado del
mismo. La molécula con carga útil puede comprender ADN o ADNc o ARN
(por ejemplo, ARNm, ARNsi o ARNt). Ventajosamente, ocurre la
atracción electrostática entre las cargas positivas del polímero de
PAA y las cargas negativas de la molécula polianiónica, por
ejemplo, la estructura de fosfato del ADN, para formar un complejo
de polielectrolito que mejora la capacidad de la partícula de
soporte de unirse y, por lo tanto, de llevar la carga útil.
El sitio diana puede ser un entorno biológico
diana que requiere el suministro de la molécula con carga útil, por
ejemplo, un sitio de tratamiento de un paciente, por ejemplo, un
sitio con herida. El sitio diana puede ser un fluido corporal, un
órgano, tejido, una célula, un grupo de células, tal como una masa
tumoral. Dependiendo de la aplicación, el sitio diana puede ser
intracelular (por ejemplo, para suministro de ADN) o extracelular
(por ejemplo, matriz de hidrogel). Por consiguiente, el sitio diana
puede estar fuera de una célula, es decir, en la matriz
extracelular, o en la superficie de la célula.
Los tamaños adecuados de la partícula de soporte
pueden variar de acuerdo con la carga útil y el uso. Para algunos
usos, por ejemplo, el suministro de ADN, puede preferirse una
formulación con tamaño de nanopartículas, en cuyo caso la partícula
de soporte puede estar en el intervalo de 10 nm a 500 nm o más
preferentemente de 20 nm a 250 nm, o más preferentemente aún entre
30 nm y 100 nm. Como se ilustra en las Figuras 3, 4, 6 y 7, los
tamaños de partícula pueden estar entre 30 nm y 170 nm.
Para otros usos, por ejemplo, la incorporación
de una proteína de baja liberación, puede preferirse una partícula
de soporte de tamaño micrométrico con un intervalo de tamaño de 0,5
a 20 micrómetros o más preferentemente de 1 micrómetro a 5
micrómetros. Preferentemente, la partícula de soporte es de forma
sustancialmente esférica y, por lo tanto, las dimensiones dadas
anteriormente son el diámetro medio de la partícula. Sin embargo,
dependiendo de las condiciones ambientales, una partícula original
que tenga geometría esférica puede modificarse a una forma
elíptica.
Debido a las considerables barreras físicas
presentadas para el suministro de moléculas con carga útil a células
y tejidos, puede preferirse incorporar diversos restos adicionales
en las composiciones o el hidrogel de acuerdo con la invención y,
en particular, el polímero de PAA de la misma. A modo de ejemplo, el
polímero de PAA puede comprender adicionalmente ligandos dirigidos
a la superficie celular o ligandos que se unen a la célula o
secuencias dirigidas nucleares etc., que facilitan el suministro de
la partícula de soporte al núcleo celular.
Ventajosamente, la química de las PAA descrita
en el presente documento se presta fácilmente por sí misma a la
incorporación de dichos restos y ligandos adicionales dentro del
sistema de suministro o la partícula de soporte. Por ejemplo,
pueden producirse fácilmente co-polímeros
tri-bloque de
PEG-PAA-PEG terminados en amina en
la modificación del Esquema 2, que permite la adición de ligandos de
reconocimiento biológicos, por ejemplo, para dirección y captación
de células. La incorporación de otros grupos o restos colgantes
dentro del polímero también es posible, y puede ser útil para la
incorporación de otras funciones biológicas dentro del polímero de
PAA, por ejemplo, incorporación de péptidos penetrantes en membrana
o secuencias de localización nuclear, que las conocen bien los
técnicos expertos.
Los inventores investigaron un procedimiento
para incorporar una molécula con carga útil, tal como ADN, en la
composición del primer aspecto o el hidrogel del tercer aspecto para
preparar la composición del quinto aspecto, que puede usarse para
formar una partícula de soporte del séptimo aspecto, La partícula de
soporte se muestra en la Figura 2. Como se ilustra en el Esquema 4,
que es una realización del procedimiento de acuerdo con el sexto
aspecto, los inventores han descubierto que pueden producirse
micelas de poli-ión que contienen una molécula con
carga útil, tal como ADN, mezclando polímeros catiónicos PEGilados
con ADN. En una realización de este procedimiento, esto puede
conseguirse produciendo un
PEG-PAA-PEG, como se ha descrito en
relación con el procedimiento de acuerdo con el segundo aspecto
respecto al Esquema 2 o el Esquema 3 y usando una PAA que contiene
sulfhidrilo, descrito en el Esquema 1 como un reticulante. Este
co-polímero de reticulación corto puede ser un
co-polímero aleatorio con una pequeña concentración
de disulfuros colgantes. Como alternativa, los polímeros de PAA con
grupos disulfuro terminales pueden producirse mediante componentes
poliméricos de reacción secuencial, en primer lugar usando la
mezcla de componentes de bisacriloílo y di-amina y
después una adición posterior del bisacriloílo con la cistamina
monoprotegida.
Para producir complejos adecuados y, por lo
tanto, partículas de soporte adecuadas de acuerdo con la invención,
los inventores han descubierto que es ventajoso mantener una
proporción apropiada de polímero de PAA a moléculas con carga útil,
que, si se usa ADN, es la proporción PAA:ADN. Los inventores han
demostrado previamente que las PEG-PAA pueden
producir complejos de polielectrolito estabilizados estéricamente
con ADN combinando PAA y PAA PEGilada
(PEG-PAA-PEG) en proporciones
adecuadas para dar proporciones de PEG a PAA apropiadas. Por lo
tanto, considerando la optimización de estos complejos de
polielectrolito, la localización de los sulfhidrilos en el
PEG-PAA-PEG pueden situarse mejor
inmediatamente entre los extremos de la PAA y el comienzo de los
restos terminales de PEG para permitir una reducción sencilla del
complejo cuando se requiera, para liberar así la molécula con carga
útil. En este caso, una realización de un esquema para producir un
número y localización controlados de restos sulfhidrilo, que puede
preferirse, se ilustra en el Esquema 4.
El ensamblaje de la partícula de soporte puede
conseguirse por procedimientos como se desvela en Rackstraw y col.
(Biochimica et Biophysica acta 1576, 269-286, 2002).
En esta publicación, se demostraba que una mezcla de PAA y
PEG-PAA-PEG mezclado con ADN daba
complejos estabilizados estéricamente pequeños, reproducibles,
aunque la calidad de los complejos puede verse afectada por el orden
de adición de los reactivos. Si se usan polímeros que contienen
grupos sulfhidrilo libres, puede usarse un procedimiento similar.
Como alternativa, si se usan grupos sulfhidrilo activados sobre uno
de los componentes, la PAA corta puede mezclarse con la molécula
con carga útil (por ejemplo, ADN), seguido de
PEG-PAA-PEG. La estructura propuesta
de la superficie de la partícula de soporte de acuerdo con el
séptimo aspecto se ilustra en la Figura 2. Aunque los inventores no
desean quedar ligados a hipótesis alguna, creen que la PAA corta
forma un complejo suelto con el ADN. Al añadir el
PEG-PAA-PEG el ADN se condensa
totalmente con las cadenas de PEG orientadas hacia el medio externo.
La PAA que ya está presente, experimenta entonces una reacción
cruzada con los grupos sulfhidrilo colgantes en la
PAA-PEG.
Ventajosa y preferentemente, la partícula de
soporte puede reducirse con un agente reductor adecuado. Estos
podrían incluir la reducción in vitro con agentes reductores
tales como DTT o mercaptoetanol para recuperar ADN o la reducción
in situ en un entorno celular mediante agentes reductores
biológicos tales como glutatión o cisteína. Dicha reducción provoca
que las reticulaciones entre las cadenas de PAA se rompan,
provocando de esta manera que la partícula se desintegre, liberando
de esta manera la molécula con carga útil (por ejemplo, ADN) en el
sitio diana. Debido a que la actividad de la molécula con carga útil
se mantiene dentro de la partícula de soporte, ventajosamente, la
partícula de soporte es, por lo tanto, un sistema de suministro
eficaz.
Los inventores realizaron otras investigaciones
para dar soporte al uso de polímeros de PAA de acuerdo con la
invención para la preparación de la partícula de soporte de acuerdo
con el séptimo aspecto de la invención y, en particular,
nanopartículas (complejos de polielectrolito) que contienen ADN que
están reticulados para mejorar su estabilidad. Adicionalmente, los
inventores investigaron el procedimiento de acuerdo con el
procedimiento del sexto aspecto, para preparar la composición de
suministro de acuerdo con el quinto aspecto. Los polímeros de PAA
usados en estos experimentos implicaban el uso de una combinación de
PAA PEGilada (como se usa en el procedimiento del cuarto aspecto) y
también una poliamidoamina no PEGilada y los inventores descubrieron
para su sorpresa que esta combinación PEGilada y no PEGilada da
como resultado la producción de partículas con estabilidad
mejorada.
Por lo tanto, preferentemente, la composición de
acuerdo con el quinto aspecto, el procedimiento de acuerdo con el
sexto aspecto y la partícula de soporte de acuerdo con el séptimo
aspecto comprenden un uso de poliamidoamina (PAA) PEGilada y no
PEGilada. Por lo tanto, preferentemente, la composición basada en
PAA comprende un co-polímero de
PEG-PAA-PEG o
PEG-PAA y un homopolímero de PAA, conteniendo ambos
grupos sulfhidrilo colgantes. Los Ejemplos 47 a 50 resumen los
datos y se preparó un número de polímeros con diferentes
especificaciones.
Los inventores prepararon numerosos
co-polímeros adecuados, cuya química se ilustra en
los esquemas de reacción 10 a 12. Los inventores han nombrado sus
polímeros preferidos como Polímeros Complejantes (PC). El Esquema
de reacción 10 ilustra las síntesis de moléculas precursoras de PC
adecuadas y el esquema de reacción 11 ilustra la síntesis de
polímeros complejantes preferidos a partir de estos precursores. La
Figura 9 muestra una fórmula general para polímeros PC preferidos,
en la que "a" y "b" pueden ser independientemente entre 1
y 200, preferentemente de 1 a 100 y más preferentemente entre 1 y
50. Los polímeros PC preferidos incluyen PC03 (en el que a es 16 y
b es 15), PC04 (en el que a es 16 y b es 48) y PC05 (en el que a es
45 y b es 48).
Sin embargo, una composición basada en
co-polímero de
PEG-PAA-PEG preferida comprende PC06
(es decir, Polímero Complejante 06), que se describe en detalle en
el Ejemplo 45. Como se muestra en la Figura 9 para CP06, "a"
es 16 y "b" es 15.
Los inventores prepararon también un lote de
homopolímeros de reticulación (XLP) y después fraccionaron este
lote basándose en los pesos moleculares. El Esquema de Reacción 12 y
el Ejemplo 46 describen la síntesis de diversos polímeros XLP
preferidos de acuerdo con la invención. Los homopolímeros de
reticulación (XLP) preferidos incluyen XLP-30K (30
kD), XLP-5K (5 kD), XLP-3K (3 kD), y
XLP-1K (1 kD). Sin embargo, una composición basada
en PAA más preferida (es decir, un homopolímero sin ningún PEG)
comprende XLP10 (10 kD), que se describe con detalle en el Ejemplo
46.
El fundamento detrás del ensamblaje de estos
polímeros de PAA en partículas de acuerdo con el séptimo aspecto
sigue el de la publicación de Rackstraw anterior. La guía
principal era que los complejos preferidos se forman por
combinaciones particulares de los tres componentes, PAA PEGilada,
PAA no PEGilada y ácido nucleico (AN), donde la proporción
PEG-PAA y la proporción global de PAA a ácido
nucleico se optimiza.
Se apreciará que a medida que cambian las
especificaciones del polímero PEGilado (es decir, diferentes
longitudes de cadena de PAA y diferentes longitudes de polímero),
podría haber un mayor número posible de combinaciones diferentes de
PEG-PAA-PEG:PAA:AN que podrían
generar complejos óptimos y, por lo tanto, partículas de soporte de
acuerdo con la invención. Los inventores han explorado las
condiciones óptimas para polímeros de diferentes especificaciones y
han investigado un intervalo de combinaciones de proporción de
polímero de PAA y ADN para estar seguros de haber obtenido una
formulación óptima.
El ensamblaje de las partículas de acuerdo con
la invención se debe a una interacción del polímero de PAA con el
ácido nucleico (por ejemplo, ADN) independientemente de si la PAA
está constituida por el homopolímero o por el
co-polímero. Los complejos altamente unidos dependen
únicamente de que el PEG ocupe la superficie de las partículas y,
por lo tanto, estarán relacionados con la proporción PEG:PAA total,
aunque esto dependerá también de la proporción del área superficial
al volumen y también del peso molecular del resto PEG.
Se apreciará que el tamaño de las partículas
optimizadas depende en gran medida del tamaño de la cadena de ácido
nucleico incorporada en su interior. Por ejemplo, para partículas de
soporte de un tamaño mínimo (es decir, menor de 100 nm, por
ejemplo, de aproximadamente 30-40 nm de diámetro) y
con un peso molecular de PEG de 1700-2000, se ha
determinado una proporción PEG-PAA total preferida
en términos de Mn (peso molecular promedio en número) de los
componentes poliméricos de entre 1:9 y 1:12. Sin embargo, los
inventores han descubierto que pueden obtenerse también complejos
bien formados en un intervalo de proporciones de 1:4 a 1:17.
De esta manera, el intervalo preferido de
proporciones de Mn de PEG:PAA total para estas especificaciones de
partícula puede ser de aproximadamente 1:4 a 1:17, más
preferentemente de 1:7 a 1:15, aunque más preferentemente de
aproximadamente 1:9 a 1:12.
Debería apreciarse que las proporciones
preferidas disminuirán proporcionalmente a la proporción de área
superficial a volumen de la construcción de partícula de soporte
(puede suponerse que las construcciones tienen una geometría
esférica toroidal dependiendo de las condiciones de formación) y se
esperaría también que disminuyeran con una disminución en el peso
molecular (PM) del componente de PEG.
Una de las ventajas del uso de una combinación
de PAA PEGilada y PAA es que es posible formar complejos que no dan
como resultado un exceso ni de ácido nucleico (por ejemplo, ADN) ni
de polímero, dando de esta manera un 100% de eficacia de partículas
sin necesidad de limpieza. Para el polímero
MBA-DMEDA mostrado en las Figuras 3 a 8, las
proporciones PAA: AN preferidas están en el intervalo de 0,5:1 a
2:1. Se apreciará que para PAA, las proporciones están definidas
por el peso molecular de la unidad de repetición de polímero
comparada con el peso molecular de un nucleótido medio. Sin
embargo, la proporción PAA:AN preferida es entre aproximadamente
1:1 y 1,5:1.
Además, los inventores han explorado también el
número y disposición de grupos sulfhidrilo colgantes en los
polímeros de PAA usados para asegurar que se obtiene una buena
reticulación. Pueden requerirse diferentes grados de estabilidad de
la partícula para diferentes aplicaciones. A la inversa, la
capacidad para reducir las reticulaciones y liberar el ácido
nucleico (por ejemplo, ADN), se hará más difícil a medida que
aumenta el número de reticulaciones reducibles. Los datos
presentados en los ejemplos es la primera evidencia de una
especificación de polímero que producirá partículas reticuladas de
acuerdo con la invención.
Los inventores han demostrado que ocurre una
reticulación suficiente para estabilidad con una formulación en la
que hay como media ocho grupos sulfhidrilo reducibles por polímero
de PEG-PAA-PEG dispuesto con cuatro
grupos en cada extremo de la cadena y que podrían ensamblarse en la
superficie de la partícula de soporte. Sin embargo, una formulación
con sólo cuatro grupos sulfhidrilo no parece proporcionar
estabilidad extra. El polímero de reticulación contenía un grupo
sulfhidrilo colgante en un 25% de las unidades de repetición
equivalente a 1,5 grupos de reticulación en el reticulante comparado
con el polímero de PEG-PAA-PEG.
Por lo tanto, los inventores han demostrado que
el número de restos colgantes disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo
activado de los polímeros de poliamidoamina (PAA) (PEGilada y no
PEGilada) es un factor importante para determinar las
características de las partículas de soporte resultantes.
Preferentemente, la composición de acuerdo con la invención
comprende un mínimo de seis grupos sulfhidrilo reducibles por cadena
de PEG-PAA-PEG que se requieren
para estabilidad y, preferentemente, un mínimo de ocho grupos
sulfhidrilo reducibles por cadena de
PEG-PAA-PEG. Puede requerirse un
mayor número de grupos sulfhidrilo reducibles si se requiere un
aumento de la estabilidad de la partícula de soporte para la
aplicación particular. El polímero de reticulación preferentemente
contiene 1-2 veces la cantidad de grupos
sulfhidrilo colgantes contenida en el co-polímero de
PEG:PAA:PEG.
Por lo tanto, es más preferente que el número de
restos colgantes disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado del
componente PEG-PAA sea como mínimo de seis, más
preferentemente ocho, y que la cantidad de restos colgantes
disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado en el componente PAA
esté entre 0,5 y 2 veces la del componente PEG-PAA
y más preferentemente entre 1 y 1,5 veces la del componente
PEG-PAA.
Se muestran también algunos resultados sobre
variaciones en el procedimiento usado para formar la composición de
acuerdo con el quinto aspecto y las partículas de acuerdo con el
séptimo aspecto, usando el procedimiento de acuerdo con el sexto
aspecto. Los inventores variaron los volúmenes (es decir, las
concentraciones) de los reactivos (es decir, la PAA PEGilada, la
PAA no PEGilada y el ADN) usados en la preparación de las partículas
y también el orden en el que los diferentes reactivos se añadieron
entre sí durante el procedimiento. Hay claramente un número de
maneras en el que los reactivos pueden mezclarse juntos. Por lo
tanto, el procedimiento de acuerdo con el sexto aspecto puede
comprender hacer reaccionar el polímero de PAA PEGilada con el ácido
nucleico, seguido de reacción con PAA no PEGilada. Como
alternativa, el procedimiento puede comprender hacer reaccionar PAA
no PEGilada con el ácido nucleico seguido de reacción con PAA
PEGilada.
Sin embargo, el procedimiento comprende
preferentemente hacer reaccionar PAA PEGilada con PAA no PEGilada,
seguido de reacción con ácido nucleico. Sorprendentemente la adición
del ácido nucleico (es decir, ADN) a los polímeros en último lugar
da como resultado que se produzcan composiciones y partículas
mejoradas.
Los inventores encontraron difícil concebir
maneras sencillas para medir si la reticulación había tenido lugar
en la formación de partículas de soporte de la invención y también
cómo de eficaz era. Por consiguiente, las Figuras 6 y 7
proporcionan algunos datos sobre la estabilidad de las partículas
midiendo el tamaño de las partículas en presencia de diferentes
concentraciones de sal usando la sal sulfato sódico, que es
altamente disruptiva. Sería de esperar que las partículas poco
estabilizadas mostraran un aflojamiento de los complejos
representados por un tamaño de partícula más grande. Estos
resultados se han obtenido para el intervalo de diferentes
proporciones de componentes y los diferentes procedimientos de
ensamblaje, y estos resultados generalmente están correlacionados
con otros procedimientos que sugieren si ha ocurrido o no la
reticulación.
Aunque sin desear quedar ligados a hipótesis
alguna, las ideas del inventor sobre estabilidad se refieren a la
teoría de polielectrolitos, que sugiere que los complejos formados
están en equilibrio, aunque los inventores creen que este
equilibrio es fuertemente a favor de la formación de partículas y,
por lo tanto, las partículas deberían ser relativamente estables a
menos que estén en presencia de altas concentraciones de sal, lo que
alteraría los complejos.
Al considerar procedimientos para determinar la
estabilidad de las partículas, los inventores han descubierto que
para complejos a concentraciones bastante altas, la sal no altera
mucho las partículas pero que las proteínas del suero sanguíneo lo
hacen en mucha mayor medida. Sin embargo, en estas condiciones de
concentraciones de partícula relativamente altas, estas condiciones
no alteran la unidad de los complejos.
La metodología usada para determinar la
reticulación surge a partir de un experimento sobre purificación de
partículas. Sorprendentemente, los inventores han descubierto que
cuando se lavan extensivamente partículas no reticuladas en una
membrana de ultrafiltración (por ejemplo, corte a 100.000 Da de PM),
se disocian, pasan a través del filtro y después se vuelven a
asociar en el otro lado. Basándose en estos hallazgos sorprendentes,
los inventores creen que es improbable que sólo usando polímeros de
PA largos sin reticulaciones degradables sería una manera adecuada
de estabilizar estos sistemas de suministro, para suministro de
genes en entornos de alta concentración de proteínas in vivo
o para aplicaciones medioambientales donde se espera una alta
dilución. Por lo tanto, es probable que el procedimiento de
reticulación de acuerdo con la invención sea importante para estas
dos aplicaciones.
El uso de filtración y examen mediante
microscopía electrónica de transmisión (TEM) era el único
procedimiento exitoso que los inventores han encontrado para
demostrar inequívocamente que la reticulación de las nanopartículas
se había conseguido. Por consiguiente, la Figura 8 muestra imágenes
TEM de la formulación más preferida usando un par de campos
representativos al microscopio.
Se apreciará que las diversas composiciones, el
hidrogel y la partícula de soporte de acuerdo con la invención
tienen muchas aplicaciones tanto en los campos médicos como no
médicos. Un ejemplo de una aplicación no médica preferida implica
el seguimiento de una fuente de agua en el medio ambiente.
Actualmente, las fuentes de agua de cualquier suministrador de agua
pueden seguirse usando un colorante fluorescente. Se añade un
colorante fluorescente a la fuente de agua y el flujo de agua puede
controlarse siguiendo la posición del colorante. Sin embargo,
cuando se necesita seguir fuentes de agua adicionales en el mismo
entorno, se requiere un colorante diferente, de manera que las
diferentes fuentes de agua no se confundan. Se apreciará que sólo
hay un número limitado de colorantes adecuados que pueden usarse en
estas circunstancias, por lo que finalmente el número de colorantes
disponibles que puede usarse para seguir las fuentes de agua se
agota cuando es necesario seguir muchas fuentes de agua. Los
inventores creen que este problema puede resolverse usando la
partícula de soporte de acuerdo con el noveno aspecto para seguir
el flujo de cualquier fuente de fluido en el medio ambiente.
Por lo tanto, en un octavo aspecto de la
invención, se proporciona un sistema de seguimiento de fluidos para
seguir un flujo de fluido, comprendiendo el sistema una partícula de
soporte de acuerdo con el séptimo aspecto y un medio de detección
para detectar la molécula con carga útil.
Por lo tanto, preferentemente, la molécula con
carga útil comprende una molécula de seguimiento de fluido, que
puede detectarse usando un medio de detección adecuado.
La invención se refiere también, en un noveno
aspecto, a un procedimiento para seguir un fluido, comprendiendo el
procedimiento las etapas de:
(i) aplicar una partícula de soporte de acuerdo
con el séptimo aspecto que comprende una molécula con carga útil
detectable a un fluido en una primera localización; y
(ii) detectar la molécula con carga útil en una
segunda localización del fluido.
\vskip1.000000\baselineskip
Ventajosa y preferentemente, la partícula de
soporte y, por lo tanto, la molécula con carga útil, es estable en
el fluido, que puede ser agua. El sistema de seguimiento puede
usarse para seguir agua en el medio ambiente. Las partículas de
soporte pueden desplazarse largas distancias en el fluido y pueden
usarse para comprobar la dirección de desplazamiento del fluido,
por ejemplo, en el sistema de alcantarillado.
La partícula puede añadirse al fluido en una
primera localización (esto se denomina fuente). La molécula con
carga útil puede detectarse en el fluido en la segunda localización
del fluido (esto se denomina posición de ensayo) mientras que aún
está en la partícula de soporte. Sin embargo, preferentemente, el
procedimiento comprende una etapa (antes de la etapa (ii) del
procedimiento) de aislar la partícula del fluido en la segunda
localización antes de la detección de la molécula con carga útil con
el medio de detección. El procedimiento comprende preferentemente
una etapa de aislar la molécula con carga útil de la partícula de
soporte antes de la detección. La etapa de aislamiento puede
comprender reducir la partícula de soporte para liberar la molécula
con carga útil antes de la detección. La reducción puede conseguirse
añadiendo un agente reductor tal como
1,4-ditiotreitol, ditioeritritol, metabisulfito
sódico o glutatión reducido.
La molécula con carga útil preferentemente
comprende una biomolécula, tal como un péptido o proteína. Sin
embargo, se prefiere que la molécula con carga útil comprenda ácido
nucleico y, preferentemente, ADN, que puede detectarse mediante un
medio de detección adecuado, por ejemplo, por PCR. Este ADN, por lo
tanto, se denomina "ADN de detección". En dichos casos, el
medio de detección puede ser un secuenciador de ADN o una máquina
de PCR.
La molécula con carga útil puede comprender un
oligonucleótido monocatenario, que preferentemente es sintético.
Por ejemplo, el oligonucleótido puede estar en el intervalo de
aproximadamente 40-80 nucleótidos de longitud que
tienen una secuencia predeterminada. Se apreciará que la secuencia
específica de la molécula no es clave para la invención; lo es el
hecho de que la secuencia actúa como marcador, huella o código de
barras y es detectable. Por lo tanto, es posible cambiar la
naturaleza de la molécula con carga útil (por ejemplo, la secuencia
de la proteína o ADN) y usar así diferentes moléculas con carga útil
y/o secuencias de las mismas para diferentes partículas de soporte
y, de esta manera, seguir diferentes flujos de fluido en la misma
zona simultáneamente.
Además de la detección de ADN, la molécula con
carga útil puede comprender un compuesto de soporte, que puede ser
ADN de soporte. El ADN de soporte puede degradarse y puede ser ADN
de esperma de salmón bruto que se ha limpiado y fraccionado para
dar una preparación de moléculas de ADN fundamentalmente
monocatenarias de secuencia mixta con aproximadamente el mismo
tamaño que el ADN de detección. La mezcla de ADN de detección y ADN
de soporte (es decir, la molécula con carga útil) se incorpora
entonces en la partícula de soporte reticulada de la invención.
Ventajosamente, el uso del ADN de soporte reduce el coste del
sistema. La proporción de ADN de detección a ADN de soporte puede
estar en la región de 1:10 a 1:1000.
La partícula de soporte usada en el sistema del
octavo aspecto puede comprender menos de 50 copias del ADN de
detección, preferentemente menos de 30 copias y más preferentemente
menos de 10 copias del ADN de detección. Sorprendentemente, los
inventores creen que sólo se requiere una copia del ADN de detección
por cada partícula de soporte. La etapa de detección puede
comprender el uso de PCR para determinar que el ADN de soporte está
presente y en qué cantidad.
En resumen, los inventores han demostrado que
una composición del primer aspecto, que comprende un polímero de
poliamidoamina (PAA) que comprende un resto colgante disulfuro,
sulfhidrilo o sulfhidrilo activado o la composición del quinto
aspecto, que incluye una molécula con carga útil, puede usarse para
preparar un hidrogel del tercer aspecto por reticulación
automática. También puede añadirse PEG para mejorar las propiedades
del hidrogel. Sorprendentemente, los inventores han demostrado que
las composiciones de acuerdo con la invención producen hidrogeles
estables en condiciones fisiológicas. Adicionalmente, descubrieron
también que los hidrogeles formados por la composición reticulada
están adaptados para soportar biomoléculas tales como células,
péptidos o moléculas de ADN. Además, ventajosamente, los hidrogeles
de PAA reticulada son reducibles, de manera que una solución de
polímero de PAA no reticulada puede formarse a partir del gel. Por
lo tanto, los inventores creen que los hidrogeles formados por
dichas composiciones que contienen PAA de reticulación, las propias
soluciones no reticuladas y también la partícula de soporte
descritas en el presente documento pueden usarse en un amplio
intervalo de aplicaciones
médicas.
médicas.
Por lo tanto, de acuerdo con un décimo aspecto
de la invención, se proporciona una composición de acuerdo con el
primer o quinto aspectos, o un hidrogel de acuerdo con el tercer
aspecto o una partícula de soporte de acuerdo con el séptimo
aspecto, para su uso como medicamento.
Los ejemplos de achaques específicos que pueden
tratarse con el medicamento incluyen ingeniería tisular y
escenarios de regeneración.
Por lo tanto, en un aspecto adicional, se
proporciona una composición de acuerdo con el primer o quinto
aspecto, o un hidrogel de acuerdo con el tercer aspecto o una
partícula de soporte de acuerdo con el séptimo aspecto, para su uso
en el tratamiento de una afección médica caracterizada por pérdida o
lesión tisular.
Adicionalmente, de acuerdo con un undécimo
aspecto de la invención, se proporciona el uso de una composición
de acuerdo con el primer o el quinto aspecto, o un hidrogel de
acuerdo con el tercer aspecto o una partícula de soporte de acuerdo
con el séptimo aspecto, para la fabricación de un medicamento para
el tratamiento de un afección médica caracterizada por pérdida o
lesión tisular.
Además, las compasiones de acuerdo con el primer
o el quinto aspecto, o un hidrogel de acuerdo con el tercer aspecto
o una partícula de soporte de acuerdo con el séptimo aspecto pueden
usarse en diversos procedimientos de tratamiento médico tales como
el tratamiento de la pérdida o lesión tisular.
Por lo tanto, de acuerdo con un duodécimo
aspecto, se proporciona una procedimiento para tratar, prevenir o
mejorar a un individuo que padece una afección médica caracterizada
por pérdida o lesión tisular, comprendiendo el procedimiento
administrar a un individuo en necesidad de dicho tratamiento una
cantidad terapéuticamente eficaz de una composición de acuerdo con
el primer o el quinto aspecto o un hidrogel de acuerdo con el tercer
aspecto o una partícula de soporte de acuerdo con el séptimo
aspecto.
Los inventores prevén que el procedimiento de
acuerdo con el duodécimo aspecto puede usarse para tratar un amplio
intervalo de afecciones médicas caracterizadas por pérdida/lesión
tisular. Los ejemplos de afecciones que pueden tratarse incluyen el
tratamiento de heridas y lesiones relacionadas, trastornos
degenerativos tisulares y pérdida de la función tisular. Por
ejemplo, la herida puede ser crónica y puede ser abrasiva, por
ejemplo, quemaduras. La herida puede formarse por presión tal como
úlceras de decúbito y úlceras por presión. La herida puede ser
aguda, y puede ser penetrante tal como un corte, un navajazo o como
resultado de un aplastamiento del cuerpo del individuo que requiere
tratamiento o por lesión o envejecimiento inducido por fármacos.
Los trastornos degenerativos tisulares
específicos que pueden tratarse usando el procedimiento incluyen
trastornos neurodegenerativos del disco intervertebral, cartílago y
degeneración ósea tal como osteoartritis, osteoporosis, trastornos
degenerativos del hígado, trastornos degenerativos del riñón,
atrofia muscular, lesión o pérdida de nervios.
Se apreciará que la composición que comprende el
polímero de PAA que contiene sulfhidrilo con o sin una molécula con
carga útil puede usarse para formar el hidrogel del tercer aspecto
en el sitio de tratamiento, y que esto permite la formación de una
estructura de soporte de hidrogel, que está adaptada para soportar
el crecimiento celular. Los inventores creen que las células podrán
infiltrar el hidrogel en el sitio de tratamiento, formando de esta
manera un cultivo celular o tejido en su interior. Este tejido puede
sustituir y/o reparar entonces el tejido perdido o dañado en el
sitio de tratamiento. Si se incluye una molécula con carga útil,
entonces ésta puede usarse para potenciar o acelerar la
regeneración del tejido.
En una primera realización del procedimiento de
acuerdo con el duodécimo aspecto, el hidrogel puede formarse antes
de la administración al individuo, por ejemplo, en un molde, usando
el procedimiento del segundo o cuarto aspecto, si se requiere PEG.
Una vez formado, el hidrogel puede administrarse entonces al sitio
de tratamiento en el individuo. De nuevo, esto puede ser con o sin
una molécula con carga útil.
En una segunda realización, una composición de
precursor de hidrogel acuoso (es decir, la composición del primer
aspecto), puede introducirse al sitio de tratamiento, que puede
inducirse entonces in situ usando el procedimiento del
segundo o cuarto aspecto para formar el hidrogel del tercer aspecto.
Por lo tanto, el hidrogel puede prepararse in situ en el
sitio de tratamiento con o sin una molécula con carga útil.
La composición de precursor acuoso
preferentemente comprende el compuesto de bisacriloílo y una amina
primaria o amina secundaria que contiene un grupo disulfuro, que
después puede exponerse a condiciones adecuadas para formar un
hidrogel del tercer aspecto. Se prefiere que el hidrogel o precursor
de hidrogel se proporcione en un excipiente fisiológicamente
aceptable. Mediante la expresión "excipiente fisiológicamente
aceptable" se entiende cualquier solución adecuada, que sea
capaz de conferir condiciones biológicamente aceptables a los
polímeros de PAA, de manera que se forman reticulaciones entre las
cadenas de polímero, dando como resultado de esta manera la
gelificación para formar el hidrogel. Los ejemplos de excipientes
adecuados los conocerá el técnico experto y pueden comprender un
tampón fisiológico, tal como solución salina. Preferentemente, el
excipiente se proporciona a un pH biológicamente aceptable, que
permite la gelificación.
La elección de administrar o no el propio
hidrogel del tercer aspecto o la composición precursora del hidrogel
del primer o quinto aspecto al sitio de tratamiento depende de la
afección médica específica a tratar. En cualquier caso, el hidrogel
posterior puede usarse como una estructura de soporte para soportar
al menos una célula en su interior, para reparar de esta manera el
sitio de pérdida o lesión tisular.
De esta manera, los inventores han demostrado
por primera vez que pueden prepararse polímeros de PAA de manera
que tienen un resto colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo
activado y también que estos restos forman fácilmente
reticulaciones entres ellos para formar un hidrogel reducible. De
esta manera, preferentemente, el excipiente confiere condiciones
biológicamente aceptables a las composiciones, de manera que se
forman reticulaciones entre los polímeros de PAA, de manera que se
forma el hidrogel en el sitio de tratamiento o antes de la
administración al
mismo.
mismo.
Hasta la fecha, los inventores creen que no ha
sido posible formar hidrogeles de PAA reticulados reducibles a un
pH biológicamente aceptable. Por lo tanto, los inventores creen que
el uso de las composiciones y el hidrogel de acuerdo con la
invención es un avance significativo respecto a la tecnología
actual.
Una vez que el hidrogel se ha administrado a o
se ha formado in situ en el sitio de tratamiento, entonces
puede requerirse que libere la molécula con carga útil, si estuviera
presente. Por lo tanto, preferentemente, el procedimiento comprende
una etapa de reducir el hidrogel de manera que las reticulaciones se
rompen, liberando de esta manera la molécula con carga útil en el
sitio de tratamiento. La etapa de reducción puede conseguirse
mediante la acción de agentes reductores biológicos presentes en el
sitio de tratamiento, por ejemplo, tales como glutatión o cisteína.
Como alternativa, el excipiente fisiológicamente aceptable puede
comprender un agente reductor adecuado, de manera que después de un
tiempo, el hidrogel formado en el sitio de tratamiento se disuelve
lentamente liberando de esta manera la molécula con carga útil. Se
prefiere que el excipiente biológicamente aceptable esté a un pH de
entre 5 y 9, más preferentemente entre 6 y 8, aún más
preferentemente, entre aproximadamente 6,5 y aproximadamente 7,5.
Se apreciará que el pH de la mayoría de las células es de
aproximadamente 7,4. Por lo tanto, un excipiente más preferido tiene
un pH de entre aproximadamente 7 y aproximadamente 7,5. Se
apreciará que dichos pH se denominan condiciones biológicamente
aceptables.
Mediante la expresión "condiciones
biológicamente aceptables" se entiende que el hidrogel usado en
el procedimiento de la invención es sustancialmente estable en
condiciones in vivo, es decir, condiciones de pH, fuerza
iónica y temperatura que se encontrarían in vivo. Los
inventores prevén principalmente el uso del procedimiento de
acuerdo con el segundo o cuarto aspecto de la invención y, por lo
tanto, el hidrogel para tratar trastornos caracterizados por
lesión/pérdida de tejido en mamíferos y, en particular, en el
hombre. Por lo tanto, se prefiere que el hidrogel se forme y sea
estable en condiciones biológicamente aceptables en mamíferos y
preferentemente en el hombre.
Los inventores creen que el sitio de tratamiento
en los trastornos tratados estaría dentro de un intervalo de pH de
aproximadamente 5,0 a aproximadamente 9,0. Sin embargo, se prefiere
que el hidrogel se forme a un pH entre aproximadamente 6,0 y
aproximadamente 8,0. Como se describe en el presente documento, el
procedimiento puede usarse para tratar heridas. En heridas
crónicas, el pH puede ser entre 6,0 y 8,0. Por lo tanto, cuando se
tratan heridas crónicas, se prefiere que el hidrogel sea estable
entre un pH de aproximadamente 6,0 y 8,0 y preferentemente un pH de
aproximadamente 6,5 a aproximadamente 7,5.
Los inventores creen que el sitio de tratamiento
del individuo a tratar estaría a una fuerza iónica alta, es decir,
de aproximadamente 0,15 M. Por lo tanto, se prefiere que el hidrogel
se forme a una fuerza iónica de entre aproximadamente 0,01 M y
aproximadamente 1 M, preferentemente entre aproximadamente entre
0,05 M y aproximadamente 0,5 M, más preferentemente entre
aproximadamente 0,1 y aproximadamente 0,2 y aún más preferentemente
entre aproximadamente 0,12 M y aproximadamente 0,17 M.
Se apreciará que los inventores prevén
principalmente el uso de las composiciones y el hidrogel de acuerdo
con la invención para tratar mamíferos y en particular el hombre.
Los inventores han descubierto que es posible, por lo tanto,
inducir la transición de las composiciones de acuerdo con la
invención desde la solución que contiene el polímero de PAA no
reticulada para formar el hidrogel reticulado según la demanda
cuando está in situ en el sitio de tratamiento. Por lo
tanto, preferentemente, el hidrogel usado en el procedimiento se
forma por debajo de aproximadamente 40ºC, más preferentemente por
debajo de aproximadamente 39ºC y aún más preferentemente por debajo
de aproximadamente 38ºC. Por lo tanto, preferentemente, el hidrogel
se forma a una temperatura de entre aproximadamente 36ºC y
aproximadamente 38ºC y más preferentemente a aproximadamente
37ºC.
Sin embargo, debe apreciarse que en heridas
crónicas, y también en órganos superficiales (tales como la piel,
el ojo, etc.), la temperatura puede ser unos pocos grados menor, por
ejemplo, aproximadamente de 32ºC a 34ºC. Por lo tanto, en
realizaciones del procedimiento donde la composición se usa para
tratar heridas crónicas u órganos superficiales, se prefiere que el
hidrogel se forme a una temperatura de entre aproximadamente 32ºC y
34ºC.
Ventajosamente, eligiendo monómeros y
co-monómeros específicos, que constituyen el
polímero de PAA, es posible variar las propiedades estructurales y
funcionales del hidrogel formado, y cómo interactúa y finalmente
libera finalmente la molécula con carga útil si estuviera presente.
Por lo tanto, el polímero de PAA reticulable y, por lo tanto, el
hidrogel "se hacen a medida" específicamente, dependiendo del
uso final del hidrogel.
Se prefiere que la composición de acuerdo con el
primer o el quinto aspecto, o un hidrogel de acuerdo con el tercer
aspecto se adapten para soportar al menos una célula, para formar de
esta manera un medio de soporte celular fisiológicamente estable o
una estructura de soporte para las células. Por lo tanto, el
hidrogel o la composición, por lo tanto, puede sembrare con al
menos una célula.
Por lo tanto, de acuerdo con un decimotercer
aspecto de la presente invención, se proporciona un medio de
soporte celular que comprende la composición de acuerdo con el
primer o el quinto aspecto o un hidrogel de acuerdo con el tercer
aspecto y al menos una célula.
El medio de soporte celular del decimotercer
aspecto puede denominarse "estructura de soporte
celda-hidrogel". Preferentemente, el medio de
soporte celular está adaptado para soportar una pluralidad de
células. Preferentemente, la o cada célula es bioquímicamente
funcional in vivo. Por consiguiente, la pluralidad de células
puede formar un cultivo celular o un tejido. Debido a que la
composición del precursor de hidrogel del primer aspecto es una
solución, puede suspenderse al menos una célula en su interior.
En un decimocuarto aspecto, se proporciona un
procedimiento de preparación de un medio de soporte celular de
acuerdo con el decimotercer aspecto, comprendiendo el procedimiento
las etapas de:
(i) poner en contacto la composición de acuerdo
con cualquiera del primer o quinto aspecto, o un hidrogel de
acuerdo con el tercer aspecto, con al menos una célula; y
(ii) exponer el hidrogel o la composición a
condiciones tales que al menos una célula esté soportada sobre el
mismo o en su interior, formando de esta manera un medio de soporte
celular.
El procedimiento de acuerdo con el decimocuarto
aspecto puede realizarse in situ en el sitio de tratamiento
o lejos del sitio de tratamiento y después transferirse al mismo. El
técnico experto apreciará cómo cultivar diversos tipos de células
con el hidrogel o las composiciones de acuerdo con la invención. Por
lo tanto, se apreciará que los detalles específicos de las
metodologías (tiempo de cultivo, temperaturas, medios de
crecimiento, etc.) usadas dependerá del tipo de célula implicado y
el uso final del medio de soporte celular (es decir, la estructura
de soporte célula-
hidrogel).
hidrogel).
Sin embargo, la etapa (i) del procedimiento de
acuerdo con el decimocuarto aspecto puede comprender poner en
contacto la solución de la composición precursora del hidrogel de
acuerdo con el primer aspecto o la composición de suministro del
quinto aspecto con la al menos una célula. La naturaleza de la etapa
(ii) del procedimiento determinará si la composición en la etapa
(i) es una solución reticulada o un hidrogel reticulado.
El procedimiento puede comprender exponer la
composición precursora de hidrogel a condiciones tales que se forma
un hidrogel en la etapa (i) antes de poner en contacto la al menos
una célula con el mismo. Dichas condiciones pueden comprender
reducir la temperatura de la composición por debajo de la
temperatura de gelificación crítica, por ejemplo, menos de
aproximadamente 39ºC y/o añadir un agente oxidante adecuado para
permitir que ocurra la reticulación.
En una realización alternativa, la composición
puede mantenerse inicialmente en condiciones en las que está en
forma de solución de la composición del precursor de hidrogel no
reticulado en la etapa (i) del procedimiento, a la que se añade al
menos una célula en la etapa (ii). Por lo tanto, el procedimiento
puede comprender exponer inicialmente la composición en la etapa
(i) a condiciones en las que es una solución (es decir, no un
hidrogel). Por ejemplo, la composición puede exponerse a un pH o
temperatura o fuerza iónica a la que la composición no está
reticulada y, por lo tanto, es sustancialmente líquida. El
procedimiento puede comprender entonces la etapa de poner en
contacto la al menos una célula con la fase acuosa en la etapa (i).
Después de la etapa (i), la etapa (ii) comprende preferentemente
exponer la composición de precursor líquido a condiciones en las
que se forma un hidrogel formando reticulaciones entre las cadenas
de PAA. El hidrogel que se forma, en el que está soportada al menos
una célula, se denomina medio de soporte celular o estructura de
soporte celular.
En otra realización, el medio de soporte celular
puede prepararse lejos de la herida (por ejemplo, en el
laboratorio), y administrarse después preferentemente al área a
tratar. En este enfoque, el gel se formaría en una forma
tridimensional predeterminada, por ejemplo, usando un molde, y las
células pueden añadirse antes del procedimiento de gelificación o
después de que se haya formado el gel. El gel
pre-formado puede implantarse entonces en el cuerpo
donde las células del paciente migran hacia la estructura de soporte
del gel. Los ejemplos de este uso sería en tejidos, que tienen una
capacidad migratoria y/o aquellos que son sensibles a la
remodelación tisular. Los ejemplos son piel, hueso y nervios
periféricos. El facultativo puede complementar también externamente
el implante con otras células. Además, pueden añadirse al implante
otros factores que pueden simular la célula y preferentemente el
crecimiento tisular, por ejemplo, factores de crecimiento.
Preferentemente, el medio de soporte celular o
hidrogel, preparado in situ en el área a tratar o lejos de
la misma, se mantiene adecuadamente para permitir que al menos una
célula se divida para formar un cultivo o tejido en su interior.
Por consiguiente, se apreciará que el hidrogel actúa como una
estructura de soporte para el tejido y, de esta manera, permite la
reparación de la herida o la regeneración del tejido dañado.
Los inventores creen que el procedimiento de
acuerdo con el duodécimo aspecto, puede usarse en una amplia
variedad de procedimientos de tratamiento médico diferentes, tal
como aplicaciones de regeneración/ingeniería tisular y en el curado
de heridas. Los tipos de tejidos y heridas que pueden tratarse son
variados y, por lo tanto, se apreciará que la invención no está
limitada a ningún tipo específico de célula, que podría estar
soportada y cultivada sobre el hidrogel administrado al sitio de
tratamiento. Sin embargo, a modo de ejemplo, las células adecuadas
que pueden soportarse en el hidrogel incluyen células epiteliales
(por ejemplo, hepatocitos), neuronas, células endoteliales,
osteoblastos (células óseas), condrocitos (células de cartílago),
fibroblastos, células de músculo liso, osteoclastos,
queratinocitos, células progenitoras de nervios, células de Schwann,
células madre, macrófagos, células isleta y células tumorales,
etc.
El tipo de célula que se pone en contacto con la
composición o el medio de soporte celular dependerá del tipo de
herida a reparar o del tipo de tejido a regenerar. Por lo tanto, a
modo de ejemplo, si la herida es en la piel, puede ponerse en
contacto entonces al menos una célula cutánea con el hidrogel,
composición o medio de soporte celular. Si la herida es en el
hueso, se pone en contacto preferentemente entonces al menos una
célula ósea u osteoblasto con el hidrogel, composición o medio de
soporte celular. Si la herida es un cartílago, se pone en contacto
preferentemente entonces al menos un condrocito con el hidrogel,
composición o medio de soporte celular. Si se ha dañado el tejido
ocular, puede requerirse poner en contacto el hidrogel, composición
o medio de soporte celular con las células madre del ojo. Se
apreciará que diferentes tipos de células pueden ponerse en
contacto con el hidrogel, composición o medio de soporte celular, si
fuera necesario.
Las composiciones, hidrogel o medio de soporte
celular, pueden combinarse en formulaciones que tienen un número de
formas diferentes dependiendo, en particular, de la manera en la que
se va a usar la formulación. Se apreciará que el vehículo de la
composición de la invención debería ser uno que sea bien tolerado
por el sujeto al que se le suministra y que posibilite,
preferentemente, un suministro eficaz de la composición a un sitio
diana. De esta manera, por ejemplo, la composición puede estar en
forma de un líquido (es decir, la composición de acuerdo con el
primer aspecto) o un hidrogel (es decir, la composición de acuerdo
con el tercer aspecto) o cualquier otra forma adecuada que pueda
administrarse a una persona o animal.
Las composiciones, hidrogel, partícula de
soporte, medio de soporte celular o medicamento de acuerdo con la
invención pueden usarse en una monoterapia (es decir, el uso de las
composiciones, hidrogel, vehículo, partícula de soporte,
medio/estructura de soporte celular o medicamento solo). Como
alternativa, las composiciones, hidrogel, partícula de soporte,
medio/estructura de soporte celular o medicamento de acuerdo con la
invención pueden usarse como un adyuvante o en combinación con
otras terapias conocidas.
En algunas circunstancias, las composiciones,
hidrogel, partícula de soporte, medio/estructura de soporte celular
o medicamento de acuerdo con la invención pueden administrarse por
inyección en las áreas con herida. Las inyecciones pueden ser
intravenosas (bolo o infusión) o subcutáneas (bolo o infusión).
Como alternativa, las composiciones, hidrogel,
partícula de soporte, medio/estructura de soporte celular o
medicamento pueden incorporarse también dentro de un dispositivo de
liberación lenta o retrasada. Dichos dispositivos, por ejemplo,
pueden situarse en o adyacentes al área a tratar, por ejemplo,
mediante implante, y las composiciones, hidrogel, partícula de
soporte, medio/estructura de soporte celular o medicamento pueden
liberarse durante semanas o incluso meses. Dichos dispositivos
pueden ser particularmente ventajosos cuando se requiere el
tratamiento a largo plazo con el medicamento y que normalmente
requerirán una administración frecuente (por ejemplo, al menos
inyección o implante diario).
Se apreciará que la cantidad de composiciones,
hidrogel, partícula de soporte, medio/estructura de soporte celular
o medicamento de acuerdo con la invención requerido estará
determinada por su actividad biológica y biodisponibilidad, que
depende a su vez del modo de administración, las propiedades
fisicoquímicas del medicamento empleado y si las composiciones,
hidrogel, partícula de soporte, medio/estructura de soporte celular
o medicamento se están usando como una monoterapia o en una terapia
combinada. La frecuencia de administración está influida también
por los factores mencionados anteriormente y, particularmente, por
la semi-vida del medicamento dentro del sujeto a
tratar.
Las dosificaciones óptimas a administrar las
pueden determinar los expertos en la materia, y variarán con el
medicamento particular que se use, la potencia de la preparación, el
modo de administración y el avance de la patología. Factores
adicionales que dependen del sujeto particular a tratar darán como
resultado la necesidad de ajustar las dosificaciones, incluyendo la
edad del sujeto, peso, género, dieta y tiempo de administración.
Pueden usarse procedimientos conocidos, tales
como los empleados convencionalmente por la industria farmacéutica
(por ejemplo, experimentación in vivo, ensayos clínicos,
etc.), para establecer formulaciones específicas del medicamento de
acuerdo con la invención y regímenes terapéuticos precisos (tales
como dosis diarias y la frecuencia de administración).
Generalmente, puede usarse una dosis diaria de
entre 0,01 \mug/kg de peso corporal y 1,0 g/kg de peso corporal
del hidrogel de acuerdo con la invención para la prevención y/o
tratamiento de una afección médica específica. Más preferentemente,
la dosis diaria es entre 0,01 mg/kg de peso corporal y 100 mg/kg de
peso corporal. Las dosis diarias pueden darse como una sola
administración (por ejemplo, un solo comprimido diario). Como
alternativa, el medicamento puede requerir la administración dos o
más veces durante un día. Como un ejemplo, el medicamento de
acuerdo con la invención puede administrarse como dos (o más,
dependiendo de la gravedad de la afección) dosis diarias de entre
25 mg y 5000 mg. Un paciente que recibe tratamiento puede tomar una
primera dosis después de levantarse y después una segunda dosis por
la tarde (si está en un régimen de dos dosis) o a intervalos de 3 ó
4 horas posteriormente. Como alternativa, puede usarse un
dispositivo de liberación lenta para proporcionar dosis óptimas a
un paciente sin necesidad de administrar dosis repetidas.
En un decimoquinto aspecto, se proporciona una
composición farmacéutica que comprende una cantidad terapéuticamente
eficaz de una composición de acuerdo con el primer o quinto
aspecto, el hidrogel de acuerdo con el tercer aspecto o la
partícula de soporte de acuerdo con el séptimo aspecto; y un
excipiente farmacéuticamente aceptable.
La invención proporciona también en un
decimosexto aspecto, un procedimiento para fabricar la composición
farmacéutica de acuerdo con el decimoquinto aspecto, comprendiendo
el procedimiento combinar una cantidad terapéuticamente eficaz de
una composición, hidrogel o partícula de soporte de acuerdo con la
presente invención; y un excipiente farmacéuticamente
aceptable.
La composición farmacéutica puede comprender un
medio/estructura de soporte celular de acuerdo con el decimotercer
aspecto.
Una "cantidad terapéuticamente eficaz" es
cualquier cantidad que, cuando se administra a un sujeto,
proporciona prevención y/o tratamiento de una afección médica
especifica. Un "sujeto" puede ser un vertebrado, mamífero,
animal doméstico o un ser humano.
Un "vehículo farmacéuticamente aceptable"
como se menciona en el presente documento es cualquier vehículo
fisiológico conocido por los expertos habituales en la materia útil
en la formulación de composiciones farmacéuticas. El vehiculo
farmacéuticamente aceptable puede ser un líquido y la composición
farmacéutica está en forma de una solución. En una realización
preferida adicional, el vehículo farmacéutico es un gel o hidrogel y
la composición está en forma de una crema o similares. En ambos
casos, la composición puede aplicarse al sitio de tratamiento.
La cantidad de la composición, hidrogel,
partícula de soporte o medio/estructura de soporte celular puede
ser de aproximadamente 0,01 mg a aproximadamente 800 mg.
Preferentemente, la cantidad de composición, hidrogel, partícula de
soporte o medio/estructura de soporte celular es de aproximadamente
0,01 mg a aproximadamente 500 mg, más preferentemente,
aproximadamente 0,01 mg a aproximadamente 250 mg, aún más
preferentemente de aproximadamente 0,1 mg a aproximadamente 60 mg y
aún más preferentemente de aproximadamente 0,1 mg a aproximadamente
20 mg.
La composición farmacéutica puede comprender una
o más sustancias, que pueden actuar también como lubricantes,
solubilizadores, agentes de suspensión, cargas, emolientes,
adyuvantes de compresión o aglutinantes. Puede ser también un
material de encapsulación. Los vehículos líquidos se usan en la
preparación de soluciones, suspensiones, emulsiones, jarabes,
elixires y composiciones presurizadas. La composición, hidrogel,
partícula de soporte o medio/estructura de soporte celular o
medicamento de acuerdo con la invención puede disolverse o
suspenderse en un vehículo líquido farmacéuticamente aceptable tal
como agua, un disolvente orgánico, una mezcla de ambos o aceites o
grasas farmacéuticamente aceptables. El vehículo líquido puede
contener otros aditivos farmacéuticos adecuados tales como
solubilizadores, emulsionantes, tampones, conservantes,
edulcorantes, agentes saporíferos, agentes de suspensión, agentes
espesantes, colorantes, reguladores de viscosidad, estabilizadores
u osmo-reguladores. Los ejemplos adecuados de
vehículos líquidos para administración oral y parenteral e implantes
incluyen agua (que contiene parcialmente aditivos como en el caso
anterior, por ejemplo, derivados de celulosa, preferentemente una
solución de carboximetilcelulosa sódica), alcoholes (incluyendo
alcoholes monohídricos y alcoholes polihídricos, por ejemplo,
glicoles) y sus derivados y aceites (por ejemplo, aceite de coco y
aceite de cacahuete fraccionados). Para administración parenteral,
el vehículo puede ser también un éster oleoso, tal como oleato de
etilo y miristato de isopropilo. Los vehículos líquidos estériles
son útiles en composiciones en forma líquida estéril para
administración parenteral. El vehículo líquido para composiciones
presurizadas puede ser un hidrocarburo halogenado u otro propulsor
farmacéuticamente aceptable.
En los casos donde se desea inyectar o implantar
la composición, hidrogel, partícula de soporte o medio/estructura
de soporte celular o medicamento de acuerdo con la invención
directamente en el sitio de tratamiento, pueden utilizarse
composiciones farmacéuticas líquidas que son soluciones o
suspensiones estériles, por ejemplo, por inyección intramuscular,
intratecal, epidural, intraperitoneal, intravenosa y particularmente
subcutánea, intracerebral o intracerebroventricular. La
composición, hidrogel, partícula de soporte, medio/estructura de
soporte celular o medicamento de acuerdo con la invención puede
prepararse en forma de una composición estéril que puede disolverse
o suspenderse en el momento de la administración usando agua
estéril, solución salina u otro medio inyectable estéril apropiado.
Los vehículos se inyectan para incluir los aglutinantes necesarios
e inertes, agentes de suspensión, lubricantes, edulcorantes,
conservantes, colorantes y revestimientos.
Se prefiere que la composición, hidrogel,
partícula de soporte o medio/estructura de soporte celular o
medicamento de acuerdo con la invención pueda implantarse en forma
de una solución o suspensión estéril o gel o hidrogel que contiene
otros solutos o agentes de suspensión (por ejemplo, suficiente
solución salina o glucosa para hacer a la solución isotónica),
sales biliares, goma arábiga, gelatina, monooleato de sorbitano,
polisorbato 80 (ésteres de oleato de sorbitol y sus anhídridos
copolimerizados con óxido de etileno) y similares. Preferentemente,
la composición, hidrogel, partícula de soporte o medio/estructura de
soporte celular o medicamento de acuerdo con la invención se
implanta en forma de composición líquida o sólida (hidrogel). Las
composiciones adecuadas para implantes incluyen formas líquidas,
tales como soluciones, jarabes, elixires y suspensiones.
Todas las características descritas en el
presente documento (incluyendo cualquiera de los dibujos adjuntos,
resumen y dibujos) y/o todas las etapas de cualquier procedimiento o
proceso descrito, pueden combinarse con cualquiera de los aspectos
anteriores en cualquier combinación excepto combinaciones donde al
menos alguna de dichas características y/o etapas sean mutuamente
excluyentes.
Para una mejor comprensión de la invención y
mostrar cómo las realizaciones de la misma pueden realizarse de
forma efectiva, se hará referencia ahora, a modo de ejemplo, a los
dibujos esquemáticos adjuntos en los que:
El Esquema 1 muestra un esquema de reacción
química para la preparación de poliamidoamina (PAA) que contiene
restos sulfhidrilo colgantes;
El Esquema 2 muestra un esquema de reacción
química para la preparación de PEG-PAA reticulables
para dar PEG-PAA lineal
multi-bloque;
El Esquema 3 muestra un esquema de reacción
química para la preparación de co-polímeros tipo
peine de PEG-PAA reticulables;
El Esquema 4 muestra un esquema de reacción
química para la preparación de PAA terminada en PEG con un bloque
de grupos sulfhidrilo colgantes;
El Esquema 5 muestra un esquema de reacción
química para preparar una poliamidoamina que contiene restos de
cistamina;
El Esquema 6 muestra un esquema de reacción
química para reducir polímeros que contienen cistamina protegida
con Boc para dar un grupo sulfhidrilo libre;
El Esquema 7 muestra un esquema de reacción
química para activar los grupos sulfhidrilo libres mediante
intercambio de disulfuro de tiol por disulfuro de bipiridilo;
El Esquema 8 muestra un esquema de reacción
química para la formación del hidrogel por reacción de polímeros
que contienen un tiol reducido y polímeros que contienen un tiol
activado;
El Esquema 9 muestra un esquema de reacción
química para la reducción de hidrogeles a sus polímeros
constitutivos;
El Esquema 10 muestra un esquema de reacción
química para las síntesis de precursores del Polímero Complejante
(PC)
El Esquema 11 muestra un esquema de reacción
química para la síntesis general de polímeros PC;
El Esquema 12 muestra un esquema de reacción
química para la síntesis de Polímeros de Reticulación (XLP);
\vskip1.000000\baselineskip
La Figura 1 muestra la estructura química de un
hidrogel que consiste en PAA reticuladas juntas mediante enlaces
formados entre los grupos sulfhidrilo colgantes;
La Figura 2 muestra un esquema de reticulación
en complejos de polielectrolito para formar nanopartículas de
suministro de ADN;
La Figura 3 es un diagrama de barras que muestra
los tamaños de partícula de la proporción de
MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBAIDMEDA16-SH-PEG
2:1 usando diferentes proporciones de PAA:ADN;
La Figura 4 es un diagrama de barras que muestra
tamaños de partícula de una proporción
MBAIDMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
3:1 usando diferentes proporciones de PAA:ADN;
La Figura 5 muestra imágenes representativas de
complejos producidos con una proporción de
MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 y una proporción de PAA:ADN 1,25:1 y con una proporción de
MBA/
DMEDA25-Pi a PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG 3:1 y una proporción de PAA:ADN 1,25:1 se muestran en la Figura 5. Las partículas toroidales se formaron de manera que tenían un tamaño de 35 nm y 20 nm, respectivamente;
DMEDA25-Pi a PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG 3:1 y una proporción de PAA:ADN 1,25:1 se muestran en la Figura 5. Las partículas toroidales se formaron de manera que tenían un tamaño de 35 nm y 20 nm, respectivamente;
La Figura 6 es un diagrama de barras que muestra
tamaños de partícula de la proporción de
MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 usando diferentes proporciones de PAA:ADN y haciendo uso del
tercer procedimiento antes y después de la adición de sulfato
sódico;
La Figura 7 es un diagrama de barras que muestra
tamaños de partícula de la proporción de
MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
3:1 usando diferentes proporciones de PAA:ADN y haciendo uso del
3^{er} procedimiento antes y después de añadir sulfato
sódico;
La Figura 8 son imágenes TEM de una solución
dejada sobre un filtro o filtrada después de la centrifugación de
los complejos en una ultrafiltradora centrífuga. Los complejos
usados están a una proporción de MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 usando una proporción de PAA:ADN de 1,5:1 y una proporción de
MBA/
DMEDA25-Pi a PEG-MBA/DMEDA16-Cis-PEG de 2:1 usando una proporción de PAA:ADN 1,5:1; y
DMEDA25-Pi a PEG-MBA/DMEDA16-Cis-PEG de 2:1 usando una proporción de PAA:ADN 1,5:1; y
La Figura 9 muestra la estructura general de los
polímeros complejantes (PC) - PC03: a = 16, b = 15; PC04: a = 16, b
= 48; PC05: a = 45, b = 48; PC06: a = 45, b = 15.
Polimerización de bisacrilamida de metileno
(MBA) con 2-metil-piperazina (MP) y
Boc-cistamina (30%) (MBA30-cist).
En un matraz de fondo redondo, equipado con un agitador magnético y
entrada de nitrógeno, la MBA (100,2 g, 0,65 mol) se disolvió en
atmósfera inerte en agua destilada (200 ml). Se añadió
Boc-cistamina (49,2 g, 0,195 mol) y se permitió que
reaccionara durante 6 horas. Después se añadió MP (45,6 g, 0,455
mol) y se permitió que la solución de reactivo reaccionara con
agitación, protegida de la luz directa. Después de 72 horas la
solución viscosa se diluyó con solución 1,0 M de HCl hasta pH 5,0,
se ultrafiltró a través de una membrana con un corte nominal de
5.000 y se liofilizó. El producto se aisló en forma de sal
clorhidrato. Rendimiento 176,5 g, 85%, \overline{M}_{n} = 25700;
\overline{P}_{m} = 49200.
Polimerización de BP con MP y
Boc-cistamina (30%) (BP30-cist). Se
siguió el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 1 pero usando
BP (126,3 g, 0,65 mol) en lugar de MBA, siendo las cantidades de los
otros reactivos iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 190,7 g (73,0%). \overline{M}_{n} = 23800;
\overline{P}_{m} = 47000.
Polimerización de BP con MP y
Boc-cistamina (50%) (BP50-cist).
Mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 2, pero usando una
cantidad diferente de Boc-cistamina (82,0 g, 0,325
mol) y de MP (45,6 g, 0,325 mol), siendo las cantidades de los
otros reactivos iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 209,4 g (75,8%).
\overline{M}_{n} = 21500; \overline{P}_{m} = 41700.
\overline{M}_{n} = 21500; \overline{P}_{m} = 41700.
Reducción de MBA30-cist con DTT
(MBA30-SH-a). En un matraz de fondo
redondo, equipado con un agitador magnético y entrada de nitrógeno,
se disolvió MBA30-cist (100 g, 0,083 mol de
Boc-cistamina colgantes) en atmósfera inerte en
agua destilada (500 ml). El pH se ajustó a 8,5 con NaOH y se añadió
un exceso de tres veces de DDT (38,3 g, 0,25 mmol). Se permitió que
la solución de reactivo reaccionara durante 6 horas. Se diluyó con
una solución acuosa 1,0 M de HCl hasta pH 2, se ultrafiltró a
través de una membrana con un corte nominal de 5.000 usando agua
desoxigenada y se liofilizó. El producto se aisló en forma de sal
clorhidrato y se almacenó en atmósfera de nitrógeno. Rendimiento
70,0 g (81,9%). \overline{M}_{n} = 31600; \overline{P}_{m} =
62500.
Reducción de MBA30-cist con
Na_{2}S_{2}O_{5} (MBA30-SH-b).
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 2, pero
usando Na_{2}S_{2}O_{5} (47,3 g, 0,25 mol) en lugar de DDT,
siendo las cantidades de los otros reactivos iguales. El producto
se aisló de la misma manera, pero era necesario un menor pH (al
menos pH 2) para eliminar completamente el ácido sulfuroso.
Rendimiento: 71,8 g (84,0%). \overline{M}_{n} = 33400;
\overline{P}_{m} = 67100.
Reducción de BP30-cist con DDT
(BP30-SH-a). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 4, pero usando
BP30-cist (100 g, 0,075 mol de
Boc-cistamina colgantes) en lugar
MBA30-cist. Se usó un exceso de tres veces de DTT
(34,5 g, 0,22 mmol), siendo las otras condiciones de reacción
iguales. El producto se aisló de la misma manera. Rendimiento: 74,5
g (87,7%). \overline{M}_{n} = 29000; \overline{P}_{m} =
60700.
Reducción de BP30-cist con
Na_{2}S_{2}O_{5} (BP30-SH-b).
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 6, pero
usando Na_{2}S_{2}O_{5} (42,6 g, 0,22 mol) en lugar de DTT. El
producto se aisló de la misma manera, pero era necesario un pH
menor (al menos pH 2) para eliminar completamente el ácido
sulfuroso. Rendimiento: 69,5 g (80,0%). \overline{M}_{n} =
26800; \overline{P}_{m} = 50300.
Reducción de BP50-cist con DTT
(BP50-SH-a). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 6, pero usando
BP50-cist (100 g, 0,118 mol de
Boc-cistamina colgantes) en lugar de
BP30-cist. Se usó un exceso de tres veces de DTT
(54,41 g, 0,35 mmol), siendo las otras condiciones de reacción
iguales. El producto se aisló de la misma manera. Rendimiento: 65,1
g (82,0%). \overline{M}_{n} = 23400; \overline{P}_{m} =
25900.
Reducción de BP50-cist con
Na_{2}S_{2}O_{5} (BP50-SH-b).
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 8, pero
usando de Na_{2}S_{2}O_{5} (67,1 g, 0,35 mol) en lugar de DTT.
El producto se aisló de la misma manera, pero era necesario un pH
menor (al menos pH 2) para eliminar completamente el ácido
sulfuroso. Rendimiento: 66,1 g (83,3%). \overline{M}_{n} =
22800; \overline{P}_{m} = 45300
Intercambio de disulfuro de tiol entre
MBA30-SH y disulfuro de bipiridilo
(MBA30-Pi). En un matraz de fondo redondo, equipado
con un agitador magnético y entrada de nitrógeno, se disolvió
MBA30-SH (50 g, 0,043 mol de grupos funcionales
tiol) en atmósfera inerte en tampón TRIS desoxigenado (100 ml, 0,1
M, pH 8,5). Se añadió disulfuro de bipiridilo (10,4 g, 0,047 mol) a
la solución agitada, que casi inmediatamente se hizo amarilla,
debido a la presencia de 2-mercaptopiridina y se
permitió que reaccionara durante 15 horas. Posteriormente, la
solución se diluyó con solución acuosa 1,0 M de HCl a pH 3,0, se
ultrafiltró a través de una membrana con un corte nominal de 5.000
y se liofilizó. El producto se aisló en forma sal clorhidrato.
Rendimiento 50,2 g, 91,8%. \overline{M}_{n} = 30000;
\overline{P}_{m} = 58400.
Formación de hidrogel mediante intercambio de
disulfuro de tiol activado entre MBA30-Pi y
MBA30-SH
(HG-MBA30-a). En un matraz de fondo
redondo, equipado con un agitador magnético y entrada de nitrógeno,
se disolvió MBA30-Pi (50 g, 0,039 mol de grupos
disulfuro activados) en atmósfera inerte en tampón TRIS desoxigenado
(80 ml, 0,1 M, pH 8,5). Se añadió MBA30-SH (40,5 g,
0,039 mol de grupos funcionales tiol) a la solución agitada, que
casi inmediatamente se hizo viscosa y amarilla. Después de media
hora, la agitación se detuvo y se permitió que la mezcla reactiva
reaccionara durante 15 horas. Se formó un hidrogel transparente
sólido. Se molió, se lavó con HCl 1,0 M y varias veces con una
solución de etanol:agua 1:1, hasta que las aguas de lavado ya no
aparecían más coloreados. El hidrogel se lavó después tres veces
con acetona y se secó al vacío para obtener un polvo fino.
Rendimiento 81,2 g, 94,2%.
Con referencia al Esquema 8, se muestra el
esquema de reacción para la formación de un hidrogel mediante la
reacción de polímeros que contienen un tiol reducido y polímeros que
contienen un tiol activado.
Intercambio de disulfuro de tiol entre
BP50-SH y disulfuro de bipiridilo
(BP50-Pi). Se siguió el mismo procedimiento
descrito en el Ejemplo 10, pero usando en BP50-SH
(50 g, 0,0748 mol de grupos funcionales tiol) en lugar de
MBA30-SH, cambiando en consecuencia la cantidad de
disulfuro de bipiridilo (17,9 g, 0,0814 mol), siendo las otras
condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la misma
manera. Rendimiento: 51,4 g (88,5%). \overline{M}_{n} = 19900;
\overline{P}_{m} = 40100.
Formación de hidrogel mediante intercambio de
disulfuro de tiol activado entre BP50- Pi y BP50-SH.
(HG-BP50-a). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 11, pero usando
BP50-Pi (50,0 g, 0,064 mol de grupos disulfuro
activados) en lugar de MBA30-Pi y
BP50-SH (43,1 g, 0,064 mol de grupos funcionales
tiol) en lugar de MBA30-SH, siendo las otras
condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la misma
manera. Rendimiento 81,7 g (95,0%).
Formación de hidrogel mediante oxidación de
MBA30-SH por el oxígeno del aire
(HG-MBA30-b). En un matraz de fondo
redondo equipado con un agitador magnético, se disolvió
MBA30-SH (50 g, 0,039 mol de grupos funcionales
tiol) en tampón TRIS (40 ml, 0,1 M, pH 8,5). Cuando se formó una
solución transparente, se transfirió a una placa Petri y se cubrió.
Después de 48 horas se formó un gel transparente, de consistencia y
aspecto similares a HG-MBA30-a
obtenido en el Ejemplo 11. Se molió, se lavó con HCl 0,1 M y después
varias veces con agua destilada hasta que las aguas de lavado
aparecieron neutras. El hidrogel se lavó después tres veces con
acetona y se secó al vacío para obtener un polvo fino. Rendimiento
46,3 g, 92,7%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
MBA30-SH mediante peróxido de hidrógeno
(HG-MBA30-c). En un matraz de fondo
redondo equipado con un agitador magnético, se disolvió
MBA30-SH (50 g, 0,039 mol de grupos funcionales
tiol) en tampón TRIS (30 ml, 0,1 M, pH 8,5). Cuando se formó una
solución transparente, se añadió una solución de peróxido de
hidrógeno al 5% en agua (26,7 ml, 0,039 mol) y la agitación se
detuvo después de unos pocos minutos. Casi inmediatamente la
solución se hizo más viscosa que antes. Después de 3 horas se formó
un gel transparente, de consistencia y aspecto similares a
HG-MBA30-a y
HG-MBA30-a. Se molió, se lavó con
HCl 0,1 M y después varias veces con agua destilada hasta que las
aguas de lavado aparecieron neutras. El hidrogel se lavó después
tres veces con acetona y se secó al vacío para obtener un polvo
fino. Rendimiento 47,4 g, 94,9%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP30-SH mediante el oxígeno del aire
(HG-BP30-a). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 14, pero sustituyendo
BP30-SH (50 g, 0,043 mol de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, siendo las otras condiciones de
reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento 47,7 g, 95,6%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP30-SH mediante peróxido de hidrógeno
(HG-BP30-b). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 15, pero sustituyendo
BP30-SH (50 g, 0,043 mol grupos funcionales tiol)
por MBA30-SH, cambiando en secuencia la cantidad de
peróxido de hidrógeno (29,2 g, 0,043 mol), siendo las otras
condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la misma
manera. Rendimiento 45,8 g, 91,8%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP50-SH mediante el oxígeno del aire
(HG-BP50-b). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 14 pero sustituyendo
BP50-SH (50 g, 0,064 mol de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, siendo las otras condiciones de
reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento 46,1 g, 92,4%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP50-SH mediante peróxido de hidrógeno
(HG-BP50-c). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 15 pero sustituyendo
BP50-SH (50 g, 0,064 moles de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, cambiando en consecuencia la
cantidad de peróxido de hidrógeno (43,36 g, 0,064 mol) y la
cantidad de tampón TRIS (20 ml), siendo las otras condiciones de
reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento 46,9 g, 94,0%.
Polimerización de MBA con MP y cistamina (30%)
(HG-MBA30-d). En un matraz de fondo
redondo, equipado con un agitador magnético y entrada de nitrógeno,
se disolvió MBA (100,2 g, 0,65 mol) en atmósfera inerte en agua
destilada (200 ml). Se añadió bis-clorhidrato de
cistamina (22,0 g, 0,0975 mol) con la cantidad estequiométrica de
hidróxido de litio monohidrato (8,18 g, 0,195 mol). Cuando la
disolución se hubo completado, se añadió MP (45,6 g, 0,455 mol) se
agitó durante media hora y se permitió que reaccionara con
agitación, protegido de la luz directa. Después de 120 horas, se
formó un gel transparente, de consistencia y aspecto similares a
HG-MBA30-a obtenido en el Ejemplo
11. El hidrogel se molió, se lavó con HCl 0,1 M y después varias
veces con agua destilada hasta que las aguas de lavado aparecieron
neutras. El hidrogel se lavó después tres veces con acetona y se
secó al vacío para obtener un polvo fino. Rendimiento 46,3 g,
92,7%.
Polimerización de BP con MP y cistamina (30%)
(HG-BP30-c). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 20 pero usando BP (126,3 g,
0,65 mol) para MBA, siendo las cantidades de los otros reactivos
iguales. El producto se aisló de la misma manera. Rendimiento:
203,6 g (89,6%). Consistencia y aspecto similares a los de
HG-BP30-a obtenido en el Ejemplo
16.
Polimerización de BP con MP y cistamina (50%)
(HG-BP50-d). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 21, pero usando una cantidad
diferente de clorhidrato de cistamina (36,6 g, 0,163 mol) y de MP
(32,6 g, 0,325 mol), siendo las cantidades de los otros reactivos
iguales. El producto se aisló de la misma manera. Rendimiento:
195,0 g (89,0%). La consistencia y el aspecto eran similares a los
de HG-BP30-a obtenido en el Ejemplo
13.
Reducción y disolución de
HG-MBA30-d con DTT
(MBA30-SH-c). En un matraz de fondo
redondo, equipado con un agitador magnético y entrada de nitrógeno,
se permitió que HG-MBA30-d (100 g,
0,049 mol de grupos cistamina) se hinchara en atmósfera inerte en
agua destilada (500 ml). El pH se ajustó a 8,5 con NaOH y se añadió
un exceso de tres veces de DTT (22,45 g, 0,15 mmol). Se permitió
que la solución de reactivo reaccionara durante 6 horas. Se diluyó
con solución acuosa de HCl 1,0 M hasta pH 2, se ultrafiltró a través
de una membrana con un corte nominal de 5.000 en agua desoxigenada
y finalmente se liofilizó. El producto se aisló en forma de sal
clorhidrato y se almacenó en atmósfera de nitrógeno. Rendimiento
73,1 g (73,2%). \overline{M}_{n} = 32600; \overline{P}_{m} =
63500.
Reducción y disolución de
HG-MBA30-d con
Na_{2}S_{2}O_{5} (MBA30-SH-d).
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 23 pero
usando Na_{2}S_{2}O_{5} (27,7 g, 0,15 mol) para DTT, siendo
las cantidades de los otros reactivos iguales. El producto se aisló
de la misma manera pero era necesario un menor pH (al menos pH 2)
para eliminar completamente el ácido sulfuroso. Rendimiento: 74,7 g
(74,6%). \overline{M}_{n} = 31400; \overline{P}_{m} =
60200.
Reducción y disolución de
HG-BP30-d con DTT
(BP30-SH-c). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 23, pero usando
HG-BP30-c (100 g, 0,043 moles de
grupos cistamina) en lugar de
HG-MBA30-d. Se usó un exceso de
tres veces de DTT (19,9 g, 0,13 mmol), siendo las otras condiciones
de reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 68,5 g (68,4%). \overline{M}_{n} = 23400;
\overline{P}_{m} = 447200.
Reducción y disolución de
HG-BP30-d con Na_{2}S_{2}O_{5}
(BP30-SH-d). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 25, pero usando
Na_{2}S_{2}O_{5} (24,5 g, 0,13 mol) en lugar de DTT, siendo
las cantidades de los otros reactivos iguales. El producto se aisló
de la misma manera, pero era necesario un menor pH (al menos pH 2)
para eliminar completamente el ácido sulfuroso. Rendimiento: 71,9 g
(71,8%). \overline{M}_{n} = 31400; \overline{P}_{m} =
60200.
Reducción y disolución de
HG-BP50-d con DTT
(BP50-SH-c). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 23 pero usando
HG-BP30-c (100 g, 0,043 mol de
grupos cistamina) en lugar de
HG-MBA30-d. Se usó un exceso de
tres veces de DTT (19,9 g, 0,13 mmol), siendo las otras condiciones
de reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 68,5 g (68,4%). \overline{M}_{n} = 23400;
\overline{P}_{m} = 47200.
Reducción y disolución de
HG-BP30-d con Na_{2}S_{2}O_{5}
(BP30-SH-d). Se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 25 pero usando
Na_{2}S_{2}O_{5} (24,5 g, 0,13 mol) en lugar de DTT, siendo
las cantidades de los otros reactivos iguales. El producto se aisló
de la misma manera, pero era necesario un menor pH (al menos pH 2)
para eliminar completamente el ácido sulfuroso. Rendimiento: 71,9 g
(71,8%). \overline{M}_{n} = 31400; \overline{P}_{m} =
60200.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
MBA30-SH-d mediante el oxígeno del
aire (HG-MBA30-e). Mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 14, pero sustituyendo
MBA30-SH-d por
MBA30-SH-a, siendo las otras
condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la misma
manera. Rendimiento 45,2 g, 90,6%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
MBA30-SH-d mediante peróxido de
hidrógeno (HG-MBA30-f). Mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 15 pero sustituyendo
MBA30-SH-d por
MBA30-SH-a, siendo las otras
condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la misma
manera. Rendimiento 46,2 g, el 92,6%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP30-SH-d mediante el oxígeno del
aire (HG-BP30-d). Mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 14, pero sustituyendo
BP30-SH-d (50 g, 0,043 mol de grupos
funcionales tiol) por MBA30-SH-a,
siendo las otras condiciones de reacción iguales. El producto se
aisló de la misma manera. Rendimiento 45,6 g, 91,4%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP30-SH-d mediante peróxido de
hidrógeno (HG-BP30-e). Se siguió el
mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 15 pero sustituyendo
BP30-SH (50 g, 0,043 mol de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, cambiando en consecuencia la
cantidad de peróxido de hidrógeno (29,2 g, 0,043 moles), siendo las
otras condiciones de reacción iguales. El producto se aisló de la
misma manera. Rendimiento 43,8 g, 87,7%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP50-SH-d mediante el oxígeno del
aire (HG-BP50-e). Se siguió el
mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 14, pero sustituyendo
BP50-SH (50 g, 0,064 moles de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, siendo las otras condiciones de
reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento 44,8 g, 89,9%.
Formación de hidrogel mediante oxidación de
BP50-SH-d mediante peróxido de
hidrógeno (HG-BP50-f). Mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 15, pero sustituyendo
BP50-SH (50 g, 0,064 moles de grupos funcionales
tiol) por MBA30-SH, cambiando en consecuencia la
cantidad de peróxido de hidrógeno (43,36 g, 0,064 moles) y la
cantidad de tampón TRIS (20 ml), siendo las otras condiciones de
reacción iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento 44,1 g, 88,5%.
Los Ejemplos 10, 12 pueden duplicarse de la
siguiente manera. Puede seguirse el mismo procedimiento que en el
Ejemplo 10 ó 12, pero sustituyendo el ácido
5,5-ditiobis(2-nitrobenzoico),
cuya fórmula se muestra a continuación, por una cantidad
equimolecular de 2,2'-dipiridilsulfuro, siendo las
otras condiciones iguales.
El producto resultante contiene restos ácido
tio(2-nitrobenzoico) en lugar de restos
2-piridilsulfuro. Su reactividad hacia las
reacciones de intercambio de tiol es la misma.
(L)-cisteína (\geq 99,0%),
carbonato potásico (99%),
1,4-ditio-D,L-treitol
(99%) se adquirieron en Fluka y se usaron sin purificación
adicional. D_{2}O (99,9%) estabilizado sobre una bobina de plata,
2,2-metilenbisacrilamida (denominada en lo sucesivo
en el presente documento MBA) 1,4-(D,L)-ditiotreitol
(denominado en lo sucesivo en el presente documento DTT),
metabisulfito sódico (Na_{2}S_{2}O_{5}), disulfuro de
bipiridilo, tris-hidroximetilaminometano
(denominado en lo sucesivo en el presente documento TRIS) y
2-metilpiperazina (denominada en lo sucesivo en el
presente documento MP) se adquirieron en Aldrich.
Las soluciones acuosas de HCl normal se
adquirieron en Rieden de Haen. El ácido
2,2-bis(acrilamido)acético
(denominado en lo sucesivo en el presente documento BAC),
bis(acriloil)piperazina (denominada en lo sucesivo en
el presente documento BP) y
N-terc-butiloxicarbonil cistamina se
sintetizaron como se ha descrito previamente (Ferruti, P.; Ranucci,
E.; Trotta, F.; Gianasi, E.; Evagorou, GE; Wasil, M.; Wilson, G.;
Duncan, R. Macromol. Chem. Phys. 1999, 200, 1644; Ferruti, P.
Macromol. Synth. 1985, 9, 25 y K.A. Jacobson, B. Fischer, X. Ji,
Bioconjugate Chem. 1995, 6, 255).
Los espectros de ^{1}H y ^{13}C se
obtuvieron en un espectrómetro Brüker Advance 400, que funcionaba a
500,133 MHz (^{1}H) y a 125,00 MHz (^{13}C). Las trazas de la
cromatografía de exclusión de tamaños (SEC) se obtuvieron haciendo
uso de columnas G4000 PW TSK-gel y G3000 PW
TSK-gel producidas por TosoHaas. Las dos columnas
se conectaron en serie y la fase móvil era tampón Tris, pH 8,10;
caudal 1 ml/min (bomba HPLC modelo Waters 515); el detector UV era
un Waters modelo 486 que funciona a 230 nm; el detector de
refracción era un Waters modelo 2410. Las muestras se prepararon en
tampón Tris con una concentración del 1% en polímero. Las
determinaciones de peso molecular estaban basadas en una curva de
calibrado obtenida con patrones de pululano.
Usando estos ejemplos, los inventores han
demostrado que pueden producirse PAA que contienen restos cistamina
que están protegidas con BOC usando dos pares diferentes de
co-monómeros y diferentes niveles de incorporación
de cistamina. Todos estos polímeros diferentes pueden reducirse para
dar un grupo sulfhidrilo libre usando ditiotreitol o metabisulfito
sódico como reductor. Los polímeros activados que contienen
disulfuro de bipiridilo se han producido mediante una reacción de
intercambio de disulfuro de tiol usando polímeros producidos por
cualquiera de las PAA con diferentes
co-monómeros.
Los inventores han demostrado adicionalmente que
los hidrogeles pueden prepararse a partir de estos polímeros que
contienen cistamina por numerosas rutas. Estas rutas son (1) mezcla
de polímeros que contienen un grupo sulfhidrilo libre y polímeros
que contienen polímeros activados por disulfuro de piridilo o (2)
oxidación usando el oxígeno del aire o peróxido de hidrógeno. Los
inventores han demostrado también que los hidrogeles pueden crearse
in situ por incorporación de cistamina no protegida en la
reacción de polimerización, demostrado también usando dos pares de
comonómeros diferentes y diferentes cantidades de cistamina. Los
hidrogeles preparados por esta ruta pueden reducirse para formar
polímeros no reticulados usando ditiotreitol o bisulfito sódico
como agentes reductores. Los polímeros no reticulados producidos de
esta manera pueden volver a ensamblarse en hidrogeles usando el
oxígeno del aire o peróxido de hidrógeno, exactamente igual que
polímeros recién preparados.
En conclusión, los inventores observaron que las
poliamidoaminas descritas en el presente documento proporcionan un
grupo versátil de polímeros que pueden sintetizarse conteniendo un
grupo cistamina. Puede usarse una diversidad de rutas químicas para
reducir o activar los polímeros para formar hidrogeles y los
hidrogeles pueden reducirse a sus polímeros constitutivos y
reformarse. Se espera que este grupo versátil y diverso de polímeros
reticulables reversiblemente encuentre aplicación, por lo tanto, en
diversas aplicaciones biomédicas como hidrogeles u otras
aplicaciones donde la reticulación es beneficiosa.
Los espectros RMN de ^{1}H y ^{13}C se
realizaron en un espectrómetro Brüker Advance 400 que funcionaba a
400,132 MHz (^{1}H) y 100,623 (^{13}C). Las trazas de la
cromatografía de exclusión de tamaños (SEC) de polímeros solubles
en disolventes orgánicos (patrones de poliestireno) se obtuvieron
usando columnas Phenomenex Phenogel 500, 103 y 104 A, conectadas en
serie, equipadas con un detector UV que funcionaba a 254 nm, una
fase móvil 9/1 (v/v) de diclorometano/metanol. Las trazas de SEC de
polímero soluble en agua (patrones de pululano) se obtuvieron
usando un instrumento BOMBA DE HPLC WATERS 515, con columnas
Toso-Haas 486, usando tampón Tris 0,1 M, pH 8,00
\pm 0,05 como fase móvil, equipado con un detector doble de
dispersión luz Viscotek 270 y un detector Rl Waters
2410.
2410.
Tris-(hidroximetil)-aminometano
(TRIS) (>99,8%), 2-mercaptopiridina (>95%),
hidróxido de litio monohidrato (>98%) y
di-clorhidrato de cistamina (>98%), éter metílico
de poli(etilenglicol) 750, éter metílico de
poli(etilenglicol) 2000, carbonil di-imidazol
(>97%), piperazina (>99%), morfolina (>99%),
N,N'-metilenbis(acrilamida) (>98%),
N,N'-dimetilendiamina (>98%),
di-terc-butil-dicarbonato
(>98%), se adquirieron en Fluka y se usaron tal cual se
recibieron. Los disolventes de calidad analítica para HPLC se
adquirieron en Fluka y se usaron tal cual se recibieron. D_{2}O
(99,9%), d_{6}-DMSO (99,8%), CDCl_{3} (99,8%),
2,2'-ditiodipiridina (98%) se adquirieron en
Aldrich y se usaron tal cual se recibieron. El agua se destiló dos
veces.
Para el compuesto MBA-DMEDA30,
"A30" se refiere al Mn aproximado del polímero.
Se añadió MBA (1,54 g, 10,0 mmol) en pequeñas
porciones a una solución acuosa de DMEDA (0,88 g, 10,0 mmol en 3,5
ml de agua) en atmósfera de nitrógeno. Se permitió que la solución
reactiva reaccionara durante 72 horas con agitación, después se
añadió morfolina (87,5 \mul, 1,0 mmol) y se permitió que
reaccionara durante 24 horas. Posteriormente el pH se ajustó a 2,5
con HCl acuoso 1 M, la solución se ultrafiltró a través de una
membrana con un corte de peso molecular de 3.000 y se secó por
congelación.
El producto se caracterizó por SEC y
espectroscopía de RMN.
^{1}H RMN (d_{6}-DMSO): 2,25
(s, 6H, CH_{3}N), 2,39 (t, 4H,
CO-CH_{2}-CH_{2}-N),
2,51 (s, 4H,
N-CH_{2}-CH_{2}-N),
2,66 (t, 4H, CO-CH_{2}-); 4,56 (m, ancho, 2H,
NH-CH_{2}-NH), 8,82 (t, ancho, 2H,
NH).
\overline{M}_{n} : 27000,
\overline{P}_{m} : 42000; Rendimiento: 2,6 g, 93%.
\newpage
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 36, pero usando una cantidad diferente de DMEDA (0,924 g,
10,5 mmol), siendo las cantidades de los otros reactivos iguales. El
producto bruto se destiló con agua y se liofilizó sin purificación
adicional.
Rendimiento: cuantitativo. \overline{M}_{n}
: 3800; \overline{P}_{m} : 7900
Espectro de RMN similar al obtenido con el
producto del Ejemplo 36.
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 36, pero usando una cantidad diferente de DMEDA (0,902 g,
10,25 mmol) siendo las cantidades de los otros reactivos iguales. El
producto bruto se destiló con agua y se liofilizó sin ninguna
purificación adicional.
Rendimiento: cuantitativo. \overline{M}_{n}
: 11600; \overline{P}_{m} : 28000
Espectro de RMN similar al obtenido para el
producto del Ejemplo 36.
Se añadió TEA (2,696 g, 26,65 mmol) a una
solución en metanol seco (100 ml) de bis-clorhidrato
de cistamina (2,00 g, 8,88 mmol) y la solución se agitó durante 15
minutos a temperatura ambiente. Se añadió
di-terc-butildicarbonato (1,941 g,
8,88 mmol) y la reacción se agitó durante 2,5 horas más, controlando
el progreso de la reacción por CCF (eluyente: cloroformo/alcohol
isopropílico 1:1, Rf producto: 0,25). El disolvente se evaporó
después y se añadió una solución acuosa de KH_{2}PO_{4} 1 M (60
ml, pH = 4,2). La fase acuosa se extrajo con éter dietílico (50 ml)
para retirar la
N,N'-di-terc-butiloxicarbonil
cistamina, después se llevó a pH 9 con NaOH 1 M y se extrajo con
acetato de etilo (6 x 15 ml). Las fases orgánicas combinadas se
secaron (Na_{2}SO_{4}) y se evaporaron a sequedad. El residuo
se disolvió en agua a pH 4 (HCl). La solución transparente obtenida
se secó por congelación y la
N-terc-butiloxicarbonil-cistamina
se aisló en forma de clorhidrato (1,03 g, 40%).
^{1}H RMN (D_{2}O): 1,30 (s, 9H, Boc
CH_{3}), 2,72 (t, 2H, CH_{2}-S),
2,83 (t, 2H, CH_{2}-S),
3,21-3,31 (m, 4H, NH_{3}+-CH_{2} y
CONH-CH_{2}).
Con referencia al Esquema 10A, en un matraz de
fondo redondo de dos bocas equipado con una barra agitadora,
entrada de vacío/nitrógeno y un tapón de vidrio, se reblandeció
mono-metoxi-PEG 2000 (5 mmol, 10 g)
con calentamiento moderado, se purgó y se mantuvo en atmósfera de
nitrógeno. Se añadió CHCl_{3} (50 ml) permitiendo que se
disolviera el PEG y posteriormente se añadió CDI (15 mmol, 2,4 g) en
pequeñas porciones. Después de 1 hora, el CDI sin reaccionar se
inactivó por adición de agua (5 ml) y la fase orgánica se extrajo
con salmuera (4 x 30 ml). La fase orgánica se secó sobre sulfato
sódico anhidro, se añadió piperazina (1,3 g, 15 mmol) y la solución
se dejó en agitación durante 1 hora. La solución orgánica se extrajo
con salmuera hasta que las aguas de lavado alcanzaron un pH neutro.
Se secó posteriormente sobre sulfato sódico anhidro y el disolvente
se evaporó a presión reducida. El producto aceitoso de color
amarillo pálido bruto se mantuvo al vacío durante varios días hasta
que se obtuvo una sustancia cerosa con rendimiento cuantitativo.
^{1}H RMN (D_{2}O): 2,71 (t, ancho, 4H,
CH_{2}-NH-CH_{2},
piperazina), 3,30 (s, 3H, O-CH_{3}, extremo PEG),
3,38 (ancho, 4H,
CH_{2}-N(CO)-CH_{2},
piperazina), 3,5-3,8 (m, ancho, 70 H,
CH_{2}O-CH_{2}, cadena PEG), 4,17
(ancho, 2H, CO-O-CH_{2},
PEG).
Con referencia al Esquema 10A, se siguió el
mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 40, pero usando un
mono-metoxi PEG con una longitud de cadena diferente
en la misma cantidad molar (5 mmol, 3,27 g), siendo las cantidades
de los otros reactivos iguales. El producto se aisló de la misma
manera.
^{1}H RMN (D_{2}O): 2,71 (t, ancho, 4H,
CH_{2}-NH-CH_{2},
piperazina), 3,30 (s, 3H, O-CH3, extremo PEG), 3,38
(ancho, 4H,
CH_{2}-N(CO)-CH_{2},
piperazina), 3,5-3,8 (m, ancho, 70 H,
CH_{2}O-CH_{2}, cadena PEG), 4,17
(ancho, 2H, CO-O-CH_{2},
PEG).
Con referencia al Esquema 10C y el Esquema 11 y
la Figura 9, para el compuesto
PC16-4-15), "PC" significa
"Polímero Complejante" y los números se refieren al número
medio de unidades de repetición del extremo PEG, la parte que
contiene SH y la parte de
homo-MBA-DMEDA, respectivamente. Por
lo tanto, para PC03, el polímero complejante tiene 16 unidades de
repetición del extremo PEG, 4 unidades de repetición para la parte
que contiene SH y 15 unidades de repetición para la parte
homo-MBA-DMEDA.
En un matraz de dos bocas, MBA (0,308 g, 2,0
mmol), el producto obtenido en el Ejemplo 4 (0,460 g, 1,6 mmol) y
TEA (0,160 g, 0,220 ml, 1,6 mmol) se disolvieron en etilenglicol (2
ml) bajo un flujo de nitrógeno. La reacción se controló por CCF
(eluyente: cloroformo/alcohol isopropílico 1:1,
Cist-mBoc Rf: 0,25). Una vez completada la
reacción, se añadió el producto obtenido en el Ejemplo 41 (0,152 g,
0,2 mmol) diluido en etilenglicol (0,5 ml). Se permitió que la
mezcla reaccionara durante 5 días. Finalmente se añadió el producto
obtenido en el Ejemplo 37 (0,5 g, 0,2 mmol) diluido en etilenglicol
(2 ml) y se permitió que la mezcla reaccionara durante 5 días. Una
vez completada la reacción la mezcla se diluyó en agua (100 ml), se
añadió una solución acuosa de HCl 1 M hasta que se alcanzó pH 4 y
la solución final se dializó contra agua (5 x 1 l) en un tubo de
diálisis con un corte nominal de 3.500. El producto purificado se
liofilizó finalmente. Rendimiento: 52%.
^{1}H RMN (D_{2}O): 1, 41 (s,
O-C-(CH_{3})_{3},
cist-m-Boc), 2,57 (s,
N-CH_{3}, bloque-PAA), 2,61
(m,
CO-CH_{2}-CH_{2}-N,
bloque-PAA), 3,07 (s,
N-CH_{2}-CH_{2}-N,
bloque-PAA), 3,11 (m,
CO-CH_{2}-CH_{2}-N,
bloque-PAA), 3,67 (s,
O-CH_{2}-CH_{2}-O,
bloque-PEG), 4,57 (s,
NH-CH_{2}-NH,
bloque-PAA), 6,22 (d, CH=CH_{2},
extremo).
Las proporciones integrales entre los picos de
RMN integrales son como se esperaban. Se calcula un rendimiento de
reacción del 72% en base a la señal de referencia para el doble
enlace sin reaccionar (6,22 ppm).
Para PC04, el polímero complejante tenía 16
unidades de repetición del extremo PEG, 4 unidades de repetición
para la parte que contiene SH y 48 unidades de repetición para la
parte homo-MBA-DMEDA.
Con referencia a la Figura 9, se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 42, pero usando el producto
obtenido en el Ejemplo 38 (1,0 g, 0,2 mmol) en lugar del producto
obtenido en el Ejemplo 37, siendo las cantidades de los otros
reactivos iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 54%. El espectro de RMN era similar al obtenido para
el producto del Ejemplo 42. Las proporciones integrales entre los
picos de RNM integrales son como se esperaba. Rendimiento de
reacción del 70%.
Por lo tanto, para PC05, el polímero complejante
tiene 45 unidades de repetición del extremo PEG, 4 unidades de
repetición para la parte que contiene SH y 15 unidades de repetición
para la parte homo-MBA-DMEDA.
Con referencia a la Figura 9, se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 42, pero usando el producto
obtenido en el Ejemplo 40 (0,4 g, 0,2 mmol) en lugar del producto
obtenido en el Ejemplo 41, siendo las cantidades de los otros
reactivos iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 53%. El espectro de RMN era similar al obtenido para
el producto del Ejemplo 42. Las proporciones integrales entre los
picos de RMN integrales son como se esperaba. Rendimiento de
reacción del 68%.
Por lo tanto, para PC03, el polímero complejante
tiene 45 unidades de repetición del extremo PEG, 4 unidades de
repetición para la parte que contiene SH y 48 unidades de repetición
para la parte homo-MBA-DMEDA.
Con referencia a la Figura 9, se siguió el mismo
procedimiento descrito en el Ejemplo 44, pero usando el producto
obtenido en el Ejemplo 38 (1,0 g, 0,2 mmol) en lugar del producto
obtenido en el Ejemplo 37, siendo las cantidades de los otros
reactivos iguales. El producto se aisló de la misma manera.
Rendimiento: 56%. El espectro de RMN era similar al obtenido para
el producto del Ejemplo 42. Las proporciones integrales entre
señales de RMN eran como se esperaba. Se calcula un rendimiento de
reacción del 65% basándose en las integrales de pico referidas al
doble enlace no reaccionado (6,22 ppm).
\vskip1.000000\baselineskip
Con referencia al Esquema 12, para cada
etiqueta: Pi25 se refiere al contenido molar de grupos Pi de las
unidades de repetición, el segundo número se refiere al número
medio de unidades de repetición en las cadenas polímero.
En un matraz de fondo redondo, equipado con un
agitador magnético y entrada de nitrógeno, se disolvió MBA (100,2
g, 0,65 mol) en atmósfera inerte en agua destilada (200 ml). Se
añadió bis-clorhidrato de cistamina (22,0 g, 0,0975
mol) con la cantidad estequiométrica de hidróxido de litio
monohidrato (8,18 g, 0,195 mol). Cuando la disolución se hubo
completado, se añadió DMEDA (40,1 g, 0,455 mol), se agitó durante
media hora y se permitió que reaccionara sin agitar, protegido de
la luz directa. Después de 120 horas se formó un gel transparente,
de consistencia y aspecto similares a
HG-MBA30-a obtenido del Ejemplo 11.
El hidrogel se molió, se lavó con HCl 0,1 M y varias veces con agua
destilada hasta que las aguas de lavado aparecieron neutras. El
hidrogel se lavó después tres veces con acetona y se secó al vacío
para obtener un polvo fino. Rendimiento 46,3 g, 92,7%.
En un matraz de fondo redondo, equipado con un
agitador magnético y entrada de nitrógeno, se permitió que
HG-MBA30-d (100 g, 0,049 mol de
grupos cistamina) se hinchara en atmósfera inerte en agua destilada
(500 ml). El pH se ajustó a 8,5 con NaOH y se añadió un exceso de
tres veces de DTT (22,45 g, 0,15 mmol). Se permitió que la solución
reaccionara durante 6 horas. Se diluyó con solución acuosa de HCl
1,0 M hasta pH 2, se ultrafiltró a través de una membrana con un
corte nominal de 5.000 en agua desoxigenada y finalmente se
liofilizó. El producto se aisló en forma de sal clorhidrato y se
almacenó en atmósfera de nitrógeno. Rendimiento 71,8 g (71,8%).
\overline{M}_{n} : 29000; \overline{P}_{m} : 56000.
En un matraz de fondo redondo, equipado con un
agitador magnético y entrada de nitrógeno, se disolvió
MBA30-SH (50 g, 0,043 mol de grupos funcionales
tiol) en atmósfera inerte en tampón TRIS desoxigenado (100 ml, 0,1
M, pH 8,5). Se añadió disulfuro de bi-piridilo (10,4
g, 0,047 mol) a la solución agitada, que casi inmediatamente se
hizo amarilla, debido a la presencia de
2-mercaptopiridina y se permitió que reaccionara
durante 15 horas. Posteriormente la solución se diluyó con una
solución acuosa de HCl 1,0 M hasta pH 3,0, se fraccionó por
ultrafiltración a través de membranas con un corte de peso
molecular 30.000; 10.000; 5.000; 3.000; 1.000. Cada fracción se
liofilizó por separado.
^{1}H RMN (D_{2}O): 2,71 (m,
CO-CH_{2}-CH_{2}-N),
2,77 (s, N-CH_{3}), 3,35 (m,
CO-CH_{2}CH_{2}-N), 3,46
(s,
N-CH_{2}-CH_{2}-N),
4,57 (s, NH-CH_{2}-NH),
7,27 (m, piridina, N-CH-CH),
7,67-7-77 (m, piridina,
N-C-CH-CH), 8,38 (m,
piridina, N-CH-CH).
XLP-30K: rendimiento: 4,3 g;
XLP-10K: rendimiento: 3,6 g; XLP-5K:
rendimiento: 10,2 g; XLP-3K: rendimiento: 4,7 g;
XLP-1 K: rendimiento: 13,7 g.
Rendimiento total: 67%. Rendimiento de reacción:
83%.
\vskip1.000000\baselineskip
La reducción de
PEG-MBA/DMEDA16-Cis-PEG
con DTT
(PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG).
En un matraz de fondo redondo, equipado con un agitador magnético y
entrada de nitrógeno, se disolvió
PEG-MBA/DMEDA16-Cis (250 mg, 0,013
mmol) en atmósfera inerte en agua destilada (10 ml). El pH se
ajustó a 8,5 con NaOH y se añadió un exceso de DTT de diez veces
(160 mg, 0,104 mmol). Se permitió que la solución reactiva
reaccionara durante 1 hora. Se diluyó con solución acuosa de HCl
1,0 M hasta pH 2, se ultrafiltró a través de una membrana con un
corte nominal de 5.000 usando agua desoxigenada y se liofilizó. El
producto se aisló en forma de sal clorhidrato y se almacenó en
atmósfera de nitrógeno.
La interacción entre las poliamidoaminas y el
ADN se ha caracterizado usando ADN de esperma de salmón bruto
(ADNss) que se había limpiado y fraccionado para dar una preparación
principalmente de moléculas de ADN monocatenario.
El ADNss (2,5 \mug) se mezcló a diferentes
proporciones con polímeros para formar un complejo policatiónico de
ADN (ADN: PAA, 1:1, 1,25:1, 1,5:1 y 2:1). La proporción se calcula
como bases de ADN por monómero del polímero. También, la proporción
de MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
ha variado (es decir, 2:1 y 3:1).
Adicionalmente, también se investigó el orden de
adición de los reactivos. Se usaron los tres procedimientos
diferentes mostrados a continuación en los que varió el orden de
adición de los componentes:
- (1)
- se añade MBA/DMEDA25-Pi (pequeño volumen, 20 \mul) al ADN (2,5 \mug en 50 \mul), después se añade PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG para formar el complejo;
- (2)
- se añade MBA/DMEDA25-Pi (gran volumen, 30 \mul) al ADN (2,5 \mug en 50 \mul), después se añade PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG parar formar el complejo; y
- (3)
- se añade MBA/DMEDA25-Pi (gran volumen, 30 \mul) a PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG (20 \mul), después se añaden los polímeros al ADN (2,5 \mug en 50 \mul).
Los tamaños de las partículas de soporte que
comprendían PAA y ADN, en diversas condiciones (es decir, qué
procedimiento de preparación se usó y qué proporción se usó) se han
evaluado usando Dispersión de Luz Dinámica (DLS), y los resultados
se muestran en las Figuras 3 y 4.
Usando el 3^{er} procedimiento, todos los
tamaños de partícula son comparables, mientras que se observa
alguna variación para el 1^{er} procedimiento a bajas proporciones
PAA:ADN. El tamaño, empleando el 2º procedimiento usando una
proporción de MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 y una proporción PAA:ADN 1:1, es menor que el de la formulación
3:1. Los tamaños de partícula pequeños pueden obtenerse usando una
formulación reticulada y están en un intervalo adecuado para
aplicaciones biomédicas o medioambientales.
Las imágenes de Microscopía Electrónica de
Transmisión representativas (TEM) de los complejos producidas con
una proporción de MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 y una proporción PAA:ADN 1,25:1 y con una proporción
MBA/DMEDA25-Pi a PEG-
MBA/DMEDA16-SH-PEG 3:1 y una
proporción PAA:ADN 1,25:1 se muestran en la Figura 5. Se formaron
partículas con forma toroidal que tenían un tamaño de 35 nm y 20 nm,
respectivamente.
Procedimiento TEM: se puso una gota de cada
muestra en rejillas de cobre revestidas con resina Pioloform (Taab
Laboratory Equipment, Reading, RU) y un exceso de líquido se
transfirió usando papel de filtro. Después de secar el aire, las
rejillas se hicieron flotar sobre una gota de solución de tinción de
acetato de uranilo (4% p/v en EtOH/H_{2}O v/v 50/50) durante 15
minutos, después de lo cual se lavaron una vez en EtOH v/v al 50% y
dos veces en agua purificada, seguido de secado al aire. Las
rejillas se analizaron usando un microscopio electrónico de
transmisión JEOL JEM-1010 (Jeol, Welwyn Garden City,
RU) que funcionaba a una tensión de 80 kV. Se tomaron
microfotografías a diversos aumentos con una cámara digital Kodak
Megaplus 1.6i usando el paquete de programas Analysis 3.0.
Se investigó la estabilidad de los complejos en
diferentes concentraciones de sal. Los complejos se prepararon como
se ha descrito anteriormente, usando el 3^{er} procedimiento.
Después se añadieron agua, sulfato sódico 1 mM o sulfato sódico 10
mM a los complejos y los tamaños se midieron usando DLS. Como se
observa en las Figuras 5 y 6 los complejos preparados usando una
proporción de MBA/DMEDA25-Pi a
PEG-MBA/DMEDA16-SH-PEG
2:1 son más estables (tamaños de partícula más pequeños) a sulfato
sódico que la formulación 3:1.
Las formulaciones reticuladas se compararon con
su estado no reticulado. Los complejos se pusieron encima de una
ultrafiltradora centrífuga (peso de corte: 100 kDa, Microcon
YM-100, Amicon, Fischer Scientific, Loughborough,
RU) y se centrifugaron a 1000 g durante 30 min. Se tomaron imágenes
TEM del filtrado y de lo que quedaba en el filtro.
\newpage
La Figura 8 muestra más complejos en el filtro
para la formulación reticulada (fotografías superiores) comparado
con el sistema no reticulado (fotografías inferiores), y atravesó
menos por el filtro para la formulación reticulada (superior)
comparado con la no reticulada (inferior). Esta es la prueba de que
tuvo lugar la reticulación física.
Claims (66)
1. Una composición que comprende un polímero de
poliamidoamina (PAA) que comprende un resto colgante disulfuro,
sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
2. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 1, en la que la composición comprende un polímero de
poliamidoamina (PAA) lineal que comprende un resto colgante
disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
3. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 1 o la reivindicación 2, en la que la composición
está adaptada para formar reticulaciones entre los restos colgantes
disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado.
4. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 3, en la que la composición reticulada es reducible,
de manera que tras la reducción de la composición reticulada, las
reticulaciones entre las cadenas de polímero se rompen.
5. Una composición de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones anteriores, en la que el polímero de PAA
contiene grupos repetidos X e Y representados por la fórmula general
I:
(Fórmula
I)\{-[X]-[Y]-\}_{n}
en la
que,
n es entre 5 y 500;
los grupos X, que pueden ser iguales o
diferentes, son grupos que contienen amida de la fórmula
-[-L^{1}-CO-NR^{1}-L_{2}-NR_{2}-CO-L^{3}-]-
en la
que
L^{1} y L^{3} representan,
independientemente, grupos etileno opcionalmente sustituidos;
L^{2} representa una cadena de alquileno
opcionalmente sustituida, y
R^{1} y R^{2} representan,
independientemente, hidrógeno o un grupo alquilo opcionalmente
sustituido;
y los grupos Y, que pueden ser iguales o
diferentes, representan grupos derivados de amina de la fórmula:
-[-NR^{3}-]-
\hskip0.3cm o \hskip0.3cm -[NR^{4}-L^{4}-NR^{5}-]
-
en la
que
R^{3}, R^{4} y R^{5} representan grupos
alquilo opcionalmente sustituidos, y
L^{4} representa un grupo alquileno
opcionalmente sustituido;
o R^{4}, R^{5} y L^{4}, junto con los
átomos de nitrógeno a los que están unidos, forman un anillo
opcionalmente sustituido,
con la condición de que al menos alguno de
R^{3}, R^{4} y R^{5} contenga grupos disulfuro, sulfhidrilo o
sulfhidrilo activado.
\vskip1.000000\baselineskip
6. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 5, en la que R^{1} y R^{2} son hidrógeno.
7. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 5, en la que R^{1} y/o R^{2} representa un grupo
alquilo opcionalmente sustituido que contiene una cadena
C_{1}-C_{20}.
8. Una composición de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 5 a 7, en la que R^{3}, R^{4} y R^{5}
representan grupos alquilo opcionalmente sustituidos que contienen
una cadena C_{1}-C_{20}.
9. Una composición de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 5 a 8, en la que L^{2} y L^{4}
representan cadenas de alquileno opcionalmente sustituido que
contienen 1-10 átomos de carbono.
10. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 5 a 9, en la que cualquiera de
L^{1}, L^{2}, L^{3} y L^{4} están sustituidos,
seleccionándose los sustituyentes entre alquilo, alcoxi, acilo,
acilamino, carboxi, ciano, halo, hidroxi, nitro, trifluorometilo y
amino.
11. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 5 a 10, en la que al menos alguno
de R^{3}, R^{4} y R^{5} están sustituidos con grupos
seleccionados entre sulfhidrilo, sulfhidrilo activado y
-S-S-R^{6}, en la que R^{6}
representa alquilo opcionalmente sustituido con uno o más
sustituyentes seleccionados entre alquilo, alcoxi, acilo,
acilamino, carboxi, ciano, halo, hidroxi, nitro, trifluorometilo y
amino.
12. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 5 a 11, en la que en la Fórmula
I, n es entre 20 y 100.
13. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 5 a 12, en la que el peso
molecular del polímero de PAA está entre 1500 Da y 120.000 Da.
14. Un procedimiento para preparar un polímero
de poliamidoamina (PAA) que comprende un resto colgante disulfuro,
sulfhidrilo, o sulfhidrilo activado, comprendiendo el procedimiento
hacer reaccionar un compuesto de bisacriloílo con una amina
primaria y/o una di-amina secundaria, una o ambas de
las cuales contiene un grupo disulfuro.
15. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 14, en el que el compuesto de bisacriloílo usado el
procedimiento tiene la fórmula II:
(Fórmula
II)-CH_{2}=CH-CO-NR^{1}-L^{2}-NR^{2}-CO-CH=CH_{2}
en la que R^{1}, R^{2}, y
L^{2} son como se han definido respecto a la Fórmula
I.
\vskip1.000000\baselineskip
16. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 15, en el que R^{1} y R^{2} son hidrógeno.
17. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 15 o la reivindicación 16, en el que L^{2} es un
grupo CH_{2}.
18. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 17, en el que el compuesto
de bisacriloílo es bisacrilamida de metileno (MBA).
19. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 18, en el que cuando se usa
una amina primaria que contiene un disulfuro, la amina primaria que
contiene un grupo disulfuro tiene la fórmula III:
(Fórmula
III)NH_{2}-R^{3}
en la que R^{3} es como se ha
definido en la Fórmula
I.
\vskip1.000000\baselineskip
20. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 19, en el que R^{3} representa un grupo alquilo
sustituido con -S-S-R^{6}, en la
que R^{6} es como en la reivindicación 11.
21. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 20, en el que la amina
primaria que contiene un grupo de disulfuro es cistamina, que puede
estar no protegida.
22. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 20, en el que la amina
primaria es cistamina, uno de cuyos grupos amina lleva un grupo
protector.
23. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de la reivindicaciones 14 a 22, en el que cuando se usa
una di-amina secundaria que contiene un disulfuro,
la di-amina secundaria tiene la Fórmula IV:
(Fórmula
IV)H-NR^{4}-L^{4}-NR^{5}-H
en la que R^{4}, R^{5} y
L^{4} son como se han definido respecto a la Fórmula
I.
\vskip1.000000\baselineskip
24. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 23, en el que R^{4} o R^{5} representan un grupo
alquilo sustituido con -S-S-R^{6},
en la que R^{6} y es como se ha definido en la reivindicación
11.
25. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 24, en el que el
procedimiento implica el uso de moléculas de amina que no contienen
ningún grupo disulfuro.
26. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 25, en el que la
di-amina secundaria tiene la Fórmula V:
(Fórmula
V)CH_{3}-NH-CH_{2}-CH_{2}-NH-CH_{3}
\vskip1.000000\baselineskip
27. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 26, en el que la
di-amina secundaria es dimetiletilendiamina
(DMEDA), como se muestra en los Esquemas 1 y 4, o
2-metil-piperazina, como se muestra
en los Esquemas 2 y 3.
28. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 14 a 27, comprendiendo el
procedimiento hacer reaccionar un compuesto de bisacriloílo de
Fórmula II, con una amina primaria que contiene un grupo de
disulfuro de Fórmula III, con una di-amina
secundaria de Fórmula V.
29. Un hidrogel que comprende una pluralidad de
cadenas de polímero de poliamidoamina (PAA) que están reticuladas
mediante grupos de unión que contienen enlaces disulfuro
reducibles.
30. Un hidrogel de acuerdo con la reivindicación
29 que comprende la composición de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 13 o que se prepara usando el procedimiento
de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 14 a 28.
31. Un hidrogel de acuerdo con cualquiera de la
reivindicación 29 o la reivindicación 30, en el que el hidrogel
reticulado es reducible, en el que las reticulaciones entre las
cadenas de polímero de PAA se rompen cuando se reduce el
hidrogel.
32. Un hidrogel de acuerdo con la reivindicación
31, en el que el hidrogel de PAA reticulado es reducible después de
entrar en contacto con un agente reductor, por ejemplo, ditiotreitol
(DTT), metabisulfito sódico o glutatión.
33. Un procedimiento para preparar un hidrogel
que comprende una pluralidad de cadenas de polímero de
poliamidoamina (PAA) que están reticuladas mediante grupos de unión
que contienen enlaces disulfuro reducibles, comprendiendo el
procedimiento: (i) hacer reaccionar un compuesto de bisacriloílo con
una amina primaria y/o una di-amina secundaria, una
o ambas de las cuales contiene un grupo disulfuro, para formar
cadenas de polímero de PAA y (ii) permitir que se formen enlaces
disulfuro reducibles entre las cadenas de polímero de PAA.
34. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, o un hidrogel de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 29 a 32, comprendiendo la
composición o hidrogel un co-polímero de
poliamidoamina (PAA) que comprende un resto colgante disulfuro,
sulfhidrilo, o sulfhidrilo activado y PEG.
35. Un procedimiento para preparar una
composición que comprende un co-polímero de
polietilenglicol (PEG) y poliamidoamina (PAA), que comprende un
resto colgante disulfuro, sulfhidrilo, o sulfhidrilo activado, que
puede estar reticulado o no, comprendiendo el procedimiento poner en
contacto monómeros de poliamidoamina (PAA) que comprenden un resto
colgante disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado con PEG
terminado en amina; y permitir que se forme el
co-polímero correspondiente.
36. Una composición de suministro para
suministrar una molécula con carga útil, comprendiendo la
composición de suministro una molécula con carga útil combinada con
la composición de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 14, o un hidrogel de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 29 a 32.
37. Un procedimiento para preparar la
composición de suministro de acuerdo con la reivindicación 36,
comprendiendo el procedimiento poner en contacto una molécula con
carga útil con la composición de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 14 o un hidrogel de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 29 a 32 y exponer la mezcla a condiciones
tales que la molécula con carga útil se combina con la composición o
hidrogel, formando de esta manera una composición de suministro con
carga útil de acuerdo con la reivindicación 36.
38. Una partícula de soporte adaptada durante su
uso para llevar una molécula con carga útil a un sitio diana,
comprendiendo la partícula de soporte la composición de acuerdo con
la reivindicación 36, en la que la molécula con carga útil es capaz
de ser activa cuando la partícula es al menos adyacente al sitio
diana.
39. Una partícula de soporte de acuerdo con la
reivindicación 38, en la que la molécula con carga útil comprende
un compuesto o biomolécula biológicamente activo.
40. Una partícula de soporte de acuerdo con la
reivindicación 38 o la reivindicación 39, en la que la molécula con
carga útil comprende una célula entera, parte de una célula, un
virus, fago, un microorganismo, un orgánulo, una partícula de
virus, etc., un aminoácido, péptido, proteína, enzima, anticuerpo o
un polisacárido.
41. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 40, en la que la molécula
con carga útil comprende un ácido nucleico o un derivado del
mismo.
42. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 41, en la que la molécula
con carga útil comprende ADN o ADNc o ARN (por ejemplo, ARNm, ARNsi
o ARNt).
43. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 42, en la que la partícula
de soporte está en un intervalo de tamaño de 10 nm a 500 nm.
44. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 43, en la que la partícula
de soporte comprende poliamidoamina (PAA) PEGilada y no
PEGilada.
45. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 44, en la que la composición
basada en PAA comprende un co-polímero de
PEG-PAA-PEG o
PEG-PAA, y un homopolímero de PAA, conteniendo ambos
grupos sulfhidrilo colgantes.
46. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 45, en la que la proporción
de PEG:PAA total es entre 1:4 y 1:17, preferentemente entre las
proporciones de 1:9 a 1:12.
47. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 46, en la que la proporción
de PAA:ácido nucleico (AN) es entre 0,5:1 y 2,0:1, preferentemente
entre 1:1 y 1,5:1.
48. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 47, en la que el número de
restos colgantes disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado del
componente PEG-PAA es como mínimo seis,
preferentemente ocho, y en la que la cantidad de restos colgantes
disulfuro, sulfhidrilo o sulfhidrilo activado en el componente PAA
es entre 0,5 y 2 veces la del componente PEG-PAA,
preferentemente entre 1 y 1,5 veces la del componente
PEG-PAA.
49. Una partícula de soporte de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 38 a 48, preparándose la
partícula de soporte haciendo reaccionar PAA PEGilada con PAA no
PEGilada, seguido de contacto de la composición resultante con
ácido nucleico.
50. Un sistema de seguimiento de fluido para
seguir el flujo de fluido, comprendiendo el sistema una partícula
de soporte de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 38
a 49, y un medio de detección para detectar la molécula con carga
útil.
51. Un procedimiento de seguimiento de fluido,
comprendiendo el procedimiento las etapas de:
(i) aplicar una partícula de soporte de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 38 a 49 que comprende
una molécula con carga útil detectable a un fluido, en una primera
localización; y
(ii) detectar la molécula con carga útil en una
segunda localización del fluido.
\vskip1.000000\baselineskip
52. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 51, comprendiendo el procedimiento una etapa de
aislar la partícula del fluido en la segunda localización antes de
la detección de la molécula con carga útil con el medio de
detección.
53. Un procedimiento de acuerdo con cualquiera
de la reivindicación 51 o la reivindicación 52, en el que el
procedimiento comprende una etapa de aislar la molécula con carga
útil de la partícula de soporte antes de la detección.
54. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 53, en el que la etapa de aislamiento comprende
reducir la partícula de soporte para liberar la molécula con carga
útil antes de la detección.
55. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 51 a 54, en el que la molécula
con carga útil comprende ácido nucleico, tal como ADN, que puede
detectarse usando un medio de detección adecuado, por ejemplo,
PCR.
56. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 51 a 55, en el que la molécula
con carga útil comprende un oligonucleótido monocatenario.
57. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 51 a 56, en el que la molécula
con carga útil comprende un compuesto de soporte, que puede ser ADN
de soporte.
58. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 57, en el que el ADN de soporte se degrada para dar
una preparación principalmente de moléculas de ADN monocatenario de
secuencia mixta con aproximadamente el mismo tamaño que el ácido
nucleico de detección.
59. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14 o de las reivindicaciones
34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 29 a 32, o una partícula de soporte de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 38 a 49, para su uso como un
medicamento.
60. Una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, o de las reivindicaciones
34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 29 a 32, o una partícula de soporte de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 38 a 49, para su uso en el
tratamiento de una afección médica caracterizada por pérdida
o lesión tisular.
61. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 60, en la que la afección caracterizada por
pérdida o lesión tisular incluye el tratamiento de heridas y daños
relacionados, trastornos degenerativos tisulares y pérdida de la
función tisular.
62. Una composición de acuerdo con la
reivindicación 61, en la que los trastornos degenerativos tisulares
que pueden tratarse incluyen trastornos neurodegenerativos del disco
intervertebral, degeneración de cartílago o hueso tal como
osteoartritis, osteoporosis, trastornos degenerativos del hígado,
trastornos degenerativos del riñón, atrofia muscular, lesión o
pérdida de nervios.
63. Uso de una composición de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, o de las reivindicaciones
34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 29 a 32, o una partícula de soporte de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 38 a 49 para la fabricación
de un medicamento para el tratamiento de una afección médica
caracterizada por pérdida o lesión tisular.
64. Un medio de soporte celular que comprende la
composición de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1
a 14, o de las reivindicaciones 34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 29 a 32, y al menos una
célula.
65. Un procedimiento para preparar un medio de
soporte celular de acuerdo con la reivindicación 63, comprendiendo
el procedimiento las etapas de:
(i) poner en contacto la composición de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, o de las
reivindicaciones 34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 29 a 32 con al menos una célula;
y
(ii) exponer el hidrogel o composición a
condiciones tales que la al menos una célula esté soportada sobre
el mismo o en su interior, formando de esta manera un medio de
soporte celular.
\vskip1.000000\baselineskip
66. Una composición farmacéutica que comprende
una cantidad terapéuticamente eficaz de una composición de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 14, o de las
reivindicaciones 34 ó 36, o un hidrogel de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 29 a 32, o una partícula de
soporte de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 38 a
49; y un excipiente farmacéuticamente aceptable.
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