EP2167968A1 - Methode de diagnostic serologique multiplexe in vitro des infections a spirochetes - Google Patents

Methode de diagnostic serologique multiplexe in vitro des infections a spirochetes

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Publication number
EP2167968A1
EP2167968A1 EP08761418A EP08761418A EP2167968A1 EP 2167968 A1 EP2167968 A1 EP 2167968A1 EP 08761418 A EP08761418 A EP 08761418A EP 08761418 A EP08761418 A EP 08761418A EP 2167968 A1 EP2167968 A1 EP 2167968A1
Authority
EP
European Patent Office
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bacteria
antigen
bacterium
species
borreha
Prior art date
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Withdrawn
Application number
EP08761418A
Other languages
German (de)
English (en)
Inventor
Michel Drancourt
Didier Raoult
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Inodiag SA
Original Assignee
Inodiag SA
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Filing date
Publication date
Application filed by Inodiag SA filed Critical Inodiag SA
Publication of EP2167968A1 publication Critical patent/EP2167968A1/fr
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911—Bacteria
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/20—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to a method for the serological diagnosis in vitro of an infection with a pathogenic spirochaete bacterium in humans, selected from bacteria of the genus Borrelta, and Treponema, by indirect immunodetection.
  • the present invention relates to a method for serologically diagnosing infections of the following bacteria in vitro: • Treponema palltdum, agent of syphilis; Leptospira interrogans, leptospirosis agent; Borrelta burgdorfert, agent of Lyme disease; Borrelta recurrentis, recurrent louse fever agent; Borrelta spp., Relapsing fever agents with ticks other than Borreha burgdorfe ⁇ , such as Borreha duttonn or Borreha crocidurae.
  • borreliosis there are 5 bacteria responsible for diseases prevalent in humans, namely 3 types of bacteria and diseases: - Borreha burgdorferi which is prevalent in the US and Europe, responsible for Lyme disease,
  • Leptospirosis is a disease related to bacteria Leptospira tnterrogans.
  • Leptospira bijlexa bacteria are not pathogenic in humans, but are nonetheless used as a reference antigen to detect the disease because Leptosptra biflexa induces antibodies in humans with cross reactions in serum of patients infected with L. interrogans [ Levett, PN, Leptospira and Leptonema. In: Manual of Climal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003, pp. 929-936]
  • Treponema pathogenic spirochaete bacteria
  • uveitis infections of the interior of the eye
  • other types of bacteria non-spirochetes
  • Treponema palhdum is pathogenic in humans. Direct diagnosis of these diseases is not easy. In fact, they are fastidious bacteria whose isolation and culture from clinical specimens are long (several weeks) and of low profitability [Levett, PN, Leptospira and Leptonema. In: Manual of Climal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds).
  • the serology of spirochete infections consists in finding in a serum sample of the patient, the presence of antibodies directed against one of the species of spirochetes.
  • these bacteria have cross-reactions with Borrelia burgdorfert, which means that when a patient is infected with one of these bacteria, it may have nonspecific antibodies reacting against the bacterium Borrelia burgdorferi (see Table 1 at the end of description).
  • Borrelia burgdorfert which means that when a patient is infected with one of these bacteria, it may have nonspecific antibodies reacting against the bacterium Borrelia burgdorferi (see Table 1 at the end of description).
  • Table 1 at the end of description
  • the object of the present invention is to provide a method of serological diagnosis in vitro by indirect immunodetection useful in the case of patients suspected of being infected with any pathogenic bacteria spirochaete of the genera Borreha spp., Leptospira spp., And Treponema palhdum allowing to provide as much information as possible about the presence of an infection with a spirochete bacterium in general and more precisely in relation to the main spirochaete bacteria responsible for the most common diseases in humans mentioned above.
  • Another object of the present invention is to provide a diagnostic method which makes it possible to determine whether the antibody of the serum having reacted with the bacterial antigen of the bacterium tested is actually an antibody specific for said bacterium or that of a bacterium. other spirochete bacteria or other.
  • Another object of the present invention is to provide a diagnostic method that is reliable, simple and quick to implement.
  • a tick-borne Borrelta bacterium other than Borrelta burgdorfen, in particular Borreha dutto ⁇ ii or Borreha crocidurae, deposited on a solid support and immunoglobulins of IgG and IgM type patients against said Borreha tick species, in particular Borreha duttontt or Borreha croctdurae, and
  • the inventors have furthermore demonstrated the existence of cross-reactions in pairs between the bacteria, Borreha burgdorfen, Borreha recurrentis, and Borreha ticks other than Borreha burgdorfen such as Borreha duttonti or Borreha croctdurae, as well as Leptosptra biflexa bacteria.
  • Serovar Patoc non-pathogenic leptospira
  • serovar serovar Icterohaemorrhagiae pathogenic leptospira
  • Treponema bacteria see Table 2 at the end of the description
  • the present invention provides a method of testing in a single series of multiplexed serological reactions, according to the described method.
  • WO 2005/064340 in the name of the Applicant, namely on the same solid support, on the same serum sample, a plurality of spirochete bacteria representative of all the spirochete bacteria in parallel, to interpret the results in term specificity of serological reaction by comparison of the level of the signal obtained for each of the spirochetes, determined during this multiplexed serology.
  • the present invention provides a method for serological diagnosis in vitro of an infection with a pathogenic spirochaete bacterium in humans, selected from bacteria of the genus Borreha,
  • a first detection substance and / or second detection substance constituted by an antibody reacting only with an immunoglobulin of the patient type IgG and / or IgM type, respectively, and
  • Borreha of different species comprising at least the bacteria Borreha burgdorfert, Borreha recurrentis and a species of Borreha tick other than Borreha burgdorfert, selected from Borreha duttonn and Borreha croadurae, said bacterial antigens being constituted respectively by at least fractions of bacteria of said species, each said fraction of said bacterium comprising at least one specific antigen and one non-specific antigen of said bacterial species, preferably whole bacteria, and
  • bacterial antigens of bacteria of genreL 'different species eptosptra comprising at least one species a non-pathogenic commensal in humans and a pathogenic bacterium of Leptosptra interrogans species, said bacterial antigens being respectively constituted by at least fractions of bacteria of said species, each said fraction of said bacterium comprising at least one specific antigen and one non specific to said bacterium, preferably whole bacteria, and
  • At least one bacterial antigen of the Treponema bacterium preferably a specific Treponema bacterial antigen
  • commensal bacterium is meant here a bacterium of a species of spirochete normally present in contact with human mucosa, including cultured species of spirochetes and species not yet cultivated but characterized by molecular analyzes such as those targeting sequence of the universal gene 16S rRNA. Such species have been particularly characterized in the oral cavity of man and its digestive flora.
  • the quantification of the serological reactions is done by measuring the signal emitted by the marking elements incorporated in said detection substances, after they have reacted with the solid support, as will be explained below.
  • the plurality of said bacteria consist •
  • At least one assay of IgM antibodies against Borreha head lice, Borreha recurrentts is provided.
  • the bacterial antigen of Treponema palhdum is the p17 antigen, and preferably said solid support also comprises an additional area on which the cardiolipid is deposited.
  • the pl 7 antigen reveals that the patient has actually been in contact with Treponema palhdum, the agent of syphilis, while the presence of anti-cardiolipin antibody is a specific marker of Treponema palhdum infection activity indicating active syphilis.
  • the present invention thus provides a method involving multiplexed serological reactions including a plurality of human spirochetes, for detecting antibodies specific to each of the spirochetes tested, but also common antibodies with no diagnostic value.
  • a plurality of at least six so-called bacterial antigens of spirochete bacteria make it possible to validly reflect all the cross-reactions that may occur between the various bacteria of the genera Borrelia, Leptospira and Treponema, and
  • the comparison of the signal levels of the reactions of the detection substances with the IgGs and / or IgMs of the patients reacted with said particular bacterial antigens deposited on the solid support illustrating the most repetitive diseases. makes it possible to conclude as to the specificity of these reactions.
  • the signal accumulates with that related to the binding of non-specific antibodies and the signal is more intense than in the case of cross-reactions involving only non-specific antigens.
  • the diagnostic method according to the invention makes it possible to determine:
  • Lepfospira or Treponema palhdum, if no signal is observed with all said bacterial antigens of bacteria of the genus Borreha, Leptospira and Treponema
  • the presence of an active Treponema palhdum bacterium is determined if reaction signals are observed with said Treponema bacterial antigen and with cardiolipin, said signals being preferably more intense than cross-reactive signals with other so-called bacterial antigens, and the absence of active Treponema palhdum bacteria is determined if no reaction signal is obtained with cardiolipin.
  • Detection signal intensity thresholds are determined for each of said bacterial antigens as deposited on said solid support, comprising:
  • the signal is of intensity between those of said threshold of specificity and threshold of sensitivity, it is considered as being able to include a reaction with a said non-specific antigen, and not including a reaction with a said specific antigen, and
  • step 1 - the two thresholds of specificity and sensitivity can be confused, so that in step 2-, we can not determine a signal of intermediate intensity between the sensitivity threshold and the specificity threshold, and the presence of a specific bacterium shall be determined in accordance with the wording of paragraphs (c), (d) and (e) of step 2- above.
  • the present invention allows for the first time to test both:
  • B. duttontt transmitted by ticks, or B. croctdurae more frequent in West Africa [Vial L, Diatta G, TaIl A, B a el H, B ouganali H, Durand P, Sokhna C, Rogier C, Renaud F, Trap JF Incidence of tick-bound relap smg fever West Africa: longitudinal s tudy. Lancet. 2006; 368: 37-43], the inventors having demonstrated cross-reactions between B. duttonii and B. croadurae,
  • Serovar serovar Icterohaemorrhagiae and Leptospira btflexa serovar Patoc which have representative species of the two major groups of pathogenic and non-pathogenic Lep tospira.
  • the present invention p Enables a quick with your t f or quantification one dilution, especially for a dilution in the ERUM s / January 6 th.
  • said first and / or second detection substances comprise said first and / or respectively second marking elements emitting signals that can be distinguished.
  • said first and / or second detection substances are goat or chicken immunoglobulins, respectively anti-IgG and / or anti-IgM.
  • said detecting substances comprise a fluorescent marking.
  • fluorescent labeling means that the detection substance, in particular the secondary detection antibody, has been made fluorescent by coupling or complexing with a suitable fluorescent substance such as fluorescein iso (thio) cyanate, namely a substance emitting detectable radiation after its illumination, each said fluorescent substance being characterized by the wavelength at which it is to be illuminated (excitation wavelength) and the wavelength of the radiation it emits (length d emission wave).
  • a suitable fluorescent substance such as fluorescein iso (thio) cyanate
  • Fluorescent labeling substances that may be mentioned include fluorescein, coumarin, cyanine and the analogs and derivatives of these substances known to those skilled in the art.
  • the fluorescence associated with the test sample is read directly on a suitable apparatus capable of detecting the radiation at the emission wavelength and quantifying it.
  • the quantification is carried out by comparison of the fluorescent signal emitted by the reaction complex [antigen specific antibody-detection substance] of the serum tested with a reference curve obtained by cahbration using control sera containing a known concentration of antibodies to be detected
  • Fluorescent labeling is particularly advantageous in the case of determination of the specificity of a reaction insofar as it is essential to obtain an accurate and reliable quantification at the concentration of said specific antibodies, which can be obtained through the signals.
  • fluorescents whose intensity is directly proportional to the amount of fluorescent molecules emitting the signal.
  • said first and / or second detection substances comprise said first and / or respectively second labeling elements emitting fluorescent signals at different excitation wavelengths that can be quantified by automated reading of the fluorescent signal intensity. emitted by said fluorescent marker element by means of a suitable reading apparatus capable of quantifying it.
  • antigens consisting of whole bacteria or fractions or fragments of bacteria comprising one or more antigens. It is indeed possible to mechanically break up the bacterium by mechanical agitation or by sonication for example or to fragment the bacterium by an enzymatic process to obtain a fraction retaining the antigens that support the serological reaction object of the present invention.
  • the fractions thus obtained are separated or further purified from the other components of the microbe and its culture medium by a suitable method, for example by centrifugation or by filtration. This is called “antigen fraction” or "purified antigen”.
  • the entire bacterium or any bacterial fraction is hereinafter referred to as "particulate or corpuscular antigen" in that the bacterium or a fraction thereof can not be dissolvable but only suspended in a suitable fluid.
  • the bacteria or their fraction remain visible as that individualizable particles by microscopic observation using an optical microscope or an electron microscope, for example
  • the present invention makes it possible to directly measure the concentration of specific antibodies which, in the immunofluorescence serological reference method, is expressed in inverse of the highest dilution giving a positive signal. Indeed, there is a linearity between the amount of fluorescence and the concentration of antibodies in the concentration range of the specific antibodies measured during spirochaete infections. It is therefore possible to calibrate, from sera with a titre known by the reference method, the apparatus for detecting positive sera from negative sera.
  • the threshold of positivity by the reference method being 1/128, a 1/16 dilution of the serum can be used. This dilution is advantageous since it corresponds to the dilution generally used on this type of fluorescence reading apparatus.
  • the antigen is deposited, if appropriate, on a solid support of the glass slide type, or titration microplate to implement detection techniques by immunodetection, in particular immunofluorescence, or by technique. enzymatic, in particular of the ELISA type.
  • detection techniques are well known to those skilled in the art, and include the successive steps of:
  • a secondary detection antibody which is an animal immunoglobulin directed against the immunoglobulins of the species of the patient in question, for example in the case of a human patient a goat immunoglobulin anti-human immunoglobulin conjugated to a fluorochrome substance , generally fluorescein iso-thiocyanate or an enzyme, generally a peroxidase and incubation under conditions of temperature, temperature, hygrometry, mechanical agitation and ionic strength of the medium allowing the antigen reaction - anticorp s,
  • a fluorochrome substance generally fluorescein iso-thiocyanate or an enzyme, generally a peroxidase and incubation under conditions of temperature, temperature, hygrometry, mechanical agitation and ionic strength of the medium allowing the antigen reaction - anticorp s
  • the present invention relates more particularly to detection and assay methods in which the presence is detected and, preferably, the amount of class M (IgM) and G (IgG) immunoglobulins reacting with a bacterial antigen is assayed.
  • IgM class M
  • IgG G immunoglobulins reacting with a bacterial antigen
  • the specificity of the infectious antigen / se ⁇ que antibody reaction conditions the specificity and the positive predictive value of the serological test based on this reaction and any non-specific antibody binding to the bacterial antigen limits the specificity and the predictive value of the serological test. .
  • the presence in the test serum of rheumatoid factors or anti-nuclear antibodies is a source of non-specific binding of antibodies to the microbial antigen as explained hereinafter.
  • rheumatoid factors are immunoglobulins of class M recognizing the Fc fragment of IgGs of different species including human IgG (IgG anti IgG).
  • rheumatoid factors in the serum of a patient is responsible for false-positive results in the detection of IgM specific for a microbial antigen during serological tests for the indirect diagnosis of infectious diseases Indeed, these rheumatoid factors are bind to the specific IgGs of the microbial antigen contained in the patient's serum, and thus appear to be unfavorably positive when detecting specific IgMs in the serological reaction using the microbial antigen in agglutination detection assays.
  • Anti-nuclear antibodies are indeed IgG antibodies directed nonspecifically against the set formed by DNA and nuclear proteins of the chromosome of eukaryotic cells and microbes, called histones. These anti-nuclear antibodies therefore bind nonspecifically on any eukaryotic cell including fungi and parasites and on any microbe, bacterium, DNA virus, parasite or fungus.
  • This phenomenon leads to a non-specific positive reaction during serological tests using the detection of IgG specific for a bacterium, a DNA virus, a fungus or a whole parasite or comprising DNA / histone complexes as antigen.
  • microbial using anti-IgG antibodies in a serum containing anti-nuclear antibodies is a non-specific positive reaction during serological tests using the detection of IgG specific for a bacterium, a DNA virus, a fungus or a whole parasite or comprising DNA / histone complexes as antigen.
  • the sample comprises rheumatoid factors (anti IgG IgM), these can react with the immunoglobulins (IgG 1 ) fixed on the solid support, to form the following complex with said first detection substance (Ac 1 anti IgM * 1 ): (S-IgG 1 -IgM anti IgG - Ac 1 anti
  • a second control antigen comprising DNA / histone complexes, preferably all or part of nucleated cells comprising nuclei of nucleated cells, more preferably cells in a continuous line, and
  • a third control antigen corresponding to a non-specific IgM immunoglobulin of the patient's species if necessary, a third control antigen corresponding to a non-specific IgM immunoglobulin of the patient's species; the presence of said third control antigen being necessary in case of IgM assay, and
  • a fourth control antigen containing protein A of a Staphjlococcus ⁇ aureus bacterium preferably said fourth antigen being a whole Staphjlococcus bacterium
  • At least one prior check is performed, preferably the following series of checks, comprising: a- the control of the reactivity of said first detection substance by checking whether said first control antigen reacts with said first detection substance in the case of IgG assay, and if necessary the control of the presence of rheumatoid factors in said serum sample by checking whether the first control antigen reacts with said serum sample and said second detection substance, in case of IgM assay,
  • said second control antigen does not react
  • said first control antigen consists of an IgG of the particular human patient's species
  • this makes it possible to check the presence and the reactivity of a said first detection substance which specifically recognizes IgGs. serum of the patient's species.
  • non-confluent human fibroblast cells in suspension, in particular HL60 cells.
  • the sample to be tested comprises anti-nuclear antibodies (which are IgG, especially human), they can react with said second control antigen (Ag 2 ) and be detected by said first detection substance (Ac 2 anti IgG *) since this is a substance reacting with IgG of the patient's species, especially human, and forming the complex (S-Ag 2 -IgG anti-Nucl-Ac 2 anti IgG * 2 ) Detection of a reaction between said first detection substance and said second solid-supported control antigen (Ag 2 ) necessarily signifies that a complex is formed with antinuclear antibodies (Ab anti-nucl) according to: (S-Ag 2 -IgG Anti-Nucl IgG Anti IgG-Ac 1 anti IgM * 1 ), and therefore the sample includes both rheumatoid factor and anti-nuclear antibodies.
  • the detection of a reaction of said second labeling substance with said microbial antigen is evidence of the presence of IgG specific for said bacterial antigen and for the formation of a complex (S-Agmic IgG antiAgmic-Ac 2 anti IgG * 2 ) and not a false positive complex resulting from the reaction of anti-nuclear antibodies with the microbial antigen according to the complex (S-Agmic-Ab anti nucl 2- anti-IgG * 2 ).
  • the reactivity of said first detection substance introduced into said test serum sample in the absence of rheumatoid factor and anti-nuclear antibodies in said sample is also verified. Indeed, if said first detection substance is reactive in the absence of rheumatoid factor, the following complex (S-IgG 1 -Ac 2 anti IgG * 2 ) must be detected on said first control antigen (IgG 1 ). In this case, the absence of reaction of said first detection substance with said second antigen is evidence of the absence of antinuclear antibodies.
  • an IgM 1 -Ac 1 anti-IgM * 1 complex must be detected on said third control antigen (IgM 1 ). Therefore, the absence of detection of a complex comprising said second marker at said first control antigen (IgG 1 ) and, where appropriate, at said second control antigen fixed on solid support, is evidence of the absence of rheumatoid factor.
  • the present invention thus allows systematic detections of rheumatoid factors, anti-nuclear antibodies, and systematic control of the reactivity of anti-immunoglobulin detection antibodies in a serum used for serological diagnosis by indirect immunofluorescence, after robotic deposition on solid support of immunoglobulins of the patient's species, including human, class G and M and nucleated cells of the patient's species.
  • protein A reacts with animal and human immunoglobulins in a non-specific manner, even in the case of a major infectious pathology, it is possible to use this protein A as a positive control of the introduction of a serum of the patient's species, in particular human, into the sample to be tested.
  • said tested sample does indeed contain a serum of the patient's species by detecting whether immunoglobulins of the patient's species react with a fourth control antigen containing the protein A of a patient.
  • Staphylococcus aureus bacterium preferably said fourth antigen being a whole Staphylococcus bacterium, by contacting said sample with a solid support to which is attached a said fourth control antigen, in the presence of said second detection substance which is a reactive substance with an immunoglobulin of the patient's species and not reacting with said fourth control antigen, preferably an anti-immunoglobulin antibody of the patient's species and not reacting with said fourth control antigen, the control of the presence of a serum is positive if said fourth antigen reacts with said sample serum and said first detection substance.
  • said fourth control antigen is a whole Staphylococcus aureus bacterium comprising the protein A.
  • Staphylococcus aureus bacteria deposited in the public collections such as the bacteria deposited in the A. can be used more particularly.
  • TCC under No. 29213 and at the CNCM of the Institut Pasteur (France) under the number 65.8T as described in the publication mentioned above [Rolain JM, Lecam C, Raoult D Simplified serological diagnosis of endocarditis due to Coxiella burnetn and Bartonella. CIm. Diag. Lab. Immunol. 2003; 10: 1,147-8].
  • any bacterial strain identified as Staphylococcus aureus can be used as said fourth control antigen.
  • a single solid support placed in contact with, where appropriate, simultaneously or successively, said first and second detection substances comprising a first and a second a second marking element, the second marking element emitting a different signal from the first marking element, preferably said first and second detection substances comprising a first and a second antibodies reacting only with said immunoglobulism of the second class G and class M patient species.
  • control succession protocol is therefore implemented:
  • said first control antigen reacts with said first detection substance
  • said second control antigen does not react
  • said third control antigen reacts with said second detection substance.
  • an assay is carried out in which:
  • these anti-IgG (anti IgM) immunoglobulins are preferably human, preferably labeled, and bind to said solid support.
  • IgG (IgM) antibodies Ac
  • Ag corresponding bacterial antigen
  • the following bacteria are deposited on said solid support:
  • enzyme labeling means that the specific antibody is coupled or complexed to an enzyme which, when associated with the use of appropriate reagents, allows a quantitative measurement of that specific antibody.
  • the substrate and the reagents are chosen so that the final product of the reaction or of the reaction sequence caused by the enzyme and employing these substances, is:
  • test sample or a colored or fluorescent substance which diffuses into the surrounding liquid medium the test sample and which is the subject of either the final spectrophotometric or fluorimetric measurement, respectively, or of an evaluation by the eye; possibly with respect to a range of calibrated colors,
  • an insoluble colored substance which is deposited on the tested sample and which may be subject either to a photometric reflection measurement or to an eye evaluation, possibly in relation to a range of hues; calibrated.
  • the fluorescence associated with the test sample is read directly on a suitable apparatus capable of detecting the radiation at the emission wavelength and quantifying it.
  • fluorescent labeling means that the antibody has been made fluorescent by coupling or complexing with a suitable fluorescent agent such as fluorescein iso-thiocyanate.
  • the appearance of a colored or fluorescent product is obtained by adding a solution containing the substrate of the enzyme and one or more auxiliary reagents finally obtaining as a product of reaction, either a colored product soluble in the medium, either an insoluble colored product or a soluble fluorescent product, as explained above.
  • the light signal coming from the samples thus treated is then measured using the apparatus adapted to each case: photometer in transmission, or in reflection or fluorimeter respectively.
  • the coloration obtained can also be evaluated by eye, possibly with the aid of a range of calibrated colored solutions.
  • alkaline phosphatase As the enzyme, the coupling of this enzyme with the specific antibody is carried out according to the method proposed by Boehringer Mannheim-Biochemica.
  • the preferred substrates for this enzyme are paranitrophenylphosphate for a fluorometric reading or 5-bromo-4-chloroindolyl-6-phosphate to obtain an insoluble color reaction product. It is also possible to use ⁇ -D-galactropyranoside or 4-methylumbelliferyl ⁇ -D-galactropyranoside as enzyme.
  • the antibodies specific for peroxidase can be coupled.
  • the coupling method is derived from that described by B. Wilson and P. K. Nakane, Immunofluorescence and related stainmg techniques, W. Knapp, K. Kolubar, G. Wicks ed. Elsevier / North
  • the reagents used to reveal the peroxidase conjugated to specific antibodies contain hydrogen peroxide, enzyme substrate, and a suitable chromogen for example orthophenylenediamine or azmo-2-2 bis (ethyl-3) acid.
  • 6-sulphonyl thiazolme) or ABTS to obtain a final reaction product colored and soluble in the medium or the diammo 3,3'benzidme or the amino 3 ethyl 9 carbazole or the chloro 4 oc naphthol to obtain a final reaction product insoluble, or parahydroxyphenylpropiomic acid to obtain a fluorescent reaction product soluble in the medium.
  • Another embodiment of the invention is the use of immunoglobulin coupled to acetylcholmesterase
  • Acetylcholmesterase is coupled to the antibody, preferably using a process derived from that described in French Patent No. 2,550,799, or a process which schematically comprises the preparation of fragments of the antibody by a known technique, the modification of the enzyme by reaction with a suitable heterobifunctional agent and finally the coupling of the products thus obtained.
  • Other known methods of constructing immunoenzymatic conjugates can also be used in this case.
  • the revelation of the enzymatic activity specifically related to the antigen recognized by the acetylcholesthesase conjugate is preferably carried out according to the well-known technique which employs acetylthiocholine as substrate for the enzyme and Ellman's reagent, or acid 5-dithio-5'-metrobenzoic as chromogen, according to any variant adapted to the case examined, for example that described by Pradelles et al., in Anal. Chem. 1985; 57: 1,170-1,173.
  • the chromogens mentioned are used as such or in the form of soluble salts in water.
  • control antigens and bacterial corpusculars are deposited in admixture with a protein binder, stabilizing the binding on said solid support.
  • said protein binder is chosen from the complex organic mixture formed by egg yolk, gelatin, bovine serum albumin or non-human polyclonal IgG, preferably goat.
  • These protein binders function as a biological glue of said antigen on the solid support.
  • the present invention also provides a diagnostic kit useful for carrying out a method according to the invention comprising:
  • reagents such as a first and / or second detection substance and reagents useful for the detection of said first and / or second marking elements.
  • a solid glass or plastic slide, a titration tube or a well of a plastic microtiter plate is used as the solid support, and more particularly, as a solid support.
  • any device suitable for handling cell and bacterial suspensions and especially tubes, glass or polymer slides, "bij oux" tubes or rigid microtiter plates made of polyethylene, polystyrene or chloride may be used.
  • FIG. 1 represents the diagram of a spirochete multiplexed slide comprising seven spirochetal antigens and four control antigens;
  • FIG. 2 represents the reactions of a borreliosis serum between the three Borrelta antigens and the P17 serology of a slide of FIG. 1 for IgGs and
  • FIG. 3 represents the reaction of a serum of active syphilis for IgG with a slide of FIG.
  • the bacteria Borrelta burgdorfert, Leptosptra terrogans, Leptosptra btflexa serovar Patoc, Borrelta recurrentts, Borrelta duttontt, Borreha croadurae and the antigens p117 of Treponema palhdum and cardiolipid are publicly available from various sources.
  • Borreha croadurae are available in the collection of the National Reference Center (Institut Pasteur, Paris) and have been deposited in the Strains Collection of the Rickettsia Unit, recognized by the World Data Center for Microorgamsms (http: / / wdcm.mg.ac.)p) under the number WDCM 875, respectively under numbers CSURP-I, CSURP-2 and CSUR-3. Borrelta duttontt is used as a representative of tick-borne borreliosis, excluding Lyme disease.
  • Treponema palltdum recombinant antigen 7 is obtained from Fitzgerald (Fitzgerald, Conrad, MA, USA) under the reference number 30-AT68 and cardiolipid is obtained from Sigma-Aldrich (Saint-Quentin Falavier, France) under the reference number C 1649.
  • Borreha burgdorfen strain B31 ATCC 35210
  • Borreha recurrentis strain Al Borreha duttonn Ly strain were used as antigens for Borreha.
  • These antigens are obtained as follows: the bacteria are cultured in a BSK-H broth (reference BB291, Sigma-Aldrich, Saint-Quentin Falavier, France) at 33 ° C. and their density is assessed by microscopic observation in the state fresh .
  • Leptospira biflexa serovar Patoc ATCC 2374
  • Leptosptra interrogans serovar Icterohaemorrhagiae were used as antigens for leptospires. These bacteria are cultured in a leptospiral medium (reference 55954 F, Biorad, Marnes-la-Coquette, France) at 30 ° C. in the dark, and their density is appreciated by microscopic observation in the fresh state. .
  • the bacteria are appropriately concentrated (the concentration is measured by the protein concentration), made fluorescent by the addition of AMCA and added to a suitable biological glue and then deposited by a spotter on the solid support.
  • the concentration of cardiolipin and protein p is adjusted, and then these antigens are mixed in appropriate concentration with a biological glue previously rendered fluorescent by addition of AMCA.
  • the blade thus formed was fixed by a chemical process in order to improve the stability of the deposits on the blade, as described in WO 2005/064340.
  • dsDNA provided by the company Diarect (reference 12300).
  • Figure 1 shows the slide with the four control antigens and six bacterial and cardiolipin antigens mentioned above.
  • the technique used is that of the multiplexed indirect immunofluorescence.
  • the inventors have used materials and methods, in particular detection immunoglobulins with fluorescent markers, and an automated system developed by the company INODIAG as described on the website www.inodiag.com. com and in WO2005 / 064340 comprising an incubator, a fluorescence reader, and an interpretation software for incubation. Reading and interpretation from multiplexed spirochete slides.
  • FIG. 1 The diagram of a spirochete multiplexed slide is presented in FIG. 1.
  • This slide of FIG. 1 comprises, in addition to the seven spirochaetal antigens, the four control antigens making it possible to verify the contact of the slide with the patient's serum to test, check the quality of the anti-IgG and anti-IgM fluorescent conjugates used and detect the presence of anti-nuclear antibodies and rheumatoid factors in the patient's serum. These last two types of antibodies are known factors of false positive serological reaction.
  • each of the sera tested was diluted 1: 16 and then incubated in the presence of a spirochete multiplexed slide.
  • the measurement included the fluorescence measurement associated with a conjugated anti-human IgG antibody and the fluorescence measurement associated with a human anti-IgM antibody according to the methods previously described in WO 2005/064340.
  • a fluorescence threshold or cut-off giving a specificity of at least 95%
  • a cut-off or fluorescence threshold giving a sensitivity of at least 95% were determined using 10 sera. negative controls and 10 positive sera in a reference method. For some measurements, these two cut-offs are merged.
  • Fluorescence threshold values used in this work are 2.500- 3.500 fluorescence units for borreliae IgG and 2000 fluorescence units for borreliae IgM, 2000-2500 of fluorescence units
  • the inventors in order to develop the technique, have selected a certain number of sera from patients having presented an identified pathology.
  • the analysis therefore focused on 177 samples.
  • 56 are monospecific, that is, they have a response with a fluorescence signal above the threshold of specificity for the reaction with a bacterial antigen of the support, and 68 serum show only cross-reactions. to say reaction signals with intensities between the two thresholds of sensitivity and specificity.
  • - 6 are diagnosed as having syphilis, that is, they are monospecific positive for syphilis, and
  • - 1 is monospecific for Borrelta burgdorfen and - 17 present serologies crossed on the set of spirochetes making it possible to conclude to the presence of a Borreha or Lepfospira without determination of the genus or the species.
  • Figure 2 shows the reactions of one borreliosis serum between the three Borreha and the P17 serology for IgG. It is a "return of the tropics" serum titrated positively for Borreha burgdorferi by the reference method (ELISA 061 / threshold 0521). We find with the above technique, a strongly positive response in
  • Borreha recurrentis fluorescence value of 8330 for thresholds of 2500-3500
  • Borreha burgdorferi fluorescence value of 2619 for thresholds of 2500-3500
  • positive intermediate cross reactions
  • Figure 3 shows the reaction of a serum of active syphilis for IgG.
  • VDRL-TPPA positive serum This is a given VDRL-TPPA positive serum.
  • pl7 strongly positive (12.210 for a high threshold at 1500)
  • positive cardiolipin value 1.076 for a high threshold at 700.
  • This serum shows cross reactions with Borreha burgdorferi (3.022 for a high threshold at 3.500) and Borreha recurrentis (3.253 for a high threshold at 3.500).
  • Borreha burgdorferi 3.022 for a high threshold at 3.500
  • Borreha recurrentis 3.253 for a high threshold at 3.500.
  • the interpretation of this serology is therefore the presence of an evolutionary syphilis.
  • Table 2 Serological cross-reactions in indirect immunofluorescence observed by multiplexed serology of spirochetes.

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Abstract

La présente invention concerne une méthode de diagnostic sérologique in vitro d'une infection par une bactérie spirochète pathogène chez l'homme, choisie parmi les bactéries du genre Borrelia, Leptospira et Tréponème, caractérisée en ce que l'on réalise l'un au moins des dosages suivants : 1 /- un dosage des anticorpss de type 1gG et/ou 1gM contre au moins une bactérie Borrelia à tique, choisie parmi Borrelia duttonii et Borrelia crocidurae, et 2/- un dosage des anticorps de type 1gM contre la bactérie Borrelia à poux, Borrelia recurrentis.

Description

METHODE DE DIAGNOSTIC SEROLOGIQUE MULTIPLEXE IN VITRO DES INFECTIONS A SPIROCHETES
La présente invention concerne une méthode de diagnostic sérologique m vitro d'une infection par une bactérie spirochète pathogène chez l'homme, choisie parmi les bactéries du genre Borrelta, et Treponema, par immunodétection indirecte.
Plus particulièrement, la présente invention concerne une méthode de diagnostic sérologique m vitro des infections des bactéries suivantes • Treponema palltdum, agent de la syphilis; Leptospira interrogans, agent de leptospirose; Borrelta burgdorfert, agent de la maladie de Lyme; Borrelta recurrentis, agent de fièvre récurrente à poux; Borrelta spp., agents de fièvre récurrente à tiques autres que Borreha burgdorfeπ, telles que Borreha duttonn ou Borreha crocidurae.
Les bactéries suscitées sont à l'origine de nombreuses maladies qui peuvent se présenter sous la forme d'une fièvre isolée et sous forme de récurrences fébriles ou de manifestations chroniques . Ces maladies peuvent être contractées par contact avec de l'eau souillée (Leptosptra), par contact sexuel (Treponema) , par piqûre de tiques ou de poux (Borreha) . Chaque infection à spirochètes peut présenter des signes cliniques spécifiques, mais les infections a spirochètes sont es sentiellement des infections responsables de signes non spécifiques, sous forme de fièvre et altération de l'état général au cours des fièvres récurrentes et sous forme de manifestations neurologiques (névrites, méningites, encéphalites) ou ophtalmologiques (uvéites) au cours desquelles l'interrogatoire et l'examen clinique du patient ne suffisent pas à établir l'étiologie de l'infection. Le recours aux tests de laboratoire est alors indispensable [Raoult D, Hechemy
KE, Lecam C, Enea M, Tamalet J Crossed reactions in Lyme disease
Value of the Western blot. Press. Med. 1988 ;17:485] .
Parmi les borrélioses, on distingue 5 bactéries responsables de maladies répandues chez l'homme, à savoir 3 types de bactéries et maladies : - Borreha burgdorferi qui est prévalente aux USA et en Europe, responsable de la maladie de Lyme,
- les autres Borrelia à tiques que sont Borreha hermsn, Borreha duttonii, Borreha croctdurae, et Borreha valaisiana, responsables de borrélioses différentes de la maladie de Lyme prévalentes dans les pays tropicaux et notamment en Afrique, et
- une Borreha à poux, Borreha récurrentes, qui est prévalente dans les populations à risques dans les pays pauvres et froids et notamment pour les personnes vivant dans des conditions sanitaires insuffisantes.
La leptospirose est une maladie liée aux bactéries Leptospira tnterrogans. Les bactéries Leptospira bijlexa ne sont pas pathogènes chez l'homme, mais sont néanmoins utilisées comme antigène de référence pour détecter la maladie car Leptosptra biflexa induit des anticorps chez l'homme avec des réactions croisées dans des sérum de malades infectés par L. interrogans [Levett, P. N., Leptospira and Leptonema. In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds) . ASM Press, Washington DC, 2003, pp. 929-936]
Ces maladies liées aux bactéries spirochètes présentent, comme mentionné ci-des sus, certains signes cliniques communs tels que méningites, encéphalites, polynévrites, polyarthrites. Dans le cas de borrélioses, il se produit en outre fréquemment des fièvres récurrentes . Toutefois ces signes cliniques ne sont pas spécifiques des maladies liées à des bactéries spirochètes D'autre part, les traitements sont différents selon le type de bactéries spirochète , que ce soit entre les différents genres de bactéries Borreha, Leptospira et Treponema, que pour les trois catégories de borrélioses mentionnées ci-des sus, voire pour les différents espèces de bactéries Borrelia et L ' eptospira. Enfin, ces bactéries spirochètes pathogènes donnent lieu à des infections de l'intérieur de l'oeil appelées uvéites, mais qui peuvent être dues à d'autres types de bactéries (non spirochètes). Dans le genre Treponema, seule Treponema palhdum est pathogène chez l'homme. Le diagnostic direct de ces maladies n'est pas aisé. En effet, il s'agit de bactéries fastidieuses dont l'isolement et la culture à partir des prélèvements cliniques sont longs (plusieurs semaines) et de faible rentabilité [Levett, P. N., Leptospira and Leptonema. In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003, pp. 929-936] [WiI s ke B. and Schπefer ME. Borrelia. In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003, pp. 937-954], soit impossible dans le cas de T. pallidum qui ne peut être isolé que sur animal (testicules de lapin et tatou à neuf bandes) [Noms SJ. et al. Treponema and other human host-associated spirochetes, In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003 pp. 955-971]. La détection de l'ADN par les méthodes de la biologie moléculaire ont également une faible sensibilité de sorte qu'il ne s'agit pas de techniques de diagnostic pour les leptospires [Levett P. N. In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003], et de techniques expérimentales pour la détection de T. pallidum [Noms SJ. et al. Treponema and other human host-associated spirochetes, In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003 pp. 955-971]. La détection moléculaire est utilisée dans quelques laboratoires spécialisés pour le diagnostic de la maladie de Lyme (Borrelia burgdorferi) en cas d'isolement et de sérologie négatives [Wilske B. and Schπefer ME. Borrelia. In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds). ASM Press, Washington DC, 2003, pp. 937- 954]. Les frottis sanguins sont utilises pour les borrélioses à tiques mais sont peu sensibles [Vial L, Diatta G, TaIl A, Ba el H, Bouganali H, Durand P, Sokhna C, Rogier C, Renaud F, Trape JF. Incidence of tick-borne relapsmg fever m west Afπca: longitudinal study. Lancet 2006 JuI l;368(9529):37-43] . Au total, c'est donc la sérologie qui constitue le mode de diagnostic habituel des infections humaines à spirochètes, largement diffusé dans les laboratoires de biologie médicale [Levett P. N. In: Manual of Clinical Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds) . ASM Press, Washington DC, 2003] [WiI s ke B . and Schriefer ME. Borrelia. In: Manual of Clinical Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds) . ASM Press, Washington DC, 2003, pp . 937-954] [Noms SJ. et al. Treponema and other human host-associated spirochètes, In: Manual of Clinical Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds) . ASM Press, Washington DC, 2003 pp . 955- 971] .
La sérologie des infections à spirochètes consiste à rechercher dans un échantillon de sérum du patient, la présence d'anticorps dirigés contre l'une des espèces de spirochètes. Cependant, ces bactéries comportent des réactions croisées avec Borrelia burgdorfert, ce qui signifie que quand un patient est infecté par l'une de ces bactéries, il peut présenter des anticorp s non spécifiques réagissant contre la bactérie Borrelia burgdorferi (voir Tableau 1 en fin de description) . Actuellement, quand on veut diagnostiquer la maladie de Lyme, on demande une réaction sérologique précisément contre la bactérie Borrelia burgdorferi, responsable de cette maladie, sans tester l'ensemble des bactéries susceptibles de donner des manifestations comparables et ayant des antigènes communs.
On a montré la présence de réactions sérologiques en micro- immunofluorescence et en ELISA faus sement positives pour la maladie de Lyme {Borrelia burgdorfert) au cours de la syphilis {Treponema palhdum) [Raoult D, Hechemy KE, Baranton G. Cross-reaction with Borrelia burgdorferi antigen of sera from patients with human immunodeficiency virus infection, syphilis, and leptospirosis. J. Clin. Microbiol. 1989 ; 27:2152-5] [Raoult D, Hechemy KE, Lecam C, Enea M, Tamalet J . Crossed reactions in Lyme disease. Value of the Western blot. Press. Med. 1988 ;17:485] [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cross-reactivity in serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J . Infect. Dis. 1987 , 156: 183-188] , au cours de la leptospirose (Leptospira spp.) [Raoult D, Hechemy KE, Lecam C, Enea M, Tamalet J. Cros sed reactions m Lyme disease. Value of the Western blot. Press. Med. 1988 ; 17:485] [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cros s-reactivity m serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J . Infect. Dis. 1987 , 156: 183- 188] et chez des patients présentant un tableau d'un autre borréliose à tique aux USA {Borreha hermsiï) et de borréliose à poux en Ethiopie, Borreha recurrentts, mais uniquement dans le cas de dosage d'IgM [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cross-reactivity m serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J . Infect. Dis . 1987 ; 156: 183- 188] .
Les seules méthodes actuellement disponibles pour palier les réactions sérologiques croisées entre les spirochètes sont les absorptions croisées [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cros s-reactivity m serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J . Infect. Dis. 1987 ; 156: 183-188] et la technique du Western blot qui consiste à faire réagir le sérum du patient contre les protéines antigéniques du spirochète, séparées les unes de autres par électrophorèse. Cependant, il s'agit d'une technique longue, qui utilise 200 μL de sérum, et qui n'est disponible que pour le diagnostic sérologique de la maladie de Lyme (Borreha burgdorferi) .
Il n'y a donc actuellement aucune technique permettant de mettre en évidence les réactions sérologiques croisées entre l'ensemble des spirochètes, et permettant donc l'interprétation raisonnée de la sérologie des infections à spirochètes.
Le but de la présente invention est de fournir une méthode de diagnostique sérologique m vitro par immunodétection indirecte utile dans le cas de patients suspectés d'être infectés par une bactérie pathogène spirochète quelconque des genres Borreha spp ., Leptospira spp., et Treponema palhdum permettant d'apporter le maximum d'information en relation avec la présence d'une infection par une bactérie spirochète en générale et plus précisément en relation avec les principales bactéries spirochètes responsables de maladies les plus répandues chez l'homme sus mentionnées.
Un autre but de la présente invention est de fournir une méthode de diagnostic qui permette de déterminer si l'anticorp s du sérum ayant réagit avec l'antigène bactérien de la bactérie testée est effectivement un anticorp s spécifique de ladite bactérie ou celui d'une autre bactérie spirochète ou autre.
Un autre but de la présente invention est de fournir une méthode de diagnostic qui soit fiable, simple et rapide à mettre en œuvre.
Pour ce faire, les inventeurs ont développé pour la première fois des dosages de réaction sérologique d'immunodétection indirecte entre
une bactérie Borrelta à tique, autre que Borrelta burgdorfen, notamment Borreha duttoπii ou Borreha crocidurae, déposée sur support solide et des immunoglobulines de patients de type IgG et IgM contre ladite espèce de Borreha a tique, notamment Borreha duttontt ou Borreha croctdurae, et
- une bactérie Borreha à poux, à savoir Borreha récurrents, déposée sur support solide et des immunoglobulines de patients de type IgM contre Borreha recurrentis.
Les inventeurs ont en outre mis en évidence l'existence de réactions croisées deux à deux entre les bactéries, Borreha burgdorfen, Borreha recurrentis, et des Borreha à tiques autres que Borreha burgdorfen telles que Borreha duttonti ou Borreha croctdurae, ainsi que les bactéries Leptosptra biflexa serovar Patoc (leptospire non pathogène) et mterrogans serovar Icterohaemorrhagiae (leptospire pathogène) et la bactérie Treponema (voir Tableau 2 en fin de description)
La présente invention fournit une méthode consistant à tester en une seule série de réactions sérologiques multiplexées, selon la méthode décrite dans WO 2005 /064340 au nom de la demanderesse, à savoir sur un même support solide, sur le même échantillon de sérum, une pluralité de bactéries spirochètes représentatives de l'ensemble des bactéries spirochetes en parallèle, permettant d'interpréter les résultats en terme de spécificité de réaction sérologique par comparaison du niveau du signal obtenu pour chacun des spirochètes, déterminé au cours de cette sérologie multiplexée.
Plus précisément, la présente invention fournit une méthode de diagnostic sérologique m vitro d'une infection par une bactérie spirochète pathogène chez l'homme, choisie parmi les bactéries du genre Borreha,
Leptosptra et Treponema, par immunodétection indirecte caractérisée en ce que l'on réalise les étapes suivantes dans lesquelles :
1 / on met en contact un même échantillon de sérum de patient avec
a/- une première substance de détection et/ou respectivement seconde substance de détection constituée(s) par un anticorp s ne réagis sant qu'avec une îmmunoglobulme de l'espèce du patient de type IgG et/ ou respectivement IgM et
b/- une pluralité d'antigènes bactériens déposés sur plusieurs zones d'un même support solide, comprenant :
- une pluralité d'antigènes bactériens de bactéries du genre
Borreha d'espèces différentes comprenant au moins les bactéries Borreha burgdorfert, Borreha recurrentis et une espèce de Borreha à tique autre que Borreha burgdorfert, choisie parmi Borreha duttonn et Borreha croadurae, lesdits antigènes bactériens étant constitués respectivement par au moins des fractions de bactéries des dites espèces , chaque dite fraction de dite bactérie comprenant au moins un antigène spécifique et un antigène non spécifique de ladite espèce de bactérie, de préférence des bactéries entières, et
- une pluralité d'antigènes bactériens de bactéries du genreL ' eptosptra d'espèces différentes comprenant au moins une espèce commensale non pathogène chez l'homme et une bactérie pathogène d'espèce Leptosptra interrogans, lesdits antigènes bactériens étant constitués respectivement par au moins des fractions de bactéries des dites espèces, chaque dite fraction de dite bactérie comprenant au moins un antigène spécifique et un antigène non spécifique de ladite bactérie, de préférence des bactéries entières, et
- au moins un antigène bactérien de la bactérie Treponema , de préférence un antigène bactérien spécifique de Treponema , et
2/ on effectue la détection et de préférence la quantification des réactions sérologiques d'immunoglobulmes de type IgG et/ou IgM présents le cas échéant dans ledit sérum du patient réagissant avec l'un au moins des dits antigènes bactériens, par détection et de préférence quantification d'un signal émis par un complexe ternaire de réaction îmmunologique entre (a) le(s)dit(s) antigène(s) bactérien(s), (b) une dite immunoglobuline réagissant avec l'un au moins desdits antigènes bactériens , immunoglobuline de type IgG pour la détection et dosage d'IgG, et/ou respectivement une dite immunoglobuline de type IgM pour la détection et dosage d'IgM, et (c) une dite première substance de détection pour la détection et dosage d'IgG et/ou respectivement seconde substance de détection pour la détection et dosage d'IgM .
On entend ici par bactérie commensale, une bactérie d'une espèce de spirochète normalement présente en contact avec les muqueuses de l'homme, comprenant des espèces de spirochètes cultivées et des espèces non encore cultivées mais caractérisées par des analyses moléculaires telles que celles ciblant la séquence du gène universelle 16S rARN. De telles espèces ont été notamment caractérisées dans la cavité buccale de l'homme et sa flore digestive.
La quantification des réactions sérologiques se fait par mesure du signal émis par les éléments de marquage incorporés dans lesdites substances de détection, après que celles-ci aient réagi avec le support solide, comme il sera explicité ci-après.
Plus particulièrement, les pluralités de dites bactéries sont constituées •
- pour les bactéries du genre Borreha d'espèces différentes, par les trois bactéries Borreha burgdorfen, Borreha recurrentts et Borreha duttomi, et
- pour les bactéries du genre par les deux bactéries Leptosptra biflexa Patoc et L ' eptosptra tnterrogans qui sont les bactéries les plus représentatives des deux espèces pathogène et non pathogène de Leptosptra.
Plus particulièrement encore, on réalise au moins un dosage des anticorps de type IgM contre la bactérie Borreha à poux, Borreha recurrentts.
Plus particulièrement encore, l'antigène bactérien de la bactérie Treponema palhdum est l'antigène p l 7, et de préférence ledit support solide comprend également une zone supplémentaire sur laquelle est déposée le cardiolipide. L'antigène p l 7 révèle que le patient a été effectivement en contact avec Treponema palhdum, l'agent de la syphilis, tandis que la présence d'anticorps anti-cardiolipide est un marqueur spécifique d'activité de l'infection par Treponema palhdum indiquant une syphilis active.
La présente invention fournit donc une méthode impliquant des réactions sérologiques multiplexées incluant une pluralité de spirochètes humains, permettant de détecter les anticorp s spécifiques à chacun des spirochètes testés, mais aussi les anticorps communs sans valeur diagnostique.
La mise en oeuvre de fractions antigéniques avec des antigènes non spécifiques et antigènes spécifiques pour les antigènes des bactéries Borreha spp. et Leptosptra spp. en cause, ainsi que la mise en œuvre d'une pluralité d'espèces de bactéries Borreha correspondant aux trois principales maladies chez l'homme dues à des Borreha, et d'une pluralité d'espèces Leptosptra spp. avec une espèce Leptosptra pathogène chez l'homme et une espèce Lepfospira non pathogène chez l'homme, permettent d'apporter un diagnostic plus pertinent et plus précis que les méthodes de référence actuelles comme il sera montré ci-après, conformément au but de la présente invention.
A partir de nombreux tests effectués sur plus de 200 sérums, les inventeurs ont pu établir que :
- d'une part, une pluralité d'au moins six dits antigènes bactériens de bactéries spirochètes selon l'invention, permettait de refléter valablement l'ensemble des réactions croisées pouvant intervenir entre les différentes bactéries des genres Borrelia, Leptospira et Treponema, et
- d'autre part, la comparais on des niveaux des signaux des réactions des sub stances de détection avec les IgG et/ ou IgM des patients réagis sant avec lesdits antigènes bactériens p articuliers dépos és sur le support solide illustrant les maladies les plus rép andues, permet de conclure quant à la sp écificité de ces réactions . En cas de réactions avec des anticorp s sp écifiques, le signal se cumule avec celui lié à la fixation des anticorp s non sp écifiques et le signal est plus intense qu'en cas de réactions croisées impliquant les seuls antigènes non spécifiques .
D ans l'état actuel des tests réalisés les inventeurs préfèrent interpréter les réactions app arais sant comme spécifiques pour Borrelia duttonii ou B. crocidurae et Lepfospira biflexa comme correspondant plus généralement à une Borrelia à tique autre que B. burgdorfen telle que, notamment, B. hermsή et, respectivement, une Leptospira commensale non p athogène, lesquelles sont très répandues che2 l'homme. Ainsi, plus p articulièrement, la méthode de diagnos tique selon l'invention permet de déterminer :
- la présence d'une bactérie p articulière d'une dite espèce Borreha burgdorferi, Borrelia recurrentts ou une Borrelia à tique autre que Borrelia burgdorfen telle que Borrelia duttonii, ou une espèce de bactérie pathogène Leptospira interrogans ou une espèce de bactérie leptospire non pathogène telle que Leptospira biflexa, ou la présence de Treponema pallidum, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec des dits antigènes bactériens de bactéries d'une même espèce déposés sur le support solide, de préférence, le cas échéant, de bactéries du même genre, avec un signal significativement de plus grande intensité pour ladite bactérie particulière que pour les autres, et
- la présence d'une bactérie spirochète du genre Borreha ou du genre Leptospira, d'espèce autres que celles des bactéries des dits antigènes bactériens correspondant déposés sur le support solide, sans détermination de l'espèce et le cas échéant du sérovar, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec des dits antigènes bactériens pour des bactéries, du même genre Borrelia ou Leptospira, sans un signal significativement de plus grande intensité que les autres pour une dite bactérie particulière, et sans un signal de réaction avec un agent bactérien d'une bactérie de l'autre genre Leptospira ou respectivement Borreha, et
- la présence d'une bactérie spirochète du genre Borreha ou du genre Lepfospira, autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens correspondant déposés sur le support solide, sans détermination du genre Borrelia ou Leptospira, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens pour des bactéries des deux genres Borrelia et Lepfospira et, éventuellement, en outre, avec Treponema pallidum, sans un signal significativement de plus grande intensité que les autres pour une dite bactérie particulière, et
- l'absence d'une bactérie spirochète quelconque du genre Borrelia ou Leptospira si l'on n'observe aucun signal avec tous lesdits antigènes bactériens de bactéries du genre Borreha et Leptospira, et
- l'absence de Treponema pallidum, si l'on n'observe aucun signal de réactions avec ledit antigène bactérien correspondant.
On comprend que l'on peut donc déterminer : - l'absence d'une bactérie particulière d'une dite espèce Borreha burgdorferi, Borreha recurrentis ou une Borreha à tique autre que Borreha burgdorfen telle que Borreha duttonn, ou une espèce de bactérie pathogène Lepfospira mterrogans ou une espèce de bactérie Leptospire non pathogène telle que Lepfospira biβexa, ou l'absence de Treponema palhdum si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens correspondant déposés sur le support solide, sans un signal de réaction significativement de plus grande intensité pour ladite bactérie particulière que pour les autres, et
- l'absence d'une bactérie spirochète quelconque du genre Borreha ou
Lepfospira, ou de Treponema palhdum quelconque si l'on n'observe aucun signal avec tous lesdits antigènes bactériens de bactéries du genre Borreha, Leptospira et Treponema
Plus particulièrement, on détermine la présence d'une bactérie Treponema palhdum active si l'on observe des signaux de réaction avec ledit antigène bactérien de Treponema et avec le cardiolipide, lesdits signaux étant de préférence plus intenses que des signaux de réactions croisées avec d'autres dits antigènes bactériens, et on détermine l'absence de bactérie Treponema palhdum active si l'on obtient aucun signal de réaction avec le cardiolipide.
Dans un mode préféré de réalisation de la méthode selon l'invention:
1 - On détermine des seuils d'intensité de signaux de détection pour chacun desdits antigènes bactériens tels que déposés sur ledit support solide, comprenant :
a) un seuil dit de spécificité, à partir duquel le signal avec un dit antigène bactérien est considéré comme pouvant inclure celui d'une réaction avec un dit antigène spécifique, et
b) un seuil dit de sensibilité non spécifique, tel que
- si le signal est d'intensité comprise entre celles desdits seuil de spécificité et seuil de sensibilité, il est considéré comme pouvant inclure une réaction avec un dit antigène non spécifique, et n'incluant pas de réaction avec un dit antigène spécifique, et
- si le signal est d'intensité inférieure à celle dudit seuil de sensibilité, il est considéré comme non significatif, et
2- On détermine
a) la présence d'une bactérie du genre Borrelta ou du genre Leptospira, d'une espèce autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens déposés sur le support solide, avec détermination du genre mais sans détermination de l'espèce et le cas échéant du sérovar, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens de bactéries du même genre Borrelta ou déposés sur le support solide, lesdits signaux étant d'intensités supérieures ou égales à celle dudit seuil de sensibilité et inférieures à celle dudit seuil de spécificité, aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle du dit seuil de spécificité, et aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien de l'autre genre Leptosptra ou respectivement Borrelta déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de sensibilité, et
b) la présence d'une bactérie du genre Borrelta ou du genre Leptosptra, et d'une espèce autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens déposés sur le support solide, sans détermination ni du genre, ni de l'espèce, ni, le cas échéant, du sérovar, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens de bactéries des deux genres Borrelta et Leptospira déposés sur le support solide, lesdits signaux étant d'intensités supérieures ou égales à celle dudit seuil de sensibilité et inférieures à celle dudit seuil de spécificité, et aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de spécificité, et c) la présence d'une bactérie particulière d'une dite espèce Borrelia burgdorferi, Borrelia recurrentis ou une Borrelia à tique autre que Borrelia burgdorferi telle que Borrelia duttonii ou Borrelia crocidurae, ou une espèce de bactérie pathogène Leptosptra tnterrogans ou une espèce de bactérie Leptospire non pathogène telle que Leptospira btflexa, ou la présence de Treponema pallidum, si l'on observe un seul signal de réaction d'intensité supérieure ou égale à celle du seuil de spécificité avec un dit agent bactérien d'une bactérie particulière de même espèce déposé sur le support solide, et éventuellement des signaux de réaction d'intensités inférieures aux seuils de spécificité pour les réactions avec les autres agents bactériens déposés sur le support solide, et
d) la présence d'une bactérie Treponema pallidum si l'on observe un signal de réaction avec l'antigène spécifique de Treponema pallidum déposé sur le support solide d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de spécificité de réaction avec un dit agent bactérien d'une dite bactérie particulière, et
e) la présence de bactérie Treponema pallidum active si, en outre, l'on observe un signal de réaction avec le cardiolipide d'intensité supérieure à celle du seuil de sensibilité pour ledit cardiolipide.
On comprend que l'on peut donc déterminer :
- l'absence d'une bactérie spirochète quelconque du genre Borrelia ou Lepfospira, quelconque si l'on n'observe aucun signal de réaction d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de sensibilité avec un antigène bactérien correspondant aux bactéries Borrelia et Leptospira, et
- l'absence d'une bactérie spirochète quelconque du genre Borrelia ou
Lepfospira ou Treponema pallidum, quelconque si l'on n'observe aucun signal de réaction d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de sensibilité.
Dans certains cas, à l'étape 1 - les deux seuils de spécificité et sensibilité peuvent être confondus, de sorte qu'à l'étape 2-, on ne peut pas déterminer de signal d'intensité intermédiaire entre le seuil de sensibilité et le seuil de sp écificité, et l'on ne détermine que la présence d'une bactérie p articulière conformément au libellé des paragraphes c) , d) et e) de l'étape 2- ci-dessus .
La présente invention permet pour la première fois de tester à la fois:
(1) l'agent de la fièvre récurrente à p oux, Borreha récurrentes, maladie transmis es par le p oux, en augmentation constante en termes à la fois d'IgG et IgM,
(2) La borrélio se la plus fréquente en Afrique de l'Est due à B. duttontt, transmis e par les tiques, ou B. croctdurae plus fréquente en Afrique de l'Ouest [Vial L, Diatta G, TaIl A, B a el H, B ouganali H, Durand P, Sokhna C, Rogier C, Renaud F, Trape JF Incidence of tick-borne relap smg fever m west Africa: longitudinal s tudy. Lancet. 2006;368 :37-43] , les inventeurs ayant démontré des réactions croisées entre B. duttonii et B. croadurae,
(3) Treponema palhdum, l'agent de la syphilis,
(4) Borreha burgdorfen, l'agent de la maladie de Lyme,
(5) interrogans serovar Icterohaemorrhagiae et Leptospira btflexa serovar Patoc qui s ont les esp èces représentatives des deux grands groupes de Lep tospira pathogène et non pathogène.
La présente invention p ermet un tes t rapide avec une quantification p our une seule dilution, plus particulièrement pour une dilution de s érum au l / 1 6eme.
Selon la prés ente invention, on réalise donc une approche originale de diagno stic p ar groupe s érologique et non pas en limitant la question p osée sérologiquement au problème de diagnostic de toutes les spirochétoses particulières et en remplaçant l'ensemble des techniques sérologiques antérieurement mises en œuvre, par une seule technique qui réalise à la fois le dépistage et le diagnostic sur un titre unique.
Avantageusement, lesdites première et/ou seconde substances de détection comprennent des dits premier et/ou respectivement second éléments de marquages émettant des signaux que l'on peut distinguer.
Plus particulièrement, lesdites première et/ou seconde substances de détection sont des immunoglobulines de chèvre ou de poulet, respectivement anti- IgG et/ou anti- IgM.
Dans un mode préféré de réalisation, lesdites substances de détection comprennent un marquage fluorescent.
L'expression "marquage fluorescent" signifie que la substance de détection, notamment l'anticorps secondaire de détection a été rendu fluorescent par couplage ou complexation avec une substance fluorescente appropriée telle que l'iso(thio)cyanate de fluorescéine, à savoir une substance émettant un rayonnement détectable après son illumination, chaque dite substance fluorescente étant caractérisée par la longueur d'onde à laquelle elle doit être illuminée (longueur d'onde d'excitation) et la longueur d'onde du rayonnement qu'elle émet (longueur d'onde d'émission) .
Comme substance fluorescente de marquage, on peut citer notamment la fluorescéine, la coumarine, la cyanine et les analogues et dérivés de ces substances connues de l'homme de l'art.
Lorsque l'on utilise une substance fluorescente, la fluorescence associée à l'échantillon testé est lue directement sur un appareil approprié capable de détecter le rayonnement à la longueur d'onde d'émission et de le quantifier.
De tels appareils sont connus de l'homme de l'art. La quantification est réalisée par comparaison du signal fluorescent émis par le complexe de réaction [antigène anticorps spécifique-substance de détection] du sérum testé avec une courbe de référence obtenue par cahbration à l'aide de sérums témoins contenant une concentration connue d'anticorps à détecter
Le marquage fluorescent est particulièrement avantageux dans le cas de détermination de la spécificité d'une réaction dans la mesure où il est essentiel d'obtenir une quantification précise et fiable à la concentration en dits anticorp s spécifiques, ce qui peut être obtenu grâce aux signaux fluorescents dont l'intensité est directement proportionnelle à la quantité de molécules fluorescentes émettant le signal.
De préférence donc, lesdites première et/ou seconde substances de détection comprennent des dits premier et/ou respectivement second éléments de marquages émettant des signaux fluorescents à des longueurs d'ondes d'excitation différentes quantifiables par lecture automatisée de l'intensité du signal fluorescent émis par ledit élément de marquage fluorescent à l'aide d'un appareil de lecture approprié capable de le quantifier.
Comme antigènes bactériens, on utilise des antigènes constitués de bactéries entières ou de fractions ou fragments de bactéries comprenant un ou plusieurs antigènes. Il est en effet possible de fragmenter mécaniquement la bactérie par agitation mécanique ou par sonication par exemple ou bien de fragmenter la bactérie par un procédé enzymatique afin d'en obtenir une fraction conservant les antigènes qui supportent la réaction sérologique, objet de la présente invention. Les fractions ainsi obtenues sont séparées ou encore purifiées des autres constituant du microbe et de son milieu de culture par un procédé approprié, par exemple par centπfugation ou par filtration. On parle alors de "fraction antigénique" ou "d'antigène purifié" . La bactérie entière ou une quelconque fraction de bactérie est appelé ci après "antigène particulaire ou corpusculaire" en ce que la bactérie ou une de ses fractions ne peut pas être mis en solution par dissolution, mais uniquement en suspension dans un fluide approprié. Les bactéries ou leur fraction restent visibles en tant que particules individualisables par observation microscopique à l'aide d'un microscope optique ou d'un microscope électronique par exemple
La présente invention permet de mesurer directement la concentration d'anticorp s spécifiques qui, dans la méthode de référence en sérologie par immunofluorescence, est exprimée en inverse de la plus grande dilution donnant un signal positif. Il existe en effet, dans la gamme de concentration des anticorps spécifiques mesurés au cours des infections à spirochètes, une linéarité entre la quantité de fluorescence et la concentration d'anticorps . Il est donc possible de calibrer, à partir de sérums ayant un titre connu par la méthode de référence, l'appareil pour détecter les sérums positifs des sérums négatifs. Le seuil de positivité par la méthode de référence étant de 1 / 128, une dilution du sérum à 1 / 16 peut être utilisé. Cette dilution est avantageuse puisqu'elle correspond à la dilution utilisée en général sur ce type d'appareil de lecture de fluorescence.
Selon la méthode de l'invention, on dépose donc, le cas échéant, l'antigène sur un support solide du type lame de verre, ou microplaque de titration pour mettre en oeuvre des techniques de détection par immunodétection, notamment immunofluorescence, ou par technique enzymatique, notamment du type ELISA. Ces techniques de détection sont bien connues de l'homme de l'art, et comprennent les étapes successives de :
1. décomplémentation du sérum par chauffage à 56°C pendant 30 minutes,
2. mise en contact de l'antigène correspondant à l'agent bactérien infectieux fixé sur support solide, avec le sérum du patient puis incubation sous des conditions de temps, de température, d'hygrométrie, d'agitation mécanique et de force ionique du milieu permettant la réaction antigène — anticorp s, 3. lavage précautionneux et extensif permettant d'éliminer le sérum du patient non fixé au support solide, en excès,
4. application d'un anticorps secondaire de détection qui est une immunoglobuline animale dirigée contre les îmmunoglobulmes de l'espèce du patient considéré, par exemple dans le cas d'un patient humain une immunoglobuline de chèvre anti-immunoglobulme humaine conjuguée à une substance fluorochrome, généralement de l'iso-thio-cyanate de fluorescéme ou une enzyme, généralement une peroxydase et incubation sous des conditions de temp s, de température, d'hygrométrie, d'agitation mécanique et de force ionique du milieu permettant la réaction antigène — anticorp s,
5. lavage précautionneux et extensif permettant d'éliminer l'immunoglobuline marquée, non fixée, en excès,
6. détection d'une réaction par lecture, à l'aide d'un appareillage approprié en fonction du marqueur tel qu'un microscope à fluorescence ou un lecteur de puces biologiques (microarray en anglais) pour la technique d'immunofluorescence indirecte, ou un lecteur de densité optique pour la technique de détection enzymatique du type ELISA. La lecture de la réaction se fait à l'œil nu ou après acquisition numérique du gel et analyse par un logiciel de densitométπe ou tout logiciel approprié pour le traitement des images.
La présente invention concerne plus particulièrement les méthodes de détection et dosage dans lesquelles on détecte la présence et, de préférence, on dose la quantité d'immunoglobulines de classe M (IgM) et G (IgG) réagissant avec un antigène bactérien. Ces déterminations donnent des informations plus précises et complètes, nécessaires pour établir l'étiologie et suivre l'évolution de certaines maladies infectieuses. Ainsi, en général les IgM apparaissent de façon plus précoce. Quant aux IgG, elles permettent d'établir le statut sérologique du patient vis à vis d'une bactérie donnée, en vue d'établir le diagnostic sérologique de l'infection ou d'établir le degré de protection de l'organisme contre cette bactérie. La spécificité de la réaction antigène infectieux/anticorps séπque conditionne la spécificité et la valeur prédictive positive du test sérologique basé sur cette réaction et toute fixation d'un anticorps non- spécifique sur l'antigène bactérien limite la spécificité et la valeur prédictive du test sérologique. La présence dans le sérum à tester, de facteurs rhumatoides ou d'anticorp s anti-nucléaires, est une source de fixation non-spécifique d'anticorps sur l'antigène microbien comme expliqué ci-après.
Ces facteurs rhumatoides sont des îmmunoglobulmes de clas se M reconnaissant le fragment Fc des IgG de différentes espèces dont les IgG humaines (IgM anti IgG) .
La présence de facteurs rhumatoides dans le sérum d'un patient est responsable de résultats faussement positifs lors de la détection d'IgM spécifiques d'un antigène microbien au cours des tests sérologiques pour le diagnostic indirect des maladies infectieuses En effet, ces facteurs rhumatoides se fixent aux IgG spécifiques de l'antigène microbien contenu dans le sérum du patient, et apparaissent donc faus sement positifs lors de la détection des IgM spécifiques dans la réaction sérologique utilisant l'antigène microbien dans des tests de détection par agglutination.
De même, la présence dans le sérum du patient d'anticorp s antinucléaires limite la spécificité de la réaction antigène microbien-anticorp s sériques. Les anticorps anti-nucléaires sont en effet des anticorps du type IgG dirigés de façon non-spécifique contre l'ensemble formé par l'ADN et les protéines nucléaires du chromosome des cellules eucaryotes et des microbes, appelées histones. Ces anticorps anti-nucléaires se fixent donc de façon non-spécifique sur toute cellule eucaryote y compris les champignons et les parasites et sur tout microbe, bactérie, virus à ADN, parasite ou champignon. Ce phénomène entraîne une réaction positive non- spécifique au cours des tests sérologiques utilisant la détection d'IgG spécifique d'une bactérie, un virus à ADN, un champignon ou un parasite entier ou comprenant des complexes ADN/histones comme antigène microbien à l'aide d'anticorp s de détection anti IgG dans un sérum contenant des anticorp s anti-nucléaires.
Si l'échantillon comprend des facteurs rhumatoides (IgM anti IgG) , ceux-ci peuvent réagir avec les îmmunoglobulmes (IgG1) fixées sur le support solide, pour former le complexe suivant avec ladite première substance de détection (Ac1 anti IgM*1) : (S-IgG1-IgM anti IgG - Ac1 anti
IgM*1) (S= support solide) .
Dans un mode préféré de réalisation,
1 /- on réalise les étapes préalables dans lesquelles :
• on met en contact ledit échantillon de sérum à tester avec lesdites première et/ou seconde substances de détection et au moins un dit support solide sur lequel ont été fixés en outre au moins un antigène de contrôle parmi les antigènes de contrôle suivants •
- un premier antigène de contrôle correspondant à une immunoglobuline non spécifique de type IgG de l'espèce du patient, et
- un deuxième antigène de contrôle comprenant des complexes ADN/histones, de préférence tout ou partie de cellules nucléées comprenant des noyaux de cellules nucléées, de préférence encore des cellules en lignée continue, et
- le cas échéant, un troisième antigène de contrôle correspondant à une immunoglobuline non spécifique de type IgM de l'espèce du patient; la présence dudit troisième antigène de contrôle étant nécessaire en cas de dosage d'IgM, et
un quatrième antigène de contrôle contenant la protéine A d'une bactérie Staphjlococcus aureus^ de préférence ledit quatrième antigène étant une bactérie Staphjlococcus entière, et
B on réalise au moins un contrôle préalable, de préférence la série de contrôles suivants, comprenant: a- le contrôle de la réactivité de ladite première substance de détection en vérifiant si ledit premier antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection en cas de dosage d'IgG, et le cas échéant le contrôle de la présence de facteurs rhumatoides dans ledit échantillon de sérum en vérifiant si le premier antigène de contrôle réagit avec ledit échantillon de sérum et ladite seconde substance de détection, en cas de dosage d'IgM,
b- le contrôle de la présence d'anticorps antinucléaires dans ledit échantillon de sérum à tester en vérifiant si ledit deuxième antigène de contrôle réagit avec ledit échantillon de sérum et la première substance de détection, en cas de dosage d'IgG,
c- le contrôle de la réactivité de ladite seconde substance de détection en vérifiant si ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection, en cas de dosage d'IgM, et
d- le contrôle de la présence d'un sérum humain dans l'échantillon à tester, et
2/- on ne prend en compte le résultat d'une réaction entre ledit antigène bactérien, ledit échantillon de sérum et une dite première et/ou seconde substance de détection que si le contrôle de la présence d'un sérum humain est positif et si les conditions cumulatives suivantes sont réunies, établissant l'absence d'anticorps antinucléaire et la réactivité desdites première et, le cas échéant, seconde substances de détection et le cas échéant de facteur rhumatoidc
a- ledit premier antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection,
b- ledit deuxième antigène de contrôle ne réagit pas, et
c le cas échéant si ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite seconde substance de détection, en cas de dosage d'IgM et d- ledit quatrième antigène de contrôle réagit avec une dite première et/ou seconde substance de détection, celle(s) -ci étant une (ou des) substance(s) ne réagissant pas avec ledit quatrième antigène de contrôle.
Quand l'absence de facteur rhumatoide est établie, la détection d'une réaction entre ladite première substance de détection et ledit antigène bactérien (Agmic) est effectivement la preuve de la présence dans le sérum testé d'immunoglobulmes de classe M spécifique de l'antigène bactérien (IgM anti Agmic) par formation du complexe (S-Agmic-IgM anti AgInIc-Ac1 anti IgM*1) , et non pas de la présence d'IgG spécifique du dit antigène bactérien (IgG anti Agmic) , lesquels pourraient en effet former, en présence de facteur rhumatoide, un complexe faux positif (S-Agmic-IgG anti Agmic-IgM anti IgG - Ac1 anti IgM*1) .
En outre comme explicité ci-après, lorsque ledit premier antigène de contrôle est constitué d'une IgG de l'espèce du patient notamment humaine, ceci permet de vérifier la présence et la réactivité d'une dite première substance de détection reconnaissant spécifiquement les IgG du sérum de l'espèce du patient.
Dans le cas d'un patient humain, on peut utiliser avantageusement, comme dit deuxième antigène de contrôle, des cellules de fibroblastes humains non confluentes en suspension, notamment des cellules HL60.
Si l'échantillon à tester comprend des anticorps anti-nucléaires (qui sont des IgG, notamment humaines), ceux-ci peuvent réagir avec ledit deuxième antigène de contrôle (Ag2) et être détectés par ladite première substance de détection (Ac2 anti IgG* ) puisque celle-ci est une substance réagissant avec des IgG de l'espèce du patient, notamment humaines, et former le complexe (S-Ag2-IgG anti Nucl- Ac2 anti IgG*2) La détection d'une réaction entre ladite première substance de détection et ledit deuxième antigène de contrôle (Ag2) fixé sur support solide, signifie nécessairement que s'est formé un complexe avec des anticorps antinucléaires (Ac anti nucl.) suivant : (S-Ag2-IgG anti nucl. -IgM anti IgG- Ac1 anti IgM*1) , et donc que l'échantillon comprend à la fois le facteur rhumatoide et des anticorps anti-nucléaire.
Une fois l'absence d'anticorps anti-nucléaire établie, la détection d'une réaction de ladite seconde substance de marquage avec ledit antigène microbien est bien la preuve de la présence d'IgG spécifique dudit antigène bactérien et de formation d'un complexe (S-Agmic-IgG antiAgmic-Ac2 anti IgG*2) et non pas d'un complexe faux positif résultant de la réaction des anticorp s anti-nucléaires avec l'antigène microbien selon le complexe (S- Agmic-Ac anti nucl.-Ac2 anti IgG*2) .
On vérifie aussi la réactivité de ladite première substance de détection introduite dans ledit échantillon de sérum à tester, en l'absence de facteur rhumatoide et d'anticorps anti-nucléaires dans ledit échantillon. En effet, si ladite première substance de détection est bien réactive en l'absence de facteur rhumatoide, on doit détecter le complexe suivant (S- IgG1-Ac2 anti IgG*2) sur ledit premier antigène de contrôle (IgG1) . Dans ce cas, l'absence de réaction de ladite première substance de détection avec ledit deuxième antigène est bien la preuve de l'absence d'anticorp s antinucléaires.
Si ladite deuxième substance de détection est présente et est bien réactive, on doit détecter un complexe S-IgM1 -Ac1 anti IgM*1 sur ledit troisième antigène de contrôle (IgM1) Dès lors, l'absence de détection d'un complexe comprenant ledit deuxième marqueur au niveau du dit premier antigène de contrôle (IgG1) et, le cas échéant, au niveau du dit second antigène de contrôle fixé sur support solide, est bien la preuve de l'absence de facteur rhumatoide.
Plus particulièrement, on effectue un dépôt robotisé d'une solution d'IgG et d'IgM de l'espèce du patient, notamment humaines, γ-spécifique
(spécifique de la chaîne gamma des îmmunoglobulmes de l'espèce du patient, notamment humaines) comme dits premier et troisième antigènes de contrôle. La présente invention permet donc les détections systématiques de facteurs rhumatoïdes, d'anticorp s anti-nucléaires, et le contrôle systématique de la réactivité des anticorps anti immunoglobulines de détection dans un sérum utilisé pour un diagnostic sérologique par immunofluorescence indirecte, après le dépôt robotisé sur support solide d'immunoglobulines de l'espèce du patient, notamment humaines, de classe G et M et de cellules nucléées de l'espèce du patient.
Une autre erreur fréquente dans la réalisation des tests sérologiques, notamment pour les tests sérologiques en batterie réalisés sur un grand nombre de sérums à tester, est due à des défauts dans l'introduction des sérums à tester, notamment par pipetage. Ces erreurs interviennent notamment dans les étapes qui impliquent le déplacement de l'échantillon à tester, notamment par pipetage, certains récipients, notamment contenant le support solide sur lequel est déposé l'antigène à détecter, peuvent ne pas être remplis par inadvertance avec le sérum de l'espèce du patient, notamment humaine, à tester. Il est connu que le pipetage de sérum est entaché d'un risque d'erreurs de l %o, liée à un problème purement technique par absence de pipetage par la pipette, ou à une erreur humaine par absence de pipetage par inadvertance.
Ces erreurs imposent l'introduction de contrôles dans la réalisation de la réaction. L'incorporation systématique au cours de chaque nouvelle manipulation d'un sérum témoin négatif c'est à dire ne contenant pas d'anticorp s spécifiques de l'antigène à tester permet d'interpréter les réactions positives. De même, l'incorporation d'un sérum témoin positif, c'est à dire contenant l'anticorp s spécifique de l'antigène testé à un titre connu permet de vérifier la qualité de l'antigène et de l'immunoglobuline conjuguée.
Dans la mesure où la protéine A réagit avec des immunoglobulines animales et humaines de façon non spécifique, et ce même en cas de pathologie infectieuse importante, il est possible d'utiliser cette protéine A comme contrôle positif de l'introduction d'un sérum de l'espèce du patient, notamment humaine, dans l'échantillon à tester.
Plus précisément, selon la présente invention, on contrôle que ledit échantillon testé contient bien un sérum de l'espèce du patient en détectant si des immunoglobulines de l'espèce du patient réagis sent avec un quatrième antigène de contrôle contenant la protéine A d'une bactérie Staphylococcus aureus, de préférence ledit quatrième antigène étant une bactérie Staphylococcus entière, en mettant en contact ledit échantillon avec un support solide sur lequel est fixé un dit quatrième antigène de contrôle, en présence de ladite seconde substance de détection qui est une substance réagis sant avec une îmmunoglobulme de l'espèce du patient et ne réagis sant pas avec ledit quatrième antigène de contrôle, de préférence un anticorp s anti-immunoglobulme de l'espèce du patient et ne réagissant pas avec ledit quatrième antigène de contrôle, le contrôle de la présence d'un sérum est positif si ledit quatrième antigène réagit avec ledit échantillon de sérum et ladite première substance de détection.
Dans un mode de réalisation avantageux, ledit quatrième antigène de contrôle est une bactérie entière Staphylococcus aureus comprenant la protéine A. On peut plus particulièrement utiliser les bactéries Staphylococcus aureus déposées dans les collections publiques telles que les bactéries déposées à l'A. T. C. C. sous le N°29213 et à la C. N. C. M. de l'Institut Pasteur (France) sous le numéro 65.8T comme décrit dans la publication mentionnée ci-dessus [Rolain JM, Lecam C, Raoult D Simplified serological diagnosis of endocarditis due to Coxiella burnetn and Bartonella. CIm. Diag. Lab. Immunol. 2003 ; 10 : 1 147- 8] .
Par ailleurs, en dehors des souches-types, toute souche bactérienne identifiée comme Staphylococcus aureus peut être utilisée comme dit quatrième antigène de contrôle.
Avantageusement, on utilise un unique support solide mis en contact avec le cas échéant simultanément ou successivement desdites première et seconde substances de détection comprenant un premier et respectivement un second élément de marquage, le second élément de marquage émettant un signal différent du premier élément de marquage, de préférence lesdites première et seconde substances de détection comprenant un premier et respectivement un second anticorp s ne réagissant qu'avec une dite immunoglobulme de l'espèce du patient de classe G et respectivement de classe M.
Dans un mode de réalisation d'une méthode selon l'invention, on met donc en œuvre le protocole de succession de contrôles suivant :
1) On vérifie que ledit quatrième antigène de contrôle contenant la protéine A réagit avec ladite première substance de détection. A défaut, on arrête le test, c'est-à-dire on ne prend pas en compte cet échantillon.
2) Si ledit premier antigène de contrôle (IgG1) réagit avec ladite deuxième substance de détection (AcI anti IgM*1), l'échantillon de sérum comprend des facteurs rhumatoides , donc, là encore, on ne prend pas en compte les tests de détection et de quantification des IgM spécifiques.
3) Si ledit premier antigène de contrôle ne réagit pas avec la première substance de détection (Ac2 anti IgG*2), ladite première substance de détection n'est pas présente ou pas réactive. On ne prend pas en compte le résultat du test concernant la détection des IgG réagissant avec lesdits antigènes bactériens ;
4) Si ledit premier antigène de contrôle réagit avec la première substance de détection, il n'y a pas de facteur rhumatoïde et ladite première substance est réactive : on peut continuer le test, c'est-à-dire prendre en compte les résultats sous réserve des vérifications suivantes concernant les réactions avec les deuxième, troisième et quatrième antigènes de contrôle.
5) Si ledit deuxième antigène de contrôle contenant un complexe ADN/histone réagit avec ladite première substance de détection, des anticorps antinucléaires sont présents et on ne prend pas en compte les tests de détection et de quantification des IgG spécifiques.
6) Si ledit deuxième antigène de contrôle réagit avec ladite deuxième substance de détection, des facteurs rhumatoides et des anticorp s antinucléaires sont présents et on arrête le test.
7) Si ledit deuxième antigène de contrôle ne réagit pas, et que lesdites première et deuxième substances de détection sont présentes et réactives, il n'y a pas d'anticorps anti-nucléaire, et on peut continuer sous réserve de la vérification suivante.
8) On vérifie que ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite deuxième substance de détection. Si ledit troisième antigène de contrôle (IgM) ne réagit pas, ladite deuxième substance de détection n'est pas présente ou ne réagit pas, et on arrête le test.
En résumé, on ne prend en compte le résultat de la réaction avec ledit antigène microbien, que si les conditions cumulatives suivantes sont réunies :
- ledit quatrième antigène de contrôle réagit,
- ledit premier antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection,
- ledit deuxième antigène de contrôle ne réagit pas, et
- ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite deuxième substance de détection.
Dans un mode de réalisation particulier avantageux, on réalise un dosage dans lequel :
1 - on dépose les cinq dites bactéries ou leurs antigènes bactériens sur un support solide, 2- on fait réagir lesdites bactéries ou leurs antigènes bactériens avec un sérum dudit malade, dilué au l / 1 6eme dans lequel on a aj outé une immunoglobuline anti IgG (anti IgM) humaine, de préférence marquée,
3- on vérifie lesdites îmmunoglobulmes anti IgG (anti IgM) humaines , de préférence marquées, se fixent sur ledit supp ort solide.
En d'autres termes , si, après lavage dudit support s olide, on détecte desdites immunoglobulines anti IgG (anti IgM) marquées fixées à celui-ci, leur fixation sur ledit support solide n'a pu se faire que p ar l'intermédiaire des anticorp s IgG (IgM) (Ac) dres sés contre ladite bactérie ou antigène bactérien correspondent (Ag) en formant un complexe Ag-Ac-Ig anti IgG (anti-IgM) .
D ans un mode de réalisation p articulier, on dépo se sur ledit support solide les bactéries suivantes :
- une bactérie Borreha burgdorferi, souche B 31 ;
- une bactérie tnterrogans serovar Icterohaemorrhagiae ;
- une bactérie Leptosptra btflexa serovar Patoc ;
- une bactérie Borreha récurrentes ;
- une bactérie Borreha duttomt ;
- un antigène p i 7 de bactérie Treponema palhdum, et le cardiolipide p our la sérologie de la syphilis .
Comme support solide, on p eut utiliser tout dispositif adapté à la manipulation de suspensions bactériennes et notamment des tubes, des lames de verre, des tubes bij oux ou des plaques rigides de microtitrage en p olyéthylène, polystyrène, chlorure de polyvmyle ou mtrocellulose comportant des micro puits, les lames de verre étant préférées . Comme autre élément de marquage des dites substances de détection, on peut utiliser aussi un marquage enzymatique.
L'expression « marquage enzymatique » signifie que l'anticorp s spécifique est couplé ou complexé à une enzyme qui, as sociée à l'emploi de réactifs appropriés, permet une mesure quantitative de cet anticorp s spécifique.
Le substrat et les réactifs sont choisis de sorte que le produit final de la réaction ou de la séquence de réactions provoquée par l'enzyme et mettant en œuvre ces substances, soit :
- ou bien une substance colorée ou fluorescente qui diffuse dans le milieu liquide environnant l'échantillon testé et qui fait l'objet, soit de la mesure finale spectrophotométrique ou fluorimétπque, respectivement, soit d'une évaluation à l'œil ; éventuellement par rapport à une gamme de teintes étalonnées,
- ou bien une substance colorée insoluble qui se dépose sur l'échantillon testé et qui peut faire l'objet, soit d'une mesure photométrique par réflexion, soit d'une évaluation à l'œil, éventuellement par rapport à une gamme de teintes étalonnées.
Lorsque l'on utilise une substance de détection rendue fluorescente, la fluorescence associée à l'échantillon testé est lue directement sur un appareil approprié capable de détecter le rayonnement à la longueur d'onde d'émission et de le quantifier.
L'expression « marquage fluorescent » signifie que l'anticorps a été rendu fluorescent par couplage ou complexation avec un agent fluorescent approprié tel que l'iso-thio-cyanate de fluorescéme.
Lorsque l'on utilise une enzyme sur l'anticorps spécifique, l'apparition d'un produit coloré ou fluorescent est obtenue en ajoutant une solution contenant le substrat de l'enzyme et un ou plusieurs réactifs auxiliaires permettant d'obtenir finalement comme produit de réaction, soit un produit coloré soluble dans le milieu, soit un produit coloré insoluble, soit un produit fluorescent soluble, comme cela a été expliqué précédemment. On mesure ensuite le signal lumineux provenant des échantillons ainsi traités, à l'aide de l'appareillage adapté à chaque cas : photomètre en transmission, ou en réflexion ou fluorimètre respectivement. Alternativement, on peut aussi évaluer à l'oeil la coloration obtenue, en s'aidant éventuellement d'une gamme de solutions colorées étalonnées.
En utilisant comme enzyme la phosphatase alcaline, le couplage de cette enzyme avec l'anticorps spécifique est effectué selon la méthode proposée par Boehringer Mannheim-Biochemica. Les substrats préférentiels de cette enzyme sont le paranitrophénylphosphate pour une lecture fluorométπque ou le bromo-5 chloro-4 indolyl-6 phosphate pour obtenir un produit de réaction coloré insoluble. On peut de même utiliser comme enzyme la β-D-galactropyranoside ou le méthyl-4 umbelliféryl β-D- galactropyranoside.
Préférentiellement, on peut coupler les anticorps spécifiques à la péroxydase. Dans ce cas, le procédé de couplage est dérivé de celui décrit par M B. Wilson et P. K. Nakane m Immunofluorescence and related stainmg techniques, W. Knapp, K. Kolubar, G. Wicks éd. Elsevier/North
Holland. Amsterdam 1978, p .215-224.
Les réactifs utilisés pour révéler la péroxydase conjuguée aux anticorp s spécifiques contiennent de l'eau oxygénée, sustrat de l'enzyme, et un chromogène approprié par exemple de l'orthophénylénediamme ou l'acide azmo-2-2' bis (éthyl-3 thiazolme sulfomque- 6) ou ABTS pour obtenir un produit final de réaction coloré et soluble dans le milieu ou bien la diammo 3,3 ' benzidme ou l'amino 3 éthyl 9 carbazole ou le chloro 4 oc naphtol pour obtenir un produit final de réaction insoluble, ou bien l'acide parahydroxyphényl propiomque pour obtenir un produit de réaction fluorescent soluble dans le milieu. Un autre mode de réalisation de l'invention est l'utilisation d'immunoglobulme couplée à l'acétylcholmestérase
L'acétylcholmestérase est couplée à l'anticorps en utilisant préférentiellement un procédé dérivé de celui décrit dans le brevet français n 2 550 799 ou un procédé qui comporte schématiquement la préparation de fragments de l'anticorp s par une technique connue, la modification de l'enzyme par réaction avec un agent hétérobifonctionnel approprié et enfin le couplage des produits ainsi obtenus. D'autres procédés connus de construction de conjugués immunoenzymatiques peuvent être aussi être utilisés dans ce cas.
La révélation de l'activité enzymatique spécifiquement liée à l'antigène reconnu par le conjugué à l'acétylcholmestérase est réalisée de préférence selon la technique bien connue qui emploie l'acétylthiocholine comme substrat de l'enzyme et le réactif d'Ellman, ou acide dithio-5,5 ' mtro-2 benzoique comme chromogène, selon toute variante adaptée au cas examiné, par exemple celle décrite par Pradelles et al., dans Anal. Chem. 1985 ; 57: 1 170-1 173.
Les chromogènes cités sont utilisés tels quels ou sous forme de sels solubles dans l'eau.
Comme explicité dans WO2005/064340, on connaît des conditions de dépôt sur support solide desdits antigènes de contrôle et antigènes bactériens permettent de s'accommoder d'un dépôt par simple adsorption physique, et ce plus particulièrement lorsque lesdits antigènes sont des antigènes corpusculaires.
Avantageusement, on dépose lesdits antigènes de contrôle et bactériens corpusculaires en mélange avec un liant protéique, stabilisant la fixation sur ledit support solide.
Plus particulièrement, ledit liant protéique est choisi parmi le mélange organique complexe formé par le jaune d'œufs, de la gélatine, de l'albumine de sérum de bovin ou une IgG polyclonale non humaine, de préférence de chèvre.
Ces liants protéiques fonctionnent comme une colle biologique dudit antigène sur le support solide.
La présente invention fournit également une trousse de diagnostic utile pour la mise en œuvre d'une méthode selon l'invention comprenant :
- un dit même support solide sur lequel est fixé au moins une dite pluralité d'antigènes bactériens et de préférence au moins un dit antigène de contrôle, et
- des réactifs tels qu'une dite première et/ou seconde substance de détection et des réactifs utiles pour la détection de(s)dit(s) premier et/ ou second éléments de marquage.
Avantageusement, dans les méthodes et trousses de diagnostic selon l'invention, on utilise comme support solide une lame de verre ou en plastique, un tube de titrage ou un puits d'une plaque de microtitrage en plastique, et plus particulièrement, comme support solide, on peut utiliser tout dispositif adapté à la manipulation de suspensions cellulaires et bactériennes et notamment des tubes, des lames de verre ou de polymères, des tubes "bij oux" ou des plaques rigides de microtitration en polyéthylène, polystyrène, chlorure .
D 'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lumière de l'exposé détaillé de l'exemple qui va suivre, qui décrit l'expérience détaillée dans le but de réaliser l'invention, et qui sont donnés à titre purement îllustratifs en référence aux figures 1 à 3 dans lesquelles :
- la figure 1 représente le schéma d'une lame multiplexée spirochètes comportant sept antigènes de spirochètes et quatre antigènes de contrôle ; - la figure 2 représente les réactions d'un sérum de borréliose entre les trois antigène Borrelta et la sérologie P17 d'une lame de la figure 1 pour des IgG et
- la figure 3 représente la réaction d'un sérum d'une syphilis évolutive pour des IgG avec une lame de la figure 1.
EXEMPLE
1 - LES ANTIGENES
Les bactéries Borrelta burgdorfert, Leptosptra tnterrogans, Leptosptra btflexa serovar Patoc, Borrelta recurrentts, Borrelta duttontt, Borreha croadurae et les antigènes p l 7 de Treponema palhdum et cardiolipide sont accessibles au public par diverses sources. Elles ont été décrites dans la littérature, et ont été déposées dans diverses collections de dépôt, notamment la bactérie Borrelta burgdorfert souche B31 déposée à l'ATCC sous le numéro ATCC 35210, Leptosptra biflexa serovar Patoc sous le numéro ATCC 23582, Leptosptra interrogans serovar Icterohaemorrhagiae dans la collection du Centre National de Référence (Institut Pasteur, Paris) . Les bactéries Borrelta duttontt souche Ly [Cutler SJ et al. Int. J. Syst. Bacteriol. 1999 ; 49: 1793-1799] , Borrelta recurrentts souche Al [Cutler SJ et al. Lancet. 1994 , 343:242] , et Borreha croadurae sont disponibles dans la collection du Centre National de Référence (Institut Pasteur, Paris) et ont été déposées dans la Collection de souches de l'Unité des Rickettsies, reconnu par le World Data Center for Microorgamsms (http : / /wdcm.mg.ac.)p) sous le numéro WDCM 875, respectivement sous les numéros CSURP- I , CSURP-2 et CSUR-3. Borrelta duttontt est utilisée comme représentant des borrélioses à tiques, hors maladie de Lyme. L'antigène recombinant p l 7 de Treponema palltdum est obtenu auprès de Fitzgerald (Fitzgerald, Conrad, MA, USA) sous le numéro de référence 30-AT68 et le cardiolipide est obtenu auprès de Sigma-Aldrich (Saint-Quentin Falavier, France) sous le numéro de référence C 1649. Borreha burgdorfen souche B31 (ATCC 35210) , Borreha recurrentis souche Al et Borreha duttonn souche Ly ont été utilisées comme antigènes pour les Borreha. Ces antigènes sont obtenus comme suit : les bactéries sont cultivées dans un bouillon BSK-H (référence BB291 , Sigma-Aldrich, Saint-Quentin Falavier, France) à 330C et leur densité est appréciée par l'observation microscopique à l'état frais . Leptospira biflexa serovar Patoc (ATCC 2374) et Leptosptra interrogans serovar Icterohaemorrhagiae ont été utilisés comme antigènes pour les leptospires. Ces bactéries sont cultivées dans un milieu leptospires (référence 55954 F, Biorad, Marnes-la-Coquette, France) à 3O0C à l'abri de la lumière, et leur densité est appréciée par l'observation microscopique à l'état frais.
Après purification, les bactéries sont concentrées de façon appropriée (la concentration est mesurée par la concentration protéique) , rendues fluorescentes par l'ajout d'AMCA et ajoutées à une colle biologique appropriée puis déposées par un spotter sur le support solide. La concentration de cardiolipide et de protéine p l 7 est ajustée, puis ces antigènes sont mélangés en concentration appropriée avec une colle biologique préalablement rendue fluorescente par ajout d'AMCA. Enfin, la lame ainsi constituée a été fixée par un procédé chimique afin d'as surer la stabilité des dépôts sur la lame, comme décrit dans WO 2005/ 064340.
Les antigènes de contrôles suivants ont été mis en œuvre
- comme dit quatrième antigène de contrôle, Staphjlococcus aureus déposé dans les collections publiques telles que l'A. T. C. C. sous le N°29213 et à la C. N. C. M. de l'Institut Pasteur (France) sous le numéro 65.8T comme décrit dans la publication mentionnée ci-des sus [Rolam JM, Lecam C, Raoult D. Simplified serological diagnosis of endocarditis due to Coxtella burnetn and Bartonella. CIm. Diag. Lab. Immunol. 2003 ; 10 : 1 147 8] , comme dit premier antigène de contrôle, une IgG humaines fournie par la Société Sérotec Ltd (ref PHP 001), - comme dit troisième antigène de contrôle, des IgM humaines fournies par la Société Sigma Aldrich Chimie (ref 18260), et
-comme dit deuxième antigène de contrôle, du dsDNA fourni par la Société Diarect (référence 12300).
La figure 1 représente la lame avec les quatre antigènes de contrôle et six antigènes bactériens et cardiolipide mentionnés ci-dessus.
2- TECHNIQUE SEROLOGIOUE
La technique utilisée est celle de l'immunofluorescence indirecte multiplexée. Les inventeurs ont utilisé des matériels et méthodes et notamment des immunoglobulines de détection avec des marqueurs fluorescents et une installation automatisée développée par la société INODIAG tel que décrit sur le site 'www.inodiag. com et dans WO2005/064340 comportant un incubateur, un lecteur de fluorescence, et un logiciel d'interprétation permettant l'incubation. La lecture et l'interprétation à partir de lames multiplexées spirochètes.
Le schéma d'une lame multiplexée spirochètes est présenté en figure 1. Cette lame de la figure 1 comporte, outre les sept antigènes de spirochètes, les quatre antigènes de contrôle permettant de vérifier la mise en contact de la lame avec le sérum de patient à tester, de vérifier la qualité des conjugués fluorescents anti-IgG et anti-IgM utilisés et de détecter la présence d'anticorp s anti-nucléaires et de facteurs rhumatoides dans le sérum du patient. Ces deux derniers types d'anticorps sont des facteurs connus de réaction sérologique faussement positive.
Dans cet exemple, chacun des sérums testés a été dilué au 1 : 16 puis a été incubé en présence d'une lame multiplexée spirochètes. La mesure a comporté la mesure de fluorescence as sociée à un anticorp s conjugué anti- IgG humaines et la mesure de fluorescence associée à un anticorp s anti- IgM humaines selon les procédés précédemment décrits dans WO 2005/064340. Pour chaque antigène spécifique, un seuil ou cut-off de fluorescence donnant une spécificité d'au moins 95 % et un cut-off ou seuil de fluorescence donnant une sensibilité d'au moins 95 % ont été déterminés à l'aide de 10 sérums témoins négatifs et 10 sérums positifs dans une méthode de référence. Pour certaines mesures, ces deux cut-offs sont confondus.
Avec les substances de détection et l'appareillage et logiciel de calcul utilisés, les valeurs des seuils suivants ont été déterminés.
Pour les antigènes spécifiques Borreha duttonn et Borrelta recurrentts, les deux cut-off utilisés sont ceux déterminés pour Borreha burgdorfen. Les valeurs de seuils de fluorescence utilisées dans ce travail sont de 2.500- 3.500 unités de fluorescence pour les borreliae en IgG et de 2.000 unités de fluorescence pour les borreliae en IgM, de 2.000-2.500 unités de fluorescence pour L ' eptospira bijlexa Patoc IgG et IgM, de 3.000 unités de fluorescence pour Leptospira interrogans Icterohemorraghiae IgG, de 2 000 unités de fluorescence pour Leptospira interrogans Icterohaemorrhagiae IgM, de 500-800 unités de fluorescence pour cardiolipide IgG, de 1 .000- 1.4000 unités de fluorescence pour cardiolipide IgM, et de 1.000-1 .500 unités de fluorescence pour p l 7 IgG.
3- LES SERUMS TESTES
Les inventeurs pour pouvoir mettre au point la technique, ont sélectionné un certain nombre de sérums de patients ayant présenté une pathologie identifiée. Les inventeurs ont testé un total de 21 1 sérums, comportant 19 sérums de patients présentant une maladie de Lyme {Borreha burgdorferî) avec présence d'anticorp s spécifiques détectés par ELISA et confirmée par Western blot ; 17 sérums de patients présentant une sérologie positive pour Leptospira patoc en immunofluorescence ; 34 sérums de patients présentant une syphilis avec présence d'anticorps anti- Treponema palhdum et test Veneral Disease Research Laboratory (VDRL) positif ; 51 sérums de patients fébriles au retour d'un pays outre-mer ; 20 sérums de patients présentant une uvéite ; 51 sérums prélevés chez des patients fébriles après piqûre de tique au Sénégal et donc suspects d'une infection à Borrelia crocidurae; et 17 sérums témoins négatifs ne présentant pas d'anticorps contre la syphilis (Treponema pallidum) .
RESULTATS
Sur 21 1 échantillons :
- 8 échantillons ont été écartés pour défaut de sérum, ou défaut de substance de détection ou mauvaises incubations,
- 19 échantillons contenaient des sérums avec présence de facteurs rhumatoides (définition de l'alerte « présence de facteurs rhumatoïdes » : Ig G à 594 nm > 5000 unités de fluorescence) ,
- 3 échantillons contenaient des sérums avec des anticorps anti nucléaires
- 4 échantillons contenaient des sérums avec facteurs rhumatoïdes et anticorp s anti nucléaires.
Au total 34 sérums ont donc été exclus de l'analyse car détectés par un signal d'alarme du logiciel.
L'analyse s'est donc portée sur 177 échantillons.
Parmi ces 177 sérums, 53 sérums sont négatifs pour tous les paramètres étudiés : borrelia burgdorjeri IgG et IgM, Borrelia duttonii IgG et IgM, Borrelta recurrentis IgG et IgM, Lepfospira biflexa Patoc, Leptospira interrogans Icterohemorragique, cardiolipide, pi 7, et 124 sérums sont positifs sur un ou plusieurs paramètres.
Parmi les 124 sérums positifs, 56 sont monospécifiques c'est-à-dire présentent une réponse avec un signal de fluorescence supérieure au seuil de spécificité pour la réaction avec un antigène bactérien du support et 68 sérum présentent uniquement des réactions croisées c'est-à-dire des signaux de réaction avec des intensités compris entre les deux seuils de sensibilité et spécificité.
L'ensemble des réactions croisées pos sibles a été observé.
Lorsque l'analyse est réalisée pour chaque catégorie de sérums testés, les résultats sont les suivants :
1) Parmi les 18 sérums interprétables de patients présentant une sérologie à Borrelia burgdorferi :
9 sérums sont négatifs (aucun signal au dessus des seuils de sensibilité) , permettant de conclure à l'absence de spirochètes ;
7 sérums présentent seulement une sérologie croisée avec les autres Borrelia ou p l 7, permettant de conclure à la présence de bactéries du genre Borrelia autres que Borrelia burgdorferi , Borrelia recurrentis ou Borrelia duttonit, et
- 2 sérums sont monospécifiques à Borrelia burgdorferi et respectivement Treponema pallidum (un seul signal de réaction avec un antigène bactérien au des sus du seuil de spécificité et des signaux de réactions croisées) .
2) parmi les 34 sérums interprétables de patients présentant une sérologie positive pour la syphilis par les méthodes de référence,
- 17 sont confirmés par la sérologie multiplexée avec des signaux de réaction avec p l 7 et, dans certains cas, le cardiolipide supérieurs aux seuils de spécificité en cause, et
- 17 présentent une sérologie croisée avec Borreha burgdorferi, les autres Borrelia et Leptospira biflexa Patoc , permettant de conclure à la présence d'une bactérie spirochète Borrelia ou l^eptospira non pathogène autres que celles testées mais sans détermination du genre ni de l'espèce. 3) parmi les 8 sérums interprétables prés entant une sérologie p ositive pour Leptospira spp . par la méthode de référence,
- 3 sont confirmés p ar la sérologie multiplexée,
- 1 est identifiée comme Borrelta burgdorfen (seul signal de réaction supérieur au seuil de sp écificité, et
4 présentent uniquement une sérologie croisée seulement avec les Borrelta, p ermettant de conclure à une borrélio se autre que celles testées sans détermination de l'espèce.
4) Parmi les 44 sérums interprétables prélevés che2 des p atients ayant été piqués p ar une tique au Sénégal , suspectés d'avoir été expo sés à
Borrelta crocidurae,
- 12 sont négatifs à toutes spirochètes,
- 6 sont diagnostiqués comme ayant la syphilis, c'es t-à-dire sont positifs monospécifiques pour la syphilis, et
- 1 es t p ositif monospécifique comme ayant une leptospirose
(seul L. tnterrogans réagis sant avec un signal supérieur au seuil de sp écificité) , et
- 25 croisent avec toutes les Borrelta et Lepfosptra, permettant de conclure à la présence d'une Borrelta ou Leptosptra sans détermination du genre ni de l'espèce.
5) Parmi les 43 sérums interprétables prélevés che2 des p atients fébriles au retour des tropiques,
- 12 sont négatifs p our toutes spirochètes,
- 1 3 sont p ositifs monosp écifiques pour la syphilis,
- 1 est po sitif monospécifique pour Borrelta burgdorfen et - 17 présentent des sérologies croisées sur l'ensemble des spirochètes permettant de conclure à la présence d'une Borreha ou Lepfospira sans détermination du genre ni de l'espèce.
6)Parmi les 20 sérums interprétables prélevés chez des patients présentant une uvéite, 12 sont négatifs, 3 présentent une sérologie p l 7, 1 des IgM Borreha duttomt, 1 des IgG Borreha burgdorfen et 3 des sérologies croisées entre Borreha burgdorfen, Borreha recurrentis et pi 7 .
7) Parmi les 16 sérums interprétables contrôlés négatifs,
- 10 sont effectivement négatifs, et
- mais 4 présentent une sérologie p l 7 positive dont 1 syphilis active (réaction avec le cardiolipide), et
- 1 est positif monospécifique pour Borreha burgdorfen et
7 présentent uniquement des sérologies croisées entre Leptospira biflexa patoc et p l 7 permettant de conclure à la présence d'une Borreha ou à la présence d'un leptospire non pathogène de l'espèce Leptopstra btflexa autres que celles testées sans détermination de l'espèce.
Au total, l'utilisation du système multiplexe de sérologie des spirochètes a permis de mettre en évidence les réactions sérologiques certainement monospécifiques et les réactions sérologiques croisées et donc d'augmenter la valeur prédictive positive des sérologies des spirochètes. Egalement, des réactions sérologiques croisées nouvelles ont été mises en évidence comme cela est illustré dans le tableau 2.
Ces résultats sont illustrés dans les figures 2 et 3 suivantes, montrant l'image de la lame après incubation avec le sérum et les anticorp s conjugués.
La figure 2 représente les réactions d'un sérum de borréliose entre les trois Borreha et la sérologie P17 pour des IgG. II s'agit d'un sérum « retour des tropiques » titré positif pour Borreha burgdorferi par la méthode de référence (ELISA 061 / seuil 0521) On trouve avec la technique ci-dessus, une réponse fortement positive en
Borreha recurrentis (valeur de fluorescence de 8330 pour des seuils de 2500- 3500) et Borreha burgdorferi (valeur de fluorescence de 2619 pour des seuils de 2500-3500), positif intermédiaire ( réactions croisées) pour Borreha burgdorferi (valeur de fluorescence de 2619 pour des seuils de 2500-3500),
Borreha duttomi ( 2688 pour des seuils de 2500-3500) et positif P17 (valeur de fluorescence de 1261 seuil 1000-1500). L'interprétation de cette sérologie est donc une Borréliose à Borreha recurrentis.
La figure 3 représente la réaction d'un sérum d'une syphilis évolutive pour des IgG.
Il s'agit d'un sérum donné VDRL-TPPA positif. On trouve avec la technique ci- dessus, pl7 fortement positif (12.210 pour un seuil haut à 1500), positif cardiolipide (valeur 1.076 pour un seuil haut à 700). Ce sérum présente des réactions croisées avec Borreha burgdorferi (3.022 pour un seuil haut à 3.500) et Borreha recurrentis (3.253 pour un seuil haut à 3.500). L'interprétation de cette sérologie est donc la présence d'une syphilis évolutive.
INTERPRETATION
Ces résultats illustrent la capacité de l'invention à détecter grâce au multiplexage d'une part des anticorps spécifiques de chacune des espèces de spirochètes testés, d'autres part la présence de sérologies croisées, en particulier de sérologies croisées qui n'ont pas été rapportées dans la littérature. En particulier, les inventeurs mettent en évidence des réactions sérologiques croisées parmi les borreliae entre Borreha burgdorferi (maladie de Lyme) d'une part, et Borreha duttomi et Borreha recurrentis d'autre part. Il s'agit d'une donnée nouvelle, puisqu'un seul travail publié avait détecté dans 40 sérums de patients présentant une maladie de Lyme {Borreha burgdorferi), 80 % de faux positifs contre un agent de fièvre récurrente à tique, Borreha hermsn [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cross- reactivity in serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J. Infect. Dis. 1987 ; 156: 183- 188] . Les données retrouvées par les inventeurs confirment les données antérieures, concernant les réactions faus sement positives contre B. burgdorfen de sérums de patients présentant une fièvre récurrente à tique ou à poux [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cros s-reactivity in serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J. Infect. Dis . 1987 ; 156: 183- 188] . Ces résultats permettent de comprendre les résultats publiés antérieurement par d'autres équipes sur la présence de la maladie de Lyme en Afrique où le spirochète responsable n'a pourtant jamais été détecté Qowi JO , Gathua SN. Lyme disease: report of two cases. East Afr. Med. J. 2005 ; 82-267-9] . Ces diagnostics sérologiques correspondent le plus probablement à des réactions croisées entre borreliae. Egalement, les inventeurs mettent en évidence pour la première fois, des réactions croisées entre Treponema palhdum (syphilis) d'une part, et Borreha duttomi et Borreha recurrentts de l'autre [Noms SJ. et al. Treponema and other human host-associated spirochetes, In: Manual of Climcal Microbiology 8th Edition. Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (Eds) . ASM Press, Washington DC, 2003 pp 955-971] En effet, dans le travail de Magnarelli LA et collaborateurs, 1 / 15 sérum de patients présentant une syphilis réagis sait contre Borreha hermsii [Magnarelli LA, Anderson JF, Johson RC. Cross-reactivity m serological tests for Lyme disease and other spirochètal infections. J. Infect. Dis. 1987 ; 156: 183- 188] . Enfin, les inventeurs mettent en évidence pour la première fois des sérologies croisées entre Lepfospira sp. d'une part, et Borreha duttonn et Borreha recutt&ntis de l'autre.
Tableau 1 : Réactions sérologiques croisées en immunofluorescence indirecte rapportées dans la littérature.
Références : 1 - Magnarelli LA. et al J. Infect. Dis 1987 ;156 : 1 83- i
2 - Raoult D. et al J . CIm. Microbiol 1989 ;27:2152-5
3 - Raoult D. et al Presse Med. 1988 ;17:485
4 — Noms SJ. et al Manual of Climcal Microbiology
2003 ;955-71
Tableau 2 : Réactions sérologiques croisées en immunofluorescence indirecte observées par sérologie multiplexée des spirochètes.

Claims

REVENDICATIONS
1 Méthode de diagnostic sérologique m vitro d'une infection par une bactérie spirochète pathogène chez l'homme, choisie parmi les bactéries du genre Borrelta, Lepfosptra et Treponema, par immunodétection indirecte caractérisée en ce que l'on réalise les étapes suivantes dans lesquelles :
1 / on met en contact un même échantillon de sérum de patient avec
a/ une première substance de détection et/ou respectivement seconde substance de détection constituée(s) par un anticorp s ne réagissant qu'avec une îmmunoglobulme de l'espèce du patient de type IgG et/ou respectivement IgM et
b/- une pluralité d'antigènes bactériens déposés sur plusieurs zones d'un même support solide, comprenant :
- une pluralité d'antigènes bactériens de bactéries du genre Borrelta d'espèces différentes comprenant au moins les bactéries Borreha burgdorfert, Borrelta récurrentes et une espèce de Borreha à tique autre que Borrelta burgdorfert, choisie parmi Borreha duttontt et Borrelta croctdurae, lesdits antigènes bactériens étant constitués respectivement par au moins des fractions de bactéries des dites espèces, chaque dite fraction de dite bactérie comprenant au moins un antigène spécifique et un antigène non spécifique de ladite espèce de bactérie, de préférence des bactéries entières, et
- une pluralité d'antigènes bactériens de bactéries du genre Lepfospjra d'espèces différentes comprenant au moins une espèce commensale non pathogène chez l'homme et une bactérie pathogène d'espèce Lepfosptra tnterrogans, lesdits antigènes bactériens étant constitués respectivement par au moins des fractions de bactéries desdites espèces, chaque dite fraction de dite bactérie comprenant au moins un antigène spécifique et un antigène non spécifique de ladite bactérie, de préférence des bactéries entières, et
- au moins un antigène bactérien spécifique de la bactérie Treponema palhdum, et
2/ on effectue la détection et de préférence la quantification des réactions sérologiques d'immunoglobulmes de type IgG et/ou IgM présents le cas échéant dans ledit sérum du patient réagissant avec l'un au moins desdits antigènes bactériens, par détection et de préférence quantification d'un signal émis par un complexe ternaire de réaction immunologique entre (a) le(s)dit(s) antigène(s) bactéπen(s) , (b) une dite immunoglobuline réagis sant avec l'un au moins desdits antigènes bactériens , immunoglobuline de type IgG pour la détection et dosage d'IgG, et/ou respectivement une dite immunoglobuline de type IgM pour la détection et dosage d'IgM, et (c) une dite première substance de détection pour la détection et dosage d'IgG et/ou respectivement seconde substance de détection pour la détection et dosage d'IgM .
2 Méthode selon la revendication 1 , caractérisée en ce que la pluralité de bactéries du genre Borreha d'espèces différentes est constituée par les trois bactéries Borrelta burgdorfert, Borrelta recurrentts et Borreha duttomi.
3. Méthode selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que l'on réalise au moins un dosage des anticorps de type IgM contre la bactérie Borreha à poux, Borreha recurrentis.
4. Méthode selon l'une des revendications 1 ou 3, caractérisée en ce que la pluralité de bactéries du genre Leptasptra est constituée par les deux bactéries Leptospira biflexa serovar Patoc et interrogans serovar Icterohaemorraghiae.
5. Méthode selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que l'antigène bactérien spécifique de la bactérie Treponema palhdum est l'antigène p ! 7.
6. Méthode selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que le dit support solide comprend une zone supplémentaire sur laquelle est déposée le cardiolipide.
7. Méthode selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisée en ce qu'on réalise le test pour une seule dilution de l'échantillon de sérum dilué au l / 16ème.
8. Méthode selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que l'on détermine
- la présence d'une bactérie particulière d'une dite espèce Borrelia burgdorfert, Borrelia recurrentts ou une Borrelia à tique autre que Borrelia burgdorferi telle que Borrelia duttonii, ou une espèce de bactérie pathogène Leptospira interrogans ou une espèce de bactérie Leptospire non pathogène telle que Leptospira biflexa, ou la présence de Treponema pallidum, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens de bactéries d'une même espèce déposés sur le support solide, de préférence, le cas échéant, de bactéries du même genre, avec un signal significativement de plus grande intensité pour ladite bactérie particulière que pour les autres, et
- la présence d'une bactérie spirochète du genre Borreha ou du genre Leptospira, d'espèce autres que celles des bactéries desdits antigènes bactériens correspondant déposés sur le support solide, sans détermination de l'espèce, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens pour des bactéries, du même genre Borrelia ou Leptospira, sans un signal significativement de plus grande intensité que les autres pour une dite bactérie particulière, et sans un signal de réaction avec un agent bactérien d'une bactérie de l'autre genre Lepfospira ou respectivement Borrelia, et
- la présence d'une bactérie spirochète du genre Borreha ou du genre Leptospira, autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens correspondant déposés sur le support solide, sans détermination du genre Borrelia ou Leptospira, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens pour des bactéries des deux genres Borrelia et Lepfospira et, éventuellement, en outre, avec Treponema pallidum, sans un signal significativement de plus grande intensité que les autres pour une dite bactérie particulière, et
- l'absence d'une bactérie spirochète quelconque du genre Borrelia ou Lepfospira si l'on n'observe aucun signal avec tous lesdits antigènes bactériens de bactéries du genre Borrelia et Leptospira, et
- l'absence de Treponema pallidum, si l'on n'observe aucun signal de réactions avec ledit antigène bactérien correspondant.
9. Méthode selon la revendication 8, caractérisée en ce qu'on détermine la présence d'une bactérie Treponema pallidum active si l'on observe des signaux de réaction avec ledit antigène bactérien de Treponema et avec le cardiolipide, lesdits signaux étant de préférence plus intenses que des signaux de réactions croisées avec d'autres dits antigènes bactériens.
10. Méthode selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisée en ce qu'on détermine l'absence de bactérie Treponema pallidum active si l'on obtient aucun signal de réaction avec le cardiolipide.
1 1. Méthode selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisée en ce que
1 - On détermine des seuils d'intensité de signaux de détection pour chacun desdits antigènes bactériens tels que déposés sur ledit support solide, comprenant :
a) un seuil dit de spécificité, à partir duquel le signal avec un dit antigène bactérien est considéré comme pouvant inclure celui d'une réaction avec un dit antigène spécifique, et
b) le cas échéant, un seuil dit de sensibilité non spécifique, tel que - si le signal est d'intensité comprise entre celles desdits seuil de spécificité et seuil de sensibilité, il est considéré comme pouvant inclure une réaction avec un dit antigène non spécifique, et n'incluant pas de réaction avec un dit antigène spécifique, et
- si le signal est d'intensité inférieure à celle dudit seuil de sensibilité, il est considéré comme non significatif, et
2- On détermine
a) la présence d'une bactérie du genre Borrelia ou du genre Leptospira, d'une espèce autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens déposés sur le support solide, avec détermination du genre mais sans détermination de l'espèce et le cas échéant du sérovar, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens de bactéries du même genre Borreha ou déposés sur le support solide, lesdits signaux étant d'intensités supérieures ou égales à celle dudit seuil de sensibilité et inférieures à celle dudit seuil de spécificité, aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle du dit seuil de spécificité, et aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien de l'autre genre ou respectivement Borreha déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de sensibilité, et
b) la présence d'une bactérie du genre Borreha ou du genre Leptospira, et d'une espèce autre que celles des bactéries desdits antigènes bactériens déposés sur le support solide, sans détermination ni du genre, ni de l'espèce, ni, le cas échéant, du sérovar, si l'on observe une pluralité de signaux de réactions avec desdits antigènes bactériens de bactéries des deux genres Borreha et Leptospira déposés sur le support solide, lesdits signaux étant d'intensités supérieures ou égales à celle dudit seuil de sensibilité et inférieures à celle dudit seuil de spécificité, et aucun signal de réaction avec un dit antigène bactérien déposé sur le support solide, n'étant d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de spécificité, et c) la présence d'une bactérie particulière d'une dite espèce Borreha burgdorferi, Borreha recurrentis ou une Borrelta à tique autre que Borrelta burgdorferi telle que Borreha duttonn ou Borreha crocidurae, ou une espèce de bactérie pathogène Leptosptra tnterrogans ou une espèce de bactérie leptospire non pathogène telle que L ' eptospira biflexa, ou la présence de Treponema palhdum, si l'on observe un seul signal de réaction d'intensité supérieure ou égale à celle du seuil de spécificité avec un dit agent bactérien d'une bactérie particulière de même espèce déposé sur le support solide, et éventuellement des signaux de réaction d'intensités inférieures aux seuils de spécificité pour les réactions avec les autres agents bactériens déposés sur le support solide, et
d) la présence d'une bactérie Treponema palhdum si l'on observe un signal de réaction avec l'antigène spécifique de Treponema palhdum déposé sur le support solide d'intensité supérieure ou égale à celle dudit seuil de spécificité de réaction avec un dit agent bactérien d'une dite bactérie particulière, et
e) la présence de bactérie Treponema palhdum active si, en outre, l'on observe un signal de réaction avec le cardiolipide d'intensité supérieure à celle du seuil de sensibilité pour ledit cardiolipide.
12. Méthode selon l'une des revendications 1 à 11 , caractérisée en ce que lesdites première et/ou seconde substances de détection comprennent desdits premier et/ou respectivement second éléments de marquages émettant des signaux que l'on peut distinguer.
13. Méthode selon la revendication 12, caractérisée en ce que lesdites première et/ou seconde substances de détection sont des îmmunoglobulmes de chèvre ou de poulet, respectivement anti- IgG et/ou anti- IgM
14. Méthode selon l'une des revendications 1 à 13, caractérisée en ce que lesdites première et/ou seconde substances de détection comprennent desdits premier et/ou respectivement second éléments de marquages émettant des signaux fluorescents à des longueurs d'ondes d'excitation différentes quantifiables par lecture automatisée de l'intensité du signal fluorescent émis par ledit élément de marquage fluorescent à l'aide d'un appareil de lecture approprié capable de le quantifier.
15. Méthode selon l'une des revendications 1 à 14, caractérisée en ce que :
1 /- on réalise les étapes préalables dans lesquelles :
B on met en contact ledit échantillon de sérum à tester avec lesdites première et/ou seconde substances de détection et au moins un dit support solide sur lequel ont été fixés en outre au moins un antigène de contrôle parmi les antigènes de contrôle suivants :
- un premier antigène de contrôle correspondant à une immunoglobuline non spécifique de type IgG de l'espèce du patient, et
- un deuxième antigène de contrôle comprenant des complexes ADN/histones, de préférence tout ou partie de cellules nucléées comprenant des noyaux de cellules nucléées, de préférence encore des cellules en lignée continue, et
le cas échéant, un troisième antigène de contrôle correspondant à une immunoglobuline non spécifique de type IgM de l'espèce du patient; la présence dudit troisième antigène de contrôle étant nécessaire en cas de dosage d'IgM, et
- un quatrième antigène de contrôle contenant la protéine A d'une bactérie Staphylococcus aureus, de préférence ledit quatrième antigène étant une bactérie Staphylococcus entière, et
• on réalise au moins un contrôle préalable, de préférence la série de contrôles suivants, comprenant:
a- le contrôle de la réactivité de ladite première substance de détection en vérifiant si ledit premier antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection en cas de dosage d'IgG, et le cas échéant le contrôle de la présence de facteurs rhumatoides dans ledit échantillon de sérum en vérifiant si le premier antigène de contrôle réagit avec ledit échantillon de sérum et ladite seconde substance de détection, en cas de dosage d'IgM,
b- le contrôle de la présence d'anticorps antinucléaires dans ledit échantillon de sérum à tester en vérifiant si ledit deuxième antigène de contrôle réagit avec ledit échantillon de sérum et la première substance de détection, en cas de dosage d'IgG,
c- le contrôle de la réactivité de ladite seconde substance de détection en vérifiant si ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection, en cas de dosage d'IgM, et
d- le contrôle de la présence d'un sérum humain dans l'échantillon à tester, et
2/- on ne prend en compte le résultat d'une réaction entre ledit antigène bactérien, ledit échantillon de sérum et une dite première et/ou seconde substance de détection que si le contrôle de la présence d'un sérum humain est positif et si les conditions cumulatives suivantes sont réunies, établissant l'absence d'anticorps antinucléaire et la réactivité desdites première et, le cas échéant, seconde substances de détection et le cas échéant de facteur rhumatoide:
a- ledit premier antigène de contrôle réagit avec ladite première substance de détection,
b- ledit deuxième antigène de contrôle ne réagit pas, et
c- le cas échéant si ledit troisième antigène de contrôle réagit avec ladite seconde substance de détection, en cas de dosage d'IgM et
d- ledit quatrième antigène de contrôle réagit avec une dite première et/ou seconde substance de détection, celle(s) -ci étant une (ou des) substance(s) ne réagissant pas avec ledit quatrième antigène de contrôle.
16. Trousse utile pour la mise en œuvre d'une méthode selon l'une des revendications 1 à 15, caractérisée en ce qu'elle comprend :
- un dit même support solide sur lequel est fixé au moins une dite pluralité d'antigènes bactériens et, de préférence, au moins un dit antigène de contrôle, et
- des réactifs tels qu'une dite première et/ou seconde substance de détection et des réactifs utiles pour la détection de dit(s) premier et/ou second éléments de marquage.
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