EA044679B1 - Вариантные аденоассоциированные вирусы и способы их применения - Google Patents

Вариантные аденоассоциированные вирусы и способы их применения Download PDF

Info

Publication number
EA044679B1
EA044679B1 EA201990033 EA044679B1 EA 044679 B1 EA044679 B1 EA 044679B1 EA 201990033 EA201990033 EA 201990033 EA 044679 B1 EA044679 B1 EA 044679B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
protein
aav
aav particle
neurons
retrograde
Prior art date
Application number
EA201990033
Other languages
English (en)
Inventor
Лорен Лугер
Адам Хантман
Дугал Гованлок Робинсон Терво
Джошуа Дадман
Кимберли Ритола
Сарада Висванатхан
Алла Карпова
Бум-Йеол Хванг
Дэвид ШАФФЕР
Original Assignee
Ховард Хьюз Медикал Инститьют
Дзе Риджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Калифорния
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ховард Хьюз Медикал Инститьют, Дзе Риджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Калифорния filed Critical Ховард Хьюз Медикал Инститьют
Publication of EA044679B1 publication Critical patent/EA044679B1/ru

Links

Description

Описание изобретения
Заявление, касающееся исследований или разработок, спонсированных федеральными органами.
Настоящее изобретение выполнено при государственной поддержке в рамках гранта EY022975 Национального института здравоохранения. Правительство обладает определенными правами на изобретение.
Перекрестные ссылки на родственные заявки
По настоящей заявке испрашивается приоритет согласно ст. 35 U.S.C. 119(е) по заявке на патент США 62/350,361, поданной 15 июня 2016 г., и по заявке на патент США 62/404,585, поданной 5 октября 2016 г.
Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение в целом относится к вариантным адено-ассоциированным вирусам и способам их получения и применения.
Уровень техники
Функции головного мозга, такие как восприятие, познавательные функции и контроль движения, зависят от скоординированного действия крупномасштабных нейронных сетей, которые состоят из локальных модулей в виде цепей, выполняющих конкретные вычисления, и связанных между собой длинными связями, по которым распространяются результаты этих вычислений. Такие длинные связи формируются специализированными проекционными нейронами, которые часто включают несколько частично пересекающихся классов, каждый из которых проецируется на другую нижерасположенную в сети мишень. Проекционные нейроны также участвуют в распространении нескольких нейродегенеративных заболеваний из пространственно локализованных участков их возникновения. Таким образом, способность избирательно нацеливаться на определенные классы проекционных нейронов для доставки трансгена (например, для мониторинга/манипуляции активностью или для редактирования генома с целью направленного нокаута гена или исправления патологических мутаций) является важной как для понимания того, каким образом крупномасштабные сети задействованы в работе мозга и, в конечном итоге, для терапевтического вмешательства при нейродегенеративных заболеваниях.
Вирусные векторы представляют собой важный класс инструментов для введения трансгенов в специфические популяции нейронов, и безусловно, являются наилучшим вариантом генетического доступа к целевым проекционным нейронам через вход в терминали аксонов и ретроградный транспорт их полезной нагрузки в ядра клеток. Несколько видов естественно эволюционирующих нейротропных вирусов, среди которых следует упомянуть вирус бешенства, вирус полиомиелита и вирус простого герпеса (ВПГ), демонстрируют ретроградное распространение в течение своего жизненного цикла. Из них вирус бешенства является особенно нейроинвазивным и быстро распространяется по нервной системе посредством межклеточного переноса. Однако его возможное применение как в биологических исследованиях, так и в генной терапии затруднено из-за чрезмерной вирулентности, хотя в настоящее время наблюдается прогресс в снижении его токсичности. В дополнение к естественным нейротропным штаммам, многие другие вирусы могут инфицировать нейроны при непосредственном введении в нервную систему с помощью вируса псевдобешенства (SuHV1, фактически герпесвируса), аденовирусов и лентивирусов, которые чаще всего используются в исследованиях на животных. Собачий аденовирус-2 (CAV-2) демонстрирует наилучшую инфицирующую способность и ретроградный транспорт в этом классе вирусов и все чаще становится предпочтительным реагентом для доступа к проекционным нейронам. Однако CAV2 обеспечивает только умеренные уровни экспрессии трансгена, является потенциально токсичным и в настоящее время в слабой степени совместим с масштабируемым устойчивым производством для обеспечения клинических исследований или даже исследований на крупных животных. Таким образом, насущной необходимостью остается разработка нетоксичного, легко производимого вирусного вектора, который обеспечивает гибкую упаковку различных трансгенов, устойчиво интернализируется и ретроградно транспортируется аксонами, а также поддерживает длительную высокоэффективную экспрессию полезной нагрузки.
Сущность изобретения
Эффективный ретроградный доступ к проекционным нейронам для доставки сенсоров и эффекторов представляет собой важную и полезную возможность для анализа структуры цепи. Такой подход также был бы полезен для генной терапии, включая лечение нейродегенеративных расстройств, для которых характерно распространение патологии через функционально связанные и высоко распределенные сети. В частности, вирусные векторы являются эффективной несущей средой для доставки генов для нервной системы, но недостатком всех доступных инструментов является неэффективный ретроградный транспорт или ограниченные клинические возможности. Чтобы удовлетворить эту потребность, была применена направленная эволюция in vivo для введения эффективной ретроградной функциональности в капсид аденоассоциированного вируса (AAV) вектора, который показал себя многообещающим в исследованиях в области неврологии и в клинике. Описанный здесь вариант, называемый rAAV2-retro, обеспечивает устойчивый ретроградный доступ к проекционным нейронам с эффективностью, сравнимой с классическими синтетическими ретроградными реагентами для мечения, а также высокий уровень экспрессии, достаточный для изучения функциональных цепей и редактирования генома in vivo с помощью
- 1 044679
CRISPR/Cas9 в целевых популяциях нейронов.
В одном из аспектов изобретение относится к вирусному капсидному белку, который включает последовательность, выбранную из группы, состоящей из xxDxTKx (SEQ ID NO: 1) и xDxTKxx (SEQ ID NO: 2). В одном из вариантов осуществления вирусный капсидный белок имеет по меньшей мере 95% идентичность последовательности с SEQ ID NO: 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 или 78. В одном из вариантов осуществления вирусный капсидный белок имеет последовательность, приведенную в SEQ ID NO: 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 или 78. В одном из вариантов осуществления вирусный капсидный белок кодируется нуклеиновой кислотой, имеющей по меньшей мере 95% идентичность последовательности с SEQ ID NO: SEQ ID NO: 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53, 55, 57, 59, 61, 63, 65, 67, 69, 71, 73, 75 или 77. В одном из вариантов осуществления вирусный капсидный белок кодируется нуклеиновой кислотой, имеющей последовательность, приведенную в SEQ ID NO: SEQ ID NO: 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53, 55, 57, 59, 61, 63, 65, 67, 69, 71, 73, 75 и 77.
В еще одном аспекте изобретение относится к вирусной частице, которая включает вирусный капсидный белок, описанный в настоящей заявке. В некоторых вариантах осуществления вирусная частица демонстрирует предпочтение к ретроградному движению. В некоторых вариантах осуществления вирусная частица обладает способностью к ретроградному транспорту.
В некоторых вариантах осуществления вирусная частица, описанная в настоящей заявке, дополнительно включает нуклеиновую кислоту, кодирующую полезную нагрузку. В некоторых вариантах осуществления нуклеиновая кислота, кодирующая полезную нагрузку, включает промоторную последовательность, функционально связанную с кодирующей последовательностью, которая кодирует полезную нагрузку. Типичные промоторные последовательности включают, без ограничения, синапсин-1, CMV, GFAP, CAG, CaMKII, MBP, EF1альфа, TRE и mDlx. В некоторых вариантах осуществления кодирующую последовательность, которая кодирует полезную нагрузку, выбирают из группы, состоящей из кодирующего белок гена и нуклеиновой кислоты - ингибирующей РНК. В некоторых вариантах осуществления нуклеиновая кислота, ингибирующая РНК, представляет собой антисмысловой олигонуклеотид, миРНК или РНКи.
В некоторых вариантах осуществления полезная нагрузка представляет собой эффекторный белок. Типичные эффекторные белки включают, без ограничения, рекомбиназу (например, Cre или Flp), систему редактирования генов (например, CRISPR/Cas9, TALEN, нуклеазу цинкового пальца), оптогенетические реагенты (активаторы (например, канальный родопсин или его варианты)) или ингибиторы (например, галородопсин или Arch), хемогенетические реагенты (например, версии активатор/ингибитор систем DREADD или PSAM/PSEM), активаторы и/или ингибиторы клеточных сигнальных путей и ферменты эпигенетического контроля.
В некоторых вариантах осуществления полезная нагрузка представляет собой оптическую репортерную конструкцию. Типичные оптические репортерные конструкции включают, без ограничения, GCaMP6 (s, m или f), флуорофор (например, зеленый флуоресцентный белок (GFP), усиленный GFP (EGFP), красный флуоресцентный белок (RFP), желтый флуоресцентный белок (YFP), tdTomato), изменяющую цвет конструкцию (например, полезную нагрузку, которая экспрессирует один репортер в одной клеточной популяции, а другой репортер - в другой популяции), сенсоры глюкозы, jRCaMP, jRGECO и CaMPARI, индикаторы напряжения, вторичные мессенджеры, сигнализаторы рецепторов, транскрипционные репортеры, эпигенетические репортеры и нейромодуляторные репортеры.
В некоторых вариантах осуществления полезная нагрузка представляет собой вирусный белок. Типичным вирусным белком является G белок вируса бешенства. В некоторых вариантах осуществления вирусный белок представляет собой белок, который дополняет функцию вируса, отличного от AAV, или белок, который относится к клеточному и межклеточному транспорту.
В некоторых вариантах осуществления кодирующая последовательность, которая кодирует полезную нагрузку, представляет собой терапевтический ген. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген предназначен для лечения нейродегенеративного заболевания. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген представляет собой HSP104 для лечения болезни Альцгеймера или другого заболевания, связанного с токсичными агрегатами белков. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген представляет собой фратаксин для лечения атаксии Фридрейха. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген представляет собой лизосомальную глюкоцереброзидазу (GBA) для лечения болезни Прксинсона. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген представляет собой полиQ-связывающий белок для лечения болезни Хантингтона. В некоторых вариантах осуществления терапевтический ген представляет собой мотонейрон выживания 1 для лечения мышечной атрофии позвоночника, бокового амиотрофического склероза (ALS), аутизма, деменции, периферической невропатии, шизофрении или дегенерации сетчатки.
В некоторых вариантах осуществления полезная нагрузка представляет собой терапевтический фрагмент. Типичным терапевтическим фрагментом является антитело или его фрагмент. Типичным те
- 2 044679 рапевтическим фрагментом является иммуномодуляторный белок. Типичным терапевтическим фрагментом является молекула, действующая по принципу РНК-интерференции.
В некоторых вариантах осуществления вирусные частицы, описанные в настоящей заявке, демонстрируют на два порядка более высокий уровень ретроградного доступа к кортико-понтинным проекционным нейронам по сравнению с собачьим аденовирусом-2 (CAV-2). В некоторых вариантах осуществления ретроградный доступ к кортико-понтинным проекционным нейронам или афферентам к дорсомедиальному стриатуму (DMS) сравним с синтетическим индикатором, флуоресцентными гранулами Fluoro-Gold.
В некоторых аспектах изобретение относится к способу доставки полезной нагрузки в один или более нейронов. Такой способ обычно включает контактирование одного или более нейронов с вариантным аденоассоциированным вирусом (AAV), который включает полезную нагрузку, упакованную в нем, причем вариантный AAV включает капсидный белок, содержащий последовательность, выбранную из группы, состоящей из xxDxTKx (SEQ ID NO: 1) и xDxTKxx (SEQ ID NO: 2). В некоторых вариантах осуществления вариантный AAV имеет ретроградное движение в нейронах.
В некоторых вариантах осуществления нейроны являются проекционными нейронами. В некоторых вариантах осуществления нейроны находятся у пациента (например, в центральной нервной системе (ЦНС) пациента). В некоторых вариантах осуществления пациент является человеком. В некоторых вариантах осуществления пациент не является человеком (например, является приматом, грызуном, рептилией или птицей). В некоторых вариантах осуществления этап контактирования происходит в культуре клеток. В некоторых вариантах осуществления этап контактирования происходит in vivo посредством внутричерепной, внутриспинальной или внутримышечной инъекции.
Если не указано иное, все технические и научные термины, которые используются в настоящей заявке, имеют те же самые значения, как их обычно понимают специалисты в области техники, к которой относятся способы и композиции по настоящему изобретению. Несмотря на возможность использования на практике или в испытаниях настоящего изобретения способов и материалов, подобных или эквивалентных тем, которые описаны в настоящем документе, ниже описаны подходящие способы и материалы. В дополнение к этому, материалы, способы и примеры являются всего лишь иллюстрацией и не предназначены для ограничения. Все публикации, патентные заявки, патенты и другие цитируемые документы, упомянутые в настоящем документе, полностью включены в настоящее описание путем ссылки.
Описание фигур
На фиг. 1 показана направленная эволюция rAAV2-retro. На панели А фиг. 1 схематически представлена процедура направленной эволюции. Библиотеки плазмид, содержащие вариантные гены cap AAV, предварительно созданные методом ПЦР с внесением ошибок, вставки пептидов, рандомизированные петлевые участки и ДНК с перестановками упаковывали и инъецировали в черную субстанцию или глубокие ядра мозжечка. Через 3 недели ткани стриатума или заднего мозга, соответственно, удаляли, выделяли вирусные геномы и отобранные гены cap амплифицировали и упаковывали для следующего цикла отбора. На панели В фиг. 1 показаны перекрывающиеся субпопуляции корковых нейронов, выступающих в стриатум (полосатое тело) (СР: caudate-putamen (дорсальный стриатум)), таламус и верхнее двухолмие (SC, superior colliculus), ретроградно меченные путем инъекции rAAV2-retro, несущие различные флуоресцентные белки в соответствующее аксональную область.
На фиг. 2 показаны результаты экспериментов по количественной оценке эффективности ретроградного транспорта. На панели А фиг. 2 показан кортико-понтинный тракт, меченный путем инъекции rAAV2-retro в базальное ядро понтинов [В верхней части панели А показана схема эксперимента; соответствие нацеливания и качество инъекции контролировали путем совместно введенной AAV1-CAGEGFP. В нижней части панели А показан уровень экспрессии через 3 недели после инъекции. Масштабная полоска: 1 мм]. На панели В фиг. 2 показана схема выполнения количественного анализа [В верхней части панели В показана схема эксперимента; стрелка указывает на ожидаемое мечение ядерным GFP в корковых нейронах кортико-понтинного тракта. В средней части панели В представлено репрезентативное изображение мозга с инъецированным AAV2. В нижней части панели В представлено репрезентативное изображение мозга с инъецированным rAAV2retro. Масштабная полоска: 1 мм]. На панели С фиг. 2 показана схема полуавтоматической процедуры количественного определения. Флуоресцентные ядра (зеленые) автоматически детектировали и подсчитывали вдоль нарисованной вручную линии, указывающей длину кортикального слоя V (черный). На панели D фиг. 2 показана эффективность ретроградного транспорта для различных серотипов AAV и для собачьего аденовируса-2 (CAV-2). Планки погрешности представляют SEM. См. также фиг. 8.
На фиг. 3 показаны результаты экспериментов, демонстрирующие общий принцип ретроградного транспорта, обеспечиваемого rAAV2-retro. На панели А фиг. 3 представлены репрезентативные изображения, показывающие обширные меченные зоны в основных входных структурах дорсального стриатума, включая кору (изображение № 1), миндалину (изображение № 3) и таламус (изображение № 4). На панели В фиг. 3 показана схема автоматического количественного определения ретроградного мечения во всем мозге. Получали изображения мозга Rosa26-LSL-H2B-GFP с инъецированным hSyn1-Cre rAAV2
- 3 044679 retro для визуализации окрашенных DAPI ядер и зеленой флуоресценции в ядрах, экспрессирующих H2B-GFP. Зеленый канал используется для обнаружения меченых нейронов; синий канал выровнен с изображениями Nissl для стандартного мышиного мозга из института исследования мозга Аллена. Выравнивание позволяет распределить обнаруженные нейроны по различным областям, используя аннотацию, предоставленную в атласе мозга. Масштабная полоска: 1,25 мм. На панели С фиг. 3 показано количественное определение в масштабе всего мозга ретроградного мечения небольшой зоны дорсомедиального стриатума. Сокращения, используемые для обозначения различных областей мозга, даны в соответствии с Атласом мозга Аллена. Стрелка указывает на SNc. Планки погрешности представляют SEM.
На фиг. 4 представлены данные экспериментов, в которых систему rAAV2-retro объединяли с линиями драйвера Cre. На панели А фиг. 4 показана схема эксперимента. rAAV2-retro, несущий Creзависимый изменяющий цвет флуоресцентный репортер, инъецировали в стриатум Cre-линии, специфической в отношении кортикального слоя V. На панели В фиг. 4 показаны два кортикостриарных пути, меченные разными способами: в одном из путей - посредством Cre-зависимой инверсии репортера.
На фиг. 5 приведены данные экспериментов, показывающие, что rAAV2-retro поддерживает экспрессию трансгена на уровне, достаточном для изучения функциональной цепи. На панели А фиг. 5 представлена схема эксперимента. Экспрессия индикатора кальция GCaMP6f ограничена кортикопонтинными нейронами при помощи локализованной инъекции rAAV2-retro в базальные ядра понтинов. Панель В фиг. 5 представляет собой поперечное сечение мозга, на котором показана экспрессия GCaMP6f во всем кортико-понтинном тракте. На панели С фиг. 5 показана максимальная проекция изображения, полученного методом двухфотонной кальциевой визуализации, показывающего сомы пирамидного тракта слоя V и апикальные дендриты. На панели D фиг. 5 показана активность 89-ти представляющих интерес областей во время выполнения движений с одной свободной рукой (вторая рука зафиксирована) (ломаная линия означает тональный сигнал go). Панель Е и панель F на фиг. 5 представляют собой два примера одиночных кортико-понтинных нейронов во время 40 последовательных испытаний (результаты на панели В и на панели D фиг. 5 показаны для одного и того же животного).
На фиг. 6 приведены данные, показывающие, что система rAAV2-retro позволяет редактировать геном in vivo с помощью CRISPR/Cas9. На панели А фиг. 6 представлена схема эксперимента [В верхней части панели А показано, что система rAAV2-retro использовалась для доставки Staphylococcus aureus Cas9 (SaCas9) - единственной комбинации гидовой РНК, разработанной для уменьшения уровня экспрессии tdTomato. В нижней части панели А показано, что rAAV2-retro, несущий полезную нагрузку SaCas9anti-tdTomato, инъецировали в базальные ядра понтинов мышей, экспрессирующие tdTomato из одного геномного локуса в нейронах слоя V]. На панели В фиг. 6 представлены репрезентативные изображения срезов головного мозга животных, которым вводили систему CRISPR/Cas9, нацеленную на tdTomato или несущую нецелевую гидовую РНК. SaCas9, меченный эпитопом, позволяет идентифицировать ретроградно меченные нейроны (канал зеленого цвета). Направленные вверх стрелки показывают ожидаемое мечение после успешной абляции tdTomato; направленные вниз стрелки показывают ожидаемое мечение, если экспрессия tdTomato не подверглась воздействию. На панели С фиг. 6 показана эффективность абляции. Планки погрешности представляют SEM.
На фиг. 7 представлены данные, показывающие, что rAAV2-retro участвует в эффективном доступе к проекционным нейронам у крысы (данные, показанные на фиг. 7, относятся к данным, показанным на фиг. 1). На панели А фиг. 7 представлена схема инъекции. Отдельные партии rAAV2-retro, экспрессирующего EGFP или tdTomato, вводили в стриатум или в верхний бугорок четверохолмия, соответственно. На панелях В-Е фиг. 7 показаны проекционные нейроны в различных областях мозга, к которым получен доступ посредством этих локализованных инъекций, с получением изображений через 3 недели после доставки вируса.
На фиг. 8 представлены репрезентативные изображения головного мозга животных, которым инъецировали различные серотипы AAV в базальные ядра понтинов, показывающие, что ни один из встречающихся в природе серотипов AAV не соответствует характеристикам rAAV2-retro в кортикопонтинной цепи (данные, показанные на фиг. 8, относятся к данным, показанным на фиг. 2).
Фиг. 9 представлены данные, показывающие пониженное сродство rAAV2-retro к гепарину по сравнению с его родительским серотипом AAV2 (данные, показанные на фиг. 9, относятся к данным, показанными на фиг. 1). На панели А фиг. 9 представлена схема оценки связывания гепарина. На панели В фиг. 9 показана фракция вируса, элюированная путем повышения концентраций NaCl после загрузки в 150 мМ NaCl. Фракция загрузки представляет собой вирус, извлеченный из проточной колонки после загрузки образца в 150 мМ NaCl. Планки погрешности представляют SD.
Подробное описание изобретения
Рекомбинантные аденоассоциированные вирусы (rAAV) стали эффективной платформой для генной терапии in vivo, поскольку они обеспечивают высокий уровень экспрессии трансгена, нетоксичны и вызывают минимальные иммунные ответы. Эти свойства лежали в основе решения по предоставлению первого полного официального одобрения лечения методами генной терапии путем rAAVопосредованного восстановления дефицита липопротеинлипазы (см., например, Gaudet et al., 2010, Supplem Atherosclerosis Supplem., 11:55-60). В клинических испытаниях rAAV демонстрируют большие пер
- 4 044679 спективные возможности лечения ряда неврологических расстройств и являются одними из наиболее распространенных векторов, используемых в исследованиях по нейробиологии. После открытия того факта, что AAV может подвергаться ретроградному транспорту (Kaspar et al., 2002, Mol. Ther., 5:50-56), rAAV стали использовать в некоторых исследованиях для ретроградного доступа к проекционным нейронам в избранных цепях, но их природная предрасположенность к ретроградному транспорту является низкой, что затрудняет изучение роли проекционных нейронов в выполнении вычислений цепей или прогрессировании заболеваний.
В настоящей заявке описан новый вариант rAAV (rAAV2-retro), который в дополнение к своей обычной способности инфицировать тела нейронных клеток в месте воздействия надежно интернализуется в аксонах и обеспечивает ретроградный доступ к проекционным нейронам с эффективностью, сравнимой с классическим реагентами ретроградного мечения, такими как синтетические красители. Описанная в настоящей заявке система rAAV2-retro доставки генов может быть использована сама по себе или в комбинации с линиями драйвера рекомбиназы Cre для достижения долгосрочной экспрессии трансгена на высоком уровне, которая является достаточной для эффективного функционального изучения функции нервной цепи, а также для редактирование генома в целевых популяциях нейронов.
При ретроградном транспорте молекулы и/или органеллы доставляются из концов аксонов к телу клетки. Ретроградный аксональный транспорт опосредуется цитоплазматическим динеином и используется, например, для отправки химических сообщений и продуктов эндоцитоза, направляемых в эндолизосомы, из аксона обратно в клетку. Работая in vivo со средней скоростью примерно 2 мкм/с, быстрый ретроградный транспорт может охватывать 10-20 сантиметров в сутки. Быстрый ретроградный транспорт возвращает использованные синаптические везикулы и другие материалы в сому и сообщает соме о состоянии на концах аксонов. Таким образом, используемый в настоящем описании ретроградный транспорт относится к движению в аксоне в направлении к телу клетки.
Последовательности нуклеиновых кислот и полипептидов аденоассоциированного вируса (AAV).
Как описано в настоящей заявке, были идентифицированы консенсусные последовательности, которые, если они присутствуют в капсидном белке AAV, приводят к значительному повышению эффективности ретроградного транспорта. Такими консенсусными последовательностями являются xxDxTKx (SEQ ID NO: 1) или xDxTKxx (SEQ ID NO: 2). Для демонстрации эффективности описанных в настоящей заявке консенсусных последовательностей, используемых для обеспечения способности к ретроградному транспорту, создавали семнадцать различных капсидных последовательностей, каждая из которых содержит описанные в настоящей заявке консенсусные последовательности, и было показано их предпочтение к ретроградному движению в нейронах. Последовательности нуклеиновых кислот этих 40 капсидных последовательностей приведены в SeQ ID NO: 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53, 55, 57, 59, 61, 63, 65, 67, 69, 71, 73, 75 и 77, а кодируемые капсидные полипептиды, каждый из которых содержит одну из консенсусных последовательностей, описанных в настоящей заявке, приведены в SEQ ID NO: 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 и 78, соответственно.
Дополнительно к капсидным полипептидам, имеющим последовательности, приведенные в SEQ ID NO: 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 и 78, представлены полипептиды, которые имеют, по меньшей мере, 95% идентичность последовательности (например, по меньшей мере, 96%, по меньшей мере, 97%, по меньшей мере, 98%, по меньшей мере, 99% или 100% идентичность последовательности) по отношению к капсидным полипептидам, имеющим последовательности, приведенные в SEQ ID NO: SEQ ID NO: 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 52, 54, 56, 58, 60, 62, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 и 78. Аналогично, дополнительно к молекулам нуклеиновой кислоты, имеющим последовательности, приведенные в SEQ ID NO: SEQ ID NO: 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53, 55, 57, 59, 61, 63, 65, 67, 69, 71, 73, 75 и 77, приведены молекулы нуклеиновых кислот, которые имеют по меньшей мере 95% идентичность последовательности (например, по меньшей мере, 96%, по меньшей мере, 97%, по меньшей мере, 98%, по меньшей мере, 99% или 100% идентичность последовательности) по отношению к молекулам нуклеиновых кислот, имеющим последовательности, приведенные в SEQ ID NO: SEQ ID NO: 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33, 35, 37, 39, 41, 43, 45, 47, 49, 51, 53, 55, 57, 59, 61, 63, 65, 67, 69, 71, 73, 75 и 77.
При вычислении процентной идентичности последовательностей две последовательности выравнивают и определяют количество идентичных совпадений нуклеотидов или аминокислотных остатков между двумя последовательностями. Количество идентичных совпадений делят на длину выровненной области (т.е., количество выровненных нуклеотидов или аминокислотных остатков) и умножают на 100, получая значение идентичности последовательности, выраженное в процентах. Понятно, что длина выровненной области может быть частью одной или обеих последовательностей вплоть до полной длины самой короткой последовательности. Также должно быть понятно, что одна последовательность может быть выровнена с более чем одной другими последовательностями и, следовательно, может иметь разные процентные значения идентичности последовательности в каждой выровненной области.
Выравнивание двух или более последовательностей для определения процента идентичности по
- 5 044679 следовательностей может быть выполнено с помощью алгоритма, описанного у Altschul et al. (1997, Nucleic Acids Res., 25:3389 3402) в том виде, как он включен в программы BLAST (основной инструмент поиска локального выравнивания), доступные по адресу ncbi.nlm.nih.gov во Всемирной паутине. Поиск BLAST можно использовать для определения процента идентичности последовательности между последовательностью (нуклеиновой кислоты или аминокислотных остатков) и любой другой последовательностью или ее частью, выровненной с помощью алгоритма, описанного у Altschul et al., BLASTN - это программа, используемая для выравнивания и сравнения последовательностей нуклеиновых кислот для определения уровня идентичности, в то время как BLASTP - это программа, используемая для выравнивания и сравнения аминокислотных последовательностей для определения уровня идентичности. При использовании программ BLAST для расчета процента идентичности между одной последовательностью и другой последовательностью обычно используются параметры по умолчанию соответствующих программ.
Также предлагаются векторы, содержащие молекулы нуклеиновых кислот, которые кодируют полипептиды. Векторы, включая векторы экспрессии, являются коммерчески доступными или могут быть получены рекомбинантными методами. Вектор, содержащий молекулу нуклеиновой кислоты, может иметь один или более элементов для экспрессии, функционально связанных с такой молекулой нуклеиновой кислоты, и дополнительно может включать последовательности, такие как последовательности, кодирующие селектируемый маркер (например, ген устойчивости к антибиотику), и/или последовательности, которые могут быть использованы при очистке полипептида (например, метки 6xHis). Элементы для экспрессии включают последовательности нуклеиновых кислот, которые направляют и регулируют экспрессию кодирующих последовательностей нуклеиновой кислоты. Одним из примеров элемента экспрессии является промоторная последовательность. Элементы экспрессии также могут включать одну или более интронных, энхансерных последовательностей, элементы ответа или индуцибельные элементы, которые модулируют экспрессию молекулы нуклеиновой кислоты. Элементы экспрессии могут быть бактериальными, дрожжевыми, полученными от насекомого, млекопитающего или вирусными, а векторы могут содержать комбинацию элементов экспрессии из разных источников. Используемый в настоящей заявке термин функционально связанный означает, что элементы экспрессии расположены в векторе относительно кодирующей последовательности таким образом, чтобы они могли направлять или регулировать экспрессию кодирующей последовательности.
Молекула нуклеиновой кислоты, например, молекула нуклеиновой кислоты в векторе (например, векторе экспрессии, вирусном векторе) может быть введена в клетку-хозяина. Термин клетка-хозяин относится не только к конкретной клетке(-ам), в которую была введена молекула нуклеиновой кислоты, но также к потомству или потенциальному потомству такой клетки. Специалистам в данной области известны многие подходящие клетки-хозяева; клетки-хозяева могут быть прокариотическими клетками (например, E.coli) или эукариотическими клетками (например, дрожжевыми клетками, клетками насекомых, растительными клетками, клетками млекопитающих). Типичные клетки-хозяева могут включать, без ограничения, А549, WEHI, 3T3, 10Т1/2, ВНК, MDCK, COS 1, COS 7, BSC 1, BSC 40, BMT 10, VERO, WI38, HeLa, клетки 293, Saos, C2C12, L клетки, НТ1080, HepG2 и первичные фибробласты, гепатоциты и миобласты, полученные от млекопитающих, включая человека, обезьяну, мышь, крысу, кролика и хомяка. Способы введения молекул нуклеиновых кислот в клетки-хозяева хорошо известны в данной области и включают, без ограничения, осаждение фосфатом кальция, электропорацию, тепловой шок, липофекцию, микроинъекцию и вирус-опосредованный перенос нуклеиновой кислоты (например, трансдукцию).
Что касается полипептидов, термин очищенный относится к полипептиду (т.е., пептиду или полипептиду), который был отделен или очищен от клеточных компонентов, окружающих в естественных условиях указанный полипептид. Как правило, полипептид считается очищенным, когда он составляет по меньшей мере 70% (например, по меньшей мере 75%, 80%, 85%, 90%, 95% или 99%) относительно сухого веса, не содержит полипептидов и молекул, связанных с ним в естественных условиях. Поскольку химически синтезированный полипептид по природе отделен от сопровождающих его компонентов, синтетический полипептид считается очищенным, но в дальнейшем его можно выделить из компонентов, используемых для синтеза этого полипептида (например, аминокислотных остатков). Что касается молекул нуклеиновой кислоты, изолированный относится к молекуле нуклеиновой кислоты, которая отделена от других молекул нуклеиновых кислот, обычно связанных с ней в геноме. Кроме того, изолированная молекула нуклеиновой кислоты может включать сконструированную молекулу нуклеиновой кислоты, такую как рекомбинантная или синтетическая молекула нуклеиновой кислоты.
Полипептиды могут быть получены (например, очищены) из природных источников (например, из биологического образца) известными методами, такими как ионообменная DEAE, гель-фильтрация и/или гидроксиапатитная хроматография. Очищенный полипептид также может быть получен, например, путем экспрессии молекулы нуклеиновой кислоты в векторе экспрессии или химическим синтезом. Степень чистоты полипептида может быть измерена любым подходящим методом, например колоночной хроматографией, электрофорезом в полиакриламидном геле или ВЭЖХ анализом. Аналогично, молекулы нуклеиновой кислоты могут быть получены (например, выделены) обычными методами, такими как, без ограничения, методами рекомбинантных нуклеиновых кислот (например, расщеплением и лигирова
- 6 044679 нием рестриктазой) или полимеразной цепной реакцией (ПЦР; см., например, PCR Primer: A Laboratory Manual, Dieffenbach & Dveksler, Eds., Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1995). Кроме того, изолированные молекулы нуклеиновых кислот могут быть химически синтезированы.
Методы получения вирусных частиц, которые демонстрируют предпочтение к ретроградному движению в нейронах.
После получения капсидного полипептида или после создания и экспрессии молекулы нуклеиновой кислоты для получения капсидного полипептида, полипептид может быть упакован в вирусную частицу при помощи, например, упаковывающей клетки-хозяина. Компоненты вирусной частицы (например, последовательности rep, последовательности cap, последовательности инвертированного концевого повтора (ITR)) могут быть временно или стабильно введены в упаковывающую клетку-хозяина с использованием одного или более векторов. В то время как капсидный полипептид вирусной частицы может содержать консенсусную последовательность, описанную в настоящей заявке, остальные компоненты могут быть из одного или более известных серотипов AAV (например, AAV2, AAV8 и т.д.).
Такие вирусные частицы могут быть очищены обычными методами. Используемый в настоящей заявке термин очищенные вирусные частицы относится к вирусным частицам, освобожденным от компонентов смеси, в которой они были сконструированы, таких как, без ограничения, вирусных компонентов (например, последовательностей rep, последовательностей cap), упаковывающих клеток-хозяев, и частично или не полностью собранных вирусных частиц.
После сборки вирусные частицы могут быть подвергнуты скринингу, например, на способность к репликации; свойства переноса генов; способность связываться с рецептором; и/или доминирование серотипа в популяции (например, в популяции людей). Определение того, может ли вирусная частица реплицироваться, является обычным в данной области техники и обычно включает инфицирование клеткихозяина некоторым количеством вирусных частиц и определение, увеличивается ли количество вирусных частиц с течением времени. Определение, способна ли вирусная частица осуществлять перенос гена, также является обычным в данной области и обычно включает инфицирование клеток-хозяев вирусными частицами, содержащими трансген (например, обнаруживаемый трансген, такой как репортерный ген). После заражения и очистки от вируса клетки-хозяева могут быть оценены на наличие или отсутствие трансгена. Определение того, связывается ли вирусная частица со своим рецептором, является обычным методом в данной области техники, и такие методы могут быть выполнены in vitro или in vivo.
В данной области техники обычно выполняют определение доминирования серотипа вирусной частицы, которое как правило включает использование иммуноанализа для определения доминирования одного или более антител в образцах (например, образцах крови), пролученных из конкретной популяции индивидуумов. В данной области техники под доминированием серотипа понимают долю пациентов в популяции, которая является серопозитивной (т.е., подверглась воздействию определенного патогена или иммуногена), и рассчитывается как число пациентов в популяции, которые продуцируют антитело против конкретного патогена или иммуногена, деленное на общее количество индивидуумов в популяции. В данной области техники хорошо известны иммуноанализы, которые включают, без ограничения, иммунодот, вестерн-блот, иммуноферментный анализ (EIA), твердофазный иммуноферментный анализ (ELISA) или радиоиммуноанализ (RIA). Аналогично, известно несколько методов определения уровня нейтрализующих антител в образце сыворотки. Например, в анализе нейтрализующих антител измеряют титр, при котором экспериментальный образец содержит концентрацию антитела, которая нейтрализует инфекцию на 50% или более по сравнению с контрольным образцом, не содержащем антитела. См. также, Fisher et al. (1997, Nature Med., 3:306-12); и Manning et al. (1998, Human Gene Ther., 9:477-85).
Методы использования вирусов, которые демонстрируют предпочтение к ретроградному движению в нейронах.
Вирус или его часть, как описано в настоящем документе, можно использовать в различного рода исследованиях и/или для применения в терапии. Например, вирус или его часть, описанные в настоящей заявке, можно использовать в медицине человека или животных для генной терапии (например, в векторе или векторной системе для переноса генов) или для вакцинации (например, для презентации антигена). Более конкретно, вирус или его часть, описанные в настоящей заявке, можно использовать для добавления генов, воспроизводства генов, генетической доставки терапевтического полипептида, генетической вакцинации, сайленсинга генов, редактирования генома, генной терапии, доставки РНКи, доставки кДНК, доставки мРНК, доставки микроРНК, поглощения микроРНК, генетической иммунизации, оптогенетической генной терапии, трансгенеза, ДНК-вакцинации или ДНК-иммунизации.
Клетка-хозяин может быть трансдуцирована или инфицирована вирусом или его частью in vitro (например, растущая в культуре клетка) или in vivo (например, у пациента, например человека или не человека). Клетки-хозяева, которые могут быть трансдуцированы или инфицированы вирусом или его частью in vitro описаны в настоящей заявке; клетки-хозяева, которые могут быть трансдуцированы или инфицированы вирусом или его частью in vivo, включают, без ограничения, проекционные нейроны (например, кортико-понтинные проекционные нейроны, симпатические проекционные нейроны, проекционные нейроны центральной нервной системы), афференты к дорсомедиальному стриатуму (DMS), спинальные кортикальные/грибовидные нейроны, прецеребеллярные нейроны, входы в базальные ганглии,
- 7 044679 преталамические нейроны, двигательные нейроны, сенсорные нейроны или другие нейроны или клетки центральной нервной системы.
Вирус или его часть, описанные в настоящей заявке, могут быть модифицированы путем включения полезной нагрузки. Полезная нагрузка обычно включает по меньшей мере одну нуклеиновую кислоту (например, промоторную последовательность, функционально связанную с кодирующей последовательностью, которая кодирует полезную нагрузку). В определенных случаях полезной нагрузкой может быть ингибирующая нуклеиновая кислота. В данной области техники известны ингибирующие нуклеиновые кислоты, которые включают, например, антисмысловые олигонуклеотиды, малые интерферирующие РНК (миРНК) и молекулы РНК-интерференции (РНКи). В определенных случаях полезная нагрузка может представлять собой один или более генов, кодирующих белок. Гены, кодирующие белок, включают, без ограничения, оптическую репортерную конструкцию, терапевтический ген или эффекторный белок.
В данной области техники известны многие типы оптических репортерных конструкций, и приведенный ниже список служит в качестве примера и не является исчерпывающим. Например, оптические репортерные конструкции включают, без ограничения, GCaMP6 (GCaMP6s, GCaMP6m или GCaMP6f; см. WO 2014/059154), флуорофор (например, зеленый флуоресцентный белок (GFP), усиленный GFP (EGFP), красный флуоресцентный белок (RFP), желтый флуоресцентный белок (YFP), tdTomato), изменяющую цвет конструкцию (например, полезную нагрузку, которая экспрессирует один репортерный белок в одной клеточной популяции, а другой репортерный белок - в другой популяции), сенсоры глюкозы, (см., например, заявку на патент США 2015/0111222), jRCaMP (патент США 9,644,007), jRGECO (см., например, патент США 9,644,007), CaMPARI (см., например, патент США 9,518,996), индикаторы напряжения, вторичные мессенджеры, сигнализаторы рецепторов, транскрипционные репортеры, эпигенетические репортеры и нейромодуляторные репортеры.
Терапевтические гены также известны в данной области техники и их выбор зависит от конкретного заболевания или расстройства, подверженного лечению. Например, терапевтический ген может быть предназначен для лечения нейродегенеративного расстройства. Типичные терапевтические гены (или кодируемый полипептид) и связанные с ними нейродегенеративные расстройства включают, без ограничения, HSP104 для лечения болезни Альцгеймера, Ataxis (например, фратаксин) для лечения атаксии Фридрейха, лизосомальную глюкоцереброзидазу (GBA) для лечения болезни Паркинсона, полиQсвязывающий белок для лечения болезни Хантингтона, мотонейрон выживания 1 для лечения атрофии мышц позвоночника и бокового амиотрофического склероза (ALS), аутизма, деменции, периферической невропатии, шизофрении и дегенерации сетчатки. В некоторых случаях полезная нагрузка может представлять собой терапевтический фрагмент (в отличие от гена). Терапевтические фрагменты включают, например, антитело или его фрагмент, иммуномодулирующий белок или молекулу, действующую по принципу РНК-интерференции (РНКи).
Используемый в настоящей заявке термин эффекторный белок относится к любому типу белка, который оказывает влияние на клетку или ее содержимое (например, нуклеиновые кислоты, белки, органеллы или процессы, в которых участвует любой элемент из вышеперечисленных). Например, типичные эффекторные белки включают, без ограничения, рекомбиназы (например, Cre или Flp), системы редактирования генов (например, CRISPR/Cas9, TALEN, нуклеазу цинкового пальца), оптогенетические реагенты (активаторы (например, канальный родопсин или его варианты)) или ингибиторы (например, галородопсин или Arch), хемогенетические реагенты (например, версии активатор/ингибитор систем DREADD или PSAM/PSEM), активаторы и/или ингибиторы клеточных сигнальных путей и ферменты эпигенетического контроля.
Понятно, что может оказаться желательной доставка вирусного белка, который дополняет или подавляет функцию вируса (например, вируса, отличного от AAV). Например, вирусный белок, который является рецептором для проникновения в клетку (например, белок G бешенства, белок, который связан с клеточным и/или межклеточным транспортом).
Для управления последовательностью, кодирующей полезную нагрузку, можно использовать любое количество промоторов. В данной области известны конститутивные промоторы, а также тканеспецифические промоторы (например, нейрон-специфические промоторы). Исключительно в качестве примера, промотор может быть промотором синапсина-1, CMV, GFAP, CAG, CaMKII, MBP, EF1альфа, mDlx или TRE.
Вирус или его часть, обычно суспендированная в физиологически совместимом носителе, может быть введена пациенту (например, человеку или пациенту, не являющемуся человеком (например, примату, грызуну, рептилии или птице)). Подходящие носители включают физиологический раствор, который может быть приготовлен путем использования различных буферных растворов (например, забуференного фосфатом солевого раствора), лактозы, сахарозы, фосфата кальция, желатина, декстрана, агара, пектина и воды. Вирус или его часть вводят в количествах, достаточных для осуществления трансдукции или инфицирования клеток и для обеспечения уровней, достаточных для переноса и экспрессии генов, позволяющих получить терапевтический эффект, не вызывая при этом чрезмерных побочных эффектов. Обычные и фармацевтически приемлемые пути введения включают, без ограничения, внутричерепную, внутриспинальную или внутримышечную инъекцию. Дополнительные пути введения включают, напри
- 8 044679 мер, пероральный, интраназальный, интратрахеальный, ингаляционный, внутривенный, внутриглазной, подкожный, внутрикожный, трансмукозальный или другие пути введения. При желании пути введения могут быть объединены.
Доза вируса или его части, вводимая пациенту, зависит главным образом от таких факторов, как состояние, подвергаемое лечению, а также возраст, вес и состояние здоровья пациента. Например, терапевтически эффективная доза вируса или его части, вводимой человеку, обычно находится в диапазоне от примерно 0,1 мл до примерно 10 мл раствора, содержащего концентрации от примерно 1x101 до 1х1012 копий генома (GC) вирусов (например, от 1x103 до 1x109 GC). Трансдукцию и/или экспрессию трансгена можно контролировать в различные моменты времени после введения с помощью анализа ДНК, РНК или белка. В некоторых случаях уровни экспрессии трансгена можно контролировать для определения частоты и/или количества дозы.
Важно отметить, что описанные в настоящей заявке частицы AAV-retro имеют на два порядка более высокий уровень ретроградного доступа к кортико-понтинным проекционным нейронам, чем, например, собачий аденовирус-2 (CAV-2), а ретроградный доступ к некоторым нейронам (например, кортикопонтинным проекционным нейронам или афферентам к дорсомедиальному стриатуму (DMS)) сопоставим с доступом, наблюдаемым в случае синтетического индикатора, такого как флуоресцентные гранулы Fluoro-Gold®.
В соответствии с настоящим изобретением могут быть использованы общепринятые методы молекулярной биологии, микробиологии, биохимии и методы рекомбинантной ДНК, известные специалистам в данной области. Такие методы подробно описаны в литературе. Изобретение дополнительно описано в приведенных ниже примерах, которые не следует рассматривать как ограничивающие объем способов и композиций, описанных в формуле изобретения.
Примеры
Пример 1. Экспериментальные процедуры.
Все процедуры выполняли в соответствии с протоколами, утвержденными Исследовательским кампусом Джанелиа (Janelia) и Комитетом по уходу за животными и их использованию Университета Калифорнии в Беркли.
Пример 2. Создание библиотеки и продуцирование вируса.
В начале процедуры направленной эволюции использовали четыре ранее созданные вирусные библиотеки: 1) библиотеку случайного мутагенеза, созданную из гена cap AAV2 (кодирующего вирусные белки VP1-3 и активирующий сборку белок (ААР)) методом ПЦР с внесением ошибок (Maheshri et al., 2006, Nat. Biotechnol., 24:198-204); 2) библиотеку вариантов гена cap AAV2, содержащих 7-мерные пептидные вставки между N587 и R588 (Muller et al., 2003, Nat. Biotechnol., 21:1040-6); 3) библиотеку вариантов гена cap AAV2, содержащих рандомизированные петлевые области (Koerber et al., 2009, Mol. Ther., 17:2088-95); и 4) библиотеку ДНК перестановок, созданную из последовательностей гена cap дикого типа AAV1, AAV2, AAV4, AAV5, AAV6, AAV8 и AAV9 (Koerber et al., 2008, Mol. Ther., 16:1703-9). Каждый пул мутантной ДНК сначала субклонировали в компетентную по репликации пакующую плазмиду AAV для создания библиотеки вирусных плазмид, которые, будучи упакованными в вирионы AAV, могут быть подвергнуты отбору в отношении любого нового свойства или функции. Компетентная по репликации система AAV вводит мутантный ген cap в вирусную полезную нагрузку, и, таким образом, генотип каждого варианта связан с его фенотипом. Капсидные последовательности с нужным свойством могут быть затем извлечены путем анализа последовательности ДНК инкапсулированного генома AAV.
Четыре компетентные по репликации библиотеки AAV были упакованы путем временной кальцийфосфатной трансфекции клеток НЕК2 93-Т с последующим сбором вируса, центрифугированием в градиенте йодиксанола и фильтрацией на устройстве Amicon (Maheshri et al., 2006, Nat. Biotechnol., 24:198204).
Пример 3. In vivo инъекция вируса и индикатора.
Для локализованной in vivo доставки вируса мышей или крыс анестезировали изофлураном (~2% по объему в О2; SurgiVet, Smiths Medical), и в черепе просверлили небольшое отверстие над местом введения инъекции (см. табл. 1). В некоторых участках инъекции вводили несколько инъекций на разную глубину (см. табл. 1). В случае инъекции вируса на каждую глубину в ткань медленно вводили ~50-100 нл (мыши) или 250-500 нл (крысы) содержащего вирус раствора. В случае инъекции индикатора в тех же участках, предназначенных для каждой целевой инъекции, вводили 50 нл 5% раствор гранул Fluoro-Gold (Fluorochrome, Denver, CO) в 0,9% NaCl или 100 нл ретро-гранул (LumaFluor, Durham, NC), разведенных в отношении 1:1 в 0,9% NaCl. Инъекции выполняли при помощи вытянутой стеклянной пипетки (проколотой и скошенной до 25-30 мкм (наружный диаметр); Drummond Scientific, KWiretrol II Capillary Microdispenser), заполненной минеральным маслом. В пипетку вставляли подходящий поршень и продвигали вперед для перемещения содержимого с помощью гидравлического манипулятора (Narashige, МО-10).
Для загрузки пипетки вирусом втягивали плунжер. Инъекционную пипетку устанавливали с помощью манипулятора Sutter MP-285.
- 9 044679
Таблица 1
Координаты, использованные в этом исследовании
Мишень для инъекции Координаты инъекции, мм*
Мышиный SNr А/Р: -3,5; M/L: 1,5; D/V: -4,0 и -4,5
Мозжечок мыши А/Р: 7,1; M/L: 1,4; D/V: -0,8 и -0,5
Дорсомедиальный стриатум мыши А/Р: 0,5; M/L: 1,5; D/V: -2,5 и -2,3
Мышиное ядро понтинов (BPN) А/Р: 0,40; M/L: 0,40; D/V: -5,5, -5,75 и -6,0
Дорсомедиальный стриатум крысы А/Р: 2,16; M/L: 1,7; D/V: -4,3
Верхнее двухолмие крысы А/Р: -6,0; M/L: ±1,8; D/V: -5,45
*Все координаты А/Р даны относительно Брегмы.
Пример 4. Выбор и оценка библиотеки.
Четыре мутантные вирусные библиотеки объединяли и инъецировали либо в SNr, либо в мозжечок взрослых (6-8 недель) мышей дикого типа C57/B16J (любого пола; Charles River). Через три недели после инъекций ткань стриатума или заднего мозга удаляли соответствующим образом, ДНК извлекали, и вирионы, которые успешно достигли удаленной ретроградной ткани-мишени, амплифицировали методом ПЦР и повторно клонировали в пакующую плазмиду rcAAV для создания новой компетентной по репликации библиотеки AAV для следующего цикла отбора. После трех этапов отбора спасенные гены cap были случайным образом мутированы методом ПЦР с внесением ошибок с использованием 5'-ACG CGG AAG CTT CGA TCA ACT ACG CAG-3' (SEQ ID NO: 79) и 5'-AGA CCA AAG ТТС AAC TGA AAC GAA TTA AAC GG-3' (SEQ ID NO: 80) в качестве прямого и обратного праймеров, соответственно.
Затем проводили два дополнительных цикла отбора in vivo. Отдельные изоляты секвенировали после циклов 4 и 5 для оценки степени обогащения библиотеки (табл. 2).
Таблица 2
Конвергенция последовательностей пептидной вставки для вариантов, изолированных в циклах 4 и 5
Клон SEQ ID NO клона (нуклеиновая Петля SEQ ID NO петл и E36G Е67А V182 S207 G N382 D N408 S Т567 А Q598 L 1648 V V708 I М235 L F284 Y S492 N496 друг ие
4R-H- 3 3/4 LAISDQTKH А 81 X
4R-H4 5/6 LAISDQTKH А 81 X X D L59P
4R-H5 7/8 LAKDQTKST А 82 X X
4R-H9 9/10 LANQDYTKT А 83 Р
4R-H10 11/1 2 LAISDQTKH А 81 X Y
4R-H12 13/1 4 LANQDYTKT А 83 X X
4R-H15 15/1 6 LAISDQTKH А 81 X
4R-H16 17/1 8 LAHDITKNI А 84 X X
4R-H17 19/2 0 LAHDITKNI А 84 X X
4R- SD-2 21/2 2 LAHDITKNI А 84 X X X X
4R- SD-3 23/2 4 LAHDITKNI А 84 X X
4R- SD-10 25/2 6 LAISDQTKH А 81 X X
4R- SD-11 27/2 8 LANQDYTKT А 83 Е X Р
4R- SD-12 29/3 0 LAISDQTKH А 81 X X Q186 R, D5 94N
- 10 044679
4R- SD-15 31/3 2 LADQDYTKT A 85 X X X
4R- SD-16 33/3 4 LAISDQTKH A 81 E X X D69E
4R- SD-17 35/3 6 LAISDQTKH A 81 E X Y
4R- SD-18 LAHDITKNI A 84 X X
5R- Hindl 37/3 8 LAQPDATKN A 86 X I X
5R- Hind2 39/4 0 LAHDITKNI A 84 X X X E12V ,K13 7E
5R- Hind3 41/4 2 LANQDYTKT A 83 X X R585 G, S6 62C
5R- Hind6 43/4 4 LADQDYTKT A 85 X X
5R- Hind8 45/4 6 LANQDYTKT A 83 X X
5RHindl 0 47/4 8 LADQDYTKT A 85 X X X
5RHindl 1 49/5 0 LANQDYTKT A 83 X X X N335 К
5RHindl 2 51/5 2 LAHDITKNI A 84 X X
5RHindl 4 53/5 4 LAISDQTKH A 81 X S423 N
5RHindl 5 55/5 6 LAISDQTKH A 81 X N214 D
5RHindl 6 57/5 8 LAHDITKNI A 84 X X
5RHindl 7 59/6 0 LADQDYTKT A 85 X X X
5RHindl 8 61/6 2 LAISDQTKH A 81 X
5RHindl 9 63/6 4 LAHDITKNI A 84 X X X X H38L ,E14 7A
5RHind2 2 65/6 6 LANQDYTKT A 83 X X P N227 D,N5 87S
5RHind2 3 67/6 8 LAHDITKNI A 84 X X X X
5RCel 69/7 0 LANQDYTKT A 83 X X P D41G ,K10 5E,G 163D
5R- Ce5 71/7 2 LADQDYTKT A 85 X X
5R- Ce6 73/7 4 LAQPDATKN A 86 X X X P2 9A
5R- Ce8 75/7 6 LAKDQTKST A 82 X
5R- Ce9 77/7 8 LANQDYTKT A 83 X X X X P
Для вторичного скрининга в конце цикла 5 отбирали семнадцать вариантов, и соответствующие последовательности гена cap повторно клонировали в хелперную плазмиду rAAV. Затем, используя Vector BioLabs, Inc (Philadelphia, PA), готовили отдельные препараты с высоким титром родительского AAV2 дикого типа и каждого из 17 выбранных мутантных вариантов, несущих полезную нагрузку CMV-EGFP. Промотор CMV обычно является слабым в нейронах, и, следовательно, этот вторичный скрининг обеспечил жесткую оценку эффективности ретроградного транспорта. Отдельные варианты AAV вводили либо в мозжечок, либо в бледный шар. Через 3 недели эндогенную неамплифицированную флуоресценцию EGFP визуализировали в областях, которые, согласно ожиданиям, в случае эффективного ретроградного транспорта оказались бы меченными. Мутантный 5R-Hind6 (SEQ ID NO: 43, кодирующая SEQ ID NO: 44) показал наиболее сильный ретроградный транспорт в обеих цепях и, таким образом, был выбран для дальнейшего анализа и получил название rAAV2-retro.
Пример 5. Анализ связывания гепарина.
Сродство AAV2-retro и AAV2 дикого типа к гепарину анализировали, как описано ранее (Jang et al., 2011, Mol. Ther., 19:667-75). Вкратце, примерно 1011 очищенных геномных частиц загружали в колонку с гепарином HiTrap объемом 1 мл (GE Healthcare Sciences, Piscataway, NJ), предварительно уравновешенную 150 мМ NaCl и 50 мМ Трис при рН 7,5. Затем выполняли элюцию путем пошагового увеличения концентрации NaCl с 50 мМ до конечной концентрации 950 мМ с последующей промывкой 1М NaCl. Небольшую фракцию каждой элюции использовали для инфицирования клеток НЕК2 93Т, и через 48 ч после инфицирования выполняли количественное определение процентного содержания GFPположительных клеток при помощи проточного цитометра Guava EasyCyte 6HT (EMD/Millipore).
- 11 044679
Пример 6. Полезная нагрузка, используемая в исследованиях.
Для всех последующих экспериментов промотор CMV заменяли промотором, который, как известно, является более устойчивым во взрослых нейронах. Рекомбиназа Cre и кальциевый индикатор GCaMP6f находились под управлением человеческого промотора синапсина-1 (hSyn1). Все флуорофоры находились под управлением промотора CAG, а изменяющая цвет конструкция находилась под управлением промотором EF1-αльфа.
Пример 7. Продуцирование вируса для количественного определения ретроградной эффективности.
Полезную нагрузку hSyn-Cre упаковывали при помощи капсидов AAV1, AAV2, AAV5, AAV8, AAV9, DJ и AAV2-retro в Janelia Viral Shared Resource. Все семь вирусных препаратов обрабатывали параллельно и перед инъекцией in vivo сопоставляли титры. Все партии разбавляли до наименьшего измеренного титра (1,3Е12 GC/мл), и каждый вирус вводили в правое ядро понтинов трех взрослых мышей Rosa26Lox-STOP-LoxH2B-GFP (Не et al., 2012, Neuron, 73:35-48).
Пример 8. Гистология.
Животных умерщвляли через три недели после инъекции вируса, затем вынимали мозг и выполняли сагиттальные срезы правого полушария толщиной 50 мкм. Срезы помещали в невыцветающие монтажные среды (Antifade Mounting Media) VECTASHIELD, содержащие DAPI (Vector Laboratories), и отображали с помощью панорамного слайд-сканера P-E (3D Histech) с использованием объектива 20х и фильтров FITC и DAPI.
Пример 9. Количественная оценка ретроградного транспорта.
Изображения, полученные с помощью слайд-сканера с функциями панорамного сканирования, сшивали, а затем анализировали с помощью специального программного обеспечения, написанного на языке Matlab (Mathworks), для обнаружения GFP-меченных ядер во всей коре. Представляющую интерес область (ROI) очерчивали вручную вокруг коры, выделяя область на изображении для автоматического подсчета клеток. Для улучшения обнаружения ядер, выполняли свертку изображения с помощью ядра Mexican Hat, содержащего разность двух гауссианов (дисперсия 26,00 мкм и дисперсия 3,25 мкм). Шум изображения уменьшали с помощью медианного фильтра, и затем выполняли обнаружение основных пиков.
Пример 10. Анализ общности ретроградного транспорта.
Мышам Rosa26-LSL-H2B-GFP инъецировали 25 нл hSyn1-Cre rAAV2-retro в дорсальный стриатум. Через три недели после инъекции при помощи панорамного сканера получали изображения коронарных срезов головного мозга для визуализации окрашенных DAPI ядер и зеленой флуоресценции из ядер, экспрессирующих H2B-GFP. Выполняли свертку зеленого канала с разницей в два гауссиана, и затем на этих пороговых изображениях обнаруживали пики в виде локальных максимумов при помощи пользовательских функций, написанных в Matlab. Синий канал каждого среза выравнивали с изображениями Nissl из атласа стандартизованного мозга мыши Института Аллена, используя обычные пользовательские процедуры, написанные при помощи пакета Matlab Image Processing Toolbox. Затем использовали области из атласа мозга мыши ABI с прилагаемой аннотацией для установления соответствия с обнаруженными нейронами в выровненных участках с конкретными областями мозга.
Было отмечено, что конечная точность эталонного атласа в совокупности с анатомической изменчивостью отдельного головного мозга ограничивает надежность этого полуавтоматического процесса до крупных афферентных входов.
Пример 11. Визуализация активности популяции нейронов in vivo после ретроградной доставки GCaMP6f.
Семь взрослых мышей анестезировали изофлураном (2%) и помещали в стереотаксическую рамку (Kopf Instruments; Tujunga, CA) с обогреваемой до 37°С подставкой. Кожу на голове и надкостнице над черепом удаляли, наносили слой УФ-отверждаемого клея OptiBond (Kerr; Orange, CA), и изготовленный на заказ шлем (Osborne and Dudman, 2014, PLoS One, 9 (2) :e89007) прикрепляли зубным цементом. AAV2-retro, несущий полезную нагрузку hSynGCaMP6f, инъецировали в BPN (3,9 мм назад и на 0,4 мм вбок от брегмы на глубину 5,8, 5,6 и 5,4 мм по 100 нл для каждой глубины) с помощью инжектора Nanoliter 2010 (WPI). Окно в черепе (одна пластина диаметром 2 мм и толщиной 170 мкм из стекла, вырезанного лазером) помещали поверх первичной двигательной коры (на 0,7 мм вперед и на 1,6 мм вбок от брегмы).
После операции вводили подкожную инъекцию кетопрофена (5 мг/кг) и бупренорфина (0,1 мг/кг; Henry Schein Animal Health; Melville, NY). Мышам давали 1 неделю на выздоровление после операции, а затем выполняли краткую визуализацию под 2-фотонным микроскопом для оценки экспрессии вируса. Через неделю послеинъекции у всех животных визуально идентифицировали клетки, экспрессирующие GCaMP6f, в слое V M1. Затем животных приучали к фиксации головы в изготовленном на заказ устройстве и обучали извлекать пищевой шарик, как описано ранее (Guo et al., 2014, Nat. Med., 20:130-8).
GCaMP6f возбуждали при 920 нм (подавая обычно 20-40 мВт на заднюю апертуру) с помощью лазера Ti:Sapphire (Chameleon, когерентный) и регистрировали через объектив Nikon 16х, 0,8 N.A. Испускаемый свет пропускали через дихроичный фильтр 565 DCXR (Chroma Technology) и фильтр ET525/70m
- 12 044679
2p (Chroma Technology) и детектировали с помощью трубки фотоумножителя GaAsP (10770PB-40, Hamamatsu). Изображения (512x512 пикселей) получали при ~30 Гц с помощью резонирующих сканеров, используя программное обеспечение Scanlmage.
Пример 12. Редактирование генома CRISPR/Cas9.
Промотор CMV в pAAV-CMV-SaCas9-empty (Slaymaker et al., 2016, Science, 351:84-8) заменяли промотором hSyn1 для создания pAAV-hSynl-SaCas9-empty.
Заказывали олигонуклеотиды, кодирующие протоспейсерные последовательности sgPHK, фосфорилировали их, гибридизовали и лигировали в сайты рестрикции BsaI pAAV-hSynl- SaCas9 emtpy, получая pAAV-hSynl-SaCas9-tdTomato-l до io.
Используемые олигонуклеотидные последовательности были следующими:
tdTomato sgPHK 1 Fwd: САС CGC AAG GGC GAG GAG GTC АТС A (SEQ
ID NO:108) tdTomato sgPHK 1 Rev: AAA CTG ATG ACC TCC TCG CCC TTG C (SEQ
ID NO:87) tdTomato sgPHK 2 Fwd: CAC CGT GGA GGG CTC CAT GAA CGG CC (SEQ
ID NO:88) tdTomato sgPHK 2 Rev: AAA CGG CCG TTC ATG GAG CCC TCC AC (SEQ
ID NO:89) tdTomato sgPHK 3 Fwd: CAC CGA GGA CGG CGG CCA СТА CCT GG (SEQ
ID NO:90) tdTomato sgPHK 3 Rev: AAA CCC AGG TAG TGG CCG CCG TCC TC (SEQ
ID NO:91)
- 13 044679 tdTomato sgPHK 4 Fwd: CAC CGA CAA CAA CAT GGC CGT CAT CA (SEQ ID NO:92) tdTomato sgPHK 4 Rev: AAA CTG ATG ACG GCC ATG TTG TTG TC (SEQ ID NO:93) tdTomato sgPHK 5 Fwd: CAC CGA AGG ACG GCG GCC ACT ACC TGG (SEQ ID NO:94) tdTomato sgPHK 5 Rev: AAA CCC AGG TAG TGG CCG CCG TCC TTC (SEQ ID NO:95) tdTomato sgPHK 6 Fwd: CAC CGA CAA CAA CAT GGC CGT CAT CA (SEQ ID NO:96) tdTomato sgPHK 6 Rev: AAA CTG ATG ACG GCC ATG TTG TTG TC (SEQ ID NO:97) tdTomato sgPHK 7 Fwd: CAC CGG TCA CCT TCA GCT TGG CGG T (SEQ ID NO:98) tdTomato sgPHK 7 Rev: AAA CAC CGC CAA GCT GAA GGT GAC C (SEQ ID NO:99) tdTomato sgPHK 8 Fwd: CAC CGC CGT АСА TGA ACT GGG GGG A (SEQ ID NO:100) tdTomato sgPHK 8 Rev: AAA CTC CCC CCA GTT CAT GTA CGG (SEQ ID NO:101) tdTomato sgPHK 9 Fwd: CAC CGT CTT GTA АТС GGG GAT GTC GG (SEQ ID NO:102) tdTomato sgPHK 9 Rev: AAA CCC GAC АТС CCC GAT TAC AAG AC (SEQ ID NO:103) tdTomato sgPHK 10 Fwd: CAC CGC CGT CCT GCA GGG AGG AGT C (SEQ ID NO:104) tdTomato sgPHK 10 Rev: AAA CGA CTC CTC CCT GCA GGA CGG C (SEQ ID NO:105)
Сначала оценивали in vitro способность каждого олигонуклеотида направлять редактирование генома. Клетки Neuro2A трансфицировали 800 нг pAAV-hSynl-SaCas9-tdTomato-l до -щ, iqo нг pAAV-FLEX-CAGtdTomato и iqq нг pAAV-CAG-EGFP, используя полиэтиленимин. Через 72 ч после трансфекции клетки собирали, и ~70000 EGFP-положительных клеток Neuro2A выделяли, используя флуоресцентно-активированный сортинг клеток (FACS) при помощи BD Influx сортера (BD Biosciences). Затем геномную ДНК экстрагировали, и частоту модификации гена tdTomato оценивали при помощи нуклеазного анализа Surveyor (Integrated DNA Technologies), как описано ранее (Cong et al., 2013, Science, 339:819-23). Одну из двух sgPHK 7, которые, по-видимому, управляли двумя событиями расщепления в последовательности tdTomato, упаковывали в retro-AAV2 и использовали для редактирования генома in vivo. Затем, ~100 нл (5x1013 векторных геномов (vg)/мл) AAV2-retro-hSynl-SaCas9-tdTomato или AAV2retro-hSynl-SaCas9-empty инъецировали в BPN мышей Rbp4-CrextdTomato, как описано выше. Через шесть недель после инъекции головной мозг вынимали, делали коронарные срезы толщиной 4 0 мкм и окрашивали НА-меченной Cas9 (анти-НА антителом C29F4 от Cell Signaling, разведенным 1:1600; вторичное антитело: ослиное анти-мышиное Alexa Fluor 488 (1:250; Jackson ImmunoRe
- 14 044679 search) и нейрональным маркером NeuN (анти-NeuN антителом А60 от Millipore, разведенным 1:250; вторичное антитело: ослиное анти-кроличье Alexa Fluor 647 (1:500; ThermoFisher, A-31573)). После окрашивания антителом срезы помещали на предметные стекла в невыцветающую монтажную среду VECTASHIELD, содержащую DAPI (Vector Laboratories), и визуализировали при помощи инвертированного микроскопа Zeiss Axio Observer A1 (Zeiss). Количественную оценку иммуноокрашивания проводили, используя программное обеспечение для анализа ImageJ (NIH). Пример 13 - направленная эволюция rAAV2-retro Для создания новых rAAV с усиленным ретроградным транспортом, разрабатывали подход направленной эволюции in vivo, приводящий обогащению вариантами капсидов rAAV, которые эффективно транспортируются в клеточные тела нейронов, посылая длинные проекции в участке инъекции вируса в мозге мыши (фиг. 1А). Для обеспечения максимальной вероятности извлечения варианта с нужными свойствами, в качестве исходного материала использовали разнородную смесь ранее описанных библиотек вариантов cap rAAV (Koerber et al., 2008, Mol. Ther., 16:1703-9; Koerber et al., 2009, Mol. Ther., 17:2088-95; Koerber et al., 2006, Nat. Protocols, 1:701-6; Muller et al., 2003, Nat. Biotechnol., 21:1040-6). Вирусные частицы упаковывали таким образом, чтобы каждый вариантный капсид был связан с геном AAV, содержащим соответствующий ген cap, и окончательный пул вариантов капсида включал точечные мутанты, варианты со случайной вставкой 7-мерного пептида в область AAV2, используемую для связывания его корецептора, гепарансульфата, со случайными химерами последовательностей капсидных генов из семи родительских серотипов (фиг. 1А). Для идентификации вариантов с широким ретроградным тропизмом выбирали две независимые популяции проекционных нейронов: стриарные ГАМКэргические нейроны, проецирующие сигналы в ретикулярную часть черной субстанции (SNr), и глутаматергические нейроны задней части мозга, проецирующие сигналы в кору мозжечка. Через три недели после инъекции всего пула вариантов rAAV в SNr или мозжечок (одна инъекция на животное), ткань стриатума или ткань задней части мозга, соответственно, вынимали, последовательности cap восстанавливали методом ПЦР, и вирус переупаковывали (фиг. 1В). После еще двух этапов отбора выполняли ПЦР с внесением ошибок для дальнейшей диверсификации библиотек, за которой следовали два заключительных этапа отбора in vivo.
вариантов cap секвенировали после 4-го цикла эволюции, большинство из которых происходило из инсерционной библиотеки и содержало экзогенные 7-мерные пептиды между N587 и R588 гена капсида AAV2 VP1 дикого типа. Интересным оказалось то, что все восстановленные вставки имели форму LAxxDxTKxA (SEQ ID NO: 106) или LAxDxTKxxA (SEQ ID NO: 107) (где остатки, выделенные жирным шрифтом и курсивом, получены из вставки); мутации в других местах последовательности также были обогащенными (табл. 2). После 5-го цикла эволюции секвенировали еще 22 клона, и после этого дополнительного цикла эволюции все последовательности оказались мутантами AAV2 со вставками LAxxDxTKxA (SEQ ID NO: 106)/LAxDxTKxxA (SEQ ID NO:107) (табл. 2), демонстрируя заметную степень дальнейшей конвергенции. Такая конвергенция предполагает, что специфические пептидные вставки в гепарин-связывающую петлю являются очень важными для проявления ретроградной функциональности с потенциальным вторичным вкладом других сайтов. Затем выполняли вторичный скрининг семнадцати выделенных вариантов, имеющих различные комбинации пептидных вставок и точечных мутаций в последовательности капсида. Для обеспечения очень жестких условий, выбранные варианты упаковывали с трансгеном усиленного зеленого флуоресцентного белка (EGFP), управляемым промотором CMV, который обычно слаб в нейронах. Для каждого варианта капсида оценивали его способность доставлять достаточный уровень полезной нагрузки к клеточным телам в ключевых афферентных областях, что позволяло обнаруживать сигнал EGFP, не усиленный антителами, через три недели после инъекции. Для дальнейшего анализа отбирали клон (вставка LADQDYTKTA (SEQ ID NO: 85)+V708I+N382D), который демонстрировал наиболее сильный ретроградный транспорт в двух независимых цепях в этом вторичном тесте (из коры в бледный шар и из нижней оливы/базального ядра понтинов к мозжечку), который назвали rAAV2-retro. При оценке двух дополнительных промоторов, обычно используемых в исследованиях на грызунах in vivo (CAG - фиг. 1B или человеческого синапсина-1, данные не показаны), в ряде различных цепей у мышей и крыс была отмечена заметная эффективность ретроградного мечения с этим вариантом rAAV (фиг. 1В и фиг. 7). Замена 7-мерной вставки на одну из других восстановленных последовательностей или добавление дополнительных точечных мутаций, идентифицированных в тесте, не привели к дальнейшему увеличению ретроградного транспорта.
Пример 14. Эффективный ретроградный доступ к проекционным нейронам.
В нисходящих моторных путях кортико-понтинный тракт является заметно конвергентным и, как известно, вносит более 95% афферентов в базальные ядра понтинов (BPN). Таким образом, этот путь представляет собой особенно выгодную систему для количественной оценки эффективности поглощения вирусов и ретроградного транспорта аксональными окончаниями проекционных нейронов. Действительно, инъекция rAAV2-retro в BPN приводила к получению плотной окраски нейронов слоя V (фиг. 2А), что согласуется с результатами предыдущих исследований по мечению (Legg et al., 1989, J. Comp. Neurol., 286 (4):427-41).
Затем при идентичных условиях заражения и обработки сравнивали эффективность ретроградного транспорта в кортико-понтинной цепи для rAAV2-retro по сравнению с несколькими обычно используе
- 15 044679 мыми серотипами AAV (фиг. 2B-D). Для обеспечения точности количественного определения и устранения возможного искажения результатов по межклеточной изменчивости в уровне экспрессии трансгена для доставки рекомбиназы Cre в трансгенных мышах Rosa26-Lox-STOP-Lox-H2B-GFP использовали AAV (He et al. 2012, Neuron, 73:35-48). Было показано, что даже низкой концентрации фермента Cre достаточно для запуска экспрессии такой Cre-зависимой кассеты, а жесткая ядерная локализация слитого с гистоном репортера позволяет однозначно идентифицировать инфицированные клетки, без искажений сигнала из нейропиля.
Расчет линейной плотности инфицированных проекционных нейронов коры головного мозга в визуализированных сагиттальных срезах из мозга мышей, полученного через три недели после локальной инъекции вируса в BPN выполняли в режиме полуавтоматического анализа (фиг. 2С). У животных, инфицированных rAAV2, наблюдали минимальную экспрессию кортикального GFP (линейная плотность 0,98±0,20 нейронов/мм, среднее ±sem, n=5; фиг. 2В, средняя панель). По всей ростро-каудальной оси коры у животных, которым инъецировали rAAV2-retro, напротив, согласно более ранним наблюдениям (фиг. 2А), можно наблюдать плотный слой проекционных нейронов GFP-позитивного слоя V (линейная плотность 130,11±11,08 нейронов/мм, n=4; фиг. 2В, нижняя панель). Ни один из других широко используемых серотипов AAV, ни собачий аденовирус-2, не соответствовал ретроградной эффективности сконструированного варианта rAAV2-retro (линейная плотность AAV1: 0,05±0,04, AAV2: 0,98±0,2, AAV5: 2,38±1,24, AAV8: 1,43±1,43, AAV9: 1,98±0,86, DJ: 24,82±14,32, CAV-2: 5,56±4,13, n=3-5 для каждого; фиг. 2D, фиг. 8). Кроме того, плотность проекционных нейронов коры, меченных rAAV2-retro, была сопоставима с плотностью, достигнутой с помощью гранул Fluoro-Gold (Schmued and Fallon, 1986, Brain Res., 377:147-54), надежного синтетического ретроградного индикатора (линейная плотность 81.03±11.08 нейронов/мм, n=3). Таким образом, rAAV2-retro демонстрирует усиление ретроградного доступа к кортико-понтинным проекционным нейронам на два порядка по сравнению с существующими серотипами и конкурирует с эффективностью синтетических ретроградных индикаторов.
Пример 15. Общность ретроградной функциональности.
Далее изучали, распространяется ли ретроградная функциональность rAAV2-retro на другие цепи, в частности, путем определения степени, в которой им оказались меченными различные афференты в дорсомедиальном стриатуме (DMS) - части базальных ганглиев, которая получает длинные входные сигналы из множества корковых и подкорковых областей. Было обнаружено, что эффективность опосредованного rAAV2-retro ретроградного доступа к наиболее сильным афферентным входам в DMS - кору, таламус и миндалину - была сопоставима с эффективностью флуоресцентных гранул, классически используемых для ретроградного мечения (фиг. 3А). Для обеспечения объективности в оценке количества ретроградно меченных нейронов во всех областях мозга, о которых известно, что они обеспечивают значительный длинный входной сигнал в DMS, разработали алгоритм, который позволяет соотносить любую обнаруживаемую флуоресцентную метку в визуализированном участке мозга мыши с определенными областями мозга путем выравнивания секции, используя атлас мозга Аллена с аннотацией (фиг. 3В-С). Количественный анализ (фиг. 3С) показал, что сильное ретроградное мечение было обнаружено в подавляющем большинстве областей, о которых ранее сообщалось, что они посылают заметные проекции к стриатуму (Pan et al., 2010, Front Neuroanat., 4:147). В одном явновыраженном исключении, наблюдается только слабое мечение в компактной части черной субстанции, несмотря на то, что она является источником сильных дофаминергических входных сигналов в DMS (фиг. 3С, стрелка, указывающая на количестве клеток для SNc). Было обнаружено, что в некоторых других протестированных цепях небольшое подмножество классов проекционных нейронов также является невосприимчивым к ретроградному доступу, обеспечиваемому rAAV2-retro (табл. 3; следует отметить, что эти проекции также оказались не мечеными всеми другими протестированными серотипами AAV). Несмотря на эти исключения, rAAV2-retro является широко применимым в центральной нервной системе.
- 16 044679
Таблица 3
Эффективность rAAV2-retro в различных цепях. Низкая эффективность, а не отсутствие ретроградного транспорта в кортико-таламической и кортико-колликулярной проекциях, подтверждается эффективным мечением проекционных нейронов после локальной доставки Сге-зависимых полезных нагрузок в тела проекционных нейронных клеток.
Место инъекции Местоположение целевых Эффективность Трансген
проекционных нейронов мечения
мышиный mPFC (IL/PL) МЕС сильная Сге
мышиный mPFC (IL/PL) LEC сильная Сге
мышиный mPFC (IL/PL) Контр-mPFC сильная Сге
мышиный mPFC (IL/PL) Медиадорсальный таламус средняя Сге
мышиный mPFC (IL/PL) Соединяющее ядро таламуса средняя Сге
мышиный mPFC (IL/PL) Островковая область сильная Сге
мышиный mPFC (IL/PL) Гиппокамп- вентральный СА1 сильная Сге
мышиный mPFC (IL/PL) AcG сильная Сге
OFC МЕС сильная Сге
OFC LEC сильная Сге
OFC Контр-ОЕС сильная Сге
OFC Островковая область сильная Сге
OFC Гиппокамп- вентральный СА1 средняя Сге
дорсальный CAI МЕС сильная Сге
дорсальный CA2 LEC сильная Сге
дорсальный САЗ САЗ слабая Сге
дорсальный СА4 Соединяющее ядро таламуса слабая Сге
дорсальный СА4 Соединяющее ядро таламуса слабая СгеСге
миндалина mPFC сильная Сге
Латеральный гипоталамус mPFC сильная Сге
Дорсомедиальный стриатум mPFC сильная Сге
Вентральный стриатум (NAcc) mPFC сильная Сге
МЕС mPFC средняя FLPo
mPFC Вентральный CAI средняя FLPo
mPFC МЕС средняя FLPo
Опорная структура Прилежащее ядро средняя Сге
Опорная структура Вентральный гиппокамп сильная Сге
Опорная структура Переднее промежуточное ядро таламуса средняя Сге
Опорная структура Ретроспинальная кора сильная Сге
Опорная структура Латеральная энторинальная кора сильная Сге
Опорная структура Медиальная энторинальная кора сильная Сге
Верхнее двухолмие Слой 5 в зрительной коре очень слабая Gcamp6s
Верхнее двухолмие Слой 5 в зрительной коре сильная Сге
dLGN Слой 6 в зрительной коре очень слабая Gcamp6s
dLGN Слой 6 в зрительной коре сильная Сге
Зрительная кора Контралатеральная зрительная кора сильная Сге
Зрительная кора Контралатеральная зрительная кора сильная GFP
Зрительная кора Контралатеральная зрительная слабая Gcamp6s
- 17044679
кора
Зрительная кора Контралатеральная зрительная кора сильная tdtomato
Зрительная кора LGN сильная tdtomato
Зрительная кора Ограда сильная tdtomato
Зрительная кора Ограда средняя tdtomato
Зрительная кора LM сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Ml сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Ml средняя GFP
Дорсолатеральный стриатум М2 сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Соматосенсорная кора сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Базолатеральная миндалина сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Островковая область сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Энторинальная кора сильная tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Бледный шар средняя tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Таламус средняя tdtomato
Дорсолатеральный стриатум Интраламинарное ядро таламуса сильная GFP
Дорсолатеральный стриатум Ядро шва очень слабая tdtomato
Дорсолатеральный стриатум VTA слабая tdtomato
Базолатеральная миндалина Вкусовая зона коры сильная flex-tdtomato
Моторная зона коры передних конечностей Моторный таламус слабая GFP
Ядро одиночного пути Латеральная миндалина средняя tdtomato
Спинной мозг Кора сильная flex-tdtomato
Спинной мозг Кора сильная GFP
Спинной мозг, пластинка IX Спинной мозг: пресинаптические ингибирующие нейроны сильная flex-tdtomato
Мышцы Спинальные моторные нейроны средняя Cre
Мышцы Проприоцептивные нейроны сильная Cre
Пример 16. Ретроградный доступ к генетически определенной популяции нейронов.
Также определяли, можно ли комбинировать ретроградную функциональность rAAV2-retro со специфичностью Сге-трансгенных линий для возможности изучения проекционных нейронов определенных классов. В частности, проводили эксперименты по определению, можно ли комбинировать rAAV2-retro и Сге-трансгенные линии для разделения двух функционально разных длинных связей, которые проходят параллельно между двумя областями мозга. Проекции от коры головного мозга к стриатуму возникают в основном из нейронов в слое V, но некоторые нейроны в слоях II и III также обеспечивают входы в стриатум. Было высказано предположение, что входы в стриатум из разных кортикальных слоев формируют отдельные пути, причем нейроны в слое V проецируют в стриосомный (patch) компартмент стриатума, а в слоях II и III - в матриксный компартмент. Пальцеобразная форма микрокомпартментов patch и матрикса затрудняет избирательное нацеливание на эти пути для функционального изучения только с помощью системы rAAV2-retro. Поэтому была проанализирована возможность разделения двух входов путем объединения rAAV2-retro с трансгенной линией, экспрессирующей рекомбиназу Сге во всех нейронах слоя V (Gerfen et al., 2013, Neuron, 80: 1368-83), но не в нейронах слоев II и III (фиг. 4А).
Для демонстрации обоих путей в одном и том же эксперименте, была выбрана Cre-зависимая изменяющая цвет полезная нагрузка, которая экспрессирует tdTomato в отсутствие Сге, но в Сге-позитивных клетках преобразуется, запуская экспрессию EGFP (Saunders et al., 2012, Front Neural Circuits, 6:47). Ko
- 18 044679 гда rAAV2-retro, несущий эту полезную нагрузку, вводили в дорсомедиальный стриатум линии драйвера Cre, специфического в отношении V слоя, Rbp4_KL100 Cre (Gerfen et al., 2013, Neuron, 80: 1368-83), экспрессия EGFP в стриатуме наблюдалась только в этих нейронах слоя V. Кроме того, кортикостриарный путь слоев II и III был четко отличим по экспрессии tdTomato (фиг. 4В). В соответствии с топографической природой кортикостриарной проекции, в результате точно локализованных инъекций вируса в дорсомедиальный стриатум меченными оказались соответственно небольшие участки коры. Однако во всех случаях мечение также наблюдали в слое V и популяции кортикостриарных слоев II и III (фиг. 4В, нижняя панель), что служит подтверждением того, что два эти два пути из одной и той же области коры проходят внутри стриатума через соседние компартменты матрикса и patch.
Хотя этот эксперимент выявил оба пути, выбор полезной нагрузки Cre-on или ''Cre-off позволит получить селективный доступ к одному из них, исключая другой. Следовательно, этот пример подчеркивает дополнительную стратегию в изучении цепи, которая может быть достигнута путем объединения высокоэффективного ретроградного вируса с доступными линиями драйвера Cre (или Flp).
Пример 17. Использование rAAV2-retro для изучения цепи и манипуляции генами.
Польза rAAV2-retro для изучения цепи будет зависеть от его способности обеспечивать высокий уровень экспрессии генетически кодируемых индикаторов и эффекторов. Способность отслеживать нейронную активность в определенных классах проекционных нейронов была впервые оценена с помощью rAAV2-retro-опосредованной экспрессии GCaMP6f (Chen et al., 2013, Nature, 499:295-300) (фиг. 5A-C). Используя in vivo двухфотонную Са2+ визуализацию, дендритные и соматические Са2+ импульсы обнаруживали в первичной моторной коре уже через 7 дней после доставки вируса в BPN (фиг. 5D). Временной профиль сигналов Са2+ отражал структуру задания по контролируемому достижению цели, причем сигнал во многих кортико-понтинных нейронах тесно связан с сигналом go (фиг. 5E-F) (Li et al., 2015, Nature, 519:51-6). Повторную запись данных из идентифицированных нейронов можно было осуществлять в ходе испытаний как во время сеанса с момента начала экспрессии в зависимости от времени (фиг. 5Е, F), так и во время проведения многочисленных поведенческих сеансов в течение более двух месяцев после инфицирования. Таким образом, rAAV2-retro обеспечивает возможность экспрессировать сенсоры в проекционных нейронах на уровнях, достаточных для визуализации, обеспечивая целый ряд новых возможностей для расшифровки участия конкретных проекций в вычислениях цепей.
Наконец, пользу rAAV2-retro оценивали в отношении доставки эффекторов, таких как система редактирования генов CRISPR/Cas9, к проекционным нейронам (фиг. 6). В частности, в rAAv2-retro упаковывали Cas9 Staphylococcus aureus (SaCas9 (Slaymaker et al., 2016, Science, 351:84-8)) и отдельную гидовую РНК, предназначенную для уменьшения экспрессии tdTomato. Доставка rAAV2-retro-SaCas9antitdTomato в BPN животных, экспрессирующих tdTomato в возбуждающих нейронах кортикального слоя V, приводила к подавлению экспрессии tdTomato в 88,6±0,7% нейронов, экспрессирующих SaCas9 в слое V (фиг. 6В, нижняя панель и фиг. 6С, n=3). Напротив, доставка нецелевого SaCas9 не приводила к каким-либо заметным изменениям, при этом только у 4,4±3,2% клеток наблюдали потенциальное снижение экспрессии tdTomato (фиг. 6В, верхняя панель и фиг. 6С, n=3). Кроме того, экспрессия tdTomato оставалась нетронутой в нейронах слоя V, которые были недоступны через инъекцию в ядро понтинов. Таким образом, система rAAV2-retro позволяет осуществлять эффективную селективную модификацию генов в нейронах, проецирующих в определенные представляющие интерес области.
В совокупности эти наблюдения показывают, что rAAV2-retro является эффективным реагентом для генетически доступных проекционных нейронов для функционального изучения нервных цепей и, в конечном счете, для осуществления терапии.
Пример 18. Обсуждение.
Рекомбинантные аденоассоциированные вирусы могут в значительной степени облегчить функциональное разделение нервных цепей у млекопитающих и являются перспективными для терапевтического вмешательства при расстройствах нервной системы. Направленную эволюцию использовали для обеспечения капсида AAV дополнительной способностью к эффективному ретроградному доступу к проекционным нейронам во многих цепях. Новый сконструированный rAAV2-retro обеспечивает усиление ретроградного транспорта до двух порядков по сравнению с обычно используемыми серотипами AAV, что соответствует эффективности синтетических ретроградных индикаторов во многих цепях. Уровень экспрессии трансгена, достигаемый с помощью rAAV2-retro через ретроградный доступ, является достаточным для изучения функции нервной цепи, а также для целенаправленных манипуляций с геномом нейронов. Таким образом, благодаря возможности избирательного мониторинга и манипулирования проекционными нейронами, соединяющими разные области мозга, инструменты на основе rAAV2-retro способны дать представление о том, каким образом крупномасштабные сети обеспечивают функционирование мозга, и являются перспективными для терапевтического вмешательства при заболеваниях, характеризующихся обширной прогрессирующей дисфункцией сети.
Заметно повышенная эффективность ретроградного доступа, обеспечиваемая rAAV2-retro, по сравнению с его родительским серотипом AAV2, может быть обеспечена за счет опосредованного вставкой разрушения нативного сайта связывания гепарансульфата и/или путем создания новой поверхности свя
- 19 044679 зывания, которая включает вставленный пептид. Этот вариант имеет пониженное сродство к гепарину (фиг. 9), что может уменьшить секвестрацию вируса во внеклеточном матриксе синаптической щели и увеличить распространение локального вектора, как это наблюдалось с AAV1 и AAV6. Однако полученное увеличение за счет только распространения вектора не может объяснить эффективность ретроградного транспорта, так как другие вставленные 7-мерные последовательности аналогичным образом нарушают связывание гепарина, но не влияют на ретроградный транспорт. Кроме того, AAV5 и AAV9 не связывают гепарин, однако их ретроградная транспортная эффективность аналогична эффективности AAV2. Альтернативное толкование подтверждается и тем, что пептидные вставки, выбранные в начальном отборе (LAxxDxTKxA (SEQ ID NO: 106)/LAxDxTKxxA (SEQ ID NO: 107)), имеют одинаковую общую композицию, отличающуюся только консервативным мотивом. Сконструированная пептидная вставка может поддерживать усиленное связывание с существующим клеточным кофактором в пути AAV (например, недавно идентифицированным общим для AAV рецептором), или она может создавать новое взаимодействие с клеточным механизмом - рецептором клеточной поверхности и/или компонентом везикулярного транспорта или пути проникновения в ядро.
Несмотря на улучшение ретроградного транспорта на несколько порядков, обеспечиваемого rAAV2-retro, по сравнению с существующими серотипами, небольшой набор классов проекционных нейронов, по-видимому, является невосприимчивым к эффективной ретроградной инфекции с помощью этого нового варианта rAAV (табл. 3). Однако следует отметить, что эти проекции также остаются не меченными и другими серотипами AAV. Является ли уровень экспрессии критического клеточного фактора, который взаимодействует с этим новым вариантом AAV в этих нейронах, просто чрезвычайно низким - заключение, подтвержденное для кортико-таламической и кортико-колликулярной проекций, например, путем наблюдения того, что rAAV2-retro все еще способен доставлять достаточное количество рекомбиназы Cre в клеточные тела, обеспечивая высокий уровень экспрессии локально доставляемой Cre-зависимой полезной нагрузки (табл. 3, выделенные записи) - либо этот фактор полностью отсутствует, еще предстоит определить для каждого случая. Дополнительные будущие модификации капсида в этом или других вариантах могли бы обеспечить усиленную ретроградную трансдукцию этих классов нейронов.
Система на основе вектора rAAV2-retro обеспечивает важное дополнение к генетическому набору инструментов для анализа функции нейронных цепей, поскольку получение доступа к отдельным классам проекционных нейронов является критически важным шагом, позволяющим выяснить, каким образом происходит координация динамики локальной цепи и функции крупномасштабной сети. Предполагается, что вычисления локальных цепей зависят в большой степени от динамики всей популяции нейронов в конкретном модуле локальных цепей. Каким образом эта динамика отображается на различные классы проекционных нейронов - и, следовательно, какая информация передается различным нижестоящим целям - остается неразрешенным вопросом для большинства цепей. Векторы на основе rAAV2-retro, отдельно или в комбинации с конкретными трансгенными линиями Cre, обеспечивают генетический доступ к специфическим популяциям проекционных нейронов. В свою очередь, гликопротеин G бешенства, несущий rAAV2-retro, может быть использован для транс-комплемента недавно разработанного нетоксичного условного вектора бешенства для доступа к пресинаптическим микроцепям, воздействующим на определенные классы проекционных нейронов. Приобретенная способность избирательно контролировать и управлять активностью проекционных нейронов отдельных классов и их локальных микроцепей должна дать представление о том, каким образом проекционные нейроны транслируют динамику локальной цепи для своих соответствующих крупномасштабных сетей.
rAAV2-retro также является перспективным для терапевтического вмешательства по нескольким возможным направлениям. Например, в ситуациях, когда патология воздействует на большие объемы нервной ткани - например, болезнь Альцгеймера или болезнь лизосомального накопления - многократные инъекции являются рискованными с точки зрения безопасности и могут быть недостаточными для достижения необходимых уровней трансдукции. Однако небольшое количество инъекций в стратегических участках может обеспечить распространение вектора на большие объемы (например, в кортикопонтинный тракт - от точки конвергенции в BPN) или труднодоступные ткани (например, спинномозговые двигательные нейроны из мышцы). Кроме того, крупномасштабные функциональные сети вовлечены в распространение многих нейродегенеративных расстройств от места их возникновения. Согласно широко распространенной точке зрения, отложение аномальных агрегатов белков в уязвимых популяциях нейронов вызывает патологический каскад аберрантной активности нейронов внутри и распад крупномасштабных функциональных сетей, в конечном итоге приводя к нарушению неврологических функций. Интересно, что затронутые нейронные сети, по-видимому, способны на ранних стадиях заболевания временно преодолевать аберрантную динамику, так как у пациентов со многими нейродегенеративными заболеваниями часто наблюдаются периоды значительного улучшения. Таким образом, раннее вмешательство, направленное на замедление распространения агрегатов коркового происхождения, вызванных патологией, может быть достаточным для стабилизации или даже восстановления когнитивной функции. С этой точки зрения, субкортикальные проекционные нейроны в мезокортикальных областях, где впервые появляются патологические агрегаты белков, как при болезни Альцгеймера, так и при болезни Пар
-

Claims (41)

  1. кинсона, представляют собой привлекательную цель для вмешательства. Доступ к этим проекционным нейронам с помощью инструментов, основанных на rAAV2retro, предназначенных, например, для введения мутации, способной остановить дальнейшую агрегацию в cis, или для доставки шаперонов, способных расщеплять агрегаты, может замедлить развитие наиболее изнурительных, когнитивных симптомов. Оценка эффективности и долгосрочной безопасности реагентов rAAV2-retro у приматов, не являющихся людьми, проложит путь к их возможному применению в этих и других подходах генной терапии.
    Следует понимать, что, хотя способы и композиции вещества описаны в настоящей заявке в сочетании с рядом различных аспектов, вышеприведенное описание различных аспектов предназначено для иллюстрации, а не для ограничения объема способов и композиций вещества. В объем приведенной ниже формулы изобретения также входят и другие аспекты, преимущества и модификации.
    Раскрыты способы и композиции, которые могут быть использованы, могут быть использованы в комбинации, могут быть использованы для приготовления продуктов, раскрытых способов и композиций или являются такими продуктами, раскрытыми способами и композициями. Эти и другие материалы раскрыты в настоящей заявке, при этом подразумевается, что также раскрыты комбинации, подмножества, взаимодействия, группы и т.д. этих способов и композиций. То есть, хотя конкретная ссылка на каждую из различных отдельных и объединенных комбинаций и перестановки этих композиций и способов не может быть раскрыта в явном виде, каждая из них рассмотрена и описана конкретно в данном описании. Например, если раскрыта и обсуждается конкретная композиция вещества или конкретный способ и ряд композиций или способов, каждая комбинация и перестановка композиций и способов рассматриваются конкретно, если специально не указано иное. Аналогично, любое подмножество или их комбинация также рассмотрены и раскрыты специальным образом.
    ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Капсидный белок аденоассоциированного вируса (AAV), где капсидный белок AAV содержит аминокислотную последовательность, выбранную из группы, состоящей из SEQ ID NO: 6, 8, 10, 12, 14, 18, 22, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 54, 56, 60, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 и 78.
  2. 2. Капсидный белок AAV по п.1, где капсидный белок AAV содержит SEQ ID NO: 44.
  3. 3. Частица аденоассоциированного вируса (AAV), содержащая капсидный белок AAV по п.1 или 2.
  4. 4. Частица AAV по п.3, где частица AAV демонстрирует усиленное ретроградное движение по сравнению с вирусной частицей дикого типа.
  5. 5. Частица AAV по п.3, где частица AAV обладает способностью к ретроградному транспорту.
  6. 6. Частица AAV по любому из пп.3-5, дополнительно содержащая нуклеиновую кислоту, содержащую трансген.
  7. 7. Частица AAV по п.6, где нуклеиновая кислота содержит промоторную последовательность, функционально связанную с трансгеном.
  8. 8. Частица AAV по п.7, где промотор выбран из группы, состоящей из синапсина-1, CMV, GFAP, CAG, CaMKII, MBP, EF1альфа, TRE и mDlx.
  9. 9. Частица AAV по любому из пп.3-5, дополнительно содержащая нуклеиновую кислоту, кодирующую нуклеиновую кислоту - ингибирующую РНК.
  10. 10. Частица AAV по п.9, где нуклеиновая кислота - ингибирующая РНК представляет собой антисмысловой олигонуклеотид, миРНК или РНКи.
  11. 11. Частица AAV по п.6, где трансген кодирует эффекторный белок.
  12. 12. Частица AAV по п.11, где эффекторный белок выбран из группы, состоящей из рекомбиназы (например, Cre или Flp), системы редактирования генов (например, CRISPR/Cas9, TALEN, нуклеазы цинкового пальца), оптогенетических реагентов (активаторов (например, канального родопсина или его вариантов)) или ингибиторов (например, галородопсина или Arch)), хемогенетических реагентов (например, версии активатор/ингибитор систем DREADD или PSAM/PSEM), активаторов и/или ингибиторов клеточных сигнальных путей и ферментов эпигенетического контроля.
  13. 13. Частица AAV по п.6, где трансген кодирует конструкцию оптического репортера.
  14. 14. Частица AAV по п.13, где конструкция оптического репортера выбрана из группы, состоящей из GCaMP6 (s, m или f), флуорофора (например, зеленого флуоресцентного белка (GFP), усиленного GFP (EGFP), красного флуоресцентного белка (RFP), желтого флуоресцентного белка (YFP), tdTomato), изменяющей цвет конструкции (например, трансгена, который экспрессирует один репортер в одной клеточной популяции, а другой репортер - в другой популяции), сенсоров глюкозы, jRCaMP, jRGECO и CaMPARI, индикаторов напряжения, вторичных мессенджеров, рецепторных сигнализаторов, репортеров транскрипции, эпигенетических репортеров и нейромодуляторных репортеров.
  15. 15. Частица AAV по п.6, где трансген кодирует вирусный белок.
  16. 16. Частица AAV по п.15, где вирусный белок представляет собой белок G бешенства.
  17. 17. Частица AAV по п.15, где вирусный белок представляет собой белок, который дополняет функцию вируса, отличного от AAV, или белок, который имеет отношение к клеточному и межклеточному транспорту.
    - 21 044679
  18. 18. Частица AAV по п.6, где трансген кодирует терапевтический белок.
  19. 19. Частица AAV по п.18, где терапевтический белок предназначен для лечения нейродегенеративного заболевания.
  20. 20. Частица AAV по п.19, где терапевтический белок представляет собой HSP23 для лечения болезни Альцгеймера или другого заболевания, связанного с токсичными агрегатами белков.
  21. 21. Частица AAV по п.19, где терапевтический белок представляет собой фратаксин для лечения атаксии Фридрейха.
  22. 22. Частица AAV по п.19, где терапевтический белок представляет собой лизосомальную глюкоцереброзидазу (GBA) для лечения болезни Паркинсона.
  23. 23. Частица AAV по п.19, где терапевтический белок представляет собой полиQ-связывающий белок для лечения болезни Хантингтона.
  24. 24. Частица AAV по п.19, где терапевтический белок представляет собой белок выживания мотонейрона 1 для лечения мышечной атрофии позвоночника, бокового амиотрофического склероза (ALS), аутизма, деменции, периферической невропатии, шизофрении или дегенерации сетчатки.
  25. 25. Частица AAV по п.6, где трансген кодирует терапевтический фрагмент, где терапевтический фрагмент представляет собой антитело или его фрагмент, иммуномодулирующий белок или молекулу РНК интерференции.
  26. 26. Частица AAV по п.25, где терапевтический фрагмент представляет собой антитело или его фрагмент.
  27. 27. Частица AAV по п.25, где терапевтический фрагмент представляет собой иммуномодуляторный белок.
  28. 28. Частица AAV по п.25, где терапевтический фрагмент представляет собой молекулу, действующую по принципу РНК интерференции.
  29. 29. Частица AAV по любому из пп.3-25, где частица AAV демонстрирует на величину вплоть до двух порядков более высокий уровень ретроградного доступа к кортико-понтинным проекционным нейронам по сравнению с собачьим аденовирусом-2.
  30. 30. Частица AAV по любому из пп.3-25, где вирусная частица демонстрирует ретроградный доступ к кортико-понтинным проекционным нейронам или афферентам к дорсомедиальному стриатуму (DMS), сравнимый с синтетическим реагентом для ретроградного мечения.
  31. 31. Способ доставки трансгена или ингибирующей нуклеиновой кислоты РНК в один или более нейронов, включающий: контактирование одного или более нейронов с аденоассоциированным вирусом (AAV), содержащим трансген или ингибирующую нуклеиновую кислоту РНК, упакованный в нем, где AAV содержит капсидный белок, содержащий аминокислотную последовательность, выбранную из группы, состоящей из SEQ ID NO: 6, 8, 10, 12, 14, 18, 22, 26, 28, 30, 32, 34, 36, 38, 40, 42, 44, 46, 48, 50, 54, 56, 60, 64, 66, 68, 70, 72, 74, 76 и 78.
  32. 32. Способ по п.31, где AAV демонстрирует ретроградное движение в нейронах.
  33. 33. Способ по п.31 или 32, где нейроны представляют собой проекционные нейроны.
  34. 34. Способ по любому из пп.31-33, где нейроны находятся у пациента.
  35. 35. Способ по любому из пп.31-34, где нейроны находятся в центральной нервной системе (ЦНС) пациента.
  36. 36. Способ по п.34 или 35, где пациент представляет собой человека.
  37. 37. Способ по п.34, где пациент не является человеком.
  38. 38. Способ по п.37, где не являющийся человеком пациент представляет собой примата, грызуна и птицу.
  39. 39. Способ по любому из пп.31-33, где стадия контактирования происходит в клеточной культуре.
  40. 40. Способ по любому из пп.31-38, где стадию контактирования осуществляют in vivo через внутричерепную, внутриспинальную или внутримышечную инъекцию.
  41. 41. Способ по любому из пп.31-40, где капсидный белок содержит аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 44.
    -
EA201990033 2016-06-15 2017-06-15 Вариантные аденоассоциированные вирусы и способы их применения EA044679B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US62/350,361 2016-06-15
US62/404,585 2016-10-05

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EA044679B1 true EA044679B1 (ru) 2023-09-22

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11939355B2 (en) Variant adeno-associated viruses and methods of using
JP7066619B2 (ja) アデノ随伴ウイルス(aav)を誘導するための標的指向性ペプチド
Ulusoy et al. Viral vector-mediated overexpression of α-synuclein as a progressive model of Parkinson’s disease
El-Shamayleh et al. Strategies for targeting primate neural circuits with viral vectors
KR20200039617A (ko) 아데노-연관 바이러스 캡시드 변이체 및 이의 사용 방법
CA3128525A1 (en) Interneuron-specific therapeutics for normalizing neuronal cell excitability and treating dravet syndrome
Li et al. Anterograde transneuronal tracing and genetic control with engineered yellow fever vaccine YFV-17D
CA3193406A1 (en) Methods for treating neurological disease
Kim et al. Selective transgene expression in cerebellar Purkinje cells and granule cells using adeno-associated viruses together with specific promoters
JP2023518980A (ja) 非神経脳細胞での遺伝子発現を選択的に調節する人工発現構築物
KR20220130150A (ko) 망막 신경절 세포의 재생
Surdyka et al. Selective transduction of cerebellar Purkinje and granule neurons using delivery of AAV-PHP. eB and AAVrh10 vectors at axonal terminal locations
EA044679B1 (ru) Вариантные аденоассоциированные вирусы и способы их применения
US20220378941A1 (en) Recombinant nucleic acids containing alphaherpesvirus promoter sequences
NZ789365A (en) Variant adeno-associated viruses and methods of using
TW202221119A (zh) Dna結合域轉活化子及其用途
JP2023529833A (ja) 抑制性新皮質ニューロンにおいて遺伝子発現を選択的に調節する人工発現構築物
Tang New biological tools for genetic manipulation of the mouse brain