EA043649B1 - METHOD FOR OBTAINING HEMOPHILI TYPE VACCINE IN CONJUGATE - Google Patents

METHOD FOR OBTAINING HEMOPHILI TYPE VACCINE IN CONJUGATE Download PDF

Info

Publication number
EA043649B1
EA043649B1 EA202190638 EA043649B1 EA 043649 B1 EA043649 B1 EA 043649B1 EA 202190638 EA202190638 EA 202190638 EA 043649 B1 EA043649 B1 EA 043649B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
prf
haemophilus influenzae
solution
influenzae type
conjugate
Prior art date
Application number
EA202190638
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Виктор Павлович Трухин
Анатолий Эдуардович Евтушенко
Игорь Викторович Красильников
Елена Леонидовна Салимова
Станислав Валентинович Уйба
Юрий Михайлович Васильев
Анастасия Дмитриевна Конон
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт вакцин и сывороток и предприятие по производству бактерийных препаратов" Федерального медико-биологического агентства
Publication of EA043649B1 publication Critical patent/EA043649B1/en

Links

Description

Область техникиField of technology

Изобретение относится к области биотехнологии и касается способа получения конъюгированной вакцины для профилактики гемофильной инфекции из штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМОболенск В-7884.The invention relates to the field of biotechnology and concerns a method for producing a conjugate vaccine for the prevention of Haemophilus influenzae infection from the Haemophilus influenzae type b strain GKPMObolensk B-7884.

Уровень техникиState of the art

Описан способ получения капсулярного полисахарида Haemophilus influenzae типа b (Hib), заключающийся в культивировании штамма в культуральной среде, сборе и обработке супернатанта культуры для экстрагирования капсулярного полисахарида с последующим его конъюгированием с белкомносителем (патент RU 2644246). Недостатком данного способа является использование для культивирования продуцента питательной среды сложного состава, состоящей из 33 компонентов, многие из которых требуют отдельной предварительной подготовки. Кроме того, инактивацию биомассы проводят раствором формалина в конечной концентрации 0,35-0,37% (об./об.), отсутствие остатков которого необходимо подтверждать в готовой вакцине.A method for obtaining capsular polysaccharide of Haemophilus influenzae type b (Hib) is described, which consists in cultivating the strain in a culture medium, collecting and processing the culture supernatant to extract the capsular polysaccharide, followed by its conjugation with a protein carrier (patent RU 2644246). The disadvantage of this method is the use of a complex nutrient medium for cultivating the producer, consisting of 33 components, many of which require separate preliminary preparation. In addition, biomass inactivation is carried out with a formaldehyde solution in a final concentration of 0.35-0.37% (v/v), the absence of residues of which must be confirmed in the finished vaccine.

В патенте (RU 2542393) раскрывается способ получения конъюгата капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b с антигенами, который включает получение смеси столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси или фосфата алюминия, ее очистку, связывание карбодиимидным способом через дигидразид адипиновой кислоты с капсульным полисахаридом Hib и отмывку центрифугированием. Недостатком данного способа является использование анатоксинов адсорбированных на геле гидроокиси или фосфата алюминия. Присутствие гидроокиси или фосфата алюминия в составе вакцины потенциально увеличивает ее реактогенность и поствакцинальные осложнения, а также может приводить к формированию иммунного ответа в том числе и на анатоксины.The patent (RU 2542393) discloses a method for producing a conjugate of the capsular polysaccharide of Haemophilus influenzae type b with antigens, which includes obtaining a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide or phosphate gel, its purification, binding by the carbodiimide method through adipic acid dihydrazide with the Hib capsular polysaccharide and washing by centrifugation. The disadvantage of this method is the use of toxoids adsorbed on aluminum hydroxide or phosphate gel. The presence of aluminum hydroxide or phosphate in the vaccine composition potentially increases its reactogenicity and post-vaccination complications, and can also lead to the formation of an immune response, including to toxoids.

Наиболее близким аналогом заявляемого изобретения является способ получения антигенного вакцинного препарата Haemophilus influenzae типа В путем выращивания бактерий на жидких питательных средах с последующим отделением биомассы методом ультрафильтрации на молекулярных волоконных фильтрах для извлечения экзогенного полисахарида. Далее концентрат клеток обрабатывают 2,5%-ным раствором натрия хлорида с натриевой солью ЭДТА и из полученного экстракта ультрафильтрацией на молекулярных волоконных фильтрах выделяют капсульный полисахарид Hib в комплексе с белком, который соединяют с экзогенным полисахаридом Hib в соотношении 1:1 (патент RU 2185191).The closest analogue of the claimed invention is a method for producing an antigenic vaccine preparation of Haemophilus influenzae type B by growing bacteria in liquid nutrient media, followed by separation of biomass by ultrafiltration on molecular fiber filters to extract exogenous polysaccharide. Next, the cell concentrate is treated with a 2.5% solution of sodium chloride with sodium salt EDTA and from the resulting extract by ultrafiltration on molecular fiber filters, the capsular polysaccharide Hib is isolated in complex with protein, which is combined with exogenous polysaccharide Hib in a 1:1 ratio (patent RU 2185191 ).

Недостатком данного способа является долгая подготовка посевного материала (10 ч) с использованием твердой питательной среды, что приводит к необходимости смыва клеток с поверхности физиологическим раствором, сопровождающегося высоким риском контаминации и дополнительными трудозатратами по подготовке матрацев со стерильной средой. Инактивацию биомассы проводят раствором формалина, что приводит к необходимости последующего подтверждения его отсутствия в готовой вакцине и, следовательно, проведения дополнительного контроля. Использование ультрафильтрации для отделения биомассы из культуральной жидкости приводит к потерям по капсульному полисахариду ввиду использования молекулярных волокон с малым размером пор (20 кДа), на которых в процессе фильтрации скапливается слой бактериальных клеток, задерживающих целевой продукт полисахарид ПРФ. Экзогенный полисахарид Hib после отделения биомассы концентрируется только на молекулярных волокнах без дальнейшей очистки, а капсульный полисахарид в комплексе с белком Hib также подвергается дополнительно только диализу, что может усиливать реактогенность готовой вакцины. Раскрытие сущности изобретения.The disadvantage of this method is the long preparation of seed material (10 hours) using a solid nutrient medium, which leads to the need to wash off cells from the surface with physiological solution, accompanied by a high risk of contamination and additional labor costs for preparing mattresses with a sterile environment. Inactivation of biomass is carried out with a formaldehyde solution, which leads to the need for subsequent confirmation of its absence in the finished vaccine and, therefore, additional control. The use of ultrafiltration to separate biomass from the culture liquid leads to losses in capsular polysaccharide due to the use of molecular fibers with a small pore size (20 kDa), on which, during the filtration process, a layer of bacterial cells accumulates, retaining the target product, PRF polysaccharide. Exogenous Hib polysaccharide, after separation of the biomass, is concentrated only on molecular fibers without further purification, and the capsular polysaccharide in complex with the Hib protein is also subject to additional dialysis only, which can enhance the reactogenicity of the finished vaccine. Disclosure of the invention.

Нами разработан способ получения вакцины гемофильной тип b конъюгированной, получаемой путем культивирования оригинального штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 (штамм защищен патентом RU 2624014) в жидкой питательной среде простого состава с последующим выделением, концентрированием и очисткой субстанции полирибозилрибитолфосфата (ПРФ), которую активируют, конъюгируют с модифицированным белком-носителем и подвергают дополнительной постадийной очистке. Полученный конъюгат стерилизуют фильтрацией, добавляют необходимые растворители в рассчитанном количестве, разливают по флаконам и лиофильно высушивают.We have developed a method for producing Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine, obtained by cultivating the original strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk B-7884 (the strain is protected by patent RU 2624014) in a liquid nutrient medium of simple composition, followed by isolation, concentration and purification of the substance polyribosyl ribitol phosphate (PRP) , which is activated, conjugated to a modified carrier protein and subjected to additional step-by-step purification. The resulting conjugate is sterilized by filtration, the necessary solvents are added in calculated quantities, poured into vials and freeze-dried.

Техническими результатами, достигаемыми при осуществлении изобретения, являются следующие.The technical results achieved by implementing the invention are as follows.

По сравнению с используемыми способами получения конъюгированных вакцин для профилактики гемофильной инфекции субстанцию ПРФ получают из высокопродуктивного штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884, культивируемого в жидкой питательной среде простого состава, в которую в одном из вариантов дополнительно внесен раствор рибозы. При этом концентрация полисахарида в культуральной жидкости выше, описанной в патенте RU 2644246 (до 300 мкг/мл), и составляет 528-594 мкг/мл в случае с добавлением рибозы и 400-450 мкг/мл без добавления рибозы.In comparison with the methods used for producing conjugate vaccines for the prevention of Haemophilus influenzae infection, the PRF substance is obtained from the highly productive strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk B-7884, cultivated in a liquid nutrient medium of simple composition, into which, in one of the variants, a ribose solution is additionally added. In this case, the concentration of the polysaccharide in the culture liquid is higher than that described in patent RU 2644246 (up to 300 μg/ml), and is 528-594 μg/ml in the case of the addition of ribose and 400-450 μg/ml without the addition of ribose.

В предлагаемой технологии исключена стадия подготовки посевного материала путем культивирования продуцента на твердой питательной среде, что сокращает время и затраты на получение вакцины. Инактивация культуральной жидкости проводится путем нагревания, а не добавлением формалина, что исключает необходимость контроля его содержания в готовой вакцине. Инактивированная культуральная жидкость подвергается очистке через каскад глубинных фильтров с диаметром пор от 3,0-0,8 до 0,30,1 мкм, что позволяет отделить бактериальную массу и при этом минимизировать потери по полисахариду. При очистке и выделении субстанции нативный раствор ПРФ предварительно подвергается конThe proposed technology eliminates the stage of preparing seed material by cultivating the producer on a solid nutrient medium, which reduces the time and costs of obtaining the vaccine. Inactivation of the culture liquid is carried out by heating, and not by adding formalin, which eliminates the need to control its content in the finished vaccine. The inactivated culture liquid is purified through a cascade of depth filters with a pore diameter from 3.0-0.8 to 0.30.1 microns, which makes it possible to separate the bacterial mass and at the same time minimize polysaccharide losses. When purifying and isolating the substance, the native PRF solution is first subjected to con

- 1 043649 центрированию (в одном из вариантов), что значительно снижает объемы продукта, а значит позволяет уменьшить затраты на реагенты и упрощает процесс. В качестве белка-носителя используется столбнячный анатоксин не сорбированный на геле гидроокиси или фосфата алюминия, что делает полученную вакцину не реактогенной и при этом высоко иммуногенной. Очистка полисахарида ПРФ и конъюгата с белком-носителем проводится с использованием ультрафильтрационных кассет из современных материалов - полиэфирсульфон, гель-хроматографии, в одном из вариантов осветлением путем фильтрации через угольные картонные фильтры с диаметром пор 0,5-1,0 мкм, что позволяет снизить содержание эндотоксинов, нуклеиновых кислот, белка, удалить остаточные реагенты, используемые для конъюгации.- 1 043649 centering (in one of the options), which significantly reduces the volume of the product, which means it reduces the cost of reagents and simplifies the process. Tetanus toxoid not sorbed on aluminum hydroxide or phosphate gel is used as a carrier protein, which makes the resulting vaccine non-reactogenic and at the same time highly immunogenic. Purification of the PRP polysaccharide and the conjugate with the carrier protein is carried out using ultrafiltration cassettes made of modern materials - polyethersulfone, gel chromatography, in one of the options, clarification by filtration through carbon cardboard filters with a pore diameter of 0.5-1.0 microns, which allows to reduce content of endotoxins, nucleic acids, proteins, remove residual reagents used for conjugation.

Таким образом, изобретение представляет собой способ получения вакцины гемофильной тип b конъюгированной, включающий следующие этапы: культивирование штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 на жидкой питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 5,0; дрожжевой экстракт - 2,0; пептон - 15,0; NH4Cl - 0,7; Na2HPO4 - 2,5; KCl - 0,5; NaCl - 3,3; L-глутаминовая кислота - 1,2; L-цистеин - 0,015; НАД - 0,02; гемин - 0,04, инактивацию культуры при помощи нагревания до (55±5)°С и выдерживания (15±3) мин, центрифугирование для отделения биомассы с последующей фильтрацией через каскад глубинных фильтров с диаметром пор от 3,0-0,8 до 0,3-0,1 мкм, выделение полирибозилрибитолфосфата (ПРФ) путем осаждения 10%-ным раствором цетилтриметиламмония бромида (ЦТАБ), концентрирование и очистку, активацию полученной субстанции растворами 1-циано-4диметил-аминопиридиния тетрафторобората (ЦДАФ) и триэтиламина и смешивание со столбнячным анатоксином, модифицированным раствором этилдиметиламинопролинкарбодиимида (ЭДАК), не сорбированным на геле гидроокиси или фосфата алюминия, очистку, стерилизацию, добавление фармацевтически приемлемых носителей, розлив и лиофильную сушку.Thus, the invention is a method for producing Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine, which includes the following steps: cultivation of the Haemophilus influenzae type b strain GKPM-Obolensk B-7884 on a liquid nutrient medium of the following composition, g/l: glucose - 5.0; yeast extract - 2.0; peptone - 15.0; NH 4 Cl - 0.7; Na 2 HPO 4 - 2.5; KCl - 0.5; NaCl - 3.3; L-glutamic acid - 1.2; L-cysteine - 0.015; NAD - 0.02; hemin - 0.04, inactivation of the culture by heating to (55±5)°C and holding for (15±3) minutes, centrifugation to separate the biomass, followed by filtration through a cascade of depth filters with a pore diameter of 3.0-0.8 up to 0.3-0.1 microns, isolation of polyribosylribitol phosphate (PRP) by precipitation with a 10% solution of cetyltrimethylammonium bromide (CTAB), concentration and purification, activation of the resulting substance with solutions of 1-cyano-4dimethyl-aminopyridinium tetrafluoroborate (CDAP) and triethylamine and mixing with tetanus toxoid, a modified solution of ethyl dimethylaminoproline carbodiimide (EDAC), not sorbed on an aluminum hydroxide or phosphate gel, purification, sterilization, addition of pharmaceutically acceptable carriers, bottling and freeze-drying.

Осуществление изобретенияCarrying out the invention

Пример получения вакцины гемофильной тип b конъюгированной из оригинального штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884.An example of obtaining a Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine from the original strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk B-7884.

Пример 1. Первый технологический этап получения субстанции ПРФ заключается в создании Главного банка культуры (ГБК) и Рабочего банка культуры (РБК). Для этого оригинальный штамм Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 культивируют в жидкой питательной среде в колбах на протяжении 4-6 часов, при температуре (35±2)°С и (150±10) об/мин до достижения середины экспоненциальной фазы роста. К культуральной жидкости Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 добавляют стерильный 80%-ный раствор глицерина в объеме, соответствующем 25% объема культуральной жидкости (или соотношение 1:4). Розлив культуральной жидкости с криопротектором осуществляют в криопробирки вместимостью 5,0 мл по 1,0 мл. Каждую криопробирку маркируют. Полученные пробирки ГБК хранят в низкотемпературном холодильнике при температуре минус (80±3)°С на протяжении не более 10 лет. Пробирки ГБК используют для получения РБК по описанной выше схеме.Example 1. The first technological stage of obtaining the PRF substance is the creation of the Main Cultural Bank (GBK) and the Working Cultural Bank (RBC). For this, the original strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk V-7884 is cultivated in a liquid nutrient medium in flasks for 4-6 hours, at a temperature of (35±2)°C and (150±10) rpm until the mid-exponential growth phases. To the culture liquid of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk V-7884 add a sterile 80% glycerol solution in a volume corresponding to 25% of the volume of the culture liquid (or a ratio of 1:4). The culture liquid with cryoprotector is poured into 1.0 ml cryotubes with a capacity of 5.0 ml. Each cryovial is labeled. The resulting GBK tubes are stored in a low-temperature refrigerator at minus (80±3)°C for no more than 10 years. GBK tubes are used to obtain RBC according to the scheme described above.

В табл. 1 представлены результаты контроля Рабочего банка культуры Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 о соответствии по всем показателям нормативным значениям.In table 1 presents the results of control of the Working Culture Bank Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk V-7884 on compliance of all indicators with standard values.

- 2 043649- 2 043649

Таблица 1Table 1

Результаты контроля Рабочего банка культуры Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884Results of control of the Working Culture Bank Haemophilus influenzae type b GCPM-Obolensk V-7884

Наименование показателя Name indicator Нормативные значения Standard values Результат контроля Control result Окраска по Граму Gram stain Культура Haemophilus inflenzae тип b по Граму должна окрашиваться отрицательно, при микроскопии должны наблюдаться мелкие неподвижные неспорообразующие палочки овоидной формы. The culture of Haemophilus inflenzae type b Gram stain should be negative, with microscopy should be observed small non-motile, non-spore-forming ovoid rods forms. Г рамотрицательные мелкие неподвижные неспорообразующие палочки овоидной формы. Gram-negative small, non-motile, non-spore-forming ovoid rods forms. Каталазная активность Catalase activity Положительная Positive Положительная Positive Оксидазная активность Oxidase activity Положительная Positive Положительная Positive Агглютинация со специфической к HiB сывороткой Agglutination with HiB-specific serum Положительная Positive Положительная Positive Чистота культуры Purity of culture Отсутствие контаминации Absence contamination Контаминация отсутствует Contamination absent Рост в присутствии X и V фактора Growth in the presence of X and V factors Положительный Positive Положительный Positive Жизнеспособность Viability >Г107КОЕ/мл>G10 7 CFU/ml 1,9-107КОЕ/мл1.9-10 7 CFU/ml

РБК используют для получения рабочего посевного материла (РПМ). Для этого в асептических условиях восстановленную культуру из РБК переносят в жидкую питательную среду, разлитую в конические колбы. Культуру выращивают на протяжении 4-6 часов, при температуре (35±2)°С и (150±10) об/мин до достижения середины экспоненциальной фазы роста.RBC is used to obtain working seed material (WSM). To do this, under aseptic conditions, the reconstituted culture from the RBC is transferred into a liquid nutrient medium poured into conical flasks. The culture is grown for 4-6 hours, at a temperature of (35±2)°C and (150±10) rpm until the mid-exponential growth phase is reached.

Полученную культуральную жидкость объединяют в колбе и контролируют по показателям Чистота культуры, Окраска по Граму. Рабочий посевной материал получают в количестве 10% от количества питательной среды, используемой в ферментере.The resulting culture liquid is combined in a flask and monitored according to the indicators Culture purity and Gram stain. Working seed is obtained in an amount of 10% of the amount of nutrient medium used in the fermenter.

Далее проводят культивирование в ферментере Biostat® А МО UniVessel® Glass 2L 230V (Sartorius). Состав питательной среды для получения максимального количества ПРФ Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884, г/л: глюкоза - 5,0; дрожжевой экстракт - 2,0; пептон - 15,0; NH4Cl - 0,7; Na2HPO4 - 2,5; KCl - 0,5; NaCl - 3,3; L-глутаминовая кислота - 1,2; L-цистеин - 0,015; НАД - 0,02; гемин - 0,04. Дополнительно добавляют питательные вещества к культуре, после достижения ею оптической плотности 1,0, в виде 20%-ного раствора глюкозы и 10% дрожжевого экстракта (соотношение 1:1).Next, cultivation is carried out in a Biostat® A MO UniVessel® Glass 2L 230V fermenter (Sartorius). Composition of the nutrient medium for obtaining the maximum amount of PRF Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk V-7884, g/l: glucose - 5.0; yeast extract - 2.0; peptone - 15.0; NH4Cl - 0.7; Na 2 HPO 4 - 2.5; KCl - 0.5; NaCl - 3.3; L-glutamic acid - 1.2; L-cysteine - 0.015; NAD - 0.02; hemin - 0.04. Additionally, nutrients are added to the culture after it reaches an optical density of 1.0, in the form of a 20% glucose solution and 10% yeast extract (ratio 1:1).

Рабочий посевной материал при помощи перистальтического насоса (через сифон) перекачивают в ферментер. Проводят культивирование при следующих условиях:The working seed is pumped into the fermenter using a peristaltic pump (via a siphon). Cultivation is carried out under the following conditions:

Количество оборотов мешалки: 100-300 об/мин; температура: (35±2)°С;Mixer speed: 100-300 rpm; temperature: (35±2)°C;

количество растворенного кислорода: 30% (регулируется карскадом); рН: (7,2±0,2);amount of dissolved oxygen: 30% (regulated by carcade); pH: (7.2±0.2);

Полученную производственную культуру контролируют по показателям Окраска по Граму, Чистота культуры. Количество синтезированного полисахарида ПРФ составляет 400-450 мкг/мл.The resulting production culture is controlled according to the following indicators: Gram stain and culture purity. The amount of synthesized polysaccharide PRF is 400-450 μg/ml.

По завершении процесса культивирования проводят инактивацию культуры при помощи нагревания до (55+5)°С и выдерживания (15+3) мин без перемешивания. Инактивацию культуры подтверждают путем высева культуральной жидкости на шоколадный агар (отсутствие роста культуры).Upon completion of the cultivation process, the culture is inactivated by heating to (55+5)°C and holding for (15+3) minutes without stirring. Inactivation of the culture is confirmed by plating the culture liquid on chocolate agar (no growth of the culture).

Полученную инактивированную культуру центрифугируют (центрифуга Beckman coulter AvantiJ-E) для отделения биомассы с последующей фильтрацией через каскад глубинных фильтров с диаметром пор 0,3-0,6 мкм и 0,1-0,3 мкм.The resulting inactivated culture is centrifuged (Beckman coulter AvantiJ-E centrifuge) to separate the biomass, followed by filtration through a cascade of depth filters with pore diameters of 0.3-0.6 μm and 0.1-0.3 μm.

Полисахарид из фильтрата выделяют путем осаждения 10%-ным раствором цетилтриметиламмония бромида (ЦТАБ). Смесь оставляют при температуре (5±3)°С до выпадения осадка. Полученный осадок ПРФ центрифугируют и гомогенизируют при помощи гомогенизатора RW 16 basic (производительThe polysaccharide from the filtrate is isolated by precipitation with a 10% solution of cetyltrimethylammonium bromide (CTAB). The mixture is left at a temperature of (5±3)°C until a precipitate forms. The resulting PRF sediment is centrifuged and homogenized using an RW 16 basic homogenizer (manufacturer:

- 3 043649- 3 043649

IKA) при скорости вращения (6000±500) об/мин до полного его растворения. Экстракцию ПРФ проводят спиртом этиловым в количестве 40% по объему. После окончания экстракции приступают к отделению осадка центрифугированием. К полученному супернатанту добавляют 1,0% (по объему) 4,0 М раствора натрия хлорида, содержимое бутыли встряхивают вручную и оставляют при температуре (5±3)°С на (13±1) ч в холодной комнате. Осадок отделяют центрифугированием, собирают и высушивают при уровне вакуума от 0,04 мбар в течение (24±4) ч. Полученную субстанцию ПРФ контролируют по показателям Описание, Вода, Подлинность, Распределение молекул ПРФ по размеру, Рибоза, ПРФ, Фосфор, Белок, Нуклеиновые кислоты, Бактериальные эндотоксины.IKA) at a rotation speed of (6000±500) rpm until it is completely dissolved. Extraction of PRF is carried out with ethyl alcohol in an amount of 40% by volume. After the extraction is completed, the sediment is separated by centrifugation. 1.0% (by volume) 4.0 M sodium chloride solution is added to the resulting supernatant, the contents of the bottle are shaken manually and left at a temperature of (5±3)°C for (13±1) hours in a cold room. The precipitate is separated by centrifugation, collected and dried at a vacuum level of 0.04 mbar for (24±4) hours. The resulting PRF substance is controlled according to the indicators Description, Water, Identity, Size distribution of PRF molecules, Ribose, PRF, Phosphorus, Protein, Nucleic acids, Bacterial endotoxins.

При помощи реакции латекс-агглютинации подтверждают подлинность полученного продукта (фигура). Образование хлопьевидного осадка свидетельствует о наличии ПРФ в субстанции.Using the latex agglutination reaction, the authenticity of the resulting product is confirmed (figure). The formation of a flocculent sediment indicates the presence of PRF in the substance.

В табл. 2 представлены результаты контроля полученной субстанции ПРФ о соответствии по всем показателям нормативным значениям.In table Table 2 shows the results of monitoring the obtained PRF substance for compliance with standard values for all indicators.

Таблица 2table 2

Результаты контроля субстанции ПРФ, полученной из оригинального штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884Results of control of the PRF substance obtained from the original strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk V-7884

Наименование показателя Indicator name Нормативные значения Standard values Результат Result Описание Description Лиофильная масса белого цвета Lyophilic mass white Лиофильная масса белого цвета Lyophilic mass white Подлинность Authenticity Образование хлопьевидного осадка в реакции латекс- агглютинации Education flocculent sediment in latex reactions agglutination Положительная Positive Распределение молекул ПРФ по размеру Size distribution of PRF molecules ПРФ > 40%; Kd< 0,3 PRF > 40%; Kd<0.3 ПРФ = 41,4%; Kd = 0,14 PRF = 41.4%; Kd = 0.14 Рибоза Ribose Не менее 32% Not less than 32% 32 % 32% Концентрация ПРФ PRF concentration Не менее 0,73 мг/мг субстанции Not less than 0.73 mg/mg of substance 0,74 мг/мг субстанции 0.74 mg/mg substance Белок Protein Не более 1 % No more than 1% 0,8 % 0.8% Нуклеиновые кислоты Nucleic acids Не более 1 % No more than 1% 0,4 % 0.4% Бактериальные эндотоксины Bacterial endotoxins Менее 25 ЕЭ в 1 мкг ПРФ Less than 25 EU in 1 mcg of PRF Менее 25 ЕЭ в 1 мкг ПРФ Less than 25 EU per 1 mcg PRF

Полученную субстанцию ПРФ используют для получения вакцины гемофильной тип b конъюгированной. Для этого готовят раствор субстанции, ПРФ активируют растворами 1-циано-4-диметиламинопиридиния тетрафторобората (ЦДАФ) и триэтиламина и смешивают со столбнячным анатоксином, модифицированным раствором этилдиметиламинопролинкарбодиимида (ЭДАК). Полученный конъюгат концентрируют и проводят его диафильтрацию на ультрафильтрационной установке с кассетой 100 кДа. Далее предварительно фильтруют через мембрану 0,45 мкм и очищают на хроматографической колонке с сорбентом Сефадекс G-25. Собранный элюат подвергают стерилизующей фильтрации через мембрану 0,22 мкм и контролируют.The resulting PRF substance is used to produce Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine. To do this, a solution of the substance is prepared, the PRF is activated with solutions of 1-cyano-4-dimethylaminopyridinium tetrafluoroborate (CDAF) and triethylamine and mixed with tetanus toxoid, a modified solution of ethyldimethylaminoprolinecarbodiimide (EDAC). The resulting conjugate is concentrated and diafiltrated using an ultrafiltration unit with a 100 kDa cassette. Next, it is pre-filtered through a 0.45 µm membrane and purified on a chromatographic column with Sephadex G-25 sorbent. The collected eluate is subjected to sterilizing filtration through a 0.22 μm membrane and monitored.

Полученный конъюгат ПРФ со столбнячным анатоксином контролируют по показателям Описание, Подлинность, рН, Белок, Соотношение ПРФ к белку, Концентрация ПРФ, Свободный ПРФ, Свободный белок, Распределение молекул ПРФ по размеру, Стерильность, ЭДАК, ЦДАФ, Бактериальные эндотоксины.The resulting conjugate of PRF with tetanus toxoid is controlled according to the indicators Description, Identity, pH, Protein, Ratio of PRF to protein, Concentration of PRF, Free PRF, Free protein, Size distribution of PRF molecules, Sterility, EDAC, CDAP, Bacterial endotoxins.

Результаты контроля полученного конъюгата ПРФ со столбнячным анатоксином соответствует по всем показателям нормативным значениям.The results of control of the resulting PRF conjugate with tetanus toxoid correspond to standard values in all respects.

Полученный промежуточный продукт используют на стадии сведения вакцины: используют рассчитанное количество промежуточного продукта (конъюгата), стерильного 0,5 М раствора сахарозы, стерильного 0,1 М раствора трис-HCl и стерильной воды для инъекций. Розлив сведенной вакцины (доза розлива - 0,6 мл) осуществляют в предварительно подготовленные флаконы 2R. Вакцину лиофильно высушивают при заданных параметрах и передают на стадию упаковки и маркировки. Контроль готовой продукции проводят согласно НД по следующим показателям: Описание, Подлинность, Растворимость, Механические включения, рН, Вода, Точность розлива, Фосфор, Капсульный полиса- 4 043649 харид, Стерильность, Аномальная токсичность, Пирогенность, Сахароза. По всем показателям полученная вакцина гемофильная тип b конъюгированная соответствует требования нормативной документации.The resulting intermediate product is used at the vaccine mixing stage: a calculated amount of the intermediate product (conjugate), a sterile 0.5 M sucrose solution, a sterile 0.1 M Tris-HCl solution and sterile water for injection are used. The mixed vaccine is filled (filling dose is 0.6 ml) into pre-prepared 2R vials. The vaccine is freeze-dried under specified parameters and transferred to the packaging and labeling stage. Control of finished products is carried out in accordance with ND according to the following indicators: Description, Authenticity, Solubility, Mechanical inclusions, pH, Water, Filling accuracy, Phosphorus, Capsular polysaccharide, Sterility, Abnormal toxicity, Pyrogenicity, Sucrose. In all respects, the resulting hemophilus influenzae type b conjugate vaccine complies with the requirements of regulatory documentation.

Пример 2. Получение вакцины гемофильной тип b конъюгированной из штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 осуществляют как описано в примере 1.Example 2. Preparation of the Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine from the Haemophilus influenzae type b strain GKPM-Obolensk B-7884 is carried out as described in example 1.

Интенсифицируют образование полисахарида ПРФ добавлением в питательную среду 0,5%-ного раствора рибозы, что приводит к увеличению еще на 32% концентрации образуемого ПРФ (до 528-594 мкг/мл).The formation of the PRF polysaccharide is intensified by adding a 0.5% ribose solution to the nutrient medium, which leads to an increase in the concentration of the formed PRF by another 32% (up to 528-594 μg/ml).

Фильтрат после отделения биомассы концентрируют (в 10 раз) и подвергают диафильтрации на ультрафильтрационной установке с номинальным отсечением по молекулярной массе 30 кДа.After separating the biomass, the filtrate is concentrated (10 times) and subjected to diafiltration in an ultrafiltration unit with a nominal molecular weight cutoff of 30 kDa.

Супернатант после экстракции этиловым спиртом и отделения осадка фильтруют через угольные глубинные фильтры с диаметром пор 0,5-1,0 мкм, после чего определяют оптическую плотность полученного фильтрата (при длине волны 275 нм).The supernatant, after extraction with ethyl alcohol and separation of the precipitate, is filtered through carbon depth filters with a pore diameter of 0.5-1.0 μm, after which the optical density of the resulting filtrate is determined (at a wavelength of 275 nm).

Приведенные дополнительные технологические этапы позволяют увеличить содержание ПРФ в субстанции с 0,74 до 0,95 мг/мг субстанции, а также снизить количество нуклеиновых кислот и белка с 0,8 до 0,1%, количество эндотоксинов - со значения менее 25 ЕЭ в 1 мкг ПРФ до менее 5 ЕЭ в 1 мкг ПРФ.The above additional technological steps make it possible to increase the content of PRP in the substance from 0.74 to 0.95 mg/mg of substance, as well as reduce the amount of nucleic acids and protein from 0.8 to 0.1%, the amount of endotoxins - from a value of less than 25 EU per 1 µg PRF to less than 5 EU in 1 µg PRF.

Вакцина гемофильная тип b конъюгированная из штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМОболенск В-7884 успешно прошла доклинические исследования на половозрелых и неполовозрелых животных, в ходе которых была доказана ее безопасность и иммуногенность в сравнении с препаратом сравнения Акт-ХИБ® (производства Sanofi Pasteur, Франция) и Вакцина гемофильная тип b конъюгированная, лиофилизат для приготовления раствора для внутримышечного введения 0,5 мл/доза (производства ФБУН Ростовский НИИ микробиологии и паразитологии).The hemophilus influenzae type b vaccine conjugated from the Haemophilus influenzae type b strain GKPMObolensk B-7884 has successfully passed preclinical studies on mature and immature animals, during which its safety and immunogenicity was proven in comparison with the reference drug Act-HIB® (manufactured by Sanofi Pasteur, France) and Hemophilus influenzae type b conjugate vaccine, lyophilisate for preparing a solution for intramuscular administration 0.5 ml/dose (produced by the Rostov Research Institute of Microbiology and Parasitology).

Способ позволяет получить вакцину гемофильную тип b конъюгированную из оригинального штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884, обладающую протективной активностью, не уступающую существующим конъюгированным вакцинам и сохраняющую стабильность всех показателей качества в течение установленного срока годности (1,5 года).The method makes it possible to obtain a Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine from the original strain of Haemophilus influenzae type b GKPM-Obolensk B-7884, which has protective activity that is not inferior to existing conjugate vaccines and maintains the stability of all quality indicators during the established shelf life (1.5 years).

Claims (2)

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯCLAIM 1. Способ получения вакцины гемофильной тип b конъюгированной, включающий следующие этапы: культивирование штамма Haemophilus influenzae тип b ГКПМ-Оболенск В-7884 на жидкой питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 5,0; дрожжевой экстракт - 2,0; пептон - 15,0; NH4C1 0,7; Na2HPO4 - 2,5; КС1 - 0,5; NaCl - 3,3; L-глутаминовая кислота - 1,2; L-цистеин - 0,015; НАД - 0,02; гемин - 0,04, при этом питательная среда для культивирования Haemophilus influenzae тип b ГКПМОболенск В-7884 содержит рибозу, инактивацию культуры при помощи нагревания до (55±5)°С и выдерживания (15±3) мин, центрифугирование для отделения биомассы с последующей фильтрацией через каскад глубинных фильтров с диаметром пор от 0,3-0,6 до 0,3-0,1 мкм, выделение из супернатанта полирибозилрибитолфосфата (ПРФ) путем осаждения 10%-ным раствором цетилтриметиламмония бромида (ЦТАБ), его концентрирование и очистку, при этом очистку проводят путем экстракции этиловым спиртом в количестве 40% по объему и отделения осадка, осветление супернатанта путем фильтрации через угольные глубинные фильтры с диаметром пор 0,5-1,0 мкм, активацию полученной субстанции растворами 1-циано-4-диметил-аминопиридиния тетрафторобората (ЦДАФ) и триэтиламина и смешивание со столбнячным анатоксином, модифицированным раствором этилдиметиламинопролинкарбодиимида (ЭДАК), очистку, стерилизацию полученного конъюгата ПРФ со столбнячным анатоксином, добавление фармацевтически приемлемых носителей, розлив и лиофильную сушку вакцины.1. A method for producing Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine, including the following steps: cultivation of the Haemophilus influenzae type b strain GKPM-Obolensk B-7884 on a liquid nutrient medium of the following composition, g/l: glucose - 5.0; yeast extract - 2.0; peptone - 15.0; NH 4 C1 0.7; Na 2 HPO 4 - 2.5; KS1 - 0.5; NaCl - 3.3; L-glutamic acid - 1.2; L-cysteine - 0.015; NAD - 0.02; hemin - 0.04, while the nutrient medium for the cultivation of Haemophilus influenzae type b GKPMObolensk V-7884 contains ribose, inactivation of the culture by heating to (55±5) ° C and holding (15±3) min, centrifugation to separate the biomass with subsequent filtration through a cascade of depth filters with a pore diameter from 0.3-0.6 to 0.3-0.1 microns, separation of polyribosylribitol phosphate (PRP) from the supernatant by precipitation with a 10% solution of cetyltrimethylammonium bromide (CTAB), its concentration and purification, in which purification is carried out by extraction with ethyl alcohol in an amount of 40% by volume and separation of the sediment, clarification of the supernatant by filtration through carbon depth filters with a pore diameter of 0.5-1.0 microns, activation of the resulting substance with solutions of 1-cyano-4- dimethyl-aminopyridinium tetrafluoroborate (CDAF) and triethylamine and mixing with tetanus toxoid, modified solution of ethyl dimethylaminoproline carbodiimide (EDAC), purification, sterilization of the resulting PRF conjugate with tetanus toxoid, adding pharmaceutically acceptable carriers, filling and freeze-drying the vaccine. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что после отделения биомассы осуществляют стадию концентрирования нативного раствора ПРФ 10%-ным раствором цетилтриметиламмония бромида.2. The method according to claim 1, characterized in that after separating the biomass, the stage of concentrating the native PRF solution with a 10% solution of cetyltrimethylammonium bromide is carried out.
EA202190638 2019-04-22 2020-04-20 METHOD FOR OBTAINING HEMOPHILI TYPE VACCINE IN CONJUGATE EA043649B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019112197 2019-04-22

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EA043649B1 true EA043649B1 (en) 2023-06-08

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9512159B2 (en) Methods for the production of 3-O-deactivated-4′-monophosphoryl lipid A (3D-MLA)
JP5465676B2 (en) Fermentation process for culturing Streptococcus and purification process for obtaining capsular polysaccharide (cp) from Streptococcus
US4197290A (en) Vaccine
US8093034B2 (en) Fed batch culture methods for streptococci
CA2538691C (en) Process for producing polysaccharide for conjugate vaccine
PT983342E (en) Culture medium with soy bean extract as aminoacid source and no protein complexes of animal origin
JPS61186328A (en) Improved composite bodies, manufacture and drug containing them
JP2538224B2 (en) Purification of pertussis antigen
US4123520A (en) Method for preparing high molecular weight meningococcal Group C vaccine
RU2704452C1 (en) Method of producing a hemophilic b type conjugated vaccine
EA043649B1 (en) METHOD FOR OBTAINING HEMOPHILI TYPE VACCINE IN CONJUGATE
US4235994A (en) High molecular weight meningococcal group C vaccine and method for preparation thereof
CN114106210A (en) Production process of 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine
RU2770877C1 (en) Method of producing antigenic conjugated substance of haemophilic type b microbe for creating vaccine preparations
RU2089215C1 (en) Method of preparing meningococcus lipopolysaccharide of serogroup b
RU2283135C1 (en) Method for releasing cleaned meningococcal polysaccharides of a and c serological group
RU2096042C1 (en) Method of preparing multipartial vaccine for leptospirosis control in animals
RU2687973C1 (en) Method of producing drug preparation of collalisin®, lyophilizate for preparing solution for local and parenteral application for treating fibroproliferative diseases
SU1750689A1 (en) Method for preparation of polysaccharido-protein vaccine against neisseria meningitis serogroup b
Bronzino et al. Vaccine Production
RU2535122C1 (en) Method for preparing choleragen anatoxin
CA1155056A (en) Vaccine for the prevention and treatment of bovine mastitis
SU1085040A1 (en) Method for producing soluble choleraic o-antigen for immunization of choleraic agglutinating serum producers
RU2088244C1 (en) Method of vi-antigen preparing
SU784878A1 (en) Method of obtaining protecting somatic antigen of diphtheria corinebacteria