EA040838B1 - STABLE POLYVALENT VACCINE COMPOSITION AND METHOD FOR ITS PRODUCTION - Google Patents
STABLE POLYVALENT VACCINE COMPOSITION AND METHOD FOR ITS PRODUCTION Download PDFInfo
- Publication number
- EA040838B1 EA040838B1 EA201792470 EA040838B1 EA 040838 B1 EA040838 B1 EA 040838B1 EA 201792470 EA201792470 EA 201792470 EA 040838 B1 EA040838 B1 EA 040838B1
- Authority
- EA
- Eurasian Patent Office
- Prior art keywords
- polysaccharide
- protein
- serotype
- conjugate
- composition
- Prior art date
Links
Description
Предпосылки создания изобретенияPrerequisites for the creation of the invention
Пневмококк является основной причиной бактериальной пневмонии, менингита и сепсиса у детей. Согласно недавним оценкам детские смерти, вызванные пневмококком, составляют от 0,7-1,0 млн ежегодно по всему миру. В 2000 г. согласно оценкам произошло около 14,5 млн эпизодов пневмококковой инфекции (диапазон неопределенности 11,1-18,0 млн).Pneumococcus is the main cause of bacterial pneumonia, meningitis and sepsis in children. Recent estimates of childhood deaths due to pneumococcus range from 0.7-1.0 million annually worldwide. In 2000, about 14.5 million episodes of pneumococcal infection were estimated to have occurred (uncertainty range 11.1-18.0 million).
Пневмококковая инфекция привела приблизительно к 0,826 млн детских смертей (0,58-0,926 млн) в возрасте 1-59 месяцев, из которых 0,091 млн (0,063-0,1 млн) были ВИЧ-положительными и 0,735 млн (0,51-0,82 млн) были ВИЧ-отрицательными.Pneumococcal disease resulted in approximately 0.826 million infant deaths (0.58-0.926 million) aged 1-59 months, of which 0.091 million (0.063-0.1 million) were HIV positive and 0.735 million (0.51-0. 82 million) were HIV negative.
Поливалентные противопневмококковые полисахаридные вакцины, которые были разрешены к применению в течение многих лет, подтвердили свою ценность для предотвращения пневмококковой инфекции у взрослых, в частности у пожилых людей и людей в группе риска. Однако грудные дети и дети младшего возраста плохо реагируют на неконъюгированные пневмококковые полисахариды. Противопневмококковая конъюгированная вакцина, Prevnar®, содержащая семь наиболее часто изолируемых серотипов (4, 6В, 9V, 14, 18С, 19F и 23F), вызывающих инвазивную пневмококковую инфекцию у детей младшего возраста и грудных детей в настоящее время, была впервые разрешена к применению в Соединенных Штатах в феврале 2000 г.Polyvalent pneumococcal polysaccharide vaccines, which have been approved for many years, have proven their value in preventing pneumococcal infection in adults, in particular the elderly and people at risk. However, infants and young children do not respond well to unconjugated pneumococcal polysaccharides. The pneumococcal conjugate vaccine, Prevnar®, which contains the seven most commonly isolated serotypes (4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F, and 23F) that cause invasive pneumococcal infection in young children and infants today, was first approved for use in United States in February 2000
Кроме того, Prevnar™ 13 (Wyeth) является одобренной вакциной, содержащей конъюгаты полисахаридов из серотипов 6А, 6В, 19А, 19F в дополнение к 1, 3, 4, 5, 7F, 9V, 14, 18С и 23F.In addition, Prevnar™ 13 (Wyeth) is an approved vaccine containing polysaccharide conjugates from serotypes 6A, 6B, 19A, 19F in addition to 1, 3, 4, 5, 7F, 9V, 14, 18C and 23F.
Synflorix™ (GSK) - это другая утвержденная вакцина, обеспечивающая защиту от 1, 4, 5, 6В, 7F, 9V, 14, 18С, 19F, 20 и 23F, а также перекрестный иммунитет от 19А и 6А.Synflorix™ (GSK) is another approved vaccine that provides protection against 1, 4, 5, 6B, 7F, 9V, 14, 18C, 19F, 20 and 23F, as well as cross-protection against 19A and 6A.
Вакцинные препараты обычно должны быть стабильными и иметь однородную консистенцию для обеспечения длительного срока хранения и использования упаковки для многократного приема. Вакцины на основе белков, включая полисахарид-белковые конъюгаты, подлежат агрегации и осаждению белков, что может привести к более низкой эффективной общей концентрации вакцины в связи с недоступностью осажденного белкового продукта. Полисахарид-белковые конъюгированные вакцины, в частности, имеют большую склонность к агрегации, чем один белок-носитель (см. Берти и соавт., 2004, Biophys J86:3-9). Выбор препарата для полисахарид-белковой конъюгированной вакцины может значительно повлиять на агрегацию белка. См. Хо и соавт., 2001, Вакцина 19:716-725.Vaccine preparations should generally be stable and have a uniform consistency to ensure long shelf life and use in multi-dose packaging. Protein-based vaccines, including polysaccharide-protein conjugates, are subject to protein aggregation and precipitation, which may result in a lower effective total vaccine concentration due to the unavailability of the precipitated protein product. Polysaccharide-protein conjugate vaccines, in particular, have a greater tendency to aggregate than carrier protein alone (see Berti et al., 2004, Biophys J86:3-9). The choice of drug for a polysaccharide-protein conjugate vaccine can significantly affect protein aggregation. See Ho et al., 2001, Vaccine 19:716-725.
Несмотря на существование нескольких поливалентных противопневмококковых полисахаридбелковых конъюгированных вакцинных композиций, разрабатываемых по всему миру, в данной области техники существует постоянная необходимость в вакцинных препаратах, обеспечивающих высокую адсорбцию отдельных конъюгатов без агрегации/осаждения иммуногенных композиций, содержащих полисахарид-белковые конъюгаты.Despite the existence of several polyvalent pneumococcal polysaccharide protein conjugate vaccine compositions being developed around the world, there is an ongoing need in the art for vaccine formulations that provide high adsorption of individual conjugates without aggregation/precipitation of immunogenic compositions containing polysaccharide-protein conjugates.
Адъюванты, обычно используемые в таких поливалентных противопневмококковых вакцинах, были солями алюминия, такими как гидроксид алюминия и фосфат алюминия. Известно множество других экспериментальных адъювантов, однако адсорбция в соли алюминия остается наиболее распространенной адъювантной композицией вакцины. Несмотря на то, что их использование широко распространено, соли алюминия не всегда сравнимы с определенными антигенами, что, таким образом, приводит к значительным отклонениям в отношении процентной адсорбции полисахарид-белкового конъюгата на алюмокалиевых квасцах или антигенности.Adjuvants commonly used in such polyvalent pneumococcal vaccines have been aluminum salts such as aluminum hydroxide and aluminum phosphate. Many other experimental adjuvants are known, but aluminum salt adsorption remains the most common vaccine adjuvant formulation. Although their use is widespread, aluminum salts are not always comparable to certain antigens, thus leading to significant variations in percentage adsorption of the polysaccharide-protein conjugate to potassium alum or antigenicity.
Иммунологические свойства и устойчивость кандидата в конъюгированные вакцины, адсорбированного на алюминиевом адъюванте, зависит от различных параметров, таких какThe immunological properties and stability of a conjugate vaccine candidate adsorbed on an aluminum adjuvant depend on various parameters such as
i) антигенность каждого антигена, ii) тип белка-носителя, используемого для конъюгации, и iii) тип используемого адъюванта.i) the antigenicity of each antigen, ii) the type of carrier protein used for conjugation, and iii) the type of adjuvant used.
Что особенно важно, протяженность адсорбции антигена на адъюванте ранее заявлялась как один из ключевых параметров для демонстрации однородности характеристик от партии к партии в процессе разработки композиции и возможного влияния на эффективность вакцинного препарата.Most importantly, the extent of antigen adsorption to an adjuvant has previously been stated as one of the key parameters for demonstrating lot-to-lot uniformity during formulation development and possibly influencing the efficacy of a vaccine formulation.
Кроме того, процентная адсорбция полисахарид-белковых конъюгатов может далее снижаться при хранении композиции или в неблагоприятных условиях, таких как колебания температуры. См. 54-е заседание экспертной комиссии ВОЗ по стандартизации биологических препаратов, Рекомендации по производству и контролю противопневмококковых конъюгированных вакцин, 17-21 ноября 2003 г., Карл Э. Фраш, Сессия IV: Конъюгированные вакцины; Вакцинные технологии II; Португалия, 2008 г. Согласно предписаниям европейского регулирующего органа (ЕМЕА) для пневмококковых полисахарид-белковых конъюгатов, завершенность адсорбции (% свободного конъюгата) следует рассматривать как ключевой параметр контроля качества совместно с содержанием алюмокалиевых квасцов, стерильностью, идентичностью и содержанием свободного полисахарида. См. отчет об оценке для Synflorix 2009, процедура № ЕМЕА/Н/С/000973. ВОЗ рекомендует максимизировать адсорбцию для антигенов, осажденных алюмокалиевыми квасцами (например, дифтерийный и столбнячный анатоксин), где адсорбируется как минимум 80% антигенов в данных вакцинах.In addition, the percentage adsorption of polysaccharide-protein conjugates may further decrease during storage of the composition or under adverse conditions such as temperature fluctuations. See 54th meeting of the WHO Expert Panel on Biological Standardization, Guidelines for the production and control of pneumococcal conjugate vaccines, 17-21 November 2003, Carl E. Frasch, Session IV: Conjugate Vaccines; Vaccine Technologies II; Portugal, 2008. According to the European Regulatory Authority (EMEA) guidelines for pneumococcal polysaccharide-protein conjugates, adsorption completeness (% free conjugate) should be considered as a key quality control parameter in conjunction with potassium alum content, sterility, identity and free polysaccharide content. See evaluation report for Synflorix 2009, procedure no. EMEA/H/C/000973. WHO recommends maximizing adsorption for potassium alum precipitated antigens (eg, diphtheria and tetanus toxoid), where at least 80% of the antigens in these vaccines are adsorbed.
Во время производства полисахарид-белкового конъюгата композиция может содержать скопленияDuring the production of the polysaccharide-protein conjugate, the composition may contain accumulations
- 1 040838 частиц типа полисахарид-полисахарид, белок-белок или полисахарид-белок. Такие скопления частиц также наблюдаются в готовой продукции, что приводит к отбраковке от 4 до 10% заполненных флаконов полисахарид-белковой конъюгированной вакцины, что влияет на устойчивость и эффективность конъюгированной вакцины.- 1 040838 particles of the type polysaccharide-polysaccharide, protein-protein or polysaccharide-protein. These particulate buildups are also observed in finished products resulting in rejection of 4 to 10% of filled polysaccharide-protein conjugate vaccine vials, affecting the stability and potency of the conjugate vaccine.
С учетом вышеуказанных ограничений в отношении агрегации и устойчивости полисахарида и его конъюгата остается явная необходимость в снижении агрегации и стабилизации полисахарида при последующей переработке до этапа конечной композиции при производстве противопневмококковой конъюгированной вакцины.Given the above limitations on aggregation and stability of the polysaccharide and its conjugate, there remains a clear need to reduce aggregation and stabilize the polysaccharide during subsequent processing to the stage of the final composition in the production of pneumococcal conjugate vaccine.
Сущность изобретенияThe essence of the invention
Данное изобретение предлагает усовершенствование устойчивости вакцин, содержащих соль алюминия, и, в частности, способы минимизации агрегации и улучшения процентной адсорбции отдельных конъюгатов в поливалентных противопневмококковых полисахарид-белковых конъюгированных вакцинах. Авторы настоящего изобретения наблюдали, что совместная адсорбция полисахарид-белковых конъюгатов и применение соотношения полисахарида и белка более чем 1: 1 приводит кThe present invention provides improvements in the stability of aluminum salt containing vaccines, and in particular, methods for minimizing aggregation and improving the percentage adsorption of individual conjugates in polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate vaccines. The present inventors have observed that co-adsorption of polysaccharide-protein conjugates and the use of a ratio of polysaccharide and protein greater than 1:1 results in
i) процентной адсорбции менее 55% для пневмококковых конъюгатов для серотипов 6А, 9V и 23F и ii) процентной адсорбции от 80 до 90% для оставшихся конъюгатов серотипов, что не позволяет достигнуть полной адсорбции для отдельного конъюгата серотипа для заданной поливалентной противопневмококковой конъюгированной композиции.i) a percentage adsorption of less than 55% for pneumococcal conjugates for serotypes 6A, 9V and 23F; and ii) a percentage adsorption of 80 to 90% for the remaining serotype conjugates, which does not allow complete adsorption for a single serotype conjugate for a given polyvalent anti-pneumococcal conjugate composition.
Также наблюдалось, что композиция вакцины, подготовленной с использованием pH от 6,8 до 7,0, привела к агрегации приблизительно от 4 до 10% и меньшей адсорбции.It was also observed that the composition of the vaccine, prepared using a pH of 6.8 to 7.0, resulted in aggregation of approximately 4 to 10% and less adsorption.
Настоящее изобретение относится к способу для подготовки композиции устойчивой поливалентной противопневмококковой полисахарид-белковой конъюгированной вакцины, показывающей оптимальную адсорбцию от 75 до 99% для каждого конъюгата, где в указанном способе агрегацию предотвращают за счет использования одного из нижеуказанного:The present invention relates to a method for preparing a composition of a stable polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate vaccine showing optimal adsorption from 75 to 99% for each conjugate, where in said method aggregation is prevented by using one of the following:
a) индивидуальная или отдельная адсорбция для конъюгатов, которые в ином случае показывают относительно низкую адсорбцию при комбинированной адсорбции;a) single or separate adsorption for conjugates that otherwise show relatively low adsorption in combined adsorption;
b) буферная система гистидин-янтарная кислота вместе со смещением pH от нейтрального pH к кислотному pH;b) a histidine-succinic acid buffer system, together with a pH shift from neutral pH to acidic pH;
c) соотношение полисахарида и белка от 0,6 до 1,4; и/илиc) the ratio of polysaccharide and protein from 0.6 to 1.4; and/or
d) использование шестилопаточной турбинной мешалки Раштона в сосуде композиции.d) using a six-blade Rushton turbine agitator in the composition vessel.
Настоящее изобретение также раскрывает способ для подготовки полисахарид-белковых конъюгатов с улучшенной иммуногенностью и меньшим содержанием свободного полисахарида для пневмококковых полисахаридов, содержащих фосфодиэфирную связь, в частности 19A, 19F, 6А и 6В. Указанный процесс конъюгации минимизирует распадаемость рассортированного по размеру полисахарида, опосредованную промежуточным продуктом цианилирующего агента, и предотвращает последующую агрегацию частиц полисахарид-полисахарид, стабилизируя таким образом неустойчивые полисахариды. Главное условие пониженной агрегации может быть приписано использованию рассортированного по размеру полисахарида в диапазоне 100-200 кДа и отношению полисахарида к CDAP (цианилирующий агент) в диапазоне (1):(0,8-1).The present invention also discloses a method for preparing polysaccharide-protein conjugates with improved immunogenicity and lower free polysaccharide content for pneumococcal polysaccharides containing a phosphodiester linkage, in particular 19A, 19F, 6A and 6B. This conjugation process minimizes the disintegration of the sized polysaccharide mediated by the cyanylating agent intermediate and prevents subsequent aggregation of the polysaccharide-polysaccharide particles, thus stabilizing unstable polysaccharides. The main condition for reduced aggregation can be attributed to the use of a sized polysaccharide in the range of 100-200 kDa and a ratio of polysaccharide to CDAP (cyanylation agent) in the range of (1):(0.8-1).
Иммуногенная композиция, подготовленная в соответствии с настоящим изобретением, предлагает пониженную агрегацию между частицами полисахарид-полисахарид и полисахарид-белковый конъюгат вместе с усовершенствованной устойчивостью и иммуногенностью.The immunogenic composition prepared in accordance with the present invention offers reduced aggregation between polysaccharide-polysaccharide and polysaccharide-protein conjugate particles along with improved stability and immunogenicity.
Перечень фигурList of figures
Фиг. 1 - профиль ВЭЖХ-ИУ рассортированного по размеру 19А PnPs (178 кДа) до обработки диметиламинопиридином (DMAP);Fig. 1 is an HPLC-IA profile of size-sorted 19A PnPs (178 kDa) prior to dimethylaminopyridine (DMAP) treatment;
фиг. 2 - профиль ВЭЖХ-ИУ рассортированного по размеру 19А PnPs (70 кДа) через 24 ч (А) и профили распада при обработке диметиламинопиридином 14,5 кДа через 72 ч (В);fig. 2 shows HPLC-IU profile of sized 19A PnPs (70 kDa) after 24 hours (A) and degradation profiles upon treatment with 14.5 kDa dimethylaminopyridine after 72 hours (B);
фиг. 3 - профили ВЭЖХ-ИУ рассортированного по размеру 19А PnPs (178 кДа; А) и агрегация в зависимости от времени активированных посредством CDAP полисахаридов (3В, 3С и 3D), метод конъюгации без этапа диафильтрации 10 кДА 3Е (конъюгат без диафильтрации 10 кДа), 3F (конъюгат с диафильтрацией 10 кДа), 3G рассортированный по размеру 19A/3F1 активированный 19А (модифицированное соотношение Ps:CDAP 1:1 для 19А);fig. 3 - HPLC-IA profiles of size-sorted 19A PnPs (178 kDa; A) and time-dependent aggregation of CDAP-activated polysaccharides (3B, 3C and 3D), conjugation method without 10 kDA diafiltration step 3E (conjugate without 10 kDa diafiltration) , 3F (10 kDa diafiltration conjugate), 3G sized 19A/3F1 activated 19A (modified 1:1 Ps:CDAP ratio for 19A);
фиг. 4 - профили ВЭЖХ-ИУ рассортированного по размеру 19F PnPs (157 кДа; А) и агрегация в зависимости от времени активированных посредством CDAP полисахаридов (В), метод конъюгации без этапа диафильтрации 10 кДА 4C/4D (модифицированное соотношение Ps:CDAP 1:1 для 19F);fig. 4 - HPLC-IA profiles of size-sorted 19F PnPs (157 kDa; A) and time-dependent aggregation of CDAP-activated polysaccharides (B), conjugation method without diafiltration step 10 kDa 4C/4D (modified Ps:CDAP ratio 1:1 for 19F);
фи г. 5 - турбинная мешалка Раштона с шестью плоскими лопатками;Fig. 5 - Rushton turbine mixer with six flat blades;
фиг. 6 - протокол адсорбции.fig. 6 - adsorption protocol.
Раскрытие изобретенияDisclosure of invention
Целью данного изобретения является обеспечение усовершенствования устойчивости вакцин, содержащих соль алюминия, и, в частности, способы минимизации агрегации и улучшения процентной адсорбции отдельных конъюгатов в поливалентных противопневмококковых полисахарид-белковых конъюгированных вакцинах.The purpose of this invention is to provide improvements in the stability of vaccines containing an aluminum salt, and in particular, methods to minimize aggregation and improve the percentage adsorption of individual conjugates in polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate vaccines.
- 2 040838- 2 040838
Авторы настоящего изобретения наблюдали, что совместная адсорбция полисахарид-белковых конъюгатов и применение соотношения полисахарида и белка более чем 1: 1 приводит кThe present inventors have observed that co-adsorption of polysaccharide-protein conjugates and the use of a ratio of polysaccharide and protein greater than 1:1 results in
i) процентной адсорбции менее 55% для пневмококковых конъюгатов для серотипов 6А, 9V и 23F и ii) процентной адсорбции от 80 до 90% для оставшихся конъюгатов серотипов, что не позволяет достигнуть полной адсорбции для отдельного конъюгата серотипа для заданной поливалентной противопневмококковой конъюгированной композиции. Также наблюдалось, что композиция вакцины, подготовленной с использованием pH от 6,8 до 7,0, привела к агрегации приблизительно от 4 до 10% и меньшей адсорбции.i) a percentage adsorption of less than 55% for pneumococcal conjugates for serotypes 6A, 9V and 23F; and ii) a percentage adsorption of 80 to 90% for the remaining serotype conjugates, which does not allow complete adsorption for a single serotype conjugate for a given polyvalent anti-pneumococcal conjugate composition. It was also observed that the composition of the vaccine, prepared using a pH of 6.8 to 7.0, resulted in aggregation of approximately 4 to 10% and less adsorption.
Полисахарид был культивирован способом, раскрытым в патенте WO 2013088448 A1, где указанный способ содержит (а) обеспечение посевного материала штамма бактерий, экспрессирующих С-полисахарид;The polysaccharide was cultivated by the method disclosed in WO 2013088448 A1, wherein said method comprises (a) providing an inoculum of a C-polysaccharide-expressing bacterial strain;
(b) культивацию штамма посредством ферментации при pH 7,2, где скорость добавления исходной среды эквивалентна скорости добавления щелочной среды для поддержания заранее установленного pH;(b) cultivating the strain by fermentation at pH 7.2, where the rate of addition of the original medium is equivalent to the rate of addition of an alkaline medium to maintain a predetermined pH;
с) ферментация питательной среды при 35-38°С с перемешиванием с частотой 50-150 об/мин и скоростью потока воздуха 0,1-0,5 об/об/мин.c) fermentation of the nutrient medium at 35-38°C with stirring at a frequency of 50-150 rpm and an air flow rate of 0.1-0.5 rpm.
Полисахарид был очищен при помощи процесса, раскрытого в патенте WO 2012127485. Pn-Ps, подготовленный при помощи такого процесса, показывает восстановление приблизительно от 60 до 70%, где загрязненность С-полисахарида снижается в 1-5 раз по сравнению с содержанием C-Ps после хроматографии с гидрофобным взаимодействием или до ионообменной хроматографии, загрязнение белка составляет менее 1%, и загрязнение нуклеиновой кислоты составляет менее 1%. Указанный процесс выполнялся на исследовательском, полупромышленном и промышленном уровне.The polysaccharide was purified using the process disclosed in WO 2012127485. Pn-Ps prepared using this process shows a recovery of approximately 60 to 70%, where the contamination of the C-polysaccharide is reduced by 1-5 times compared to the content of C-Ps after hydrophobic interaction chromatography or before ion exchange chromatography, protein contamination is less than 1%, and nucleic acid contamination is less than 1%. This process was carried out at the research, semi-industrial and industrial levels.
При помощи данного процесса очистка полисахарида может проводиться за меньшее на 80-90% время и с меньшими на 90% расходами, если сравнивать с методами, основанными на ЦТАБ/спирте.With this process, polysaccharide purification can be carried out in 80-90% less time and with 90% less cost when compared to CTAB/alcohol based methods.
Согласно одному важному варианту осуществления настоящего изобретения улучшенная процентная адсорбция от 75 до 95% может быть получена для конъюгатов пневмококка за счетAccording to one important embodiment of the present invention, an improved percentage adsorption of 75 to 95% can be obtained for pneumococcal conjugates by
i) применения соотношения полисахарида и белка приблизительно от 0,8 до 1,4;i) using a ratio of polysaccharide and protein from about 0.8 to 1.4;
ii) применения индивидуальной или отдельной адсорбции для плохо адсорбирующихся конъюгатов пневмококка;ii) using single or separate adsorption for poorly adsorbed pneumococcal conjugates;
iii) поддержания низкого pH во время формирования композиции.iii) maintaining a low pH during composition formation.
Согласно одному аспекту первого варианта осуществления изобретения предпочтительным соотношением полисахарида и белка является 1:1.According to one aspect of the first embodiment of the invention, the preferred ratio of polysaccharide and protein is 1:1.
Согласно второму аспекту первого варианта осуществления изобретения указанная композиция содержит как минимум 2 полисахарид-белковых конъюгата с полисахаридом, отобранным из серотипов 1, 2, 3,4, 5, 6А, 6В, 7F, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 14, 15В, 17F, 18C, 19A,19F, 20, 22F, 23F, 33F и 45.According to the second aspect of the first embodiment of the invention, said composition contains at least 2 polysaccharide-protein conjugates with a polysaccharide selected from serotypes 1, 2, 3,4, 5, 6A, 6B, 7F, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 14 , 15V, 17F, 18C, 19A,19F, 20, 22F, 23F, 33F and 45.
Согласно третьему аспекту первого варианта осуществления индивидуальный режим адсорбции может быть применен к любому серотипу пневмококка, выбранному из 2, 3, 4, 6А, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15B, 17F, 18C, 20, 22F, 23F, 33F и 45, предпочтительно для серотипов пневмококка 6А, 9V и 23F.According to the third aspect of the first embodiment, the individual adsorption regimen can be applied to any pneumococcal serotype selected from 2, 3, 4, 6A, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15B, 17F, 18C, 20, 22F, 23F, 33F and 45, preferably for pneumococcal serotypes 6A, 9V and 23F.
Согласно предпочтительному аспекту первого варианта осуществления изобретения поливалентная противопневмококковая конъюгированная вакцина является 10-валентной, когда серотипы пневмококка 6А, 9V и 23F индивидуально адсорбируют как отдельную смесь, а затем добавляют к другой смеси, состоящей из серотипов пневмококка 1, 5, 6В, 7F, 14, 19А и 19F, которые были адсорбированы в совместном режиме.According to a preferred aspect of the first embodiment of the invention, the polyvalent pneumococcal conjugate vaccine is 10-valent when pneumococcal serotypes 6A, 9V and 23F are individually adsorbed as a separate mixture and then added to another mixture consisting of pneumococcal serotypes 1, 5, 6B, 7F, 14 , 19A, and 19F, which were co-adsorbed.
Согласно другому предпочтительному аспекту первого варианта осуществления изобретения поливалентная противопневмококковая конъюгированная вакцина является 11-, 13-, 15-, 16- и более валентной, тогда как минимум один серотип пневмококка, выбранный из группы 2, 3, 4, 6А, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15В, 17F, 18С, 20, 22F, 23F, 33F и 45, индивидуально адсорбируют или адсорбируют в меньшей группе как отдельную смесь, а затем добавляют к другой смеси, состоящей из серотипов пневмококка 1, 5, 6В, 7F, 14, 19А и 19F, которые были адсорбированы в совместном режиме.According to another preferred aspect of the first embodiment of the invention, the polyvalent pneumococcal conjugate vaccine is 11-, 13-, 15-, 16- or more valent, while at least one pneumococcal serotype selected from group 2, 3, 4, 6A, 8, 9V, 9F, 9N, 12F, 15B, 17F, 18C, 20, 22F, 23F, 33F and 45 are individually adsorbed or adsorbed in a smaller group as a separate mixture and then added to another mixture consisting of pneumococcal serotypes 1, 5, 6B, 7F, 14, 19A and 19F which were co-adsorbed.
Согласно еще одному предпочтительному аспекту первого варианта осуществления изобретения поливалентная противопневмококковая конъюгированная вакцина является 16-валентной, когда как минимум один серотип пневмококка, выбранный из группы 2, 3, 4, 6А, 9V, 12F, 15В, 18С и 23F, индивидуально адсорбируют в меньшей группе как отдельную смесь, а затем добавляют к другой смеси, состоящей из серотипов пневмококка 1, 5, 6В, 7F, 14, 19А и 19F, которые были адсорбированы в совместном режиме.According to another preferred aspect of the first embodiment of the invention, the polyvalent pneumococcal conjugate vaccine is 16-valent when at least one pneumococcal serotype selected from the group 2, 3, 4, 6A, 9V, 12F, 15B, 18C and 23F is individually adsorbed in less group as a separate mixture, and then added to another mixture consisting of pneumococcal serotypes 1, 5, 6B, 7F, 14, 19A and 19F, which were co-adsorbed.
Второй вариант осуществления настоящего изобретения состоит в том, что агрегацию композиции поливалентного противопневмококкового полисахарид-белкового конъюгата можно полностью предотвратить за счетThe second embodiment of the present invention is that the aggregation of the composition of the polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate can be completely prevented by
i) смещения pH от нейтрального pH к кислотному pH и ii) использования буферной комбинации гистидин-янтарная кислота.i) shifting the pH from neutral pH to acidic pH; and ii) using a histidine-succinic acid buffer combination.
Согласно одному аспекту второго варианта осуществления указанное смещение может происходить с 6,8 к pH, выбранному из значений 5,2, 5,3, 5,4, 5,5, 5,6, 5,7, 5,8 и 5,9, но не ограничивающемуся ими. Более предпочтительно с 6.8 к pH, выбранному из значений 5,4, 5,5, 5,6, 5,7 и 5,8.According to one aspect of the second embodiment, said shift may occur from 6.8 to a pH selected from 5.2, 5.3, 5.4, 5.5, 5.6, 5.7, 5.8 and 5, 9, but not limited to them. More preferably from 6.8 to a pH selected from 5.4, 5.5, 5.6, 5.7 and 5.8.
- 3 040838- 3 040838
Согласно другому аспекту второго варианта осуществления указанная буферная система гистидинянтарная кислота может иметь концентрацию от 1 мМ до 200 М. Предпочтительная концентрация составляет как минимум 1 мМ (например, максимум 200 мМ, 150 мМ, 100 мМ, 90 мМ, 80 мМ, 70 мМ, 60 мМ, 50 мМ, 40 мМ, 30 мМ, 20 мМ, 10 мМ и т.д.). Более предпочтительно, чтобы концентрация буферной системы гистидин-янтарная кислота в композиции составляла от 10 до 40 мМ.According to another aspect of the second embodiment, said histidine succinic acid buffer system may have a concentration of 1 mM to 200 M. A preferred concentration is at least 1 mM (e.g., maximum 200 mM, 150 mM, 100 mM, 90 mM, 80 mM, 60 mM, 50 mM, 40 mM, 30 mM, 20 mM, 10 mM, etc.). More preferably, the concentration of the buffer system histidine-succinic acid in the composition ranged from 10 to 40 mm.
Третий вариант осуществления настоящего изобретения состоит в том, что флоккулы или агрегатное образование в общем объеме пневмококковых конъюгатов могут быть предотвращены за счет использования турбинных мешалок Раштона с плоскими лопатками вместо мешалок магнитного, осевого и радиального типа в сосудах композиции. Устойчивость иммуногенной композиции настоящего изобретения легко определяется при помощи стандартных техник, которые хорошо известны и являются стандартными для специалистов в данной области техники. Например, иммуногенная композиция подвергается анализу на процентную адсорбцию конъюгатов, устойчивость, агрегацию, иммуногенность, образование твердых частиц, потерю белка (концентрации) и т.п. посредством методов, содержащих, но не ограничивающихся, ИФА, рассеивание света, оптическую плотность, скоростное осаждение в центрифуге, равновесное осаждение в центрифуге, круговой дихроизм КД (CD), метод Лоури, анализ с бицинхониновой кислотой БХК (ВСА) и т.п. В предпочтительном варианте осуществления настоящее изобретение предлагает новый метод иммуноферментного анализа ИФА (ELISA), который непосредственно определяет количество конъюгированного/связанного полисахарида, не влияя на антигенность конъюгатов в поливалентных противопневмококковых конъюгированных вакцинах. Тот же метод можно применять для определения количественного содержания неадсорбированного конъюгата в матрице композиции как идентифицирующего параметра для процентной адсорбции, где конъюгаты показывают адсорбцию более 70%.A third embodiment of the present invention is that flocculation or aggregation in the total volume of pneumococcal conjugates can be prevented by using Rushton flat impellers instead of magnetic, axial and radial type agitators in the composition vessels. The stability of the immunogenic composition of the present invention is easily determined using standard techniques that are well known and are standard for those skilled in the art. For example, the immunogenic composition is analyzed for percent adsorption of conjugates, stability, aggregation, immunogenicity, particulate formation, protein loss (concentrations), and the like. by means of methods including, but not limited to, ELISA, light scattering, optical density, centrifuge speed settling, centrifuge equilibrium settling, CD circular dichroism (CD), Lowry method, bicinchoninic acid BCA (BCA) assay, and the like. In a preferred embodiment, the present invention provides a novel enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) method that directly quantifies the amount of conjugated/bound polysaccharide without affecting the antigenicity of the conjugates in polyvalent pneumococcal conjugate vaccines. The same method can be used to quantify the amount of non-adsorbed conjugate in the composition matrix as an identifying parameter for percentage adsorption where conjugates show an adsorption of more than 70%.
Предпочтительно, чтобы в указанном методе ИФА мог применяться предварительный этап перед анализом, содержащий десорбцию конъюгата из адъюванта алюмокалиевых квасцов без влияния на антигенность белка-носителя, а также конъюгированного полисахарида.В частности, растворение образцов конъюгата, адсорбированных на алюмокалиевых квасцах, достигается с использованием гидроксида натрия и лимонной кислоты. Белок-носитель может быть выбран из группы, но не ограничивается ею, содержащей CRM197, Р4, дифтерийный анатоксин, столбнячный анатоксин, фрагмент С столбнячного анатоксина, коклюшный анатоксин, белок D гемофильной палочки, термолабильные энтеротоксины кишечной палочки, термостабильные энтеротоксины кишечной палочки и экзотоксин А синегнойной палочки, комплекс наружной мембраны С, порины, трансферринсвязывающие белки, пневмолизин, пневмококковый поверхностный белок A (PspA), пневмококковый поверхностный адгезин A (PsaA), белок PhtD, пневмококковые поверхностные белки BVH-3 и BVH-11, защищающий антиген 3А (РА) штамма сибирской язвы, детоксифицированный фактор, вызывающий отек, летальный фактор сибирской язвы, яичный белок, гемоцианин лимфы улитки ГЛУ (KFH), человеческий сывороточный альбумин, бычий сывороточный альбумин БСА (BSA) и сухой туберкулин, очищенный от белков среды (PPD), в частности, CRM197 или Р4.Preferably, this ELISA method can use a preliminary step before analysis, comprising desorption of the conjugate from the potassium alum adjuvant without affecting the antigenicity of the carrier protein, as well as the conjugated polysaccharide. In particular, the dissolution of conjugate samples adsorbed on potassium alum is achieved using hydroxide sodium and citric acid. The carrier protein may be selected from, but is not limited to, CRM197, P4, diphtheria toxoid, tetanus toxoid, tetanus toxoid fragment C, pertussis toxoid, Haemophilus influenzae protein D, heat-labile E. coli enterotoxins, heat-stable E. coli enterotoxins, and exotoxin A. Pseudomonas aeruginosa, outer membrane complex C, porins, transferrin-binding proteins, pneumolysin, pneumococcal surface protein A (PspA), pneumococcal surface adhesive A (PsaA), PhtD protein, pneumococcal surface proteins BVH-3 and BVH-11, protecting antigen 3A (PA ) anthrax strain, detoxified edema-inducing factor, anthrax lethal factor, egg white, keyhole limpet hemocyanin GLU (KFH), human serum albumin, bovine serum albumin BSA (BSA) and tuberculin powder purified from medium proteins (PPD), in particular CRM197 or P4.
В предпочтительном варианте осуществления указанная поливалентная композиция может содержатьIn a preferred embodiment, said polyvalent composition may contain
i) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с ТТ в качестве белка-носителя; или ii) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с DT в качестве белка-носителя; или iii) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с пневмококковым поверхностным белком A (PsaA) в качестве белка-носителя; или iv) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с ТТ в качестве белка-носителя, как минимум один белок полисахарида с DT в качестве белка-носителя; илиi) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one polysaccharide protein with TT as carrier protein; or ii) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one polysaccharide protein with DT as carrier protein; or iii) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one pneumococcal surface protein A (PsaA) polysaccharide protein as carrier protein; or iv) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one polysaccharide protein with TT as carrier protein, at least one polysaccharide protein with DT as carrier protein; or
v) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с ТТ в качестве белка-носителя, как минимум один белок полисахарида с пневмококковым поверхностным адгезином A (PsaA) в качестве белка-носителя; или vi) как минимум один полисахарид-белковый конъюгат, имеющий CRM197 в качестве белканосителя, как минимум один белок полисахарида с DT в качестве белка-носителя, как минимум один белок полисахарида с пневмококковым поверхностным адгезином A (PsaA) в качестве белка-носителя.v) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one polysaccharide protein with TT as carrier protein, at least one polysaccharide protein with pneumococcal surface adhesin A (PsaA) as carrier protein; or vi) at least one polysaccharide-protein conjugate having CRM197 as carrier protein, at least one polysaccharide protein with DT as carrier protein, at least one polysaccharide protein with pneumococcal surface adhesin A (PsaA) as carrier protein.
В другом варианте осуществления изобретения предпочтительный белок-носитель, конъюгированный в серотип 3, это CRM-197, серотип 4 - ТТ или DT и серотип 18С - CRM197.In another embodiment, the preferred serotype 3 conjugated carrier protein is CRM-197, serotype 4 is TT or DT, and serotype 18C is CRM197.
Другой вариант осуществления изобретения содержит использование PsaA в качестве белканосителя в финальной композиции. PsaA также может быть использован в финальной композиции как адъювант.Another embodiment of the invention contains the use of PsaA as a carrier protein in the final composition. PsaA can also be used as an adjuvant in the final formulation.
В некоторых вариантах осуществления поливалентная композиция настоящего изобретения может содержать поверхностно-активное вещество, предпочтительно полисорбат 20. В некоторых вариантахIn some embodiments, the implementation of the polyvalent composition of the present invention may contain a surfactant, preferably polysorbate 20. In some embodiments
- 4 040838 осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет от 0,01 до 10% мас./об. композиции. В еще одних вариантах осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет 0,01% мас./об. композиции. В других вариантах осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет 0,05% мас./об. композиции. В еще одних вариантах осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет 0,1% мас./об. композиции. В другом варианте осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет 1,0% мас./об. композиции. В еще одном варианте осуществления финальная концентрация полисорбата 20 в композиции составляет 10,0% мас./об. композиции.- 4 040838 implementation of the final concentration of polysorbate 20 in the composition is from 0.01 to 10% wt./about. compositions. In yet other embodiments, the implementation of the final concentration of polysorbate 20 in the composition is 0.01% wt./about. compositions. In other embodiments, the implementation of the final concentration of polysorbate 20 in the composition is 0.05% wt./about. compositions. In still other embodiments, the implementation of the final concentration of polysorbate 20 in the composition is 0.1% wt./about. compositions. In another embodiment, the final concentration of Polysorbate 20 in the composition is 1.0% w/v. compositions. In yet another embodiment, the final concentration of Polysorbate 20 in the composition is 10.0% w/v. compositions.
Композиции настоящей поливалентной вакцины могут содержать консерванты, выбранные из группы ртутьсодержащих консервантов (например, тимеросал), 2-феноксиэтанола, метилпарабенов, пропилпарабенов и бензилового спирта (или их смесей), но не ограничиваются ими.Compositions of the present polyvalent vaccine may contain, but are not limited to, preservatives selected from the group of mercury-containing preservatives (eg, thimerosal), 2-phenoxyethanol, methyl parabens, propyl parabens, and benzyl alcohol (or mixtures thereof).
В предпочтительном варианте осуществления настоящего изобретения указанная композиция поливалентной противопневмококковой полисахарид-белок конъюгированной вакцины, предпочтительно 10- или 16-валентной, может содержать конъюгаты, адсорбированные на фосфате алюминия, гистидин, янтарную кислоту, хлорид натрия, полисорбат 20 и тиомерсал. Композиция вакцины настоящего изобретения может содержать этап добавления адъюванта соли алюминия в количестве 20-375 мкг, 20-300 мкг, 20-200 мкг, 25-150 мкг Al+++ на дозу 0,5 мл.In a preferred embodiment of the present invention, said polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate vaccine composition, preferably 10- or 16-valent, may contain aluminum phosphate adsorbed conjugates, histidine, succinic acid, sodium chloride, polysorbate 20 and thiomersal. The vaccine composition of the present invention may contain the step of adding an aluminum salt adjuvant in an amount of 20-375 µg, 20-300 µg, 20-200 µg, 25-150 µg Al +++ per 0.5 ml dose.
Обычно иммуногенные композиции подготавливаются для инъекций в виде жидких растворов или суспензий; также могут быть приготовлены в твердых формах для растворения или суспендирования в жидких связующих перед введением. Препарат также может быть эмульгирован или помещен в липосомы для усиленного адъювантного эффекта. Непосредственное введение композиции обычно осуществляется парентерально (например, посредством инъекции, подкожно, интраперитонально, внутривенно или внутримышечно, или вводится в интерстициальное пространство ткани). Композиции также можно наносить на пораженный участок. Прочие способы ввода содержат пероральный и ингаляционный прием, суппозитории, трансдермальное или транскутанное введение иглой, а также безыгольными шприцами. Дозировка может осуществляться по схеме введения однократной дозы или схеме введения многократных доз (например, включая бустерные дозы). Предпочтительно, чтобы вакцины настоящего изобретения могли храниться в растворе или лиофилизированными, где лиофилизированная композиция вакцины настоящего изобретения может быть представлена как препарат на 1, 5 или 10 доз с разбавителем, содержащим гель фосфата алюминия и NaCl.Usually immunogenic compositions are prepared for injection in the form of liquid solutions or suspensions; may also be prepared in solid forms for dissolution or suspension in liquid binders prior to administration. The drug can also be emulsified or placed in liposomes for enhanced adjuvant effect. Direct administration of the composition is typically parenterally (eg, by injection, subcutaneously, intraperitoneally, intravenously or intramuscularly, or injected into the interstitial space of a tissue). The compositions can also be applied to the affected area. Other routes of administration include oral and inhalation administration, suppositories, transdermal or transcutaneous injection with a needle, and needleless syringes. Dosage may be on a single dose schedule or a multiple dose schedule (eg, including booster doses). Preferably, the vaccines of the present invention may be stored in solution or lyophilized, where the lyophilized vaccine composition of the present invention may be presented as a 1, 5 or 10 dose preparation with a diluent containing aluminum phosphate gel and NaCl.
Другой вариант осуществления изобретения содержит использование турбинной мешалки Раштона с плоскими лопатками в сосуде композиции (см. фиг. 5).Another embodiment of the invention comprises the use of a Rushton turbine mixer with flat blades in the vessel of the composition (see Fig. 5).
ПримерыExamples
Пример 1. Ферментация.Example 1 Fermentation.
Способ содержит:The method contains:
(а) обеспечение посевного материала штамма бактерий, экспрессирующих С-полисахарид;(a) providing an inoculum of a strain of bacteria expressing the C-polysaccharide;
(b) культивацию штамма посредством ферментации при pH 7,2, где скорость добавления исходной среды эквивалентна скорости добавления щелочной среды для поддержания заранее установленного pH;(b) cultivating the strain by fermentation at pH 7.2, where the rate of addition of the original medium is equivalent to the rate of addition of an alkaline medium to maintain a predetermined pH;
с) ферментация питательной среды при 35-38°С с перемешиванием с частотой 50-150 об/мин и скоростью потока воздуха 0-0,5 об/об/мин.c) fermentation of the nutrient medium at 35-38°C with stirring at a frequency of 50-150 rpm and an air flow rate of 0-0.5 rpm.
Пример 2. Очистка капсульного полисахарида.Example 2 Purification of a capsular polysaccharide.
Очистка капсульного полисахарида пневмококка серотип 19F (ионообменная хроматография после хроматографии с гидрофобным взаимодействием).Purification of pneumococcal capsular polysaccharide serotype 19F (ion exchange chromatography after hydrophobic interaction chromatography).
Очищенный бульон 5L из ферментированных культур пневмококка серотипа 19F был концентрирован и подвергнут диафильтрации до 500 мл с использованием мембраны с НОММ 100 кДа.Purified broth 5L from fermented cultures of pneumococcus serotype 19F was concentrated and diafiltered to 500 ml using a 100 kDa HOMM membrane.
Диафильтрация осуществлялась с использованием 25 мМ натрий-фосфатного буфера с нейтральным pH, а затем проводилась диафильтрация с водой для инъекций ВДИ (WFI). Нуклеаза была добавлена к раствору полисахарида для достижения финальной концентрации раствора 8 ед/мл. Ферментативная обработка проводилась при 370°С, в течение 10±2 ч с перемешиванием.Diafiltration was performed using 25 mM neutral pH sodium phosphate buffer followed by diafiltration with water for injection WFI. Nuclease was added to the polysaccharide solution to achieve a final solution concentration of 8 U/mL. Enzymatic treatment was carried out at 370°C for 10±2 h with stirring.
Сульфат аммония был добавлен к раствору полисахарида с нуклеазой до насыщенности 50% и выдерживался при 2-8°С в течение 12±2 ч (за исключением серотипов 5 и 4). Смесь подвергалась центрифугированию. Осадок в пробирке (выделившаяся фаза) был удален. Раствор (~500 мл) подвергается диафильтрации 100 кДа с использованием NaCl, а затем охлажденной ВДИ. Данный раствор, подвергнутый диафильтрации, содержащий полисахарид с буфером и высокой концентрацией соли, был загружен в колонку для хроматографии с гидрофобным взаимодействием.Ammonium sulfate was added to the polysaccharide solution with nuclease to a saturation of 50% and kept at 2-8°C for 12±2 hours (except for serotypes 5 and 4). The mixture was subjected to centrifugation. The precipitate in the test tube (separated phase) was removed. The solution (~500 ml) was subjected to 100 kDa diafiltration using NaCl followed by chilled WFI. This diafiltrated solution containing the high salt buffered polysaccharide was loaded onto a hydrophobic interaction chromatography column.
Колонка для хроматографии с гидрофобным взаимодействием (300 мл) была кондиционирована с сульфатно-аммониевым буфером 50% насыщенности, и затем раствор полисахарида (500 мл) был помещен в колонку с pH от 6 до 8, предпочтительно от 6 до 7. Затем колонка была промыта буфером, содержащим сульфат аммония 50% насыщенности. При этих условиях полисахарид был восстановлен при проточной и кондиционирующей промывке из колонки.The hydrophobic interaction chromatography column (300 ml) was conditioned with 50% saturation ammonium sulphate buffer, and then the polysaccharide solution (500 ml) was placed on the column at a pH of 6 to 8, preferably 6 to 7. The column was then washed buffer containing ammonium sulfate 50% saturation. Under these conditions, the polysaccharide was recovered by flow and conditioning washing from the column.
Затем раствор полисахарида был концентрирован с использованием фильтра с НОММ 100 кДа, аThe polysaccharide solution was then concentrated using a 100 kDa HOMM filter and
- 5 040838 затем подвергнут диафильтрации с использованием NaCl и воды для инъекций (ВДИ). Колонка для ионообменной хроматографии (300 мл) (сильноосновный анионит) была кондиционирована с 20 мМ натрий-фосфатного буфера, и затем раствор полисахарида (500 мл) был помещен в колонку с pH от 6 до 8, предпочтительно от 6,5 до 7,5. Затем колонка была промыта буфером. Адсорбированные полисахариды были извлечены из адсорбента посредством поэтапного градиентного элюирования с использованием 1,0M NaCl (различные полисахариды были извлечены из адсорбента при различной ионной силе NaCl).- 5 040838 then subjected to diafiltration using NaCl and water for injection (WFI). An ion exchange chromatography column (300 ml) (strong base anion exchange resin) was conditioned with 20 mM sodium phosphate buffer, and then the polysaccharide solution (500 ml) was placed on the column with a pH of 6 to 8, preferably 6.5 to 7.5 . The column was then washed with buffer. The adsorbed polysaccharides were recovered from the adsorbent by stepwise gradient elution using 1.0 M NaCl (different polysaccharides were recovered from the adsorbent at different ionic strengths of NaCl).
Затем раствор полисахарида был концентрирован с использованием фильтра с НОММ 100 кДа, а затем подвергнут диафильтрации с использованием воды для инъекций (ВДИ). Раствор полисахарида, подвергнутый диафильтрации, был пропущен через мембранный фильтр 0,22 мкм в полипропиленовые бутылки. Очищенный полисахарид хранился в замороженном состоянии при температуре (-20)+50°С.The polysaccharide solution was then concentrated using a 100 kDa HOMM filter and then diafiltered using water for injection (WFI). The diafiltered polysaccharide solution was passed through a 0.22 µm membrane filter into polypropylene bottles. The purified polysaccharide was stored frozen at (-20)+50°C.
Описанный выше процесс также применялся для серотипов 4, 6А, 6В, 7F, 9V, 10А, 14, 18С, 19A, 19F и 23F.The process described above was also applied to serotypes 4, 6A, 6B, 7F, 9V, 10A, 14, 18C, 19A, 19F and 23F.
Результаты.Results.
Оценка результатов С-полисахарида после хроматографии с гидрофобным взаимодействием и после ионообменной хроматографии проводилась по методу ЯМР-спектра Н1/Р31. Результатом процесса стало снижение содержания загрязнений в 2-3 раза.The evaluation of the results of C-polysaccharide after hydrophobic interaction chromatography and after ion exchange chromatography was carried out by the method of NMR spectrum H1/P31. The result of the process was a reduction in the content of contaminants by 2-3 times.
Пример 3. Рассортированные по размеру полисахариды.Example 3 Sized polysaccharides.
Гомогенизирующее (микроструйное) устройство было использовано для снижения молекулярной массы полисахарида перед этапом активации. Для 19А уменьшение размера было выполнено при 24-28 кфунтах/кв.дюйм, при этом уменьшение размера для 19F осуществлялось при 26-30 кфунтах/кв.дюйм, где количество проходов составляло от 1 до 3. Рассортированный по размеру полисахарид подвергался диафильтрации и концентрации, а затем фильтрации через фильтр 0,22 мкм. Затем рассортированный по размеру полисахарид подвергался ВЭЖХ-ИУ для оценки средней молекулярной массы.A homogenizing (microfluidic) device was used to reduce the molecular weight of the polysaccharide prior to the activation step. For 19A, the size reduction was performed at 24-28 ksi, while the size reduction for 19F was performed at 26-30 ksi, where the number of passes was from 1 to 3. The sized polysaccharide was subjected to diafiltration and concentration and then filtering through a 0.22 µm filter. The sized polysaccharide was then subjected to HPLC-IU to evaluate the average molecular weight.
Пример 4. Обычный процесс конъюгации.Example 4 Conventional conjugation process.
Конъюгация полисахарида с белком-носителем осуществлялась с применением способа конъюгации CDAP Лиса и соавт. (Вакцина 26: 190-198, 1996). Полисахариды с механически уменьшенным размером (за исключением 6А, который был использован в нативной форме или рассортирован в зависимости от размера 6А) были растворены в 2М NaCl. CDAP (в ацетонитриле) из маточного раствора 100 мг/мл был добавлен в раствор полисахарида в соответствии с соотношением полисахарид:CDAP.Conjugation of the polysaccharide to the carrier protein was performed using the CDAP conjugation method of Lis et al. (Vaccine 26: 190-198, 1996). The mechanically reduced polysaccharides (with the exception of 6A, which was used in native form or size graded 6A) were dissolved in 2M NaCl. CDAP (in acetonitrile) from a 100 mg/ml stock solution was added to the polysaccharide solution according to the polysaccharide:CDAP ratio.
Приблизительно через 1 мин было добавлено 2М NaOH для получения определенного активационного pH. Активация полисахарида осуществлялась с этим pH в течение 4-10 мин при температуре 22°С. CRM-197 (количество зависит от исходного соотношения Ps/белок) был добавлен к активированному полисахариду, и реакция сочетания выполнялась при определенном pH в течение 3-8 ч в зависимости от серотипа. Затем осуществлялась остановка реакции при помощи глицина в течение 1 ч при 220°С и на протяжении ночи при 120°С. Конъюгаты затем были очищены посредством диафильтрации от 300 кДа до 500 кДа, а затем диафильтрацией 100 кДа. Затем было определено содержание полисахарида и белка в очищенных конъюгатах, прошедших через фильтр 0,22 мкм.Approximately 1 min later, 2M NaOH was added to obtain a certain activation pH. The activation of the polysaccharide was carried out with this pH for 4-10 min at a temperature of 22°C. CRM-197 (the amount depends on the initial Ps/protein ratio) was added to the activated polysaccharide and the coupling reaction was performed at a certain pH for 3-8 hours depending on the serotype. The reaction was then stopped with glycine for 1 hour at 220°C and overnight at 120°C. The conjugates were then purified by diafiltration from 300 kDa to 500 kDa followed by 100 kDa diafiltration. Then the content of polysaccharide and protein in the purified conjugates, which passed through a filter of 0.22 μm, was determined.
Таблица 1 Варианты параметров реакции конъюгации в зависимости от серотипа для 10 серотиповTable 1 Variants of parameters of the conjugation reaction depending on the serotype for 10 serotypes
- 6 040838- 6 040838
Таблица 2table 2
Сравнение процентной адсорбции отдельных серотипов композиций ПКВ-10 при подходе к процессу разработки композиции с одной и двумя смесямиComparison of percentage adsorption of individual serotypes of PCV-10 compositions in the approach to the development process of the composition with one and two mixtures
При подходе с одной смесью серотипы 6А, 9V и 23F плохо адсорбировались в композиции, при этом при подходе с двумя смесями процентная адсорбция составляла >70% для всех серотипов.In the single mixture approach, serotypes 6A, 9V and 23F adsorbed poorly in the formulation, while in the two mixture approach, percentage adsorption was >70% for all serotypes.
Таблица 3Table 3
Влияние смещения pH на агрегацию композиций ПКВ-10Effect of pH shift on the aggregation of PCV-10 compositions
Агрегация не была обнаружена при pH 5,6-5,8 для композиции ПКВ-10 по сравнению с pH 6,8.Aggregation was not detected at pH 5.6-5.8 for the PCV-10 formulation compared to pH 6.8.
Было обнаружено, что соотношение полисахарида и белка (1:1) имеет благоприятное влияние на продолжительность адсорбции пневмококкового конъюгата в композиции.It was found that the ratio of polysaccharide and protein (1:1) has a beneficial effect on the duration of adsorption of the pneumococcal conjugate in the composition.
Таблица 4Table 4
Влияние соотношения Ps и CRM197 на адсорбцию пневмококкового конъюгата (серотип 6А) в композицииThe effect of the ratio of Ps and CRM 197 on the adsorption of pneumococcal conjugate (serotype 6A) in the composition
Влияние соотношения полисахарида и белка наблюдалось при адсорбции конъюгатов. Конъюгаты 6А с соотношением Ps и белка >1,5 показывали плохую адсорбцию. Большинство серотипов, использованных в композиции ПКВ-10, имели соотношение Ps:Pr в диапазоне 0,6-1,3, что привело к оптимальной адсорбции различных серотипов, включая серотип 6А. На основе данных адсорбции, полученных для серотипа 6А, и опыта получения композиции ПКВ-10 при разработке композиции 16-валентной вакцины можно экстраполировать, что соотношение Ps:Pr оставшихся 6 конъюгатов в аналогичном диапазоне может обеспечить соответствующую адсорбцию конъюгатов всех 16 серотипов.The influence of the ratio of polysaccharide and protein was observed during the adsorption of conjugates. 6A conjugates with a Ps to protein ratio of >1.5 showed poor adsorption. Most of the serotypes used in the PCV-10 formulation had a Ps:Pr ratio in the range of 0.6-1.3, resulting in optimal adsorption of various serotypes, including serotype 6A. Based on the adsorption data obtained for serotype 6A and the experience with PCV-10 formulation in the development of a 16-valent vaccine formulation, it can be extrapolated that the Ps:Pr ratio of the remaining 6 conjugates in the same range can provide adequate adsorption of conjugates of all 16 serotypes.
- 7 040838- 7 040838
Таблица 5Table 5
Технические условия турбинной мешалки Раштона с плоскими лопатками для различных сосудовSpecifications for Rushton Turbine Agitators with Flat Blades for Various Vessels
Пример 6. Протокол ИФА.Example 6 ELISA protocol.
Содержание антигена и процентная адсорбция были определены при помощи модифицированного сэндвич-ИФА.Antigen content and percentage adsorption were determined using a modified sandwich ELISA.
Обычный сэндвич-ИФА был изменен в отношении следующих условий испытаний/анализа и поэтому имеет следующие преимущества:The conventional sandwich ELISA has been modified with respect to the following test/assay conditions and therefore has the following advantages:
i) определение количества конъюгированного полисахарида в присутствии 9 других конъюгированных антигенов в 10-валентной вакцине, ii) извлечение всех десяти конъюгатов из геля фосфата алюминия, где адсорбция составляет более 80%, iii) получение конъюгата происходит даже при pH 9 без ущерба для антигенности конъюгата.i) determination of the amount of conjugated polysaccharide in the presence of 9 other conjugated antigens in a 10-valent vaccine, ii) extraction of all ten conjugates from aluminum phosphate gel, where adsorption is more than 80%, iii) preparation of the conjugate occurs even at pH 9 without compromising the antigenicity of the conjugate .
Содержание антигена и процентная адсорбция были определены при помощи ИФА в соответствии с протоколом ниже.Antigen content and percentage adsorption were determined by ELISA according to the protocol below.
День 1.Day 1.
1. Планшеты были покрыты иммобилизованным антителом (антитело против белка-носителя), а затем выдерживались в течение 0,5-2 ч при 35±5°С.1. The plates were coated with immobilized antibody (anti-carrier protein antibody) and then incubated for 0.5-2 hours at 35±5°C.
2. Планшеты были вымыты 3-6 раз в устройстве для мойки планшетов.2. The plates were washed 3-6 times in a plate washer.
3. Планшеты были заблокированы при помощи блокирующего буфера (3% БСА в 1X ФСБР и трисбуфер для серотипов 14 и 9V), а затем выдерживались в течение 1,5-2,5 ч при 30±5°С.3. Plates were blocked with blocking buffer (3% BSA in 1X PBS and trisbuffer for serotypes 14 and 9V) and then incubated for 1.5-2.5 hours at 30±5°C.
4. Планшеты были вымыты 3 раза в устройстве для мойки планшетов.4. The plates were washed 3 times in a plate washer.
5. Образцы были добавлены в планшеты.5. Samples have been added to the plates.
6. Планшеты выдерживались в течение ночи при 5 ±3°С.6. The plates were kept overnight at 5±3°C.
День 2.Day 2
1. Планшеты поместили в условия комнатной температуры.1. The plates were placed at room temperature.
2. Сначала антитело добавили после трехкратного мытья планшетов, последующего выдерживания при комнатной температуре 25±2°С в течение 30 мин и последующего мытья.2. First, the antibody was added after washing the plates three times, then incubating at room temperature 25±2° C. for 30 minutes, and then washing.
3. Затем добавили антитело и выдерживали при температуре 25±2°С в течение 30 мин.3. Then the antibody was added and kept at a temperature of 25±2°C for 30 minutes.
4. Добавили ТМБ субстрат и выдерживали при комнатной температуре в течение 15-20 мин в темноте.4. Added TMB substrate and kept at room temperature for 15-20 min in the dark.
5. Был добавлен стоп-реагент.5. Stop reagent has been added.
6. Считывание планшетов осуществлялось при 450 нм.6. Plates were read at 450 nm.
Процедура растворения образца без ущерба для антигенной детерминанты белка-носителя.Sample dissolution procedure without compromising the antigenic determinant of the carrier protein.
Надлежащее количество 0,5-2М NaOH было добавлено к 2 мл образца вакцины. Указанный образец был подвергнут аккуратному перемешиванию вихревым способом до тех пор, пока раствор не стал прозрачным. pH раствора регулировали с 9-12 до тех пор, пока раствор не стал прозрачным. pH раствора вернули обратно к 6-7,4 при помощи 0,5-2М лимонной кислоты. Указанный раствор подвергли центрифугированию (растворенные образцы) при 3000-6000g в течение 5 мин, и надосадочная жидкость была собрана для испытаний.The proper amount of 0.5-2M NaOH was added to 2 ml of the vaccine sample. This sample was gently vortexed until the solution became clear. The pH of the solution was adjusted from 9-12 until the solution became clear. The pH of the solution was adjusted back to 6-7.4 with 0.5-2M citric acid. This solution was centrifuged (dissolved samples) at 3000-6000g for 5 min and the supernatant was collected for testing.
- 8 040838- 8 040838
Таблица 6Table 6
Пример 7. Пневмококковая конъюгированная вакцина - 10-валентная (ПКВ-10).Example 7. Pneumococcal conjugate vaccine - 10-valent (PCV-10).
Таблица 7Table 7
Состав ПКВ-10Composition of PKV-10
Действующие вещества конъюгируются с белком-носителем CRM197.The active ingredients are conjugated to the CRM 197 carrier protein.
Пример 8. Композиция 1 (ПКВ-16).Example 8. Composition 1 (PKV-16).
Пневмококковая конъюгированная вакцина - 16-валентная (ПКВ-16).Pneumococcal conjugate vaccine - 16-valent (PCV-16).
- 9 040838- 9 040838
Таблица 8Table 8
Состав I ПКВ-16Composition I PKV-16
^Действующие вещества вакцины конъюгированы с как минимум одним белком-носителем, выбранным из CRM197, ТТ и DT.^The active ingredients of the vaccine are conjugated to at least one carrier protein selected from CRM 197 , TT and DT.
** Добавляется только при многодозовом представлении.** Added only for multi-dose presentation.
Пример 9. Композиция 1 (ПКВ-16).Example 9. Composition 1 (PKV-16).
Таблица 9Table 9
Состав II ПКВ-16Composition II PKV-16
- 10 040838- 10 040838
^Действующие вещества вакцины конъюгированы с как минимум одним белком-носителем, выбранным из CRM197, ТТ и DT.^The active ingredients of the vaccine are conjugated to at least one carrier protein selected from CRM 197 , TT and DT.
^^Добавляется только при многодозовом представлении.^^Added only with multi-dose presentation.
Пример 10.Example 10
I) Распад рассортированного по размеру PnPs (19А, 19F, 6А и 6В) в присутствии диметиламинопиридина.I) Decay of sized PnPs (19A, 19F, 6A and 6B) in the presence of dimethylaminopyridine.
Рассортированный по размеру PnPs в реакционном растворе был обработан при помощи диметиламинопиридина в соотношении 1:1,5, и его профиль распада был подвергнут проверке посредством ВЭЖХ-ИУ.The sized PnPs in the reaction solution was treated with dimethylaminopyridine at a ratio of 1:1.5 and its degradation profile was checked by HPLC-IU.
Результаты.Results.
Наблюдалось, что только 19А PnPs распадается в присутствии диметиламинопиридина, в то время как другие PnPs, содержащие фосфодиэфир (19F, 6А и 6В), остаются неизменными. См. фиг. 1 (без диметиламинопиридина) и 2, где показан распад PnPs, опосредованный диметиламинопиридином.It was observed that only 19A PnPs decomposed in the presence of dimethylaminopyridine, while other PnPs containing phosphodiester (19F, 6A and 6B) remained unchanged. See fig. 1 (without dimethylaminopyridine) and 2 showing PnPs degradation mediated by dimethylaminopyridine.
Для минимизации такого распада 19А активированный PnPs был подвергнут диафильтрации 10 кДа с использованием 2М NaCl для удаления диметиламинопиридина, образовавшегося из реакционного раствора, перед конъюгацией с CRM197.To minimize this degradation, 19A activated PnPs was diafiltered at 10 kDa using 2M NaCl to remove dimethylaminopyridine formed from the reaction solution prior to conjugation with CRM 197 .
II) Распад и агрегация рассортированного по размеру PnPs (19А, 19F, 6А и 6В) в присутствии CDAP.II) Decay and aggregation of sized PnPs (19A, 19F, 6A and 6B) in the presence of CDAP.
Рассортированный по размеру PnPs в реакционном растворе был обработан при помощи CDAP в соотношении 1:1,5 во время активации. Наблюдалось, что 50% диметиламинопиридин создается как промежуточный продукт (измеренный ОФ-ВЭЖХ), что приводит к распаду PnPs, а также агрегации между активированным PnPs после определенного времени активации (см. табл. 2).Распад и агрегация были проверены посредством профиля ВЭЖХ-ИУ. См. фиг. 3А (без CDAP), 3В, 3С и 3D (для 19А) и 4А (без CDAP) 4В (для 19F), где показана агрегация посредством CDAP и распад PnPs.The sized PnPs in the reaction solution were treated with CDAP at a ratio of 1:1.5 during activation. It was observed that 50% dimethylaminopyridine was created as an intermediate (measured by RP-HPLC) leading to degradation of PnPs as well as aggregation between activated PnPs after a certain activation time (see Table 2). IU. See fig. 3A (no CDAP), 3B, 3C and 3D (for 19A) and 4A (no CDAP) 4B (for 19F) showing aggregation by CDAP and degradation of PnPs.
- 11 040838- 11 040838
Таблица 10Table 10
Факторы, ответственные за перекрестное связывание и агрегацию частиц полисахарид-полисахарид. Влияние продолжительности активации CDAP на формирование агрегаций ______________________полисахарид-полисахарид______________________Factors responsible for cross-linking and aggregation of polysaccharide-polysaccharide particles. The influence of the duration of CDAP activation on the formation of aggregations
III) Предотвращение распада и агрегации рассортированного по размеру PnPs (19A и 19F) с соотношением PnPs:CDAP, равным 1:1,5, посредством применения этапа диафильтрации.III) Prevention of degradation and aggregation of sized PnPs (19A and 19F) with a PnPs:CDAP ratio of 1:1.5 by applying a diafiltration step.
Для минимизации такого распада и агрегации 19А активированный PnPs был подвергнут диафильтрации 10 кДа с использованием 2М NaCl для удаления диметиламинопиридина, образовавшегося из реакционного раствора, перед конъюгацией с CRM197. См. фиг. 3Е (конъюгат без диафильтрации 10 кДа) и 3F (конъюгат с диафильтрацией 10 кДа), где показан профиль ВЭЖХ-ИУ конъюгата с использованием 10 кДа прошедших диафильтрацию и активацию PnPs и CRM197. Однако этап диафильтрации негативно влиял на выход конъюгата, что приводило к снижению общего выхода на 30-40%.To minimize this degradation and aggregation, 19A activated PnPs was diafiltered at 10 kDa using 2M NaCl to remove dimethylaminopyridine formed from the reaction solution prior to conjugation with CRM 197 . See fig. 3E (non-diafiltrated 10 kDa conjugate) and 3F (10 kDa diafiltered conjugate) showing the HPLC-IR profile of the conjugate using 10 kDa diafiltered and activated PnPs and CRM 197 . However, the diafiltration step negatively affected the yield of the conjugate, which led to a decrease in the overall yield by 30-40%.
IV) Предотвращение распада и агрегации рассортированного по размеру PnPs (19A и 19F) за счет снижения соотношения PnPs:CDAP до 1:1 (19А) и 1:0,8 (19F) без применения этапа диафильтрации.IV) Prevention of degradation and aggregation of sized PnPs (19A and 19F) by reducing the PnPs:CDAP ratio to 1:1 (19A) and 1:0.8 (19F) without the use of a diafiltration step.
Рассортированный по размеру PnPs в реакционном растворе был обработан при помощи CDAP в соотношении 1:1 и 1:0,8 для 19А и 19А соответственно, и его профиль распада и агрегации был подвергнут проверке посредством ВЭЖХ-ИУ.The sized PnPs in the reaction solution was treated with CDAP at a ratio of 1:1 and 1:0.8 for 19A and 19A, respectively, and its degradation and aggregation profile was checked by HPLC-IR.
Результаты.Results.
Наблюдалось, что измененные соотношения Ps:CDAP (1:1 для 19А и 1:0,8 для 19F) предотвращают распад и агрегацию и для PnPs 19А, и для PnPs 19F. См. фиг. 3 (G и Н для 19А) и 4 (С и D для 19F). Дополнительным преимуществом применения измененных соотношений было то, что исключался этап диафильтрации 10 кДа, что обеспечивало минимальные потери общего выхода.Altered Ps:CDAP ratios (1:1 for 19A and 1:0.8 for 19F) were observed to prevent degradation and aggregation for both PnPs 19A and PnPs 19F. See fig. 3 (G and H for 19A) and 4 (C and D for 19F). An additional benefit of using the modified ratios was that the 10 kDa diafiltration step was eliminated, resulting in minimal overall yield loss.
Наблюдалось, что в случае серотипа 19А, когда продолжительность активации CDAP составляла более 10 мин, это приводило к перекрестному связыванию активированного полисахарида с активированным полисахаридом, неизбежно приводя к образованию агрегаций полисахарид-полисахарид.It was observed that in the case of serotype 19A, when the duration of CDAP activation was more than 10 minutes, this led to the cross-linking of the activated polysaccharide with the activated polysaccharide, inevitably leading to the formation of polysaccharide-polysaccharide aggregations.
Кроме того, в случае серотипа 19F, когда продолжительность активации CDAP составляла более 20 мин, это приводило к перекрестному связыванию активированного полисахарида с активированным полисахаридом, неизбежно приводя к образованию агрегаций полисахарид-полисахарид. Кроме того, было обнаружено, что продолжительность реакции конъюгации больше продолжительности, требуемой для перекрестного связывания активированного полисахарида, что, таким образом, приводит к образованию агрегаций. См. фиг. 3 и 4.In addition, in the case of serotype 19F, when the duration of CDAP activation was more than 20 minutes, this led to the cross-linking of the activated polysaccharide with the activated polysaccharide, inevitably leading to the formation of polysaccharide-polysaccharide aggregations. In addition, it was found that the duration of the conjugation reaction is longer than the duration required for the cross-linking of the activated polysaccharide, thus leading to the formation of aggregations. See fig. 3 and 4.
Однако для других серотипов, таких как 6APnPs и 6BPnPs, такое перекрестное связывание не наблюдалось.However, for other serotypes such as 6APnPs and 6BPnPs, no such cross-linking has been observed.
Пример 11. Подготовка конъюгатов PnPs19A и PnPs19F.Example 11 Preparation of PnPs19A and PnPs19F conjugates.
Конъюгация полисахарида с белком-носителем осуществлялась с применением способа конъюгации CDAP Лиса и соавт. (Вакцина 26: 190-198, 1996) со следующими изменениями:Conjugation of the polysaccharide to the carrier protein was performed using the CDAP conjugation method of Lis et al. (Vaccine 26: 190-198, 1996) with the following changes:
i) для подготовки конъюгата 19А с применением соотношения полисахарида и CDAP, равного 1:1, при температуре 22°С с периодом активации 4 мин и применением соотношения полисахарида и белка, равного 1:1, ii) для подготовки конъюгата 19F с применением соотношения полисахарида и CDAP, равного 1:0,8, при температуре 22°С с периодом активации 9-10 мин и применением соотношения полисахарида и белка, равного 1:1, для 19F.i) to prepare conjugate 19A using a ratio of polysaccharide and CDAP equal to 1:1 at 22°C with an activation period of 4 min and using a ratio of polysaccharide to protein equal to 1:1, ii) to prepare conjugate 19F using a ratio of polysaccharide and CDAP equal to 1:0.8 at a temperature of 22°C with an activation period of 9-10 min and using a ratio of polysaccharide and protein equal to 1:1, for 19F.
- 12 040838- 12 040838
Таблица 10Table 10
Сравнение результатов конъюгатов для 19А и 19F с традиционным способом конъюгации CDAP _____________(лот 1) усовершенствованный способ конъюгации (лот 2)_____________Comparison of conjugate results for 19A and 19F with conventional CDAP conjugation method _____________ (lot 1) improved conjugation method (lot 2) _____________
Результаты.Results.
Наблюдалось, что измененные соотношение полисахарид:CDAP, время активации CDAP и начальное соотношение полисахарид:белок минимизируют распад рассортированного по размеру полисахарида, опосредованный 4-диметиламинопиридином, во время активации, а также предотвращают последующую агрегацию полисахарид-полисахарид, улучшая таким образом финальные характеристики конъюгата в отношении содержания свободного полисахарида.Modified polysaccharide:CDAP ratio, CDAP activation time, and initial polysaccharide:protein ratio have been observed to minimize 4-dimethylaminopyridine-mediated degradation of the sized polysaccharide during activation, and also prevent subsequent polysaccharide-polysaccharide aggregation, thus improving the final performance of the conjugate in in relation to the free polysaccharide content.
Усовершенствованный способ конъюгации, использованный для подготовки конъюгатов 19А и 19F, привел к получению конъюгатов, не показывавших сигнал фосфомоноэфира в соответствующих профилях конъюгата (протонный ЯМР на ядрах 31Р), что показывало, что измененный способ конъюгации является эффективным для предотвращения гидролиза полисахаридов в реакциях конъюгации.The improved conjugation method used to prepare conjugates 19A and 19F resulted in conjugates that did not show a phosphomonoester signal in their respective conjugate profiles ( 31P proton NMR), indicating that the modified conjugation method was effective in preventing polysaccharide hydrolysis in conjugation reactions. .
Принимая во внимание множество возможных вариантов осуществления изобретения, к которым могут быть применены принципы раскрытого изобретения, следует признать, что показанные варианты осуществления являются только предпочтительными примерами изобретения и не носят ограничительного характера для изобретения. Скорее объем притязаний изобретения определяется следующими пунктами формулы изобретения. Таким образом, мы заявляем как наше изобретение все, что входит в объем и сущность данной формулы изобретения.In view of the many possible embodiments of the invention to which the principles of the disclosed invention may be applied, it should be recognized that the embodiments shown are only preferred examples of the invention and are not intended to be limiting to the invention. Rather, the scope of the invention is defined by the following claims. Thus, we claim as our invention everything that falls within the scope and spirit of this claim.
--
Claims (9)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IN2185/MUM/2015 | 2015-06-08 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
EA040838B1 true EA040838B1 (en) | 2022-08-03 |
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10729780B2 (en) | Methods for improving the adsorption of polysaccharide-protein conjugates and multivalent vaccine formulation obtained thereof | |
US10245311B2 (en) | Adjuvanting meningococcal factor H binding protein | |
US10596246B2 (en) | Adjuvanted combinations of meningococcal factor H binding proteins | |
RU2420315C2 (en) | Combined vaccines with whole cell pertussis antigen | |
KR100404312B1 (en) | Vaccine composition containing polyribosilitol phosphate and preparation method thereof | |
TW201304803A (en) | Novel formulations which mitigate agitation-induced aggregation of immunogenic compositions | |
US20180214531A1 (en) | Meningococcus vaccines | |
US20130142822A1 (en) | Conjugated vi saccharides | |
WO2016206630A1 (en) | Multivalent meningococcus kit, vaccine preparation and preparation method thereof | |
KR102083973B1 (en) | A multivalent immunogenic composition with improved IgG titer and use thereof | |
US20220211859A1 (en) | Conjugate production | |
EA040838B1 (en) | STABLE POLYVALENT VACCINE COMPOSITION AND METHOD FOR ITS PRODUCTION | |
CN104383531A (en) | Combined vaccine for preventing meningitis in children and preparation method of combined vaccine | |
KR20200005458A (en) | Immunogenic composition comprising multivalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate, and phamatiutical composition comprising the same | |
TW201932140A (en) | Methods for improving the adsorption of polysaccharide-protein conjugates and multivalent vaccine formulation obtained thereof | |
OA19863A (en) | Methods for improving the adsorption of polysaccharide-Protein conjugates and multivalent vaccine formulation obtained thereof. | |
WO2019198096A1 (en) | Tetravalent meningococcal vaccine composition and process to prepare thereof |