DE2167140C2 - - Google Patents
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- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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- C12N9/78—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
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Description
Die Erfindung betrifft ein neues Reagens zur spezifischen enzymatischen
Bestimmung von Creatinin.
In der klinischen Chemie, insbesondere für die Funktionsdiagnostik
der Niere, spielt die Bestimmung des Creatinins eine
wichtige Rolle. Die Bestimmung des Creatinins im Serum bzw.
Im sogenannten Clearance-Test, die gleichzeitige Bestimmung
im Serum und Harn, gehört zu den Standarduntersuchungsmethoden
im klinischen Labor.
Die bisher übliche Bestimmungsmethode beruht auf der von M.
Jaff´ gefundenen Farbreaktion von Creatinin mit Pikrinsäure
im alkalischen Milieu. Hierbei wird nach saurer Enteiweißung
der Probe (z. B. mit Trichloressigsäure oder mit Pikrinsäure)
im Überstand nach Zugabe von Pikrinsäure und Alkalisieren
eine Färbung entwickelt und photometrisch gemessen. Ein wesentlicher
Nachteil dieses an sich einfachen Verfahrens besteht
darin, daß es nicht für Creatinin spezifisch ist.
Eine Reihe von Modifikationen der Jaff´-Reaktion verbessert
zwar die Präzision und die Durchführbarkeit, ohne diesen prinzipiellen
Mangel zu beheben. Auch blieb die Jaff´-Methode sehr
störanfällig und schon geringe Verschiebungen in der H- bzw.
OH-Ionenkonzentration führen zu einer Veränderung der Farbtiefe.
Von Dubos und Miller (J. Biol. Chem. 121, 457 (1937)) wurde
eine Modifikation der Jaff´-Reaktion beschrieben, bei der
mit einem Rohextrakt eines bestimmten Bakteriums in einem Aliquot
einer Probe Creatinin abgebaut wird, während der Rest der Probe
unbehandelt blieb. In beiden Probeteilen wurde dann die
Bestimmung nach Jaff´ durchgeführt und aus der Differenz der
Extinktionen der Creatinin-Gehalt bestimmt. Diese Methode ist
zwar sehr spezifisch, die Durchführung ist jedoch recht umständlich
und erfordert es, das Bakterium laufend zu züchten.
Eine apparative Verbesserung dieser Methode ist von
Miller et al. in J. Biol. Chem. 130, 383-391 (1939)
beschrieben. Es wird hierbei eine höhere Spezifität
durch colorimetrische Auswertung der Proben erreicht.
Es muß aber, ebenso wie bei der Methode von Akamatsu
und Kanai, Enzymologia, Vol. 15, 122-125 (1951),
welche nicht vollständig identifizierte Bodenbakterien
als Enzymlieferanten benutzt, das Bakterium laufend
gezüchtet werden, da in Bakteriensuspension und nicht
mit isolierter Enzymaktivität gearbeitet wird. Davon
abgesehen wurde dieser Mikroorganismus nicht
hinterlegt, so daß keine Wiederholbarkeit gegeben ist.
Analoges gibt für die Verwendung Creatinin-umwandelnder
Enzyme aus Pseudomonasströmen nach P. Kopper, Arch.
Biochem. 19, 171-172 (1949). Dort wird vermutet, daß
die enzymatische Aktivität aus einer Creatininhydrase
und einer Creatinhydrolase oder möglicherweise -oxidase
zusammengesetzt ist.
Eine weitere bekannte Methode wandelt Creatinin unter Zusatz
von o-Nitrobenzaldehyd in Methylguanidin um, welches dann
nach der Sakaguchi-Reaktion bestimmt wird. Weiter wurde auch
eine Farbreaktion zwischen Creatinin und Kalium-Quecksilber-
Thiocyanat beschrieben. Beide Methoden erwiesen sich jedoch
für das klinische Labor als ungeeignet.
Es besteht daher Bedarf an einem einfachen, aber spezifischen
Test für Creatinin.
Die Erfindung löst dieses Problem durch eine Reagenzienkombination
zur spezifischen Bestimmung von Creatinin, welche Creatininamidohydrolase
enthält und in den Patentansprüchen definiert
ist.
Das Enzym Creatininamidohydrolase und ein Verfahren zu seiner
Gewinnung sind in der gleichzeitig eingereichten Patentanmeldung
DE-OS 21 22 298 beschrieben. Das Enzym Creatininamidohydrolase,
welches bisher noch nicht beschrieben wurde, katalysiert
die Reaktion:
Das gebildete Creatin wird durch Phosphorylierung mit Creatinkinase
und Adenosintriphosphat (ATP) unter Bildung von Adenosindiphosphat
bestimmt.
Ein pH-Wert zwischen 7,8 und 8,3 wird bevorzugt. Zur Einstellung
des pH-Wertes können beliebige Puffer verwendet werden. Es ist
jedoch darauf zu achten, daß der verwendete Puffer die angeschlossene
Bestimmungsmethode nicht stört.
Eine vorherige Enteiweißung der Probe ist nicht erforderlich,
kann jedoch zweckmäßig sein.
Die erfindungsgemäßen Reagenzienkombination besteht aus
- 1. Puffer, reduz. Nicotinamid-adenin-dinucleotid (NADH), ATP und Phosphoenolpyruvat (PEP) und MgCl₂
- 2. Lactatdehydrogenase (LDH), Pyruvatkinase (PK)
- 4. Creatininamidohydrolase
in vor Gebrauch unvermischbarem Zustand.
Die erfindungsgemäße Reagenzkombination schafft erstmals
die Möglichkeit einer spezifischen Creatinin-Bestimmung, die
sich auch zur Routineanwendung im klinischen Labor eignet und
eine ausreichende Empfindlichkeit für praktische Zwecke besitzt.
Die einzige bisher bekannte spezifische Bestimmungsmethode
nach Miller und Dubos war hingegen für die Verwendung
zur Routineuntersuchung unbrauchbar (vgl. R. J. Henry, Clinical
Chemistry, 1964, Seite 288).
Das folgende Beispiel erläutert die erfindungsgemäße Testkombination
weiter.
Das Prinzip der Ausführungsform besteht darin, daß mit Hilfe
von Creatininamidohydrolase das Creatinin zu Creatin hydrolysiert und gebildetes
Creatin nach M. L. Tanzer (J. of Biol. Chem. 234,
S. 3201 (1959)) mit Creatinkinase und ATP phosphoryliert, gebildetes
ADP mit PEP und PK in ATP umgewandelt und dabei entstandenes
Pyruvat mit NADH und Lactatdehydrogenase zu Lactat
reduziert wird unter Bildung von NAD. Die Umsetzung von 1 Mol
NADH (Messung bei 334, 340 oder 366 nm) entspricht der Gegenwart
von 1 Mol Creatinin.
Zur Durchführung wird ein Reagenziengemisch, das NADH, ATP,
PEP und Magnesiumchlorid in 0,11 M Puffer bei pH 9,0 enthält,
mit LDH und PK gemischt und
auf 25°C temperiert. Dann werden Serum und Creatinkinase zugesetzt
und bei der angegebenen Temperatur maximal 30 Minuten
inkubiert. Durch Zugabe von mindestens 5 U Creatininamidohydrolase
wird die Reaktion gestartet. Der Extinktionsabfall
wird registriert. Die Reaktionsdauer beträgt je nach Creatinin-
Gehalt 40 bis 90 Minuten. Der Creatinin-Gehalt errechnet sich
direkt über den molaren Extinkionskoeffizienten von NADH.
Vorteile dieser Ausführungsform sind Einsparung an Untersuchungsmaterial
um den Faktor 10 gegenüber der Jaff´-Methode,
ein Serum-Leerwert ist nicht erforderlich, keine Enteiweißung,
kein Zentrifugieren nötig.
Claims (2)
- Reagenzienkombination zur spezifischen Bestimmung von Creatinin, dadurch gekennzeichnet, daß sie
- 1. Puffer, NADH, ATP, Phosphoenolpyruvat (PEP) und MgCl₂
- 2. Lactatdehydrogenase, Pyruvatkinase (PK)
- 3. Creatinkinase und
- 4. Creatininamidohydrolase
- in vor Gebrauch unvermischbaren Zustand enthält.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19712167140 DE2167140C2 (de) | 1971-05-05 | 1971-05-05 |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2122255A DE2122255C3 (de) | 1971-05-05 | 1971-05-05 | Verfahren zur spezifischen Bestimmung von Creatinin |
DE19712167140 DE2167140C2 (de) | 1971-05-05 | 1971-05-05 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2167140C2 true DE2167140C2 (de) | 1987-08-06 |
Family
ID=25761061
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19712167140 Expired DE2167140C2 (de) | 1971-05-05 | 1971-05-05 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE2167140C2 (de) |
-
1971
- 1971-05-05 DE DE19712167140 patent/DE2167140C2/de not_active Expired
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Arch.Biochem. 19, 1949, 171-172 * |
BERGMEYER, H.U.: Methoden der Enzymatischen Analyse, 2. Aufl., Bd. 2, Weinheim 1970, S. 1724-1728 * |
Enzymologia 15, 1951, 122-125 * |
J.Biol.Chem. 130, 1939, 383-391 * |
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