DE202012007324U1 - Apparatus for treating a filtration medium - Google Patents
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- G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
- G01N1/40—Concentrating samples
- G01N1/4077—Concentrating samples by other techniques involving separation of suspended solids
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Abstract
Vorrichtung (1) zur Behandlung eines porösen Filtrationsmediums (37) mit einer aus einem Aufnahmeteil (5) und einem Bodenteil (6) bestehenden Aufnahmeeinheit (2), wobei mit dem Aufnahmeteil (5) das poröse Filtrationsmedium (37) von einem Unterteil (33) einer Filtrationsvorrichtung (32) aufnehmbar und das Aufnahmeteil (5) mit dem porösen Filtrationsmedium (37) auf das Bodenteil (6) aufsetzbar ist, und wobei das Aufnahmeteil (5) mit dem Bodenteil (6) verrastbar ausgebildet ist,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Bodenteil (6) zum Filtrationsmedium (37) hin einen Inkubationsraum (17) aufweist, der mit einem dem Aufnahmeteil (5) abgewandten Auslass (3) des Bodenteils (6) verbunden ist, und
dass der Auslass (3) einen Ansatz (24) aufweist, auf den ein ein Lösungsmittel (28) zum Auflösen des porösen Filtrationsmediums (37) enthaltendes Auffanggefäß (4) lösbar aufsteckbar ist.Device (1) for treating a porous filtration medium (37) having a receiving unit (2) consisting of a receiving part (5) and a bottom part (6), the porous filtration medium (37) being connected to the receiving part (5) by a lower part (33 ) of a filtration device (32) and the receiving part (5) with the porous filtration medium (37) on the bottom part (6) can be placed, and wherein the receiving part (5) with the bottom part (6) is formed latched,
characterized,
that the bottom part (6) towards the filtration medium (37) has an incubation space (17) which is connected to an outlet (3) of the bottom part (6) facing away from the receiving part (5), and
the outlet (3) has a projection (24) onto which a collecting vessel (4) containing a solvent (28) for dissolving the porous filtration medium (37) can be detachably placed.
Description
Gebiet der ErfindungField of the invention
Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung zur Behandlung eines porösen Filtrationsmediums mit einer aus einem Aufnahmeteil und einem Bodenteil bestehenden Aufnahmeeinheit, wobei mit dem Aufnahmeteil das poröse Filtrationsmedium von einem Unterteil einer Filtrationseinrichtung aufnehmbar und das Aufnahmeteil mit dem porösen Filtrationsmedium auf das Bodenteil aufsetzbar ist, und wobei das Aufnahmeteil mit dem Bodenteil verrastbar ausgebildet ist.The invention relates to a device for treating a porous filtration medium with a receiving unit consisting of a receiving part and a bottom receiving unit, wherein the receiving part, the porous filtration medium from a lower part of a filtration device can be received and the receiving part with the porous filtration medium placed on the bottom part, and wherein the Receiving part is formed locked to the bottom part.
Stand der TechnikState of the art
Derzeit werden für Routineuntersuchungen hauptsächlich mikrobiologische Methoden angewandt, die einzelne Mikroorganismen mithilfe von Kultivierungsschritten nachweisen. Diese Methoden sind jedoch sehr zeitaufwändig und können mehrere Tage dauern, bis eine Kontamination des wässrigen Mediums nachgewiesen werden kann. Moderne und schnelle Nachweismethoden für Mikroorganismen, wie Realtime PCR, Antikörper-Assays oder analytische Mikroarrays ermöglichen eine schnelle Detektion von mikrobieller Kontamination. Um jedoch die Nachweisgrenzen für diese Detektionsverfahren zu senken und idealerweise auch einen einzelnen Keim ausfindig zu machen, sind zuvor schnelle und effektive Anreicherungsschritte notwendig, die ein großes Probevolumen von bis zu mehreren Litern auf wenige hundert Mikroliter einengen. Die aufkonzentrierte Probe bietet ein besseres Handling mit geringerem Verbrauch an Reagenzien und kann beliebig entsprechend der darauffolgenden Detektionsmethode prozessiert werden.Currently, microbiological methods are used for routine investigations, which detect single microorganisms by means of cultivation steps. However, these methods are very time consuming and can take several days to detect contamination of the aqueous medium. Modern and rapid detection methods for microorganisms, such as real-time PCR, antibody assays or analytical microarrays enable rapid detection of microbial contamination. However, to reduce the detection limits for these detection methods, and ideally also to locate a single seed, rapid and effective enrichment steps, which narrow a large sample volume of up to several liters to a few hundred microliters, are previously necessary. The concentrated sample offers better handling with lower reagent consumption and can be processed arbitrarily according to the subsequent detection method.
In der Analytik von Flüssigkeiten und Gasen haben sich verschiedene Behandlungsmethoden etabliert, die poröse Medien, wie Filter und Membranen, einsetzen. Zum Beispiel hat sich das Filtrationsverfahren zur Abreicherung und Konzentrierung von gelösten oder partikulären Inhaltsstoffen etabliert. Diese Konzentrierung ist meist notwendig, da die Konzentrationen der Verunreinigungen zu gering sind, um direkte Auswertungen durchzuführen. Die Filtrationsmethoden dienen als Vorstufe für weitere analytische Methoden, wie optische Auswertungen, sowie für weitere physikalische und chemische Reaktionen zur Signalverstärkung.In the analysis of liquids and gases, various treatment methods have become established, using porous media such as filters and membranes. For example, the filtration process has become established for the depletion and concentration of dissolved or particulate ingredients. This concentration is usually necessary because the concentrations of impurities are too low to perform direct evaluations. The filtration methods serve as precursors for further analytical methods, such as optical evaluations, as well as for further physical and chemical reactions for signal amplification.
Für neuere, sensitivere Analysemethoden, zum Beispiel die Polymerasekettenreaktion (PCR), sowie deren Probenvorbereitung können nur geringe Probevolumina verwendet werden. Um die in vielen Fällen typischen Probevolumina von mehr als 100 ml für eine Konzentrierung filtrieren zu können, werden typischerweise Filtrationsmembranen mit 47 mm oder 25 mm Durchmesser eingesetzt. Auch nach der Filtration, wenn die Inhaltsstoffe oder Partikel auf der Filtrationsmembran konzentriert vorliegen, können die membrangebundenen Partikel aufgrund der Membrangröße nicht direkt der Analytik zugeführt werden. Es ist notwendig, die zurückgehaltenen Inhaltsstoffe in ein Probevolumen zu überführen, das idealerweise 1 ml nicht überschreiten sollte, um eine Probenvorbereitung für die anschließende Analytik in Standardreaktionsgefäßen zu ermöglichen, die in Tischzentrifugen passen, die üblicherweise zum Standardequipment eines jeden Labors gehören.For newer, more sensitive analysis methods, for example the polymerase chain reaction (PCR), as well as their sample preparation, only small sample volumes can be used. In order to be able to filter the typically more than 100 ml sample volumes for concentration, filtration membranes of 47 mm or 25 mm diameter are typically used. Even after the filtration, when the ingredients or particles are concentrated on the filtration membrane, the membrane-bound particles can not be directly supplied to the analytics due to the membrane size. It is necessary to transfer the retained ingredients to a sample volume that ideally should not exceed 1 ml to allow sample preparation for subsequent analysis in standard reaction vessels that fit into desktop centrifuges, which are usually standard equipment in each laboratory.
Aus der
Nachteilig dabei ist, dass aufgrund der Porengrößenverteilung der meisten Membranfilter zahlreiche Partikel nicht auf der Oberfläche der Membranfilter abgeschieden werden, sondern in tieferen Schichten, so dass keine quantitativ vollständige Rückspülung der Partikel möglich ist. Unspezifische Adsorptionsereignisse der zurückgehaltenen Partikel an der Membran verstärken dieses Problem zusätzlich.A disadvantage is that due to the pore size distribution of most membrane filters numerous particles are not deposited on the surface of the membrane filter, but in deeper layers, so that no quantitatively complete backwashing of the particles is possible. Unspecific adsorption events of the retained particles on the membrane additionally amplify this problem.
Aus der
Aus der
Nachteilig bei den bekannten Filtrationseinheiten und den korrespondierenden Verfahren, die sich für klassische, mikrobiologische Membrananwendungen bewährt haben, in denen man lediglich Partikel entfernt oder im Bereich der Mikrobiologie entstandene Kolonien visuell auswertet, ist aber, dass nach der Filtration die zurückgehaltenen Partikel oder deren Inhaltsstoffe von der Membran nicht mehr in der Weise durch Abspülen zu entfernen sind, dass hochkonzentrierte Suspensionen entstehen.A disadvantage of the known filtration units and the corresponding methods, which have been proven for classical microbiological membrane applications, in which one only removes particles or visually evaluated in the field of microbiology colonies, but is that after filtration, the retained particles or their ingredients of The membrane can no longer be removed by rinsing in such a way that highly concentrated suspensions arise.
Ein Auflösen eines porösen Filtrationsmediums mit dem Ziel einer PCR-Analyse der Inhaltsstoffe ist aus der
Nachteilig ist jedoch bei jedem dieser Dokumente ein hohes Kontaminationsrisiko, da das Filtrationsmedium mit einer Pinzette aufgenommen, gefaltet und in ein Reaktionsgefäß (meist 1,5 bis 2 ml Gefäß) überführt werden muss. Kontaminationsgefahr besteht ebenfalls durch den nachfolgenden Zusatz des Solvens für die Membran in einem offenen System.However, the disadvantage of each of these documents is a high risk of contamination, since the filtration medium has to be taken up with tweezers, folded and transferred into a reaction vessel (usually 1.5 to 2 ml vessel). Danger of contamination also exists due to the subsequent addition of the solvent for the membrane in an open system.
Aus
Nachteilig bei diesem Verfahren ist, dass bei diesem Prozess Cellulose in Faserform teilweise wieder ausgefällt wird, wobei die Cellulosefasern in unerwünschter Weise Anteile der Mikroorganismen bzw. der DNA binden und so die quantitative Analyse der Mikroorganismen erschwert wird. Um die unerwünschte Adsorption der Mikroorganismen bzw. DNA auf den Fasern zu verringern, werden bestimmte Additive, z. B. Cetyltrimethylammoniumbromid, zugegeben. Aber eine vollständig quantitative Analyse kann nicht erreicht werden.A disadvantage of this process is that in this process, cellulose in the form of fibers is partly precipitated again, the cellulose fibers undesirably binding portions of the microorganisms or of the DNA, thus making the quantitative analysis of the microorganisms more difficult. In order to reduce the unwanted adsorption of microorganisms or DNA on the fibers, certain additives, for. As cetyltrimethylammonium bromide added. But a complete quantitative analysis can not be achieved.
Aus
Nachteilig bei diesem Verfahren ist, dass sich Mikroorganismen in der Praxis nicht in der oberen wässrigen Phase anreichern. Es kommt vielmehr zur Sedimentation der Mikroorganismen in die organische Phase (untere Phase) bzw. in die Grenzschicht, so dass mit dieser Methode keine vollständige Wiederfindung der Mikroorganismen erzielt werden kann. Des Weiteren enthält das beschriebene Verfahren keinen Lyseschritt, um die Mikroorganismen aufzuschließen, so dass davon ausgegangen werden muss, dass zahlreiche intakte Zellen für die PCR eingesetzt werden und somit die Amplifikation für den Großteil der DNA nicht möglich ist.A disadvantage of this method is that microorganisms do not accumulate in practice in the upper aqueous phase. Rather, it comes to the sedimentation of microorganisms in the organic phase (lower phase) or in the boundary layer, so that with this method no complete recovery of the microorganisms can be achieved. Furthermore, the described method does not contain a lysing step in order to digest the microorganisms, so that it must be assumed that numerous intact cells are used for the PCR and thus the amplification for the majority of the DNA is not possible.
Aus
Nachteilig bei diesem Verfahren ist, dass nur ein geringer Anteil der DNA in die wässrige Phase extrahiert werden kann, da zuvor kein Lyseschritt erfolgt ist, um die Mikroorganismen aufzuschließen und somit die DNA frei zugänglich zu machen. Unter Verwendung dieser Methode kommt es vielmehr zur Sedimentation der noch intakten Mikroorganismen in die untere organische Phase bzw. in die Grenzschicht zwischen organischer und wässriger Phase.A disadvantage of this method is that only a small proportion of the DNA can be extracted into the aqueous phase, since previously no lysis step has taken place to unlock the microorganisms and thus make the DNA freely accessible. Using this method, it is rather the sedimentation of the still intact microorganisms in the lower organic phase or in the boundary layer between the organic and aqueous phase.
Auch aus
Nachteilig bei den beschriebenen Verfahren ist nicht nur die erhöhte Kontaminationsgefahr durch das Falten und Überführen der Membran mithilfe einer Pinzette, sondern auch, dass ein vollständiges Abspülen der Mikroorganismen von der Membran nicht möglich ist, da Mikroorganismen häufig auch in tieferen Schichten der Membran abgeschieden werden und es zusätzlich zu unspezifischer Adsorption an die Membran kommen kann, so dass ein oberflächlicher Spülschritt nicht effektiv ist. Erschwerend kommt hinzu, dass bei einer klein zusammengefalteten Membran in einem Reaktionsgefäß keine gezielte reverse Spülung der Membran erfolgen kann, lediglich ein ungerichtetes Mixen bzw. Vortexen von Membran und Spüllösung kann erreicht werden.A disadvantage of the described method is not only the increased risk of contamination by folding and transferring the membrane by means of tweezers, but also that a complete rinsing of the microorganisms from the membrane is not possible because microorganisms are often deposited in deeper layers of the membrane and In addition to unspecific adsorption, it may also come to the membrane such that a superficial rinse step is not effective. To make matters worse, that in a small collapsed membrane in a reaction vessel targeted reverse flushing of the membrane can not be done, only an undirected mixing or vortexing of membrane and rinse solution can be achieved.
Aus der
Nachteilig bei diesem Verfahren ist, dass kein quantitativ vollständiger Zellaufschluss möglich ist, da meist ein Großteil der Mikroorganismen in tiefere Membranschichten eindringt und somit vor den Mahlkugeln abgeschirmt wird. Des Weiteren hat diese Pufferwirkung einen negativen Einfluss auf den Aufschlussgrad der Mikroorganismen, da ein Großteil der Stöße von der Membran abgefangen wird. Auch wird der anschließende Filtrationsschritt der DNA durch die Membran nicht vollständig ablaufen, da DNA dazu neigt, unspezifische Bindungen, in diesem Fall an der Membran, einzugehen. Des Weiteren ist der Durchmesser der Filtrationsfläche bei dieser Vorrichtung auf 13 m limitiert, aufgrund der Kompatibilität zu gängigen Zentrifugenmodellen und -adaptoren. Dieser geringe Durchmesser des Filtrationsmediums führt jedoch bei größeren Probevolumina zu deutlich längeren Filtrationszeiten.A disadvantage of this method is that no quantitatively complete cell disruption is possible, since usually a large part of the microorganisms penetrates into deeper membrane layers and thus shielded from the grinding balls. Furthermore, this buffer effect has a negative influence on the degree of digestion of the microorganisms, since a large part of the shocks is trapped by the membrane. Also, the subsequent filtration step of the DNA through the membrane will not be complete, as DNA tends to undergo non-specific binding, in this case to the membrane. Furthermore, the diameter of the filtration area is limited to 13 m in this device, due to the compatibility with common centrifuge models and adapters. However, this small diameter of the filtration medium leads to significantly longer filtration times with larger sample volumes.
Die
Nachteilig bei dem aus
Aufgabenstellungtask
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es daher, eine Vorrichtung bereitzustellen, bei der es möglich ist, ein poröses Filtrationsmedium einschließlich zurückgehaltener Mikroorganismen kontaminationsfrei, einfach und sicher in ein Auffanggefäß zu überführen, um die Probe quantitativ vollständig für eine DNA-Extraktion und molekularbiologische Analysemethoden zugänglich zu machen.It is therefore an object of the present invention to provide a device in which it is possible to transfer a porous filtration medium, including retained microorganisms, contamination-free, simple and safe into a collecting vessel in order to make the sample completely quantitatively accessible for DNA extraction and molecular biological analysis methods do.
Darstellung der ErfindungPresentation of the invention
Die Aufgabe wird in Verbindung mit dem Oberbegriff des Anspruches 1 dadurch gelöst, dass das Bodenteil zum Filtrationsmedium hin einen Inkubationsraum aufweist, der mit einem dem Aufnahmeteil abgewandten Auslass des Bodenteils verbunden ist, und dass der Auslass einen Ansatz aufweist, auf den ein ein Lösungsmittel zum Auflösen des porösen Filtrationsmediums enthaltendes Auffanggefäß lösbar aufsteckbar ist.The object is achieved in conjunction with the preamble of
Durch die Anordnung des Inkubationsraumes im Bodenteil und die Verbindung über den Auslass zum Auffanggefäß mit dem Lösungsmittel ist es möglich, das poröse Filtrationsmedium einschließlich zurückgehaltener Mikroorganismen kontaminationsfrei, einfach und sicher in das Auffanggefäß zu überführen, um die Probe quantitativ vollständig für eine DNA-Extraktion und molekularbiologische Analysemethoden zugänglich zu machen. The arrangement of the incubation space in the bottom part and the connection via the outlet to the collecting vessel with the solvent, it is possible to transfer the porous filtration medium including retained microorganisms contamination-free, easy and safe in the receptacle to quantitatively complete the sample for a DNA extraction and make molecular biological analysis methods accessible.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung verläuft der Inkubationsraum des Bodenteiles zum Auslass hin konisch. Die konische Form garantiert, dass trotz des Zentrifugationswinkels einer Festrotorzentrifuge kein Totvolumen im Inkubationsraum der Aufnahmeeinheit entsteht, was zu Restflüssigkeit führen könnte. Ohne die konische Form würde wegen der Zentrifugalkraft, abhängig vom Zentrifugenmodell, Restflüssigkeit seitlich im Bodenteil der Aufnahmeeinheit verbleiben.According to a preferred embodiment of the invention, the incubation space of the bottom part runs conically towards the outlet. The conical shape guarantees that, despite the centrifugation angle of a solid rotor centrifuge, there is no dead volume in the incubation chamber of the receiving unit, which could lead to residual fluid. Without the conical shape, due to the centrifugal force, depending on the centrifuge model, residual liquid would remain laterally in the bottom part of the receiving unit.
Nach einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung ist das Lösungsmittel zum Auflösen des Filtrationsmediums ein organisches Lösungsmittel, bevorzugt Chloroform oder Methylenchlorid.According to a further preferred embodiment of the invention, the solvent for dissolving the filtration medium is an organic solvent, preferably chloroform or methylene chloride.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung enthält das auf das Bodenteil aufzusteckende Auffanggefäß neben dem Lösungsmittel den Zellaufschluss unterstützende Mahlkugeln. Das Auffanggefäß ist an seinem offenen Ende durch einen Deckel flüssigkeitsdicht verschließbar. Dazu weist das Auffanggefäß beispielsweise an seinem offenen Ende ein Außengewinde auf, mit dem der Deckel verschraubt werden kann.According to a preferred embodiment of the invention, the collecting vessel to be placed on the bottom part contains, in addition to the solvent, grinding balls which assist the cell disruption. The collecting vessel is closed at its open end by a lid liquid-tight. For this purpose, the collecting vessel, for example, at its open end on an external thread with which the lid can be screwed.
Nach einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung weist der Auslass des Bodenteils einen Auslasskanal auf, der quer zur Längsachse des Bodenteils als länglicher Schlitz ausgebildet ist, dessen schmale lichte Weite kleiner ist als die Außendurchmesser der Mahlkugeln. Dadurch wird sichergestellt, dass die Mahlkugeln nicht in den Inkubationsraum eindringen und im Auffanggefäß verbleiben.According to a further preferred embodiment of the invention, the outlet of the bottom part has an outlet channel, which is formed transversely to the longitudinal axis of the bottom part as an elongated slot whose narrow clear width is smaller than the outer diameter of the grinding balls. This ensures that the grinding balls do not penetrate into the incubation chamber and remain in the collecting vessel.
Gemäß einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung ist eine Innenwandung des Aufnahmeteils außerhalb einer für eine Filtration nutzbaren Fläche des Filtrationsmediums positionierbar und ein in dem Aufnahmeteil angeordneter Fixierrand ist auf einem Rand des Filtrationsmediums positionierbar, und der Fixierrand des Aufnahmeteils ist mit dem Rand des Filtrationsmediums über eine Klebehaftung verbindbar. Bei einer alternativen Ausführungsform der Erfindung ist ein Fixierrand des Aufnahmeteils durch eine mechanische Klemmverbindung mit einem korrespondierenden ringförmigen Klemmteil am Rand des Filtrationsmediums verbindbar. Damit lässt sich das Aufnahmeteil leicht mit dem Filtrationsmedium verbinden und Aufnahmeteil und Filtrationsmedium lassen sich einfach und kontaminationsfrei auf das Bodenteil aufsetzen. Das Filtrationsmedium ist bevorzugt aus Polycarbonat oder Polyethersulfon ausgebildet.According to a further preferred embodiment of the invention, an inner wall of the receiving part is positioned outside a usable for filtration surface of the filtration medium and arranged in the receiving part Fixierrand is positioned on an edge of the filtration medium, and the fixing edge of the receiving part is connected to the edge of the filtration medium via a Adhesive adhesion connectable. In an alternative embodiment of the invention, a fixing edge of the receiving part is connectable by a mechanical clamping connection with a corresponding annular clamping part at the edge of the filtration medium. Thus, the receiving part can be easily connect to the filtration medium and receiving part and filtration medium can be easily and without contamination put on the bottom part. The filtration medium is preferably formed from polycarbonate or polyethersulfone.
Nach einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung ist die Aufnahmeeinheit mit dem in vertikaler Richtung unten angeordneten Auffanggefäß in einem Zentrifugenadapter befestigbar und kann mit dem Zentrifugenadapter in einer Zentrifuge zentrifugiert werden, wobei das in dem Lösungsmittel gelöste Filtrationsmedium einschließlich zurückgehaltener Mikroorganismen vollständig in das Auffanggefäß überführbar ist.According to a further preferred embodiment of the invention, the receiving unit with the arranged vertically in the bottom collecting vessel in a centrifuge adapter can be mounted and can be centrifuged with the centrifuge adapter in a centrifuge, wherein the dissolved in the solvent filtration medium including retained microorganisms is completely transferred into the receptacle.
Das Filtrationsmedium kann einfach mit dem Aufnahmeteil der Aufnahmeeinheit von einem Unterteil einer Filtrationsvorrichtung abgenommen und auf das Bodenteil aufgesetzt werden. Nach Entfernen eines Deckels von dem Auffanggefäß mit Lösungsmittel lässt sich das Auffanggefäß einfach und kontaminationsfrei auf einen Auslass des Bodenteils aufstecken. Durch ein leichtes Schütteln der kopfüber gewendeten Aufnahmeeinheit wird das Lösungsmittel dem Inkubationsraum zugeführt und das Filtrationsmedium innerhalb weniger Sekunden aufgelöst und anschließend in das Auffanggefäß überführt. Obwohl im Inkubationsraum der Aufnahmeeinheit ein erhöhter Druck aufgrund des teilweise verdampfenden organischen Lösungsmittels entsteht, bleiben das Aufnahmeteil und das Bodenteil aufgrund ihrer Verrastung miteinander verbunden.The filtration medium can be easily removed with the receiving part of the receiving unit of a lower part of a filtration device and placed on the bottom part. After removing a lid from the collecting vessel with solvent, the collecting vessel can be easily and without contamination plugged onto an outlet of the bottom part. By gently shaking the head-turned recording unit, the solvent is supplied to the incubation room and the filtration medium dissolved within a few seconds and then transferred to the collecting vessel. Although an increased pressure due to the partially evaporating organic solvent arises in the incubation of the receiving unit, the receiving part and the bottom part remain connected to each other due to their locking.
Das aufgelöste Filtrationsmedium mit den zurückgehaltenen Partikeln bietet einen guten Ausgangspunkt für eine weitere Probenvorbereitung, z. B. eine DNA-Extraktion, und für verschiedene analytische Methoden, wie beispielsweise PCR.The dissolved filtration medium with the retained particles provides a good starting point for further sample preparation, eg. As a DNA extraction, and for various analytical methods, such as PCR.
Dem Auffanggefäß können neben dem Lösungsmittel Mahlkugeln zugeführt werden, die den Zellaufschluss fördern.In addition to the solvent, the collecting vessel can be fed with grinding balls which promote cell disruption.
Die Aufnahmeeinheit wird mit dem in vertikaler Richtung unten angeordneten Auffanggefäß in einem Zentrifugenadapter befestigt und in einer Zentrifuge zentrifugiert, wobei das in dem Lösungsmittel gelöste Filtrationsmedium einschließlich zurückgehaltener Mikroorganismen vollständig in das Auffanggefäß überführt wird. Im Anschluss wird das Auffanggefäß von der Aufnahmeeinheit entfernt und mit einem Deckel verschlossen.The receiving unit is mounted in a centrifuge adapter with the collecting vessel arranged vertically downwards and centrifuged in a centrifuge, wherein the filtration medium dissolved in the solvent, including retained microorganisms, is transferred completely into the collecting vessel becomes. Subsequently, the collecting vessel is removed from the receiving unit and closed with a lid.
Das verschlossene Auffanggefäß wird in einem Homogenisator prozessiert, wobei ein Zellaufschluss der Mikroorganismen mithilfe der Mahlkugeln ermöglicht wird.The sealed collecting vessel is processed in a homogenizer, whereby a cell disruption of the microorganisms is made possible by means of the grinding balls.
Die Vorrichtung zur Behandlung des Filtrationsmediums kann steril verpackt geliefert werden.The device for treating the filtration medium can be delivered sterile packed.
Weitere Merkmale der Erfindung ergeben sich aus der nachfolgenden ausführlichen Beschreibung und den beigefügten Zeichnungen, in denen bevorzugte Ausführungsformen der Erfindung beispielhaft veranschaulicht sind.Further features of the invention will become apparent from the following detailed description and the accompanying drawings, in which preferred embodiments of the invention are illustrated by way of example.
Kurzbeschreibungen der ZeichnungenBrief descriptions of the drawings
In den Zeichnungen zeigen:In the drawings show:
Beschreibung der AusführungsbeispieleDescription of the embodiments
Eine Vorrichtung
Die Aufnahmeeinheit
Das Aufnahmeteil
Die Haftschicht
Die Außenwandung
Das Bodenteil
Die außenliegende Mantelfläche des Auslasses
Das Bodenteil
Eine an sich bekannte Filtrationsvorrichtung
Nach einem Filtrationsvorgang kann der Aufsatz
Die Vorrichtung
Zur Behandlung des porösen Filtrationsmediums
- –
das Aufnahmeteil 5 wird auf das indem Unterteil 33 der Filtrationsvorrichtung 32 angeordnete und einer flüssigenProbe ausgesetzte Filtrationsmedium 37 aufgesetzt, wobei ein indem Aufnahmeteil 5 angeordneter Fixierrand 11 mit einem Rand 38 des Filtrationsmediums37 verbunden wird, - –
das Aufnahmeteil 5 mitdem verbundenen Filtrationsmedium 37 wirdvon dem Unterteil 33 abgehoben und aufdas Bodenteil 6 aufgesetzt,wobei das Aufnahmeteil 5 und das Bodenteil 6 miteinander über dieVerrastung 31 ,31' verrastet werden, - –
ein Lösungsmittel 28 zum Auflösen des porösen Filtrationsmediums37 und Mahlkugeln29 enthaltendes Auffanggefäß4 wird mitdem am Bodenteil 6 angeordneten Auslass 3 lösbar verbunden, - – die
Aufnahmeeinheit 2 mit dem Auffanggefäß 4 wird kopfüber leicht geschüttelt,wobei das Lösungsmittel 28 über den Auslass 3 desBodenteils 6 dem Filtrationsmedium 37 zugeführt wird unddas Filtrationsmedium 37 auflöst.
- - the
recording part 5 gets on that in thebottom part 33 thefiltration device 32 arranged and exposed to a liquidsample filtration medium 37 put on, one in the receivingpart 5 arranged fixingedge 11 with aborder 38 of thefiltration medium 37 is connected - - the
recording part 5 with the associatedfiltration medium 37 is from thelower part 33 lifted off and on thebottom part 6 put on, with the receivingpart 5 and thebottom part 6 with each other about the locking31 .31 ' be locked, - - a solvent
28 for dissolving theporous filtration medium 37 and grindingballs 29 containing collectingvessel 4 will be with thebottom part 6 arrangedoutlet 3 releasably connected, - - the
recording unit 2 with the collectingvessel 4 is gently shaken upside down with the solvent28 over theoutlet 3 of thebottom part 6 thefiltration medium 37 is fed and thefiltration medium 37 dissolves.
Danach können die nachfolgenden Schritte durchgeführt werden:
- – die
Aufnahmeeinheit 2 mit dem in vertikaler Richtungunten angeordneten Auffanggefäß 4 wird indem Zentrifugenadapter 39 befestigt und in einer Zentrifuge zentrifugiert, wobei das indem Lösungsmittel 28 gelöste Filtrationsmedium 37 einschließlich zurückgehaltener Mikroorganismen vollständig indas Auffanggefäß 4 überführt wird, - –
das Auffanggefäß 4 wirdvon der Aufnahmeeinheit 2 entfernt und mit einem Deckel durch Verschrauben verschlossen, - –
das verschlossene Auffanggefäß 4 wird in einem Homogenisator prozessiert, wobei ein Zellaufschluss der Mikroorganismen mithilfe der Mahlkugeln29 ermöglicht wird.
- - the
recording unit 2 with the collecting vessel arranged in the vertical direction at thebottom 4 is in thecentrifuge adapter 39 attached and centrifuged in a centrifuge, which is in the solvent28 dissolvedfiltration medium 37 including retained microorganisms completely into the collectingvessel 4 is transferred - - the
collecting vessel 4 is from therecording unit 2 removed and closed with a lid by screwing, - - the
closed collecting vessel 4 is processed in a homogenizer, wherein a cell disruption of the microorganisms using the grindingballs 29 is possible.
Es wurden die folgenden Versuche durchgeführt:The following experiments were carried out:
Beispiel 1example 1
Bestimmung der Sensitivität für den Nachweis von Bacillus subtilis unter Verwendung der Vorrichtung
Es wurde eine Verdünnungsreihe in 0,9% NaCl-Lösung einer in der exponentiellen Phase befindlichen Bacillus subtilis Kultivierung in Doppelbestimmung nach Filtration auf Sartorius-Nähragar inkubiert (47 mm Cellulosenitratmembran mit 0,45 μm Porendurchmesser; Auszählung der Kolonien nach 24 h) und parallel pro Verdünnungsstufe wurde eine Probe nach einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung prozessiert.A dilution series was incubated in 0.9% NaCl solution of exponential phase Bacillus subtilis cultivation in duplicate after filtration on Sartorius nutrient agar (47 mm cellulose nitrate membrane with 0.45 μm pore diameter, count of colonies after 24 h) and in parallel per dilution step, a sample was processed according to a preferred embodiment of the invention.
Eine bevorzugte Ausführungsform der Erfindung umfasst folgende Prozessschritte:
- 1. Membranfiltration einer wässrigen Probe (47 mm Membrandurchmesser, ”Track-Etched”-Polycarbonatmembran, 0,4 μm Porendurchmesser, 6
bis 11 μm Membrandicke) unter Verwendung eines Unterteils33 (idealerweise aus Plastik; ETO-steril) wie in11 dargestellt. - 2. Entfernung des Aufsatzes
35 und Aufnahme des Membranfilters/Filtrationsmediums 37 mithilfe derKlebhaftung am Fixierrand 11 vom Aufnahmeteil5 (aus Polypropylen; ETO-steril). - 3.
Verbinden des Aufnahmeteils 5 und Bodenteils6 der Aufnahmeeinheit 2 mittels Verrastung 31 . - 4. Auffanggefäß
4 (aus Polypropylen; ETO-steril) mit anhängendem Schraubdeckel miteinem Fassungsvolumen von 2ml enthält 15 Stahlkugeln/Mahlkugeln29 (3 mm Durchmesser) und 750 μl Chloroform („Molecular Biology Grade”; vor allem DNA- und DNase-frei). Nach dem Öffnen des Auffanggefäßes4 ist dieses amAuslass 3 desBodenteils 6 über eine Steckverbindung zu befestigen (sich nach unten hin verjüngender Ansatz24 wird inoffenes Ende 26 desAuffanggefäßes 4 gesteckt). - 5.
Die Aufnahmeeinheit 2 mit Auffanggefäß 4 wird kopfüber leicht geschüttelt, um das Chloroformvollständig vom Auffanggefäß 4 indie Aufnahmeeinheit 2 zu überführen. Anschließend wird dieAufnahmeeinheit 2 mit dem Auffanggefäß 4 kopfüber wenige Sekunden leicht geschwenkt, um ein vollständiges Auflösen des Membranfilters/Filtrationsmediums 37 zu gewährleisten. - 6.
Die Aufnahmeeinheit 2 mit befestigtem Auffanggefäß 4 wird aufrecht (Aufnahmeteil 5 zeigt nach oben,Auffanggefäß 4 zeigt nach unten) inden speziellen Zentrifugenadapter 39 überführt. Es handelt sich hierbei um einen Ausschwingzentrifugenadapter, um ein quantitativ vollständiges Überführen der gelösten Membran/desFiltrationsmediums 37 inklusive der durch dieMembran 37 zurückgehaltenen Partikel und des Lösungsmittels28 zu gewährleisten. Des Weiterenist der Zentrifugenadapter 39 derart konstruiert, dass ein Abfallen/Lösen des Auffanggefäßes 4 während des Zentrifugationsschrittes unterbunden wird.Der Zentrifugenadapter 39 wird in eine passende Zentrifuge montiert und es folgt eine einminütige Zentrifugation bei mind. 3.000 × g, um die imChloroform gelöste Membran 37 inkl. zurückgehaltenen Mikroorganismen vollständig indas Auffanggefäß 4 mit den Mahlkugeln 29 aus Stahl zu überführen. - 7.
Das Auffanggefäß 4 wirdvon der Aufnahmeeinheit 2 entfernt und mithilfe des anhängenden Schraubdeckels fest verschlossen. - 8. Um die Mikroorganismen aufzuschließen und deren DNA zugänglich zu machen,
wird das Auffanggefäß 4 2min bei 6,5 m/s im Homogenisator „FastPrep-24 Instrument” (MP Biomedicals) prozessiert (Alternativ sind auch andere Homogenisatoren mit vergleichbarer Leistung einsetzbar). - 9.
Das Auffanggefäß 4 wird aus dem Homogenisator entnommen und es werden 500μl 1 × TE-Puffer (Tris-EDTA) mit 0,01% SDS (Natriumdodecylsulfat) hinzugefügt („Molecular Biology Grade”). - 10. Es folgt eine 10-minütige Extraktion (DNA aus organischer in wässrige Phase extrahieren) bei Raumtemperatur. Hierfür
ist das Auffanggefäß 4 entweder horizontal auf einem Vortexer oder horizontal auf einem Thermomixer bei 750 rpm zu befestigen. - 11. In die Öffnung des Auffanggefäßes
4 eine Spatelspitze DNA- und DNase-freie Silikonpaste geben (z. B. PhaseLock Gel von 5 Prime oder GE Bayer Silicones, hochviskos). - 12.
Das Auffanggefäß 4 3 min bei 16.000 × g zentrifugieren. - 13. Es haben sich drei Phasen aufgrund der unterschiedlichen Dichten separiert: Die obere wässrige Phase inkl. DNA, die mittlere Silikongelphase als Sperrschicht und die untere organische Phase. Die obere wässrige Phase wird mithilfe einer Pipette vollständig in ein neues, leeres Auffanggefäß
4 überführt ( 1,5 ml Reaktionsgefäß ist ausreichend).ein - 14. 600 μl Isopropanol („Molecular Biology Grade”) und 2 μl Glycogen als -Carrier („Molecular Biology Grade”) hinzufügen und 50-
mal das Reaktionsgefäß 4 invertieren. - 15.
Das Reaktionsgefäß 4 3 min bei 16.000 × g zentrifugieren, so dass ein kleines weißes DNA-Glycogen-Pellet am Boden desReaktionsgefäßes 4 entsteht. - 16. Isopropanol verwerfen, das DNA-Glycogen-Pellet
verbleibt im Reaktionsgefäß 4 . - 17. Zum DNA-Glycogen-Pellet 600 μl 70% Ethanol pipettieren und
das Reaktionsgefäß 4 20-mal invertieren. - 18.
Das Reaktionsgefäß 4 1 min bei 16.000 × g zentrifugieren. - 19. 70% Ethanol verwerfen (mit Pipette entfernen), das DNA-Glycogen-Pellet
verbleibt im Reaktionsgefäß 4 . - 20. Das DNA-Glycogen-Pellet
im geöffneten Reaktionsgefäß 4 entweder 10 min bei 37°C im verschlossenen Thermoblock oder 15bis 20 min unter der Sterilwerkbank trocknen. - 21. Pellet in 50 bis 100 μl Rehydratisierungspuffer (10 mM Tris, 1 mM EDTA,
pH 7–8, DNA- und DNase-frei) 1 h lösen bei 65°C im Thermoblock (im geschlossenen Reaktionsgefäß). - 22. Analyse/Detektion mit quantitativer Realtime-PCR, z. B. mit universellen oder spezifischen bakteriellen Primern.
- 1. Membrane filtration of an aqueous sample (47 mm membrane diameter, "track-etched" polycarbonate membrane, 0.4 μm pore diameter, 6 to 11 μm membrane thickness) using a lower part
33 (ideally plastic, ETO-sterile) as in11 shown. - 2. Removal of the
attachment 35 and receiving the membrane filter /filtration medium 37 using the adhesive bond on the fixingedge 11 from the receiving part5 (polypropylene, ETO-sterile). - 3. Connect the receiving
part 5 andbottom part 6 therecording unit 2 by means of locking31 , - 4. Collection vessel
4 (made of polypropylene, ETO-sterile) with attached screw cap with a capacity of 2 ml contains 15 steel balls / grinding balls29 (3 mm diameter) and 750 μl chloroform ("Molecular Biology Grade", especially DNA and DNase free). After opening the collectingvessel 4 this is at theoutlet 3 of thebottom part 6 to attach via a plug connection (downwardly taperedapproach 24 will be in the open26 of the collectingvessel 4 plugged in). - 5. The
recording unit 2 with collectingvessel 4 shake lightly upside down to completely remove the chloroform from thecollection vessel 4 in the receivingunit 2 to convict. Subsequently, therecording unit 2 with the collectingvessel 4 slightly tilted upside down for a few seconds to completely dissolve the membrane filter /filtration medium 37 to ensure. - 6. The
recording unit 2 with attached collectingvessel 4 becomes upright (receivingpart 5 points upwards, collectingvessel 4 points down) into thespecial centrifuge adapter 39 transferred. This is a swing-out centrifuge adapter to provide quantitatively complete transfer of the dissolved membrane /filtration media 37 including the through themembrane 37 retained particles and the solvent28 to ensure. Furthermore, thecentrifuge adapter 39 designed such that a drop / release of the collectingvessel 4 is inhibited during the centrifugation step. Thecentrifuge adapter 39 is mounted in a suitable centrifuge and followed by a one-minute centrifugation at least 3,000 × g to the membrane dissolved in thechloroform 37 including retained microorganisms completely into the collectingvessel 4 with the grindingballs 29 made of steel. - 7. The collecting
vessel 4 is from therecording unit 2 removed and firmly closed with the attached screw cap. - 8. To unlock the microorganisms and make their DNA accessible, the collecting
vessel 4 2 min at 6.5 m / s in the homogenizer "FastPrep-24 Instrument" (MP Biomedicals) processed (Alternatively, other homogenizers with comparable performance can be used). - 9. The collecting
vessel 4 is removed from the homogenizer and 500 μl of 1 × TE buffer (Tris-EDTA) with 0.01% SDS (sodium dodecyl sulfate) added ("Molecular Biology Grade"). - 10. This is followed by a 10 minute extraction (extract DNA from organic into aqueous phase) at room temperature. For this purpose, the collecting
vessel 4 either horizontally on a vortexer or horizontally on a thermomixer at 750 rpm. - 11. Into the opening of the collecting
vessel 4 Apply a spatula tip of DNA- and DNase-free silicone paste (eg Phase Lock Gel from 5 Prime or GE Bayer Silicones, highly viscous). - 12. The collecting
vessel 4 Centrifuge at 16,000 x g for 3 min. - 13. Three phases have separated due to the different densities: the upper aqueous phase including DNA, the middle silicone gel phase as a barrier layer and the lower organic phase. The upper aqueous phase is completely pipetted into a new,
empty receptacle 4 transferred (a 1.5 ml reaction vessel is sufficient). - 14. Add 600 μl of isopropanol ("Molecular Biology Grade") and 2 μl of glycogen as carrier ("Molecular Biology Grade") and 50 times the
reaction vessel 4 invert. - 15. The
reaction vessel 4 Centrifuge for 3 min at 16,000 x g, leaving a small white DNA glycogen pellet at the bottom of thereaction vessel 4 arises. - 16. Discard isopropanol, the DNA glycogen pellet remains in the
reaction vessel 4 , - 17. Pipette 600 μL of 70% ethanol into the DNA glycogen pellet and the
reaction tube 4 Invert 20 times. - 18. The
reaction vessel 4 Centrifuge for 1 min at 16,000 x g. - 19. Discard 70% ethanol (remove with pipette), the DNA glycogen pellet remains in the
reaction vessel 4 , - 20. The DNA glycogen pellet in the
open reaction tube 4 either 10 minutes at 37 ° C in a sealed thermoblock or 15 to 20 minutes under the sterile workbench. - 21. Pellet in 50 to 100 .mu.l Rehydration buffer (10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7-8, DNA and DNase-free) for 1 h at 65 ° C in a thermoblock (in a closed reaction vessel).
- 22. Analysis / detection with quantitative real-time PCR, z. B. with universal or specific bacterial primers.
Reaktionsbedingungen Beispiel 1:Reaction Conditions Example 1
-
25-μl-PCR-Reaktionsvolumen (12,5 μl „MAXIMA SYBR Green qPCR Master Mix” von Fermentas, 10 nM ROX,
0,3 μM Forward Primer SEQ 1 5'-AAGTCGAGCGGACAGATGG-3',
0,3 μM Reverse Primer SEQ 2 5'-TGCGGTTCAAACAACCATCCG-3',
10 μl DNA (nach bevorzugter Ausführungsform der Erfindung gewonnen),
mit Wasser („PCR-Grade”) auf 25 μl auffüllen.
Temperaturprofil: 10 min 95°C; 40 Zyklen mit 15 Sekunden 95°C, 30 Sekunden 60°C, 30 Sekunden 72°C (Fluoreszenzdetektion bei 72°C); Schmelzkurve mit 1 min bei 95°C, 30 Sekunden bei 55°C, Temperaturrampe bis auf 95°C mit Fluoreszenzmessung, 30 Sekunden 95°C.25 μL PCR reaction volume (12.5 μL of "MAXIMA SYBR Green qPCR Master Mix" from Fermentas, 10 nM ROX,
0.3 μM
forward primer SEQ 1 5'-AAGTCGAGCGGACAGATGG-3 ', 0.3 μMreverse primer SEQ 2 5'-TGCGGTTCAAACAACCATCCG-3 ', 10 μl of DNA (obtained according to a preferred embodiment of the invention), make up to 25 μl with water ("PCR grade"). Temperature profile: 10 min 95 ° C; 40 cycles of 15 seconds 95 ° C, 30 seconds 60 ° C, 30 seconds 72 ° C (fluorescence detection at 72 ° C); Melting curve with 1 min at 95 ° C, 30 seconds at 55 ° C, temperature ramp up to 95 ° C with fluorescence measurement, 30 seconds 95 ° C.
Ergebnisse des Ausführungsbeispiels 1:Results of Embodiment 1:
Tabelle: Ct-Werte („Cycle Threshold”, Schwellenwert-Zyklus) und Schmelzpunkte von Ausführungsbeispiel 1
Beispiel 2Example 2
Erfindung mit bevorzugter Ausführungsform vs. Stand der Technik (
Zwei Membranfilter/Filtrationsmedium
Ergebnisse des Ausführungsbeispiels 2:Results of Embodiment 2:
Tabelle: Ct-Werte und Schmelzpunkte von Ausführungsbeispiel 2
Beispiel 2 zeigt, dass die Erfindung in der bevorzugten Ausführungsform dem aktuellen Stand der Technik überlegen ist, da eine Sensitivitätssteigerung um mehr als 3 Ct-Einheiten erreicht werden konnte, was einem Faktor von etwa zehn Genomeinheiten/B. subtilis Sporen entspricht.Example 2 shows that in the preferred embodiment, the invention is superior to the current state of the art in that a sensitivity increase of more than 3 Ct units could be achieved, which is a factor of about ten genome units / B. subtilis spores corresponds.
BezugszeichenlisteLIST OF REFERENCE NUMBERS
- 11
- Vorrichtungcontraption
- 22
- Aufnahmeeinheitrecording unit
- 33
-
Auslass von
2 Outlet of2 - 44
- Auffanggefäßcollecting vessel
- 55
-
Aufnahmeteil von
2 Recording part of2 - 66
-
Bodenteil von
2 Bottom part of2 - 7 7
-
Außenwandung von
5 Outer wall of5 - 88th
-
Innenwandung von
5 Inner wall of5 - 99
- Deckenwandungtop wall
- 1010
- AufnahmeteilinnenflächeReceiving portion inner surface
- 1111
- Fixierrandfixating
- 1212
- Haftschichtadhesive layer
- 1313
- innere Außenwandungsflächeinner outer wall surface
- 1414
-
Wulst von
5 Bead of5 - 1515
-
Außenwandung von
6 Outer wall of6 - 1616
-
Außenfläche von
15 Outer surface of15 - 1717
- Inkubationsraumincubation
- 1818
- Abflussflächedrainage area
- 2020
- Winkelangle
- 2121
- Auslasskanalexhaust port
- 2222
-
Langsachse von
6 Langsachse of6 - 2323
-
lichte Weite von
21 clear width of21 - 2424
-
Absatz von
19 Sales of19 - 2626
-
offenes Ende von
25 open end of25 - 2727
-
Außengewinde von
25 External thread of25 - 2828
- Lösungsmittelsolvent
- 2929
- Mahlkugelngrinding balls
- 3030
-
Vertiefung von
6 Deepening of6 - 31, 31'31, 31 '
- Verrastunglatching
- 3232
- Filtrationsvorrichtungfiltration device
- 3333
-
Unterteil von
32 Lower part of32 - 3434
-
Aufnahmeersatz von
33 Reception set of33 - 3535
- Aufsatzessay
- 3636
- FilterunterstützungsflächeFilter support surface
- 3737
- Filtrationsmediumfiltration media
- 3838
-
Rand von
37 Edge of37 - 3939
- Zentrifugenadaptercentrifuge adapter
- 4040
- Aussparungrecess
ZITATE ENTHALTEN IN DER BESCHREIBUNG QUOTES INCLUDE IN THE DESCRIPTION
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Zitierte PatentliteraturCited patent literature
- WO 2011/057707 A2 [0005] WO 2011/057707 A2 [0005]
- DE 102008005968 A1 [0007, 0008] DE 102008005968 A1 [0007, 0008]
- JP 2012-019723 A [0010, 0012] JP 2012-019723 A [0010, 0012]
- WO 2012/031156 A1 [0020] WO 2012/031156 A1 [0020]
- EP 2402456 A1 [0022] EP 2402456 A1 [0022]
- EP 2402465 A1 [0023] EP 2402465 A1 [0023]
Zitierte Nicht-PatentliteraturCited non-patent literature
- L. J. DiMichele (Am. Soc. Brew. Chem., 1993, vol. 51, No. 2, S. 63–66) [0010] LJ DiMichele (Am Soc Brew Chem, 1993, vol 51, No. 2, pp. 63-66) [0010]
- K. Nakamura (Journal of Aerosol Research, 2003, Vol. 18, No. 3, S. 177–180) [0010] K. Nakamura (Journal of Aerosol Research, 2003, Vol. 18, No. 3, pp. 177-180). [0010]
- K. Stärk (Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, S. 543–548) [0010] K. Stärk (Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, pp. 543-548). [0010]
- L. J. DiMichele (Am. Soc. Brew. Chem., 1993, vol. 51, No. 2, S. 63–66) [0014] LJ DiMichele (Am Soc Brew Chem, 1993, vol 51, No. 2, pp. 63-66). [0014]
- K. Stärk (Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, S. 543–548) [0016] K. Stärk (Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, pp. 543-548) [0016]
- K. Sen (Applied and Environmental Microbiology, 2007, vol. 73, No. 22, S. 7380–7387) [0018] K. Sen (Applied and Environmental Microbiology, 2007, vol. 73, No. 22, pp. 7380-7387). [0018]
- L. J. DiMichele, Am. Soc. Brew. Chem., 1993, vol. 51 No. 2, S. 63–66 [0069] LJ DiMichele, Am. Soc. Brew. Chem., 1993, vol. 51 no. 2, pp. 63-66 [0069]
- K. Stärk, Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, S. 543–548 [0069] K. Stärk, Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 2, pp. 543-548 [0069]
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105112289A (en) * | 2015-09-02 | 2015-12-02 | 广州广立生物科技有限公司 | Cell separation device and dispenser applied to same |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE102008005968A1 (en) | 2007-03-21 | 2008-09-25 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Nutrient media unit and method for receiving a filter from a filtration device |
WO2011057707A2 (en) | 2009-11-12 | 2011-05-19 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Device and method for treating a filtration medium |
EP2402465A2 (en) | 2004-07-13 | 2012-01-04 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detection of Hepatitis A virus nucleic acid |
EP2402456A1 (en) | 2010-06-30 | 2012-01-04 | Imeth AG | Method for detecting organisms in water |
JP2012019723A (en) | 2010-07-14 | 2012-02-02 | Asahi Breweries Ltd | Method for recovering microorganism and method for purifying microorganism-derived dna |
WO2012031156A1 (en) | 2010-09-01 | 2012-03-08 | Life Technologies Corporation | Device for capture and lysis of microorganisms from liquids and methods of use thereof |
-
2012
- 2012-07-31 DE DE202012007324U patent/DE202012007324U1/en not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2402465A2 (en) | 2004-07-13 | 2012-01-04 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for detection of Hepatitis A virus nucleic acid |
DE102008005968A1 (en) | 2007-03-21 | 2008-09-25 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Nutrient media unit and method for receiving a filter from a filtration device |
WO2011057707A2 (en) | 2009-11-12 | 2011-05-19 | Sartorius Stedim Biotech Gmbh | Device and method for treating a filtration medium |
EP2402456A1 (en) | 2010-06-30 | 2012-01-04 | Imeth AG | Method for detecting organisms in water |
JP2012019723A (en) | 2010-07-14 | 2012-02-02 | Asahi Breweries Ltd | Method for recovering microorganism and method for purifying microorganism-derived dna |
WO2012031156A1 (en) | 2010-09-01 | 2012-03-08 | Life Technologies Corporation | Device for capture and lysis of microorganisms from liquids and methods of use thereof |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
K. Nakamura (Journal of Aerosol Research, 2003, Vol. 18, No. 3, S. 177-180) |
K. Sen (Applied and Environmental Microbiology, 2007, vol. 73, No. 22, S. 7380-7387) |
K. Stärk (Applied and Environmental Microbiology, 1998, Vol. 64, No. 2, S. 543-548) |
L. J. DiMichele (Am. Soc. Brew. Chem., 1993, vol. 51, No. 2, S. 63-66) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105112289A (en) * | 2015-09-02 | 2015-12-02 | 广州广立生物科技有限公司 | Cell separation device and dispenser applied to same |
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