DE2004869C2 - Use of an i-RNA obtained in the usual way for antibody formation - Google Patents
Use of an i-RNA obtained in the usual way for antibody formationInfo
- Publication number
- DE2004869C2 DE2004869C2 DE2004869A DE2004869A DE2004869C2 DE 2004869 C2 DE2004869 C2 DE 2004869C2 DE 2004869 A DE2004869 A DE 2004869A DE 2004869 A DE2004869 A DE 2004869A DE 2004869 C2 DE2004869 C2 DE 2004869C2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- acid
- immunoribonucleic
- antigen
- injection
- animals
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/39—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the immunostimulating additives, e.g. chemical adjuvants
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Mycology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
wellen. Außerdem ist durch das erfindungsgemaße zahlenmäßig geringe Einspritzen die mit einem Einspritzen verbundene Gefahr wesentlich geringer, wobei außerdem allergische Nebenwirkungen vermieden werden. ">waves. In addition, the inventive numerically small injection is that with a Injection-related risk is significantly lower, and allergic side effects are also avoided will. ">
Erfindungsgemäß kann das Antiserum durch Auflösen der gereinigten Immunribonukleinsäure, beispielsweise in einer physiologischen Kochsalzlösung, und Einspritzen der Lösung in ein Tier, das zur Herstellung des Antiserums verwendet wird, hergestellt werden. Die i» wirksame Menge kann je nach dem verwendeten Tier schwanken. Sie liegt im allgemeinen zwischen 50 und 2500 μg pro 1 kg Körpergewicht in Form von Immunribonukleinsäure. Bei oder unmittelbar nach der Injektion wird eine kleine Antigenmenge in das Tier π eingespritzt. Als Antigen werden im allgemeinen ein Toxin oder ein Toxoid verwendet. Das Antigen muß die gleiche Antigenizität besitzen wie das Antigen, das zur Herstellung dei Immunribonukleinsäure verwendet wird. Die durch eine einmalige Einspritzung des -'" Antigens allein erzeugte Menge an zirkulierenden Antikörpern beträgt höchstens l'/j Einheiten/ml, und zwar sogar nach 1 Monat, während die Menge, falls das Antigen zusammen mit der Immunribonukleinsäure verwendet wird, 30—100 Einheiten/ml innerhalb einer -"< sehr kurzen Zeitspanne erreicht, und zwar ohne wiederholte Injektionen einer großen Menge an einem Toxin oder Toxoid. Erfindungsgemäß wird daher die Zeit zur Herstellung eines Antiserums stark verkürzt, so daß man eine reproduzierbare Produktion erwarten u< kann. Ferner gestaltet sich die Produktion des Antiserums in sehr wirtschaftlicher Weise, da die Immunribonukleinsäure aus ^Jer Milz von Tieren hergestellt werden kann, die zui Herstellung des Antiserums eingesetzt werden. r>According to the invention, the antiserum can be prepared by dissolving the purified immunoribonucleic acid, for example in a physiological saline solution, and injecting the solution into an animal which is used for the preparation of the antiserum. The effective amount may vary depending on the animal used. It is generally between 50 and 2500 μg per 1 kg of body weight in the form of immunoribonucleic acid. At or immediately after the injection, a small amount of antigen is injected into the animal π. A toxin or a toxoid is generally used as the antigen. The antigen must have the same antigenicity as the antigen used to produce the immunoribonucleic acid. The amount of circulating antibodies produced by a single injection of the antigen alone is at most 1 ½ units / ml, even after 1 month, while the amount, if the antigen is used together with the immunoribonucleic acid, is 30-100 Units / ml is achieved within a very short period of time without repeated injections of a large amount of a toxin or toxoid. According to the invention, therefore, the time is greatly reduced for the production of an antiserum, so that a reproducible production expected u <can. Furthermore, the production of the antiserum is very economical, since the immunoribonucleic acid can be produced from the spleen of animals which are used to produce the antiserum. r>
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung.The following examples illustrate the invention.
Immunribonukleinsäure wird aus der Milz von Mäusen extrahiert, die mit einem lebenden Impfstoff aus ->» Salmonella enteritidis in ausreichendem Maße immunisiert worden sind. Die Säure wird nach der nachstehend angegebenen Methode gereinigt, worauf 5 mg der gereinigten Immunribonukleinsäure in 0,5 ml einer physiologischen Salzlösung gelöst werden. Die Lösung ■»"> wird intraperitoneal in Mäuse injiziert, wobei gleichzeitig 10-5mg eines schwach virulenten lebenden Impfstoffs aus S. enteritidis subkutan in die Mäuse eingespritzt werden. Nach 5 Tagen wird ein stark virulenter lebender Impfstoff aus S. enteritidis intrave- ''» nös in die Mäuse zur Beobachtung der entwickelten Immunität injiziert.Immunoribonucleic acid is extracted from the spleen of mice that have been sufficiently immunized with a live vaccine from -> »Salmonella enteritidis. The acid is purified by the method given below, whereupon 5 mg of the purified immunoribonucleic acid is dissolved in 0.5 ml of a physiological saline solution. The solution ■ ""> is injected intraperitoneally into mice at the same 10- 5 mg of a weakly virulent live vaccine from S. subcutaneously injected into the mice enteritidis. After 5 days, is a highly virulent live vaccine from S. enteritidis intrave- ''»Nös injected into the mice to observe the developed immunity.
Immunribonukleinsäure wird extrahiert und nach der folgendrn Methode gereinigt:Immunribonucleic acid is extracted and after the cleaned using the following method:
2 g einer von immunisierten Mäusen isolierten Leber >j werden in kleine Stücke zerschnitten. Nach der Zugabe von 10 ml einer gekühlten 0,5%igen Natriumnaphthalin-l,5-disulfonat-Lösung (NDS) wird das Gewebe in einem Eisbad mittels einer Glashomogenisierungseinrichtung homogenisiert. Das Homogcnat wird mit einer kleinen Menge einer 90%igen (Volumen/Volumen) Phenollösung, die 0,1 % (Gewicht/Volumen) 8-Hydroxychinolin (Ph-Hq) enthält, unter Kühlen vermischt. Der durch Zentrifugieren abgetrennten Wasserphase wird ein gleiches Volumen einer 10J/nigen (Gewicht/Volumen) Natrium-p-aminosalicylat-Lösung zugesetzt, die 2% (Gewicht/Volumen) Natriumdodecylsulfat (PAS-SDS) enthält, worauf die Mischung erneut mit dem Ph-Hq extrahiert wird, welches das halbe Volumen der wäßrigen Phase ausmacht. Das Waschen mit dem Ph-Hq erfolgt mehr als 4mal, und zwar solange, bis keine sichtbaren Materialien mehr zwischen der Wasserphase und der Phenolphase vorliegen. Zu ungefähr 7,5 ml der auf diese Weise erhaltenen Wasserphase wird das zweifache Volumen an kaltem Äthanol zugesetzt. Der gebildete Niederschlag wird in einer kleinen Menge einer 0,1 m NaCl aufgelöst. Diese Menge enthält 2 μg/ml Kaliumpolyvinylsulfat (PVS). Es erfolgt eine erneute Ausfällung und ein wiederholtes Waschen mit Äthanol.2 g of a liver isolated from immunized mice are cut into small pieces. After adding 10 ml of a cooled 0.5% sodium naphthalene-1,5-disulfonate solution (NDS), the tissue is homogenized in an ice bath using a glass homogenizer. The homogenate is mixed with a small amount of a 90% (volume / volume) phenol solution containing 0.1% (weight / volume) 8-hydroxyquinoline (Ph-Hq) with cooling. The water phase separated by centrifugation is added an equal volume of a 10 J / nigen (weight / volume) sodium p-aminosalicylate solution containing 2% (weight / volume) sodium dodecyl sulfate (PAS-SDS), whereupon the mixture is again with the Ph-Hq is extracted, which makes up half the volume of the aqueous phase. Washing with the Ph-Hq is carried out more than 4 times, until there are no more visible materials between the water phase and the phenol phase. Twice the volume of cold ethanol is added to approximately 7.5 ml of the water phase obtained in this way. The precipitate formed is dissolved in a small amount of 0.1 M NaCl. This amount contains 2 μg / ml potassium polyvinyl sulfate (PVS). Reprecipitation takes place and repeated washing with ethanol.
Alle Maßnahmen werden bei 4°C durchgeführt. Nach c'or Entfernung des Äthanols durch Zentrifugieren und Eindampfen wird der getrocknete gebildete Niederschlag in 3 ml eines kalten 0,01 m tris-HCl-Puffers (pH 7,5), der 10"3m MgCl enthält, gelöst. Dieser Lösung werden 1/30 ml Desoxyribonuklease (50 μg/ml) zugesetzt, worauf die Mischung bei 40C während einer Zeitspanne von 30 Minuten stehengelassen wird. Nach der Zugabe von 1,5 ml des PAS-SDS und 1,5 ml eines l°/oigen NDS wird Ribonukleinsäure mit dem Ph-Hq in der vorstehend beschriebenen Weise extrahiert ,ind durch Äthanol ausgefällt. Nach einem 5maligen Waschen mit Äthanol wird der gebildete. Niederschlag aus Ribonukleinsäure bei — 20°C bis zur Verwendung gelagert.All measures are carried out at 4 ° C. After removing the ethanol by centrifugation and evaporation, the dried precipitate formed is dissolved in 3 ml of a cold 0.01 M tris-HCl buffer (pH 7.5) containing 10 "3 M MgCl. This solution is then dissolved 1/30 ml deoxyribonuclease (50 ug / ml) was added, and the mixture at 4 0 C is allowed to stand for a period of 30 minutes. After the addition of 1.5 ml of the PAS SDS and 1.5 ml of a l ° / In the above NDS, ribonucleic acid is extracted with the Ph-Hq in the manner described above and precipitated with ethanol. After washing 5 times with ethanol, the precipitate formed from ribonucleic acid is stored at -20 ° C. until use.
Eine Lösung von 2 ml der auf diese Weise erhaltenen Ribonukleinsäure in 1 ml eines 0,01 m-Acetatpuffers (pH 5.0), der 0,1 m NaCI, 10-4 m MgCl2 und 2 με/ΓηΙ PVS enthält, wird oben auf 30 ml eines 5- bis 20%igen linearen Rohrzuckergradienten gegeben, der in dem gleichen Puffer hergestellt wird. Die Rohre werden in einem Hitachi RPS-25-Rotor (Typ 55-PA, Hitachi Lid., Tokio, Japan) während einer Zeitspanne von 16 Stunden bei 35 000 UpM zentrifugiert. Nach einer automatischen Messung der Extinktion bei 250 ΐημ mittels eines ISCO-Dichtegradientenfrakticnators. (Modell 180 der Instrumentation Specialities Company Inc., USA) werden Fraktionen gesammelt. Die auf diese Weise gesammelten Fraktionen werden durch eine negative Druckdialyse durch Zellophan gegen eine 0,15 m NaCI-Lösung. die 2 μg/ml PVS enthält, konzentriert und mittels Äthanol ausgefällt und gereinigt.A solution of 2 ml of the thus obtained ribonucleic acid in 1 ml of 0.01 M acetate buffer (pH 5.0) containing 0.1 m NaCl, containing 10- 4 m MgCl 2 and 2 μ ε / ΓηΙ PVS is above added to 30 ml of a 5 to 20% linear cane sugar gradient made in the same buffer. The tubes are centrifuged in a Hitachi RPS-25 rotor (Type 55-PA, Hitachi Lid., Tokyo, Japan) for a period of 16 hours at 35,000 rpm. After an automatic measurement of the extinction at 250 ΐημ using an ISCO density gradient fractionator. (Model 180 from Instrumentation Specialties Company Inc., USA) fractions are collected. The fractions collected in this way are subjected to negative pressure dialysis through cellophane against a 0.15 M NaCl solution. which contains 2 μg / ml PVS, concentrated and precipitated with ethanol and purified.
Es werden folgende experimentelle Ergebnisse erhalten:The following experimental results are obtained:
Werden nach dem erfindungsgemäßen Verfahren 5 mg Immunribonukleinsäure und 10~5mg eines schwach virulenten lebenden Impfstoffs in Mäuse eingespritzt, dann werden 97 - 100% überlebende Tiere bei einem Angriff eines stark virulenten lebenden Impfstoffs beobachtet. Werden 10~5 mg eines schwach virulenten lebenden Impfstoffs allein zum Vergleich injiziert, dann überleben nur 0 — 5% der Tiere bei einem Angriff durch den stark virulenten lebenden Impfstoff.100% surviving animals observed during an attack of a highly virulent live vaccine - are according to the inventive method, 5 mg Immunribonukleinsäure and 10 ~ 5 mg of a weakly virulent live vaccine in mice injected, then 97 are. 5% of the animals in an attack by the highly virulent live vaccine - 10 ~ 5 mg of a weakly virulent live vaccine injected alone for comparison, only 0 to survive.
Immunribonukleinsäure wird aus der Milz von Meerschweinchen hergestellt, die mit einem Diphtherietoxoicl in der gleichen Weise wie in Heispiel 1 in ausreichendem Maße immunisiert wurden sind. 150 mg der Immunribonukleinsäure werden intraperitoneal in Meerschweinchen injiziert. Nach 10 Tagen werden 5 LF eines Diphtherietoxoids subkutan in die Meerschweinchen eingespritzt. 5 Tage nach der Toxoidinjektion wird der Gehalt an zirkulierenden Antikörpern in den Meerschweinchen titriert.Immunribonucleic acid is made from the spleen of guinea pigs that have been treated with a diphtheria toxoicl have been sufficiently immunized in the same manner as in Example 1. 150 mg the immunoribonucleic acids are injected intraperitoneally into guinea pigs. After 10 days, 5 LF a diphtheria toxoid was injected subcutaneously into the guinea pigs. 5 days after the toxoid injection the level of circulating antibodies in the guinea pigs is titrated.
Es werden folgende Ergebnisse emelt:The following results are emelted:
Werden nach dem erfindungsgemäßen Verfahren Immunribonukleinsäure zusammen mit einem Toxoid eingespritzt, dann stellt man eine große Menge, und zwar ΙΟΟμ/mI, an zirkulierenden Antikörpern fest, während dann, falls das Toxoid allein als Vergleich eingespritzt wird, nur P/a μ/ml zu beobachten sind. Wird die Immunribonukleinsäure allein injiziert, dann beträgt der Gehalt an zirkulierenden Antikörpern weniger als 1/10OuVmI.Are immunoribonucleic acid together with a toxoid according to the method according to the invention injected, then one finds a large amount, namely ΙΟΟμ / mI, of circulating antibodies, while if the toxoid alone is injected as a control, only P / a µ / ml are observed. If the immunoribonucleic acid is injected alone, then the level of circulating antibodies is less than 1 / 10OuVmI.
150 μgder Immunribonukleinsäure (nachfolgend kurz als i-RNS bezeichnet), die wie im vorhergehenden Beispiel hergestellt worden war, wurde Meerschweinchen intraperitoneal eingespritzt. Vier Wochen später wurden 5 LF Diphtherietoxoid subkutan in die Meerschweinchen injiziert. 7 Tage nach der Toxoidinjektion wurde den Meerschweinchen Blut abgezapft und bei 4°C über Nacht stehengelassen, um das Serum (Antiserum) zu isolieren. Das so isolierte Serum wurde 10 min bei 10 000 UpM zentrifugiert. Das abgetrennte, überstehende Serum wurde abgenommen, und der Antikörpertiter des Antiserums wurde nach einer Antiserum-Standardtitrimetrie bestimmt, um den Serum-Antikörperwert zu ermitteln. Der Antikörperwert wurde zu 30 bis 100 Einheiten/ml bestimmt.150 μg of immunoribonucleic acid (hereinafter abbreviated to referred to as i-RNA) prepared as in the previous example became guinea pigs injected intraperitoneally. Four weeks later, 5 LF of diphtheria toxoid were injected subcutaneously into the guinea pigs injected. 7 days after the toxoid injection, blood was drawn from the guinea pigs and with Let stand 4 ° C overnight to isolate the serum (antiserum). The serum isolated in this way was Centrifuged for 10 min at 10,000 rpm. The separated, supernatant serum was removed, and the Antibody titers of the antiserum were determined by standard antiserum titrimetry to be the serum antibody level to investigate. The antibody level was determined to be 30 to 100 units / ml.
Zu Vergleichs- und Kontrollzwecken wurde der vorstehende Versuch wiederholt, jedoch wurde die Injektion von i-RNS unterlassen und eine Einzeldosis des Toxoids verabreicht, entweder allein oder durch Ersatz der ersten Dosis der i-RNS durch die Dosis des Toxoids, worauf die zweite Injektion des Toxoids erfolgte, oder indem die zweite Injektion des Toxoids unterlassen und die erste Injektion an i-RNS alleine verabreicht wurde, usw. Die erhaltenen Versuchsergebnisse sind in der folgenden Tabelle aufgeführt.For comparison and control purposes, the above experiment was repeated, but the Refrain from injecting i-RNA and administer a single dose of the toxoid, either alone or through Substitute the dose of the toxoid for the first dose of i-RNA, followed by the second injection of the toxoid was done, or by omitting the second injection of the toxoid and the first injection of i-RNA alone was administered, etc. The experimental results obtained are shown in the following table.
firste Dosisfirst dose
Zweite Dosis (4 Wochen nach der ersten Dosis Anlikörperwerl
(Hinhciten/ml) titriert
Für das Anliscrum.
gewonnen 7 Tage nach
der zweiten DosisSecond dose (4 weeks after the first dose of Anlikbodywerl
(Hinhciten / ml) titrated
For the anliscrum.
won 7 days after
the second dose
Erfindungsgemäß i-RNS Vcrgleichsversuch (1)
Keine i-RNS-lnjektionAccording to the invention, I-RNS comparison test (1)
No i-RNA injection
Vergleichsversuch (2)
ToxoidComparative test (2)
Toxoid
Vcrgieichsversuch (3)
i-RNSComparison test (3)
i-RNS
Konlrollversuch (I)
i-RNSControl test (I)
i-RNS
Konlrollversuch (2)
ToxoidControl test (2)
Toxoid
ToxoidToxoid
ToxoidToxoid
ToxoidToxoid
i-RNSi-RNS
weder Toxoid noch i-RNS 30-100neither Toxoid nor i-RNS 30-100
0,3-10.3-1
30-10030-100
keine Toxoidinjektion <0,0lno toxoid injection <0.0l
<0,01<0.01
<0,01<0.01
Beim Vergleich der Versuchsergebnisse, wie sie 4> erfindungsgemäß erhalten wurden, mit denen der Vergleichsversuche (1), (3) und den Kontrollversuchen (1) und (2) zeigt sich, daß die Injektion der i-RNS vor der Dosis des Toxoids (als Antigen) den Antikörperwert des Antiserums deutlich erhöht, verglichen mit den Fällen, in denen die erste Dosis an i-RNS nicht verabreicht wurde. Vergleicht man das erfindungsgemäße Versuchsergebnis mit dem des Vergleichsversuchs (2), zeigt sich, daß die beiden Dossn des Toxoids, aber ohne Injektion von i-RNS, die Bildung des Antikörpers im gleichen Ausmaß 5ί wie erfindungsgemäß hervorruft, was bedeutet, daß das erfindungsgemäße Verfahren in vorteilhafter Weise die Menge des für die Erzeugung des gleichen Titers an Aniikörper im Antiserum erforderlichen Toxoids auf die Hälfte zu drücken vermag, miWhen comparing the test results as they 4> were obtained according to the invention, with those of the comparative experiments (1), (3) and the control experiments (1) and (2) show that the injection of the i-RNA before the dose of the toxoid (as an antigen) increases the antibody level of the Antiserum increased significantly compared to cases where the first dose of i-RNA was not administered. If one compares the test result according to the invention with that of the comparative test (2), it can be seen that the two dossn of the toxoid, but without injection of i-RNA, the formation of the antibody to the same extent 5ί as the invention causes, which means that the inventive method in an advantageous manner the Amount of toxoid required to produce the same titer of antibody in the antiserum Able to squeeze half, mi
Immunribonukleinsäure wurde aus der Milz von Pferden isoliert, die mit dem Toxoid einer Viper, Trimeresurus nukiuanus, ausreichend immunisiert wor- hi den waren und aus denen das Antiserum für das Viperloxoid gewonnen wurde. Die Extraktion und Reinigung der i-RNS erfolgte in gleicher Weise wie im Beispiel 1. 500 μg der i-RNS wurden Mäusen intraperitoneal injiziert, und 4 Wochen später wurde das Vipertoxoid denselben Mäusen eingespritzt. Das eingesetzte Vipertoxoid wurde durch Erhitzen auf 1000C für 10 min und Inberührungbringen mit einem Volumen Äthanol vorbehandelt. Eine Woche nach der Injektion des Vipertoxoids wurde den Mäusen Blut abgezapft und das Antiserum aus dem Blut isoliert. Der Antikörperw.ri des isolierten Serums v/urde durch Bestimmen der Menge des Antiserums ermittelt, die zum Neutralisieren einer gegebene·· Menge des hämolysierenden Vipertoxoids nötig war. Der neutralisierte Antikörperv/ert (Einheiten/m!) des Antiserums, erhalten nach dem obigen erfindungsgemäßen Versuch, ergab sich zu Ί28 Einheiten/ml.Immunoribonucleic acid was isolated from the spleen of horses which had been sufficiently immunized with the toxoid of a viper, Trimeresurus nukiuanus, and from which the antiserum for the viper oxoid was obtained. The extraction and purification of the i-RNA were carried out in the same manner as in Example 1. 500 μg of the i-RNA were injected intraperitoneally into mice, and 4 weeks later the vipertoxoid was injected into the same mice. The Vipertoxoid used was min by heating at 100 0 C for 10 and pre-contacted with a volume of ethanol. One week after the injection of the viper toxoid, blood was drawn from the mice and the antiserum isolated from the blood. The antibody wri of the isolated serum v / was determined by determining the amount of the antiserum which was necessary to neutralize a given amount of the haemolytic vipertoxoid. The neutralized antibody value (units / m!) Of the antiserum, obtained after the above experiment according to the invention, was found to be 28 units / ml.
Zum Vergleich wurde der obige Versuch wiederholt, jedoch ohne die anfängliche Injektion der i-RNS.For comparison, the above experiment was repeated, but without the initial injection of the i-RNA.
Bei diesem Vergleichsversuch (1) ergab sich der neutralisierte Antikörperwert zu nur etwa 2,3 E/ml. Der obige erfindungsgemäße Versuch wurde nochmals wiederholt, jedocii wurcie die erste Injektion der i-RNS durch eine Toxoidinjektion ersetzt (so erfolgte also eine erste Injektion des Vipertoxoids, gefolgt von der zweiten Vipertoxoid-Injektion 4 Wochen später und derIn this comparative experiment (1), the neutralized antibody value was only about 2.3 U / ml. Of the The above experiment according to the invention was repeated again, but the first injection of the i-RNA was caused replaced by a toxoid injection (so there was a first injection of the vipertoxoid, followed by the second vipertoxoid injection 4 weeks later and the
Gewinnung des Antisemms eine Woche nach der /weiten Injektion des Vipertoxnids). Hei diesem Vergleichsversuch (2) war der neutralisierte Antikörperwert nur 16 E/ml.Obtaining the antisemm one week after the / wide injection of the Vipertoxnids). Hey this one Comparative experiment (2) was the neutralized antibody value only 16 U / ml.
Beim Vergleich der vorstehenden Versuchsergebnisse zeigt sich, daß das Einspritzen der i-RNS vor der Injektion des Vipertoxoids die Bildung des Antikörpers deutlich erhöht, verglichen mit dem Fall, bei dem keine Injektion von i-RNS erfolgte.When the above test results are compared, it can be seen that the injection of the i-RNA before the Injection of the viper toxoid significantly increased the formation of the antibody compared to the case in which none Injection of i-RNA took place.
U e ι s ρ ι e I >U e ι s ρ ι e I>
1 ml Diphtherie·Toxoid (Titer: 40 l.f/ml) wurde Kaninchen subkutan iii|i/iert. und 4 Wochen spater wurde wieder I ml des gleichen Toxoids ilen Kaninchen /weeks Immunisierung inji/ierl. i Tage nach der /weiten Toxoid-Injektion wurden die Kaninchen geopfert, iirici die i-RNS wurde durch Extrahieren aus der Mil/ der geopferten Kaninchen gewonnen.1 ml of diphtheria toxoid (titer: 40 lf / ml) was subcutaneously administered to rabbits. and 4 weeks later, I ml of the same toxoid was again injected into rabbits / weeks of immunization. i days after the / wide toxoid injection, the rabbits were sacrificed iirici the i-RNA of the sacrificed rabbit was obtained by extracting from the Mil / recovered.
Andererseits wurde I ml des gleichen Diphtherie-Toxoids als erste Dosis zwei erwachsenen Personen (als Personen A und H bezeichnet) subkutan injiziert, und 4 Wochen später nochmals als zweite Dosis den gleichen Personen A bzw. B(als Verglcichstest).On the other hand, 1 ml of the same diphtheria toxoid was given as the first dose to two adults (as Persons A and H designated) injected subcutaneously, and 4 weeks later again as the second dose the same People A and B (as a comparison test).
I m die erfindiingsgemäße Wirkung zu demonstrieren, wurde I mg der wie oben hergestellten i-RNS als erste Dosis /wei erw achsenen Personen (als Personen ( und D bezeichnet) intiapcritoneal injiziert, und 4 Wochen spater wurde I ml des Diphtherie-Toxoids als zweite Dosis den gleichen Personen C und D subkutan mii/iert.I m to demonstrate the inventive effect, I mg of the i-RNA prepared as above was used as the first dose / white adults (as persons ( and D denotes) injected intiapcritoneally, and 4 Weeks later, 1 ml of the diphtheria toxoid was given as a second dose to the same subjects C and D subcutaneously mii / ied.
7 Tage nach der Injektion des Toxoids als zweite Dosis wurde von diesen Personen A. B. C und D Serum gesammelt und der Antikörperwert pro ml des Serums nach einer Standard-Antisenim-Titrimetrie bestimmt. Die Ergebnisse dieser Tests sind in der folgenden Tabelle zusammengestellt:7 days after injection of the toxoid as a second dose, these subjects received A. B. C and D serum collected and the antibody value per ml of the serum determined by a standard antisenim titrimetry. The results of these tests are summarized in the following table:
Die Arbeitsweisen des Beispiels 5 wurden unter Verwendung von 1 ml eines Toxoids des Tetanus-Bacillus (Titer: lOLf/ml) anstelle des Diphtherie-Toxoids wiederholt. Die Ergebnisse des Tests sind in der folgenden Tabelle wiedergegeben:The procedures of Example 5 were followed using 1 ml of a toxoid from Bacillus Tetanus (Titer: lOLf / ml) instead of the diphtheria toxoid repeated. The results of the test are given in the following table:
Aus den obigen Tabellen geht hervor, daß die Gruppe (Personen C, D. G und H). die die Injektion von i-RNS plus Toxoid erhielt, einen wesentlich höheren Antikörper-Wert lieferte als die Gruppe (Personen A. B. E undFrom the above tables it can be seen that the group (People C, D. G and H). the injection of i-RNA plus toxoid produced a significantly higher antibody value than the group (persons A. B. E and
Ί P),die die beiden Toxoid-Injektionen erhielt.Ί P) who received the two toxoid injections.
Die vorstehenden Tests machen ferner deutlich, daß die Injektion von i-RNS und die Injektion von Toxoid als Antigen nach dem erfiindungsgemäßen Verfahren den unerwarteten Effekt einer Verstärkung der i" Immunisierung erbringt, verglichen mit dem Pail, wenn nach dem Stand der Technik zwei Toxoid-Injektionen als Antigen erfolgen.The above tests also make it clear that the injection of i-RNA and the injection of Toxoid as an antigen according to the method according to the invention, the unexpected effect of enhancing the i "immunization yields compared to the pail if According to the prior art, two toxoid injections are carried out as antigen.
Dadurch ergibt sich der weitere Vorteil, daß die erfindungsgemäße Verwendung von i-RNS die zweimaThis results in the further advantage that the inventive use of i-RNS the two times
■ lige Injektion von Toxoid oder Vaecin (als Antigen) auf einmalige Injektion beschränkt, so daß das Risiko eines anaphylaktischcn Schocks, ausgelöst durch die zweite Injektion von Toxoid oder Vaecin. minimal bleibt. Die erfindungsgemäß verwendete i-RNS ist eine aus 4 Basen zusammengesetzte Verbindung, hat keine Antigenizität und ist praktisch nicht-toxisch, im Gegensatz zu den Toxoiden oder Vaccinen. die bisher zur Immunisierung verwendet wurden und zuweilen zu einem anaphylaktischcn Schock und zum Tode von Personen führten.■ long injection of toxoid or vaecin (as an antigen) a single injection is limited, so that the risk of anaphylactic shock caused by the second injection is limited Injection of toxoid or vaecin. remains minimal. The i-RNA used in the present invention is one of 4 bases compound compound, has no antigenicity and is practically non-toxic, unlike the Toxoids or vaccines. which were previously used for immunization and sometimes anaphylactic Shock and death.
a) 2.0 ml einer Influenzavirus haitigen Flüssigkeit ausa) 2.0 ml of an influenza virus-containing liquid
... der AIIantois-Höhle des inkubierten Hühnereis, dem das Influenzavirus eingeimpft worden war. wurden Kaninchen intravenös injiziert, und 4 Wochen später wurden weitere 2.0 ml der gleichen Influenzavirus-haltigen Flüssigkeit der AIIantois-Höhle des Hühnereis densel-... the AIIantois cave of the incubated chicken egg to which the Influenza virus had been vaccinated. Rabbits were injected intravenously, and were given 4 weeks later another 2.0 ml of the same fluids containing influenza virus from the allantoic cavity of the chicken egg
i. ben immunisierten Kaninchen injiziert. Eine Woche nach der zweiten Injektion des Influenzavirus wurden die Kaninchen geopfert und die Immunribonukleinsäure (i-RNS) aus der Milz der geopferten Kaninchen extrahiert.i. ben immunized rabbits. One week after the second injection of influenza virus, the rabbits were sacrificed and the immunoribonucleic acid was sacrificed (i-RNA) extracted from the spleen of sacrificed rabbits.
i.. b) 2.0 ml eines Antigens (die 2.0 ml der gleichen Influenzavirus-haltigen Flüssigkeit aus der AIIantois-Höhle des Hühnereis, wie oben erwähnt, mit einem weiteren Gehalt einer Menge eines Öl-Adjuvans waren) wurden als erste Dosis einem Meerschweincheni .. b) 2.0 ml of an antigen (the 2.0 ml of the same Influenza virus-containing fluid from the AIIantois cavity of the chicken egg, as mentioned above, with a additional content of an amount of an oil adjuvant) were given as the first dose to a guinea pig
ι-, subkutan injiziert, und 4 Wochen später wurde ein weiterer ml des Antigens wie zuvor als zweite Dosis demselben Meerschweinchen subkutan injiziert. 2 Wochen nach der zweiten Antigendosis wurde das Serum des so behandelten Meerschweinchens gesam-ι-, injected subcutaneously, and 4 weeks later a another ml of the antigen as before is injected subcutaneously into the same guinea pig as a second dose. 2 Weeks after the second dose of antigen, the serum of the guinea pig treated in this way was
■■'· melt und der Antikörperwert pro mi Serum wurde nach einer Standard-Hämagglutinationsmethode bestimmt (Test Nr. 1). Dieser Test wurde mit einem weiteren Meerschweinchen wiederholt (Test Nr. 2).■■ '· melted and the antibody value per ml of serum was after determined using a standard hemagglutination method (Test No. 1). This test was repeated with another guinea pig (Test No. 2).
Ferner wurde 1 mg der wie oben erhaltenen i-RNSFurther, 1 mg of the i-RNA obtained as above
is einem Meerschweinchen als erste Dosis subkutan injiziert, und 4 Wochen später wurde 1.0 ml des vorerwähnten Antigens (der Influenzavirus-haltigen Flüssigkeit der AIIantois-Höhle des Hühnereis plus Öl-Adjuvans) als zweite Dosis demselben Meerschwein-is given subcutaneously as the first dose to a guinea pig injected, and 4 weeks later 1.0 ml of the the aforementioned antigen (the influenza virus-containing fluid of the Allantois cavity of the chicken egg plus Oil adjuvant) as a second dose of the same guinea pig
-'< chen injiziert. 2 Wochen nach der zweiten Dosis (der Injektion der Influenzavirus-haltigen Flüssigkeit) wurde das Serum des so behandelten Meerschweinchen gesammelt und der Antikörperwert pro ml Serum nach der gleichen Standard-Hämagglutinationsmethode wie - '< chen injected. 2 weeks after the second dose (the injection of the influenza virus-containing liquid), the serum of the thus treated guinea pig was collected and the antibody value per ml of serum by the same standard hemagglutination method as
-5 oben bestimmt (Test Nr. 3). Dieser Test wurde mit einem weiteren Meerschweinchen wiederholt (Test Nr. 4). Die Ergebnisse dieser Tests sind in der folgenden Tabelle zusammengefaßt:-5 determined above (Test No. 3). This test was made with repeated with another guinea pig (Test No. 4). The results of these tests are as follows Table summarized:
labeilelabile
Dosisdose
\nliknr|KT
Wen ι)-/ml)\ nliknr | KT
Wen ι) - / ml)
;ι) ein I ormalin-Vak/'ti eines palhogenen Virus, des japanischen l'ncephalitis-Virus, wurde Meersehwein eh en jeweils in einer Dosierung von (V> ml dreimal mit einem Abstand von 1 Woche /wischen den Virus Dosen iiuraperitoneal iiiii/ic-rt \:.\nc Worin* n:ii-h ili-r |ptsii_<n Virusdosis wurden die Meerschweinchen geopfert und die gebildete i-RNS aus der Mil/ der geopferten Meerschweinehen extrahiert.; ι) a I ormalin-Vak / 'ti of a palhogenic virus, the Japanese l'ncephalitis virus, guinea pig was eh en each in a dose of (V> ml three times with an interval of 1 week / between the virus doses iiuraperitoneal iiiii / ic-rt \ :. \ nc Where * n: ii-h ili-r | ptsii_ <n dose of virus, the guinea pigs were sacrificed and the i-RNA that was formed was extracted from the milk / of the sacrificed guinea pigs.
b) 0.5 ml eines Antigens (des vorgenannten Vak/ins des japanischen F"ncephalilis-V:rus) wurde einem Kaninchen als erste Dosis subkutan injiziert, und 4 Wochen später wurden weitere 0.2 ml des gleichen Antigens (des Virus-Vak/ins) als /weite Dosis dem Kaninchen inii/ier·.. Fine Woche nach der /weiten Antigeiuiosis wurde das Scrum ties so behandeltenb) 0.5 ml of an antigen (the aforementioned vacc / ins of the Japanese F "ncephalilis-V : rus) was injected subcutaneously into a rabbit as the first dose, and 4 weeks later another 0.2 ml of the same antigen (the virus vaccine) was injected subcutaneously. as / wide dose to the rabbit in iii / ier · .. One week after the / wide antigeiuiosis, the scrum ties were treated in this way
Antigen (Virus). 1,0 ml I/MOAntigen (virus). 1.0 ml I / MO
Xnli.L'en (Virus), 1,0 ml 1/320Xnli.L'en (virus), 1.0 ml 1/320
Antigen (Virus). 1.0 ml 1/320Antigen (virus). 1.0 ml 1/320
\nliyen (\ ims). 1.0 ml 1/320\ nliyen (\ ims). 1.0 ml 1/320
Kaninchens gesammelt und der Antikörperwert pro ml Serum nach einer Standard-Komplementfmerungsme (hotle bestimmt (Tesi Nr. 1). Dieser Test wurde mit , einem weiteren Kaninchen wiederholt (Test Nr. 2).Rabbit collected and the antibody level per ml of serum according to a standard complement measurement (Hotle determined (Tesi No. 1). This test was repeated with another rabbit (Test No. 2).
I erncr wurde 1 mg der wie oben erhaltenen i RNS einem Kaninchen als erste Dosis subkutan injiziert, und 4 VVoi-hi'n cnäli'r wnrrlrn 0 ? ml ili>v u'<rg'.'MHP!1!*.'!< Antigens (des Virus-Vak/ins) als /weite Dosis dem " Kaninchen injiziert. Eine Woche nach tier /weilen Dosis (tier Injektion des Virus-Vak/ins) wurde das Serum aus dem so behandelten Kaninchen gesammelt und der Antikörperwert pro ml Serum nach der gleichen Slandard-Komplcmentfixierungsmethode wie oben be-. stimmt (Test Nr. 3). Dieser Test wurde mit einem weiteren Kaninchen wiederholt (Test Nr. 4). Die Ergebnisse dieser Tests sind in der folgenden Tabelle zusammengefaßt:I erncr became 1 mg of the RNA obtained as above injected subcutaneously into a rabbit as the first dose, and 4 VVoi-hi'n cnäli'r wnrrlrn 0? ml ili> v u '<rg'. 'MHP! 1! *.'! < Antigen (of the virus vaccine) is injected into the rabbit as a large dose. One week after the animal dose (animal injection of the virus vac / ins) was the serum from the rabbit treated in this way was collected and the antibody value per ml of serum according to the same Use the Slandard complement fixation method as above. correct (test no.3). This test was repeated with another rabbit (Test No. 4). the Results of these tests are summarized in the following table:
a) Ein paihogenes Bakterium. Klebsieila pneumoniae. wurde 20 Tage inkubiert und dann durch Behandeln mit l"/oigem wäßrigem Formalin plus 0.02°/nigem wäßrigem Chromalaun 5 Tage eeschwächi. Die Zellen des so geschwächten Bakteriums wurden gesammelt und Kaninchen viermal mit jeweils in einem Abstand von 1 Woche zwischen den Einzeldosen intravenös injiziert. Sieben Tage nach der letzten Dosis der Bakterienzellen wurden die Kaninchen geopfen und die gebildete i-RNS aus der Milz der geopferten Kaninchen extrahiert.a) A paihogenic bacterium. Klebsieila pneumoniae. was incubated for 20 days and then treated with 1% aqueous formalin plus 0.02% aqueous Chrome alum 5 days weak. The cells of the bacterium so weakened were collected and Rabbits are injected intravenously four times with an interval of 1 week between single doses. Seven days after the last dose of the bacterial cells, the rabbits were inoculated and the i-RNA formed extracted from the spleen of sacrificed rabbits.
b) 30 mg eines Antigens (Zellen der geschwächten Klebsiella pneumoniae) wurden als erste Dosis einem Meerschweinchen subkutan injiziert, und drei Wochen später wurden weitere 15 mg des gleichen Antigens als zweite Dosis demselben Meerschweinchen subkutan injiziert. Zwei Wochen nach der zweiten Dosis des Antigens wurde das Serum aus dem so behandeltenb) 30 mg of an antigen (cells of the weakened Klebsiella pneumoniae) were used as the first dose Guinea pigs were injected subcutaneously, and three weeks later were given an additional 15 mg of the same antigen as second dose injected subcutaneously into the same guinea pig. Two weeks after the second dose of the The antigen was the serum from the treated in this way
Meerschweinchen gewonnen und der Antikörper* ..rt pro ml Serum nach einer Standarcl-Hämagglutinationsmethode bestimm! (Test Nr. I). Dieser Test wurde mit einem weiteren Meerschweinchen wiederholt (Test Nr. 2).Guinea pigs obtained and the antibody * ..rt per ml of serum using a standard hemagglutination method certain! (Test No. I). This test was repeated with another guinea pig (test No. 2).
Ferner wurde 1 mg der wie oben erhaltenen i-RNS als erste Dosis einem Meerschweinchen subkutan injiziert. und drei Wochen später wurden 15 mg des vorgenannten Antigens (der Bakterien/eilen) als zweite Dosis demselben Meerschweinchen injiziert. Zwei Wochen nach der zweiten Dosis (der Injektion der Bakterienzellen) wurde das Serum aus dem so behandelten Meerschweinchen gewonnen und der Antikörperwert pro ml Serum nach der gleichen Standard-Hämagglutinationsmethode wie oben bestimmt (Test Nr. 3). Dieser Test wurde mit einem weiteren Meerschweinchen wiederholt (Test Nr. 4). Die Ergebnisse dieser Tests sind in der folgenden Tabelle zusammengefaßt:Further, 1 mg of the i-RNA obtained as above was used as first dose injected subcutaneously into a guinea pig. and three weeks later became 15 mg of the foregoing Antigen (of the bacteria / rush) is injected as a second dose into the same guinea pig. Two weeks after the second dose (the injection of the bacterial cells) the serum from the so treated Guinea pigs obtained and the antibody level per ml of serum by the same standard hemagglutination method as determined above (Test No. 3). This test was carried out on another guinea pig repeated (Test No. 4). The results of these tests are summarized in the following table:
Tc-!Tc-!
Nr.No.
I.DosisI. Dose
2. Dosis2nd dose
Antikörper-Wert (E/ml)Antibody value (U / ml)
! Antigen (Bakterienzeüeri)! Antigen
30 mg30 mg
2 Antigen (Bakterienzellen)2 antigen (bacterial cells)
30 me30 me
Antigen (Baktericnzeiieni i/800Antigen (bacterial indicators i / 800
mgmg
Antigen (Bakterienzellen) 1/400Antigen (bacterial cells) 1/400
mgmg
IlIl
1212th
ΊΊμ.'1/UIIL!ΊΊμ.'1 / UIIL!
h-.l Sih-.l Si
Dom.Dom.
SnlikMiivi-W .rl Il /ml·SnlikMiivi-W .rl Il / ml
i-KNS. I ηιμ -1 i-KNS. i mi;i-KNS. I ηιμ -1 i-KNS. i mi;
Aiiimcn ( Haktcr icti/cllon > 1/S(IdAiiimcn (Haktcr icti / cllon> 1 / S (Id
I .^ mi!I. ^ Mi!
Anliuen (Uiiklcricn/cllcnl 1/Id(I(IAnliuen (Uiiklcricn / cllcnl 1 / Id (I (I.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP44008533A JPS4934804B1 (en) | 1969-02-05 | 1969-02-05 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2004869A1 DE2004869A1 (en) | 1970-12-03 |
DE2004869C2 true DE2004869C2 (en) | 1982-04-22 |
Family
ID=11695770
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2004869A Expired DE2004869C2 (en) | 1969-02-05 | 1970-02-03 | Use of an i-RNA obtained in the usual way for antibody formation |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS4934804B1 (en) |
DE (1) | DE2004869C2 (en) |
FR (1) | FR2051489B1 (en) |
GB (1) | GB1239354A (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101843902B (en) * | 2010-05-21 | 2012-03-07 | 成都军区疾病预防控制中心军事医学研究所 | Method for preparing polyvalent antiserum for resisting venin of common terrestrial viperidae venomous snakes in China and application thereof |
-
1969
- 1969-02-05 JP JP44008533A patent/JPS4934804B1/ja active Pending
-
1970
- 1970-01-29 GB GB1239354D patent/GB1239354A/en not_active Expired
- 1970-02-03 DE DE2004869A patent/DE2004869C2/en not_active Expired
- 1970-02-04 FR FR707003837A patent/FR2051489B1/fr not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB1239354A (en) | 1971-07-14 |
FR2051489B1 (en) | 1974-07-12 |
DE2004869A1 (en) | 1970-12-03 |
JPS4934804B1 (en) | 1974-09-18 |
FR2051489A1 (en) | 1971-04-09 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE69615362T3 (en) | VACCINE WITH A POLYSACCHARIDANT BEARING PROTEIN CONJUGATE AND A CARRIER PROTEIN | |
AT408615B (en) | NEW INFLUENCE VIRUS VACCINE COMPOSITION | |
DE2049515C3 (en) | Vinishepatitis vaccine and process for its preparation | |
EP0413188B1 (en) | Method for producung an unmodified intravenous IgM- and/or IgA-containing immunoglobulin preparation | |
DE3911442A1 (en) | Vaccine preparation | |
DE2725204A1 (en) | IMMUNITY-STIMULATING DRUG AND METHOD FOR MANUFACTURING IT | |
DE3882781T2 (en) | Pasteurella vaccine. | |
DE2301501A1 (en) | PROCESS FOR OBTAINING A STABLE PLASMA PROTEIN, FREE OF HYPOTENSIVE SUBSTANCES | |
EP0085747B2 (en) | Intravenously administrable human immunoglobuline and process for its preparation | |
DE2004869C2 (en) | Use of an i-RNA obtained in the usual way for antibody formation | |
DE2655691C2 (en) | Temperature-sensitive, reproductive, non-pathogenic varicella zoster viruses, processes for their production and live vaccines containing these viruses | |
DE3152621C2 (en) | ||
DE2323847C3 (en) | Live vaccine for the immunization of cattle against parainfluenza 3 virus infection | |
DE2538994A1 (en) | BACTERIAL VACCINE AND METHOD FOR MANUFACTURING IT | |
DE2823750B2 (en) | Process for obtaining at least one hydrolysis product of an endotoxin from Bordetella pertussis | |
DE2445819A1 (en) | PROCESS FOR PRODUCING STABLE, SERUM INHIBITOR RESISTANT H DEEP 3 N DEEP 2 INFLUENZA AVIRUS STRAINS AND VACCINES CONTAINING THESE VIRUS STRAINS | |
Sabin | Studies on the B virus. II: Properties of the virus and pathogenesis of the experimental disease in rabbits | |
DE3122669A1 (en) | "METHOD FOR PRODUCING NEW MUTANTS OF HERPES SIMPLEX VIRUS TYPE 1 AND TYPE 2" | |
DE2749961C2 (en) | ||
DE1792256C3 (en) | Orally administered, polyvalent vaccines against local intestinal infections | |
DE1492243C3 (en) | Injectable vaccines | |
DE1902590C2 (en) | Use of an immunoribonucleic acid (IRNS) to immunize live animals | |
DE2440927A1 (en) | METHOD FOR MANUFACTURING ACTIVATED HB AG VACCINES | |
DE2225548C3 (en) | Intravenously tolerated vaccine against distemper and hepatite contagiosa canis | |
DE940315C (en) | Process for the production of lymph against swine fever |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
D2 | Grant after examination | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |