DE19856391A1 - Method for the non-radioactive detection of membrane-bound nucleic acids and test kit - Google Patents
Method for the non-radioactive detection of membrane-bound nucleic acids and test kitInfo
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
Abstract
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft ein neues Verfahren zur nicht-radioaktiven Detektion von Membran-gebundenen Nukleinsäuren, worunter Nukleinsäuren, die z. B. "Single Nucleotide Polymorphisms" (SNP's) enthalten, DNA-Arrays (Cosmide, Yeast artificial chromosomes [YACs], Bacterial artificial chromosomes [BACs], cDNAs, PCR-Fragmente, Oligonukleotide), RNA-Arrays und jedwede Nukleinsäurefragmente, die aus Gelen (Agarose oder PAA) auf Membranen übertragen wurden, darunter genomische DNA-/ Plasmid-DNA-Fragmente (Southern) und mRNAs (Northern), zu verstehen sind, sowie einen Testkit zur Durchführung des Verfahrens.The present invention relates to a new method for non-radioactive detection of membrane-bound Nucleic acids, including nucleic acids, e.g. B. "Single Nucleotide Polymorphisms "(SNP's) contain DNA arrays (Cosmide, Yeast artificial chromosomes [YACs], Bacterial artificial chromosomes [BACs], cDNAs, PCR fragments, Oligonucleotides), RNA arrays and any Nucleic acid fragments made up of gels (agarose or PAA) Membranes have been transferred, including genomic DNA / Plasmid DNA fragments (Southern) and mRNAs (Northern), too are understood, as well as a test kit for performing the Procedure.
Arrays sind in einem definierten Maß vorzugsweise auf einer Membran gerastert angeordnete Proben einzelner Nukleinsäuren.To a defined extent, arrays are preferably on one Membrane arranged samples of individual nucleic acids.
Die Identifizierung von Austauschen einzelner Basen innerhalb der DNA (SNP's) ist für die Erforschung der Ursachen komplexer Erkrankungen, z. B. von Bluthochdruck sowie für diagnostische Zwecke von großer Bedeutung (Lander, E.S. (1996): Science 274, 536-539, Collins, F.S. et al. (1997) Science 278, 1580-1581, Marshall, E. (1997): Science 277, 1752-1753). Durch Sequenzierung der interessierenden Bereiche können diese Austausche erkannt werden.Identification of exchanges of individual bases within The DNA (SNP's) is for research into the causes complex diseases, e.g. B. of high blood pressure as well as for diagnostic purposes of great importance (Lander, E.S. (1996): Science 274, 536-539, Collins, F.S. et al. (1997) Science 278, 1580-1581, Marshall, E. (1997): Science 277, 1752-1753). By sequencing the areas of interest these exchanges can be recognized.
Herkömmlicherweise wird die Sequenz durch das enzymatische Kettenabbruchverfahren bestimmt, in dem die Sequenzierungs produkte durch den Einbau von radioaktiven oder nicht radioaktiv markierten Nukleotiden markiert werden. Im Anschluß an die Sequenzierung und die gelelektrophoretische Auftrennung kann die Sequenz durch die Auswertung der Sequenzgele ermittelt werden. Die direkte Markierung der Sequenzierungsprodukte hat jedoch den Nachteil, daß nur ein einziges DNA-Fragment pro Sequenzierungsansatz bearbeitet werden kann.Conventionally, the sequence is enzymatic Chain termination method determined in which the sequencing products by incorporating radioactive or not radioactively labeled nucleotides are labeled. in the Connection to sequencing and gel electrophoretic The sequence can be separated by evaluating the Sequence gels are determined. The direct marking of the However, sequencing products have the disadvantage that only one processed only DNA fragment per sequencing approach can be.
Die Multiplex-Technik (siehe EP-A 0 303 459) überkommt diesen Nachteil durch die simultane Sequenzierung mehrerer DNA-Moleküle. Die entstandenen Gemische von Sequenzierungs produkten werden gelelektrophoretisch aufgetrennt, auf eine Nylonmembran übertragen und dort fixiert. Durch Hybridisierung dieser Membran mit jeweils für ein einziges DNA-Fragment spezifischen Sonde können sukzessive auf der gleichen Membran die Sequenzen mehrerer DNA-Fragmente gelesen werden. Ein großer Nachteil dieser Methode besteht jedoch darin, daß die Detektion der unterschiedlichen DNA-Fragmente durch die Verwendung von radioaktiv markierten Sonden geschieht. Eine Automatisierung des gesamten Prozesses zur weiteren Steigerung des Durchsatzes ist deshalb nicht durchführbar.The multiplex technique (see EP-A 0 303 459) overcomes this Disadvantage due to the simultaneous sequencing of several DNA molecules. The resulting mixtures of sequencing products are separated by gel electrophoresis, onto a Transfer nylon membrane and fixed there. By Hybridization of this membrane with one for each DNA fragment specific probe can be successively on the same membrane read the sequences of several DNA fragments become. However, there is a major disadvantage of this method in that the detection of different DNA fragments through the use of radiolabelled probes happens. Automation of the entire process for further increase in throughput is therefore not feasible.
Weiterhin bekannt ist ein nicht-radioaktives Detektionsverfahren, das von Richterich und Church (Richterich, p., Church, G.M. (1993) Methods Enzymol. 218: 187-222) beschrieben wurde, jedoch die Nachteile besitzt, nicht für sukzessive Hybridisierungen geeignet zu sein und die Hybridisierungen herkömmlicherweise nicht ausschließlich bei Raumtemperatur durchgeführt werden.A non-radioactive is also known Detection method by Richterich and Church (Richterich, p., Church, G.M. (1993) Methods Enzymol. 218: 187-222), but has the disadvantages not to be suitable for successive hybridizations and the hybridizations are traditionally not exclusive be carried out at room temperature.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es deshalb, ein einfach durchzuführendes nicht-radioaktives Verfahren zu etablieren, daß zum einen die Sensitivität von radioaktiven Verfahren beibehält oder gar verbessert und zum anderen eine sofortige, direkte sukzessive Detektion ermöglicht.The object of the present invention is therefore a easy to perform non-radioactive process establish that, on the one hand, the sensitivity of radioactive Maintains process or even improves it and on the other one enables immediate, direct, successive detection.
Die Erfindung wird gemäß den Ansprüchen realisiert. Überraschend kann diese Aufgabe durch ein Verfahren gelöst werden, das in allen Schritten bei Raumtemperatur stattfinden kann. Das erfindungsgemäße Verfahren ist zur nicht- radioaktiven Detektion von Membran-gebundenen Nukleinsäuren (NA) geeignet, in dem man eine nach an sich bekannten Verfahren erhaltene NA, gebunden an eine Membran, mit einem speziellen Hybridisierungspuffer hybridisiert, der Tris-HCl, Tris-Base, NaCl, Triton X-100, SDS und Block Reagenz enthält, und anschließend die gebundenen NA detektiert. Nicht zum Umfang der Erfindung gehört die Detektion von Sequenzierungsprodukten nach dem Multiplex-Verfahren nach EP 303 459 (G. Church).The invention is implemented according to the claims. Surprisingly, this problem can be solved by a method in all steps at room temperature can. The method according to the invention is for non- radioactive detection of membrane-bound nucleic acids (NA) suitable, in which one known per se Process obtained NA bound to a membrane with a special hybridization buffer, the Tris-HCl, Contains Tris-Base, NaCl, Triton X-100, SDS and Block Reagent and then the bound NA was detected. Not to The scope of the invention includes the detection of Multiplex sequencing products EP 303 459 (G. Church).
Vorzugsweise wird Membran-gebundene DNA detektiert.Preferably membrane-bound DNA is detected.
Das Verfahren ist bevorzugt durch die folgenden Schritte
gekennzeichnet:
The method is preferably characterized by the following steps:
- 1. Vorhybridisierung einer nach an sich bekannten Verfahren erhaltenen DNA enthaltenden Membran vorzugsweise in einer Schale, mit einem speziellen Hybridisierungspuffer,1. Pre-hybridization of a method known per se obtained DNA-containing membrane preferably in a Dish, with a special hybridization buffer,
- 2. Hybridisierung der Membran mit einer 5'-biotinylierten Sonde in dem gleichen Puffer,2. Hybridization of the membrane with a 5'-biotinylated Probe in the same buffer,
- 3. mehrmaliges Waschen der Membran mit Puffer I, der PBS (Na2HPO4, NaH2PO4, NaCl, pH ca. 7,3), SDS und Block Reagenz enthält,3. washing the membrane several times with buffer I which contains PBS (Na 2 HPO 4 , NaH 2 PO 4 , NaCl, pH approx. 7.3), SDS and block reagent,
- 4. Inkubation der Membran mit Streptavidin-Alkalische- Phosphatase-Konjugat in Puffer I,4. Incubation of the membrane with streptavidin-alkaline Phosphatase conjugate in buffer I,
- 5. einmaliges Waschen der Membran mit Puffer I, danach mehrmaliges Waschen mit Puffer II, der PBS und SDS enthält, sowie mehrmaliges Äquilibrieren bei pH 9,75 mit Puffer III, der Tris-HCl und Diethanolamin enthält,5. washing the membrane once with buffer I, then repeated washing with buffer II, the PBS and SDS contains, as well as repeated equilibration at pH 9.75 Buffer III, which contains Tris-HCl and diethanolamine,
- 6. nach der Äquilibrierung Überführung der Membran in eine Substratlösung, die sich aus CDP-Star (Tropix) und Puffer III zusammensetzt, und ggf. mehrmaliges Aufnehmen und Ablegen der Membran zwecks gleichmäßiger Verteilung der Substratlösung,6. after equilibration transfer the membrane into a Substrate solution consisting of CDP-Star (Tropix) and buffer III composed, and possibly multiple recordings and Placing the membrane in order to distribute it evenly Substrate solution,
- 7. nach kurzem Abtropfen Fixierung der Membran, z. B. auf einem Stück Plastik, und Abdeckung, bevorzugt mit einer Klarsichtfolie,7. after a short drip fixation of the membrane, eg. B. on a piece of plastic, and cover, preferably with one Transparent film,
- 8. exponieren, bevorzugt mit einem Röntgenfilm oder einer CCD-Kamera, 8. Expose, preferably with an X-ray film or one CCD camera,
- 9. nach Exposition, Rückführung der Membran und mehrmaliges Strippen mit vorgewärmtem Puffer IV, der EDTA und SDS enthält,9. after exposure, return of the membrane and repeated Stripping with preheated buffer IV, EDTA and SDS contains
- 10. einmaliges Waschen mit Puffer V, der Tris-HCl und NaCl enthält.10. Wash once with buffer V, the Tris-HCl and NaCl contains.
Die Auswertung erfolgt nach an sich üblichen Methoden, wie z. B. dem Prinzip der "skilled pattern analysis".The evaluation is carried out according to conventional methods such as e.g. B. the principle of "skilled pattern analysis".
Der wichtigste Schritt im o.g. Verfahren ist die Hybridisierung mit einem speziellen Hybridisierungspuffer, wodurch mehrfach aufeinanderfolgende Hybridisierungen möglich werden und eine Sensitivität erreicht wird, die der radioaktiven Detektion gleicht bzw. teilweise verbessert ist. Damit stellt das erfindungsgemäße Verfahren zur nicht radioaktiven Detektion von Nukleinsäuren, die z. B. "Single Nucleotide Polymorphisms" (SNP's) enthalten, einen großen Fortschritt dar. Darüber hinaus kann der gesundheitsschädigende Einsatz von Radioaktivität vermieden werden. Außerdem konnten durch Zusammenfassung ansonsten zeitaufwendiger Zwischenschritte sowie durch Optimierung der Zusammensetzungen der Lösungen und der notwendigen Waschparameter gleichbleibende Ergebnisse erreicht werden, wodurch die Basis für die zukünftige Entwicklung eines automatisierten Detektionsautomaten geschaffen werden konnte.The most important step in the above The procedure is Hybridization with a special hybridization buffer, which enables multiple successive hybridizations and a sensitivity is achieved that the radioactive detection is equal or partially improved. The method according to the invention therefore does not radioactive detection of nucleic acids, e.g. B. "Single Nucleotide Polymorphisms "(SNP's) contain a large one Progress. In addition, the Avoid harmful use of radioactivity become. Furthermore, by summary, otherwise time-consuming intermediate steps and by optimizing the Compositions of the solutions and the necessary ones Washing parameters consistent results can be achieved creating the basis for the future development of a automated detection machines could be created.
Der erfindungsgemäße Testkit zur nicht-radioaktiven Detektion von Nukleinsäuren, die z. B. "Single Nucleotide Polymorphisms" (SNP's) enthalten, enthält die folgenden Lösungen:The test kit according to the invention for non-radioactive detection of nucleic acids, e.g. B. "Single Nucleotide Polymorphisms" (SNP's) contains the following solutions:
500 ml 10×TNT
1250 ml 20% SDS
10 g Block Reagenz (Boehringer Mannheim, DIG-Kit)
3250 ml H2 500 ml 10 x TNT
1250 ml 20% SDS
10 g block reagent (Boehringer Mannheim, DIG-Kit)
3250 ml H 2
O (bidest)O (bidest)
516.2 g Na2 516.2 g Na 2
HPO4
HPO 4
132.6 g NaH2 132.6 g NaH 2
PO4
PO 4
198.7 g NaCl
H2 198.7 g NaCl
H 2
O ad 5 l pH: ca. 7.3O ad 5 l pH: approx.7.3
10 g Block Reagenz
250 ml 10×PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H2 10 g block of reagent
250 ml 10x PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H 2
O (bidest), in der Microwelle 8 min erhitzen, rühren bis Block Reagenz gelöst istO (bidest), heat in the microwave for 8 min, stir until block reagent is dissolved
250 ml 10×PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H2 250 ml 10x PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H 2
O (bidest)O (bidest)
64.4 g TrisHCl
1770 ml H2 64.4 g TrisHCl
1770 ml H 2
O (bidest)
210.4 g Diethanolamin pH: 9.75 (einstellen!)O (bidest)
210.4 g diethanolamine pH: 9.75 (adjust!)
4700 ml H2 4700 ml H 2
O (bidest)
50 ml 0.5 M EDTA, pH 8.0
250 ml 20% SDSO (bidest)
50 ml 0.5 M EDTA, pH 8.0
250 ml 20% SDS
920 ml H2 920 ml H 2
O (bidest)
30 ml 5 M NaCl
50 ml 1 M TrisCl, pH 8.0O (bidest)
30 ml 5 M NaCl
50 ml 1 M TrisCl, pH 8.0
44.4 g TrisHCl
25.6 g TrisBase
73 g NaCl
818 ml H2 44.4 g TrisHCl
25.6 g TrisBase
73 g NaCl
818 ml H 2
O (bidest)
100 ml TritonX-100 pH: ca. 8.0 O (bidest)
100 ml TritonX-100 pH: approx.8.0
Alle Schritte werden bei Raumtemperatur durchgeführt.All steps are carried out at room temperature.
- 1. Membran mit der DNA-Seite nach oben in einer Schale mit 180 ml Hybridisierungspuffer (28 mM Tris-HCl/21 mM Tris-Base/125 mM NaCl/1% Triton X-100/5% SDS/0.2% Block Reagenz) für 1 h vorhybridisieren. Rocky: 12°/0.51. Membrane with the DNA side up in a bowl 180 ml hybridization buffer (28 mM Tris-HCl / 21 mM Tris base / 125 mM NaCl / 1% Triton X-100/5% SDS / 0.2% block Prehybridize for 1 h. Rocky: 12 ° / 0.5
- 2. Vorhybridisierungslösung verwerfen. 5'-biotinylierte Sonde für 5 min. bei max. Umdrehung zentrifugieren und sofort in einer Endkonzentration von 10 pmol/ml zu 100 ml Hybridisierungspuffer geben (200 µM/5 µl). Membran für 1 h hybridisieren. Rocky: 12°/0.52. Discard the pre-hybridization solution. 5'-biotinylated Probe for 5 min. at max. Centrifuge and spin immediately at a final concentration of 10 pmol / ml to 100 ml Give hybridization buffer (200 µM / 5 µl). Membrane for 1 h hybridize. Rocky: 12 ° / 0.5
- 3. Hybridisierungslösung vollständig entfernen. Membran 5×5 min mit 120 ml Puffer I (29 mM Na2HPO4/8 mM NaH2PO4/34 mM NaCl/0.5% SDS, 0.2% Block Reagenz) waschen. Waschlösung immer vollständig entfernen. Darauf achten, daß sich keine großen Luftblasen unterhalb der Membran befinden. Rocky: 12°/10 zum Einfüllen der Lösung, danach langsam auf 12°/6 zum Waschen runterregulieren.3. Remove the hybridization solution completely. Diaphragm 5 x 5 min with 120 ml of buffer I (29 mM Na 2 HPO 4/8 mM NaH 2 PO 4 / 34mM NaCl / 0.5% SDS, 0.2% block reagent) wash. Always remove the washing solution completely. Make sure that there are no large air bubbles below the membrane. Rocky: 12 ° / 10 for filling the solution, then slowly regulate down to 12 ° / 6 for washing.
- 4. Waschlösung vollständig entfernen. Membran 10 min mit 4 µl Streptavidin-Alkalische-Phosphatase-Konjugat (vor Zugabe 5 min bei max. Umdrehung zentrifugieren, Boehringer Ingelheim) in 100 ml Puffer I inkubieren. Rocky: 12°/0.5.4. Remove the washing solution completely. Membrane 10 min with 4 µl streptavidin-alkaline phosphatase conjugate (before addition 5 min at max. Centrifuge revolution, Boehringer Incubate in 100 ml buffer I. Rocky: 12 ° / 0.5.
- 5. SvAP-Lösung vollständig entfernen. Membran 1×5 min mit 120 ml Puffer I und danach 6×5 min mit 120 ml Puffer II (29 mM Na2HPO4/8 mM NaH2PO4/34 mM NaCl/0.5% SDS) waschen. Anschließend die Membran 4×5 min mit 120 ml Puffer III (20 mM Tris-HCl/100 mM Diethanolamin/ pH: 9.751) äquilibrieren. Rocky: 12°/10 zum Einfüllen der Lösung, danach langsam auf 12°/6 zum Waschen/Äquilibrieren runterregulieren.5. Remove SvAP solution completely. Membrane 1 x 5 min with 120 ml of buffer I, and then 6 x 5 (/ 29 mM Na 2 HPO 4/8 mM NaH 2 PO 4 34 mM NaCl / 0.5% SDS) wash min with 120 ml of buffer II. Then equilibrate the membrane 4 × 5 min with 120 ml buffer III (20 mM Tris-HCl / 100 mM diethanolamine / pH: 9,751). Rocky: 12 ° / 10 for filling the solution, then slowly regulate down to 12 ° / 6 for washing / equilibrating.
- 6. In der Zwischenzeit, 50 µl CDP-Star (Tropix) zu 10 ml Puffer III (1 : 200) geben und gut mischen. Anschließend die Substratlösung in die Mitte der "CDP-Star only"-Schale geben.6. In the meantime, 50 µl CDP-Star (Tropix) to 10 ml Add buffer III (1: 200) and mix well. Then the Substrate solution in the middle of the "CDP-Star only" bowl give.
- 7. Membran nach dem letzten Äquilibrierungsschritt aus der Schale nehmen und kurz abtropfen lassen. Danach wird die Membran mit der DNA-Seite nach unten auf der Substratlösung plaziert. Durch mehrmaliges Aufnehmen und Ablegen der Membran wird sichergestellt, daß sich die Substratlösung gleichmäßig unter der Membran verteilt.7. Membrane after the last equilibration step from the Take the bowl and let it drain briefly. After that the Membrane with the DNA side down on the substrate solution placed. By repeatedly picking up and dropping the Membrane ensures that the substrate solution evenly distributed under the membrane.
- 8. Membran kurz abtropfen lassen und danach auf einem Stück Plastik fixieren und mit Klarsichtfolie abdecken. 30 min. liegen lassen.8. Let the membrane drain briefly and then in one piece Fix plastic and cover with cling film. 30 min. let it lie.
- 9. Röntgenfilm auflegen und für 30 min exponieren. Eventuell kürzere oder längere (maximal 2 h) Expositionen durchführen.9. Place X-ray film and expose for 30 min. Perhaps Carry out shorter or longer (maximum 2 h) exposures.
- 10. Nach erfolgreicher Exposition die Membran wieder in die Schale überführen und mit 120 ml vorgewärmtem Puffer IV (5 mM EDTA/1% SDS, 85°C) 6×5 min strippen. Rocky: 12°/10 zum Einfüllen der Lösung, danach langsam auf 12°/4 zum Strippen runterregulieren.10. After successful exposure, the membrane back into the Transfer the dish and wash with 120 ml preheated buffer IV (5th mM EDTA / 1% SDS, 85 ° C) strip 6 × 5 min. Rocky: 12 ° / 10 to fill the solution, then slowly to 12 ° / 4 to Regulate stripping down.
- 11. Membran 1× mit 120 ml Puffer V (50 mM Tris-HCl/150 mM NaCl) waschen und wieder bei Schritt 1 beginnen. Soll die Membran nicht sofort rehybridisiert werden so kann sie entweder in Puffer IV oder zwischen Klarsichtfolie zwischengelagert werden.11. Membrane 1x with 120 ml buffer V (50 mM Tris-HCl / 150 mM Wash NaCl) and start again from step 1. Should the Membrane cannot be rehybridized immediately so it can either in buffer IV or between cling film be temporarily stored.
Claims (11)
- a) mit einem speziellen Hybridisierungspuffer vorinkubiert
- b) mit einer markierten Sonde in dem gleichen Puffer hybridisiert,
- c) mehrmals mit einem Puffer I wäscht,
- d) mit Streptavidin-Alkalische-Phosphatase-Konjugat in Puffer I inkubiert,
- e) einmal mit dem Puffer I, danach mehrmals mit einem Puffer II wäscht, sowie mehrmals mit dem Puffer III äquilibriert,
- f) nach der Äquilibrierung die Membran nimmt und in eine Substratlösung, die sich aus CDP-Star (Tropix) und Puffer III zusammensetzt, überführt,
- g) anschließend nach kurzem Abtropfen die Membran fixiert, abdeckt und
- h) exponiert,
- i) nach Exposition, die Membran nimmt und mehrmals mit einem vorgewärmten Puffer IV strippt, danach einmal mit einem Puffer V wäscht und nach an sich bekannten Techniken auswertet.
- a) pre-incubated with a special hybridization buffer
- b) hybridized with a labeled probe in the same buffer,
- c) washes several times with a buffer I,
- d) incubated with streptavidin-alkaline phosphatase conjugate in buffer I,
- e) washed once with buffer I, then washed several times with buffer II, and equilibrated several times with buffer III,
- f) after equilibration, take the membrane and transfer it to a substrate solution composed of CDP-Star (Tropix) and buffer III,
- g) after a short drip, the membrane is fixed, covered and
- h) exposed,
- i) after exposure, the membrane is taken and stripped several times with a preheated buffer IV, then washed once with a buffer V and evaluated according to techniques known per se.
- a) einem Hybridisierungspuffer enthaltend 10×TNT, 20% SDS, Block Reagenz,
- b) 10×PBS, enthaltend Na2HPO4, NaH2PO4, NaCl, pH: ca. 7.3,
- c) einem Puffer I enthaltend Block Reagenz, 10×PBS, 20% SDS
- d) einem Puffer II, enthaltend 10×PBS, 20% SDS,
- e) 10×Puffer III enthaltend TrisHCl, Diethanolamin bei pH: 9.75,
- f) einem Puffer IV enthaltend EDTA, 20% SDS
- g) einem Puffer V enthaltend NaCl, TrisCl, pH 8.0
- h) 10×TNT enthaltend TrisHCl, TrisBase, NaCl, TritonX-100 pH: ca. 8.0.
- a) a hybridization buffer containing 10 × TNT, 20% SDS, block reagent,
- b) 10 × PBS, containing Na 2 HPO 4 , NaH 2 PO 4 , NaCl, pH: approx. 7.3,
- c) a buffer I containing block reagent, 10 × PBS, 20% SDS
- d) a buffer II containing 10 × PBS, 20% SDS,
- e) 10 × buffer III containing TrisHCl, diethanolamine at pH: 9.75,
- f) a buffer IV containing EDTA, 20% SDS
- g) a buffer V containing NaCl, TrisCl, pH 8.0
- h) 10 × TNT containing TrisHCl, TrisBase, NaCl, TritonX-100 pH: approx.8.0.
- a) 5 l Hybridisierungspuffer enthaltend
500 ml 10×TNT
1250 ml 20% SDS
10 g Block Reagenz
3250 ml H2O (bidest) - b) 5 l 10×PBS enthaltend
516.2 g Na2HPO4
132.6 g NaH2PO4
198.7 g NaCl
H2O ad 5 l - c) 5 l Puffer I enthaltend
10 g Block Reagent
250 ml 10×PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H2O (bidest), - d) 5 l Puffer II enthaltend
250 ml 10×PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H2O (bidest). - e) 2 l 10×Puffer III enthaltend
64.4 g TrisHCl
1770 ml H2O (bidest)
210.4 g Diethanolamin - f) 5 l Puffer IV enthaltend
4700 ml H2O (bidest)
50 ml 0.5 M EDTA, pH 8.0
250 ml 20% SDS - g) 1 l Puffer V enthaltend
920 ml H2O (bidest)
30 ml 5 M NaCl
50 ml 1 M TrisCl, pH 8, - h) 1 l 10×TNT enthaltend
44.4 g TrisHCl
25.6 g TrisBase
73 g NaCl
818 ml H2O (bidest)
1000 ml TritonX-100
- a) containing 5 l of hybridization buffer
500 ml 10 x TNT
1250 ml 20% SDS
10 g block of reagent
3250 ml H 2 O (bidist) - b) containing 5 l of 10 × PBS
516.2 g Na 2 HPO 4
132.6 g NaH 2 PO 4
198.7 g NaCl
H 2 O ad 5 l - c) containing 5 l of buffer I.
10 g block reagent
250 ml 10x PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H 2 O (bidist), - d) containing 5 l of buffer II
250 ml 10x PBS
125 ml 20% SDS
4625 ml H 2 O (bidist). - e) containing 2 l of 10 × buffer III
64.4 g TrisHCl
1770 ml H 2 O (bidist)
210.4 g diethanolamine - f) containing 5 l of buffer IV
4700 ml H 2 O (bidist)
50 ml 0.5 M EDTA, pH 8.0
250 ml 20% SDS - g) containing 1 liter of buffer V.
920 ml H 2 O (bidist)
30 ml 5 M NaCl
50 ml 1 M TrisCl, pH 8, - h) containing 1 l of 10 × TNT
44.4 g TrisHCl
25.6 g TrisBase
73 g NaCl
818 ml H 2 O (bidist)
1000 ml TritonX-100
Priority Applications (9)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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DE19856391A DE19856391A1 (en) | 1998-05-06 | 1998-12-07 | Method for the non-radioactive detection of membrane-bound nucleic acids and test kit |
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