DE19622503A1 - Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche - Google Patents

Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche

Info

Publication number
DE19622503A1
DE19622503A1 DE19622503A DE19622503A DE19622503A1 DE 19622503 A1 DE19622503 A1 DE 19622503A1 DE 19622503 A DE19622503 A DE 19622503A DE 19622503 A DE19622503 A DE 19622503A DE 19622503 A1 DE19622503 A1 DE 19622503A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
zone
analyte
binding partner
capture
wiping element
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
DE19622503A
Other languages
English (en)
Other versions
DE19622503C2 (de
Inventor
Holger Dipl Chem Dr Droste
Sandra Linke
Franz Dipl Ing Dr Aberl
Johannes Dipl Biol Bonenberger
Hans Dipl Chem Dr Sachs
Ada Dipl Chem Dr Goerlach-Graw
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Securetec Detektions Systeme AG
Original Assignee
SECURETEC SICHERHEITSTECHNOLOG
Boehringer Mannheim GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by SECURETEC SICHERHEITSTECHNOLOG, Boehringer Mannheim GmbH filed Critical SECURETEC SICHERHEITSTECHNOLOG
Priority to DE19622503A priority Critical patent/DE19622503C2/de
Priority to EP97108986A priority patent/EP0811847A3/de
Priority to JP9148309A priority patent/JPH1062420A/ja
Publication of DE19622503A1 publication Critical patent/DE19622503A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE19622503C2 publication Critical patent/DE19622503C2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/94Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving narcotics or drugs or pharmaceuticals, neurotransmitters or associated receptors
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/536Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase
    • G01N33/537Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with separation of immune complex from unbound antigen or antibody
    • G01N33/538Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with immune complex formed in liquid phase with separation of immune complex from unbound antigen or antibody by sorbent column, particles or resin strip, i.e. sorbent materials
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/5436Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals with ligand physically entrapped within the solid phase
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54386Analytical elements
    • G01N33/54387Immunochromatographic test strips
    • G01N33/54388Immunochromatographic test strips based on lateral flow

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis eines Analyten auf einer Oberfläche durch Abwischen des Analyten von der Oberfläche mit einem Wischelement, Elution des Analyten von dem Wischelement und Nachweis des Analyten in der Elutionsflüssigkeit durch eine immunologische Nachweisreaktion.
Neben dem Nachweis von Analyten in Probeflüssigkeiten, wie z. B. Blut, Urin, Speichel, kommt insbesondere in der Kriminalistik dem Nachweis von Analyten auf festen Oberflächen, wie z. B. auf Möbeln, Gepäck usw., eine wachsende Bedeutung zu. Speziell in der Drogen­ fahndung ist es ein wünschenswertes Ziel, auch sehr geringe Drogenkontaminationen von Gegenständen einfach und schnell nachweisen zu können. Je sensitiver dabei ein Nachweisver­ fahren ist, um so weniger Analytmenge, die eine bestimmte Oberfläche kontaminiert, muß dabei auf dieser Oberfläche erfaßt werden.
Um beliebige Oberflächen auf Analyte, insbesondere auf Drogen, zu untersuchen, sind ver­ schiedene spezielle Nachweistechniken bekannt, bei denen zuerst der Analyt durch Abwischen einer Oberfläche gesammelt und nach Elution von der benutzten Wischoberfläche immunolo­ gisch nachgewiesen wird. Bei dem "Illicit Substance Detector" der Firma Westinghouse, Baltimore, USA (Security Management, Vol. 37/8, Seite 12-15, 1993), wird mit einer genoppten Kunststoffoberfläche eine zu untersuchende Oberfläche abgewischt und die Droge über ein in eine Einwegkarte integriertes Verfahren mit drei Reagenzlösungen nachgewiesen (DE-A 43 41 862). Das Testergebnis wird mit einem optischen Lesegerät ausgewertet. Das immunologische Nachweisprinzip beruht auf der Inhibierung einer Latex-Agglutinations­ reaktion durch die nachzuweisende Droge. Die untere Nachweisgrenze wird mit einem Mikro­ gramm angegeben. Nachteilig neben der recht hohen Nachweisgrenze ist, daß die Nachweisre­ aktion durch ein mechanisches Auspressen der drei Flüssigkeitsreservoirs gestartet werden muß. Zudem kann das Meßergebnis nur mit einer optischen Lesehilfe und nicht mit dem Auge ausgewertet werden.
Die Firma Roche Diagnostics stellt einen Testkit auf Kokain aus Urinproben nach demselben aufwendig zu handhabenden immunologischen Nachweisprinzip her. Die Nachweisempfind­ lichkeit liegt im Bereich von 0,2 µg/ml.
Der "Accupress-Kit" der Firma Thermetics, Wobum, USA (Security Management, Vol. 37/8, Seite 12-15, 1993), besteht aus einem speziell beschichteten Reagenzträger und drei Gefäßen mit Reagenzlösung. Bei diesem Test wird mit einem Wattestäbchen die zu untersuchende Oberfläche abgewischt und das Wattestäbchen anschließend mit Puffer ausgewaschen. Neben der vergleichbar unempfindlichen Nachweisgrenze von nicht unter einem µg ist die Hand­ habung von drei verschiedenen Reagenzlösungen umständlich und zieht auch Fehlermöglich­ keiten nach sich.
In EP-A-0 699 906 ist ein Testkit beschrieben, mit dem Analyte von Oberflächen abgewischt und nach gewiesen werden, wobei diese Oberflächen durch direkten Kontakt bei der Hand­ habung mit solchen Analyten kontaminiert wurden.
Aufgabe der Erfindung war es, ein Verfahren zum Nachweis von Analytkontaminationen von Oberflächen, insbesondere mit Drogenspuren, bereitzustellen, das in einfacher Weise und ohne technische Hilfsmittel durchgeführt werden kann. Insbesondere sollte die Nachweisgrenze für den Analyt deutlich unter einem µg absolut, möglichst unter 100 ng liegen.
Gelöst wird die Aufgabe durch ein Verfahren, wie es in den Ansprüchen charakterisiert ist.
Es wurde überraschend gefunden, daß der Testkit, der in EP-A-0 699 906 beschrieben ist, auch erfolgreich für die Untersuchung von Körperregionen eingesetzt werden kann, die nicht bei der Handhabung mit der nachzuweisenden Substanz durch direkten Kontakt kontaminiert wurden. Im wesentlichen handelt es sich um solche Körperpartien, die Körperflüssigkeiten wie Schweiß, Speichel, Tränen, Urin etc. ausscheiden oder sie tragen, wie Mund, Mundschleimhaut, Zunge, Achsel, Augen, Genitalbereich etc.
Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zum Nachweis eines Analyten in Körperflüssigkeit mit einem Testkit, das umfaßt
  • a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
  • - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
  • - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab­ fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
  • - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezifisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektierbaren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
  • b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
  • c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Teststreifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
dadurch gekennzeichnet, daß mit dem Wischelement Körperflüssigkeit von einer Körperregion aufgenommen und untersucht wird.
Dieses Verfahren umfaßt das Abwischen des Analyten von einer Körperoberfläche mit einem Wischelement aus einem Wischmaterial, Elution des Analyten von dem Wischelement und Nachweis des Analyten in der Elutionsflüssigkeit durch eine immunologische Nachweis­ reaktion, dadurch gekennzeichnet, daß
  • a) mit dem Wischelement die auf den Analyt zu untersuchende Oberfläche abgewischt wird,
  • b) das Wischelement mit der flächigen Oberfläche eines kapillaraktiven chromatographiefähigen Teststreifens, der eine Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und eine Zielzone am anderen Ende des Streifens enthält, in einem Bereich zwischen beiden Zonen kontaktiert wird,
  • c) Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben wird, die durch Kapillar­ kraft zur Zielzone an der Kontaktstelle mit der Wischfläche vorbeiwandert, wobei Analyt auf dem Wischelement von der Elutionsflüssigkeit aufgenommen wird und
  • d) der Analyt in der Zielzone aufgrund einer immunologischen Bindungsreaktion gemessen wird.
Der Teststreifen für das erfindungsgemäße Verfahren kann aus einem einzigen chromato­ graphiefähigen streifenförmigen Material oder bevorzugt aus mehreren auf einer Basisschicht im wesentlichen nebeneinander angeordneten kapillaraktiven Flächen aus gleichen oder ver­ schiedenen Materialien bestehen, die in Fluidkontakt zueinander stehen, so daß sie eine Flüssigkeitstransportstrecke bilden, entlang derer eine Flüssigkeit, durch Kapillarkräfte ge­ trieben, von der Elutionsmittelaufgabezone zu der Zielzone strömt.
Als chromatographisches Material kommen alle flüssigkeitsabsorbierenden, porösen oder kapillaraktiven Materialien in Frage, z. B. Cellulose und deren Derivate, Glasfasern und Vliese und Gewebe aus künstlichen oder natürlichen Materialien.
Es können in dem erfindungsgemäßen Verfahren verschiedene immunologische Testführungen angewendet werden mit denen der Analyt aufgrund einer oder mehrerer immunologischer Bin­ dungsreaktionen nachgewiesen wird. In einer bevorzugten Ausführungsform (Fig. 1) enthält ein für die Erfindung geeigneter Chromatographie-Teststreifen gegebenenfalls auf einer Trägerfolie (5) zwischen der Elutionsmittelaufgabezone (1) und der Zielzone (4) eine Abfang­ zone (3), die ein Abfangreagenz in immobilisierter Form enthält, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Bindungspartner des Analyten oder einen markierten Bindungs­ partner spezifisch zu binden. Vor der Abfangzone enthält der Teststreifen bevorzugt eine Konjugatzone (2), die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Bindungspartner des Analyten oder das Ab­ fangreagenz in der Abfangzone spezifisch zu binden.
Bei dem "spezifischen Bindungspartner des Analyten" handelt es sich um einen wanderungs­ fähigen, unmarkierten Analytbindungspartner mit einer Bindungsstelle für das Abfangreagenz. Wenn ein solcher Bindungspartner in dem Immunoassay verwendet wird, so kann dieser vor oder in der Konjugatzone oder bevorzugt zwischen Konjugatzone und Abfangzone aufge­ bracht sein. Zusätzlich kann sich nach der Zielzone noch weiteres flüssigkeitsabsorbierendes Material anschließen, das Flüssigkeit nach einer Wanderung durch die einzelnen Zonen auf­ nimmt.
Je nach Art des Immunoassays, der in dem erfindungsgemäßen Verfahren angewandt werden soll, liegen in den verschiedenen Zonen unterschiedliche Bindungspartner vor: Bei einem Sandwich-Immunoassay liegen bevorzugt in der Konjugatzone ein markierter Analytbindungs­ partner nicht-immobilisiert vor. Dieser bildet mit dem Analyten einen Komplex, der entweder durch das Abfangreagenz durch dessen Bindung an den Analyten gebunden wird, oder ein zweiter, unmarkierter, frei wanderungsfähiger Analytbindepartner mit einer spezifischen Bin­ dungsstelle für das Abfangreagenz bildet zuerst einen Sandwich-Komplex mit dem Analyten, der mit Hilfe der spezifischen Bindungsstelle des Bindungspartners in der Abfangzone gebun­ den wird. Bevorzugt wird dabei die Markierung des Komplexes in der Abfangzone gemessen. In diesem Fall sind Abfangzone und Zielzone identisch.
Bei einem kompetitiven Test befindet sich bevorzugt in der Konjugatzone ein markiertes Analyt-Analogon, das bei Anwesenheit des Analyten entweder um die Bindungsstellen des Ab­ fangreagenzes in der Abfangzone konkurriert (in diesem Fall ist das Abfangreagenz ein Ana­ lytbindungspartner) oder, wenn ein zusätzlicher wanderungsfähiger Analytbindungspartner vorhanden ist, um dessen Bindungsstelle konkurriert. Komplexe von markiertem Analyt- Analogon und wanderungsfähigem Bindungspartner werden dann über eine spezifische Bin­ dungsstelle, z. B. Biotin, in der Abfangzone gebunden. In diesem Falle ist das Abfangreagenz ein Bindungspartner des wanderungsfähigen Analytbindungspartners, z. B. Streptavidin. Be­ vorzugt wird bei diesem Verfahren die Markierung nicht in der Abfangzone, sondern in der Zielzone in Form der unkomplexierten Analyt-Analoga als Maß für die Anwesenheit des Analyten gemessen.
Bevorzugt wird das erfindungsgemäße Verfahren nach einem IEMA-analogen Testprinzip (auch "immunenzymometrisch-analoges" Testprinzip) durchgeführt. Die Durchführung von IEMA-Tests auf Teststreifen ist beispielsweise in EP-A-0 407 904, EP-A-0 353 570 oder DE- OS 40 24 919 beschrieben.
In der Konjugatzone befinden sich markierte Bindungspartner für den Analyten im Überschuß. Nach chromatographischer Wanderung werden nicht an Analyt gebundene markierte Bin­ dungspartner durch festphasengebundene Analyt-Analoga in der Abfangzone immobilisiert, während Komplexe aus Analyt und markiertem Bindungspartner in die Zielzone weiterchroma­ tographieren. Die in die Zielzone gelangte Markierung kann als Maß für die Anwesenheit oder auch die Konzentration des Analyten gemessen werden.
Als Analyt dienen in der vorliegenden Erfindung alle immunologisch nachweisbaren Substan­ zen insbesondere Antigene und Haptene. Ganz besonders geeignet ist die vorliegende Erfin­ dung zum Nachweis von Drogen, z. B. Kokain, Morphin, Heroin. Dabei kann der Analyt auf der abzuwischenden Oberfläche als Molekül oder partikulär oder an Partikel adsorbiert vor­ kommen.
Als Markierung kommen übliche Markierungen, wie Enzymmarkierung, Fluoreszenz-, Farb­ stoffmarkierung, in Frage. Bevorzugt ist Direktmarkierung, insbesondere Metallmarkierung, ganz besonders bevorzugt Goldmarkierung. Diese hat den Vorteil, daß direkt mit dem Auge das Testergebnis abgelesen werden kann.
Als Bindungspartner für den Analyten kommen insbesondere Antikörper und Antikörperfrag­ mente in Betracht.
Falls ein wanderungsfähiger unmarkierter Analytbindungspartner zusätzlich zum Abfang­ reagenz benutzt wird, trägt dieser eine Bindungsstelle für das Abfangreagenz. Für diese Bin­ dungsstelle kommen alle spezifischen Bindungspartner eines spezifischen Bindungspaares in Betracht, z. B. Lektine, Antikörper, Antigene, bevorzugt Biotin (das mit Streptavidin bindet). Die Markierung in der Abfangzone bzw. Zielzone kann über übliche Nachweismethoden er­ folgen, z. B. reflexionsphotometrisch oder visuell. Insbesondere bei Metallmarkierung, z. B. Goldmarkierung, kann das Meßergebnis in einfacher Weise visuell abgelesen werden.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird mit einem Wischelement über eine zu untersuchende Oberfläche vorteilhafterweise unter Anwendung eines leichten Drucks ge­ wischt. Die zu untersuchende Körperregion trägt in der Regel Feuchtigkeit. Es ist vorteilhaft, wenn der Wischvorgang mehrmals wiederholt wird. Zur besseren Handhabung ist das Wischelement (13) bevorzugt auf einem Träger (11) befestigt (Fig. 3). Eine gute Wischleistung ergibt sich insbesondere bei einer hohen mechanischen Beanspruchbarkeit des Wischelements. Besonders vorteilhaft hat es sich dafür erwiesen, wenn das Material des Wischelements mit dem Träger (11) mit Ultraschall verschweißt wird.
Als Wischelements können alle Materialien wie Kunststoffe, Gewebe, Vliese benutzt werden, auf denen Analyte, insbesondere Drogen haften bleiben und sich durch Wischen anreichern lassen. Andererseits sollten die anhaftenden Analyten bei Flüssigkeitskontakt wieder leicht desorbierbar sein. Der Fachmann kann ohne Aufwand solche Materialien auswählen. Bevor­ zugt sind saugfähige Materialien wie Vliese, Gewebe oder poröse Matrices wie Membrane oder Schwämme. Ganz besonders geeignet sind Vliese aus faserigen Materialien, wobei die Fasern im allgemeinen ungeordnet zusammengefügt sind, z. B. Papier oder Glasfaservliese. Die Wischoberfläche ist bevorzugt trocken, kann aber auch angefeuchtet werden.
Werden rauhe Oberflächen wie z. B. anodisierte Aluminiumoberflächen oder andere angerauhte Metalloberflächen untersucht, wird bevorzugt eine angefeuchtete Wischoberfläche eingesetzt. Geeignete Flüssigkeiten zur Anfeuchtung des Wischfläche sind primär Wasser und wäßrige Puffersysteme, die auf die nachfolgende Immunreaktion abgestimmt sein können. Dem Wasser oder den wäßrigen Puffern können Detergentien oder organische Lösungsmittel zugefügt sein. Als Detergentien können Tween 20, Tween 80, Octylglucosid, Polidocanol, Synperonic, z. B. F 68, oder auch zwitterionische Detergentien wie Cholamidopropansulfonat in einer Konzen­ tration unter 5 Gew.-%, bevorzugt bei 0,01 Gew.-% bis 1 Gew.-% allein oder in Mischungen verwendet werden. Als organische Lösungsmittel können z. B. Dimethylsulfoxid, Glycerin oder Ethanol allein oder in Mischungen eingesetzt werden. Der Anteil an Lösungsmittel in der Flüssigkeit kann deutlich unter 30 Gew.-% betragen. Es ist aber auch möglich, organische Lösemittel oder Mischungen organischer Lösungsmittel ohne Wasser zu verwenden.
Die Befeuchtung der Wischfläche wird durch die Aufgabe von 1-50 µl der Flüssigkeit pro cm², bevorzugt 3-20 µl/cm² z. B. durch Aufgabe mit einer Pipette oder einer automa­ tischen Dosiervorrichtung erreicht. Alternativ kann die Befeuchtung auch durch kurzzeitigen Kontakt der Wischfläche mit einem feuchten Schwamm oder einer anderen feuchtigkeitsabge­ benden Oberfläche erfolgen.
Die Befeuchtung der Wischfläche kann auch vorteilhaft so gelöst werden, daß die Flüssigkeit in mikroverkapselter oder blisterverpackter Form auf dem für das Wischen vorgesehenen Teil bereits vorgehalten wird. Wenn als Flüssigkeit Wasser oder wäßrige Puffersysteme eingesetzt werden, wird die Verkapselung vorteilhaft durch Einschluß in wachsartige Substanzen, wie z. B. Paraffin, vorgenommen. Das Freisetzen der Flüssigkeit kann auf mechanischem Weg, z. B. durch Andrücken auf der zu untersuchenden Oberfläche, erfolgen.
Bevorzugt ist das Wischelement ein flächenförmiges Erzeugnis, insbesondere ein Vlies bevor­ zugt aus Fasern auf der Basis von Zellulose und/oder Polyesterfasern. Zusätzlich können die Fasern von einem organischen Bindemittel, das bevorzugt Hydroxyl und/oder Estergruppen enthält, zusammengehalten werden. Solche Vliese sind in der deutschen Patentanmeldung DE- OS 38 02 366 beschrieben.
Bevorzugt werden als Zellulosefasern Zellwolle, Zellstoff oder Linters eingesetzt. Als Zellwolle wird ein Material bezeichnet, das durch Alkalisieren von Zellulose zu Alkali-Zellulose, an­ schließender Behandlung mit Schwefelkohlenstoff und der Bildung von Zellulose-Xantho­ genaten, Auflösung der Zellulose-Xanthogenate in Lauge und Verspinnen von Viskose­ filamentgarn erhalten wurde. Zellstoff kann durch einen vollständigen chemischen Aufschluß zellulosehaltiger Materialien und anschließende Bleiche gewonnen werden. Als Linters werden kurze, nicht spinnbare Baumwollfasern bezeichnet, die aus Baumwollsamen erhalten werden. Die Zellulosefasern weisen bevorzugt eine Faserfeinheit von 1,7 bis 4,5 dtex auf und besitzen Längen von 1 bis 20 mm, bevorzugt 3 bis 12 mm. Besonders bevorzugte Polyesterfasern sind Fasern mit einem spezifischen Gewicht von ca. 1,17 g/cm³, einer Länge von 3 bis 6 mm und einer Faserfeinheit von 1,7 bis 3,3 dtex.
Als weiteren Bestandteil können die Vliese ein organisches Bindemittel, das OH- und/oder Estergruppen aufweist, enthalten. Bevorzugt werden hierzu Polyvinylalkohol und Epichlor­ hydrinharze eingesetzt. Der Polyvinylalkohol wird vorzugsweise als Fasermaterial mit einer Länge von 3-5 mm und einem spezifischen Gewicht von 1,26 bis 1,30 g/cm³ eingesetzt. Aus diesen Komponenten und voll entsalztem Wasser wird ein Vlies auf einer Schrägsiebmaschine nach dem üblichen Verfahren der Papierherstellung erzeugt. Besonders bevorzugte Vlies­ materialien sind außerdem in DE-OS 38 02 366 beschrieben.
Die Dicke des Materials des Wischelementes ist nicht entscheidend. Vorteilhafterweise sollte es eine möglichst ebene Oberfläche haben, wobei die Dicke üblicherweise zwischen 0,1 und 3 mm liegt. Die Wischoberfläche sollte an die Dimensionen des Chromatographie-Teststreifens ange­ paßt sein, d. h. die Breite der Wischfläche sollte die Breite des Teststreifens nicht wesentlich übersteigen. Bevorzugte Dimensionen der Wischfläche liegen zwischen 0,3 und 2 cm, beson­ ders bevorzugt von 0,5 bis 0,8 cm in der Länge und in der Breite von 0,3 bis 1 cm, besonders bevorzugt von 0,4 bis 0,8 cm.
Nach dem Abwischen einer kontaminierten Oberfläche mit einem Wischelement wird die Wischoberfläche dieses Elementes mit einem Bereich der Teststreifenoberfläche zwischen der Elutionsmittelaufgabezone und der Zielzone kontaktiert, bevorzugt leicht aufgedrückt . . Dieser Bereich liegt bevorzugt zwischen der Elutionsmittelaufgabezone und der Konjugatzone oder auf der Konjugatzone selbst. Besonders bevorzugt ist außerdem, wenn die Zone, auf der das Wischelement aufgedrückt wird, aus einem der für das Wischelement geeigneten Materialien besteht, insbesondere den in der DE-OS 38 02 366 beschriebenen Vliesmaterialien. Ganz besonders bevorzugt ist es, wenn das Wischelement auf die Konjugatzone aufgedrückt wird. Bevorzugt ist deshalb auch, daß das Wischelement zwischen 25% und 150% der Fläche, besonders bevorzugt annähernd die gleiche Fläche wie die Konjugatzone hat.
Der Druck, mit dem das Wischelement aufgedrückt wird, sollte mindestens so groß sein, daß ein flächiger Fluidkontakt zwischen beiden Oberflächen möglich ist.
Um dem Benutzer das Aufdrücken zu erleichtern, kann in einer Ausführungsform der Test­ träger (5) in einem Gehäuse (6, 8) untergebracht sein (Fig. 2a: Gehäuse ohne Deckel, Fig. 2b: Gehäuse geschlossen). Das Gehäuse weist eine Öffnung (9) zum Aufdrücken des Wisch­ elementes (13) auf. Das Wischelement (13) ist auf einem Träger (11) so an ein Scharnier (14) des Gehäuses befestigt, daß dieser Träger zum Wischen ausgeklappt ist und zum Aufdrücken des Wischelementes auf die Öffnung (9) des Teststreifengehäuses umgeklappt und gegebenen­ falls arretiert werden kann. Das Wischelement kann auch mit der Hand oder einer Klammer mit dem Teststreifen kontaktiert werden.
Im nächsten Schritt wird Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone (1) aufgebracht. Die Flüssigkeit kann auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben werden oder der Test­ streifen in eine Elutionsflüssigkeit getaucht werden. Wird die Flüssigkeit aufgebracht, besteht die Elutionsmittelaufnahmezone bevorzugt aus einem besonders saugfähigen Material, das mindestens so viel Flüssigkeit aufnimmt, daß die Flüssigkeit bis zum Ende des Chromato­ graphie-Streifens wandert. Ist der Testträger in einem Gehäuse, hat das Gehäuse bevorzugt eine Öffnung (7) zur Aufgabe der Flüssigkeit.
Als Elutionsflüssigkeit kommt Wasser und die bei Immunoassays üblichen Pufferlösungen in Frage. Die Flüssigkeit wandert entlang des Streifens in Richtung Zielzone (4) und passiert dabei die Zone mit dem aufgedrückten Wischelement. Überraschenderweise werden dabei auf dem Wischelement haftende Analytmoleküle von dem Flüssigkeitsstrom aufgenommen und in die weiteren Zonen weitertransportiert. Bevorzugt ist, wenn die Zone des Teststreifens, auf die das Wischelements aufgedrückt wird ("Aufnahmezone") aus einem der für das Wischelement bevorzugten Vlies-Materialien besteht. Besonders bevorzugt ist, wenn die Aufnahmezone ("Aufnahmevlies") durch die Konjugatzone (2) selbst gebildet wird.
In einer bevorzugten Testvariante werden Analytmoleküle beim Passieren der Konjugatzone durch markierte Analyt-Bindungspartner komplexiert, nicht-komplexierte markierte Bindungs­ partner werden in der Abfangzone durch immobilisierte Analyt-Analoga, z. B. Polyhaptene, festgehalten, während markierte Bindungspartner, die einen Analyten gebunden haben, die Ab­ fangzone passieren und die Zielzone erreichen. In der Zielzone können dann die markierten Komplexe detektiert werden. Um das Signal in der Zielzone optisch besser von der Markierung in der Abfangzone unterscheiden zu können, kann die Abfangzone vorteilhafterweise abge­ deckt sein. Wenn der Testträger in einem Gehäuse untergebracht ist, hat dieses über der Ziel­ zone bevorzugt eine Öffnung (10) zum Beobachten des Signals.
Die Analyse auf eine Analytkontamination der untersuchten Oberfläche ist dann positiv, wenn mindestens ein Teilbereich der Zielzone eine Färbung aufweist. Die Färbung kann leicht visuell oder photometrisch detektiert werden.
Es ist auch möglich, mit einem Teststreifendevice mehrere Analyten nachzuweisen. Hierzu kann die Konjugatzone und die Abfangzone und gegebenenfalls auch das chromatographische Material von der Konjugatzone bis zur Zielzone in mehrere, in Teststreifenrichtung parallele, vorteilhafterweise voneinander getrennte Teilstreifen unterteilt sein, wobei in einzelnen Teil­ konjugatzonen und Teilabfangzonen Bindungspartner für die unterschiedlichen nachzuweisen­ den Analyten oder unterschiedliche Analytanaloga enthalten sind. Nach Kontaktieren des Wischelementes mit einer gemeinsamen Aufnahmezone vor den Konjugatzonen und Aufgabe der Elutionsflüssigkeit, teilt sich in den verschiedenen Teilkonjugatzonen die Analytflüssigkeit auf verschiedene Teilchromatographiestrecken auf, wobei in jeder Teilzielzone ein anderer Analyt nachgewiesen werden kann.
Die Empfindlichkeit des erfindungsgemäßen Verfahrens ist überraschenderweise wesentlich höher als die der Verfahren aus dem Stand der Technik. Die Wisch- und Übertragungseffizienz des Wischelementes von Analyten auf den Teststreifen ist wider Erwarten so groß, daß mit dem Verfahren Absolutmengen von bis zu 10 ng Analyt, insbesondere Drogen, auf Oberflächen nachgewiesen werden können. Das Verfahren erfordert sehr wenige Handhabungsschritte und das Ergebnis kann sehr schnell und mit einfachen Mitteln ermittelt werden. Besonders über­ raschend ist es, daß Analyt insbesondere Drogen erfolgreich in Körperflüssigkeiten nachge­ wiesen werden können, die nur in geringen Mengen auf oder in Körperregionen vorliegen, wie insbesondere Schweiß und Speichel. Durch die Probennahme an Körperregionen, die nicht bei der Handhabung mit dem zu bestimmenden Analyt in Kontakt gekommen sein können, kann nach Vorlage des Untersuchungsergebnisses entschieden werden, ob eine Aufnahme des Stoffes in den Körper vorgelegen hat oder nicht.
Beispiel 1 a. Herstellung von Benzoylecgoninmaleimidoethylamid
2.4 g Benzoylecgoninhydrochlorid werden in 200 ml trockenem Acetonitril mit 1 g N- Hydroxysuccinimid und 1.8 g Dicyclohexylcarbodiimid versetzt und 3 Std. gerührt. Vom Niederschlag wird abfiltriert, das Filtrat eingedampft, in Nitromethan aufgenommen und nochmals filtriert. Nach Abdampfen des Lösungsmittels wird mit Ether verrieben. Man erhält 1.13 g Benzoylecgoninsuccinimidylester. Dieses Produkt wird zusammen mit 0.47 g Maleimi­ doethylaminhydrochlorid (s. WO 90/15798) in 100 ml trockenem Acetonitril aufgenommen. Man gibt 1.1 g Triethylamin zu und rührt 12 Stunden bei Raumtemperatur. Das Reaktions­ gemisch wird eingedampft, in 50 ml Essigester aufgenommen und drei Mal mit Natrium­ hydrogencarbonatlösung ausgeschüttelt. Die Essigesterphase wird eingedampft und das Produkt durch Aufnahme in 10 ml mit HCl gesättigtem Dioxan in das Hydrochlorid überführt. Man filtriert, wäscht mit Ether und erhält so 1 g Benzoylecgoninmaleimidoethylamid­ hydrochlorid.
b. Herstellung eines biotinylierten Cocain-Polyhaptens für die Abfangzone
Kaninchen-IgG wird bei einer Konzentration von 25 mg/ml in Phospatpuffer pH 8 mit der 6fach molaren Menge S-Acetylthiopropionsäuresuccinimidylester gelöst in Dimethylsulfoxid umgesetzt. Nach 1 Stunde bei 25°C wird die Reaktion durch Zugabe einer Lösung von 1 mol/l Lysin gestoppt. Es folgt Dialyse gegen 0. 1 mol/l Kaliumphosphatpuffer, pH 6 mit 1 mmol/l EDTA. Anschließend wird der pH auf 7.8 eingestellt und mit 1 mol/l Hydroxylamin-Lösung, pH 7,5 ad 20 mmol/l 1 Stunde bei 25°C inkubiert. Zur Kopplung wird ein 5fach molarer Über­ schuß Benzoylecgoninmaleimidoethylamidhydrochiorid in Dimethylsulfoxid gelöst und unter Rühren zu der Lösung des mit Sulfhydrylgruppen modifizierten Kaninchen-IgG gegeben. Nach Inkubation bei 25°C für 2 Stunden wird die Reaktion gestoppt durch die successive Zugabe von 0.1 mol/l Cystein-Lösung ad 1 mmol/l und 0.5 mol/l Jodacetamidlösung ad 5 mmol/l. Der Ansatz wird über Nacht gegen 0.1 mol/l Kaliumphosphatpuffer, pH 8.5 dialysiert und über Membranfiltration auf eine Proteinkonzentration von 10 mg/ml konzentriert. Danach wird das erhaltene Cocain-Polyhapten mit einem 8fach molarem Überschuß Biotinylcapronsäure­ succinimidylester, gelöst in Dimethylsulfoxid, biotinyliert. Der Ansatz wird gegen 20 mmol/l Natriumacetat, pH 4.3, dialysiert und über FPLC aufgereinigt.
c. Herstellung von Morphin-3-O-essigsäuremaleimidoethylamidhydrochlorid
Analog Beispiel 1a. wird Morphin-3-O-essigsäure mit Maleimidoethylaminhydrochlorid zu Morphin-3-O-essigsäuremaleimidoethylamidhydrochlorid umgesetzt.
d. Herstellung eines biotinylierten Morphin-Polyhaptenes
Analog Beispiel 1b. wird mit Sulfhydrylgruppen modifiziertes Kaninchen-IgG mit Morphin-3- O-essigsäuremaieimidoethylamidhydrochlorid und Biotinylcapronsäuresuccinimidylester zu einem biotinylierten Morphin-Polyhapten umgesetzt.
e. Herstellung eines Goldkonjugates aus einem Anti-Cocain-Antikörper
Goldsol mit einem durch Photonen-Korrelations-Spektroskopie bestimmten Partikeldurch­ messer von 20 nm wurde nach Standardverfahren (Frens, Nature Vol. 241, S. 20-22, 1973) hergestellt. Die Konjugation mit dem Antikörper, der Cocain und Benzoylecgonin erkennt, wird nach dem Stand der Technik durchgeführt (Geoghegan et al., J. Immunol. Meth. Vol. 34, S. 11-31, 1980,.
f. Herstellung eines Goldkonjugates aus einem Anti-Morphin-Antikörper
Analog Beispiel 1e wurde ein Antikörper, der Morphin und Heroin erkennt, an Goldpartikel gebunden.
Beispiel 2 a. Testträger zur Bestimmung von Cocain
Aufbau des Testträgers siehe Fig. 1.
Elutionsmittelaufgabezone (Saugvlies) (1)
Polyestervlies der Firma Binzer, Hatzfeld, Bundesrepublik Deutschland. Es handelt sich um ein reines Polyestervlies, das mit 10% Kuralon verfestigt ist. Die Dicke beträgt 1,0-1,2 mm, die Saugkapazität 1800 ml/m².
Konjugatzone (Konjugatvlies) (2)
Ein Mischvlies aus 80 Teilen Polyester und 20 Teilen Zellwolle, verfestigt mit 20 Teilen Kuralon, in einer Dicke von 0,32 mm und mit einer Saugkapazität von 500 ml/m² wird mit folgender Lösung getränkt und anschließend getrocknet: 100 mmol/l HEPES-Puffer pH 7.5, 100 mol/l NaCl, Konjugat aus Goldpartikeln und einem Anti-Cocain-Antikörper, der auch an Benzylecgonin bindet in einer Konzentration, die eine optische Dichte von 10 bei 520 nm auf­ weist.
Abfangzone (3)
Ein Vlies aus 100% Linters, verfestigt mit 2% Etadurin mit einer Dicke von 0.35 mm und einer Saugkapazität von 372 ml/m² wird mit folgender Lösung getränkt und anschließend getrock­ net: 10 mmol/l Natriumphosphat pH 7.5, polymerisiertes Streptavidin 200 mg/l (Herstellung nach Beispiel 1c, EP-A 0 331127).
Das vorgetränkte Vlies wird anschließend nochmals getränkt und anschließend getrocknet: 10 mmol/l Natriumphosphat pH 7.5, 200 mg/l biotinyliertes Cocain-Polyhapten aus Beispiel 1b.
Nachweisfeld (Zielzone) (4)
Es wird ein Vlies aus 100% Linters, verfestigt mit 2% Etadurin mit einer Dicke von 0.35 mm und einer Saugkapazität von 372 ml/m² eingesetzt.
Alle Vliese haben eine Breite von 5 mm. Das Konjuagtvlies hat eine Größe von 5 × 5 mm. Die Vliese werden gemäß Fig. 1 auf eine Trägerfolie (5) von 5 mm Breite geklebt.
b. Testträger zum Nachweis von Heroin
Analog wird aus dem Goldkonjugat des Anti-Heroin-Antikörpers und dem biotinylierten Morphin-Polyhapten ein Testträger zum Nachweis von Heroin hergestellt.
Beispiel 3
Auf eine Polyethylenoberfläche werden jeweils 10 µl einer verdünnten Heroinhydrochlorid­ lösung in Methanol aufgetragen und eintrocknen gelassen. Man erhält je mit 10, 20, 40, 60 und 80 ng Heroinhydrochlorid kontaminierte Flächen von ca. 1 cm² Fläche. Von jeder Menge werden drei Testfelder präpariert.
Es wurde ein Vlies hergestellt, das aus 80 Teilen Polyesterfasern einer Faserfeinheit von 3,3 dtex und einer Faserlänge von 4 mm besteht, 20 Teilen Zellwolle mit einer Faserfeinheit von 1,7 dtex und einer Schnittlänge von 3 mm sowie 20 Teilen Polyvinylalkoholfasern einer Schnittlänge von 4 mm. Die Faserstoffe Polyester, Zellwolle und Polyvinylalkohol wurden mit VE-Wasser bei einer Stoffdichte von 0,3% in Mischbütten aufgeschlagen bzw. vereinzelt. Der Faserstoff wurde anschließend auf ein umlaufendes Sieb gepumpt. Während das Fasergemisch entwässert bzw. das Wasser durch Vakuum abgesaugt wird, orientieren sich die Fasern auf der Siebseite und werden als Vlies mit einem Trockengehalt von ca. 20% über Trockenzylinder kontaktgetrocknet. Man erhält ein Vlies mit einem Flächengewicht von 80 g/m² und einer Dicke von 0.32 mm.
Auf einen Träger (1) werden 5 × 5 mm große Stücke dieses Vlieses (2) aufgeklebt (Fig. 3). Mit dem auf den Träger montierten Wischvlies werden die mit Heroin kontaminierten Test­ felder mit leichtem Druck abgewischt.
Das auf den Träger montierte Wischvlies wird über dem Konjugatvlies des nach Beispiel 2b. hergestellten Testträgers positioniert und mit leichtem Druck aufgedrückt und mit einer Klammer fixiert.
Die Elutionsmittelaufgabezone wird 5 sec. in einen Chromatographiepuffer (150 mmol/l NaCl, 50 mmol/l Kaliumphosphatpuffer pH 7,2, getaucht. Man legt auf eine nicht saugende Unter­ lage ab, und bestimmt nach 2 min.mit einem Chromameter der Fa. Minolta die Buntheit (C-Wert). Danach wird visuell das Nachweisfeld auf die Anwesenheit von rosa Farbe geprüft.
Beispiel 4
Mit einer verdünnten Cocainiösung in Wasser wurden analog Beispiel 3 auf eine Polyethylen­ folie Testbereiche mit 5, 10, 25, 50, 75 und 100 ng Cocain aufgetragen. Analog Beispiel 3 werden mit einer Vorrichtung nach Schema 2, die jeweils Testträger nach Beispiel 2a zur Be­ stimmung von Cocain enthält die Testbereiche abgewischt. Die Wischvliese sind rund bei einem Durchmesser von 4 mm. Das Nachweisfeld wird jeweils visuell auf Rosafarbung geprüft.
Beispiel 5
Ein Teil Cocain wird mit 1000 Teilen Lactose vermischt. 5 mg dieses Gemisches werden auf einer Fläche von 220 cm² eines Baumwolltuches verteilt. Ca. 10 cm² diese Bereiches werden analog Beispiel 4 abgewischt und analysiert. In allen Versuchen wird eine Rosafärbung in dem Nachweisfeld visuell detektiert. Analog wird eine Polyethylenfolie von 2 cm² mit cocainhal­ tigen Partikeln kontaminiert und durch Wischen analysiert. Es wird ebenfalls in allen Versuchen wird eine Rosafarbung in dem Nachweisfeld visuell detektiert.
Beispiel 6
Auf eine rauhe anodisierte Aluminiumplatte werden je 10 µl entsprechend verdünnter Lösungen von Cocainhydrochlorid in Wasser aufgegeben und auf eine Fläche von 1 cm² ver­ teilt. Nach Antrocknen bei 37°C für 15 min. werden die kontaminierten Flächen mit einem runden Vlies nach Beispiel 3 mit einem Durchmesser von 5 mm mit leichtem Druck abge­ wischt. Dabei wird sowohl ohne Befeuchtung (trocken) als auch nach vorheriger Befeuchtung des Wischvlieses mit 2 µl Wasser gewischt. Die Wischvliese werden dann jeweils auf die Konjugatzone eines Testträgers zum Nachweis auf Cocain nach Beispiel 3 aufgelegt und mit einer flachen Pinzette festgehalten. Das Saugvlies des Testträgers wird zur Hälfte für 10 sec. in Wasser getaucht. Anschließend legt man den Testträger auf einer flachen nicht saugenden Un­ terlage ab und bestimmte nach 2 min.in dem Nachweisfeld die Farbe.
Beispiel 7
Bei der Untersuchung der Körperoberfläche von Personen zeigt sich folgendes Bild:
Bei der Untersuchung der Körperoberfläche unter der Achsel wird mit dem Testträger bei Personen, die Opiate bzw. Kokain konsumiert hatten (nachgewiesen durch einen positiven Befund im Urin, ein positives Ergebnis erhalten. Der Ort auf der Körperoberfläche schließt aus, daß es sich bei den nachgewiesenen Analyten um Drogenmoleküle handelt, die durch externe Kontamination auf die Körperoberfläche gelangt sind. Die nachgewiesenen Drogen­ moleküle bzw. deren Metaboliten sind mit Hilfe von Schweiß abgelagert worden, das heißt, sie müssen konsumiert worden sein.

Claims (10)

1. Verfahren zum Nachweis eines Analyten in Körperflüssigkeit mit einem Testkit, das umfaßt,
  • a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
  • - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
  • - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab­ fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
  • - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezi­ fisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektier­ baren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
  • b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
  • c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Test­ streifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
dadurch gekennzeichnet, daß mit dem Wischelement Körperflüssigkeit von einer Körper­ region aufgenommen und untersucht wird.
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Wischelement mit der Oberfläche des Teststreifens kontaktiert wird, Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben wird, die in Richtung zur Zielzone an der Kontaktstelle mit dem Wischelement vorbeiwandert, wobei der Analyt von der Elutionsflüssigkeit aufgenommen wird und die Anwesenheit des Analyten in der Zielzone aufgrund einer immunologischen Bindungsreaktion gemessen wird.
3. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der nachzuweisende Analyt eine illegale Droge oder deren Metabolit ist.
4. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1-3, dadurch gekennzeichnet, daß es sich bei der Körperregion um Haut oder Schleimhaut handelt.
5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1-4, dadurch gekennzeichnet, daß es sich bei der Körperflüssigkeit um eine Körperausscheidung handelt.
6 Verfahren gemäß Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die Körperausscheidung Schweiß oder Speichel ist.
7. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Material des Wischelementes mit der Andrückvorrichtung fest verbunden ist.
8. Verwendung eines Testkits umfassend
  • a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
  • - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
  • - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab­ fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
  • - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezi­ fisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektier­ baren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
  • b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
  • c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Test­ streifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
zur Bestimmung eines Analyts in einer Körperflüssigkeit, wobei diese Körperflüssigkeit von einer Körperregion abgewischt wird.
DE19622503A 1996-06-05 1996-06-05 Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche Expired - Lifetime DE19622503C2 (de)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19622503A DE19622503C2 (de) 1996-06-05 1996-06-05 Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche
EP97108986A EP0811847A3 (de) 1996-06-05 1997-06-04 Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche
JP9148309A JPH1062420A (ja) 1996-06-05 1997-06-05 表面上の分析物を検出する方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19622503A DE19622503C2 (de) 1996-06-05 1996-06-05 Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE19622503A1 true DE19622503A1 (de) 1997-12-11
DE19622503C2 DE19622503C2 (de) 1998-07-09

Family

ID=7796176

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19622503A Expired - Lifetime DE19622503C2 (de) 1996-06-05 1996-06-05 Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP0811847A3 (de)
JP (1) JPH1062420A (de)
DE (1) DE19622503C2 (de)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102006058374A1 (de) 2006-12-08 2008-07-03 Biosensor Gmbh Analyseverfahren und portables Analysegerät
EP1964928A1 (de) 2007-02-27 2008-09-03 F.Hoffmann-La Roche Ag Chinone als Mediatoren für photometrische Teste
EA013943B1 (ru) * 2010-01-11 2010-08-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Объединение "Биотест" (Ооо Нпо "Биотест") Тест-система "кардиотест" для иммунохроматографического определения сердечного белка, связывающего жирные кислоты, и тропонина i в образце цельной крови для экспресс-диагностики инфаркта миокарда
CN107110859A (zh) * 2014-07-24 2017-08-29 智能指纹有限公司 样品分析装置
US9939434B2 (en) 2009-12-04 2018-04-10 Rapid Pathogen Screening, Inc. Multiplanar lateral flow assay with sample compressor
EP3591397A1 (de) 2013-03-07 2020-01-08 Rapid Pathogen Screening Inc. Verfahren und vorrichtung zum kombinierten nachweis von virus- und bakterieninfektionen

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69912904T2 (de) * 1998-07-01 2004-11-04 Nitto Denko Corp., Ibaraki Markiertes Kojugat und Nachweismethode unter Verwendung desselben
US6248598B1 (en) * 1998-09-17 2001-06-19 Stuart C. Bogema Immunoassay that provides for both collection of saliva and assay of saliva for one or more analytes with visual readout
US6585646B2 (en) * 2000-11-29 2003-07-01 Hermetic Diagnostics, Inc. Screening test and procedure using skin patches
AT501069A1 (de) * 2001-08-20 2006-06-15 Walter Ing Pils Vorrichtung und verfahren zum nachweis eines analyten
WO2003016903A2 (de) * 2001-08-20 2003-02-27 Walter Pils Vorrichtung und verfahren zum nachweis eines analyten
AU2003229455A1 (en) * 2002-05-16 2003-12-02 Medmira Inc. Rapid vaccinia antibody detection device, method and test kit
EP1718973B1 (de) 2004-02-09 2009-09-09 Rapid Pathogen Screening Inc. Verfahren zur schnelldiagnose von zielen in menschlichen körperflüssigkeiten
US8669052B2 (en) 2008-06-10 2014-03-11 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow nucleic acid detector
US8470608B2 (en) 2008-05-20 2013-06-25 Rapid Pathogen Screening, Inc Combined visual/fluorescence analyte detection test
US8614101B2 (en) 2008-05-20 2013-12-24 Rapid Pathogen Screening, Inc. In situ lysis of cells in lateral flow immunoassays
US8445293B2 (en) 2005-02-09 2013-05-21 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method to increase specificity and/or accuracy of lateral flow immunoassays
JP2007271535A (ja) * 2006-03-31 2007-10-18 Gc Corp 唾液検査用具
JP2010533841A (ja) * 2007-07-13 2010-10-28 イノベイティブ プロダクティビティ インコーポレイテッド 試験パッチ装置および方法
US8962260B2 (en) 2008-05-20 2015-02-24 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method and device for combined detection of viral and bacterial infections
US20130196310A1 (en) 2008-05-20 2013-08-01 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method and Device for Combined Detection of Viral and Bacterial Infections
US8815609B2 (en) 2008-05-20 2014-08-26 Rapid Pathogen Screening, Inc. Multiplanar lateral flow assay with diverting zone
US9068981B2 (en) 2009-12-04 2015-06-30 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow assays with time delayed components
US9797898B2 (en) 2008-05-20 2017-10-24 Rapid Pathogen Screening, Inc. Methods and devices for using mucolytic agents including N-acetyl cysteine (NAC)
US9910036B2 (en) 2008-05-20 2018-03-06 Rapid Pathogen Screening, Inc. Method and device for combined detection of viral and bacterial infections
US20110086359A1 (en) 2008-06-10 2011-04-14 Rapid Pathogen Screening, Inc. Lateral flow assays
US8466686B2 (en) * 2010-02-05 2013-06-18 Louisville Solutions Incorporated Test patch system
EP2381258A1 (de) * 2010-04-26 2011-10-26 Securetec Detektions-Systeme AG Mikrofluidiksystem mit Probenvorbehandlung
CA2853103C (en) * 2011-10-21 2020-01-07 Decimadx, Llc Point-of-care immunoassay for quantitative small analyte detection
US10808287B2 (en) 2015-10-23 2020-10-20 Rapid Pathogen Screening, Inc. Methods and devices for accurate diagnosis of infections
EP3711668A1 (de) * 2019-03-18 2020-09-23 Koninklijke Philips N.V. Schweisserfassungssystem

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2935881C2 (de) * 1978-12-26 1982-05-13 California Medical Developments Inc., Ventura, Calif. Vorrichtung zum Nachweis von Drogen oder anderen Substanzen
EP0229517A1 (de) * 1985-12-18 1987-07-22 Keystone Diagnostics, Inc. Testpapier und Verfahren für Drogenmissbrauch
DE3802366A1 (de) * 1988-01-27 1989-08-10 Boehringer Mannheim Gmbh Traegervlies fuer abloesbar impraegnierte reagenzien
EP0353570A2 (de) * 1988-07-30 1990-02-07 Roche Diagnostics GmbH Mit Reagenz ablösbar imprägnierte Trägermatrix
EP0407904A2 (de) * 1989-07-12 1991-01-16 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zur Bestimmung eines Analyten
DE4024919A1 (de) * 1990-08-06 1992-02-13 Boehringer Mannheim Gmbh Peptide mit fuer (alpha)1-mikroglobulin charakteristischer antigener determinante
DE4341862A1 (de) * 1992-12-08 1994-06-09 Westinghouse Electric Corp Assay-Vorrichtung
EP0699906A2 (de) * 1994-07-25 1996-03-06 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zum Nachweis der Kontamination einer Oberfläche mit einem Analyten

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5113860A (en) * 1991-03-15 1992-05-19 Minnesota Mining And Manufacturing Company Non-invasive transmucosal drug level monitoring method
US5793292A (en) * 1993-04-22 1998-08-11 Ivey, Jr.; Ellwood G. System for inhibiting use of a hand-operated machine by an impaired individual through detection of toxins in the individual
US5714341A (en) * 1994-03-30 1998-02-03 Epitope, Inc. Saliva assay method and device

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2935881C2 (de) * 1978-12-26 1982-05-13 California Medical Developments Inc., Ventura, Calif. Vorrichtung zum Nachweis von Drogen oder anderen Substanzen
EP0229517A1 (de) * 1985-12-18 1987-07-22 Keystone Diagnostics, Inc. Testpapier und Verfahren für Drogenmissbrauch
DE3802366A1 (de) * 1988-01-27 1989-08-10 Boehringer Mannheim Gmbh Traegervlies fuer abloesbar impraegnierte reagenzien
EP0353570A2 (de) * 1988-07-30 1990-02-07 Roche Diagnostics GmbH Mit Reagenz ablösbar imprägnierte Trägermatrix
EP0407904A2 (de) * 1989-07-12 1991-01-16 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zur Bestimmung eines Analyten
DE4024919A1 (de) * 1990-08-06 1992-02-13 Boehringer Mannheim Gmbh Peptide mit fuer (alpha)1-mikroglobulin charakteristischer antigener determinante
DE4341862A1 (de) * 1992-12-08 1994-06-09 Westinghouse Electric Corp Assay-Vorrichtung
EP0699906A2 (de) * 1994-07-25 1996-03-06 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zum Nachweis der Kontamination einer Oberfläche mit einem Analyten

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ADDIS, K., in: Security Management, 1993, Bd. 37, Nr. 8, S. 12-15 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102006058374A1 (de) 2006-12-08 2008-07-03 Biosensor Gmbh Analyseverfahren und portables Analysegerät
EP1964928A1 (de) 2007-02-27 2008-09-03 F.Hoffmann-La Roche Ag Chinone als Mediatoren für photometrische Teste
US9939434B2 (en) 2009-12-04 2018-04-10 Rapid Pathogen Screening, Inc. Multiplanar lateral flow assay with sample compressor
EA013943B1 (ru) * 2010-01-11 2010-08-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Объединение "Биотест" (Ооо Нпо "Биотест") Тест-система "кардиотест" для иммунохроматографического определения сердечного белка, связывающего жирные кислоты, и тропонина i в образце цельной крови для экспресс-диагностики инфаркта миокарда
EP3591397A1 (de) 2013-03-07 2020-01-08 Rapid Pathogen Screening Inc. Verfahren und vorrichtung zum kombinierten nachweis von virus- und bakterieninfektionen
CN107110859A (zh) * 2014-07-24 2017-08-29 智能指纹有限公司 样品分析装置
AU2015293652B2 (en) * 2014-07-24 2020-07-02 Intelligent Fingerprinting Limited Sample analysing device

Also Published As

Publication number Publication date
EP0811847A3 (de) 1999-01-07
EP0811847A2 (de) 1997-12-10
DE19622503C2 (de) 1998-07-09
JPH1062420A (ja) 1998-03-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0699906B1 (de) Verfahren zum Nachweis der Kontamination einer Oberfläche mit einem Analyten
DE19622503C2 (de) Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche
DE69033569T2 (de) Festphasen-analytische Vorrichtung
DE69629288T2 (de) Verbessertes diagnostisches nachweissystem
EP0339450B1 (de) Testträger für die Analyse einer Probenflüssigkeit, Verfahren zur Durchführung einer solchen Analyse und Herstellungsverfahren
DE3887771T3 (de) Immunoassays und Vorrichtungen dafür.
EP1143248B1 (de) Verfahren zu Immobilisierung von Konjugaten in diagnostischen Tests
DE69630295T2 (de) Diagnostische vorrichtung und verfahren
DE69229334T2 (de) Einstufiges querfluss analysenverfahren und ein darin verwendeter nichtsaugfähiger träger
DE69416828T2 (de) Vorrichtung zur chromatographischen bestimmung, die einander entgegenstellbare teile enthalten
EP2126573B1 (de) Diagnostische nachweisvorrichtung
DE4439429C2 (de) Verfahren zum Nachweis der Kontamination einer Oberfläche mit einem Analyten
DE69128618T2 (de) Vorrichtung und verfahren zur ausführung von immunoassays
DE69636389T2 (de) Vorrichtungen und verfahren zur abtrennung zellulärer blutbestandteile von flüssigen blutanteilen
EP0525829A2 (de) Testträger zur analytischen Untersuchung einer Probenflüssigkeit mit Hilfe einer spezifischen Bindungsreaktion zweier bioaffiner Bindungspartner
EP0133895A1 (de) Erythrozyten-Rückhaltesubstrate
DE112005001900T5 (de) Untersuchungsvorrichtung und Verfahren
WO2014064046A1 (de) Verfahren und vorrichtung zum nachweis von illegalen drogen
DE19808598B4 (de) Verfahren und Vorrichtung zum Nachweis von staubassoziierten Substanzen
EP0863401A1 (de) Analytisches Testelement mit flüssigkeitsgefüllten Blister
EP2823309B1 (de) Verfahren und vorrichtung zum nachweis von analyten
EP0650054B1 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Gewinnung und zum Nachweis von immunologisch aktiven Substanzen aus der Gasphase
EP0312907B1 (de) Immunreaktives Trägermaterial
DE60107554T2 (de) Einfang test unter verwendung von partikulärem analyt
DE68923507T2 (de) Immuntestverfahren unter Verwendung eines "Fibrets" aus organischem Zelluloseester als Trägerelement.

Legal Events

Date Code Title Description
OP8 Request for examination as to paragraph 44 patent law
D2 Grant after examination
8364 No opposition during term of opposition
8327 Change in the person/name/address of the patent owner

Owner name: ROCHE DIAGNOSTICS GMBH, 68305 MANNHEIM, DE SECURET

8327 Change in the person/name/address of the patent owner

Owner name: SECURETEC DETEKTIONS-SYSTEME AG, 85521 OTTOBRUNN,

R071 Expiry of right