DE19622503A1 - Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer Oberfläche - Google Patents
Verfahren zum Nachweis von Analyten auf einer OberflächeInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis eines Analyten auf einer Oberfläche durch
Abwischen des Analyten von der Oberfläche mit einem Wischelement, Elution des Analyten
von dem Wischelement und Nachweis des Analyten in der Elutionsflüssigkeit durch eine
immunologische Nachweisreaktion.
Neben dem Nachweis von Analyten in Probeflüssigkeiten, wie z. B. Blut, Urin, Speichel,
kommt insbesondere in der Kriminalistik dem Nachweis von Analyten auf festen Oberflächen,
wie z. B. auf Möbeln, Gepäck usw., eine wachsende Bedeutung zu. Speziell in der Drogen
fahndung ist es ein wünschenswertes Ziel, auch sehr geringe Drogenkontaminationen von
Gegenständen einfach und schnell nachweisen zu können. Je sensitiver dabei ein Nachweisver
fahren ist, um so weniger Analytmenge, die eine bestimmte Oberfläche kontaminiert, muß
dabei auf dieser Oberfläche erfaßt werden.
Um beliebige Oberflächen auf Analyte, insbesondere auf Drogen, zu untersuchen, sind ver
schiedene spezielle Nachweistechniken bekannt, bei denen zuerst der Analyt durch Abwischen
einer Oberfläche gesammelt und nach Elution von der benutzten Wischoberfläche immunolo
gisch nachgewiesen wird. Bei dem "Illicit Substance Detector" der Firma Westinghouse,
Baltimore, USA (Security Management, Vol. 37/8, Seite 12-15, 1993), wird mit einer
genoppten Kunststoffoberfläche eine zu untersuchende Oberfläche abgewischt und die Droge
über ein in eine Einwegkarte integriertes Verfahren mit drei Reagenzlösungen nachgewiesen
(DE-A 43 41 862). Das Testergebnis wird mit einem optischen Lesegerät ausgewertet. Das
immunologische Nachweisprinzip beruht auf der Inhibierung einer Latex-Agglutinations
reaktion durch die nachzuweisende Droge. Die untere Nachweisgrenze wird mit einem Mikro
gramm angegeben. Nachteilig neben der recht hohen Nachweisgrenze ist, daß die Nachweisre
aktion durch ein mechanisches Auspressen der drei Flüssigkeitsreservoirs gestartet werden
muß. Zudem kann das Meßergebnis nur mit einer optischen Lesehilfe und nicht mit dem Auge
ausgewertet werden.
Die Firma Roche Diagnostics stellt einen Testkit auf Kokain aus Urinproben nach demselben
aufwendig zu handhabenden immunologischen Nachweisprinzip her. Die Nachweisempfind
lichkeit liegt im Bereich von 0,2 µg/ml.
Der "Accupress-Kit" der Firma Thermetics, Wobum, USA (Security Management, Vol. 37/8,
Seite 12-15, 1993), besteht aus einem speziell beschichteten Reagenzträger und drei Gefäßen
mit Reagenzlösung. Bei diesem Test wird mit einem Wattestäbchen die zu untersuchende
Oberfläche abgewischt und das Wattestäbchen anschließend mit Puffer ausgewaschen. Neben
der vergleichbar unempfindlichen Nachweisgrenze von nicht unter einem µg ist die Hand
habung von drei verschiedenen Reagenzlösungen umständlich und zieht auch Fehlermöglich
keiten nach sich.
In EP-A-0 699 906 ist ein Testkit beschrieben, mit dem Analyte von Oberflächen abgewischt
und nach gewiesen werden, wobei diese Oberflächen durch direkten Kontakt bei der Hand
habung mit solchen Analyten kontaminiert wurden.
Aufgabe der Erfindung war es, ein Verfahren zum Nachweis von Analytkontaminationen von
Oberflächen, insbesondere mit Drogenspuren, bereitzustellen, das in einfacher Weise und ohne
technische Hilfsmittel durchgeführt werden kann. Insbesondere sollte die Nachweisgrenze für
den Analyt deutlich unter einem µg absolut, möglichst unter 100 ng liegen.
Gelöst wird die Aufgabe durch ein Verfahren, wie es in den Ansprüchen charakterisiert ist.
Es wurde überraschend gefunden, daß der Testkit, der in EP-A-0 699 906 beschrieben ist,
auch erfolgreich für die Untersuchung von Körperregionen eingesetzt werden kann, die nicht
bei der Handhabung mit der nachzuweisenden Substanz durch direkten Kontakt kontaminiert
wurden. Im wesentlichen handelt es sich um solche Körperpartien, die Körperflüssigkeiten wie
Schweiß, Speichel, Tränen, Urin etc. ausscheiden oder sie tragen, wie Mund, Mundschleimhaut,
Zunge, Achsel, Augen, Genitalbereich etc.
Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zum Nachweis eines Analyten in Körperflüssigkeit
mit einem Testkit, das umfaßt
- a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
- - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
- - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
- - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezifisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektierbaren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
- b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
- c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Teststreifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
dadurch gekennzeichnet, daß mit dem Wischelement Körperflüssigkeit von einer Körperregion
aufgenommen und untersucht wird.
Dieses Verfahren umfaßt das Abwischen des Analyten von einer Körperoberfläche mit einem
Wischelement aus einem Wischmaterial, Elution des Analyten von dem Wischelement und
Nachweis des Analyten in der Elutionsflüssigkeit durch eine immunologische Nachweis
reaktion, dadurch gekennzeichnet, daß
- a) mit dem Wischelement die auf den Analyt zu untersuchende Oberfläche abgewischt wird,
- b) das Wischelement mit der flächigen Oberfläche eines kapillaraktiven chromatographiefähigen Teststreifens, der eine Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und eine Zielzone am anderen Ende des Streifens enthält, in einem Bereich zwischen beiden Zonen kontaktiert wird,
- c) Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben wird, die durch Kapillar kraft zur Zielzone an der Kontaktstelle mit der Wischfläche vorbeiwandert, wobei Analyt auf dem Wischelement von der Elutionsflüssigkeit aufgenommen wird und
- d) der Analyt in der Zielzone aufgrund einer immunologischen Bindungsreaktion gemessen wird.
Der Teststreifen für das erfindungsgemäße Verfahren kann aus einem einzigen chromato
graphiefähigen streifenförmigen Material oder bevorzugt aus mehreren auf einer Basisschicht
im wesentlichen nebeneinander angeordneten kapillaraktiven Flächen aus gleichen oder ver
schiedenen Materialien bestehen, die in Fluidkontakt zueinander stehen, so daß sie eine
Flüssigkeitstransportstrecke bilden, entlang derer eine Flüssigkeit, durch Kapillarkräfte ge
trieben, von der Elutionsmittelaufgabezone zu der Zielzone strömt.
Als chromatographisches Material kommen alle flüssigkeitsabsorbierenden, porösen oder
kapillaraktiven Materialien in Frage, z. B. Cellulose und deren Derivate, Glasfasern und Vliese
und Gewebe aus künstlichen oder natürlichen Materialien.
Es können in dem erfindungsgemäßen Verfahren verschiedene immunologische Testführungen
angewendet werden mit denen der Analyt aufgrund einer oder mehrerer immunologischer Bin
dungsreaktionen nachgewiesen wird. In einer bevorzugten Ausführungsform (Fig. 1) enthält
ein für die Erfindung geeigneter Chromatographie-Teststreifen gegebenenfalls auf einer
Trägerfolie (5) zwischen der Elutionsmittelaufgabezone (1) und der Zielzone (4) eine Abfang
zone (3), die ein Abfangreagenz in immobilisierter Form enthält, das fähig ist, entweder den
Analyten, einen spezifischen Bindungspartner des Analyten oder einen markierten Bindungs
partner spezifisch zu binden. Vor der Abfangzone enthält der Teststreifen bevorzugt eine
Konjugatzone (2), die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig
ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Bindungspartner des Analyten oder das Ab
fangreagenz in der Abfangzone spezifisch zu binden.
Bei dem "spezifischen Bindungspartner des Analyten" handelt es sich um einen wanderungs
fähigen, unmarkierten Analytbindungspartner mit einer Bindungsstelle für das Abfangreagenz.
Wenn ein solcher Bindungspartner in dem Immunoassay verwendet wird, so kann dieser vor
oder in der Konjugatzone oder bevorzugt zwischen Konjugatzone und Abfangzone aufge
bracht sein. Zusätzlich kann sich nach der Zielzone noch weiteres flüssigkeitsabsorbierendes
Material anschließen, das Flüssigkeit nach einer Wanderung durch die einzelnen Zonen auf
nimmt.
Je nach Art des Immunoassays, der in dem erfindungsgemäßen Verfahren angewandt werden
soll, liegen in den verschiedenen Zonen unterschiedliche Bindungspartner vor: Bei einem
Sandwich-Immunoassay liegen bevorzugt in der Konjugatzone ein markierter Analytbindungs
partner nicht-immobilisiert vor. Dieser bildet mit dem Analyten einen Komplex, der entweder
durch das Abfangreagenz durch dessen Bindung an den Analyten gebunden wird, oder ein
zweiter, unmarkierter, frei wanderungsfähiger Analytbindepartner mit einer spezifischen Bin
dungsstelle für das Abfangreagenz bildet zuerst einen Sandwich-Komplex mit dem Analyten,
der mit Hilfe der spezifischen Bindungsstelle des Bindungspartners in der Abfangzone gebun
den wird. Bevorzugt wird dabei die Markierung des Komplexes in der Abfangzone gemessen.
In diesem Fall sind Abfangzone und Zielzone identisch.
Bei einem kompetitiven Test befindet sich bevorzugt in der Konjugatzone ein markiertes
Analyt-Analogon, das bei Anwesenheit des Analyten entweder um die Bindungsstellen des Ab
fangreagenzes in der Abfangzone konkurriert (in diesem Fall ist das Abfangreagenz ein Ana
lytbindungspartner) oder, wenn ein zusätzlicher wanderungsfähiger Analytbindungspartner
vorhanden ist, um dessen Bindungsstelle konkurriert. Komplexe von markiertem Analyt-
Analogon und wanderungsfähigem Bindungspartner werden dann über eine spezifische Bin
dungsstelle, z. B. Biotin, in der Abfangzone gebunden. In diesem Falle ist das Abfangreagenz
ein Bindungspartner des wanderungsfähigen Analytbindungspartners, z. B. Streptavidin. Be
vorzugt wird bei diesem Verfahren die Markierung nicht in der Abfangzone, sondern in der
Zielzone in Form der unkomplexierten Analyt-Analoga als Maß für die Anwesenheit des
Analyten gemessen.
Bevorzugt wird das erfindungsgemäße Verfahren nach einem IEMA-analogen Testprinzip
(auch "immunenzymometrisch-analoges" Testprinzip) durchgeführt. Die Durchführung von
IEMA-Tests auf Teststreifen ist beispielsweise in EP-A-0 407 904, EP-A-0 353 570 oder DE-
OS 40 24 919 beschrieben.
In der Konjugatzone befinden sich markierte Bindungspartner für den Analyten im Überschuß.
Nach chromatographischer Wanderung werden nicht an Analyt gebundene markierte Bin
dungspartner durch festphasengebundene Analyt-Analoga in der Abfangzone immobilisiert,
während Komplexe aus Analyt und markiertem Bindungspartner in die Zielzone weiterchroma
tographieren. Die in die Zielzone gelangte Markierung kann als Maß für die Anwesenheit oder
auch die Konzentration des Analyten gemessen werden.
Als Analyt dienen in der vorliegenden Erfindung alle immunologisch nachweisbaren Substan
zen insbesondere Antigene und Haptene. Ganz besonders geeignet ist die vorliegende Erfin
dung zum Nachweis von Drogen, z. B. Kokain, Morphin, Heroin. Dabei kann der Analyt auf
der abzuwischenden Oberfläche als Molekül oder partikulär oder an Partikel adsorbiert vor
kommen.
Als Markierung kommen übliche Markierungen, wie Enzymmarkierung, Fluoreszenz-, Farb
stoffmarkierung, in Frage. Bevorzugt ist Direktmarkierung, insbesondere Metallmarkierung,
ganz besonders bevorzugt Goldmarkierung. Diese hat den Vorteil, daß direkt mit dem Auge
das Testergebnis abgelesen werden kann.
Als Bindungspartner für den Analyten kommen insbesondere Antikörper und Antikörperfrag
mente in Betracht.
Falls ein wanderungsfähiger unmarkierter Analytbindungspartner zusätzlich zum Abfang
reagenz benutzt wird, trägt dieser eine Bindungsstelle für das Abfangreagenz. Für diese Bin
dungsstelle kommen alle spezifischen Bindungspartner eines spezifischen Bindungspaares in
Betracht, z. B. Lektine, Antikörper, Antigene, bevorzugt Biotin (das mit Streptavidin bindet).
Die Markierung in der Abfangzone bzw. Zielzone kann über übliche Nachweismethoden er
folgen, z. B. reflexionsphotometrisch oder visuell. Insbesondere bei Metallmarkierung, z. B.
Goldmarkierung, kann das Meßergebnis in einfacher Weise visuell abgelesen werden.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird mit einem Wischelement über eine
zu untersuchende Oberfläche vorteilhafterweise unter Anwendung eines leichten Drucks ge
wischt. Die zu untersuchende Körperregion trägt in der Regel Feuchtigkeit. Es ist vorteilhaft,
wenn der Wischvorgang mehrmals wiederholt wird. Zur besseren Handhabung ist das
Wischelement (13) bevorzugt auf einem Träger (11) befestigt (Fig. 3). Eine gute
Wischleistung ergibt sich insbesondere bei einer hohen mechanischen Beanspruchbarkeit des
Wischelements. Besonders vorteilhaft hat es sich dafür erwiesen, wenn das Material des
Wischelements mit dem Träger (11) mit Ultraschall verschweißt wird.
Als Wischelements können alle Materialien wie Kunststoffe, Gewebe, Vliese benutzt werden,
auf denen Analyte, insbesondere Drogen haften bleiben und sich durch Wischen anreichern
lassen. Andererseits sollten die anhaftenden Analyten bei Flüssigkeitskontakt wieder leicht
desorbierbar sein. Der Fachmann kann ohne Aufwand solche Materialien auswählen. Bevor
zugt sind saugfähige Materialien wie Vliese, Gewebe oder poröse Matrices wie Membrane
oder Schwämme. Ganz besonders geeignet sind Vliese aus faserigen Materialien, wobei die
Fasern im allgemeinen ungeordnet zusammengefügt sind, z. B. Papier oder Glasfaservliese. Die
Wischoberfläche ist bevorzugt trocken, kann aber auch angefeuchtet werden.
Werden rauhe Oberflächen wie z. B. anodisierte Aluminiumoberflächen oder andere angerauhte
Metalloberflächen untersucht, wird bevorzugt eine angefeuchtete Wischoberfläche eingesetzt.
Geeignete Flüssigkeiten zur Anfeuchtung des Wischfläche sind primär Wasser und wäßrige
Puffersysteme, die auf die nachfolgende Immunreaktion abgestimmt sein können. Dem Wasser
oder den wäßrigen Puffern können Detergentien oder organische Lösungsmittel zugefügt sein.
Als Detergentien können Tween 20, Tween 80, Octylglucosid, Polidocanol, Synperonic, z. B. F
68, oder auch zwitterionische Detergentien wie Cholamidopropansulfonat in einer Konzen
tration unter 5 Gew.-%, bevorzugt bei 0,01 Gew.-% bis 1 Gew.-% allein oder in Mischungen
verwendet werden. Als organische Lösungsmittel können z. B. Dimethylsulfoxid, Glycerin oder
Ethanol allein oder in Mischungen eingesetzt werden. Der Anteil an Lösungsmittel in der
Flüssigkeit kann deutlich unter 30 Gew.-% betragen. Es ist aber auch möglich, organische
Lösemittel oder Mischungen organischer Lösungsmittel ohne Wasser zu verwenden.
Die Befeuchtung der Wischfläche wird durch die Aufgabe von 1-50 µl der Flüssigkeit pro
cm², bevorzugt 3-20 µl/cm² z. B. durch Aufgabe mit einer Pipette oder einer automa
tischen Dosiervorrichtung erreicht. Alternativ kann die Befeuchtung auch durch kurzzeitigen
Kontakt der Wischfläche mit einem feuchten Schwamm oder einer anderen feuchtigkeitsabge
benden Oberfläche erfolgen.
Die Befeuchtung der Wischfläche kann auch vorteilhaft so gelöst werden, daß die Flüssigkeit
in mikroverkapselter oder blisterverpackter Form auf dem für das Wischen vorgesehenen Teil
bereits vorgehalten wird. Wenn als Flüssigkeit Wasser oder wäßrige Puffersysteme eingesetzt
werden, wird die Verkapselung vorteilhaft durch Einschluß in wachsartige Substanzen, wie
z. B. Paraffin, vorgenommen. Das Freisetzen der Flüssigkeit kann auf mechanischem Weg, z. B.
durch Andrücken auf der zu untersuchenden Oberfläche, erfolgen.
Bevorzugt ist das Wischelement ein flächenförmiges Erzeugnis, insbesondere ein Vlies bevor
zugt aus Fasern auf der Basis von Zellulose und/oder Polyesterfasern. Zusätzlich können die
Fasern von einem organischen Bindemittel, das bevorzugt Hydroxyl und/oder Estergruppen
enthält, zusammengehalten werden. Solche Vliese sind in der deutschen Patentanmeldung DE-
OS 38 02 366 beschrieben.
Bevorzugt werden als Zellulosefasern Zellwolle, Zellstoff oder Linters eingesetzt. Als Zellwolle
wird ein Material bezeichnet, das durch Alkalisieren von Zellulose zu Alkali-Zellulose, an
schließender Behandlung mit Schwefelkohlenstoff und der Bildung von Zellulose-Xantho
genaten, Auflösung der Zellulose-Xanthogenate in Lauge und Verspinnen von Viskose
filamentgarn erhalten wurde. Zellstoff kann durch einen vollständigen chemischen Aufschluß
zellulosehaltiger Materialien und anschließende Bleiche gewonnen werden. Als Linters werden
kurze, nicht spinnbare Baumwollfasern bezeichnet, die aus Baumwollsamen erhalten werden.
Die Zellulosefasern weisen bevorzugt eine Faserfeinheit von 1,7 bis 4,5 dtex auf und besitzen
Längen von 1 bis 20 mm, bevorzugt 3 bis 12 mm. Besonders bevorzugte Polyesterfasern sind
Fasern mit einem spezifischen Gewicht von ca. 1,17 g/cm³, einer Länge von 3 bis 6 mm und
einer Faserfeinheit von 1,7 bis 3,3 dtex.
Als weiteren Bestandteil können die Vliese ein organisches Bindemittel, das OH- und/oder
Estergruppen aufweist, enthalten. Bevorzugt werden hierzu Polyvinylalkohol und Epichlor
hydrinharze eingesetzt. Der Polyvinylalkohol wird vorzugsweise als Fasermaterial mit einer
Länge von 3-5 mm und einem spezifischen Gewicht von 1,26 bis 1,30 g/cm³ eingesetzt. Aus
diesen Komponenten und voll entsalztem Wasser wird ein Vlies auf einer Schrägsiebmaschine
nach dem üblichen Verfahren der Papierherstellung erzeugt. Besonders bevorzugte Vlies
materialien sind außerdem in DE-OS 38 02 366 beschrieben.
Die Dicke des Materials des Wischelementes ist nicht entscheidend. Vorteilhafterweise sollte es
eine möglichst ebene Oberfläche haben, wobei die Dicke üblicherweise zwischen 0,1 und 3 mm
liegt. Die Wischoberfläche sollte an die Dimensionen des Chromatographie-Teststreifens ange
paßt sein, d. h. die Breite der Wischfläche sollte die Breite des Teststreifens nicht wesentlich
übersteigen. Bevorzugte Dimensionen der Wischfläche liegen zwischen 0,3 und 2 cm, beson
ders bevorzugt von 0,5 bis 0,8 cm in der Länge und in der Breite von 0,3 bis 1 cm, besonders
bevorzugt von 0,4 bis 0,8 cm.
Nach dem Abwischen einer kontaminierten Oberfläche mit einem Wischelement wird die
Wischoberfläche dieses Elementes mit einem Bereich der Teststreifenoberfläche zwischen der
Elutionsmittelaufgabezone und der Zielzone kontaktiert, bevorzugt leicht aufgedrückt . . Dieser
Bereich liegt bevorzugt zwischen der Elutionsmittelaufgabezone und der Konjugatzone oder
auf der Konjugatzone selbst. Besonders bevorzugt ist außerdem, wenn die Zone, auf der das
Wischelement aufgedrückt wird, aus einem der für das Wischelement geeigneten Materialien
besteht, insbesondere den in der DE-OS 38 02 366 beschriebenen Vliesmaterialien. Ganz
besonders bevorzugt ist es, wenn das Wischelement auf die Konjugatzone aufgedrückt wird.
Bevorzugt ist deshalb auch, daß das Wischelement zwischen 25% und 150% der Fläche,
besonders bevorzugt annähernd die gleiche Fläche wie die Konjugatzone hat.
Der Druck, mit dem das Wischelement aufgedrückt wird, sollte mindestens so groß sein, daß
ein flächiger Fluidkontakt zwischen beiden Oberflächen möglich ist.
Um dem Benutzer das Aufdrücken zu erleichtern, kann in einer Ausführungsform der Test
träger (5) in einem Gehäuse (6, 8) untergebracht sein (Fig. 2a: Gehäuse ohne Deckel, Fig.
2b: Gehäuse geschlossen). Das Gehäuse weist eine Öffnung (9) zum Aufdrücken des Wisch
elementes (13) auf. Das Wischelement (13) ist auf einem Träger (11) so an ein Scharnier (14)
des Gehäuses befestigt, daß dieser Träger zum Wischen ausgeklappt ist und zum Aufdrücken
des Wischelementes auf die Öffnung (9) des Teststreifengehäuses umgeklappt und gegebenen
falls arretiert werden kann. Das Wischelement kann auch mit der Hand oder einer Klammer mit
dem Teststreifen kontaktiert werden.
Im nächsten Schritt wird Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone (1) aufgebracht.
Die Flüssigkeit kann auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben werden oder der Test
streifen in eine Elutionsflüssigkeit getaucht werden. Wird die Flüssigkeit aufgebracht, besteht
die Elutionsmittelaufnahmezone bevorzugt aus einem besonders saugfähigen Material, das
mindestens so viel Flüssigkeit aufnimmt, daß die Flüssigkeit bis zum Ende des Chromato
graphie-Streifens wandert. Ist der Testträger in einem Gehäuse, hat das Gehäuse bevorzugt
eine Öffnung (7) zur Aufgabe der Flüssigkeit.
Als Elutionsflüssigkeit kommt Wasser und die bei Immunoassays üblichen Pufferlösungen in
Frage. Die Flüssigkeit wandert entlang des Streifens in Richtung Zielzone (4) und passiert
dabei die Zone mit dem aufgedrückten Wischelement. Überraschenderweise werden dabei auf
dem Wischelement haftende Analytmoleküle von dem Flüssigkeitsstrom aufgenommen und in
die weiteren Zonen weitertransportiert. Bevorzugt ist, wenn die Zone des Teststreifens, auf die
das Wischelements aufgedrückt wird ("Aufnahmezone") aus einem der für das Wischelement
bevorzugten Vlies-Materialien besteht. Besonders bevorzugt ist, wenn die Aufnahmezone
("Aufnahmevlies") durch die Konjugatzone (2) selbst gebildet wird.
In einer bevorzugten Testvariante werden Analytmoleküle beim Passieren der Konjugatzone
durch markierte Analyt-Bindungspartner komplexiert, nicht-komplexierte markierte Bindungs
partner werden in der Abfangzone durch immobilisierte Analyt-Analoga, z. B. Polyhaptene,
festgehalten, während markierte Bindungspartner, die einen Analyten gebunden haben, die Ab
fangzone passieren und die Zielzone erreichen. In der Zielzone können dann die markierten
Komplexe detektiert werden. Um das Signal in der Zielzone optisch besser von der Markierung
in der Abfangzone unterscheiden zu können, kann die Abfangzone vorteilhafterweise abge
deckt sein. Wenn der Testträger in einem Gehäuse untergebracht ist, hat dieses über der Ziel
zone bevorzugt eine Öffnung (10) zum Beobachten des Signals.
Die Analyse auf eine Analytkontamination der untersuchten Oberfläche ist dann positiv, wenn
mindestens ein Teilbereich der Zielzone eine Färbung aufweist. Die Färbung kann leicht visuell
oder photometrisch detektiert werden.
Es ist auch möglich, mit einem Teststreifendevice mehrere Analyten nachzuweisen. Hierzu
kann die Konjugatzone und die Abfangzone und gegebenenfalls auch das chromatographische
Material von der Konjugatzone bis zur Zielzone in mehrere, in Teststreifenrichtung parallele,
vorteilhafterweise voneinander getrennte Teilstreifen unterteilt sein, wobei in einzelnen Teil
konjugatzonen und Teilabfangzonen Bindungspartner für die unterschiedlichen nachzuweisen
den Analyten oder unterschiedliche Analytanaloga enthalten sind. Nach Kontaktieren des
Wischelementes mit einer gemeinsamen Aufnahmezone vor den Konjugatzonen und Aufgabe
der Elutionsflüssigkeit, teilt sich in den verschiedenen Teilkonjugatzonen die Analytflüssigkeit
auf verschiedene Teilchromatographiestrecken auf, wobei in jeder Teilzielzone ein anderer
Analyt nachgewiesen werden kann.
Die Empfindlichkeit des erfindungsgemäßen Verfahrens ist überraschenderweise wesentlich
höher als die der Verfahren aus dem Stand der Technik. Die Wisch- und Übertragungseffizienz
des Wischelementes von Analyten auf den Teststreifen ist wider Erwarten so groß, daß mit
dem Verfahren Absolutmengen von bis zu 10 ng Analyt, insbesondere Drogen, auf Oberflächen
nachgewiesen werden können. Das Verfahren erfordert sehr wenige Handhabungsschritte und
das Ergebnis kann sehr schnell und mit einfachen Mitteln ermittelt werden. Besonders über
raschend ist es, daß Analyt insbesondere Drogen erfolgreich in Körperflüssigkeiten nachge
wiesen werden können, die nur in geringen Mengen auf oder in Körperregionen vorliegen, wie
insbesondere Schweiß und Speichel. Durch die Probennahme an Körperregionen, die nicht bei
der Handhabung mit dem zu bestimmenden Analyt in Kontakt gekommen sein können, kann
nach Vorlage des Untersuchungsergebnisses entschieden werden, ob eine Aufnahme des
Stoffes in den Körper vorgelegen hat oder nicht.
2.4 g Benzoylecgoninhydrochlorid werden in 200 ml trockenem Acetonitril mit 1 g N-
Hydroxysuccinimid und 1.8 g Dicyclohexylcarbodiimid versetzt und 3 Std. gerührt. Vom
Niederschlag wird abfiltriert, das Filtrat eingedampft, in Nitromethan aufgenommen und
nochmals filtriert. Nach Abdampfen des Lösungsmittels wird mit Ether verrieben. Man erhält
1.13 g Benzoylecgoninsuccinimidylester. Dieses Produkt wird zusammen mit 0.47 g Maleimi
doethylaminhydrochlorid (s. WO 90/15798) in 100 ml trockenem Acetonitril aufgenommen.
Man gibt 1.1 g Triethylamin zu und rührt 12 Stunden bei Raumtemperatur. Das Reaktions
gemisch wird eingedampft, in 50 ml Essigester aufgenommen und drei Mal mit Natrium
hydrogencarbonatlösung ausgeschüttelt. Die Essigesterphase wird eingedampft und das
Produkt durch Aufnahme in 10 ml mit HCl gesättigtem Dioxan in das Hydrochlorid überführt.
Man filtriert, wäscht mit Ether und erhält so 1 g Benzoylecgoninmaleimidoethylamid
hydrochlorid.
Kaninchen-IgG wird bei einer Konzentration von 25 mg/ml in Phospatpuffer pH 8 mit der
6fach molaren Menge S-Acetylthiopropionsäuresuccinimidylester gelöst in Dimethylsulfoxid
umgesetzt. Nach 1 Stunde bei 25°C wird die Reaktion durch Zugabe einer Lösung von 1 mol/l
Lysin gestoppt. Es folgt Dialyse gegen 0. 1 mol/l Kaliumphosphatpuffer, pH 6 mit 1 mmol/l
EDTA. Anschließend wird der pH auf 7.8 eingestellt und mit 1 mol/l Hydroxylamin-Lösung,
pH 7,5 ad 20 mmol/l 1 Stunde bei 25°C inkubiert. Zur Kopplung wird ein 5fach molarer Über
schuß Benzoylecgoninmaleimidoethylamidhydrochiorid in Dimethylsulfoxid gelöst und unter
Rühren zu der Lösung des mit Sulfhydrylgruppen modifizierten Kaninchen-IgG gegeben. Nach
Inkubation bei 25°C für 2 Stunden wird die Reaktion gestoppt durch die successive Zugabe
von 0.1 mol/l Cystein-Lösung ad 1 mmol/l und 0.5 mol/l Jodacetamidlösung ad 5 mmol/l. Der
Ansatz wird über Nacht gegen 0.1 mol/l Kaliumphosphatpuffer, pH 8.5 dialysiert und über
Membranfiltration auf eine Proteinkonzentration von 10 mg/ml konzentriert. Danach wird das
erhaltene Cocain-Polyhapten mit einem 8fach molarem Überschuß Biotinylcapronsäure
succinimidylester, gelöst in Dimethylsulfoxid, biotinyliert. Der Ansatz wird gegen 20 mmol/l
Natriumacetat, pH 4.3, dialysiert und über FPLC aufgereinigt.
Analog Beispiel 1a. wird Morphin-3-O-essigsäure mit Maleimidoethylaminhydrochlorid zu
Morphin-3-O-essigsäuremaleimidoethylamidhydrochlorid umgesetzt.
Analog Beispiel 1b. wird mit Sulfhydrylgruppen modifiziertes Kaninchen-IgG mit Morphin-3-
O-essigsäuremaieimidoethylamidhydrochlorid und Biotinylcapronsäuresuccinimidylester zu
einem biotinylierten Morphin-Polyhapten umgesetzt.
Goldsol mit einem durch Photonen-Korrelations-Spektroskopie bestimmten Partikeldurch
messer von 20 nm wurde nach Standardverfahren (Frens, Nature Vol. 241, S. 20-22, 1973)
hergestellt. Die Konjugation mit dem Antikörper, der Cocain und Benzoylecgonin erkennt,
wird nach dem Stand der Technik durchgeführt (Geoghegan et al., J. Immunol. Meth. Vol. 34,
S. 11-31, 1980,.
Analog Beispiel 1e wurde ein Antikörper, der Morphin und Heroin erkennt, an Goldpartikel
gebunden.
Aufbau des Testträgers siehe Fig. 1.
Polyestervlies der Firma Binzer, Hatzfeld, Bundesrepublik Deutschland. Es handelt sich um ein
reines Polyestervlies, das mit 10% Kuralon verfestigt ist. Die Dicke beträgt 1,0-1,2 mm, die
Saugkapazität 1800 ml/m².
Ein Mischvlies aus 80 Teilen Polyester und 20 Teilen Zellwolle, verfestigt mit 20 Teilen
Kuralon, in einer Dicke von 0,32 mm und mit einer Saugkapazität von 500 ml/m² wird mit
folgender Lösung getränkt und anschließend getrocknet: 100 mmol/l HEPES-Puffer pH 7.5,
100 mol/l NaCl, Konjugat aus Goldpartikeln und einem Anti-Cocain-Antikörper, der auch an
Benzylecgonin bindet in einer Konzentration, die eine optische Dichte von 10 bei 520 nm auf
weist.
Ein Vlies aus 100% Linters, verfestigt mit 2% Etadurin mit einer Dicke von 0.35 mm und einer
Saugkapazität von 372 ml/m² wird mit folgender Lösung getränkt und anschließend getrock
net: 10 mmol/l Natriumphosphat pH 7.5, polymerisiertes Streptavidin 200 mg/l (Herstellung
nach Beispiel 1c, EP-A 0 331127).
Das vorgetränkte Vlies wird anschließend nochmals getränkt und anschließend getrocknet: 10
mmol/l Natriumphosphat pH 7.5, 200 mg/l biotinyliertes Cocain-Polyhapten aus Beispiel 1b.
Es wird ein Vlies aus 100% Linters, verfestigt mit 2% Etadurin mit einer Dicke von 0.35 mm
und einer Saugkapazität von 372 ml/m² eingesetzt.
Alle Vliese haben eine Breite von 5 mm. Das Konjuagtvlies hat eine Größe von 5 × 5 mm. Die
Vliese werden gemäß Fig. 1 auf eine Trägerfolie (5) von 5 mm Breite geklebt.
Analog wird aus dem Goldkonjugat des Anti-Heroin-Antikörpers und dem biotinylierten
Morphin-Polyhapten ein Testträger zum Nachweis von Heroin hergestellt.
Auf eine Polyethylenoberfläche werden jeweils 10 µl einer verdünnten Heroinhydrochlorid
lösung in Methanol aufgetragen und eintrocknen gelassen. Man erhält je mit 10, 20, 40, 60 und
80 ng Heroinhydrochlorid kontaminierte Flächen von ca. 1 cm² Fläche. Von jeder Menge
werden drei Testfelder präpariert.
Es wurde ein Vlies hergestellt, das aus 80 Teilen Polyesterfasern einer Faserfeinheit von 3,3
dtex und einer Faserlänge von 4 mm besteht, 20 Teilen Zellwolle mit einer Faserfeinheit von
1,7 dtex und einer Schnittlänge von 3 mm sowie 20 Teilen Polyvinylalkoholfasern einer
Schnittlänge von 4 mm. Die Faserstoffe Polyester, Zellwolle und Polyvinylalkohol wurden mit
VE-Wasser bei einer Stoffdichte von 0,3% in Mischbütten aufgeschlagen bzw. vereinzelt. Der
Faserstoff wurde anschließend auf ein umlaufendes Sieb gepumpt. Während das Fasergemisch
entwässert bzw. das Wasser durch Vakuum abgesaugt wird, orientieren sich die Fasern auf der
Siebseite und werden als Vlies mit einem Trockengehalt von ca. 20% über Trockenzylinder
kontaktgetrocknet. Man erhält ein Vlies mit einem Flächengewicht von 80 g/m² und einer
Dicke von 0.32 mm.
Auf einen Träger (1) werden 5 × 5 mm große Stücke dieses Vlieses (2) aufgeklebt (Fig. 3).
Mit dem auf den Träger montierten Wischvlies werden die mit Heroin kontaminierten Test
felder mit leichtem Druck abgewischt.
Das auf den Träger montierte Wischvlies wird über dem Konjugatvlies des nach Beispiel 2b.
hergestellten Testträgers positioniert und mit leichtem Druck aufgedrückt und mit einer
Klammer fixiert.
Die Elutionsmittelaufgabezone wird 5 sec. in einen Chromatographiepuffer (150 mmol/l NaCl,
50 mmol/l Kaliumphosphatpuffer pH 7,2, getaucht. Man legt auf eine nicht saugende Unter
lage ab, und bestimmt nach 2 min.mit einem Chromameter der Fa. Minolta die Buntheit (C-Wert).
Danach wird visuell das Nachweisfeld auf die Anwesenheit von rosa Farbe geprüft.
Mit einer verdünnten Cocainiösung in Wasser wurden analog Beispiel 3 auf eine Polyethylen
folie Testbereiche mit 5, 10, 25, 50, 75 und 100 ng Cocain aufgetragen. Analog Beispiel 3
werden mit einer Vorrichtung nach Schema 2, die jeweils Testträger nach Beispiel 2a zur Be
stimmung von Cocain enthält die Testbereiche abgewischt. Die Wischvliese sind rund bei
einem Durchmesser von 4 mm. Das Nachweisfeld wird jeweils visuell auf Rosafarbung geprüft.
Ein Teil Cocain wird mit 1000 Teilen Lactose vermischt. 5 mg dieses Gemisches werden auf
einer Fläche von 220 cm² eines Baumwolltuches verteilt. Ca. 10 cm² diese Bereiches werden
analog Beispiel 4 abgewischt und analysiert. In allen Versuchen wird eine Rosafärbung in dem
Nachweisfeld visuell detektiert. Analog wird eine Polyethylenfolie von 2 cm² mit cocainhal
tigen Partikeln kontaminiert und durch Wischen analysiert. Es wird ebenfalls in allen Versuchen
wird eine Rosafarbung in dem Nachweisfeld visuell detektiert.
Auf eine rauhe anodisierte Aluminiumplatte werden je 10 µl entsprechend verdünnter
Lösungen von Cocainhydrochlorid in Wasser aufgegeben und auf eine Fläche von 1 cm² ver
teilt. Nach Antrocknen bei 37°C für 15 min. werden die kontaminierten Flächen mit einem
runden Vlies nach Beispiel 3 mit einem Durchmesser von 5 mm mit leichtem Druck abge
wischt. Dabei wird sowohl ohne Befeuchtung (trocken) als auch nach vorheriger Befeuchtung
des Wischvlieses mit 2 µl Wasser gewischt. Die Wischvliese werden dann jeweils auf die
Konjugatzone eines Testträgers zum Nachweis auf Cocain nach Beispiel 3 aufgelegt und mit
einer flachen Pinzette festgehalten. Das Saugvlies des Testträgers wird zur Hälfte für 10 sec. in
Wasser getaucht. Anschließend legt man den Testträger auf einer flachen nicht saugenden Un
terlage ab und bestimmte nach 2 min.in dem Nachweisfeld die Farbe.
Bei der Untersuchung der Körperoberfläche von Personen zeigt sich folgendes Bild:
Bei der Untersuchung der Körperoberfläche unter der Achsel wird mit dem Testträger bei Personen, die Opiate bzw. Kokain konsumiert hatten (nachgewiesen durch einen positiven Befund im Urin, ein positives Ergebnis erhalten. Der Ort auf der Körperoberfläche schließt aus, daß es sich bei den nachgewiesenen Analyten um Drogenmoleküle handelt, die durch externe Kontamination auf die Körperoberfläche gelangt sind. Die nachgewiesenen Drogen moleküle bzw. deren Metaboliten sind mit Hilfe von Schweiß abgelagert worden, das heißt, sie müssen konsumiert worden sein.
Bei der Untersuchung der Körperoberfläche unter der Achsel wird mit dem Testträger bei Personen, die Opiate bzw. Kokain konsumiert hatten (nachgewiesen durch einen positiven Befund im Urin, ein positives Ergebnis erhalten. Der Ort auf der Körperoberfläche schließt aus, daß es sich bei den nachgewiesenen Analyten um Drogenmoleküle handelt, die durch externe Kontamination auf die Körperoberfläche gelangt sind. Die nachgewiesenen Drogen moleküle bzw. deren Metaboliten sind mit Hilfe von Schweiß abgelagert worden, das heißt, sie müssen konsumiert worden sein.
Claims (10)
1. Verfahren zum Nachweis eines Analyten in Körperflüssigkeit mit einem Testkit, das
umfaßt,
- a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
- - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
- - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
- - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezi fisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektier baren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
- b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
- c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Test streifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
dadurch gekennzeichnet, daß mit dem Wischelement Körperflüssigkeit von einer Körper
region aufgenommen und untersucht wird.
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
das Wischelement mit der Oberfläche des Teststreifens kontaktiert wird,
Elutionsflüssigkeit auf die Elutionsmittelaufgabezone aufgegeben wird, die in Richtung
zur Zielzone an der Kontaktstelle mit dem Wischelement vorbeiwandert, wobei der
Analyt von der Elutionsflüssigkeit aufgenommen wird und
die Anwesenheit des Analyten in der Zielzone aufgrund einer immunologischen
Bindungsreaktion gemessen wird.
3. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der nachzuweisende Analyt
eine illegale Droge oder deren Metabolit ist.
4. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1-3, dadurch gekennzeichnet, daß es sich bei der
Körperregion um Haut oder Schleimhaut handelt.
5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1-4, dadurch gekennzeichnet, daß es sich bei der
Körperflüssigkeit um eine Körperausscheidung handelt.
6 Verfahren gemäß Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die Körperausscheidung
Schweiß oder Speichel ist.
7. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Material des
Wischelementes mit der Andrückvorrichtung fest verbunden ist.
8. Verwendung eines Testkits umfassend
- a) einen Teststreifen aus einem oder mehreren kapillaraktiven chromatographiefähigen flächenförmigen Materialien in Fluidkontakt zueinander mit
- - einer Elutionsmittelaufgabezone an einem Ende und einer Zielzone am anderen Ende,
- - einer Abfangzone zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Zielzone, in der ein Ab fangreagenz immobilisiert ist, das fähig ist, entweder den Analyten, einen spezifischen Analytbindungspartner oder einen markierten Bindungspartner spezifisch zu binden und
- - einer Konjugatzone, zwischen Elutionsmittelaufgabezone und Abfangzone, die einen wanderungsfähigen markierten Bindungspartner enthält, der fähig ist, entweder den Analyten oder den spezifischen Analytbindungspartner oder das Abfangreagenz spezi fisch zu binden, wobei die Bindung des markierten Bindungspartners zu einem detektier baren Signal in der Abfangzone oder in der Zielzone führt, das die Anwesenheit des Analyten anzeigt,
- b) ein Wischelement separat zur Teststreifenoberfläche,
- c) eine Andrückvorrichtung, die bewirkt, daß das Wischelement mit der Test streifenoberfläche zwischen Elutionsmittelauftragszone und Konjugatzone oder in der Konjugatzone selbst kontaktiert werden kann,
zur Bestimmung eines Analyts in einer Körperflüssigkeit, wobei diese Körperflüssigkeit
von einer Körperregion abgewischt wird.
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