DE102007048432A1 - A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge - Google Patents
A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge Download PDFInfo
- Publication number
- DE102007048432A1 DE102007048432A1 DE200710048432 DE102007048432A DE102007048432A1 DE 102007048432 A1 DE102007048432 A1 DE 102007048432A1 DE 200710048432 DE200710048432 DE 200710048432 DE 102007048432 A DE102007048432 A DE 102007048432A DE 102007048432 A1 DE102007048432 A1 DE 102007048432A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- substrate according
- transglutaminase substrate
- protein
- transglutaminase
- spi
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
- C07K14/36—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Actinomyces; from Streptomyces (G)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
- A61L27/16—Macromolecular materials obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
- A61L27/22—Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
- A61L27/227—Other specific proteins or polypeptides not covered by A61L27/222, A61L27/225 or A61L27/24
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/04—Macromolecular materials
- A61L31/043—Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
- A61L31/047—Other specific proteins or polypeptides not covered by A61L31/044 - A61L31/046
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/14—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L31/16—Biologically active materials, e.g. therapeutic substances
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/20—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials
- A61L2300/25—Peptides having up to 20 amino acids in a defined sequence
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/40—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a specific therapeutic activity or mode of action
- A61L2300/404—Biocides, antimicrobial agents, antiseptic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/40—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a specific therapeutic activity or mode of action
- A61L2300/432—Inhibitors, antagonists
- A61L2300/434—Inhibitors, antagonists of enzymes
Abstract
Description
Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein neuartiges Transglutaminasesubstrat, das Cystein- und Serinproteasen inhibiert und antibiotische Eigenschaften besitzt, sowie Verfahren zur Herstellung des Proteins. Weiterhin werden Proteinsequenzen des erfindungsgemäßen Transglutaminasesubstrats zur Verfügung gestellt.The The present invention relates to a novel transglutaminase substrate, which inhibits cysteine and serine proteases and antibiotic properties and methods of making the protein. Farther be protein sequences of the invention Transglutaminasesubstrats provided.
Transglutaminasen
(Protein-Glutamin: Amin-γ-Glutamyltransferasen, EC 2.3.2.13)
sind ubiquitär vorkommende Enzyme, die die kovalente Vernetzung
von Proteinen über die Seitenketten der Aminosäuren
Glutamin und Lysin katalysieren (siehe
Actinomyceten
sind dafür bekannt, dass sie die meisten natürlichen
Antibiotika, darunter eine Vielzahl von Proteaseinhibitoren, produzieren.
Proteaseinhibitoren, die von Streptomyceten exportiert werden, sind
in der Regel kleine Moleküle (Molmassen kleiner 1.000 Dalton),
die eine peptidische Struktur aufweisen und sehr spezifisch Proteasen
hemmen. Proteasen werden nach ihrem Katalysemechanismus bzw. nach
dem Aufbau des Katalysezentrums in vier Hauptklassen eingeteilt,
das sind Serinproteasen, Cysteinproteasen, Aspartylproteasen und
Metallopoteasen. Jeder Proteasetyp vereinigt verschiedene Enzymklane
und Enzymfamilien unter seinem Dach. Zu den Serinproteasen gehören
beispielsweise Trypsin-, Chymotrypsin- und Elastase-ähnliche
Proteasen sowie Aminopeptidasen, zu den Cysteinproteasen Papain-ähnliche
Proteasen und Dipeptidylpeptidasen, zu den Aspartylproteasen Pepsin-ähnliche
Proteasen und zu den Metalloproteasen Thermolysinähnliche
Proteasen, Collagenasen oder Carboxypeptidasen. Entsprechend inhibiert
Leupeptin Trypsin-ähnliche Proteasen (
Weiterhin
ist bekannt, dass mit Streptomyceten zwei Arten von proteinogenen
Proteaseinhibitoren hergestellt werden können: der Thermolysin-Inhibitor
SMPI (
Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung bestand darin, Proteaseinhibitoren mit antibiotischen Eigenschaften herzustellen, die mit Transglutaminasen enzymatisch vernetzt oder funktionalisiert werden können. Zur Lösung der Aufgabe wurden erfindungsgemäß Stämme von Actinomyceten mehrere Tage kultiviert. Zellüberstände von Flüssigkulturen oder wässrige Extrakte von Agarkulturen wurden unter Verwendung verschiedener Proteasen auf Inhibitoraktivität untersucht. Überraschenderweise wurde dabei ein neuartiges antibiotisches Transglutaminasesubstrat mit Inhibierungsaktivität gegen Cystein- und Serinproteasen, vorzugsweise gegen Papain von Papaya carica, entdeckt. Das erfindungsgemäße Transglutaminasesubstrat wird nachfolgend als Streptomyces-Papaininhibitor (SPI) bezeichnet.The The object of the present invention was protease inhibitors to produce antibiotic properties with transglutaminases can be enzymatically crosslinked or functionalized. to Solution of the problem were inventively strains of Actinomycetes cultured for several days. Cell supernatants of liquid cultures or aqueous extracts of Agar cultures were grown using various proteases Inhibitor activity examined. Surprisingly became a novel antibiotic transglutaminase substrate with inhibitory activity against cysteine and serine proteases, preferably against Papain from Papaya carica. The invention Transglutaminase substrate is hereinafter referred to as Streptomyces papaininhibitor (SPI).
Von den Erfindern ist beobachtet worden, dass SPI etwa 30 Stunden nach dem Animpfen in Flüssigkulturen nachweisbar ist und seine höchste Aktivität nach 48 Stunden erreicht.From The inventors have observed that SPI is about 30 hours after The seeding is detectable in liquid cultures and his highest activity reached after 48 hours.
Von
den Erfindern ist weiterhin beobachtet worden, dass Streptomyces
mobaraensis, ein Stamm, der früher zur Gattung Streptoverticillium
gehörte, die höchste SPI-Menge in Flüssigmedien
erzeugt (siehe
Die
vorliegende Erfindung stellt weiterhin ein Verfahren zur Herstellung
von SPI zur Verfügung. Die Produktion ist dabei aus zellfreien Überständen
von Flüssigkulturen oder filtrierten Extrakten von Agarkulturen möglich.
In einer bevorzugten Ausführungsform wird SPI mit Flüssigkulturen
von Streptomyces mobaraensis in 40–48 Stunden hergestellt.
Die Reinigung bis zur Homogenität erfolgt danach aus zellfreien Überständen durch
Ethanolfällung und Kationenaustauschchromatographie an
Fractogel EMD SO3 – (siehe
Das gereinigte Produkt wird erfindungsgemäß unbehandelt oder nach einer Entsalzung als Lyophilisat, Ammoniumsulfatpräzipitat oder in gepufferter Lösung nach Zusatz von 30–50 Prozent Glycerin, 10–30% Maltodextrin, 5–30% Polyethylenglycol oder 2–20 mM Glutathion bei –80°C bis +4°C gelagert.The purified product is untreated according to the invention or after desalting as a lyophilisate, ammonium sulfate precipitate or in buffered solution after addition of 30-50 Percent glycerin, 10-30% maltodextrin, 5-30% polyethylene glycol or 2-20 mM glutathione at -80 ° C to + 4 ° C stored.
Die
vorliegende Erfindung stellt weiterhin Information zur Struktur
von SPI zur Verfügung. Mit SDS-Gelelektrophorese wurde
für SPI eine apparente Molekularmasse von 12.000 Dalton
bestimmt. SPI besitzt damit eine ähnliche Molmasse wie
die beiden bekannten proteinogenen Streptomyces-Proteaseinhibitoren
SMPI und SSI. Die SPI-Proteinbande liegt signifikant unterhalb der
TAMEP-Inhibitorbande. Die Ermittlung des isoelektrischen Punkts
von SPI ergab einen Wert von 7.3. SPI ist wie Vertreter der SSI-Familie
hitzestabil (siehe
- A) N-Terminale Sequenz von SPI. Die mit dem mutmaßlichen Protein von Streptomyces lavendulae identischen Aminosäuren sind grau unterlegt:
- B) Nukleinsäuresequenz eines mutmaßlichen Proteins von Streptomyces lavendulae (EMBL-EBI: AAD32751)
- C) Aus der Nukleinsäuresequenz von Streptomyces lavendulae übersetzte Proteinsequenz eines mutmaßlichen Proteins mit unbekannter Funktion (SwissProt Entry Name: Q9X5U4_STRLA). Aminosäuren, die mit SPI identisch sind, sind grau unterlegt:
- A) N-terminal sequence of SPI. The amino acids identical to the putative protein of Streptomyces lavendulae are highlighted in gray:
- B) Nucleic acid sequence of a putative protein of Streptomyces lavendulae (EMBL-EBI: AAD32751)
- C) Protein sequence of a putative protein of unknown function translated from the nucleic acid sequence of Streptomyces lavendulae (SwissProt Entry Name: Q9X5U4_STRLA). Amino acids that are identical to SPI are highlighted in gray:
Das mutmaßliche Protein besitzt offensichtlich neben der reifen Domäne ein Signalpeptid (Met → Ala29/Ala30, unterstrichene Aminosäuren), das die für extrazelluläre Streptomyces-Proteine typische Länge von 29 bis 30 Aminosäuren aufweist. Die berechnete Molmasse ohne Signalpeptid beträgt 11.944 bzw. 12.015 Dalton, was gut mit der experimentell gefundenen apparenten Molmasse von SPI übereinstimmt. Der berechnete pI des unbekannten Proteins liegt mit 8,45 um eine pH-Einheit höher als der experimentell ermittelte pI von SPI.The putative protein obviously has next to the mature one Domain a signal peptide (Met → Ala29 / Ala30, underlined Amino acids), which are extracellular Streptomyces proteins typical length of 29 to 30 amino acids having. The calculated molecular weight without signal peptide is 11,944 or 12,015 daltons, which is fine with the experimentally found apparent molecular mass of SPI matches. The calculated pI of the unknown protein is higher at 8.45 by one pH unit as the experimentally determined pI of SPI.
Markierungsversuche von gereinigtem SPI mit dem spezifischen Markierungsreagenz Monobiotinylcadaverin (MBC) und Transglutaminase offenbarten überraschenderweise, dass SPI reaktive Glutaminreste besitzt, die die erfindungsgemäße Vernetzung und Modifizierung von SPI mit Transglutaminasen ermöglichen.labeling experiments of purified SPI with the specific labeling reagent monobiotinylcadaverine (MBC) and transglutaminase surprisingly revealed that SPI has reactive glutamine residues which are the inventive Enable cross-linking and modification of SPI with transglutaminases.
Weiterhin
wurde von den Erfindern beobachtet, dass die Reaktivität
der Glutaminreste von SPI durch Strukturmodulatoren der allgemeinen
Formel R1-CO-X-R3 (mit
X = NR2, O und R1,
R2, R3 wie in der
Deutschen Patentschrift vom 17.09.2007 beschrieben) ohne Verlust
der Inhibierungssaktivität gesteigert werden kann (siehe
Markierungsversuche von gereinigtem SPI mit dem spezifischen Markierungsreagenz N-Biotinyl-(6-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycyl)hexandiamin (ZQG-HDA-Biotin) und Transglutaminase offenbarten überraschenderweise, dass SPI reaktive Lysinreste besitzt, die die erfindungsgemäße Vernetzung von SPI mit Transglutaminasen ermöglichen.labeling experiments of purified SPI with the specific labeling reagent N-biotinyl- (6-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycyl) hexanediamine (ZQG-HDA-biotin) and transglutaminase surprisingly revealed that SPI has reactive lysine residues which are the inventive Enable cross-linking of SPI with transglutaminases.
Weiterhin wurde von den Erfindern beobachtet, dass die Reaktivität der Lysinreste von SPI durch Strukturmodulatoren der allgemeinen Formel R1-CO-X-R3 (mit X = NR2, O und R1, R2, R3 wie in der Deutschen Patentschrift vom 17.09.2007 beschrieben) ohne Verlust der Inhibierungsaktivität gesteigert (Acylpolyamine) oder reduziert (Acylaminosäuren) werden kann. Die Konzentration von Acylamidoverbindungen liegt bei 0–0,2% (m/v), vorzugsweise bei 0–0,07% (m/v).Furthermore, it was observed by the inventors that the reactivity of the lysine residues of SPI by structural modulators of the general formula R 1 -CO-XR 3 (with X = NR 2 , O and R 1 , R 2 , R 3 as in the German Patent 17.09 .2007) can be increased (acylpolyamines) or reduced (acylamino acids) without loss of the inhibiting activity. The concentration of acylamido compounds is included 0-0.2% (m / v), preferably 0-0.07% (m / v).
Die Vernetzung von SPI wurde erfindungsgemäß mit Transglutaminase durchgeführt. Dabei wurde von den Erfindern die Entstehung oligomerer und polymerer Aggregate von SPI beobachtet. Der Versuch zeigt weiterhin, dass sich SPI für den enzymatischen Einbau in neuartige Biomaterialien mit antibiotischen Eigenschaften eignet.The Crosslinking of SPI according to the invention with transglutaminase carried out. It was the origin of the inventors oligomeric and polymeric aggregates observed by SPI. The attempt further shows that SPI for enzymatic incorporation in novel biomaterials with antibiotic properties.
Die
vorliegende Erfindung stellt weiterhin Information zur biologischen
Funktion von SPI zur Verfügung. SPI inhibiert erfindungsgemäß Cystein-
und Serinproteasen, vorzugsweise Mitglieder der Papainfamilie, insbesondere
aber Papain von Papaya carica (siehe
Die
vorliegende Erfindung stellt weiterhin Information zur antibiotischen
Eigenschaft von SPI zur Verfügung. Von den Erfindern wurde
beobachtet, dass Besprühen von Cuscuta reflexa mit einer
SPI-Lösung ein Absterben des Tabakpflanzenparasits zur
Folge hat (siehe
Erfindungsgemäß wurde weiterhin beobachtet, dass die Entstehung von Schimmel auf Wurstscheiben durch SPI gehemmt wird.According to the invention was furthermore observed that the emergence of mold on sausage slices through SPI is inhibited.
Erfindungsgemäß wurde weiterhin beobachtet, dass SPI das Wachstum von multizellulären Actinomyceten hemmt.According to the invention was continues to observe that SPI growth of multicellular Actinomycetes inhibits.
Die folgenden Abbildungen und Beispiele erläutern die Erfindung.The The following figures and examples illustrate the invention.
Beschreibung der AbbildungenDescription of the pictures
Silbergefärbtes SDS-Polyacrylamidgel
Spur
M: Molekulargewichtsmarkerproteine: 66 kDa, 45 kDa, 29 kDa, 0 kDa,
14,2 kDa; Spur 1: Zellfreier Kulturbrühenüberstand;
Spur 2: Überstand einer 1:1 Mischung von zellfreiem Kulturbrühenüberstand
und Ethanol; Spur 3: Vereinigte Fraktionen einer Ionenaustauschchromatographie
(SPI-Pool); Spur 4: SPI-Pool nach Dialyse durch eine 10 kDa-Membran.
Silver-stained SDS-polyacrylamide gel
Lane M: Molecular weight marker proteins: 66 kDa, 45 kDa, 29 kDa, 0 kDa, 14.2 kDa; Lane 1: Cell-free culture broth supernatant; Lane 2: supernatant of a 1: 1 mixture of cell-free culture broth supernatant and ethanol; Lane 3: United fractions of ion exchange chromatography (SPI pool); Lane 4: SPI pool after dialysis through a 10 kDa membrane.
- A) Silbergefärbtes SDS-Polyacrylamidgel
- B) Auf Nitrocellulose transferierte Proteine einer SDS-Polyacrylamidgelelektrophorese angefärbt mit einem Streptavidin-Alkalische Phosphatase-Konjugat Spuren 1, 2, Inkubation für 1 und 3 Stunden
- A) Silver-stained SDS-polyacrylamide gel
- B) Nitrocellulose-transferred proteins of SDS-polyacrylamide gel electrophoresis stained with streptavidin-alkaline phosphatase conjugate lanes 1, 2, incubation for 1 and 3 hours
- A) Unbehandelte Tabakpflanze mit dem Parasiten
- B) Mit SPI behandelte Tabakpflanze mit abgestorbenem Parasiten
- A) Untreated tobacco plant with the parasite
- B) SPI-treated tobacco plant with dead parasite
Die folgenden Beispiele dienen der Erläuterung der vorliegenden Erfindung.The The following examples serve to explain the present Invention.
Beispiel IExample I
Kultivierung von StreptomycetenCultivation of streptomycetes
a) Plattenkulturen zum Inokulieren von Flüssigmedien und zur Stammkonservierunga) plate cultures for inoculating Liquid media and for root preservation
Die
Anzucht der Mikroorganismen zur Inokulation von Flüssigmedien
sowie das Anlegen von Dauerkulturen erfolgte auf GYM-Agarplatten
(
Vor der Inokulation von Flüssigkulturen wurden Vorkulturen auf einer neuen Agarplatte angelegt. Hierzu wurden Bakterienkolonien mit einer Impföse auf der Platte ausgestrichen und bei 28°C mindestens 5 Tage inkubiert, bis neben dem Substratmycel auch sporulierende Lufthyphen zu sehen waren.In front Inoculations of liquid cultures were precultures created on a new agar plate. To this were bacterial colonies struck with a loop on the plate and at Incubated at 28 ° C for at least 5 days until next to the substrate mycelium also sporulating aerial hyphae were to be seen.
Zur Stammkonservierung wurden die Streptomycetenstämme nach etwa 30 Tagen auf eine neue GYM-Agarplatte überimpft. Die Petrischalen wurden anschließend mit einem Kunststofffilm verschlossen und bei 28°C inkubiert.to Stem conservation was the Streptomycetenstämme after about 30 days on a new GYM agar plate inoculated. The Petri dishes were subsequently covered with a plastic film closed and incubated at 28 ° C.
b) Flüssigkulturen zur präparativen Herstellung von SPIb) liquid cultures for preparative Production of SPI
Zur präparativen Produktion von SPI wurden 1 L Erlenmeyer-Kulturkolben mit 110 ml Flüssigmedium befüllt. Nach dem Autoklavieren der Kulturmedien wurde über einen Sterilfilter 1 ml Spurenelementlösung zugeführt und mit einer Vorkultur, die auf GYM-Agarplatten angezüchtet wurde, beimpft.to preparative production of SPI were 1 L Erlenmeyer culture flasks filled with 110 ml of liquid medium. After autoclaving The culture media was filtered through a sterile filter 1 ml of trace element solution fed and pre-cultured on GYM agar plates was inoculated, inoculated.
Die Kultivierung erfolgte bei 28°C bis zum Erreichen des gewünschten SPI-Produkts. Der Sauerstoffeintrag, der für das Wachstum der aeroben Bakterien benötigt wird, erfolgte durch intensive Bewegung der Flüssigkultur auf einem Querschüttler mit einer Frequenz von 110 pro Minute. Nach drei bis vier Tagen wurde das SPI-enthaltende Kulturmedium von den Mikroorganismen durch Zentrifugation und Filtration getrennt, direkt weiter verarbeitet oder bei –20°C gelagert.The Cultivation was carried out at 28 ° C until reaching the desired SPI product. The oxygen input needed for growth The aerobic bacteria is needed, carried out by intensive Movement of the liquid culture on a cross shaker with a frequency of 110 per minute. After three to four days For example, the SPI-containing culture medium was permeated by the microorganisms Centrifugation and filtration separated, directly further processed or stored at -20 ° C.
c) Kultivierung von Streptomyces mobaraensisc) Cultivation of Streptomyces mobaraensis
Die
Anzucht und Stammkonservierung von Streptomyces mobaraensis erfolgte
auf Agarplatten, ausgehend von einer Reinkultur der DSMZ. Die Submerskultivierung
zur SPI-Produktion erfolgte, wie unter Beispiel I b) beschrieben,
in einem Komplexmedium das zusätzlich mit Spurenelementen
angereichert war (
Beispiel IIExample II
Bestimmung der Inhibierungsaktivität von SPIDetermination of inhibitory activity from SPI
a) Vorinkubation mit Papaina) pre-incubation with papain
Der eingesetzte Inhibitoraktivitätstests für SPI beruht auf einer Vorinkubation des inhibierenden Proteins mit Papain für die Dauer von 30 Minuten bei Raumtemperatur und Bestimmung der proteolytischen Restaktivität mit dem unter 2b) beschriebenen Aktivitätstests.Of the based inhibitor activity tests for SPI is based on a preincubation of the inhibiting protein with papain for the duration of 30 minutes at room temperature and determination of proteolytic Residual activity with the activity test described under 2b).
b) Modifizierter Ansontestb) Modified Ansontest
-
(
Yang und Wang, 1999, Bot. Bull. Acad. Sin. 40, S. 259–265 Yang and Wang, 1999, Bot. Bull. Acad. Sin. 40, pp. 259-265
200 μl Alkali-lösliches Casein (10 mg/ml) in 0,1 M Citrat pH 6,5 und 200 μl einer geeigneten Protease-SPI-Mischung mit 100 μg Papain wurden bei 37°C für 10 min inkubiert. Nach Zugabe von 600 μl Trichloressigsäure wurde zentrifugiert, und die Absorption des Überstands wurde bei 280 nm gegen eine Blindprobe ohne Papain in 1-cm-Küvetten gemessen. Die Konzentration absorbierender Aminosäuren und Peptide, die durch die Restaktivität der Protease im Überstand verbleiben, wird summarisch als „freies Tyrosin" erfasst. Der Extinktionskoeffizient für Tyrosin beträgt unter den gewählten Bedingungen 0,9611 mM–1 cm–1. Eine modifizierte Anson-Einheit (AE) entspricht dabei der Freisetzung von einem Mikromol Tyrosin pro Minute. Die Reduktion von einer Anson-Einheit durch SPI wird als eine Inhibierungseinheit (IE) bezeichnet.200 μl of alkali-soluble casein (10 mg / ml) in 0.1 M citrate pH 6.5 and 200 μl of a suitable protease-SPI mixture with 100 μg papain were incubated at 37 ° C for 10 min. After addition of 600 μl of trichloroacetic acid, centrifugation was carried out and the absorbance of the supernatant was measured at 280 nm against a non-papain blank in 1 cm cuvettes. The concentration of absorbing amino acids and peptides that Residual activity of the protease in the supernatant is summarily recorded as "free tyrosine." The extinction coefficient for tyrosine is 0.9611 mM -1 cm -1 under the conditions chosen, with a modified Anson unit (AE) corresponding to the release of One micromole of tyrosine per minute The reduction of an Anson unit by SPI is referred to as an inhibition unit (IU).
c) Paranitroanilid-Testc) Paranitroanilide test
100 μl 2 mM Cbz-Phe-Arg-pNA in Ethanol und 400 μl 0,1 M Citrat pH 6,5 mit 25 μg Papain wurden 10 min bei 37°C inkubiert. Nach Zugabe von 500 μl 5 mM PMSF in Dimethylsulfoxid wurde zentrifugiert, und die Absorption im Überstand wurde bei 405 nm gegen eine Blindprobe ohne Papain gemessen. Der Extinktionskoeffizient für freigesetztes para-Nitroanilin beträgt unter den gewählten Bedingungen 14,253 mM–1 cm–1.100 μl of 2 mM Cbz-Phe-Arg-pNA in ethanol and 400 μl of 0.1 M citrate pH 6.5 with 25 μg papain were incubated for 10 min at 37 ° C. After adding 500 μl of 5 mM PMSF in dimethyl sulfoxide, centrifugation was carried out and the absorbance in the supernatant was measured at 405 nm against a blank without Papain. The extinction coefficient for released para-nitroaniline is 14.253 mM -1 cm -1 under the chosen conditions.
Beispiel IIIExample III
Reinigung von SPI aus der Kulturbrühe von Streptomyces mobaraensisPurification of SPI from the culture broth of Streptomyces mobaraensis
a) Herstellung eines zellfreien Überstandsa) Preparation of a cell-free supernatant
Streptomyces mobaraensis wurde, wie unter Beispiel I c) beschrieben, in einem Flüssigmedium 40–48 Stunden kultiviert. Die gebildete Zellmasse wurde durch Zentrifugation (10000 g, 4°C, 10 min) und Filtration abgetrennt, und der Überstand weiter verarbeitet.Streptomyces mobaraensis was, as described in Example I c), in one Liquid medium cultured for 40-48 hours. The educated Cell mass was purified by centrifugation (10,000 g, 4 ° C, 10 min) and filtration separated, and the supernatant on processed.
b) Anreicherung von SPI durch Ethanolfällungb) Accumulation of SPI by ethanol precipitation
Zellfreier Überstand wurde auf 4°C gekühlt, mit dem gleichen Volumen an –18°C kaltem Ethanol gemischt und 30 Minuten inkubiert. Nach Abtrennung der gefällten Proteine durch Zentrifugation (10000 g, 4°C, 10 min) wurden die verbleibenden Proteine des Überstands chromatographisch getrennt.Cell-free supernatant was cooled to 4 ° C, with the same volume mixed at -18 ° C cold ethanol and 30 minutes incubated. After separation of the precipitated proteins by Centrifugation (10,000 g, 4 ° C, 10 min) were the remaining Proteins of the supernatant separated by chromatography.
c) Säulenchromatographische Methodec) Column chromatographic method
Die
vollständige Reinigung von SPI erfolgte durch Niederdruck-Flüssigchromatographie
an einem starken Kationenaustauschermaterial. Vor Beginn wurde der
Ethanolüberstand durch Filtration durch einen 0,45-μ-Filter
von feinsten Partikeln befreit. Die für die Chromatographie
verwendeten Puffer wurden mit Milli-Q-Wasser angesetzt, vor Gebrauch
sterilfiltriert und im Ultraschallbad entgast. Tabelle 1: Elutionsbedingungen für
SPI
Die
Chromatographie erfolgte bei Raumtemperatur. Alle Protein enthaltenden
Fraktionen wurden durch Inhibitoraktivitätstest, SDS-PAGE
und Proteinbestimmungen charakterisiert. Fraktionen, die SPI enthielten,
wurden gegebenenfalls vereinigt, unbehandelt eingefroren oder vor
der Lagerung bei –20°C mit Entsalzungssäulen
oder durch Dialyse entsalzt, lyophilisiert, mit Ammoniumsulfat gefällt
oder durch Zugabe von Glycerin, Maltodextrin, Polyethylenglycol
oder Glutathion konditioniert.
Beispiel IVExample IV
Charakterisierung von SPICharacterization of SPI
a) Bestimmung der Molekülgrößea) Determination of the molecular size
Das
SDS-Polyacrylamidgel belegt die vollständige Reinigung
von SPI aus Streptomyces mobaraensis (siehe
b) Bestimmung des Isoelektrischen Punktsb) Determination of the isoelectric point
Der isoelektrischen Punkt von SPI wurde mit einem vorgefertigten Acrylamidgel von Serva (Servalyt Prenet) nach Angaben des Herstellers bestimmt. Zur Kalibrierung wurden Cytochrom (Pferd, pI von 10,7), Ribonuklease A (Rind, 9,5), Lectin (lens culinaris, 8,3, 8,0, 7,8), Myoglobin (Pferd, 7,4, 6,9), Carboanhydrase (Rind, 6,0), β-Lactoglobulin (Rind, 5,3, 5,2), Trypsininhibitor (Sojabohne, 4,5), Glucoseoxidase (Aspergillus niger, 4,2) und Amyloglucosidase (Aspergillus niger, 3,5) verwendet. Der gefundene isoelektrische Punkt von SPI liegt bei 7,3.Of the isoelectric point of SPI was using a prefabricated acrylamide gel Serva (Servalyt Prenet) according to the manufacturer. For calibration, cytochrome (horse, pI of 10.7), ribonuclease A (bovine, 9.5), lectin (lens culinaris, 8.3, 8.0, 7.8), myoglobin (Horse, 7.4, 6.9), carbonic anhydrase (bovine, 6.0), β-lactoglobulin (Bovine, 5.3, 5.2), trypsin inhibitor (soybean, 4.5), glucose oxidase (Aspergillus niger, 4,2) and amyloglucosidase (Aspergillus niger, 3,5) used. The found isoelectric point of SPI lies at 7.3.
c) Bestimmung von Proteinsequenzenc) Determination of protein sequences
Gereinigter
SPI wurde durch Gelelektrophorese getrennt (
Beispiel VExample V
Biotinylierung von SPI mit TransglutaminaseBiotinylation of SPI with transglutaminase
a) Markierung mit Monobiotinylcadaverina) Labeling with monobiotinylcadaverine
Die Markierung von SPI zur Bestimmung reaktiver Glutaminseitenketten erfolgte in 0,1 M N-(2-Hydroxyethyl)piperazin-N'-(2-ethansulfonsäure) (HEPES) pH 7,5. 100 μl gepufferte Lösung enthielten 25 μl SPI (300 μg/ml), 2 mM Monobiotinylcadaverin (MBC), 0,06% Lauroylsarcosin und 5,4 μl Transglutaminase (0.5 mg/ml). Die Inkubation erfolgte bei 37°C bis zu 24 Stunden. Die Reaktionsmischung wurde durch SDS-Polyarylamidgelelektrophorese getrennt, auf eine Nitrocellulosemembran transferiert und mit einem Avidin-Alkalische Phosphatase-Konjugat angefärbt. Dazu wurden zunächst nach dem Proteintransfer unspezifische Bindungsstellen der Nitrocellulosemembran mit fettfreier Milch blockiert. Nach mehrfachem Waschen mit 10 mM Tris-HCl/150 mM NaCl/0,05% Tween pH 8,0, Inkubation mit dem Avidinkonjugat (50 ng/ml) für 1,5 Stunden bei Raumtemperatur, erneutem Waschen und Einstellen der Membran auf pH 9,5 mit 0,1 M Tris-HCl/0,1 M NaCl/5 mM MgCl2 erfolgte die Färbung mit 5-Brom-4-chlorindolylphosphat und 2,2'-Di-p-nitrophenyl-5,5'-diphenyl-(3,3'-dimethoxy-4,4'-diphenylen)-ditetrazoliumchlorid (Nitrotetrazoliumblau).SPI labeling for reactive glutamine side chains was performed in 0.1M N- (2-hydroxyethyl) piperazine-N '- (2-ethanesulfonic acid) (HEPES) pH 7.5. 100 μl buffered solution contained 25 μl SPI (300 μg / ml), 2 mM monobiotinyl cadaverine (MBC), 0.06% lauroyl sarcosine and 5.4 μl transglutaminase (0.5 mg / ml). Incubation was at 37 ° C for up to 24 hours. The reaction mixture was separated by SDS-polyarylamide gel electrophoresis, transferred to a nitrocellulose membrane and stained with an avidin-alkaline phosphatase conjugate. For this, non-specific binding sites of the nitrocellulose membrane were blocked with fat-free milk after protein transfer. After multiple washes with 10 mM Tris-HCl / 150 mM NaCl / 0.05% Tween pH 8.0, incubation with the avidin-conjugate (50 ng / ml) for 1.5 hours at room temperature, rinsing again and adjusting the membrane to pH 9.5 with 0.1 M Tris-HCl / 0.1 M NaCl / 5 mM MgCl 2 was stained with 5-bromo-4-chloroindolyl phosphate and 2,2'-di-p-nitrophenyl-5,5'- diphenyl (3,3'-dimethoxy-4,4'-diphenylene) -ditetrazolium chloride (nitrotetrazolium blue).
b) Markierung mit N-Biotinyl-(5-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycvl)cadaverinb) Labeling with N-biotinyl- (5-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycyl) cadaverine
Das enzymatische Markierungsverfahren von SPI zur Bestimmung von reaktiven Lysinresten erfolgte wie unter 5a) beschrieben. Nur enthielt die Reaktionsmischung anstelle von MBC 0,13 mM N-Biotinyl-(6-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycyl)hexandiamin (ZQG-HDA-Biotin).The enzymatic labeling methods of SPI for the determination of reactive Lysine residues were carried out as described under 5a). Only contained the Reaction mixture instead of MBC 0.13 mM N-biotinyl- (6-N'-carbobenzoxy-L-glutaminylglycyl) hexanediamine (ZQG HDA biotin).
Beispiel VIExample VI
Vernetzung von SPI mit TransglutaminaseCrosslinking of SPI with transglutaminase
Die Vernetzung von SPI durch Transglutaminase erfolgte wie unter 5a) beschrieben in HEPES-Puffer pH 7,5 mit 0,05% N-Lauroyl-3-N',N'-dimethylpropandiamin und ohne Markierungsreagenz. Die Reaktionsmischung wurde bis zu 24 Stunden inkubiert, durch SDS-Polyacrylamidgelelektrophorese getrennt und silbergefärbt.The Crosslinking of SPI by transglutaminase was carried out as in 5a) described in HEPES buffer pH 7.5 with 0.05% N-lauroyl-3-N ', N'-dimethylpropanediamine and without labeling reagent. The reaction mixture was up to Incubated for 24 hours, separated by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and silver colored.
Beispiel VIIExample VII
Bestimmung der Spezifität von SPIDetermination of specificity of SPI
Die
Inhibitoraktivität von SPI gegenüber verschiedenen
Proteasen wurde mit der unter 2a) beschriebenen Analysenmethode
bestimmt. Dabei wurde für Serin- und Metalloproteasen das
Verfahren dahin gehend verändert, dass als Puffer 0,1 M
Tris/HCl pH 7,5 mit 2 mM CaCl2 verwendet
wurde. Dabei zeigte sich die hohe Aktivität von SPI gegenüber
Papain, Bromelain, Trypsin, Proteinase K und Subtilisin. Weiterhin
werden Dispase und Thermolysin bei hohen Konzentration inhibiert
(Tabelle 2). Tabelle 2: Inhibierungsaktivität
von SPI gegenüber Endoproteasen
Es folgt ein Sequenzprotokoll nach WIPO St. 25.It follows Sequence listing according to WIPO St. 25. Dieses kann von der amtlichen Veröffentlichungsplattform des DPMA heruntergeladen werden.This can of the official publication platform of the DPMA become.
ZITATE ENTHALTEN IN DER BESCHREIBUNGQUOTES INCLUDE IN THE DESCRIPTION
Diese Liste der vom Anmelder aufgeführten Dokumente wurde automatisiert erzeugt und ist ausschließlich zur besseren Information des Lesers aufgenommen. Die Liste ist nicht Bestandteil der deutschen Patent- bzw. Gebrauchsmusteranmeldung. Das DPMA übernimmt keinerlei Haftung für etwaige Fehler oder Auslassungen.This list The documents listed by the applicant have been automated generated and is solely for better information recorded by the reader. The list is not part of the German Patent or utility model application. The DPMA takes over no liability for any errors or omissions.
Zitierte PatentliteraturCited patent literature
- - US 5156956 [0002] US 5156956 [0002]
Zitierte Nicht-PatentliteraturCited non-patent literature
- - Mehta und Eckert (Hrsg.), 2005, in: Prog. Exp. Tumor Res. (Bertino, Hrsg.) Vol. 38, Karger, Basel [0002] - Mehta and Eckert (ed.), 2005, in: Prog. Exp. Tumor Res. (Bertino, ed.) Vol. 38, Karger, Basel [0002]
- - Nielsen, 1995, Food Biotechnol., S. 119–156 [0002] - Nielsen, 1995, Food Biotechnol., Pp. 119-156 [0002]
- - Kim et al., 1998, Biochem. J. 331, S. 539–545 [0003] Kim et al., 1998, Biochem. J. 331, pp. 539-545 [0003]
- - Umezawa et al., 1970, J. Antibiot. (Tokyo) 23, S. 425–427 [0003] Umezawa et al., 1970, J. Antibiot. (Tokyo) 23, pp. 425-427 [0003]
- - Umezawa et al., 1973, J. Antibiot. (Tokyo) 26, S. 787–789 [0003] Umezawa et al., 1973, J. Antibiot. (Tokyo) 26, pp. 787-789 [0003]
- - Umezawa et al., 1976, J. Antibiot. (Tokyo) 29, S. 97–99 [0003] Umezawa et al., 1976, J. Antibiot. (Tokyo) 29, pp. 97-99 [0003]
- - Repic Lampret et al., 1999, Arch. Microbiol. 171, S. 397–404 [0003] Repic Lampret et al., 1999, Arch. Microbiol. 171, p. 397-404 [0003]
- - Sträter et al., 1995, Biochemisty 34, S. 14792–14800 [0003] Sträter et al., 1995, Biochemistry 34, pp. 14792-14800 [0003]
- - Nagai et al., 1997, J. Antibiot. 50, S. 82–84 [0003] Nagai et al., 1997, J. Antibiot. 50, pp. 82-84 [0003]
- - Yoshida et al., 1990, J. Antibiot. 43, S. 149–153 [0003] Yoshida et al., 1990, J. Antibiot. 43, pp. 149-153 [0003]
- - Hanlon und Liener, 1986, Camp. Biochem. Physiol. B, 84, S. 53–57 [0003] - Hanlon and Liener, 1986, Camp. Biochem. Physiol. B, 84, pp. 53-57 [0003]
- - Kadowaki et al., 2003, Biol. Chem. 384, S. 911–920 [0003] Kadowaki et al., 2003, Biol. Chem. 384, pp. 911-920 [0003]
- - Kunimoto et al., 1972, J. Anibiot. (Tokyo) 25, S. 251–255 [0003] Kunimoto et al., 1972, J. Anibiot. (Tokyo) 25, pp. 251-255 [0003]
- - Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 10, S. 93–103 [0003] Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 10, pp. 93-103 [0003]
- - Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 11, S. 51–66 [0003] Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 11, pp. 51-66 [0003]
- - Umezawa et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, S. 1088–1090 [0003] Umezawa et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, pp. 1088-1090 [0003]
- - Tanaka et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, S. 682–684 [0003] Tanaka et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, pp. 682-684 [0003]
- - Tate et al., 1998, J. Mol. Biol. 282, S. 435–446 [0004] Tate et al., 1998, J. Mol. Biol. 282, pp. 435-446 [0004]
- - Taguchi et al., 1998, J. Biochem. (Tokyo) 124, S. 804–810 [0004] Taguchi et al., 1998, J. Biochem. (Tokyo) 124, pp. 804-810 [0004]
- - Kumazaki et al., 1993, J. Biochem. (Tokyo) 114, S. 570–575 [0004] Kumazaki et al., 1993, J. Biochem. (Tokyo) 114, pp. 570-575 [0004]
- - Zotzel et. al., 2003, Eur. J. Biochem. 270, S. 3214–3222 [0004] - Zotzel et. al., 2003, Eur. J. Biochem. 270, pp. 3214-3222 [0004]
- - Kojima et I., 1993, J. Mol. Biol. 230, S. 395–399 [0004] Kojima et al., 1993, J. Mol. Biol. 230, pp. 395-399 [0004]
- - Vernekar et al., 1999, Biochem. Biophys. Res. Commun. 262, S. 702–707 [0004] Vernekar et al., 1999, Biochem. Biophys. Res. Commun. 262, pp. 702-707 [0004]
- - Angelova et al., 2006, Biochim. Biophys. Acta 1760, S. 1210–1216 [0004] - Angelova et al., 2006, Biochim. Biophys. Acta 1760, pp. 1210-1216 [0004]
- - Shirling und Gottlieb, 1966, Int. J. Syst. Bacteriol. 16, S. 313–340 [0030] - Shirling and Gottlieb, 1966, Int. J. Syst. Bacteriol. 16, pp. 313-340 [0030]
- - Voelskow, 19, Jahrbuch Biotechnologie, Carl Hanser Verlag, München, S. 341–361 [0035] - Voelskow, 19, Jahrbuch Biotechnologie, Carl Hanser Verlag, Munich, pp. 341-361 [0035]
- - Yang und Wang, 1999, Bot. Bull. Acad. Sin. 40, S. 259–265 [0036] - Yang and Wang, 1999, Bot. Bull. Acad. Sin. 40, pp. 259-265 [0036]
- - Poduslo, 1981, Anal. Biochem. 114, S. 131–139 [0045] - Poduslo, 1981, Anal. Biochem. 114, pp. 131-139 [0045]
- - Khyse-Andersen, 1984, J. Biochem. Biophys. Methods 10, S. 203–209 [0045] Khyse-Andersen, 1984, J. Biochem. Biophys. Methods 10, pp. 203-209 [0045]
- - Matsudaira, 1987, J. Biol. Chem. 262, S. 10035–10038 [0045] - Matsudaira, 1987, J. Biol. Chem. 262, pp. 10035-10038 [0045]
Claims (39)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE200710048432 DE102007048432A1 (en) | 2007-10-09 | 2007-10-09 | A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE200710048432 DE102007048432A1 (en) | 2007-10-09 | 2007-10-09 | A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE102007048432A1 true DE102007048432A1 (en) | 2009-04-16 |
Family
ID=40435296
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE200710048432 Withdrawn DE102007048432A1 (en) | 2007-10-09 | 2007-10-09 | A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE102007048432A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104374724A (en) * | 2014-11-25 | 2015-02-25 | 苏州东辰林达检测技术有限公司 | Method for detecting heavy metal mercury by using bromelain |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5156956A (en) | 1987-03-04 | 1992-10-20 | Ajinomoto Co., Inc. | Transgultaminase |
-
2007
- 2007-10-09 DE DE200710048432 patent/DE102007048432A1/en not_active Withdrawn
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5156956A (en) | 1987-03-04 | 1992-10-20 | Ajinomoto Co., Inc. | Transgultaminase |
Non-Patent Citations (30)
Title |
---|
Angelova et al., 2006, Biochim. Biophys. Acta 1760, S. 1210-1216 |
Hanlon und Liener, 1986, Camp. Biochem. Physiol. B, 84, S. 53-57 |
Kadowaki et al., 2003, Biol. Chem. 384, S. 911-920 |
Khyse-Andersen, 1984, J. Biochem. Biophys. Methods 10, S. 203-209 |
Kim et al., 1998, Biochem. J. 331, S. 539-545 |
Kojima et I., 1993, J. Mol. Biol. 230, S. 395-399 |
Kumazaki et al., 1993, J. Biochem. (Tokyo) 114, S. 570-575 |
Kunimoto et al., 1972, J. Anibiot. (Tokyo) 25, S. 251-255 |
Matsudaira, 1987, J. Biol. Chem. 262, S. 10035-10038 |
Mehta und Eckert (Hrsg.), 2005, in: Prog. Exp. Tumor Res. (Bertino, Hrsg.) Vol. 38, Karger, Basel |
Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 10, S. 93-103 |
Murakami et al., 1996, J. Enzyme Inhib. 11, S. 51-66 |
Nagai et al., 1997, J. Antibiot. 50, S. 82-84 |
Nielsen, 1995, Food Biotechnol., S. 119-156 |
Poduslo, 1981, Anal. Biochem. 114, S. 131-139 |
Repic Lampret et al., 1999, Arch. Microbiol. 171, S. 397-404 |
Shirling und Gottlieb, 1966, Int. J. Syst. Bacteriol. 16, S. 313-340 |
Sträter et al., 1995, Biochemisty 34, S. 14792-14800 |
Taguchi et al., 1998, J. Biochem. (Tokyo) 124, S. 804-810 |
Tanaka et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, S. 682-684 |
Tate et al., 1998, J. Mol. Biol. 282, S. 435-446 |
Umezawa et al., 1970, J. Antibiot. (Tokyo) 23, S. 425-427 |
Umezawa et al., 1973, J. Antibiot. (Tokyo) 26, S. 787-789 |
Umezawa et al., 1976, J. Antibiot. (Tokyo) 29, S. 97-99 |
Umezawa et al., 1984, J. Antibiot. (Tokyo) 37, S. 1088-1090 |
Vernekar et al., 1999, Biochem. Biophys. Res. Commun. 262, S. 702-707 |
Voelskow, 19, Jahrbuch Biotechnologie, Carl Hanser Verlag, München, S. 341-361 |
Yang und Wang, 1999, Bot. Bull. Acad. Sin. 40, S. 259-265 |
Yoshida et al., 1990, J. Antibiot. 43, S. 149-153 |
Zotzel et. al., 2003, Eur. J. Biochem. 270, S. 3214-3222 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104374724A (en) * | 2014-11-25 | 2015-02-25 | 苏州东辰林达检测技术有限公司 | Method for detecting heavy metal mercury by using bromelain |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bhagwat et al. | Collagen and collagenolytic proteases: A review | |
Suntornsuk et al. | Purification and characterisation of keratinase from a thermotolerant feather-degrading bacterium | |
Suphatharaprateep et al. | Production and properties of two collagenases from bacteria and their application for collagen extraction | |
Lomonte et al. | Activity of hemorrhagic metalloproteinase BaH-1 and myotoxin II from Bothrops asper snake venom on capillary endothelial cells in vitro | |
US10526594B2 (en) | Recombinantly produced neutral protease originating from Paenibacillus polymyxa | |
Baeza et al. | Proteolytic enzymes in Carica candamarcensis | |
EP1068301B1 (en) | Bacterial transglutaminases | |
Seong et al. | Production, purification, and characterization of a novel thermostable serine protease from soil isolate, Streptomyces tendae | |
Lin et al. | Feather meal and rice husk enhanced keratinases production by Bacillus licheniformis YJ4 and characters of produced keratinases | |
AU2018333356B2 (en) | Bacterial strain Clostridium histolyticum and its use | |
DE102007048432A1 (en) | A transglutaminase substrate which inhibits cysteine- and serine-protease and shows antibiotic properties, used e.g. for plant protection, treatment of infections and production of antibiotic film or surgical sponge | |
Korkmaz et al. | Keratinolytic activity of Streptomyces strain BA7, a new isolate from Turkey | |
DE102007047038A1 (en) | Transglutaminase substrate, which induces the autolysis of metalloprotease and possesses antibiotic properties | |
JP2011155932A (en) | Alkali keratinase, dna encoding the same and method for using the same | |
Broad et al. | Partial purification and properties of extracellular proteolytic activity of Bacteroides nodosus | |
Chakraborty et al. | Purification and characterization of a streptomycete collagenase | |
KR0180103B1 (en) | Thrombosis dissolution enzyme from bacillus subtilis | |
DE102007045627A1 (en) | New transglutaminase substrate is serine protease and metalloprotease inhibitor and possesses antibiotic characteristics, useful e.g. as biocide substance to inhibit the growth of fungus, virus, bacteria and as medicinal product | |
Dada et al. | Production, Purification and Characterisation of Keratinases from Bacillus species Isolated From Poultry Feather Waste | |
Wanderley et al. | Production and characterization of collagenase by Penicillium sp. UCP 1286 isolated from Caatinga soil | |
Stefanov et al. | Isolation and Purification of Proteolytic Enzymes, Produced by Strains of Genus Bacillus. | |
Abd EI-Aziz et al. | Optimization of microbial elastase production | |
WO2004083423A1 (en) | Thermally stable amidases | |
Suzuki et al. | Enzymatic degradation of fibroin fiber by a fibroinolytic enzyme of Brevibacillus thermoruber YAS-1 | |
Fukuda et al. | Novel extracellular alkaline metalloendopeptidases from Vibrio sp. NUF-BPP1: purification and characterization |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8122 | Nonbinding interest in granting licenses declared | ||
8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |