DE102007037068A1 - Detecting analytes of biological samples, comprises providing reversible binding partner, adding biological sample and binding analyte to reversibly immobilized analyte binder, adding stripping buffer, detecting analyte in stripping buffer - Google Patents
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Abstract
Description
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren zur Detektion von Analyten aus biologischen Proben umfassend die folgenden Verfahrensschritte:
- a) Bereitstellung eines an eine Festphase immobilisierten Reversiblen Bindungspartners 1, an den ein Analyt-Binder über einen an den Analyt-Binder gebundenen Reversiblen Bindungspartner 2 reversibel gebunden ist, wobei der Analyt-Binder immobilisiert wird durch Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2,
- b) Hinzugabe der biologischen Probe und Bindung des Analyten an den reversibel immobilisierten Analyt-Binder im Fall, dass die biologische Probe den Analyten enthält,
- c) Abtrennung der biologischen Probe,
- d) Zugabe eines Ablösepuffers, der die Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2 löst, wobei die Bindung des Analyten an den Analyt-Binder optional bestehen bleibt, und
- e) Detektion des Analyten im Ablösepuffer im Fall, dass die biologische Probe den Analyten enthält beziehungsweise Feststellen der Abwesenheit des Analyten im Fall, dass die biologische Probe den Analyten nicht enthält.
- a) providing a reversible binding partner 1 immobilized on a solid phase, to which an analyte binder is reversibly bound via a reversible binding partner 2 bound to the analyte binder, the analyte binder being immobilized by binding between the reversible binding partners 1 and 2,
- b) adding the biological sample and binding the analyte to the reversibly immobilized analyte binder in case the biological sample contains the analyte,
- c) separation of the biological sample,
- d) adding a release buffer which solves the bond between the reversible binding partners 1 and 2, whereby the binding of the analyte to the analyte binder optionally remains, and
- e) detection of the analyte in the release buffer in the event that the biological sample contains the analyte or determination of the absence of the analyte in the event that the biological sample does not contain the analyte.
Schnelltest-, oder point-of-care (POC) Testverfahren sind in diversen Technologien entwickelt worden (1). Die wenigsten davon haben allerdings Marktreife erlangt.rapid test, or point-of-care (POC) testing procedures are in various technologies been developed (1). However, very few of them have market maturity obtained.
Heutzutage etablierte Schnelltestverfahren, wie z. B. das TRIAGE System (Biosite, San Diego, USA), insbesondere aber das am weitesten verbreitete Verfahren, die Immunchromatographie, weisen nachteilig gegenüber klassischen – sei es manuell oder automatisiert abzuarbeitenden – Immunoassays eine geringere analytische Sensitivität sowie verminderte Präzision auf, können aber vorteilhaft, jedenfalls in geeigneten Ausführungsformen, unprozessierte Vollblutproben verarbeiten. (2)–(7)nowadays established rapid test methods, such. B. the TRIAGE system (biosite, San Diego, USA), but especially the most widespread Methods, immunochromatography, are disadvantageous classical - be it manually or automatically processed - immunoassays a lower analytical sensitivity as well as decreased Precision up, but can be beneficial, anyway in appropriate embodiments, unprocessed whole blood samples to process. (2) - (7)
Die Nachteile gründen sich vor allem auf die Probenmatrixabhängigkeit der Verfahren und die Limitierung des verwendbaren Probevolumens.The Disadvantages are mainly based on the sample matrix dependency the method and the limitation of the usable sample volume.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es daher, ein u. a. als Schnelltest durchzuführendes Verfahren zu entwickeln, das unprozessierte Vollblutproben verarbeiten kann und analytische Sensitivität und Präzision aufweist, die mit denen von klassischen Immunoassays vergleichbar ist.task The present invention is therefore a u. a. as a quick test to develop the process to be performed, the unprocessed Can process whole blood samples and analytical sensitivity and has the same precision as classic immunoassays is comparable.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist insbesondere die Verwendung eines erfindungsgemäßen reversiblen Bindungssystems für die Immobilisierung eines analytspezifischen Binders, z. B. anti-PCT-Antikörpers.object In particular, the use of a reversible binding system according to the invention for the immobilization of an analyte-specific binder, z. B. anti-PCT antibody.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist somit ein Verfahren zur Detektion von Analyten aus biologischen Proben umfassend die folgenden Verfahrensschritte:
- a) Bereitstellung eines an eine Festphase immobilisierten Reversiblen Bindungspartners 1, an den ein Analyt-Binder über einen an den Analyt-Binder gebundenen Reversiblen Bindungspartner 2 reversibel gebunden ist, wobei der Analyt-Binder immobilisiert wird durch Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2,
- b) Hinzugabe der biologischen Probe und Bindung des Analyten an den reversibel immobilisierten Analyt-Binder im Fall, dass die biologische Probe den Analyten enthält,
- c) Abtrennung der biologischen Probe,
- d) Zugabe eines Ablösepuffers, der die Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2 löst, wobei die Bindung des Analyten an den Analyt-Binder optional bestehen bleibt, und
- e) Detektion des Analyten im Ablösepuffer im Fall, dass die biologische Probe den Analyten enthält beziehungsweise Feststellen der Abwesenheit des Analyten im Fall, dass die biologische Probe den Analyten nicht enthält.
- a) providing a reversible binding partner 1 immobilized on a solid phase, to which an analyte binder is reversibly bound via a reversible binding partner 2 bound to the analyte binder, the analyte binder being immobilized by binding between the reversible binding partners 1 and 2,
- b) adding the biological sample and binding the analyte to the reversibly immobilized analyte binder in case the biological sample contains the analyte,
- c) separation of the biological sample,
- d) adding a release buffer which solves the bond between the reversible binding partners 1 and 2, whereby the binding of the analyte to the analyte binder optionally remains, and
- e) detection of the analyte in the release buffer in the event that the biological sample contains the analyte or determination of the absence of the analyte in the event that the biological sample does not contain the analyte.
Dem Fachmann ist klar, dass zwischen dem Schritt b) und c) eine gewisse Inkubationszeit einzuhalten ist. Die Inkubationszeit sollte nicht kürzer als 30 s und nicht langer als 24 h betragen, besonders bevorzugt im Rahmen eines Schnelltestverfahrens ist eine Inkubationszeit zwischen 5 und 15 min. Der Ablöseprozess gemäß Schritt d) kann bevorzugterweise bis 24 h betragen, bevorzugt im Rahmen eines Schnelltestverfahrens ist der Ablöseprozess länger als 15 s und kürzer als 15 min, bevorzugt zwischen 5 bis 15 min.the It is clear to a person skilled in the art that between step b) and c) some Incubation period is observed. The incubation period should not shorter than 30 s and no longer than 24 h, especially preferred in the context of a rapid test procedure is an incubation period between 5 and 15 min. The removal process according to step d) may preferably be up to 24 hours, preferably in the frame a rapid test procedure, the detachment process is longer as 15 s and shorter than 15 min, preferably between 5 to 15 minutes.
Die Bindung des Analyten an den Analyt-Binder bleibt während und/oder nach der Ablösung gemäß d) bestehen oder nicht. Beide Optionen sind erfindungsgemäß denkbar. Bevorzugt bleibt bei und/oder nach Zugabe des Ablösepuffers nach d) die Bindung zwischen dem Analyten und dem Analyt-Binder bestehen. Die Bindung bleibt bevorzugt zu mindestens 90% der Analytenmoleküle bestehen. Falls die Bindung nicht bestehen bleibt, wird sie bevorzugt zu einem späteren Zeitpunkt wieder hergestellt. Am meisten bevorzugt besteht zum Zeitpunkt der Detektion die Bindung zwischen Analyt und Analyt-Binder, das heißt, dass sie entweder während des Ablöseprozesses erhalten bleibt beziehungsweise wieder hergestellt wird.The binding of the analyte to the analyte binder remains or does not occur during and / or after detachment according to d). Both options are conceivable according to the invention. Preferably remains at and / or after Add the release buffer according to d) the binding between the analyte and the analyte binder. The binding remains preferably at least 90% of the analyte molecules exist. If the bond does not persist, it is preferably restored at a later date. Most preferably, at the time of detection, the binding between analyte and analyte binder, that is, either retained during the stripping process, is restored.
In einer bevorzugten Ausführungsform ist der Analyt-Binder ein anti-Analyt Antikörper.In In a preferred embodiment, the analyte binder is an anti-analyte antibody.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die biologische Flüssigkeit eine unprozessierte Vollblutprobe.In a preferred embodiment of the invention Procedure, the biological fluid is an unprocessed Whole blood sample.
Erfindungsgemäß kann der immobilisierte Reversible Bindungspartner 1 direkt oder mittels eines Trägerproteins immobilisiert ist. Ein beispielhaftes Trägerprotein ist BSA (bovines Serumalbumin). Dem Fachmann sind geeignete Trägerproteine bekannt.According to the invention the immobilized reversible binding partner 1 directly or by means of a carrier protein is immobilized. An exemplary Carrier protein is BSA (bovine serum albumin). The expert suitable carrier proteins are known.
Erfindungsgemäß sind verschiedene Bindungspartner geeignet, die feste Bindungen bilden können, unter bestimmten Bedingungen jedoch diese Bindung aufgeben können und somit ein „reversibles Bindungssystem" darstellen. Von besonderem Interesse sind hier Bindungssysteme, bei denen die Bindung durch relativ milde Bedingungen destabilisiert werden kann, also Bedingungen, welche die Konformation von Proteinen, im Besonderen Antikörpern, und deren Bindung mit einem Antigen nicht wesentlich beeinträchtigen.According to the invention various binding partners that form strong bonds However, under certain conditions, this bond can give up and thus a "reversible binding system" represent. Of particular interest here are binding systems, where the binding is destabilized by relatively mild conditions conditions, which are the conformation of proteins, in particular antibodies, and their binding with a Do not significantly affect the antigen.
Die Anwendung solcher reversibler Bindungssysteme ist bekannt im Zusammenhang von Reinigungsmöglichkeiten rekombinanter Proteine aus komplexen Proteingemischen wie etwa Zellextrakten. Mittels rekombinanter DNA Technologie wird in diesem Zusammenhang der für das interessierende Protein kodierenden cDNA Sequenz eine Sequenz angefügt, die für ein sogenanntes „tag" kodiert, so dass ein um ein „tag" verlängertes Protein exprimiert wird. Über einen an eine Festphase immobilisierten Bindungspartner für das „tag" kann dann das „tag"-Protein aus dem Proteingemisch selektiv gebunden und anschließend durch eine spezifische Destabilisierung der „tag"-Bindung wieder von der Festphase abgetrennt werden. Das Protein von Interesse liegt dann angereichert oder rein in Lösung vor. Übersichten zu gebräuchlichen „tags", korrespondierenden immobilisierten Bindungspartnern und spezifischen Destabilisierungsmethoden finden sich z. B. bei (8)–(10).The Application of such reversible binding systems is known in the context purification possibilities of recombinant proteins complex protein mixtures such as cell extracts. By recombinant DNA technology is used in this context for the protein sequence coding cDNA sequence added a sequence, which coded for a so-called "tag", so that expressed a protein extended by one day becomes. Via a binding partner immobilized on a solid phase for the "tag" can then the "tag" protein selectively bound from the protein mixture and then by a specific destabilization of the tag bond be separated again from the solid phase. The protein of interest is then enriched or pure in solution. overviews to common "tags", corresponding immobilized Find binding partners and specific destabilization methods z. At (8) - (10).
Solche Bindungssysteme können im Rahmen der gegenwärtigen Erfindung als Bindungspartner verwendet werden.Such Binding systems can be part of the current Invention can be used as a binding partner.
Im Rahmen des erfindungsgemäßen Verfahrens kann insbesondere das Bindungspaar Reversibler Bindungspartner 1 und 2 ausgewählt sein aus einem der folgenden Bindungspaare:
- a) positiv und negativ geladene Peptidoligomere,
- b) Ca2+-bindendes Peptid/Protein und Antikörper, der das Peptid/Protein mit größerer Affinität bindet, wenn das Peptid/Protein Ca2+ gebunden hat,
- c) Oligohistidin (z. B. 6 His) und Ni-NTA,
- d) Biotin und Avidin oder Streptavidin oder Neutravidin.
- a) positively and negatively charged peptide oligomers,
- b) Ca 2+ -binding peptide / protein and antibody that binds the peptide / protein with greater affinity when the peptide / protein has bound Ca 2+ ,
- c) oligohistidine (eg 6 His) and Ni-NTA,
- d) biotin and avidin or streptavidin or neutravidin.
Einige
reversible Bindungssysteme, die im Rahmen der vorliegenden Erfindung
liegen, seien hier kurz vorgestellt:
Ein Beispiel für
ein Ca2+-bindendes Peptid/Protein und einen
Antikörper, der das Peptid/Protein mit größerer Affinität
bindet, wenn das Peptid/Protein Ca2+ gebunden
hat ist das FLAG/M1 System, wobei das Ca2+-bindende
Peptid/Protein ein FLAG-Peptid und der Antikörper ein M1
Antikörper ist. Bei einem anderen System ist das Ca2+-bindende Peptid/Protein ein Protein C
Peptid und der Antikörper ein HPC4 Antikörper
ist.Some reversible binding systems which are within the scope of the present invention are briefly presented here:
An example of a Ca 2+ -binding peptide / protein and an antibody that binds the peptide / protein with greater affinity when the peptide / protein has bound Ca 2+ is the FLAG / M1 system, wherein the Ca 2+ -binding Peptide / protein is a FLAG peptide and the antibody is an M1 antibody. In another system, the Ca 2+ -binding peptide / protein is a protein C peptide and the antibody is an HPC4 antibody.
a) FLAG/M1a) FLAG / M1
Ein
Beispiel ist somit die Bindung zwischen dem monoklonalen Antikörper
M1 (auch als 4E11 beschrieben) und dem sogenannten FLAG-Peptid.
Dieses Peptid kann Calcium2+ binden und
nimmt dadurch eine bestimmte Konformation an. Nur diese Konformation
wird effizient von M1 gebunden. Durch Zugabe von Calcium2 +-komplexierender
Agentien wie etwa EDTA wird dem Peptid Calcium2+ entzogen,
das Peptid nimmt eine andere Konformation ein, wodurch der M1 Antikörper
seine Affinität zum Peptid drastisch vermindert;
b) Protein C/HPC4b) protein C / HPC4
Ein weiteres, analoges Beispiel eines solchen Bindungspaares ist ein von humanem Protein C abgeleitetes Peptid, das ebenfalls eine Calcium2+-abhängige Konformation einnehmen kann, und der monoklonale Antikörper HPC4. (12)Another analogous example of such a binding pair is a human protein C-derived peptide, which may also adopt a calcium 2+ -dependent conformation, and the monoclonal antibody HPC4. (12)
c) Ni2+-NTA/6 Hisc) Ni 2+ -NTA / 6 His
Ein weiteres Beispiel ist das Ni2+-NTA/6 His-System, das spezifisch durch Imidazol Zugabe destabilisiert werden kann. (13)Another example is the Ni 2+ -NTA / 6 His system, which can be specifically destabilized by imidazole addition. (13)
d) Geladene Peptidoligomered) charged peptide oligomers
Ein weiteres Beispiel ist ein Bindungspaar von positiv bzw. negativ geladenen Peptidoligomeren, wie z. B. Oligo-Lys bzw. Oligo-Asp, dessen Bindung miteinander durch Erhöhung der Ionenstärke destabilisiert werden kann. Als Bindungspaar beschrieben ist ein geladenes Peptidoligomer in Verbindung mit einer Ionenaustauschermatrix; auch diese Bindung ist durch Erhöhung der Ionenstärke zu destabilisieren. (14)–(16)One Another example is a binding pair of positive or negative charged peptide oligomers, such as. B. Oligo-Lys or Oligo-Asp, its bonding with each other by increasing the ionic strength can be destabilized. As a binding pair is described a charged peptide oligomer in association with an ion exchange matrix; this bond is also due to the increase in ionic strength to destabilize. (14) - (16)
Neben reversiblen Bindungssystemen, bei denen einer der Bindungspartner in ein rekombinan tes Protein integriert ist, sind auch Systeme bekannt, bei denen einer der Bindungspartner chemisch an das zu immobilisierende Protein konjugiert wird. Zu nennen ist hier beispielsweise das Biotin/Avidin-System. Biotin kann z. B. in Form eines NHS-Esters an primäre Amingruppen eines Proteins konjugiert werden (17). Dieses Bindungssystem ist durch Zugabe eines Überschusses an Biotin auch zu destabilisieren, jedoch nur unter drastischen Bedingungen wie erhöhter Temperatur und längerer Inkubationszeit (18). Es ist jedoch eine Variante dieses Systems beschrieben, welche sogenanntes monomeres Avidin verwendet; nach Absättigung „nicht-reversibler" Bindungsstellen mit Biotin, sind die verbleibenden „reversiblen" Bindungsstellen geeignet, ein biotinyliertes Protein zu binden, das dann unter milden Bedingungen mittels Biotin aus der Bindungsstelle gelöst werden kann (19).Next reversible binding systems in which one of the binding partners integrated into a recombinant protein, systems are also known in which one of the binding partners chemically to be immobilized to the Protein is conjugated. For example, here is the biotin / avidin system. Biotin can z. In the form of an NHS ester to primary amine groups of a protein (17). This binding system is also destabilize by adding an excess of biotin, but only under drastic conditions such as elevated temperature and longer incubation time (18). It is however a variant This system described which so-called monomeric avidin used; after saturation "non-reversible" Binding sites with biotin, are the remaining "reversible" Binding sites suitable for binding a biotinylated protein, then under mild conditions using biotin from the binding site can be solved (19).
Peptid-„tags", wie oben für rekombinante Proteine beschrieben, sollten auch chemisch an ein Protein konjugierbar sein, womit das so derivatisierte Protein dann einer reversiblen Bindung zugeführt werden kann. Im Rahmen der vorliegenden Erfindung ist die chemische Konjugation als bevorzugte Variante der Protein-Derivatisierung anzusehen, da der Derivatisierungsgrad steuerbar ist und die chemische Konjugation vergleichsweise zeitsparend und kostengünstig ist.Peptide "tags" as described above for recombinant proteins also be chemically conjugated to a protein, whereby the so derivatized Protein are then fed to a reversible bond can. In the context of the present invention is the chemical conjugation regarded as a preferred variant of the protein derivatization, since the degree of derivatization is controllable and the chemical conjugation comparatively time-saving and cost-effective.
Alle bisher genannten Beispiele reversibler Bindungssysteme basieren auf einer nichtkovalenten Wechselwirkung der Bindungspartner. Im Rahmen der vorliegenden Erfindung sind als reversible Bindungssysteme jedoch auch solche Systeme anzusehen, bei denen zunächst eine kovalente Bindung vorliegt, die dann chemisch gelöst werden kann. Beispielhaft zu nennen ist hier die kovalente Vernetzung mittels eines spaltbaren hetero-bifunktionalen Crosslinkers wie etwa SPDP (20); durch Zugabe eines reduzierenden Agens kann die Disulfidbrücke gespalten und die Bindung damit gelöst werden.All previously mentioned examples of reversible binding systems based on a noncovalent interaction of the binding partners. in the Frameworks of the present invention are as reversible binding systems However, to look at such systems, where initially there is a covalent bond, which is then dissolved chemically can be. To name a few examples here is the covalent crosslinking by means of a cleavable hetero-bifunctional crosslinker such as about SPDP (20); by adding a reducing agent, the Disulfide bridge cleaved and dissolved the bond with it become.
Gegenstand der Erfindung ist somit auch das erfindungsgemäße Schnelltestverfahren, wobei der Analyt-Binder kovalent an den Reversiblen Bindungspartner 2 gebundenen ist.object The invention is therefore also the invention Rapid test method, wherein the analyte binder is covalently attached to the reversible Binding partner 2 is bound.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist somit in einer bevorzugten Ausführungsform das erfindungsgemäße Verfahren, wobei der Analyt-Binder ein Anti-Procalcitonin Antikörper ist.object The present invention is thus in a preferred embodiment the inventive method, wherein the analyte binder is an anti-procalcitonin antibody.
Ein bevorzugter Gegenstand der Erfindung ist somit die Anwendung eines reversiblen Bindungssystems für die Immobilisierung eines analytspezifischen Binders, z. B. anti-PCT-Antikörpers.One preferred object of the invention is thus the application of a reversible binding system for the immobilization of a analyte-specific binder, z. B. anti-PCT antibody.
Die Anwendung wird im Folgenden beispielhaft für das reversible Bindungssystem der geladenen Peptidoligomere (s. o.) formuliert, ist für die anderen Systeme aber analog zu übertragen. Oligo-Asp wird an ein Trägerprotein wie Bovines Serumalbumin (BSA) konjugiert, und dieses Konjugat wird stabil auf eine Festphase wie z. B. hochbindende Polystyrol-Mikrotiterplatten immobilisiert. Oligo-Lys wird an einen anti-PCT Antikörper konjugiert. Inkubation des Oligo-Lys-anti-PCT Antikörpers mit der Festphase führt zu einer Immobilisierung des Antikörpers durch Bindung zwischen den Oligo-Lys- und Oligo-Asp-Anteilen durch ionische Wechselwirkung.The Application is exemplified below for the reversible Binding system of the charged peptide oligomers (see above) formulated, is to be transferred analogously for the other systems. Oligo-Asp is linked to a carrier protein such as bovine serum albumin (BSA) conjugate, and this conjugate becomes stable on a solid phase such as B. highly binding polystyrene microtiter plates immobilized. Oligo-Lys is conjugated to an anti-PCT antibody. Incubation of the oligo-Lys-anti-PCT antibody with the solid phase leads to immobilization of the antibody by binding between the oligo-lys and oligo-asp portions ionic interaction.
In einer alternativen Ausführungsform kann der anti-PCT Antikörper auch indirekt mittels eines Oligo-Lys-derivatisierten Antikörpers gegen den anti-PCT Antikörper immobilisiert werden (beispielweise ein anti-Maus IgG Antikörper, wenn es sich bei dem anti-PCT Antikörper um einen Maus-monoklonalen Antikörper handelt).In an alternative embodiment, the anti-PCT antibody may also be indirectly by means of an oli go-Lys-derivatized antibody against the anti-PCT antibody are immobilized (for example, an anti-mouse IgG antibody, when the anti-PCT antibody is a mouse monoclonal antibody).
Das
Prinzip der Immunextraktion wird im Folgenden für die PCT
Analyse beispielhaft erläutert:
Zunächst
wird ein anti-PCT Antikörper über ein reversibles
Bindungssystem auf eine Festphase immobilisiert. Eine zu untersuchende
Vollblutprobe (für das Beispiel geladene Peptidoligomere
und EDTA-Blut) wird hinzugegeben, und PCT wird aus der Probe immunextrahiert.
Dabei kann ein vergleichsweise großes Volumen an Probe
verwendet werden, so dass eine vergleichsweise große Menge
an PCT extrahiert werden kann, was im Folgenden zu einer hohen analytischen
Sensitivität des Tests führt. Nach einer kurzen
Inkubationszeit wird die Probe abgetrennt (durch Waschen oder andere
geeignete Trennmethoden wie etwa Absaugen oder geeignetes Zentrifugieren).
Im nächsten Schritt wird ein Puffer zugesetzt („Ablösungspuffer"),
der ein Agens enthält (im Oligo-Lys-/Oligo-Asp-System z.
B. das stark negativ geladene Heparin), das geeignet ist, die Bindung
des Antikörpers an die Festphase, nicht jedoch die Bindung
zwischen PCT und Antikörper weitgehend zu destabilisieren.
Somit steht eine Lösung zur Verfügung, die den
zu bestimmenden Analyten (komplexiert an einen spezifischen Antikörper)
in großer Menge enthält. Die Lösung ist
für jede untersuchte Probe immer von identischer Be schaffenheit,
da die Probenmatrix vorher abgetrennt wurde. Die Vorteile dieses
Schritts bestehen also in:
- – der Möglichkeit, unprozessiertes Vollblut zu verwenden
- – der Möglichkeit, größere Probevolumina zu verwenden, damit relativ große Menge des Analyten zu extrahieren und schließlich eine hohe analytische Assaysensitivität im sich anschließenden Bestimmungsverfahren zu erreichen
- – der Matrixunabhängigkeit für Folgeschritte im Bestimmungsverfahren, die sich vorteilhaft auf Präzision und Richtigkeit des Bestimmungsverfahrens auswirken
First, an anti-PCT antibody is immobilized on a solid phase via a reversible binding system. A whole blood sample to be examined (peptide oligomers charged for the example and EDTA blood for the example) is added and PCT is immuno-extracted from the sample. In this case, a comparatively large volume of sample can be used, so that a comparatively large amount of PCT can be extracted, which subsequently leads to a high analytical sensitivity of the test. After a short incubation period, the sample is separated (by washing or other suitable separation techniques such as suction or appropriate centrifugation). In the next step, a buffer is added ("dissolution buffer") containing an agent (in the oligo-lys / oligo-asp system eg the strongly negatively charged heparin) which is suitable for binding the antibody to the antibody However, the solid phase does not destabilize the binding between the PCT and the antibody to a large extent, so a solution containing the analyte to be determined (complexed to a specific antibody) in a large amount is always of identical nature for each sample tested because the sample matrix was previously separated, the benefits of this step are:
- - the possibility to use unprocessed whole blood
- The ability to use larger sample volumes to extract relatively large quantities of the analyte and ultimately achieve high analytical assay sensitivity in the subsequent assay
- - the independence of the matrix for subsequent steps in the determination process, which have an advantageous effect on the precision and accuracy of the determination process
Der immunextrahierte und in Lösung gebrachte Analyt kann durch verschiedene Methoden detektiert werden. Ein Beispiel ist die TRACE Technologie, eine andere (weiter unten erläuterte Methode) die Immunchromatographie.Of the Immuno-extracted and solubilized analyte can by different methods are detected. An example is the TRACE Technology, another method (explained below) the immunochromatography.
Die TRACE Technologie verwendet für einen Sandwichimmunoassay zwei Antikörper, die mit unterschiedlichen Fluoreszenzlabeln markiert sind (beispielsweise Cyanin bzw. Kryptat). Bei Sandwichbildung mit dem Analyten in Lösung erreichen beide Label eine räumliche Nähe, die zu einer spezifischen Lichtemission nach entsprechender Licht-Anregung führt.The TRACE technology used for a sandwich immunoassay two antibodies with different fluorescent labels are marked (for example, cyanine or cryptate). When sandwiching with the analyte in solution, both labels achieve a spatial Near to a specific light emission after appropriate Light excitation leads.
Im beispielhaften Zusammenhang bei der Analyse von PCT wird der mit Oligo-Lys konjugierte anti-PCT Antikörper vor der Immobilisierung zunächst außerdem mit Kryptat markiert. Hiermit wird die Immunextraktion durchgeführt. Im Ablösungspuffer ist nun neben dem Ablöse-Agens der zweite für die Sandwichbildung nötige, Cyanin-markierte anti-PCT Antikörper enthalten. Damit kommt es durch Zugabe des Ablösungspuffers sowohl zur Ablösung des Antigen-Antikörper-Komplexes von der Festphase als auch zur Sandwichbildung, die nach geeigneter Lichtanregung detektierbar ist. Ablösung und Zugabe des zweiten Antikörpers zur Sandwichbildung können auch sequentiell erfolgen.in the exemplary context in the analysis of PCT will be with the Oligo-Lys conjugated anti-PCT antibodies before immobilization first also marked with crypt. Herewith the immune extraction is performed. In the detachment buffer is now next to the release agent, the second for cyanine-labeled anti-PCT antibodies necessary for sandwiching contain. This occurs both by adding the release buffer for detachment of the antigen-antibody complex from the solid phase as well as the sandwich formation, which according to suitable Light excitation is detectable. Replacement and addition of the second antibody for sandwich formation can also be done sequentially.
In einer oben beschrieben Variante kann der Analyt-spezifische Antikörper vor der Immunextraktion indirekt über einen Oligo-Lys-derivatisierten z. B. anti-Maus IgG Antikörper immobilisiert sein. In dieser Ausführungsform kann das Fluoreszenzlabel dann an den einen oder den anderen Antikörper konjugiert sein.In In a variant described above, the analyte-specific antibody indirectly via an oligo-Lys derivatized before the immune extraction z. B. anti-mouse IgG antibody immobilized. In this Embodiment, the fluorescence label then to the one or the other antibody.
Beim Beispiel der Immunchromatographie wird der mit Oligo-Lys konjugierte anti-PCT Antikörper vor der Immobilisierung zunächst außerdem mit Biotin markiert. Hiermit wird die Immunextraktion durchgeführt. Im Ablösungspuffer ist nun neben dem Ablöse-Agens der zweite für die Sandwichbildung nötige, mit kolloidalem Gold markierte anti-PCT Antikörper enthalten. Ablösung und Zugabe des zweiten Antikörpers zur Sandwichbildung können auch sequentiell erfolgen. Das Reaktionsgemisch wird anschließend auf einen immunchromatographischen Teststreifen appliziert, auf den als Fänger für den gebildeten Sandwich ein Biotin-Binder wie z. B. Avidin als feine Linie im hinteren Bereich des Teststreifens quer zur Laufrichtung der Reaktionslösung aufgesprüht ist.At the Example of immunochromatography becomes that conjugated with oligo-Lys anti-PCT antibodies before immobilization initially also labeled with biotin. This is the immune extraction carried out. In the detachment buffer is now beside the peel agent, the second for sandwiching necessary, labeled with colloidal gold anti-PCT antibody contain. Replacement and addition of the second antibody for sandwiching can also be done sequentially. The Reaction mixture is subsequently subjected to an immunochromatographic Test strip applied to the as catcher for the formed sandwich a biotin binder such. B. avidin as fine Line at the back of the test strip across the direction of travel the reaction solution is sprayed on.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens ist der Analyt-Binder markiert und bleibt auch nach Zugabe des Ablösepuffers markiert mit einem Label für die Detektion des Analyten.In a particularly preferred embodiment of the invention Procedure, the analyte binder is marked and remains after addition of the release buffer labeled with a label for the detection of the analyte.
Bei
der Ausführung Immunochromatographie können folgende
weitere Varianten denkbar sein:
Der Immunextraktionsantikörper
ist neben der Derivatisierung mit Bindungspartner 2 zusätzlich
biotinyliert. Ein zweiter Antikörper für die Sandwichbildung
ist markiert (z. B. mit kolloidalem Gold). Der Fänger auf
dem Teststreifen wäre dann ein Biotin-Binder wie Avidin
oder Streptavidin oder Neutravidin.In the embodiment of immunochromatography, the following further variants may be conceivable:
The immunodextraction antibody is additionally biotinylated in addition to the derivatization with binding partner 2. One second antibody for sandwiching is labeled (eg with colloidal gold). The catcher on the test strip would then be a biotin binder such as avidin or streptavidin or neutravidin.
Der Immunextraktionsantikörper (z. B. Schaf polyklonal) ist nur mit Bindungspartner 2 derivatisiert. Ein zweiter Antikörper für Sandwichbildung müsste aus einer anderen Tierspezies stammen (z. B. Maus monoklonal) und ist markiert (z. B. mit kolloidalem Gold).Of the Immune extraction antibody (eg sheep polyclonal) derivatized only with binding partner 2. A second antibody for sandwiching would have to be from another animal species are monoclonal (eg mouse) and labeled (eg with colloidal Gold).
Der Fänger auf dem Teststreifen wäre dann ein anti-Schaf IgG Antikörper. Beide Varianten sind auch in der Form vorstellbar, dass der Immunextraktionsantikörper die Markierung trägt und wobei in der ersten Variante dann der zweite Antikörper biotinyliert ist (alternativ könnte hier der zweite Antikörper auch direkt auf dem Streifen aufgesprüht sein).Of the Catcher on the test strip would then be an anti-sheep IgG antibodies. Both variants are also conceivable in the form the immune extraction antibody carries the label and wherein in the first variant then the second antibody is biotinylated (alternatively, here could be the second antibody also be sprayed directly on the strip).
In einer anderen bevorzugten Ausführungsform des Verfahrens enthält der Ablösepuffer eine weitere für die Detektion erforderliche markierte Komponente.In another preferred embodiment of the method the release buffer contains another for the detection required marked component.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform des Verfahrens ist die weitere für die Detektion erforderliche markierte Komponente ein zweiter Analyt-Binder für die Durchführung eines Sandwichimmunoassays.In a particularly preferred embodiment of the method is the further marked required for detection Component a second analyte binder for the implementation a sandwich immunoassay.
Besonders bevorzugt erfolgt die Detektion des markierten Analyten durch einen Immunoassay unter Verwendung der TRACE Technologie.Especially Preferably, the detection of the labeled analyte by a Immunoassay using TRACE technology.
In einer anderen bevorzugten Ausführungsform erfolgt die Detektion des markierten Analyten mittels Immunochromatographie.In In another preferred embodiment, the detection takes place of the labeled analyte by immunochromatography.
In einer erfindungsgemäß besonders bevorzugten Variante wird die biologische Probe unverdünnt und in einem solchen Volumen eingesetzt wird, dass der beschichtete Anteil der Festphase vollständig in Kontakt mit der biologischen Probe gebracht wird.In a particularly preferred variant according to the invention the biological sample is undiluted and in such a way Volume is used that the coated portion of the solid phase completely brought into contact with the biological sample becomes.
Besonders bevorzugt überschreitet die Dauer von Zugabe der Probe bis zur Detektion 30 min nicht und das Verfahren ist somit als Schnelltestverfahren anzusehen.Especially preferably, the duration of addition of the sample exceeds until detection is not 30 minutes and the method is thus a rapid test method to watch.
Ebenfalls Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist eine Vorrichtung zur Durchführung dse erfindungsgemäßen Verfahrens umfassend:
- • eine Festphase mit einem daran immobilisierten Reversiblen Bindungspartners 1, an den ein Analyt-Binder über einen an den Analyt-Binder gebundenen Reversiblen Bindungspartner 2 reversibel gebunden ist,
- • wobei die Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2 durch Zugabe eines Ablösepuffers gelöst wird, jedoch die Bindung des Analyten an den Analyt-Binder bei Zugabe des Ablösepuffers optional bestehen bleibt.
- A solid phase having a reversible binding partner 1 immobilized thereon, to which an analyte binder is reversibly bound via a reversible binding partner 2 bound to the analyte binder,
- Wherein the bond between the reversible binding partners 1 and 2 is dissolved by the addition of a release buffer, but the binding of the analyte to the analyte binder optionally remains with the addition of the release buffer.
Gleichfalls Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Kit zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens umfassend:
- • eine Festphase mit einem immobilisierten Reversiblen Bindungspartner 1
- • Komplex umfassend Analyt-Binder gebunden an den Reversiblen Bindungspartner 2, wobei dieser Komplex optional bereits durch Bindung der Reversiblen Bindungspartner 1 und 2 auf der Festphase immobilisiert vorliegen kann
- • Ablösepuffers, der die Bindung zwischen den Reversiblen Bindungspartnern 1 und 2 löst, wobei jedoch die Bindung des Analyten an den Analyt-Binder optional bestehen bleibt.
- • a solid phase with an immobilized reversible binding partner 1
- Complex comprising analyte-binder bound to the reversible binding partner 2, which complex may optionally already be immobilized by binding of the reversible binding partner 1 and 2 on the solid phase
- Release buffer, which solves the binding between the Reversible binding partners 1 and 2, but the binding of the analyte to the analyte binder optionally remains.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform ist der im Kit befindliche Analyt-Binder ein Anti-PCT Antikörper.In a particularly preferred embodiment is in the Kit analyte binders an anti-PCT antibody.
Der am meisten bevorzugte Kit enthält als ausgewähltes Bindungspaar Reversibler Bindungspartner 1 und 2 ausgewählt aus einem der folgenden Bindungspaare:
- • positiv und negativ geladene Peptidoligomere,
- • Ca2+-bindendes Peptid/Protein und Antikörper, der das Peptid/Protein mit größerer Affinität bindet, wenn das Peptid/Protein Ca2+ gebunden hat,
- • Oligohistidin (z. B. 6 His) und Ni-NTA,
- • Biotin und Avidin oder Streptavidin oder Neutravidin.
- Positive and negatively charged peptide oligomers,
- Ca 2+ -binding peptide / protein and antibody that binds the peptide / protein with greater affinity when the peptide / protein has bound Ca 2+ ,
- Oligohistidine (eg 6 His) and Ni-NTA,
- • biotin and avidin or streptavidin or neutravidin.
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung näher erläutern ohne den Gegenstand der Erfindung einzuschränken:The The following examples are intended to explain the invention in more detail without restricting the subject matter of the invention:
BeispieleExamples
Immunextraktion von PCT aus VollblutImmune Extraction from PCT thoroughbred
Als Grundlage für die Bearbeitung weiterer Schritte wurde zunächst geprüft, ob und wie effektiv sich ein Analyt, hier am Beispiel PCT untersucht, aus unprozessiertem EDTA-Vollblut mittels eines an eine Festphase immobilisierten Analyt-spezifischen Antikörpers extrahieren lässt. Nach kurzer Inkubation (5 min) und Abtrennung der Vollblutprobe wurde das gebundene PCT mit einem zweiten, chemilumineszenzmarkierten anti-PCT Antikörper nachgewiesen. Zum Vergleich wurde PCT-enthaltendes Serum, verdünnt in Puffer, auf der gleichen Festphase inkubiert, jedoch länger (2 h), und das gebundene PCT wurde nach Abtrennung der verdünnten Probe wie oben nachgewiesen.When Basis for the processing of further steps was first checked whether and how effective an analyte is, here by example PCT examined from unprocessed EDTA whole blood by means of a immobilized on a solid phase analyte-specific antibody extract. After a short incubation (5 min) and separation the whole blood sample was bound PCT with a second, chemiluminescent-labeled anti-PCT antibodies detected. For comparison, PCT-containing Serum, diluted in buffer, incubated on the same solid phase, however, longer (2 hours) and the bound PCT became separated the diluted sample as demonstrated above.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt:in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
Zur Bestimmung der Immunextraktion wurden die Komponenten aus dem BRAHMS PCT sensitiv LIA Kit verwendet (BRAHMS Aktiengesellschaft, Hennigsdorf, Deutschland). Der lumineszenzmarkierte anti PCT Tracerantikörper A wurde in Tracerrekonstitutionspuffer B nach Arbeitsanleitung gelöst. Eine Standardreihe wurde in EDTA-Vollblut eines gesunden Blutspenders zu folgenden Konzentrationen gelöst: c = 0,007; 0,014; 0,036; 0,171; 0,383; 1,73; 7,99 ng/ml. In die mit anti PCT Antikörper beschichteten Röhrchen wurden je 300 μl Vollblutstandards pipettiert und 5 min bei Raumtemperatur inkubiert. Danach wurden die Röhrchen mit 5 × 1 ml Waschlösung (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0,2% Tween 20, pH 7,5) gewaschen. Anschließend wurden 200 μl lumineszenzmarkierter anti PCT Antikörper pipettiert und 2 h bei Raumtemperatur inkubiert; die Röhrchen wurden nochmals mit 5 × 1 ml Waschlösung gewaschen. Die an den Röhrchen gebundene Chemilumineszenz wurde in einem Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.to Determination of immune extraction were the components from the BRAHMS PCT sensitiv LIA Kit (BRAHMS Aktiengesellschaft, Hennigsdorf, Germany) Germany). The luminescently labeled anti-PCT tracer antibody A was dissolved in tracer reconstitution buffer B according to the instructions. A standard series was in EDTA whole blood of a healthy blood donor to the following concentrations: c = 0.007; 0.014; 0.036; 0.171; 0.383; 1.73; 7.99 ng / ml. In the with anti PCT antibodies coated tubes were each 300 ul whole blood standards pipetted and incubated for 5 min at room temperature. After that were tubes with 5 x 1 ml wash solution (8mM Tris, 60mM NaCl, 0.2% Tween 20, pH 7.5). Subsequently 200 μl of luminescence-labeled anti-PCT antibody pipetted and incubated for 2 h at room temperature; the tubes were washed again with 5 × 1 ml of washing solution. The chemiluminescence bound to the tubes was determined in a luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T; Basic reagents BRAHMS AG).
Die
Referenzmethode (Bestimmung von PCT aus verdünntem Serum)
wurde auf Basis des BRAHMS PCT sensitiv LIA Kits (BRAHMS Aktiengesellschaft,
Hennigsdorf, Deutschland) wie folgt durchgeführt: Eine Standardreihe
wurde in Nullserum aus dem Testkit zu folgenden Konzentrationen
gelöst:
c = 0; 0,008; 0,031; 0,042; 0,126; 0,251;
1,21; 5,61; 28,0 ng/ml. In die mit anti PCT Antikörper
beschichteten Röhrchen wurden je 50 μl Serumstandards
und 250 μl Tracerrekonstitutionspuffer B pipettiert und
2 h bei Raumtemperatur inkubiert. Danach wurden die Röhrchen
mit 5 × 1 ml Waschlösung (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0,2%
Tween 20, pH 7,5) gewaschen. Anschließend wurden 200 μl
lumineszenzmarkierter anti PCT Antikörper pipettiert und
2 h bei Raumtemperatur inkubiert; die Röhrchen wurden nochmals
mit 5 × 1 ml Waschlösung gewaschen. Die an den
coated tubes gebundene Chemilumineszenz wurde in einem Luminometer
(Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien
BRAHMS AG) vermessen (
c = 0; 0.008; 0.031; 0.042; 0.126; 0.251; 1.21; 5.61; 28.0 ng / ml. 50 μl serum standards and 250 μl tracer reconstitution buffer B were pipetted into the tubes coated with anti PCT antibodies and incubated for 2 hours at room temperature. Thereafter, the tubes were washed with 5 x 1 ml wash solution (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0.2% Tween 20, pH 7.5). Subsequently, 200 μl of luminescence-labeled anti-PCT antibody were pipetted and incubated for 2 h at room temperature; the tubes were washed again with 5 x 1 ml of washing solution. The chemiluminescence bound to the coated tubes was measured in a luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T, basic reagents BRAHMS AG) (
Darstellung von reversibel an eine Festphase zu bindenden AntikörpernRepresentation of reversible to be bound to a solid phase antibodies
Mehrere
der weiter oben beschriebenen reversiblen Bindungssysteme wurden
auf ihre Eignung untersucht, einen Antikörper, hier am
Beispiel eines anti-PCT Antikörpers, reversibel an eine
Festphase zu binden. Dazu wurde der Antikörper unterschiedlich
derivatisiert (s. Tab. 1) und mit einem Chemilumineszenz-Label markiert.
Damit wurde untersucht, wie sich diese Antikörper an zum
jeweiligen Derivat korrespondierende Festphasen binden und wieder
ablösen lassen. Die Zusammenfassung der Ergebnisse in Tab.
1 zeigt, dass sich alle untersuchten reversiblen Bindungssysteme
mit Ausnahme des Biotin/Avidin-Systems spezifisch und schnell destabilisieren
lassen und – mit Einschränkungen für
das 6 His/Ni-NTA-System – unbeeinträchtigt sind durch
Blutmatrix.
Es wurde weiterhin beobachtet, dass die Effizienz von Bindung und spezifischer Ablösung beeinflusst werden kann durch den jeweiligen Derivatisierungsgrad (das molare Verhältnis von Bindungspartner 1 pro Antikörper), der Konzentration des auf der Festphase immobilisierten Bindungspartners 2, dadurch, ob Bindungspartner 1 an den Antikörper konjugiert und Bindungspartner 2 immobilisiert war, oder Bindungspartner 2 an den Antikörper konjugiert und Bindungspartner 1 immobilisiert war, und im Fall des Oligo-Asp/Oligo-Lys-Systems die Länge beider Oligomere. Daher fallen im Rahmen dieser Erfindung derartige Varianten zwar auch unter den Begriff der reversiblen Bindungssysteme und die Ansprüche schließen derartige Varianten ausdrücklich mit ein, jedoch sind die hier beispielhaft beschriebenen Varianten als bevorzugte Ausführungsformen anzusehen. Als Alternative zu Oligo-Lys-BSA erwiesen sich auch Polylysin-Festphasen als geeignet.It was further observed that the efficiency of binding and more specific Replacement can be influenced by the respective degree of derivatization (the molar ratio of binding partner 1 per antibody), the concentration of immobilized on the solid phase binding partner 2, by whether binding partner 1 conjugates to the antibody and binding partner 2 was immobilized, or binding partner 2 conjugated to the antibody and immobilized binding partner 1 and, in the case of the Oligo-Asp / Oligo-Lys system, the length both oligomers. Therefore fall within the scope of this invention such Variants although also under the concept of reversible binding systems and the claims exclude such variants expressly included, but these are exemplary here variants described as preferred embodiments to watch. Polylysine solid phases also proved to be an alternative to oligo-Lys-BSA as suitable.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt:in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
Bindungspartner 1 (Flüssigphase)Binding partner 1 (liquid phase)
1. Herstellung von MACN-chemilumineszenz-markiertem Antikörper1. Preparation of MACN Chemiluminescent Labeled antibody
Ein
polyklonaler anti Calcitonin Schaf Antikörper wurde wie
folgt behandelt:
Es wurden drei Markierungen angesetzt; diese
wurden nach der Inkubation unterschiedlich umgepuffert (s. u.).A polyclonal anti-calcitonin sheep antibody was treated as follows:
Three marks were applied; these were rebuffered differently after incubation (see below).
Zur
Chemilumineszenzmarkierung des Antikörpers wurden 1 ml
der Antikörperlösung (c = 3,19 mg/ml) mit 40 μl
1 M Kaliumphosphat, pH 7,8, und mit 2,7 μl MACN-Akridinium-NHS-Ester
(c = 1 mg/ml; Firma InVent GmbH, Hennigsdorf, Deutschland) versetzt
(molares Markierungsverhältnis Antikörper: MACN
10:1). Dann wurde 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Anschließend
wurden die Markierungsansätze über NAP-10 Gelfiltrationssäulen
(Pharmacia, Upsalla, Schweden) in 1,5 ml Laufmittel umgepuffert
und dabei von niedermolekularen Bestandteilen befreit:
Der Proteingehalt wurde photometrisch bestimmt, die markierten Antikörper wurden portioniert bei –20°C gelagert.Of the Protein content was determined photometrically, the labeled antibody were stored portioned at -20 ° C.
2. Derivatisierungen der MACN-chemilumineszenz-markierten Antikörper2. Derivatizations of the MACN-chemiluminescence-labeled antibody
2.1. Biotinylierung2.1. biotinylation
Der MACN-Antikörper wurde mit EZ-Link NHS-Chromogenic-Biotin (Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 21325) im molaren Verhältnis von 1:10 biotinyliert.Of the MACN antibody was coupled with EZ-Link NHS-chromogenic-biotin (Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 21325) in molar ratio biotinylated from 1:10.
1 mg MACN-Antikörper wurde mit 5,41 μl 1,233 mM Biotin-Lösung (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 60 min bei Raumtemperatur inkubiert. Die Reaktion wurde mit 100 μl 50 mM Glycin 10 min bei Raumtemperatur gestoppt und über eine NAPS-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) aufgereinigt.1 mg of MACN antibody was probed with 5.41 μl of 1.233 mM Biotin solution (freshly dissolved in DMSO) and Incubated for 60 min at room temperature. The reaction was treated with 100 μl 50 mM glycine stopped for 10 min at room temperature and over a NAPS column (Pharmacia, Upsalla, Sweden).
Zur Abtrennung letzter Reste von nicht an Antikörper gebundenem Biotin wurde eine Gelfiltrations-HPLC durchgeführt (Säule: Bio-Sil Sec 400, Firma Biorad, München, Deutschland). Die Probe wurde aufgetragen und bei einer Flußrate von 0,8 ml/min mit PBS, pH 7,4 chromatographiert. Mit einem Duchflußphotometer wurden die Wellenlängen 280 nm und 354 nm gemessen. Der Markierungsgrad μM Biotin/μM Antikörper betrug am Peak 0,48. Die Antikörper enthaltenden Fraktionen (Retentionszeit 11–12 min) wurden gepoolt.to Separation of last residues from non-antibody bound Biotin was subjected to gel filtration HPLC (column: Bio-Sil Sec 400, Biorad, Munich, Germany). The Sample was applied and at a flow rate of 0.8 ml / min with PBS, pH 7.4. With a flow photometer the wavelengths 280 nm and 354 nm were measured. Of the Marking degree μM biotin / μM antibody was at the peak 0.48. The antibody-containing fractions (retention time 11-12 min) were pooled.
Der Proteingehalt wurde photometrisch bestimmt, das Konjugat wurde portioniert bei –20°C gelagert.Of the Protein content was determined photometrically, the conjugate was portioned stored at -20 ° C.
2.2. Konjugation mit anti FLAG-tag M1-Antikörper, bzw. anti ProtC-tag HPC4 Anti körper2.2. Conjugation with anti FLAG-tag M1 antibody, or anti ProtC-tag HPC4 Anti body
Für die Konjugation mit anti FLAG-tag M1 (Firma Sigma, Deisenhofen, Deutschland, Art. Nr. F 3040) –, bzw. anti ProtC-tag HPC4 (Firma Roche, Nutley, NJ, USA, USA, Art. Nr. 11814516001) Antikörper wurden diese und der MACN Antikörper mit SPDP (N-succinimidyl 3-(2-pyridyldithio) propionate, Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 21857) im molaren Verhältnis von 1:7 aktiviert (siehe „Instructions SPDP Reagents", Pierce, Rockford, IL, USA).For the conjugation with anti FLAG-tag M1 (Sigma, Deisenhofen, Germany, Art. No. F 3040), or anti ProtC-tag HPC4 (Roche, Nutley, NJ, USA, USA, Art. No. 11814516001) Antibody these and the MACN antibody were labeled with SPDP (N-succinimidyl 3- (2-pyridyldithio) propionate, Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 21857) in the molar ratio of 1: 7 activated (see "Instructions SPDP Reagents", Pierce, Rockford, IL, USA).
Je 2 mg Antikörper wurden mit je 4,67 μl 20 mM SPDP (frisch gelöst in Ethanol) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Nur die aktivierten M1 und HPC4 Antikörper wurden mit 200 mM DTT (Dithiothreitol, gelöst in 100 mM Natriumphosphat, 5 mM EDTA, pH 6,9) auf eine Endkonzentration von 10 mM DTT eingestellt und 15 min bei Raumtemperatur reduziert.ever 2 mg of antibody were mixed with 4.67 μl each of 20 mM SPDP (freshly dissolved in ethanol) and 30 min at room temperature incubated. Only the activated M1 and HPC4 antibodies were with 200 mM DTT (dithiothreitol dissolved in 100 mM sodium phosphate, 5 mM EDTA, pH 6.9) to a final concentration of 10 mM DTT and reduced for 15 min at room temperature.
Die reduzierten M1, bzw. HPC4 Antikörper wurden jeweils über eine NAP10-Säule gereinigt (Laufmittel: 100 mM Natriumphosphat, 5 mM EDTA, pH 6,9) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.The reduced M1, or HPC4 antibodies were each about purified a NAP10 column (eluent: 100 mM sodium phosphate, 5 mM EDTA, pH 6.9) and the protein content was determined photometrically.
Die reduzierten Produkte wurden jeweils mit dem nicht reduzierten SPDP-aktivierten MACN-Antikörper im molaren Verhältnis von 1:1 über Nacht bei 4°C konjugiert. Anschließend wurde die Reaktion je mit 50 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt.The reduced products were each activated with the unreduced SPDP 1: 1 molar ratio of MACN antibody Night conjugated at 4 ° C. Subsequently, the Reaction each with 50 ul 100 mM cysteine stopped for 10 min.
Der Proteingehalt wurde photometrisch bestimmt, die Konjugate wurden portioniert bei –20°C gelagert.Of the Protein content was determined photometrically, the conjugates were portioned stored at -20 ° C.
2.3. Konjugation mit His-tag, bzw. Oligo-Asp Peptid2.3. Conjugation with His-tag, or oligo-Asp peptide
Zur Kopplung des His-tag Peptids „PRG12" (Aminosäuresequenz RGSHHHHHHGGC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1359,8), bzw. des Oligo-Asp Peptids „D14C" (Aminosäuresequenz DDDDDDDDDDDDDDC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1731,43) wurde der MACN-Antikörper mit SMCC (Succinimidyl 4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane-1-carboxylate, Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 22360) im molaren Verhältnis von 1:50 aktiviert (siehe „Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA). 2 mg MACN Antikörper wurden mit 6,68 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Produkt wurde über eine NAP10-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.to Coupling of His-tag Peptide "PRG12" (Amino Acid Sequence RGSHHHHHGGC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1359.8), or the oligo-Asp peptide "D14C" (amino acid sequence DDDDDDDDDDDDDDC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1731.43) was the MACN antibody with SMCC (succinimidyl 4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate, Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 22360) in a molar ratio of 1:50 activated (see "Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA). 2 mg MACN antibodies were with 6.68 μl of 100 mM SMCC (freshly dissolved in DMSO) and incubated for 30 min at room temperature. The product was over a NAP10 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) (Eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content photometrically certainly.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem His-tag, bzw. Oligo-Asp Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurde die Reaktion mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt, nochmals je über eine NAP25-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, pH 7,4) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently Immediately conjugation with the His-tag, or oligo-Asp Peptide (dissolved in distilled water) in molar ratio from 1: 100. After incubation for 60 min at room temperature, the Reaction with 100 μl of 100 mM cysteine stopped for 10 min, again each over a NAP25 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) purified (mobile phase: PBS, pH 7.4) and the protein content photometrically certainly.
Beide Konjugate wurden aliquotiert bei –20°C gelagert.Both Conjugates were stored aliquoted at -20 ° C.
Bindungspartner 2 (Festphase)Binding partner 2 (solid phase)
1.1. Konjugation von BSA mit FLAGtag/ProtC-tag1.1. Conjugation of BSA with FLAGtag / ProtC-tag
Zur Kopplung des Flag-tag Peptids „PDC12" (Aminosäuresequenz DYKDDDDKGGGC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1286,46), bzw. ProtC-tag Peptids PEG15 (Aminosäuresequenz EDQVDPRLIDGKGGC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1601,7) wurde proteasefreies Bovines Serum Albumin (Firma Sigma, Deisenhofen, Deutschland) mit SMCC (Succinimidyl 4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane-1-carboxylate, Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 22360) im molaren Verhältnis von 1:2 aktiviert (siehe „Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA).to Coupling of Flag-tag Peptide "PDC12" (Amino Acid Sequence DYKDDDDKGGGC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1286.46), or ProtC-tag peptide PEG15 (amino acid sequence EDQVDPRLIDGKGGC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1601.7) was protease-free Bovine serum albumin (Sigma, Deisenhofen, Germany) with SMCC (succinimidyl 4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate, Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 22360) in a molar ratio 1: 2 activated (see "Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA).
2500 μl 0,5% BSA (gelöst in PBS, 10 mM EDTA, pH 8) wurden mit 3,78 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Produkt wurde über eine NAP25-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.2500 μl 0.5% BSA (dissolved in PBS, 10 mM EDTA, pH 8) was mixed with 3.78 μl 100 mM SMCC (freshly dissolved in DMSO) and 30 min incubated at room temperature. The product was about a NAP25 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) (eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content was determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem FLAG-tag, bzw. ProtC-tag Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurden die Konjugate je mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt und nochmals je über eine NAP25-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, pH 7,4); der Proteingehalt wurde photometrisch bestimmt.Subsequently Conjugation with the FLAG-tag or ProtC-tag took place immediately Peptide (dissolved in distilled water) in molar ratio from 1: 100. After incubation for 60 min at room temperature the conjugates each with 100 ul 100 mM cysteine stopped for 10 min and again each on a NAP25 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) (eluent: PBS, pH 7.4); the protein content was determined photometrically.
Das BSA+FLAG-tag- und BSA+ProtC-tag-Konjugat wurde aliquotiert bei –20°C gelagert.The BSA + FLAG tag and BSA + ProtC tag conjugate was aliquoted at -20 ° C stored.
1.2. Konjugation von BSA mit Oligo-Lys Peptid1.2. Conjugation of BSA with oligo-Lys peptide
Zur Kopplung des Oligo-Lys Peptids „K14C" (Aminosäuresequenz KKKKKKKKKKKKKKC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1914,27) wurde proteasefreies Bovines Serum Albumin (Firma Sigma, Deisenhofen, Deutschland) mit SMCC im molaren Verhältnis von 1:25 aktiviert.to Coupling of Oligo-Lys Peptide "K14C" (Amino Acid Sequence KKKKKKKKKKKKKC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1914,27) was protease-free bovine serum albumin (Sigma, Deisenhofen, Germany) with SMCC in the molar ratio of 1:25 activated.
1000 μl 0,5% BSA (gelöst in PBS, 10 mM EDTA, pH 8) wurden mit 18,9 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Produkt wurde über eine NAP10-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.1000 μl 0.5% BSA (dissolved in PBS, 10 mM EDTA, pH 8) was mixed with 18.9 μl 100 mM SMCC (freshly dissolved in DMSO) and 30 min incubated at room temperature. The product was about a NAP10 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) (eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content was determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem Oligo-Lys Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurde die Reaktion mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt, nochmals über eine NAP25-Säule (Pharmacia, Upsalla, Schweden) gereinigt (Laufmittel: PBS, pH 7,4) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently Conjugation with the oligo-Lys peptide (dissolved in dest. Water) in a molar ratio of 1: 100. To Incubation for 60 min at room temperature was followed by reaction 100 μl 100 mM cysteine stopped for 10 min, again over a NAP25 column (Pharmacia, Upsalla, Sweden) (Eluent: PBS, pH 7.4) and the protein content determined photometrically.
Das BSA+Oligo-Lys Konjugat wurde aliquotiert bei –20°C gelagert.The BSA + oligo-Lys conjugate was aliquoted at -20 ° C stored.
2. Kopplung der Konjugate, bzw. von Avidin2. Coupling of the conjugates, or avidin
Bestrahlte Sternröhrchen (Firma Greiner, Frickenhausen, Deutschland) wurden mit den Konjugaten aus 1.1. und 1.2., bzw. mit Avidin (Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 21121, gelöst in dest. Wasser) wie folgt beschichtet:irradiated Star tube (Greiner, Frickenhausen, Germany) were used with the conjugates from 1.1. and 1.2., or with avidin (Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 21121, dissolved in dest. Water) coated as follows:
Die Komponenten wurden in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7,8 zu einer Konzentration von 6.67 μg/ml verdünnt. Pro Röhrchen wurden je 300 μl der Lösungen pipettiert und 20 h bei 22°C inkubiert. Die Lösungen wurden abgesaugt. Dann wurde jedes Röhrchen mit 300 μl 0,5% Bovines Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h abgesättigt und nochmals abgesaugt. Anschließend wurden die Röhrchen in einem Vakuumtrockner getrocknet und bei 4°C gelagert.The Components were added to a concentration in 10mM Tris, 100mM NaCl, pH 7.8 diluted to 6.67 μg / ml. Per tube 300 μl of the solutions were pipetted and 20 h incubated at 22 ° C. The solutions were filtered off with suction. Then each tube was filled with 300 μl of 0.5% Bovines Serum albumin, 2% Karion FP 2 h saturated and again aspirated. Subsequently, the tubes were in dried in a vacuum dryer and stored at 4 ° C.
3. Ni-NTA-Festphase3. Ni-NTA solid phase
Es wurden Ni-NTA Mikrotiterplatten (Firma Qiagen, Hilden, Deutschland Art. Nr. 1006387) verwendet.It were Ni-NTA microtiter plates (Qiagen, Hilden, Germany Art. No. 1006387).
4. Assay zum Nachweis von reversibel gebundenen Antikörpern4. Assay for the detection of reversibly bound antibodies
4.1 Bindung der MACN-Antikörper Konjugate4.1 Binding of MACN antibodies conjugates
Die MACN-Antikörper Konjugate wurden auf eine Konzentration von 1,5 μg/ml mit Verdünnungspuffer (s. Tabelle 2) eingestellt. Je 300 μl wurden in mehreren parallelen Ansätzen auf die entsprechende Festphase pipettiert und über Nacht bei Raumtemperatur inkubiert. Die Röhrchen wurden mit 5 × 1 ml, die Ni-NTA Mikrotiterplatte mit 5 × 300 μl Waschpuffer (s. Tabelle 2) gewaschen.The MACN antibody conjugates were at concentration of 1.5 μg / ml with dilution buffer (see Table 2). Each 300 μl were in several parallel Approaches to the corresponding solid phase pipetted and over Incubated at room temperature overnight. The tubes were with 5 x 1 ml, the Ni-NTA microtiter plate with 5 x 300 μl Washing buffer (see Table 2).
In je einem der Ansätze wurde die Menge an gebundenem MACN-Antikörper Konjugat bestimmt:In each of the approaches was the amount of bound MACN antibody Conjugate determines:
Die an den Röhrchen gebundene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat wurde in einem Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen. Die an der Mikrotiterplatte gebundene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat wurde in einem Microplate Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, MPL2; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.The amount of MACN-antibody conjugate bound to the tubes was used in a luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T; Basic reagents BRAHMS AG). The on the microtiter plate bound amount of MACN antibody conjugate was in one Microplate Luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, MPL2; Basic reagents BRAHMS AG).
4.2 Messung der unspezifischen Ablösung der MACN-Antikörper Konjugate mit Vollblut4.2 Measurement of nonspecific detachment the MACN antibody conjugates with whole blood
In weitere Ansätze der gebundenen MACN-Antikörper Konjugate wurden je 300 μl Vollblut (s. Tabelle 2) pipettiert und 10 min inkubiert. Die Röhrchen wurden mit 5 × 1 ml, die Ni-NTA Mikrotiterplatte mit 5 × 300 μl Waschpuffer (s. Tabelle 2) gewaschen. Die an den Röhrchen verbliebene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat wurde in einem Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.In further approaches of bound MACN antibodies Conjugates were each pipetted 300 μl of whole blood (see Table 2) and incubated for 10 min. The tubes were 5x1 ml, the Ni-NTA microtiter plate with 5 × 300 μl washing buffer (see Table 2). The remaining on the tube Amount of MACN antibody conjugate was in a luminometer (BERTHOLD Company, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T; Basic Reagents BRAHMS AG).
Die an der Mikrotiterplatte verbliebene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat wurde in einem Microplate Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, MPL2; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.The amount of MACN-antibody conjugate remaining on the microtiter plate was used in a Microplate Luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, MPL2; Basic reagents BRAHMS AG).
4.3 Messung der spezifischen Ablösung der MACN-Antikörper Konjugate mit Ablösungspuffer4.3 Measurement of the specific detachment the MACN antibody conjugates with separation buffer
In weitere Ansätze der gebundenen MACN-Antikörper Konjugate wurden je 300 μl Ablösungspuffer (s. Tabelle 2) pipettiert und 10 bzw. 30 min inkubiert. Die Röhrchen wurden mit 5 × 1 ml, die Ni-NTA Mikrotiterplatte mit 5 × 300 μl Waschpuffer gewaschen (s. Tabelle 2). Die an den Röhrchen verbliebene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat wurde in einem Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.In further approaches of bound MACN antibodies Conjugates were each 300 ul Ablösungspuffer (see Table 2) pipetted and incubated for 10 or 30 min. The tubes with 5 x 1 ml, the Ni-NTA microtiter plate with 5 x 300 μl Washing buffer washed (see Table 2). The on the tube remaining amount of MACN-antibody conjugate was in a luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T; Basic reagents BRAHMS AG).
Die
an der Mikrotiterplatte verbliebene Menge an MACN-Antikörper-Konjugat
wurde in einem Microplate Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD,
DEUTSCHLAND, MPL2; Basisreagenzien BRAHMS AG) vermessen.
Weitergehende Untersuchungen zum Oligo-Asp/Oligo-Lys-SystemFurther investigation of the Oligo-Asp / Oligo-Lys system
AblösungsagentienAblösungsagentien
Wie oben beschrieben, wurde eine effiziente Auflösung der Bindung durch Zugabe von 0,01% Heparin erreicht (s. Tabelle 1 und zugehörige Beschreibung). Als alternative Ablösungsagentien wurden auch NaCl und KF untersucht. Eine mit 0,01% Heparin vergleichbare Wirkung auf die Auflösung der Bindung wurde mit NaCl- bzw. KF-Konzentrationen > 0.8 M erreicht. Es sind zahlreiche andere Variationen in der Pufferkomposition denkbar, die zu Auflösung der Bindung führen (andere Salze von geringem Molekulargewicht, andere geladene Oligo- oder Polymere, anderer pH-Wert). All diese Variationen sind im Sinne dieser Erfindung als Ablösungsagentien zu verstehen. Als besonders bevorzugt sind jedoch solche Variationen anzusehen, die einerseits effizient die Bindung des Oligo-Asp/Oligo-Lys-Systems destabilisieren, andererseits aber die Bindung zwischen Antikörper und Analyten möglichst unbeeinträchtigt lassen. Heparin in einer Konzentration um 0.01% stellt eine solche bevorzugte Variante dar, da bekanntermaßen viele Immunoassays als Probenmatrix Heparinplasma verwenden können und die Konzentration von Heparin in diesem Plasma typischerweise im Bereich von 0.01% liegt.As described above, was an efficient resolution of binding by adding 0.01% heparin (see Table 1 and related Description). As alternative separation agents were also examined NaCl and KF. A comparable with 0.01% heparin Effect on the dissolution of the bond was with NaCl or KF concentrations> 0.8 Reached. Numerous other variations in the buffer composition are conceivable, which lead to dissolution of the bond (other salts low molecular weight, other charged oligo- or polymers, other pH). All of these variations are within the meaning of this invention to be understood as detachment agents. As particularly preferred However, such variations should be regarded as efficient on the one hand destabilize the binding of the oligo-Asp / oligo-lys system, on the other hand but the binding between antibody and analyte as possible leave undisturbed. Heparin in a concentration 0.01% represents such a preferred variant, as is known Many immunoassays can use heparin plasma as a sample matrix and the concentration of heparin in this plasma typically in the range of 0.01%.
Spezifität d. Bindung des Analyten an die FestphaseSpecificity d. Binding of the analyte to the solid phase
Gibt man eine biologische Probe zu einer Festphase, die beschichtet ist mit Oligo-Lys-BSA/Oligo-Asp-Analyt-Binder, so könnte man befürchten, dass der Analyt von Interesse aus der Probe nicht nur an den Analyt-spezifischen Antikörper bindet, sondern möglicherweise auch unspezifisch über ionische Wechselwirkung an eventuell freie Lysin Anteile der Festphase. Wäre dies der Fall, wäre die Richtigkeit in der nachfolgenden Analytdetektion (nach dem Ablöseschritt) beeinträchtigt. Ob und inwieweit derartige unspezifische Analytbindungen erfolgen können, wurde untersucht, indem verschiedene synthetische Peptide, welche weitgehend identisch mit bekannten natürlichen Analyten sind und diese daher repräsentieren, chemilumineszenz-markiert wurden, in eine Plasmamatrix verdünnt wurden und in Röhrchen inkubiert wurden, die mit Oligo-Lys-BSA beschichtet und daran ein Oligo-Asp-anti PCT Antikörper gebunden war. Der detektierte Anteil an unspezifisch gebundenen Peptiden lag immer unter 7% des angebotenem Peptids. Somit stellt unspezifische Analytbindung an die Festphase kein Problem dar.Gives a biological sample to a solid phase, which is coated with oligo-lys-BSA / oligo-asp analyte binder, one could fear that the analyte of interest from the sample not only bind to the analyte-specific antibody, but may also be unspecific about ionic interaction with possibly free lysine portions of the solid phase. If that were the case, the correctness would be in the subsequent analyte detection (after the detachment step) impaired. Whether and to what extent such nonspecific analyte binding has been studied by using various synthetic Peptides which are largely identical to known natural ones Analytes are and therefore represent chemiluminescence-labeled were diluted into a plasma matrix and placed in tubes incubated with oligo-Lys-BSA and attached thereto Oligo-Asp-anti PCT antibody was bound. The detected Proportion of nonspecifically bound peptides was always below 7% of the offered peptide. Thus, non-specific analyte binding is involved the solid phase is not a problem.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt:in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
1. Herstellung von MACN-chemilumineszenz-markierten Peptiden1. Preparation of MACN chemiluminescence-labeled peptides
Folgende
Peptide (alle von Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland) wurden mit
MACN markiert:
„PPL41" (Aminosäuresequenz
PEVPPWTGEVSPAQRDGGALGGGGRGPWDSSDRSALLKSKL, abgeleitet von NT-proANP), „PSW44"
(Aminosäuresequenz SSEEHLRQTRSETMRNSVKSSFHDPKLKGKPSRERYVTHNRAHW,
abgeleitet von proEndothelin), „PAY33" (Aminosäuresequenz
ATQLDGPAGALLLRLVQLAGAPEPFEPAQPDAY, abgeleitet von Copeptin), „Peptid
45–92" (Aminosäuresequenz ELRMSSSYPTGLADVKAGPAQTLIRPQDMKGASRSPEDSSPDAARIRV,
abgeleitet von proAdre nomedullin)The following peptides (all from JPT GmbH, Berlin, Germany) were labeled with MACN:
"PPL41" (amino acid sequence PEVPPWTGEVSPAQRDGGALGGGGRGPWDSSDRSALLKSKL derived of NT-proANP), "PSW44" (amino acid sequence SSEEHLRQTRSETMRNSVKSSFHDPKLKGKPSRERYVTHNRAHW derived from proendothelin), "PAY33" (amino acid sequence ATQLDGPAGALLLRLVQLAGAPEPFEPAQPDAY derived from Copeptin), "peptide 45-92" (amino acid sequence ELRMSSSYPTGLADVKAGPAQTLIRPQDMKGASRSPEDSSPDAARIRV derived from proAdre nomedullin)
Zur Chemilumineszenzmarkierung wurden die Peptide im molaren Verhältnis von 1:1 mit MACN-Akridinium-NHS-Ester (Firma InVent GmbH, Hennigsdorf, Deutschland) 1 Stunde bei Raumtemperatur markiert. Anschließend wurde die Reaktion mit 1 M Tris pH 7,8 10 min gestoppt.to Chemilumineszenzmarkierung were the peptides in the molar ratio of 1: 1 with MACN-acridinium-NHS ester (InVent GmbH, Hennigsdorf, Germany) for 1 hour at room temperature. Subsequently the reaction was stopped with 1 M Tris pH 7.8 for 10 min.
Zur Abtrennung von nicht eingebauten MACN wurden die Markierungsansätze über eine reversed Phase C18-Säule (μBondapak, Waters WAT027342, Nr. 0202352581) gereinigt. Die Proben wurden aufgetragen und bei einer Flußrate von 1,0 ml/min mittels eines ansteigenden Wasser/Acetonitril-(+0,1% TFA)-Gradienten chromatographiert. Mit einem Duchflußphotometer wurden die Wellenlängen 214 nm, 280 nm und 368 nm gemessen und die Peaks detektiert.to Separation of unincorporated MACN became the tag approaches a reversed phase C18 column (μBondapak, Waters WAT027342, No. 0202352581). The samples were applied and at a flow rate of 1.0 ml / min by means of a rising Water / acetonitrile (+ 0.1% TFA) gradient chromatographed. With a wavelength photometer became the wavelengths 214 nm, 280 nm and 368 nm measured and detected the peaks.
Die markierten Peptide wurden portioniert bei –20°C gelagert.The labeled peptides were portioned at -20 ° C stored.
1.1. Herstellung BSA+Oligo-Lys Konjugat: siehe oben1.1. Preparation BSA + oligo-Lys conjugate: see above
1.2. Herstellung anti Calcitonin Schaf Antikörper+Oligo-Asp Konjugat1.2. Producing anti calcitonin sheep Antibody + oligo-Asp conjugate
Zur Kopplung des Oligo-Asp Peptids „D14C" (Aminosäuresequenz DDDDDDDDDDDDDDC, (Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1731,43) wurde ein polyklonaler anti Calcitonin Schaf Antikörper („anti-PCT Antikörper 1") mit SMCC im Verhältnis 1:25 aktiviert (siehe „Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce).to Coupling of Oligo-Asp Peptide "D14C" (Amino Acid Sequence DDDDDDDDDDDDDC, (JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1731.43) became a polyclonal anti calcitonin sheep antibody ("Anti-PCT antibody 1") with SMCC in ratio 1:25 activated (see "Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce).
3 mg Antikörper (in 4,5 ml PBS, 10 mM EDTA, pH 8) wurden mit 5,0 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Produkt wurde über zwei NAP25-Säulen gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.3 mg of antibody (in 4.5 ml of PBS, 10 mM EDTA, pH 8) with 5.0 μl of 100 mM SMCC (freshly dissolved in DMSO) and incubated for 30 min at room temperature. The product was over purified two NAP25 columns (eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content is determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem Oligo-Asp Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurde die Reaktion mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt, nicht konjugiertes Peptid über NAP25-Säulen abgetrennt (Laufmittel: PBS, pH 7,4) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently the conjugation with the oligo-Asp peptide (dissolved in dest. Water) in a molar ratio of 1: 100. To Incubation for 60 min at room temperature was followed by reaction 100 μl 100 mM cysteine stopped for 10 min, unconjugated Peptide separated via NAP25 columns (eluent: PBS, pH 7.4) and the protein content is determined photometrically.
Das anti Calcitonin Schaf Antikörper+Oligo-Asp Konjugat wurde aliquotiert bei –20°C gelagert.The anti calcitonin sheep antibody + oligo-asp conjugate was aliquoted stored at -20 ° C.
2. Kopplung der Konjugate auf Röhrchen2. Coupling of the conjugates to tubes
2.1. Kopplung: BSA+Oligo-Lys Konjugat2.1. Coupling: BSA + Oligo-Lys conjugate
Bestrahlte
Sternröhrchen (Firma Greiner, Frickenhausen, Deutschland)
wurden mit BSA-Oligo-Lys Konjugat wie folgt beschichtet:
Das
Konjugat wurde in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7,8 zu einer Konzentration
von 6.67 μg/ml verdünnt. In jedes Röhrchen
wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 20
h bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt.
Dann wurde jedes Röhrchen mit 300 μl 0,5% Bovines
Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h abgesättigt und nochmals
abgesaugt. Anschließend erfolgte die Bindung des anti Calcitonin
Schaf Antikörper+Oligo-Asp Konjugates:Irradiated star tubes (Greiner, Frickenhausen, Germany) were coated with BSA-oligo-Lys conjugate as follows:
The conjugate was diluted in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7.8 to a concentration of 6.67 μg / ml. 300 μl of this solution were pipetted into each tube and incubated at 22 ° C. for 20 h. The solution was sucked off. Then, each tube was saturated with 300 ul of 0.5% Bovine Serum Albumin, 2% Karion FP for 2 h and again aspirated. Subsequently, the binding of the anti-calcitonin sheep antibody + oligo-Asp conjugate was carried out:
2.2. Bindung: anti Calcitonin Schaf Antikörper+Oligo-Asp Konjugat2.2. Binding: anti calcitonin sheep antibody + oligo-Asp conjugate
Das Konjugat wurde in PBS, 0,5% proteasefreies BSA pH 7,4 zu einer Konzentration von 667 ng/ml verdünnt. In jedes Röhrchen wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 1 Stunde bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt. Dann wurde jedes Röhrchen mit 300 μl 0,5% Bovines Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h nochmals abgesättigt und danach abgesaugt.The Conjugate was in PBS, 0.5% protease-free BSA pH 7.4 to a concentration of 667 ng / ml. In each tube were Pipet 300 μl of this solution and add in for 1 hour Incubated at 22 ° C. The solution was sucked off. Then each tube was filled with 300 μl 0.5% Bovine Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h again saturated and then aspirated.
Anschließend wurden die Röhrchen in einem Vakuumtrockner getrocknet und bei 4°C gelagert.Subsequently the tubes were dried in a vacuum dryer and stored at 4 ° C.
3. Bestimmung der unspezifischen Bindung:3. Determination of non-specific binding:
Die MACN-Peptide wurden in einer Plasmamatrix verdünnt. Je 300 μl wurden in die mit dem Oligo-Lys-BSA und dem Oligo-Asp-anti PCT Antikörper beschichteten Röhrchen pipettiert und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Die Röhrchen wurden mit 3 × 1 ml PBS pH 7,4, 0,5% proteasefreies BSA gewaschen. Die an den Röhrchen gebundene Menge sowie die eingesetzte Totalaktivität an MACN-Peptid wurde in einem Luminometer (Firma BERTHOLD, BAD WILDBAD, DEUTSCHLAND, LB952T; Basisreagenzien BRAHMS AG) gemessen.The MACN peptides were diluted in a plasma matrix. ever 300 .mu.l were in the with the oligo-Lys-BSA and the oligo-Asp-anti Pipetted PCT antibody coated tubes and incubated for 30 min at room temperature. The tubes were washed with 3 x 1 ml PBS pH 7.4, 0.5% protease-free BSA. The amount bound to the tubes as well as the total activity used of MACN peptide was measured in a luminometer (BERTHOLD, BAD WILDBAD, GERMANY, LB952T; Basic reagents BRAHMS AG).
Die
prozentuale unspezifische Bindung bezogen auf die Totalaktivität
betrug:
Vergleich am Beispiel PCT: Klassische Immunchromatographie aus Vollblut vs. Immunextraktion von PCT aus Vollblut, Ablösung und Analytdetektion mittels Immunchromatographie oder der TRACE TechnologieComparison using the example of PCT: Classic Immunochromatography from whole blood vs. Immune Extraction of PCT from Whole Blood, Replacement and analyte detection by means of immunochromatography or the TRACE technology
PCT (Procalcitonin) wurde als relevanter Modellanalyt ausgewählt. Es handelt sich um einen Marker für bakterielle Infektionen, insbesondere schwere Infektionen, die zu einer systemischen Inflammationsreaktion des Wirts führen (Sepsis) (21). Sandwich Immunoassays zur Detektion von PCT verwenden Antikörper gegen den Calcitonin- bzw. Katacalcin-Anteil des Peptids (22), (23).PCT (Procalcitonin) was selected as a relevant model analyte. It is a marker for bacterial infections, especially serious infections leading to a systemic inflammatory response of the host (sepsis) (21). Sandwich immunoassays for Detection of PCT Use Antibodies Against Calcitonin or katacalcin portion of the peptide (22), (23).
Die
Immunchromatographie stellt die in der heutigen Routineanwendung
gebräuchlichste Schnelltest-Methodik zur immunologischen
Detektion von Analyten aus Vollblut dar und kann daher als „klassische Immunchromatographie"
bezeichnet werden. Diese Methodik wurde daher hier als Referenzmethode
gewählt, um Vorteile des erfindungsgemäßen
Prinzips der Immunextraktion und Ablösung („Immuntransfer")
mit angeschlossener Analytdetektion darzulegen. Es wurden zwei verschiedene
Detektionsmethoden untersucht: Einerseits die Immunchromatographie,
andererseits die TRACE (Time resolved amplified cryptate emission) Technologie.
Mit allen drei Methoden wurden PCT Konzentrationen aus PCT enthaltenden
Vollblutproben in jeweils 10-fach-Bestimmung ermittelt. In
A. Immunextraktion von PCT aus Vollblut und Analytdetektion mittels der TRACE TechnologieA. Immune Extraction of PCT from Whole Blood and analyte detection using the TRACE technology
Als Festphase wurden Mikrotiterplatten aus hochbindendem Polystyrol verwendet, die mit Oligo-Lys-BSA beschichtet waren, woran ein erster anti-PCT-Antikörper gebunden war, der vorher mit Oligo-Asp und Kryptat derivatisiert worden war. Darauf wurde PCT enthaltende Vollblutprobe kurz inkubiert und PCT aus der Probe auf die Festphase immunextrahiert. Nach Waschen der Festphase wurde Ablösungspuffer zugegeben und kurz inkubiert. Ein Aliquot wurde in eine andere, niedrig bindende schwarze Mikrotiterplatte überführt und mit einer Lösung gemischt, die einen zweiten, mit Cyanin markierten anti-PCT Antikörper enthielt. Nach kurzer Inkubation wurde die Sandwichbildung nach Anregung mit Laser-Licht mittels TRACE Technologie detektiert.When Solid phase were microtiter plates of high-binding polystyrene used, which were coated with oligo-Lys-BSA, what a first anti-PCT antibody bound previously with oligo-Asp and Cryptate had been derivatized. On it, PCT-containing whole blood sample was briefly incubated and PCT from the sample to the solid phase immune extracted. After washing the solid phase, release buffer was added and incubated briefly. One aliquot was transformed into another, low binding transferred black microtiter plate and with a Mixed solution, a second, labeled with cyanine anti-PCT antibody. After a short incubation was the sandwich formation after excitation with laser light by means of TRACE Technology detected.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt:in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
A.1. Herstellung der Konjugate für die FestphaseA.1. Preparation of the conjugates for the solid phase
A.1.1. Herstellung BSA+Oligo-Lys Konjugat: s. obenA.1.1. Preparation BSA + oligo-Lys conjugate: s. above
A.1.2. Herstellung anti Calcitonin Schaf Antikörper-Kryptat MonoMP+Oligo-Asp KonjugatA.1.2. Producing anti calcitonin sheep Antibody Crypt MonoMP + Oligo-Asp Conjugate
Für die Markierung mit Kryptat Monophosphat („KMonoMP", Firma Cezanne, Nimes, Frankreich,) wurde ein polyklonaler anti-Calcitonin-Schaf-Antikörper („anti-PCT Antikörper 1”) mit SPDP (N-succinimidyl 3-(2-pyridyldithio)propionate, Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 21857) im molaren Verhältnis von 1:4 aktiviert (siehe „Instructions SPDP Reagents", Pierce, Rockford, IL, USA).For the label with cryptate monophosphate ("KMonoMP", company Cezanne, Nimes, France) became a polyclonal anti-calcitonin sheep antibody ("Anti-PCT antibody 1") with SPDP (N-succinimidyl 3- (2-pyridyldithio) propionate, Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 21857) in molar ratio of 1: 4 (see "Instructions SPDP Reagents", Pierce, Rockford, IL, USA).
5 mg Antikörper (gelöst in 1,5 ml 100 mM Natriumphosphat, 5 mM EDTA, pH 6,9) wurden mit 41,6 μl 3,2 mM SPDP (frisch gelöst in Ethanol) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert.5 mg of antibody (dissolved in 1.5 ml of 100 mM sodium phosphate, 5 mM EDTA, pH 6.9) were mixed with 41.6 μl of 3.2 mM SPDP (fresh dissolved in ethanol) and 30 min at room temperature incubated.
Der aktivierte Antikörper wurde mit 81,2 μl 200 mM DTT (Dithiothreitol, gelöst in 100 mM Natriumphosphat, 5 mM EDTA, pH 6,9) 15 min bei Raumtemperatur reduziert. Das Produkt wurde über zwei NAP10-Säulen gereinigt (Laufmittel: 100 mM Natriumphosphat, 5 mM EDTA, pH 6,9) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Of the activated antibody was treated with 81.2 μl of 200 mM DTT (dithiothreitol dissolved in 100 mM sodium phosphate, 5 mM EDTA, pH 6.9) for 15 min at room temperature. The product was purified over two NAP10 columns (eluent: 100 mM sodium phosphate, 5 mM EDTA, pH 6.9) and the protein content determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation des Eluats mit lyophilisiertem KMonoMP im molaren Verhältnis von 1:8. Nach Inkubation von 20 h bei 4°C wurde das Produkt nochmals über drei NAP10-Säulen gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently Immediate conjugation of the eluate with lyophilized KMonoMP in a molar ratio of 1: 8. After incubation for 20 h at 4 ° C, the product was re-crossed over three NAP10 columns purified (eluent: PBS, 10 mM EDTA pH 8) and the protein content determined photometrically.
Zur Kopplung des Oligo-Asp Peptids „D14C" (Aminosäuresequenz DDDDDDDDDDDDDDC, Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1731,43) wurde das Produkt mit SMCC im Verhältnis 1:25 aktiviert (siehe „Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA).: 3 mg Produkt (eluiert mit 4,5 ml PBS, 10 mM EDTA, pH 8) wurden mit 5,0 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Produkt wurde über zwei NAP25-Säulen gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.to Coupling of Oligo-Asp Peptide "D14C" (Amino Acid Sequence DDDDDDDDDDDDDC, JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1731.43) the product was activated with 1:25 SMCC (See "Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA) .: 3 mg of product (eluted with 4.5 ml PBS, 10 mM EDTA, pH 8) were dissolved with 5.0 μl of 100 mM SMCC (fresh in DMSO) and incubated for 30 min at room temperature. The product was purified on two NAP25 columns (eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content was determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem Oligo-Asp Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurde die Reaktion mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt, nicht konjugiertes Peptid über NAP25-Säulen abgetrennt (Laufmittel: PBS, pH 7,4) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently the conjugation with the oligo-Asp peptide (dissolved in dest. Water) in a molar ratio of 1: 100. To Incubation for 60 min at room temperature was followed by reaction 100 μl 100 mM cysteine stopped for 10 min, unconjugated Peptide separated via NAP25 columns (eluent: PBS, pH 7.4) and the protein content is determined photometrically.
Das anti Calcitonin Schaf Antikörper-K MonoMP+Oligo-Asp Konjugat wurde aliquotiert bei –20°C gelagert.The anti calcitonin sheep antibody-K MonoMP + oligo-Asp conjugate was stored aliquoted at -20 ° C.
A.2. Kopplung der Konjugate auf MikrotiterplattenA.2. Coupling of the conjugates to microtiter plates
A.2.1. Kopplung: BSA+Oligo-Lys KonjugatA.2.1. Coupling: BSA + Oligo-Lys conjugate
Bestrahlte
Mikrotiterplatten (Firma Greiner, Frickenhausen, Deutschland) wurden
mit BSA-Oligo-Lys Konjugat wie folgt beschichtet:
Das Konjugat
wurde in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7,8 zu einer Konzentration
von 6.67 μg/ml verdünnt. In jede Kavität
wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 20
h bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt. Dann
wurde jede Kavität mit 300 μl 0,5% Bovines Serum
Albumin, 2% Karion FP 2 h abgesättigt und nochmals abgesaugt.
Anschließend erfolgte die Bindung des anti Calcitonin Schaf
Antikörper-Kryptat MonoMP+Oligo-Asp Konjugates:Irradiated microtiter plates (Greiner, Frickenhausen, Germany) were coated with BSA-oligo-Lys conjugate as follows:
The conjugate was diluted in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7.8 to a concentration of 6.67 μg / ml. 300 μl of this solution were pipetted into each well and incubated at 22 ° C. for 20 h. The solution was sucked off. Each well was then saturated with 300 μl 0.5% Bovine Serum Albumin, 2% Karion FP for 2 h and aspirated again. Subsequently, the binding of the anti-calcitonin sheep antibody-cryptate MonoMP + oligo-Asp conjugate was carried out:
A.2.2. Bindung: anti Calcitonin Schaf Antikörper-Kryptat MonoMP+Oligo-Asp KonjugatA.2.2. Binding: anti calcitonin sheep Antibody Crypt MonoMP + Oligo-Asp Conjugate
Das Konjugat wurde in PBS, 0,5% proteasefreies BSA pH 7,4 zu einer Konzentration von 667 ng/ml verdünnt. In jede Kavität wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 1 Stunde bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt. Dann wurde jede Kavität mit 300 μl 0,5% Bovines Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h abgesättigt und nochmals abgesaugt.The Conjugate was in PBS, 0.5% protease-free BSA pH 7.4 to a concentration of 667 ng / ml. In each cavity were Pipet 300 μl of this solution and add in for 1 hour Incubated at 22 ° C. The solution was sucked off. Then Each well was filled with 300 μl of 0.5% Bovine Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h saturated and again aspirated.
Anschließend wurden die Mikrotiterplatten in einem Vakuumtrockner getrocknet und bei 4°C gelagert.Subsequently The microtiter plates were dried in a vacuum dryer and stored at 4 ° C.
A.3. Herstellung eines anti Katacalcin Maus Antikörper-Cy5-Konjugats für die FlüssigphaseA.3. Preparation of an anti-catacalcin Mouse antibody-Cy5 conjugate for the liquid phase
Ein monoklonaler anti Katacalcin Antikörper („anti-PCT Anitkörper 2") wurde in Anwesenheit von 45% (2-Hydroxyl-propyl)-β-Cyclodextrin (Firma Aldrich, Seelze, Deutschland, Art. Nr. 33.260-7) mit Cy5-NHS (Firma Amersham, Art. Nr. PA15100) im molaren Verhältnis von 1:20 markiert (siehe Product Booklet „Amersham CyDye mono-reactive NHS Esters"). 213 μl Antikörper (c = 10 mg/ml in PBS pH 7,4) wurden mit 750 μl 60% Cyclodextrin (gelöst in 100 mM Carbonatpuffer pH 9) gemischt und mit 37,3 μl 7,7 mM Cy5-NHS (gelöst in DMSO) versetzt. Nach Inkubation von einer Stunde bei Raumtemperatur wurde der Ansatz mit 50 μl 50 mM Glycin 10 min gestoppt und über eine NAP10-Säule (Laufmittel: PBS, pH 7,4) vorgereinigt.One monoclonal anti-catacalcin antibody ("anti-PCT Anit body 2 ") was in the presence of 45% (2-hydroxyl-propyl) -β-cyclodextrin (Aldrich, Seelze, Germany, Art. No. 33,260-7) with Cy5-NHS (Amersham, Art. No. PA15100) in molar ratio marked by 1:20 (see Product Booklet "Amersham CyDye mono-reactive NHS ester "). 213 μl antibody (c = 10 mg / ml in PBS pH 7.4) were mixed with 750 μl of 60% cyclodextrin (dissolved in 100 mM carbonate buffer pH 9) and mixed with 37.3 μl 7.7 mM Cy5-NHS (dissolved in DMSO). After incubation of one hour at room temperature, the batch became stopped with 50 μl of 50 mM glycine for 10 min a NAP10 column (eluent: PBS, pH 7.4) prepurified.
Zur Abtrennung letzter Reste nicht an Antikörper gebundenen Cy5-NHS wurde eine Gelfiltrations-HPLC durchgeführt (Säule: Bio-Sil Sec 125, Firma Biorad, München, Deutschland). Die Probe wurde aufgetragen und bei einer Flußrate von 1 ml/min mit PBS, pH 7,4 chromatographiert. Mit einem Duchflußphotometer wurden die Wellenlängen 280 nm und 648 nm gemessen. Das Absorbtionsverhältnis 648 nm/280 nm als Maß für den Markierungsgrad des Antikörpers betrug am Peak 1,48. Die Antikörper enthaltenden Fraktionen (Retentionszeit 8–10 min) wurden gepoolt.to Separation of last residues not bound to antibodies Cy5-NHS was subjected to gel filtration HPLC (column: Bio-Sil Sec 125, Biorad, Munich, Germany). The Sample was applied and at a flow rate of 1 ml / min chromatographed with PBS, pH 7.4. With a flow photometer the wavelengths 280 nm and 648 nm were measured. The Absorbance ratio 648 nm / 280 nm as a measure of the degree of labeling of the antibody was 1.48 at the peak. The antibody-containing fractions (retention time 8-10 min) were pooled.
Das anti Katacalcin Maus Antikörper-Cy5-Konjugat wurde portioniert und bei –20°C gelagert.The anti Katacalcin mouse antibody Cy5 conjugate was portioned and stored at -20 ° C.
A.4. Immuntransfer und TRACE AssayA.4. Immune transfer and TRACE assay
Der im Folgenden beschriebene Assay wurde für jede Probe in 10-fach Bestimmung durchgeführt. In die Kavitäten der mit BSA+Oligo-Lys und anti Calcitonin Schaf Antikörper-Kryptat MonoMP+D14C Konjugat beschichteten Mikrotiterplatten wurden 300 μl EDTA-Vollblut Proben, aufgestockt mit rekombinantem PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Deutschland), pipettiert und 15 min bei Raumtemperatur inkubiert (die PCT Konzentrationen der Proben wurden durch Messung mit dem Assay BRAHMS PCT LIA sensitiv (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Deutschland) aus Plasma bestimmt). Danach wurde 2 × mit 300 μl PBS, pH 7,4, dann 2 × mit 300 μl Waschlösung (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0,2% Tween 20, pH 7,5) gewaschen. Anschließend wurde mit 300 μl Ablösungspuffer (PBS pH 7,4, 0,6 M KF, 0,5% BSA, 0,01% Heparin) 10 min inkubiert. Von dem abgelösten Immunkomplex wurden 100 μl in für die TRACE-Messung geeignete Mikrotiterplatten (Costar Half Area Plates, 96 Well, schwarz, Polystyrol, Firma Sigma/Aldrich, Seelze, Deutschland, Cat. No. CLS 3694-100EA) überführt und mit 50 μl anti Katacalcin Maus Antikörper-Cy5-NHS Konjugat (c = 20 μg/ml in PBS pH 7,4, 0,6 M KF, 0,5% BSA, 0,01% Heparin) 19 min bei Raumtem peratur inkubiert. Die Messung der TRACE-Signale (620 nm und 665 nm) erfolgte mittels dem High-Performance Time-Resolved Fluorescence Microtiterplate Reader RUBYstar (Firma BMG LABTECH GmbH, Offenburg, Deutschland).Of the The assay described below was for each sample in 10-fold determination performed. In the cavities that with BSA + oligo-lys and anti calcitonin sheep antibody-cryptate MonoMP + D14C conjugate coated microtiter plates were 300 μl EDTA whole blood samples supplemented with recombinant PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Germany), pipetted and 15 min at room temperature incubated (the PCT concentrations of the samples were determined by measurement with the assay BRAHMS PCT LIA sensitiv (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Germany) determined from plasma). Thereafter, 2 × with 300 ul PBS, pH 7.4, then 2 × with 300 μl washing solution (8mM Tris, 60mM NaCl, 0.2% Tween 20, pH 7.5). Subsequently was mixed with 300 μl of dissolution buffer (PBS pH 7.4, 0.6 M KF, 0.5% BSA, 0.01% heparin) for 10 min. From the detached immune complex 100 μl were suitable for the TRACE measurement Microtiter plates (Costar Half Area Plates, 96 well, black, polystyrene, Sigma / Aldrich, Seelze, Germany, Cat. No. CLS 3694-100EA) and with 50 μl of anti-catacalcin mouse antibody Cy5-NHS Conjugate (c = 20 μg / ml in PBS pH 7.4, 0.6 M KF, 0.5% BSA, 0.01% heparin) for 19 min at room temperature. The measurement The TRACE signals (620 nm and 665 nm) were performed using the high-performance Time-Resolved Fluorescence Microtiter Plate Reader RUBYstar (Company BMG LABTECH GmbH, Offenburg, Germany).
Folgende
Geräteeinstellungen wurden dabei am RUBYstar vorgenommen:
Für
jede Probe wurde aus dem Ratio OD665nm/OD620nm, Delta F wie folgt berechnet:
Dabei meint Rationeg das Ratio einer PCT-negativen Probe (also PCT nicht enthaltenden bzw. nicht detektierbaren Probe) und Ratiopos das Ratio einer zu testenden Probe (also einer potentiell PCT enthaltenden Probe). Aus den 10-fach Bestimmungen der einzelnen Proben wurde der jeweilige Mittelwert gebildet. Diese Werte dienten als Standardkonzentrationen, an denen die Konzentrationen aller einzelner Proben unter Verwendung der Software MultiCalc (Spline Fit) ermittelt wurden. Zu jeder 10-fach Bestimmung wurde der Variationskoeffizient bestimmt.Ratio neg means the ratio of a PCT-negative sample (ie PCT not containing or not detectable sample) and Ratio pos the ratio of a sample to be tested (ie, a potentially PCT-containing sample). From the 10-fold determinations of the individual samples, the respective mean value was formed. These values served as standard concentrations at which the concentrations of all individual samples were determined using the MultiCalc (Spline Fit) software. For each 10-fold determination, the coefficient of variation was determined.
B. Immunextraktion von PCT aus Vollblut und Analytdetektion mittels ImmunchromatographieB. Immune Extraction of PCT from Whole Blood and analyte detection by immunochromatography
Als Festphase wurden Polystyrolröhrchen verwendet, die mit Oligo-Lys-BSA beschichtet waren, woran ein erster anti-PCT-Antikörper gebunden war, der vorher mit Oligo-Asp und Biotin derivatisiert worden war. Darauf wurde PCT enthaltende Vollblutprobe kurz inkubiert und dabei PCT aus der Probe auf die Festphase immunextrahiert. Nach Waschen der Festphase wurde Ablösungspuffer zugegeben, der einen zweiten, mit kolloidalem Gold markierten anti-PCT Antikörper enthielt, und kurz inkubiert. Die Lösung wurde schließlich auf einem Teststreifen immunchromatographiert, auf den als Testbande Streptavidin aufgesprüht war. An das Streptavidin bindet der biotinylierte erste anti-PCT Antikörper und damit auch daran gebundenes PCT und der wiederum daran gebundene zweite Gold-markierte anti-PCT Antikörper. Die Detektion des Labels erfolgte reflektrometrisch.The solid phase used was polystyrene tubes coated with oligo-Lys-BSA bound by a first anti-PCT antibody previously derivatized with oligo-Asp and biotin. Dar PCT-containing whole blood sample was briefly incubated, thereby immunopotenting PCT from the sample to the solid phase. After washing the solid phase, release buffer containing a second colloidal gold-labeled anti-PCT antibody was added and incubated briefly. The solution was finally immunochromatographed on a test strip sprayed with streptavidin as a test band. The biotinylated first anti-PCT antibody and thus also bound PCT and the second gold-labeled anti-PCT antibody bound to it bind to the streptavidin. The detection of the label was carried out by reflectometry.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt:in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
B.1. Herstellung der Konjugate für die FestphaseB.1. Preparation of the conjugates for the solid phase
B.1.1. Herstellung BSA+Oligo-Lys Konjugat: siehe obenB.1.1. Preparation BSA + oligo-Lys conjugate: see above
B.1.2. Herstellung anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+Oligo-Asp KonjugatB.1.2. Producing anti-calcitonin sheep Antibody biotinylates + Oligo-Asp conjugate
Ein polyklonaler anti-Calcitonin Schaf Antikörper („anti-PCT Antikörper 1”) wurde mit EZ-Link Sulfo-NHS-LC-LC-Biotin (Firma Pierce, Rockford, IL, USA, Art. Nr. 21338) im molaren Verhältnis von 1:10 versetzt (siehe „Instructions EZ-Link Sulfo-NHS-LC-LC-Biotin", Pierce, Rockford, IL, USA):1,6 mg Antikörper (in PBS pH 7,4) wurden mit 10 μl 10 mM EZ-Link Sulfo-NHS-LC-LC-Biotin (frisch gelöst in dest. Wasser) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert.One polyclonal anti-calcitonin sheep antibody ("anti-PCT Antibody 1 ") was incubated with EZ-Link sulfo-NHS-LC-LC-biotin (Pierce, Rockford, IL, USA, Art. No. 21338) in molar ratio of 1:10 (see "Instructions EZ-Link Sulfo-NHS-LC-LC-Biotin", Pierce, Rockford, IL, USA): 1.6 mg of antibody (in PBS pH 7.4) were mixed with 10 μl of 10 mM EZ-Link sulfo-NHS-LC-LC-biotin (freshly dissolved in distilled water) and 30 min at Room temperature incubated.
Das Produkt wurde über eine NAP5-Säule gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA pH 8,0) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.The Product was purified on a NAP5 column (eluent: PBS, 10 mM EDTA pH 8.0) and the protein content was determined photometrically.
Zur Kopplung des Oligo-Asp Peptids „D14C" (Aminosäuresequenz DDDDDDDDDDDDDDC, (Firma JPT GmbH, Berlin, Deutschland, M = 1731,43) wurde das Produkt mit SMCC im Verhältnis 1:50 aktiviert (siehe „Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA).to Coupling of Oligo-Asp Peptide "D14C" (Amino Acid Sequence DDDDDDDDDDDDDC, (JPT GmbH, Berlin, Germany, M = 1731.43) the product was activated with 1:50 SMCC (See "Instructions SMCC and Sulfo-SMCC", Pierce, Rockford, IL, USA).
1,3 mg Produkt (eluiert mit 1,0 ml PBS, 10 mM EDTA, pH 8) wurden mit 4,33 μl 100 mM SMCC (frisch gelöst in DMSO) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Das Pro dukt wurde über eine NAP10-Säule gereinigt (Laufmittel: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.1.3 mg of product (eluted with 1.0 ml of PBS, 10 mM EDTA, pH 8) were washed with Add 4.33 μl of 100 mM SMCC (freshly dissolved in DMSO) and incubated for 30 min at room temperature. The product was over purified a NAP10 column (eluent: PBS, 10 mM EDTA, pH 8) and the protein content is determined photometrically.
Anschließend erfolgte sofort die Konjugation mit dem Oligo-Asp Peptid (gelöst in dest. Wasser) im molaren Verhältnis von 1:100. Nach Inkubation von 60 min bei Raumtemperatur wurde die Reaktion mit 100 μl 100 mM Cystein 10 min gestoppt, nicht konjugiertes Peptid über eine NAP25-Säule abgetrennt (Laufmittel: PBS, pH 7,4) und der Proteingehalt photometrisch bestimmt.Subsequently the conjugation with the oligo-Asp peptide (dissolved in dest. Water) in a molar ratio of 1: 100. To Incubation for 60 min at room temperature was followed by reaction 100 μl 100 mM cysteine stopped for 10 min, unconjugated Separated peptide via a NAP25 column (eluent: PBS, pH 7.4) and the protein content is determined photometrically.
Das anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+Oligo-Asp Konjugat wurde aliquotiert bei – 20°C gelagert.The anti-calcitonin sheep antibody biotinylated + oligo-Asp Conjugate was aliquoted at -20 ° C stored.
B.2. Kopplung des Konjugats auf RöhrchenB.2. Coupling of the conjugate to tubes
B.2.1. Kopplung: BSA+Oligo-Lys KonjugatB.2.1. Coupling: BSA + Oligo-Lys conjugate
Bestrahlte Sternröhrchen (Firma Greiner, Frickenhausen, Deutschland) wurden mit BSA-Oligo-Lys Konjugat wie folgt beschichtet:irradiated Star tube (Greiner, Frickenhausen, Germany) were coated with BSA-oligo-Lys conjugate as follows:
Das Konjugat wurde in 10 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 7,8 zu einer Konzentration von 6.67 μg/ml verdünnt. In jedes Röhrchen wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 20 h bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt. Dann wurde jedes Röhrchen mit 300 μl 0,5% Bovines Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h abgesättigt und nochmals abgesaugt. Anschließend erfolgte die Bindung des anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+Oligo-Asp Konjugates:The Conjugate was added to a concentration in 10mM Tris, 100mM NaCl, pH 7.8 diluted to 6.67 μg / ml. In every tube 300 μl of this solution were pipetted and 20 h incubated at 22 ° C. The solution was sucked off. Then each tube was filled with 300 μl of 0.5% Bovines Serum albumin, 2% Karion FP 2 h saturated and again aspirated. Subsequently, the binding of the anti-calcitonin Sheep Antibodies Biotinylated + Oligo-Asp Conjugates:
B.2.2. Bindung: anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+Oligo-Asp KonjugatB.2.2. Binding: anti-calcitonin sheep Antibody biotinylates + Oligo-Asp conjugate
Das Konjugat wurde in PBS, 0,5% proteasefreies BSA pH 7,4 zu einer Konzentration von 667 ng/ml verdünnt. In jedes Röhrchen wurden 300 μl dieser Lösung pipettiert und 1 Stunde bei 22°C inkubiert. Die Lösung wurde abgesaugt. Dann wurde jedes Röhrchen mit 300 μl 0,5% Bovines Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h nochmals abgesättigt und danach abgesaugt.The Conjugate was in PBS, 0.5% protease-free BSA pH 7.4 to a concentration of 667 ng / ml. In each tube were Pipet 300 μl of this solution and add in for 1 hour Incubated at 22 ° C. The solution was sucked off. Then each tube was filled with 300 μl 0.5% Bovine Serum Albumin, 2% Karion FP 2 h again saturated and then aspirated.
Anschließend wurden die Röhrchen in einem Vakuumtrockner getrocknet und bei 4°C gelagert.Subsequently the tubes were dried in a vacuum dryer and stored at 4 ° C.
B.3. Herstellung von Gold-markiertem anti-Katacalcin Antikörper:B.3. Preparation of gold-labeled anti-catacalcin Antibody:
Diese
Komponente wurde von Firma 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Deutschland,
erworben. Monoklonaler anti-Katacalcinin Antikörper wurde
an kolloidales Gold (Firma 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Deutschland;
nach Frens: Frens, G., Nature Physical Science, 1973, 241 20–22)
wie bei Hermanson beschrieben gekoppelt (
B.4. Herstellung der Teststreifen:B.4. Preparation of the test strips:
Diese Komponente wurde von Firma 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Deutschland, erworben. Es wurden Nitrocellulose-Membranen von MDI (Advanced Microdevices, Ambala, Indien) mit 4 μg/cm Streptavidin (Pierce, Rockford, IL, USA) (Test-Linie) sowie mit 2,5 μg/cm anti-Maus IgG Antikörper (Scantibodies, Santee, CA, USA) (Kontroll-Line) beschichtet. Zum Aufbringen der Fänger-Moleküle wurde ein Mikrodispenser der Firma Biodot, Irvine, CA, USA, eingesetzt. Anschließend erfolgte die Trocknung der Membran über Nacht bei 50°C. Als Saugilad kam AP22 der Firma Millipore, Billerica, MA, USA zum Einsatz.These Component was manufactured by company 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Germany, acquired. Nitrocellulose membranes from MDI (Advanced Microdevices, Ambala, India) with 4 μg / cm streptavidin (Pierce, Rockford, IL, USA) (test line) and with 2.5 μg / cm anti-mouse IgG Antibodies (Scantibodies, Santee, CA, USA) (Control Line) coated. For applying the capture molecules a microdispenser from Biodot, Irvine, CA, USA was used. Subsequently, the drying of the membrane over Night at 50 ° C. As Saugilad came AP22 of the company Millipore, Billerica, MA, USA.
B.5. Immuntransfer und Immunchromatographie:B.5. Immune transfer and immunochromatography:
Der im Folgenden beschriebene Assay wurde für jede Probe in 10-fach Bestimmung durchgeführt. In die mit BSA+Oligo-Lys und anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+D14C Konjugat beschichteten Röhrchen wurden 300 μl EDTA-Vollblut Proben, aufgestockt mit rekombinantem PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Deutschland) pipettiert und 15 min bei Raumtemperatur inkubiert (die PCT Konzentrationen der Proben wurden durch Messung mit dem Assay BRAHMS PCT LIA sensitiv (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Deutschland) aus Plasma bestimmt). Danach wurde 2 × mit 300 μl PBS, pH 7,4, dann 2 × mit 300 μl Waschlösung (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0,2% Tween 20, pH 7,5) gewaschen. Anschließend wurde mit 150 μl Ablösungspuffer (PBS pH 7,4, 5% BSA, 0,5% Tween 20, 0,01% Heparin), der auch den Gold-markierten anti-Katacalcin monoklonalen Antikörper enthielt, unter Schütteln für 10 min inkubiert. Von dem abgelösten Immunkomplex wurden 150 μl in Kavitäten von low binding Mikrotiterplatten überführt. Anschließend erfolgte unmittelbar die Immunchromatographie mit den Teststreifen, indem diese in die Kavitäten gesteckt wurden. Nach 30 min wurde die Färbung der Testbande mit einem Reflektrometer der Firma LRE Medical GmbH, München, Deutschland, bestimmt.Of the The assay described below was for each sample in 10-fold determination performed. In the with BSA + Oligo-Lys and anti-calcitonin sheep antibody biotinylated + D14C Conjugate coated tubes were 300 μl EDTA whole blood samples supplemented with recombinant PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Germany) and 15 min at room temperature incubated (the PCT concentrations of the samples were determined by measurement with the assay BRAHMS PCT LIA sensitiv (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Germany) determined from plasma). Thereafter, 2 × with 300 ul PBS, pH 7.4, then 2 × with 300 μl wash solution (8 mM Tris, 60 mM NaCl, 0.2% Tween 20, pH 7.5). Subsequently was washed with 150 μl of dissolution buffer (PBS pH 7.4, 5% BSA, 0.5% Tween 20, 0.01% heparin), which also labeled the gold anti-catacalcin monoclonal antibody, supra Shake incubated for 10 min. From the detached one Immune complex was 150 μl in wells of low binding microtiter plates. Subsequently immediate immunochromatography with the test strips, by putting these into the cavities. After 30 min was the staining of the test band with a Reflektrometer the company LRE Medical GmbH, Munich, Germany.
Aus den 10-fach Bestimmungen der einzelnen Proben wurde der jeweilige Mittelwert gebildet. Diese Werte dienten als Standardkonzentrationen, an denen die Konzentrationen aller einzelner Proben unter Verwendung der Software MultiCalc (Spline Fit) ermittelt wurden. Zu jeder 10-fach Bestimmung wurde der Variationskoeffizient bestimmt.Out the 10-fold determinations of the individual samples became the respective Mean value formed. These values served as standard concentrations, where the concentrations of all individual samples using software MultiCalc (Spline Fit). To every 10-fold Determination, the coefficient of variation was determined.
C. Detektion von PCT aus Vollblut mittels klassischer ImmunchromatographieC. Detection of PCT from whole blood by means of classical immunochromatography
Es wurden Teststreifen hergestellt, die an der Probenauftragszone mit einer Membran versehen waren, die geeignet war, Blutzellen aus einer aufzutragenden Vollblutprobe zurückzuhalten. Zwischen dieser Membran und dem Teststreifen war ein poröses Kissen angebracht („Proben-Pad"), das eingetrocknet enthielt einerseits einen ersten, biotinylierten anti-PCT Antikörper, andererseits einen zweiten, mit kolloidalem Gold markierten anti-PCT Antikörper. Als Testbande war auf den Streifen Streptavidin aufgesprüht. Die Teststreifen waren in Plastik-Kassetten eingefügt. PCT enthaltende Vollblutprobe wurde immunchromatographiert. An das Streptavidin bindet der biotinylierte erste anti-PCT Antikörper und damit auch daran gebundenes PCT und der widerum daran gebundene zweite, Gold-markierte anti-PCT Antikörper. Die Detektion des Labels erfolgte reflektrometrisch.It Test strips were prepared which were attached to the sample application zone a membrane that was capable of blood cells from a withhold the whole blood sample to be applied. Between this membrane and the test strip had a porous pad attached ("Sample pad"), the dried one contained one first, biotinylated anti-PCT antibody, on the other hand a second colloidal gold labeled anti-PCT antibody. As a test band streptavidin was sprayed on the strip. The test strips were inserted in plastic cassettes. PCT-containing whole blood sample was immunochromatographed. To the streptavidin binds the biotinylated first anti-PCT antibody and hence PCT bound to it and the related PCT second, gold-labeled anti-PCT antibody. The detection of the label was reflektrometrisch.
Im Einzelnen wurde der Versuch wie folgt durchgeführt: in the Specifically, the experiment was carried out as follows:
C.1. Herstellung der Konjugate für die FestphaseC.1. Preparation of the conjugates for the solid phase
C.1.1. Herstellung BSA+Oligo-Lys Konjugat: siehe obenC.1.1. Preparation BSA + oligo-Lys conjugate: see above
C.1.2. Herstellung anti-Calcitonin Schaf Antikörper biotinyliert+Oligo-Asp Konjugat: siehe obenC.1.2. Producing anti-calcitonin sheep Antibody biotinylated + Oligo-Asp conjugate: see above
C.2. Herstellung von Gold-markiertem anti-Katacalcin Antikörper: siehe obenC.2. Preparation of gold-labeled anti-catacalcin Antibody: see above
C.3. Herstellung der Teststreifen:C.3. Preparation of the test strips:
Diese Komponente wurde von Firma 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Deutschland, erworben. Es wurden Nitrocellulose-Membranen von MDI (Advanced Microdevices, Ambala, Indien) mit 4 μg/cm Streptavidin (Pierce, Rockford, IL, USA) (Test-Linie) sowie mit 2,5 μg/cm anti-Maus IgG Antikörper (Scantibodies, Santee, CA, USA) (Kontroll-Line) beschichtet. Zum Aufbringen der Fänger-Moleküle wurde ein Mikrodispenser der Firma Biodot, Irvine, CA, USA, eingesetzt. Anschließend erfolgte die Trocknung der Membran über Nacht bei 50°C. Als Saugpad kam AP22 der Firma Millipore, Billerica, MA, USA zum Einsatz. Für die Herstellung der Vollblut-Tests wurde ein Vollblut setup der Firma 8sens.biognostic verwendet. Im Probenauftragsbereich wurden auf 2 getrennten Pads zum einen der an kolloidales Gold gekoppelte anti-Katacalcin Antikörper und zum anderen der biotinylierte+Oligo-Asp-derivatisierte anti-Calcitonin Antikörper immobilisiert. Als Kassette wurde ein Standard Housing der Firma 8sens.biognostic genutzt.These Component was manufactured by company 8sens.biognostic GmbH, Berlin, Germany, acquired. Nitrocellulose membranes from MDI (Advanced Microdevices, Ambala, India) with 4 μg / cm streptavidin (Pierce, Rockford, IL, USA) (test line) and with 2.5 μg / cm anti-mouse IgG Antibodies (Scantibodies, Santee, CA, USA) (Control Line) coated. For applying the capture molecules a microdispenser from Biodot, Irvine, CA, USA was used. Subsequently, the drying of the membrane over Night at 50 ° C. As Saugpad came AP22 of the company Millipore, Billerica, MA, USA. For the production of Thoroughbred tests became a thoroughbred setup of the company 8sens.biognostic used. In the sample application area were on 2 separate pads on the one hand, the anti-Katacalcin antibody coupled to colloidal gold and second, the biotinylated + oligo-Asp-derivatized anti-calcitonin Immobilized antibody. The cassette became a standard Housing used by the company 8sens.biognostic.
C.4. Klassische ImmunchromatographieC.4. Classical immunochromatography
Die im Folgenden beschriebene Immunchromatographie wurde für jede Probe in 10-fach Bestimmung durchgeführt. Auf die Teststreifen wurden 120 μl EDTA-Vollblut Proben, aufgestockt mit rekombinantem PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Deutschland) pipettiert (die PCT Konzentrationen der Proben wurden durch Messung mit dem Assay BRAHMS PCT LIA sensitiv (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Deutschland) aus Plasma bestimmt). Nach 30 min wurde die Färbung der Testbande mit einem Reflektrometer der Firma LRE Medical GmbH, München, Deutschland, bestimmt.The Immunochromatography described below was used for each sample is performed in 10-fold determination. On the Test strips were supplemented with 120 μl of EDTA whole blood samples with recombinant PCT (InVivo GmbH, Hennigsdorf, Germany) pipetted (The PCT concentrations of the samples were determined by measurement with the Assay BRAHMS PCT LIA sensitive (BRAHMS AG, Hennigsdorf, Germany) determined from plasma). After 30 minutes, the staining of the Test band with a reflectometer from LRE Medical GmbH, Munich, Germany, certainly.
Aus den 10-fachen Bestimmungen der einzelnen Proben wurde der jeweilige Mittelwert gebildet. Diese Werte dienten als Standardkonzentrationen, an denen die Konzentrationen aller einzelner Proben unter Verwendung der Software MultiCalc (Spline Fit) ermittelt wurden. Zu jeder 10-fach Bestimmung wurde der Variationskoeffizient bestimmt.Out the 10-fold determinations of the individual samples became the respective Mean value formed. These values served as standard concentrations, where the concentrations of all individual samples using software MultiCalc (Spline Fit). To every 10-fold Determination, the coefficient of variation was determined.
Beschreibung d. AbbildungenDescription d. pictures
LiteraturlisteBibliography
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Effective date: 20130301 |
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