CZ282772B6 - Process of fermentation industrial production of phytase enzyme preparation - Google Patents

Process of fermentation industrial production of phytase enzyme preparation Download PDF

Info

Publication number
CZ282772B6
CZ282772B6 CZ961597A CZ159796A CZ282772B6 CZ 282772 B6 CZ282772 B6 CZ 282772B6 CZ 961597 A CZ961597 A CZ 961597A CZ 159796 A CZ159796 A CZ 159796A CZ 282772 B6 CZ282772 B6 CZ 282772B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
strain
medium
production
phytase
enzyme preparation
Prior art date
Application number
CZ961597A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CZ159796A3 (en
Inventor
Olga Rndr. Drsc. Volfová
Jana Rndr. Csc. Dvořáková
Miroslav Ing. Csc. Sobotka
Petr Rndr. Csc. Zobáč
Ivan Rndr. Css. Kumprecht
Original Assignee
Mikrobiologický Ústav Av Čr
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mikrobiologický Ústav Av Čr filed Critical Mikrobiologický Ústav Av Čr
Priority to CZ961597A priority Critical patent/CZ159796A3/en
Publication of CZ282772B6 publication Critical patent/CZ282772B6/en
Publication of CZ159796A3 publication Critical patent/CZ159796A3/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

This method of producing a phytase enzyme preparation by industrial fermentation through the submerged cultivation of an Aspergillus strain on a medium containing starch with a growth limitation with phosphorus, consisting of the submerged cultivation of the strain of the Aspergillius niger 921 CCF 2951 at a temperature of 25-27 degrees C, at a pH of 2.0 to 6.0, particularly 2.5 to 3.5, with aeration and agitation providing an oxygen concentration of 10-99% of the coefficient of the dissolubility of the gases, mainly of 20-60%, with the subsequent separation of the fungal mycelium, dialysis and ultrafiltration of the supernatant and lyophilisation of the concentrated solution of enzymes.

Description

Oblast technikyTechnical field

Vynález se týká způsobu fermentační průmyslové výroby enzymového preparátu fytázy (myoinositol hexakisfosfát fosfohydrolázy), který je použitelný v živočišné výrobě ke snížení obsahu fosforu v živočišných exkrementech, ke snížení obsahu nestravitelného fytinu v potravinářství, k odstranění zákalů com steep liquoru ve fermentačním průmyslu, k přípravě purifíkované fytázy, kyselých fosfatáz a fosforylovaných sloučenin.BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a process for the fermentative industrial production of an enzyme preparation of phytase (myoinositol hexakisphosphate phosphohydrolase), which is useful in animal production for reducing phosphorus in animal excrements, reducing indigestible phytin in food, purified phytases, acid phosphatases and phosphorylated compounds.

Dosavadní stav technikyBACKGROUND OF THE INVENTION

Fytáza se používá v živočišné výrobě u monogastrických zvířat ke štěpení fytinu obsaženého v krmných směsích, ke snížení obsahu fosforu v živočišných exkrementech a tím k zamezení vzniku eutrofikace vod v oblastech s rozvinutou živočišnou výrobou, ke zlepšení činnosti trávicích enzymů a k optimální utilizaci životu nezbytných iontů, zejména vápníku (fytin je silná chelatizační látka).Phytase is used in animal production in monogastric animals to cleave phytin contained in compound feed, reduce phosphorus content in animal excrements and thereby prevent the eutrophication of waters in areas with developed livestock production, improve digestive enzyme activity and optimize utilization of vital ions, especially calcium (phytin is a strong chelating agent).

Fytáza je vyráběna fermentačně pomocí některých druhů hub rodu Aspergillus firmami GistBrocades, NL, Alltech, USA a Alco Ltd. Biotechnology, Finsko. Za účelem dosažení co nejvyšší produktivity výrobního systému je žádoucí pracovat jak s vysokoprodukčním kmenem mikroorganismu tak s technologií fermentace a izolace zabezpečující vysokou výtěžnost aktivního enzymu. Z dostupných odborných pramenů však vyplývá, že aktivity fytázy dosahované za použití známých produkčních kmenů Aspergillus ficuum (NRRL 3135 18-20 nkat/mL, Ullah a Gibson 1987 nebo geneticky vyšlechtěný kmen 100-127 nkat/mL, Hartingsveldt et al. 1993) jsou nižší než aktivity dosahované naším produkčním kmenem Aspergillus niger 921, CCF 2951, tj. 150-160 nkat/mL. Způsob dosavadní výroby fytázy s jinými kmeny Aspergillus je tím ekonomicky náročnější.The phytase is produced by fermentation using some species of Aspergillus fungi by GistBrocades, NL, Alltech, USA and Alco Ltd. Biotechnology, Finland. In order to achieve the highest productivity of the production system, it is desirable to work with both the high-production strain of the microorganism and the fermentation and isolation technology ensuring a high yield of the active enzyme. However, available scientific literature suggests that phytase activities achieved using the known Aspergillus ficuum production strains (NRRL 3135 18-20 nkat / mL, Ullah and Gibson 1987 or genetically bred strain 100-127 nkat / mL, Hartingsveldt et al. 1993) are lower than the activity achieved by our production strain Aspergillus niger 921, CCF 2951, ie 150-160 nkat / mL. The process of the prior art production of phytase with other Aspergillus strains is thus more economically demanding.

Podstata vynálezuSUMMARY OF THE INVENTION

Předmětem vynálezu je způsob fermentační průmyslové výroby enzymového preparátu fytázy submerzní kultivací pomocí kmene Aspergillus na médiu obsahujícím škrob za limitace růstu fosforem, který spočívá podle vynálezu v tom, že se submersně kultivuje kmen Aspergillus niger 921 CCF 2951 při teplotě 25-37 °C, pH 2,0-6,0, (zejména při 2,5-3,5) při vzdušnění a míchání zabezpečujícím koncentraci kyslíku 10-99 % součinitele rozpustnosti plynů, zejména při 20-60 %, s následnou separací mycelia houby, dialýzou a ultrafiltrací supematantu a lyofylizací zahuštěného roztoku enzymů ultrafiltrací. Enzymový preparát kromě převahy fytázy obsahuje i nespecifické kyselé fosfatázy a a-amylázu.SUMMARY OF THE INVENTION The present invention provides a process for the fermentative industrial production of a phytase enzyme preparation by submerged Aspergillus strain on starch-containing medium while limiting phosphorus growth according to the invention in that the Aspergillus niger 921 CCF 2951 strain is sub-grown at 2.0-6.0 (especially at 2.5-3.5) with aeration and stirring providing an oxygen concentration of 10-99% gas solubility coefficient, especially at 20-60%, followed by mycelium separation of the fungus, dialysis and ultrafiltration supernatant and lyophilizing the concentrated enzyme solution by ultrafiltration. In addition to the preponderance of phytase, the enzyme preparation also contains non-specific acid phosphatases and α-amylase.

Zdrojem dusíku v kultivačním médiu je 0,5-1 % hmotn. dusičnanu sodného, síranu amonného nebo chloridu amonného. Během kultivace kmene Aspergillus niger 921, CCF 2951 na médiu s 0,5-1 % dusičnanu sodného, síranu nebo chloridu amonného se pH média udržuje na hodnotách 2,5-3,5, s výhodou na konstantní hodnotě 3,0, pomocí automatického dávkování roztoků hydroxidu draselného, sodného nebo amonného.The nitrogen source in the culture medium is 0.5-1 wt. sodium nitrate, ammonium sulfate or ammonium chloride. During cultivation of Aspergillus niger 921, CCF 2951 strain on 0.5-1% sodium nitrate, sulphate or ammonium chloride medium, the pH of the medium is maintained at 2.5-3.5, preferably a constant value of 3.0, by automatic dosing of potassium, sodium or ammonium hydroxide solutions.

Obsah kukuřičného škrobu v médiu se pohybuje v rozmezí hodnot 2-8 % hmotn., s výhodou pro přípravu inokula 5-9 % hmotn. a pro vlastní kultivaci v produkčních fermentorech 4-8 % hmotn.The corn starch content in the medium is in the range of 2-8% by weight, preferably for the preparation of inoculum 5-9% by weight. and for self-cultivation in production fermenters 4-8 wt.

Vysokoprodukční kmen Aspergillus niger 921, CCF 2951 se kultivuje v produkčních bioreaktorech kromě jednorázového způsobu i semikontinuálně za semisterilních až nesterilních podmínek.The high-production strain Aspergillus niger 921, CCF 2951 is cultivated in production bioreactors, in addition to a one-time process, semi-continuously under semi-sterile to non-sterile conditions.

Separaci mycelia houby na konci kultivace lze provádět i ve dvou stupních, sedimentací a separací odstředěním nebo filtrací.Separation of fungal mycelium at the end of cultivation can also be carried out in two stages, sedimentation and separation by centrifugation or filtration.

Supematant po separaci mycelia se dialyzuje na hodnotu zbytkových sacharidů 0-3 g/L, s výhodou na 2,0 g/L.The supernatant after mycelial separation is dialyzed to a residual carbohydrate value of 0-3 g / L, preferably to 2.0 g / L.

Dialýza a ultrafiltrace vyfermentovaného média se provádí na různých typech zařízení a membrán zajišťujících retenci molekul bílkovin o velikosti 10-100 kDa, s výhodou o velikosti 50 kDa.The dialysis and ultrafiltration of the fermented medium is carried out on various types of devices and membranes providing retention of protein molecules of 10-100 kDa, preferably 50 kDa.

Suchý enzymový preparát, který obsahuje kromě fytázy i nespecifické kyselé fosfatázy a α-amylázu je pro nutriční účely upraven na žádanou aktivitu fytázy.A dry enzyme preparation containing in addition to phytase also non-specific acid phosphatase and α-amylase is adapted for nutritional purposes to the desired phytase activity.

Technologický postup výroby směsného preparátu fytázy byl získán optimalizací podmínek všech stupňů výroby, tj. kultivace kmene, separace, dialýzy, ultrafiltrace a lyofilizace.The technological process for the production of the mixed phytase preparation was obtained by optimizing the conditions of all stages of production, ie strain cultivation, separation, dialysis, ultrafiltration and lyophilization.

Výhody postupu výroby enzymového preparátu fytázy podle vynálezu jsou dány vysokou produkcí vysoce aktivního enzymu fytázy do média produkčním kmenem Aspergillus niger 921, CCF 2951 a výhodnější ekonomikou procesu výroby enzymu fytázy ve srovnání s jinými obdobnými publikovanými procesy.The advantages of the process of producing the phytase enzyme preparation of the invention are due to the high production of highly active phytase enzyme into the medium by the production strain Aspergillus niger 921, CCF 2951 and the more advantageous economy of the phytase enzyme production process compared to other similar published processes.

Dále je vynález blíže objasněn v příkladech provedení aniž by se jimi omezoval.The invention is further illustrated by the following non-limiting examples.

Příklady provedení vynálezuDETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

Příklad 1Example 1

Byl použit vysokoprodukční průmyslový kmen mikroorganismu Aspergillus niger 921, CCF 2951 CZ patent 281581. Suspense konidií z narostlé a vysporulované kultury na šikmém sladinkovém agaru byla inokulem pro submersní kultivaci kmene v kultivačních 500 mL baňkách. Kultivace kmene v prvním stupni probíhala na médiu s 8 % hmotn. kukuřičným škrobem a 0,86 % hmotn. dusičnanem sodným, za limitace růstu buněk fosforem (Shieh a Ware 1968), na třepačce při 30 °C. Narostlým myceliem byly inokulovány laboratorní bioreaktory. Kultivace kmene v druhém stupni probíhala při 30 °C, počátečním pH 5,3, míchání 600 otáček/min. a vzdušnění 0,5 L/min. po dobu 72 h. Obsah laboratorních bioreaktorů byl inokulem 75 L bioreaktorů.A high-production industrial strain of Aspergillus niger 921, CCF 2951 CZ patent 281581 was used. A conidia suspension from grown and sporulated culture on sloping sweet agar was an inoculum for submersive strain cultivation in 500 mL culture flasks. The cultivation of the strain in the first step was carried out on an 8 wt. % corn starch and 0.86 wt. sodium nitrate, limiting cell growth by phosphorus (Shieh and Ware 1968), on a shaker at 30 ° C. Laboratory bioreactors were inoculated with the grown mycelium. Strain cultivation in the second stage was carried out at 30 ° C, initial pH 5.3, stirring at 600 rpm. and aeration of 0.5 L / min. The laboratory bioreactors were inoculated with 75 L bioreactors.

Kultivace v 75 L bioreaktorech probíhala při pH 2,0-3,6, 30-35 °C a pO2 20-60 % na produkčním médiu obsahujícím o 1 % hmotn. nižší obsah škrobu. Během kultivace byla měřena produkce enzymu fytázy, která je sekretována do média spolu s nespecifickými kyselými fosfatázami a α-amylázou. Po dosažení aktivity fytázy v médiu dosahující 160 nkat/mL byl zchlazený obsah bioreaktorů separován na separátoru Sharpless.Cultivation in 75 L bioreactors was carried out at pH 2.0-3.6, 30-35 ° C and pO 2 of 20-60% on production medium containing 1% w / w. lower starch content. During cultivation, the production of phytase enzyme, which is secreted into the medium along with non-specific acid phosphatases and α-amylase, was measured. After reaching phytase activity in the medium reaching 160 nkat / mL, the cooled bioreactor content was separated on a Sharpless separator.

Čirý supematant byl dialyzován a ultrafiltrován na zařízení Romicon PM 50. Během uvedených procesů byl obsah redukujících látek v supematantu snížen na hodnotu 2,0 g/L a aktivita fytázy zvýšena v průměru 2,5 krát.The clear supernatant was dialyzed and ultrafiltered on a Romicon PM 50. During these processes, the reducing agent content of the supernatant was reduced to 2.0 g / L and the phytase activity increased on average 2.5 times.

-2CZ 282772 B6-2GB 282772 B6

Zahuštěný a promytý roztok enzymu byl lyofilizován na lyofilizátoru LZ 45 během 48 h do sucha. Suchý preparát obsahující kromě fytázy i nespecifické kyselé fosfatázy a α-amylázu byl naředěn pro krmivářské účely pšeničnou krmnou moukou na aktivitu fytázy dosahující 9 nkat/mg.The concentrated and washed enzyme solution was lyophilized on a LZ 45 lyophilizer for 48 hours to dryness. The dry preparation containing in addition to phytase also non-specific acid phosphatase and α-amylase was diluted for feed purposes with wheat feed flour to phytase activity reaching 9 nkat / mg.

Příklad 2Example 2

Postupováno jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že kultivační médium obsahovalo místo 0,86 % hmotn. dusičnanu sodného síran nebo chlorid amonný v množstvích odpovídajících koncentraci dusíku v dusičnanu sodném. Během fermentace bylo pH média regulováno na konstantní hodnotě pH 3,0 automatickým dávkováním roztoků hydroxidů draselného, sodného nebo amonného.The procedure was as in Example 1 except that the culture medium contained 0.86 wt. sodium nitrate sulphate or ammonium chloride in amounts corresponding to the concentration of nitrogen in sodium nitrate. During fermentation, the pH of the medium was regulated at a constant pH of 3.0 by automatic dosing of potassium, sodium or ammonium hydroxide solutions.

Příklad 3Example 3

Postupováno jako v příkladu 1 nebo 2 s tím rozdílem, že příprava inokula pro provozní bioreaktory byla třístupňová. Obsah 75 L bioreaktoru byl po 48 h kultivaci inokulem pro kultivaci v 300 L bioreaktoru, popř. v 1,5 m3 bioreaktoru.The procedure was as in Example 1 or 2 except that the preparation of the inoculum for the operational bioreactors was three steps. The content of the 75 L bioreactor was after 48 h culture with an inoculum for cultivation in the 300 L bioreactor and afterwards. in a 1.5 m 3 bioreactor.

Příklad 4Example 4

Postupováno jako v příkladě 1, 2 nebo 3 s tím rozdílem, že kultivace v provozních bioreaktorech probíhala semikontinuálně. Část vyfermentovaného média s myceliem houby z konce fermentace byla inokulem pro okamžitou následnou fermentaci v paralelním bioreaktoru.The procedure was as in Example 1, 2 or 3 except that the cultivation in the process bioreactors was semi-continuous. A portion of the fermented fungal mycelium medium from the end of the fermentation was an inoculum for immediate subsequent fermentation in a parallel bioreactor.

Příklad 5Example 5

Postupováno jako v předchozích příkladech s tím rozdílem, že kultivace v provozních bioreaktorech probíhala semisterilně až nesterilně neboť pH média se pohybovalo během kultivace v rozmezí hodnot 2,5-3,6.The procedure was as in the previous examples except that the cultivation in the process bioreactors was semi-sterile to non-sterile since the pH of the medium was in the range of 2.5-3.6 during cultivation.

Příklad 6Example 6

Postupováno jako v předchozích příkladech s tím rozdílem, že separace mycelia z vyfermentovaného média se provádí ve 2 stupních. V prvním stupni je vyfermentované médium nejprve sedimentací zbaveno převážného množství mycelia. V druhém stupni je slabě zakalený supematant separován na odstředivce nebo filtrován.Proceed as in the previous examples, except that the separation of mycelium from the fermented medium is carried out in 2 steps. In the first step, the fermented medium is first deprived of most of the mycelium by sedimentation. In the second stage, the slightly turbid supernatant is separated on a centrifuge or filtered.

Příklad 7Example 7

Postupováno jako v předchozích příkladech s tím rozdílem, že dialýza a ultrafiltrace vyfermentovaného média probíhá na jiných typech zařízení a membránách než je ROMICON 50, které zajišťují retenci bílkovin o velikosti molekul 10-100 kDa.Proceeding as in the previous examples, except that the dialysis and ultrafiltration of the fermented medium takes place on different types of devices and membranes other than ROMICON 50, which provide protein retention of 10-100 kDa molecules.

-3CZ 282772 B6-3GB 282772 B6

Průmyslová využitelnostIndustrial applicability

Způsob podle vynálezu lze použít pro fermentační průmyslovou výrobu enzymového preparátu fytázy, obsahujícího i nespecifické kyselé fosfatázy a α-amylázu, využitelného v živočišné výrobě, ekologii, potravinářství, pro přípravu purifikované fytázy, kyselých nespecifických fosfatáz a fosforylováných sloučenin.The process according to the invention can be used for the fermentative industrial production of an enzyme preparation of phytase, which also contains non-specific acid phosphatases and α-amylase, useful in animal production, ecology, food industry, for the preparation of purified phytase, acid non-specific phosphatases and phosphorylated compounds.

PATENTOVÉ NÁROKYPATENT CLAIMS

Claims (4)

1. Způsob fermentační průmyslové výroby enzymového preparátu fytázy submersní kultivací pomocí kmene Aspergillus na médiu obsahujícím škrob za limitace růstu fosforem, vyznačující se tím, že se submersně kultivuje kmen Aspergillus niger 921 CCF 2951 při teplotě 25-37 °C, pH 2,0-6,0, zejména 2,5-3,5, při vzdušnění a míchání zabezpečujícím koncentraci kyslíku 10 - 99 % součinitele rozpustnosti plynů, zejména při 20-60 %, s následnou separací mycelia houby, dialýzou a ultrafiltrací supematantu a lyofylizací zahuštěného roztoku enzymů.Process for the fermentative industrial production of a phytase enzyme preparation by submersible cultivation using Aspergillus strain on a starch-containing medium with limitation of phosphorus growth, characterized in that the Aspergillus niger 921 CCF 2951 strain is cultivated at 25-37 ° C, pH 2.0- 6.0, especially 2.5-3.5, with aeration and stirring providing an oxygen concentration of 10-99% gas solubility coefficient, especially at 20-60%, followed by separation of the fungal mycelium, dialysis and ultrafiltration of the supernatant, and lyophilization of the concentrated enzyme solution . 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že kultivační médium obsahuje 0,5-1 % hmotn. dusičnanu sodného, síranu nebo chloridu amonného a během kultivace v přítomnosti síranu nebo chloridu amonného se pH média udržuje na hodnotách pH 2,5-3,5, automatickým dávkováním roztoků hydroxidů draselného, sodného nebo amonného.Method according to claim 1, characterized in that the culture medium contains 0.5-1% by weight. sodium nitrate, ammonium sulfate or ammonium chloride and during culture in the presence of ammonium sulfate or ammonium chloride, the pH of the medium is maintained at pH 2.5-3.5 by automatic dosing of potassium, sodium or ammonium hydroxide solutions. 3. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se pro přípravu inokula použije médium obsahující 5-9 % hmotn. kukuřičného škrobu a pro produkční fermentory médium obsahující 4-8 % hmotn. kukuřičného škrobu.Method according to claim 1, characterized in that a medium containing 5-9 wt. % starch and, for production fermenters, a medium containing 4-8 wt. corn starch. 4. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se kmen kultivuje semikontinuálně za semisterilních až nesterilních podmínek.The method of claim 1, wherein the strain is cultured semi-continuously under semi-sterile to non-sterile conditions.
CZ961597A 1996-05-31 1996-05-31 Process of fermentation industrial production of enzyme preparation phytase CZ159796A3 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ961597A CZ159796A3 (en) 1996-05-31 1996-05-31 Process of fermentation industrial production of enzyme preparation phytase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ961597A CZ159796A3 (en) 1996-05-31 1996-05-31 Process of fermentation industrial production of enzyme preparation phytase

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ282772B6 true CZ282772B6 (en) 1997-10-15
CZ159796A3 CZ159796A3 (en) 1997-10-15

Family

ID=5463526

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ961597A CZ159796A3 (en) 1996-05-31 1996-05-31 Process of fermentation industrial production of enzyme preparation phytase

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ159796A3 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008533981A (en) * 2005-03-24 2008-08-28 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. Microbial production of beneficial compounds

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD4388C1 (en) * 2014-08-01 2016-07-31 Институт Микробиологии И Биотехнологии Академии Наук Молдовы Process for producing an enzymatic preparation with b-glucosidase activity

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008533981A (en) * 2005-03-24 2008-08-28 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. Microbial production of beneficial compounds

Also Published As

Publication number Publication date
CZ159796A3 (en) 1997-10-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1202921A (en) Hyperproducing cellulase microorganism
CN100593570C (en) Enzymes mixture
KR0169913B1 (en) New strain bacillus sp.ds11 (kctc 0231bp)and new phytase produced from this
CN101983242A (en) Fermentation media comprising urea-like nitrogen sources and its use for the production of secondary metabolits, enzymes and recombinant proteias
KR100513218B1 (en) Enzyme complex
CA1042375A (en) Fermentative removal of water-soluble carbohydrates in plant protein products
US5565341A (en) Process for producing trehalose
Falanghe et al. Production of fungal mycelial protein in submerged culture of soybean whey
JPH0253029B2 (en)
CZ282772B6 (en) Process of fermentation industrial production of phytase enzyme preparation
US4229539A (en) β-Galactosidase and production thereof
NAKAGAWA et al. Terferol, an inhibitor of cyclic adenosine 3', 5'-monophosphate phosphodiesterase I. Isolation and characterization
Sinha et al. Studies on the production of acid protease by submerged fermentation
JPH06506107A (en) Xylanase, xylanase-producing Bacillus strains and their use
JPH05276973A (en) Production of activated sialic acid
Qureshi et al. Production of alkaline phosphatase from newly isolated Aspergillus fumigatus EFRL05
Martin et al. Growth of the acid‐tolerant fungus Scytalidium acidophilum as a potential source of single‐cell protein
JPS6362195B2 (en)
EP0240741B1 (en) Process for the preparation of inulase
KR0154398B1 (en) Novel penicillum sp. am301 and phytase
JPH0759562A (en) Phytase and its production
DE60213374T2 (en) Fermentative production of microbial milk-clotting protease
JP3642095B2 (en) Novel neutral xylanase and production method thereof
CN115747080A (en) Edible fungus mycelium extract powder, preparation method thereof and application of edible fungus mycelium extract powder as fermentation nitrogen source
JPH0117675B2 (en)

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20030531