CZ280679B6 - Method of peptide radiolabelling - Google Patents

Method of peptide radiolabelling Download PDF

Info

Publication number
CZ280679B6
CZ280679B6 CS905076A CS507690A CZ280679B6 CZ 280679 B6 CZ280679 B6 CZ 280679B6 CS 905076 A CS905076 A CS 905076A CS 507690 A CS507690 A CS 507690A CZ 280679 B6 CZ280679 B6 CZ 280679B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
peptide
hydrogen
isotopes
peptides
solution
Prior art date
Application number
CS905076A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Nikolaj F. Dr. Sepetov
Žana Dr. Bespalova
Michal Ing. Csc. Lebl
Original Assignee
Ústav Organické Chemie A Biochemie Avčr
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ústav Organické Chemie A Biochemie Avčr filed Critical Ústav Organické Chemie A Biochemie Avčr
Priority to CS905076A priority Critical patent/CZ280679B6/en
Priority to PCT/US1991/007658 priority patent/WO1992007265A1/en
Priority to AU89536/91A priority patent/AU8953691A/en
Publication of CZ507690A3 publication Critical patent/CZ507690A3/en
Publication of CZ280679B6 publication Critical patent/CZ280679B6/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/665Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans derived from pro-opiomelanocortin, pro-enkephalin or pro-dynorphin
    • C07K14/70Enkephalins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/107General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides
    • C07K1/1072General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides by covalent attachment of residues or functional groups
    • C07K1/1077General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides by covalent attachment of residues or functional groups by covalent attachment of residues other than amino acids or peptide residues, e.g. sugars, polyols, fatty acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/12General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by hydrolysis, i.e. solvolysis in general
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/534Production of labelled immunochemicals with radioactive label

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

Způsob izotopového značení peptidů pro získání peptidů obsahujících izotopy vodíku spočívá v tom, že peptid s volnou N-koncovou aminoskupinou se zahřívá v neutrálním nebo mírně alkalickém prostředí o pH 7 až 11 za teploty 30 až 130 .sup.o.n.C a za přítomnosti vody s pozměněným zastoupením izotopů vodíku, přičemž izotopy vodíku jsou zavedeny na -uhlík první, první a druhé, případně první, druhé a třetí amminokyseliny v peptidovém řetězci. Výhodou je peptid, který obsahuje v poloze 1, nebo v polohách 1 a 2 glycin.ŕThe method of isotopically labeling peptides to obtain peptides containing isotopes of hydrogen is that the peptide with the free N-terminal amino group is heated in neutral or mildly alkaline medium at a pH of 7 to 11 at a temperature of 30 to 130. isotopes of hydrogen, wherein the isotopes of hydrogen are introduced to the carbon of the first, first and second, optionally first, second and third amine acids in the peptide chain. An advantage is a peptide which contains glycine in the 1-position or in the 1-position and 2-position

Description

Způsob izotopového značení peptidůMethod of isotopic labeling of peptides

Oblast technikyTechnical field

Vynález se týká způsobu izotopového značení peptidů pro získávání peptidů, obsahujících izotopy vodíku.The invention relates to a method for isotopically labeling peptides for obtaining peptides containing isotopes of hydrogen.

Dosavadní stav technikyBACKGROUND OF THE INVENTION

Izotopově značené organické sloučeniny jsou velmi významným nástrojem, používaným při výzkumu jejich chemickým přeměn. V případě biologicky aktivních peptidů je izotopové značení prakticky jedinou možností, používanou při studiu mechanismu jejich účinku a sledování jejich osudu v živém organismu. Doposud známé způsoby vnesení izotopové značky do peptidů zahrnují a) nespecifickou výměnu vodíkových atomů - tzv. Wilzbachovo značení, b) adici vodíku na nenasycené vazby, c) katalytickou výměnu halogenových atomů na aromatickém jádře. Pouze těmito způsoby lze relativně snadno získat značenou látku, která se neliší chemicky od látky neznačené. Jiné způsoby značení bud’ mění charakter studované látky - vnášení radioaktivních atomů původně v molekule neobsažených (např. izotopů jodu), nebo připojováním bloků, obsahujících radioaktivní značku - nebo jsou synteticky velmi náročné - syntéza vychází z prekurzorů (obvykle aminokyselin) již obsahujících radioaktivní izotopy (3H, i:lC, 13C).Isotopically labeled organic compounds are a very important tool used in the research of their chemical transformations. In the case of biologically active peptides, isotopic labeling is virtually the only option used to study the mechanism of their action and to monitor their fate in a living organism. Hitherto known methods of introducing an isotopic label into peptides include a) non-specific exchange of hydrogen atoms - the so-called Wilzbach labeling, b) addition of hydrogen to unsaturated bonds, c) catalytic exchange of halogen atoms on the aromatic nucleus. Only by these methods can a labeled substance that is not chemically different from a non-labeled substance can be obtained relatively easily. Other ways of labeling either alter the nature of the study substance - by introducing radioactive atoms initially in the molecule (eg iodine isotopes) or by attaching blocks containing a radiolabel - or are synthetically very demanding - synthesis is based on precursors (usually amino acids) already containing radioactive isotopes ( 3 H, 1 H, 13 C).

Podstata vynálezuSUMMARY OF THE INVENTION

Předmětem vynálezu je způsob izotopového značení peptidů pro získání peptidů, obsahujících izotopy vodíku, který spočívá v tom, že peptid s volnou N-koncovou aminoskupinou se zahřívá v neutrálním nebo mírně alkalickém prostředí o pH 7 až 11 za teploty 30 až 130 C za přítomnosti vody s pozměněným zastoupením izotopů vodíku, přičemž izotopy vodíku jsou zavedeny na a-uhlík první, první a druhé, případně první, druhé a třetí aminokyseliny v peptidovém řetězci. Výhodou je peptid, který obsahuje v poloze 1, nebo v polohách 1 a 2 glycin. Takto získaný peptid lze použít jako jeden z fragmentů při syntéze peptidů. Metoda značení peptidů podle vynálezu vychází z poznatku, že peptidy ve vodném prostředí za neutrálních či různě alkalických podmínek (pH 7-11) a zvýšené teploty (30-130 °C) podléhají racemizaci amminoterminálních aminokyselin, přičemž volbou podmínek je možno racemizovat jednu, dvě nebo tři aminokyseliny. Tudíž je možno libovolný peptid s volnou α-aminoskupinou podrobit zahřívání v neutrálním až mírně alkalickém roztoku ve vodě s pozměněným zastoupením izotopů vodíku a získat tak směs distereoizomerních peptidů, ve kterých je vodík na α-uhlíku první aminokyseliny (v případě tvrdších podmínek zahřívání také na druhé a třetí aminokyselině) vyměněn za izotop nebo směs izotopů vodíku, který byl obsažen v použité vodě.SUMMARY OF THE INVENTION The present invention provides a method for isotopically labeling peptides for obtaining peptides containing isotopes of hydrogen, which comprises heating a peptide having a free N-terminal amino group in a neutral or slightly alkaline environment at pH 7-11 at 30-130 ° C in the presence of water. with an altered representation of hydrogen isotopes, wherein the isotopes of hydrogen are introduced at the α-carbon of the first, first and second, and optionally the first, second and third amino acids in the peptide chain. Preferably, the peptide comprises glycine at position 1 or at positions 1 and 2. The peptide thus obtained can be used as one of the fragments in peptide synthesis. The method of labeling peptides according to the invention is based on the finding that peptides in aqueous medium under neutral or different alkaline conditions (pH 7-11) and elevated temperature (30-130 ° C) are subject to racemization of amminothermal amino acids. or three amino acids. Thus, any peptide with a free α-amino group can be heated in a neutral to slightly alkaline solution in water with an altered representation of hydrogen isotopes to yield a mixture of distereoisomeric peptides in which the hydrogen is on the α-carbon of the first amino acid ( second and third amino acids) exchanged for an isotope or mixture of hydrogen isotopes contained in the water used.

Diastereoizomerní peptidy, získané v případě, že koncovou aminokyselinou není glycin, lze rozdělit pomocí vysokotlaké kapalinové chromatografie (HPLC) a získat tak velmi snadno peptid o stejné konfiguraci všech asymetrických center, jako měla výchozí látka. Zvláště výhodný je tento postup pro peptid, obsahujícíThe diastereoisomeric peptides obtained when the terminal amino acid is not glycine can be separated by high pressure liquid chromatography (HPLC) to obtain a peptide with the same configuration of all asymmetric centers as the starting material very easily. This method is particularly preferred for a peptide comprising

-1CZ 280679 B6 v poloze 1 glycin (případně obsahující glycin v polohách 1, 2 či 1, 2, 3), neboť v tomto případě nevzniká směs diastereoizomerů (a tudíž není třeba přistupovat k HPLC čištění) a výtěžek značení je vyšší, neboť lze vyměnit dva protony v první aminokyselině. Využití aminokoncového glycinu lze doporučit i pro značení látek, které obsahují glycin uvnitř své aminokyselinové sekvence. V těchto případech je třeba provést syntézy jednak fragmentu peptidu, obsahujícího aminoterminální glycin (I), a jednak aminoterminálního fragmentu (II). Fragment I se pak podrobí výše popsanému vnesení vodíkových izotopů, připojí se k němu pomocí známých metod syntézy peptidů fragment II a po odstranění chránících skupin se získá specificky značený žádaný peptid. Výhodou způsobu značení dle vynálezu je velmi jednoduchý způsob provedení, nízká cena potřebných chemikálií.-1C 280679 B6 at position 1 glycine (optionally containing glycine at positions 1, 2 or 1, 2, 3), since there is no mixture of diastereoisomers in this case (and therefore no HPLC purification is required) and the labeling yield is higher as exchange two protons in the first amino acid. The use of amino-terminal glycine can also be recommended for labeling substances that contain glycine within their amino acid sequence. In these cases, the synthesis of both the amino-terminal glycine (I) containing peptide and the amino-terminal (II) peptide must be synthesized. Fragment I is then subjected to the introduction of hydrogen isotopes as described above, coupled thereto using known peptide synthesis methods, fragment II, and, after deprotection, the specifically labeled desired peptide is obtained. The advantage of the marking method according to the invention is a very simple embodiment, low cost of the required chemicals.

Dále uvedené příklady způsob dle vynálezu ilustrují, ale neomezuj í.The following examples illustrate but do not limit the process of the invention.

Příklady provedení vynálezuDETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

Vysvětlení zkratek, použitých v příkladech:Explanation of abbreviations used in the examples:

TLC = tenkovrstvá chromatografie,TLC = thin-layer chromatography,

HPLC = vysokotlaká kapalinová chromatografie.HPLC = high pressure liquid chromatography.

Příklad 1Example 1

Η-(a-2H)-Phe-Met-Arg-Phe-OHΗ- (a-2H) -Phe-Met-Arg-Phe-OH

Hydrochlorid tetrapeptidu H-Phe-Met-Arg-Phe-OH (30 mg) byl rozpuštěn v D2O (10 ml), pH roztoku bylo upraveno na hodnotu 7,3 pomocí 1 mol/1 roztoku hydroxidu draselného a roztok byl v uzavřené ampulí zahříván na 120 °C po dobu 47 h. Po této době byl roztok vnesen na kolonu Silasorbu Cg (25x2,4 cm) a gradientovou elucí (30-50 % acetonitrilu v 0,l%ní kyselině trifluoroctové během 50 min) získané frakce byly zahřívány ve vakuu a lyofilizovány. Bylo získáno 8 mg látky, jejíž retenční čas na koloně Separon SIC18 (25x0,4 cm) je shodný s retenčním časem výchozí láťky. Pomocí analýzy 1H NMR spektroskopie bylo zjištěno, že tato látka obsahuje pouze 35 % vodíku 1H na α-uhlíku aminoterminálního fenylalaninu. Získaný peptid byl čistý dle TLC (tenkovrstvá chromatograf ie) [RF 0,24 (2-butanol - 98% kyselina mravenčí - voda, 75: :13,5:11,5 (soustava A)], 0,01 [2-butanol - 25% vodný čpavekTetrapeptide hydrochloride H-Phe-Met-Arg-Phe-OH (30 mg) was dissolved in D 2 O (10 mL), the pH of the solution was adjusted to 7.3 with 1 mol / L potassium hydroxide solution and the solution was sealed. The solution was applied to a Silasorb Cg column (25x2.4 cm) and gradient elution (30-50% acetonitrile in 0.1% trifluoroacetic acid over 50 min) of the obtained fraction. were heated under vacuum and lyophilized. 8 mg of a substance was obtained whose retention time on a Separon SIC 18 column (25x0.4 cm) was identical to the retention time of the starting material. 1 H NMR analysis showed that this material contained only 35% of 1 H hydrogen on the α-carbon of the aminoterminal phenylalanine. The obtained peptide was pure by TLC (thin layer chromatography) [R F 0.24 (2-butanol - 98% formic acid - water, 75:: 13.5: 11.5 (system A)], 0.01 [2 -butanol - 25% aqueous ammonia

- voda, 85:7,5:7,5 (soustava B)], 0,09 [1-butanol - kyselina octová - voda, 4:1:1 (soustava C)J, 0,58 [1-butanol - pyridin- water, 85: 7.5: 7.5 (system B)], 0.09 [1-butanol-acetic acid - water, 4: 1: 1 (system C) J, 0.58 [1-butanol - pyridine

- kyselina octová - voda, 15:10:3:6 (soustava D)], elektroforetické analýzy (EHis5,7 = 0,44, EHls2ř4 = °>82) a HPLC (viz výše) a shodoval se ve všech těchto testech s výchozí látkou. Aminokyselinová analýza: Phe 1,96 (2), Met 0,88 (1), Arg 1,04 (1). FAB MS: 601,3 + 600,3 (M+H+).- acetic acid - water, 15: 10: 3: 6 (System D)], electrophoretic analysis (His E 5.7 = 0.44, E = 2R4 Hls °> 82) and HPLC (see above) and coincide with the all of these starting material tests. Amino Acid Analysis: Phe 1.96 (2), Met 0.88 (1), Arg 1.04 (1). FAB MS: 601.3 + 600.3 (M + H < + & gt ; ).

Příklad 2Example 2

Η-(a-2H2)Gly-Gly-Phe-Met-OHΗ- (α- 2 H 2 ) Gly-Gly-Phe-Met-OH

Volný tetrapeptid H-Gly-Gly-Phe-Met-OH (5 mg) byl rozpuštěn v D2O (5 ml), pH roztoku bylo upraveno na hodnotu 9,25 pomocí 1 mol/1 roztoku hydroxidu draselného a roztok byl v uzavřené ampuli zahříván na 120 ’C po dobu 23 h. Po této době byl roztok vnesen na kolonu Silasorbu C8 (25 x 2,4 cm) a gradientovou elucí získané frakce byly zahřívány ve vakuu a lyofilizovány. Bylo získáno 5 mg látky, jejíž retenční čas na koloně Separon SIC18 (25 x 0,4 cm) je shodný s retenčním časem výchozí látky. Pomocí analýzy ^H NMR spektroskopie bylo zjištěno, že tato látka obsahuje pouze 20 % vodíku na α-uhlíku aminoterminálního glycinu. Získaný peptid byl čistý dle TLC [Rp 0,28 (A), 0,03 (B), 0,32 (C), 0,55 (D)], elektroforetické analýzy (EHis5,7 = 0/01/ WG1^2 4 =The free tetrapeptide H-Gly-Gly-Phe-Met-OH (5 mg) was dissolved in D 2 O (5 mL), the pH of the solution was adjusted to 9.25 with 1 M potassium hydroxide solution, and the solution was sealed. The vial was heated to 120 ° C for 23 h. After this time, the solution was loaded onto a Silasorb C 8 column (25 x 2.4 cm) and the fractions obtained by gradient elution were heated in vacuo and lyophilized. 5 mg of substance was obtained whose retention time on a Separon SIC 18 column (25 x 0.4 cm) was the same as that of the starting material. 1 H NMR analysis showed that this material contained only 20% hydrogen on the α-carbon of the aminoterminal glycine. The peptide obtained was pure by TLC [Rp 0.28 (A), 0.03 (B), 0.32 (C), 0.55 (D)], electrophoretic analysis (E His 5.7 = 0/01 / W G1 ^ 24 =

0,96) a HPLC (viz výše) a shodoval se ve všech těchto testech s výchozí látkou. Aminokyselinová analýza: Phe 0,96 (1), Gly 2,03 (2), Met 0,89 (1). FAB MS: 413,2 (M+H+).0.96) and HPLC (see above) and was consistent with the starting material in all of these assays. Amino Acid Analysis: Phe 0.96 (1), Gly 2.03 (2), Met 0.89 (1). FAB MS: 413.2 (M + H < + & gt ; ).

Příklad 3Example 3

Η-(a-2H2)Gly-(a-2H2)Gly-(a-2H)Phe-Met-OHE- (α- 2 H2) Gly- (α- 2 H2) Gly- (α- 2 H) Phe-Met-OH

Volný tetrapeptid H-Gly-Gly-Phe-Met-OH (20 mg) byl rozpuštěn v D2O (5 ml), pH roztoku bylo upraveno na hodnotu 11,9 a roztok byl v uzavřené ampuli zahřívá na 120 °C po dobu 24 h. Po této době byl roztok vnesen na kolonu Silasorb C8 (25 x 2,4 cm) a gradientovou elucí (0-40 % methanolu v 0,1% trifluoroctové kyselině během 5 min a 40-50 % methanolu v 0,1% trifluoroctové kyselině během 50 min) získané frakce byly zahřívány ve vakuu a lyofilizovány. Bylo získáno 9 mg látky, jejíž retenční čas na koloně Separonu SIC18 (25 x 0,4 cm) je shodný s retenčním časem výchozí látky. Pomocí analýzy ^H NMR spektroskopie bylo zjištěno, že tato látka obsahuje pouze stopy vodíku 1H na α-uhlíku aminoterminálního glycinu a na α-uhlíku glycinu v poloze 2 a 10 % vodíku ·*·Η na α-uhlíku fenylalaninu v poloze 3. Získaný peptid byl čistý dle TLC [Rp 0,28 (A), 0,03 (B), 0,32 (C), 0,55 (D)], elektroforetické analýzy (EH-*-s5 7 = 0,01, EG3_^2 4 = 0,96) a HPLC (viz výše) a shodoval se ve všech těchto testech s výchozí látkou. Aminokyselinová analýza: Phe 1,03 (1), Gly 2,07 (2), Met 0,88 (1), FAB MS: 416,2 (M+H+).The free tetrapeptide H-Gly-Gly-Phe-Met-OH (20 mg) was dissolved in D 2 O (5 mL), the pH of the solution was adjusted to 11.9, and the solution was heated to 120 ° C in a sealed vial. After this time, the solution was loaded onto a Silasorb C 8 column (25 x 2.4 cm) and gradient elution (0-40% methanol in 0.1% trifluoroacetic acid over 5 min and 40-50% methanol in 0, 1% trifluoroacetic acid over 50 min) The fractions obtained were heated under vacuum and lyophilized. 9 mg of substance was obtained, whose retention time on a Separon SIC 18 column (25 x 0.4 cm) was identical to the retention time of the starting material. 1 H NMR spectroscopy showed that this material contained only traces of 1 H hydrogen at the α-carbon of the amino-terminal glycine and α-carbon glycine at the 2-position and 10% hydrogen · α · Η at the α-carbon of phenylalanine at the 3-position. The obtained peptide was pure by TLC [Rp 0.28 (A), 0.03 (B), 0.32 (C), 0.55 (D)], electrophoretic analysis (E H - * - s 57 = 0) .Alpha.1 , .delta. (G @ 23 = 0.96) and HPLC (see above) and coincided with the starting material in all these tests. Amino Acid Analysis: Phe 1.03 (1), Gly 2.07 (2), Met 0.88 (1), FAB MS: 416.2 (M + H + ).

Příklad 4Example 4

H-Tyr-(a-2H2)Gly-(a-2H2)Gly-(a-2H)Phe-Met-OHH-Tyr- (α- 2 H2) Gly- (α- 2 H2) Gly- (α- 2 H) Phe-Met-OH

Peptid připravený v příkladu 3 (5 mg) byl rozpuštěn ve vodě,The peptide prepared in Example 3 (5 mg) was dissolved in water,

-3CZ 280679 B6 pH roztoku bylo upraveno na 9,5 a k získanému roztoku byl přidán roztok Boc-Tyr-ONSu (10 mg). Směs byla míchána při teplotě místnosti až do vymizení výchozího peptidu (TLC) analýza). Poté byl roztok odpařen, zbytek byl rozpuštěn ve směsi kyseliny trifluoroctové a anisolu (95:5) a po 20 min byl roztok odpařen, zbytek rozpuštěn v 3 mol/1 kyselině octové a nanesen na kolonu Vydac C18 (25 χ 1 cm). Gradientovou elucí (20-50% acetonitrilu v 0,05 % trifluoroctové kyseliny během 40 min) získané frakce byly zahřívány ve vakuu a lyofilizovány. Bylo získáno 4,7 mg látky, jejíž retenční čas na koloně Separonu SIC18 (25 x 0,4 cm) je shodný s retenčním časem výchozí látky. Pomocí analýzy NMR spektroskopie bylo zjištěno, že tato látka má stejný obsah vodíku na α-uhlících glycinu v poloze 2 a 3 a fenylalaninu v poloze 4, jako měl výchozí tetrapeptid. Získaný peptid byl čistý dle TLC [Rp 0,32 (A), 0,10 (B), 0,41 (C), 0,57 (D)J, elektroforetické analýzy (eHís^ i _ QzQiř EG1^2 4 = 0/67) a HPLC (viz výše) a shodoval se ve všech těchto testech se standardem methionin enkefalinu. Aminokyselinová analýza: Phe 1,03 (1), Gly 2,10 (2), Met 0,87 (1), Tyr 0,93 (1). FAB MS: 579,2 (M+N+).The pH of the solution was adjusted to 9.5 and Boc-Tyr-ONSu solution (10 mg) was added to the obtained solution. The mixture was stirred at room temperature until the disappearance of the starting peptide (TLC) analysis). After the solution was evaporated, the residue was dissolved in a mixture of trifluoroacetic acid and anisole (95: 5) and after 20 min the solution was evaporated, the residue was dissolved in 3 mol / L acetic acid and loaded onto a Vydac C 18 column (25 χ 1 cm). Gradient elution (20-50% acetonitrile in 0.05% trifluoroacetic acid over 40 min) obtained fractions were heated under vacuum and lyophilized. 4.7 mg of a substance was obtained whose retention time on a Separon SIC 18 column (25 x 0.4 cm) was the same as that of the starting material. NMR analysis showed that it had the same hydrogen content on the α-carbons of glycine at position 2 and 3 and phenylalanine at position 4 as the starting tetrapeptide. The peptide was pure by TLC [R p 0.32 (A) 0.10 (B) 0.41 (C) 0.57 (D) J electrophoretic analyzes (EHIS ^ _ Q i of Q R E G1 (24 = 0/67) and HPLC (see above) and met all methionine enkephalin standard in all these tests. Amino Acid Analysis: Phe 1.03 (1), Gly 2.10 (2), Met 0.87 (1), Tyr 0.93 (1). FAB MS: 579.2 (M + N < + & gt ; ).

Průmyslová využitelnostIndustrial applicability

Způsob podle vynález lze využít v základním výzkumu při studiu metabolismu a distribuce biologicky aktivních peptidů v živém organismu.The method of the invention can be used in basic research to study the metabolism and distribution of biologically active peptides in a living organism.

Claims (2)

PATENTOVÉ NÁROKYPATENT CLAIMS 1. Způsob izotopového značení peptidů pro získání peptidů, obsahujících izotopy vodíku, vyznačující se tím, že peptid s volnou N-koncovou aminoskupinou se zahřívá v neutrálním nebo mírně alkalickém prostředí o pH 7 až 11 za teploty 30 až 130 ’C a za přítomnosti vody s pozměněným zastoupením izotopů vodíku, přičemž izotopy vodíku jsou zavedeny na α-uhlík první, první a druhé, případně první, druhé a třetí aminokyseliny v peptidovém řetězci.A method of isotopically labeling peptides for obtaining peptides containing isotopes of hydrogen, characterized in that the peptide with a free N-terminal amino group is heated in a neutral or slightly alkaline medium at pH 7-11 at 30 to 130 ° C and in the presence of water with altered proportions of hydrogen isotopes, wherein the isotopes of hydrogen are introduced at the α-carbon of the first, first and second, respectively the first, second and third amino acids in the peptide chain. 2. Způsob dle nároku 1, vyznačený tím, že značený peptid je peptid, obsahující v poloze 1, nebo v poloze 1 a 2 glycin.The method of claim 1, wherein the labeled peptide is a peptide containing glycine at position 1 or at positions 1 and 2.
CS905076A 1990-10-18 1990-10-18 Method of peptide radiolabelling CZ280679B6 (en)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS905076A CZ280679B6 (en) 1990-10-18 1990-10-18 Method of peptide radiolabelling
PCT/US1991/007658 WO1992007265A1 (en) 1990-10-18 1991-10-18 Selective peptide labeling with hydrogen isotopes
AU89536/91A AU8953691A (en) 1990-10-18 1991-10-18 Selective peptide labeling with hydrogen isotopes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS905076A CZ280679B6 (en) 1990-10-18 1990-10-18 Method of peptide radiolabelling

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ507690A3 CZ507690A3 (en) 1994-02-16
CZ280679B6 true CZ280679B6 (en) 1996-04-17

Family

ID=5394932

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS905076A CZ280679B6 (en) 1990-10-18 1990-10-18 Method of peptide radiolabelling

Country Status (3)

Country Link
AU (1) AU8953691A (en)
CZ (1) CZ280679B6 (en)
WO (1) WO1992007265A1 (en)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4162142A (en) * 1978-06-29 1979-07-24 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Tritium labeling of organic compounds deposited on porous structures
US4242186A (en) * 1979-03-27 1980-12-30 Georgia Tech Research Institute Low pressure tritiation of molecules
SU968036A1 (en) * 1980-03-10 1982-10-23 Научно-исследовательский институт медицинской радиологии АМН СССР Method for preparing marked protein

Also Published As

Publication number Publication date
CZ507690A3 (en) 1994-02-16
WO1992007265A1 (en) 1992-04-30
AU8953691A (en) 1992-05-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0561412B1 (en) Parathyroid hormone derivatives
US5405597A (en) Technetium-99m labeled somatostatin-derived peptides for imaging
Han et al. Studies on the Primary Structure of Bovine High-MolecularWeight Kininogen: Amino Acid Sequence of a Fragment (“Histidine-Rich Peptide”) Released by Plasma Kallikrein
NZ337303A (en) Method for the preparation of facial metal tricarbonyl compounds and their use in the labelling of biologically active substrates
Van Staveren et al. Conjugation of a novel histidine derivative to biomolecules and labelling with [99m Tc (OH 2) 3 (CO) 3]+
HU219336B (en) Process for producing peptide derivatives and pharmaceutical compositions comprising such compounds and diagnostic unit containing such compounds
JPS62267300A (en) Derivatives of polypeptide and protein and production thereof
US5026909A (en) Method for preparing biologically active organic compound labelled with hydrogen isotope
Valerio et al. Synthesis of peptide analogues using the multipin peptide synthesis method
JPH0570433B2 (en)
Cornell et al. Studies on the Disulfide Bonds of Glycoprotein Hormones: LOCATIONS IN THE α CHAIN BASED ON PARTIAL REDUCTIONS AND FORMATION OF 14C-LABELED S-CARBOXYMETHYL DERIVATIVES
Glazer et al. The iodination of chymotrypsinogen
Yi et al. Peroxynitrite-mediated nitration of peptides: characterization of the products by electrospray and combined gas chromatography–mass spectrometry
Yamasaki et al. Amino acid sequence of a biologically active fragment of bovine growth hormone
O'Connell et al. Isolation and isotopic analysis of individual amino acids from archaeological bone collagen: A new method using RP‐HPLC
Tenu et al. Photoaffinity labelling of macrophages and B-lymphocytes using 125I-labelled aryl-azide derivatives of muramyldipeptide
CZ280679B6 (en) Method of peptide radiolabelling
SHIMOMURA et al. Primary structure of cat osteocalcin
Katsoyannis et al. Insulin peptides. XXII. Synthesis of the human insulin B-chain S-sulfonate
Langguth et al. Fluorescence assay for small peptides and amino acids: High-performance liquid chromatographic determination of selected substrates using activated S-flunoxaprofen as a chiral derivatizing agent
Terada et al. Iodination of luteinizing hormone-releasing hormone
JPH04282399A (en) Radioactive iodine labeled insulin-like growth factor i
Weinberger et al. Small Peptide Libraries: Combinatorial Split‐Mix Synthesis followed by Combinatorial Amino Acid Analysis of Selected Variants
Brundish et al. Tritiated peptides. Part 141. Catalytic exchange labelling of various synthetic peptides
Leighton et al. Amino Acid Sequences Containing Cysteine or Half-Cystine Residues in ß-Glucuronidase