CZ20598A3 - Inhibition of cellular respiration and production of plants with male sterility - Google Patents

Inhibition of cellular respiration and production of plants with male sterility Download PDF

Info

Publication number
CZ20598A3
CZ20598A3 CZ98205A CZ20598A CZ20598A3 CZ 20598 A3 CZ20598 A3 CZ 20598A3 CZ 98205 A CZ98205 A CZ 98205A CZ 20598 A CZ20598 A CZ 20598A CZ 20598 A3 CZ20598 A3 CZ 20598A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
gene
plant
cells
tissue
genes
Prior art date
Application number
CZ98205A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Andrew James Greenland
Simon William Jonathan Bright
Paul Richard Drayton
Philip John Bell
Original Assignee
Zeneca Limited
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zeneca Limited filed Critical Zeneca Limited
Publication of CZ20598A3 publication Critical patent/CZ20598A3/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8216Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
    • C12N15/8218Antisense, co-suppression, viral induced gene silencing [VIGS], post-transcriptional induced gene silencing [PTGS]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C12N15/8287Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for fertility modification, e.g. apomixis
    • C12N15/8289Male sterility

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

A method of inhibiting gene expression in a target plant tissue which comprises stably transforming a plant cell of a type from which a whole plant may be regenerated with a gene construct carrying a tissue-specific or a development-specific promoter which operates in the cells of the target plant tissue and a disrupter gene encoding a protein which is capable, when expressed, of inhibiting respiration in the cells of the said target tissue resulting in death of the cells, the said disrupter gene is selected from the group consisting of the T-urfl3 gene, genes encoding an alpha - or beta -tubulin, short sense co-suppression of two essential maize cell cycle genes, cdc25 and replication origin activator (ROA) and a short sense construct to the adenine nucleotide translocator (ANT) of the inner mitochondrial membrane.

Description

Oblast techniky produkce rostlin se samčíThe field of male plant production technology

Předkládaný vynález se týká způsobu produkce rostlin se samčí sterilitou tak, že se využije gen, který se může v rostlině exprimovat a inhibuje základní buněčnou funkci, a tím poruší úplnou expresi vybraných znaků rostlin.The present invention relates to a method of producing plants with male sterility by using a gene that can be expressed in the plant and inhibits a basic cellular function, thereby disrupting the full expression of selected plant traits.

Dosavadní stav technikyCurrent state of the art

Naše mezinárodní patentová přihláška č. WO 90/08831 popisuje a nárokuje si inhibici dýchání užitím různých porušovacích genů (porušovačů) , které také nazýváme geny inaktivující pyl.Our International Patent Application No. WO 90/08831 describes and claims the inhibition of respiration using various disruptor genes (disruptors), which we also call pollen inactivating genes.

Schopnost takových inaktivujících genů působit tímto způsobem je velmi rozdílná, a proto je nutné nadále zlepšovat genové sekvence, aby bylo možné vybírat vhodné geny pro určité aplikace.The ability of such inactivating genes to act in this way is highly variable, and it is therefore necessary to continue to improve gene sequences in order to select suitable genes for certain applications.

Podstata vynálezuThe essence of the invention

Předmětem tohoto vynálezu je poskytnout geny, které se použijí pro brzdění genové exprese.The object of this invention is to provide genes that are used for inhibiting gene expression.

Podle předkládaného vynálezu je poskytnut způsob brzdění (inhibice) genové exprese v cílovém rostlinném pletivu zahrnující trvale transformovanou rostlinnou buňku takového druhu, že z ní může být regenerována celá rostlina, s rekombinantním genem (t.j.rekombinantní molekulou DNA) nesoucím tkáňově nebo vývojově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového pletiva, a dále nesoucím porušovací gen kódující takový protein, který je schopen, je-li exprimován, inhibovat buněčné dýchání v cílovém pletivu, cožAccording to the present invention, there is provided a method of inhibiting (inhibiting) gene expression in a target plant tissue comprising a permanently transformed plant cell of such a kind that a whole plant can be regenerated from it, with a recombinant gene (i.e. a recombinant DNA molecule) carrying a tissue- or development-specific promoter, which functions in the cells of the target tissue, and further carrying a disruptive gene encoding such a protein that is capable, when expressed, of inhibiting cellular respiration in the target tissue, which

vede k odumření buněk. Porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu T-urfl3, genů kódujících a- nebo βtubulin, krátké ko-suprese ve směru čtení („sense) dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a aktivátoru replikačního počátku (ROA), a krátké, ve směru čtení orientované („sense), molekuly genu translokátoru adenin nukleotidu (ANT) z vnitřní mitochondriální membrány.leads to cell death. The disruptive gene is selected from the group consisting of the T-urfl3 gene, genes encoding α- or βtubulin, a short sense co-suppression of two essential maize cell cycle genes, cdc25 and replication origin activator (ROA), and a short , in the reading direction oriented ("sense"), of the adenine nucleotide translocator (ANT) gene molecule from the inner mitochondrial membrane.

Utlumení („down-regulation) genové aktivity způsobené ko-supresí ve směru čtení („sense co-supression) je popsáno v naší mezinárodní patentové přihlášce č. WO 90/08299.Down-regulation of gene activity caused by sense co-suppression is described in our International Patent Application No. WO 90/08299.

Geny a- nebo β-tubulinu působí jako porušovače tím, že destabilizují uspořádání mikrotubulů v rostlinných buňkách, čímž ruší základní funkci mikrotubulů v cílové tkáni, což vede k odumření buněk.The α- or β-tubulin genes act as disruptors by destabilizing the microtubule arrangement in plant cells, thereby disrupting the essential microtubule function in the target tissue, leading to cell death.

Užití krátké ko-suprese ve směru čtení dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a aktivátoru replikačního počátku (ROA), porušuje buněčné dělení a vede k růstovým defektům v cílovém orgánu nebo pletivu.The use of short co-suppression in the read-through of two essential maize cell cycle genes, cdc25 and replication origin activator (ROA), disrupts cell division and leads to growth defects in the target organ or tissue.

Promotor je nejlépe promotor specifický pro prašník a/nebo tapetum nebo promotor specifický pro pyl, takže exprese porušovacího proteinu v příslušném pletivu regenerované rostliny vede k rostlině se samčí sterilitou. Výhodněji je promotor specifický pro prašník a/nebo tapetum izolován užitím sekvencí cDNA, které jsou ukázány na obrázcích 1, 2, 3, a způsoby popsanými v naší mezinárodní patentové přihlášce č. WO 90/08826.The promoter is preferably an anther- and/or tapetum-specific promoter or a pollen-specific promoter such that expression of the disrupting protein in the appropriate tissue of the regenerated plant results in a male-sterile plant. More preferably, the anther- and/or tapetum-specific promoter is isolated using the cDNA sequences shown in Figures 1, 2, 3, and the methods described in our International Patent Application No. WO 90/08826.

Plasmidové vektory obsahující sekvence DNA z obrázkůPlasmid vectors containing the DNA sequences from the images

1,2,3 jsou deponovány podle Budapešťské konvence.1,2,3 are deposited according to the Budapest Convention.

Plasmíd pMSIO v hostitelském kmeni Escherichia coli RR1 obsahující genovou sekvenci na obr. 1, byl deponován v národní kolekci průmyslových a mořských bakterií 9. ledna 1989 pod přístupovým číslem NCIB 40090.Plasmid pMSIO in the Escherichia coli RR1 host strain containing the gene sequence of Fig. 1 was deposited in the National Collection of Industrial and Marine Bacteria on January 9, 1989 under NCIB accession number 40090.

Plasmíd pMS14 v hostitelském kmeni E. coli DH5a, obsahující genovou sekvenci na obr. 2, byl deponován v národní • · • ·Plasmid pMS14 in the host strain E. coli DH5a, containing the gene sequence in Fig. 2, has been deposited in the National • · • ·

kolekci průmyslových a mořských bakterií 9. ledna 1989 pod přístupovým číslem NCIB 40099.collection of industrial and marine bacteria on 9 January 1989 under NCIB accession number 40099.

Plasmid pMS18 v hostitelském kmeni E. coli RR1, obsahující genovou sekvenci na obr. 3, byl deponován v národní kolekci průmyslových a mořských bakterií 9. ledna 1989 pod přístupovým číslem NCIB 40100.Plasmid pMS18 in the E. coli RR1 host strain, containing the gene sequence of Fig. 3, was deposited in the National Collection of Industrial and Marine Bacteria on January 9, 1989 under NCIB accession number 40100.

Izolace a charakterizace těchto genových sekvencí je plně popsána ve WO 93/01294.The isolation and characterization of these gene sequences is fully described in WO 93/01294.

Je možné použít také jiné promotory, například promotor MFS14 specifický pro tapetum.Other promoters can also be used, for example the tapetum-specific MFS14 promoter.

Předkládaný vynález také poskytuje rostlinu, která má ve svém genomu trvale inkorporovanou rekombinantní molekulu DNA nesoucí geny obsahující tkáňově specifický nebo vývojově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového pletiva, a dále nesoucí porušovací gen kódující takový protein, který je schopen, je-li exprimován, inhibovat základní buněčnou funkci jako je například dýchání, uspořádání mikrotubulů nebo buněčné dělení v buňkách cílového pletiva, což vede k odumření buněk.The present invention also provides a plant that has permanently incorporated into its genome a recombinant DNA molecule carrying genes containing a tissue-specific or developmentally specific promoter that functions in cells of a target tissue and further carrying a disruptive gene encoding such a protein that is capable, when expressed , inhibit a basic cellular function such as respiration, microtubule arrangement or cell division in the cells of the target tissue, leading to cell death.

Vynález také poskytuje rostlinu, zejména jednodšložnou rostlinu, konkrétně kukuřici, která má ve svém genomu trvale inkorporovanou rekombinantní molekulu DNA nesoucí geny obsahující tkáňově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového pletiva, a dále nesoucí porušovací gen kódující takový protein, který je schopen inhibovat základní buněčnou funkci jako je dýcháni, uspořádání mikrotubulů v buňkách cílového pletiva, což vede k odumření buněk, přičemž porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu Turfl3, krátké, ve směru čtení orientované, molekuly genu translokátoru adenin nukleotidu (ANT), genů kódujících a- nebo β-tubulin a krátké ko-suprese ve směru čteni dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a ROA.The invention also provides a plant, in particular a monocot plant, namely corn, which has permanently incorporated into its genome a recombinant DNA molecule carrying genes containing a tissue-specific promoter that functions in the cells of the target tissue, and further carrying a disruptive gene encoding such a protein capable of inhibiting the basic cellular function such as respiration, the organization of microtubules in cells of the target tissue, leading to cell death, the offending gene being selected from the group consisting of the Turfl3 gene, a short, read-through oriented molecule, the adenine nucleotide translocator (ANT) gene, genes encoding α- or β-tubulin and short upstream co-suppression of two essential maize cell cycle genes, cdc25 and ROA.

Tyto rekombinantní geny být použity jako prostředek inhibice buněčného růstu v řadě organismů, od jednoduchých jednobuněčných ke složitým mnohobuněčným organismům, jako jsou rostliny a zvířata. Použitím tkáňově nebo buněčně specifických promotorů mohou být ve složitých organismech zaměřeny a zničeny konkrétní buňky nebo tkáně. Jedno konkrétní použití zamýšlené pro tento vynález je zničení buněk nezbytných pro vývoj samčího květu, což vede k samčí sterilitě.These recombinant genes have been used as a means of inhibiting cell growth in a variety of organisms, from simple unicellular to complex multicellular organisms such as plants and animals. Using tissue- or cell-specific promoters, specific cells or tissues can be targeted and destroyed in complex organisms. One particular use contemplated for this invention is the destruction of cells necessary for male flower development, resulting in male sterility.

Vynález tedy poskytuje způsob prevence nebo inhibice růstu a vývoje rostlinných buněk založený na rekombinantních genech, které inhibují základní buněčnou funkci jako je dýchání nebo uspořádání mikrotubulů. Technika má široké použití u velkého množství zemědělských plodin, kde se vyžaduje inhibice konkrétních buněk nebo tkáně.The invention thus provides a method of preventing or inhibiting the growth and development of plant cells based on recombinant genes that inhibit a basic cellular function such as respiration or microtubule arrangement. The technique has wide application in a large number of agricultural crops where inhibition of specific cells or tissue is required.

Obzvláštnímu zájmu se těší inhibice samčí plodnosti u kukuřice pro produkci hybridů Fl in šitu. Koncept inhibice mitochondriální funkce jako mechanismu pro samčí sterilitu pochází z určitého předběžného výzkumu cytoplasmatické samčí sterility typu T u kukuřice (cms-T), který prokázal spojení mezi samčím sterilním fenotypem a mitochondriální dysfunkcí. Ačkoliv musí být ještě určen přímý kauzální vztah mezi mitochondriální dysfunkcí a cms-T, narůstající důkazy potvrzují, že jsou nezbytné plně funkční mitochondrie, zejména v tapetálních buňkách prašníků. Toto je kritické zejména během mikrosporogeneze, protože metabolické požadavky kladené na tapetální buňky mají za následek 40-násobné zvýšení počtu mitochondrií.Of particular interest is the inhibition of male fertility in maize for the production of Fl in situ hybrids. The concept of inhibition of mitochondrial function as a mechanism for male sterility comes from some preliminary research on T-type (cms-T) cytoplasmic male sterility in maize, which demonstrated a link between the male sterile phenotype and mitochondrial dysfunction. Although a direct causal relationship between mitochondrial dysfunction and cms-T has yet to be determined, increasing evidence confirms that fully functional mitochondria are essential, particularly in anther tapetal cells. This is particularly critical during microsporogenesis, as the metabolic demands placed on the tapetal cells result in a 40-fold increase in the number of mitochondria.

Vynález poskytuje tedy řadu negativních mutací, které působí v mitochondriích tak, že inhibují dýchání. Jsou-li exprimovány specificky v prašníkovém pletivu kukuřice, mají tyto mutace za následek samčí sterilní fenotyp.Thus, the invention provides a series of negative mutations that act in the mitochondria to inhibit respiration. When expressed specifically in maize anther tissue, these mutations result in a male sterile phenotype.

K porušení buněčné funkce se používá také expresi genů anebo β-tubulinu. Během normálního buněčného života je exprese tubulinových genů regulována jejich endogenními promotory a úzce souvisí s požadavky buněk na tyto proteiny, které jsou polymerizovány a složeny do mikrotubulů během růstu a vývoje ···· 0 0 0 0 rostliny. Expresí tubulinových genů neregulovaným způsobem za použití netubulinových promotorů v konkrétním pletivu nebo stádiu vývoje je porušena rovnováha mezi volnými tubulinovými monomery a molekulami, které jsou polymerizovány v mikrotubulech, což má za následek nestabilitu komplexu mikrotubulů a buněčnou dysfunkci. Tento účinek při expresi v buňkách tapeta nebo jiných buňkách prašníku způsobí, že jsou rostliny sterilní.Expression of genes or β-tubulin is also used to disrupt cell function. During normal cell life, the expression of tubulin genes is regulated by their endogenous promoters and is closely related to the requirements of cells for these proteins, which are polymerized and folded into microtubules during plant growth and development. By expressing tubulin genes in an unregulated manner using non-tubulin promoters in a particular tissue or developmental stage, the balance between free tubulin monomers and molecules that are polymerized in microtubules is disrupted, resulting in microtubule complex instability and cellular dysfunction. This effect, when expressed in tapetum cells or other anther cells, renders plants sterile.

Navrhuje se také použití krátké ko-suprese ve směru čtení dvou základních genů buněčného cyklu, např. cdc25 a ROA, k utlumení funkce. Tento účinek při expresi v tapetu nebo jiných buňkách prašníku způsobí, že jsou rostliny sterilní.The use of short co-suppression upstream of two essential cell cycle genes, eg cdc25 and ROA, is also proposed to silence function. This effect, when expressed in the tapetum or other anther cells, renders the plants sterile.

Způsob použitý pro transformaci rostlinných buněk není pro tento vynález obzvláště podstatný a může být použita jakákoliv metoda vhodná pro cílovou rostlinu. Transgenní rostliny se získají regenerací z transformovaných buněk. Z literatury jsou známy četné transformační postupy, jako je např. infekce za použití Agrobacterium tumefaciens nebo jeho plasmidu Ti, elektroporace, mikroinjekce rostlinných buněk a protoplastů, mikroprojektilová transformace a transformace pylové láčky. Pro plné detaily známých metod se odkazuje na literaturu.The method used to transform plant cells is not particularly essential to the present invention and any method suitable for the target plant may be used. Transgenic plants are obtained by regeneration from transformed cells. Numerous transformation procedures are known from the literature, such as infection using Agrobacterium tumefaciens or its Ti plasmid, electroporation, microinjection of plant cells and protoplasts, microprojectile transformation and pollen tube transformation. Reference is made to the literature for full details of known methods.

Nyní bude popsán vývoj a testování těchto rekombinantních genů jako porušovačů mitochondriální funkce v jednobuněčném organismu, kvasince. Bude také popsán mechanismus, kterým jsou tyto rekombinantních geny použity pro inhibici růstu a diferenciace buňky v transformované rostlině postupů je použít kvasinku jako identifikaci a optimalizaci rekombinantních genů proteinů, které porušují mitochondriální funkci, rostlinné buňky transformovány vybranými rekombinantními geny a budou z nich regenerovány celé rostliny.The development and testing of these recombinant genes as disruptors of mitochondrial function in a unicellular organism, yeast, will now be described. The mechanism by which these recombinant genes are used to inhibit the growth and differentiation of the cell in the transformed plant will also be described. The procedure is to use yeast as the identification and optimization of recombinant genes for proteins that disrupt mitochondrial function, plant cells transformed with selected recombinant genes, and whole plants will be regenerated from them. .

Cílem těchto modelový systém pro pro expresi Poté budou • ·The goal of these model system for for expression Then they will • ·

Popis obrázkůDescription of the picture

Obrázek 1 ukazuje Figure 1 shows sekvenci sequence cDNA cDNA specifickou specific pro for prašník, anther, nesenou plasmidem pMSIO Obrázek 2 ukazuje carried by plasmid pMSIO Figure 2 shows sekvenci sequence cDNA cDNA specifickou specific pro for tapetum, tapestry, nesenou plasmidem pMS14 Obrázek 3 ukazuje carried by plasmid pMS14 Figure 3 shows sekvenci sequence cDNA cDNA specifickou specific pro for prašník, anther,

nesenou plasmidem pMS18.carried by plasmid pMS18.

Obrázek 4 ukazuje sekvenci genu T-urfl3 (sekvence s identifikačním číslem 1) s primery Turf-1 (sekvence s identifikačním číslem 2) a Turf-2R (sekvence s identifikačním číslem 3), které jsou podtrženy.Figure 4 shows the sequence of the T-urfl3 gene (SEQ ID NO: 1) with primers Turf-1 (SEQ ID NO: 2) and Turf-2R (SEQ ID NO: 3) underlined.

Obrázek 5 ukazuje DNA kódující oblast 59 aminokyselin z genu ATP-2 z Nicotinia plumbaginifolia (sekvence s identifikačním číslem 4 a 5) s primery PREB-IB (sekvence s identifikačním číslem 6) a PREB-R (sekvence s identifikačním číslem 7.Figure 5 shows the DNA coding region of 59 amino acids from the ATP-2 gene of Nicotinia plumbaginifolia (SEQ ID NO: 4 and 5) with primers PREB-IB (SEQ ID NO: 6) and PREB-R (SEQ ID NO: 7.

Obrázek 6 ukazuje štěpné místo sekvence pre-β.Figure 6 shows the cleavage site of the pre-β sequence.

Obrázek 7 je mapa vektoru pCaMVI-,Ν.Figure 7 is a map of the pCaMVI-,Ν vector.

Obrázek 8 je mapa vektoru RMS17.Figure 8 is a vector map of RMS17.

Obrázek 9 je mapa vektoru pIE109.Figure 9 is a map of the pIE109 vector.

Obrázek 10 ukazuje promotorovou sekvenci MFS14 (sekvence s identifikačním číslem 8) s následujícími rysy:Figure 10 shows the promoter sequence of MFS14 (SEQ ID NO: 8) with the following features:

pozice 2198 začátek transkripce CCTACAA (souhlasný CTCATCA) pozice 2167 ATCCATT (možný motiv sekvence TATA) pozice 2141 CCAT (možný motiv sekvence CAAT) pozice 2233 začátek cDNA CACACAG pozice 2295 začátek translace GCAACAATGGCG (souhlasný TAAACAATGGCT).position 2198 start of transcription CCTACAA (consensus CTCATCA) position 2167 ATCCATT (possible TATA sequence motif) position 2141 CCAT (possible CAAT sequence motif) position 2233 start of cDNA CACACAG position 2295 start of translation GCAACAATGGCG (consensus TAAACAATGGCT).

Obrázek 11 je mapa vektoru RMS11.Figure 11 is a RMS11 vector map.

Obrázek 12 je mapa vektoru pMANT3.Figure 12 is a map of the pMANT3 vector.

Obrázek 13 ukazuje konstrukci vektorů pro transformaci kukuřičné buněčné linie.Figure 13 shows the construction of vectors for the transformation of a maize cell line.

• · • ·• · • ·

Obrázek 14 je graf ukazující počty transformovaných rostlin v různých pokusech.Figure 14 is a graph showing the numbers of transformed plants in different experiments.

Vynález bude nyní ilustrován následujícími příklady.The invention will now be illustrated by the following examples.

Příklady provedení vynálezuExamples of embodiments of the invention

Příklad 1Example 1

Sestrojení vektoru RMS17 pro transformaci kukuřiceConstruction of the RMS17 vector for maize transformation

Pro amplifikaci genu T-urfl3 z kukuřice cms-T (linieFor amplification of the T-urfl3 gene from cms-T maize (line

RW33:TMS) a mitochondriální cílové sekvence pre-β z Nicotiana plumbaginifolia se použila metoda polymerázové řetězové reakce - PCR. Vzorky DNA z rostlinného materiálu byly připraveny za použití metody popsané Edwardsem a kol. (Nucleic Acids Research, 1991, 19, 1349) .RW33:TMS) and the mitochondrial target sequence of pre-β from Nicotiana plumbaginifolia, the method of polymerase chain reaction - PCR was used. DNA samples from plant material were prepared using the method described by Edwards et al. (Nucleic Acids Research, 1991, 19, 1349).

Kompletní gen T-urfl3 byl amplifikován metodou PCR pomocí primerů turf-1 (5'ATCGGATCCATGATCACTACTTTCTTAAACCTTCCT-3', identifikačním číslem 2) (5'TAGTCTAGATCACGGTACTTGTACGCTATCGGT - 3', identifikačním číslem 3), které byly sekvence s a turf-2R sekvence s navrženy podle publikované sekvence (Dewey a kol., 1986, Cell, 44, 429-449). Podmínky PCR byly následující: 3 5 cyklů denaturace v 94°C po 0,8 min, nasednutí primerů v 65°C po 1 min a prodlužování řetězce v 72 °C po 2,5 min. Aby se napomohlo následnému klonování, byly primery pro PCR navrženy tak, že zavedly jedinečná restrikční místa BamHI a Xbal na 5' a 3' konce genu, v uvedeném pořadí. Pozice těchto primerů odpovídající sekvenci genu T-urfl3 je ukázána na obrázku 4.The complete T-urfl3 gene was amplified by PCR using primers turf-1 (5'ATCGGATCCATGATCACTACTTTCTTAAACCTTCCT-3', ID number 2) (5'TAGTCTAGATCACGGTACTTGTACGCTATCGGT - 3', ID number 3) and turf-2R sequence with designed by published sequence (Dewey et al., 1986, Cell, 44, 429-449). The PCR conditions were as follows: 3 5 cycles of denaturation at 94°C for 0.8 min, primer annealing at 65°C for 1 min and chain extension at 72°C for 2.5 min. To aid subsequent cloning, PCR primers were designed to introduce unique BamHI and XbaI restriction sites at the 5' and 3' ends of the gene, respectively. The position of these primers corresponding to the T-urfl3 gene sequence is shown in Figure 4.

Podobně byla amplifikována metodou PCR oblast 59 aminokyselin z genu ATP2 z Nicotiana plumbagini folia, která kóduje funkční mitochondriální cílovou sekvenci pre-β, pomocí primerů PREB-IB (5'ATCGGTACCGCCATGGCTTCTCGGAGGCTTCTCGCCT-3', • · • · · • · ·· · sekvence s identifikačním číslem 6) a PREB-R (5'ATCGGATCCCGCTGCGGAGGTAGCGTA-3', sekvence s identifikačním číslem 7) , které byly navrženy podle publikované sekvence (Boutry a kol., 1987, Nátuře, 328, 341). Podmínky pro PCR byly stejné jak je uvedeno výše, kromě teploty pro nasednutí primerů, která byla snížena na 60 °C. Aby se napomohlo následnému klonování, byly PREB-IB a PREB-2R navrženy tak, že zavedly jedinečná restrikční místa Kpnl a BamHI na 5' a 3' konce amplifikovaného fragmentu, v uvedeném pořadí. Pozice těchto primerů odpovídající genu ATP2 je ukázána na obrázku 5.Similarly, a 59 amino acid region from the Nicotiana plumbagini folia ATP2 gene, which encodes a functional mitochondrial target sequence pre-β, was amplified by PCR using the primers PREB-IB (5'ATCGGTACCGCCATGGCTTCTCGGAGGCTTTCCGCCT-3', • · • · · • · ·· · sequence with identification number 6) and PREB-R (5'ATCGGATCCCGCTGCGGAGGTAGCGTA-3', sequence with identification number 7), which were designed according to the published sequence (Boutry et al., 1987, Nature, 328, 341). PCR conditions were the same as above, except the temperature for primer annealing was reduced to 60°C. To aid subsequent cloning, PREB-IB and PREB-2R were designed by introducing unique KpnI and BamHI restriction sites at the 5' and 3' ends of the amplified fragment, respectively. The position of these primers corresponding to the ATP2 gene is shown in Figure 5.

Po amplifikaci v PCR byl fragment pre-B štěpen Kpnl aAfter PCR amplification, the pre-B fragment was digested with KpnI a

BamHI, aby vznikly kohezivní konce, a byl klonován do odpovídajících míst vektoru pUC18 za vzniku plasmidu pPBl. PCR produkt TURF13 byl štěpen BamHI a Xbal a klonován na odpovídající místa v pPBl za vzniku plasmidu pPB2. V pPB2 je sekvence pre-β fúzována s genem T-urfl3 při dodržení čtecího rámce tak, že po expresi v rostlinné buňce je celý produkt transportován do mitochondrií. Štěpení sekvence pre-β v předpovězeném místě mezi zbytky 55 a 56 uvolní protein Turfl3, který na svém NH2 konci obsahuje další 4 zbytky ze sekvence pre-β (obrázek 6).BamHI to create cohesive ends and was cloned into the corresponding sites of the pUC18 vector to generate plasmid pPB1. The TURF13 PCR product was digested with BamHI and XbaI and cloned into the corresponding sites in pPB1 to form plasmid pPB2. In pPB2, the pre-β sequence is fused to the T-urfl3 gene in frame so that upon expression in the plant cell, the entire product is transported into mitochondria. Cleavage of the pre-β sequence at the predicted site between residues 55 and 56 releases the Turf13 protein, which contains an additional 4 residues from the pre-β sequence at its NH 2 terminus (Figure 6).

Genová fúze pre^/T-urf13 v pBB2 je odstraněna štěpením enzymy Kpnl a Balí, opatřena tupými konci a klonována do plasmidu pCAMVIxN (obrázek 7) , který byl naštěpen BamHI a opatřen tupými konci za vzniku pPB3. Tento klonovací krok umístí fúzovaný gen pre^/T-urf13 pod transkripční kontrolu promotoru CAMV 35S. V tomto rekombinantním genu je přítomen intron Adhl, aby zvýšil úroveň exprese v kukuřičných buňkách (Mascarenhas et al., 1990, Plant Mol. Biol., 15, 913-920) a sekvence nos 3' poskytuje místo pro přidání polyA. Aby vznikl konečný vektor RMS17 (obrázek 8), byla zavedena selekční kazeta PAT z pIE109 (obrázek 9) jako fragment EcdRI do jedinečného místa BcoRI v pPB3, což umožňuje in vitro selekci transformovaných kukuřičných buněk na médiu s bialaphosem.The pre^/T-urf13 gene fusion in pBB2 is removed by KpnI and Bali digestion, blunt-ended, and cloned into plasmid pCAMVI x N (Figure 7), which has been digested with BamHI and blunt-ended to form pPB3. This cloning step places the pre^/T-urf13 fusion gene under the transcriptional control of the CAMV 35S promoter. In this recombinant gene, an Adhl intron is present to increase the expression level in maize cells (Mascarenhas et al., 1990, Plant Mol. Biol., 15, 913-920) and the nos 3' sequence provides a site for the addition of polyA. To create the final RMS17 vector (Figure 8), the PAT selection cassette from pIE109 (Figure 9) was introduced as an EcdRI fragment into the unique BcoRI site in pPB3, allowing in vitro selection of transformed maize cells on bialaphos medium.

• · • ·• · • ·

Příklad 2Example 2

Transformace buněk BMS kukuřice plasmidem RMS17Transformation of maize BMS cells with plasmid RMS17

Cílem tohoto pokusu bylo ukázat, že exprese rekombinantního genu prep/T-urfl3 v kukuřičných buňkách BMS pěstovaných v tkáňové kultuře vede ke snížení životaschopnosti buněk, jak bylo měřeno stanovením transgenních kalusů po transformaci. Vektor RMS17 (obrázek 8) byl do kukuřičných buněk BMS pěstovaných v tkáňové kultuře zaveden pomocí transformační techniky užívající mikrovláken karbidu křemíku. Příprava mikrovláken karbidu křemíkuThe aim of this experiment was to show that expression of the prep/T-urf13 recombinant gene in BMS maize cells grown in tissue culture results in a decrease in cell viability as measured by transgenic calli assays after transformation. The RMS17 vector (Figure 8) was introduced into BMS maize cells grown in tissue culture using a transformation technique using silicon carbide microfibers. Preparation of silicon carbide microfibers

Se suchými mikrovlákny se vždy zacházelo v digestoři, aby se předešlo vdechnutí a možnému poškození plic. Tato vlákna mohou být karcinogenní, protože mají podobné vlastnosti jako azbest. Vlákna Silar SC-9 byla poskytnuta Advanced Composite Materiál Corporation Greer, South Carolina, USA. Sterilní suspenze vláken byla připravena následujícím postupem. Přibližně 50 mg vláken bylo vloženo do předem zvážené 1,5 ml zkumavky Eppendorf, která byla uzavřena a zvážena znovu, aby se určila hmotnost vláken. Víčko zkumavky bylo proděravěno injekční jehlou a přikryto dvojitou vrstvou hliníkové folie. Zkumavka byla sterilizována v autoklávu (121°C, 15 psi, 20 minut) a usušena. Pro každý pokus se připravily čerstvé suspenze vláken, protože bylo publikováno, že úroveň transformace DNA byla vyšší při použití čerstvých roztoků než při použití roztoků starších. 5 % (hmotnost/objem) suspenze vláken byla připravena ve sterilní deionizované vodě. Seuspenze se několik sekund třepala na mikrotřepačce, aby se vlákna resuspendovala těsně před použitím.Dry microfibers were always handled in a fume hood to avoid inhalation and possible lung damage. These fibers can be carcinogenic because they have similar properties to asbestos. Silar SC-9 fibers were provided by Advanced Composite Material Corporation Greer, South Carolina, USA. A sterile suspension of fibers was prepared by the following procedure. Approximately 50 mg of fibers were placed in a preweighed 1.5 ml Eppendorf tube, which was sealed and reweighed to determine the weight of the fibers. The lid of the test tube was pierced with an injection needle and covered with a double layer of aluminum foil. The tube was autoclaved (121°C, 15 psi, 20 minutes) and dried. Fresh fiber suspensions were prepared for each experiment, as it has been reported that the level of DNA transformation was higher when fresh solutions were used than when older solutions were used. A 5% (w/v) fiber suspension was prepared in sterile deionized water. The suspension was shaken for several seconds on a microshaker to resuspend the fibers just before use.

Přenos (transformace) DNA do buněkTransfer (transformation) of DNA into cells

Všechny postupy se prováděly v digestoři s laminárním prouděním vzduchu za aseptických podmínek. DNA byla do buněk transformována následujícím postupem. Specifické modifikace této metody jsou v textu vyznačeny.All procedures were performed in a laminar air flow hood under aseptic conditions. DNA was transformed into cells using the following procedure. Specific modifications of this method are indicated in the text.

···· 0 · 00 · Β • · « 0 · · « ·· » 4 • 0 ···*···· 0 · 00 · Β • · « 0 · · « ·· » 4 • 0 ···*

0 <0 <

0 000 00

Buňky a suspenze mikrovláken byly pipetovány za použití pipetových špiček Gilson s odříznutým koncem. Do sterilní zkumavky Eppendorf se odměřilo 100 μΐ čerstvého média BMS (viz příloha 1) . K němu se přidalo 40 μΐ 5 % (hmotnost/objem) suspenze vláken a 25 μΐ (1 mg/ml) plasmidové DNA, vše bylo protřepáno na stolní mikrotřepačce (Vortex Genie 2 Scientific Industries, lne) nejvyšší rychlostí po dobu 60 s. Okamžitě po protřepání bylo přidáno 500 μΐ buněčné suspenze, tj . 250 μΐ buněk (po stočení). Zkumavka Eppendorf byla poté uzavřena víčkem a protřepána nejvyšší rychlostí po dobu 60 s ve vzpřímené pozici. Pro transformaci dalších buněčných linií byl použit stejný postup.Cells and microfiber suspensions were pipetted using cut-off Gilson pipette tips. 100 μΐ of fresh BMS medium was measured into a sterile Eppendorf tube (see Appendix 1). To this was added 40 μΐ of a 5% (w/v) fiber suspension and 25 μΐ (1 mg/ml) of plasmid DNA, all shaken on a benchtop microshaker (Vortex Genie 2 Scientific Industries, lne) at maximum speed for 60 s. Immediately after shaking, 500 μΐ of the cell suspension was added, i.e. 250 μΐ cells (after spinning). The Eppendorf tube was then capped and shaken at top speed for 60 s in an upright position. The same procedure was used to transform other cell lines.

V tomto pokuse byly zahrnuty tři kontroly. Dva pozitivní kontrolní vektory, z nichž pPG3 obsahoval samotnou selekční kazetu PAT, a RMS15, který je totožný s RMS17 kromě toho, že gen T-urfl3 je nahrazen genem mitochondriálního rozpojovacího proteinu, UCP, který nemá žádný účinek na buňky BMS pěstované v tkáňové kultuře. V obou rekombinantních genech je přítomná cílová sekvence pre-β. Negativní kontrolu, která by měla kompletně zabránit založení transgenních kalusů, poskytl RMS13, který je totožný s RMS17 kromě toho, že fúzovaný gen preP/T-urfl3 je nahrazena genem cytotoxické ribonukleázy, barnázy.Three controls were included in this experiment. Two positive control vectors, of which pPG3 contained the PAT selection cassette alone, and RMS15, which is identical to RMS17 except that the T-urfl3 gene is replaced by the mitochondrial uncoupling protein gene, UCP, which has no effect on BMS cells grown in tissue culture . A pre-β target sequence is present in both recombinant genes. A negative control that should completely prevent establishment of transgenic calli was provided by RMS13, which is identical to RMS17 except that the preP/T-urf13 fusion gene is replaced by the cytotoxic ribonuclease gene, barnase.

Průměrný počet transgenních kalusů založených v tomto pokuse je ukázán v tabulce 1.The average number of transgenic calli established in this experiment is shown in Table 1.

TABULKA 1TABLE 1

Počet transgenních kalusů v pokusu Number of transgenic calli in the experiment Vektor Vector Průměr Diameter 1 1 2 2 3 3 pPG3 pPG3 - - 44 44 33 33 39 39 RMS13 RMS13 0 0 0 0 0 0 0 0 RMS15 RMS15 40 40 30 30 43 43 38 38 RMS17 RMS17 12 12 13 13 23 23 16 16

·· ΒΒ·· ΒΒ

Β Β Β ΒΒ Β Β Β

Β Β·Β • ΒΒΒΒ ΒΒ Β·Β • ΒΒΒΒ Β

Tato data ukazují, že vzhledem ke dvěma pozitivním kontrolám, pPG3 a RMS15, vede exprese fúzovaného genu prep/Turfl3 k významnému snížení (p < 5 % nebo lépe) v zakládání transgenních kalusů. Toto naznačuje, že protein T-urfl3 zacílený na mitochondrie, má na buňky škodlivý účinek, pravděpodobně díky zhoršení mitochondriální funkce. Exprese cytotoxické ribonukleázy, barnázy, kompletně ruší založení transformovaných kalusů.These data show that, relative to the two positive controls, pPG3 and RMS15, expression of the prep/Turf13 fusion gene results in a significant reduction (p < 5% or better) in the establishment of transgenic calli. This suggests that the mitochondria-targeted protein T-urf13 has a deleterious effect on cells, possibly through impairment of mitochondrial function. Expression of the cytotoxic ribonuclease, barnase, completely abrogates the establishment of transformed calli.

Příklad 3Example 3

Sestrojení vektoru RMS11 pro transformaci kukuřiceConstruction of the RMS11 vector for maize transformation

RMS11 je transformační vektor, ve kterém je exprese fúzovaného genu pre-P/T-urf13 řízena promotorem z kukuřičného tapeta MFS14. Sekvence promotoru MFS14 a nepřekládané zaváděcí oblasti od pozice -2198 do +97 je ukázána na obrázku 10. Tímto způsobem je exprese proteinu T-urfl3 omezena na buňky tvořící pyl a není v celé rostlině.RMS11 is a transformation vector in which the expression of the pre-P/T-urf13 fusion gene is driven by the promoter from the maize tapetum MFS14. The sequence of the MFS14 promoter and the untranslated insertion region from position -2198 to +97 is shown in Figure 10. In this way, expression of the T-urf13 protein is restricted to the pollen-forming cells and not throughout the plant.

Aby se sestrojil RMS11, byl fragment Kpnl-Sall z pPB2 obsahující fúzovaný gen pre-p/T-urf13 opatřen tupými konci a vložen do tupě zakončeného místa BamHI plasmidu pSC9 za vzniku pPB4 . V pPB4 je fúzovaný gen pre-P/T-urf13 nyní umístěn mezi pozicemi -152 až +97 promotorového fragmentu a 3' polyadenylační sekvencí nos. Tato kompletní kazeta byla z pPB4 odstraněna štěpením Sad a FcoRI a klonována do odpovídajících míst pSC7 za vzniku plasmidu pB5. pSC7 obsahuje oblast pozic -153 až -5800 promotoru MFS14, takže vložení fragmentu SacI-EcoRI z pPB4 obnoví plný promotor MFS14 o délceTo construct RMS11, the KpnI-Sall fragment from pPB2 containing the pre-p/T-urf13 fusion gene was blunt-ended and inserted into the blunt-ended BamHI site of plasmid pSC9 to generate pPB4. In pPB4, the pre-P/T-urf13 fusion gene is now located between positions -152 to +97 of the promoter fragment and the 3' polyadenylation sequence nos. This complete cassette was removed from pPB4 by Sad and FcoRI digestion and cloned into the corresponding sites of pSC7 to form plasmid pB5. pSC7 contains the -153 to -5800 region of the MFS14 promoter, so insertion of the SacI-EcoRI fragment from pPB4 restores the full-length MFS14 promoter

5,8 kb.5.8 kb

RMS11 (obrázek 11) byl dokončen vložením in vitro selekční kazety PAT z plE109 do jedinečného místa EcoRI plasmidu pPB5.RMS11 (Figure 11) was completed by inserting the in vitro PAT selection cassette from plE109 into the unique EcoRI site of plasmid pPB5.

• ·• ·

Příklad 4Example 4

Transformace buněk kukuřice vektorem RMS11 metodou bombardování mikročásticemi, která vede ke vzniku trvale transformovaných rostlin se samčí sterilitouTransformation of maize cells with the RMS11 vector by the microparticle bombardment method resulting in permanently transformed plants with male sterility

K transformování regenerovatelné buněčné kultury kukuřice metodou bombardování mikročásticemi byl použit vektor RMS11. Rostlinný materiálThe RMS11 vector was used to transform a regenerable maize cell culture by microparticle bombardment. Plant material

Embryogenní drobivý kalus typu II byl indukován z nezralých zygotických embryí vyjmutých z rostlin A188, buď pěstovaných ve skleníku nebo na poli, a to 10 až 12 dní po opylení pylem z inbrední linie B73. Médium použité pro indukci a udržování kalusu bylo založeno na médiu typu N6 podle Armstronga a Greena. Médium obsahovalo 6 mM L-prolin, 2 % (hmotnost/objem) sacharózu, 2 mg/1 2,4-dichlorfenoxyoctovou kyselinu (2,4-D) a 3 % (hmotnost/objem) Gelrit (Obchodní značka, Caroline Biological Supply), a mělo hodnotu pH 6,0. Kalus byl pěstován 4 týdny před tím, než byla indukována suspenzní kultura. Suspenzní kultura byla indukována v tekutém médiu typu MS obsahujícím 100 mg/1 myoinositolu, 2 mg/1 2,4-D, 2 mg/1 1-naftalenoctové kyseliny (NAA), 6 mM L-prolin, 200 ml/1 hydrolyzátu kaseinu (Difco Laboratories), 3 % (hmotnost/objem) sacharózu a 5 % (objemových) kokosového mléka (Difco Laboratories), a mělo hodnotu pH 6,0. Buněčné suspenze byly udržovány v médiu ve 125 ml Erlemeyerových baňkách při teplotě 28 °C ve tmě na třepačce s rychlostí 125 rpm. Suspenze byly každého 3,5 dne pasážovány tak, že bylo odebráno 3 ml (po stočení) buněk a 10 ml starého média a přeneseno do 20 ml čerstvého kultivačního média. Suspenzní kultury byly v době, kdy byly použity pro bombardování, staré 6 měsíců až 1 rok. V některých transformacích byly použity suspenzní kultury předtím uchowávané kryoprezervací a obnovené.Embryogenic friable callus type II was induced from immature zygotic embryos removed from A188 plants, either grown in the greenhouse or in the field, 10 to 12 days after pollination with pollen from the inbred line B73. The medium used for callus induction and maintenance was based on Armstrong and Green type N6 medium. The medium contained 6 mM L-proline, 2% (w/v) sucrose, 2 mg/l 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and 3% (w/v) Gelrit (Trademark, Caroline Biological Supply ), and had a pH value of 6.0. The callus was grown for 4 weeks before the suspension culture was induced. Suspension culture was induced in liquid MS-type medium containing 100 mg/l myoinositol, 2 mg/l 2,4-D, 2 mg/l 1-naphthaleneacetic acid (NAA), 6 mM L-proline, 200 ml/l casein hydrolyzate (Difco Laboratories), 3% (w/v) sucrose, and 5% (v/v) coconut milk (Difco Laboratories), and had a pH value of 6.0. Cell suspensions were maintained in medium in 125 mL Erlemeyer flasks at 28°C in the dark on a 125 rpm shaker. Suspensions were passaged every 3.5 days by removing 3 ml (after spinning) of cells and 10 ml of old medium and transferring to 20 ml of fresh culture medium. The suspension cultures were 6 months to 1 year old at the time they were used for bombardment. In some transformations suspension cultures previously cryopreserved and reconstituted were used.

Bombardování mikročásticemi • ·Microparticle Bombardment • ·

Buněčné suspenze byly přefiltrovány přes 1,0 mm a pak 0,5 mm sítko. Buňky o celkovém objemu 0,2 ml (po stočení), které prošly sítkem, byly resuspendovány v 5 ml média a rovnoměrně naneseny na disk filtračního papíru Whatman 4 pomocí vakuové filtrace v mikroanalytickém Precipitace plasmidové DNA wolframové mikročástice, a držáku o průměru v nadšroubovicové poté bombardováníCell suspensions were filtered through a 1.0 mm and then a 0.5 mm sieve. Cells of a total volume of 0.2 ml (after vortexing) that had passed through the sieve were resuspended in 5 ml of medium and uniformly spread on a disc of Whatman 4 filter paper by vacuum filtration in a microanalytical Precipitation of plasmid DNA tungsten microparticle, and a diameter holder in a superhelical then bombing

4,7 cm. formě na použitím přístroje PDS-100 Biolistics (Obchodní značka, DuPont) byly provedeny v podstatě tak, jak popisuje výrobce. Cílové destičky byly bombardovány jednou.4.7 cm. form using the PDS-100 Biolistics (Trademark, DuPont) instrument was performed essentially as described by the manufacturer. Target tiles have been bombarded once.

Selekce transformovaných buněk a regenerace rostlinSelection of transformed cells and regeneration of plants

Každý disk filtračního papíru s buňkami byl po bombardování přenesen na médium typu N6 obsahující 100 mg/1 myoinositolu, 2 mg/1 2,4-D, 3 % (hmotnost/objem) sacharózu a 0,3 % (hmotnost/objem) Gelrit, a mělo pH 6,0. Pro selekci byl využit gen NPTII, a proto bylo médium doplněno kanamycin sulfátem v koncentraci 200 mg/1. Disky byly přeneseny na čerstvé médium se selekčním činidlem po 7 dnech, a pak opět po 14 dnech. Suspense pak byla rozdělena na 2 stejné části a každá byla přenesena na Petriho misku 100x20 mm s 20 ml pevného média obsahujícího selekční činidlo a 3 % Gelrit (hmotnost/objem). Po 2 až 5 týdnech byly rychle rostoucí, a tedy pravděpodobně transformované, kalusy přemístěny na čerstvé selektivní médium. Rostliny byly z kalusu regenerovány tím, že se kalusy přesadily na médium typu MS obsahující 1 g/1 myoinositolu, 1 mg/1 NAA, 6 % (hmotnost/objem) sacharózu a 3 % (hmotnost/objem) Gelrit, mělo pH 6,0. Po dalších 2 až 3 týdnech byly kalusy přesazeny na MS médium obsahující 0,25 mg/1 NAA a 3 % (hmotnost/objem) sacharózu a přemístěny na světlo, kde se začalo objevovat klíčení embryí. Poté byly rostlinky pěstovány na médiu typu MS poloviční koncentrace obsahujícím 500 mg/1 myoinositolu, 3 % (hmotnost/objem) sacharózu a 0,3 % Gelrit a mělo pH 6,0 a to po dobu 1 až 2 týdnů před tím, než byly přesazeny do skleníku.After bombardment, each filter paper disk with cells was transferred to N6 medium containing 100 mg/1 myoinositol, 2 mg/1 2,4-D, 3% (w/v) sucrose, and 0.3% (w/v) Gelrit , and had a pH of 6.0. The NPTII gene was used for selection, and therefore the medium was supplemented with kanamycin sulfate at a concentration of 200 mg/1. Discs were transferred to fresh medium with selection reagent after 7 days, and then again after 14 days. The suspension was then divided into 2 equal portions and each was transferred to a 100x20 mm petri dish with 20 ml of solid medium containing the selection agent and 3% Gelrit (w/v). After 2 to 5 weeks, rapidly growing, and thus presumably transformed, calli were transferred to fresh selective medium. Plants were regenerated from callus by transplanting calli onto MS-type medium containing 1 g/l myoinositol, 1 mg/l NAA, 6% (w/v) sucrose, and 3% (w/v) Gelrit, pH 6, 0. After another 2 to 3 weeks, the calli were transplanted onto MS medium containing 0.25 mg/1 NAA and 3% (w/v) sucrose and transferred to light, where embryo germination began to occur. Plants were then grown on half-strength MS medium containing 500 mg/l myoinositol, 3% (w/v) sucrose, and 0.3% Gelrit at pH 6.0 for 1 to 2 weeks before being transplanted into the greenhouse.

• · • ·• · • ·

Po přesazení do skleníku byla každá rostlina z nezávisle transformovaného klonu testována na přítomnost rekombinantního genu MFS14/pre-B/T-urf13 pomocí polymerázové řetězové reakce (PCR) . DNA byly izolována z malých kousků listového pletiva metodou dle Edwardse et al. , (1991, Nucleic Acid Research 19, 1349) . Tato DNA pak byla užita v PCR s oligonukleotidovými primery 14-SA (5'-AGACGCTGAGCTCAAGGACGTGA-3', sekvence s identifikačním číslem 9) a turf-2R (viz příklad 1).After transplanting to the greenhouse, each plant from an independently transformed clone was tested for the presence of the recombinant MFS14/pre-B/T-urf13 gene by polymerase chain reaction (PCR). DNA was isolated from small pieces of leaf tissue by the method of Edwards et al. , (1991, Nucleic Acids Research 19, 1349). This DNA was then used in PCR with oligonucleotide primers 14-SA (5'-AGACGCTGAGCTCAAGGACGTGA-3', SEQ ID NO: 9) and turf-2R (see Example 1).

V době kvetu byly rostliny z každého nezávisle transformovaného klonu vizuálně hodnoceny ve skleníku podle stupnice vyvinuté pro hodnocení linií se samčí sterilitou (viz tabulka 2) . Rostliny hodnocené stupněm 4 a níže jsou funkčně sterilní. Hodnocení nezávislých klonů pozitivních v PCR jako kumulativní skóre je ukázáno v tabulce 3 a porovnáno s linií kukuřice, která vznikla transformací bombardováním plasmidem RMS11, ale byla v PCR negativní.At flowering, plants from each independently transformed clone were visually scored in the greenhouse according to a scale developed for scoring male-sterility lines (see Table 2). Plants rated grade 4 and below are functionally sterile. The evaluation of independent PCR-positive clones as a cumulative score is shown in Table 3 and compared to a maize line that was generated by RMS11 plasmid bombardment transformation but was PCR-negative.

Sterilní rostliny byly zpětně kříženy pylem z fertilních netransgenních rostlin BE70. Semena vzniklá jedním takovým křížením (klon YK23, rostliny 5xBE70) byla vyseta ve skleníku a rostliny ponechány do květu. Přítomnost rekombinantní molekuly MFS14/pre-B/T-urf13 byla vyhodnocena pomocí PCR a testem PAT (který hodnotí přítomnost selektovatelného markéru použitého při transformaci). Hodnocení fertility těcto rostlin ukazuje tabulka 4. Nežádoucí, v PCR negativní rostliny, byly ze skleníku odstraněny ještě před kvetením. Rostliny 1 a 2 měly nejednoznačný výsledek PCR testu a byly ponechány ve skleníku až do kvetení. Rostlina 12 byla udržována jako kontrola. Jak je vidět v tabulce 4, 6 rostlin z potomstva bylo sterilních, a tato sterilita korelovala s přítomností vneseného transgenu, jak bylo potvrzeno testem PCR a PAT. To je v souladu s přítomností jediného transgenního lokusu zodpovědného za sterilitu.Sterile plants were backcrossed with pollen from fertile non-transgenic BE70 plants. The seeds resulting from one such cross (clone YK23, 5xBE70 plants) were sown in the greenhouse and the plants were allowed to flower. The presence of the recombinant MFS14/pre-B/T-urf13 molecule was assessed by PCR and the PAT assay (which assesses the presence of a selectable marker used in transformation). The evaluation of the fertility of these plants is shown in Table 4. Undesirable, PCR-negative plants were removed from the greenhouse before flowering. Plants 1 and 2 had an equivocal PCR test result and were left in the greenhouse until flowering. Plant 12 was maintained as a control. As seen in Table 4, 6 of the progeny plants were sterile, and this sterility correlated with the presence of the introduced transgene as confirmed by PCR and PAT. This is consistent with the presence of a single transgenic locus responsible for sterility.

TABULKA 2TABLE 2

Klasifikace prašníků (podle L.M. Josephsona)Classification of anthers (according to L.M. Josephson)

Třída 0 Class 0 Žádné prašníky nejsou vyvinuty No anthers are developed Třída 1 Class 1 Je vyvinuta méně než polovina prašníků a všechny jsou malé, suché a tvrdé, nepráší pyl Less than half of the anthers are developed and all are small, dry and hard, not producing pollen Třída 2 Class 2 Většina prašníků je vyvinuta, ale všechny jsou malé, suché a tvrdé, nepráší pyl Most of the anthers are developed, but all are small, dry and hard, and do not produce pollen Třída 3 Class 3 Jsou vyvinuty částečně fertilní prašníky, práší trochu pylu, poměr vyvinutých prašníků je vysoce variabilní Partially fertile anthers are developed, dust a little pollen, the ratio of developed anthers is highly variable Třída 4 Class 4 Lehce abnormální prašníky, vyvinuty přibližně na 75 až 100 procent Anthers slightly abnormal, developed approx to 75 to 100 percent Třída 5 Class 5 Normální prašníky a plně fertilní Anthers normal and fully fertile

Rostliny kukuřice spadající do třídy 4 a 5 byly považovány za fertilní.Maize plants falling into class 4 and 5 were considered fertile.

TABULKA 3TABLE 3

Klon A clone počet rostlin number of plants stav fertility fertility status P.C.R P.C.R WK23 WK23 2 2 0 0 + + 3 3 3 3 + + WK23 WK23 2 2 0 0 + + YK23 YK23 3 3 0 0 + + 1 1 4 4 + + YE23 YE23 4 4 5 5 - -

TABULKA 4TABLE 4

ROSTLINA PLANT TEST PCR PCR TEST TEST PAT PAT TEST STAV FERTILITY FERTILITY STATUS YK23/5/1 YK23/5/1 + /- + /- - - 0 0 YK23/5/2 YK23/5/2 + /- + /- + + 0 0 YK23/5/3 YK23/5/3 - - ODSTRANĚNO REMOVED YK23/5/4 YK23/5/4 - - ODSTRANĚNO REMOVED YK23/5/5 YK23/5/5 ŽÁDNÉ KLÍČENÍ NO GERMINATION YK23/5/6 YK23/5/6 + + + + 1 1 YK23/5/7 YK23/5/7 + + + + 0 0 YK23/5/8 YK23/5/8 - - ODSTRANĚNO REMOVED YK23/5/9 YK23/5/9 + + + + 0 0 YK23/5/10 YK23/5/10 - - ODSTRANĚNO REMOVED YK23/5/11 YK23/5/11 + + + + 0 0 YK23/5/12 YK23/5/12 - - - - 5 5

Přiklad 5Example 5

Konstrukce vektoru pRMS-23 pro transformaci kukuřiceConstruction of pRMS-23 vector for maize transformation

Zkoušelo se, zda exprese, souhlasně se směrem čtení, krátké rekombinantní molekuly DNA odvozené z genu pro adenin nukleotid translokátor (ANT) kukuřice vede k poruše růstu buněk kukuřice. Fragment z kukuřičného genu ANT byl izolován metodou PCR a oligonukleotidových primerů navržených podle sekvence kukuřičného genu, který publikoval Bathgate et al. (1989, Eur. J. Biochem., 83, 303-310).It was tested whether expression, upstream of a short recombinant DNA molecule derived from the maize adenine nucleotide translocator (ANT) gene, resulted in impaired growth of maize cells. A fragment from the maize ANT gene was isolated by PCR and oligonucleotide primers designed according to the sequence of the maize gene published by Bathgate et al. (1989, Eur. J. Biochem., 83, 303-310).

Fragment genu ANT byl amplifikován pomocí primerů MANT-1 (5'-ATGCCCGGGCTTGCAATGTCTGTTAGCGGTGGCATCA-3', sekvence s identifikačním číslem 10) a MANT-2RB (5'ATGCCCGGGCGATGGGGTAAGATGCAAGACCA-3', sekvence s identifikačním číslem 11). Podmínky pro PCR byly: 35 cyklů složených z denaturace při 94 °C po 0,8 min, nasednutí primerů při 65 °C po 1 min a prodlužování řetězce při 72 °C po 2,5 min. Kvůli usnadnění klonování byly primery pro PCR navrženy tak, že vnesly jedinečné restrikční místo Smál na 5' i 3' konec klonovaného genu. Sekvence kukuřičného genu ANT byla publikována v Eur. J. Biochem. (1989) 183, 303-310. Sekvence primeru MANT-1 odpovídá sekvenci ze začátku kódující sekvence genu a sekvence MANT-2R leží blízko konce genu.The ANT gene fragment was amplified using primers MANT-1 (5'-ATGCCCGGGCTTGCAATGTCTGTTAGCGGTGGCATCA-3', SEQ ID NO: 10) and MANT-2RB (5'ATGCCCGGGCGATGGGGTAAGATGCAAGACCA-3', SEQ ID NO: 11). PCR conditions were: 35 cycles consisting of denaturation at 94°C for 0.8 min, primer annealing at 65°C for 1 min and extension at 72°C for 2.5 min. To facilitate cloning, PCR primers were designed to introduce a unique Smα1 restriction site at both the 5' and 3' ends of the cloned gene. The sequence of the maize ANT gene was published in Eur. J. Biochem. (1989) 183, 303-310. The MANT-1 primer sequence corresponds to the sequence at the beginning of the coding sequence of the gene, and the MANT-2R sequence lies near the end of the gene.

Po proběhnutí PCR, ve které vznikl fragment DNA očekávané velikosti 1050 bp, byla DNA naštěpena Smál a fragment byl subklonován do místa Smál plasmidu pUC18, čímž vznikl plasmid pojmenovaný pMANTl. Následovalo zavedení fragmentu SacI-EcoRI polyadenylační signální sekvence ze 3' konce genu nos do 3' konce klonovaného genu ANT, a tak vznikl plasmid pMANT2. Dále byl vložen fragment HindiII-BamHI nesoucí 35s promotor CaMV a intron ADH1 z pCaMVIJSI (obr. 5) do příslušných míst pMANT2, a tím vznikl pMANT3. Konstrukce pRMS-23 (obr.12) byla ukončena vložením genové kazety PAT z plasmidu pIE109 (obr.7), umožňující in vitro selekci, do jedinečného místa EcoRI plasmidu pMANT3.After PCR, which produced a DNA fragment of the expected size of 1050 bp, the DNA was cleaved with Smal and the fragment was subcloned into the Smal site of plasmid pUC18, resulting in a plasmid named pMANT1. This was followed by the introduction of a fragment of the SacI-EcoRI polyadenylation signal sequence from the 3' end of the nos gene into the 3' end of the cloned ANT gene, and thus plasmid pMANT2 was created. Next, a HindiII-BamHI fragment carrying the 35s CaMV promoter and the ADH1 intron from pCaMVIJSI (Fig. 5) was inserted into the respective sites of pMANT2, resulting in pMANT3. The construction of pRMS-23 (Fig. 12) was completed by inserting the PAT gene cassette from plasmid pIE109 (Fig. 7), enabling in vitro selection, into the unique EcoRI site of plasmid pMANT3.

Příklad 6Example 6

Transformování buněk BMS z kukuřice plasmidem pRMS-23Transformation of maize BMS cells with plasmid pRMS-23

Cílem tohoto pokusu bylo ukázat, že exprese plasmidu pRMS-23 v kultivovaných buňkách BMS kukuřice snižuje životaschopnost buněk, měřenou jako schopnost zakládat transgenní kalusy jako důsledek transformace. Vektorové DNA byly vneseny do buněk BMS v buněčné kultuře technikou, která pro transformaci využívá vláken karbidu křemíku, jak je popsáno v příkladu 2.The aim of this experiment was to show that expression of plasmid pRMS-23 in cultured maize BMS cells reduces cell viability, measured as the ability to establish transgenic calli as a consequence of transformation. Vector DNAs were introduced into BMS cells in cell culture by a technique that uses silicon carbide filaments for transformation as described in Example 2.

Po transformaci plasmidem pRMS-23 byl stanoven průměrný počet transgenních kalusů relativně vzhledem k pozitivní kontrole transformované pPG3, která obsahovala samotnou in vitro selekční genovou kazetu (tab. 5). Data v tabulce • · ukazují, že exprese krátkého úseku genu translokátoru adenin nukleotidu významně snižuje vznik transgenních kalusů.After transformation with plasmid pRMS-23, the average number of transgenic calli was determined relative to the positive control transformed pPG3, which contained the in vitro selection gene cassette itself (Table 5). The data in Table • · show that the expression of a short segment of the adenine nucleotide translocator gene significantly reduces the formation of transgenic calli.

TABULKA 5TABLE 5

Počet transgenních kalusů v pokusu Number of transgenic calli in the experiment 1 1 2 2 3 3 Průměr Diameter Pokus 1 Attempt 1 pPG3 pPG3 16 16 20 20 22 22 19 19 pRMS-23 pRMS-23 3 3 4 4 3 3 3 3 Pokus 2 Attempt 2 pPG3 pPG3 49 49 48 48 40 40 46 46 pRMS-23 pRMS-23 10 10 15 15 23 23 16 16

Příklad 7Example 7

Konstrukce vektorů pTBR a pTBS pro transformování kukuřiceConstruction of pTBR and pTBS vectors for maize transformation

Zkoušelo se, zda neregulovaná exprese genu a-tubulinu povede k poruchám růstu buněk kukuřice. Byly připraveny dva rekombinantní geny, obsahující cDNA kódující α-tubulin ze dvou biotypů Eleusine indica. Plasmid pTBR (obr.13) obsahuje cDNA pro α-tubulin z biotypu Eleusine indica rezistentního k dinitroanilinu, který byl klonován jako Hinfl fragment s tupými konci do pCaMVIxN s tupými konci štěpeného BamHI (obr.7). pTBS (obr. 13) obsahuje cDNA pro α-tubulin z citlivého biotypu, který byl klonován stejně jako v případě popsaném pro pTBR.It was tested whether unregulated expression of the α-tubulin gene would lead to growth defects in maize cells. Two recombinant genes containing cDNA encoding α-tubulin from two biotypes of Eleusine indica were prepared. Plasmid pTBR (Fig. 13) contains the cDNA for α-tubulin from the dinitroaniline-resistant Eleusine indica biotype, which was cloned as a blunt-ended Hinfl fragment into pCaMVI x N blunt-ended BamHI digested (Fig. 7). pTBS (Fig. 13) contains the cDNA for α-tubulin from a susceptible biotype, which was cloned in the same way as described for pTBR.

Příklad 8Example 8

Transformace buněk BMS kukuřice vektory pTBR a pTBSTransformation of maize BMS cells with pTBR and pTBS vectors

Cílem pokusu bylo ukázat, že exprese pTBR a pTBS v kultivovaných buňkách BMS kukuřice vede ke snížení životaschopnosti buněk vyjádřené jako schopnost zakládat po • » transformaci transgenní kalusy. Vektorové DNA byly vneseny do buněk BMS v buněčné kultuře technikou, která pro transformaci využívá vláken karbidu křemíku, jak je popsáno v příkladu 2.The aim of the experiment was to show that the expression of pTBR and pTBS in cultured maize BMS cells leads to a decrease in cell viability expressed as the ability to establish a transgenic callus after • » transformation. Vector DNAs were introduced into BMS cells in cell culture by a technique that uses silicon carbide filaments for transformation as described in Example 2.

Po transformaci vektory pTBR a pTBS byl stanoven průměrný počet transgenních kalusů relativně vzhledem k pozitivní kontrole transformované pPG3, která obsahovala samotnou in vitro selekční genovou kazetu (obr. 14). Data v tabulce ukazují, že neregulovaná exprese genu pro α-tubulin z obou biotypů Eleusine indica významně snižuje vznik transgenních kalusů.After transformation with pTBR and pTBS vectors, the average number of transgenic calli was determined relative to the positive control transformed pPG3, which contained the in vitro selection gene cassette alone (Fig. 14). The data in the table show that unregulated expression of the α-tubulin gene from both biotypes of Eleusine indica significantly reduces the formation of transgenic calli.

Průmyslová využitelnostIndustrial applicability

Předkládaný vynález se týká způsobu produkce rostlin se samčí sterilitou tak, že se využije gen, který se může v rostlině exprimovat a inhibuje základní buněčnou funkci, a tím poruší úplnou expresi vybraných znaků rostlin. Vynález poskytuje způsob inhibice růstu a vývoje rostlinných buněk založený na rekombinantních genech, jejichž exprese vede k inhibici základní buněčné funkce jako je dýchání nebo uspořádání mikrotubulů. Konkrétní použití zamýšlené pro tento vynález je zničení buněk nezbytných pro vývoj samčího květu, což vede k samčí sterilitě. Technika má široké použití u velkého množství zemědělských plodin, kde se vyžaduje inhibice konkrétních buněk nebo pletiva.The present invention relates to a method of producing plants with male sterility by using a gene that can be expressed in the plant and inhibits a basic cellular function, thereby disrupting the full expression of selected plant traits. The invention provides a method of inhibiting the growth and development of plant cells based on recombinant genes, the expression of which leads to the inhibition of a basic cellular function such as respiration or the arrangement of microtubules. A particular use contemplated for this invention is the destruction of cells necessary for male flower development, resulting in male sterility. The technique has wide application in a large number of agricultural crops where inhibition of specific cells or tissue is required.

SEZNAM SEKVENCÍ (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 1:LIST OF SEQUENCES (2) INFORMATION FOR SEQUENCE ID 1:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 357 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: dvojité (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (genomová) (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 357 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) STRAND TYPE: double (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (genomic) (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: T-urfl3 (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 1:(A) ORGANISM: T-urfl3 (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 1:

ATCGGATCCA ATCGGATCCA TGATCACTAC TGATCACTAC TTTCTTAAAC TTTCTTAAAC CTTCCTCCCT CTTCCTCCCT TTGATCAAGG TTGATCAAGG TTTGGTATTT TTTGGTTTT 60 60 TTCGGTTCTA TTCGTTCTA TTTTTATTTT TTTTTTTTT TTTTTTGTGC TTTTTTGTGC ATATTATTGA ATATTATTGA TAAAGGGATA TAAAGGGATA TCTCCGTAAA TCTCCGTAAA 120 120 ATGGATGATT ATGGATGATT CCTATTTGGC CCTATTTGGC TCAACTCTCC TCAACTCTCC GAGTTAGCCA GAGTTAGCCA ACCACAATAG ACCACAATAG AGTGGAAGCG AGTGGAAGCG 180 180 GCAAAAGCGG GCAAAAGCGG GCCACGTGGC GCCACGTGGC CCTGCATGAG CCTGCATGAG CTATCCTTCT CTTCTTCT CGTGGTTGAG CGTGGTTGAG GGGGGTTCAA GGGGGTTCAA 240 240 ATTAGGGTGA ATTAGGGTGA GGACCTTACC GGACCTTACC TATACAACGG TATACAACGG AATGAAGGAG AATGAAGGAG GGGGTCGAAG GGGGTCGAAG CAACGACCAA CAACGACCAA 300 300 TCCACTCTCT TCCACTCTCT CTAAGCCTAA CTAAGCCTAA GTATTCCTCA GTATTCCTCA ATGACCGATA ATGACCGATA GCGTACAAGT GCGTACAAGT ACCGTGA ACCGTGA 357 357

(2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 2:(2) INFORMATION FOR SEQUENCE IDENTIFICATION NUMBER 2:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 36 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 36 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: Turf-1 primer • · (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 2:(A) ORGANISM: Turf-1 primer • · (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 2:

ATCGGATCCA TGATCACTAC TTTCTTAAAC CTTCCT 36 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 3:ATCGGATCCA TGATCACTAC TTTCTTAAAC CTTCCT 36 (2) INFORMATION FOR SEQUENCE IDENTIFICATION NUMBER 3:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 33 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 33 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: Turf-2R primer (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 3:(A) ORGANISM: Turf-2R primer (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 3:

TAGTCTAGAT CACGGTACTT GTACGCTATC GGT 33 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 4:TAGTCTAGAT CACGGTACTT GTACGCTATC GGT 33 (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 4:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 269 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: dvojité (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (genomová) (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 269 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) STRAND TYPE: double (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (genomic) (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: gen ATP-2 z Nicotinia plumbaginifolia (ix) ZNAKY:(A) ORGANISM: ATP-2 gene from Nicotinia plumbaginifolia (ix) CHARACTERISTICS:

(A) JMÉNO/OZNAČENÍ: CDS (3) POZICE: 1...267 (D) DALŠÍ INFORMACE: /startovací kodon = 1 (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 4:(A) NAME/DESIGNATION: CDS (3) POSITION: 1...267 (D) ADDITIONAL INFORMATION: /start codon = 1 (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 4:

ATG Met 1 ATG Met 1 GCT Ala GCT Alas TCT Ser TCT Ser CGG Arg CGG Arg AGG Arg 5 AGG Arg 5 CTT Leu CTT Leo CTC Leu CTC Leo GCC Ala GCC Alas TCT Ser TCT Ser CTC Leu 10 CTC Leo 10 CTC Leu CTC Leo CGT Arg CGT Arg CAA Gin CAA Gin TCG Ser TCG Ser GCT Ala 15 GCT Alas 15 CAA Gin CAA Gin 48 48 CGT CGT GGC GGC GGC GGC GGT GGT CTA CTA ATT ATT TCC TCC CGA CGA TCG TCG TCA TCA GGA GGA AAC AAC TCC TCC ATC ATC CCT CCT AAA AAA 96 96 Arg Arg Giv Giv Gly Glee Gly 20 Glee 20 Leu Leo lle lle Ser Ser Arg Arg Ser 25 Ser 25 Ser Ser Gly Glee Asn Association Ser Ser lle 30 lle 30 Pro For Lys Fox TCC TCC GCT GCT TCA TCA CGC CGC GCC GCC TCT TCT TCA TCA CGC CGC GCA GCA TCC TCC CCT CCT AAG AAG GGA GGA TTC TTC CTC CTC TTA TTA 144 144 Ser Ser Ala Alas Ser 35 Ser 35 Arg Arg Ala Alas Ser Ser Ser Ser Arg 40 Arg 40 Ala Alas Ser Ser Pro For Lys Fox Gly 45 Glee 45 Phe Phew Leu Leo Leu Leo AAC AAC CGC CGC GCC GCC GTA GTA CAG CAG TAC TRAY GCT GCT ACC acc TCC TCC GCA GCA GCG GCG GCA GCA CCG CCG GCA GCA TCT TCT CAG CAG 192 192 Asn Association Ara 50 Ara 50 Ala Alas Val Wall Gin Gin Tyr Tire Ala 55 Alas 55 Thr Thr Ser Ser Ala Alas Ala Alas Ala 60 Alas 60 Pro For Ala Alas Ser Ser Gin Gin CCA Approx TCA TCA ACA ACA CCA Approx CCA Approx AAG AAG TCC TCC GCC GCC AGT AGT GAA GAA CCG CCG TCC TCC GGA GGA AAA AAA ATT ATT ACC acc 240 240

·· ·· ·· ·· » · · · » · ·· • · · · · ♦ · ··· ·· ·· ·· » · · · » · ·· • · · · · ♦ · ·

Pro 65 For 65 Ser Ser Thr Thr Pro For Pro For Lvs 70 Lvs 70 Ser Ser Ala Alas GAT GAT GAG GAG TTC TTC ACC acc GGC GGC GCT GCT GGT GGT TCG TCG Asp Asp Glu Gosh Phe Phew Thr Thr Gly 85 Glee 85 Ala Alas Gly Glee Ser Ser

ATC GG IleATC GG Ile

Ser Glu Pro Ser Gly Lys Ile Thr 75 80Ser Glu Pro Ser Gly Lys Ile Thr 75 80

269 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 5:269 (2) INFORMATION FOR SEQUENCE IDENTIFICATION NUMBER 5:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 89 aminokyselin (B) TYP: aminokyselina (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: protein (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 5:(A) LENGTH: 89 amino acids (B) TYPE: amino acid (D) TOPOLOGY: linear (ii) MOLECULE TYPE: protein (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQUENCE ID NO. 5:

Met Met Ala Alas Ser Ser Arg Arg Arg Arg Leu Leo Leu Leo Ala Alas Ser Ser Leu Leo Leu Leo Arg Arg Gin Gin Ser Ser Ala Alas Gin Gin 1 1 - - 5 5 10 10 15 15 Arg Arg Gly Glee Gly Glee Gly Glee Leu Leo Ile How many Ser Ser Arg Arg Ser Ser Ser Ser Gly Glee Asn Association Ser Ser Ile How many Pro For Lys Fox 20 20 25 25 30 30 Ser Ser Ala Alas Ser Ser Arg Arg Ala Alas Ser Ser Ser Ser Arg Arg Ala Alas Ser Ser Pro For Lys Fox Gly Glee Phe Phew Leu Leo Leu Leo 35 35 40 40 45 45 Asn Association Arg Arg Ala Alas Val Wall Gin Gin Tyr Tire Ala Alas Thr Thr Ser Ser Ala Alas Ala Alas Ala Alas Pro For Ala Alas Ser Ser Gin Gin 50 50 55 55 60 60 Pro For Ser Ser Thr Thr Pro For Pro For Lys Fox Ser Ser Ala Alas Ser Ser Glu Gosh Pro For Ser Ser Gly Glee Lys Fox Ile How many Thr Thr 65 65 70 70 75 75 80 80 Asp Asp Glu Gosh Phe Phew Thr Thr Gly Glee Ala Alas Gly Glee Ser Ser Ile How many

(2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 6:(2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 6:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 37 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 37 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: PREB-IB primer (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 6:(A) ORGANISM: PREB-IB primer (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 6:

ATCGGTACCG CCATGGCTTC TCGGAGGCTT CTCGCCT 37 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 7:ATCGGTACCG CCATGGCTTC TCGGAGGCTT CTCGCCT 37 (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 7:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 27 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA(A) LENGTH: 27 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA

(vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: PREB-2R primer (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 7:(A) ORGANISM: PREB-2R primer (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 7:

ATCGGATCCC GCTGCGGAGG TAGCGTA 27 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 8:ATCGGATCCC GCTGCGGAGG TAGCGTA 27 (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 8:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 2285 párů bázi (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: dvojité (D) TOPOLOGIE: lineární (A) LENGTH: 2285 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FIBER TYPE: double (D) TOPOLOGY: linear (il) (il) TYP MOLEKULY: DNA (genomová) TYPE OF MOLECULE: DNA (genomic) (vii) (viii) PŮVODNÍ ZDROJ: (A) ORGANISMUS: promotor MFS14 ORIGINAL SOURCE: (A) ORGANISM: MFS14 promoter (xi) POPIS (xi) DESCRIPTION SEKVENCE: SEQUENCE: SEKVENCE SEQUENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 8: WITH IDENTIFICATION NUMBER 8: AAAAGCGTAC AAAAAGCGTAC CAGTAAGGGA CAGTAAGGGA TAAAGAAAAT THAAAAAAAT AAACAAACAC AAAAAACAC GAAATGCTTC GAAATGCTTC CCCATCGGCC CCCATCGCC 60 60 AATTCGCCTA AATTCGCCTA GGTGTGCTAG GGTGTGCTAG GAACTGGCCT GAACTGGCCT ATATGTTCGT ATATGTTCGT GTGTGCTTCT GTGTGCTTCT CCTATTTTCA CCTATTTTCA 120 120 CCAGAAAACT CCAGAAAACT TAGAAAACTC TAGAAAACTC TGGTATCCTT TGGTATCCTT GCCCCTTGTG GCCCCTTGTG GATATGGGAC GATATGGGAC AATGTCAAAC AATGTCAAAC 180 180 CGGTGATCAT CGGTGATCAT ATGGCTTCTG ATGGCTTCTG ATATC-ATTGC ATATC-ATTGC CCCACTCTAT CCCACTCTAT CCACACCAAC CCACACCAAC TCCGAGTCTA TCCGAGTCTA 240 240 TCTCAAAATA TCTCAAAATA GTTTAGCCAT GTTTAGCCAT CTCTTCCCTA CTCTTCCCTA ATTTTCTACA ATTTTCTACA TTGCACTCGG TTGCACTCGGG TGGCAGACCA TGGCAGACCA 300 300 CCGGACCCTA CCGGACCCTA GGCTGTGGGG GGCTGTGGGG TTCATTCGGT TTCATTCGGT CGGGCATTGT CGGGCATTGT TATGCCGACC TATGCCGACC TTCTTGCCAT TTCTTGCCAT 360 360 GACCGATTC-A GACCGATTC-A TAATGTTGAT TAATGTTGAT CGGCCTGTGA CGGCCTGTGGA TCATATGGCG TCATATGGCG TGTTGTGGGT TGTTGTGGGT TAAATATGTA TAAATATGTA 420 420 GGGGGCAGA^ GGGGGCAGA^ CATACTGCCG CATACTGCCG TTGTGGTATG TTGTGGTATG TAATAATTTG TAATAATTTG GTGCATAGTG GTGCATAGTG TGCGACAGTA TGCGACAGTA 480 480 GGTTCTGTGT GGTTCTGTGT ATGTGTATCC ATGTGTATCC GATATGTCCG GATATGTCCG GTGGTACATC GTGGTACATC TGAACTGGCC TGAACTGGCC GGTTGTGTTA GGTTGTGTTA 540 540 GCTATTATTG GCTATTATTG GGGCGCCACG GGGCGCCACG CGTAGCCCTG CGTAGCCCTG GTGCGGCCCG GTGCGGCCCG GACTATCCGG GACTATCCGG CAGAGAAAGC CAGAGAAAGC 600 600 CGACGGTCTG CGACGGTCTG TGTAAGGGCC TGTAAGGGCC GAACTATCCA GAACTATCCA GACAAAAGCT GACAAAAGCT CGGACGGTCC CGGACGGTCC GACCGTGTAG GACCGTGTAG 660 660 AGGGCCGTCG AGGGCCGTCG ATCTGCCAAG ATCTGCCAAG CAAGGACGAT CAAGGACGAT GGTGATGGTA GGTGATGGTA TTTGCCCTC-G TTTGCCCTC-G ATATGAGTTC ATATGAGTTC 720 720 ATCAACATAC ATCAACATAC CATATAATGG CATATAATGG ATGGGGCTGC ATGGGGCTGC AAATCCCCAT AAATCCCCAT TTGTCGCCGA TTGTCGCCGA TGTATTAGAC TGTATTAGAC 780 780 ataaatatca aaaaaatca TGTTACTAGT TGTTATAGT TTCATATGAT TTCATATGAT GGAAAACTAG GGAAAACTAG GAGCAACAGA GAGCAACAGA CTTCTCCAAC CTTCTCCAAC 840 840 ATACACGTTA ATACACGTTA ATTTTCTAAT ATTTTCTAAT TGGTTCTTCT TGGTTCTTCT AACCCTCTAA. AACCCTCTAA. TCTAATGCTT TCTAATGCTT CATTTGATTA CATTTGATTA 900 900 TGCAAATGGT TGCAAATGGT CTACATACTG CTACATACTG TTTAATAGAT TTTAATAGAT TGGATG.TCGT TGGATG.TCGT CGGGTTTACT CGGGTTTACT TACGTTAGGG TACGTTAGGG 960 960 ACTTGAAGCG ACTTGAAGCG AAGATAGAAG AAGATAGAAG AGATGTGACG AGATGTGACG TCGGTATCGC TCGGTATCGC ATGTTTGACA ATGTTTGACA ACTTTCTGGT ACTTTCTGGT 1020 1020 GACGATCCAC GACGATCCAC CATGTATTGT CATGTATTGT GACAAC-AATT GACAAC-AATT TCTCCTTCGT TCTCCTTCGT TTGACACATG TTGACACATG TAGTCCTCGT TAGTCCTCGT 1080 1080 ATTGTTGTTG ATTGTTGTTG CTCATCGGTC CTCATCGGTCC C-TCGGACTCT C-TCGGACTCT TAATAGCCGG TAATAGCCGG CTTTAGGATA CTTTAGGATA TTGTCCGGC-G TTGTCCGGC-G 1140 1140 AC-ATATCC-GT AC-ATATCC-GT GTGATCTTTA GTGATCTTTA Gz“AC CGC CAT Gz”AC CGC CAT TTGAT G GC CT TTGAT G GC CT GAGTTTTAGT GAGTTTTAGT AGATCTAGAC AGATCTAGAC 1200 1200

···· ········ ····

ACATTTCCCC AACGGAGTCG CCAAAAAGTG TGTTGGCGCC GATCCAGGCG CGAAACACTG 1260ACATTTCCCC AACGGAGTCG CCAAAAGTG TGTTGGCGCC GATCCAGGCG CGAAACACTG 1260

GAGATGGACC GTTTGGCGGT GTTCTCCGGG TGAGGACGGT CCGCGACCTG GGTCCAGCAG 1320GAGATGGACC GTTTGGCGGT GTTCTCCGGG TGAGGACGGT CCGCGACCTG GGTCCAGCAG 1320

CGACTCTCCT CTACGTGTGT CCGGACGGTC CGTCGTCTGG GGCTCGGACG GTCGCGATGG 1380CGACTCTCCT CTACGTGTGT CCGGACGGTC CGTCGTCTGG GGCTCGGACG GTCGCGATGG 1380

CGCAGAGGGT CTTCTTCTTC GCAGCCGACC TAGATCTCGC CTCCCGGGAG GGACCGTCGG 1440CGCAGAGGGT CTTCTTCTTC GCAGCCGACC TAGATCTCGC CTCCCGGGAG GGACCGTCGG 1440

GGAGGAGAGA TTGTAGGGTG TGTCTTGGCG TCGACAGGCC ACACAATACG CCTCTAGTCG 1500GGAGGAGAGA TTGTAGGGTG TGTCTTGGCG TCGACAGGCC ACACAATACG CCTCTAGTCG 1500

ACGTAGAGCC GAAGAGAGGT GAAGGATTGA GGTAGAAGGA GGCTAAACTT GGGCTAAACT 1560ACGTAGAGCC GAAGAGAGGT GAAGGATTGA GGTAGAAAGGA GGCTAAACTT GGGCTAAACT 1560

AGAACTACTG CTAATGCATA AGGTAAAAAC GAGAAGTGGA CTTCATTTGA TCGATTGTGG 1620AGAACTACTG CTAATGCATA AGGTAAAAAC GAGAAGTGGA CTTCATTTGA TCGATTGTGG 1620

AAGTAATCTG ACTGTAGCCC TTTATCTATA TAAAGGGGAG GTATGGACCC GTTACAAGCC 1680AAGTAATCTG ACTGTAGCCC TTTATCTATA TAAAGGGGAG GTATGGACCC GTTACAAGCC 1680

GTTTTCCGAG CTAATCTCAC GGTTTTAGTT AATAAATCCT GCGAGAAACT CGGAACTCTA 1740GTTTTCCGAG CTAATCTCAC GGTTTTAGTT AATAAATCCT GCGAGAAACT CGGAACTCTA 1740

ACTGATTCTA CTCATGCGCG AACCATTCGT GCGCCACCGC TGCCCGTCCC GCGATCGCTC 1800ACTGATTCTA CTCATGCGCG AACCATTCGT GCGCCACCGC TGCCCGTCCC GCGATCGCTC 1800

AGTTAACCCT GTGTTGTGCG CTGTGATTTG GTGGCATATA AAACCACATT TGCAATAAAA 1860AGTTAACCCT GTGTTGTGCG CTGTGATTTG GTGGCATATA AAACCACATT TGCAATAAAA 1860

ATTTGTAGGG ATTTAACATA CCAAGTGCTG CGAAAGGAAT CGTTTTCGGA GGACCCAAAA 1920ATTTGTAGGG ATTTAACATA CCAAGTGCTG CGAAAGGAAT CGTTTTCGGA GGACCCAAAA 1920

TTAAAGAGGC AGATGCTAGA GCTCGTCCAG CTCAGCGCTG AGCACCTGTG TTGTCTTCCT 1980TTAAAGAGGC AGATGCTAGA GCTCGTCCAG CTCAGCGCTG AGCACCTGTG TTGTCTTCCT 1980

CGTCCACGCC GGCGGAGATG AACGGCAACA AAGGCGGAAA GGCCGAGACG CTGAGCTCAA 2040CGTCCACGCC GGCGGAGATG AACGGCAACA AAGGCGGAAA GGCCGAGACG CTGAGCTCAA 2040

GGACGTGACA CCGCGCGTAC CTCGCGTTCA GTTGGCTCAC ACAACAGCAG CTCGCTCGCC 2100GGACGTGACA CCGCGCGTAC CTCGCGTTCA GTTGGCTCAC ACAACAGCAG CTCGCTCGCC 2100

CCAAGC7CCC GCGTCCTGAT CCGTAGGTGA GCCATGCAAA GGTCGCCGCG CGCCCTGATC 2160CCAAGC7CCC GCGTCCTGAT CCGTAGGTGA GCCATGCAAA GGTCGCCGCG CGCCCTGATC 2160

CATTGCACCC TTCAAAGCTC GAACCTACAA ATAGCGTGCA CCAGGCATCC TGGCCACACC 2220CATTGCACCC TTCAAAGCTC GAACCTACAA ATAGCGTGCA CCAGGCATCC TGGCCACACC 2220

CACACAGCAA GCCAGCAGAG CAGAAAGCAG CCGCAGCCCC AGCCCCCACA AAGACGAAGG 2280CACACAGCAA GCCAGCAGAG CAGAAAGCAG CCGCAGCCCC AGCCCCCACA AAGACGAAGG 2280

CAACA 2285 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 9:CAACA 2285 (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 9:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 23 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 23 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: 14-SA primer (xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 9:(A) ORGANISM: 14-SA primer (xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 9:

AGACGCTGAG CTCAAGGACG TGA 23 (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 10:AGACGCTGAG CTCAAGGACG TGA 23 (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 10:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 37 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární(A) LENGTH: 37 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear

25 25 • fa ·· • fafa fa • fa • fa • fa • fafafa fafafafa • fa ·· • fafa fa • fa • fa • fa • fafafa fafafafa • fa fa • • fa fa • fa • fa fa • • fa fa • fa (ii) (ii) TYP MOLEKULY: DNA TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) (viii) PŮVODNÍ ZDROJ: ORIGINAL SOURCE: (A) ORGANISMUS: MANT-1 primer (A) ORGANISM: MANT-1 primer xi) POPIS xi) DESCRIPTION SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM SEQUENCE: SEQUENCE WITH IDENTIFIER ČÍSLEM BY NUMBER 10: 10:

ATGCCCGGGC TTGCAATGTC TGTTAGCGGT GGCATCA (2) INFORMACE PRO SEKVENCI S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 11:ATGCCCGGGC TTGCAATGTC TGTTAGCGGT GGCATCA (2) INFORMATION FOR SEQ ID NO: 11:

(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:(i) SEQUENCE CHARACTERISTICS:

(A) DÉLKA: 32 párů baží (B) TYP: nukleová kyselina (C) TYP VLÁKNA: jednoduché (D) TOPOLOGIE: lineární (ii) TYP MOLEKULY: DNA (vii) PŮVODNÍ ZDROJ:(A) LENGTH: 32 base pairs (B) TYPE: nucleic acid (C) FILAMENT TYPE: single (D) TOPOLOGY: linear (ii) TYPE OF MOLECULE: DNA (vii) ORIGINAL SOURCE:

(A) ORGANISMUS: MANT-2RB primer (Xi) POPIS SEKVENCE: SEKVENCE S IDENTIFIKAČNÍM ČÍSLEM 11:(A) ORGANISM: MANT-2RB primer (Xi) SEQUENCE DESCRIPTION: SEQ ID NO: 11:

ATGCCCGGGC GATGGGGTAA GATGCAAGAC CA ty ΙοΓ-IŠATGCCCGGGC GATGGGGTAA GATGCAAGAC CA you ΙοΓ-IŠ

Claims (9)

PATENTOVÉ NÁROKYPATENT CLAIMS 1. Způsob brzděni (inhibice) genové exprese v cílovém rostlinném pletivu vyznačující se tím, že zahrnuje trvalou transformaci rostlinné buňky takového druhu, že z ní může být regenerována celá rostlina, rekombinantním genem nesoucím tkáňově nebo vývojově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového rostlinného pletiva, a dále nesoucím porušovací gen kódující takový protein, který je schopen, je-li exprimován, inhibovat buněčné dýchání v cílovém pletivu, což vede_ k odumření buněk, přičemž porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu T-urfl3, genů kódujících a- nebo β-tubulin, krátké ko-suprese ve směru čtení („sense cosupression) dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a aktivátoru replikačního počátku (ROA), a krátkého úseku genu translokštoru adenin nukleotidu (ANT), orientovaného ve směru čtení („sense), z vnitřní mitochondriální membrány.CLAIMS 1. A method of inhibiting gene expression in a target plant tissue, comprising the step of continuously transforming a plant cell of a species such that the whole plant can be regenerated therefrom by a recombinant gene carrying a tissue or development specific promoter that functions in the cells of the target plant tissue. and further carrying a disruption gene encoding such a protein which, when expressed, is capable of inhibiting cellular respiration in the target tissue, resulting in cell death, wherein the disruption gene is selected from the group consisting of the T-urf13 gene, genes encoding α- or β-tubulin, a short co-suppression in the sense direction ("sense cosupression") of two major maize cell cycle genes, cdc25 and a replication origin activator (ROA), and a short region of the adenine nucleotide translocator gene (ANT) ("Sense") from the inner mitochondrial membrane. 2. Rostlina, která má ve svém genomu trvale inkorporovanou rekombinantní molekulu DNA nesoucí tkáňově specifický nebo vývojově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového pletiva, a dále nesoucí porušovací gen kódující takový protein, který je schopen, je-li exprimován, inhibovat základní buněčnou funkci, jako je dýchání, uspořádání mikrotubulů nebo buněčné dělení v buňkách cílového pletiva, což vede k odumření buněk, přičemž porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu T-urfl3, genů kódujících a- nebo β-tubulin, krátké kosuprese ve směru čtení („sense) dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a aktivátoru replikačního počátku (ROA), a krátkého úseku („sense) genu translokátoru adenin nukleotidu (ANT) z vnitřní mitochondriální membrány.2. A plant having a recombinant DNA molecule permanently incorporated in its genome carrying a tissue-specific or developmental-specific promoter that functions in cells of the target tissue, and further carrying a disruptive gene encoding a protein capable of inhibiting the underlying cellular a function such as breathing, microtubule assembly, or cell division in target tissue cells, resulting in cell death, with the disruptive gene selected from the group consisting of the T-urf13 gene, genes encoding α- or β-tubulin, brief cosuppression in the direction reading (sense) of two major maize cell cycle genes, cdc25 and the replication origin activator (ROA), and a short (sense) gene of the adenine nucleotide translocator (ANT) gene from the inner mitochondrial membrane. 3. Rostlina, která má ve svém genomu trvale inkorporovanou rekombinantní molekulu DNA nesoucí tkáňově specifický promotor, který funguje v buňkách cílového pletiva, a dále nesoucí porušovací gen kódující takový protein, který je schopen inhibovat základní buněčnou funkci jako je dýchání, uspořádání3. A plant having a permanently incorporated recombinant DNA molecule in its genome carrying a tissue-specific promoter that functions in target tissue cells, and further carrying a disruptive gene encoding a protein capable of inhibiting a basic cellular function such as respiration, alignment SUBSTITUTE SHEET • · · < · · · · <SUBSTITUTE SHEET • • · · · « ·· *»· ·· mikrotubulů v buňkách cílového pletiva, což vede k odumření buněk, přičemž porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu T-urfl3, krátkého úseku („sense) genu translokátoru adenin nukleotidu (ANT), genů kódujících a- nebo β-tubulin a krátké ko-suprese vedoucí k utlumení („sense down-regulation) dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a ROA.Microtubules in the cells of the target tissue, resulting in cell death, wherein the disruption gene is selected from the group consisting of the T-urf13 gene, a sense region of the adenine nucleotide translocator ( ANT), genes encoding α- or β-tubulin and short co-suppression leading to the down-regulation of the two essential maize cell cycle genes, cdc25 and ROA. 4. Rostlina podle nároku 2 nebo 3, která je jednoděložná rostlina.The plant of claim 2 or 3, which is a monocotyledonous plant. 5. Rostlina podle nároku 4, která je kukuřice.The plant of claim 4, which is maize. 6. Způsob podle nároku 1 nebo rostlina podle kteréhokoliv z nároků 2 až 5, vyznačující se tím, že promotor je promotor specifický pro prašník a/nebo tapetum.The method of claim 1 or the plant of any one of claims 2 to 5, wherein the promoter is an anther-specific and / or wallpaper-specific promoter. 7. Způsob nebo rostlina podle nároku 6, vyznačuj ící se t í m, že promotor je izolován za použití sekvencí cDNA z jakéhokoliv obrázku 1 až 3.7. The method or plant of claim 6, wherein the promoter is isolated using the cDNA sequences of any of FIGS. 1-3. 8. Způsob nebo rostlina podle nároku 6, vyznačuj ící se t í m, že promotor je promotor z genu MFS14 (sekvence s identifikačním číslem 8).8. The method or plant of claim 6, wherein the promoter is a promoter from the MFS14 gene (SEQ ID NO: 8). 9. Samčí sterilní rostlina kukuřice, která má ve svém genomu trvale inkorporovanou rekombinantní molekulu DNA nesoucí promotor specifický pro tapetum, který funguje v buňkách tapeta, a dále nesoucí porušovací gen kódující takový protein, který je schopen inhibovat základní buněčnou funkci jako je dýchání nebo uspořádání mikrotubulů v buňkách tapeta, což vede k odumření buněk, přičemž porušovací gen je vybrán ze skupiny skládající se z genu T-urfl3, krátkého úseku („sense) genu translokátoru adenin nukleotidu (ANT), genů kódujících a- nebo β-tubulin a krátké ko-suprese vedoucí k utlumení („sense downregulation) dvou základních genů buněčného cyklu kukuřice, cdc25 a ROA.A male sterile maize plant having permanently incorporated in its genome a recombinant DNA molecule carrying a wallpaper-specific promoter that functions in wallpaper cells, and further carrying a disruption gene encoding a protein capable of inhibiting a basic cellular function such as respiration or alignment microtubules in wallpaper cells, resulting in cell death, wherein the disruption gene is selected from the group consisting of the T-urf13 gene, the adenine nucleotide translocator (ANT) gene, the α- or β-tubulin coding genes, and the short co-suppression leading to the sense downregulation of two major maize cell cycle genes, cdc25 and ROA.
CZ98205A 1995-07-24 1996-07-11 Inhibition of cellular respiration and production of plants with male sterility CZ20598A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9515161.9A GB9515161D0 (en) 1995-07-24 1995-07-24 Production of male sterile plants

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20598A3 true CZ20598A3 (en) 1998-04-15

Family

ID=10778172

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ98205A CZ20598A3 (en) 1995-07-24 1996-07-11 Inhibition of cellular respiration and production of plants with male sterility

Country Status (18)

Country Link
EP (1) EP0853674A1 (en)
JP (1) JPH11509417A (en)
CN (1) CN1197481A (en)
AR (1) AR002924A1 (en)
AU (1) AU705759B2 (en)
BG (1) BG102274A (en)
BR (1) BR9609535A (en)
CA (1) CA2224736A1 (en)
CZ (1) CZ20598A3 (en)
GB (1) GB9515161D0 (en)
HU (1) HUP9802858A3 (en)
MX (1) MX9800575A (en)
NO (1) NO980314L (en)
NZ (1) NZ312750A (en)
PL (1) PL324656A1 (en)
RU (1) RU2168545C2 (en)
TR (3) TR199801883T2 (en)
WO (1) WO1997004116A1 (en)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU719627B2 (en) * 1995-07-24 2000-05-11 Syngenta Limited Inhibition of cell respiration and production of male sterile plants
WO1999042587A1 (en) * 1998-02-20 1999-08-26 Zeneca Limited Pollen specific promoter
DE69941869D1 (en) 1998-03-27 2010-02-11 Max Planck Gesellschaft SPECIFIC GENES OF THE BASIC ENDOSPERM TRANSFER CELL LAYER (BETL)
GB9820970D0 (en) * 1998-09-25 1998-11-18 Zeneca Ltd Promoter
WO2001064924A1 (en) * 2000-03-02 2001-09-07 Südwestdeutsche Saatzucht Embryo sac-specific genes
US7205454B2 (en) * 2002-07-31 2007-04-17 Bayer Bioscience N.V. Corn root preferential promoters and uses thereof
CA2867383A1 (en) 2012-03-13 2013-09-19 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Genetic reduction of male fertility in plants
MX2014011044A (en) * 2012-03-13 2015-05-15 Pioneer Hi Bred Int Genetic reduction of male fertility in plants.
EA201491670A1 (en) * 2012-03-13 2015-07-30 Пайонир Хай-Бред Интернэшнл, Инк. GENETIC REDUCTION OF MALE REPRODUCTIVE FUNCTION IN PLANTS
CA2867377A1 (en) 2012-03-13 2013-09-19 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Genetic reduction of male fertility in plants
CN111235163B (en) * 2020-03-20 2022-05-31 南京农业大学 Rice meiosis development related gene OsMFS1 and application thereof

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5409837A (en) * 1988-01-14 1995-04-25 Mycogen Plant Science, Inc. Modified unF-13 protein and gene
GB8901675D0 (en) * 1989-01-26 1989-03-15 Ici Plc Inhibitor of gene expression
AU8723791A (en) * 1990-09-06 1992-03-30 E.I. Du Pont De Nemours And Company Compounds and constructs for producing male sterile plants
GB9126818D0 (en) * 1991-12-18 1992-02-19 Ici Plc Alteration of plant and plant cell morphology
ES2211864T3 (en) * 1992-07-02 2004-07-16 Syngenta Participations Ag SEQUENCES OF cDNA SPECIFIC ANTERA, SEQUENCES OF GENOMIC DNA AND SEQUENCES OF RECOMBINANT DNA.
AU5420594A (en) * 1992-11-02 1994-05-24 Mogen International N.V. Plants with reduced susceptibility to plant-parasitic nematodes
AUPN225695A0 (en) * 1995-04-07 1995-05-04 Australian National University, The Plants with altered mitochondrial function

Also Published As

Publication number Publication date
WO1997004116A1 (en) 1997-02-06
EP0853674A1 (en) 1998-07-22
AU705759B2 (en) 1999-06-03
NZ312750A (en) 2000-02-28
AR002924A1 (en) 1998-04-29
TR199801883T2 (en) 1998-12-21
BR9609535A (en) 1999-02-23
RU2168545C2 (en) 2001-06-10
HUP9802858A3 (en) 2000-11-28
HUP9802858A2 (en) 1999-03-29
NO980314D0 (en) 1998-01-23
TR199800112T1 (en) 1998-04-21
NO980314L (en) 1998-03-23
MX9800575A (en) 1998-04-30
AU6465296A (en) 1997-02-18
TR199801884T2 (en) 2000-09-21
JPH11509417A (en) 1999-08-24
BG102274A (en) 1998-09-30
CN1197481A (en) 1998-10-28
CA2224736A1 (en) 1997-02-06
PL324656A1 (en) 1998-06-08
GB9515161D0 (en) 1995-09-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5929307A (en) Method for the production of hybrid plants
AU747636C (en) Novel nucleic acid sequence encoding FLP recombinase
AU708618B2 (en) Induction of male sterility in plants by expression of high levels of avidin
EP3694308A1 (en) Systems and methods for cellular reprogramming of a plant cell
EP1000164B1 (en) Induction of male sterility in plants by expression of high levels of streptavidin
US6720475B1 (en) Modified nucleic acid sequence encoding FLP recombinase
CZ20598A3 (en) Inhibition of cellular respiration and production of plants with male sterility
MXPA98000575A (en) Inhibition of cell breathing and production of sterile plants ma
EP2397031A1 (en) Compositions and methods for modulation of plant cell division
US7056739B1 (en) Compositions and methods for modulation of plant cell division
AU719627B2 (en) Inhibition of cell respiration and production of male sterile plants
US20020129399A1 (en) Biotin-binding compounds for induction of sterility in plants
WO2022226316A1 (en) Compositions and methods for generating male sterile plants
CA2200496C (en) Genetic transformation using a parp inhibitor
MXPA97009731A (en) Induction of male sterility in plants through the expression of high levels of avid

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic