CS272743B1 - Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics - Google Patents

Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics Download PDF

Info

Publication number
CS272743B1
CS272743B1 CS326788A CS326788A CS272743B1 CS 272743 B1 CS272743 B1 CS 272743B1 CS 326788 A CS326788 A CS 326788A CS 326788 A CS326788 A CS 326788A CS 272743 B1 CS272743 B1 CS 272743B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
antigen
preparation
virus
poultry
leucosis
Prior art date
Application number
CS326788A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS326788A1 (en
Inventor
Alfonz Doc Mvdr Csc Jurcina
Frantisek Doc Mvdr Drsc Lesnik
Pavol Mvdr Balent
Original Assignee
Alfonz Doc Mvdr Csc Jurcina
Frantisek Doc Mvdr Drsc Lesnik
Pavol Mvdr Balent
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alfonz Doc Mvdr Csc Jurcina, Frantisek Doc Mvdr Drsc Lesnik, Pavol Mvdr Balent filed Critical Alfonz Doc Mvdr Csc Jurcina
Priority to CS326788A priority Critical patent/CS272743B1/cs
Publication of CS326788A1 publication Critical patent/CS326788A1/cs
Publication of CS272743B1 publication Critical patent/CS272743B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

1 CS 272 743 B1
Vynález rieši progresivny sposob' přípravy antigénu na diagnostiku leukózy hydiny. V súčasnosti diagnóza leukózy hydiny sa určuje predovšetkým na základe' patologic-ko-morfologického vyšetrenia ubynutej hydiny. Dostupné vyšetrovacie metody ako je napr.COFAL - komplement fixačný test pre leukózu hydiny a RIF - faktor indikujúci rezisten-ciu sú velmi náročná a nákladné. Přípravou diagnostickej súpravy bolo by možné previesfrýchlu plošná diagnostiku tohto ochorenia sposobeného leukóznymi virusmi. Zatial u násna diagnostiku leukózy hydiny sa komerčně nevyrába žiadny antigén. K diagnostika leukózy hydiny Fráňo a kol. (1983) používali antigén připravený zniektorých orgánov napr-· z pečena.,' sleziny,1 srdca a Jednak z vaječného bielka zo zamo-řených chovov. Korec a kol. (1984) vyvinuli a preverovali metodu detekcie leukóznehovirusu v peřových folikuloch sliepok. Uvedené pokusy o diagnostiku leukózy hydiny vrá-tane sposobu 'přípravy antigénu boli len experimentálně a bez širokého zavedenia do pra-xe.
Podstata přípravy antigénu pre sérologickú diagnostiku leukózy hydiny spočívá vtom, že virus z krvnej plazmy kurčiat infikovaných virusem mýeloblastózy sa precipitu-je B% obj. roztokem polyetylénglykolu pri 4 °C/ vzniklý precipilát sa-oddělí od superna-tantu centrifugáciou/ potom sa solubilizuje 1% obj. roztokem p-Isooctylphenoxypolyetha-nolu I hodinu pri 37 °C a frakcionizuje izoelektrickou fokusáciou. Získaný antigén jeskupinovo-špecifický gs antigén spoločný pre všetky podskupiny leukóznych virusov hy-diny. Přednostou uvedeného sposobu přípravy antigénu je možnost sledovat replikáciu vi-rusu myeloblastózy na základe zvýšenia hematokrytu. Zvyšuje sa počet leukocytov a vač-šinu cirkulujúcej krvi až 75 % tvoria myeloblasty. Zavedením sérologickej diagnostikypomocou skupinovo-Špecifického gs antigénu sa získá rýchly prehlad o epizootologickejsituácii leukózy hydiny a následná sa dosiahne zniženie incidencie leukózy hydiny formoueradikácie pozitivnych reagentov. Přiklad zavedenia sposobu přípravy antigénu. □ednodnové kurČatá,5 chovná linia Hybro/ boli infikované virusom myeloblastózy i.v.dávkou 0,1 ml. Na 14. den boli kurčatá vykrvené. Získaná heparinizovaná plazma bola pre-cipitovaná pomocou 8% obj. roztoku polyetylénglykolu o molekulovej hmotnosti 6 000 pri20 až 22 °C, Precipitát po 24 hodinách státia pri 4 °C bol centrifugovaný pri 3 500 g/15min. Sediment bol resu3pendovaný v pufrovanom fyziologickom roztoku o pH 7/2 pri 4 °Ca následná bola salubilizovaná 1&amp; obj. roztoku p-IsooctylphenoxypolyethoxyethanoluC34H64°11 0 m°le!<ui°veJ hmotnosti 645/85 1 hodinu pri 37 °C. Po solubilizácii sa mate-riál centrifugoval pri 3 000 g/30 min pri 4 °C a resuspendoval do povodného objemu vpufrovanom fyziologickom roztoku po dobu 48 hodin. Kvantitativné stanovenie virusovéhoantigénu bolo vykonané pomocou králičieho XgG anti gs. V případe pozitivity solubilné-ho roztoku v imunodifúznom teste, tento bol frakcionizovaný pomocou izoelektrickej foku-3ácie,“ pri vodivosti 200 až 800 uS. Vzorka po fokusácii/ ktorá trvala 48 hodin pri 4 °Ca napatí 3 mA bola detekovaná na 20 frakci!.
Na výkrese je graficky znázorněná závislost jednotlivých frakcii a na osi y vXavonamerané hodnoty pH a vpravo koncentrácía bielkovin v mg-ral”^ jednotlivých frakcii. Křivka _1 znázorňuje koncentráciu bielkovin a křivka 2 znázorňuje pH jednotlivých frak-cii. Všetky frakcie boli otestované voči pozitivnemu skuplnovo-špecifickéniu séru. Pozi-tivně sérologickú reakciu dávala frakcia 16 s izoelektrickým bodom pí 8/3/ ktorá před-stavuje antigén pre imunodifůznu diagnostiku leukózy hydiny. Koncentrácía nukleoprotei-nov bola zisfovaná Kalckarovou metodou (Leggett,3 3.B.: Ultraviole absorption of proteinsTechniques in protein chemistry. Elsevier publ. Comp., Amsterdam 1967/ s. 342-346) apři popisovanom konkrétnem přiklade boli dosiahnuté hodnoty uvedená v tabulka.

Claims (2)

  1. CS 272 743 Bi
  2. 2 Tabulka Pracia č. E280 E260 7 1 w 2 «1 « 3 - - 4 0,280 0/350 0/147 5 0/215 0/300 0/089 6 0/210 0/305 0/078 7 0/170 0/280 0/039 8 0,170 0/270 0/046 9 0/105 0/225 0/014 10 0/105 0/225 0,014 11 o; íoo 0/235 0/028 12 0/115 0/260 0/025 13 0/230 0,410 0/030 14 0/230 0,370 0/056 15 0/215 0/375 0/034 16 o; 250 0/395 0/070 17 0,220 0/395 0/026 18 0/220 0/390 0/030 19 0,235 0/410 0/037 20 0/200 0/340 0/038 PREDMET VYNALEZU Spoaob přípravy antigénu pre imunodifúznu diagnostiko laukqzýhydiny vyznač taj óci satým/ že virus z krvnaj plazmy kurSiat; infikovaných virusom myeloblastózy sa precipitu-je 8% obj. roztokom polyetylénglykolu při 4 °C/ vzniklý precipitát sa oddali od super-natantu centrifugáciou/ potom 9a eolubilizuje 1% obj. roztokom p-Isooctylph@noxypoly-ethoxyethanolu 1 hodinu pri 37 °C a frakcionizuje izoelaktrickou fokusáciou. 1 výkres
CS326788A 1988-05-16 1988-05-16 Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics CS272743B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS326788A CS272743B1 (en) 1988-05-16 1988-05-16 Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS326788A CS272743B1 (en) 1988-05-16 1988-05-16 Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS326788A1 CS326788A1 (en) 1990-06-13
CS272743B1 true CS272743B1 (en) 1991-02-12

Family

ID=5372243

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS326788A CS272743B1 (en) 1988-05-16 1988-05-16 Method of antigen preparation for preparation for poultry's leucosis immunodiffusion diagnostics

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS272743B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS326788A1 (en) 1990-06-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PROPP et al. Waldenstrom's macroglobulinemia and neuropathy: Deposition of M‐component on myelin sheaths
Taliaferro The immunology of parasitic infections
Lee Chicken lymphocyte stimulation by mitogens: a microassay with whole-blood cultures
US5871748A (en) Method of treating viral diseases in animals
Ludwig et al. Demonstration of specific antibodies in the central nervous system of horses naturally infected with Borna disease virus
Siegel et al. Serum agglutinin levels to sheep red blood cells in mice infected with Rauscher virus.
Alexander et al. Preliminary evaluation of the haemagglutination and haemagglutination inhibition tests for avian infectious bronchitis virus
Kreier et al. Autoimmune reactions in rats with Plasmodium berghei infection
Kent Isolation of specific antigens from Ascaris lumbricoides (var. suum)
RU2145712C1 (ru) Способ диагностики радиационных поражений организма и способ получения препарата для его осуществления
Hayden Immunochemical detection of ovine, porcine and equine flesh in beef products with antisera to species myoglobin
US5397568A (en) Method of treating infectious bursal disease virus infections
Friou et al. Spontaneous autoimmunity in mice: Antibodies to nucleoprotein in strain A/J
Bruce et al. Irradiated mice lose the capacity to'process' fed antigen for systemic tolerance of delayed-type hypersensitivity
Hussain et al. Detection of serum antibody levels against infectious bursal disease (IBD) virus using indirect hemagglutination (IHA) test in commercial broilers
CS272743B1 (en) Method of antigen preparation for preparation for poultry&#39;s leucosis immunodiffusion diagnostics
BG98720A (bg) Метод и състав за определяне на имунната активност на биологично активни вещества
Gadebusch et al. Natural Host Resistance to Infection with Cryptococcus neoformans: III. The Effect of Cryptococcal Polysaccharide upon the Physiology of the Reticuloendothelial System of Laboratory Animals
Umoh et al. Immunofluorescent staining of trypsinized formalin-fixed brain smears for rabies antigen: results compared with those obtained by standard methods for 221 suspect animal cases in Nigeria
Durojaiye et al. Newcastle disease and egg drop syndrome'76 in guinea fowls (Numida meleagris galeata Pallas)
Koppenheffer et al. The complement system of the duck
US3777014A (en) Method and reagents for the diagnosis of viral diseases
SUMMERFELT Identification of a fish serum protein with antibody activity
Bulashev et al. Hematological and serological investigation of dogs during experimental echinococcosis
Sells A study of the pathogenesis of Mycoplasma synoviae infections